JPH10215897A - Detection of mutant cell by chromosomal reciprocal translocation, probe kit for the same detection and detector therefor - Google Patents

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To simply and rapidly detect a fused mRNA based on the subject mutant cell participating in hematopoietic tumor for each type by measuring each fluorescent spectrum of specific two kinds of probes as one set and the fluorescent spectrum of a hybridized substance of the probes with the fused mRNA. SOLUTION: When an mRNA in which a 5' splice part derived from an AML1 and a 3' splice part derived from an MTG8 gene is detected, etc., either one of specific two kinds of probes as one set hybridizable continuously to a 5' splice part and a 3' splice part sandwiching a fused point therebetween is labeled with an energy donor fluorescent coloring matter D and the other is labeled with an energy acceptor fluorescent coloring matter A. Each fluorescent spectrum fD of the probes and the fluorescent spectrum fA of a hybridized substance of the probes with the fused mRNA are measured to carry out the wave form analysis.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【０００１】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、染色体相互転座に
よる変異細胞検出方法、その検出用プローブキット、お
よびその検出装置に関する。TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for detecting a mutant cell by reciprocal translocation of chromosomes, a probe kit for the detection thereof, and an apparatus for detecting the same.

【０００２】[0002]

【従来の技術】造血器腫瘍は発症までの時間的な差や、
腫瘍が発症する造血器の種類等の違いにより、いくつか
のタイプが存在することが知られている。これらのタイ
プにより、その症状も発症の時期も異なるため、このタ
イプに合せて、治療薬の選択や投薬のタイミングを決定
することが、治療上で重要であるとされている。また、
前記造血器腫瘍は、多彩な病態の集まりであるため、そ
の症状だけからは病気のタイプを確定することは難しい
とされており、なんらかの生化学的な指標や遺伝子マー
カーを用いた判定方法が必要とされている。例えば、上
記目的にとって十分なものではないが、白血病のタイプ
判別として第９番染色体と第２２番染色体の間での相互
転座により生じるフィラデルフィア染色体と呼ばれる異
常な染色体の出現観察がよく用いられている方法であ
る。2. Description of the Related Art Hematopoietic tumors differ in time until onset,
It is known that there are several types depending on the type of hematopoietic organ in which a tumor develops. Since the symptoms and the timing of onset differ depending on these types, it is considered important in treatment to determine the selection of a therapeutic agent and the timing of administration in accordance with this type. Also,
Since the hematopoietic tumor is a collection of various disease states, it is difficult to determine the type of the disease only from its symptoms, and a determination method using some biochemical index or gene marker is required. It has been. For example, although it is not sufficient for the above purpose, observation of the appearance of an abnormal chromosome called Philadelphia chromosome caused by reciprocal translocation between chromosome 9 and chromosome 22 is often used to determine the type of leukemia. That's the way you are.

【０００３】一方、造血器腫瘍の発症の原因が、染色体
の相互転座による融合遺伝子が原因であるということが
強く示唆されており、この知見に基づくＲＴ−ＰＣＲ法
やＦＩＳＨ法等により、造血器腫瘍のタイプ判別が行わ
れている。しかしながら、これらのＲＴ−ＰＣＲ法やＦ
ＩＳＨ法は、感度の点では優れた方法であるが、検出時
間が長時間を要することや、検出操作が煩雑であるなど
の点で問題がある。また、上記ＲＴ−ＰＣＲ法は、染色
体転座によって融合する遺伝子をそれぞれ認識する適当
なプライマーを設計しこれを用いて遺伝子の増幅を行う
ものであるが、ｍＲＮＡから一度ＲＮＡをｃＤＮＡに逆
転写することから、プライマーを４種類必要とするとい
う煩雑な操作が必要であるという問題もある。また、前
記増幅過程でミスマッチによるエラーの可能性について
も問題となる。さらに、ＦＩＳＨ法は操作に熟練を要
し、簡便に迅速正確に多量試料を検査するには問題があ
る。[0003] On the other hand, it has been strongly suggested that the onset of hematopoietic tumors is caused by a fusion gene due to reciprocal translocation of chromosomes. Based on this finding, RT-PCR, FISH, etc. The type of organ tumor has been identified. However, these RT-PCR methods and F
The ISH method is an excellent method in terms of sensitivity, but has a problem in that a long detection time is required and the detection operation is complicated. In the RT-PCR method, an appropriate primer is designed to recognize a gene to be fused by chromosomal translocation, and the gene is amplified using the primer. However, once the RNA is reverse-transcribed from mRNA to cDNA. Therefore, there is also a problem that a complicated operation of requiring four types of primers is required. In addition, there is a problem about the possibility of an error due to mismatch in the amplification process. Furthermore, the FISH method requires skill in operation, and there is a problem in simply, quickly and accurately testing a large number of samples.

【０００４】[0004]

【発明が解決しようとする課題】本発明者は上記の従来
技術が有する問題点に鑑み、染色体転座による変異細胞
を検出するために、染色体転座によって融合形成された
変異遺伝子を有する変異細胞に基づく融合ｍＲＮＡを、
タイプ別に、簡便迅速に検出可能とし、係る融合ｍＲＮ
Ａの存在の判別に基づき前記変異細胞を検出する方法を
見出し本発明を完成するに至った。さらに、その検出方
法に使用可能なプローブキット、及びその検出装置を開
発することにも成功した。SUMMARY OF THE INVENTION In view of the above-mentioned problems of the prior art, the present inventors have developed a mutant cell having a mutant gene fused by chromosomal translocation in order to detect a mutant cell due to chromosomal translocation. Fusion mRNA based on
For each type, the detection is simple and quick, and the fusion mRN
The present inventors have found a method for detecting the mutant cells based on the determination of the presence of A, and have completed the present invention. Furthermore, they succeeded in developing a probe kit that can be used for the detection method and a detection device therefor.

【０００５】[0005]

【課題を解決するための手段】本発明は、染色体転座に
よる変異細胞を検出するための方法と、その検出方法に
使用可能なプローブキット及び、検出装置に関するもの
である。SUMMARY OF THE INVENTION The present invention relates to a method for detecting mutant cells due to chromosomal translocation, a probe kit usable for the detection method, and a detection device.

【０００６】本発明において、変異遺伝子とは、染色体
相互転座により形成される遺伝子であって、例えばＡと
いう種類の遺伝子の一部と、例えばＢという種類の遺伝
子の一部が、ある長さと適当な塩基配列のＤＮＡを介し
て融合したものである。さらに、本発明において融合ｍ
ＲＮＡとは、前記変異遺伝子に基づきスプライシング等
により形成される成熟ｍＲＮＡであって、前記遺伝子Ａ
およびＢ由来の部分（例えば、それぞれ５’又は３’ス
プライス部という）が直接連続して結合（前記スプライ
ス部が結合した位置を融合点という）したものをいう。[0006] In the present invention, a mutant gene is a gene formed by mutual translocation of chromosomes. For example, a part of a gene of type A and a part of a gene of type B, for example, have a certain length. It is obtained by fusing via a DNA having an appropriate base sequence. Further, in the present invention, fusion m
RNA is a mature mRNA formed by splicing or the like based on the mutated gene,
And B-derived portions (for example, 5 ′ or 3 ′ splice portions, respectively) are directly and continuously bonded (the position where the splice portions are bonded is referred to as a fusion point).

【０００７】従って、前記融合ｍＲＮＡを検出しその存
在を判別することにより前記変異遺伝子の存在を判別し
てその結果、前記変異細胞の存在を検出可能とする。さ
らに、前記融合ｍＲＮＡを検出するために、前記ｍＲＮ
Ａの塩基配列中の前記連続して結合した５’および３’
スプライス部の存在を検出することで可能となるもので
ある。Therefore, the presence of the mutant gene is determined by detecting the fusion mRNA and determining the presence thereof, and as a result, the presence of the mutant cell can be detected. Further, in order to detect the fusion mRNA, the mRN
5 ′ and 3 ′ linked in succession to each other in the base sequence of A
This is made possible by detecting the presence of the splice.

【０００８】従って、本発明に係る染色体相互点座によ
る変異細胞の検出方法は、試料中の前記融合ｍＲＮＡの
存在を選択的に判別するためのプローブを用いるもので
あれば特に制限されるものではないが、本発明において
は、前記プローブとして、前記の融合点を含む５’およ
び３’スプライス部に選択的にハイブリダイズ可能なオ
リゴヌクレオチドプローブまたはホスホロチオエート型
オリゴヌクレオチドなどヌクレアーゼ耐性を持つ種々の
オリゴヌクレオチド誘導体を用いたプローブの使用が好
ましい。より好ましくは、前記５’スプライス部と３’
スプライス部に連続して別々にハイブリダイズ可能な２
種類１組のプローブを使用することである。さらに好ま
しくはハイブリダイズのミスマッチを防止するための、
前記融合点をはさんで前記５’および３’スプライス部
に連続してハイブリダイズ可能な２種類１組のプローブ
を使用することである。[0008] Therefore, the method for detecting a mutant cell based on the chromosomal mutual locus according to the present invention is not particularly limited as long as it uses a probe for selectively determining the presence of the fusion mRNA in a sample. However, in the present invention, as the probe, various oligonucleotides having nuclease resistance such as oligonucleotide probes or phosphorothioate-type oligonucleotides capable of selectively hybridizing to the 5 ′ and 3 ′ splice portions containing the fusion point described above are used. It is preferable to use a probe using a derivative. More preferably, the 5 ′ splice portion and 3 ′
2 that can be separately hybridized continuously to the splice
One type of probe is used. More preferably, to prevent hybridization mismatch,
It is to use a pair of two types of probes that can hybridize continuously to the 5 ′ and 3 ′ splice portions across the fusion point.

【０００９】さらに、本発明は、前記プローブが前記ｍ
ＲＮＡにハイブリダイズしたハイブリダイズ体を検出す
る手段についても制限されないが、特に前記１組２種類
のプローブがそれぞれエネルギードナー蛍光色素、およ
びエネルギーアクセプター蛍光色素でラベル化し、これ
らの色素の蛍光スペクトルを観測することが好ましく使
用可能である。特に、前記２種類の蛍光色素は、前記ハ
イブリダイズ体形成による蛍光色素間蛍光エネルギー移
動現象によりこれらの色素に基づく蛍光スペクトルが変
化するものが好ましく使用可能である。この場合におい
ては、前記蛍光スペクトル変化を観測することにより、
前記ｍＲＮＡとプローブとのハイブリダイズ体形成の判
別を可能とし、従って、ｍＲＮＡの存在の判別、すなわ
ち、前記染色体相互転座による変異細胞の検出が可能と
なる。Further, the present invention provides the above-mentioned
The means for detecting a hybridized substance hybridized to RNA is not particularly limited. In particular, the pair of two types of probes are labeled with an energy donor fluorescent dye and an energy acceptor fluorescent dye, respectively, and the fluorescence spectra of these dyes are measured. Observation is preferably usable. In particular, as the two kinds of fluorescent dyes, those in which the fluorescence spectrum based on these dyes changes due to the fluorescent energy transfer phenomenon between the fluorescent dyes due to the formation of the hybridized body can be preferably used. In this case, by observing the change in the fluorescence spectrum,
It is possible to determine the formation of a hybridized body between the mRNA and the probe, and therefore, it is possible to determine the presence of the mRNA, that is, to detect a mutant cell by the chromosome mutual translocation.

【００１０】本発明に係る染色体相互転座による変異細
胞の検出方法は、さらに、試料中に２種類以上の異なる
染色体相互転座による変異細胞の同時検出に関するもの
である。ここで、２種類以上の異なる染色体相互転座に
よる変異細胞とは、前記の５’又は３’スプライス部の
いずれかの部を共通に有するｍＲＮＡを生成する変異遺
伝子を有するものである。例えば５’スプライス部を共
通にする場合には、相違する３’スプライス部を有する
複数のｍＲＮＡを含む試料中において、それぞれのｍＲ
ＮＡの存在を同時に判別可能とするものである。この場
合、プローブとしては、共通する５’スプライス部にハ
イブリダイズする１種類のプローブと、相違する３’ス
プライス部のそれぞれハイブリダイズ可能な複数種類の
プローブとからなるプローブが好ましく使用可能であ
る。また、前記プローブがそれぞれのｍＲＮＡとハイブ
リダイズ体を形成した場合に測定される蛍光スペクトル
は、エネルギーアクセプター蛍光色素をそれぞれ異なる
蛍光波長の色素を選択使用することで、それぞれの蛍光
スペクトルの重ね合わせとなる。従って、適当な波形処
理によりそれぞれのｍＲＮＡの存在及び存在比等を同時
に判別可能となる。[0010] The method for detecting mutant cells by mutual chromosome translocation according to the present invention further relates to the simultaneous detection of mutant cells by two or more different types of mutual chromosome translocation in a sample. Here, the mutant cells due to two or more different chromosome mutual translocations are those having a mutant gene that produces an mRNA having any of the above 5 ′ or 3 ′ splice portions in common. For example, when the 5 ′ splice part is made common, in the sample containing a plurality of mRNAs having different 3 ′ splice parts, each mR
This makes it possible to simultaneously determine the presence of NA. In this case, as the probe, a probe composed of one type of probe that hybridizes to a common 5 ′ splice portion and a plurality of types of probes that can hybridize to different 3 ′ splice portions can be preferably used. In addition, the fluorescence spectrum measured when the probe forms a hybridized form with each mRNA is obtained by superposing the respective fluorescence spectra by selectively using energy acceptor fluorescent dyes having different fluorescent wavelengths. Becomes Therefore, it is possible to simultaneously determine the presence and the abundance ratio of each mRNA by appropriate waveform processing.

【００１１】本発明にかかる方法に使用可能な染色体転
座による変異細胞を検出する検出用プローブキットの構
成としては、基本的にエネルギードナープローブとアク
セプタープローブの２種類１組のオリゴヌクレオチド又
はホスホロチオエート型オリゴヌクレオチドなどヌクレ
アーゼ耐性を持つ種々のオリゴヌクレオチド誘導体から
なるであって、前記ドナープローブ及びアクセプタープ
ローブが、連続又は互いに隣接して前記ｍＲＮＡの一部
と相補的にハイブリダイズしてハイブリダイズ体を形成
し、前記ドナープローブの光励起に基づく蛍光スペクト
ルとは異なる蛍光スペクトルを与えるように、前記ドナ
ープローブがエネルギードナー蛍光色素を有し、前記ア
クセプタープローブがエネルギーアクセプター蛍光色素
を有する構造を有するものである。さらに、複数のｍＲ
ＮＡの同時検出の目的で、相違する複数の前記プローブ
を使用することも可能である。The detection probe kit for detecting mutant cells by chromosomal translocation which can be used in the method according to the present invention is basically composed of a pair of oligonucleotides or phosphorothioate of an energy donor probe and an acceptor probe. Comprising various oligonucleotide derivatives having nuclease resistance such as a type oligonucleotide, wherein the donor probe and the acceptor probe hybridize continuously or adjacent to each other and complementarily hybridize with a part of the mRNA. Having a structure in which the donor probe has an energy donor fluorescent dye and the acceptor probe has an energy acceptor fluorescent dye so as to give a fluorescence spectrum different from a fluorescence spectrum based on photoexcitation of the donor probe. Is shall. In addition, multiple mRs
It is also possible to use a plurality of different said probes for the purpose of simultaneous detection of NA.

【００１２】さらに本発明に係る、上記方法を用いた多
検体試料中の特定の染色体転座による変異細胞検出装置
は、試料調製装置、プローブキット選択装置と、ハイブ
リダイズ用反応装置および蛍光スペクトル測定装置、そ
の蛍光スペクトル測定データーを取り込み手段と、特定
の変異細胞判別手段とを備える装置である。Further, according to the present invention, a device for detecting a mutant cell based on a specific chromosomal translocation in a multi-sample using the above-mentioned method includes a sample preparing device, a probe kit selecting device, a hybridization reaction device and a fluorescence spectrum measuring device. The apparatus includes an apparatus, a means for capturing fluorescence spectrum measurement data, and a specific mutant cell discriminating means.

【００１３】より詳しくは、本発明は、融合ｍＲＮＡ
を、前記融合ｍＲＮＡの融合点をはさむ５’スプライス
部と３’スプライス部に連続又は互いに隣接してハイブ
リダイズ可能な２種類１組のプローブであって、前記プ
ローブがそれぞれエネルギードナー蛍光色素、およびエ
ネルギーアクセプター蛍光色素でラベル化されたプロー
ブの蛍光スペクトルと、前記プローブが前記融合ｍＲＮ
Ａとハイブリダイズして形成されるハイブリダイズ体の
蛍光スペクトルとを測定することにより判別して、染色
体相互転座による変異細胞を検出する方法を提供するも
のである。More specifically, the present invention relates to a fusion mRNA
A pair of two types of probes capable of hybridizing continuously or adjacent to each other at the 5 ′ splice portion and the 3 ′ splice portion sandwiching the fusion point of the fusion mRNA, wherein each of the probes is an energy donor fluorescent dye, and A fluorescence spectrum of a probe labeled with an energy acceptor fluorescent dye;
It is intended to provide a method for detecting a mutant cell due to mutual translocation of chromosomes by determining by measuring the fluorescence spectrum of a hybridized body formed by hybridizing with A.

【００１４】また、本発明は、前記ハイブリダイズ体の
蛍光スペクトルが、前記蛍光色素間の蛍光エネルギ移動
に基づく蛍光を含むことを特徴とする前記記載の方法を
提供するものである。[0014] The present invention also provides the method as described above, wherein the fluorescence spectrum of the hybrid body contains fluorescence based on the transfer of fluorescence energy between the fluorescent dyes.

【００１５】さらに、本発明は、５’又は３’スプライ
ス部のいずれかの部を共通に有する複数のｍＲＮＡを、
前記５’スプライス部に共通してハイブリダイズする１
種類のプローブと、相違する３’スプライス部のそれぞ
れにハイブリダイズ可能な複数種類のプローブとからな
る複数のプローブであって、前記５’スプライス部に共
通してハイブリダイズする１種類のプローブがエネルギ
ドナー蛍光色素でラベル化され、前記相違する３’スプ
ライス部のそれぞれに相違する蛍光色素でラベル化され
た複数のプローブの蛍光スペクトルと、前記プローブが
前記融合ｍＲＮＡとハイブリダイズして形成されるハイ
ブリダイズ体の蛍光スペクトルとを測定することにより
選択的に判別して、染色体相互転座による変異細胞を検
出する方法を提供するものである。Further, the present invention provides a plurality of mRNAs having a common 5 ′ or 3 ′ splice region.
1 that hybridizes in common with the 5 ′ splice region
A plurality of types of probes and a plurality of types of probes capable of hybridizing to each of the different 3 ′ splice portions, wherein one type of probe that hybridizes in common to the 5 ′ splice portion has energy A fluorescence spectrum of a plurality of probes labeled with a donor fluorescent dye and labeled with a different fluorescent dye at each of the different 3 ′ splice portions, and a hybrid formed by hybridizing the probe with the fusion mRNA. An object of the present invention is to provide a method for selectively discriminating by measuring the fluorescence spectrum of a soybean body and detecting a mutant cell due to chromosome mutual translocation.

【００１６】また、本発明は、前記ハイブリダイズ体の
蛍光スペクトルが、前記蛍光色素間の蛍光エネルギ移動
に基づく蛍光を含むことを特徴とする前記記載の方法を
提供するものである。The present invention also provides the method as described above, wherein the fluorescence spectrum of the hybrid contains fluorescence based on the transfer of fluorescence energy between the fluorescent dyes.

【００１７】さらに、前記記載の方法であって、前記ハ
イブリダイズ体の蛍光スペクトルの波形解析によりｍＲ
ＮＡを選択的に判別することを特徴とする方法を提供す
るものである。Further, in the above-mentioned method, mR is obtained by analyzing a waveform of a fluorescence spectrum of the hybridized product.
Another object of the present invention is to provide a method characterized by selectively determining the NA.

【００１８】また、本発明は、融合ｍＲＮＡを判別し
て、染色体相互転座による変異細胞を検出する方法に使
用するプローブであって、記融合ｍＲＮＡの融合点をは
さむ５’スプライス部と３’スプライス部に連続してハ
イブリダイズ可能な塩基配列を有する２種類１組のプロ
ーブであって、前記プローブがそれぞれエネルギードナ
ー蛍光色素、およびエネルギーアクセプター蛍光色素で
ラベル化され、前記融合ｍＲＮＡとハイブリダイズして
形成されるハイブリダイズ体の蛍光スペクトルが、前記
蛍光色素間の蛍光エネルギ移動に基づく蛍光を含むこと
を特徴とするプローブに係るものである。The present invention also relates to a probe used for a method for detecting a mutant cell by reciprocal translocation of a chromosome by discriminating a fusion mRNA, comprising a 5 ′ splice portion and a 3 ′ splice portion which sandwich a fusion point of the fusion mRNA. A pair of two types of probes having a base sequence capable of continuously hybridizing to a splice portion, wherein the probes are labeled with an energy donor fluorescent dye and an energy acceptor fluorescent dye, respectively, and hybridized with the fusion mRNA. The fluorescence spectrum of the hybrid body formed as described above includes fluorescence based on the transfer of fluorescence energy between the fluorescent dyes.

【００１９】さらに、本発明は、ターゲット遺伝子を含
む試料溶液を調製する試料調製装置と、プローブキット
を選択してプローブ溶液を調製するプローブキット選択
装置と、前記調製された試料と前記プローブキット溶液
を混合してハイブリダイズする反応装置と、前記混合溶
液の蛍光スペクトルを測定する蛍光測定装置と、前記測
定された蛍光スペクトル測定データーを取り込むデータ
ー取り込み手段と、前記データを処理しターゲット遺伝
子が存在するか否かを判別する判別手段とを備えること
を特徴とする転座融合遺伝子検出装置に係るものであ
る。Further, the present invention provides a sample preparation device for preparing a sample solution containing a target gene, a probe kit selection device for selecting a probe kit to prepare a probe solution, a sample preparation device and a solution for the probe kit solution. A reaction device that mixes and hybridizes, a fluorescence measurement device that measures the fluorescence spectrum of the mixed solution, a data capturing unit that captures the measured fluorescence spectrum measurement data, and a target gene that is obtained by processing the data. And a determination means for determining whether or not the gene is a translocation fusion gene.

【００２０】以下実施の態様に基づいて本発明をより詳
細に説明する。Hereinafter, the present invention will be described in more detail based on embodiments.

【００２１】[0021]

【発明の実施の形態】BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION

（染色体相互転座による変異細胞）本発明に係る方法、
プローブキット、及び装置により検出し、判別され得る
変異細胞の染色体相互転座の種類については特に制限は
ない。従来知られた下表にまとめたヒト白血病のタイプ
別染色体相互転座位置および変異遺伝子（融合遺伝子）
の検出は特に好ましく可能である。(Mutant cell by mutual chromosome translocation) The method according to the present invention,
There is no particular limitation on the type of chromosome mutual translocation of mutant cells that can be detected and distinguished by the probe kit and device. Chromosomal mutual translocation positions and mutant genes (fusion genes) for each type of human leukemia summarized in the table below
Is particularly preferably possible.

【００２２】 表 ======================================================================= 染色体転座 変異遺伝子 翻訳産物 タイプ の５’および ３’スプライス部 −−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−− t(8;21)(q22;q22) AML1-MTG8 転写因子／ＤＮＡ結合蛋白 AML t(3;21)(q26;q22) AML1-EVI-1 転写因子／ＤＮＡ結合蛋白 AML t(3;21)(q26;q22) AML1-MDS1 CML-BC t(12;21)(q13;q22) TEL-AML1 T cell ALL t(4;11)(q21;q23) MLL-AF4 pro B ALL t(9;11)(q21;q23) MLL-AF9/MLLT3 ALL t(11;19)(q23;q13) MLL-ENL ALL t(X;11)(q13;q23) MLL-AFX1 T cell ALL t(1;11)(q32;q23) MLL-AF6 ALL t(11;17)(q23;q21) MLL-AFL17 ＤＮＡ結合蛋白 AML t(1;19)(q23;q13.3) E2A-PBX1 MDS t(17;19)(q22;q13) E2A-HLF pro B ALL t(15;17)(q21;q21) PML-RARα 転写因子／ＤＮＡ結合蛋白 APL t(11;17)(q23;q21.1) PLZF-RARα 転写因子／ＤＮＡ結合蛋白 APL t(9;22)(q34;q11) bcr-abl チロシンキナーゼ CML/ALL t(6;9)(q23;q34) DEK-CAN AML t(5;12)(q33;q13) PDGF-b-TELLチロシンキナーセ゛／ＤＮＡ結合蛋白 CMMol t(16;21)(q11;q22) FUS-ERG AML/MDS ======================================================================= この際、各スプライス部の塩基配列は知られている必要
があるが、それらは従来公知の塩基配列決定方法により
決定され得るものである。Table =============================================== ========================= Chromosome translocation Mutant gene 5 'and 3' splice part of translation product type ------ −−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−− t (8; 21) (q22; q22) AML1-MTG8 Transcription factor / DNA binding protein AML t ( 3; 21) (q26; q22) AML1-EVI-1 transcription factor / DNA binding protein AML t (3; 21) (q26; q22) AML1-MDS1 CML-BC t (12; 21) (q13; q22) TEL -AML1 T cell ALL t (4; 11) (q21; q23) MLL-AF4 pro B ALL t (9; 11) (q21; q23) MLL-AF9 / MLLT3 ALL t (11; 19) (q23; q13) MLL-ENL ALL t (X; 11) (q13; q23) MLL-AFX1 T cell ALL t (1; 11) (q32; q23) MLL-AF6 ALL t (11; 17) (q23; q21) MLL-AFL17 DNA binding protein AML t (1; 19) (q23; q13.3) E2A-PBX1 MDS t (17; 19) (q22; q13) E2A-HLF pro B ALL t (15; 17) (q21; q21) PML -RARα transcription factor / DNA binding protein APL t (11; 17) (q23; q21.1) PLZF-RARα transcription factor / DNA binding protein APL t (9; 22) (q34; q11) bcr-abl Tyrosine kinase CML / ALL t (6; 9 ) (q23; q34) DEK-CAN AML t (5; 12) (q33; q13) PDGF-b-TELL tyrosine kinase II / DNA binding protein CMMol t (16; 21) (q11; q22) FUS-ERG AML / MDS ================================================== ===================== At this time, the base sequence of each splice portion needs to be known, but they are determined by a conventionally known base sequence determination method. It can be determined.

【００２３】（染色体相互転座による変異細胞検出用プ
ローブキット）本発明に係るプローブキットは、オリゴ
ヌクレオチド又はホスホロチオエート型オリゴヌクレオ
チドなどヌクレアーゼ耐性を持つ種々のオリゴヌクレオ
チド誘導体からなるものであり、基本的には、(1)エネ
ルギードナー蛍光色素を有するドナープローブと、(2)
エネルギーアクセプター蛍光色素を有するアクセプター
プローブからなるものである。さらに、前記ドナープロ
ーブは、前記融合ｍＲＮＡの５’スプライス部を含む特
定塩基配列と相補的にハイブリダイズ可能な塩基配列を
有するものであり、さらに、前記アクセプタープローブ
は前記ｍＲＮＡの３’スプライス部を含む特定塩基配列
と相補的にハイブリダイズ可能な塩基配列を有するもの
であり、さらに(3)前記２種類のプローブは、前記融合
ｍＲＮＡにハイブリダイズしてハイブリダイズ体を形成
した際に、エネルギードナー色素を励起して、蛍光エネ
ルギー移動により生じるエネルギーアクセプター色素か
らの蛍光を含めて蛍光スペクトルを測定するものであ
る。(Probe Kit for Detecting Mutant Cells by Mutual Translocation of Chromosomes) The probe kit according to the present invention comprises various oligonucleotide derivatives having nuclease resistance such as oligonucleotides or phosphorothioate-type oligonucleotides, and is basically composed of Comprises (1) a donor probe having an energy donor fluorescent dye, and (2)
It consists of an acceptor probe having an energy acceptor fluorescent dye. Further, the donor probe has a base sequence capable of hybridizing complementarily with a specific base sequence including a 5 ′ splice portion of the fusion mRNA, and the acceptor probe has a 3 ′ splice portion of the mRNA. And (3) the two types of probes, when hybridized to the fusion mRNA to form a hybridized form, the energy This is to measure the fluorescence spectrum including the fluorescence from the energy acceptor dye generated by the fluorescence energy transfer by exciting the donor dye.

【００２４】従って、前記蛍光が観測される場合には、
前記ハイブリダイズの存在を示し、前記融合ｍＲＮＡが
存在することを判別できるものである。ここでは説明の
ために、ドナープローブが、前記融合ｍＲＮＡの５’ス
プライス部を含む特定領域と相補的にハイブリダイズ可
能な塩基配列を有するものであり、アクセプタープロー
ブが、前記融合ｍＲＮＡの３’スプライス部を含む特定
領域と相補的にハイブリダイズ可能な塩基配列を有する
ものであるとしたが、これに制限されず、５’側と３’
側を入れ替えてもよい。Therefore, when the fluorescence is observed,
It indicates the presence of the hybridization and can determine the presence of the fusion mRNA. Here, for the purpose of explanation, the donor probe has a base sequence capable of hybridizing complementarily with a specific region including the 5 ′ splice portion of the fusion mRNA, and the acceptor probe has a 3 ′ sequence of the fusion mRNA. It is assumed to have a base sequence capable of hybridizing complementarily with a specific region including a splice portion, but is not limited thereto.
The sides may be interchanged.

【００２５】具体的には、図１に説明されるように、検
出されるべき融合ｍＲＮＡがＡＭＬ１由来の５’スプラ
イス部であり、ＭＴＧ８遺伝子由来の３’スプライス部
を融合したｍＲＮＡとするとき、５’末端にエネルギー
ドナー蛍光色素でラベル化され、５’スプライス部とハ
イブリダイズ可能な相補的塩基配列を有するドナープロ
ーブと、３’末端近くにエネルギーアクセプター蛍光色
素でラベル化され、３’スプライス部とハイブリダイズ
可能な相補的塩基配列を有するアクセプタープローブと
を、前記ｍＲＮＡとハイブリダイズさせてハイブリダイ
ズ体を形成した場合、前記エネルギードナー蛍光色素を
励起する際、共鳴エネルギー移動により、前記エネルギ
ードナー蛍光色素からの蛍光のみではなく、エネルギー
アクセプター蛍光色素からの蛍光も観測される。すなわ
ち、観測されるのは、エネルギードナー蛍光色素のみに
よる蛍光スペクトルではなく、エネルギーアクセプター
蛍光色素による蛍光スペクトルも重なったスペクトルと
なる。ここでアクセプター蛍光色素がハイブリダイズし
ない場合（すなわち、前記ｍＲＮＡがない場合）には、
エネルギードナー蛍光色素によるもののみとなる。Specifically, as shown in FIG. 1, when the fusion mRNA to be detected is a 5 ′ splice portion derived from AML1 and an mRNA obtained by fusing a 3 ′ splice portion derived from the MTG8 gene, A donor probe labeled with an energy donor fluorescent dye at the 5 ′ end and having a complementary base sequence capable of hybridizing with the 5 ′ splice portion, and a 3 ′ splice labeled with an energy acceptor fluorescent dye near the 3 ′ end Part and an acceptor probe having a complementary base sequence capable of hybridizing with the mRNA, when a hybridized form is formed by hybridizing with the mRNA, when the energy donor fluorescent dye is excited, resonance energy transfer causes resonance energy transfer. Not only the fluorescence from the donor fluorescent dye, but also the energy acceptor fluorescent dye Fluorescence is also observed. That is, what is observed is not only a fluorescence spectrum due to the energy donor fluorescent dye alone, but also a spectrum in which the fluorescence spectrum due to the energy acceptor fluorescent dye overlaps. Here, when the acceptor fluorescent dye does not hybridize (that is, when the mRNA is not present),
Only by the energy donor fluorescent dye.

【００２６】さらに上の表によると、ＡＭＬ１の関与す
る融合遺伝子の例が多く認められる。慢性骨髄白血病や
骨髄異形形成症侯群において、第３染色体と第２１番染
色体間で相互転座がおこり、ＡＭＬ１（５’側）とＥＶ
Ｉ１（３’側）との融合が生じていることがわかる。ま
た、急性リンパ性白血病において、１２番と第２１番染
色体が相互転座をおこし、ＴＥＬ（５’側）とＡＭＬ１
（３’側）との融合が生じていることがわかる。同様に
急性骨髄性白血病では、第３、第２１番染色体間におけ
る転座ではＡＭＬ１（５’側）とＭＴＧ８（３’側）と
の融合が生じていることがわかる。ＡＭＬ１遺伝子産物
はショウジョウバエの分節形成をつかさどるruntや、マ
ウスポリオーマウイルスエンハンサー結合因子の塩基配
列と高い相同性を示すことが知られており、これら因子
は細胞の分化を制御する遺伝子であると考えられてい
る。また、第３、２１番染色体間における転座のＡＭＬ
１遺伝子の融合相手遺伝子であるＭＴＧ８もＺｎフィン
ガーとよばれるＤＮＡ結合のモチーフを有することか
ら、ＤＮＡに結合することにより遺伝子転写を調節する
因子をコードするものと考えられている。すなわち、Ａ
ＭＬ１遺伝子産物は、造血組織腫瘍の発症に深く関わっ
ていることが示唆され、染色体転座により、種々の遺伝
子と融合することによりその生理活性を変化させている
ことが示唆されている。同様に５’側にＭＬＬ遺伝子共
通遺伝子として融合する場合が多くあることが示されて
いる。さらに、３’側に共通遺伝子としてＲＡＲα遺伝
子が融合する場合も見られる。Further, according to the above table, many examples of fusion genes involving AML1 are found. In chronic myelogenous leukemia and myelodysplastic syndromes, translocation between chromosome 3 and chromosome 21 occurs, and AML1 (5 'side) and EV
It can be seen that fusion with I1 (3 'side) has occurred. In acute lymphocytic leukemia, chromosome 12 and chromosome 21 reciprocally translocate, and TEL (5 'side) and AML1
It can be seen that fusion with (3 'side) has occurred. Similarly, in acute myeloid leukemia, the translocation between chromosome 3 and chromosome 21 shows that fusion between AML1 (5 'side) and MTG8 (3' side) has occurred. The AML1 gene product is known to show high homology to the runt that controls segmentation in Drosophila and the nucleotide sequence of the mouse polyoma virus enhancer binding factor. These factors are thought to be genes that regulate cell differentiation. Have been. AML of translocation between chromosomes 3 and 21
Since MTG8, which is a fusion partner gene of one gene, also has a DNA binding motif called Zn finger, it is considered that it encodes a factor that regulates gene transcription by binding to DNA. That is, A
It has been suggested that the ML1 gene product is deeply involved in the development of hematopoietic tissue tumors, and that the ML1 gene product changes its physiological activity by fusing with various genes by chromosomal translocation. Similarly, it is shown that there are many cases where the gene is fused to the 5 ′ side as a common MLL gene. Furthermore, the case where the RARα gene is fused to the 3 ′ side as a common gene is also seen.

【００２７】本発明に係る方法は、前記ｍＲＮＡであっ
て、５’または３’スプライス部の１つが共通する複数
のｍＲＮＡが、複数種類混在した場合でも使用可能、か
つ簡便にそれぞれのｍＲＮＡを同時に判別可能とするも
のである。The method according to the present invention can be used even when a plurality of mRNAs having a common 5 ′ or 3 ′ splice part are mixed, and the mRNAs can be simultaneously and simply used. This can be determined.

【００２８】この目的に使用するプローブキットは、
(1)エネルギードナー蛍光色素を有する共通のドナープ
ローブと、(2)複数のアクセプタープローブであって、
それぞれのエネルギーアクセプター色素の蛍光波長が相
違する蛍光色素を有するアクセプタープローブからなる
ものである。さらに、前記ドナープローブは、複数の前
記ｍＲＮＡのうち共通のスプライス部（例えば５’スプ
ライス部とする）の特定領域と相補的にハイブリダイズ
可能な配列を有し、また前記複数のアクセプタープロー
ブは、それぞれ相違するスプライス部（例えば３’スプ
ライスとする）の特定領域と相補的にハイブリダイズ可
能な配列を有するものであり、(3)前記ドナープローブ
と、アクセプタープローブは、試料中の前記複数のｍＲ
ＮＡ混合物にそれぞれハイブリダイズしてハイブリダイ
ズ体を形成し、エネルギードナー色素を励起した際に、
エネルギードナー色素のみによる蛍光スペクトルのみな
らず、蛍光エネルギー移動によりそれぞれのエネルギー
アクセプター色素からの蛍光スペクトルをも重ね合せら
れた蛍光スペクトルを測定するものである。従って、前
記エネルギーアクセプター色素からの波長の蛍光が観測
される場合には、前記特定のハイブリダイズの存在を示
し、特定の融合ｍＲＮＡが存在することを判別できる。
この際得られる蛍光スペクトルは、それぞれのスペクト
ルが重ねられたものとなるが、通常の波形解析により、
それぞれ分離することが可能である。The probe kit used for this purpose is
(1) a common donor probe having an energy donor fluorescent dye, and (2) a plurality of acceptor probes,
It consists of an acceptor probe having a fluorescent dye in which the fluorescence wavelength of each energy acceptor dye is different. Further, the donor probe has a sequence capable of hybridizing complementarily with a specific region of a common splice portion (for example, 5 ′ splice portion) among the plurality of mRNAs, and the plurality of acceptor probes are Having a sequence capable of hybridizing complementarily with a specific region of a different splice portion (for example, a 3 ′ splice). (3) The donor probe and the acceptor probe are MR
Each hybridized to the NA mixture to form a hybrid, and when the energy donor dye was excited,
The fluorescence spectrum is obtained by superimposing not only the fluorescence spectrum of the energy donor dye alone but also the fluorescence spectrum of each energy acceptor dye by fluorescence energy transfer. Therefore, when fluorescence at a wavelength from the energy acceptor dye is observed, it indicates the presence of the specific hybridization, and it can be determined that a specific fusion mRNA is present.
The fluorescence spectrum obtained at this time is a spectrum in which each spectrum is superimposed, but by ordinary waveform analysis,
Each can be separated.

【００２９】上では、エネルギードナープローブがｍＲ
ＮＡの５’スプライス部として説明したが、前記エネル
ギードナープローブｍＲＮＡの３’スプライス部にある
としても同じ結果が得られる。In the above, the energy donor probe is mR
Although described as the 5 'splice part of NA, the same result can be obtained even in the 3' splice part of the energy donor probe mRNA.

【００３０】具体的には図２に示されるように、３種類
の異なるターゲット遺伝子がＡＭＬ１遺伝子を５’側で
共通に有し、さらに３’側の融合遺伝子として、ＭＴＧ
８遺伝子、ＥＶＩ１遺伝子、ＭＤＳ１遺伝子を融合した
ものであるとするとき、３’末端にエネルギードナー蛍
光色素でラベル化され、ＡＭＬ１遺伝子とハイブリダイ
ズ可能な相補的塩基配列を有するドナープローブと、
５’末端近くにエネルギーアクセプター蛍光色素でラベ
ル化され、ＭＴＧ８遺伝子、ＥＶＩ１遺伝子、及びＭＤ
Ｓ１遺伝子とハイブリダイズ可能な相補的塩基配列を有
する３種類のアクセプタープローブとを、前記ターゲッ
ト遺伝子とハイブリダイズした場合、前記エネルギード
ナー蛍光色素を励起する際、共鳴エネルギー移動によ
り、前記エネルギードナー蛍光色素からの蛍光のみでは
なく、３種類のエネルギーアクセプター蛍光色素からの
それぞれの蛍光が観測される。すなわち、観測されるの
は、エネルギードナー蛍光色素による蛍光スペクトルで
はなく、３種類のエネルギーアクセプター蛍光色素によ
る蛍光スペクトル（又はそれらの重なり）である。蛍光
スペクトルが重なる場合においては、適当な波形解析手
段によりそれぞれ３種類のｍＲＮＡの存在を判別可能と
なる（図３）。Specifically, as shown in FIG. 2, three different target genes have the AML1 gene in common on the 5 ′ side, and MTG as a 3 ′ side fusion gene.
A donor probe labeled with an energy donor fluorescent dye at the 3 ′ end and having a complementary base sequence capable of hybridizing with the AML1 gene, assuming that the gene, the EVI1 gene and the MDS1 gene are fused;
Labeled with an energy acceptor fluorescent dye near the 5 'end, MTG8 gene, EVI1 gene, and MD
When three kinds of acceptor probes having complementary base sequences capable of hybridizing with the S1 gene are hybridized with the target gene, when the energy donor fluorescent dye is excited, the energy donor fluorescent dye is excited by resonance energy transfer. In addition to the fluorescence from the dye, the fluorescence from each of the three types of energy acceptor fluorescent dyes is observed. That is, what is observed is not the fluorescence spectrum of the energy donor fluorescent dye, but the fluorescence spectrum of the three types of energy acceptor fluorescent dyes (or an overlap thereof). When the fluorescence spectra overlap, it is possible to determine the presence of each of the three types of mRNA by appropriate waveform analysis means (FIG. 3).

【００３１】（慢性骨髄性白血病及び急性リンパ球性白
血病の確定診断及び寛解導入の分子モニター）上で説明
した、共通の１種類のエネルギードナープローブと、３
種類のエネルギーアクセプタープローブからなる本発明
にかかるキットを用いて、慢性骨髄性白血病及び急性リ
ンパ球性白血病の確定診断及び寛解導入の分子モニター
が可能となる。従来は慢性骨髄性白血病（ＣＭＬと略
す）における確定診断は、ｔ（９；２２）染色体転座の
結果生じるフィラデルフィア染色体（Ｐｈ１）の検出法
によっている。ただし、Ｐｈ１陰性の場合の５−１０％
の割合で見出されているため、転座にともなう遺伝子の
再構成を検出する分子レベルでの検出方法（ＢＣＲ−ａ
ｂｌ）が必要となる。ＣＭＬにおける診断と治療フロー
チャートを示す。慢性期−＞ＩＦＮ−α、化学療法−＞
寛解−＞骨髄移植−＞急性移行−−＞ＩＦＮ−α、化学
療法 ここで示されるように、ＣＭＬは数年の後に急性期に移
行するため（表中下線部）、急性骨髄性白血病や急性リ
ンパ球性白血病（ＡＬＬ）との識別が重要となる。さら
に、識別を行った上で治療戦略を検定することが必要と
なるが、この際、遺伝子の再構成を簡易に検出する方法
が役にたつと考える。ＣＭＬおよびＡＬＬにおけるＢＣ
Ｒ−ａｂｌの再構成は、図に示すように、ＢＣＲ遺伝子
側の融合部位が異なる。ＣＭＬにおいては、ＥＸ２およ
びＥＸ３とａｂｌのＥＸ２が融合を起こすＭ−ＢＣＲで
あるのに対し、ＡＬＬではＢＣＲのＥＸ１とａｂｌのＥ
Ｘ２が融合するｍ−ＢＣＲが存在する。そこで、ａｂｌ
のＥＸ２を共通に認識するドナー蛍光色素で標識し、一
方、ＢＣＲ側のＭ−ＢＣＲよりＢｍ−ＢＣＲを構成する
ＥＸ２，３およびＥＸ１を別々に波長域に蛍光を発する
色素でラベル化したプローブを、患者から採取したｍＲ
ＮＡまたはそのｍＲＮＡをＲＴ−ＰＣＲ法により増幅し
たＤＮＡサンプルに混合し、Ｍ−ＢＣＲおよびｍ−ＢＣ
Ｒを構成するＥＸ２，３およびＥＸ１をそれぞれ識別す
るプローブの蛍光波長域における蛍光強度を比較するこ
とにより、融合部位を判別できる。(Confirmed diagnosis of chronic myeloid leukemia and acute lymphocytic leukemia and molecular monitor for induction of remission)
Using the kit according to the present invention comprising various kinds of energy acceptor probes, it becomes possible to make a definitive diagnosis of chronic myeloid leukemia and acute lymphocytic leukemia and to perform molecular monitoring of induction of remission. Conventionally, the definitive diagnosis in chronic myeloid leukemia (abbreviated as CML) is based on a method for detecting the Philadelphia chromosome (Ph1) resulting from the t (9; 22) chromosomal translocation. However, 5-10% of Ph1 negative
, A detection method at the molecular level for detecting gene rearrangement associated with translocation (BCR-a
bl) is required. 4 shows a flowchart of diagnosis and treatment in CML. Chronic phase-> IFN-α, chemotherapy->
Remission-> Bone Marrow Transplant-> Acute Transition-> IFN-α, Chemotherapy As shown here, CML enters the acute phase after several years (underlined in the table), so acute myeloid leukemia and acute Discrimination from lymphocytic leukemia (ALL) is important. Furthermore, it is necessary to test the treatment strategy after identification, and in this case, a method of simply detecting gene rearrangement is considered to be useful. BC at CML and ALL
As shown in the figure, the R-abl rearrangement differs in the fusion site on the BCR gene side. In CML, EX2 and EX3 and abl EX2 are M-BCRs that cause fusion, whereas in ALL, BCR EX1 and abl E1
There is an m-BCR to which X2 fuses. So, abl
Is labeled with a donor fluorescent dye that recognizes EX2 in common, while EX2, 3 and EX1 constituting Bm-BCR are separately labeled with a dye that emits fluorescence in a wavelength range from M-BCR on the BCR side. , MR collected from the patient
NA or its mRNA is mixed with a DNA sample amplified by the RT-PCR method, and M-BCR and m-BC
The fusion site can be determined by comparing the fluorescence intensity in the fluorescence wavelength region of the probe that identifies each of EX2, EX3, and EX1 constituting R.

【００３２】また、病型の識別だけでなく、治療後の寛
解期における残存病変細胞（ＭＲＤ）数の定量を行うこ
とも可能とするものである。すなわち、正常のＢＣＲを
認識するプローブを作製し、サンプルに添加し、正常の
ＢＣＲを認識する蛍光と以上融合遺伝子を認識する蛍光
強度比から残存病変細胞の存在比を推定することが可能
である。これにより寛解導入後の予後評価を簡便におこ
なうことが可能となる。Further, it is possible not only to identify the disease type but also to quantify the number of residual disease cells (MRD) in the remission period after the treatment. That is, a probe recognizing a normal BCR is prepared, added to a sample, and the abundance ratio of residual diseased cells can be estimated from the fluorescence recognizing the normal BCR and the fluorescence intensity ratio recognizing the fusion gene. . This makes it possible to easily evaluate the prognosis after induction of remission.

【００３３】 表 造血腫瘍にみられる染色体異常都関係する遺伝子 −−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−− 病型 ＦＡＢ分型 染色体異常 遺伝子 ---------------------------------------------------------------------- ＡＭＬ Ｍ１ ｔ（９；２２） ａｂｌ，ｂｃｒ Ｍ２ ｔ（８；２１），ｔ（７，１１） ＡＭＬ１，ＭＴＧ８（ＥＴＯ ） Ｍ３ ｔ（１５；１７） ＰＭＬ，ＲＡＲα Ｍ４ ｉｎｖ（１６），ｄｅｌ（１６） Ｍ５ ｔ（９；１１） ｅｓｔ−１ ＡＬＬ ｔ（９；２２） ａｂｌ，ｂｃｒ Ｌ１，Ｌ２ ｔ（４；１１）ｅｓｔ−１ Ｌ３ ｔ（８；１４） ｍｙｃ、ＩｇＨ Ｔ−ＡＬＬ ｔ（１１；１４）Ｔｃｌ−２、ＴＣＲ ＣＭＬ ｔ（９；２２） ａｂｌ，ｂｃｒ 急性転化 ｔ（３；２１） ＡＭＬ１，Ｅｖｉ１ ＣＬＬ ｉｎｖ（１４）Ｔｃｌ−１、ＴＣＲ ＮＨＬ リンパ球性ｔ（１１；１４） ｂｃｌ−１、ＩｇＨ ろ胞性 ｔ（１１；１８）ｂｃｌ−２、ＩｇＨ バーキットｔ（８；１４） ｍｙｃ、ＩｇＨ -------------------------------------------------------------------- Ａ；急性、Ｍ；骨髄球性、Ｌ；リンパ球性、ｔ；転座、ｉｎｖ；逆位、ｄｅｌ； 欠失 上記の目的に適当なプローブの例を以下に挙げる。Table Genes related to chromosomal abnormalities observed in hematopoietic tumors. ---------------------------------------- − Disease type FAB subtype Chromosome aberration gene ----------------------------------------- ----------------------------- AML M1 t (9; 22) abl, bcr M2 t (8; 21), t ( 7, 11) AML1, MTG8 (ETO) M3 t (15; 17) PML, RARα M4 inv (16), del (16) M5 t (9; 11) est-1 ALL t (9; 22) abl, bcr L1, L2 t (4; 11) est-1 L3 t (8; 14) myc, IgHT-ALL t (11; 14) Tcl-2, TCR CML t (9; 22) abl, bcr Acute conversion t ( 3; 21) AML1, Evi1 CLL inv (1 ) Tcl-1, TCR NHL lymphocytic t (11; 14) bcl-1, follicular t (11; 18) bcl-2, IgH Burkitt t (8; 14) myc, IgH ----- -------------------------------------------------- ------------- A; acute, M; myeloid, L; lymphocytic, t; translocation, inv; inversion, del; deletion Probe suitable for the above purposes The following is an example.

【００３４】 ＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝ ＣＭＬ ｍＢＣＲ−ａｂｌ検出用プローブ ＢＣＲＥＸ２−ａｂｌ（ドナー蛍光式素がＢｏｄｙｐｙ、アクセプター蛍光色素 はＣｙ３．５） ドナープローブ： ５’−ＧＣＣＧＣＴＧＡＡＧＧＧＣＴＴ−３’ アクセプタープローブ：５’−ＴＴＧＡＡＣＴＣＴＧＣＴＴＡＡ−３’ ＢＣＲＥＸ３−ａｂｌ（ドナー蛍光式素がＢｏｄｙｐｙ、アクセプター蛍光色素 はＣｙ３） ドナープローブ： ５’−ＧＣＣＧＣＴＧＡＡＧＧＧＣＴＴ−３’ アクセプタープローブ：５’−ＣＴＴＣＣＴＴＡＴＴＧＡＴＧＧ−３’ −−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−− ＡＬＬ ｍＢＣＲ−ａｂｌ検出用プローブ ＢＣＲＥＸ１−ａｂｌ（ドナー蛍光式素がＢｏｄｙｐｙ、アクセプター蛍光色素 はＣｙ５） ドナープローブ： ５’−ＧＣＣＧＣＴＧＡＡＧＧＧＣＴＴ−３’ アクセプタープローブ：５’−ＣＴＧＣＧＴＣＴＣＣＡＴＧＧＡ−３’ −−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−− ＷｉｌｄタイプＢＣＲ検出用プローブ（ドナー蛍光式素がＢｏｄｙｐｙ、アクセ プター蛍光色素はＣｙ５．５） ドナープローブ： ５’−ＴＴＣＣＧＡＡＣＧＡＧＣＣＡＴ−３’ アクセプタープローブ：５’−ＣＴＧＣＧＴＣＴＣＣＡＴＧＧＡ−３’ ＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝ ここで、融合遺伝子型ＢＣＲ−ａｂｌ及び野性型ＢＣＲ
遺伝子配列 は以下のようである。================================= CML mBCR-abl Detection Probe BCREX2-abl (donor fluorescence Formula is Bodypy, acceptor fluorescent dye is Cy3.5) Donor probe: 5'-GCCGCTGAAGGGCTT-3 'Acceptor probe: 5'-TTGAACTCTGCTTAA-3' BCREX3-abl (donor fluorescent formula is Bodypy, acceptor fluorescent dye is Cy3 ) Donor probe: 5′-GCCGCTGAAGGGCTT-3 ′ Acceptor probe: 5′-CTTCCTTTATTGATGG-3 ′ −−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−− -------- All-mBCR-abl detection probe BCRX1-abl (donor fluorescence Element is Bodypy, acceptor fluorescent dye is Cy5) Donor probe: 5'-GCCGCTGAAGGGCTT-3 'Acceptor probe: 5'-CTGCGTCTCCCATGGA-3' --------------- Probe for detecting wild type BCR (donor fluorescent formula is Bodypy, acceptor fluorescent dye is Cy5.5) Donor probe: 5'-TTCCGAACGAGCCAT-3 'acceptor Probe: 5'-CTGCGTCTCCCATGGA-3 '======================================= Here, the fusion genotype BCR-abl and wild type BCR
The gene sequence is as follows.

【００３５】 ＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝ ＣＭＬ ＭＢＣＲ−ａｂｌ ＢＣＲ ＥＸ２−ａｂｌ ＴＴＡＡＧＣＡＧＡＧＴＴＣＡＡ ＡＡＧＣＣＣＴＴＣＡＧＣＧＧＣ ＢＣＲ ＥＸ３−ａｂｌ ＣＣＡＴＣＡＡＴＡＡＧＧＡＡＧ ＡＡＧＣＣＣＴＴＣＡＧＣＧＧＣ ＡＬＬ ｍＢＣＲ−ａｂｌ ＢＣＲ ＥＸ１−ａｂｌ ＴＣＣＡＴＧＧＡＧＡＣＧＣＡＧ ＡＡＧＣＣＣＴＴＣＡＧＣＧＧＣ ＢＣＲ ｃＤＮＡ ＴＣＣＡＴＧＧＡＧＡＣＧＣＡＧ ＡＴＧＧＣＴＣＧＴＴＣＧＧＡＡ ＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝ また、ＣＭＬ ＭＢＣＲ−ａｂｌ検出用ＲＴ−ＰＣＲプ
ライマーは以下に示した。=================================== CML MBCR-abl BCR EX2-abl TTAAGCAGAGTTCAAAAGCCCTCCAGCGGC BCR EX3 -Abl CCATCAATAAGGAAG AAGCCCTTCAGCGGCALL mBCR-abl BCR EX1-abl TCCATGGAGAGCGAG AAGCCCTTCAGCGGC BCR cDNA TCCATGGAGCGAG ============================================================================= === In addition, RT-PCR primers for detecting CML MBCR-abl are shown below.

【００３６】 ＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝ ＣＭＬ ＭＢＣＲ−ａｂｌ ＢＣＲ ＥＸ２−ａｂｌ foward reverse ＣＡＣＴＣＡＧＣＣＡＣＴＧＡＡ ＡＡＡＧＴＣＡＧＣＴＧＣＴＡＣ ＢＣＲ ＥＸ３−ａｂｌ foward reverse ＣＡＣＡＧＣＡＴＴＣＣＧＣＴＧ ＡＡＡＧＴＣＡＧＣＴＧＣＴＡＣ ＡＬＬ ｍＢＣＲ−ａｂｌ ＢＣＲ ＥＸ１−ａｂｌ foward reverse ＧＡＴＧＧＣＧＡＧＧＧＣＧＣＣ ＡＡＡＧＴＣＡＧＣＴＧＣＴＡＣ ＢＣＲ ｃＤＮＡ foward reverse ＧＡＴＧＧＣＧＡＧＧＧＣＧＣＣ ＧＣＣＧＴＡＴＣＣＡＧＧＴＧＧ ＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝ （プローブキット調製方法）以上説明したように、本発
明に係るプローブキットの各プローブの塩基数又はその
塩基配列は、前記ｍＲＮＡの既知の塩基配列に基づいて
決めることができる。この際、あまり塩基数が少ないと
ハイブリダイズにミスマッチが生じる可能性があり、従
って、少なくとも１０以上であることが好ましく、さら
に１５以上であれば特に好ましい。また、あまりに多い
と、プローブの取扱い、保存安定性等で困難となり、本
発明においては、３０以下であればよい。=================================== CML MBCR-abl BCR EX2-abl forward reverse CACTCAGCCCACTGAA AAAGTCAGCCTGCTAC BCR EX3-abl forward reverse CACGCATCCCCTGAAAGTCAGCTGCTAC ALL mBCR-abl BCR EX1-abl forward reverse GATGGCGAGGGCCC AAAGTCAGCTGCTC = GCR = GATGGCC = GATGGCC = GATGCCC ============ (Preparation Method of Probe Kit) As described above, the number of bases of each probe of the probe kit according to the present invention or the number thereof Group sequences can be determined based on the known nucleotide sequence of the mRNA. In this case, if the number of bases is too small, there is a possibility that a mismatch may occur in hybridization. Therefore, the number is preferably at least 10 and more preferably 15 or more. If the amount is too large, handling of the probe, storage stability, and the like become difficult. In the present invention, it is sufficient that the number is 30 or less.

【００３７】塩基配列は、ハイブリダイズさせるｍＲＮ
Ａの塩基配列と完全に相補的となることが好ましいが、
実質的にミスマッチなくハイブリダイズすればよく、完
全に相補的でなくてもよい。具体的には、少なくとも８
０％以上の相同性を有することが好ましい。The nucleotide sequence is determined by the mRN to be hybridized.
It is preferably completely complementary to the base sequence of A,
Hybridization may be performed substantially without mismatch, and may not be completely complementary. Specifically, at least 8
It is preferable to have 0% or more homology.

【００３８】本発明に係るプローブキットの有する蛍光
色素の種類とその位置についても特に制限はないが、調
製の容易性、蛍光エネルギー移動現象の効率、検出感度
等から、最適化することが可能である。この目的で、既
に知られているいくつかの蛍光色素の組合せを参照する
ことが可能である（Kay M.等、Biochemistry 34,293-30
0(1995)）。The type and position of the fluorescent dye contained in the probe kit of the present invention are not particularly limited, but can be optimized from the viewpoint of ease of preparation, efficiency of fluorescent energy transfer phenomenon, detection sensitivity, and the like. is there. For this purpose, it is possible to refer to some already known combinations of fluorescent dyes (Kay M. et al., Biochemistry 34, 293-30.
0 (1995)).

【００３９】本発明において、特に好ましいく使用され
るエネルギードナー蛍光色素、エネルギーアクセプター
蛍光色素、それらの色素間の塩基数の組合せは以下の表
に示されている。In the present invention, particularly preferred energy donor fluorescent dyes, energy acceptor fluorescent dyes and combinations of the number of bases between the dyes are shown in the following table.

【００４０】 表 色素種類 励起波長 蛍光波長 ＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝ エネルギードナー色素 Bodipy493/503 493 503 FITC 492 519 ローダミン 568 590-630 エネルギーアクセプター色素 Cy3 552 565 Cy3.5 581 596 Cy5 650 667 CY5.5 678 703 ローダミン 568 590 ＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝＝ さらに、上記説明した本発明に係るプローブキットのオ
リゴヌクレオチド配列部、及び蛍光色素結合のための調
製方法においては特に制限はない。公知の核酸合成方法
が好ましく使用可能である。特に種々の固相合成方法に
基づく自動合成方法が好ましく、例えばアミダイト、ト
リエステル等の合成法が好ましく用いられる（丹羽峰雄
著、化学と生物実験ライン、ＤＮＡの化学合成法、廣川
書店、平成４年）。さらに、プローブ中に蛍光分子を結
合するための好ましいリンカー部を導入する方法は種々
のポリペプチド修飾用試薬を用いることで可能である。Table Dye type Excitation wavelength Fluorescence wavelength =================================== Energy donor dye Bodipy493 / 503 493 503 FITC 492 519 Rhodamine 568 590-630 Energy acceptor dye Cy3 552 565 Cy3.5 581 596 Cy5 650 667 CY5.5 678 703 Rhodamine 568 590 ================ ==================== Furthermore, in the above described oligonucleotide sequence portion of the probe kit according to the present invention, and particularly in the preparation method for binding a fluorescent dye, No restrictions. Known nucleic acid synthesis methods can be preferably used. In particular, automatic synthesis methods based on various solid-phase synthesis methods are preferable. For example, synthesis methods of amidite, triester, etc. are preferably used (Mineo Niwa, Chemistry and Biological Experiment Line, Chemical Synthesis Method of DNA, Hirokawa Shoten, Heisei 4) Year). Furthermore, a method for introducing a preferable linker portion for binding a fluorescent molecule into a probe can be achieved by using various polypeptide modifying reagents.

【００４１】本発明においては、特に５’末端アミノ化
用試薬である６−（トリフルオロアセチルアミノ）ヘキ
シル−（２−シアノエチル）−（Ｎ，Ｎ−ジイソプロピ
ル）−ホスホロアミダイトを、上記化学合成時に同時に
使用できる。これによりオリゴヌクレオチド鎖の任意の
位置にヘキシルアミノ基（トリフルオロアセチル基を除
いた後）を導入可能となる。In the present invention, in particular, 6- (trifluoroacetylamino) hexyl- (2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl) -phosphoramidite, which is a reagent for amination at the 5′-terminal, is synthesized by the above chemical synthesis. Can be used at the same time. This makes it possible to introduce a hexylamino group (after removing the trifluoroacetyl group) at any position in the oligonucleotide chain.

【００４２】また、リンカー部の位置およびリンカー部
の長さの選択により、２種類の蛍光分子が好ましい相対
的空間配置をとるうるプローブを調製するために、その
空間配置を推定するための種々の分子モデルや、分子モ
デルコンピュータプログラム等が使用可能である。In addition, by selecting the position of the linker portion and the length of the linker portion, in order to prepare a probe in which the two kinds of fluorescent molecules can have a preferable relative spatial configuration, various probes for estimating the spatial configuration are used. A molecular model, a molecular model computer program, or the like can be used.

【００４３】リンカー部と必要な蛍光分子の結合方法、
または該リンカー部をオリゴヌクレオチドプローブの適
当な位置の塩基に結合する方法については、特に制限は
なく、化学合成方法により、または酵素による方法等が
使用可能である。A method for bonding a linker moiety to a necessary fluorescent molecule,
Alternatively, there is no particular limitation on the method of bonding the linker moiety to a base at an appropriate position of the oligonucleotide probe, and a chemical synthesis method, an enzyme method, or the like can be used.

【００４４】（ハイブリダイズ条件）本発明に係るハイ
ブリダイゼーションは、ｍＲＮＡと、プローブであるＤ
ＮＡとの間で生じるものである。従って、ＲＮＡ−ＤＮ
Ａ間の通常使用されるハイブリダイゼーション条件が好
ましく使用可能である。(Hybridization Conditions) In the hybridization according to the present invention, the mRNA and the probe D
It occurs between NA. Therefore, RNA-DN
Usually used hybridization conditions between A can be preferably used.

【００４５】（染色体相互転座による変異細胞検出方
法）本発明に係る染色体相互転座による変異細胞検出方
法は、前記プローブキットによるプローブが、連続して
前記ｍＲＮＡ一部と相補的にハイブリダイズしたハイブ
リダイズ体に、前記ドナープローブを光照射して光励起
した際に、蛍光エネルギー移動に基づく前記アクセプタ
ープローブの発蛍光が生じる現象に基づくものである。
さらに、前記アクセプター蛍光色素が相違すると、相違
する波長の蛍光が生じることとなる。(Method of Detecting Mutant Cells by Mutual Translocation of Chromosomes) In the method of detecting mutant cells by mutual translocation of chromosomes according to the present invention, the probe using the probe kit continuously hybridizes with a part of the mRNA in a complementary manner. This is based on a phenomenon in which when the hybrid body is irradiated with light from the donor probe and light-excited, the acceptor probe emits fluorescence based on fluorescence energy transfer.
Further, if the acceptor fluorescent dyes are different, fluorescence of different wavelengths will be generated.

【００４６】従って、通常公知の蛍光スペクトル測定方
法に基づき、前記エネルギードナー蛍光色素の励起波長
の光を照射し、前記エネルギーアクセプター蛍光色素の
蛍光波長を測定する方法が好ましく使用できる。Accordingly, a method of irradiating light having the excitation wavelength of the energy donor fluorescent dye and measuring the fluorescence wavelength of the energy acceptor fluorescent dye based on a generally known fluorescence spectrum measuring method can be preferably used.

【００４７】複数の相違するエネルギーアクセプター蛍
光色素を有するアクセプタープローブを使用する際に
は、測定される蛍光スペクトルは、それぞれのエネルギ
ーアクセプター蛍光色素の波長による蛍光スペクトルの
重ね合わせになる。従って、通常の波形解析手段によ
り、それぞれ蛍光スペクトルを分離することが可能であ
る。When using an acceptor probe having a plurality of different energy acceptor fluorescent dyes, the measured fluorescence spectrum is a superposition of the fluorescence spectra according to the wavelengths of the respective energy acceptor fluorescent dyes. Therefore, it is possible to separate the fluorescence spectra by ordinary waveform analysis means.

【００４８】上記解析手段により、複数のターゲット遺
伝子の存在を同時に判別することが可能となる。[0048] The above analysis means makes it possible to simultaneously determine the presence of a plurality of target genes.

【００４９】本発明に係る方法を用いて多検体中に、特
定の染色体相互転座による変異細胞の存在を自動判別す
る方法の一例の処理フローを図４に示した。まずステッ
プＳ１において、各被検体の情報と、それに基づく所定
の初期値が読み込まれる。この際、前記初期値には、判
別されるべき特定の染色体相互転座およびそれに基づく
融合ｍＲＮＡについての情報（塩基配列等）、それぞれ
のｍＲＮＡにハイブリダイズさせるに必要なプローブの
種類、蛍光スペクトルの測定条件、データ処理条件等で
ある。さらにステップＳ２で被検体が前処理されるべき
か否かを判別し、必要ならば、除タンパク質、着色物質
の除去等の前処理を行う（ステップＳ３）。さらにステ
ップＳ４で、被検体からｍＲＮＡ抽出処理を行いｍＲＮ
Ａを含む試料を調製する。ステップＳ５で、得られた各
試料にそれぞれの必要に応じたプローブキットを選択し
て混合する。ステップＳ６で、適当なハイブリダイズ条
件下でハイブリダイズ体を形成させた後、ステップＳ７
で、得られたハイブリダイズ体の蛍光測定してデータを
取込み（ステップＳ８）、蛍光測定データーを処理して
（ステップＳ９）、ターゲット遺伝子が存在するか否か
を判別し、また必要に応じてその量を定量する。FIG. 4 shows a processing flow of an example of a method for automatically discriminating the presence of a mutant cell due to a specific translocation of a specific chromosome in multiple samples using the method according to the present invention. First, in step S1, information on each subject and a predetermined initial value based on the information are read. At this time, the initial value includes information (such as a base sequence) on a specific chromosome mutual translocation to be discriminated and a fusion mRNA based thereon, a type of a probe necessary to hybridize to each mRNA, and a fluorescence spectrum. Measurement conditions, data processing conditions, and the like. In step S2, it is determined whether or not the subject should be pre-processed. If necessary, pre-processing such as protein removal and removal of coloring substances is performed (step S3). Further, in step S4, an mRNA extraction process is performed from the subject to perform mRN
Prepare a sample containing A. In step S5, a probe kit as required for each of the obtained samples is selected and mixed. After forming a hybridized body under appropriate hybridization conditions in Step S6, Step S7
Then, the fluorescence of the obtained hybrid body is measured to acquire data (step S8), the fluorescence measurement data is processed (step S9), it is determined whether or not the target gene is present, and if necessary, Quantify the amount.

【００５０】なお上記ステップＳ９におけるデータ処理
は、図３に示されるように、各アクセプタープローブに
よる蛍光スペクトルが重なったスペクトルとなるが、通
常公知の波形解析手段、又は通常の同時定量手段の処理
方法が使用され得る（例えば、西川泰治、平木敬三著、
機器分析実技シリーズ、「蛍光・りん光分析法」、共立
出版（株）、１７０−１７１ページ）。In the data processing in step S9, as shown in FIG. 3, the fluorescence spectrum of each acceptor probe is an overlapping spectrum. Methods can be used (eg, by Taiji Nishikawa, Keizo Hiraki,
Instrumental Analysis Practical Series, "Fluorescence and Phosphorescence Analysis", Kyoritsu Shuppan Co., Ltd., pp. 170-171).

【００５１】（染色体相互転座による変異細胞検出装
置）図５は、本発明に係る染色体相互転座による変異細
胞検出装置の一実施例を示すものである。各被検体１
は、被検体を入れた試料管２中に保持され試料管保持ラ
ック３に並べられる。各試料管２には番号が付けられて
いる。前記試料管番号は、試料管番号読取り装置４によ
り読取られ制御装置５に記憶される。前記試料管内の被
検体は、サンプリング装置６によりサンプリングされ、
前処理装置７に送られる。前記前処理装置で単離された
ｍＲＮＡを含む溶液は、さらに、混合装置８へ送られ
る。また、制御装置５により選択された適当なプローブ
を含む溶液が、プローブキット調製装置９で調製され、
前記混合装置８へと送られる。制御装置５により、ハイ
ブリダイズ条件に設定された前記混合装置８内で、前記
ｍＲＮＡとプローブがハイブリダイズさせる。得られた
ハイブリダイズした溶液は、蛍光測定装置１０へ送られ
る。測定条件等は制御装置５により設定される。測定装
置１０で得られた測定データーは、制御装置５へ送ら
れ、記憶装置１１に記憶される。さらに、前記データー
は制御装置５で処理され、入出力装置１２へ出力され
る。(Mutational Cell Detecting Apparatus by Mutual Chromosome Translocation) FIG. 5 shows an embodiment of the mutant cell detecting apparatus by chromosome mutual translocation according to the present invention. Each subject 1
Are held in a sample tube 2 containing a subject and arranged on a sample tube holding rack 3. Each sample tube 2 is numbered. The sample tube number is read by the sample tube number reader 4 and stored in the controller 5. The subject in the sample tube is sampled by the sampling device 6,
It is sent to the pre-processing device 7. The solution containing the mRNA isolated by the pretreatment device is further sent to the mixing device 8. Further, a solution containing an appropriate probe selected by the control device 5 is prepared by the probe kit preparing device 9,
It is sent to the mixing device 8. The control device 5 allows the mRNA and the probe to hybridize in the mixing device 8 set to the hybridization condition. The resulting hybridized solution is sent to the fluorescence measurement device 10. The measurement conditions and the like are set by the control device 5. The measurement data obtained by the measurement device 10 is sent to the control device 5 and stored in the storage device 11. Further, the data is processed by the control device 5 and output to the input / output device 12.

【００５２】前記制御装置５は、前記試料管番号読取り
装置で読み込まれた試料管番号に基づきあらかじめ記憶
された、または、入出力装置１２から入力された試料情
報を読み出し、必要な試料の濃度調製、試薬添加等のた
めの設定を行う。またプローブキットの選択及び、溶液
の調製をプローブキット調製装置９で行わせる。The controller 5 reads out the sample information stored in advance or input from the input / output device 12 based on the sample tube number read by the sample tube number reader, and adjusts the necessary sample concentration. Settings for reagent addition, etc. The selection of the probe kit and the preparation of the solution are performed by the probe kit preparation device 9.

【００５３】さらに、制御装置５により、混合装置８で
の試料溶液と、プローブ溶液とのハイブリダイズ条件を
設定する。Further, the controller 5 sets conditions for hybridization between the sample solution in the mixing device 8 and the probe solution.

【００５４】制御装置５ではまた、前記測定装置１０で
測定された蛍光スペクトルデーターに基づき、制御装置
内にあらかじめ、または入出力装置１２から入力された
処理プログラムに基づき、波形解析を行い、所定の蛍光
波長での蛍光強度を算出し、バックグラウンド蛍光と比
較し、有意差の検定をして判別し、その結果を出力装置
に出力するものである。The control device 5 also performs a waveform analysis based on the fluorescence spectrum data measured by the measuring device 10 in advance in the control device or based on a processing program input from the input / output device 12, and performs a predetermined analysis. The fluorescence intensity at the fluorescence wavelength is calculated, compared with the background fluorescence, tested for a significant difference, determined, and the result is output to an output device.

【００５５】なを、上で説明した装置の例は制御装置に
より自動化されているものを示したが、一部分の操作を
手動操作で行ってもよい。前記試料管は、単一でもよ
く、また同一種類の複数でもよい。サンプリング装置に
は、各試料情報を読取り装置が自動読み取る例が示され
たているが、制御装置に設けられた入力装置（例えばキ
ー入力装置）から、制御装置へ入力することも可能であ
る。試料に応じた試料情報には、判別されるべきターゲ
ット遺伝子の種類、濃度、必要なプローブキットの種
類、蛍光測定条件等が含まれる。試料情報読み取り装置
は、試料管自体のラベルを読むこと、またはラックの番
号から試料の番号を読み、制御装置により、記憶装置に
あらかじめ入力されている試料情報と参照することも可
能である。Although the example of the apparatus described above has been described as being automated by the control device, a part of the operation may be performed manually. The sample tube may be a single tube or a plurality of the same type. Although an example in which the reading device automatically reads each sample information in the sampling device is shown, it is also possible to input information to the control device from an input device (for example, a key input device) provided in the control device. The sample information according to the sample includes the type and concentration of the target gene to be determined, the type of probe kit required, the fluorescence measurement conditions, and the like. The sample information reading device can also read the label of the sample tube itself, or read the sample number from the rack number, and refer to the sample information previously input to the storage device by the control device.

【００５６】制御装置は、サンプリング装置の制御、プ
ローブキット調製装置の制御の他、混合装置の最適条件
設定の制御（温度、時間等）を可能とするものである
が、必ずしも自動制御でなくても、手動で各条件を設定
してもよい。記憶装置には、あらかじめ、必要な蛍光測
定条件、バックグラウンドデータ、プローブキットの蛍
光特性等が記憶されているが、必ずしも記憶装置は必要
ではなく、入力装置により制御装置に入力することも可
能である。試料調製装置は、試料管内の試料溶液を必要
量採取し、適当な濃度に希釈し、場合により、フィルタ
ーによる濾過処理を施すものである。これらの処理は自
動化されていなくてもよい。プローブキット調製装置
は、制御装置によりプローブキットが選択され、必要な
濃度に溶液を調製するものである。これらの処理の全て
を必ずしも自動化する必要はなく、手動操作により行う
ことも可能である。The control device enables the control of the optimum conditions of the mixing device (temperature, time, etc.) in addition to the control of the sampling device, the control of the probe kit preparation device, and the like. Alternatively, each condition may be set manually. The storage device stores in advance necessary fluorescence measurement conditions, background data, the fluorescence characteristics of the probe kit, and the like. However, the storage device is not necessarily required, and can be input to the control device by an input device. is there. The sample preparation device collects a required amount of a sample solution in a sample tube, dilutes the sample solution to an appropriate concentration, and optionally performs a filtration process using a filter. These processes need not be automated. The probe kit preparation device selects a probe kit by a control device and prepares a solution to a required concentration. It is not always necessary to automate all of these processes, and it is also possible to perform them manually.

【００５７】混合装置は、制御装置により、温度、時
間、撹拌処理等が制御されるものであり、これらの条件
は、あらかじめ決められた設定を実行するものでもよい
し、また、入力装置により入力された設定条件により実
行されてもよい。In the mixing device, the temperature, time, stirring process, and the like are controlled by the control device. These conditions may be those that execute predetermined settings, or that are input by an input device. It may be executed according to the set conditions.

【００５８】測定蛍光スペクトルデーターの波形解析手
段は、通常の波形解析プログラムを使用可能である。具
体的には、所定の蛍光波長での蛍光強度を算出し、バッ
クグラウンド蛍光と比較し、あらかじめ設定された有意
差の検定をして判別することが可能である。As a means for analyzing the waveform of the measured fluorescence spectrum data, an ordinary waveform analysis program can be used. Specifically, it is possible to calculate the fluorescence intensity at a predetermined fluorescence wavelength, compare the calculated fluorescence intensity with the background fluorescence, and perform a test for a preset significant difference to make a determination.

【００５９】以下実施例に基づき本発明を具体的に説明
するが、本発明はその要旨を超えない限り以下の実施例
に限定されるものではない。Hereinafter, the present invention will be described specifically with reference to Examples, but the present invention is not limited to the following Examples as long as the gist of the present invention is not exceeded.

【００６０】（実施例１）ターゲット遺伝子として（Ａ
ＭＬ１−ＭＴＧ８、５’−ＣＣＣＧＡＧＡＡＣＣＵＣＧ
ＡＡＡＵＣＧＵＡＣＵＧＡＧＡＡＧＣ−３’）の融合部
を挟んだ５’側の１５塩基と相補的な配列を有するオリ
ゴＤＮＡを、蛍光色素であるBODIPYで標識したドナープ
ローブ（５’（Bodipy493/503）−ＴＴＣＧＡＧＧＴＴ
ＣＴＣＧＧＧ−３’）と、前記融合部位を挟んだ３’側
の１５個の塩基と相補的な配列を有するオリゴＤＮＡ
を、蛍光色素であるCY5で標識したアクセプタープロー
ブ（５’−ＧＣＴＴＣＴＣＡＧＴＡ（Cy5)ＣＧＡＴ−
３’）を合成した。Example 1 As a target gene, (A
ML1-MTG8, 5'-CCCGGAGAACCUCG
A donor probe (5 ′ (Bodipy493 / 503) -TTCGAGGGTT) obtained by labeling an oligo DNA having a sequence complementary to the 15 bases on the 5 ′ side of the fusion site of AAAUCGUACUGAGAAGC-3 ′) with the fluorescent dye BODIPY.
CTCGGG-3 ′) and an oligo DNA having a sequence complementary to the 15 bases on the 3 ′ side of the fusion site.
Is labeled with an acceptor probe (5′-GCTTCTCAGTA (Cy5) CGAT-
3 ′) was synthesized.

【００６１】得られた２つのプローブを前記標的の遺伝
子と混合して約１０℃で数分静置後、イオン交換カラム
クロマトグラフを装着したＨＰＬＣにて以下の条件で分
析した。The obtained two probes were mixed with the target gene and allowed to stand at about 10 ° C. for several minutes, and then analyzed by HPLC equipped with an ion exchange column chromatograph under the following conditions.

【００６２】溶液：1xSSC カラム：ＤＥＡＥ−ＮＰＲ（Ｎｏ１） 流速：１ｍｌ／分、カラム温度２５℃ 移動相：Ａ；２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．
５）、１ｍＭ ＥＤＴＡ Ｂ；２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．５）、１ｍ
Ｍ ＥＤＴＡ／１Ｍ ＮａＣｌ 溶出条件；１０分間にＢ液２０％から１００％まで直線
的に混合比を増大させる 検出：紫外線吸収：２６０ｎｍ、蛍光検出励起波長；４
７５ｎｍ、蛍光波長６７５ｎｍ ５．９分の溶出位置に、前記２種類のプローブが隣接し
てハイブリダイズすることによる、ドナープローブの光
励起による蛍光エネルギー移動に基づくアクセプタープ
ローブよりの発光を検出した。従って、上記ハイブリダ
イズ体が上記クロマトグラフ条件下でも安定に存在する
ことが明かである。Solution: 1 × SSC Column: DEAE-NPR (No. 1) Flow rate: 1 ml / min, Column temperature: 25 ° C. Mobile phase: A; 20 mM Tris-HCl (pH 9.
5) 1 mM EDTA B; 20 mM Tris-HCl (pH 9.5), 1 m
M EDTA / 1M NaCl Elution conditions: increase the mixing ratio linearly from 20% to 100% of solution B in 10 minutes Detection: UV absorption: 260 nm, excitation wavelength for fluorescence detection: 4
Emission from the acceptor probe based on fluorescence energy transfer due to photoexcitation of the donor probe due to hybridization of the two types of probes adjacent to each other at an elution position of 5.9 minutes at 75 nm and a fluorescence wavelength of 675 nm was detected. Therefore, it is clear that the above-mentioned hybrid exists stably under the above-mentioned chromatographic conditions.

【００６３】（実施例２）共通する１種類のドナープロ
ーブと、相違する３種類の蛍光色素でラベル化したアク
セプタープローブを用いて、ハイブリダイズし、蛍光ス
ペクトルの測定を行った。(Example 2) Hybridization was carried out using a common donor probe and an acceptor probe labeled with three different fluorescent dyes, and the fluorescence spectrum was measured.

【００６４】ターゲットとして、ＡＭＬ１とＥＶ１の融
合ＲＮＡを使用した。全塩基配列は以下の通りである。As a target, a fusion RNA of AML1 and EV1 was used. The entire base sequence is as follows.

【００６５】５’−ＡＧＡＡＣＣＵＣＧＡＡＡＵＴＴＵ
ＧＡＧＵＧＵＧＵＡＵＡＵＧＧ−３’ また、共通する１種類のドナープローブとしては、以下
の塩基配列を有する。5'-AGAACCUCGAAAUTTU
GAGUGUGUAUAUGG-3 ′ Further, one common type of donor probe has the following nucleotide sequence.

【００６６】５’−ＴＴＡＴＴＴＣＧＡＧＧＴＴＣＴ−
３’であり、さらに、５’末端のＴにＢＯＤＩＰＹでラ
ベル化されている。5'-TTATTTCGAGGTTCT-
3 ′, and is labeled with BODIPY at the T at the 5 ′ end.

【００６７】また、相違するアクセプタープローブは以
下の通りである。The different acceptor probes are as follows.

【００６８】５’−ＣＣＡＴＡＴＡＣＡＣＡＣＴＣＡ−
３’であり、１１番目のＡに、Ｃｙ３、Ｃｔ３．５、Ｃ
ｙ５でそれぞれラベル化されている。5'-CCATATACACTACTA-
3 ′, and the eleventh A has Cy3, Ct3.5, C
Each is labeled with y5.

【００６９】（実施例１）と同様の条件で、ターゲット
ＲＮＡと、共通ドナープローブおよびアクセプタープロ
ーブを混合し、ハイブリダイズさせ、蛍光スペクトルを
測定した。図６の（Ａ）に示されるように、それぞれの
アクセプタープローブからの蛍光スペクトルは、明確に
異なる波長で蛍光極大を示すことがわかる。すなわち、
Ｃｙ３では５６５ｎｍに、Ｃｙ３．５では５９６ｎｍ
に、またＣｙ５では６６７ｎｍに蛍光極大が観測され
る。Under the same conditions as in (Example 1), target RNA, a common donor probe and an acceptor probe were mixed, hybridized, and the fluorescence spectrum was measured. As shown in FIG. 6A, it can be seen that the fluorescence spectra from each acceptor probe show a fluorescence maximum at clearly different wavelengths. That is,
Cy3 at 565 nm, Cy3.5 at 596 nm
The fluorescence maximum is observed at 667 nm in Cy5.

【００７０】さらに、ターゲットＲＮＡと、共通ドナー
プローブおよび３種類のアクセプタープローブの当量混
合物をハイブリダイズした条件での蛍光スペクトルは図
６（Ｂ）に示されるように、各アクセプターブローブか
らの蛍光の重なりとして観測され、波形解析の手段等に
よりそれぞれのアクセプタープローブからの蛍光スペク
トルを分離することが可能である。Further, as shown in FIG. 6 (B), the fluorescence spectrum under the condition where the equivalent mixture of the target RNA, the common donor probe and the three types of acceptor probes was hybridized was obtained from each acceptor probe. And the fluorescence spectrum from each acceptor probe can be separated by means of waveform analysis or the like.

【００７１】[0071]

【発明の効果】融合ｍＲＮＡの融合点をはさむ５’スプ
ライス部と３’スプライス部に連続してハイブリダイズ
可能な２種類１組のプローブであって、プローブがそれ
ぞれエネルギードナー蛍光色素、およびエネルギーアク
セプター蛍光色素でラベル化されたプローブを用いるこ
とにより、そのプローブ自体の蛍光スペクトルと、プロ
ーブが融合ｍＲＮＡとハイブリダイズして形成されるハ
イブリダイズ体の蛍光スペクトルとを測定することによ
り融合ｍＲＮＡの存在を判別し、染色体相互転座による
変異細胞を検出することが可能となる。さらに、ターゲ
ット遺伝子を含む試料溶液を調製する試料調製装置と、
プローブキットを選択してプローブ溶液を調製するプロ
ーブキット選択装置と、前記調製された試料と前記プロ
ーブキット溶液を混合してハイブリダイズする反応装置
と、前記混合溶液の蛍光スペクトルを測定する蛍光測定
装置と、前記測定された蛍光スペクトル測定データーを
取り込むデーター取り込み手段と、前記データを処理し
ターゲット遺伝子が存在するか否かを判別する判別手段
とを備えることを特徴とする本発明に係る装置を使用す
ることにより、多検体中の転座融合遺伝子を自動的に判
別して検出可能とする。The present invention is a set of two types of probes capable of continuously hybridizing to a 5 'splice portion and a 3' splice portion sandwiching a fusion point of a fusion mRNA, wherein the probes are an energy donor fluorescent dye and an energy By using a probe labeled with a sceptor fluorescent dye, the presence of the fusion mRNA is determined by measuring the fluorescence spectrum of the probe itself and the fluorescence spectrum of the hybrid formed by hybridization of the probe with the fusion mRNA. And it is possible to detect mutant cells due to mutual translocation of chromosomes. Further, a sample preparation device for preparing a sample solution containing the target gene,
A probe kit selection device for selecting a probe kit to prepare a probe solution, a reaction device for mixing and hybridizing the prepared sample and the probe kit solution, and a fluorescence measurement device for measuring a fluorescence spectrum of the mixed solution And a data capturing means for capturing the measured fluorescence spectrum measurement data, and a determining means for processing the data to determine whether or not a target gene is present. By doing so, translocation fusion genes in multiple samples can be automatically determined and detected.

【００７２】[0072]

【配列表】[Sequence list]

配列番号：1 配列の長さ：30 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 CCCGAGAACC UCGAAAUCGU ACUGAGAAGC 30 配列番号：2 配列の長さ：30 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 AGAACCUCGA AAUTTUGAGU GUGUAUAUGG 30 配列番号：3 配列の長さ： 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 TTCGAGGTTC TCGGG 15 配列番号：4 配列の長さ： 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 GCTTCTCAGT ACGAT 15 配列番号：5 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 GCCGCTGAAG GGCTT 15 配列番号：6 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 TTGAACTCTG CTTAA 15 配列番号：7 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 CTTCCTTATT GATGG 15 配列番号：8 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 CTGCGTCTCC ATGGA 15 配列番号：9 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 TTCCGAACGA GCCAT 15 配列番号：10 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 TTAAGCAGAG TTCAA 15 配列番号：11 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 AAGCCCTTCA GCGGC 15 配列番号：12 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 CCATCAATAA GGAAG 15 配列番号：13 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 TCCATGGAGA CGCAG 15 配列番号：14 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 ATGGCTCGTT CGGAA 15 配列番号：15 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 CACTCAGCCA CTGAA 15 配列番号：16 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 AAAGTCAGCT GCTAC 15 配列番号：17 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 CACAGCATTC CGCTG 15 配列番号：18 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 GATGGCGAGG GCGCC 15 配列番号：19 配列の長さ：15 配列の型：核酸 鎖の数：１本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：ＤＮＡ 配列 GCCGTATCCA GGTGG 15 SEQ ID NO: 1 Sequence length: 30 Sequence type: Number of nucleic acid strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence CCCGAGAACC UCGAAAUCGU ACUGAGAAGC 30 SEQ ID NO: 2 Sequence length: 30 Sequence type : Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence AGAACCUCGA AAUTTUGAGU GUGUAUAUGG 30 SEQ ID NO: 3 Sequence length: Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence TTCGAGGTTC TCGGG 15 SEQ ID NO: 4 Sequence length: Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence GCTTCTCAGT ACGAT 15 SEQ ID NO: 5 Length: 15 Sequence type: number of nucleic acid strands: 1 strand Topology: linear Sequence type: DNA sequence GCCGCTGAAG GGCTT 15 SEQ ID NO: 6 Sequence length: 15 Sequence type: nucleic acid number of strands: 1 Main strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence TT GAACTCTG CTTAA 15 SEQ ID NO: 7 Sequence length: 15 Sequence type: Number of nucleic acid strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence CTTCCTTATT GATGG 15 SEQ ID NO: 8 Sequence length: 15 sequences Type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence CTGCGTCTCC ATGGA 15 SEQ ID NO: 9 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Straight Type of chain sequence: DNA sequence TTCCGAACGA GCCAT 15 Sequence number: 10 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence TTAAGCAGAG TTCAA 15 Sequence number: 11 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: 1 strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence AAGCCCTTCA GCGGC 15 SEQ ID NO: 12 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number: single-stranded Topology: linear Sequence type: DNA sequence CCATCAATA A GGAAG 15 SEQ ID NO: 13 Sequence length: 15 Sequence type: nucleic acid Number of strands: single strand Topology: linear Sequence type: DNA sequence TCCATGGAGA CGCAG 15 SEQ ID NO: 14 Sequence length: 15 sequences Type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence ATGGCTCGTT CGGAA 15 SEQ ID NO: 15 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Straight Type of linear sequence: DNA sequence CACTCAGCCA CTGAA 15 Sequence number: 16 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence AAAGTCAGCT GCTAC 15 Sequence number: 17 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: 1 strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence CACAGCATTC CGCTG 15 SEQ ID NO: 18 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number: Single-stranded Topology: Linear Sequence type: DNA sequence GATGGCGAGG GC GCC 15 SEQ ID NO: 19 Sequence length: 15 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: DNA sequence GCCGTATCCA GGTGG 15

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図１】本発明のプローブの概要を示す図である。FIG. 1 is a diagram showing an outline of a probe of the present invention.

【図２】本発明に係る共通のドナープローブと、複数の
アクセプタープローブを用いる検出方法を示す図であ
る。FIG. 2 is a diagram showing a detection method using a common donor probe and a plurality of acceptor probes according to the present invention.

【図３】本発明に係る共通のドナープローブと、複数の
アクセプタープローブを用いる検出方法を示す図であ
る。FIG. 3 is a diagram showing a detection method using a common donor probe and a plurality of acceptor probes according to the present invention.

【図４】本発明に係る検出方法を用いた自動化転座融合
遺伝子検出装置の処理フローを示す図である。FIG. 4 is a diagram showing a processing flow of an automated translocation fusion gene detection device using the detection method according to the present invention.

【図５】本発明に係る自動化転座融合遺伝子検出装置の
概略を示す図である。FIG. 5 is a diagram schematically showing an automated translocation fusion gene detection device according to the present invention.

【図６】本発明に係る共通のドナープローブと、３種類
の異なる蛍光色素を有する複数のアクセプタープローブ
を用い場合のハイブリダイズ体の蛍光スペクトルを示す
図である。FIG. 6 is a diagram showing a fluorescence spectrum of a hybrid when a common donor probe according to the present invention and a plurality of acceptor probes having three kinds of different fluorescent dyes are used.

【符号の説明】[Explanation of symbols]

１…被検体、２…試料管、３…試料管保持ラック、４…
試料管番号読取り装置、５…制御装置、６…サンプリン
グ装置、７…前処理装置、８…混合装置、９…プローブ
キット調製装置、１０…蛍光測定装置、１１…記憶装
置、１２…入出力装置DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 ... Subject, 2 ... Sample tube, 3 ... Sample tube holding rack, 4 ...
Sample tube number reading device, 5: control device, 6: sampling device, 7: pretreatment device, 8: mixing device, 9: probe kit preparation device, 10: fluorescence measurement device, 11: storage device, 12: input / output device

Claims (7)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項１】 融合ｍＲＮＡを、前記融合ｍＲＮＡの融
合点をはさむ５’スプライス部と３’スプライス部に連
続してハイブリダイズ可能な２種類１組のプローブであ
って、前記プローブがそれぞれエネルギードナー蛍光色
素、およびエネルギーアクセプター蛍光色素でラベル化
されたプローブの蛍光スペクトルと、前記プローブが前
記融合ｍＲＮＡとハイブリダイズして形成されるハイブ
リダイズ体の蛍光スペクトルとを測定することにより判
別して、染色体相互転座による変異細胞を検出する方
法。1. A set of two types of probes capable of continuously hybridizing a fusion mRNA to a 5 ′ splice portion and a 3 ′ splice portion sandwiching a fusion point of the fusion mRNA, wherein each of the probes is an energy donor. Fluorescent dye, and the fluorescence spectrum of a probe labeled with an energy acceptor fluorescent dye, and discriminating by measuring the fluorescence spectrum of a hybrid body formed by the probe hybridizing with the fusion mRNA, A method for detecting a mutant cell by mutual chromosome translocation. 【請求項２】 前記ハイブリダイズ体の蛍光スペクトル
が、前記蛍光色素間の蛍光エネルギ移動に基づく蛍光を
含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。2. The method according to claim 1, wherein the fluorescence spectrum of the hybrid body includes fluorescence based on the transfer of fluorescence energy between the fluorescent dyes. 【請求項３】 ５’又は３’スプライス部のいずれかの
部を共通に有する複数のｍＲＮＡを、前記５’スプライ
ス部に共通してハイブリダイズする１種類のプローブ
と、相違する３’スプライス部のそれぞれにハイブリダ
イズ可能な複数種類のプローブとからなる複数のプロー
ブであって、前記５’スプライス部に共通してハイブリ
ダイズする１種類のプローブがエネルギドナー蛍光色素
でラベル化され、前記相違する３’スプライス部のそれ
ぞれに相違する蛍光色素でラベル化された複数のプロー
ブの蛍光スペクトルと、前記プローブが前記融合ｍＲＮ
Ａとハイブリダイズして形成されるハイブリダイズ体の
蛍光スペクトルとを測定することにより選択的に判別し
て、染色体相互転座による変異細胞を検出する方法。3. A plurality of mRNAs having a common 5 ′ or 3 ′ splice portion, and one type of probe that hybridizes in common with the 5 ′ splice portion, and a different 3 ′ splice portion. A plurality of types of probes capable of hybridizing to each of the 5 ′ splice portions, wherein one type of probe that hybridizes in common to the 5 ′ splice portion is labeled with an energy donor fluorescent dye. A fluorescence spectrum of a plurality of probes labeled with different fluorescent dyes in each of the 3 ′ splice portions;
A method for selectively discriminating by measuring the fluorescence spectrum of a hybrid body formed by hybridizing with A to detect a mutant cell due to chromosome mutual translocation. 【請求項４】 前記ハイブリダイズ体の蛍光スペクトル
が、前記蛍光色素間の蛍光エネルギ移動に基づく蛍光を
含むことを特徴とする請求項３に記載の方法。4. The method according to claim 3, wherein the fluorescence spectrum of the hybrid body includes fluorescence based on the transfer of fluorescence energy between the fluorescent dyes. 【請求項５】 請求項４に記載の方法であって、さらに
前記ハイブリダイズ体の蛍光スペクトルの波形解析によ
りｍＲＮＡを選択的に判別することを特徴とする方法。5. The method according to claim 4, further comprising selectively discriminating the mRNA by analyzing a waveform of a fluorescence spectrum of the hybridized product. 【請求項６】 融合ｍＲＮＡを判別して、染色体相互転
座による変異細胞を検出する方法に使用するプローブで
あって、前記融合ｍＲＮＡの融合点をはさむ５’スプラ
イス部と３’スプライス部に連続してハイブリダイズ可
能な塩基配列を有する２種類１組のプローブであって、
前記プローブがそれぞれエネルギードナー蛍光色素、お
よびエネルギーアクセプター蛍光色素でラベル化され、
前記融合ｍＲＮＡとハイブリダイズして形成されるハイ
ブリダイズ体の蛍光スペクトルが、前記蛍光色素間の蛍
光エネルギ移動に基づく蛍光を含むことを特徴とするプ
ローブ。6. A probe used for a method for detecting a mutant cell by reciprocal chromosome translocation by discriminating a fusion mRNA, wherein the probe is connected to a 5 ′ splice portion and a 3 ′ splice portion sandwiching the fusion point of the fusion mRNA. A pair of probes having a hybridizable base sequence,
The probes are each labeled with an energy donor fluorescent dye, and an energy acceptor fluorescent dye,
A probe, wherein a fluorescence spectrum of a hybrid body formed by hybridizing with the fusion mRNA contains fluorescence based on transfer of fluorescence energy between the fluorescent dyes. 【請求項７】 ターゲット遺伝子を含む試料溶液を調製
する試料調製装置と、プローブキットを選択してプロー
ブ溶液を調製するプローブキット選択装置と、前記調製
された試料と前記プローブキット溶液を混合してハイブ
リダイズする反応装置と、前記混合溶液の蛍光スペクト
ルを測定する蛍光測定装置と、前記測定された蛍光スペ
クトル測定データーを取り込むデーター取り込み手段
と、前記データを処理しターゲット遺伝子が存在するか
否かを判別する判別手段とを備えることを特徴とする転
座融合遺伝子検出装置。7. A sample preparation device for preparing a sample solution containing a target gene, a probe kit selection device for selecting a probe kit to prepare a probe solution, and mixing the prepared sample with the probe kit solution. A reaction device that hybridizes, a fluorescence measurement device that measures the fluorescence spectrum of the mixed solution, a data capturing unit that captures the measured fluorescence spectrum measurement data, and whether the target gene exists by processing the data or not. A translocation fusion gene detecting device, comprising: a discriminating means for discriminating.