JPH1014580A - Heat-resistant phosphorylase and its production - Google Patents
Heat-resistant phosphorylase and its productionInfo
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- JPH1014580A JPH1014580A JP8176231A JP17623196A JPH1014580A JP H1014580 A JPH1014580 A JP H1014580A JP 8176231 A JP8176231 A JP 8176231A JP 17623196 A JP17623196 A JP 17623196A JP H1014580 A JPH1014580 A JP H1014580A
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Abstract
Description
【０００１】[0001]
【発明の属する技術分野】本願発明は、新規な耐熱性の
ホスホリラーゼ、このホスホリラーゼをコードする遺伝
子、このホスホリラーゼを発現する発現ベクター、この
ホスホリラーゼの製造方法、および耐熱性のホスホリラ
ーゼを用いるグルコース-1-リン酸ならびにα-グルカン
の製造方法に関する。[0001] The present invention relates to a novel thermostable phosphorylase, a gene encoding the phosphorylase, an expression vector for expressing the phosphorylase, a method for producing the phosphorylase, and glucose-1-using the thermostable phosphorylase. The present invention relates to a method for producing phosphoric acid and α-glucan.
【０００２】[0002]
【従来の技術】ホスホリラーゼ(EC.2.4.1.1)は、馬鈴薯
塊茎などの植物、ウサギ筋肉などの動物、酵母などの微
生物等に広く分布していることが知られている。そして
ホスホリラーゼは、医療用抗菌剤、抗腫瘍剤(白金錯
体)、心臓病の治療薬(アミン塩)、およびα-グルカン合
成の基質として有用であるグルコース-1-リン酸(「G-1-
P」とも略称される)を合成する際に有用な酵素である。2. Description of the Related Art It is known that phosphorylase (EC. 2.4.1.1) is widely distributed in plants such as potato tubers, animals such as rabbit muscle, microorganisms such as yeast, and the like. Phosphorylase is a medical antibacterial agent, an antitumor agent (platinum complex), a therapeutic agent for heart disease (amine salt), and glucose-1-phosphate (G-1), which is useful as a substrate for α-glucan synthesis.
P ").
【０００３】さらに、ホスホリラーゼは、アミロースな
どのα-グルカンを合成する際にも有用である。例え
ば、図１に記載のように、ホスホリラーゼをグルコース
-1-リン酸とマルトペンタオース等の糖類との混合物に
作用させることによって、逆合成反応によりα-グルカ
ンが合成される。得られたα-グルカンは、サイクロア
ミロースをはじめとする有用糖質の合成の基質として使
用されている。[0003] Further, phosphorylase is also useful for synthesizing α-glucan such as amylose. For example, as shown in FIG.
By acting on a mixture of 1-phosphate and a saccharide such as maltopentaose, α-glucan is synthesized by a reverse synthesis reaction. The obtained α-glucan is used as a substrate for synthesizing useful carbohydrates such as cycloamylose.
【０００４】グルコース-1-リン酸の製造、あるいはα-
グルカンの製造には、おもに馬鈴薯由来のホスホリラー
ゼが用いられている。これは、比較的大量の酵素が得易
いことによる。大腸菌(Escherichia coli)由来のホスホ
リラーゼも、その遺伝子が単離されていることから、大
量に製造されている。[0004] Production of glucose-1-phosphate or α-
For the production of glucan, potato-derived phosphorylase is mainly used. This is because a relatively large amount of enzyme is easily obtained. Phosphorylase derived from Escherichia coli is also produced in large quantities because its gene has been isolated.
【０００５】α-グルカン加工において工業的に酵素を
使用する場合は、基質であるα-グルカンの老化を抑制
し、および雑菌汚染を防止するために、60℃以上で反応
を行うことが望ましいとされている。しかし、これらの
酵素は全て30℃〜45℃程度の中温域で高い活性を有する
酵素であり、60℃以上の高温には用いられない。例え
ば、 大腸菌由来のホスホリラーゼ酵素の反応至適温度
は30℃であり(Weinhusel艪轣AEnzyme and Microbial Te
chnology 17, 140-146 (1994))、 馬鈴薯由来のホスホ
リラーゼ酵素の反応至適温度は40℃であり(喜多ら、特
開平2-231092)、およびウサギ筋肉由来のホスホリラー
ゼ酵素の反応至適温度は30℃である(Nakataniら、J. Ap
p. Biochem. 5, 371-374 (1983))。最も反応至適温度の
高いホスホリラーゼでも、その温度は高くとも45℃程度
である(Weinhusel艪轣AApp. Microbiol, Biotechnol (1
994) 41, 510-516)。When an enzyme is used industrially in the processing of α-glucan, it is desirable to carry out the reaction at 60 ° C. or higher in order to suppress the aging of α-glucan as a substrate and to prevent contamination by various bacteria. Have been. However, these enzymes are all enzymes having a high activity in a medium temperature range of about 30 ° C. to 45 ° C., and are not used at a high temperature of 60 ° C. or more. For example, the optimal reaction temperature of the phosphorylase enzyme derived from Escherichia coli is 30 ° C. (Weinhusel summary AEnzyme and Microbial Tesla).
chnology 17 , 140-146 (1994)), the optimal reaction temperature of the phosphorylase enzyme from potato is 40 ° C. (Kita et al., Japanese Patent Application Laid-Open No. 2-231092), and the optimal temperature of the phosphorylase enzyme from rabbit muscle is 30 ° C. (Nakatani et al., J. Ap.
p. Biochem. 5 , 371-374 (1983)). Even the phosphorylase with the highest optimal temperature is at most about 45 ° C (Weinhusel summary AApp. Microbiol, Biotechnol (1
994) 41, 510-516).
【０００６】そのため、雑菌の汚染およびα-グルカン
の老化が生じ、グルコース-1-リン酸を効率よく製造で
きないという問題点は解決されていないままである。[0006] Therefore, the problem that contamination of various bacteria and aging of α-glucan occur and glucose-1-phosphate cannot be efficiently produced remains unsolved.
【０００７】また、ホスホリラーゼの逆反応を利用して
アミロースなどのα-グルカンを作る場合にも、雑菌汚
染や生産物であるα-グルカンの老化を防止するために6
0℃以上の温度で反応を行うことが望ましい。[0007] Further, when α-glucan such as amylose is produced by utilizing the reverse reaction of phosphorylase, it is necessary to prevent contamination of various bacteria and aging of the product α-glucan.
It is desirable to carry out the reaction at a temperature of 0 ° C. or higher.
【０００８】そこで、60℃の反応温度においても、活性
を有する耐熱性の酵素の単離が必要とされてきた。Therefore, it has been required to isolate a thermostable enzyme having an activity even at a reaction temperature of 60 ° C.
【０００９】ところで、大腸菌(以下、E.coliというこ
ともある)は２種のホスホリラーゼを有し、それぞれ、
マルトデキストリンホスホリラーゼ(MalP)およびグリコ
ーゲンホスホリラーゼ(GlgP)と呼ばれている。細菌のGl
gPの比活性が他のホスホリラーゼに比べて極端に低いこ
とは特徴的である。これは、増殖に不適切な条件下で蓄
積したグリコーゲンを徐々に分解するため、細菌におい
ては比活性の低いGlgPが必要とされるからであると考え
られている(Yuら、J. Biol. Chem. 263, 13706-13711,
1988)。By the way, Escherichia coli (hereinafter sometimes referred to as E. coli) has two types of phosphorylases.
It is called maltodextrin phosphorylase (MalP) and glycogen phosphorylase (GlgP). Bacterial Gl
It is characteristic that the specific activity of gP is extremely low compared to other phosphorylases. This is thought to be due to the need for GlgP with low specific activity in bacteria to slowly degrade the glycogen that has accumulated under conditions unsuitable for growth (Yu et al., J. Biol. Chem. 263, 13706-13711,
1988).
【００１０】バチルス属細菌においては、バチルス サ
チルス(Bacillus subtilis)からGlgP遺伝子と相同性を
有する遺伝子が単離されている(Kielら、Mol. Microbio
l. 11.203-218, 1994)。この遺伝子はグリコーゲン生合
成系遺伝子群の最後に存在していることが知られている
(図２(a)を参照)が、大腸菌のMalPに相当する遺伝子が
存在するかどうかは明らかでない。In Bacillus bacteria, a gene having homology to the GlgP gene has been isolated from Bacillus subtilis (Kiel et al., Mol. Microbio
l. 11.203-218, 1994). This gene is known to be present at the end of glycogen biosynthesis genes
(See FIG. 2 (a)), but it is not clear whether a gene corresponding to MalP in E. coli exists.
【００１１】他方、バチルス属の微生物においては好熱
性菌が存在する。しかし好熱菌において、図２(a)に示
されるようなバチルス サチルスと同様のグリコーゲン
生合成系遺伝子群が存在しているかどうかは不明であ
り、他属の好熱性細菌においても同様に、そのようなグ
リコーゲン生合成系遺伝子群が存在するかどうかについ
ては、全く不明であった。On the other hand, thermophilic bacteria are present in Bacillus microorganisms. However, it is unknown whether thermophilic bacteria have a glycogen biosynthetic gene group similar to that of Bacillus subtilis as shown in FIG. 2 (a). Whether such a glycogen biosynthesis gene group exists was completely unknown.
【００１２】例えば、バチルス ステアロサーモフィラ
ス(Bacillus stearothermophilus)CU21株の場合には、
そのグリコーゲン生合成系遺伝子群は挿入配列によって
分断されており、機能していない(Kielら、DNA Seq. -
J. DNA Seq. Map. 4. 1-9, 1993)。またバチルス ステ
アロサーモフィラス1503-4R var.4株では、グリコーゲ
ン生合成系に属する遺伝子であるブランチングエンザイ
ム遺伝子が単離されているが、その下流において意味の
ある塩基配列は現在のところ発見されていない(Kie1
ら、Mol. Gen. Genet., 230, 136-144, 1991)。さら
に、バチルス カルドリティカスではブランチングエン
ザイム遺伝子の下流に、図２(a)に示されるバチルス サ
チルスと同様なグリコーゲン生合成系遺伝子群と良く似
た遺伝子の１部が存在することが発見されたが、ホスホ
リラーゼ遺伝子が存在するかどうかは不明である(Kiel
ら、Seq. -J. DNA Seq. Map. 3, 1-9, 1992)。For example, in the case of Bacillus stearothermophilus strain CU21,
The glycogen biosynthesis genes are interrupted by the inserted sequence and are not functioning (Kiel et al., DNA Seq.-
J. DNA Seq. Map. 4.1-9, 1993). In the Bacillus stearothermophilus 1503-4R var.4 strain, a branching enzyme gene, a gene belonging to the glycogen biosynthesis system, has been isolated, but a meaningful nucleotide sequence downstream of it has been found at present. Not (Kie1
Mol. Gen. Genet., 230, 136-144, 1991). Furthermore, it was discovered that in Bacillus caldolyticus, a part of the gene similar to the glycogen biosynthesis gene group similar to Bacillus subtilis shown in FIG. 2 (a) exists downstream of the branching enzyme gene. It is unknown whether the phosphorylase gene is present (Kiel
Seq. -J. DNA Seq. Map. 3, 1-9, 1992).
【００１３】そのさらに下流にホスホリラーゼ遺伝子が
存在したとしても、バチルス ステアロサーモフィラスC
U21株の例から考えられるように、ホスホリラーゼ遺伝
子が分断されている可能性がある。またブランチングエ
ンザイム自身に耐熱性がない(Kielら、Seq. -J DNA Se
q. Map. 3, 1-9, 1992)ため、ホスホリラーゼ遺伝子が
完全な形で存在したとしても、そのホスホリラーゼが耐
熱性を有するかどうかは不明であった。[0013] Even if the phosphorylase gene is located further downstream, Bacillus stearothermophilus C
As can be seen from the example of the U21 strain, the phosphorylase gene may be disrupted. In addition, the branching enzyme itself has no heat resistance (Kiel et al., Seq.-J DNA Se
q. Map. 3, 1-9, 1992), it was unclear whether the phosphorylase had thermostability, even if the phosphorylase gene was present in perfect form.
【００１４】さらに、大腸菌において、GlgPはグリコー
ゲン合成自体には不要であるとされているため、グリコ
ーゲンを合成する好熱菌においてもバチルス サチルス
のようなホスホリラーゼを有するグリコーゲン生合成系
遺伝子群が存在するかどうかは不明であった。またホス
ホリラーゼが得られたとしても、大腸菌の場合のように
極端に比活性が低い可能性が考えられた。Furthermore, in Escherichia coli, since GlgP is not required for glycogen synthesis itself, glycogen biosynthetic genes having a phosphorylase such as Bacillus subtilis also exist in thermophiles that synthesize glycogen. It was unknown whether it was. Even if phosphorylase was obtained, it was considered that the specific activity might be extremely low as in the case of Escherichia coli.
【００１５】従って、耐熱性のホスホリラーゼが産業的
にも必要とされていたのにもかかわらず、その存在は不
明であり、そしてこの耐熱性酵素の単離は、当業者の課
題であった。[0015] Thus, despite the industrial need for thermostable phosphorylases, their existence is unknown and the isolation of this thermostable enzyme has been a task for those skilled in the art.
【００１６】[0016]
【発明が解決しようとする課題】本願発明は上記の問題
を解決するためのものであり、その目的とするところ
は： (１) 耐熱性ホスホリラーゼをコードする遺伝子を単離
すること； (２) 高発現可能な発現ベクターに挿入したものを、微
生物などの適切な宿主に導入することにより、上記ホス
ホリラーゼを生産する組換え体を得ること； (３) 本酵素遺伝子を大腸菌などの中温菌を宿主として
発現させることによって、耐熱性ホスホリラーゼを含む
得られた菌体抽出液を60℃で加熱処理することにより、
夾雑酵素を簡単に除き得、精製の面においても有利であ
るような、ホスホリラーゼ酵素の製造方法を確立するこ
と；あるいは (４) 耐熱性ホスホリラーゼを用い、高い温度で反応さ
せることにより従来の問題点を克服するグルコース-1-
リン酸あるいはα-グルカンの製造方法を確立するこ
と；にある。SUMMARY OF THE INVENTION The present invention is directed to overcoming the above-mentioned problems and aims at: (1) isolating a gene encoding a thermostable phosphorylase; (2) A recombinant that produces the above phosphorylase is obtained by introducing a product inserted into an expression vector capable of high expression into an appropriate host such as a microorganism; By expressing the resulting bacterial cell extract containing the thermostable phosphorylase at 60 ° C.,
Establishment of a method for producing a phosphorylase enzyme that can easily remove contaminating enzymes and is also advantageous in terms of purification; or (4) conventional problems caused by reacting at a high temperature using thermostable phosphorylase Overcoming glucose-1-
To establish a method for producing phosphoric acid or α-glucan.
【００１７】[0017]
【課題を解決するための手段】本願発明のホスホリラー
ゼは、基質特異性としてα-1,4-グルカンを分解してグ
ルコース-1-リン酸を生成する作用を有し、至適温度が5
0℃であり、60℃においても耐熱性であり、pH6.5〜11の
範囲で安定である性質を含む。The phosphorylase of the present invention has a substrate specificity of decomposing α-1,4-glucan to produce glucose-1-phosphate, and has an optimal temperature of 5: 1.
0 ° C., heat resistant even at 60 ° C., and stable properties in the range of pH 6.5 to 11.
【００１８】好ましい実施態様においては、配列表の配
列番号１の１位のMetから798位のMetまでのアミノ酸配
列を有する。In a preferred embodiment, it has an amino acid sequence from Met at position 1 to Met at position 798 of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
【００１９】好ましい実施態様においては、配列表の配
列番号１の１位のMetから798位のMetまでのアミノ酸配
列中の１またはそれ以上のアミノ酸の欠失、置換、ある
いは付加による変異を有するホスホリラーゼであって、
該変異を含むホスホリラーゼが、該変異を含まないホス
ホリラーゼと同等またはそれ以上の比活性および耐熱性
を有する。In a preferred embodiment, the phosphorylase has a mutation caused by deletion, substitution or addition of one or more amino acids in the amino acid sequence from Met at position 1 to Met at position 798 of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing. And
The phosphorylase containing the mutation has a specific activity and heat resistance equal to or higher than that of the phosphorylase not containing the mutation.
【００２０】好ましい実施態様においては、前記ホスホ
リラーゼが、バチルス ステアロサーモフィラスTRBE14
株由来である。In a preferred embodiment, the phosphorylase is Bacillus stearothermophilus TRBE14
It is derived from the strain.
【００２１】好ましい実施態様においては、大腸菌ホス
ホリラーゼよりも高い比活性を有する。In a preferred embodiment, it has a higher specific activity than E. coli phosphorylase.
【００２２】好ましい実施態様においては、前記比活性
が大腸菌グリコーゲンホスホリラーゼの少なくとも９倍
である。In a preferred embodiment, the specific activity is at least 9 times that of E. coli glycogen phosphorylase.
【００２３】また、本願発明は、配列表の配列番号１の
１位のMetから798位のMetまでのアミノ酸配列をコード
するホスホリラーゼ遺伝子に関する。The present invention also relates to a phosphorylase gene encoding an amino acid sequence from Met at position 1 to Met at position 798 of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
【００２４】好ましい実施態様においては、ホスホリラ
ーゼ遺伝子は配列表の配列番号４に記載のDNA配列であ
る。In a preferred embodiment, the phosphorylase gene is a DNA sequence represented by SEQ ID NO: 4 in the Sequence Listing.
【００２５】好ましい実施態様においては、配列表の配
列番号１の１位のMetから798位のMetまでのアミノ酸配
列中の１またはそれ以上のアミノ酸の欠失、置換、ある
いは付加による変異を有するホスホリラーゼであって、
該変異を含むホスホリラーゼが、該変異を含まないホス
ホリラーゼと同等またはそれ以上の比活性および耐熱性
を有する、ホスホリラーゼ遺伝子である。In a preferred embodiment, a phosphorylase having a mutation caused by deletion, substitution or addition of one or more amino acids in the amino acid sequence from Met at position 1 to Met at position 798 of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing And
The phosphorylase containing the mutation is a phosphorylase gene having a specific activity and heat resistance equal to or higher than that of the phosphorylase not containing the mutation.
【００２６】好ましい実施態様においては、本願発明の
ヌクレオチド配列は配列表の配列番号２および３のプラ
イマーのセットを用いてPCRにより増幅され得る。In a preferred embodiment, the nucleotide sequence of the present invention can be amplified by PCR using the primer sets of SEQ ID NOs: 2 and 3 in the Sequence Listing.
【００２７】さらに本願発明は、耐熱性ホスホリラーゼ
遺伝子を含有する発現ベクターに関する。Further, the present invention relates to an expression vector containing a thermostable phosphorylase gene.
【００２８】また、本願発明は、発現ベクターで形質転
換された微生物に関する。[0028] The present invention also relates to a microorganism transformed with the expression vector.
【００２９】好ましい実施態様においては、前記微生物
は中温菌である。[0029] In a preferred embodiment, the microorganism is a mesophilic bacterium.
【００３０】好ましい実施態様においては、前記微生物
が原核生物である。[0030] In a preferred embodiment, the microorganism is a prokaryote.
【００３１】好ましい実施態様においては、前記原核生
物はEscherichia coliである。[0031] In a preferred embodiment, the prokaryote is Escherichia coli.
【００３２】さらに本願発明は、形質転換された微生物
を培養する工程、60℃以上に加熱する工程、および該培
養により生産されるホスホリラーゼを回収、精製する工
程を含む、耐熱性ホスホリラーゼの製造方法に関する。Further, the present invention relates to a method for producing a thermostable phosphorylase, which comprises a step of culturing a transformed microorganism, a step of heating to 60 ° C. or higher, and a step of collecting and purifying phosphorylase produced by the culturing. .
【００３３】好ましい実施態様においては、前記形質転
換された微生物は中温菌である。[0033] In a preferred embodiment, the transformed microorganism is a mesophile.
【００３４】好ましい実施態様においては、前記形質転
換された微生物はEscherichia coliである。[0034] In a preferred embodiment, the transformed microorganism is Escherichia coli.
【００３５】本願発明は、回収、精製されたホスホリラ
ーゼに関する。The present invention relates to a recovered and purified phosphorylase.
【００３６】好ましい実施態様においては、回収、精製
された耐熱性ホスホリラーゼは、至適温度が50℃であ
り、60℃においても耐熱性であり、pH6.5〜11の範囲で
安定である性質を含む。In a preferred embodiment, the recovered and purified thermostable phosphorylase has an optimum temperature of 50 ° C., is thermostable even at 60 ° C., and is stable in a pH range of 6.5 to 11. Including.
【００３７】また本願発明は、無機リン酸またはグルコ
ース-1-リン酸で安定化される、ホスホリラーゼに関す
る。The present invention also relates to a phosphorylase which is stabilized with inorganic phosphate or glucose-1-phosphate.
【００３８】好ましい実施態様においては、本願発明の
ホスホリラーゼは、60mMのグルコース-1-リン酸の存在
下では70℃で30分間加熱した後も約50%活性が残存す
る。In a preferred embodiment, the phosphorylase of the present invention retains about 50% activity after heating at 70 ° C. for 30 minutes in the presence of 60 mM glucose-1-phosphate.
【００３９】好ましい実施態様においては、１Mリン酸
存在下において60℃でα-グルカン分解反応を行った場
合、１時間後も反応速度の低下が見られない。In a preferred embodiment, when the α-glucan decomposition reaction is carried out at 60 ° C. in the presence of 1M phosphoric acid, no decrease in the reaction rate is observed even after 1 hour.
【００４０】好ましい実施態様においては、前記ホスホ
リラーゼは大腸菌ホスホリラーゼよりも高い比活性を有
する。[0040] In a preferred embodiment, the phosphorylase has a higher specific activity than E. coli phosphorylase.
【００４１】好ましい実施態様においては、本願発明の
ホスホリラーゼの前記比活性は大腸菌のグリコーゲンホ
スホリラーゼの少なくとも９倍である。In a preferred embodiment, the specific activity of the phosphorylase of the present invention is at least 9 times that of glycogen phosphorylase of Escherichia coli.
【００４２】本願発明は、また耐熱性ホスホリラーゼを
用いてα-グルカンを加リン酸分解することにより、グ
ルコース-1-リン酸を製造する方法に関する。The present invention also relates to a method for producing glucose-1-phosphate by subjecting α-glucan to phosphorolysis using a thermostable phosphorylase.
【００４３】また、本願発明は、糖類およびグルコース
-1-リン酸を基質として、請求項１ないし３に記載のホ
スホリラーゼを作用させる工程を含む、α-グルカンの
合成方法に関する。Further, the present invention relates to saccharides and glucose
The present invention relates to a method for synthesizing α-glucan, comprising the step of allowing the phosphorylase according to claims 1 to 3 to act using 1-phosphate as a substrate.
【００４４】好ましい実施態様においては、前記ホスホ
リラーゼを、60℃より高い温度で反応させることにより
生成するα-グルカンの沈澱、および雑菌汚染を防止し
て生成物であるα-グルカンの老化を防止する。In a preferred embodiment, the phosphorylase is reacted at a temperature higher than 60 ° C. to prevent precipitation of α-glucan and contamination of various bacteria to prevent aging of the product α-glucan. .
【００４５】好ましい実施態様においては、前記α-グ
ルカンはアミロースである。[0045] In a preferred embodiment, the α-glucan is amylose.
【００４６】[0046]
【発明の実施の形態】以下、本願発明を詳しく説明す
る。DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS The present invention will be described below in detail.
【００４７】本願発明において「好熱性菌」とは、生育至
適温度が50℃〜105℃で、30℃以下ではほとんど増殖し
ない微生物を意味し、このうち90℃以上の至適温度を持
つ微生物を超好熱性菌と定義する。In the present invention, the term "thermophilic bacterium" means a microorganism having an optimum growth temperature of 50 ° C. to 105 ° C. and hardly growing below 30 ° C. Among them, a microorganism having an optimum temperature of 90 ° C. or more Is defined as a hyperthermophilic bacterium.
【００４８】本願発明において、「中温菌」とは、生育温
度が通常の温度環境にある微生物のことであり、特に最
適生育温度が20℃〜40℃である微生物をいう。[0048] In the present invention, the term "mesophilic bacterium" refers to a microorganism whose growth temperature is in a normal temperature environment, and particularly a microorganism whose optimum growth temperature is 20 ° C to 40 ° C.
【００４９】本願発明において、「60℃においても耐熱
性がある」とは、0.1M 3-モルホリノプロパンスルホン酸
(MOPS)の緩衝液(pH7.0)中で60mMのグルコース-1-リン酸
が存在する条件下、60℃で30分処理したときに80%以上
の活性が残存することをいう。In the present invention, “having heat resistance even at 60 ° C.” means that 0.1M 3-morpholinopropanesulfonic acid is used.
(MOPS) means that 80% or more of the activity remains when treated at 60 ° C. for 30 minutes in the presence of 60 mM glucose-1-phosphate in a buffer (pH 7.0).
【００５０】本願発明において「pH6.5〜11の範囲で安定
である」とは、図５に記載のそれぞれの緩衝液(50mM)中
における各pHで40℃の条件下、40分間処理したときに95
%以上の活性が残存することをいう。In the present invention, “stable in the range of pH 6.5 to 11” means that the cells are treated at the respective pHs in the respective buffer solutions (50 mM) shown in FIG. 5 at 40 ° C. for 40 minutes. At 95
% Means that the activity remains.
【００５１】本願発明において「ホスホリラーゼ活性」
は、100mM MOPS(pH7.0)、45mMグルコース-1-リン酸、１
%(w/v)可溶性からなるα-グルカン組成液中で、ホスホ
リラーゼを、40℃で30分間、作用させたときに生じる無
機リン酸を定量することによって、測定される。１分間
に１μモルの無機リン酸を生じる活性を１ユニットとす
る。In the present invention, “phosphorylase activity”
Are 100 mM MOPS (pH 7.0), 45 mM glucose-1-phosphate, 1
It is measured by quantifying the amount of inorganic phosphoric acid generated when phosphorylase is allowed to act at 40 ° C. for 30 minutes in an α-glucan composition solution consisting of% (w / v) soluble. The activity of producing 1 μmol of inorganic phosphoric acid per minute is defined as one unit.
【００５２】本願発明において「α-グルカン」とは、α-
1,4-グルカンのことであり、デンプン、アミロース、グ
リコーゲンなどを含む。In the present invention, “α-glucan” refers to α-glucan.
1,4-glucan, including starch, amylose, glycogen, etc.
【００５３】本願発明は、配列表の配列番号１で示され
るアミノ酸配列、あるいは配列表の配列番号１で示され
るアミノ酸配列中の１またはそれ以上のアミノ酸の欠
失、置換、あるいは付加により変異を含むホスホリラー
ゼであって、この変異を含むホスホリラーゼが変異を含
まないホスホリラーゼと同等またはそれ以上の活性およ
び耐熱性を有するホスホリラーゼである。このような変
異は、天然に生じるか、あるいは変異原物質の作用また
は人為的に部位特異的突然変異導入を用いて生じさせ得
る。また変異の導入の結果、変異を含まないホスホリラ
ーゼと同等またはそれ以上の活性および耐熱性を有し得
る。The present invention relates to a method for producing a mutation by deleting, substituting or adding one or more amino acids in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing or the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing. A phosphorylase containing the mutation, wherein the phosphorylase having the same or higher activity and thermostability as the phosphorylase containing no mutation. Such mutations may occur naturally or may be generated by the action of mutagens or artificially using site-directed mutagenesis. In addition, as a result of the introduction of the mutation, it may have the same or higher activity and heat resistance as phosphorylase containing no mutation.
【００５４】組換えによる生産能力の向上は、目的遺伝
子のクローン化およびクローン化された遺伝子の発現に
より達成される。Improvement of the production capacity by recombination can be achieved by cloning the gene of interest and expressing the cloned gene.
【００５５】耐熱性のあるホスホリラーゼ遺伝子はバチ
ルス ステアロサーモフィラスTRBE14株のブランチング
エンザイム遺伝子の配列(Takataら、Appl. Environ. Mi
crobiol. 60, 3096-3104, 1994)をもとに、染色体DNAか
らIPCR法(「細胞工学別冊植物細胞工学シリーズ２植物の
PCR実験プロトコール、秀瀾社」を参照のこと)を用いて
順次下流側に存在するDNAフラグメントを取得すること
により、得られ得る。さらに、このDNAフラグメントの
塩基配列を基に合成されたプライマーを用い、バチルス
ステアロサーモフィラスTRBE14株の染色体DNAなどを鋳
型に、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を用いて直接ホスホ
リラーゼ遺伝子を増幅し得る。The thermostable phosphorylase gene is a sequence of the branching enzyme gene of Bacillus stearothermophilus TRBE14 (Takata et al., Appl. Environ. Mi.
crobiol. 60, 3096-3104, 1994), the chromosomal DNA was used for the IPCR method ("Cell Engineering
PCR experiment protocol, Shulansha ")) to obtain DNA fragments present sequentially on the downstream side. Furthermore, using a primer synthesized based on the nucleotide sequence of this DNA fragment, the phosphorylase gene can be directly amplified using the polymerase chain reaction (PCR) using the chromosomal DNA of Bacillus stearothermophilus TRBE14 strain as a template. .
【００５６】なお、バチルス ステアロサーモフィラスT
RBE14株は工業技術院に受託番号FERM P-13916として寄
託されている。In addition, Bacillus stearothermophilus T
The RBE14 strain has been deposited with the Industrial Technology Institute under the accession number FERM P-13916.
【００５７】クローン化された遺伝子の配列は、クロー
ン化DNAを挿入した適切なベクターの構築、発現ベクタ
ーの微生物への導入、ならびに組換え微生物の培養およ
び生産物の回収により達成される。これらの方法は、当
業者に周知である。The sequence of the cloned gene is achieved by constructing an appropriate vector into which the cloned DNA has been inserted, introducing the expression vector into a microorganism, and culturing the recombinant microorganism and collecting the product. These methods are well known to those skilled in the art.
【００５８】本願発明に用いられる宿主微生物には、原
核生物および真核生物が含まれ、中温菌が好ましい。特
に好ましい微生物としては、例えば大腸菌などが挙げら
れるが、これに限定されない。The host microorganism used in the present invention includes prokaryotes and eukaryotes, and mesophiles are preferred. Particularly preferred microorganisms include, for example, Escherichia coli, but are not limited thereto.
【００５９】発現ベクターは、目的の遺伝子が転写およ
び翻訳されるように作動可能に連結されており、さらに
必要に応じて微生物内での複製および組換え体の選択に
必要な因子を備えた媒体をいう。また、発現産物の分泌
生産が意図される場合は、分泌シグナルペプチドをコー
ドする塩基配列が、目的のタンパク質をコードするDNA
の上流に正しいリーディングフレームで結合される。発
現ベクターの種類が使用する微生物宿主に応じて代わり
得ることは、当業者に周知である。The expression vector is operably linked so that the gene of interest is transcribed and translated and, if necessary, contains a medium necessary for replication in a microorganism and selection of a recombinant. Say. When the secretory production of the expression product is intended, the nucleotide sequence encoding the secretory signal peptide is a DNA encoding the target protein.
Upstream with the correct reading frame. It is well known to those skilled in the art that the type of expression vector can be changed depending on the microbial host used.
【００６０】好ましい発現ベクターとしては、大腸菌中
でも発現可能なpTrc99A(ファルマシア製)などが挙げら
れる。As a preferred expression vector, pTrc99A (manufactured by Pharmacia), which can be expressed in Escherichia coli, is exemplified.
【００６１】上記発現ベクター内の転写および翻訳に必
要な因子に作動可能に連結するために、目的のホスホリ
ラーゼ遺伝子を加工しなければならない場合がある。こ
れらは例えばプロモーターとコード領域との間が長すぎ
て転写効率の低下が予想される場合、またはリボゾーム
結合部位と翻訳開始コドンとの間隔が適切でない場合な
どである。加工の手段としては、制限酵素による消化、
Bal31、ExoIIIなどのエキソヌクレアーゼによる消化、
あるいはM13などの一本鎖DNAまたはPCRを使用した部位
特異的突然変異の導入が挙げられる。In some cases, the phosphorylase gene of interest must be engineered to be operably linked to the necessary transcriptional and translational elements in the expression vector. These include, for example, cases where the distance between the promoter and the coding region is too long and a decrease in transcription efficiency is expected, or where the distance between the ribosome binding site and the translation initiation codon is not appropriate. Processing methods include digestion with restriction enzymes,
Digestion with exonucleases such as Bal31, ExoIII,
Alternatively, site-directed mutagenesis using single-stranded DNA such as M13 or PCR may be mentioned.
【００６２】発現ベクターを導入してホスホリラーゼ生
産能力を獲得した形質転換株による目的遺伝子の生産
は、使用する宿主微生物および発現ベクター内の発現を
調節する因子の種類、ならびに発現される物質に応じて
適切な条件が選択される。例えば、通常の振とう培養方
法が用いられ得る。The production of the target gene by the transformant which has acquired the phosphorylase-producing ability by introducing the expression vector depends on the host microorganism to be used, the type of the factor regulating the expression in the expression vector, and the substance to be expressed. Appropriate conditions are selected. For example, a usual shaking culture method can be used.
【００６３】用いる培地は、使用される宿主微生物が生
育するものであれば特に限定されない。The medium to be used is not particularly limited as long as the host microorganism to be used grows.
【００６４】培地には炭素源、窒素源の他、無機塩、例
えば、リン酸、Mg2+、Ca2+、Mn2+、Fe2+、Fe3+、Zn2+、
Co2+、Ni2+、Na+、K+等の塩が必要に応じて、適宜混合
して、または単独で用いられ得る。また、必要に応じて
形質転換体の生育、酵素の生産に必要な各種無機物、有
機物が添加され得る。In addition to a carbon source and a nitrogen source, the medium may contain an inorganic salt such as phosphoric acid, Mg 2+ , Ca 2+ , Mn 2+ , Fe 2+ , Fe 3+ , Zn 2+ ,
Salts such as Co 2+ , Ni 2+ , Na + , K + and the like can be used as needed, mixed appropriately or used alone. Further, various inorganic substances and organic substances necessary for growth of the transformant and production of the enzyme may be added as necessary.
【００６５】培養の温度は用いる形質転換体の生育に適
した温度を選択し得る。通常15℃〜60℃である。本願発
明の好ましい実施態様において中温菌を使用する場合、
25℃〜40℃での培養が好ましい。また、形質転換株の培
養は、ホスホリラーゼの生産のために十分な時間続行さ
れるが、本願発明の好ましい実施態様では、培養時間は
24時間程度である。The temperature for culturing can be selected to be appropriate for the growth of the transformant to be used. Usually 15 ° C to 60 ° C. When using a mesophilic bacterium in a preferred embodiment of the present invention,
Culture at 25 ° C to 40 ° C is preferred. In addition, the culturing of the transformant is continued for a sufficient time for the production of phosphorylase, but in a preferred embodiment of the present invention, the culturing time is
It is about 24 hours.
【００６６】誘導性のプロモーターを有する発現ベクタ
ーを使用する場合は、誘導物質の添加、培養温度の変
更、培地成分の調整などにより発現が制御され得る。例
えば、ラクトース誘導性プロモーターを有する発現ベク
ターを使用する場合は、イソプロピル-β-D-チオガラク
トピラノシド(IPTG)を添加することにより発現が誘導さ
れ得る。When an expression vector having an inducible promoter is used, the expression can be controlled by adding an inducer, changing the culture temperature, adjusting the components of the medium, and the like. For example, when using an expression vector having a lactose-inducible promoter, expression can be induced by adding isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside (IPTG).
【００６７】このようにして培養した後、例えば培養物
を遠心分離または濾過することによって形質転換体を分
離して上清を得る。次に、このホスホリラーゼを含む上
清を通常の手段(例えば、塩析法、溶媒沈澱、限外濾過)
を用いて濃縮し、ホスホリラーゼを含む画分を得る。こ
の画分を濾過、あるいは遠心分離、脱塩処理などの処理
を行い粗酵素液を得る。さらにこの粗酵素液を、凍結乾
燥、等電点電気泳動、イオン交換クロマトグラフィー、
晶出などの通常の酵素の精製手段を適宜組み合わせるこ
とによって、比活性の向上した粗酵素あるいは精製酵素
が得られる。α-アミラーゼ等のα-グルカンを分解する
酵素、およびホスファターゼ等のグルコース-1-リン酸
を分解する酵素が含まれていなければ、その粗酵素がそ
のまま以後の反応に用いられ得る。After culturing in this way, the transformant is separated by, for example, centrifuging or filtering the culture to obtain a supernatant. Next, the supernatant containing the phosphorylase is subjected to ordinary means (for example, salting-out method, solvent precipitation, ultrafiltration)
To obtain a phosphorylase-containing fraction. This fraction is subjected to filtration, centrifugation, desalting and other treatments to obtain a crude enzyme solution. Further, the crude enzyme solution is freeze-dried, isoelectric focusing, ion exchange chromatography,
By appropriately combining ordinary enzyme purification means such as crystallization, a crude enzyme or a purified enzyme with improved specific activity can be obtained. If an enzyme that decomposes α-glucan such as α-amylase and an enzyme that decomposes glucose-1-phosphate such as phosphatase are not included, the crude enzyme can be used as it is in subsequent reactions.
【００６８】本願発明の耐熱性ホスホリラーゼ遺伝子を
大腸菌などの中温菌で発現させた場合、ホスホリラーゼ
は簡便に精製され得る。簡単に述べると、ホスホリラー
ゼを含む菌体抽出液を60℃で加熱処理することにより、
夾雑酵素が不溶化する。この不溶化物を遠心分離などで
除去して透析処理を行えばよい。When the thermostable phosphorylase gene of the present invention is expressed in a mesophilic bacterium such as Escherichia coli, the phosphorylase can be easily purified. Briefly, by heating the bacterial cell extract containing phosphorylase at 60 ° C,
Contaminating enzymes are insolubilized. This insoluble matter may be removed by centrifugation or the like, and dialysis may be performed.
【００６９】精製された耐熱性ホスホリラーゼを用いて
α-グルカンを分解しグルコース-1-リン酸を生産し得
る。この際、ホスホリラーゼを、固定化酵素としても使
用し得る。The purified thermostable phosphorylase can be used to decompose α-glucan to produce glucose-1-phosphate. In this case, phosphorylase may be used as the immobilized enzyme.
【００７０】反応温度は40℃以上、好ましくは50℃〜70
℃、特に好ましくは60℃であり、このことにより、基質
であるα-グルカンの老化および雑菌汚染が防止され得
る。The reaction temperature is 40 ° C. or higher, preferably 50 ° C. to 70 ° C.
° C, particularly preferably 60 ° C, which can prevent aging and bacterial contamination of the substrate α-glucan.
【００７１】グルコース-1-リン酸の生産は、無機リン
酸溶液を含むα-グルカン容液中で、本願発明のホスホ
リラーゼを作用させることにより行い得る。The production of glucose-1-phosphate can be carried out by reacting the phosphorylase of the present invention in an α-glucan solution containing an inorganic phosphate solution.
【００７２】ホスホリラーゼは、α-グルカンの非還元
末端からグルカンを加リン酸分解してグルコース-1-リ
ン酸を生成するが、α-1,6-グルコシル結合が基質に存
在する場合、その４残基手前で過リン酸分解反応が停止
する。従って、α-グルカンから効率よくグルコース-1-
リン酸の生産を行う場合、予めα-1,6-結合を切断して
おくか、またはホスホリラーゼ反応と同時にα-1,6-結
合を切断する酵素を添加し得る。例えば、コーンスター
チのα-1,6-結合を切断した短鎖長アミロースが用られ
得る。短鎖長アミロースを使用する場合、ホスホリラー
ゼによる加リン酸分解は、マルトテトラオースを残して
停止するため、グルコース-1-リン酸の理論的限界収率
は78%である。Phosphorylase phosphorylates glucan from the non-reducing end of α-glucan to produce glucose-1-phosphate, but when α-1,6-glucosyl bond is present in the substrate, the 4 The perphosphate degradation reaction stops just before the residue. Therefore, glucose-1-
When phosphoric acid is produced, the α-1,6-bond may be cleaved in advance, or an enzyme capable of cleaving the α-1,6-bond simultaneously with the phosphorylase reaction may be added. For example, a short-chain amylose in which the α-1,6-bond of corn starch has been cleaved can be used. When short chain amylose is used, phosphorolysis by phosphorylase is stopped leaving maltotetraose, so the theoretical limit yield of glucose-1-phosphate is 78%.
【００７３】本願発明のホスホリラーゼは、α-グルカ
ンの分解のみならず、生成にも用いられ得る。この際、
ホスホリラーゼを、固定化酵素としても使用し得る。The phosphorylase of the present invention can be used not only for decomposing α-glucan but also for producing α-glucan. On this occasion,
Phosphorylase can also be used as an immobilized enzyme.
【００７４】反応温度は40℃以上、好ましくは50℃〜70
℃、特に好ましくは60〜70℃であり、このことにより、
雑菌汚染が防止され得る。The reaction temperature is 40 ° C. or higher, preferably 50 ° C. to 70 ° C.
° C, particularly preferably from 60 to 70 ° C, whereby
Germ contamination can be prevented.
【００７５】本願発明のホスホリラーゼの基質として使
用され得る糖類は、非還元末端を有する重合度４以上の
α-グルカンである。The saccharide that can be used as a substrate of the phosphorylase of the present invention is an α-glucan having a non-reducing end and a degree of polymerization of 4 or more.
【００７６】糖類を基質として反応させる場合、生じる
α-グルカンの分子量は、例えば下記の反応式と式(1)と
を用いて算出し得る。When a reaction is carried out using a saccharide as a substrate, the molecular weight of the resulting α-glucan can be calculated, for example, using the following reaction formula and formula (1).
【００７７】 反応式： nG-1-P ＋ G(5) → nPi ＋ G(5＋n) ここで、G-1-Pはグルコース-1-リン酸であり、G(5)はマ
ルトペンタオース(5は重合度を表す)であり、 G(5＋n)
は生じるアミロース(5＋nは重合度を表す)である。Reaction formula: nG-1-P + G (5) → nPi + G (5 + n) where G-1-P is glucose-1-phosphate and G (5) is maltopentaose ( 5 represents the degree of polymerization), and G (5 + n)
Is the resulting amylose (5 + n represents the degree of polymerization).
【００７８】式(1)：生成物の平均重合度＝(生じるリン
酸のモル数／初発マルトペンタオロースのモル数) ＋
５ α-グルカンの生産は、例えば終濃度0.1mMのマルトペン
タオースを反応プライマーとして含むクエン酸緩衝液(p
H7.0)中で、グルコース-1-リン酸にホスホリラーゼを作
用させることにより行い得る。本願発明のホスホリラー
ゼを用いた場合、長時間十分に反応が進行し、また生成
物の沈澱も生じない。Formula (1): average degree of polymerization of the product = (moles of phosphoric acid generated / moles of initial maltopentaolose) +
5 Production of α-glucan is carried out, for example, by using a citrate buffer (p
H7.0), by acting phosphorylase on glucose-1-phosphate. When the phosphorylase of the present invention is used, the reaction proceeds sufficiently for a long time, and the product does not precipitate.
【００７９】反応液中のpHにより、またはホスホリラー
ゼの起源により若干変動があるが、反応の平衡に達する
場合、グルコース-1-リン酸とリン酸との濃度比が１：
3.6〜4.5の濃度比になる(Fletterick,R.J.,Ann.Rev.Bio
chem.1980 49, 31-61：およびWeinhauselら、Enzyme an
d Microbial Technology 1994 17,140-146)。本願発明
のホスホリラーゼにおいても、この比はほぼ上述のよう
である。従って、グルコース-1-リン酸とリン酸との濃
度比により、ホスホリラーゼを合成反応または分解反応
のいずれかに作用させるかを調節することが可能であ
る。There is a slight variation depending on the pH in the reaction solution or the origin of the phosphorylase, but when the reaction reaches equilibrium, the concentration ratio between glucose-1-phosphate and phosphoric acid is 1: 1:
A concentration ratio of 3.6 to 4.5 (Fletterick, RJ, Ann. Rev. Bio
chem. 1980 49, 31-61: and Weinhausel et al., Enzyme an.
d Microbial Technology 1994 17,140-146). In the phosphorylase of the present invention, this ratio is almost as described above. Therefore, depending on the concentration ratio between glucose-1-phosphate and phosphoric acid, it is possible to control whether phosphorylase acts on either the synthesis reaction or the decomposition reaction.
【００８０】[0080]
【実施例】以下に具体的に実施例を用いて説明するが、
本願発明はこれらの実施例に限定されるものではない。The present invention will be described in detail with reference to the following examples.
The present invention is not limited to these embodiments.
【００８１】(実施例１：耐熱性ホスホリラーゼ遺伝子
の単離、および耐熱性ホスホリラーゼ発現用プラスミド
の作製) (１)ホスホリラーゼ遺伝子の単離 目的の遺伝子である耐熱性のあるホスホリラーゼ遺伝子
のクローン化のために、本願発明者らは、バチルス ス
テアロサーモフィラスTRBE14株のブランチングエンザイ
ム遺伝子の配列(Takataら、Appl. Environ. Microbiol.
60, 3096-3104, 1994)をもとに、染色体DNAからIPCR法
(「細胞工学別冊植物細胞工学シリーズ２植物のPCR実験
プロトコール、秀瀾社」を参照)を用いて順次下流側に
存在するDNAフラグメントを取得した。そのDNA領域の模
式図を図２(b)に示す。塩基配列解析の結果図２(b)に示
した位置にホスホリラーゼ遺伝子がコードされているこ
とが明らかとなった。結果的にバチルス サチルスのグ
リコーゲン生合成系遺伝子群の構造と良く似ていたが、
各遺伝子の相同性は60％前後であり、オーバーラップの
度合いも微妙に異なっていた。また、グリコーゲン生合
成系遺伝子群のさらに上流の構造は全く異なっていた。
従って、バチルス サチルスがホスホリラーゼ遺伝子を
含むグリコーゲン生合成系遺伝子群を有している事実か
ら、直ちにバチルス ステアロサーモフィラスが同様の
グリコーゲン生合成系遺伝子群を有するとの想像はでき
ないことが、当業者に理解される。Example 1 Isolation of a Thermostable Phosphorylase Gene and Preparation of a Plasmid for Expression of a Thermostable Phosphorylase (1) Isolation of a Phosphorylase Gene For cloning a heat-resistant phosphorylase gene as a target gene. In addition, the present inventors, the sequence of the branching enzyme gene of Bacillus stearothermophilus TRBE14 strain (Takata et al., Appl.Environ.Microbiol.
60, 3096-3104, 1994)
(See “Cell Engineering Separate Volume, Plant Cell Engineering Series 2 PCR Experiment Protocol for Plants, Shulansha”) to sequentially obtain DNA fragments present on the downstream side. FIG. 2 (b) shows a schematic diagram of the DNA region. The nucleotide sequence analysis revealed that the phosphorylase gene was encoded at the position shown in FIG. 2 (b). As a result, the structure of the glycogen biosynthesis genes of Bacillus subtilis was very similar,
The homology of each gene was around 60%, and the degree of overlap was slightly different. Further, the structure further upstream of the glycogen biosynthesis gene group was completely different.
Therefore, from the fact that Bacillus subtilis has a glycogen biosynthesis gene group including a phosphorylase gene, it cannot be immediately imagined that Bacillus stearothermophilus has a similar glycogen biosynthesis gene group. Understandable by traders.
【００８２】(２)耐熱性ホスホリラーゼ遺伝子のクロー
ン化 配列表の配列番号１に示した塩基配列に基づいて、オリ
ゴヌクレオチド、プライマー-N(配列番号２)、プライマ
ー-C(配列番号３)を合成した。20pmolのプライマー-N、
20pmolのプライマー-C、0.2μgのバチルス ステアロサ
ーモフィラスTRBE14株染色体(GENOME DNA ISOLATION KI
T(BIO101社製)を用いて調製) 、Ex-Taq DNAポリメラー
ゼ(宝酒造製）を0.5ユニット、10mlの×10反応用緩衝
液、各２０ｎｍｏｌのデオキシＮＴＰを含む反応液100
μlを用いてポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を実施した。PC
Rは、94℃、１分間の加熱の後、98℃20秒、53℃１分、6
8℃２分のサイクルを30回繰り返し、最後に、72℃で10
分加熱する条件で実施した。その結果、耐熱性ホスホリ
ラーゼ遺伝子を含む約2.5kbpのDNAフラグメントが増幅
された。このDNAフラグメントを制限酵素、EcoRIとPstI
で切断した後、アガロースゲル電気泳動で精製し、ベク
ターpTrc99A(ファルマシア製)の同制限酵素切断点に組
み込み、耐熱性ホスホリラーゼ発現用プラスミドpTGP91
を得た。(2) Cloning of Thermostable Phosphorylase Gene Based on the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, oligonucleotide, primer-N (SEQ ID NO: 2) and primer-C (SEQ ID NO: 3) were synthesized. did. 20 pmol of primer-N,
20 pmol of primer-C, 0.2 μg of Bacillus stearothermophilus TRBE14 strain chromosome (GENOME DNA ISOLATION KI
T (prepared using BIO101), a reaction solution containing 0.5 units of Ex-Taq DNA polymerase (Takara Shuzo), 10 ml of × 10 reaction buffer, and 20 nmol of deoxy NTP each.
The polymerase chain reaction (PCR) was performed using μl. PC
R was heated at 94 ° C for 1 minute, then at 98 ° C for 20 seconds, at 53 ° C for 1 minute,
Repeat the cycle of 8 ° C for 2 minutes 30 times, and finally,
This was performed under the condition of heating for a minute. As a result, a DNA fragment of about 2.5 kbp containing the thermostable phosphorylase gene was amplified. This DNA fragment was digested with the restriction enzymes EcoRI and PstI.
After purification with agarose gel electrophoresis, the plasmid pTGP99A (manufactured by Pharmacia) was incorporated into the same restriction enzyme cleavage point, and a plasmid pTGP91 for expression of a thermostable phosphorylase was prepared.
I got
【００８３】(実施例２：耐熱性ホスホリラーゼの活性
測定)活性は、グルコース-1-リン酸とα-グルカンに反
応させたときに生じる無機リン酸をSahekiらの方法(Ana
l. Biochem. 148, 277-281 (1985))で定量することによ
り、以下のように測定した。100mM MOPS(pH7.0)、45mM
グルコース-1-リン酸、１％(w/v)可溶性デンプンの組成
からなる反応液(200μl)を、40℃で30分間保温した後、
亜鉛モリブデン溶液(100mM 酢酸亜鉛, 15mM モリブデン
酸アンモニウム(pH5.0))を添加し、反応を停止した。こ
れにアスコルビン酸溶液(溶液中の10％アスコルビン酸
（pH5))を200μl添加し、30℃で15分間保温した後、850
nmの吸光度を測定した。１分間に１μmolのリン酸を遊
離する酵素量を１ユニットとし、活性のユニットを算出
した。Example 2 Measurement of Activity of Thermostable Phosphorylase The activity was determined by the method of Saheki et al.
l. Biochem. 148, 277-281 (1985)) and measured as follows. 100 mM MOPS (pH 7.0), 45 mM
A reaction solution (200 μl) composed of glucose-1-phosphate, 1% (w / v) soluble starch was incubated at 40 ° C. for 30 minutes,
A zinc molybdenum solution (100 mM zinc acetate, 15 mM ammonium molybdate (pH 5.0)) was added to stop the reaction. 200 μl of an ascorbic acid solution (10% ascorbic acid (pH 5) in the solution) was added thereto, and the mixture was incubated at 30 ° C. for 15 minutes.
The absorbance at nm was measured. The amount of the enzyme that releases 1 μmol of phosphoric acid per minute was defined as 1 unit, and the unit of activity was calculated.
【００８４】(実施例３：耐熱性ホスホリラーゼの精製)
プラスミドpTGP91を含有する大腸菌ＴＧ−１株の全
培養液10ミリリットルを、１リットルのＬ培地(50μg/m
lアンピシリンを含む)を含む２リットル容坂口フラスコ
に添加し、37℃で振とうした。2.5時間後、終濃度１mM
のイソプロピル-β-Ｄ-チオガラクトピラノシドおよび
１mMのピリドキシンを添加し、さらに21.5時間37℃で培
養を続けた。菌体を遠心分離により集め、20mM Tris-HC
l(pH7.5)(以下、緩衝液Ａという)で洗浄した後、同緩衝
液に再び懸濁して、超音波処理を行った。これを、遠心
分離して上清を粗酵素液とした。粗酵素液を60℃で１時
間処理して不溶物を除き緩衝液Ａに対して透析した。透
析内液を緩衝液Ａで平衡化したＱ−セファロースカラム
(ファルマシア製)にロードして、100mM NaClを含む緩衝
液Ａで洗浄した。耐熱性ホスホリラーゼは、500mM NaCl
を含む緩衝液で溶出した。Example 3 Purification of Thermostable Phosphorylase
Ten milliliters of a total culture of E. coli TG-1 strain containing plasmid pTGP91 was added to one liter of L medium (50 μg / m
(including 1 ampicillin) was added to a 2 liter Sakaguchi flask and shaken at 37 ° C. 2.5 hours later, 1 mM final concentration
Of isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside and 1 mM of pyridoxine were added, and the culture was continued at 37 ° C. for an additional 21.5 hours. The cells were collected by centrifugation and 20 mM Tris-HC
After washing with 1 (pH 7.5) (hereinafter referred to as buffer A), the cells were suspended again in the same buffer and subjected to ultrasonic treatment. This was centrifuged to obtain a supernatant as a crude enzyme solution. The crude enzyme solution was treated at 60 ° C. for 1 hour to remove insolubles and dialyzed against buffer A. Q-Sepharose column in which dialysis solution is equilibrated with buffer A
(Pharmacia) and washed with buffer A containing 100 mM NaCl. Thermostable phosphorylase is 500 mM NaCl
The buffer was eluted with
【００８５】得られた酵素液に終濃度300mMになるよう
に、硫酸アンモニウムを添加した後、300mM硫酸アンモ
ニウムを含む緩衝液Ａで平衡化したフェニルトヨパール
カラム(TOSOH製)にロードした。150mM硫酸アンモニウム
を含む緩衝液Ａで洗浄した後、緩衝液Ａで耐熱性ホスホ
リラーゼを溶出した。これを、緩衝液Ａで平衡化したSo
urce15Qカラム(ファルマシア製)にロードし、緩衝液Ａ
中のNaCl濃度を100mMから500mMに変化させることによっ
て酵素を溶出した。Ammonium sulfate was added to the obtained enzyme solution to a final concentration of 300 mM, and then the solution was loaded on a phenyl toyopearl column (manufactured by TOSOH) equilibrated with buffer A containing 300 mM ammonium sulfate. After washing with buffer A containing 150 mM ammonium sulfate, the thermostable phosphorylase was eluted with buffer A. This was added to So
Load on urce15Q column (Pharmacia), buffer A
The enzyme was eluted by changing the NaCl concentration in the solution from 100 mM to 500 mM.
【００８６】得られた酵素液に終濃度300mMになるよう
に、硫酸アンモニウムを添加した後、300mM硫酸アンモ
ニウムを含む緩衝液Ａで平衡化したResourcePheカラム
(ファルマシア製)にロードし、緩衝液Ａで洗浄し、耐熱
性ホスホリラーゼを蒸留水を流すことにより溶出した。
得られた酵素液に終濃度20mMになるようにTris-HCl(pH
7.0)緩衝液を添加し、精製酵素液とした。精製酵素はSD
Sポリアクリルアミトゲル電気泳動で単一バンドを示し
た(図３)。After adding ammonium sulfate to the obtained enzyme solution to a final concentration of 300 mM, a ResourcePhe column equilibrated with buffer A containing 300 mM ammonium sulfate.
(Manufactured by Pharmacia), washed with buffer A, and eluted with heat-resistant phosphorylase by flowing distilled water.
Tris-HCl (pH
7.0) A buffer solution was added to obtain a purified enzyme solution. Purified enzyme is SD
S polyacrylamide gel electrophoresis showed a single band (FIG. 3).
【００８７】(実施例４：耐熱性ホスホリラーゼの比活
性)実施例３で精製した耐熱性ホスホリラーゼを用い
て、本酵素の比活性を測定した。比活性は1.82ユニット
／mgであった。実施例２で示した方法において、可溶性
デンプンをグリコーゲン(ウサギ肝臓由来、ベーリンガ
ーマンハイム製)に置換して測定した場合には3.45ユニ
ット／mgであった。この比活性は、大腸菌グリコーゲン
ホスホリラーゼの比活性(0.19ユニット／mg、Yuら、J.
Biol. Chem. 263,13706-13711, 1988)に比べると約９〜
18倍であった。(Example 4: Specific activity of thermostable phosphorylase) Using the thermostable phosphorylase purified in Example 3, the specific activity of the present enzyme was measured. The specific activity was 1.82 units / mg. It was 3.45 units / mg when the soluble starch was replaced with glycogen (derived from rabbit liver, manufactured by Boehringer Mannheim) in the method described in Example 2. This specific activity is determined by the specific activity of E. coli glycogen phosphorylase (0.19 units / mg, Yu et al., J. Am.
Biol. Chem. 263, 13706-13711, 1988).
18 times.
【００８８】(実施例５：耐熱性ホスホリラーゼの性質)
実施例３で精製した耐熱性ホスホリラーゼの本酵素の酵
素学的性質を、当業者に周知の方法を用いて分析した。
本酵素の反応至適pHは6.5〜７であり(図４)、pH6.5〜11
の範囲で安定であった(図５)。また、反応至適温度は50
℃であり(図６)、45℃まで安定であった(図７)。さら
に、本酵素は無機リン酸やグルコース-1-リン酸で安定
化された。例えば、60mMのグルコース-1-リン酸存在下
では70℃、30分間の加熱後も約50％の活性が残存した。
また１Mリン酸存在下において60℃で反応を行ったとこ
ろ、１時間後も反応速度の低下は観察されなかった。Example 5 Properties of Thermostable Phosphorylase
The enzymatic properties of the present enzyme of the thermostable phosphorylase purified in Example 3 were analyzed using a method well known to those skilled in the art.
The optimum pH for the reaction of this enzyme is 6.5-7 (Fig. 4), and the pH is 6.5-11.
(FIG. 5). The optimal reaction temperature is 50
° C (Figure 6) and was stable up to 45 ° C (Figure 7). Furthermore, the enzyme was stabilized with inorganic phosphate and glucose-1-phosphate. For example, in the presence of 60 mM glucose-1-phosphate, about 50% of the activity remained after heating at 70 ° C. for 30 minutes.
When the reaction was carried out at 60 ° C. in the presence of 1 M phosphoric acid, no decrease in the reaction rate was observed even after 1 hour.
【００８９】(実施例６：グルコース-1-リン酸の生産)5
0mgのモチトウモロコシデンプンを10mlの１Mリン酸カリ
ウム緩衝液(pH7.0)に懸濁し、沸騰水浴中で20分間加熱
することによって溶解させた。これを、60℃まで冷却
し、実施例３で精製した耐熱性ホスホリラーゼを0.13ユ
ニット添加した。経時的にサンプリングし、グルコース
-1-リン酸を定量した。グルコース-1-リン酸の定量は、
Weinhuse1艪轣AEnzyme and Microbial Technology 17,
140-146 (1994）に記述される酵素的方法に本質的に従
い、以下のように実施した。Example 6 Production of Glucose-1-phosphate 5
0 mg of waxy maize starch was suspended in 10 ml of 1M potassium phosphate buffer (pH 7.0) and dissolved by heating in a boiling water bath for 20 minutes. This was cooled to 60 ° C., and 0.13 unit of the thermostable phosphorylase purified in Example 3 was added. Sampling over time and glucose
1-phosphate was quantified. The quantification of glucose-1-phosphate is
Weinhuse1 judge summaryAEnzyme and Microbial Technology 17,
140-146 (1994), essentially following the enzymatic method described below.
【００９０】80μlのサンプルに80μlの１M Tris-HCl(p
H7)、50mM MgCl2と640μlの蒸留水を添加した。これ
に、400μlの検出用試薬溶液(10mM Tris-HCl(pH７)、1.
8μmol/ml NAD+，30nmol/ml グルコース-1,6-ジホスフ
ェート、 6ユニット/mlホスホグルコムターゼ(ウサギ筋
肉由来，ベーリンガーマンハイム社製)、6ユニット/ml
グルコース-6-ホスフェートデヒドロゲナーゼ(Leuconos
toc mesenteroides由来、ベーリンガーマンハイム社
製))を添加し、37℃で30分間保温した後、340nmの吸光
度を測定した。To 80 μl of the sample, add 80 μl of 1 M Tris-HCl (p
H7), 50 mM MgCl 2 and 640 μl of distilled water were added. To this, 400 μl of a detection reagent solution (10 mM Tris-HCl (pH 7), 1.
8 μmol / ml NAD +, 30 nmol / ml glucose-1,6-diphosphate, 6 units / ml phosphoglucomutase (from rabbit muscle, Boehringer Mannheim), 6 units / ml
Glucose-6-phosphate dehydrogenase (Leuconos
toc mesenteroides, Boehringer Mannheim) was added, and the mixture was kept at 37 ° C. for 30 minutes, and the absorbance at 340 nm was measured.
【００９１】この結果、反応２時間後まで、ほぼ直線的
にグルコース-1-リン酸が増加し、最終的に14mMに達し
た(図８)。このときのデンプン分解率は約45.3％であっ
た。ホスホリラーゼはα-グルカンの非還元末端から作
用し、α-1,6-グルコシド結合の４残基手前で反応が停
止するので、本実験では分解反応はほぼ完全に終了して
いると判断した。As a result, up to 2 hours after the reaction, glucose-1-phosphate increased almost linearly, and finally reached 14 mM (FIG. 8). At this time, the starch decomposition rate was about 45.3%. Since phosphorylase acts from the non-reducing end of α-glucan and stops the reaction four residues before α-1,6-glucosidic bond, it was determined in this experiment that the decomposition reaction was almost completely completed.
【００９２】(実施例７：アミロースの生産)実施例３で
調製した耐熱性ホスホリラーゼと終濃度250mM、または4
00mMのグルコース-1-リン酸とを60℃で反応させた。反
応は10mMのクエン酸緩衝液(pH7.0)中で行い、酵素濃度
は0.85ユニット/mlであり、終濃度の0.1mMのマルトペン
タオースを反応プライマーとして用いた。経時的にサン
プリングし、100℃で５分間加熱した後に、前述のSahek
iらの方法により生じたリン酸を定量した。生じるアミ
ロースの分子量は、下の反応式を式(1)とを用いること
によって、算出した。(Example 7: Production of amylose) The thermostable phosphorylase prepared in Example 3 and a final concentration of 250 mM or 4
The reaction was carried out at 60 ° C. with 00 mM glucose-1-phosphate. The reaction was performed in a 10 mM citrate buffer (pH 7.0), the enzyme concentration was 0.85 units / ml, and a final concentration of 0.1 mM maltopentaose was used as a reaction primer. After sampling over time and heating at 100 ° C for 5 minutes,
Phosphoric acid generated by the method of i et al. was quantified. The molecular weight of the resulting amylose was calculated by using the following reaction equation with equation (1).
【００９３】 反応式： nG-1-P ＋ G(5) → nPi ＋ G(5＋n) ここで、G-1-Pはグルコース-1-リン酸であり、G(5)はマ
ルトペンタオース(5は重合度を表す)であり、 G(5＋n)
は生じるアミロース(5＋nは重合度を表す)である。Reaction formula: nG-1-P + G (5) → nPi + G (5 + n) where G-1-P is glucose-1-phosphate and G (5) is maltopentaose ( 5 represents the degree of polymerization), and G (5 + n)
Is the resulting amylose (5 + n represents the degree of polymerization).
【００９４】式(1)：生成物の平均重合度＝(生じるリン
酸のモル数／初発マルトペンタオロースのモル数) ＋
５ 反応の経時経過を図９に示す。60℃でも長時間十分に反
応は進行し、生成物の沈澱も生じなかった。24時間後の
反応液をゲル濾過クロマトグラフィー(Superose6＋Supe
rdex30(Pharmacia製、1cm×30cm)、溶出液150mM NaCl、
検出示差屈折計)にかけ、酵素合成アミロース(アジノキ
社製)を基準として、重合度を算定した。その結果、グ
ルコース濃度が250mMの場合、重合度261のアミロース、
およびグルコース濃度が400mMの場合、重合度196のアミ
ロースが生成されており、予想される大きさのアミロー
スが生成されたことが明らかとなった。Formula (1): average degree of polymerization of product = (moles of phosphoric acid generated / moles of initial maltopentaolose) +
FIG. 9 shows the time course of the 5 reactions. Even at 60 ° C., the reaction proceeded sufficiently for a long time, and the product did not precipitate. The reaction solution after 24 hours is subjected to gel filtration chromatography (Superose6 + Supe
rdex30 (Pharmacia, 1 cm x 30 cm), eluate 150 mM NaCl,
The degree of polymerization was calculated using an enzyme-synthesized amylose (manufactured by Azinoki) as a reference. As a result, if the glucose concentration is 250 mM, amylose having a degree of polymerization of 261;
When the glucose concentration was 400 mM, amylose having a polymerization degree of 196 was produced, and it was revealed that amylose having the expected size was produced.
【００９５】(実施例８：短鎖長アミロースを基質とし
たグルコース-1-リン酸の生産)実施例３で調製した耐熱
性ホスホリラーゼを以下の反応液中で反応した。反応液
組成は、0.2%または2%の短鎖長アミロース(ナカライテ
スク(株)製 AmyloseA (平均鎖長18)、コーンスターチの
α-1,6-結合を切断して乾燥した製品)、0.9Mリン酸カリ
ウム、耐熱性ホスホリラーゼ0.04ユニット/ml(pH7.0)を
含んだ。この反応液を60℃、65℃または70℃で18時間保
温した後、終濃度0.8規定となるように水酸化ナトリウ
ムを添加して反応を停止し、生じたグルコース-1-リン
酸を実施例６と同様の方法で測定した。Example 8 Production of Glucose-1-phosphate Using Short-Chain Amylose as a Substrate The thermostable phosphorylase prepared in Example 3 was reacted in the following reaction mixture. The reaction solution composition was 0.2% or 2% short chain-length amylose (Nacalai Tesque, Inc., AmyloseA (average chain length 18), a product obtained by cutting α-1,6-bond of corn starch and drying), 0.9M Potassium phosphate and thermostable phosphorylase 0.04 unit / ml (pH 7.0) were contained. After incubating the reaction solution at 60 ° C., 65 ° C. or 70 ° C. for 18 hours, the reaction was stopped by adding sodium hydroxide to a final concentration of 0.8 N, and the resulting glucose-1-phosphate was dissolved in Example. The measurement was performed in the same manner as in Example 6.
【００９６】また対照実験として、ウサギ筋肉ホスホリ
ラーゼ(a型、Sigma社製)を用い、反応温度を30℃にした
以外は同様の条件で行った。２%の基質濃度では反応初
期(反応開始後、30分以内)に基質が沈澱を始め、反応が
停止した。そのため、酵素を0.4ユニット/mlに増加し、
反応温度を40℃として実験を行った。これらの結果を表
１に示す。ホスホリラーゼによる加リン酸分解は、マル
トテトラオースまでで止まるため、理論的限界収率は78
%である。As a control experiment, a rabbit muscle phosphorylase (type a, manufactured by Sigma) was used under the same conditions except that the reaction temperature was 30 ° C. At a substrate concentration of 2%, the substrate started to precipitate at the beginning of the reaction (within 30 minutes after the start of the reaction), and the reaction was stopped. Therefore, increase the enzyme to 0.4 units / ml,
The experiment was performed at a reaction temperature of 40 ° C. Table 1 shows the results. Phosphorolysis by phosphorylase stops at maltotetraose, so the theoretical limit yield is 78.
%.
【００９７】後者の条件では、基質の沈澱は観測されな
かったものの、耐熱性ホスホリラーゼを使用した場合の
ほうがグルコース-1-リン酸の収率が高くその値は、60
℃、65℃および70℃において61%〜68%であった(表１)。Under the latter condition, no precipitation of the substrate was observed, but the yield of glucose-1-phosphate was higher when the thermostable phosphorylase was used, and the value was 60%.
61% to 68% at 65 ° C, 70 ° C and 70 ° C (Table 1).
【００９８】[0098]
【表１】 [Table 1]
【００９９】[0099]
【発明の効果】本願発明の酵素は、今までに発見された
中で最も耐熱性の高いホスホリラーゼであり、前述の実
施例で示されるように、反応至適温度が50℃であり、60
℃でも十分に使用し得る。また比活性も大腸菌グリコー
ゲンホスホリラーゼの少なくとも９倍である。従って、
グルコース-1-リン酸を効率よく製造する際に問題とな
る、反応温度が低いために生じる雑菌の汚染およびα-
グルカンの老化、またはホスホリラーゼの逆反応を利用
してアミロースなどのα-グルカンを製造する際にも同
様に問題となる、雑菌汚染や生産物であるα-グルカン
の老化を、この耐熱性の酵素を使用することにより高い
反応温度で行い得るようになり、克服することが可能と
なった。The enzyme of the present invention is the most thermostable phosphorylase discovered so far, and as shown in the above-mentioned Examples, the optimum reaction temperature is 50 ° C.
It can be used well even at ° C. The specific activity is at least 9 times that of E. coli glycogen phosphorylase. Therefore,
The problem of efficient production of glucose-1-phosphate, contamination of various bacteria caused by low reaction temperature and α-
Glucan aging, or the production of α-glucan such as amylose by utilizing the reverse reaction of phosphorylase, is also a problem. Has made it possible to work at higher reaction temperatures and has been possible to overcome.
【０１００】さらに本酵素遺伝子を大腸菌などの中温菌
を宿主として発現させた場合、耐熱性ホスホリラーゼを
含む得られた菌体抽出液を60℃で加熱処理することによ
り、夾雑酵素を簡単に除去し得、精製の面においても有
利であり得る。Further, when the present enzyme gene is expressed using a mesophilic bacterium such as Escherichia coli as a host, the obtained bacterial cell extract containing heat-resistant phosphorylase is subjected to a heat treatment at 60 ° C. to easily remove contaminating enzymes. It can also be advantageous in terms of yield and purification.
【０１０１】[0101]
【０１０２】[0102]
【配列番号１】 配列の長さ：798 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：タンパク質 配列 Met Phe Thr Asp Lys Glu Thr Phe Lys Gln Ala Phe Leu Ile Arg Leu 1 5 10 15 Glu Thr Leu Cys Gly Lys Gln Phe Glu Glu Ser Thr Thr Arg Asp His 20 25 30 Tyr Tyr Val Leu Gly His Met Val Arg Glu His Ile Ser Arg His Trp 35 40 45 Ile Ala Thr Asn Glu Arg Asn Arg Ala Gln Lys Arg Lys Gln Val Tyr 50 55 60 Tyr Leu Ser Ile Glu Phe Leu Leu Gly Arg Leu Leu Gly Ser Asn Leu 65 70 75 80 Leu Asn Leu Gly Val Arg Gln Val Val Glu Glu Gly Leu Arg Asp Leu 85 90 95 Gly Ile Arg Leu Glu Asp Val Glu Glu Ser Glu Ala Asp Ala Gly Leu 100 105 110 Gly Asn Gly Gly Leu Gly Arg Leu Ala Ala Cys Phe Leu Asp Ser Leu 115 120 125 Ala Thr Leu Asn Leu Pro Gly His Gly His Gly Ile Arg Tyr Lys His 130 135 140 Gly Leu Phe Asp Gln Lys Ile Val Asp Gly Tyr Gln Val Glu Leu Pro 145 150 155 160 Gln Gln Trp Leu Arg His Gly Asn Val Trp Glu Ile Arg Lys Glu Glu 165 170 175 Leu Ala Val Glu Val Asn Phe Trp Gly Lys Val Glu Val Tyr Glu Gln 180 185 190 Asn Gly Cys Leu Val Phe Arg His Ile Asp Ser Lys Lys Val Met Ala 195 200 205 Val Pro Tyr Asp Met Pro Val Ile Gly Tyr Gly Thr Asn Thr Val Asn 210 215 220 Thr Leu Arg Leu Trp Asn Ala Glu Pro Ala Lys Thr Phe Pro Leu His 225 230 235 240 Lys Asp Val Met Gln Tyr Lys Arg Glu Thr Glu Ala Ile Ser Glu Phe 245 250 255 Leu Tyr Pro Asp Asp Ala His Asp Glu Gly Lys Ile Leu Arg Leu Lys 260 265 270 Gln Gln Tyr Phe Leu Val Ala Ala Ser Leu Gly Ser Ile Val Arg Ala 275 280 285 His Arg Leu Gln His Gly Asn Leu His Gln Leu His Glu Tyr Val Ala 290 295 300 Ile His Val Asn Asp Thr His Pro Val Leu Ala Ile Pro Glu Leu Met 305 310 315 320 Arg Ile Leu Leu Asp Glu Glu Gly Met Ser Trp Glu Glu Ala Trp His 325 330 335 Ile Thr Thr His Thr Ile Ala Tyr Thr Asn His Thr Thr Leu Ser Glu 340 345 350 Arg Leu Arg Met Ala Ile His Leu Phe Gln Pro Leu Leu Pro Arg Ile 355 360 365 Tyr Met Ile Val Glu Glu Ile Asn Glu Arg Phe Cys Arg Glu Leu Trp 370 375 380 Glu Arg Tyr Pro Gly Asp Trp Gly Arg Ile Glu Gln Met Ala Ile Ile 385 390 395 400 Ala His Gly Val Val Lys Met Ala His Leu Ala Ile Ala Gly Ser His 405 410 415 Ser Val Asn Gly Val Ala Lys Leu His Thr Glu Ile Leu Lys Gln Arg 420 425 430 Glu Met Arg Leu Phe Tyr Glu Trp Ala Pro His Lys Phe Asn Asn Lys 435 440 445 Thr Asn Gly Val Thr His Arg Arg Trp Leu Leu Lys Ala Asn Pro Glu 450 455 460 Leu Ser Ala Leu Ile Thr Asp Thr Thr Gly Ser Arg Trp Ile His Glu 465 470 475 480 Pro Glu Thr Leu Ile Glu Leu Lys Pro His Ala Ser Asp Pro Ala Phe 485 490 495 Gln Gln Ala Leu Ser Ala Val Lys Gln Gln Arg Lys Gly Lys Leu Ala 500 505 510 Ala Arg Ile Tyr Glu Lys Thr Gly Ile Arg Val Asp Glu Ser Ser Ile 515 520 525 Phe Asp Val Gln Val Lys Arg Leu His Ala Tyr Lys Arg Gln Leu Leu 530 535 540 Asn Val Leu His Ile Met Tyr Leu Tyr Asn Arg Leu Lys Glu Asp Pro 545 550 555 560 His Phe Ser Ile Tyr Pro Arg Thr Phe Ile Phe Gly Ala Lys Ala Ser 565 570 575 Pro Gly Tyr Tyr Tyr Ala Lys Arg Ile Ile Lys Leu Ile His Ser Val 580 585 590 Ala Asp Lys Val Asn Asn Asp Lys Gln Thr Asn Glu Gln Leu Lys Val 595 600 605 Ile Phe Leu Glu Asn Tyr Arg Val Ser Leu Ala Glu Glu Ile Phe Pro 610 615 620 Ala Ala Asp Val Ser Glu Gln Ile Ser Thr Ala Ser Ile Glu Ala Ser 625 630 635 640 Gly Thr Gly Asn Met Lys Phe Met Met Asn Gly Ala Leu Thr Leu Gly 645 650 655 Thr Leu Asp Gly Ala Asn Val Glu Ile Ala Glu Ala Val Gly Lys Glu 660 665 670 Asn Met Phe Leu Phe Gly Leu Thr Ala Glu Glu Val Leu Asn Tyr Tyr 675 680 685 Glu His Gly Gly Tyr Arg Ala His Glu Tyr Tyr His His Asp Lys Arg 690 695 700 Ile Lys Gln Val Val Asp Gln Leu Val Asn Gly Phe Phe Pro Asp Val 705 710 715 720 Ala Asp Tyr Phe Glu Pro Ile Tyr Asp Ser Leu Leu Thr Gln Asn Asp 725 730 735 Glu Tyr Phe Val Leu Arg Asp Phe Ala Ala Tyr Thr Glu Ala His Glu 740 745 750 Arg Val Glu Ala Ala Tyr Arg Asp Pro Ala Arg Trp Trp Tyr Met Ser 755 760 765 Ala Val Asn Ile Ala His Ser Gly Tyr Phe Ala Ser Asp Arg Thr Ile 770 775 780 Ala Glu Tyr Ala Val Asp Ile Trp Gly Ile Ser Pro Ser Met 785 790 795 798[SEQ ID NO: 1] Sequence length: 798 Sequence type: amino acid Topology: linear Sequence type: protein Sequence Met Phe Thr Asp Lys Glu Thr Phe Lys Gln Ala Phe Leu Ile Arg Leu 1 5 10 15 Glu Thr Leu Cys Gly Lys Gln Phe Glu Glu Ser Thr Thr Arg Asp His 20 25 30 Tyr Tyr Val Leu Gly His Met Val Arg Glu His Ile Ser Arg His Trp 35 40 45 Ile Ala Thr Asn Glu Arg Asn Arg Ala Gln Lys Arg Lys Gln Val Tyr 50 55 60 Tyr Leu Ser Ile Glu Phe Leu Leu Gly Arg Leu Leu Gly Ser Asn Leu 65 70 75 80 Leu Asn Leu Gly Val Arg Gln Val Val Glu Glu Gly Leu Arg Asp Leu 85 90 95 Gly Ile Arg Leu Glu Asp Val Glu Glu Ser Glu Ala Asp Ala Gly Leu 100 105 110 Gly Asn Gly Gly Leu Gly Arg Leu Ala Ala Cys Phe Leu Asp Ser Leu 115 120 125 Ala Thr Leu Asn Leu Pro Gly His Gly His Gly Ile Arg Tyr Lys His 130 135 140 Gly Leu Phe Asp Gln Lys Ile Val Asp Gly Tyr Gln Val Glu Leu Pro 145 150 155 160 Gln Gln Trp Leu Arg His Gly Asn Val Trp Glu Ile Arg Lys Glu Glu 165 170 175 Leu Ala Val Glu Val Asn Phe Trp G ly Lys Val Glu Val Tyr Glu Gln 180 185 190 Asn Gly Cys Leu Val Phe Arg His Ile Asp Ser Lys Lys Val Met Ala 195 200 205 Val Pro Tyr Asp Met Pro Val Ile Gly Tyr Gly Thr Asn Thr Val Asn 210 215 220 Thr Leu Arg Leu Trp Asn Ala Glu Pro Ala Lys Thr Phe Pro Leu His 225 230 235 240 Lys Asp Val Met Gln Tyr Lys Arg Glu Thr Glu Ala Ile Ser Glu Phe 245 250 255 Leu Tyr Pro Asp Asp Ala His Asp Glu Gly Lys Ile Leu Arg Leu Lys 260 265 270 Gln Gln Tyr Phe Leu Val Ala Ala Ser Leu Gly Ser Ile Val Arg Ala 275 280 285 His Arg Leu Gln His Gly Asn Leu His Gln Leu His Glu Tyr Val Ala 290 295 300 Ile His Val Asn Asp Thr His Pro Val Leu Ala Ile Pro Glu Leu Met 305 310 315 320 Arg Ile Leu Leu Asp Glu Glu Gly Met Ser Trp Glu Glu Ala Trp His 325 330 335 Ile Thr Thr His Thr Ile Ala Tyr Thr Asn His Thr Thr Leu Ser Glu 340 345 350 Arg Leu Arg Met Ala Ile His Leu Phe Gln Pro Leu Leu Pro Arg Ile 355 360 365 Tyr Met Ile Val Glu Glu Ile Asn Glu Arg Phe Cys Arg Glu Leu Trp 370 375 380 Glu Arg Tyr Pro Gly Asp Trp Gly Arg I le Glu Gln Met Ala Ile Ile 385 390 395 400 400 Ala His Gly Val Val Lys Met Ala His Leu Ala Ile Ala Gly Ser His 405 410 415 Ser Val Asn Gly Val Ala Lys Leu His Thr Glu Ile Leu Lys Gln Arg 420 425 430 Glu Met Arg Leu Phe Tyr Glu Trp Ala Pro His Lys Phe Asn Asn Lys 435 440 445 Thr Asn Gly Val Thr His Arg Arg Trp Leu Leu Lys Ala Asn Pro Glu 450 455 460 Leu Ser Ala Leu Ile Thr Asp Thr Thr Gly Ser Arg Trp Ile His Glu 465 470 475 480 Pro Glu Thr Leu Ile Glu Leu Lys Pro His Ala Ser Asp Pro Ala Phe 485 490 495 Gln Gln Ala Leu Ser Ala Val Lys Gln Gln Arg Lys Gly Lys Leu Ala 500 505 510 Ala Arg Ile Tyr Glu Lys Thr Gly Ile Arg Val Asp Glu Ser Ser Ile 515 520 525 Phe Asp Val Gln Val Lys Arg Leu His Ala Tyr Lys Arg Gln Leu Leu 530 535 540 Asn Val Leu His Ile Met Tyr Leu Tyr Asn Arg Leu Lys Glu Asp Pro 545 550 555 560 His Phe Ser Ile Tyr Pro Arg Thr Phe Ile Phe Gly Ala Lys Ala Ser 565 570 575 Pro Gly Tyr Tyr Tyr Ala Lys Arg Ile Ile Lys Leu Ile His Ser Val 580 585 590 Ala Asp Lys Val Asn Asn Asp Lys Gln T hr Asn Glu Gln Leu Lys Val 595 600 605 Ile Phe Leu Glu Asn Tyr Arg Val Ser Leu Ala Glu Glu Ile Phe Pro 610 615 620 Ala Ala Ala Asp Val Ser Glu Gln Ile Ser Thr Ala Ser Ile Glu Ala Ser 625 630 630 635 640 Gly Thr Gly Asn Met Lys Phe Met Met Asn Gly Ala Leu Thr Leu Gly 645 650 655 655 Thr Leu Asp Gly Ala Asn Val Glu Ile Ala Glu Ala Val Gly Lys Glu 660 665 670 Asn Met Phe Leu Phe Gly Leu Thr Ala Glu Glu Val Leu Asn Tyr Tyr 675 680 685 Glu His Gly Gly Tyr Arg Ala His Glu Tyr Tyr His His Asp Lys Arg 690 695 700 Ile Lys Gln Val Val Asp Gln Leu Val Asn Gly Phe Phe Pro Asp Val 705 710 710 715 720 Ala Asp Tyr Phe Glu Pro Ile Tyr Asp Ser Leu Leu Thr Gln Asn Asp 725 730 735 Glu Tyr Phe Val Leu Arg Asp Phe Ala Ala Tyr Thr Glu Ala His Glu 740 745 750 Arg Val Glu Ala Ala Tyr Arg Asp Pro Ala Arg Trp Trp Tyr Met Ser 755 760 765 Ala Val Asn Ile Ala His Ser Gly Tyr Phe Ala Ser Asp Arg Thr Ile 770 775 780 Ala Glu Tyr Ala Val Asp Ile Trp Gly Ile Ser Pro Ser Met 785 790 795 798
【０１０３】[0103]
【配列番号２】 配列の長さ：２９ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸(合成DNA) 配列 CTTGAATTCA CAAGCCTATG AACAGCTGA 29[SEQ ID NO: 2] Sequence length: 29 Sequence type: nucleic acid Number of strands: single-stranded Topology: linear Sequence type: other nucleic acid (synthetic DNA) Sequence CTTGAATTCA CAAGCCTATG AACAGCTGA 29
【０１０４】[0104]
【配列番号３】 配列の長さ：２９ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸(合成DNA) 配列 CTTCTGCAGA CTTCTTGACT GGTGCGCAA 29[SEQ ID NO: 3] Sequence length: 29 Sequence type: nucleic acid Number of strands: single strand Topology: linear Sequence type: other nucleic acid (synthetic DNA) Sequence CTTCTGCAGA CTTCTTGACT GGTGCGCAA 29
【０１０５】[0105]
【配列番号４】 配列の長さ：2580 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：Ｇｅｎｏｍｉｃ ＤＮＡ 起源 生物名：バチルス ステアロサーモフィラス 株名：TRBE14 配列 GTTGGCGTCG GTCGGCAAAC CAATATAAAC AAGCCTATGA ACAGCTGATC AAAAAGGAGG 60 AGCACACGC TTG TTC ACG GAT AAA GAA ACG TTT AAA CAG GCG TTT TTG ATA 111 Met Phe Thr Asp Lys Glu Thr Phe Lys Gln Ala Phe Leu Ile 1 5 10 CGG CTT GAA ACG TTG TGC GGC AAA CAG TTC GAG GAG TCG ACG ACG CGC 159 Arg Leu Glu Thr Leu Cys Gly Lys Gln Phe Glu Glu Ser Thr Thr Arg 15 20 25 30 GAC CAT TAT TAT GTG CTT GGT CAT ATG GTA CGT GAA CAT ATT AGC CGC 207 Asp His Tyr Tyr Val Leu Gly His Met Val Arg Glu His Ile Ser Arg 35 40 45 CAT TGG ATC GCC ACG AAT GAG CGC AAT CGG GCG CAA AAG CGG AAG CAA 255 His Trp Ile Ala Thr Asn Glu Arg Asn Arg Ala Gln Lys Arg Lys Gln 50 55 60 GTG TAT TAT TTG TCG ATC GAG TTT TTA TTG GGC CGG TTG CTC GGC AGC 303 Val Tyr Tyr Leu Ser Ile Glu Phe Leu Leu Gly Arg Leu Leu Gly Ser 65 70 75 AAC TTA TTA AAC CTT GGT GTC CGT CAG GTC GTT GAA GAG GGG CTT CGC 351 Asn Leu Leu Asn Leu Gly Val Arg Gln Val Val Glu Glu Gly Leu Arg 80 85 90 GAT CTC GGC ATT CGT CTT GAA GAT GTC GAG GAG AGC GAG GCG GAT GCC 399 Asp Leu Gly Ile Arg Leu Glu Asp Val Glu Glu Ser Glu Ala Asp Ala 95 100 105 110 GGG CTT GGC AAC GGC GGA CTC GGG CGG CTC GCC GCC TGT TTT CTC GAT 447 Gly Leu Gly Asn Gly Gly Leu Gly Arg Leu Ala Ala Cys Phe Leu Asp 115 120 125 TCG CTG GCG ACG TTG AAT TTG CCG GGC CAT GGC CAT GGC ATC CGC TAT 495 Ser Leu Ala Thr Leu Asn Leu Pro Gly His Gly His Gly Ile Arg Tyr 130 135 140 AAA CAC GGG CTG TTT GAC CAA AAG ATC GTC GAT GGC TAT CAA GTC GAG 543 Lys His Gly Leu Phe Asp Gln Lys Ile Val Asp Gly Tyr Gln Val Glu 145 150 155 CTG CCT CAG CAA TGG CTG CGC CAC GGA AAC GTT TGG GAA ATA CGA AAA 591 Leu Pro Gln Gln Trp Leu Arg His Gly Asn Val Trp Glu Ile Arg Lys 160 165 170 GAG GAG CTG GCT GTC GAG GTC AAT TTT TGG GGG AAG GTT GAG GTG TAC 639 Glu Glu Leu Ala Val Glu Val Asn Phe Trp Gly Lys Val Glu Val Tyr 175 180 185 190 GAA CAA AAC GGG TGC CTC GTC TTC CGC CAT ATC GAC AGC AAA AAA GTG 687 Glu Gln Asn Gly Cys Leu Val Phe Arg His Ile Asp Ser Lys Lys Val 195 200 205 ATG GCG GTG CCA TAC GAC ATG CCC GTG ATC GGC TAC GGG ACG AAC ACG 735 Met Ala Val Pro Tyr Asp Met Pro Val Ile Gly Tyr Gly Thr Asn Thr 210 215 220 GTC AAT ACG CTG CGG CTT TGG AAC GCG GAG CCG GCG AAA ACG TTC CCG 783 Val Asn Thr Leu Arg Leu Trp Asn Ala Glu Pro Ala Lys Thr Phe Pro 225 230 235 CTT CAT AAG GAT GTC ATG CAA TAC AAG CGG GAG ACA GAA GCA ATT TCC 831 Leu His Lys Asp Val Met Gln Tyr Lys Arg Glu Thr Glu Ala Ile Ser 240 245 250 GAA TTT TTA TAC CCG GAT GAT GCG CAT GAC GAA GGG AAA ATT TTG CGC 879 Glu Phe Leu Tyr Pro Asp Asp Ala His Asp Glu Gly Lys Ile Leu Arg 255 260 265 270 TTG AAG CAG CAA TAT TTT CTC GTG GCC GCC AGC CTT GGC AGC ATC GTG 927 Leu Lys Gln Gln Tyr Phe Leu Val Ala Ala Ser Leu Gly Ser Ile Val 275 280 285 CGC GCC CAT CGC CTT CAG CAC GGG AAC CTA CAC CAG CTT CAT GAA TAT 975 Arg Ala His Arg Leu Gln His Gly Asn Leu His Gln Leu His Glu Tyr 290 295 300 GTC GCC ATT CAT GTA AAC GAC ACT CAT CCG GTG TTG GCG ATT CCG GAA 1023 Val Ala Ile His Val Asn Asp Thr His Pro Val Leu Ala Ile Pro Glu 305 310 315 CTA ATG CGC ATT TTG CTC GAT GAG GAA GGC ATG AGT TGG GAA GAA GCG 1071 Leu Met Arg Ile Leu Leu Asp Glu Glu Gly Met Ser Trp Glu Glu Ala 320 325 330 TGG CAC ATT ACG ACC CAT ACG ATC GCT TAC ACA AAC CAT ACG ACG TTA 1119 Trp His Ile Thr Thr His Thr Ile Ala Tyr Thr Asn His Thr Thr Leu 335 340 345 350 TCC GAG CGC TTG AGA ATG GCG ATT CAT TTA TTT CAG CCG CTC TTG CCG 1167 Ser Glu Arg Leu Arg Met Ala Ile His Leu Phe Gln Pro Leu Leu Pro 355 360 365 CGC ATT TAT ATG ATC GTC GAG GAA ATT AAC GAA CGA TTT TGC CGT GAG 1215 Arg Ile Tyr Met Ile Val Glu Glu Ile Asn Glu Arg Phe Cys Arg Glu 370 375 380 CTA TGG GAA CGC TAC CCC GGC GAT TGG GGG CGG ATT GAA CAA ATG GCC 1263 Leu Trp Glu Arg Tyr Pro Gly Asp Trp Gly Arg Ile Glu Gln Met Ala 385 390 395 ATT ATC GCC CAT GGC GTG GTG AAA ATG GCG CAT TTG GCC ATC GCC GGC 1311 Ile Ile Ala His Gly Val Val Lys Met Ala His Leu Ala Ile Ala Gly 400 405 410 AGC CAT AGC GTC AAC GGA GTG GCG AAG CTG CAT ACA GAA ATT TTG AAA 1359 Ser His Ser Val Asn Gly Val Ala Lys Leu His Thr Glu Ile Leu Lys 415 420 425 430 CAG CGG GAA ATG CGC TTG TTT TAC GAA TGG GCG CCG CAC AAG TTT AAC 1407 Gln Arg Glu Met Arg Leu Phe Tyr Glu Trp Ala Pro His Lys Phe Asn 435 440 445 AAT AAA ACG AAC GGG GTG ACG CAT CGA CGT TGG CTG TTA AAA GCG AAC 1455 Asn Lys Thr Asn Gly Val Thr His Arg Arg Trp Leu Leu Lys Ala Asn 450 455 460 CCC GAG CTG TCG GCG TTG ATT ACC GAC ACG ACC GGT TCG CGC TGG ATT 1503 Pro Glu Leu Ser Ala Leu Ile Thr Asp Thr Thr Gly Ser Arg Trp Ile 465 470 475 CAC GAG CCG GAA ACA CTG ATC GAG CTG AAA CCG CAT GCC TCC GAT CCG 1551 His Glu Pro Glu Thr Leu Ile Glu Leu Lys Pro His Ala Ser Asp Pro 480 485 490 GCG TTC CAG CAG GCG CTT TCG GCC GTT AAG CAG CAG CGC AAA GGC AAG 1699 Ala Phe Gln Gln Ala Leu Ser Ala Val Lys Gln Gln Arg Lys Gly Lys 495 500 505 510 CTC GCT GCC CGC ATT TAT GAA AAG ACC GGG ATC CGT GTT GAT GAG TCG 1647 Leu Ala Ala Arg Ile Tyr Glu Lys Thr Gly Ile Arg Val Asp Glu Ser 515 520 525 TCC ATC TTT GAT GTG CAA GTG AAG CGG CTG CAC GCC TAC AAA CGA CAG 1695 Ser Ile Phe Asp Val Gln Val Lys Arg Leu His Ala Tyr Lys Arg Gln 530 535 540 CTG TTG AAT GTA CTG CAC ATT ATG TAT CTA TAC AAT CGT CTA AAA GAA 1743 Leu Leu Asn Val Leu His Ile Met Tyr Leu Tyr Asn Arg Leu Lys Glu 545 550 555 GAC CCG CAC TTC TCG ATT TAC CCA CGC ACG TTC ATC TTC GGA GCG AAA 1791 Asp Pro His Phe Ser Ile Tyr Pro Arg Thr Phe Ile Phe Gly Ala Lys 560 565 570 GCG TCG CCT GGC TAC TAT TAC GCC AAG CGA ATC ATT AAG CTG ATT CAT 1839 Ala Ser Pro Gly Tyr Tyr Tyr Ala Lys Arg Ile Ile Lys Leu Ile His 575 580 585 590 TCG GTT GCC GAT AAG GTG AAC AAT GAC AAA CAG ACG AAC GAG CAG CTC 1887 Ser Val Ala Asp Lys Val Asn Asn Asp Lys Gln Thr Asn Glu Gln Leu 595 600 605 AAA GTC ATT TTT TTA GAA AAC TAT CGC GTG TCG CTT GCG GAG GAA ATT 1935 Lys Val Ile Phe Leu Glu Asn Tyr Arg Val Ser Leu Ala Glu Glu Ile 610 615 620 TTC CCG GCT GCT GAT GTG AGC GAA CAA ATT TCA ACC GCG AGC ATA GAG 1983 Phe Pro Ala Ala Asp Val Ser Glu Gln Ile Ser Thr Ala Ser Ile Glu 625 630 635 GCG TCC GGG ACG GGC AAC ATG AAA TTT ATG ATG AAC GGG GCG CTC ACG 2031 Ala Ser Gly Thr Gly Asn Met Lys Phe Met Met Asn Gly Ala Leu Thr 640 645 650 CTC GGA ACG CTC GAT GGA GCG AAC GTC GAA ATC GCT GAA GCG GTC GGA 2079 Leu Gly Thr Leu Asp Gly Ala Asn Val Glu Ile Ala Glu Ala Val Gly 655 660 665 670 AAA GAA AAT ATG TTT TTG TTC GGG CTG ACC GCC GAA GAA GTG CTG AAC 2127 Lys Glu Asn Met Phe Leu Phe Gly Leu Thr Ala Glu Glu Val Leu Asn 675 680 685 TAC TAC GAA CAC GGC GGT TAC CGG GCG CAT GAA TAT TAC CAC CAC GAC 2175 Tyr Tyr Glu His Gly Gly Tyr Arg Ala His Glu Tyr Tyr His His Asp 690 695 700 AAA CGG ATT AAA CAA GTG GTC GAT CAA CTT GTG AAC GGC TTT TTC CCT 2223 Lys Arg Ile Lys Gln Val Val Asp Gln Leu Val Asn Gly Phe Phe Pro 705 710 715 GAT GTT GCT GAT TAC TTT GAG CCG ATT TAC GAC TCC TTG CTG ACG CAA 2271 Asp Val Ala Asp Tyr Phe Glu Pro Ile Tyr Asp Ser Leu Leu Thr Gln 720 725 730 AAC GAC GAA TAT TTC GTT CTG CGC GAC TTT GCC GCT TAT ACC GAA GCG 2319 Asn Asp Glu Tyr Phe Val Leu Arg Asp Phe Ala Ala Tyr Thr Glu Ala 735 740 745 750 CAT GAG CGG GTG GAG GCC GCT TAC CGC GAC CCG GCA CGC TGG TGG TAT 2367 His Glu Arg Val Glu Ala Ala Tyr Arg Asp Pro Ala Arg Trp Trp Tyr 755 760 765 ATG AGC GCG GTC AAC ATC GCG CAC TCC GGC TAC TTT GCA AGC GAC CGG 2415 Met Ser Ala Val Asn Ile Ala His Ser Gly Tyr Phe Ala Ser Asp Arg 770 775 780 ACG ATC GCC GAG TAC GCC GTC GAT ATT TGG GGC ATT TCA CCA TCG ATG 2463 Thr Ile Ala Glu Tyr Ala Val Asp Ile Trp Gly Ile Ser Pro Ser Met 785 790 795 798 TGAGGCAAAA GCAAAATCAA GGGCGGTTGC GCACCAGTCA AGAAGTTTGG TGAATCACGG 2523 TTGCTGACCT TGATTGGGCG GCAACGGCAT GAACAGAAAA GAGACGTTCT GAACCAA 2580[SEQ ID NO: 4] Sequence length: 2580 Sequence type: nucleic acid Number of strands: double-stranded Topology: linear Sequence type: Genomic DNA Origin Organism: Bacillus stearothermophilus Strain: TRBE14 Sequence GTTGGCGTCG GTCGGCAAAC CAATATAAAC AAGCCTATGA ACAGCTGATC AAAAAGGAGG 60 AGCACACGC TTG TTC ACG GAT AAA GAA ACG TTT AAA CAG GCG TTT TTG ATA 111 Met Phe Thr Asp Lys Glu Thr Phe Lys Gln Ala Phe Leu Ile 1 5 10 CGG TGC GTC AGC TGG GAG TCG ACG ACG CGC 159 Arg Leu Glu Thr Leu Cys Gly Lys Gln Phe Glu Glu Ser Thr Thr Arg 15 20 25 30 GAC CAT TAT TAT GTG CTT GGT CAT ATG GTA CGT GAA CAT ATT AGC CGC 207 Asp His Tyr Tyr Val Leu Gly His Met Val Arg Glu His Ile Ser Arg 35 40 45 CAT TGG ATC GCC ACG AAT GAG CGC AAT CGG GCG CAA AAG CGG AAG CAA 255 His Trp Ile Ala Thr Asn Glu Arg Asn Arg Ala Gln Lys Arg Lys Gln 50 55 60 GTG TAT TAT TTG TCG ATC GAG TTT TTA TTG GGC CGG TTG CTC GGC AGC 303 Val Tyr Tyr Leu Ser Ile Glu Phe Leu Leu Gly Arg Leu Leu Gly Ser 65 70 75 AAC TTA TTA AAC CTT GGT GTC CGT CAG GTC GTT GAA GAG GGG CTT CGC 351 Asn Leu Leu Asn Leu Gly Val Arg Gln Val Val Glu Glu Gly Leu Arg 80 85 90 GAT CTC GGC ATT CGT CTT GAA GAT GTC GAG GAG AGC GAG GCG GAT GCC 399 Asp Leu Gly Ile Arg Leu Glu Asp Val Glu Glu Ser Glu Ala Asp Ala 95 100 105 110 GGG CTT GGC AAC GGC GGA CTC GGG CGG CTC GCC GCC TGT TTT CTC GAT 447 Gly Leu Gly Asn Gly Gly Leu Gly Arg Leu Ala Ala Cys Phe Leu Asp 115 120 125 TCG CTG GCG ACG TTG AAT TTG CCG GGC CAT GGC CAT GGC ATC CGC TAT 495 Ser Leu Ala Thr Leu Asn Leu Pro Gly His Gly His Gly Ile Arg Tyr 130 135 140 AAA CAC GGG CTG TTT GAC CAA AAG ATC GTC GAT GGC TAT CAA GTC GAG 543 Lys His Gly Leu Phe Asp Gln Lys Ile Val Asp Gly Tyr Gln Val Glu 145 150 155 CTG CCT CAG CAA TGG CTG CGC CAC GGA AAC GTT TGG GAA ATA CGA AAA 591 Leu Pro Gln Gln Trp Leu Arg His Gly Asn Val Trp Glu Ile Arg Lys 160 165 170 GAG GAG CTG GCT GTC GAG GTC AAT TTT TGG GGG AAG GTT GAG GTG TAC 639 Glu Glu Leu Ala Val Glu Val Asn Phe Trp Gly Lys Val Glu Val Tyr 175 180 185 190 GAA CAA AAC GGG TGC CTC GTC TTC CGC CAT ATC GAC AGC AAA AAA GTG 687 Glu Gln Asn Gly Cys Leu Val Phe Arg His Ile Asp Ser Lys Lys Val 195 200 205 ATG GCG GTG CCA TAC GAC ATG CCC GTG ATC GGC TAC GGG ACG AAC ACG 735 Met Ala Val Pro Tyr Asp Met Pro Val Ile Gly Tyr Gly Thr Asn Thr 210 215 220 GTC AAT ACG CTG CGG CTT TGG AAC GCG GAG CCG GCG AAA ACG TTC CCG 783 Val Asn Thr Leu Arg Leu Trp Asn Ala Glu Pro Ala Lys Thr Phe Pro 225 230 235 CTT CAT AAG GAT GTC ATG CAA TAC AAG CGG GAG ACA GAA GCA ATT TCC 831 Leu His Lys Asp Val Met Gln Tyr Lys Arg Glu Thr Glu Ala Ile Ser 240 245 250 GAA TTT TTA TAC CCG GAT GAT GCG CAT GAC GAA GGG AAA ATT TTG CGC 879 Glu Phe Leu Tyr Pro Asp Asp Ala His Asp Glu Gly Lys Ile Leu Arg 255 260 265 270 TTG AAG CAG CAA TAT TTT CTC GTG GCC GCC AGC CTT GGC AGC ATC GTG 927 Leu Lys Gln Gln Tyr Phe Leu Val Ala Ala Ser Leu Gly Ser Ile Val 275 280 285 CGC GCC CAT CGC CTT CAG CAC GGG AAC CTA CAC CAG CTT CAT GAA TAT 975 Arg Ala His Arg Leu Gln His Gly Asn Leu His Gln Leu His Glu Tyr 290 295 300 GTC GCC ATT CAT GTA AAC GAC ACT CAT CCG GTG TTG GCG ATT CCG GAA 1023 Val Ala Ile His Val Asn Asp Thr His Pro Val Leu Ala Ile Pro Glu 305 310 315 CTA ATG CGC ATT TTG CTC GAT GAG GAA GGC ATG AGT TGG GAA GAA GCG 1071 Leu Met Arg Ile Leu Leu Asp Glu Glu Gly Met Ser Trp Glu Glu Ala 320 325 330 TGG CAC ATT ACG ACC CAT ACG ATC GCT TAC ACA AAC CAT ACG TCGTA 1119 Trp His Ile Thr Thr His Thr Ile Ala Tyr Thr Asn His Thr Thr Leu 335 340 345 345 350 TCC GAG CGC TTG AGA ATG GCG ATT CAT TTA TTT CAG CCG CTC TTG CCG 1167 Ser Glu Arg Leu Arg Met Ala Ile His Leu Phe Gln Pro Leu Leu Pro 355 360 365 CGC ATT TAT ATG ATC GTC GAG GAA ATT AAC GAA CGA TTT TGC CGT GAG 1215 Arg Ile Tyr Met Ile Val Glu Glu Ile Asn Glu Arg Phe Cys Arg Glu 370 375 380 CTA TGG GAA CGC TAC CCC GGC GAT TGG GGG CGG ATT GAA CAA ATG GCC 1263 Leu Trp Glu Arg Tyr Pro Gly Asp Trp Gly Arg Ile Glu Gln Met Ala 385 390 395 ATT ATC GCC CAT GGC GTG GTG AAA ATG GCG CAT TTG GCC ATC GCC GGC 1311 Ile Ile Ala His Gly Val Val Lys Met Ala His Leu Ala Ile Ala Gly 400 405 410 AGC CAT AGC GTC AAC GGA GTG GCG AAG CTG CAT ACA GAA ATT TTG AAA 1359 Ser His Ser Val Asn Gly Val Ala Lys Leu His Thr Glu Ile Leu Lys 415 420 425 430 CAG CGG GAA ATG CGC TTG TTT TAC GAA TGG GCG CCG CAC AAG TTT AAC 1407 Gln Arg Glu Met Arg Leu Phe Tyr Glu Trp Ala Pro His Lys Phe Asn 435 440 445 445 AAT AAA ACG AAC GGG GTG ACG CAT CGA CGT TGG CTG TTA AAA GCG AAC 1455 Asn Lys Thr Asn Gly Val Thr His Arg Arg Trp Leu Leu Lys Ala Asn 450 455 460 CCC GAG CTG TCG GCG TTG ATT ACC ACC GAC ACG ACC GGT TCG CGC TGG ATT 1503 Pro Glu Leu Ser Ala Leu Ile Thr Asp Thr Thr Gly Ser Arg Trp Ile 465 470 475 CAC GAG CCG GAA ACA CTG ATC GAG CTG AAA CCG CAT GCC TCC GAT CCG 1551 His Glu Pro Glu Thr Leu Ile Glu Leu Lys Pro His Ala Ser Asp Pro 480 485 490 GCG TTC CAG CAG GCG CTT TCG GCC GTT AAG CAG CAG CGC AAA GGC AAG 1699 Ala Phe Gln Gln Ala Leu Ser Ala Val Lys Gln Gln Arg Lys Gly Lys 495 500 505 510 CTC GCT GCC CGC ATT TAT GAA AAG ACC GGG ATC CGT GTT GA T GAG TCG 1647 Leu Ala Ala Arg Ile Tyr Glu Lys Thr Gly Ile Arg Val Asp Glu Ser 515 520 525 TCC ATC TTT GAT GTG CAA GTG AAG CGG CTG CAC GCC TAC AAA CGA CAG 1695 Ser Ile Phe Asp Val Gln Val Lys Arg Leu His Ala Tyr Lys Arg Gln 530 535 540 CTG TTG AAT GTA CTG CAC ATT ATG TAT CTA TAC AAT CGT CTA AAA GAA 1743 Leu Leu Asn Val Leu His Ile Met Tyr Leu Tyr Asn Arg Leu Lys Glu 545 550 555 GAC CCG CAC TTC TCG ATT TAC CCA CGC ACG TTC ATC TTC GGA GCG AAA 1791 Asp Pro His Phe Ser Ile Tyr Pro Arg Thr Phe Ile Phe Gly Ala Lys 560 565 570 GCG TCG CCT GGC TAC TAT TAC GCC AAG CGA ATC ATT AAG CTG ATT CAT 1839 Ala Ser Pro Gly Tyr Tyr Tyr Ala Lys Arg Ile Ile Lys Leu Ile His 575 580 585 590 TCG GTT GCC GAT AAG GTG AAC AAT GAC AAA CAG ACG AAC GAG CAG CTC 1887 Ser Val Ala Asp Lys Val Asn Asn Asp Lys Gln Thr Asn Glu Gln Leu 595 600 605 AAA GTC ATT TTT TTA GAA AAC TAT CGC GTG TCG CTT GCG GAG GAA ATT 1935 Lys Val Ile Phe Leu Glu Asn Tyr Arg Val Ser Leu Ala Glu Glu Ile 610 615 620 620 TTC CCG GCT GCT GAT GTG AGC GAA CAA ATT TCA ACC GCG AGC ATA GAG 1983 Phe Pro Ala Ala Asp Val Ser Glu Gln Ile Ser Thr Ala Ser Ile Glu 625 630 635 GCG TCC GGG ACG GGC AAC ATG AAA TTT ATG ATG AAC GGG GCG CTC ACG 2031 Ala Ser Gly Thr Gly Asn Met Lys Phe Met Met Asn Gly Ala Leu Thr 640 645 650 650 CTC GGA ACG CTC GAT GGA GCG AAC GTC GAA ATC GCT GAA GCG GTC GGA 2079 Leu Gly Thr Leu Asp Gly Ala Asn Val Glu Ile Ala Glu Ala Val Gly 655 660 665 670 AAA GAA AAT ATG TTT TTG TTC GGG CTG ACC GCC GAA GAA GTG CTG AAC 2127 Lys Glu Asn Met Phe Leu Phe Gly Leu Thr Ala Glu Glu Val Leu Asn 675 680 685 TAC TAC GAA CAC GGC GGT TAC CGG GCG CAT GAA TAT TAC CAC CAC GAC 2175 Tyr Tyr Glu His Gly Gly Tyr Arg Ala His Glu Tyr Tyr His His Asp 690 695 700 AAA CGG ATT AAA CAA GTG GTC GAT CAA CTT GTG AAC GGC TTT TTC CCT 2223 Lys Arg Ile Lys Gln Val Val Asp Gln Leu Val Asn Gly Phe Phe Pro 705 710 715 GAT GTT GCT GAT TAC TTT GAG CCG ATT TAC GAC TCC TTG CTG ACG CAA 2271 Asp Val Ala Asp Tyr Phe Glu Pro Ile Tyr Asp Ser Leu Leu Thr Gln 720 725 730 AAC GAC GAA TAT TTC GTT CTG CGC GAC TTT GCC GCT TAT ACC GAA GCG 2319 Asn Asp Glu Tyr Phe Val Leu Arg Asp Phe Ala Ala Tyr Thr Glu Ala 735 740 745 750 750 CAT GAG CGG GTG GAG GCC GCT TAC CGC GAC CCG GCA CGC TGG TGG TAT 23 His Glu Arg Val Glu Ala Ala Tyr Arg Asp Pro Ala Arg Trp Trp Tyr 755 760 765 765 ATG AGC GCG GTC AAC ATC GCG CAC TCC GGC TAC TTT GCA AGC GAC CGG 2415 Met Ser Ala Val Asn Ile Ala His Ser Gly Tyr Phe Ala Ser Asp Arg 770 775 780 ACG ATC GCC GAG TAC GCC GTC GAT ATT TGG GGC ATT TCA CCA TCG ATG 2463 Thr Ile Ala Glu Tyr Ala Val Asp Ile Trp Gly Ile Ser Pro Ser Met 785 790 790 795 798 TGAGGCAAAA GCAAAATCAA GGGCGGAGTCGCGCGTGCAGGCTCGC TGATTGGGCG GCAACGGCAT GAACAGAAAA GAGACGTTCT GAACCAA 2580
【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]
【図１】ホスホリラーゼを用いたG-1-Pの生成、および
サイクロアミロース生成の概念を示す模式図である。FIG. 1 is a schematic diagram showing the concept of G-1-P production using phosphorylase and cycloamylose production.
【図２】(a)はバチルスサチルス由来のグリコーゲン生
合成系遺伝子群を示し、(b)はバチルスステアロサーモ
フィラスTRBE14株由来のグリコーゲン生合成系遺伝子群
を示す。FIG. 2 (a) shows a group of glycogen biosynthesis genes derived from Bacillus subtilis, and FIG. 2 (b) shows a group of glycogen biosynthesis genes derived from Bacillus stearothermophilus TRBE14 strain.
【図３】精製した耐熱性ホスホリラーゼをSDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動した結果を示す。FIG. 3 shows the results of SDS polyacrylamide gel electrophoresis of purified thermostable phosphorylase.
【図４】耐熱性ホスホリラーゼの至適pHを示したグラフ
である。FIG. 4 is a graph showing the optimum pH of a thermostable phosphorylase.
【図５】耐熱性ホスホリラーゼのpH安定性を示したグラ
フである。FIG. 5 is a graph showing the pH stability of thermostable phosphorylase.
【図６】耐熱性ホスホリラーゼの反応至適温度を示した
グラフである。FIG. 6 is a graph showing the optimal reaction temperature of thermostable phosphorylase.
【図７】耐熱性ホスホリラーゼの耐熱性を示したグラフ
である。FIG. 7 is a graph showing the thermostability of thermostable phosphorylase.
【図８】耐熱性ホスホリラーゼを用い、モチトウモロコ
シデンプンからのグルコース-1-リン酸の生産を経時的
に定量したグラフである。FIG. 8 is a graph quantifying the production of glucose-1-phosphate from waxy maize starch over time using thermostable phosphorylase.
【図９】耐熱性ホスホリラーゼを用い、グルコース-1-
リン酸からのアミロースの生産を経時的に定量したグラ
フである。FIG. 9: Glucose-1-using thermostable phosphorylase
It is the graph which quantified the production of amylose from phosphoric acid over time.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:19） ──────────────────────────────────────────────────続 き Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification number Agency reference number FI Technical display location C12R 1:19)
Claims (21)
リン酸； ２)至適温度：50℃； ３)耐熱性：60℃においても耐熱性であり；および ４)pH安定性：pH6.5〜11；を有する、ホスホリラーゼ。1. A phosphorylase having the following properties: 1) Substrate specificity: α-1,4-glucan or glucose-1-
Phosphoric acid; 2) optimal temperature: 50 ° C .; 3) heat resistance: heat resistant even at 60 ° C .; and 4) pH stability: pH 6.5-11.
位のMetまでのアミノ酸配列を有する、請求項１に記載
のホスホリラーゼ。2. 798 from Met at position 1 of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing
The phosphorylase according to claim 1, which has an amino acid sequence up to the Met position.
位のMetまでのアミノ酸配列中の１またはそれ以上のア
ミノ酸の欠失、置換、あるいは付加による変異を有する
ホスホリラーゼであって、該変異を含むホスホリラーゼ
が、該変異を含まないホスホリラーゼと同等またはそれ
以上の比活性および耐熱性を有する、請求項１に記載の
ホスホリラーゼ。3. 798 from Met at position 1 of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing
A phosphorylase having a mutation due to deletion, substitution, or addition of one or more amino acids in the amino acid sequence up to the Met position, wherein the phosphorylase containing the mutation is equal to or more than a phosphorylase not containing the mutation The phosphorylase according to claim 1, which has a specific activity and thermostability.
アロサーモフィラスTRBE14株由来である、請求項１に記
載のホスホリラーゼ。4. The phosphorylase according to claim 1, wherein the phosphorylase is derived from Bacillus stearothermophilus TRBE14 strain.
のホスホリラーゼであって、比活性が大腸菌ホスホリラ
ーゼよりも高い、ホスホリラーゼ。5. The phosphorylase according to claim 2, which has a higher specific activity than Escherichia coli phosphorylase.
リラーゼの少なくとも９倍である、請求項２または３の
いずれかの項に記載のホスホリラーゼ。6. The phosphorylase according to claim 2, wherein the specific activity is at least 9 times that of E. coli glycogen phosphorylase.
位のMetまでのアミノ酸配列をコードする配列を含む、
ホスホリラーゼ遺伝子。7. 798 from Met at position 1 of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing
Including a sequence encoding the amino acid sequence up to the Met position,
Phosphorylase gene.
列番号４に記載のDNA配列である、ホスホリラーゼ遺伝
子。8. The phosphorylase gene, wherein the phosphorylase gene is a DNA sequence represented by SEQ ID NO: 4 in the sequence listing.
位のMetまでのアミノ酸配列中の１またはそれ以上のア
ミノ酸の欠失、置換、あるいは付加による変異を有する
ホスホリラーゼであって、該変異を含むホスホリラーゼ
が、該変異を含まないホスホリラーゼと同等またはそれ
以上の比活性および耐熱性を有するホスホリラーゼをコ
ードする遺伝子。9. 798 from Met at position 1 of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing
A phosphorylase having a mutation due to deletion, substitution, or addition of one or more amino acids in the amino acid sequence up to the Met position, wherein the phosphorylase containing the mutation is equal to or more than a phosphorylase not containing the mutation A gene encoding a phosphorylase having specific activity and thermostability.
マーのセットを用いてPCRにより増幅される、ホスホリ
ラーゼ遺伝子を含むDNA。10. A DNA containing a phosphorylase gene, which is amplified by PCR using the primer sets of SEQ ID NOs: 2 and 3 in the sequence listing.
の耐熱性ホスホリラーゼ遺伝子を含有する発現ベクタ
ー。An expression vector comprising the thermostable phosphorylase gene according to any one of claims 7 to 10.
質転換された微生物。A microorganism transformed with the expression vector according to claim 11.
１２に記載の形質転換微生物。13. The transformed microorganism according to claim 12, wherein said microorganism is a prokaryote.
２に記載の形質転換微生物。14. The method of claim 1, wherein said microorganism is a mesophilic bacterium.
3. The transformed microorganism according to 2.
る、請求項１３に記載の形質転換微生物。15. The transformed microorganism according to claim 13, wherein the prokaryote is Escherichia coli.
生物を培養する工程、60℃以上に加熱する工程、および
該培養により生産されたホスホリラーゼを回収、精製す
る工程を含む、耐熱性ホスホリラーゼの製造方法。16. A method for producing a thermostable phosphorylase, comprising: culturing the transformed microorganism according to claim 11, heating to 60 ° C. or higher, and collecting and purifying the phosphorylase produced by the culturing. Production method.
ある、請求項１６に記載の方法。17. The method according to claim 16, wherein the transformed microorganism is a mesophilic bacterium.
hia coliである、請求項１６に記載の方法。18. The method according to claim 18, wherein the transformed microorganism is Escheric.
17. The method according to claim 16, which is hia coli.
収、精製されたホスホリラーゼ。19. A phosphorylase recovered and purified by the method according to claim 16.
載のホスホリラーゼを用いてα-グルカンを加リン酸分
解する工程を含む、グルコース-1-リン酸を生成する方
法。20. A method for producing glucose-1-phosphate, comprising a step of phosphorylating α-glucan using the phosphorylase according to any one of claims 1 to 3.
質として、請求項１ないし３に記載のホスホリラーゼを
作用させる工程を含む、α-グルカンの合成方法。21. A method for synthesizing α-glucan, comprising the step of reacting the phosphorylase according to claim 1 with a saccharide and glucose-1-phosphate as a substrate.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8176231A JPH1014580A (en) | 1996-07-05 | 1996-07-05 | Heat-resistant phosphorylase and its production |
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| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8176231A JPH1014580A (en) | 1996-07-05 | 1996-07-05 | Heat-resistant phosphorylase and its production |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH1014580A true JPH1014580A (en) | 1998-01-20 |
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ID=16009934
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP8176231A Pending JPH1014580A (en) | 1996-07-05 | 1996-07-05 | Heat-resistant phosphorylase and its production |
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| Country | Link |
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Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6764841B2 (en) | 2001-02-02 | 2004-07-20 | Kao Corporation | Production process of glucose-1-phosphate |
| WO2004113525A1 (en) * | 2003-06-18 | 2004-12-29 | Ezaki Glico Co., Ltd. | METHOD OF HEAT-STABILIZING α-GLUCAN PHOSPHORYLASE (GP) |
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-
1996
- 1996-07-05 JP JP8176231A patent/JPH1014580A/en active Pending
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| JPWO2004113525A1 (en) * | 2003-06-18 | 2006-08-03 | 江崎グリコ株式会社 | Method for heat-resistant α-glucan phosphorylase (GP) |
| US7569377B2 (en) | 2003-06-18 | 2009-08-04 | Ezaki Glico Co., Ltd. | Method of heat-stabilizing α-glucan phosphorylase(GP) |
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