JPH08502168A

JPH08502168A - ニューロン細胞においてイオンチャンネル誘導活性をもつ栄養因子

Info

Publication number: JPH08502168A
Application number: JP6509300A
Authority: JP
Inventors: フイツシユバツク，ジエラルド・デイ; フオールズ，ダグラス・エル; ローゼン，ケネス・エム; コーフアス，ガブリエル
Original assignee: プレジデント・アンド・フエローズ・オブ・ハーバード・カレツジ
Priority date: 1992-09-29
Filing date: 1993-09-29
Publication date: 1996-03-12
Also published as: EP0663007A1; WO1994008007A1; AU5294693A; AU681095B2; US5665862A; CA2145769A1

Abstract

(57)【要約】本発明は、細胞の表面膜にイオンチャンネルの形成を誘導することができる、ＡＲＩＡと命名された神経栄養因子を単離することに関する。神経栄養因子のアミノ酸配列は、ＥＧＦ様ドメイン、ならびに、ニューロン細胞のような神経系の細胞で発現できる神経栄養因子遺伝子のエキソンの少なくとも一部分によってコードされた第２のアミノ酸配列を含む。神経栄養因子は、従来、同定されたニワトリプリオン様タンパク質とは異なり、本質的に無関係である。

Description

【発明の詳細な説明】ニューロン細胞においてイオンチャンネル誘導活性をもつ栄養因子発明の背景発育する軸索とそれらの標的の間における機能的接触の形成は、ニューロン回路の樹立において必須の段階である。神経筋接合部（ｎｍｊ）においては、他の化学的シナプスにおけると同様、神経伝達物質受容体の数および分散は、シナプス前刺激への応答の決定における臨界因子である。神経筋接合部は、最もよく理解される化学的シナプスである。脳における化学的シナプスについて知られていることの殆どは、最初にまたは最も完全に、神経−筋シナプスにおいて解析された。ｎｍｊにおける伝達物質、アセチルコリン（ＡＣｈ）は、５０年以上前に同定された。ＡＣｈ受容体（ＡＣｈＲ）は、精製された最初の受容体／イオンチャンネルであった。それは、４個の異なる遺伝子によってコードされた４個のサブユニットからなる。ＮＭＪの形成における基本的な出来事は、神経末端と対立する筋膜におけるアセチルコリン受容体（ＡＣｈＲ）の蓄積である。成熟接合部では、受容体は、２０，０００受容体／μｍ²より以上の密度で、シナプス後膜に詰め込まれている。その局在性は、著しく、受容体の７０％以上が、運動終末板、筋表面膜の０．１％未満を含む領域に濃縮されている。運動神経に到達する前に、ニコチン性ＡＣｈＲは、筋繊維の表面上に、比較的均一に分散される。受容体の分散は、１ＭＡＣｈで満たされ、筋表面上の異なる点に置かれた、細胞外ミクロ電極からＡＣｈをイオン電気導入的に適用しながら、細胞内記録電極を用いて筋膜の感受性を測定することによって生理学的に位置づけできる。受容体の分散は、また、放射性ラベルもしくは蛍光色素ラベルされたα−ブンガロトキシン（ＢｇＴｘ）、ニコチン性ＡＣｈＲ（骨格筋中のＡＣｈＲ型）に選択的また殆ど不可逆的に結合するヘビ毒タンパク質を用いるか、またはその受容体の細胞外領域に対するモノクローナル抗体によって眼でみられる。これらのラベル技術は、筋繊維の神経支配後のＡＣｈＲの分散における劇的変化を明らかにする。神経支配部位における受容体濃度には、大きな増加があり、シナプス外部位における受容体の濃度には減少がある。ＡＣｈＲは、神経−筋接触及びシナプス伝達の開始の後わずかな時間内に、発育する接合部に蓄積し始める。この現象は、胚の運動ニューロンおよび筋管を含む細胞培養で広範囲に研究されてきた。個々のシナプスパートナーは、秒から数日にわたる期間において、直接肉眼で見て観察できる。少数のＡＣｈＲおよびＡＣｈＲクラスターが、神経支配を受けてない胚の筋管および筋原細胞上に存在するけれども、内に伸びる運動神経が、先在する受容体を捜し求めるよりも、むしろ新しい受容体クラスターを誘導することが明らかである。（Anderson et al．1977 J．Physiol．268： 757： Frank and Fischbach 1979 J．Cell Biol 83： 142）。少なくとも二つの過程が、発育するシナプス接合部におけるＡＣｈＲの蓄積に寄与する。まず、運動ニューロンが、神経と筋の接触の前に、筋細胞に存在する受容体の凝集を促進するであろう。これらの受容体は、膜の平面内に拡散し、多分、細胞骨格および／または細胞外基質の部位に結合することによって、シナプス部位に固定化されるであろう。第二に、運動ニューロンは、標的筋に対して、シナプスの直ぐ近傍で、新しい受容体の合成と挿入を増大させるであろう。ニワトリのシナプス接合部においては軸索会合、受容体パッチ（ＮＡＲＰ）または新しく生成されたシナプスにおける大多数のＡＣｈＲが、新規に挿入される（Role et al.，1985 J．Neurosci．5： 2197）。運動神経末端は、シナプス後受容体の性質における他の変化を誘発する。例えば、接合部位のＡＣｈＲは、その膜の平面に拡散する能力を失い、徐々にシナプスのその部位に固定される。そのうえ、接合部位のＡＣｈＲは、接合部外の受容体よりもはるかに長い半減期をもつ。ニワトリ胚で新たに生成された終末板に見いだされるＡＣｈＲは、約２４時間の半減期をもち、細胞外受容体の半減期に類似する。シナプス生成後の時間増加につれて、接合部受容体は、ますます安定になり、１２０時間以上の半減期で回転するが、一方接合部外の受容体は安定化されない。また、運動神経は、骨格筋が神経支配された後、ニコチン性ＡＣｈＲの機能的性質における変化を誘導する。ラット胚の筋におけるＡＣｈＲチャンネルは、比較的小さいコンダクタンス（約３０ｐＳ）をもつが、長期間（約５〜１０ｍＳ）開いたままであり、それ故、スローチャンネルと呼ばれてきた。反対に、成熟終末板の接合部受容体は、顕著に大きいコンダクタンス（約５０ｐＳ）をもつが、はるかに短い期間（通常わずか約１ｍＳ）の開放であり、ファーストチャンネルと呼ばれる。成熟哺乳動物の神経筋接合部におけるＡＣｈＲは、α₂βεδの比における４サブユニットからなる５量体のタンパク質複合体である（引用によって明細書に組み込まれるMishina et al．1986 Nature 321： 406；Gu et al．1988 Neeuon 1： 117）。全てではないが殆どの胚ＡＣｈＲが、εサブユニットの代わりに、“γ”と名づけられる異なるサブユニットを含む。α、β、δおよびγサブユニットｍＲＮＡの混合物が、アフリカツメガエルの卵母細胞中に注射される場合には、発現されたチャンネルは、胚の受容体の性質をもつ。εサブユニットをコードしている転写物が、γ−サブユニットと置換される場合には、得られるチャンネルは、成熟動物の受容体の性質をもつ。誕生後最初の２週間に起き、遺伝子発現におけるスイッチに依存する、サブユニット組成のこの変化は、ほぼ同じ時間経過で起きるＡＣｈ−活性化チャンネルの性質におけるスローチャンネルからファーストチャンネルへの切り替えを説明すると考えられる。ＡＣｈＲ分散に対する神経の影響は、シナプス前神経末端によって遊離される拡散性因子により少なくとも一部分は伝達されると思われる。例えば、骨髄移植組織に近接している筋管は、筋管が若干の距離をおいて配置されるよりもイオン電気導入的に適用されるＡＣｈに対して、より感受性があり、より多くの¹²⁵Ｉ −ＢｇＴｘを結合することが示された（Cohen and Fischbach，1977 Devel．Bio l．59： 24）。ＡＣｈの局在的適用に対する応答におけるＡＣｈＲクラスタリングの欠如により、ならびにすべてのＡＣｈＲがクラーレのような薬物によって阻害される場合に受容体のクラスタリングが生じることの観察により証明されるように、アセチルコリン自体はＡＣｈＲのクラスタリング伸びる原因となる分子ではないようであ。受容体挿入速度を増加しそして、初期から成熟型ニコチン性ＡＣｈＲへの変化を促進することができる、推定される栄養因子の同定において進歩がなされている。アセチルコリン受容体誘導活性物質（ＡＲＩＡ）は、成熟ニワトリの脳から部分的に精製されている（Jessell et al.，1979 PNA S 76： 5397； Buc-Caron et al.，1983 Div．Biol．95： 378； Usdin and Fis chbach 1989 J．Cell Biol．103： 493）。その精製は、ラベルされてないＢｇＴｘにより全ての曝された（古い）受容体をブロックした４時間後に、新しい表面膜ＡＣｈＲの出現の初速度を、¹²⁵Ｉ−ＢｇＴｘを用いて測定する感度の高いアッセイ法に基づいていた（Devreotes and Fambrough，1975 J．Cell Biol 65 ： 335）。精製タンパク質は、ＡＣｈＲ合成速度をピコモルの範囲のＫ_appについて数倍高めることが示された。ＡＲＩＡは、タンパク質合成全体を増大するとも、表面の受容体の分解を変えるとも考えられないが、ある種のＡＣｈＲサブユニットｍＲＮＡのレベルに影響することが分かっていた（Harris et al.，1988 PNAS 85： 7669）。この活性物質は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって、見掛けのＭＷ４２ｋｄに中心のある広いバンドとして移動するタンパク質とともに同時に移動することが証明された（Usdin et al.，1986 J．Cell Biol．103： 493）。ニワトリのプリオン類似タンパク質（Ｃｈ−ＰｒＬＰ）が、この活性物質標品における主要なタンパク質であり、明らかに唯一の配列決定し得るタンパク質として出現した（Falls et al．（1990）Cold Spring Harbor Symp．Quant．Biol．55： 397）。Ｎ末端アミノ酸配列の解析に基づき、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドバンドにある、活性のあるタンパク質の化学的に決定された配列の部分に対応する配列をもっているオリゴヌクレオチドが、作出され、ニワトリ胚のｃＤＮＡライブラリーからＣＤＮＡを単離するために使用された。その単離されたｃＤＮＡは、哺乳動物プリオンタンパク質（ＰｒＰｃ）に相同であるニワトリのタンパク質をコードしている。このニワトリのプリオン類似タンパク質（Ｃｈ−ＰｒＬＰ）は、そのアミノ酸位置の３３％においてマウスＰｒＰと同一であることが示され、類似する構造のドメインを含むようであった（引用によって明細書に組み込まれるHarris et al．1991 PNAS 88： 7664）。しかしながら、Ｃｈ−ＰｒＬＰは、発現された場合に活性がなかったし、また抗Ｃｈ−ＰｒＬＰ抗体は、受容体誘導活性物質を沈殿させない。発明の概要本発明は、細胞の表面膜にイオンチャンネルの形成を誘導することができる、ＡＲＩＡと命名された単離された神経栄養因子に関する。神経栄養因子のアミノ酸配列は、ＥＧＦ様ドメイン、ならびに、ニューロン細胞のような神経系の細胞で発現できる神経栄養因子遺伝子のエキソンの少なくとも一部分によってコードされた第２のアミノ酸配列を含む。神経栄養因子は、従来、同定されたニワトリプリオン様ダンパク質とは異なり、本質的に無関係である。本発明の神経栄養因子は、細胞の膜における機能的イオンチャンネル形成の誘導を含む作用スペクトルをもつ。そのようなイオンチャンネルの例は、直接には、アセチルコリン受容体、グルタミン酸受容体、ＧＡＢＡ受容体およびグリシン受容体のようなリガンド・ゲートイオンチャンネルを包含する。例えば、神経栄養因子は、ニコチンＡＣｈＲの数を増加することができ、細胞の表面膜における受容体の蓄積に影響することができる。電圧ゲートイオンチャンネル、例えば、電圧ゲートＮａ⁺チャンネルは、また、ＡＲＩＡ処理によって影響される。また、神経栄養因子は、ムスカリンアセチルコリン受容体のような、間接的リガンド・ゲートイオンチャンネルの機能的イオンチャンネル形成を誘導する。例えば、本発明の神経栄養因子は、機能的なＧタンパク質結合受容体の数を増加できる。本発明の一つの実施態様においては、神経栄養因子の一変異体のアミノ酸配列が、図１に示される（配列番号１）。その因子は、細胞または脳組織のようなその因子を生成する細胞又は組織から、化学合成によって、または組み換えＤＮＡ技術によって、その天然型におけるそれを単離することによって生成することができる。さらに、この発明は、神経栄養因子をコードしている単離された核酸（ＤＮＡもしくはＲＮＡ）、その核酸を含むクローニングまたは発現ベクター、およびこれらのベクターにより形質転換された細胞に関する。本発明のその他の態様は、神経栄養因子に対するモノクローナルおよびポリクローナル抗体を始めとする抗体に向けられる。この発明の神経栄養因子、およびヘレグリン（ｈｅｒｅｇｕｌｉｎ）およびｎｅｕ分化因子（ＮＤＦ）のようなＥＧＦ様アミノ酸配列をもつ関連タンパク質は、作動物質または拮抗物質のいずれかとして使用されて、シナプス後細胞の表面膜において、アセチルコリン受容体のような機能的イオンチャンネルの形成に影響を与える。図の簡単な説明図１Ａ−Ｄは、ニワトリ脳ｃＤＮＡライブラリーからクローン化されたＡＲＩＡのヌクレオチド（配列番号１）およびアミノ酸（配列番号２）配列を表す。数字を付した括弧の配列は、次のとおりである。（１）Ｎｅｘｌ、（２）Ｉｇ様ドメイン、（３）Ｎｅｘ２、（４）ＥＧＦ様ドメイン、（５）トランスメンブラン・ドメイン。トランスメンブラン・ドメインのＣ末端に位置するアミノ酸配列は、ＡＲＩＡの細胞質部分に対応し、一方、トランスメンブラン・ドメインのＮ末端に位置するアミノ酸配列は、細胞外の部分である。Ｎｅｘ１は、大体アミノ酸残基１〜２７を含み、Ｉｇ様ドメインは、残基４５〜１０８を含み、Ｎｅｘ２は、大体アミノ酸残基１１６〜１２７を含み、ＥＧＦ様ドメインは、残基１４１〜１８０を含み、トランスメンブラン・ドメインは、アミノ酸残基２０７〜２２９を含む。図２は、図１Ａ−Ｄのアミノ酸配列に対応するＡＲＩＡの構造ドメインおよび主要素の概略図である。図３は、ニワトリ（配列番号１，２７，２８および２９）およびラット（配列番号３３）からクローン化された明白なＡＲＩＡ変異体のＥＧＦ様アミノ酸配列と、同じくヘレグリン−βおよび−α（配列番号３７および３９）のＥＧＦ様ドメイン、Ｎｅｕ分化因子−βおよび−α（配列番号３８および４０）、ヘパリン結合性ＥＧＦ様成長因子（配列番号４１）、アンフィレグリン（ａｍｐｈｉｒｅｇｕｌｉｎ）（配列番号４２）、神経鞘腫誘発成長因子（配列番号４３）、上皮成長因子（配列番号４４）、および腫瘍壊死因子（配列番号４５）の配列である。発明の詳細な説明アセチルコリン受容体誘導活性物質（ＡＲＩＡ）は、多くのクロマトグラフィー操作を経て、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルにおけるＭＷ４２，０００中心の広いバンドとして移動するタンパク質とともに、ニワトリ脳抽出物から同時精製されることが既に分かっていた（Usdin et al．1986 J．Cell Biol．103：493 ）。ニワトリプリオン様タンパク質は、クローン化され、そしてＡＲＩＡの精製標品において、唯一明らかに配列決定できるタンパク質の、化学的に決定された配列から得られたオリゴヌクレオチドを用いて、ニワトリ脳ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングして同定された（Harris et al．1991 PNAS 88：7664）。明細書に記載されるように、ＡＲＩＡと名付けられた神経栄養因子は、培養筋細胞におけるＡＣｈＲの合成および蓄積を促進する能力に基づいて単離され、クローン化された。本発明の一態様においては、ニワトリ脳抽出物からの内生ＡＲＩＡの精製は、一連の逆相、イオン交換およびサイズ排除クロマトグラフィー操作によって達成された。ごく最近、本発明者らは、ＡＲＩＡが、Ｃｈ−ＰｒＬＰの結合を助けない条件下で、ヘパリンカラム上に保持されることを発見した。ヘパリン精製されたＡＲＩＡから調製されたトリプシン分解画分の部分アミノ酸配列によって、ニワトリｃＤＮＡライブラリーからのタンパク質のクローニングができた。メッセンジャーライブラリーからクローン化された神経栄養因子のヌクレオチド配列、およびその対応するアミノ酸配列は、図１に示される。ニワトリ脳からのヘパリン精製されたＡＲＩＡタンパク質は、この大きいトランスメンブラン前駆体神経栄養因子の細胞外ドメイン内に含有されると信じられる。ＡＲＩＡのアミノ酸配列は、ＡＲＩＡ含有のクロマトグラフィー画分において、これまで同定されたｃｈ−ＰｒＬＰとは完全に区別される。以下に記述するように、ＡＲＩＡ同族体は、また、ラットからクローン化され、ニワトリクローンと多くのドメインの特徴を共有する。クローン化されたｃＤＮＡは、培養哺乳動物細胞において発現され、培養筋細胞におけるＡＣｈＲレベルの増加を誘導できる。ＡＲＩＡをコードしているクローン化されたｃＤＮＡは、ＣＯＳ−７細胞中にトランスフェクションされ、形質転換細胞によって整えられた培地は、骨格筋細胞でのＡＣｈＲ合成を促進する。ＡＣｈＲレベルの有意な増加は、クローン化されたｃＤＮＡに対応するタンパク質が、事実ＡＲＩＡであることを示す。ＡＲＩＡにより処理された細胞においては、全タンパク質合成におけるいかなる有意な増加もなく；むしろ、ＡＲＩＡは、機能的イオンチャンネル受容体、あるいはシナプスで濃縮され、細胞膜のどこか外には一般に少量で存在するその分子の合成および／または数に選択的に影響を与える。例えば、クローン化されたものおよび精製されたもの両方の内生形ＡＲＩＡは、細胞の表面膜のニコチン性アセチルコリン受容体の数の増加を誘導できる。培養ニワトリ、ラット、ヒトまたはマウスのいずれかの筋管にＡＲＩＡを添加すると、筋管培養において、新しいα−ＢｇＴＸ結合部位の出現に、増加を来すことが示された。ｎｍｊのニコチン性ＡＣｈＲに加えて、ＡＲＩＡの作用スペクトルは、化学シナプスに濃縮された広範囲なイオンチャンネルおよびた他の分子の制御を含むであろう。例えば、ＡＲＩＡによって影響されるイオンチャンネルは、ニューロンのニコチン性ＡＣｈＲを含むリガンド・ゲートチャンネル（参照、引用によって明細書に組み込まれるBetz 1990 Neuron 5：383）のスーパーファミリーのメンバーを含むことができる。例えば、部分精製ＡＲＩＡは、ＡＣｈに対する繊毛の神経節ニューロンの応答を増加する。高度に精製されたＡＲＩＡは、以下に検討するように、ＡＣｈＲ合成と密接に関連している繊毛神経節ニューロンの１８５ｋＤタンパク質をリン酸化する。これらの細胞は、同じようなサブユニットを含むので、ニコチン性ＡＣｈＲを表す脳におけるニューロンに対するモデルである。ニコチン性ＡＣｈＲのサブユニットと同じように構成され、有意なアミノ酸の一致をもつリガンド・ゲートイオンチャンネルを形成する中枢神経系（ＣＮＳ）の他の神経伝達物質受容体、例えば、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）、グリシンおよびグルタミン酸に対するアミノ酸受容体は、ＡＲＩＡによって影響を受けることができる。ＧＡＢＡおよびグリシン受容体は、中枢ニューロンにおいて抑制性ボタン（bouton）の下で濃縮され、グルタミン酸受容体は、軸索接触、多分興奮性シナプスにおいて濃縮される。ＡＲＩＡによる処理によって影響されると思われるイオンチャンネルの他の例は、電圧ゲートＮａ⁺チャンネルであり、またイオンチャンネルのリガンド・ゲートファミリーと同じ構造主体をもつ。この効果は、ＡＲＩＡが、培養筋細胞中で、サキシトキシン（ｓａｘｉｔｏｘｉｎ，ＳＴＸ）結合（２倍）およびピーク内部Ｎａ⁺電流を増加することができるという観察によって示唆される（参照、F alls et al．1990 Cold Spring Harbor Symp．Quant．Biol．55：397）。同様に、Ｃａ⁺⁺チャンネルおよびＫ⁺チャンネルを含む他の電圧ゲートイオンチャンネルは、それらがＮａ⁺イオンチャンネルに構造的に関連しているために、ＡＲＩＡによって影響を受ける。また、ＡＲＩＡは、ムスカリンＡＣｈＲのように、Ｇタンパク質結合化学受容体を通して間接的に活性化されるイオンチャンネルに影響できる。このＡＲＩＡの作用は、ＡＲＩＡ含有脳抽出物が、心室の心筋細胞のＡＣｈ応答（参照Siegel et al．1984 Develop．Biol．101：346、引用により本明細書中に組込まれる）を増加させ、その応答は、ムスカリンＡＣｈＲの活性化に因るという観察によって支持される。かくして、明細書に使用される用語“イオンチャンネル”は、電圧ゲート、直接にはリガンドゲート、そして間接的にリガンド・ゲートイオンチャンネルを含むことを意味する。広範囲のイオンチャンネルに特異的であり、ＡＲＩＡの存在および不在において、機能的イオンチャンネルのレベルの決定を可能とするであろう一連の薬剤が、現在では存在する。それ故、特定のイオンチャンネルに対する本発明の神経栄養因子の効果は、容易に評価することができる。ＡＲＩＡは、その生物学的活性が、環境依存的である多機能タンパク質であるというこの理解にたって、発明者らは、本明細書に記載のＡＲＩＡ遺伝子配列に、アンチセンスＲＮＡプローブを用いて元の位置でハイブリダイズさせることによって、神経系におけるＡＲＩＡｍＲＮＡの発現を研究し、上記の各種イオンチャンネルを含めて、ＡＲＩＡの役割を示す発現のパターンを発見した。ラット脳において例示すると、ＡＲＩＡｍＲＮＡは、脳幹および脳半球における多くのコリン作動性ニューロンに存在する。特に、ＡＲＩＡｍＲＮＡは、ＩＩＩ，ＩＶ，Ｖ，ＶＩＩ，ＩＸおよびＸ頭蓋神経の運動核に見出だされた。その半球では、それは、中隔核およびブロカ（Broca）の斜のバンドに豊富にある。これらの観察は、さらに、ＡＲＩＡが、脳皮質（新皮質および海馬）におけるＡＣｈ受容体を制御しており、そのために記憶の形成および回復を亢進するかもしれないという説を支持する。ＡＲＩＡｍＲＮＡは、また、脳における非コリン作動性ニューロンに存在する。例えば、本ＡＲＩＡｍＲＮＡプローブは、橋（pontine）核、他の視床および中脳核の細胞、および小脳の顆粒細胞においてＡＲＩＡメッセージを検出した。これらの発見は、他のイオンチャンネルに影響することにおいて、ＡＲＩＡの役割と一致する。本発明者らは、また、ニワトリＡＲＩＡｃＤＮＡの５’末端へのプローブを用いてニワトリにおけるＡＲＩＡｍＲＮＡ発現の分布を研究した。その結果は、ラットにおいて見出だされた結果に類似する。本発明者らは、ある種のコリン作動性およびある種のコリン非作動性ニューロンが、ＡＲＩＡｍＲＮＡを含み、それらの多くは、ラット脳で標識されたものと相同的構造であることを発見した。さらになお、ＡＲＩＡ発現は、神経組織に限定されない。ラットおよびニワトリの両組織サンプルにおいて、ＡＲＩＡｍＲＮＡレベルは、心内膜、心室を覆う内皮細胞の単層、に非常に高い。胚においては、その内皮細胞は、心臓の初期形成構造を構成し、次いで、その周囲には、心筋層が増殖し、またそこからは、心臓の弁が形成される。、心内膜の機能は、まだ不明であるが、それは、下方の心筋層の働きの重要なモジュレーターを構成することが提案された（Brutsaert，（1989）Annual Rev．Physiol．51：263-273）。心内膜によって生成されるＡＲＩＡは、心筋の成長および分化、ならびにその電気的機械的性質の変調において、ある役割を演じると考えられる。このことは、さらに、ｐ１８５（以下で検討する）が、ＡＲＩＡによる処理に応答して、Ｅ５ニワトリ胚からの筋細胞においてリン酸化されるという観察によって支持される。事実、発生の種々の段階の間のニワトリ脳サンプルにおける標識研究では、分裂促進ならびに成長因子様活性物質を包含できる、イオンチャンネル誘導を超える生物機能におけるＡＲＩＡの幅広い係り合いの考えを支持する。例えば、ＡＲＩＡｍＲＮＡは、ニューロンの数を増やすために存在する。このことは、小脳の顆粒細胞において最も明らかであり、それらが、細胞***を行う外顆粒細胞層（External Granule Cell Layer）におかれる間、ＡＲＩＡｍＲＮＡを発現する。それらは内顆粒細胞層（Internal Granule C ell Layer）、それらが、成熟脳に保持するであろう位置、に移動した直後に、ＡＲＩＡｍＲＮＡを発現し続ける。本発明は、実質的にプリオン様タンパク質を含まない単離されたＡＲＩＡ、およびクローン化されたＡＲＩＡ遺伝子またはその断片の発現によって生成される組み換えＡＲＩＡを、利用可能にする。用語“実質的にプリオン様タンパク質を含まない”は、本明細書では、２０％（乾物重量で）未満プリオン様タンパク質、好ましくは５％未満のプリオン様タンパク質を含むＡＲＩＡ調製物を包含するとして定義される。ＡＲＩＡの機能型は、初めて、明細書記載のクローン化された遺伝子を用いる精製調製物として調製することができる。“精製された”、については、それは、ペプチドまたはＤＮＡまたはＲＮＡ配列に関する場合には、示された分子が、他のタンパク質（特に、他の栄養因子、並びにプリオン様タンパク質）のような、他の生物学的高分子を実質的に含まない状態で存在することを意味する。明細書に使用されるような用語“精製された”は、同じ種類の存在する生物学的高分子の、好ましくは、少なくとも乾物重量で８０％、より好ましくは、９５〜９９重量％、最も好ましくは少なくとも９９．８重量％を意味する（しかし、水、バッファーおよび他の小分子、特に５０００未満の分子量をもつ分子は、存在してもよい）。本明細書に使用される用語“純粋な”は、好ましくは、すぐ上の“精製された”と同じ数字の限定をもつ。本明細書に使用される用語“単離された”は、高分子の天然給源に存在する、それぞれ他のペプチド、ＤＮＡまたはＲＮＡから分離されたペプチド、ＤＮＡまたはＲＮＡ分子を表す。“単離された”および“精製された”は、それらの天然状態での天然物質または成分に分離された（例えば、アクリルアミドゲルにおいて）が、純粋な（例えば、プリオン様タンパク質を欠く）物質または溶液のいずれとしても得られない天然物質、のいずれも包含しない。ＡＲＩＡは、ポストシナプス標的細胞（例えば、筋または神経細胞）の成長のために、細胞培養培地を補足して使用され、数種の神経細胞タイプの混合培養のために、通常、複合操作が必要なイオンチャンネルにおける変化を試験する方法を提供する。例えば、神経栄養因子、またはその活性断片は、ニコチン性ＡＣｈＲの合成を増加させることができ、細胞の表面膜における受容体の蓄積に影響することができる。神経栄養因子は、ニコチン性ＡＣｈＲにおいて、スローからファーストチャンネルへの表現型変化を調節し、同様にその受容体のα−およびε −サブユニットをコードしているｍＲＮＡレベルを増加させることができる。かくして、本発明の神経栄養因子を用いて培養培地を増加できるので、神経支配によって誘発された出来事をさらに明確にすることができる。本発明の神経栄養因子は、既知の技術を用いて抗ＡＲＩＡ抗体を生産するために使用される。ＡＲＩＡに対するモノクローナルおよびポリクローナル抗体（Ａｂ）の両方およびＦａｂおよびＦ（ａｂ）₂のような抗体断片は、ＡＲＩＡの作用をブロックするために使用され、ＡＲＩＡの不在または調節された存在の下で、神経−筋および神経−神経シナプスを発生させることにおいて、軸索会合受容体パッチ（ＮＡＲＰ）の形成の研究を可能とする。例えば、そのような研究は、神経および筋細胞の混合培養において実施することができる。ＮＡＲＰ形成に対する抗ＡＲＩＡ抗体の影響が、また、インタクト胚におけるように、生体内でアッセイすることができる。例えば、精製モノクローナル抗体は、Ｅ５ニワトリ胚の肢節芽中に直接注射することができる。運動軸索が、Ｅ４．５の肢節芽に入り、ＡＣｈＲの最初のクラスターが、Ｅ５の後期のα−ＢｇＴｘにより検出できる。かくして、この発生段階の間の抗ＡＲＩＡ抗体の使用は、生体内での神経−筋シナプスの形成に対するＡＲＩＡの効果の評価を可能にする。同じようなアプローチにおいて、抗ＡＲＩＡモノクローナル抗体を生成するハイブリドーマ、または抗ＡＲＩＡ抗体が懸濁されている生分解性ゲルが、ＡＲＩＡ作用がブロックされることを意図する近接部位またはその領域内に移植される。この天然の実験は、ＮＡＲＰ形成に関与する他の因子の役割を解読することに役立つ。ＡＲＩＡエピトープに特異的に結合する抗体は、また、、組織サンプルの免疫組織化学的染色に使用して、ＡＲＩＡおよびＡＲＩＡ同族体の発現の量およびパターンを評価することができる。抗ＡＲＩＡ抗体は、免疫沈殿および免疫ブロッティングに診断的に使用して、臨床試験法の一部として組織または体液におけるＡＲＩＡを検出しそしてそのレベルを評価することができる。例えば、そのような測定は、神経支配欠如のような、または無為のような兆候によって顕著な、あるいはイオンチャンネルに欠陥があると信じる理由がある場合の、神経学的障害の開始もしくは進行を予測評価するのに有用である。同様に、個人のＡＲＩＡレベルをモニターする能力によって、そのような障害に苦しんでいる個人に与えられる治療の効果を測定することができる。ＡＲＩＡのレベルは、脳髄液のサンプルのような体液において測定できるし、また生検によって行われるように、組織において測定できる。抗ＡＲＩＡ抗体を用いる診断的アッセイは、脳皮質のニコチン性ＡＣｈＲの減少が、この痴呆性障害において生じるので、アルツハイマー病の早期診断に役立つイムノアッセィを包含する。抗ＡＲＩＡ抗体を含む他のイムノアッセイは、重症性筋無力症および筋委縮性側索硬化症の初期段階診断の試験を包含してもよい。抗ＡＲＩＡ抗体のその他の応用は、λｇｔｌ１，λｇｔｌ８−２３、λＺＡＰおよびλＯＲＦ８のような発現ベクターにおいて構築されるｃＤＮＡライブラリーの免疫的スクリーニングにおいてである。正しい読み枠と方向に挿入されたコード配列をもつ、このタイプのメッセンジャーライブラリーは、融合タンパク質を生産できる。例えば、λｇｔ１１は、そのアミノ末端がβ−ガラクトシダーゼアミノ酸配列からなり、そのカルボキシ末端が外来ポリペプチドからなる、融合タンパク質を生産するであろう。次に、ＡＲＩＡの抗原エピトープは、例えば、感染プレートから離されたニトロセルロースフィルターと、抗ＡＲＩＡ抗体とを反応させるように、抗体を用いて検出できる。このアッセイによって記録されたファージは、次いで、感染プレートから単離できる。かくして、ＡＲＩＡおよびＡＲＩＡ同族体の存在が検出され、他の給源からクローン化される。ニワトリもしくはラットのいずれかからのＡＲＩＡが、ヒトを含む他の種の筋管におけるＡＣｈＲ挿入を誘導するであろうという事実は、進化上逆の給源からのＡＲＩＡの同族体間に、ある種の相同性が存在することを示唆する。かくして、ヒト以外の種からのＡＲＩＡに対して生じる抗ＡＲＩＡ抗体を用いて、ヒト融合タンパク質ライブラリーをスクリーニングすることが、また、ヒトＡＲＩＡのクローニングをも可能にする。ニワトリおよびラットの両方からのＡＲＩＡのクローニングにより決定されたヌクレオチド配列は、他の動物、特にヒトにおけるＡＲＩＡ同族体の同定に使用するためにデザインされたプローブの作出を可能とする。例えば、実施例７に記載のように、そのようなプローブは、既知の方法で、メッセンジャーおよびゲノムＤＮＡ両ライブラリーをスクリーニングするために使用して、ＡＲＩＡ同族体をコードするＡＲＩＡ様遺伝子から直示的に生じる相同配列の存在を知ることができる。上記のように、各技術は、ヒトＡＲＩＡの同族体のクローニングを容易にする。さらに、ヌクレオチドプローブは、実施例９記載のようにＡＲＩＡのクローン配列から作出され、ＡＲＩＡｍＲＮＡの存在について、インタクト組織および組織サンプルの組織学的スクリーニングを可能にする。抗ＡＲＩＡ抗体の診断的使用と同様に、ＡＲＩＡｍＲＮＡもしくはゲノムＡＲＩＡ配列に向けられたプローブの使用は、神経学的障害の予防および治療の両評価のために使用される。抗ＡＲＩＡ抗体イムノアッセイと組み合わせて使用して、ヌクレオチドプローブは、ＡＲＩＡに関連するある種の異常を伴う神経学的障害について、分子ベースの決定を容易にする。例えば、ＡＲＩＡ合成における変異が、ＡＲＩＡ代謝における変化と区別される（異化作用の増大のように）。また、抗体阻止実験と同様に、アンチセンス技術の使用（例えば、アンチセンス分子のミクロ注入、またはその転写がＡＲＩＡｍＲＮＡに関してアンチセンスであるプラスミドを用いるトランスフェクション）は、内因性ＡＲＩＡ生産を阻害することによって、調節されたＡＲＩＡ環境におけるシナプス形成を研究するために使用される。そのような技術は、細胞培養に利用されるが、また、トランスジェニック動物の創出にも使用できる。本明細書に記載の神経栄養因子は、イオンチャンネルレベルまたはイオンチャンネル活性の変調が、治療価値をもつ多くの神経学的障害の治療（予防および／または重篤度の軽減）に使用される。用語“神経学的障害”は、変性成長および発生障害、並びに退行性疾病を含む、個人的な疾病もしくは異常状態を包含する。そのような神経学的障害は、中枢神経系もしくは末梢神経系、または両方に影響する。また、例えば、正常な年齢経過から起こるような、記憶の変調および認識機能の低下も含まれる。ＡＲＩＡ作動物質もしくは拮抗物質による治療を受け入れられる神経学的障害は、また、ＡＲＩＡ代謝のレベルが変化し、そのためにイオンチャンネルレベルまたは活性が異常である全ての疾病を包含してもよい。ＡＲＩＡにより治療できる神経学的障害の例は、アルツハイマー病、重症性筋無力症、およびハンチントン病およびパーキンソン病のような疾病に関連する痴呆を包含する。また、末梢神経系の染色体***に最終的に影響し、神経筋肉障害として顕われる神経性および筋性疾病も包含される。例としては、筋委縮性側索硬化症、ギラン・バレー症候群および慢性末梢神経病、並びに進行性延髄麻痺または脊髄筋委縮として顕在化する他の疾病のような慢性萎縮を含む。ＡＲＩＡは、また、平滑筋および内分泌組織（腺組織のような）の神経支配に影響する障害を含む末梢神経系の自律障害の治療にも使用される。例えば、頻搏は、通常、心臓の横紋筋におけるムスカリンＡＣｈＲの異常な低レベルまたは低活性に関連し、ＡＲＩＡ作動物質により治療可能である。同じように、心室不整脈は、また、心臓のムスカリンＡＣｈＲの活性によって影響される。高血圧は、例えば、刺激に対する交感神経系の感受性を制御することによって、または異常が圧覚受容器接合部または延髄路に存在する個人の治療において、ＡＲＩＡ拮抗物質を用いて治療可能である。ＡＲＩＡは、また、記憶亢進剤として、特に老若の患者において有用である。ムスカリンＡＣｈＲを遮断するアトロピンおよびスコポラミンは、記憶喪失をもたらす。コリン様物質（ニコチン性、並びにムスカリン受容体を活性化する）は、あらゆる年齢層において記憶動作を亢進する。かくして、イオンチャンネルレベルを増加することによって、ＡＲＩＡは、記憶および認識機能を亢進するように作用できる。また、ニコチンそれ自体は、認識亢進剤である。ＡＲＩＡは、多くのニコチン性受容体を増加することによって、ニコチンに対する“渇望”を排除できる。そのような病気の治療においては、化学シナプスにおける機能的イオンチャンネルのレベル増加が望まれる環境において、ＡＲＩＡ作動物質を投与することは好ましいであろう。“作動物質”は、ＡＲＩＡ、適切な同族体、あるいは、通常ＡＲＩＡに関連する生物学的応答の少なくとも一つを促進することができるＡＲＩＡまたはＡＲＩＡ同族体ペプチドを言及する。例えば、ＡＲＩＡの部分タンパク分解消化は、小さいペプチドを生じ、そのあるものは、ニコチン性ＡＣｈＲ合成を誘導できる。かくして、ＡＲＩＡの断片は、ＡＲＩＡ作動物質として働く。ヘレグリン、ＮＤＦおよびそれらの部分、並びに他のＥＧＦ様のタンパク質またはＥＧＦ様のドメインは、また、適切な作動物質であり得る。その他の例では、ＡＲＩＡ拮抗物質、例えば、ＡＲＩＡの正常作用の少なくとも一つを遮断するＡＲＩＡまたはＡＲＩＡ同族体の変異形を、投与することが望ましい。そのような戦略は、癲癇のように、イオンチャンネルの活性増大によって顕われる神経学的疾病の治療の一部でもある。かくして、ＡＲＩＡ拮抗物質を用いる治療は、イオンチャンネルを下方調整することができる。ＡＲＩＡ拮抗物質の存在においては、ＡＲＩＡは、通常ＡＲＩＡに関連する生物学的応答を仲介する力を低下した。ＡＲＩＡ拮抗物質の使用と同様に、抗ＡＲＩＡ抗体は、機能的イオンチャンネルのレベルを減少させるために使用できる。本発明は、利用可能な精製および組み換えＡＲＩＡを作製することによって、作動物質または拮抗物質のいずれかの薬物のスクリーニングに使用できるアッセイ法の開発を可能とする。突然変異誘発、および神経栄養因子の構造研究によって、合理的な薬物設計が、作動物質もしくは拮抗物質として、ＡＲＩＡまたはその部分を操作するために使用され、同じく低分子の作動物質および拮抗物質の設計を容易にする。タンパク質の全てまたは選ばれた一部分をコードするＡＲＩＡのクローニングから得られたヌクレオチド配列が、微生物もしくは真核生物細胞の過程をへて、ＡＲＩＡの組み換え型を生成するために使用される。発現ベクターのように、遺伝子構成物中へポリヌクレオチド配列を連結し、真核（酵母、鳥、昆虫もしくは哺乳類）または原核（細菌細胞）生物のいずれかの宿主中へ形質転換もしくはトランスフェクションすることが、他の周知のタンパク質、例えば、インシュリン、インターフェロン、ヒト成長ホルモン、ＩＬ−１，ＩＬ−２、およびそれに類するものを生産することに使用される標準操作である。同様な操作、またはその明白な改変が、主題の本発明による微生物手段もしくは組織培養技術にょって、組み換えＡＲＩＡもしくはその部分を作製するために使用される。組み換えＡＲＩＡタンパク質は、クローン化された遺伝子もしくはその部分を、原核細胞、真核細胞のいずれかまたは両方での発現に好適なベクター中に連結することによって生産される。組み換えＡＲＩＡの生産のための発現媒体は、プラスミドおよび他のベクターを包含する。例えば、ＡＲＩＡの発現のための好適なベクターは、Ｅ．コリ（Ｅ．ｃｏｌｉ）のような原核細胞での発現に対して、タイプ：ｐＢＲ３２２由来プラスミド、ｐＥＭＢＬ由来プラスミド、ｐＥＸ由来プラスミド、ｐＢＴａｃ由来プラスミドおよびｐＵＣ由来プラスミドのプラスミドを含む。多数のベクターが、酵母における組み換えタンパク質の発現のために存在する。例えば、ＹＥＰ２４，ＹＩＰ５，ＹＥＰ５１、ＹＥＰ５２、ｐＹＥＳ２およびＹＲＰ１７が、Ｓ．セレビシエ（Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）中への遺伝子構築物の導入に有用なクローニングおよび発現媒体である（例えば、引用によって明細書に組み込まれるBroach et al．（1983）in Experimental Manipulation of Gene Expression，ed M．Inoue Academic Press，p83、参照）。これらのベクターは、ｐＢＲ３２２ｏｒｉの存在でＥ．コリ中で、そして酵母２μプラスミドの複製決定基によりＳ．セレビシエ中で複製できる。加えて、アンピシリンのような薬剤耐性マーカーが使用できる。好適な哺乳動物発現ベクターは、細菌でのベクターの増殖を助ける原核生物配列、および真核細胞で発現される一つまたは複数の真核生物転写ユニットの両方を含む。ｐｃＤＮＡＩ／ａｍｐ，ｐｃＤＮＡＩ／ｎｅｏ，ｐＲｃ／ＣＭＶ，ｐＳＶ２ｇｐｔ，ｐＳＶ２ｎｅｏ，ｐＳＶ２−ｄｈｆｒ，ｐＴｋ２，ｐＲＳＶｎｅｏ，ｐＭＳＧ，ｐＳＶＴ７，ｐｋｏ−ｎｅｏおよびｐＨｙｇ由来のベクターが、真核細胞のトランスフェクションに好適な哺乳動物発現ベクターの例である。これらのベクターのあるものは、ｐＢＲ３２２のような細菌プラスミドからの配列を用いて改変されて、原核および真核細胞の両方において、複製および薬剤耐性選択を容易にする。あるいはまた、ウシ乳頭ウイルス（ＢＰＶ− １）またはエプスタイン・バールウイルス（ｐＨＥＢｏ，ｐＲＥＰ由来およびｐ２０５）のようなウイルスの誘導体が、真核細胞におけるタンパク質の一過性発現のために使用される。プラスミドの調製および宿主生物の形質転換に使われる種々の方法は、当業者に周知である。原核および真核生物の両方に適切な発現系、ならびに一般的組み換え法は、、引用によって明細書に組み込まれるMolecula r Cloning A Laboratory Manual，2nd Ed.，ed．by Sambrook，Fritsch and Man iatis（Cold Spring Harbor Laboratory Press：1989）Chapters 16 and 17を参照。若干の例においては、バクロウイルス発現系の使用によって、組み換えＡＲＩＡを発現させることが好ましい。そのようなバクロウイルス発現系の例は、ｐＶＬ由来ベクター（例えば、ｐＶＬ１３９２，ｐＶＬ１３９３，およびｐＶＬ９４１）、ｐＡｃＵＷ由来ベクター（例えば、ｐＡｃＵＷ１）およびｐＢｌｕｅＢａｃ由来ベクター（例えば、ｐＢｌｕｅＢａｃＩＩＩを含むβ−ｇａｌ）を包含する。選ばれる発現系により、グリコシル化されるかまたはされないかのいずれかである組み換えタンパク質を得る能力を制御することができる。ＡＲＩＡの一部分の発現が望まれる場合には、発現されるべき目的の配列を含むオリゴヌクレオチド断片に、開始コドン（ＡＴＧ）を加えることが必要である。Ｎ末端の位置におけるメチオニンが、酵素メチオニンアミノペプチダーゼ（ＭＡＰ）の使用によって酵素的に開裂できることは当業者にとって周知である。ＭＡＰは、Ｅ．コリ（Ben-Bassat et al．（1987）J．Bacteriol．169：751-757）およびサルモネラ・チフィムリウム（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ）からクローン化されており、そしてその生体内活性は、組み換えタンパク質において証明された（Miller et al．（1987）PNAS 84：2718-1722）。それゆえ，Ｎ末端メチオニンの除去は、必要ならば、ＡＲＩＡ由来ポリペプチドをＭＡＰを生産する宿主中で発現することによって生体内で（例えば、Ｅ．コリもしくはＣＭ８９もしくはＳ．セレビシエ）、あるいは精製されたＭＡＰを用いて試験管内で（例えば、Millerらの方法）成就される。また、ポリペプチドをコードしている配列は、異なるポリペプチドをコードしているヌクレオチド配列を含む融合遺伝子の一部分として組み込まれることができる。このタイプの発現系は、ＡＲＩＡの免疫原性断片を生成することが望まれる条件下で有用である。例えば、ロータウイルスのＶＰ６キャプシドタンパク質は、単量体またはウイルス粒子の型のいずれかで、ＡＲＩＡポリペプチドの部分に関する免疫原性キャリヤータンパク質として使用できる。抗体が生じるべきＡＲＩＡの部分に対応するヌクレオチド配列は、後期ワクシニアウイルス構造タンパク質のコード配列を含む融合遺伝子構築物中に組み込まれて、ビリオンの部分としてＡＲＩＡの一部分を含む融合タンパク質を発現する１セットの組み換えウイルスを生成できる。組み換えＢ型肝炎ビリオンが、同様にこの役割において利用できるということは、Ｂ型肝炎表面抗原融合タンパク質を利用する免疫原性融合タンパク質の使用によって例証された。同様に、ＡＲＩＡの一部分およびポリオウイルス・キャプシドタンパク質を含む融合タンパク質をコードしているキメラ構築物が一連の、ポリペプチド抗原の免疫原性を高めるために創出される（例えば、引用によって明細書に組み込まれる欧州特許公開第0259 149号、およびEvans et al．（1989）Nature 339：385； Huang et al．（1988 ）J．Viol．62：3855； Schlienger et al．（1992）J．Viol．66：2、参照）。ＡＲＩＡの目的の部分が、オリゴマーの分枝リジンコア上でのペプチドの有機化学合成から直接得られる場合には、ペプチドに基づく免疫化のための多重抗原ペプチド（ＭＡＰ）系が利用される（例えば、引用によって明細書に組み込まれるPosnett et al．（1988）JBC 263：1719； Nardelli et al．（1992）J．Immu nol．148：914，参照）。ＡＲＩＡの抗原決定基も、また、細菌細胞によって発現され、提供される。免疫原性を高めるための融合タンパク質の利用に加えて、融合タンパク質も、また、分泌を導くシグナルペプチドの使用によって、ＡＲＩＡのようなタンパク質の発現を助けるということが広く評価されている（例えば、Achstetter et al ．1992 Gene 110：25,参照）。融合タンパク質のその他の一般的使用では、融合タンパク質のポリペプチド部分をコードしている付加的な配列をもつ融合遺伝子が創出でき、精製を容易にするであろう。例えば、ＡＲＩＡの目的の部分のＮ末端において、ポリー（Ｈｉｓ）／エンテロキナーゼ開裂部位配列のような、精製リーダ一配列をコードしている融合遺伝子は、Ｎｉ²⁺メタル樹脂を用いるアフィニティークロマトグラフィーにより、発現されたＡＲＩＡ融合タンパク質の精製を容易にさせる。次いで、精製リーダー配列は、続くエンテロキナーゼによる処理によって除去される（例えば、引用によって明細書に組み込まれるHochuli et al． 1987 J．Chromatography 411：177；Janknecht et al．PNAS 88：8972，参照）。融合遺伝子作製の技術は、周知である。本質的に、異なるポリペプチド配列をコードしている種々のＤＮＡ断片の結合は、慣用的方法、連結のための平滑末端もしくはスタッガー末端の使用、適切な末端を提供するための制限酵素消化、好適な接着末端のフィリング・イン、望ましくない結合を避けるためのアルカリホスファターゼ処理、および酵素的連結により遂行される。あるいは、融合遺伝子は、自動ＤＮＡ合成機を用いる慣用的方法によって合成できる。さらに、種々のＡＲＩＡペプチドおよびＤＮＡ分子は、また、当業者によって評価されるように、より詳細に説明されるこれらのペプチドおよびＤＮＡ分子と等価であるように意図される。例えば、イソロイシンもしくはバリンによるロイシンの、グルタミン酸によるアスパラギン酸の、セリンによるスレオニンの、分離置換、あるいは構造的に関連するアミノ酸によるアミノ酸の同様の置換（すなわち、同類変異）は、得られる分子の生物活性に大きな影響を与えないであろうと考えるのは合理的である。同類置換は、それらの側鎖において関係のある１群のアミノ酸の内で起きるものである。遺伝的にコードされるアミノ酸は、４群に分けられる：（１）酸性＝アスパラギン酸、グルタミン酸；（２）塩基性＝リジン、アルギニン、ヒスチジン；（３）非極性＝アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン；および（４）非荷電極性＝グリシン、アスパラギン、グルタミン、シスチン、セリン、スレオニン、チロシン。フェニルアラニン、トリプトファンおよびチロシンは、時に芳香族アミノ酸として一緒に分類される。同様な方法で、アミノ酸類は、次のように群分けされる：（１）酸性＝アスパラギン酸、グルタミン酸；（２）塩基性＝リジン、アルギニン、ヒスチジン；（３）脂肪族＝グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、スレオニン、またセリンとスレオニンは、場合により脂肪族・ヒドロキシルとして別に分けられる；（４）芳香族＝フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン；（５）アミド＝アスパラギン、グルタミン；および（６）硫黄含有＝システインおよびメチオニン（例えば、Biochemistry，2nd ed．Ed．by Stryer，WH Freeman and Co.：1981,参照）。ペプチドのアミノ酸配列における変化が、機能的ＡＲＩＡ同族体を生じるか否かは、野生型ＡＲＩＡと同様の方法で、細胞における応答を生じる変異体ペプチドの力を評価することによって容易に決定される。１個以上の置換が起きたペプチドは、同じ方法で容易に試験される。４５ｋＤタンパク質ヘレグリン−α（ＨＲＧ−α）は、ｍＲＮＡ由来のＭＤＡ −ＭＢ２３１細胞ライブラリーからクローン化されたことが近年報告されている。その上、関連ＨＲＧをコードしている数種の相補的ＤＮＡクローンが、また同定され、全てのＨＲＧが、表皮増殖因子（ＥＧＦ）ファミリーにおけるタンパク質に、ある程度類似であった（引用によって明細書に組み込まれるHolmes et al ．1992 Nature 256：1205）。形質転換ラット繊維芽細胞によって分泌される４４ｋＤ糖タンパク質、Ｎｅｕ分化因子（ＮＤＦ）と言われる、は、クローン化され、発現されたことも報告されている（引用によって明細書に組み込まれるWen et a l．1992 Cell 69：559）。クローン化された神経栄養因子ＡＲＩＡのアミノ酸配列は、ラットＮＤＦおよびヘレグリンの両方、特にヘレグリン−β１と高い配列相同性を示す。ニワトリ脳から単離された神経栄養因子の形は、糖タンパク質として生体内に存在すると思われ、１３％ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルでの電気泳動クロマトグラフィーにおいて、４０ｋＤ〜４５ｋＤの範囲の見掛けの分子量をもつ。ラットＮＤＦおよびヒト・ヘレグリンのように、ニワトリおよびラットの両方で同定されたＡＲＩＡは、ＥＧＦ様のドメインと同様にイムノグロブリン様ドメインを担持する。しかしながら、ＡＲＩＡは、また、細胞外ドメインのアミノ末端側半分に、アミノ酸残基の２伸長部、ここではＮｅｘ−１およびＮｅｘ−２と言われるが、を含有し、ラットＮＤＦおよびヒト・ヘレグリン、ならびにＳＤＧＦおよびグリア細胞成長因子を含む他の成長因子および***促進因子、の対応するアミノ酸位置とは配列において差があり得る。実施例７および８に記載されるように、ニワトリＡＲＩＡクローンまたはラットＮＤＦクローンのいずれかで決定されたヌクレオチド配列に向けられるプローブを用いて、ラット脊髄ｍＲＮＡが、逆転写され、ＣＤＮＡがＰＣＲによって増幅された。１例においては、２３０ｂｐ断片が、増幅され、細菌融合発現系中にクローン化された。ＰＣＲ断片の配列は、ニワトリから精製されたＡＲＩＡ、ならびにヘレグリン−βと本質的に相同性を示した。ニワトリＡＲＩＡのＥＧＦ様アミノ酸配列に対応するこの断片は、発現され、単離され、そして筋細胞培養に適用された。このラットＡＲＩＡ断片は、ニワトリ脳から単離されたＡＲＩＡについて観察されたように、ｐ１８５のリン酸化を起こす。ラットＡＲＩＡのＥＧＦ様ドメインは、配列においてヘレグリン−βと非常に相同的であるが上述の主張と一致して、ニワトリＡＲＩＡのＮｅｘ−１およびＮｅｘ−２におおよそ対応するヌクレオチドの位置において、ラットＮＤＦおよびヘレグリンとは配列において相違するようである。この観察を支持する証拠は、ラットＮＤＦおよびヘレグリンメッセージの５’配列が、脊髄には存在しないことを示す、他の反応においてラットＡＲＩＡに好適に結合することを明らかにされた３’プローブとの結合において、ＮＤＦまたはヘレグリンの５’配列に基づいて、ＰＣＲプライマーが配列（特にＩｇ−様ドメインをコードしているヌクレオチドに対して５’）を増幅する能力の欠如を示すことである。かくして、本発明の神経栄養因子は、ＥＧＦ様のアミノ酸配列およびニューロン細胞、好ましくは神経細胞において発現される神経栄養因子遺伝子のエキソンの少なくとも一部分によってコードされたアミノ酸配列を含有する。その因子は、また、イムノグロブリン様ドメイン、トランスメンブラン・ドメインおよび細胞質体ドメインを含有する。機能的イオンチャンネルの合成の誘導に関するその因子の生物学的活性は、タンパク質のＥＧＦ様ドメインを必要すると信じられる。ニワトリからクローン化されたＡＲＩＡの全体の“ドメイン”構造は、図２に示され、種々のラットクローンのドメイン構造は、この描写と一致する。マイトジェンのＥＧＦファミリーのシステイン結合コアアミノ酸配列は、共通配列ＣＹ₁ＣＹ₂ＣＹ₃ＣＹ₄ＣＹ₅Ｃを有し、式中、Ｃは、システインであり、Ｙ１は、同じかまたは異なる７アミノ酸を表し、Ｙ２は、同じかまたは異なる４〜５アミノ酸を表し、Ｙ₃は、同じかまたは異なる１０〜１３アミノ酸を表し、Ｙ₄ は、いかなるアミノ酸を表してもよく、そしてＹ₅は、同じかまたは異なる８アミノ酸を表し、また一般に長さ３６〜４０残基である。システイン残基のこの一般的配置に基づき、密接に関連するモチーフ、ＥＧＦ様モチーフと言われるが、は、多数のタンパク質において同定されている。本明細書で使用されるように、ＥＧＦ様アミノ酸配列は、一般式ＣＸ₁ＣＸ₂ＣＸ₃ＣＸ₄ＣＸ₅Ｃによって表されるようなＥＧＦ様モチーフを示す配列であり、式中、Ｃは、システインであり、Ｘ₁は、同じかまたは異なる４〜１４アミノ酸を表し、Ｘ₂は、同じかまたは異なる３〜８アミノ酸を表し、Ｘ₃は、同じかまたは異なる４〜１４アミノ酸を表し、Ｘ₄は、いかなるアミノ酸でもよく、そしてＸ₅は、同じかまたは異なる８〜１４アミノ酸を表す。ＥＧＦ様アミノ酸配列の例は、配列番号２，４および２６−４３に示される。ニューロン細胞で発現されるアミノ酸配列は、Ｎｅｘ−１およびＮｅｘ−２アミノ酸配列を含み、上述したように、ＮＤＦおよびヘレグリンと比べて、配列において著しい差があり得る。Ｎｅｘ−１およびＮｅｘ−２が、異なるスプライシングによって、生じているらしい。ニワトリおよびラットの両方からクローン化されたＡＲＩＡ同族体の多様性によって例示されるように、神経系の細胞の集団内で、他のエキソンが、他のＡＲＩＡ同族体において置換されたのかもしれない。さらに、本発明は、ＡＲＩＡの組み合わせ変異体のセットを作出する方法を意図し、ＡＲＩＡ受容体への結合において機能的である潜在的変異配列（例えば、同族体）を同定するために特に有用である。そのような組み合わせライブラリーをスクリーニングする目的は、例えば、作動物質または拮抗物質のいずれかとして働き得るか、あるいはまた新規の活性を全て一緒に保持する、新規のＡＲＩＡ同族体を作出することである。例示するために、新規なＥＧＦ様ドメイン（例えば、ＡＲＩＡ中に天然には存在しないもの）が、本方法によって作製され、ＡＲＩＡに関連する活性の少なくとも一部分を、まだなお保有するＡＲＩＡ受容体へのより効率的な結合を提供することができる。かくして、組み合わせにより得られた同族体は、自然界に存在するＡＲＩＡに比べて増加された力をもつように作出される。同様に、ＡＲＩＡ同族体は、本組み合わせによるアプローチによって作出され、まだいかなる生物学的応答を誘導していないＡＲＩＡ受容体に、拮抗物質として作用するために結合でき、それによって、ＡＲＩＡの、またはＡＲＩＡ作動物質の作用を遮断する。その上、本方法によるＡＲＩＡのあるドメインを操作して、融合タンパク質、例えば、細胞外基質から得られ、および／または細胞外基質構成分に由来する他のタンパク質の部分を組み込んだもの、における使用により適したドメインを提供できる。明細書に記載のように、ＡＲＩＡは、ニワトリおよびラットを含む数種の起源からクローン化されており、いずれの種からのＡＲＩＡも、ヒト筋管におけるイオンチャンネル形成の誘導に活性があることが分かった。さらに、上記のように、ｃＤＮＡ由来のアミノ酸配列が、ＡＲＩＡと共通の祖先を示すように、十分類似である他の見掛け上の栄養因子に利用できるようになる。これらの関連タンパク質は、ＥＧＦ様ドメインとイムノグロブリン様ドメインを含む類似のドメイン構造をもつ。興味あることには、ＡＲＩＡの変異体は、ＥＧＦ様ドメイン（配列番号２７および２９）のＣ５システインの代わりに位置する終止コドンを含む脊髄および小脳の両ｍＲＮＡライブラリー由来のニワトリｍＲＮＡからクローン化され、端を切り取ったＡＲＩＡタンパク質を生じる。そのようなＡＲＩＡの端を切り取った変異体の役割は、不明であるが、そのような変異が、ＡＲＩＡの拮抗物質的変異体を生じるかも知れない。本方法の一つの態様においては、ＡＲＩＡ変異体または他の関連タンパク質の集団についてのアミノ酸配列は、好ましくは可能性の最も高い相同性を発揮するように一列に並べられる。そのような変異体の集団は、例えば、天然に存在するＡＲＩＡおよび一つまたは複数の種からのＡＲＩＡ同族体、並びに細胞においてＡＲＩＡ様応答を誘導する能力をもつとして、知られるか、期待される、ヘレグニリンファミリー由来のもののような他のタンパク質のアミノ酸配列を含む。一列に並べられた配列の各位置に現れるアミノ酸は、組み合わせ配列の退化セットを創出するために選択される。より好適な実施態様においては、組み合わせＡＲＩＡライブラリーは、各々が、潜在的なＡＲＩＡ配列の少なくとも一部分を含むポリペプチドのライブラリーをコードしている遺伝子の縮重ライブラリーの方法によって生成される。合成オリゴヌクレオチドの混合物は、潜在的ＡＲＩＡ配列の退化セットが、個々のポリペプチド（例えば、独立したＥＧＦ様のドメイン）、または、そこにＡＲＩＡ配列のセットを含む大きな融合タンパク質のセット、として発現し得るように、遺伝子配列中に酵素的に連結される。図３に例示したように、変異体の集団の配列を解析して、興味あるアミノ酸配列が、配列相同性に比べて一列に並べられる。特定の変異体の一列に並べられた配列からのアミノ酸の有無が、実在でも人工的でもよい参考配列の選ばれた共通の長さと関連している。配列の並びにおいて最高の相同性を維持するために、参考配列と関連する変異体の配列における欠失が、アミノ酸空白（＊）によって表され、一方、参考配列と関連する変異体における挿入変異は、無視され、並べられる場合に変異体の配列から除かれる。例えば、図３は、異なる種からのＡＲＩＡの種々のクローン化された型のいくつかのＥＧＦ様ドメインの一列の並びを含む。その配列は、各変異体に存在する保存システイン残基によって一列に並べられる。図３に示されるＡＲＩＡクローンのＥＧＦ様ドメインのみの並び方（アラインメント）の解析により、一般式：または［式中、Ｘａａ（１）はＡｓｐ，またはＡｌａ；Ｘａａ（２）はＩｌｅ，またはＧｌｕ：Ｘａａ（３）はＧｌｎ，またはＧｌｕ：Ｘａａ（４）はＡｌａ，またはＴｈｒ：Ｘａａ（５）はＧｌｕ，またはＧｌｙ；Ｘａａ（６）はＴｙｒ，またはＰｈｅ；Ｘａａ（７）はＭｅｔ，またはＴｈｒ：Ｘａａ（８）はＰｒｏ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（９）はＡｓｎ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（１０）はＰｒｏ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（１１）はＡｒｇ，またはＬｙｓ；Ｘａａ（１２）はＰｒｏ，またはＳｅｒ，である］によって表される潜在的ＥＧＦ様配列を含むポリペプチドの退化ライブラリーの作出が行われる。組み合わせライブラリーの一層の拡張が、例えば、並べられた変異体の一つまたは多数の退化位置における保存変異を表すアミノ酸を含むことによって作られる。そのような保存変異体の封入は、式：または［式中、Ｘａａ（１）はＡｓｐ，Ａｌａ，Ｇｌｕ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，Ｇｌｙ，Ｓｅｒ，またはＴｈｒ；Ｘａａ（２）はＩｌｅ，Ｇｌｕ，Ａｓｐ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｓｅｒ，またはＴｈｒ；Ｘａａ（３）はＧｌｎ，Ｇｌｕ，Ａｓｎ，またはＡｓｐ；Ｘａａ（４）はＡｌａ，Ｔｈｒ，Ｇｌｙ；，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（５）はＧｌｕ，Ｇｌｙ，Ａｓｐ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，Ｓｅｒ，またはＴｈｒ；Ｘａａ（６）はＴｙｒ，Ｐｈｅ，またはＴｒｐ；Ｘａａ（７）はＭｅｔ，Ｔｈｒ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，またはＩｌｅ；Ｘａａ（８）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，またはＴｈｒ；Ｘａａ（９）はＡｓｎ，Ｓｅｒ，Ｇｌｎ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，またはＴｈｒ；Ｘａａ（１０）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，またはＴｒ；Ｘａａ（１１）はＡｒｇ，Ｌｙｓ，またはＨｉｓ：Ｘａａ（１２）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，またはＴｈｒである］によって表される潜在的イオンチャンネル誘導活性をもつライブラリーを生じることができる。その他の実施態様においては、ヘレグリンおよびｎｅｕ分化因子（ＮＤＦ）の配列は、変異体集団に包含され、組み合わせＡＲＩＡライブラリーを作出するのに使用される。いくつかの例においては、α型ＥＧＦ様ドメインのＣ₅−Ｃ₆配列が、ＡＲＩＡとはるかに相違することにおいて、β型ＥＧＦ様ドメイン（例えば、ＨＲＧ−βおよびＮＤＦ−β）のみを含むことが望まれる。しかしながら、各々、図３に示されるヘレグリン、ＮＤＦ）ならびにヘパリン結合ＥＧＦ様成長因子（ＨＢ−ＥＧＦ）、アムフィレグリン（ａｍｐｈｉｒｅｇｕｌｉｎ，ＡＲＥＧ）および神経鞘腫由来の成長因子（ＳＤＧＦ）の封入により、一般式：または［式中、Ｘａａ（１）はＡｓｐ，Ａｌａ，Ｌｅｕ，またはＡｓｎ；Ｘａａ（２）はＩｌｅ，Ｇｌｕ，Ａｒｇ，またはＡｌａ；Ｘａａ（３）はＬｙｓ，またはＧｌｕ；Ｘａａ（４）はＧｌｎ，Ｇｌｕ，Ｔｙｒ，またはＰｈｅ；Ｘａａ（５）はＬｙｓ，またはＧｌｎ：Ｘａａ（６）はＡｌａ，Ｔｈｒ，Ａｓｐ，またはＡｓｎ；Ｘａａ（７）はＰｈｅ：Ｘａａ（８）はＶａｌ，またはＩｌｅ；Ｘａａ（９）はＡｓｎ，またはＨｉｓ：Ｘａａ（１０）はＧｌｙ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（１１）はＧｌｕ，またはＧｌｙ；Ｘａａ（１２）はＴｙｒ，Ｐｈｅ，Ｌｙｓ，またはＡｒｇ；Ｘａａ（１３）はＭｅｔ，Ｔｈｒ，またはＴｙｒ；Ｘａａ（１４）はＶａｌ，またはＩｌｅ；Ｘａａ（１５）はＬｙｓ；またはＧｌｕ；Ｘａａ（１６）はＡｓｐ，Ｇｌｕ，Ｈｉｓ，またはＡｓｎ：Ｘａａ（１７）はＬｅｕ；Ｘａａ（１８）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ａｒｇ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（１９）はＡｓｎ，Ｓｅｒ，Ａｌａ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（２０）はＰｒｏ，またはアミノ酸空白：Ｘａａ（２１）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，またはＧｌｕ；Ｘａａ（２２）はＡｒｇ，Ａｌａ，Ｖａｌ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（２３）はＴｙｒ，Ｖａｌ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（２４）はＬｅｕ，Ｔｈｒ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（２５）はＡｒｇ，Ｌｙｓ，Ｉｌｅ，またはＨｉｓ；Ｘａａ（２６）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｎ，またはＨｉｓ；Ｘａａ（２７）はＡｓｎ，Ｐｒｏ，またはＧｌｎ；Ｘａａ（２８）はＧｌｕ，Ｇｌｙ，またはＡｓｐ；Ｘａａ（２９）はＰｈｅ，またはＴｙｒ；Ｘａａ（３０）はＴｈｒ，Ｈｉｓ，またはＰｈｅ：そしてＸａａ（３１）はＡｓｐ，Ａｌａ，またはＧｌｕである］の組み合わせライブラリーを生成する。この文において、an amino acid gap（アミノ酸空白）は、得られるペプチドからのそのアミノ酸位置の欠失を意味するものと理解される。例えば、上記文中、 Xaa(8)is Val，Xaa(9)is Asn，and Xaa(10)is an amino acid gap．ＥＧＦ様配列のその部分は、Ｘａａ（１０）が、グリシン残基である場合には、−Ｃｙｓ− Ｖａｌ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−よりむしろ、式−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ａｓｎ− Ｇｌｙ−をもつであろう。同様に、ＥＧＦおよびＴＧＦ−α配列の封入によって提供される退化は、一般式：または［式中、Ｘａａ（１）はＡｓｐ，Ａｌａ，Ｌｅｕ，Ａｓｎ，またはＰｒｏ；Ｘａａ（２）はＩｌｅ，Ｇｌｕ，Ａｒｇ，Ａｌａ，Ｌｅｕ，またはＡｓｐ：Ｘａａ（３）はＬｙｓ，Ｇｌｕ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（４）はＧｌｎ，Ｇｌｕ，Ｔｙｒ，Ｐｈｅ，またはＨｉｓ；Ｘａａ（５）はＬｙｓ，Ｇｌｎ，Ａｓｐ，またはＴｈｒ；Ｘａａ（６）はＡｌａ，Ｔｈｒ，Ａｓｐ，Ａｓｎ，Ｇｌｙ，またはＧｌｎ；Ｘａａ（７）はＰｈｅ，またはＴｙｒ；Ｘａａ（８）はＶａｌ，Ｉｌｅ，Ｌｅｕ，またはＰｈｅ；Ｘａａ（９）はＡｓｎ，またはＨｉｓ；Ｘａａ（１０）はＧｌｙ，アミノ酸空白，またはＡｓｐ；Ｘａａ（１１）はＧｌｕ，Ｇｌｙ，Ｖａｌ，またはＴｈｒ；Ｘａａ（１２）はＴｙｒ，Ｐｈｅ，Ｌｙｓ，Ａｒｇ，またはＭｅｔ；Ｘａａ（１３）はＭｅｔ，Ｔｈｒ，Ｔｙｒ，Ｐｈｅ；Ｘａａ（１４）はＶａｌ，Ｉｌｅ，またはＬｅｕ；Ｘａａ（１５）はＬｙｓ，Ｇｌｕ，またはＶａｌ；Ｘａａ（１６）はＡｓｐ，Ｇｌｕ，Ｈｉｓ，Ａｓｎ，Ａｌａ，またはＧｌｎ；Ｘａａ（１７）はＬｅｕ，またはＧｌｕ；Ｘａａ（１８）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ａｒｇ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（１９）はＡｓｎ，Ｓｅｒ，Ａｌａ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（２０）はＰｒｏ，またはアミノ酸空白；Ｘａａ（２１）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｕ，またはＡｓｐ；Ｘａａ（２２）はＡｒｇ，Ａｌａ，Ｖａｌ，アミノ酸空白，またはＬｙｓ；Ｘａａ（２３）はＴｙｒ，Ｖａｌ，アミノ酸空白，またはＰｒｏ；Ｘａａ（２４）はＬｅｕ，Ｔｈｒ，アミノ酸空白，またはＡｌａ；Ｘａａ（２５）はＡｒｇ，Ｌｙｓ，Ｉｌｅ，Ｈｉｓ，Ａｓｎ，またはＶａｌ；Ｘａａ（２６）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｎ，Ｈｉｓ，またはＶａｌ；Ｘａａ（２７）はＡｓｎ，Ｐｒｏ，Ｇｌｎ，Ｖａｌ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（２８）はＧｌｕ，Ｇｌｙ，またはＡｓｐ；Ｘａａ（２９）はＰｈｅ，またはＴｙｒ；Ｘａａ（３０）はＴｈｒ，Ｈｉｓ，Ｐｈｅ，Ｉｌｅ，またはＶａｌ；そしてＸａａ（３１）はＡｓｐ，Ａｌａ，またはＧｌｕ］をもつＥＧＦ様ドメインの組み合わせライブラリーを生成する。しかしながら、細胞においてＡＲＩＡ様応答を誘導するＥＧＦおよびＴＧＦ−α の能力が、試験され、無視できることが分かったので、そのような組み合わせライブラリーは、ＡＲＩＡ拮抗物質ならびにＡＲＩＡ受容体を結合できないペプチドの有意な集団をもつと思われる。前者は、以下に記すように、パニング（pann ing）アッセイにおいてそのような受容体を結合するその能力によって、後者から分離できる。その他の実施態様において、縮重配列ライブラリーは、ＥＧＦ様配列の一般的制限内に、Ｃ１およびＣ２、並びにＣ５およびＣ６の間に、完全にランダムに作られる。それは、これらの配列が、ＡＲＩＡ、並びにヘレグリンおよびＮＤＦの、ニワトリおよびラットのクローン間では、非常に異なるからである。そのようなライブラリーは、一般式：［式中、Ｘａａ（１）はＧｌｕ，またはＧｌｙ；Ｘａａ（２）はＴｙｒ，またはＰｈｅ：Ｘａａ（３）はＭｅｔ，またはＴｈｒ；Ｘａａ（４）はＰｒｏ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（５）はＡｓｎ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（６）はＰｒｏ，またはＳｅｒ；Ｘａａ（７）はＡｒｇ，またはＬｙｓ；Ｘａａ（８）はＰｒｏ，またはＳｅｒ；Ｚは、同じかまたは異なる４〜１４アミノ酸を表し、そしてＸ₅は、同じかまたは異なる８〜１４アミノ酸を表す］によって表すことができるさらにその他の実施態様においては、全ての可能なＥＧＦ様配列は、それらの天然に存在するそれらの代わりに、ＡＲＩＡ中に置換され、その組み換え分子は、活性について試験される。そのような実施態様においては、ＡＲＩＡのＥＧＦ様ドメインは、先に挙げたような一般式、ＣＸ₁ＣＸ₂ＣＸ₃ＣＸ₄ＣＸ₅Ｃ［式中、Ｃは、システインであり、Ｘ₁は、同じかまたは異なる４〜１４アミノ酸を表し、Ｘ₂は、同じかまたは異なる３〜８アミノ酸を表し、Ｘ₃は、同じかまたは異なる４〜１４アミノ酸を表し、Ｘ₄は、いかなるアミノ酸でもよく、そしてＸ₅は、同じかまたは異なる８〜１４アミノ酸を表す。］によって表される。同様にして、ＡＲＩＡ同族体の大部分は並べられ、潜在的ＡＲＩＡ同族体の組み合わせライブラリーを創出するために使用される。例示する実施態様においては、組み合わせライブラリーは、Ｉｇ様ドメインからＥＧＦ様ドメインを通しての配列を含んで作出される。潜在的ＡＲＩＡ同族体のライブラリーが、退化オリゴヌクレオチド配列から作出される方法は、多数ある。退化遺伝子配列の化学合成は、自動ＤＮＡ合成機において実施され、次いで、その合成遺伝子は、発現のために適切な遺伝子に連結される。遺伝子の退化セットの目的は、一つの混合物中で、潜在的ＡＲＩＡ配列の目的のセットをコードしている配列の全てを提供することである。退化オリゴヌクレオチドの合成は、当業者にとって公知であり、（例えば、Narang，SA（19 83）Tetrahedron 39:3； Itakura et al．（1981）Recombinant DNA，Proc 3rd Cleveland Sympos．Macromolecules，ed．AG Walton，Amsterdam： Elsevier pp 273-289；Itakura et al．（1984）Annu．Rev．Biochem．53:323；Itakura et a l．（1984）Science 198:1056； Ike et al.（1983）Nucleic acid Res．11:477 、参照）そのような技術は、他のタンパク質の直接の進化に使用される（例えば、Scott et al．（1990）Science 249:386-390； Robert et al．（1992）PNAS 89:2429-2433； Devlin et al．（1990）Science 249:404-406； Cwirla et al ．（1990）PNAS 87:6378-6382；米国特許第5,223,409、5,198,346、5,096,815号、参照）。点突然変異によって作られる組み合わせライブラリーの遺伝子産物をスクリーニングするため、そしてある性質を有する遺伝子産物についてｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングするための広範囲の技術が当業者に既知である。そのような技術は、一般に、ＡＲＩＡおよび関連タンパク質の組み合わせ突然変異誘発によって作られる遺伝子ライブラリーの急速スクリーニングに応用される。大きい遺伝子ライブラリーをスクリーニングするために、最も広範囲に使用される技術は、典型的には、複製可能な発現ベクター中へ遺伝子ライブラリーをクローニングすること、得られるベクターのライブラリーを用いて適切な細胞を形質転換すること、および目的の活性の検出が、その遺伝子産物が検出された遺伝子をコードしているベクターの単離を、比較的容易にする条件下で組み合わせ遺伝子を発現させること、を包含する。以下に記載の例示アッセイの各々は、組み合わせ突然変異誘発技術によって作られた多数の退化ＡＲＩＡ配列を、スクリーニングするために必要な高度なスループット（througt-put）分析に受け入れられる。一つの実施態様では、組み合わせライブラリーは、分泌されるようにデザインされ（例えば、ライブラリーのポリペプチドの全ては、シグナル配列を含むが、トランスメンブレンまたは細胞質体ドメインは含まない）、そして筋細胞との混合培養ができる真核細胞のトランスフェクションに使用される。組み合わせライブラリーを発現する細胞によって分泌される機能的ＡＲＩＡは、近くの筋細胞に拡散し、ＡＣｈＲの形成を誘導する。ＡＣｈＲエピトープに対する抗体を用いる、ＡＣｈＲ誘導の検出パターンは、勾配機能（gradient function）に類似するであろう、活性ＡＲＩＡ同族体を生成する細胞の単離（一般に、数回の繰り返し選択の後）を可能にするであろう。同様に、ＡＲＩＡ拮抗物質は、培養培地に添加されたＡＲＩＡの影響から近接細胞を保護するための、細胞が機能的拮抗物質を生産する能力によって、同じ方法で選択される。例示すれば、標的細胞（例えば、ラットＬ６筋細胞）が、２４穴ミクロタイタープレートで培養される。ＣＨＯ細胞は、組み合わせＡＲＩＡ遺伝子ライブラリーを用いてトランスフェクションされ（例えば、下記のようにプラスミドｐｃＤＮＡ／ａｍｐ中にクローン化される）、ミクロタイタープレートの穴の中に適合する細胞培養挿入物（cell culture insert ）（例えば、Collaborative Biomedical Products，Catalog#40446）において培養される。細胞培養挿入物は、その挿入物中の細胞によって分泌される組み換えＡＲＩＡ同族体が、挿入物の穴の空いた底を通して拡散し、ミクロタイタープレートの標的細胞に接触するように、その穴の中に置かれる。標的細胞において測定可能な応答が生じるまで、ＡＲＩＡの機能的形成に十分な時間を経過した後、その挿入物が、除去され、標的細胞に対するＡＲＩＡの影響が測定される。例えば、標的細胞が筋細胞であり、ＡＲＩＡ同族体からの目的の活性がＡＣｈＲの誘導である場合には、次に、蛍光標識されたＢｇＴｘが、その穴中の機能的ＡＲＩＡの表示法として、標的細胞でのＡＣｈＲ誘導を記録するために使用される。活性についてポジティブを記録した穴に対応する挿入物からの細胞が、分離され、いくつかの挿入物で再培養され、その過程が、活性クローンが同定されるまで繰り返される。なおその他のスクリーニングアッセイにおいては、候補のＡＲＩＡ遺伝子産物は、細胞またはウイルス粒子の表面に広げられ、この遺伝子産物を通してＡＲＩＡ結合タンパク質（ＡＲＩＡ受容体のような）を結合する、特定の細胞またはウイルス粒子の能力が、パニングアッセイ（panning assay）によって検出される。例えば、候補のＡＲＩＡ配列をコードしている発現ベクターは、特定のＡＲＩＡ結合タンパク質（ＡＲＩＡ受容体のような）に、通常は有意には結合しない細胞をトランスフェクションするために使用される。例えば、その遺伝子ライブラリーは、細菌細胞の表面膜タンパク質の遺伝子中にクローン化され、その得られる融合タンパク質が細菌の表面に検出される（Ladner et al．WO 88/06 630; Fuchs et al．（1991）Bio/Technology 9:1370-1371； Goward et al．（1 992）TIBS 18:136-140）。その他の実施態様においては、ＡＲＩＡのトランスメンブランドメインは、組み合わせライブラリーが膜に結合されるように、候補のＡＲＩＡ遺伝子中に含まれる。膜結合タンパク質の発現を評価するためのリガンドアフィニティーまたはパニング（panning）法も、よく確立されている（Aruff o et al．（1987）PNAS 84：8573；Seed et al．（1987）PNAS 84:3365；Kiefer et al．（1990）PNAS 87:6985）。そのようなパニングアッセイは、ＡＲＩＡ同族体、例えば、ｐ１８５^HERB4の細胞外部分、を提示する隔離細胞に働くすべての不溶化基質を用いて実施できる。同様にして、ＡＲＩＡを結合する蛍光標識分子が、潜在的な機能的ＡＲＩＡ同族体を記録するために使用される。細胞は、蛍光顕微鏡下で、肉眼で観察され、分離されるか、または細胞の形態が区別できる場合には、蛍光活性化細胞ソーターによって分離される。なおその他の実施態様においては、遺伝子ライブラリーは、ウイルス粒子の表面に融合タンパク質として発現される。例えば、繊維状ファージ系において、外来ペプチド配列は、感染性ファージの表面に発現され、それによって二つの重要な利点を与える。第１には、これらのファージは、非常に高濃度でアフィニティー基質に適用できるので、多数のファージが一度にスクリーニングできる。第２には、各感染性ファージは、その表面に組み合わせ遺伝子産物をコードしているので、もし特定のファージが低収率でアフィニティー基質から回収される場合でも、そのファージは、別の回の感染によって増殖できる。ほとんど同一なＥ．コリ繊維状ファージＭ１３，ｆｄおよびｆｌの群は、最も頻繁にファージ・ディスプレーライブラリーに使用されるが、これは、同様にファージｇＩＩＩまたはｇＶＩＩＩコートタンパク質のいずれかが、ウイルス粒子の完全なパッケィジングを破壊することなく融合タンパク質の作出に使用できるからである。（Ladner et al．PCT publication WO 90/02909； Garrard et al．PCT publication WO 92/09690； Marks et al．（1992）J．Biol．Chem．267:16007-16010； Griffth s et al．（1993）EMBO J 12:725-734； Clackson et al．（1991）Nature 352: 624-628； Barbas et al．（1992）PNAS 89:4457-4461）。例示すれば、組み換えファージ抗体系（RPAS,Pharmacia Catalog No．27-9400 -01）は、本ＡＲＩＡ組み合わせライブラリーの発現およびスクリーニングにおける使用のために、容易に改変することができる。例えば、ＲＰＡＳキットのｐＣＡＮＴＡＢ５ファージミド（ｐｈａｇｅｍｉｄ）は、ファージｇＩＩＩコートタンパク質をコードしている遺伝子を含む。ＡＲＩＡ組み合わせ遺伝子ライブラリーは、ｇＩＩＩ融合タンパク質として発現するようなｇＩＩＩシグナル配列に隣接するファージミド中にクローン化される。連結後、ファージミドは、受容能のあるＥ．コリＴＧ１細胞を形質転換するために使用される。形質転換細胞は、続いて、Ｍ１３Ｋ０７ヘルパーファージにより感染させて、ファージミドおよびその候補ＡＲＩＡ遺伝子挿入断片を救援する。得られる組み換えファージは、特定の候補ＡＲＩＡをコードしているファージミドＤＮＡを含み、対応する融合コートタンパク質の一つまたは多数のコピーを提示する。ＡＲＩＡ受容体を結合できるファージ提示された候補ＡＲＩＡは、選択されるか、またはｐａｎｎｉｎｇによって増やされる。例えば、ファージライブラリーは、培養された骨格筋細胞（例えば、ラットＬ６細胞、ＡＴＣＣＣＲＬ１４５８）に、４℃（エンドサイトーシスを防ぐために）で適用され、結合しないファージが細胞から洗い落とされる。次いで、結合されたファージが単離され、組み換えファージが、少なくとも一つの野生型ｇＩＩＩコートタンパク質を発現していれば、それらは、Ｅ．コリ感染能を保持するであろう。かくして、Ｅ．コリの再感染回数を継続し、ｐａｎｎｉｎｇが、ＡＲＩＡ同族体を多量に増加させ、次いで、それらは、作動物質および拮抗物質を区別するために生物学的活性についてスクリーニングされる。また、ＡＲＩＡの作用機作は、ＡＲＩＡ処理に感受性の細胞に存在する１８５ｋＤ（ｐ１８５）タンパク質のチロシンリン酸化に強く関係すると考えられることが分かった。ニワトリ、ラット、生後マウスおよびヒト筋溶解物のウエスタンブロットが、ＡＲＩＡ処理された細胞から得られ、抗ホスホチロシン抗体により現像され、ＡＲＩＡが、ｐ１８５のリン酸化を誘導することが示された。意義あることは、ＡＲＩＡ誘導されるｐ１８５のリン酸化は、筋細胞を含まないニワトリ繊維芽細胞には観察されない。同様なＡＲＩＡによる繊毛神経節の処理では、ｐ１８５のリン酸化を生じる。ＥＧＦ，ＰＤＧＦおよびインシュリンは、全てニワトリ筋タンパク質のチロシンリン酸化を促進するが、リン酸化されたタンパク質は、ｐ１８５とは容易に区別される。ＥＧＦ，ＣＳＦ１およびＮＧＦは、何の作用もしなかった。これらの因子のどれも、ＡＲＩＡと同じバンドのリン酸化を誘導しなかった。さらに、その因子のどれも、細胞の表面膜におけるＡＣｈＲの合成を増大しなかった。アグリン（ａｇｒｉｎ）、ＡＣｈＲの凝集を促進するがＡＣｈＲの合成を促進しないことが既に知られているタンパク質、は、同じくｐ１８５のリン酸化には作用しなかった。ＡＲＩＡ誘導されるリン酸化は、急速で、一過性であり、明瞭な抗体染色バンドが、ＡＲＩＡによる細胞処理の１分間以内に目視された。クロマトグラフィー精製の各段階で、ｐ１８５のリン酸化は、受容体挿入バイオアッセイによってＡＲＩＡポジティブと記録されるＡＲＩＡ画分と高度に関係していた。受容体バイオアッセイによるポジティブな画分とｐ１８５リン酸化の間の相互関係に加えて、両活性は、殆ど同一の用量応答曲線を示した。スラミン（ｓｕｒａｍｉｎ）、それらの受容体への多くの成長因子の結合を妨害するとして知られる薬物は、新しいα−ＢＴＸ結合部位の発生ならびに同じ用量依存によるｐ１８５リン酸化の両方をブロックした。重要なことは、スラミンが、同じ用量範囲におけるテトラドトキシン（ＴＴＸ）に誘導されるＡＣｈＲ合成には作用しないことである。ＡＲＩＡは、ｐ１８５の細胞外ドメインに結合すると思われるが、これは、約４００ｋＤ（ｐ１８５二量体プラスＡＲＩＡ）および約２２０ｋＤ種（ｐ１８５プラスＡＲＩＡ）を形成する、２種のタンパク質の明らかな架橋によって証明される。ｐ１８５がチロシンキナーゼであり、ｐ１８５へのＡＲＩＡの結合およびｐ１８５の最終的リン酸化が、ニコチン性ＡＣｈＲサブユニット発現の観察された制御に類似の機作によるように、イオンチャンネルを最終的に制御する、ＡＲＩＡ誘導カスケードにおける最初の段階の一つであることが、最も高い可能性をもつ。ｐ１８５シグナルが、ｎｅｕプロトオンコジーンタンパク質のリン酸化に関与できるか否かを決定する目的で（Yarden et al．1988 Annu．R ev．Biochem．57:443）、全てのＡＲＩＡ誘導リン酸化バンドが、抗ｎｅｕ抗体によって沈降される能力について試験されたが、ＡＲＩＡ処理細胞のｎｅｕを沈降させるような抗Ｐｔｙｒ抗体の能力と同様であった。ラットｎｅｕタンパク質を免疫沈降できる２種のモノクローナル抗体（Oncogene Science Inc.，Catalog No．OP15(Ab3)およびOP16(Ab4)）が、これらの実験に使用された：Ａｂ３（ｎｅｕの細胞内ドメインに対するＩｇＧ）およびＡｂ４（細胞外ドメインに対するＩｇＧ）。Ｌ６細胞は、ニワトリ脳の精製ＡＲＩＡを用いて１時間処理された。処理細胞および対照細胞が、１％ＮＰ−４０，１５０ｍＭＮａＣｌ，１ｍＭオルトバナジン酸およびプロテアーゼ阻害剤を含むトリスバッファー溶液（ｐＨ８）で溶解された。不溶性成分は、遠心によって除去され、上澄液は、１）アガロースビーズに結合された抗Ｐｔｙｒ、２）Ａｂ３およびタンパク質−Ｇアガロースビーズ、または３）Ａｂ４およびタンパク質−Ａアガロースビーズのいずれかとともにインキュベートされた。抗Ｐｔｙｒ抗体によるｐ１８５の免疫沈降は、定量的であるが、いずれかの抗ｎｅｕ抗体によるｎｅｕタンパク質の免疫沈降はそうではないことを試験結果は示唆する。従って、上澄液からｎｅｕタンパク質の定量的除去を達成するために、抗体の新鮮なバッチを用いて、３回連続（各３時間）インキュベートした。その後、ビーズおよび上澄液の各バッチが、ｐ１８５およびｎｅｕタンパク質の存在について、ウエスタンブロットによって試験された。抗Ｐｔｙｒは、対照細胞からのいかなる検出可能な量のｎｅｕをも沈降させなかったが、若干のｎｅｕシグナルは、処理細胞の沈降物で検出された。しかしながら、ｎｅｕシグナルのほとんどは、上澄液に残っているが、全てのリン酸化されたｐ１８５シグナルは、ビーズによって除去された。抗ｎｅｕ抗体を用いて、本発明者らは、上澄液からｎｅｕタンパク質を定量的に除去することができた。どちらの場合においても興味あることは、ｐ１８５シグナルが完全には除去されないことである。Ａｂ４の場合において、若干のｐ１８５シグナルは、初回のビーズによって、ごく少ない量が第２回に沈降され、そして第３回には全く沈降しなかった。それにもかかわらず、沈降されたｐ１８５の量は、最終の上澄液に残されたシグナルよりもはるかに少なかった。Ａｂ３は、処理細胞において、どんなｐ１８５シグナルの持ち込みもなしに、ｎｅｕを効果的に沈降し、実質的に全チロシンリン酸化シグナルは、上澄液に残った。実施例１ＡＣｈＲバイオアッセイ単核化細胞は、先に記載される要領で（Ｂｕｃ−Ｃａｒｏｎｅｔａｌ．、１９８３Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．９５：３７８）１０−１２日令のニワトリヒナの胚（Ｅ１０）の胸筋から分離した。繊維芽細胞数を減らすために細胞を完全培地中に懸濁し、そしてコーティングを施していない１０ｍｍ組織培養用デッシュ（ＦａｌｃｏｎＬａｂｗａｒｅ社、Ｏｘａｎａｒｄ，．ＣＡ）中で３７°Ｃにおいて３０分間プレート培養した。未吸着細胞を回収し、そしてゼラチンコーティングを施してある９６ウエルマイクロテスト培養用プレート（９６−ｗｅｌｌＭｉｃｒｏＴｅｓｔｃｕｌｔｕｒｅｐｌａｔｅ）（ＦａｌｃｏｎＬａｂｗａｒｅ社）内において、ウマ血清（１０％ｖｏｌ／ｖｏｌ）、グルタミン（１ｍＭ）、ペニシリン（５０Ｕ／ｍｌ）、ストレプトマイシン（５０ μｇ／ｍｌ）、およびオボトランスフェリン（４０ｐｇ／ｍｌ）を補足してある１００μｌのイーグル最小必須培地（Ｅａｇｌｅ’ｓｍｉｎｉｍａｌｅｓｓｅｎｔｉａｌｍｅｄｉｕｍ）中５０，０００／ウエルの密度でプレート培養した。細胞には３日および５日目に１００μｌの培地を与えた。７日目には、６０ μｌの培地、もしくは１０μｌの検査用分画を添加してある５０μｌの培地を細胞に与え、そしてＡＣｈＲ数を２４時間後に測定した（以下を参照せよ）。アッセイ予定のカラム分画のアリコートをＳｐｅｅｄ−Ｖａｃ遠心機（ＳａｖａｎｔＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ、Ｉｎｃ．社、Ｈｉｃｋｓｖｉｌｌｓ、ＮＹ）内で脱水し、そして完全培地内に溶かした。不揮発性物質を含む試料は、Ｓｅｐ−ｐａｋｃ₁₈カートリッジ（ＷａｔｅｒｓＡｓｓｏｃｉａｔｅｓＭｉｌｌｉｐｏｒｅＣｏｒｐ．社、Ｍｉｌｆｏｒｄ、ＭＡ）内で最初に脱塩した。＜１μｇの蛋白質を含む試料に１０μｇの、ＢＳＡを補足した。表面のＡＣｈＲ数を測定するために、細胞を５ｎＭの［¹²⁵Ｉ］α−ＢＴＸを含む完全培地内で３７°Ｃにおいて１時間インキュベートした。２％のＢＳＡを含む１リットルのＣａ⁺⁺−非含有性ハンクス平衡化塩溶液（Ｈａｎｋ’ｓｂａｌａｎｃｅｄｓａｌｔｓｏｌｕｔｉｏｎ）（ＢＳＳ）中にそのプレートを浸すことにより細胞を２度洗浄し、そしてその後デオキシコール酸（０．５ｍｇ／ｍｌ）を含む１５０μｌの１ＮＮａＯＨ中に溶かした。結合した［¹²⁵Ｉ］α −ＢＴＸの量をガンマー計測器で測定した。１０^-7Ｍの非ラベル化α−ＢＴＸの存在下において結合した［¹²⁵Ｉ］α−ＢＴＸの量として得られる非特異的結合を各試行から差し引いた。表面膜内へのＡＣｈＲの取り込み率をＤｅｖｒｅｏｔｅｓおよびＦａｍｂｒｏｕｇｈ（１９７５）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ６５：３３５（引用することにより本明細書内に取り込まれる）により記載される要領で決定した。筋肉表面に露出される全てのレセプターを非ラベル化α−ＢＴＸで遮断した（１０^-7Ｍで３７℃下、１時間）。細胞を完全に洗浄し、１００μ１の新鮮な培地中に入れてインキュベーターに戻し、そして新規の毒素結合部位数を、その時点から様々な間隔をおいて［¹²⁵Ｉ］α−ＢＴＸを添加するアッセイにより検査した。 α−ＢＴＸをクロラミン−Ｔ−触媒化反応（ＨｕｎｔｅｒおよびＧｒｅｅｎｗｏｏｄ、１９６２Ｎａｔｕｒｅ１９：４９５）によりヨウ素化し、そしてモノヨウ化誘導体をサイズ排除（ＳｅｐｈａｄｅｘＧ−１０；ＰｈａｒｍａｃｉａＦｉｎｅＣｈｅｍｉｃａｌｓ、Ｉｎｃ．社、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）および陽イオン交換（ＣＭ−Ｓｅｐｈａｄｅｘ；ＰｈａｒｍａｃｉａＦｉｎｅＣｈｅｍｉｃａｌｓ社）クロマトグラフィーにより精製した。既知の濃度の非ラベル化α−ＢＴＸとの競合反応により評価したところ、モノヨウ化毒素の比活性は様々な調製物において８００および１２００ｃｐｍ／ｆモルの間の範囲に広がっていた。実施例２ＡＲＩＡの精製ＡＲＩＡの精製は、逆相、イオン交換、およびサイズ排除クロマトグラフィーにより、以下に示す段階で実施した。（１）ニワトリ成体の３０００の凍結脳をドライアイス内で押し潰し、そして−２０℃下のアセトン中ですりつぶすことにより脱脂した。このスラリーをＷｈａｔｍａｎＮｏ．５４濾紙（ＷｈａｔｍａｎＣｈｅｍｉｃａｌＳｅｐａｒａｔｉｏｎＩｎｃ．社、Ｃｌｉｆｔｏｎ、ＮＪ）上に回収し、ジエチルエーテル（−２０℃）で洗浄し、そして−９０℃下に保存した。抽出する際後続段階は４℃において実施した。（２）残存する脳「懸濁物（ｍｕｄ）」を、２％のトリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）、５％のギ酸、１Ｎの塩酸、０．１Ｍの塩化ナトリウム、０．０１％のチオジクリコール、各１μｇ／ｍＬのペプスタチン、ロイペプチン、およびフッ化フェニルメチルスルホニル、ならびに１０ｍＭのＥＤＴＡからなる混合液（ｃｏｃｋｔａｉｌ）で酸抽出した。ＧＳＡローター（ＳｏｒｖａｌｌＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社）による６０００ｒｐｍ、６０分間の遠心の後、上清をＷｈａｔｍａｎＮｏ．５４濾紙を通して濾過した。（３）その後濾過済み抽出物を、０．１％のＴＦＡで予め平衡化させてあるＣ１８樹脂上にバッチ吸着させた。この樹脂を０．１％のＴＦＡで洗浄し、そして樹脂に結合した物質をイソプロピルアルコールで溶出させた。（４）この抽出物のｐＨを０．１ＮのＮａＯＨで７．０に合わせ、そして遠心してすべての沈殿物を除去した。中和済み抽出物を、２５ｍＭの４−モルホリンエタンスルホン酸（ＭＥＳ）（ｐＨ６）中で平衡化させたＣＭセファロースカラム上でのクロマトグラフィーにかけ、そして塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）の濃度勾配液で溶出した。（５）ＡＲＩＡを含む溶出分画のｐＨをＴＦＡで３．０に合わせ、そして０．１％のＴＦＡで平衡化させたＶｙｄａｃＣ４逆相カラム上でのクロマトグラフィーにかけ、そしてイソプロピルアルコールの濃度勾配液で溶出した。（６）ＡＲＩＡ含有性分画を合わせ、そしてリン酸緩衝化食塩水（ＰＢＳ）で平衡化させたヘパリン−ＴＳＫカラム上でのクロマトグラフィーにかけ、そしてＮａＣｌの濃度勾配液で溶出した。各分画を、レセプター（受容体）挿入アッセイ（実施例１を参照せよ）によりＡＲＩＡについてアッセイし、そしてまた抗−ＰｒＬＰ抗体を用いるウエスタンブロット分析によりＣｈ−ＰｒＬＰの存在についてアッセイした。ＡＲＩＡについては陽性を示すがＣｈ−ＰｒＬＰは陽性でない分画を合わせた。（７）合わせた分画を、ＰＢＳで平衡化および溶出を行うＳｕｐｅｒｄｅｘ７５１６／１２０ゲル濾過カラム（ＦＰＬＣ）上でのクロマトグラフィーにかけた。（８）ＳｕｐｅｒｄｅｘカラムのＡＲＩＡ含有性分画を合わせ、それを０．１３％のヘプタフルオロブチル酸内で平衡化させたＣ４−逆相カラム上でのクロマトグラフィーにかけ、そしてイソプロピルアルコールの濃度勾配液で溶出した。（９）その後ＡＲＩＡ含有性Ｃ４分画を合わせ、そして０．１パーセントのＴＦＡ内で平衡化させたＣ１８逆相カラム上でのクロマトグラフィーにかけ、そしてＴＦＡ中のアセトニトリルの段階的濃度勾配溶出を行った。実施例３トリプシン断片からのＰＣＲプライマー実施例２のＣ１８逆相クロマトグラフの生物活性溶出分画をレセプターバイオアッセイによりＡＲＩＡについてアッセイし、そして混入物を排除する目的で銀染色により可視化させるＳＤＳ−ＰＡＧＥによる分析を行った。適切な分画を合わせ、そしてトリプシンで部分消化し、得られるペプチドを逆相クロマトグラフィーにより分離した。その後クロマトグラフ済み分画をエドマン分解法により分析したところ、２本のクロマトグラム分画から各々単一配列が得られた。これら各々のトリプシン断片について化学的に決定したアミノ酸配列を以下に示す。ペプチド１： Asn-Arg-Pro-Glu-Asn-Val-Lys （配列番号５）ペプチド２： Ala-Thr-Leu-Ala-Asp-Ala-Gly-Glu-Tyr-Ala-Cys-Arg （配列番号６）これらのアミノ酸配列から、ラットのＮＦＤ（Ｙａｒｄｅｎｅｔａｌ．）およびヒトのヘレグリン（Ｈｏｌｍｅｓｅｔａｌ．）への相同性が示された。これらの蛋白質との配列相同性により、ペプチド１は２つのペプチドの内でよりＮ−端寄りのペプチドであることが示唆された。ＰＣＲプライマーを作製するためには、センスオリゴヌクレオチドについてはペプチド１のアミノ酸配列を基にし、そしてアンチセンスオリゴヌクレオチドについてはペプチド２の配列を基にした。以下に示すヌクレオチド配列を有するＰＣＲ用の一対の縮重オリゴヌクレオチドプライマーを設計した。プライマー２Ｓ： GICCIGARAAYGTNAAG （配列番号７）プライマー２Ａ： CKRCAIGCRTAYTCNCC （配列番号８）プライマー２Ｓはペプチド１のセンスコドンに相当するが、プライマー２Ａはペプチド２のアンチセンスコドンに相当する。実施例４脊髄ＲＮＡ中のＡＲＩＡ配列のＰＣＲ増幅ニワトリヒナの脊髄ＲＮＡは、Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ（引用することにより本明細書内に取り込まれるＣｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉの米国特許第４，８４３，１５５号；Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉｅｔａｌ．１９８７ＡｎａｌＢｉｏｃｈｅｍ．１６２：１５６）のチオシアン酸グアニジニウム／フェノール抽出法により１９−２０日令のニワトリヒナの胚脊髄から調製した。オリゴ（ｄＴ）_12-18プライマーおよびモロニーマウス白血病ウイルス（ＭｏｌｏｎｅｙＭｕｒｉｎｅＬｅｕｋｅｍｉａＶｉｒｕｓ）（Ｍ−ＭＬＶ）の逆転写酵素（例えば、引用することにより本明細書内に取り込まれる、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ．ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ、Ｓａｍｂｒｏｏｋ、Ｆｒｉｔｓｈ、およびＭａｎｉａｔｉｓＥｄｓ１９８９：ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ：第５章、を参照せよ）を用いてポリアデニル化ＲＮＡを逆転写させた。基本的には、２μｌの総ＲＮＡを２０μＬの容量の緩衝液中で１μｇのオリゴ（ｄＴ）_12-18に対して３０分間アニールさせた。アニール混合物を逆転写酵素緩衝液、ジチオスレイトール（ＤＴＴ、最終１０ｍＭ）、および各ｄＮＴＰ（４００ μＭ）で最終容量が５０μＬになるように希釈した。２００ＵのＭ−ＭＬＶ逆転写酵素（ＧｉｂＣｏ−ＢＲＬ社、ＧａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇＭＤ、カタログＮｏ．８０２５）を添加し、そして反応物を４２℃において６０分間インキュベートし、その後６５℃において１５分間熱による不活化を行った。プライマー２Ｓおよび２Ａを用いて、ニワトリヒナ脊椎のｃＤＮＡについてのＰＣＲを実施した（引用することにより本明細書内に取り込まれる、Ｍｕｌｌｉｓの米国特許第４，６８３，２０２号、Ｎｏｒｍａｎｅｔａｌ．の米国特許第４，８００，１５９号、およびＥｒｌｉｃｈｅｔａｌ．の米国特許第４，９６５，１８８号を参照せよ）。簡潔に述べると、５μＬの逆転写酵素混合物、４００μＭの各ｄＮＴＰ、１μｇの各プライマー、１× ＴａｑＤＮＡポリメラーゼ緩衝液、および５ＵのＴａｑＤＮＡポリメラーゼ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ−Ｍａｎｎｈｅｉｍ社、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）カタログ番号１１４６−１６５）を含む１００μＬの反応物中でＰＣＲを実施した。ＰＣＲは、９４℃で１分間、４４℃で１分間、そして７２℃で１分間からなる周期４０回分を通して実施した。このＰＣＲ産物をアガロースゲル上で泳動し、そして選択されたバンドを切り出し、そして精製した。先に記載したラットＮＤＦとの相同性から、９４ヌクレオチドの断片がこれら２つのプライマーにより増幅されるはずであることが予測された。逆転写済みニワトリヒナ脊髄ＲＮＡからの９７ヌクレオチド分のｃＤＮＡをアガロースゲルから単離した。ＴＡＣｌｏｎｉｎｇ（商標）キット（ＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎＣｏｒｐ社、ＳａｎＤｉｅｇｏＣＡ、カタログ番号Ｎｏ．Ｋ２０００）を用いて精製済み産物をＰＣＲ−ＩＩベクター内に連結させた（引用することにより本明細書内に取り込まれるＣｌａｒｋ１９８８ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓ．１６：９６７７；Ｇｒａｈｍｅｔａｌ．１９９１ＰＮＡＳ８８：１０２６７；およびＪａｒｏｌｉｍｅｔａｌ．１９９１ＰＮＡＳ８８：１１０２２を参照せよ）。クローン化済み挿入断片はジデオキシ鎖終結法により配列決定した（引用することにより本明細書内に取り込まれるＳａｎｇｅｒｅｔａｌ．１９７７ＰＮＡＳ７４：５４６３を参照せよ）。この９７ヌクレオチド長の配列は、以下のようなものであることを決定した。９７塩基断片：実施例５λｇｔ１０ニワトリ脳のｃＤＮＡライブラリーのスクリーニング１０から９７までのオリゴヌクレオチドの範囲にわたるラベル化プローブが作製されるように、ランダムオリゴヌクレオチドプライミング法（引用することにより本明細書内に取り込まれるＦｅｉｎｂｅｒｇｅｔａｌ．１９８３Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１３２：６；およびＦｅｉｎｂｅｕｇｅｔａｌ．１９８４Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１３７：２６６、を参照せよ）、［α −³²Ｐ］−ラベル化ｄＣＴＰ、およびＰｒｉｍｉｔ（証票）ラベル化用キット（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社、ＬａＪｏｌｌａ、ＣＡ）を用いて９７量体断片を³² Ｐでラベル化した。その後これらの³²Ｐ−ラベル化プローブを用いて、ＲａｎｓｃｈｔＥ１３ニワトリ脳のｃＤＮＡ λｇｔ１０ラィブラー（引用することにより本明細書内に取り込まれるＲａｎｓｃｈｔｅｔａｌ．１９８８、Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１０７：１５６１、を参照せよ）をスクリーニングした。簡潔に述べると、組換えファージとプレート培養中の細菌とを混合し、そして３０℃においてインキュベートし、トップアガロース（２×ＹＴ／Ｍｇ／マルトース）に添加し、そしてこの混合物を２×ＹＴプレートに移した。このプレートを、肉眼では観察できるが密集まではしていないプラークが存在するようになるまで３７℃においてインキュベートし、そしてその後４℃においてインキュベートした。ニトロセルロースフィルターを使用して各冷却プレートから二枚ずつプラークを移し取った。これらのフィルターを変性させ、そしてその後吸引下において２時間、７０℃で加熱した（引用することにより本明細書内に取り込まれるＢｅｎｔｏｎｅｔａｌ．１９７７Ｓｃｉｅｎｃｅ１９６：１８０、を参照せよ）。加熱済みフィルターを１０００μＬの５０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８）、１ＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＥＤＴＡ、および０．１％のＳＤＳ内で３７℃において約１時間予備洗浄した。その後このフィルターを４０％のホルムアルデヒド／６× ＳＳＣ／０．２％のＳＤＳ内で、３７℃において約５．７５時間、１００ μｇ／ｍｌのサケ***ＤＮＡと予備ハイブリダイズさせた。その後、予備ハイブリダイズさせたフィルターを４０％のホルムアミド／６× ＳＳＣ／０．２％のＳＤＳ内で、³²Ｐ−ラベル化プローブ（先を参照せよ）および１００μｇ／ｍｌのサケ***ＤＮＡと３７℃において一晩ハイブリダイズさせ、そして最終緊縮性（高緊縮性）が０．１× ＳＳＣ／０．１％ＳＤＳとなるように４５℃下において洗浄した。その後このフィルターを−７０℃においてｘ−線に露出し、そしてオートラジオグラムの現像を行った。ニトロセルロースへの写し取りを行ったもともとのプレートとオートラジオグラムとを並べてみると、λｇｔ１０プラークと銀粒子密度との比較により陽性ハイブリッド形成の評価を行うことができた。放射性ラベル化プローブとのハイブリッド形成について陽性と判定されたファージをアガロースプレートから単離し、そして先の方法により再スクリーニングした。二度目のスクリーニングの後に単離されたファージを、ｃＩ遺伝子内のＥｃｏＲＩ部位を途中に含むλｇｔ１０配列に特異的なプライマーを使用するＰＣＲ増幅に供した。単離された最長のｃＤＡＮクローンは、図１に示される配列を含む２．４ｋｂの挿入断片であった。実施例６組換えＡＲＩＡの発現最長のニワトリＡＲＩＡクローンである２．４ｋｂのｃＤＡＮを、ＣＯＳ細胞内における高レベル発現を可能にするためにＳＶ４０ウイルスの複製起点を含む真核生物発現ベクターｐｃＤＮＡＩ／Ａｍｐ（ＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎＣｏｒｐ．社、ＳａｎＤｉｅｇｏ、ＣＡ；カタログ番号Ｖ４６０−２０）の非反復ＥｃｏＲＩ部位内にクローン化した。この挿入断片はサイトメガロウイルスの即時型遺伝子のエンハンサー／プロモータ領域の調節下に存在する。適切な向きおよび逆向きの両方において２．４ｋｂのｃＤＮＡを宿す構築物を作製した。いろいろなラスミド構築物を作製し、細菌内で増殖させた後に転写実験に十分であるような大量の産物を産生させた。ＤＯＴＡＰトランスフェクション試薬（ＤＯＴＡＰＴｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎＲｅａｇｅｎｔ）（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ−Ｍａｎｎｈｅｉｍ社、Ｉｎｄｅａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ、カタログ番号１２０２−３７５）を用いてプラスミド構築物をサルのＣＯＳ−７細胞内にトランスフェクトさせた。簡潔に述べると、１．７μｇの特異的プラスミドを１０μｇのＤＯＴＡＰと混合し、そして室温において１０分間放置した。その後この混合物を、１０％のＦＢＳを補足してあるＤＭＥＭ中で増殖させたＣＯＳ−７細胞の３５ｍｍデッシュに重層した。このトランスフェクション混合物を細胞上に１８時間放置した。このインキュベーション後、トランスフェクション混合物を取り除き、そして培地を新鮮なＭＥＭ／１０％ウマ血清／２％ニワトリヒナの胚抽出物と入れ替えた。細胞を４８時間増殖させて、培地に種々の因子が分泌される条件を整えた。この条件培地を回収し、そしてこれを、ニワトリ筋肉の初期培養物を用いるＡＣｈＲ取り込み速度アッセイもしくはラットＬ６細胞におけるｐ１８５のリン酸化アッセイにおいて、未希釈のままもしくは幾つかの希釈物としてのいずれかの状態で使用した。実施例７ラットＡＲＩＡのクローニングおよび発現総ＲＮＡを、生後２０日目（Ｐ２０）のラットの脊髄からＣｈｏｍｃｙｚｎｓｋｉの方法により単離した。２μｇのＲＮＡを６５℃に１０分間加熱することにより１μｇのオリゴ（ｄＴ）_12-18に対してアニールさせ、その後この試料を氷上に５分間おいた。逆転写用緩衝液、各ｄＮＴＰ（最終４００μＭ）、ＤＴＴ（最終１０ｍＭ）、ＲＮアーゼ阻害剤、および４００Ｕのモロニーマウス白血病ウイルスの逆転写酵素（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ社、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）を５０μｌの最終反応容積になるように添加した。酵素の不活化のために、これらの試料を４２℃において１時間、そしてその後に６５℃において１５分間インキュベートした。ラットの脊髄由来ｃＤＮＡを、ラットＮＤＦの既述のＥＧＦ−様ドメインを挟み込む配列に相当するプライマーを２つ組み合わせて使用するポリメラーゼ連鎖反応に供した（Ｗｅｎｅｔａｌ．、１９９２Ｃｅｌｌ６９：５５９）。最も外側に位置するオリゴヌクレオチド対は、以下に示す配列に相当し、それらは、トＮＤＦ配列のアミノ酸１６２−１６９、 GANTSSST （配列番号１１）についての情報をコードするセンス鎖の大半の部分を表す）、ならびにCACCACACACATGA TGCCGAC （配列番号１２）（これは、アミノ酸２５６−２６２、 VGIMCVV （配列番号１３）に相当するアンチセンス鎖の大半の部分を表す）である。最も内側のオリゴヌクレオチド対は外側のオリゴヌクレオチド対を利用して作成されたＰＣＲ産物からの増幅を考慮して設計したが、それらはラットのＮＤＦについての配列と比較すると突然変異をも含んでおり、これらの突然変異は、制限酵素消化後に細菌性融合蛋白質発現ベクターｐＭＡＬ−ｐ２（Ｎ．Ｅ．Ｂｉｏｌａｂｓ社、Ｂｅｖｅｒｌｙ、ＭＡ；カタログ番号８００）内へのＰＣＲ産物の配向特異的クローニングを直接行うことを考慮している。内側のオリゴヌクレオチドの配列は以下に示す、 CACGACTAGTACTAGCCATCTC （配列番号１４）（これは、ラットＮＤＦのアミノ酸１７２−１７９についてのセンス鎖コード情報に相当するが、これには酵素ＳｃａＩ用の制限部位を作製するために突然変異が導入されており、この酵素部位によって正確に各コドン間が開裂を受け、そして読み枠がずれないまま残る）、ならびに CGACAAGCTTCTAGTAGAGTTCC（配列番号１５）（これはラットＮＤＦのアミノ酸２３６−２４４についてのアンチセンス鎖コード情報に相当するが、もともとの配列と比較するとこれには突然変異が生じており、これらの突然変異により読み枠として読み取られる（ｉｎ−ｆｒａｍｅ）翻訳停止コドン、ならびにｐＭＡＬ−ｐ２ベクター内へのクローニングを考慮してある制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩ用の部位が作製されている）である。これらのプライマーを組み合わせて使用してＰＣＲ反応を以下の要領で実施したが、それは、２μｌの脊髄ｃＤＮＡ逆転写反応物、１μｇの各プライマー、４００μＭの各ｄＮＴＰ、ＴａｑＤＮＡポリメラーゼ反応用緩衝液、および２．５ＵのＴＡＱＤＮＡポリメラーゼ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ−Ｍａｎｎｈｅｉｍ社、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）カタログ番号１１４６−１６５）であった。反応は以下に示すように繰り返し、それは、９４℃で１０分、５２℃で２分、７２℃で２分、その後に９４℃で１．５分、５２℃で１．５分、そして７２℃で２分を３９周期分、そしてその後に９４℃で２分、５２℃で２分、７２℃で１０分からなる最終周期を行う。産物をアガロースゲル電気泳動により分析した。ラットＮＤＦの配列の基づくと、外側のプライマー対については３０２ｂｐのＰＣＲ産物が、そして内側のプライマー対については２１５ｂｐのＰＣＲ産物が予測された。アガロースゲル分析により、外側および内側プラィマー対について、それぞれ３１７および２３０ｂｐの産物が示された。ベクターｐＣＲ−ＩＩおよびＴＡクローニングキット（ＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎＣｏｒｐ．社、ＳａｎＤｉｅｇｏ、ＣＡ；カタログ番号Ｋ２０００−０１）を使用してこれらのＰＣＲ産物をクローン化した。これらのクローンの配列分析により、両配列とも、ニワトリにおいて同定されたＡＲＩＡおよびヒトのヘレグリンβ−１配列に密接に関連するＥＧＦ−様ドメインであることが明らかになった。内側のプライマー対はｐＭａ１−ｐ２内へのｃＤＮＡ断片の直接クローニングを考慮した上での突然変異を含んでいる。このベクターは一群の非反復クローニング部位に連結させてある大腸菌のマルトース結合蛋白質（ＭＢＰ）のための遺伝子を含んでいるが、これは、ＭＢＰとの融合蛋白質としての新規の配列の発現ならびにその後のマルトース樹脂上での親和性クロマーグラフィーによるそれらの精製を考慮した上でのことである。クローニング部位には、外来性ｃＤＮＡの挿入部位の直前に位置する因子Ｘａプロテアーゼのための認識配列も含まれている。この構築物には、この培養物へのイソプロピル −β−Ｄ−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）の添加による融合蛋白質の発現誘導を考慮した上での融合用の誘導可能プロモーターも含まれている。ベクターｐＭＡＬ−ｐ２においては、ＭＢＰ遺伝子内に、ＭＰＢ融合蛋白質を標的としてこれをペリプラズム腔へと輸送するためのシグナル配列をコード化する情報も含まれている。ペリプラズム蛋白質は適切なジスルフィド結合形成を有する可能性があり、そして細胞内に閉じ込められている融合蛋白質に必要なものと比較するとさほど苛酷でない方法により精製することが可能である。ＥＧＦ−様ドメインを含む先に記載のＰＣＲ産物の一部分をＳｃａＩおよびＨｉｎｄ３で消化し、そしてＸｍｎＩおよびＨｉｎｄ３で消化することにより調製したｐＭＡＬ−ｐ２内にクローン化した。このプラスミドをＤＨ５−α細菌内に形質転換させた。配列決定を行うことにより、このプラスミドはマルトース結合蛋白質に読み枠がずれていない状態で融合されている予想配列をコード化していることが証明された。融合蛋白質の産生のためには培養物をＡ₆₀₀＝０．５の密度にまで増殖させ、その後ＩＰＴＧを最終濃度０．３ｍＭになるように添加することによる誘導を行った。この培養物をさらに２時間インキュベートし、その後細菌を遠心により回収した。ペレットを、３０Ｍｍのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、２０％のスクロース、１ｍＭのＥＤＴＡを含む緩衝液中に再懸濁させ、そしてこの緩衝液に対して５−１０分間インキュベートした。この細菌を再びペレット化し、冷却した５ｍＭのＭｇＳＯ₄中に再懸濁させ、そして氷水浴槽中のこの溶液中で１０分間撹拌した。この細菌を遠心により再びペレット化させ、そして溶液をデカンテーションにより取り出した。この溶液は、放出された融合蛋白質を含む「冷却浸透圧ショック液」である。融合蛋白質の存在は、ＳＤＳポリアクリルアミドゲル分析により確認した。ラットのＡＲＩＡ融合蛋白質を含む冷却浸透圧ショック液でＬ６細胞およびニワトリヒナの筋管を処理すると、ラットＬ６およびニワトリヒナの筋管中のｐ１８５の著しいリン酸化が生じる。先に記載の一連の実験においては、ＰＣＲは、ラットＮＤＦのＥＧＦ−様ドメインを取り囲むヌクレオチドの配列に相当するプライマーを使用して実施した。記載するように、ＥＧＦ−様ドメイン／ｐＭＡＬ融合ベクターの作製に際しては、作製されたＰＣＴ産物によりＥＧＦ−様モチーフのβ−１形態を宿すラット脊髄中の蛋白質の存在が示された。次の一連のＰＣＲ実験においては、ＮＤＦに関連するｃＤＮＡの配列を増幅させる目的で、ＥＧＦ−様ドメインの始めと翻訳停止コドンとの間、ならびにＥＧＦ−様ドメインの最後と翻訳イニシエーターのメチオニン領域との間のプライマーを選択した。ＰＣＲ増幅の際には、オリゴヌクレオチド CATTTTACCTTTCGCTAT GAGGAG （配列番号１６）（「３−ＡＩ」）（これは、Ｗｅｎｅｔａｌ．のラットＮＤＦのヌクレオチド１５８６−１６０９に相当するアンチセンス鎖である）を、オリゴヌクレオチド GCGCAAACACTTCTTCATCCAC （配列番号１７）（「４−ＳＯ」）（これは、ラットＮＤＦのヌクレオチド８２１−８４２に相当する）と対形成させた。Ｐ２０ラットの脊髄由来ｃＤＮＡをＰＣＲ用の鋳型として使用すると、この増幅により７８８ｂｐのバンドが生じるはずであった。この反応において可視化させた産物はこのサイズ範囲とは一致したが、約＋／−２０ｂｐを下回る誤差範囲内においてこれを特定することができなかった。ＮＤＦの膜橋渡しドメイン（ｍｅｍｂｒａｎｅｓｐａｎｎｉｎｇｄｏｍｅｉｎ）とそのＮ−末端メチオニン領域との間の増幅を考慮したプライマー対を使用してさらに別のＰＣＲを実施した。このオリゴヌクレオチドは以下に示す配列に相当しており、その配列 CACCACACACATGATGCCGAC （配列番号１２）（「４−ＡＯ］）は、ヌクレオチド１１０７−１１２２の間にあるラットＮＤＦの配列のアンチセンス鎖を表す。このＰＣＲに用いた第二オリゴヌクレオチドは、配列 CTCATCTTCGGCGAGATGTCTG （配列番号１８）（「３−ＳＩ」）を含み、これはラットＮＤＦ配列のヌクレオチド３２２−３４３に相当し、この領域はイニシエーターのメチオニン（配列中下線を施した）を含む。これらのオリゴヌクレオチドを用いるＰＣＲによっては８００ｂｐの産物が生じるはずであった。しかしながら、我々はいずれの産物をも増幅することができず、このことにより発表されているＮＤＦ配列のＮ− 末端配列は脊髄形態では存在しそうもないことが示された。融合蛋白質の項目において記載されるＰＣＲから、ヌクレオチド１１０７−１１２２（貫膜ドメイン配列内に含まれる）に相当するオリゴヌクレオチドにより表される配列は存在することが判明している。ニワトリのＡＲＩＡｃＤＮＡ内に見いだされた新規の配列のために、我々は、新規の配列の内の一つである既述のＮｅｘ−２を生じるニワトリの類似領域であるイムノグロブリン（Ｉｇ）様ドメインとＥＧＦ−様ドメンイとの間に位置するスペーサー領域配列を含むと思われるオリゴヌクレオチドを使用して、Ｐ２０ラットの脊髄ｃＤＮＡからのＰＣＲを実施した。オリゴヌクレオチドは、ラットのＮＤＦ配列を基にして設計し、そして、１）ヌクレオチド６７０−６９２のセンスヌクレオチドである TGCAAAGTGATCAGCAAGTTAGG （配列番号１９）（「７Ｓ」（これは、ラットＮＤＦ配列のアミノ酸１１２−１１８をコードする）、および、２）ラットＮＤＦ配列のヌクレオチド１１０７− １１２２のアンチセンス鎖（「４−ＡＯ」、先を参照せよ）に相当する配列を表す。発表されているラットＮＤＦｃＤＮＡの配列と比較することにより、我々は、４５３のＰＣＲ産物を取得することを予期していたが、アガロースゲル分析の後には３５０−４７５ｂｐの範囲内に含まれる２つの際立ったＰＣＲ産物を見いだした（評定値の精度は＋／−１０ｂｐであった）。ヌクレオチド１１０７−１１２２（先の「４−ＡＯ」）のアンチセンス配列に相当するオリゴヌクレオチドを、発表されているラットＮＤＦ配列、CAGATTGAAA GAAATGAAGAGCC （配列番号２１）（「６Ｓ」）のヌクレオチド４４７−４６９に相当するセンス鎖オリゴヌクレオチドと組み合わせて使用して、追加的ＰＣＲ増幅を実施した。先のＰＣＲ増幅の結果を出した後、我々は、両者ともβ１形態をとる６９１ｂｐおよび５８９ｂｐの産物（すなわち、一方はＮＤＦに、そしてもう一方は他のＡＲＩＡに相当する）を予期しており、しかもこれらの異なるスペーサー領域エキソンの内のいずれかが先に記載されるものとして表されることを期待していた。アガロースゲル上で増幅済み産物を分析したところ、我々は６００と７００ｂｐとの間に測定される数多くのバンドを同定した（＋／−１５ｂｐ）。ラット脊髄ライブラリーから増幅させたＰＣＲ産物の配列分析により、ＡＲＩＡの異なる変異物が数多く存在することが示された。実例として示した数々のラットＡＲＩＡクローンについての部分的アミノ酸配列（ヌクレオチド配列から決定されたもの）を配列表に示した（すなわち配列番号４、および３２−３６）。ラットＡＲＩＡクローンの各々のコーディング領域の５’端はヘレグリン／ＮＤＦ５’配列に対するプライマーを使用しては配列決定を行うことが不可能であったため、この配列、すなわちＮｅｘ−１はヘレグリンおよびＮＤＦに関して特有なものであると思われる。今回、ラットＡＲＩＡクローンについて決定されたＮｅｘ−２エキソン配列はサイズが不均一であることが判明した。Ｂ１−１クローンの部分的配列決定（配列番号３および４）により、ヘルグリンのＥＧＦ−様ドメインおよびＩｇ−様ドメインとの間にある類似スペーサー領域とかなりの相同性を共有する一つのＮｅｘ−２配列が明らかにされている。しかしながら、ラットの脊髄ライブラリーから単離される他のＡＲＩＡクローンは、ヘルグリンと幾分かの相同性は共有するものの、切断されているためにニワトリＡＲＩＡにおいて同定されたＮｅｘ−２配列に近いサイズになっているＮｅｘ−２配列を保持している。例えば、Ｎｅｘ −２は、 SASANITIVESNA （配列番号３２、３３、および３５）、もしくはＴＳＳＳ（配列番号３６）であることがある。興味深いことにこれらのＮｅｘ− ２配列の各々は、Ｂ１−Ｉクローンおよびヘルグリンと比較すると、スペーサー配列内に存在する可能性のあるＮ−結合型グリコシル化シグナルの内の少なくとも一つのものを欠いている。例えば、様々なスプライシングにより生じる可能性のあるこのような特性は、ＡＲＩＡと細胞外マトリックス構成成分との相互作用を変化させるのに役立つ可能性がある。類似する様式で考えられることであるが、ヘレグリンの５’端には存在可能なグリコサミノグリカン結合配列ならびに存在可能な核局在シグナルが含まれているが、これらは少なくとも配列決定を行ったニワトリＡＲＩＡクローン内には存在しておらず、そのためラットＡＲＩＡからも欠損している可能性がある。本明細書において記載される全てのＰＣＲ反応は、ｐＭＡＬ−ｐ２融合発現ベクター内へのクローニングのためのＥＧＦ−様ドメインの調製に関する項目について記載されるのと同一の周期条件下で実施した。ＰＣＲ反応は、Ｐ２０ラットの脊髄ｃＤＮＡについての５μｌの逆転写反応を用いて実施した。これら全ては１μｇの適切なプライマーを使用した。実施例８ニワトリＡＲＩＡクローンの別の単離法実施例５および７の両方において記載される方法に類似する様式において、数々の他のニワトリＡＲＩＡｃＤＮＡクローンの部分配列を、図１Ａ−１Ｄ（配列番号１）において示されるｃＤＮＡクローンから設計されたプライマーを使用して取得した。ＥＧＦ−様ドメインのＮ−末端をコード化するヌクレオチドに対するプライマーを使用することで、脊髄と小脳の両方のｍＲＮＡライブラリーから単離されたクローンについてＲＡＣＥＰＣＲを実施して、ＥＧＦ−様ドメインから膜貫通ドメインまでの配列データを取得した。配列番号２６−３１は、これらのクローンの内の幾つかについて決定された類似アミノ酸配列を示す。脊髄および小脳ライブラリーの各々からのクローンにおいて見いだされる顕著な特徴は、ＥＧＦ−様ドメイン内の停止コドンの存在であった。例えば、クローンＣ− １１９（配列番号２７）およびＳ−３９（配列番号２９）の各々は、ＥＧＦ−様ドメインのＣ５システインについてのコドンの代わりに停止コドンを有している（図３を参照せよ）。このような変異体の役割は未だに完全には解明されていないものの、これらの変異体は、全ＥＧＦ−様ドメインを保持するＡＲＩＡに対して拮抗的に作用するＡＲＩＡの可溶性形態（例えば、膜貫通ドメインもしくはサイトプラズムドメインではない）である可能性がある。実施例９ＡＲＩＡ配列に特異的なヌクレオチドプローブとのインサイチューハイブリッド形成組織は液浸（胚の場合）もしくは灌流（成体の場合）のいずれかによりＰＢＳ中の４％パラホルムアルデヒドで固定化した。その後組織をゆっくりと脱水させ、そしてパラフィン中に包埋した。組織切片（７−９μｍ）をゼラチン様顕微鏡用スライドグラス（ｇｅｌａｔｉｎｉｚｅｄｇｌａｓｓｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅｓｌｉｄｅ）上に回収した。切片の処理に使用した方法、ハイブリッド形成法、および洗浄法は、Ｓｓａｓｓｏｎｅｔａｌ．（１９８８）Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ１０４：１５５−１６４において記載されているものであった。ハイブリッド形成は５２℃において約１６時間、シリコン処理済みカバーグラス下において、５０％の脱イオン化ホルムアミド、０．３Ｍの塩化ナトリウム、２０ｍＭのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、ｍＭのＥＤＴＡ、１０ｍＭのＮａＰＯ₄（ｐＨ８）、１０％の硫酸デキストラン、１×デンハート溶液、５０μｇ／ｍｌの全イーストＲＮＡ中において、３×１０⁴ｃｐｍ／μｌの³⁵Ｓ−ラベル化ＲＮＡプローブを用いて実施した。ハイブリッド形成後、５０℃おける５×ＳＳＣ、１０ｍＭのジチオスレイトール中でカバーグラスを浮かせながら外し、そして６５℃において５０％のホルムアミド、２×ＳＳＣ、１０ｍＭのジチオスレイトール中で洗浄した。その後スライドグラスを洗浄用緩衝液中ですすぎ、ＲＮＡｓｅＡ（２０μｇ／ｍｌ、ＳＩＧＭＡ社）で処理し、そして２×ＳＳＣ中３７℃において１５分間、その後に０．１×ＳＳＣ中において１５分間洗浄した。切片を迅速に脱水し、ＮＴＢ−２Ｋｏｄａｋ乳剤を使用してオートラジオグラフィー用に処理し、４℃において４−２８時間露出させ、そして顕微鏡下での明視野および暗視野の両方を使用して調査した。ハイブリッド形成用プローブとしてニワトリヒナのＡＲＩＡｃＤＮＡ（配列番号１）のヌクレオチド１５−３４４に相当する３２９ヌクレオチド断片を使用してニワトリＡＲＩＡのｍＲＮＡを同定した。ラットプローブは、類似した方法により実施例７に記載されるＰＣＲ合成済みｃＤＮＡ（配列番号３）から取得した。基となるラットＢ１−１をＳｐｈＩで開裂して２つの断片を生じたが、そのうちの一つ（「Ｉｇプローブ」）はＢ１−１クローンの５’末端からＩｇ−様ドメインをコード化する配列の末端までに相当する。第二断片（「ＥＧＦプローブ」）は、スペーサードメインの始まりから伸びて、そして基となるＰＣＲプライマーにより特定される貫膜領域の配列内で終了している。先に記載される引用文献および刊行物の全ては、引用することにより本明細書に取り込まれる。等価物当業者は、日常的に行う単なる実験により本明細書において記載される本発明の具体的な態様の多くの等価物を認識するであろうし、そうでなければ確認することが可能であろう。このような等価物は以下に示す請求の範囲に含まれることが意図される。配列表（１）一般情報：（ｉ）出願者：（Ａ）氏名：ＰｒｅｓｉｄｅｎｔａｎｄＦｅｌｌｏｗｓｏｆＨａｒｖａｒｄＣｏｌｌｅｇｅ（Ｂ）街路名：１７ＱｕｉｎｃｙＳｔｒｅｅｔ（Ｃ）市：Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ（Ｄ）州：ＭＡ（Ｅ）国：ＵＳＡ（Ｆ）郵便番号（ＺＩＰ）：０２１３８（Ｇ）電話番号：（６１７）２２７−７４００（Ｆ）テレファックス：（６１７）２２７−５９４１（ｉｉ）発明の名称：神経指向性因子（ｉｉｉ）配列数：４５（ｉｖ）コンピューター解読可能形態：（Ａ）メディウムの種類：フロッピーディスク（Ｂ）コンピューター：ＩＰＭＰＣｃｏｍｐａｔｉｂｌｅ（Ｃ）操作システム：ＰＣ−ＤＯＳ／ＭＳ−ＤＯＳ（Ｄ）ソフトウエアー：ＡＳＣＩＩ（ｔｅｘｔ）（ｖ）現在の出願情報：出願番号：（ｖｉ）以前の出願情報：（Ａ）出願番号：米国特許第０７／９５３，７４２号（Ｂ）提出日：１９９２年９月２９日（２）配列番号１についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２３５１（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：二本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｉｖ）配列の特徴：（Ａ）特徴を表す記号：ＣＤＳ（Ｂ）存在位値：２３．．１８３１（ｘｉ）配列：配列番号１（２）配列番号２についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：６０２（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：蛋白質（ｘｉ）配列：配列番号２（２）配列番号３についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：６９３（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：両形態（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｉｖ）配列の特徴：（Ａ）特徴を表す記号：ＣＤＳ（Ｂ）存在位値：１．．６９３（ｘｉ）配列：配列番号３（２）配列番号４についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２３１（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：蛋白質（ｘｉ）配列：配列番号４（２）配列番号５についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：７（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号５（２）配列番号６についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１２（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号６（２）配列番号７についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１５（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号７（２）配列番号８についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１６（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号８（２）配列番号９についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：９７（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号９（２）配列番号１０についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２２（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号１０（２）配列番号１１についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：８（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号１１（２）配列番号１２についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２１（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号１２（２）配列番号１３についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：７（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号１３（２）配列番号１４についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２２（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号１４（２）配列番号１５についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２３（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号１５（２）配列番号１６についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２４（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号１６（２）配列番号１７についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２２（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号１７（２）配列番号１８についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２２（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号１８（２）配列番号１９についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２３（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号１９（２）配列番号２０についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１２（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号２０（２）配列番号２１についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２３（Ｂ）配列の種類：核酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ｃＤＮＡ（ｘｉ）配列：配列番号２１（２）配列番号２２についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４０（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｘｉ）配列：配列番号２２（２）配列番号２３についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４０（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｘｉ）配列：配列番号２３（２）配列番号２４についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：２６（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｘｉ）配列：配列番号２４（２）配列番号２５についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１２（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｘｉ）配列：配列番号２５（２）配列番号２６についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長当：１１３（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｘｉ）配列：配列番号２６（２）配列番号２７についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：３０（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号２７（２）配列番号２８についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：９１（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号２８（２）配列番号２９についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：３０（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号２９（２）配列番号３０についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：８１（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３０（２）配列番号３１についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：８３（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３１（２）配列番号３２についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：９０（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３２（２）配列番号３３についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１６５（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３３（２）配列番号３４についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１０６（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３４（２）配列番号３５についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１０９（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列配列番号３５（２）配列番号３６についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：１００（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３６（２）配列番号３７についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４５（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３７（２）配列番号３８についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４５（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３８（２）配列番号３９についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４５（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号３９（２）配列番号４０についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４５（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号４０（２）配列番号４１についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４１（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号４１（２）配列番号４２についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４１（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号４２（２）配列番号４３についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４０（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号４３（２）配列番号４４についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４２（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号４４（２）配列番号４５についての情報：（ｉ）配列の特徴：（Ａ）配列の長さ：４１（Ｂ）配列の種類：アミノ酸（Ｃ）鎖の数：一本鎖（Ｄ）トポロジー：直鎖状（ｉｉ）配列の種類：ペプチド（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント（ｘｉ）配列：配列番号４５

【手続補正書】特許法第１８４条の８【提出日】１９９４年４月２９日【補正内容】請求の範囲１．細胞の表面膜におけるイオンチャンネルの形成を誘導し、そして神経細胞内において発現可能な神経栄養因子遺伝子のエキソンによりコード化されるＥＧＦ −様アミノ酸配列および第二アミノ酸配列を含む、単離された神経栄養因子。２．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が式ＣＸ₁ ＣＸ₂ ＣＸ₃ ＣＸ₄ ＣＸ₅ Ｃ［式中、Ｃはシステインであり、Ｘ₁ は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₂ は同じであることも異なることもできる３から８までのアミノ酸を表し、Ｘ₃ は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₄ はいずれかのアミノ酸であり、そしてＸ₅ は同じであることも異なることもできる８から１４までのアミノ酸を表す］により表される、請求の範囲１の神経栄養因子。３．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が、式Ｃｙｓ−Ｘａａ（１）−Ｘａａ（２）−Ｌｙｓ−Ｘａａ（３）−Ｌｙｓ−Ｘａａ（４）−Ｐｈｅ−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｘａａ（５）− Ｃｙｓ−Ｘａａ（６）−Ｘａａ（７）−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ａｓｐ−Ｌｙｓ−Ｘａａ（８）−Ｘａａ（９）−Ｐｒｏ−Ｘａａ（１０）−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ− Ｃｙｓ−Ｘａａ（１１）−Ｃｙｓ−Ｘａａ（１２）−Ａｓｎ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ− Ｔｈｒ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ−Ａｒｇ−Ｃｙｓ［式中、Ｘａａ（１）はＡｓｐ，Ａｌａ，Ｇｌｕ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，Ｇｌｙ，Ｓｅｒ）もしくはＴｈｒを表し、Ｘａａ（２）はＩｌｅ，Ｇｌｕ，Ａｓｐ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｓｅｒ、もしくはＴｈｒを表し、Ｘａａ（３）はＧｌｎ，Ｇｌｕ，ＡｓｎもしくはＡｓｐを表し、Ｘａａ（４）はＡｌａ，Ｔｈｒ，Ｇｌｙ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，もしくはＳｅｒを表し、Ｘａａ（５）はＧｌｕ，Ｇｌｙ，Ａｓｐ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，Ｓｅｒ、もしくはＴｈｒを表し、Ｘａａ（６）はＴｙｒ，Ｐｈｅ，もしくはＴｒｐを表し、Ｘａａ（７）はＭｅｔ，Ｔｈｒ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ、もしくはＩｌｅを表し、Ｘａａ（８）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ、もしくはＴｈｒを表しＸａａ（９）はＡｓｎ，Ｓｅｒ，Ｇｌｎ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ）もしくは、Ｔｈｒを表し、Ｘａａ（１０）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ、もしくはＴｈｒを表し、Ｘａａ（１１）はＡｒｇ，Ｌｙｓ、もしくはＨｉｓを表し、Ｘａａ（１２）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ、もしくはＴｈｒを表す］により表される、請求の範囲１の神経栄養因子。４．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が、［式中、Ｘａａ（１）はＧｌｕもしくはＧｌｙを表し、Ｘａａ（２）はＡｓｎ、もしくはＳｅｒを表し、そしてＸａａ（３）はＰｒｏ、もしくはＳｅｒを表す］と相同であるかあるいは実質的に類似している、請求の範囲３の神経栄養因子。５．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が、と相同であるかあるいは実質的に類似している、請求の範囲３の神経栄養因子。６．神経栄養因子が、ＥＧＦ−様アミノ酸配列中で切断されており、そのＥＧＦ −様アミノ酸配列が式［式中、Ｘａａ（１）はＡｓｐ，Ａｌａ，Ｇｌｕ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，Ｇｌｙ，Ｓｅｒ、もしくはＴｈｒを表し、Ｘａａ（２）はＩｌｅ，Ｇｌｕ，Ａｓｐ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｓｅｒ、もしくはＴｈｒを表し、Ｘａａ（３）はＧｌｎ，Ｇｌｕ，ＡｓｎもしくはＡｓｐを表し、Ｘａａ（４）はＡｌａ，Ｔｈｒ，Ｇｌｙ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，もしくはＳｅｒを表し、Ｘａａ（５）はＧｌｕ，Ｇｌｙ，Ａｓｐ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ，Ｓｅｒ、もしくはＴｈｒを表し、Ｘａａ（６）はＴｙｒ，Ｐｈｅ，もしくはＴｒｐを表し、Ｘａａ（７）はＭｅｔ，Ｔｈｒ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ、もしくはＩｌｅを表し、Ｘａａ（８）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ、もしくはＴｈｒを表しＸａａ（９）はＡｓｎ，Ｓｅｒ，Ｇｌｎ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ、もしくは、Ｔｈｒを表し、Ｘａａ（１０）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ、もしくはＴｈｒを表し、Ｘａａ（１１）はＡｒｇ，Ｌｙｓ、もしくはＨｉｓを表し、Ｘａａ（１２）はＰｒｏ，Ｓｅｒ，Ｇｌｙ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ，Ｉｌｅ、もしくはＴｈｒを表す］により表される、請求の範囲１の神経栄養因子。７．第二アミノ酸配列が、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択されるアミノ酸配列と相同であるかあるいは実質的に類似している、請求の範囲１の神経栄養因子。８．一般的なポリペプチドが式、Ｎｅｘ１−Ｂ−Ｃ−（ＥＧＦ−様配列）［式中、Ｎｅｘ−１は神経細胞内に通常に発現される神経栄養因子遺伝子の５’ エキソンによりコード化されるアミノ酸配列であり、Ｂは配列番号１のアミノ酸残基１−８６および配列番号３６のアミノ酸残基１−６３からなる群より選択されるアミノ酸配列であり、Ｃは配列番号４のアミノ酸残基８７−１４５、配列番号３３のアミノ酸残基７５−９９、および配列番号３６のアミノ酸残基６４−８２からなる群より選択されるアミノ酸配列であり、そしてＥＧＦ−様配列は配列番号４のアミノ酸残基１４６−１８５により表される］により表される、請求の範囲１の神経栄養因子。９．配列番号４、３２、３３、３５、および３６からなる群からのアミノ酸配列を含む、請求の範囲８の神経栄養因子。１０．イオンチャンネルが直接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲１の神経栄養因子。１１．直接的リガンドゲートイオンチャンネルがコリン作動性レセプターである、請求の範囲１０の神経栄養因子。１２．コリン作動性レセプターがニコチン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲１１の神経栄養因子。１３．直接的リガンドゲートイオンチャンネルが、アセチルコリンレセプター、グルタミン酸作動性レセプター、ＧＡＢＡレセプター、グリシンレセプター、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択される、請求の範囲１０の神経栄養因子。１４．イオンチャンネルが電位ゲートイオンチャンネルである、請求の範囲１の神経栄養因子。１５．イオンチャンネルが間接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲１の神経栄養因子。１６．間接的リガンドゲートイオンチャンネルがムスカリン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲１５の神経栄養因子。１７．細胞が筋肉細胞である、請求の範囲１の神経栄養因子。１８．細胞が神経細胞である、請求の範囲１の神経栄養因子。１９．神経栄養因子が糖蛋白質である、請求の範囲１の神経栄養因子。２０．その因子が鳥類の遺伝子から得られる蛋白質である、請求の範囲１の神経栄養因子。２１．その因子が哺乳類の遺伝子から得られる蛋白質である、請求の範囲１の神経栄養因子。２２．請求の範囲１の神経栄養因子をコード化する単離されたＤＮＡ。２３．請求の範囲２２のＤＮＡを含む発現ベクター。２４．請求の範囲２３の発現ベクターで形質転換させた細胞。２５．細胞の表面膜内のイオンチャンネルの形成を誘導し、そして配列番号２、４、３２、３３、３５、および３６からなる群より選択されるアミノ酸配列を有する神経栄養蛋白質、もしくはいずれかのその機能的断片、あるいはそれに実質的に類似するアミノ酸配列。２６．請求の範囲２５の神経栄養蛋白質をコード化する単離されたＤＮＡ。２７．請求の範囲２６のＤＮＡを含む発現ベクター。２８．請求の範囲２７の発現ベクターで形質転換させた細胞。２９．細胞の表面膜内にイオンチャンネルの形成を誘導することが可能なポリペプチドをコード化する、配列番号１および３からなる群より選択されるヌクレオチド配列もしくはその断片を有する単離されたＤＮＡ。３０．請求の範囲２９のＤＮＡを含む発現ベクター。３１．請求の範囲３０の発現ベクターで形質転換させた細胞。３２．ＥＧＦ−様アミノ酸配列を有するイオンチャンネル誘導性蛋白質もしくはポリペプチドで細胞を処理することを含む、細胞の表面膜におけるイオンチャンネルの形成を誘導する方法。３３．イオンチャンネルが直接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲３２の方法。３４．直接的リガンドゲートイオンチャンネルがコリン作動性レセプターである、請求の範囲３３の方法。３５．コリン作動性レセプターがニコチン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲３４の方法。３６．直接的リガンドゲードイオンチャンネルが、アセチルコリンレセプター、グルタミン酸作動性レセプター、ＧＡＢＡレセプター、グリシンレセプター、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択される、請求の範囲３３の方法。３７．イオンチャンネルが電位ゲートイオンチャンネルである、請求の範囲３２の方法。３８．イオンチャンネルが間接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲３２の方法。３９．間接的リガンドゲートイオンチャンネルを作動させるレセプターがムスカリン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲３８の方法。４０．細胞が筋肉細胞である、請求の範囲３２の方法。４１．細胞が神経細胞である、請求の範囲３２の方法。４２．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が式ＣＸ₁ ＣＸ₂ ＣＸ₃ ＣＸ₄ ＣＸ₅ Ｃ［式中、Ｃはシステインであり、Ｘ₁ は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₂ は同じであることも異なることもできる３から８までのアミノ酸を表し、Ｘ₃ は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₄ はいずれかのアミノ酸であり、そしてＸ₅ は同じであることも異なることもできる８から１４までのアミノ酸を表す］により表される、請求の範囲３２の方法。４３．イオンチャンネル誘導性蛋白質が、配列番号２、４、３２、３３、３５、もしくは３６のポリペプチド、ヘルグリン、Ｎｅｕ分化因子、およびそれらの機能的活性部分を含む群より選択される、請求の範囲３２の方法。４４．イオンチャンネル誘導性蛋白質がシナプス後部細胞内の約１８５ｋＤａの膜貫通蛋白質のリン酸化を誘導する、請求の範囲３２の方法。４５．ＥＧＦ−様アミノ酸配列を有するイオンチャンネル誘導性蛋白質もしくはポリペプチドを細胞の表面膜におけるイオンチャンネルの形成を誘導するのに十分な量で用いて標的細胞を処理することを含む、ニューロンと標的細胞との間のシナプス連結部の形成を亢進させる方法。４６．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が式ＣＸ₁ ＣＸ₂ ＣＸ₃ ＣＸ₄ ＣＸ₅ Ｃ［式中、Ｃはシステインであり、Ｘ₁ は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₂ は同じであることも異なることもできる３から８までのアミノ酸を表し、Ｘ₃ は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₄ はいずれかのアミノ酸であり、そしてＸ₅は同じであることも異なることもできる８から１４までのアミノ酸を表す］により表される、請求の範囲４５の方法。４７．イオンチャンネル誘導性蛋白質が、配列番号２、４、３２、３３、３５、もしくは３６のポリペプチド、ヘルグリン、Ｎｅｕ分化因子、およびそれらの機能的活性部分を含む群より選択される、請求の範囲４５の方法。４８．イオンチャンネル誘導性蛋白質が細胞内の約１８５ｋＤａの膜貫通蛋白質のリン酸化を誘導する、請求の範囲４５の方法。４９．イオンチャンネルが直接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲４５の方法。５０．直接的リガンドゲートイオンチャンネルが、アセチルコリンレセプター、グルタミン作動性レセプター、ＧＡＢＡレセプター、グリシンレセプター、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択される、請求の範囲４９の方法。５１．イオンチャンネルが電位ゲードイオンチャンネルである、請求の範囲４５の方法。５２．イオンチャンネルが間接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲４５の方法。５３．間接的リガンドゲートイオンチャンネルを作動させるレセプターがムスカリン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲５２の方法。５４．標的細胞が筋肉細胞である、請求の範囲４５の方法。５５．標的細胞が神経細胞である、請求の範囲４５の方法。、５６．標的細胞が腺細胞である、請求の範囲４５の方法。５７．シナプス連結部の形成の亢進を機能的シナプス結合の異常に関わる神経学的疾患に苦しむ個体において成し遂げる、請求の範囲４５の方法。５８．神経学的疾患が神経筋疾患である、請求の範囲５７の方法。５９．神経学的疾患が自律神経疾患である、請求の範囲５７の方法。６０．神経学的疾患が中枢神経系疾患である、請求の範囲５７の方法。６１．請求の範囲１の神経栄養因子および薬剤学的に許容される担体を含む、治療用組成物。６２．請求の範囲１の神経栄養因子に特異的に結合する抗体。６３．請求の範囲１の神経栄養蛋白質に特異的に結合する抗体。６４．以下に示す、（ａ）適切な宿主細胞を、融合コート蛋白質を提示するファージ粒子のライブラリーをコード化する複製可能ファージベクターのライブラリーで形質転換させること［ただし、各々の該ファージベクターは該融合コート蛋白質をコード化するキメラコート蛋白質遺伝子を含み、該キメラ遺伝子はＡＲＩＡポリペプチド候補物をコード化する第一遺伝子およびファージコート蛋白質の少なくとも一部分をコード化する第二遺伝子を含み、該第一遺伝子は一つもしくは複数のコドン位置において突然変異を生じており、そのため該ファージベクターライブラリーは突然変異を生じたＡＲＩＡポリペプチドの大多数のものをコード化する］、（ｂ）該融合コート蛋白質を初めとする該ファージ粒子を形成するのに適する条件下において該形質転換済み宿主細胞を培養すること、ならびに（ｃ）ＡＲＩＡ結合性蛋白質に結合することが可能なＡＲＩＡポリペプチド候補物を提示するファージ粒子に相当する該ファージベクターのいずれかのものを選択すること、を含む、新規のＡＲＩＡ相同物ならびに該新規のＡＲＩＡ相同物をコード化する遺伝子を作製するための方法。６５．該線維状バクテリオファージがＭ１３、ｆｄ、およびｆｌからなる群より選択され、そして該ファージコート蛋白質がｇｅｎｅ−ＩＩＩ蛋白質である、請求の範囲６４の方法。６６．該形質転換済み宿主細胞を該ファージ粒子の形成を誘導するのに適するヘルパーファージと共に培養する、請求の範囲６４の方法。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩＣ０７Ｋ 14/485 8318−4Ｈ 16/22 8318−4ＨＣ１２Ｎ 5/10 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ 9282−4Ｂ 21/08 9358−4Ｂ // Ａ６１Ｋ 39/395 Ｄ 9284−4Ｃ 9455−4ＣＡ６１Ｋ 37/02 ＡＤＳ (72)発明者ローゼン，ケネス・エムアメリカ合衆国マサチユセツツ州02132ウエストロクスバリー・ブイエフダブリユーパークウエイ1461 (72)発明者コーフアス，ガブリエルアメリカ合衆国マサチユセツツ州02146ブルツクライン・ナンバー１・ブラウンストリート119

Claims

【特許請求の範囲】１．細胞の表面膜におけるイオンチャンネルの形成を誘導し、そして神経細胞内において発現可能な神経栄養因子遺伝子のエキソンの少なくとも一部分によりコード化されるＥＧＦ−様アミノ酸配列および第二アミノ酸配列を含む、単離された神経栄養因子。２．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が式ＣＸ₁ ＣＸ₂ ＣＸ₃ ＣＸ₄ ＣＸ₅ Ｃ［式中、Ｃはシステインであり、Ｘ₁は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₂は同じであることも異なることもできる３から８までのアミノ酸を表し、Ｘ₃は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₄はいずれかのアミノ酸であり、そしてＸ₅は同じであることも異なることもできる８から１４までのアミノ酸を表す］により表される、請求の範囲１の神経栄養因子。３．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が、と相同であるかあるいは実質的に類似している、請求の範囲１の神経栄養因子。４．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が、と相同であるかあるいは実質的に類似している、請求の範囲１の神経栄養因子。５．第二アミノ酸配列が、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択されるアミノ酸配列と相同であるかあるいは実質的に類似している、請求の範囲１の神経栄養因子。６．イオンチャンネルが直接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲１の神経栄養因子。７．直接的リガンドゲートイオンチャンネルがコリン作動性レセプターである、請求の範囲６の神経栄養因子。８．コリン作動性レセプターがニコチン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲７の神経栄養因子。９．直接的リガンドゲートイオンチャンネルが、アセチルコリンレセプター、グルタミン酸作動性レセプター、ＧＡＢＡレセプター、グリシンレセプター、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択される、請求の範囲６の神経栄養因子。１０．イオンチャンネルが電位ゲートイオンチャンネルである、請求の範囲１の神経栄養因子。１１．イオンチャンネルが間接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲１の神経栄養因子。１２．間接的リガンドゲートイオンチャンネルを作動させるレセプターがムスカリン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲１１の神経栄養因子。１３．細胞が筋肉細胞である、請求の範囲１の神経栄養因子。１４．細胞が神経細胞である、請求の範囲１の神経栄養因子。１５．神経栄養因子が糖蛋白質である、請求の範囲１の神経栄養因子。１６．その因子が鳥類の遺伝子から得られる蛋白質である、請求の範囲１の神経栄養因子。１７．その因子が哺乳類の遺伝子から得られる蛋白質である、請求の範囲１の神経栄養因子。１８．請求の範囲１の神経栄養因子をコード化する単離されたＤＮＡ。１９．請求の範囲１８のＤＮＡを含む発現ベクター。２０．請求の範囲１９の発現ベクターで形質転換させた細胞。２１．細胞の表面膜内のイオンチャンネルの形成を誘導し、そして図１に示されるアミノ酸配列を有する神経栄養蛋白質、もしくはいずれかのその機能的断片、あるいはそれに実質的に類似するアミノ酸配列。２２．請求の範囲２１の神経栄養蛋白質をコード化する単離されたＤＮＡ。２３．請求の範囲２２のＤＮＡを含む発現ベクター。２４．請求の範囲２３の発現ベクターで形質転換させた細胞。２５．細胞の表面膜内にイオンチャンネルの形成を誘導することが可能なポリペプチドをコードする、図１に示されるヌクレオチド配列もしくはその断片を有する単離されたＤＮＡ。２６．請求の範囲２５のＤＮＡを含む発現ベクター。２７．請求の範囲２６の発現ベクターで形質転換させた細胞。２８．ＥＧＦ−様アミノ酸配列を有するイオンチャンネル誘導性蛋白質もしくはポリペプチドで細胞を処理することを含む、細胞の表面膜におけるイオンチャンネルの形成を誘導する方法。２９．イオンチャンネルが直接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲２８の方法。３０．直接的リガンドゲートイオンチャンネルがコリン作動性レセプターである、請求の範囲２９の方法。３１．コリン作動性レセプターがニコチン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲３０の方法。３２．直接的リガンドゲードイオンチャンネルが、アセチルコリンレセプター、グルタミン酸作動性レセプター、ＧＡＢＡレセプター、グリシンレセプター、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択される、請求の範囲２９の方法。３３．イオンチャンネルが電位ゲートイオンチャンネルである、請求の範囲２８の方法。３４．イオンチャンネルが間接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲２８の方法。３５．間接的リガンドゲートイオンチャンネルを作動させるレセプターがムスカリン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲３４の方法。３６．細胞が筋肉細胞である、請求の範囲２８の方法。３７．細胞が神経細胞である、請求の範囲２８の方法。３８．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が式ＣＸ₁ ＣＸ₂ ＣＸ₃ ＣＸ₄ ＣＸ₅ Ｃ［式中、Ｃはシステインであり、Ｘ₁は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₂は同じであることも異なることもできる３から８までのアミノ酸を表し、Ｘ₃は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₄はいずれかのアミノ酸であり、そしてＸ₅は同じであることも異なることもできる８から１４までのアミノ酸を表す］により表される、請求の範囲２８の方法。３９．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が、と相同であるか、あるいは実質的に類似する、請求の範囲２８の方法。４０．イオンチャンネル誘導性蛋白質が更に、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択されるアミノ酸配列に相同であるかあるいは実質的に類似する第二アミノ酸配列を含む、請求の範囲２８の方法。４１．イオンチャンネル誘導性蛋白質が、図１の神経栄養因子、ヘルグリン、Ｎｅｕ分化因子、およびそれらの機能的活性部分からなる群より選択される、請求の範囲２８の方法。４２．イオンチャンネル誘導性蛋白質がシナプス後部細胞内の約１８５ｋＤａの膜貫通蛋白質のリン酸化を誘導する、請求の範囲２８の方法。４３．ＥＧＦ−様アミノ酸配列を有するイオンチャンネル誘導性蛋白質もしくはポリペプチドを細胞の表面膜におけるイオンチャンネルの形成を誘導するのに十分な量で用いて標的細胞を処理することを含む、ニューロンと標的細胞との間のシナプス連結部の形成を亢進させる方法。４４．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が式ＣＸ₁ ＣＸ₂ ＣＸ₃ ＣＸ₄ ＣＸ₅ Ｃ［式中、Ｃはシステインであり、Ｘ₁は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₂は同じであることも異なることもできる３から８までのアミノ酸を表し、Ｘ₃は同じであることも異なることもできる４から１４までのアミノ酸を表し、Ｘ₄はいずれかのアミノ酸であり、そしてＸ₅は同じであることも異なることもできる８から１４までのアミノ酸を表す］により表される、請求の範囲４３の方法。４５．ＥＧＦ−様アミノ酸配列が、と相同であるか、あるいは実質的に類似する、請求の範囲４３の方法。４６．イオンチャンネル誘導性蛋白質が更に、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択されるアミノ酸配列に相同であるかあるいは実質的に類似する第二アミノ酸配列を含む、請求の範囲４３の方法。４７．イオンチャンネル誘導性蛋白質が、図１の神経栄養因子、ヘルグリン、Ｎｅｕ分化因子、およびそれらの機能的活性部分からなる群より選択される、請求の範囲４３の方法。４８．イオンチャンネル誘導性蛋白質が細胞内の約１８５ｋＤａの膜貫通蛋白質のリン酸化を誘導する、請求の範囲４３の方法。４９．イオンチャンネルが直接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲４３の方法。５０．直接的リガンドゲートイオンチャンネルが、アセチルコリンレセプター、グルタミン作動性レセプター、ＧＡＢＡレセプター、グリシンレセプター、およびそれらの組み合わせ物からなる群より選択される、請求の範囲４９の方法。５１．イオンチャンネルが電位ゲードイオンチャンネルである、請求の範囲４３の方法。５２．イオンチャンネルが間接的リガンドゲートイオンチャンネルである、請求の範囲４３の方法。５３．間接的リガンドゲートイオンチャンネルを作動させるレセプターがムスカリン性アセチルコリンレセプターである、請求の範囲５２の方法。５４．標的細胞が筋肉細胞である、請求の範囲４３の方法。５５．標的細胞が神経細胞である、請求の範囲４３の方法。５６．標的細胞が腺細胞である、請求の範囲４３の方法。５７．シナプス連結部の形成の亢進を機能的シナプス結合の異常に関わる神経学的疾患に苦しむ個体において成し遂げる、請求の範囲４３の方法。５８．神経学的疾患が神経筋疾患である、請求の範囲５７の方法。５９．神経学的疾患が自律神経疾患である、請求の範囲５７の方法。６０．神経学的疾患が中枢神経系疾患である、請求の範囲５７の方法。６１．請求の範囲１の神経栄養因子および薬剤学的に許容される担体を含む、治療用組成物。６２．請求の範囲１の神経栄養因子に特異的に結合する抗体。６３．請求の範囲１５の神経栄養蛋白質に特異的に結合する抗体。６４．以下に示す、（ａ）適切な宿主細胞を、融合コート蛋白質を提示するファージ粒子のライブラリーをコード化する複製可能ファージベクターのライブラリーで形質転換させること［ただし、各々の該ファージベクターは該融合コート蛋白質をコード化するキメラコート蛋白質遺伝子を含み、該キメラ遺伝子はＡＲＩＡポリペプチド候補物をコード化する第一遺伝子およびファージコート蛋白質の少なくとも一部分をコード化する第二遺伝子を含み、該第一遺伝子は一つもしくは複数のコドン位置において突然変異を生じており、そのため該ファージベクターライブラリーは突然変異を生じたＡＲＩＡポリペプチドの大多数のものをコード化する］、（ｂ）該融合コート蛋白質を初めとする該ファージ粒子を形成するのに適する条件下において該形質転換済み宿主細胞を培養すること、ならびに（ｃ）ＡＲＩＡ結合性蛋白質に結合することが可能なＡＲＩＡポリペプチド候補物を提示するファージ粒子に相当する該ファージベクターのいずれかのものを選択すること、を含む、新規のＡＲＩＡ相同物ならびに該新規のＡＲＩＡ相同物をコード化する遺伝子を作製するための方法。６５．該線維状バクテリオファージがＭ１３、ｆｄ、およびｆｌからなる群より選択され、そして該ファージコート蛋白質がｇｅｎｅ−ＩＩＩ蛋白質である、請求の範囲６４の方法。６６．該形質転換済み宿主細胞を該ファージ粒子の形成を誘導するのに適するヘルパーファージと共に培養する、請求の範囲６４の方法。