JPH0284191A - α−ガラクトシル基を含むオリゴ糖あるいは配糖体の製造法 - Google Patents
α−ガラクトシル基を含むオリゴ糖あるいは配糖体の製造法Info
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明はα−ガラクトシダーゼの脱水縮合反応によって
生じたα−ガラクトシル基を含む化合物をα−ガラクト
シダーゼの基質に用いることにより効率よく安価にα−
ガラクトシル基を含む有用オリゴ糖あるいは配糖体を製
造する方法に関するものである。
生じたα−ガラクトシル基を含む化合物をα−ガラクト
シダーゼの基質に用いることにより効率よく安価にα−
ガラクトシル基を含む有用オリゴ糖あるいは配糖体を製
造する方法に関するものである。
[従来の技術]
近年、ラフィノース、スターキオースなどの非還元末端
にα−ガラクトシル基を有するオリゴ環が腸内有用細菌
であるビフィズス菌の増殖因子として有効であると認め
られ、これらオリゴ環を甘味料として用いることが検討
されている。ラフィノース、スターキオースの供給源と
しては、大豆オリゴ環またはビート中のラフィノースが
ある。
にα−ガラクトシル基を有するオリゴ環が腸内有用細菌
であるビフィズス菌の増殖因子として有効であると認め
られ、これらオリゴ環を甘味料として用いることが検討
されている。ラフィノース、スターキオースの供給源と
しては、大豆オリゴ環またはビート中のラフィノースが
ある。
しかしながら、上記ラフィノース、スターキオースの原
料として考えられる大豆オリゴ環は旦的に少ないため大
量供給が難しく、また、価格も高い。
料として考えられる大豆オリゴ環は旦的に少ないため大
量供給が難しく、また、価格も高い。
ビート中のラフィノースも、供給時期が10月〜3月と
限定されること、および、現在のところ価格が高いとい
う欠点をもっている。
限定されること、および、現在のところ価格が高いとい
う欠点をもっている。
一方、オリゴ糖あるいは配糖体の合成法としては糖転移
酵素または加水分解酵素の糖転移作用を利用する方法が
開発されている。この方法は、縮合反応によるオリゴ糖
あるいは配糖体の合成とは違い特定の結合様式を持った
オリゴ糖あるいは配糖体のみと特異的に合成できる。例
えばβ−フラクトフラノシダーゼによるフラクトオリゴ
糖、β−ガラクトシダーゼによるβ−ガラクトオリゴ糖
の製造がある。同様にα−ガラクトシダーゼの糖転移作
用を利用1.2てα−ガラクトシル基を持ったオリゴ糖
、配糖体等の有用化合物を製造する方法が考えられるが
、この場合、α−ガラクトシル基を供給する安価な原料
が必要である。しかしながら、現在のところα結合した
ガラクトースを含むオリゴ糖、多糖は天然界に少なく、
ラフィノース、スターキオース、ベルベスコースなどの
ラフィノース族オリゴ糖やブランチオースあるいはそれ
らの誘導体しか存在せず、どれも大量供給が離しい。
酵素または加水分解酵素の糖転移作用を利用する方法が
開発されている。この方法は、縮合反応によるオリゴ糖
あるいは配糖体の合成とは違い特定の結合様式を持った
オリゴ糖あるいは配糖体のみと特異的に合成できる。例
えばβ−フラクトフラノシダーゼによるフラクトオリゴ
糖、β−ガラクトシダーゼによるβ−ガラクトオリゴ糖
の製造がある。同様にα−ガラクトシダーゼの糖転移作
用を利用1.2てα−ガラクトシル基を持ったオリゴ糖
、配糖体等の有用化合物を製造する方法が考えられるが
、この場合、α−ガラクトシル基を供給する安価な原料
が必要である。しかしながら、現在のところα結合した
ガラクトースを含むオリゴ糖、多糖は天然界に少なく、
ラフィノース、スターキオース、ベルベスコースなどの
ラフィノース族オリゴ糖やブランチオースあるいはそれ
らの誘導体しか存在せず、どれも大量供給が離しい。
[発明が解決しようとする開題点]
そこで1、本発明の目的はα−ガラクトシル基を有する
安価な原料を大量供給することにあり、更にこの基質を
使用してα−ガラクトシダーゼの転移反応を利用しα−
ガラクトシル基を持ったオリゴ糖、配糖体の合成法を堤
供することにある。
安価な原料を大量供給することにあり、更にこの基質を
使用してα−ガラクトシダーゼの転移反応を利用しα−
ガラクトシル基を持ったオリゴ糖、配糖体の合成法を堤
供することにある。
[開題点を解決するための手段]
本発明者らは種々研究を重ねた結果、α−ガラクトシダ
ーゼの脱水縮合反応によって生じたα−ガラクトシル基
を含む化合物がα−ガラクトシダーゼの糖転移作用にお
けるガラクトシル基の供与体として使えることを見い出
し本発明に至った。
ーゼの脱水縮合反応によって生じたα−ガラクトシル基
を含む化合物がα−ガラクトシダーゼの糖転移作用にお
けるガラクトシル基の供与体として使えることを見い出
し本発明に至った。
すなわち、本発明はガラクトースあるいはガラクトース
を含む化合物(例えば、ラフ1ヘースの加水分解物)な
どにα−ガラクトシダーゼを作用させ脱水縮合反応によ
って生じるα−ガラクトシル基を含む化合物を基質とし
てα−ガラクトシダーゼの転移作用によってα−ガラク
トシル基を転移させα−ガラクトシル基を含む有用なオ
リゴ糖、配糖体あるいは多糖を合成することを特徴とす
るものである。
を含む化合物(例えば、ラフ1ヘースの加水分解物)な
どにα−ガラクトシダーゼを作用させ脱水縮合反応によ
って生じるα−ガラクトシル基を含む化合物を基質とし
てα−ガラクトシダーゼの転移作用によってα−ガラク
トシル基を転移させα−ガラクトシル基を含む有用なオ
リゴ糖、配糖体あるいは多糖を合成することを特徴とす
るものである。
以下に、本発明について詳述する。
α−ガラクトシダーゼの脱水縮合反応に供する原料とし
て使用しうるガラクトースとしては、市販のガラクトー
スはもちろん、α−ガラクトシル基あるいはβ−ガラク
トシル基を含む天然のオリゴ糖、配糖体あるいは多糖か
ら酵素(β−ガラクタナーゼ、β−ガラクトシダーゼ、
α−ガラクトシダーゼなど)あるいは酸を使用して加水
分解することにより調製したガラクトースあるいはガラ
クトース溶液も使用できる。
て使用しうるガラクトースとしては、市販のガラクトー
スはもちろん、α−ガラクトシル基あるいはβ−ガラク
トシル基を含む天然のオリゴ糖、配糖体あるいは多糖か
ら酵素(β−ガラクタナーゼ、β−ガラクトシダーゼ、
α−ガラクトシダーゼなど)あるいは酸を使用して加水
分解することにより調製したガラクトースあるいはガラ
クトース溶液も使用できる。
α−ガラクトシダーゼは本来加水分解酵素であるが、原
料のガラクトース濃度を高めると加水分解反応の逆反応
として脱水縮合反応も触媒するようになる。従って、高
濃度のガラクトースにα−ガラクトシダーゼを作用させ
た場合、α−1,6結合を主体としたガラクトビオース
を生成する。この場合、反応系に他の水酸基を持つ化合
物(例えば、囃糖やオリゴ糖)も存在すれば、これらの
化合物とガラクトースがα結合で結合した化合物も合成
される。この生成した化合物のガラクトースの結合位置
、あるいは、これらの化合物の比率は用いな酵家の由来
や反応形式により影響を受ける。
料のガラクトース濃度を高めると加水分解反応の逆反応
として脱水縮合反応も触媒するようになる。従って、高
濃度のガラクトースにα−ガラクトシダーゼを作用させ
た場合、α−1,6結合を主体としたガラクトビオース
を生成する。この場合、反応系に他の水酸基を持つ化合
物(例えば、囃糖やオリゴ糖)も存在すれば、これらの
化合物とガラクトースがα結合で結合した化合物も合成
される。この生成した化合物のガラクトースの結合位置
、あるいは、これらの化合物の比率は用いな酵家の由来
や反応形式により影響を受ける。
このようなα−ガラクトシル基を持つ化合物を効率よく
合成するには原料のガラクトースの濃度は高い程良く、
通常10%以上の濃度を用いる方が好ましい。また、溶
解度の点から反応温度は高い方が望ましい。α−ガラク
トシダーゼの作用条件は用いる酵素によって異なるが、
pH3,0〜10゜0、好ましくは5.0〜8.0の範
囲で、反応温度は20〜80℃、好ましくは40〜70
”Cの範囲である。反応時間は、酵素の使用量によって
異なるが、通常1〜48時間である。しかしながら、本
発明は以上の条件、あるいは反応形態のみに限定される
ものではない。
合成するには原料のガラクトースの濃度は高い程良く、
通常10%以上の濃度を用いる方が好ましい。また、溶
解度の点から反応温度は高い方が望ましい。α−ガラク
トシダーゼの作用条件は用いる酵素によって異なるが、
pH3,0〜10゜0、好ましくは5.0〜8.0の範
囲で、反応温度は20〜80℃、好ましくは40〜70
”Cの範囲である。反応時間は、酵素の使用量によって
異なるが、通常1〜48時間である。しかしながら、本
発明は以上の条件、あるいは反応形態のみに限定される
ものではない。
また、α−ガラクトシダーゼは、基質濃度を高めると糖
転移作用を触媒するようになる。従って、α−ガラクト
シダーゼの糖転移作用を利用しα−ガラクトシダーゼの
脱水縮合反応によって生じたα−ガラクトシル基を含む
化合物を供与体に用いて、ラフィノース、スターキオー
ス、ガラクトビオース、α−ガラクトシルグリセリンな
どを合成する場合、基質濃度は高い方が良い。また、受
容体となるシュークロース、ラフィノース、ガラクトー
ス、グリセリンなどの濃度も高い方が良い9通常10〜
50%濃度を用いる方が好ましい。α−ガラクl〜シダ
ーゼの作用条件は用いるr4素によつて異なるが、pH
3,0〜1O00、好ましくは5.0〜8.0の範囲で
、反応温度は20〜80℃、好ましくは40〜70℃の
範囲である。反応時間は、酵素の使用量によって異なる
が、基質のα−ガラクトシル基を含む化合物が約90%
程度分解される才で行うことが好ましく通常1〜48時
間である。しかしながら、本発明は以上の条件、゛ある
いは反応形態のみに限定されるものではない9本発明の
前段で用いるα−ガラクトシダーゼは、ガラクトースあ
るいはガラクトースを含む溶液に作用させた場合、脱水
縮合反応によってα−ガラクトシル基を含む化合物を合
成するものであれば良い。才な、後段で用いるα−ガラ
クトシダーゼは、ガラクトビオースやメリビオースのよ
うなα−ガラクトシル基を含むオリゴ糖や配糖体を分解
し、糖転移作用を触媒する酵素であれば良い。両酵素は
、起源・種類に限定されない。例えば、ビクノボラス・
シナパリス(Pycnoporus cinnabar
i−nus)、ストレプトコッカス・ボビス(Stre
ρtoc−occus bovi、s)、デプロコツカ
ス・ニューモニア(Diplococcus pneu
ffioniae)、モルティエレラ・ビナセ(Mor
tierella vinacea)などの微生物やビ
シア・サテイバ(Vicia 5ativa)、緑色コ
ーヒー豆(Green coffee bean)など
の植物が生産するα−ガラクトシダーゼが使用できる。
転移作用を触媒するようになる。従って、α−ガラクト
シダーゼの糖転移作用を利用しα−ガラクトシダーゼの
脱水縮合反応によって生じたα−ガラクトシル基を含む
化合物を供与体に用いて、ラフィノース、スターキオー
ス、ガラクトビオース、α−ガラクトシルグリセリンな
どを合成する場合、基質濃度は高い方が良い。また、受
容体となるシュークロース、ラフィノース、ガラクトー
ス、グリセリンなどの濃度も高い方が良い9通常10〜
50%濃度を用いる方が好ましい。α−ガラクl〜シダ
ーゼの作用条件は用いるr4素によつて異なるが、pH
3,0〜1O00、好ましくは5.0〜8.0の範囲で
、反応温度は20〜80℃、好ましくは40〜70℃の
範囲である。反応時間は、酵素の使用量によって異なる
が、基質のα−ガラクトシル基を含む化合物が約90%
程度分解される才で行うことが好ましく通常1〜48時
間である。しかしながら、本発明は以上の条件、゛ある
いは反応形態のみに限定されるものではない9本発明の
前段で用いるα−ガラクトシダーゼは、ガラクトースあ
るいはガラクトースを含む溶液に作用させた場合、脱水
縮合反応によってα−ガラクトシル基を含む化合物を合
成するものであれば良い。才な、後段で用いるα−ガラ
クトシダーゼは、ガラクトビオースやメリビオースのよ
うなα−ガラクトシル基を含むオリゴ糖や配糖体を分解
し、糖転移作用を触媒する酵素であれば良い。両酵素は
、起源・種類に限定されない。例えば、ビクノボラス・
シナパリス(Pycnoporus cinnabar
i−nus)、ストレプトコッカス・ボビス(Stre
ρtoc−occus bovi、s)、デプロコツカ
ス・ニューモニア(Diplococcus pneu
ffioniae)、モルティエレラ・ビナセ(Mor
tierella vinacea)などの微生物やビ
シア・サテイバ(Vicia 5ativa)、緑色コ
ーヒー豆(Green coffee bean)など
の植物が生産するα−ガラクトシダーゼが使用できる。
これらの微生物からα−ガラクトシダーゼを生産する方
法は、通常液体培蕎もしくは固体培養が用いられる。液
体培養の場合はその培養上澄液を、固体培養の場合はそ
の抽出液を、その丈ま酵素剤として利用できる9抜な、
場合によ一〕では菌体をそのま丈酵素剤として利用する
ことも可能である。また、必要に応じて既知の方法で精
製した酵素も使用できる。これら酵素あるいは酵素を生
産する菌体は固定化してカラムに詰めたり膜に固定化し
て連続式であるいはバッチ式で繰り返し反応に利用する
ことも可能である。
法は、通常液体培蕎もしくは固体培養が用いられる。液
体培養の場合はその培養上澄液を、固体培養の場合はそ
の抽出液を、その丈ま酵素剤として利用できる9抜な、
場合によ一〕では菌体をそのま丈酵素剤として利用する
ことも可能である。また、必要に応じて既知の方法で精
製した酵素も使用できる。これら酵素あるいは酵素を生
産する菌体は固定化してカラムに詰めたり膜に固定化し
て連続式であるいはバッチ式で繰り返し反応に利用する
ことも可能である。
[発明の効果コ
現在、α−ガラクトシル基を含む有用なオリゴ糖や配糖
体を酵素的に合成する場合、安価で大量に存在するα−
ガラクトシル基の供給源は天然界では知られていない。
体を酵素的に合成する場合、安価で大量に存在するα−
ガラクトシル基の供給源は天然界では知られていない。
本発明のα−ガラクトシル基を含む化合物は、ガラクト
ースあるいはガラクトースを含む溶液からα−ガラクI
−,シダーゼによって大量に合成できる。このび−ガラ
クトシル基を含む化合物を供与体に用いることにより、
α−ガラクトシダーゼの糖転移作用によってα−ガラク
トシル基を含む有用なオリゴ糖や配糖体を酵素的に安価
かつ大量に合成できる。
ースあるいはガラクトースを含む溶液からα−ガラクI
−,シダーゼによって大量に合成できる。このび−ガラ
クトシル基を含む化合物を供与体に用いることにより、
α−ガラクトシダーゼの糖転移作用によってα−ガラク
トシル基を含む有用なオリゴ糖や配糖体を酵素的に安価
かつ大量に合成できる。
次に本発明の詳細を実施例を挙げて説明する。
[実力色FA]
酵素の活性
α−ガラクトシダーゼの活性測定法
10@Mバラニトロフェニル−α−ガラクトシド0.2
mlと100mM #酸緩衝液(pH5゜5)0.2m
lにα−ガラクトシダーゼ溶液0.05@lを加えて4
0℃10分間反応させる。反応後、0.2M Na2C
O30,5mlを加えて反応を止め、遊離してくるバラ
ニトロフェノール量を分光光度計にて400nmの吸光
度を計ることにより測定しな。酵素活性1単位は、この
条件下で1分間に1μmoleのバラニトロフェノール
を生成する酵素量と定義した。
mlと100mM #酸緩衝液(pH5゜5)0.2m
lにα−ガラクトシダーゼ溶液0.05@lを加えて4
0℃10分間反応させる。反応後、0.2M Na2C
O30,5mlを加えて反応を止め、遊離してくるバラ
ニトロフェノール量を分光光度計にて400nmの吸光
度を計ることにより測定しな。酵素活性1単位は、この
条件下で1分間に1μmoleのバラニトロフェノール
を生成する酵素量と定義した。
実施例1
■ガラクトビオースの作成
ガラクトース70gを含むpH5,0の#酸緩衝液10
0m1に市販のモルティエレラ・ビナセ由来のα−ガラ
クトシダーゼ(生化学工業(株))20単位を加え、5
0℃にて48時間反応させた。反応液を活性炭カラムク
ロマトグラフィーにかけ、オリゴ糖類を吸着させた後、
エチルアルコール0%〜20%の濃度勾配により溶出さ
せた。溶出液を濃縮乾燥して脱水縮合生成物20gを得
た。この化合物は、酸で加水分解するとガラクトースの
みを生成し、ペーパークロマトグラフィーの移動度から
ガラクトビオースと同定した。
0m1に市販のモルティエレラ・ビナセ由来のα−ガラ
クトシダーゼ(生化学工業(株))20単位を加え、5
0℃にて48時間反応させた。反応液を活性炭カラムク
ロマトグラフィーにかけ、オリゴ糖類を吸着させた後、
エチルアルコール0%〜20%の濃度勾配により溶出さ
せた。溶出液を濃縮乾燥して脱水縮合生成物20gを得
た。この化合物は、酸で加水分解するとガラクトースの
みを生成し、ペーパークロマトグラフィーの移動度から
ガラクトビオースと同定した。
■α−ガラクトシダーゼによるオリゴ糖の作成前述の縮
合反応によって生成したガラクトビオース1gとシュー
クロース1&を含むpH5,0の酢酸緩衝液5mlに、
実74M1−■で使用したのと同種のα−ガラクトシダ
ーゼ4単位を加え50°C24時間反応させた。
合反応によって生成したガラクトビオース1gとシュー
クロース1&を含むpH5,0の酢酸緩衝液5mlに、
実74M1−■で使用したのと同種のα−ガラクトシダ
ーゼ4単位を加え50°C24時間反応させた。
反応液を10分間煮沸加熱し酵素を失活させた後、反応
液1μlをP紙にスポットしローフ゛タノール:ピリシ
゛ン:水=6:4:3の組成の溶媒系で4重展開後、フ
ロログルシン法によるケトース呈色を行うと、ラフィノ
ースに相当する位置にスポットが検出された。この反応
液を活性炭カラムクロマトグラフィーにかけ、オリゴ糖
類を吸着させた後、エチルアルコールの濃度勾配により
溶出させた。この3量体画分を集め、濃縮し凍結乾燥標
品1.1gを得な。
液1μlをP紙にスポットしローフ゛タノール:ピリシ
゛ン:水=6:4:3の組成の溶媒系で4重展開後、フ
ロログルシン法によるケトース呈色を行うと、ラフィノ
ースに相当する位置にスポットが検出された。この反応
液を活性炭カラムクロマトグラフィーにかけ、オリゴ糖
類を吸着させた後、エチルアルコールの濃度勾配により
溶出させた。この3量体画分を集め、濃縮し凍結乾燥標
品1.1gを得な。
本原品は、(a)α−ガラクトシダーゼで加水分解する
とガラクトースとシュークロースを等モル生成すること
、(b)β−フラクI・シダーゼで加水分解すると、等
モルのメリビオースとフラクトースを生成すること、
(C)α−ガラクトシダーゼとβ−フラクトシダーゼと
で加水分解するとガラクトース、グルコース、フラクト
ースを1モルずつ生成すること、(d)ペーパークロマ
トグラフィーの移動度がラフィノースと一致する。以上
のことからラフィノースであると同定しな。
とガラクトースとシュークロースを等モル生成すること
、(b)β−フラクI・シダーゼで加水分解すると、等
モルのメリビオースとフラクトースを生成すること、
(C)α−ガラクトシダーゼとβ−フラクトシダーゼと
で加水分解するとガラクトース、グルコース、フラクト
ースを1モルずつ生成すること、(d)ペーパークロマ
トグラフィーの移動度がラフィノースと一致する。以上
のことからラフィノースであると同定しな。
実施例2 (α−ガラクトシル基を有するオリゴ糖の作
成) ガラクトース3.5gを含むpH6,0酢酸緩衝液5m
lに市販の緑色コーヒー豆由来のα−ガラクトシダーゼ
溶液(ベーリンガー・マンハイム山之内(株))1単位
を加え、40℃にて48時間反応させた9さらに、シュ
ークロース1gを加え、さらに40℃24時間反応させ
た。
成) ガラクトース3.5gを含むpH6,0酢酸緩衝液5m
lに市販の緑色コーヒー豆由来のα−ガラクトシダーゼ
溶液(ベーリンガー・マンハイム山之内(株))1単位
を加え、40℃にて48時間反応させた9さらに、シュ
ークロース1gを加え、さらに40℃24時間反応させ
た。
反応液1μmをP紙にスポットし、ペーパークロマトグ
ラフィーにより反応生成物をケトース呈色で調べた結果
、ラフィノースと思われるスポットが確認された。実施
例1−■の場合と同様に活性炭カラムクロマトグラフィ
ーにより3量体区分を単離し、酵素法により構造を確認
した結果ラフィノースであることが明らかとなった。
ラフィーにより反応生成物をケトース呈色で調べた結果
、ラフィノースと思われるスポットが確認された。実施
例1−■の場合と同様に活性炭カラムクロマトグラフィ
ーにより3量体区分を単離し、酵素法により構造を確認
した結果ラフィノースであることが明らかとなった。
実施fIA3(α−ガラクトシル基を有する配糖体の作
成) ラクトース2gを塩酸で加水分解し、水酸化ナトリウム
で中和後ガラクトースとグルコースの等1混合物を得な
。この溶液を濃縮乾燥後、pH5,0の酢酸緩衝液1.
5i1に溶解し実施例1−■で使用したのと同種のα−
ガラクトシダーゼを同様に作用させ、活性炭カラムクロ
マトグラフィーによりα−ガラクトシル基を含む2糖を
得な。この化合物500mgとグリセリン1gを含むp
H5,0の酢酸緩衝液3mlに前述のα−ガラクトシダ
ーゼ3単位を加え、50”Cで48時間反応させた。そ
の後、反応液を1o分間加熱し酵素を熱失活させた。
成) ラクトース2gを塩酸で加水分解し、水酸化ナトリウム
で中和後ガラクトースとグルコースの等1混合物を得な
。この溶液を濃縮乾燥後、pH5,0の酢酸緩衝液1.
5i1に溶解し実施例1−■で使用したのと同種のα−
ガラクトシダーゼを同様に作用させ、活性炭カラムクロ
マトグラフィーによりα−ガラクトシル基を含む2糖を
得な。この化合物500mgとグリセリン1gを含むp
H5,0の酢酸緩衝液3mlに前述のα−ガラクトシダ
ーゼ3単位を加え、50”Cで48時間反応させた。そ
の後、反応液を1o分間加熱し酵素を熱失活させた。
反応液にIN Na0)[溶液0.31を加え、60分
間加熱して還元糖を分解し、次いでイオン交換樹脂で処
理した後、ペーパークロマトグラフィーにより反応生成
物を調べた結果、グルコースに相当する位置にスポット
が確認された。このグルコースに相当する区分をペーパ
ーから抽出し、性質を調べな。
間加熱して還元糖を分解し、次いでイオン交換樹脂で処
理した後、ペーパークロマトグラフィーにより反応生成
物を調べた結果、グルコースに相当する位置にスポット
が確認された。このグルコースに相当する区分をペーパ
ーから抽出し、性質を調べな。
(a)この標品は還元力を有しない(b)α−ガラクト
シダーゼにより加水分解するとガラクトースとグリセリ
ンを等モル生成する。以上のことよりこの原品はα−ガ
ラクトシルグリセリンであると同定した。
シダーゼにより加水分解するとガラクトースとグリセリ
ンを等モル生成する。以上のことよりこの原品はα−ガ
ラクトシルグリセリンであると同定した。
Claims (1)
- (1)α−ガラクトシダーゼの脱水縮合反応によつて生
じたα−ガラクトシル基を含む化合物を供与体に用いα
−ガラクトシダーゼの糖転移作用を利用することを特徴
とするα−ガラクトシル基を含むオリゴ糖あるいは配糖
体の製造法
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP19098588A JPH0824592B2 (ja) | 1988-07-29 | 1988-07-29 | α−ガラクトシル基を含むオリゴ糖あるいは配糖体の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP19098588A JPH0824592B2 (ja) | 1988-07-29 | 1988-07-29 | α−ガラクトシル基を含むオリゴ糖あるいは配糖体の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0284191A true JPH0284191A (ja) | 1990-03-26 |
JPH0824592B2 JPH0824592B2 (ja) | 1996-03-13 |
Family
ID=16266943
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP19098588A Expired - Fee Related JPH0824592B2 (ja) | 1988-07-29 | 1988-07-29 | α−ガラクトシル基を含むオリゴ糖あるいは配糖体の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0824592B2 (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003073868A1 (fr) * | 2002-03-01 | 2003-09-12 | Amano Enzyme Inc. | Agents exhausteurs de gout pour aliments ou boissons, aliments contenant lesdits agents et procede de renforcement du gout d'aliments ou de boissons |
US7491518B2 (en) * | 2000-08-30 | 2009-02-17 | Amano Enzyme Inc. | Method of elevating yield of oligosaccharides containing α-galactosyl and anti-candida compositions |
-
1988
- 1988-07-29 JP JP19098588A patent/JPH0824592B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7491518B2 (en) * | 2000-08-30 | 2009-02-17 | Amano Enzyme Inc. | Method of elevating yield of oligosaccharides containing α-galactosyl and anti-candida compositions |
WO2003073868A1 (fr) * | 2002-03-01 | 2003-09-12 | Amano Enzyme Inc. | Agents exhausteurs de gout pour aliments ou boissons, aliments contenant lesdits agents et procede de renforcement du gout d'aliments ou de boissons |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0824592B2 (ja) | 1996-03-13 |
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