JPH0141311B2 - - Google Patents
Info
- Publication number
- JPH0141311B2 JPH0141311B2 JP58121789A JP12178983A JPH0141311B2 JP H0141311 B2 JPH0141311 B2 JP H0141311B2 JP 58121789 A JP58121789 A JP 58121789A JP 12178983 A JP12178983 A JP 12178983A JP H0141311 B2 JPH0141311 B2 JP H0141311B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- dna
- plasmid
- solution
- added
- buffer
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 claims description 52
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 claims description 12
- 229960005091 chloramphenicol Drugs 0.000 claims description 10
- WIIZWVCIJKGZOK-RKDXNWHRSA-N chloramphenicol Chemical compound ClC(Cl)C(=O)N[C@H](CO)[C@H](O)C1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1 WIIZWVCIJKGZOK-RKDXNWHRSA-N 0.000 claims description 10
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 claims description 10
- 230000007017 scission Effects 0.000 claims description 10
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 7
- 239000004098 Tetracycline Substances 0.000 claims description 3
- 229960002180 tetracycline Drugs 0.000 claims description 3
- 229930101283 tetracycline Natural products 0.000 claims description 3
- 235000019364 tetracycline Nutrition 0.000 claims description 3
- 150000003522 tetracyclines Chemical class 0.000 claims description 3
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 43
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 30
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L Magnesium chloride Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 28
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 27
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N Phenol Chemical compound OC1=CC=CC=C1 ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 26
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 description 19
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 description 18
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 18
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 15
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 14
- 229910001629 magnesium chloride Inorganic materials 0.000 description 14
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 13
- 238000000034 method Methods 0.000 description 12
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 12
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 11
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 10
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 10
- 210000001938 protoplast Anatomy 0.000 description 9
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 8
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 8
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 8
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 8
- JOCBASBOOFNAJA-UHFFFAOYSA-N N-tris(hydroxymethyl)methyl-2-aminoethanesulfonic acid Chemical compound OCC(CO)(CO)NCCS(O)(=O)=O JOCBASBOOFNAJA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 239000007994 TES buffer Substances 0.000 description 7
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 7
- 102100033468 Lysozyme C Human genes 0.000 description 6
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 description 6
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 description 6
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- 239000007984 Tris EDTA buffer Substances 0.000 description 6
- KBPLFHHGFOOTCA-UHFFFAOYSA-N caprylic alcohol Natural products CCCCCCCCO KBPLFHHGFOOTCA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N ethidium bromide Chemical compound [Br-].C12=CC(N)=CC=C2C2=CC=C(N)C=C2[N+](CC)=C1C1=CC=CC=C1 ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 229960005542 ethidium bromide Drugs 0.000 description 6
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 6
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 description 6
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 description 6
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 description 6
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 5
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 5
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 5
- LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K potassium phosphate Substances [K+].[K+].[K+].[O-]P([O-])([O-])=O LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 5
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- IQFYYKKMVGJFEH-XLPZGREQSA-N Thymidine Chemical compound O=C1NC(=O)C(C)=CN1[C@@H]1O[C@H](CO)[C@@H](O)C1 IQFYYKKMVGJFEH-XLPZGREQSA-N 0.000 description 4
- 238000000246 agarose gel electrophoresis Methods 0.000 description 4
- 210000000349 chromosome Anatomy 0.000 description 4
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 4
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 4
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 description 4
- VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N dithiothreitol Chemical compound SC[C@@H](O)[C@H](O)CS VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N 0.000 description 4
- 241000186245 Corynebacterium xerosis Species 0.000 description 3
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 3
- 101000702488 Rattus norvegicus High affinity cationic amino acid transporter 1 Proteins 0.000 description 3
- YZCKVEUIGOORGS-NJFSPNSNSA-N Tritium Chemical compound [3H] YZCKVEUIGOORGS-NJFSPNSNSA-N 0.000 description 3
- 238000002835 absorbance Methods 0.000 description 3
- AIYUHDOJVYHVIT-UHFFFAOYSA-M caesium chloride Chemical compound [Cl-].[Cs+] AIYUHDOJVYHVIT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 3
- KCUWTKOTPIUBRI-VICXVTCVSA-M cloxacillin sodium monohydrate Chemical compound O.[Na+].N([C@@H]1C(N2[C@H](C(C)(C)S[C@@H]21)C([O-])=O)=O)C(=O)C1=C(C)ON=C1C1=CC=CC=C1Cl KCUWTKOTPIUBRI-VICXVTCVSA-M 0.000 description 3
- MSJMDZAOKORVFC-UAIGNFCESA-L disodium maleate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C(=O)\C=C/C([O-])=O MSJMDZAOKORVFC-UAIGNFCESA-L 0.000 description 3
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 3
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 3
- TVMXDCGIABBOFY-UHFFFAOYSA-N n-Octanol Natural products CCCCCCCC TVMXDCGIABBOFY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229940093429 polyethylene glycol 6000 Drugs 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 3
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 3
- 229910052722 tritium Inorganic materials 0.000 description 3
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 3
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 3
- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- ZKHQWZAMYRWXGA-KQYNXXCUSA-J ATP(4-) Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](COP([O-])(=O)OP([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O)[C@@H](O)[C@H]1O ZKHQWZAMYRWXGA-KQYNXXCUSA-J 0.000 description 2
- ZKHQWZAMYRWXGA-UHFFFAOYSA-N Adenosine triphosphate Natural products C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1C1OC(COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O)C(O)C1O ZKHQWZAMYRWXGA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- DWRXFEITVBNRMK-UHFFFAOYSA-N Beta-D-1-Arabinofuranosylthymine Natural products O=C1NC(=O)C(C)=CN1C1C(O)C(O)C(CO)O1 DWRXFEITVBNRMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000012410 DNA Ligases Human genes 0.000 description 2
- 108010061982 DNA Ligases Proteins 0.000 description 2
- ULGZDMOVFRHVEP-RWJQBGPGSA-N Erythromycin Chemical compound O([C@@H]1[C@@H](C)C(=O)O[C@@H]([C@@]([C@H](O)[C@@H](C)C(=O)[C@H](C)C[C@@](C)(O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@H](C[C@@H](C)O2)N(C)C)O)[C@H]1C)(C)O)CC)[C@H]1C[C@@](C)(OC)[C@@H](O)[C@H](C)O1 ULGZDMOVFRHVEP-RWJQBGPGSA-N 0.000 description 2
- 101710132699 Lysozyme 2 Proteins 0.000 description 2
- 102100026848 Lysozyme-like protein 2 Human genes 0.000 description 2
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 2
- 102000006382 Ribonucleases Human genes 0.000 description 2
- 108010083644 Ribonucleases Proteins 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- OIRDTQYFTABQOQ-KQYNXXCUSA-N adenosine Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@H]1O OIRDTQYFTABQOQ-KQYNXXCUSA-N 0.000 description 2
- IQFYYKKMVGJFEH-UHFFFAOYSA-N beta-L-thymidine Natural products O=C1NC(=O)C(C)=CN1C1OC(CO)C(O)C1 IQFYYKKMVGJFEH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000007621 bhi medium Substances 0.000 description 2
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 2
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 2
- 230000002950 deficient Effects 0.000 description 2
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 2
- 238000005286 illumination Methods 0.000 description 2
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 2
- 239000012139 lysis buffer Substances 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 description 2
- GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M potassium dihydrogen phosphate Chemical compound [K+].OP(O)([O-])=O GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 2
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 2
- KSAVQLQVUXSOCR-UHFFFAOYSA-M sodium lauroyl sarcosinate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCC(=O)N(C)CC([O-])=O KSAVQLQVUXSOCR-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 2
- 229940104230 thymidine Drugs 0.000 description 2
- NWXMGUDVXFXRIG-WESIUVDSSA-N (4s,4as,5as,6s,12ar)-4-(dimethylamino)-1,6,10,11,12a-pentahydroxy-6-methyl-3,12-dioxo-4,4a,5,5a-tetrahydrotetracene-2-carboxamide Chemical compound C1=CC=C2[C@](O)(C)[C@H]3C[C@H]4[C@H](N(C)C)C(=O)C(C(N)=O)=C(O)[C@@]4(O)C(=O)C3=C(O)C2=C1O NWXMGUDVXFXRIG-WESIUVDSSA-N 0.000 description 1
- NLMKTBGFQGKQEV-UHFFFAOYSA-N 2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-[2-(2-hexadecoxyethoxy)ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethoxy]ethanol Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO NLMKTBGFQGKQEV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 241000013244 Atheta subtilis Species 0.000 description 1
- 108010023063 Bacto-peptone Proteins 0.000 description 1
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- 241000186216 Corynebacterium Species 0.000 description 1
- 238000007400 DNA extraction Methods 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 1
- 102000003960 Ligases Human genes 0.000 description 1
- 108090000364 Ligases Proteins 0.000 description 1
- BACYUWVYYTXETD-UHFFFAOYSA-N N-Lauroylsarcosine Chemical compound CCCCCCCCCCCC(=O)N(C)CC(O)=O BACYUWVYYTXETD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 1
- ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N Potassium Chemical compound [K] ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000191940 Staphylococcus Species 0.000 description 1
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 description 1
- 206010048222 Xerosis Diseases 0.000 description 1
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 1
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 238000012217 deletion Methods 0.000 description 1
- 230000037430 deletion Effects 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 238000000432 density-gradient centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 239000008121 dextrose Substances 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- AIUDWMLXCFRVDR-UHFFFAOYSA-N dimethyl 2-(3-ethyl-3-methylpentyl)propanedioate Chemical compound CCC(C)(CC)CCC(C(=O)OC)C(=O)OC AIUDWMLXCFRVDR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 1
- 229960003276 erythromycin Drugs 0.000 description 1
- DNJIEGIFACGWOD-UHFFFAOYSA-N ethyl mercaptane Natural products CCS DNJIEGIFACGWOD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 1
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 1
- 238000007429 general method Methods 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 229960000318 kanamycin Drugs 0.000 description 1
- 229930027917 kanamycin Natural products 0.000 description 1
- SBUJHOSQTJFQJX-NOAMYHISSA-N kanamycin Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CN)O[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N SBUJHOSQTJFQJX-NOAMYHISSA-N 0.000 description 1
- 229930182823 kanamycin A Natural products 0.000 description 1
- 238000002372 labelling Methods 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- WVJKHCGMRZGIJH-UHFFFAOYSA-N methanetriamine Chemical compound NC(N)N WVJKHCGMRZGIJH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 229940056360 penicillin g Drugs 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 229910052700 potassium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011591 potassium Substances 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 108700004121 sarkosyl Proteins 0.000 description 1
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 1
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- 229940074404 sodium succinate Drugs 0.000 description 1
- ZDQYSKICYIVCPN-UHFFFAOYSA-L sodium succinate (anhydrous) Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C(=O)CCC([O-])=O ZDQYSKICYIVCPN-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 230000001131 transforming effect Effects 0.000 description 1
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012137 tryptone Substances 0.000 description 1
- 239000013598 vector Substances 0.000 description 1
- 238000004260 weight control Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/74—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
- C12N15/75—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora for Bacillus
Landscapes
- Genetics & Genomics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biophysics (AREA)
Description
本発明は新規なプラスミドに関するものであ
る。 近年、ベクターとして使用可能と思われるプラ
スミドの種々のものが知られるようになつたが、
更に多くの有用なプラスミドの開発が期待されて
いる。 本発明者は、分子量が約3.5メガダルトン
(Md)と使用に適した大きさで、コピー数が多
く、制限酵素による切断点があり、かつクロラム
フエニコールおよびテトラサイクリン耐性を有す
る新しいプラスミドが、枯草菌(Bacillus
subtilis)に安定に存在することを確かめ本発明
を完成した。 すなわち、コリネバクテリウム・キセロシス
(Corynebacterium xerosis)からプラスミド
pTP10を分離し、これで枯草菌を形質転換後再
びプラスミド(pTP11)を分離し、このものと
ブドウ球菌由来のプラスミドpNS1(Gene 21,
105〜112(1983))を制限酵素Hindで切断した
後ライゲイシヨンすることにより分子量が約
4.3MdであるプラスミドpTP1102が得られるが、
さらにこのものを制限酵素Xbaで切断し、次い
でライゲイシヨンすることにより分子量が約
3.5MdであるプラスミドpTP1103を得ることがで
きた。 これらの工程における処理手段は公知の一般的
方法を使用することができ、例えば次のような方
法が用いられる。 コリネバクテリウムの培養と溶菌はShillerら
の方法(Antimicrob.Agents Chemo ther.18,
814〜821(1980))に準じて行ない、アルカリ変性
法によるDNAの抽出はHansenおよびOlsenの方
法(J.Bacteriol.135,227〜238(1978))に従つて
行なえばよい。 枯草菌の形質転換はChangおよびCohenのプロ
トプラスト法(Molec.gen.Genet.168,111〜115
(1979))に準じて行なえばよい。 プラスミドの分離にはアガロースゲル電気泳動
法や密度勾配遠心法のような一般的な方法を用い
ることができ、また、プラスミドDNAの制限酵
素による切断と、DNA鎖の連結酵素(リガーゼ)
による結合(ライゲイシヨン)も常法によつて行
なうことができる。 次に、本発明のプラスミドの製造法を実験例に
より詳述するが、使用したコリネバクテリウム・
キセロシスM82B株は、本発明者が分離した菌株
であり、分子量が30.4±2.7Mdのプラスミドを保
有しており、このプラスミド上にエリスロマイシ
ン、カナマイシン、クロラムフエニコール、テト
ラサイクリン耐性遺伝子を持つている。また、染
色体上にもストレプトマイシン耐性遺伝子を有し
ている。 例 1: コリネバクテリウム・キセロシスM82B株から
のプラスミドDNAの分離 トリプトソイブイヨン培地(トリプトン17g、
ソイペプトン3g、ブドウ糖2.5g、リン酸一水
素カリウム2.5g、塩化ナトリウム5g、蒸留水
1、PH7.3)によるM82B株の一夜培養液を新
鮮同培地に1/100量接種し、37℃で約3時間振盪
培養した後、ペニシリンGを最終濃度5μg/ml
となるように加え、さらに2時間振盪培養した。 この培養液を冷却遠心し、得られたペレツトを
TEバツフア(10mMトリスアミノメタン、
0.5mMEDTA,PH8.0)で2回洗浄後、TEバツフ
アに溶かした0.5Mシユークロースに懸濁した。
この懸濁液にリゾチーム(シグマ)を最終濃度
10μg/mlとなるように加え37℃で2時間インキ
ユベートした。 この溶液に10%SDS(ドデシル硫酸ナトリウム)
溶液を最終濃度1%になるように加え、55℃で30
分間静置した。次に新たに調整した3N水酸化ナ
トリウム溶液を加えてPH12.1〜12.3とし軽く混和
後、2Mトリス溶液(PH7.0)を水酸化ナトリウム
溶液の2倍量加えた。さらに5M塩化ナトリウム
溶液を最終濃度1Mとなるように加えた後4℃で
一夜放置した。その後10000rpm、30分の冷却遠
心により上清を分取し、TEバツフアで飽和した
等量の再蒸留フエノールを加えよく混和した。 10000rpm、20分の冷却遠心により水層を分取
し、−20℃のエタノールを3倍量加えて、−20℃で
一夜放置した。10000rpm30分間の冷却遠心によ
りペレツトを集め、TEバツフアに溶解し、DNA
溶液とした。 例 2: M82B株より抽出されたプラスミドpTP10
DNAによる枯草菌の形質転換 枯草菌168LMAH761222(leu-,met-,ade-,
hir-)株のバクト−ペンアツセイブロス(デイフ
コ:バクト−ビーフ抽出物1.5g、バクト−酵母
抽出物1.5g、バクトペプトン5g、バクト−デ
キストロース1g、塩化ナトリウム3.5g、リン
酸ニカリウム3.68g、リン酸一カリウム1.32g、
蒸留水1、PH7.0±0.1)による一夜培養液を新
しい同培地に1/100量接種し37℃で吸光度(OD)
0.4(600nm)まで振盪培養した。菌体を遠心によ
り集菌し、SMMPバツフアー(0.5Mシユークロ
ース、0.02Mマレイン酸二ナトリウム、1M塩化
マグネシウムを2倍濃度のバクト−ペンアツセイ
プロスに溶解)に懸濁した後、最終濃度2mg/ml
となるようにリゾチームを加えた。37℃約1時間
の培養の後3000rpm15分の遠心により集菌し、
SMMPバツフアーで一度洗浄後、菌体を6mlの
SMMPバツフアーに懸濁し、プロトプラスト溶
液とした。 例1で得たDNA溶液50μ(約DNA0.5μg)
に同量の二倍濃度のSMMバツフアー(1Mシユ
ークロース、0.04Mマレイン酸二ナトリウム、
2M塩化マグネシウム)を加えた後、上述のプロ
トプラスト溶液1mlを加えた。さらに40%ポリエ
チレングリコール6000溶液3mlを加えて、0℃2
分間静置後5mlのSMMPバツフアーを加え
3000rpm10分間の遠心により集菌した。集めたプ
ロトプラストペレツトを1mlのSMMPバツフア
ーに懸濁し30℃で1.5時間培養後、その0.1mlをク
ロラムフエニコール25μg/ml含有のDM−3再
生培地(リン酸二カリウム3.5g、リン酸一カリ
ウム1.5g、カザミノ酸5g、塩化マグネシウム
4.06g、コハク酸ナトリウム135g、酵母抽出物
5g、グルコース5g、寒天8g、牛血清アルブ
ミン0.05g、蒸留水1、PH7.3)に塗抹し、37
℃で2〜3日間培養することにより109〜1010株
に1株の頻度で形質転換株を得た。 例 3: 形質転換株からのプラスミドDNAの分離 得られたクロラムフエニコール耐性の形質転換
株をデイフコラボラトリース社製ブレインハート
インフユージヨン培地(BHI培地)10mlに接種
し、一夜静置培養した。この培養液をCY培地
(リン酸二カリウム0.7%、リン酸一カリウム0.3
%、硫酸アンモニウム0.1%、クエン酸ナトリウ
ム0.05%、カザミノ酸0.2%、酵母抽出物0.1%、
硫酸マグネシウム0.025%、ブドウ糖0.5%、PH
7.0)10mlに吸光度0.1(600nm)になるように加え
た。37℃で振盪培養し、吸光度0.3(600nm)の時
にデオキシアデノシンを最終濃度250μg/mlに
なるように加えた。3分後トリチウム標識チミジ
ンを最終濃度10μCi/mlになるように加えた。 吸光度0.8(600nm)の時点で氷にて発育を停止
させ、10000×gで15分間4℃に於て遠心してブ
ロスから菌体を分離し、菌体ペレツトをTES緩
衝液(0.05M塩化ナトリウム、0.005M EDTA含
有トリス−塩酸緩衝液(PH8.0))に再懸濁した。 次に、0.5M EDTA液0.2ml、10mg/ml濃度の
リゾチーム液0.1mlを加え、混合物を10分間37℃
で培養した。これにブリジ−58(花王アトラス(株))
を最終濃度0.5%となるように加え、37℃で10分
間培養した。次にN−ラウロイルサルコシンナト
リウムを最終濃度2.5%になるように加え、50℃
で30分間培養し溶菌を行つた。 溶菌液をピペツトにて粘性をとり、軟化させた
のち、塩化セシウムおよび臭化エチジウムと混合
し、密度1.553の溶液とした。この溶液を126000
×gで平衡まで(約40時間)遠心した。 遠心管下部末端より、溶液を分画分取し、各分
画ごとに10μをワツトマンろ紙GF/Aに吸着さ
せ、このろ紙に吸着されたトリチウムの放射活性
を液体シンチレーシヨンカウンター(パツカード
3300)にて測定しcpmにて表わすと、染色体
DNAに由来する高活性を示す分画の大きなピー
クとプラスミドDNAに由来する小さなピークの
2つが得られた。この小さなピークを示した分画
をとり、n−オクタノールで2回処理することに
より、臭化エチジウムを抽出除去した。次に水層
をSSC緩衝液(0.15M塩化ナトリウム、0.015Mク
エン酸ナトリウム、PH7.0)の10倍希釈液に対し
て透析してプラスミドを分離した。分離したプラ
スミドDNAの分子量を電子顕微鏡により測定し
たところ4.7Mdであつた。本プラスミドをpTP11
とする。また本プラスミドを所有する菌株を枯草
菌LMAH(pTP11)株と名付けた。本プラスミド
のコピー数は約20であつた。 例 4: プラスミドpTP11による枯草菌RM125株の形
質転換 枯草菌LMAH(pTP11)株よりプラスミド
DNAを下記の方法により調製した。 枯草菌LMAH(pTP11)株をBHI培地100mlに
接種し、37℃で約18〜24時間振盪培養する。 この細胞懸濁液を1%の率で同培地の20本のフ
ラスコに接種するのに使用する。37℃で18〜24時
間振盪培養後、10000×gで約15分間4℃に於て
遠心し上澄を傾斜で除く。得た菌体ペレツトを
TES緩衝液によつて2回洗浄後、100mlの25%蔗
糖含有TES緩衝液に再懸濁する。 次に0.5M−EDTA溶液40ml、10mg/ml濃度の
リゾチーム溶液20mlを加え混合物を30分間37℃で
培養する。次に50mg/ml濃度のブリジ−58 20ml
を加え、混合物を37℃で10分間培養する。さらに
250mg/ml濃度のN−ラウロイルサルコシンナト
リウム20mlを加え、50℃で10〜30分間培養する
(細胞破壊)。 溶解物を26000×g、30分間冷却遠心後、上澄
に5M塩化ナトリウム溶液50mlを加え一夜放置後、
ポリエチレングリコール6000を最終濃度10%とな
るように加え、さらに一夜4℃にて放置した。こ
の混合物を10000×g、15分間遠心し、得られた
ペレツトをTES緩衝液に溶解した。 この溶液を塩化セシウムおよび臭化エチジウム
と混合して密度1.553の溶液を製する。この溶液
を126000×gで平衡まで(約40時間)遠心する。
紫外線照射下で(365nm)線状染色体およびプラ
スミドDNAは強い螢光を発するバンドとして遠
心機チユーーブの中に見られる。 このプラスミドDNAを密度勾配から取り出し、
n−オクタノールで2回抽出することにより臭化
エチジウムを除き、次に水層を10倍希釈SSC緩衝
液に対して透析してpTP11を得た。 得られたpTP11DNAを前述のプロトプラスト
法により枯草菌の制限欠損−修飾欠損株である
RM125株へ形質転換した。 得られたクロラムフエニコール耐性コロニーの
ひとつを使い、トリチウム標識チミジンラベル法
によりプラスミドの検出を行つたところpTP11
と全く同じ分子量のプラスミドを検出することが
出来た。本実験よりプラスミドpTP11上にはク
ロラムフエニコール耐性遺伝子が存在しているこ
とが確認された。 例 5: プラスミドpTP11の制限酵素開裂点地図の作
成 制限酵素によるプラスミドDNAの消化は次の
条件により行つた。また、2種の制限酵素を組み
合わせて反応させる場合は、一方の酵素反応をフ
エノールで停止させ、さらにフエノールをエーテ
ル抽出した後に2倍量のエタノールを加え、析出
したDNAを遠心によつて集めTEバツフアーに溶
解した後、次の酵素反応を行つた。 EcoR 10mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.2)、
5mM塩化マグネシウム、2mMメルカプ
トエタノール、50mM塩化ナトリウム、
37℃ Hpa 20mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.4)、
7mM塩化マグネシウム、1mMジチオス
レイトール(DTT)、37℃ Xba 6mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.4)、
100mM塩化ナトリウム、6mM塩化マグ
ネシウム、37℃ Bcl 12mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.4)、
12mM塩化マグネシウム、12mM塩化ナ
トリウム、0.5mMDTT、50℃ Hind 20mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.4)、
7mM塩化マグネシウム、60mM塩化ナ
トリウム、37℃ 消化混合物はシヤープ等によつてつくられた1
%アガロースゲル中で分析した(J.Sharp et al,
Biochemistry,12 3055〜3063(1973))。EcoR
消化λDNAを分子量対照として使用した
(Thomasら、J.Mol.Biol.,91 315〜328
(1975))。 pTP11の制限酵素開裂点の数および開裂断片
の分子量を表に示す。
る。 近年、ベクターとして使用可能と思われるプラ
スミドの種々のものが知られるようになつたが、
更に多くの有用なプラスミドの開発が期待されて
いる。 本発明者は、分子量が約3.5メガダルトン
(Md)と使用に適した大きさで、コピー数が多
く、制限酵素による切断点があり、かつクロラム
フエニコールおよびテトラサイクリン耐性を有す
る新しいプラスミドが、枯草菌(Bacillus
subtilis)に安定に存在することを確かめ本発明
を完成した。 すなわち、コリネバクテリウム・キセロシス
(Corynebacterium xerosis)からプラスミド
pTP10を分離し、これで枯草菌を形質転換後再
びプラスミド(pTP11)を分離し、このものと
ブドウ球菌由来のプラスミドpNS1(Gene 21,
105〜112(1983))を制限酵素Hindで切断した
後ライゲイシヨンすることにより分子量が約
4.3MdであるプラスミドpTP1102が得られるが、
さらにこのものを制限酵素Xbaで切断し、次い
でライゲイシヨンすることにより分子量が約
3.5MdであるプラスミドpTP1103を得ることがで
きた。 これらの工程における処理手段は公知の一般的
方法を使用することができ、例えば次のような方
法が用いられる。 コリネバクテリウムの培養と溶菌はShillerら
の方法(Antimicrob.Agents Chemo ther.18,
814〜821(1980))に準じて行ない、アルカリ変性
法によるDNAの抽出はHansenおよびOlsenの方
法(J.Bacteriol.135,227〜238(1978))に従つて
行なえばよい。 枯草菌の形質転換はChangおよびCohenのプロ
トプラスト法(Molec.gen.Genet.168,111〜115
(1979))に準じて行なえばよい。 プラスミドの分離にはアガロースゲル電気泳動
法や密度勾配遠心法のような一般的な方法を用い
ることができ、また、プラスミドDNAの制限酵
素による切断と、DNA鎖の連結酵素(リガーゼ)
による結合(ライゲイシヨン)も常法によつて行
なうことができる。 次に、本発明のプラスミドの製造法を実験例に
より詳述するが、使用したコリネバクテリウム・
キセロシスM82B株は、本発明者が分離した菌株
であり、分子量が30.4±2.7Mdのプラスミドを保
有しており、このプラスミド上にエリスロマイシ
ン、カナマイシン、クロラムフエニコール、テト
ラサイクリン耐性遺伝子を持つている。また、染
色体上にもストレプトマイシン耐性遺伝子を有し
ている。 例 1: コリネバクテリウム・キセロシスM82B株から
のプラスミドDNAの分離 トリプトソイブイヨン培地(トリプトン17g、
ソイペプトン3g、ブドウ糖2.5g、リン酸一水
素カリウム2.5g、塩化ナトリウム5g、蒸留水
1、PH7.3)によるM82B株の一夜培養液を新
鮮同培地に1/100量接種し、37℃で約3時間振盪
培養した後、ペニシリンGを最終濃度5μg/ml
となるように加え、さらに2時間振盪培養した。 この培養液を冷却遠心し、得られたペレツトを
TEバツフア(10mMトリスアミノメタン、
0.5mMEDTA,PH8.0)で2回洗浄後、TEバツフ
アに溶かした0.5Mシユークロースに懸濁した。
この懸濁液にリゾチーム(シグマ)を最終濃度
10μg/mlとなるように加え37℃で2時間インキ
ユベートした。 この溶液に10%SDS(ドデシル硫酸ナトリウム)
溶液を最終濃度1%になるように加え、55℃で30
分間静置した。次に新たに調整した3N水酸化ナ
トリウム溶液を加えてPH12.1〜12.3とし軽く混和
後、2Mトリス溶液(PH7.0)を水酸化ナトリウム
溶液の2倍量加えた。さらに5M塩化ナトリウム
溶液を最終濃度1Mとなるように加えた後4℃で
一夜放置した。その後10000rpm、30分の冷却遠
心により上清を分取し、TEバツフアで飽和した
等量の再蒸留フエノールを加えよく混和した。 10000rpm、20分の冷却遠心により水層を分取
し、−20℃のエタノールを3倍量加えて、−20℃で
一夜放置した。10000rpm30分間の冷却遠心によ
りペレツトを集め、TEバツフアに溶解し、DNA
溶液とした。 例 2: M82B株より抽出されたプラスミドpTP10
DNAによる枯草菌の形質転換 枯草菌168LMAH761222(leu-,met-,ade-,
hir-)株のバクト−ペンアツセイブロス(デイフ
コ:バクト−ビーフ抽出物1.5g、バクト−酵母
抽出物1.5g、バクトペプトン5g、バクト−デ
キストロース1g、塩化ナトリウム3.5g、リン
酸ニカリウム3.68g、リン酸一カリウム1.32g、
蒸留水1、PH7.0±0.1)による一夜培養液を新
しい同培地に1/100量接種し37℃で吸光度(OD)
0.4(600nm)まで振盪培養した。菌体を遠心によ
り集菌し、SMMPバツフアー(0.5Mシユークロ
ース、0.02Mマレイン酸二ナトリウム、1M塩化
マグネシウムを2倍濃度のバクト−ペンアツセイ
プロスに溶解)に懸濁した後、最終濃度2mg/ml
となるようにリゾチームを加えた。37℃約1時間
の培養の後3000rpm15分の遠心により集菌し、
SMMPバツフアーで一度洗浄後、菌体を6mlの
SMMPバツフアーに懸濁し、プロトプラスト溶
液とした。 例1で得たDNA溶液50μ(約DNA0.5μg)
に同量の二倍濃度のSMMバツフアー(1Mシユ
ークロース、0.04Mマレイン酸二ナトリウム、
2M塩化マグネシウム)を加えた後、上述のプロ
トプラスト溶液1mlを加えた。さらに40%ポリエ
チレングリコール6000溶液3mlを加えて、0℃2
分間静置後5mlのSMMPバツフアーを加え
3000rpm10分間の遠心により集菌した。集めたプ
ロトプラストペレツトを1mlのSMMPバツフア
ーに懸濁し30℃で1.5時間培養後、その0.1mlをク
ロラムフエニコール25μg/ml含有のDM−3再
生培地(リン酸二カリウム3.5g、リン酸一カリ
ウム1.5g、カザミノ酸5g、塩化マグネシウム
4.06g、コハク酸ナトリウム135g、酵母抽出物
5g、グルコース5g、寒天8g、牛血清アルブ
ミン0.05g、蒸留水1、PH7.3)に塗抹し、37
℃で2〜3日間培養することにより109〜1010株
に1株の頻度で形質転換株を得た。 例 3: 形質転換株からのプラスミドDNAの分離 得られたクロラムフエニコール耐性の形質転換
株をデイフコラボラトリース社製ブレインハート
インフユージヨン培地(BHI培地)10mlに接種
し、一夜静置培養した。この培養液をCY培地
(リン酸二カリウム0.7%、リン酸一カリウム0.3
%、硫酸アンモニウム0.1%、クエン酸ナトリウ
ム0.05%、カザミノ酸0.2%、酵母抽出物0.1%、
硫酸マグネシウム0.025%、ブドウ糖0.5%、PH
7.0)10mlに吸光度0.1(600nm)になるように加え
た。37℃で振盪培養し、吸光度0.3(600nm)の時
にデオキシアデノシンを最終濃度250μg/mlに
なるように加えた。3分後トリチウム標識チミジ
ンを最終濃度10μCi/mlになるように加えた。 吸光度0.8(600nm)の時点で氷にて発育を停止
させ、10000×gで15分間4℃に於て遠心してブ
ロスから菌体を分離し、菌体ペレツトをTES緩
衝液(0.05M塩化ナトリウム、0.005M EDTA含
有トリス−塩酸緩衝液(PH8.0))に再懸濁した。 次に、0.5M EDTA液0.2ml、10mg/ml濃度の
リゾチーム液0.1mlを加え、混合物を10分間37℃
で培養した。これにブリジ−58(花王アトラス(株))
を最終濃度0.5%となるように加え、37℃で10分
間培養した。次にN−ラウロイルサルコシンナト
リウムを最終濃度2.5%になるように加え、50℃
で30分間培養し溶菌を行つた。 溶菌液をピペツトにて粘性をとり、軟化させた
のち、塩化セシウムおよび臭化エチジウムと混合
し、密度1.553の溶液とした。この溶液を126000
×gで平衡まで(約40時間)遠心した。 遠心管下部末端より、溶液を分画分取し、各分
画ごとに10μをワツトマンろ紙GF/Aに吸着さ
せ、このろ紙に吸着されたトリチウムの放射活性
を液体シンチレーシヨンカウンター(パツカード
3300)にて測定しcpmにて表わすと、染色体
DNAに由来する高活性を示す分画の大きなピー
クとプラスミドDNAに由来する小さなピークの
2つが得られた。この小さなピークを示した分画
をとり、n−オクタノールで2回処理することに
より、臭化エチジウムを抽出除去した。次に水層
をSSC緩衝液(0.15M塩化ナトリウム、0.015Mク
エン酸ナトリウム、PH7.0)の10倍希釈液に対し
て透析してプラスミドを分離した。分離したプラ
スミドDNAの分子量を電子顕微鏡により測定し
たところ4.7Mdであつた。本プラスミドをpTP11
とする。また本プラスミドを所有する菌株を枯草
菌LMAH(pTP11)株と名付けた。本プラスミド
のコピー数は約20であつた。 例 4: プラスミドpTP11による枯草菌RM125株の形
質転換 枯草菌LMAH(pTP11)株よりプラスミド
DNAを下記の方法により調製した。 枯草菌LMAH(pTP11)株をBHI培地100mlに
接種し、37℃で約18〜24時間振盪培養する。 この細胞懸濁液を1%の率で同培地の20本のフ
ラスコに接種するのに使用する。37℃で18〜24時
間振盪培養後、10000×gで約15分間4℃に於て
遠心し上澄を傾斜で除く。得た菌体ペレツトを
TES緩衝液によつて2回洗浄後、100mlの25%蔗
糖含有TES緩衝液に再懸濁する。 次に0.5M−EDTA溶液40ml、10mg/ml濃度の
リゾチーム溶液20mlを加え混合物を30分間37℃で
培養する。次に50mg/ml濃度のブリジ−58 20ml
を加え、混合物を37℃で10分間培養する。さらに
250mg/ml濃度のN−ラウロイルサルコシンナト
リウム20mlを加え、50℃で10〜30分間培養する
(細胞破壊)。 溶解物を26000×g、30分間冷却遠心後、上澄
に5M塩化ナトリウム溶液50mlを加え一夜放置後、
ポリエチレングリコール6000を最終濃度10%とな
るように加え、さらに一夜4℃にて放置した。こ
の混合物を10000×g、15分間遠心し、得られた
ペレツトをTES緩衝液に溶解した。 この溶液を塩化セシウムおよび臭化エチジウム
と混合して密度1.553の溶液を製する。この溶液
を126000×gで平衡まで(約40時間)遠心する。
紫外線照射下で(365nm)線状染色体およびプラ
スミドDNAは強い螢光を発するバンドとして遠
心機チユーーブの中に見られる。 このプラスミドDNAを密度勾配から取り出し、
n−オクタノールで2回抽出することにより臭化
エチジウムを除き、次に水層を10倍希釈SSC緩衝
液に対して透析してpTP11を得た。 得られたpTP11DNAを前述のプロトプラスト
法により枯草菌の制限欠損−修飾欠損株である
RM125株へ形質転換した。 得られたクロラムフエニコール耐性コロニーの
ひとつを使い、トリチウム標識チミジンラベル法
によりプラスミドの検出を行つたところpTP11
と全く同じ分子量のプラスミドを検出することが
出来た。本実験よりプラスミドpTP11上にはク
ロラムフエニコール耐性遺伝子が存在しているこ
とが確認された。 例 5: プラスミドpTP11の制限酵素開裂点地図の作
成 制限酵素によるプラスミドDNAの消化は次の
条件により行つた。また、2種の制限酵素を組み
合わせて反応させる場合は、一方の酵素反応をフ
エノールで停止させ、さらにフエノールをエーテ
ル抽出した後に2倍量のエタノールを加え、析出
したDNAを遠心によつて集めTEバツフアーに溶
解した後、次の酵素反応を行つた。 EcoR 10mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.2)、
5mM塩化マグネシウム、2mMメルカプ
トエタノール、50mM塩化ナトリウム、
37℃ Hpa 20mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.4)、
7mM塩化マグネシウム、1mMジチオス
レイトール(DTT)、37℃ Xba 6mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.4)、
100mM塩化ナトリウム、6mM塩化マグ
ネシウム、37℃ Bcl 12mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.4)、
12mM塩化マグネシウム、12mM塩化ナ
トリウム、0.5mMDTT、50℃ Hind 20mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.4)、
7mM塩化マグネシウム、60mM塩化ナ
トリウム、37℃ 消化混合物はシヤープ等によつてつくられた1
%アガロースゲル中で分析した(J.Sharp et al,
Biochemistry,12 3055〜3063(1973))。EcoR
消化λDNAを分子量対照として使用した
(Thomasら、J.Mol.Biol.,91 315〜328
(1975))。 pTP11の制限酵素開裂点の数および開裂断片
の分子量を表に示す。
【表】
例 6:プラスミドpTP1102の製造
枯草菌RM125(pNS1)株(Gene 21,105〜
112(1983))よりプラスミドpNS1DNAを前述の
方法(例4)と同様にして抽出し、プラスミド
pTP11DNAと混合後制限酵素Hindで切断し
た。 すなわち、pTP11DNA1μgとpNS11μgを
20mMトリス塩酸緩衝液(PH7.4)、7mM塩化マ
グネシウム、60mM塩化ナトリウム、Hind10
単位含有溶液中で37℃、1時間の反応により切断
する。反応をフエノールを加えることにより停止
させ、エーテル抽出によりフエノールを除去後2
倍量のエタノールを加え、DNAを沈殿させた。 沈殿したDNAペレツトを66mMトリス塩酸緩
衝液(PH7.6)、6.6mM塩化マグネシウム、10mM
ジチオスレイトール、4mMアデノシン三リン酸
溶液100μに溶解後、T4DNAリガーゼ0.01単位
を加え16℃、16時間の反応によつてDNAを連結
させた。フエノールにより反応を停止させ、エー
テル抽出によりフエノールを除去後、2倍量のエ
タノールを加えDNAを沈殿させた。沈殿した
DNAを滅菌蒸留水50μに溶解し、形質転換用
DNA試料として用いた。 形質転換は例2に記載したプロトプラスト法に
より行つた。受容菌には枯草菌RM125株を用い
た。 得られたクロラムフエニコール、テトラサイク
リン両耐性を持つコロニーについてプラスミド
DNAの検索を行つた。すなわち、得られたコロ
ニーを溶菌用緩衝液(リゾチーム2μg/ml、
RNase0.1mg/ml、25%シユークロースとなるよ
うにTEバツフアーに溶解)40μに懸濁し37℃、
2時間反応させた。この溶液に5%SDS溶液10μ
を加え、完全に溶菌後、フエノール50μを加
え10000rpm10分間の遠心後、水層を分取した。 この水層についてアガロースゲル電気泳動法に
より、プラスミドDNAの確認を行い、分子量が
最も小さいプラスミドDNAを持つているいくつ
かの形質転換株を選択した。 各形質転換株より前述の方法でプラスミド
DNAを調製し、EcoR,HindおよびKpn
に関する制限酵素開裂点地図を作成した。Kpn
の反応条件は6mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.5)、
6mM塩化ナトリウム、6mM塩化マグネシウム、
6mM2−メルカプトエタノール、37℃である。 この結果、pNS1由来のHind−A断片
(1.5Md)とpTP11由来の2.8Mdの断片とが結合
したプラスミドpTP1102を持つ形質転換株が存
在することが確認された。この株を枯草菌
RM125(pTP1102)株と名付けた。 例 7:プラスミドpTP1102DNAの調製 枯草菌RM125(pTP1102)株をデイフコ・ラボ
ラトリーズ製ブレインハートインフユージヨン
(BHI)培地100mlに接種する。PHが7.4±0.2であ
ることを確認する。培地を500ml坂口フラスコ中
で予め滅菌する。接種後フラスコを37℃、約18〜
24時間振盪培養する。 この細胞懸濁液を1%の率で同培地の20本のフ
ラスコに接種するのに使用する。37℃で18〜24時
間振盪培養後、10000×gで約15分間4℃に於て
ブロスから分離し、上澄を菌体ペレツトから傾斜
で除く。上澄を捨てペレツトをTES緩衝液によ
つて2回洗浄後、100mlの25%蔗糖含有TES緩衝
液に再懸濁する。次に0.5M−EDTA溶液40ml、
10mg/ml濃度のリゾチーム溶液20mlを加え混合物
を30分間37℃で培養する。次に50mg/ml濃度のブ
リジ−58 20mlを加え、混合物を37℃、10分間培
養する。さらに250mg/ml濃度のN−ラウロイル
サルコシンナトリウム20mlを加え、50℃で10〜30
分間培養する(細胞破壊)。 溶解物を26000×g、30分間冷却遠心後、上澄
に5M濃度の塩化ナトリウム溶液50mlを加え一夜
放置後、ポリエチレングリコール6000を最終濃度
10%となるように加え、さらに一夜4℃にて放置
した。この混合物を10000×g、15分間遠心し、
ペレツトをTES緩衝液に溶解した。 この溶液を塩化セシウム、臭化エチジウムと混
合し、密度1.553の溶液とする。この溶液を
126000×gで平衡まで(約40時間)遠心する。紫
外線照射下で(365nm)線状染色体およびプラス
ミドDNAは強い螢光を発するバンドとして遠心
機チユーブの中に見られる。このプラスミド
DNAを密度勾配から取り出し、n−オクタノー
ルで2回抽出することにより臭化エチジウムを除
き、次に水層を10倍希釈SSC緩衝液(0.15M塩化
ナトリウム、0.015Mクエン酸ナトリウム、PH
7.0)に対して透析してpTP1102DNAを得た。 例 8: プラスミドpTP1102からのDNA断片欠損プラ
スミドDNAの調製 プラスミドpTP1102DNA2μgを、6mM−トリ
ス塩酸緩衝液(PH7.4)、100mM塩化ナトリウム、
6mM塩化マグネシウム、Xba10単位含有溶液
中で37℃、1時間の反応により切断する。反応を
フエノールを加えることにより停止させ、エーテ
ル抽出によりフエノールを除去後、2倍量のエタ
ノールを加え、DNAを沈殿させた。 沈殿したDNAペレツトを66mMトリス塩酸緩
衝液(PH7.6)、6.6mM塩化マグネシウム、10mM
ジチオスレイトール、4mMアデノシン三リン酸
溶液100μに溶解後、T4DNAリガーゼ0.01単位
を加え16℃、16時間の反応によつてDNAを連結
させた。フエノールにより反応を停止させ、エー
テル抽出により、フエノールを除去後、2倍量の
エタノールを加えDNAを沈殿させた。沈殿した
DNAを滅菌蒸留水50μに溶解し、形質転換用
DNA試料として用いた。 例 9:形質転換 枯草菌RM125株のバクト−ベンアツセイブロ
スによる一夜培養液を新しい同培地に1/100量接
種し37℃でOD0.4(600nm)まで振盪培養した。
菌体を遠心により集菌し、SMMPバツフアー
(0.5Mシユークロース、0.02Mマレイン酸二ナト
リウム、1M塩化マグネシウムを2倍濃度のバク
ト−ペンアツセイブロスに溶解)に懸濁した後、
最終濃度2mg/mlとなるようにリゾチームを加え
た。37℃約1時間の培養の後3000rpm15分の遠心
により集菌し、SMMPバツフアーで一度洗浄後、
菌体を6mlのSMMPバツフアーに懸濁し、プロ
トプラスト溶液とした。 例8で得たDNA溶液50μ(約DNA0.5μg)
に同量の2×SMMバツフアーを加えた後、上述
のプロトプラスト溶液1mlを加えた。さらに40%
ポリエチレングリコール6000溶液3mlを加えて、
0℃2分間静置後5mlのSMMPバツフアーを加
え3000rpm10分間の遠心により集菌した。集めた
プロトプラストペレツトを1mlのSMMPバツフ
アーに懸濁し30℃1.5時間培養後、その0.1mlをク
ロラムフエニコール25μg/ml含有のDM−3再
生培地に塗抹し、37℃で2〜3日間培養すること
により形質転換株を得た。 得られたクロラムフエニコール耐性コロニーを
溶菌用緩衝液(リゾチーム2μg/ml、RNase0.1
mg/ml、25%シユークロースをTEバツフアーに
溶解)40μに懸濁し37℃、2時間反応させた。
この溶液に5%SDS溶液10μを加え、完全に溶
菌後、フエノール50μを加え10000rpm10分間の
遠心後、水層を分取した。 この水層についてアガロースゲル電気泳動法に
より、プラスミドDNAの確認を行い、分子量が
最も小さいプラスミドDNAを持つているいくつ
かの形質転換株についてさらに詳しく調べた。 すなわち、各形質転換株より前述の方法によ
り、プラスミドDNAを調整し、やはり前述の方
法によりXba切断を行い、アガロースゲル電気
泳動を行つた結果、プラスミドpTP1102の0.8Md
のXba−断片が欠損したプラスミドpTP1103の
存在が確認された。pTP1103を有する株を枯草
菌RM125(pTP1103)と名付けた。 pTP1103は分子量3.5Mdであり、コピー数は約
100コピーであつた。 以上の例で用いた微生物は工業技術院微生物工
業技術研究所に寄託されており、次の番号を有し
ている。 コリネバクテリウム・キセロシスM82B FERM P−6971 枯草菌168LMAH761222 FERM P−6972 枯草菌RM125 FERM P−6973 枯草菌RM125(pNS1) FERM P−7008
112(1983))よりプラスミドpNS1DNAを前述の
方法(例4)と同様にして抽出し、プラスミド
pTP11DNAと混合後制限酵素Hindで切断し
た。 すなわち、pTP11DNA1μgとpNS11μgを
20mMトリス塩酸緩衝液(PH7.4)、7mM塩化マ
グネシウム、60mM塩化ナトリウム、Hind10
単位含有溶液中で37℃、1時間の反応により切断
する。反応をフエノールを加えることにより停止
させ、エーテル抽出によりフエノールを除去後2
倍量のエタノールを加え、DNAを沈殿させた。 沈殿したDNAペレツトを66mMトリス塩酸緩
衝液(PH7.6)、6.6mM塩化マグネシウム、10mM
ジチオスレイトール、4mMアデノシン三リン酸
溶液100μに溶解後、T4DNAリガーゼ0.01単位
を加え16℃、16時間の反応によつてDNAを連結
させた。フエノールにより反応を停止させ、エー
テル抽出によりフエノールを除去後、2倍量のエ
タノールを加えDNAを沈殿させた。沈殿した
DNAを滅菌蒸留水50μに溶解し、形質転換用
DNA試料として用いた。 形質転換は例2に記載したプロトプラスト法に
より行つた。受容菌には枯草菌RM125株を用い
た。 得られたクロラムフエニコール、テトラサイク
リン両耐性を持つコロニーについてプラスミド
DNAの検索を行つた。すなわち、得られたコロ
ニーを溶菌用緩衝液(リゾチーム2μg/ml、
RNase0.1mg/ml、25%シユークロースとなるよ
うにTEバツフアーに溶解)40μに懸濁し37℃、
2時間反応させた。この溶液に5%SDS溶液10μ
を加え、完全に溶菌後、フエノール50μを加
え10000rpm10分間の遠心後、水層を分取した。 この水層についてアガロースゲル電気泳動法に
より、プラスミドDNAの確認を行い、分子量が
最も小さいプラスミドDNAを持つているいくつ
かの形質転換株を選択した。 各形質転換株より前述の方法でプラスミド
DNAを調製し、EcoR,HindおよびKpn
に関する制限酵素開裂点地図を作成した。Kpn
の反応条件は6mMトリス−塩酸緩衝液(PH7.5)、
6mM塩化ナトリウム、6mM塩化マグネシウム、
6mM2−メルカプトエタノール、37℃である。 この結果、pNS1由来のHind−A断片
(1.5Md)とpTP11由来の2.8Mdの断片とが結合
したプラスミドpTP1102を持つ形質転換株が存
在することが確認された。この株を枯草菌
RM125(pTP1102)株と名付けた。 例 7:プラスミドpTP1102DNAの調製 枯草菌RM125(pTP1102)株をデイフコ・ラボ
ラトリーズ製ブレインハートインフユージヨン
(BHI)培地100mlに接種する。PHが7.4±0.2であ
ることを確認する。培地を500ml坂口フラスコ中
で予め滅菌する。接種後フラスコを37℃、約18〜
24時間振盪培養する。 この細胞懸濁液を1%の率で同培地の20本のフ
ラスコに接種するのに使用する。37℃で18〜24時
間振盪培養後、10000×gで約15分間4℃に於て
ブロスから分離し、上澄を菌体ペレツトから傾斜
で除く。上澄を捨てペレツトをTES緩衝液によ
つて2回洗浄後、100mlの25%蔗糖含有TES緩衝
液に再懸濁する。次に0.5M−EDTA溶液40ml、
10mg/ml濃度のリゾチーム溶液20mlを加え混合物
を30分間37℃で培養する。次に50mg/ml濃度のブ
リジ−58 20mlを加え、混合物を37℃、10分間培
養する。さらに250mg/ml濃度のN−ラウロイル
サルコシンナトリウム20mlを加え、50℃で10〜30
分間培養する(細胞破壊)。 溶解物を26000×g、30分間冷却遠心後、上澄
に5M濃度の塩化ナトリウム溶液50mlを加え一夜
放置後、ポリエチレングリコール6000を最終濃度
10%となるように加え、さらに一夜4℃にて放置
した。この混合物を10000×g、15分間遠心し、
ペレツトをTES緩衝液に溶解した。 この溶液を塩化セシウム、臭化エチジウムと混
合し、密度1.553の溶液とする。この溶液を
126000×gで平衡まで(約40時間)遠心する。紫
外線照射下で(365nm)線状染色体およびプラス
ミドDNAは強い螢光を発するバンドとして遠心
機チユーブの中に見られる。このプラスミド
DNAを密度勾配から取り出し、n−オクタノー
ルで2回抽出することにより臭化エチジウムを除
き、次に水層を10倍希釈SSC緩衝液(0.15M塩化
ナトリウム、0.015Mクエン酸ナトリウム、PH
7.0)に対して透析してpTP1102DNAを得た。 例 8: プラスミドpTP1102からのDNA断片欠損プラ
スミドDNAの調製 プラスミドpTP1102DNA2μgを、6mM−トリ
ス塩酸緩衝液(PH7.4)、100mM塩化ナトリウム、
6mM塩化マグネシウム、Xba10単位含有溶液
中で37℃、1時間の反応により切断する。反応を
フエノールを加えることにより停止させ、エーテ
ル抽出によりフエノールを除去後、2倍量のエタ
ノールを加え、DNAを沈殿させた。 沈殿したDNAペレツトを66mMトリス塩酸緩
衝液(PH7.6)、6.6mM塩化マグネシウム、10mM
ジチオスレイトール、4mMアデノシン三リン酸
溶液100μに溶解後、T4DNAリガーゼ0.01単位
を加え16℃、16時間の反応によつてDNAを連結
させた。フエノールにより反応を停止させ、エー
テル抽出により、フエノールを除去後、2倍量の
エタノールを加えDNAを沈殿させた。沈殿した
DNAを滅菌蒸留水50μに溶解し、形質転換用
DNA試料として用いた。 例 9:形質転換 枯草菌RM125株のバクト−ベンアツセイブロ
スによる一夜培養液を新しい同培地に1/100量接
種し37℃でOD0.4(600nm)まで振盪培養した。
菌体を遠心により集菌し、SMMPバツフアー
(0.5Mシユークロース、0.02Mマレイン酸二ナト
リウム、1M塩化マグネシウムを2倍濃度のバク
ト−ペンアツセイブロスに溶解)に懸濁した後、
最終濃度2mg/mlとなるようにリゾチームを加え
た。37℃約1時間の培養の後3000rpm15分の遠心
により集菌し、SMMPバツフアーで一度洗浄後、
菌体を6mlのSMMPバツフアーに懸濁し、プロ
トプラスト溶液とした。 例8で得たDNA溶液50μ(約DNA0.5μg)
に同量の2×SMMバツフアーを加えた後、上述
のプロトプラスト溶液1mlを加えた。さらに40%
ポリエチレングリコール6000溶液3mlを加えて、
0℃2分間静置後5mlのSMMPバツフアーを加
え3000rpm10分間の遠心により集菌した。集めた
プロトプラストペレツトを1mlのSMMPバツフ
アーに懸濁し30℃1.5時間培養後、その0.1mlをク
ロラムフエニコール25μg/ml含有のDM−3再
生培地に塗抹し、37℃で2〜3日間培養すること
により形質転換株を得た。 得られたクロラムフエニコール耐性コロニーを
溶菌用緩衝液(リゾチーム2μg/ml、RNase0.1
mg/ml、25%シユークロースをTEバツフアーに
溶解)40μに懸濁し37℃、2時間反応させた。
この溶液に5%SDS溶液10μを加え、完全に溶
菌後、フエノール50μを加え10000rpm10分間の
遠心後、水層を分取した。 この水層についてアガロースゲル電気泳動法に
より、プラスミドDNAの確認を行い、分子量が
最も小さいプラスミドDNAを持つているいくつ
かの形質転換株についてさらに詳しく調べた。 すなわち、各形質転換株より前述の方法によ
り、プラスミドDNAを調整し、やはり前述の方
法によりXba切断を行い、アガロースゲル電気
泳動を行つた結果、プラスミドpTP1102の0.8Md
のXba−断片が欠損したプラスミドpTP1103の
存在が確認された。pTP1103を有する株を枯草
菌RM125(pTP1103)と名付けた。 pTP1103は分子量3.5Mdであり、コピー数は約
100コピーであつた。 以上の例で用いた微生物は工業技術院微生物工
業技術研究所に寄託されており、次の番号を有し
ている。 コリネバクテリウム・キセロシスM82B FERM P−6971 枯草菌168LMAH761222 FERM P−6972 枯草菌RM125 FERM P−6973 枯草菌RM125(pNS1) FERM P−7008
図1は、プラスミドの制限酵素開裂点地図であ
り、図2はフローチヤートである。
り、図2はフローチヤートである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 テトラサイクリン耐性遺伝子およびクロラム
フエニコール耐性遺伝子を有し、分子量が約3.5
メガダルトンであり、制限酵素開裂点地図が次の
通りであるプラスミドpTP1103
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58121789A JPS6012984A (ja) | 1983-07-05 | 1983-07-05 | プラスミドpTP1103 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58121789A JPS6012984A (ja) | 1983-07-05 | 1983-07-05 | プラスミドpTP1103 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6012984A JPS6012984A (ja) | 1985-01-23 |
JPH0141311B2 true JPH0141311B2 (ja) | 1989-09-05 |
Family
ID=14819932
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58121789A Granted JPS6012984A (ja) | 1983-07-05 | 1983-07-05 | プラスミドpTP1103 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6012984A (ja) |
-
1983
- 1983-07-05 JP JP58121789A patent/JPS6012984A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS6012984A (ja) | 1985-01-23 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Nakano et al. | Isolation and characterization of sfp: a gene that functions in the production of the lipopeptide biosurfactant, surfactin, in Bacillus subtilis | |
Gryczan et al. | Molecular cloning of heterologous chromosomal DNA by recombination between a plasmid vector and a homologous resident plasmid in Bacillus subtilis | |
JPH07114703B2 (ja) | Dnaベクター | |
Mulder et al. | Construction of an artificial secYEG operon allowing high level secretion of α-amylase | |
Peñaloza-Vázquez et al. | Characterization of CorR, a transcriptional activator which is required for biosynthesis of the phytotoxin coronatine | |
JPS63202389A (ja) | 2−ケト−l−グロン酸の微生物学的製造方法 | |
US4332900A (en) | Construction of co-integrate plasmids from plasmids of Streptomyces and Escherichia | |
EP0057976B1 (en) | a process for cloning the gene coding for a thermostable alpha-amylase into escherichia coli and bacillus subtilis | |
US4725535A (en) | Promoter probe vectors | |
EP0195303A1 (en) | Plasmid vectors for expression in escherichia coli and/or bacillus subtilis | |
US4393137A (en) | Cloning plasmid for streptomyces | |
JPH0141311B2 (ja) | ||
JPH0139754B2 (ja) | ||
JPH0363357B2 (ja) | ||
JPH0139755B2 (ja) | ||
US4518698A (en) | Plasmid and production thereof | |
JPH0139753B2 (ja) | ||
MacNeil | A flexible boiling procedure for isolating plasmid DNA from gram-positive microorganisms | |
JPH0255036B2 (ja) | ||
Davis et al. | Gene cloning in clostridia | |
JP2003235565A (ja) | 乳酸菌用シャトルベクター | |
JP2948265B2 (ja) | ヌクレオシド・ホスホリラーゼをコードするdna断片 | |
JPH0256075B2 (ja) | ||
JP3014717B2 (ja) | プリン・ヌクレオシド・ホスホリラーゼをコードするdna断片 | |
JPH0679556B2 (ja) | プラスミド |