JPH012572A - DNA and transformants - Google Patents

DNA and transformants

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JPH012572A
JPH012572A JP62-157495A JP15749587A JPH012572A JP H012572 A JPH012572 A JP H012572A JP 15749587 A JP15749587 A JP 15749587A JP H012572 A JPH012572 A JP H012572A
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dna
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勉 黒川
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
(57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 席−災瓦」秤肚分更 本発明は、カルシウムおよびリン脂質依存性蛋白質リン
酸化酵素(蛋白質リン酸化酵素CあるいはC−キナーゼ
と略称することもある。)およびその製造のための組み
換えDNA技術に関し、中でもラットC−キナーゼおよ
びヒトC−キナーゼに関するものである。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a calcium- and phospholipid-dependent protein kinase (sometimes abbreviated as protein kinase C or C-kinase) and its Recombinant DNA technology for the production, inter alia, of rat C-kinase and human C-kinase.

従米豊挟先 生体の多彩な機能発揮や適応現象には、細胞の生長因子
、ホルモンあるいは神経伝達物質など多種類の生理活性
物質の関与が知られている。これらの細胞外シグナルは
、サイクリックAMP(cAMP)、サイクリックG 
M P (c G M P ) 、シアシールグリセロ
ール(DG)、カルシウム(Ca++)などの細胞内伝
達物質を通じて発揮される。
It is known that many types of physiologically active substances, such as cell growth factors, hormones, and neurotransmitters, are involved in the body's various functions and adaptation phenomena. These extracellular signals include cyclic AMP (cAMP), cyclic G
It is exerted through intracellular transmitters such as M P (c G M P ), cyacylglycerol (DG), and calcium (Ca++).

特にDGは細胞機能の活性化を引き起す多くのホルモン
や神経伝達物質によって細胞膜のイノシトール燐脂質が
分解された結果生じることが判明している。このDGが
カルシウムの存在下にC−キナーゼを活性化し、この酵
素による細胞内各種蛋白質のリン酸化反応が種々の細胞
機能の活性化や細胞増殖をもたらすと考えられている。
In particular, DG has been found to be produced as a result of the decomposition of inositol phospholipids in cell membranes by many hormones and neurotransmitters that cause activation of cell functions. It is thought that this DG activates C-kinase in the presence of calcium, and the phosphorylation reaction of various intracellular proteins by this enzyme leads to the activation of various cellular functions and cell proliferation.

っまりC−キナーゼは外界シグナルの主要な情報伝達機
構の一つにおいて重要な役割を担っている酵素である。
C-kinase is an enzyme that plays an important role in one of the major information transduction mechanisms for external signals.

ラット大脳より精製された該酵素は等電点がPH5,6
の酸性蛋白質であり1分子量は約77゜000である。
The enzyme purified from rat cerebrum has an isoelectric point of PH5.6.
It is an acidic protein with a molecular weight of approximately 77°000.

またこの酵素は疎水性の部分と親水性の部分とからなる
単一ペプチドからできており、疎水性部分を介して細胞
膜に結合し、親水性部分に活性中心が存在する。C−キ
ナーゼは通常不活性型であり、カルシウムとフォスファ
チジールセリンおよびDGの王者によって活性化される
This enzyme is made of a single peptide consisting of a hydrophobic part and a hydrophilic part, and binds to the cell membrane through the hydrophobic part, with the active center located in the hydrophilic part. C-kinase is normally inactive and activated by calcium and phosphatidylserine and DG king.

またリン酸供与体はATPであることがわかっている。It is also known that the phosphate donor is ATP.

このようにC−キナーゼは蛋白質リン酸化酵素の一つと
して蛋白質のリン酸化を通じて細胞外シグナルの細胞内
伝達を行うことから、細胞外シグナルの受容伝達機構の
研究には欠くことのできない酵素であり、その試薬とし
ての価値は非常に高い。また、本酵素は発ガンプロモー
ターであるフォルボールエステルにより直接活性化され
る。フォルボールエステルは発ガン過程の促進を引き起
こすだけではなく、細胞***や分化、酵素の誘導、脂質
の代謝昂進など多くの生物反応に深く関与していること
が知られている。これらのことは細胞膜受容伝達機構の
異常が成因となる種々の病的細胞やガン細胞において、
C−キナーゼが重要な指標酵素となる可能性が高く、C
−キナーゼに対する抗体などが診断剤や検査薬として用
いられることが考えられる。これらの目的のためには十
分な量のヒトC−キナーゼの供給が必要となる。しかし
、天然に存在するヒトC−キナーゼは微量であり、また
これをヒトの組織から得る試みは種々の制約によって極
めて困難なため、未だにヒトC−キナーゼのアミノ酸配
列や遺伝子の塩基配列は決定されていない。
In this way, C-kinase, as one of the protein phosphorylating enzymes, transmits extracellular signals into cells through protein phosphorylation, and therefore is an indispensable enzyme for research on the reception and transmission mechanism of extracellular signals. , its value as a reagent is extremely high. Furthermore, this enzyme is directly activated by phorbol ester, which is an oncogenic promoter. It is known that phorbol esters not only promote the carcinogenic process, but also are deeply involved in many biological reactions such as cell division and differentiation, enzyme induction, and lipid metabolism acceleration. These things occur in various pathological cells and cancer cells caused by abnormalities in cell membrane receptor and transmission mechanisms.
C-kinase is likely to be an important indicator enzyme;
- Antibodies against kinases may be used as diagnostic agents or testing agents. For these purposes it is necessary to supply sufficient amounts of human C-kinase. However, only a small amount of naturally occurring human C-kinase exists, and attempts to obtain it from human tissues are extremely difficult due to various constraints, so the amino acid sequence and gene nucleotide sequence of human C-kinase have not yet been determined. Not yet.

一方、材料が比較的容易に得られる動物111来のC−
キナーゼは、例えばラット脳から既に精製されているが
、この場合もアミノ酸配列や遺伝子の塩基配列が決定さ
れていないし、またラットC−キナーゼについても大量
生産は非常に難かしいのである。
On the other hand, C-
Kinase has already been purified, for example, from rat brain, but the amino acid sequence and gene base sequence have not been determined in this case, and mass production of rat C-kinase is also extremely difficult.

発明が解゛ しようとす4匝見1遵よ 上記のようにヒトC−キナーゼやラットC−キナーゼの
性質、アミノ酸配列および遺伝子については不明の点が
多い。従って試薬や検査薬として例えばそれをコードす
る遺伝子を同定し、その蛋白質を遺伝子組み換え技術に
よって生産する方法が望まれていた。
As mentioned above, there are many unknown points regarding the properties, amino acid sequences, and genes of human C-kinase and rat C-kinase. Therefore, there has been a desire for a method of identifying the gene encoding the reagent or test agent, and producing the protein by genetic recombination technology.

毀延点を解決するための手段 一般に、ヒトにより近い動物の蛋白質はそのアミノ酸配
列において非常に高い相同性があり、アミノ酸の異なっ
ている部分もその大部分はコドンのone point
 mutationによって導びかれるものである。そ
こで1本発明者等はまず材料の入手が容易なラット脳由
来のC−キナーゼを精製し、得られるアミノ酸配列を決
定するとともに、それをもとにクローニングされたラッ
トC−キナーゼ遺伝子のり、NA配列を解明した。この
ラットC−キナーゼ遺伝子のDNA配列については後述
の実施例1.2,4及び5に具体的に述べているとおり
であり、その塩基配列および該塩基配列より予測される
アミノ酸配列は第2図、第8図および第13図に示して
いる。
Means to resolve the gap In general, proteins from animals that are closer to humans have very high homology in their amino acid sequences, and most of the differences in amino acids are just one point codon.
It is guided by mutation. Therefore, the present inventors first purified rat brain-derived C-kinase, which is an easily available material, determined the resulting amino acid sequence, and based on this, cloned the rat C-kinase gene, NA. The sequence was solved. The DNA sequence of this rat C-kinase gene is as specifically described in Examples 1.2, 4 and 5 below, and the base sequence and the amino acid sequence predicted from the base sequence are shown in Figure 2. , shown in FIGS. 8 and 13.

そしてこのクローニングされたラントC−キナーゼ遺伝
子のDNA配列は、コドンの縮重により多数のDNA配
列が可能となるものの、その一部はヒトC−キナーゼ遺
伝子のDNA配列に極めて良く似ているものと推定され
ろ。そこで本発明者らはこのような考えに基づいて、−
たんラットC−キナーゼ遺伝子をクローニングし、この
cDNAIDNAプローブとして用いてヒトC−キナー
ゼ遺伝子をヒト細胞よりクローニングした。該遺伝子を
含む組み換えDNAを構築し、該DNAで形質転換され
た形質転換体を培養するとヒトC−キナーゼが生産され
る。本発明者らは、これらの知見に基づき、さらに研究
した結果1本発明を完成した。
The DNA sequence of this cloned runt C-kinase gene is said to be extremely similar to the DNA sequence of the human C-kinase gene, although a large number of DNA sequences are possible due to the degeneracy of codons. Be estimated. Therefore, based on this idea, the present inventors -
The protein rat C-kinase gene was cloned, and this cDNA was used as an DNA probe to clone the human C-kinase gene from human cells. When a recombinant DNA containing the gene is constructed and a transformant transformed with the DNA is cultured, human C-kinase is produced. Based on these findings, the present inventors conducted further research and completed the present invention.

本発明は、(1)アミノ酸配列: Tyr−8er−AQa−GQy−GQ、y−Asp−
Leu−Met−Leu−Hi s−I Qe−Hi 
5−8Or−Asp−VaQ−Phe−3er−GQu
−Pro−Arg−/’1a−I Q e−Phe−T
y r−8e r−AQ a −Cy 5−Va Q−
VaQ−Leu−GQy−Leu−GQn−Phe−L
eu−Hi 5−GQ u−Hi 5−Ly s−I 
Q o−Va Q−Ty r−Arg−Asp−Leu
−Lys−Leu−Asp−Asn−Le u−、Le
 u−Le u−As p−Th r −G Q u 
−G Q y−Tyr−VaQ−Lys−IQe−AQ
a−Asp−Phe−GQ y−Le u−Cy 5−
Ly 5−G(l u −G Q y−Me t−GQ
y−Tyr−GQy−Asp−Arg−Thr−8er
−Thr−Phe−Cys−GQy−Thrを含有する
ポリペプチドであるヒ1−C−キナーゼ(夏);同一の
活性を有する上記ポリペプチドの一部;もしくは上記ア
ミノ酸配列が部分的に変換され、かつ同一の活性を有す
るポリペプチド。
The present invention provides (1) amino acid sequence: Tyr-8er-AQa-GQy-GQ, y-Asp-
Leu-Met-Leu-Hi s-I Qe-Hi
5-8Or-Asp-VaQ-Phe-3er-GQu
-Pro-Arg-/'1a-I Q e-Phe-T
y r-8e r-AQ a -Cy 5-Va Q-
VaQ-Leu-GQy-Leu-GQn-Phe-L
eu-Hi 5-GQ u-Hi 5-Ly s-I
Q o-Va Q-Tyr-Arg-Asp-Leu
-Lys-Leu-Asp-Asn-Leu-, Le
u-Le u-As p-Th r -G Q u
-G Q y-Tyr-VaQ-Lys-IQe-AQ
a-Asp-Phe-GQ y-Le u-Cy 5-
Ly 5-G(lu-G Q y-Me t-GQ
y-Tyr-GQy-Asp-Arg-Thr-8er
-Human 1-C-kinase (Summer), which is a polypeptide containing Thr-Phe-Cys-GQy-Thr; a part of the above polypeptide having the same activity; or the above amino acid sequence is partially transformed, and a polypeptide having the same activity.

(2)ヒトC−キナーゼをコードする塩基配列を含有す
る組み換えDNA(11)、 (3)DNA(n)を含有するベクターで形質転換され
た形質転換体、および (4)DNA(n)を含有するベクターで形質転換され
た形質転換体を培地に培養し、培養物中にヒトC−キナ
ーゼを生成蓄積せしめ、これを採取することを特徴とす
る該酵素の製造法である。
(2) a recombinant DNA (11) containing a nucleotide sequence encoding human C-kinase; (3) a transformant transformed with a vector containing DNA (n); and (4) a transformant containing DNA (n). This is a method for producing the enzyme, which comprises culturing a transformant transformed with a vector containing the enzyme in a medium, producing and accumulating human C-kinase in the culture, and collecting the human C-kinase.

更に本発明は(5)第8図もしくは第13図で示される
アミノ酸配列からなるポリペプチドであるラットC−キ
ナーゼ、同一の活性を有する上記ポリペプチドの一部;
もしくは上記アミノ酸配列が部分的に変換され、かつ同
一の活性を有するポリペプチド、 (6)ラットC−キナーゼをコードする塩基配列を含有
する組み換えDNA(IV)、 (7)上記(6)のDNA (IV)を含有するベクタ
ーで形質転換された形質転換体、および (8)上記(7)の形質転換体を培地に培養し、培養物
中にラットC−キナーゼを生成蓄積せしめ、これを採取
することを特徴とする該酵素の製造法である。
Furthermore, the present invention provides (5) rat C-kinase, which is a polypeptide consisting of the amino acid sequence shown in FIG. 8 or FIG. 13, and a portion of the above polypeptide having the same activity;
or a polypeptide in which the above amino acid sequence is partially converted and has the same activity; (6) a recombinant DNA (IV) containing a base sequence encoding rat C-kinase; (7) the DNA of (6) above. A transformant transformed with a vector containing (IV) and (8) the transformant of (7) above are cultured in a medium to produce and accumulate rat C-kinase in the culture, which is collected. This is a method for producing the enzyme.

上記ヒトC−キナーゼをコードする塩基配列を含有する
組み換えDNA(II)としては、たとえば塩基配列: A G T A CT CG G CCG G T G
 G G G A CCT G A T GCTGCA
CATCCACAGCGACGTGTTCTCTGAG
CCCCGTGCCATCTTTTATTCCGCCT
 G CG T G G T G CT G G G 
CCT A CA G T T TC”r’l’CAC
GAACACAAGATCGTCTΔCA GGGAC
CTGAAGTTGGACAATTTGCTCCTGG
ACACCGAGGOCTACGTCAAGATCG 
CA OA CT T T G G CC,T CT 
G CA A G G A G G GOATGGGC
TATGGGOACCGGACCAGCAGATTCT
GTGGOACCG   (Ill)を含有する塩基配
列が好ましい。
The recombinant DNA (II) containing the base sequence encoding the human C-kinase includes, for example, the base sequence: A G T A CT CG G CCG G T G
G G G A CCT G A T GCTGCA
CATCCACAGCGACGTGTTCTCTGAG
CCCCGTGCCATCTTTTTATTCCGCCT
G CG T G G T G CT G G G
CCT A CA G T T TC"r'l'CAC
GAACACAAGATCGTCTΔCA GGGAC
CTGAAGTTGGACAATTTGCTCCTG
ACACCGAGGOCTACGTCAAGATCG
CA OA CT T T GG CC, T CT
G CA A G G A G G GOATGGGC
TATGGGOACCGGACCAGCAGATTCT
A base sequence containing GTGGOACCG (Ill) is preferred.

本発明のDNA、形質転換体および本発明の製造法にお
けるヒトC−キナーゼとしては、上記アミノ酸配列で示
されるヒトC−キナーゼ(I)をその一部として含む。
The human C-kinase in the DNA, transformant, and production method of the present invention includes human C-kinase (I) shown by the above amino acid sequence as a part thereof.

またラットC−キナーゼをコードする塩基配列を含有す
る組み換えDNAとしては、たとえば第8図もしくは第
13図に示される塩基配列を含有するものが好ましい。
The recombinant DNA containing the nucleotide sequence encoding rat C-kinase is preferably one containing the nucleotide sequence shown in FIG. 8 or FIG. 13, for example.

ラットC−キナーゼとしては、第8図のアミノ酸配列に
おいて、第1〜224番目のアミノ酸残基からなるポリ
ペプチド、該第1〜224番目のアミノ酸残基にさらに
第225〜621 m目のアミノ酸残基が付加したポリ
ペプチド、該第1〜621番目のアミノ酸残基にさらに AsnPheAspLysGluPheThr−Arg
GlnProValGluLeuThr−ProThr
AspLysLeuPheI Le−MetAsnLe
uAspGlnAsnGlu−PheAlaGlyPh
eSerTyrThr−AsnProGluPheVa
lIleAsn−Valで示されるアミノ酸残基が付加
したもの。
Rat C-kinase is a polypeptide consisting of amino acid residues 1 to 224 in the amino acid sequence shown in FIG. A polypeptide to which a group is added, AsnPheAspLysGluPheThr-Arg
GlnProValGluLeuThr-ProThr
AspLysLeuPheI Le-MetAsnLe
uAspGlnAsnGlu-PheAlaGlyPh
eSerTyrThr-AsnProGluPheVa
An amino acid residue shown as lIleAsn-Val is added.

該第1〜621番目のアミノ酸残基にさらにCysGl
yArgAsnAlaGluAsn−PheAspAr
gPhePheThrArg−HisProProVa
lLeuThrPro−ProAspGlnGluVa
lIleArg−AsnIlsAspGlnSerGl
uPhe−GluGlyPheSerPheVa 1A
sn−5arGluPhaLeuLysProGlu−
で示されるアミノ酸残基が付加したもの;同一の活性を
有する、これらポリペプチドの一部;もしくは上記アミ
ノ酸配列が部分的に変換され、がっ同一の活性を有する
ポリペプチドが挙げられる。
CysGl is further added to the 1st to 621st amino acid residues.
yArgAsnAlaGluAsn-PheAspAr
gPhePheThrArg-HisProProVa
lLeuThrPro-ProAspGlnGluVa
lIleArg-AsnIlsAspGlnSerGl
uPhe-GluGlyPheSerPheVa 1A
sn-5arGluPhaLeuLysProGlu-
A part of these polypeptides having the same activity; or a polypeptide in which the above amino acid sequence is partially converted, but has the same activity.

本発明方法におけるヒトC−キナーゼ蛋白質のポリペプ
チドをコードする塩基配列を有するDNAを含有する発
現型ベクターは、例えば、(イ)ヒトC−キナーゼをコ
ードするRNAを分踵し、 (ロ)該RNAから単鎖の相補DNA (cDNA)を
1次いで二重鎖DNAを合成し。
In the method of the present invention, an expression vector containing a DNA having a base sequence encoding a polypeptide of human C-kinase protein can be prepared by, for example, (a) dissecting RNA encoding human C-kinase; First, single-stranded complementary DNA (cDNA) is synthesized from RNA, and then double-stranded DNA is synthesized.

(ハ)該相補DNAをプラスミドに組み込み、(ニ)得
られた組み換えプラスミドで宿主を形質転換し、 (ホ)得られた形質転換体を培養後、形質転換体から適
当な方法、例えばラットcDNAをプローブとして用い
たコロニーハイブリダイゼーション法、により目的とす
るDNAを含有するプラスミドを単離し、 (へ)そのプラスミドから目的とするクローン化DNA
を切り出し、 (ト)該クローン化DNAをビークル中のプロモーター
の下流に連結する。ことにより製造することができる。
(c) Incorporate the complementary DNA into a plasmid, (d) transform a host with the obtained recombinant plasmid, (e) culture the obtained transformant, and then transform the transformant by an appropriate method, for example, rat cDNA. A plasmid containing the desired DNA is isolated by the colony hybridization method using as a probe, and (to) the desired cloned DNA is extracted from the plasmid.
(g) The cloned DNA is ligated downstream of the promoter in the vehicle. It can be manufactured by

ヒトC−キナーゼをコードするRNAは、種々のヒトC
−キナーゼ産生細胞、例えばヒト脳由来細胞あるいはヒ
ト線維非細胞から得ることができる。該ヒト線維非細胞
としてはWI38 (ATCC番号CCL−75)ある
いはIMR90(ATCC番号CCL−186)などが
あげられる。上記細胞WI38あるいはIMR90は、
ジ・アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(
TheAmerican Type Cu1ture 
Co11ection)発行のカタログ・オブ・セル・
ラインズ・アンド・ハイブリドーマズ(Catalog
ue of Ce1l Lines & t!ybri
do+mas)5th edition、1985に掲
載されている。
RNA encoding human C-kinase has been derived from various human C-kinases.
- Can be obtained from kinase-producing cells, such as human brain-derived cells or human fibrotic non-cells. Examples of the human fibrous non-cells include WI38 (ATCC number CCL-75) and IMR90 (ATCC number CCL-186). The above cell WI38 or IMR90 is
The American Type Culture Collection (
The American Type Culture
Catalog of Cells published by Co11ection)
Lines and Hybridomas (Catalog
ue of Ce1l Lines & t! ybri
do+mas) 5th edition, 1985.

ヒトC−キナーゼ産生細胞からRNAを調製する方法と
しては、グアニジンチオシアネート法(J、M、 、C
hirgvinら、バイオケミストリー(R、i o 
−chemistry)、18.5294(1979)
)などが挙げられる。
As a method for preparing RNA from human C-kinase producing cells, the guanidine thiocyanate method (J, M, , C
Hirgvin et al., Biochemistry (R,io
-chemistry), 18.5294 (1979)
), etc.

このようにして得られたRNAを鋳型とし、逆転写酵素
を用いて1例えば)(、Q kayamaらの方法〔モ
レキュラー・アンド・セルラー・バイオロジー(Mol
ecular and Ce1lular Biolo
gy) 2161(1982)および同誌3 280(
1983))に従いcDNAを合成し、得られたcDN
Aをプラスミドに組み込む・ cDNAを組み込むプラスミドとしては、たとえば大腸
菌由来のpB R322(ジーン(gene)、2,9
5(1977))、pB R325(ジーン、4121
 (197g)) 、pU C12〔ジーン、昆、25
9(1982))、pU C13(ジーン、月採259
(1982))、枯草菌由来のpU8110(バイオケ
ミカル・バイオフィジカル・リサーチ・コミュニケーヨ
ン(Biochemical and Biophys
’1cal Re5earchCoa+municat
ion)、112,678(1983))などが挙げら
れるが、その他のものであっても、宿主内で複製保持さ
れるものであれば、いずれをも用いることができる。
Using the RNA obtained in this way as a template and using reverse transcriptase (for example), the method of Q Kayama et al. [Molecular and Cellular Biology (Mol.
ecular and Ce1lular Biolo
gy) 2161 (1982) and the same magazine 3 280 (
cDNA was synthesized according to (1983)), and the obtained cDNA
Incorporating A into a plasmid. As a plasmid for incorporating cDNA, for example, pB R322 (gene) derived from Escherichia coli, 2,9
5 (1977)), pB R325 (Gene, 4121
(197g)), pU C12 [Gene, Kon, 25
9 (1982)), pU C13 (Gene, Monthly Collection 259)
(1982)), pU8110 from Bacillus subtilis (Biochemical and Biophysical Research Communication
'1cal Re5earchCoa+municat
ion), 112, 678 (1983)), but any other species can be used as long as it can be replicated and maintained within the host.

プラスミドに組み込む方法としては、たとえば、T、M
aniatisら、モレキュラー・クローニング(Mo
lecular Cloning)コールド・スプリン
グ・ハーバ−・ラボラトリ−(Cold Spring
 1larbor La−boratory) e第2
39頁(1982)に記載の方法などが挙げられる。
As a method for incorporating into a plasmid, for example, T, M
Aniatis et al., Molecular Cloning (Mo
regular Cloning) Cold Spring Harbor Laboratory
1 labor laboratory) e2nd
Examples include the method described on page 39 (1982).

」;記cDNAが組み込まれたプラスミドとしては、ヒ
ト正常2倍体開胸+mRNAより合成したcDNAをp
CDベクター(Okyamaら、モレキュラー・セル・
バイオロジー(Molecular Ce1l Bio
logy)、3.280(1983)参照〕に組み込ん
で作成した大腸菌x1776を宿主としたc D N 
Aライブラリー(National In5titut
e of Child Health and I(u
man Development。
”; The cDNA synthesized from human normal diploid thoracotomy + mRNA was used as the plasmid into which the cDNA was integrated.
CD vector (Okyama et al., Molecular Cell
Biology (Molecular Cell Bio
cDN using Escherichia coli x1776 as host
A Library (National Institute
e of Child Health and I(u
man Development.

Bethesda、U、S、A、の岡山博士より分与を
受けることができる。)を用いて得られたプラスミドで
もよい。
It can be distributed by Dr. Okayama of Bethesda, U.S.A. ) may also be used.

このようにして得られたプラスミドは、適当な宿主たと
えばエシェリキア(1!、5cherLchia)属菌
The plasmid thus obtained can be used in a suitable host, such as a bacterium of the genus Escherichia (1!, 5cherLchia).

バチルス(Bacillus)属菌などに導入する。It is introduced into bacteria of the genus Bacillus.

上記エシェリキア属菌の例としては、エシェリキア・コ
リ(Escherichia coli) K 121
) II I(プロシージング・オブ・ナショナル・ア
カデミ−・オブ・サイエンス(Proc、 Natl、
 Acad、 Sci、 U、S、A、)60゜160
(1968)) 、 M 103(ヌクレイツク・アシ
ッズ・リサーチ、(Nucle、Lc Ac1ds R
e5sarch)、9,309(1981))。
Examples of the Escherichia genus bacteria include Escherichia coli K 121
) II I (Procedure of the National Academy of Sciences)
Acad, Sci, U, S, A,)60°160
(1968)), M 103 (Nucle, Lc Ac1ds Research, (Nucle, Lc Ac1ds R
e5search), 9, 309 (1981)).

JA221(ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオ
ロジー(Journal of Mo1ecular 
Biology))、120゜517(1978))、
 HBIOI(ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイ
オロジー41,459(1969)]、 C600(ジ
ェネティックス(Genetics) 、現し440(
1954))などが挙げられる。
JA221 (Journal of Molecular Biology)
Biology)), 120°517 (1978)),
HBIOI (Journal of Molecular Biology 41, 459 (1969)), C600 (Genetics), Presentation 440 (
1954)).

上記バチルス属菌としては、たとえばバチルス・サチル
ス(Bacillus  subtLlis)M111
4(ジーン。
Examples of the Bacillus genus include Bacillus subtLlis M111.
4 (Jean.

44.255(1983))、207−21(ジャーナ
ル・オブ・バイオケミストリー(Journal of
 niochem、1stry)95.87(1984
))などが挙げられる。
44.255 (1983)), 207-21 (Journal of Biochemistry)
niochem, 1stry) 95.87 (1984
)) etc.

形質転換する方法としては、たとえばT’、Mania
ctsら、モレキュラー・クローニング(Mo 1ec
u 1.arCloning)、コールド・スプリング
・ハーバ−・ラボラトリ−(Cold Spring 
Harbor Laboratory)、第249頁(
1982)に記載のカルシウムクロライド法あるいはカ
ルシウムクロライド/ルビジウムクロライド法などが挙
げられろ。
Examples of transformation methods include T', Mania
cts et al., Molecular Cloning (Mo 1ec
u1. arCloning), Cold Spring Harbor Laboratory (Cold Spring
Harbor Laboratory), page 249 (
For example, the calcium chloride method or the calcium chloride/rubidium chloride method described in 1982) may be used.

このようにして得られた形質転換体中から自体公知の方
法、例えばコロニー・ハイブリダイゼーション法〔ジー
ン、U扉63(1980))およびDNA塩基配列決定
法〔プロシージング・オブ・ナショナル・アカデミ−・
オブ・サイエンス(Proc、 Natl。
The thus obtained transformants were subjected to methods known per se, such as colony hybridization method [Gene, Udoor 63 (1980)] and DNA base sequencing method [Procedure of the National Academy of Sciences].
of Science (Proc. Natl.

Acad、 Sci、 U、S、A、)L!、560(
1977)、ヌクレイツク・アシッズ・リサーチ(Nu
cleic Ac1ds lセcsearch)9゜3
09(1981))を用い、求めるクローンを選出する
Acad, Sci, U, S, A,)L! , 560(
1977), Nucleitsk Acids Research (Nu
cleic Ac1ds lSecsearch)9゜3
09 (1981)) to select the desired clone.

このようにして、クローン化されたヒトC−キナーゼを
コードする塩基配列を含有するDNAを有するベクター
を保持する微生物が得られる。
In this way, a microorganism carrying a vector having DNA containing the cloned base sequence encoding human C-kinase is obtained.

後述の実施例3(1)で得られた堕妨虹力立罰9旦に1
2DH1/PTB637が保持するプラスミドpTB6
37は、ヒトC−キナーゼ(1)をコードする塩基配列
を含有するDNAを有する。
1 on the 9th day of the fallen rainbow power punishment obtained in Example 3 (1) described below.
Plasmid pTB6 carried by 2DH1/PTB637
No. 37 has DNA containing a base sequence encoding human C-kinase (1).

該DNA中の、ヒトC−キナーゼ(1)をコードする塩
基配列は、DNAの一部分であると考えられる。該DN
Aの制限酵素切断位置を第3図に示す。第3図に示すよ
うに該DNAは全長約1.2kbpであり、制限酵素P
stlあるいはB a mHIにより断片に切断される
The base sequence encoding human C-kinase (1) in the DNA is considered to be a part of the DNA. The DN
The restriction enzyme cleavage position of A is shown in FIG. As shown in Figure 3, the total length of the DNA is approximately 1.2 kbp, and the restriction enzyme P
It is cut into fragments by stl or B a mHI.

次に、該微生物からプラスミドを単離する。Next, a plasmid is isolated from the microorganism.

該単離法としては、アルカリ法(H,C,Birmbo
imら、ヌクレイツク・アシッズ・リサーチ、 (Nu
cleicAcids Re5earch)、1.15
13(1979)3などが挙げられる。
The isolation method includes an alkaline method (H, C, Birmbo
im et al., Nucleitsk Acids Research, (Nu
cleic Acids Research), 1.15
13 (1979) 3, etc.

上記クローン化されたヒトC−キナーゼをコードする塩
基配列を含有するDNAを有するプラスミドはそのまま
、または所望により制限酵素で切り出す。
The cloned plasmid containing the DNA containing the base sequence encoding human C-kinase can be used as is, or if desired, excised with restriction enzymes.

クローン化された遺伝子は、発現に適したビークル(ベ
クター)中のプロモーターの下流に連結して発現型ベク
ターを得ることができる。
The cloned gene can be ligated downstream of a promoter in a vehicle (vector) suitable for expression to obtain an expression vector.

ベクターとしては、上記の大腸菌由来のプラスミド(例
、pBR322,pBR325,pUc12、pUc1
3) 、枯草菌由来プラスミド(例。
Vectors include the above E. coli-derived plasmids (e.g., pBR322, pBR325, pUc12, pUc1
3), Bacillus subtilis-derived plasmids (e.g.

pUBllo、pTP5.pc194)、酵母由来プラ
スミド(例、psH19,psH15)=あるいはλフ
ァージなどのバクテリオファージおよびレトロウィルス
、ワクシニアウィルスなどの動物ウィルスなどが挙げら
れる。
pUBllo, pTP5. pc194), yeast-derived plasmids (eg, psH19, psH15), bacteriophages such as λ phage, and animal viruses such as retroviruses and vaccinia virus.

該遺伝子はその5′末端に翻訳開始コドンとしてのAT
Gを有し、また3″末端には翻訳終止コドンとしてのT
AA、TGAまたはTAGを有していてもよい。さらに
該遺伝子を発現させるにはその上流にプロモーターを接
続する。本発明で用いられるプロモーターとしては、遺
伝子の発現に用いる宿主に対応して適切なプロモーター
であればいかなるものでもよい。
The gene has AT at its 5' end as a translation initiation codon.
G, and T at the 3″ end as a translation stop codon.
It may have AA, TGA or TAG. Furthermore, in order to express the gene, a promoter is connected upstream thereof. The promoter used in the present invention may be any promoter as long as it is suitable for the host used for gene expression.

また、形質転換する際の宿主がエシェリキア属菌である
場合は、trpプロモーター、Qacプロモーター、r
ecAプロモーター、λPLプロモーターe QpPプ
ロモーターなどが、宿主がバチルス属菌である場合は、
5POLプロモーター。
In addition, when the host for transformation is a bacterium of the genus Escherichia, trp promoter, Qac promoter, r
ecA promoter, λPL promoter e QpP promoter, etc., when the host is Bacillus,
5POL promoter.

5PO2プロモーター、penPプロモーターなど、宿
主が酵母である場合は、PH05プロモーター、PGK
プロモーター、GAPプロモーター。
5PO2 promoter, penP promoter, etc. If the host is yeast, PH05 promoter, PGK
promoter, GAP promoter.

ADHプロモーターなどが好ましい。とりわけ宿主がエ
シェリキア属菌でプロモーターがtrpプロモーターま
たはλPLプロモーターであることが好ましい。
ADH promoter etc. are preferred. In particular, it is preferable that the host is a bacterium of the genus Escherichia and that the promoter is a trp promoter or a λPL promoter.

宿主が動物細胞である場合には、SV40由来のプロモ
ーター、レトロウィルスのプロモーターなどが挙げられ
、とりわけSV40由来のプロモーターが好ましい。
When the host is an animal cell, examples include SV40-derived promoters and retrovirus promoters, with SV40-derived promoters being particularly preferred.

このようにして構築されたDNA(II)を含有するベ
クターを用いて、形質転換体を製造する。
A transformant is produced using the vector containing DNA (II) constructed in this way.

宿主としては、たとえばエシェリキア属菌、バチルス属
菌、酵母、動物細胞などが挙げられる。
Examples of the host include bacteria of the genus Escherichia, bacteria of the genus Bacillus, yeast, and animal cells.

上記エシェリキア属菌、バチルス属菌の具体例としては
、前記したものと同様のものが挙げられる。
Specific examples of the Escherichia genus bacteria and Bacillus genus bacteria include those mentioned above.

上記酵母としては、たとえばサツ力ロマイセスセレビシ
アエ(Saccaromyces  cerevisi
ae) A H22R−、NΔ87−11A、DKD−
5Dなどが挙げられる。
Examples of the yeast include Saccharomyces cerevisiae.
ae) A H22R-, NΔ87-11A, DKD-
Examples include 5D.

動物軸l―としては、たとえばサル細胞CO5−7、V
ero、チャイニーズハムスター細胞CHO。
As animal axes, for example, monkey cells CO5-7, V
ero, Chinese hamster cell CHO.

マウスL細胞、ヒトPL細胞などが挙げられる。Examples include mouse L cells and human PL cells.

上記エシェリキア属菌を形質転換するには、たとえばプ
ロシージング・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・
サイエンス(Proc、Natl、^cad、sci。
To transform the above Escherichia bacteria, for example,
Science (Proc, Natl, ^cad, sci.

USA)、聾、2110(1972)やジーン、 17
.107(1982)などに記載の方法に従って行なわ
れる。
USA), Deaf, 2110 (1972) and Gene, 17
.. 107 (1982) and others.

バチルス属菌を形質転換するには、たとえばモレキュラ
ー・アンド・ジェネラル・ジェネテイックス(阿oie
cular & GeneraI Genetics)
 、168,111(1979)などに記載の方法に従
って行なわれる。
To transform Bacillus bacteria, for example, Molecular and General Genetics (Aoie
cular & GeneraI Genetics)
, 168, 111 (1979).

酵母を形質転換するには、たとえばプロシージング・オ
ブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンス(Pr
oc、Natl、Acad、Sci、USA)、75.
1929(1978)に記載の方法に従って行なわれる
To transform yeast, for example, the Proceedings of the National Academy of Sciences (Pr.
oc, Natl, Acad, Sci, USA), 75.
1929 (1978).

動物細胞を形質転換するには、たとえばヴイロロジー(
Virology)昇、456(1973)に記載の方
法に従って行なわれる。
To transform animal cells, for example, virology (
It is carried out according to the method described in J. Virology) Noboru, 456 (1973).

このようにして、DNA(II)を含有するベクターで
形質転換された形質転°換体が得られる。
In this way, a transformant transformed with the vector containing DNA (II) is obtained.

その−例としては、たとえば後述の実施例3(1)で得
られたEscherichia coli K 12 
D H1/ pTB637が挙げられ、該微生物は、昭
和61年(1986年)6月13日に財団法人発酵研究
所(IFO)の受託番号IFO14510として寄託さ
れ、また1本微生物は、昭和61年6月20日に通商産
業省工業技術院微生物工業技術研究所(FRI)に受託
番号FERM  P−8815として寄託され、該寄託
はブダペスト条約に基づく寄託に切換えられて、受託番
号FERM BP−1371として同研究所(FRI)
に保管されている。
For example, Escherichia coli K 12 obtained in Example 3 (1) described below
D H1/pTB637 was deposited with the Fermentation Research Institute (IFO) on June 13, 1986 under accession number IFO14510; It was deposited with the Microbial Research Institute (FRI), Agency of Industrial Science and Technology, Ministry of International Trade and Industry on August 20th, under the accession number FERM P-8815, and the deposit was changed to a deposit under the Budapest Treaty, and the same was deposited under the accession number FERM BP-1371. Research Institute (FRI)
is stored in.

宿主がエシェリキア属菌、バチルス属菌である形質転換
体を培養する際、培養に使用される培地としては液体培
地が適当であり、その中には該形質転換体の生育に必要
な炭素源、窒素源、無機物その他が含有せしめられる。
When culturing a transformant whose host is a bacterium of the genus Escherichia or Bacillus, a liquid medium is suitable as the culture medium, which contains a carbon source necessary for the growth of the transformant, Nitrogen sources, inorganic substances, etc. are contained.

炭素源としては、たとえばグルコース、デキストリン、
可溶性澱粉。
Examples of carbon sources include glucose, dextrin,
Soluble starch.

ショ糖など、窒素源としては、たとえばアンモニウム塩
類、硝酸塩類、コーンスチープ・リカー、ペプトン、カ
ゼイン、肉エキス、大豆粕、バレイショ抽出液などの無
機または有機物質、無機物としてはたとえば塩化カルシ
ウム、リン酸二水素ナトリウム、塩化マグネシウムなど
が挙げられる。
Nitrogen sources such as sucrose include inorganic or organic substances such as ammonium salts, nitrates, corn steep liquor, peptone, casein, meat extract, soybean meal, potato extract, and inorganic substances such as calcium chloride and phosphoric acid. Examples include sodium dihydrogen and magnesium chloride.

また、酵母、ビタミン類、生長促進因子゛などを添加し
てもよい。
Further, yeast, vitamins, growth promoting factors, etc. may be added.

培地のp Hは約6〜8が望ましい。The pH of the medium is preferably about 6 to 8.

エシェリキア属菌を培養する際の培地としては、例えば
グルコース、カザミノ酸を含むM9培地(Miller
、ジャーナル・オブ・エクスペリメンツ・イン・モレキ
ュラー・ジェネティックス(Journal ofEx
periments in Mo1ecular Ge
natics)、431−433゜Co1d Spri
ng )larbor Laboratory、 Ne
w Work 1972)が好ましい、ここに必要によ
りプロモーターを効率よく働かせるために、たとえば3
β−インドリルアクリル酸のような薬剤を加えることが
できる。
As a medium for culturing Escherichia bacteria, for example, M9 medium (Miller) containing glucose and casamino acids is used.
, Journal of Experiments in Molecular Genetics
Periments in Molecular Ge
natics), 431-433゜Cold Spri
ng ) Labor Laboratory, Ne
w Work 1972) is preferable, and if necessary, in order to make the promoter work efficiently, for example, 3
Agents such as β-indolyl acrylic acid can be added.

宿主がエシェリキア属菌の場合、培養は通常約15〜4
3℃で約3〜24時間行い、必要により、通気や撹拌を
加えることもできる。
When the host is Escherichia, the culture is usually about 15-4
The reaction is carried out at 3° C. for about 3 to 24 hours, and aeration and stirring can be added if necessary.

宿主がバチルス属菌の場合、培養は通常約30〜40℃
で約6〜24時間行ない、必要により通気や撹拌を加え
ることもできる。
When the host is Bacillus, culture is usually carried out at approximately 30-40°C.
This is carried out for about 6 to 24 hours, and aeration and stirring can be added if necessary.

宿主が酵母である形質転換体を培養する際、培地として
は、たとえばパークホールダ−(Burkholder
)最小培地(Rostian、に、L、ら、[プロシー
ジング・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエ
ンス(Proc、Natl、Acad、Sci、USA
)77.4505(1980) )が挙げられる。培地
のpHは約5〜8に調整するのが好ましい。培養は通常
約20℃〜35℃で約24〜72時間行い、必要に応じ
て通気や撹拌を加える。
When culturing a transformant whose host is yeast, examples of medium include, for example, Burkholder.
) minimal medium (Rostian, L., et al. [Procedure of National Academy of Sciences (Proc. Natl., Acad, Sci., USA)
) 77.4505 (1980)). Preferably, the pH of the medium is adjusted to about 5-8. Cultivation is usually carried out at about 20° C. to 35° C. for about 24 to 72 hours, with aeration and stirring added as necessary.

宿主が動物細胞である形質転換体を培養する際、培地と
しては、たとえば約5〜20%の胎児生血際を含むME
M培地〔サイエンス(Science)122゜501
(1952))、 D M E M培地〔ヴイロロジ−
(Viro−1ogy)、8,396(1959)) 
、 RP M I 1640培地〔ジャーナル・オブ・
ザ・アメリカン・メディカル・アソシエーション(Th
e Jounal of the AmericanM
edical As5ociation) 199,5
19(1967))、 199培地〔プロシージング・
オブ・ザ・ソサイエティ・フォー・ザ・バイオロジカル
・メディスン(Pro−ceeding of the
 5ociety for the Biologic
alMediains)73.1 (1950)3など
が挙げられる。pHは約6〜8であるのが好ましい。培
養は通常約30℃〜40℃で約15〜60時間行い、必
要に応じて通気や撹拌を加える。
When culturing a transformant whose host is an animal cell, the medium may be, for example, ME containing about 5 to 20% live fetal blood.
M medium [Science 122゜501
(1952)), DMEM medium [virology
(Viro-1ogy), 8,396 (1959))
, RP MI 1640 medium [Journal of
The American Medical Association (Th
e Journal of the AmericanM
(edical association) 199,5
19 (1967)), 199 Medium [Processing
Pro-ceeding of the Society for the Biological Medicine
5ociety for the Biologic
alMediains) 73.1 (1950) 3. Preferably the pH is about 6-8. Cultivation is usually carried out at about 30°C to 40°C for about 15 to 60 hours, with aeration and stirring added as necessary.

上記培養物からヒトC−キナーゼ蛋白を分離精製するに
は1例えば下記の方法により行なうことができる。
The separation and purification of human C-kinase protein from the above culture can be carried out, for example, by the following method.

ヒトC−キナーゼ蛋白を培養菌体あるいは細胞から抽出
するに際しては、培養後、公知の方法で菌体あるいは細
胞を集め、これを塩酸グアニジンなどの蛋白変性剤を含
む緩衝液に懸濁し、超音波。
To extract human C-kinase protein from cultured bacterial cells or cells, after culturing, the bacterial cells or cells are collected by a known method, suspended in a buffer containing a protein denaturing agent such as guanidine hydrochloride, and subjected to ultrasonication. .

リゾチームおよび(または凍結融解)によって菌体ある
いは細胞を破壊したのち、遠心分離によりヒトC−キナ
ーゼ蛋白を得る方法などが適宜用い9シ)る。
After disrupting bacterial bodies or cells with lysozyme (or freezing and thawing), human C-kinase protein can be obtained by centrifugation, as appropriate.

上記上澄液からヒトC−キナーゼ蛋白を精製するには、
自体公知の分離・′!a製法を適切に組み合わせて行な
うことができる。これらの公知の分離。
To purify human C-kinase protein from the above supernatant,
Separation that is known per se! It can be carried out by appropriately combining the manufacturing methods a. These known separations.

精製法としては、塩析や溶媒沈澱法などの溶解度を利用
する方法、透析法、限外ろ過法、ゲルろ過法、および5
DS−ポリアクリルアミドゲル電気応動法などの主とし
て分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラ
フィーなどの荷電の差を利用する方法、アフィニティー
クロマトグラフィーなどの特異的親和性を利用する方法
、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの疎水性の差を
利用する方法5等電点電気泳動法などの等重点の差を利
用する方法などが挙げられる。
Purification methods include methods that utilize solubility such as salting out and solvent precipitation, dialysis, ultrafiltration, gel filtration, and
Methods that mainly utilize differences in molecular weight such as DS-polyacrylamide gel electrodynamic method, methods that utilize differences in charge such as ion exchange chromatography, methods that utilize specific affinity such as affinity chromatography, and reversed phase high speed Examples include methods that utilize differences in hydrophobicity such as liquid chromatography, and methods that utilize differences in isocenters such as isoelectric focusing.

本発明の遺伝子組み換え技術によって得られたヒトC−
キナーゼ蛋白の一例として、例えば第1図におけるアミ
ノ酸配列で示されるポリペプチドを含有する蛋白質を挙
げることができる。該ポリペプチドはそのN末端にMe
tを有していてもよい。
Human C- obtained by the genetic recombination technology of the present invention
An example of a kinase protein is a protein containing the polypeptide shown by the amino acid sequence shown in FIG. The polypeptide has Me at its N-terminus.
It may have t.

かくして生成するヒトC−キナーゼの活性は公知の蛋白
質リン酸化などによりall定することができる。
The activity of the human C-kinase thus produced can be determined by known protein phosphorylation.

本発明のDNAで遺伝子感染または形質転換した細胞で
は1本来わずかのヒトC−キナーゼしが合成されない、
あるいは全く合成されない各種細胞においても大量のヒ
トC−キナーゼを産生せしめることができ、ヒトC−キ
ナーゼ生産を有利に導くことができる。
In cells genetically infected or transformed with the DNA of the present invention, only a small amount of human C-kinase is synthesized.
Alternatively, it is possible to produce a large amount of human C-kinase even in various cells in which it is not synthesized at all, and to advantageously guide the production of human C-kinase.

本発明のヒトC−キナーゼ蛋白をコードする遺伝子を含
有する発現型プラスミドは、これを各種細胞に導入する
ことにより該細胞にヒトC−キナーゼを産生させること
ができるため、ヒトC−キナーゼを大量に取得すること
ができる。ここに製造されるヒトC−キナーゼは、試薬
としてまた抗体を調製しその抗体と共に診断・検査薬と
して用いることができる。たとえば本発明のC−キナー
ゼは、細胞膜受容伝達機構などの研究用試薬、細胞膜受
容伝達機構の異常が原因となる疾病(例:腫瘍)に対す
る診断・検査薬、あるいはこれらの疾病に対する予防・
治療薬のスクリーニング用試薬として用いることができ
る。たとえば、1回の診断・検査に約0.001〜10
μgのC−キナーゼが用いられる。
The expression plasmid containing the gene encoding the human C-kinase protein of the present invention can be introduced into various cells to cause the cells to produce human C-kinase. can be obtained. The human C-kinase produced herein can be used as a reagent or as a diagnostic/testing agent in the preparation of antibodies. For example, the C-kinase of the present invention can be used as a research reagent for the cell membrane receptor/transmission mechanism, a diagnostic/test agent for diseases (e.g. tumors) caused by abnormalities in the cell membrane receptor/transmission mechanism, or a preventive/test agent for these diseases.
It can be used as a screening reagent for therapeutic drugs. For example, about 0.001 to 10 per diagnosis/examination
μg of C-kinase is used.

以上、ヒトC−キナーゼのクローニング、形質転換体の
製造、形質転換体を用いたヒトC−キナーゼ蛋白の製造
及びその有用性等について詳細に述べたが、これらはラ
ットC−キナーゼにおいても同様に適用される。
Above, we have described in detail the cloning of human C-kinase, the production of transformants, the production of human C-kinase protein using transformants, and its usefulness, but these also apply to rat C-kinase. Applicable.

本発明明細書および図面において、塩基やアミノ酸など
を略号で表示する場合、IUPAC−IU B  Co
mm1sion  on  I3iochemical
  Nomenclature′による略号あるいは当
該分野における慣用略号に基づくものであり、その例を
下記する。またアミノ酸に関し光学異性体があり得る場
合は、特に明示しなければL一体を示すものとする。
In the specification and drawings of the present invention, when bases, amino acids, etc. are indicated by abbreviations, IUPAC-IUB Co
mm1sion on I3iochemical
It is based on the abbreviations based on Nomenclature' or common abbreviations in the field, examples of which are given below. In addition, when an amino acid can have optical isomers, unless otherwise specified, the L-isomer is assumed to be indicated.

DNA  :デオキシリボ核酸 cDNA:相補的デオキシリボ核酸 A  :アデニン T  :チミン G  ニゲアニン C:シトシン RNA  :リボ核酸 dATP:デオキシアデノシン三リン酸dTTP:デオ
キシチミジン三リン酸 dGTP:デオキシグアノシン三リン酸dCTP:デオ
キシシチジン三リン酸 ATP  :アデノシン三リン酸 EDTA:エチレンジアミン四酢酸 SDS  ニドデシル硫酸ナトリウム G1y ニゲリシン Ala  :アラニン Val  :バリン Leu  :ロイシン IIs  :インロイシン Ser  :セリン Thr  :スレオニン Cys  ニジスティン Met:メチオニン Glu  :グルタミン酸 Asp  :アスパラギン酸 Lys  :リジン Arg  :アルギニン His  :ヒスチジン Phe  :フェニールアラニン Tyr  :チロシン Trpニトリブトファン Pro  ニブロリン Asn:アスパラギン Gln  :グルタミン および 日の 果 以下の実施例により本発明をより具体的に説明するが1
本発明はこれらに限定されるものではない。
DNA: Deoxyribonucleic acid cDNA: Complementary deoxyribonucleic acid A: Adenine T: Thymine G Nigeanine C: Cytosine RNA: Ribonucleic acid dATP: Deoxyadenosine triphosphate dTTP: Deoxythymidine triphosphate dGTP: Deoxyguanosine triphosphate dCTP: Deoxycytidine ATP triphosphate: Adenosine triphosphate EDTA: Ethylenediaminetetraacetic acid SDS Sodium nidodecyl sulfate G1y Nigericin Ala: Alanine Val: Valine Leu: Leucine IIs: Inleucine Ser: Serine Thr: Threonine Cys Nidistine Met: Methionine Glu: Glutamate Asp: Asparagine Acid Lys: Lysine Arg: Arginine His: Histidine Phe: Phenylalanine Tyr: Tyrosine Trp Nitributophane Pro Nibroline Asn: Asparagine Gln: Glutamine and Sun The present invention will be explained more specifically by the following examples.
The present invention is not limited to these.

なお、実施例2で得られた形質転換体E、c。In addition, transformants E and c obtained in Example 2.

1i  K12DH1/pTB638は昭和61年(1
986年)6月20日にIFOに受託番号IFO145
14として寄託され、本形質転換体は昭和61年6月2
8日にFRIに受託番号FERM  P−8829とし
て寄託され、該寄託はブダペスト条約に基づく寄託に切
換えられて、受託番号FERM  BP−1372とし
てFRIに保管されている。
1i K12DH1/pTB638 was introduced in 1986 (1
Accession number IFO145 to IFO on June 20, 1986)
14, and this transformant was deposited on June 2, 1986.
On the 8th, it was deposited with FRI under the accession number FERM P-8829, and the deposit was changed to a deposit under the Budapest Treaty and is kept at FRI under the accession number FERM BP-1372.

また、実施例4で得られた形質転換体E、c。In addition, transformants E and c obtained in Example 4.

1i  K12DH1/pTB652は昭和61年87
129日にIFOに受託番号IFO14539として寄
託され、また本形質転換体は昭和61年9月5日にFR
Iに受託番号FERM  P−8958として寄託され
、該寄託はブダペスト条約に基づく寄託に切換えられて
、受託番号FERMBP−1373としてFRIに保管
されている。
1i K12DH1/pTB652 was released in 1987.
The transformant was deposited at IFO on September 5, 1988 with accession number IFO14539, and this transformant was deposited with the FR on September 5, 1986.
The deposit was deposited with FRI under accession number FERM P-8958, which has been converted to a deposit under the Budapest Treaty, and is deposited with FRI under accession number FERMBP-1373.

実施例4で得られた形質転換体E、coliK12DH
1/pTB653は昭和61年8月29日にIFOに受
託番号IFO14540として寄託され、本形質転換体
は昭和61年9月5日にFRIに受託番号FERM  
P−8959として寄託され、該寄託はブダペスト条約
に基づく寄託に切換えられて、受託番号FERM  B
P−1374としてFRIに保管されている。
Transformant E obtained in Example 4, coli K12DH
1/pTB653 was deposited with IFO on August 29, 1985 under accession number IFO14540, and this transformant was deposited with FRI on September 5, 1986 under accession number FERM.
P-8959, and the deposit has been converted to a deposit under the Budapest Treaty and has accession number FERM B.
It is stored at FRI as P-1374.

実施例5で得られた形質転換体E、coliDHI/p
TB755は昭和62年5月21日にIFOに受託番号
IF0 14612として寄託され、本形質転換体は昭
和62年5月29日にFRIに受託番号FERM  B
P−1382としてブダペスト条約に基づいて寄託され
た。
Transformant E obtained in Example 5, coliDHI/p
TB755 was deposited with IFO on May 21, 1985 under accession number IF0 14612, and this transformant was deposited with FRI on May 29, 1988 under accession number FERM B.
Deposited under the Budapest Treaty as P-1382.

実施例1 (1)ラット−Cキナーゼのアミノ酸配列の決定ラット
−Cキナーゼは吉川らの方法〔ジャーナル・オブ・バイ
オロジカル・ケミストリイ(J。
Example 1 (1) Determination of the amino acid sequence of rat-C kinase Rat-C kinase was determined by the method of Yoshikawa et al. [Journal of Biological Chemistry (J.

Biol、 Chem、)257.13341 (19
82))に従ってラット脳より抽出精製した。240匹
のラット脳より。
Biol, Chem, ) 257.13341 (19
Extracted and purified from rat brain according to 82)). From 240 rat brains.

2.0■の精製C−キナーゼ標品を得た。この標品1.
9■を6M尿素を含む50 m M Tris−)1c
l(pH9,0)溶液1.9m(lにとかし、リジルエ
ンドペプチダーゼを25μQ / m Qに添加して3
7’C21時間消化した。生成したペプチドを逆相HP
 L C(Micro pak Protein C1
8−10,0,4X30Q1カラム)にかけアセトニト
リルのグラジェント溶出により分画、分取した。分画さ
れた約50のペプチドのうちの4種類(ペプチドNo、
24.37゜49.51)についてそのアミノ酸配列を
気相プロテインシークエンサー(モデル470A、Ap
plied Biosystems、 Inc、)を用
いた自動エドマン分解法により決定した。エドマン分解
により生じたアミノ酸のチオヒダントイン化物はMic
ro pak SPC18−3カラム(Varian 
As5ociates、 Inc)を用いたHPLCに
より分析した。得られた4種類のペプチドのアミノ酸配
列を第1図に示した。
A purified C-kinase preparation of 2.0 μm was obtained. This specimen 1.
50 mM Tris-) 1c containing 9■6M urea
(pH 9,0) solution was dissolved in 1.9 m (l) and lysyl endopeptidase was added to 25 μQ/m Q.
7'C was digested for 21 hours. The generated peptide is subjected to reverse phase HP
L C (Micro pak Protein C1
8-10,0,4X30Q1 column) and fractionated by acetonitrile gradient elution. Four of the approximately 50 fractionated peptides (peptide No.
24.37°49.51), its amino acid sequence was analyzed using a gas phase protein sequencer (model 470A, Ap
plied Biosystems, Inc.) using the automated Edman decomposition method. The thiohydantoinated amino acid produced by Edman degradation is Mic.
ro pak SPC18-3 column (Varian
Analyzed by HPLC using As5ociates, Inc). The amino acid sequences of the four types of peptides obtained are shown in FIG.

実施例2 (1)ラットJQ m RN A由来のcDNAライブ
ラリーの作製 ラット脳よりRNAをグアニジンイソチオシアネート法
(Chirgwin+ら、Biochen+1stry
 18.5294゜1978)を用いて抽出した。この
RNAよりポリ(A)RNAをオリゴdTセルロースカ
ラムクロマトグラフィーにより精製した(AvivとL
eder 、 rプロシージング・オブ・ナショナル・
アカデミ−・オブ・サイエンス(Proc、Natl、
Aead、Sci、USA) 69.1408 (19
72)〕。
Example 2 (1) Preparation of cDNA library derived from rat JQ m RNA RNA was extracted from rat brain using the guanidine isothiocyanate method (Chirgwin et al., Biochen
18.5294°1978). Poly(A) RNA was purified from this RNA by oligo dT cellulose column chromatography (Aviv and L
eder, rProceeding of National
Academy of Science (Proc, Natl.
Aead, Sci, USA) 69.1408 (19
72)].

このポリ(A)RNAを紡型としてcDNAライブラリ
ーをOkayamaとBe rgの方法(Okayam
a & Berg、「モレキュラーアンドセルラー・バ
イオロジー(Mo1.Ce11.Biol、)J 2,
161,1982゜同誌、3,280.1983] ニ
従ってpCDv1ベクター、pL1リンカ−を用いて作
製した。環状化したCDNAを含むベクターplasm
idは大腸菌DH−1に感染させ、5μgのポリ(A)
RNAより出発して約5 X 10’個のクローンより
なる大腸菌DH−1を宿主としたcDNAライブラリー
を得ることができた。
Using this poly(A) RNA as a spindle, a cDNA library was prepared using the method of Okayama and Berg (Okayama et al.
a & Berg, “Molecular and Cellular Biology (Mo1.Ce11.Biol,) J 2,
161, 1982, 3, 280.1983] Therefore, it was constructed using pCDv1 vector and pL1 linker. Vector plasm containing circularized CDNA
id was infected with E. coli DH-1 and infected with 5 μg of poly(A).
Starting from RNA, we were able to obtain a cDNA library using E. coli DH-1 as a host, consisting of approximately 5 x 10' clones.

(2)ラット−〇キナーゼcDNAを含むプラスミドの
単離とその塩基配列の決定 上記大腸菌DHIを用いたラットcDNAライブラリー
をニトロセルロースフィルター(ミリボア社、HATF
フィルター)上に約3 X 10’クローン/フイルタ
ーとなるように10枚まき、このフィルターをマスター
フィルターとしている各2枚ずつを1組としたレプリカ
フィルター計20枚を作製した。このレプリカフィルタ
ー上の大腸菌を0.5NN a OH溶液でとかし露出
変性したプラスミドDNAをフィルター上に乾燥固定し
た(Grunstein、M、 & Hogness、
D、S、 rプロシージング・オブ・ナショナル・アカ
デミ−・オブ・サイエンス(Proc、Natl、Ac
ad、Sci、USA)72,3961(1975))
 。
(2) Isolation of plasmid containing rat-○ kinase cDNA and determination of its base sequence
A total of 20 replica filters were prepared, with each set of 2 replica filters using this filter as a master filter. The E. coli on this replica filter was dissolved in a 0.5N NaOH solution, and the denatured plasmid DNA was dried and fixed on the filter (Grunstein, M. & Hogness,
D, S, rProceeding of the National Academy of Sciences (Proc., Natl., Ac.
ad, Sci, USA) 72, 3961 (1975))
.

一方、実施例1の(1)で決定したペプチドのアミノ酸
配列より、その配列に対応する塩基配列を有するオリゴ
ヌクレオチドを化学合成した。即ち、ペプチドNo、2
4の7−12のアミノ酸配列(Tyr−Iffie−A
sp−Trp−GQu−Lys)ペプチドNo、51の
3−8のアミノ酸配列(A s p−T r p−T 
r p−A Q a−P h e−G Q y)■ さらにペプチドNo、51の24−29のアミノ酸配列
(G Q u−A s p−G Q u−A s p−
G Q u−(プローブNo、3)を合成してラットC
キナーゼcDNAのスクリーニングプローブとした。
On the other hand, from the amino acid sequence of the peptide determined in Example 1 (1), an oligonucleotide having a base sequence corresponding to the sequence was chemically synthesized. That is, peptide No. 2
Amino acid sequence 7-12 of Tyr-Iffie-A
sp-Trp-GQu-Lys) Peptide No. 51 3-8 amino acid sequence (A sp-Trp-T
r p-A Q a-P h e-G Q y) ■ Furthermore, the amino acid sequence of 24-29 of peptide No. 51 (G Q u-A sp-G Q u-A sp-
G Q u- (probe No. 3) was synthesized and rat C
It was used as a screening probe for kinase cDNA.

これらオリゴヌクレオチドプローブの51末端をT4ポ
リヌクレオチドキナーゼ、〔γ−32P〕ATPを用い
て”Pで標識した。
The 51 ends of these oligonucleotide probes were labeled with "P" using T4 polynucleotide kinase, [gamma-32P]ATP.

標識したプローブNo、2とプローブNo、3をDNA
を固定したレプリカフィルターに別々に会合させた。会
合反応は10μCiの標識プローブを含む5XSSC(
0,15M NaCQ、 0.015M Sodium
 citrate)、 5 XDanhardt’s、
 0.1%SDS。
Labeled probe No. 2 and probe No. 3 are DNA
were separately associated with immobilized replica filters. The association reaction was carried out in 5X SSC containing 10 μCi of labeled probe (
0.15M NaCQ, 0.015M Sodium
citrate), 5 XDanhardt's,
0.1% SDS.

1100p/mQ変性サケ***DNA溶液10mQ中で
42℃16時間行い、反応後、フィルターを6XSSC
,O,1%SDS溶液で室沢で30分ずつ3回、さらに
プローブN002を用いた場合では47℃、プローブN
o、3では43℃で60分ずつ2回洗浄した(T、 M
aniatisら、「モレキュラークローニング(Mo
lecular Cloning) Co1d Spr
ing )larbor Laboratory、 p
309.1982)洗浄したフィルターよりラジオオー
トグラムをとり、二種類のプローブの両方に対して反応
する菌株を1組2枚のレプリカフィルターのラジオオー
トグラムを重ね合わせることにより探した。この方法に
より3 X I O’coloniesより、二種類の
プローブの両方に対して反応する1株E 、coli 
K 12 D H1/pTB638(IFO14514
,FERM BP−1372)を得た。
The reaction was carried out in 10 mQ of 1100p/mQ denatured salmon sperm DNA solution at 42°C for 16 hours, and after the reaction, the filter was placed in 6XSSC.
, O, 1% SDS solution three times for 30 minutes each at Murosawa, and when probe N002 was used, at 47°C and probe N
Washed twice at 43°C for 60 minutes each (T, M
Aniatis et al., “Molecular Cloning (Mo
(regular Cloning) Co1d Spr
ing) Labor Laboratory, p
309.1982) Radioautograms were taken from the washed filters, and strains that reacted to both of the two types of probes were searched for by overlapping the radioautograms of two replica filters. By this method, one strain of E. coli that reacted to both of the two types of probes was obtained from 3 X I O'colonies.
K 12 D H1/pTB638 (IFO14514
, FERM BP-1372) was obtained.

この菌株よりプラスミドDNA (P TB 638)
をアルカリ法(Birnboim、 H,C,& Do
ly、JJヌクレイックアシッズリサーチ(Nucle
ic Ac1dsRes−)=Jl、1513−(19
79))によって抽出精製した。
Plasmid DNA from this strain (P TB 638)
using the alkaline method (Birnboim, H, C, & Do
ly, JJ Nucleic Acids Research (Nucle)
ic Ac1dsRes-)=Jl, 1513-(19
79)).

DNAを制限酷素BamHI(宝酒造製)で切断し、ア
ガロースゲル電気泳動で分画した後、DNA断片をアガ
ロースゲル中よりニトロセルロースフィルター(ニスア
ンドニス社、BA85)上に移した〔サザンブロツテイ
ング法、T、Maniatisら、[モレキュラー ク
ローニング(MolecularCloning) C
o1d Spring Harbor Laborat
ory、 pp382、1982]。このフィルターを
前記三種のオリゴヌクレオチドプローブ(プローブNo
、1.2.3)と会合させると、プラスミドDNA断片
は三種のプローブのいずれとも反応した。
The DNA was cut with the restriction compound BamHI (manufactured by Takara Shuzo), fractionated by agarose gel electrophoresis, and the DNA fragments were transferred from the agarose gel onto a nitrocellulose filter (Nis & Nis Co., Ltd., BA85) [Southern blotting method] , T., Maniatis et al. [Molecular Cloning C
o1d Spring Harbor Laborat
ory, pp382, 1982]. This filter was attached to the three oligonucleotide probes (probe No.
, 1.2.3), the plasmid DNA fragments reacted with all three probes.

このプラスミドDNAのcDNA部分の塩基配列をジデ
オキシヌクレオチド合成鎖停止法(J。
The base sequence of the cDNA portion of this plasmid DNA was extracted using the dideoxynucleotide synthetic chain termination method (J.

Messingら「ヌクレイツク アシッズ リサーチ
(Nucleic Ac1ds Res、)J9.30
9.(1981))によって決定した。その塩基配列お
よび塩基配列より予測されるアミノ酸配列を第2図に示
した。
Messing et al. “Nucleic Acids Res,” J9.30
9. (1981)). The nucleotide sequence and the amino acid sequence predicted from the nucleotide sequence are shown in FIG.

この配列で、実施例1の(1)で決定したペプチドNo
、24のアミノ酸配列はNo、445−480の塩基配
列にまたペプチドNo、51のアミノ酸配列はNo、2
2.0−312の塩基配列に正しく対応していることが
わかる。従って、このプラスミドpTB638がラット
CキナーゼCDNAであることが確認された。また、こ
のc D N Aはポリ(A)構造を含んでいることか
ら、C−キナーゼのC末端側コード部分と、mRNAの
3′末端側非翻訳部分の構造を保持していることがわか
った。なお、ラットのC−キナーゼとしては第2図に示
したアミノ酸配列をその一部として含む。
With this sequence, the peptide No. determined in Example 1 (1)
, the amino acid sequence of 24 is No, the base sequence of 445-480 is also peptide No, the amino acid sequence of 51 is No, 2
It can be seen that it correctly corresponds to the base sequence of 2.0-312. Therefore, this plasmid pTB638 was confirmed to be rat C kinase CDNA. Furthermore, since this cDNA contains a poly(A) structure, it has been found that it retains the structure of the C-terminal coding part of C-kinase and the 3'-terminal untranslated part of mRNA. Ta. Incidentally, the rat C-kinase includes the amino acid sequence shown in FIG. 2 as a part thereof.

実施例3 (1)ヒトC−キナーゼcDNAを含有するプラスミド
の単離 ヒト***由来初代培養細胞mRNAより合成したcDN
AをpCDベクター(Okayamaら、「モレキュラ
ーアンドセルラーバイオロジー(Mol。
Example 3 (1) Isolation of plasmid containing human C-kinase cDNA cDNA synthesized from human foreskin-derived primary culture cell mRNA
A into a pCD vector (Okayama et al., "Molecular and Cellular Biology (Mol.

Ca11.Biol、)J 3,280.(1983)
参照〕に組み込んで作成した大腸菌x1776を宿主と
したcDNAライブラリーをNational In5
titute of Childllealth an
d Human Developa+ent、 Bet
hesda、U’、S、A。
Ca11. Biol, ) J 3,280. (1983)
A cDNA library created by integrating E. coli
Titute of Childlleath an
d Human Developer+ent, Bet
hesda, U', S, A.

の岡山博士より分与を受けた。このcDNAライブラリ
ーよりアルカリ法(Birnboim、 11.c、&
 DoIy。
Received a grant from Dr. Okayama. From this cDNA library, the alkaline method (Birnboim, 11.c, &
DoIy.

J、「ヌクレイツク アシッズリサーチ(Nuclai
cAcids Ra5−)−J1*1513−(197
9))でプラスミドDNAを抽出し、このDNAを大腸
菌DHIに感染させ、約2 X 10’個のclone
よりなる大腸菌DHIを宿主としたcDNAライブラリ
ーを作成した。
J, “Nuclai
cAcids Ra5-)-J1*1513-(197
9)) Extract plasmid DNA, infect E. coli DHI with this DNA, and create approximately 2 x 10' clones.
A cDNA library was constructed using E. coli DHI as a host.

上記大腸菌DHIを用いたcDNAライブラリーをニト
ロセルロースフィルター(ミリボア社、HATFフィル
ター)上に約5 X 10’クローン/フイルターとな
るように12枚まき、このフィルターをマスターフィル
ターとしてレプリカフィルターを作製した。このレプリ
カフィルター上の大腸菌を0.5NNaOH溶液でとか
し露出変性したプラスミドDNAをフィルター上に乾燥
固定した(Grunstein、M、 & Hogne
ss、0.S、 rプロシージング・オブ・ナショナル
・アカデミ−・オブ・サイエンス(Proc、Natl
、Acad、Sci、USA)72.3961(197
5) )。
The above cDNA library using E. coli DHI was spread on 12 nitrocellulose filters (Millivore, HATF filter) at approximately 5 x 10' clones/filter, and this filter was used as a master filter to prepare a replica filter. E. coli on this replica filter was dissolved in a 0.5N NaOH solution, and the denatured plasmid DNA was dried and fixed on the filter (Grunstein, M. & Hogne et al.
ss, 0. S, rProceeding of the National Academy of Sciences (Proc. Natl.
, Acad, Sci, USA) 72.3961 (197
5) ).

一方、実施例2の(2)で単離したプラスミドpTB6
38を制限酵素PstIで切断して得られる約0.7k
bのDNA断片を〔α−32P〕αATP、DNAポリ
メラーゼIを用いて)2peA識した〔ニックトランス
レーション法、P、1.Rigbyらrジャーナル・オ
ブ・モレキュラー−バイオロジー(J。
On the other hand, plasmid pTB6 isolated in Example 2 (2)
Approximately 0.7k obtained by cutting 38 with the restriction enzyme PstI
The DNA fragment of b was identified as 2peA using [α-32P]αATP and DNA polymerase I [nick translation method, P, 1. Rigby et al. Journal of Molecular Biology (J.

Mo1.Riol、J113,237(197?))。Mo1. Riol, J113, 237 (197?)).

この標FaDNA断片をプローブとしてDNAを固定し
たレプリカフィルターと会合させた。会合反応は5μC
iのプローブを含む20%ホルムアミド、5 X S 
S P E 、  5 XDenhardt’s、 0
.1%SDS、100μg/mQ変性サケ***DNA溶
液10ma中で42℃16時間行い1反応後、フィルタ
ーを2XSSC,0,1%SO3溶液で室温で30分3
回、さらに50℃で30分ずつ2回洗浄した(T、 M
aniatisら、「モレキュラークローニング(Mo
lecular Cloning) Co1d Spr
ing HarborLaboratory、 pp3
09.1982) 、洗浄したフィルターよりラジオオ
ートグラムをとり、プローブと反応する菌株E、col
i  K12DH1/p’l”B637(IFO145
10,FERM  BP−1371)を得た。
This target FaDNA fragment was used as a probe to associate with a replica filter on which DNA was immobilized. Association reaction is 5μC
20% formamide, 5X S containing i probe
S P E , 5 XDenhardt's, 0
.. After 1 reaction in 10ma of 1% SDS, 100μg/mQ denatured salmon sperm DNA solution at 42℃ for 16 hours, filter was incubated in 2XSSC, 0.1% SO3 solution for 30 minutes at room temperature.
Washed twice at 50°C for 30 minutes each (T, M
Aniatis et al., “Molecular Cloning (Mo
(regular Cloning) Co1d Spr
ing Harbor Laboratory, pp3
09.1982), a radioautogram was taken from the washed filter, and bacterial strain E, col that reacted with the probe was collected.
i K12DH1/p'l"B637 (IFO145
10, FERM BP-1371) was obtained.

(2)cDNAの塩基配列の決定 上記(1)で得た菌株E、coli  K12DH1/
pTB637(IFO14510,FERMBP−13
71)よりプラスミドDNA (pTB 637)をア
ルカリ法〔口irnboim、 H,C,& Doly
+J−’ヌクレイツク アシッズリサーチ(Nucle
icAcids Res、)、Jl、1513.(19
79))によって抽出精製した。このプラスミドに含ま
れるcDNA部分は全長約1.2Kbpであり、その簡
単な制限酵素地図を第3図に示した。
(2) Determination of cDNA base sequence Bacterial strain E obtained in (1) above, coli K12DH1/
pTB637 (IFO14510, FERMBP-13
71), plasmid DNA (pTB 637) was obtained by the alkaline method [Irnboim, H, C, & Doly.
+J-'Nucleitsuku Acid Research (Nucle)
icAcids Res, ), Jl, 1513. (19
79)). The cDNA portion contained in this plasmid has a total length of approximately 1.2 Kbp, and a simple restriction enzyme map thereof is shown in FIG.

このc D N A部分の塩基配列の一部をジデオキシ
ヌクレオチド合成鎖停止法(Messing J、ら「
ヌクレイックアシッズリサーチ(Nucleic Ac
1dsRes、)=J 9.309. (1981))
によって決定した。決定された塩基配列およびその配列
より推測されるアミノ酸配列を第4図に示した。
A part of the base sequence of this cDNA portion was subjected to the dideoxynucleotide synthetic chain termination method (Messing J. et al.
Nucleic Acids Research
1dsRes, ) = J 9.309. (1981))
It was decided by. The determined base sequence and the amino acid sequence deduced from the sequence are shown in FIG.

推測されたアミノ酸配列は、実施例2の(2)で示した
ラットCキナーゼcDNAより推測されるアミノ酸配列
に高い相同性を示しており、プラスミドpTB637に
含まれるcDNAがヒトC−キナーゼoDNAであるこ
とを示している(第5図及び第6図参照)、なお、第5
図は、第2図を基に第4図の第26番目のアミノ酸(A
Qa)から重ね合わせ、アミノ酸の相同性をみたもので
あり、囲みが同一アミノ酸を示す、また第6図は、第4
図を基に、第4図の第26番目のアミノ酸(AQa)の
先頭のコドンGに第2図の先頭のコドンを重ね合わせ、
塩基配列の相同性をみたものであり、囲みが同一塩基を
示す。
The deduced amino acid sequence shows high homology to the amino acid sequence deduced from the rat C-kinase cDNA shown in Example 2 (2), and the cDNA contained in plasmid pTB637 is human C-kinase oDNA. (See Figures 5 and 6).
The figure is based on Figure 2 and shows the 26th amino acid (A) in Figure 4.
Figure 6 shows the homology of amino acids by superimposing them from Qa), and the boxes indicate the same amino acids.
Based on the diagram, superimpose the first codon in Figure 2 on the first codon G of the 26th amino acid (AQa) in Figure 4,
This shows the homology of the base sequences, and the boxes indicate the same bases.

実施例4 (1)ラット脳mRNA由来のcDNAライブラリーの
作製 ラット脳より、RNAをグアニジンイソチオシアネート
法(Chirgwimら、「バイオケミストリー(Bi
oches+1stry)Je18,5294,197
g)を用いて抽出した。このRNAよりポリ(A) R
N AをオリゴdTセルロースカラムクロマトグラフィ
ーにより精製した( AvivとLader、 rプロ
シージング・オブ・ナシJナル・アカデミ−・オブ・サ
イエンス(Proc、Natl。
Example 4 (1) Preparation of cDNA library derived from rat brain mRNA RNA was extracted from rat brain using the guanidine isothiocyanate method (Chirgwim et al.
oches+1stry)Je18,5294,197
g). From this RNA, poly(A) R
NA was purified by oligo-dT cellulose column chromatography (Aviv and Lader, Proc. Natl.

Acad、Sci、υ、S、A)69,1408.(1
972) )、このポリ(A)RNA&u型としてcD
NAライブラリーを、WatsonとJacksonの
方法(Vatson、C,J、and Jackson
Acad, Sci, υ, S, A) 69,1408. (1
972) ), this poly(A)RNA&u type as cD
The NA library was prepared using the method of Watson and Jackson (Vatson, C.J., and Jackson).
.

J、F、、DNAクローニング・ア・プラクティカル・
アプローチ(D N A Cloning A Pra
ctical approach)IRL press
、0xford、p79.1985)に従って、λファ
ージベクターλgtlo(Huynh、T、V、ら、D
NAクローニング・ア・プラクティカル・アプローチ、
 IRLpress、0xford、p49,1985
)を用いて作成した。 loμgのポリ(^)RNAよ
り出発して、約1.5 X 10@個のクローンよりな
る大腸菌C600,Hf QA (Huynh T、V
ら、同上)を宿主としたc D N Aライブラリーを
得ることができた。
J.F., DNA Cloning A Practical
Approach (D N A Cloning A Pra
(ctical approach) IRL press
, Oxford, p79.1985) and the λ phage vector λgtlo (Huynh, T, V, et al., D
NA Cloning A Practical Approach,
IRLpress, Oxford, p49, 1985
). Starting from lo μg of poly(^)RNA, E. coli C600, Hf QA (Huynh T, V
We were able to obtain a cDNA library using the host gene as described above.

(2)ラットCキナーゼcDNAを含むファージの単離
とそのDNA塩基配列の決定 上記ファージcDNAライブラリーを大腸菌C600、
HfQAを宿主として、軟寒天プレート上に、約txt
o’クローンずつ、10枚まき、これを、ニトロセルロ
ースフィルター(ミリボア社。
(2) Isolation of phage containing rat C kinase cDNA and determination of its DNA base sequence The above phage cDNA library was transferred to Escherichia coli C600,
Approximately txt on a soft agar plate with HfQA as a host.
Sow 10 sheets of each o' clone and filter them through a nitrocellulose filter (Millibore).

11ATFフイルター)上に移した後、0,5N N 
a OH溶液でとかし露出変性したファージDNAをフ
ィルター上に乾燥固定したe  (Maniatisら
、[モレキュラー・クローニング(Molaculle
r Cloning)JCold  Spring  
Harbor  Laboratoryep320.1
082) 。 −方、実施例2の(2)で得られたE、
coli、に12.DHI/pTB638 (IFO1
4514゜FERM  BI’−1372)を制限酵素
Pst Iで切断して得られる0、7にbのDNA断片
をニックトランスレーション法(Mainatisら、
同上p109)により32p標識し、プローブとした。
11ATF filter), then 0.5N N
a The phage DNA that had been exposed and denatured by OH solution was dried and fixed on the filter e (Maniatis et al. [Molecular Cloning
r Cloning) JCold Spring
Harbor Laboratoryep320.1
082). -, E obtained in Example 2 (2),
coli, 12. DHI/pTB638 (IFO1
4514°FERM BI'-1372) with the restriction enzyme Pst I, the DNA fragment of 0, 7 and b was obtained by nick translation method (Mainatis et al.
It was labeled with 32p using p109) and used as a probe.

標識したプローブと、DNAを固定したフィルターを、
標識プローブを含む、5XSSPE (0,9MN a
 CQ 50+wMIJン酸ナトリウム緩衝液(pH7
゜4 L 5 mM EDTA)、50%ホルムアミド
、 5X Denhardt’s、 0.1%SO8,
100μg/m Q変性サケ***DNA溶液10mQ中
で42℃、 16時間、会合反応を行い、反応後、フィ
ルターを2 X5SC(I X5SC=0.15MN 
a CQ 、0.015Mクエン酸ナトリウム)、0.
1%SOS溶液中で室温で30分ずつ2回、lX5SC
,0,1%5t)S溶液中で、68℃で30分ずつ2回
洗浄した。洗浄したフィルターを乾燥させた後、ラジオ
オートグラムをとり、プローブと反応するクローンを検
索した。この方法により得られたクローンλCKR10
7よりDavisらの方法(Davisら、「アドバン
スト・バクチリアル・ジェネテイクス(Advance
d BacterialGeneties)J、 Co
1d Spring Harbor Laborato
ry 1980)によりファージDNAを抽出し、これ
より制限酵素Bgl IIとEcoRIの切断により、
約0.5にbのDNA断片を切り出し、上記と同様の方
法により32P標識し、再び、上記と同様の方法により
会合反応を行い、プローブと反応するクローンの検索を
行った8以上の検索の結果得られた数種類のクローンの
cDNA部分の塩基配列をジデオキシヌクレチオド合成
鎖停止法(Messingら、「ヌクレイツク・アシッ
ズ・リサーチ(Nucleic Ac1ds Re5c
rch)J旦、309. (1981))によって決定
した。
A labeled probe and a filter with immobilized DNA are
5XSSPE (0,9MN a
CQ 50+wMIJ sodium phosphate buffer (pH 7
4 L 5 mM EDTA), 50% formamide, 5X Denhardt's, 0.1% SO8,
The association reaction was carried out in 10 mQ of a 100 μg/m Q denatured salmon sperm DNA solution at 42°C for 16 hours. After the reaction, the filter was washed with 2×5SC (I
aCQ, 0.015M sodium citrate), 0.
lX5SC in 1% SOS solution twice for 30 min each at room temperature.
, 0.1% 5t) S solution at 68° C. twice for 30 minutes each. After drying the washed filter, a radioautogram was taken to search for clones that reacted with the probe. Clone λCKR10 obtained by this method
7, the method of Davis et al. (Davis et al., “Advanced Bacterial Genetics”
d Bacterial Geneties) J, Co
1d Spring Harbor Laborato
ry 1980), and the phage DNA was digested with restriction enzymes Bgl II and EcoRI.
A DNA fragment of approximately 0.5 b was excised, 32P-labeled using the same method as above, and an association reaction was performed again using the same method as above to search for clones that reacted with the probe. The nucleotide sequences of the cDNA portions of several of the resulting clones were analyzed using the dideoxynucleotide synthetic chain termination method (Messing et al., Nucleic Acids Research (Nucleic Acids Re5c)).
rch) Jdan, 309. (1981)).

この結果、得られたファージクローンのeDNA部分を
組み合わせることにより、ラット脳Cキナーゼのコード
領域全体をカバーすることができた。
As a result, by combining the eDNA portions of the obtained phage clones, it was possible to cover the entire coding region of rat brain C kinase.

塩基配列より予想されるアミノ酸配列を調べることによ
り、ラットvJCキナーゼには、C末端部分のみ異なる
アミノ酸残基数671 (I型(β−1)〕および67
3[n型(β−2)]の少くとも2種類の分子型が存在
することが判明した。
By examining the amino acid sequence predicted from the base sequence, we found that rat vJC kinase has 671 amino acid residues (type I (β-1)) and 67 amino acid residues that differ only in the C-terminal region.
It was found that there are at least two molecular types of 3 [n-type (β-2)].

第7図に得られたクローンの重なりの様子、第8図に全
塩基配列および、これより予想されるアミノ酸配列を示
した。
FIG. 7 shows the overlap of the obtained clones, and FIG. 8 shows the entire base sequence and the amino acid sequence predicted from this.

(3)ラット脳Cキナーゼの動物細胞発現用プラスミド
の構築 第7図に示した、ファージクローンλCKR152DN
Aを制限酵素IEcoRIで部分分解し、1.4にbの
CDNAを分離した。このDNAを、特開昭61−63
282号公報に記載のプラスミドpTB106のインタ
ーロイキン−2遺伝子領域の5′末端側のPstl切断
部位及び3′末端側のBamHI切断部位をt!coR
Iに変換しインターロイキン−2遺伝子領域を除去した
プラスミドpT8389を制限酵素EcoRIで切断し
5′末端のリン酸基をアルカリ性ホスファターゼ処理に
より除去したものと混合し、 T4DNAリガーゼを作
用させて、プラスミドPTB648を構築した。さらに
、このプラスミドpTB648をEcoRIで部分分解
し、cDNAの5′末端側937bpを含む4.Okb
のDNAを分離し、5′末端のリン酸基を除去した。こ
のDNAを、第7図に示したファージクローンλCKR
107を制限酵素EcoR1で部分分解し1分離した2
、5kbのc D N Aまたは、ファージクローンλ
CKR108をf!coRIで分解し、分離した2、3
 kbのcDNAと混合し、T4DNAリガーゼを作用
させて、ラット脳Cキナーゼのコード領域全体をカバー
する動物細胞形質転換用プラスミドpTB651及びp
TB650を構築した。
(3) Construction of plasmid for expression of rat brain C kinase in animal cells Phage clone λCKR152DN shown in Figure 7
A was partially digested with the restriction enzyme IEcoRI, and the cDNA of b was isolated at 1.4. This DNA was published in Japanese Unexamined Patent Publication No. 61-63
The Pstl cleavage site on the 5' end side and the BamHI cleavage site on the 3' end side of the interleukin-2 gene region of plasmid pTB106 described in Publication No. 282 are t! coR
Plasmid pT8389, which had been converted to I and had the interleukin-2 gene region removed, was cut with the restriction enzyme EcoRI and the 5'-terminal phosphate group was removed by alkaline phosphatase treatment. was built. Furthermore, this plasmid pTB648 was partially digested with EcoRI, and 4. Okb
The DNA was isolated and the 5'-end phosphate group was removed. This DNA was transformed into the phage clone λCKR shown in FIG.
107 was partially digested with restriction enzyme EcoR1 and separated into 2
, 5kb cDNA or phage clone λ
CKR108 f! Digested with coRI and isolated 2,3
kb cDNA and treated with T4 DNA ligase to create plasmids pTB651 and pTB651 for animal cell transformation, which cover the entire coding region of rat brain C kinase.
TB650 was constructed.

別に、動物細胞用インターロイキン−2遺伝子発現ベク
ターpT B 106(特開昭61−63282号公報
〕を制限酵素Hg1AIで切断し、インターロイキン−
2遺伝子リ一ダー配列を含む1.Okb DNA断片を
分離した。T4 DNAポリメラーゼ反応により付着末
端を平滑化し、EcoRIリンカ−CCGGAATTC
GGOをT4DNAリガーゼにより付加したのち、Ec
oRIおよびHind 01で完全消化をおこなって5
V40DNA由来の配列(プロモーターおよびスプライ
ス部位)と、IL−2遺伝子リ一ダー配列からなる0、
64kbDNA断片を分離した。また、前記PTB10
6を別にBam1口およびllindmで切断し、プラ
スミドρBR322に由来するDNAの大腸菌での複製
のためのD N A Pit製開始部位と、アンピシリ
ン耐性遺伝子を含む配列および5V40DNA由来のポ
リA付加部位を含む2.6kbD N A断片を分離し
た。一方、ヒト表皮細胞増殖因子(EGF)合成遺伝子
がクローニングされたプラスミドpTB361[特開昭
61−88881号公報]号公報上トEGFをコードす
る0、18kb EcoRI −Bflmll I D
NA断片を製造した。これら3種のDNA断片を、’r
4DNAリガーゼ反応により結合させ、プラスミドpT
B406を構築した。上記で得られたプラスミドpTB
406を、SV40プロモーター上流に存在するC1a
 !およびHin旧■で切断し、pTB314(特開昭
61−63282号公報〕から分離精製した二−ベルソ
ンマウス白血病ウィルス(A−MuLV)LTR領域を
含む1.1kbC1a I −Hindm D N A
断片を挿入して、プラスミドpTB505を構築した。
Separately, interleukin-2 gene expression vector pT B 106 for animal cells (Japanese Unexamined Patent Publication No. 61-63282) was cut with restriction enzyme Hg1AI, and interleukin-2
1. Contains two gene leader sequences. The Okb DNA fragment was isolated. The sticky ends were blunted by T4 DNA polymerase reaction and EcoRI linker-CCGGAATTC
After adding GGO with T4 DNA ligase, Ec
Complete digestion with oRI and Hind 01
0 consisting of a V40 DNA-derived sequence (promoter and splice site) and an IL-2 gene leader sequence;
A 64kb DNA fragment was isolated. In addition, the PTB10
6 was separately cut with Bam1 and llindm to contain a DNA Pit initiation site for replication of DNA derived from plasmid ρBR322 in E. coli, a sequence containing the ampicillin resistance gene, and a polyA addition site derived from 5V40 DNA. A 2.6 kb DNA fragment was isolated. On the other hand, plasmid pTB361 [Japanese Unexamined Patent Publication No. 1988-88881], in which the human epidermal growth factor (EGF) synthetic gene was cloned, contains a 0.18 kb EcoRI-Bflmll I D encoding EGF.
NA fragments were produced. These three types of DNA fragments were
4 DNA ligase reaction, plasmid pT
B406 was constructed. Plasmid pTB obtained above
406, C1a located upstream of the SV40 promoter
! and a 1.1 kb C1a I-Hindm DNA containing the LTR region of A-Belson murine leukemia virus (A-MuLV), which was separated and purified from pTB314 (Japanese Unexamined Patent Publication No. 61-63282) after being cut with Hin and old ■.
The fragment was inserted to construct plasmid pTB505.

さらに、プラスミドpTB505を制限酵素C1a I
およびBamHlで切断し、1.5kbのMuLV−L
TRを含むDNAを分離した。このDNAをプラスミド
pTB650またはプラスミドpTB651のC1aI
・BamHIDNA断片と混合し、T4 DNAリガー
ゼを作用させることにより、 M u L V −L 
T Rを上流にもつ動物細胞形質転換用プラスミドpT
B652及びプラスミドpTB653をそれぞれ構築し
た(第9図)。
Furthermore, plasmid pTB505 was digested with restriction enzyme C1a I.
and BamHl, 1.5 kb MuLV-L
DNA containing TR was isolated. This DNA was added to C1aI of plasmid pTB650 or plasmid pTB651.
・By mixing with BamHI DNA fragment and acting on T4 DNA ligase, M u L V-L
Plasmid pT for animal cell transformation with TR upstream
B652 and plasmid pTB653 were each constructed (Figure 9).

(4)上記(2)で得られたプラスミドpTB652ま
たはプラスミドpTB653を用い、大腸菌(E、co
li)K12DH1を[プロシージング・オブ・ナショ
ナル・アカデミ−・オブ・サイエンス(Proc、Na
tl、Acad、Sci、U、s、A、)J、並、21
10(1972)に記載の方法に従って形質転換し、形
質転換体[E、coli K 120)11 /p T
B652(IFO14539,FERM BP−137
3)およびE、coli K12D H1/pT B 
653(I F O14540、FERM RP−13
74)をそれぞれ得た。
(4) Using plasmid pTB652 or plasmid pTB653 obtained in (2) above, Escherichia coli (E, co
li) K12DH1 [Procedure of National Academy of Sciences (Proc., Na.
tl, Acad, Sci, U, s, A,) J, average, 21
10 (1972), and transformants [E, coli K 120) 11 /p T
B652 (IFO14539, FERM BP-137
3) and E. coli K12D H1/pT B
653 (IFO14540, FERM RP-13
74) were obtained, respectively.

(5)ラット脳Cキナーゼc D N Aの動物細胞で
の発!!A: サルC09−7細胞〔「セル(Ce11)J、27,2
79−288(1981)]を5%胎5%胎清を含むD
MEM培地で単層培養(ファルコン径100 mmプラ
スチックデイシュ5枚)した後、同培地で培地交換した
。交換の4時間後に公知の方法(Graha+mら、「
ヴイロロジ−(VirologyJ、52.456(1
973))に従いデイシュ1枚当りプラスミドpTB6
52またはpTB653のDNA30μgを含むカルシ
ウムホスフェートゲルを調製し細胞に添加し、p TB
652感染細胞またはpTB653感染細胞をそれぞれ
得た。さらにその4時間後グリセロール処理して5%胎
児牛血清を含む培地で上記p TB652感染CO3−
7細胞またはTB653感染CO3−7細胞の培養を続
けた。70〜72時間後に培養上清をすて、細胞を1.
5allの0.25Mシヨ糖、 20m阿 TrisI
Ic Q (pH7,5)、10mM EGTA、2m
M EDTA、20μg/m Qリューペプチン緩衝液
中に懸濁させテフロンホモジナイザーで細胞をホモジナ
イズした。このホモジネートをベックマン100.20
−ターを用いて55000rpI、60分間遠心するこ
とにより、細胞質分画を得た。pTl]652Tl側胞
またはpT11653感染細胞のそれぞれより得たこの
分画について、公知の方法[に1−kkavaら、[ジ
ャーナル・オブバイオロジカル・ケミストリー(J、[
1Lo1.Chem、)J、257.13341(19
82)]に従ってCキナーゼ活性を測定し、タンパク量
111g当りの活性値を測定した。第1表に示したよう
に、pTB652感染CO3−7細胞またはpTB65
3感染CO3−7細胞の細胞質分画には、対照実験とし
て用いた非感染細胞の細胞質分画にくらべて、約3程度
度のCキナーゼ活性が検出された。
(5) Development of rat brain C kinase c DNA in animal cells! ! A: Monkey C09-7 cells [Cell (Ce11) J, 27,2
79-288 (1981)] containing 5% fetal serum.
After monolayer culture in MEM medium (5 plastic dishes with a Falcon diameter of 100 mm), the medium was replaced with the same medium. After 4 hours of exchange, the known method (Graha+m et al., "
Virology (VirologyJ, 52.456 (1
Plasmid pTB6 per dish according to 973))
A calcium phosphate gel containing 30 μg of pTB653 or pTB653 DNA was prepared and added to the cells.
652-infected cells or pTB653-infected cells were obtained, respectively. After 4 hours, the above pTB652-infected CO3-
7 cells or TB653-infected CO3-7 cells were continued to be cultured. After 70 to 72 hours, the culture supernatant was discarded and the cells were washed with 1.
5all of 0.25M sucrose, 20mA TrisI
Ic Q (pH 7,5), 10mM EGTA, 2m
Cells were suspended in MEDTA, 20 μg/m Q leupeptin buffer and homogenized using a Teflon homogenizer. This homogenate was mixed with Beckman 100.20
A cytoplasmic fraction was obtained by centrifugation at 55,000 rpI for 60 minutes using a -tar. pTl]652Tl lateral vesicles or pT11653 infected cells, respectively, using known methods [1-kkava et al., [Journal of Biological Chemistry (J.
1Lo1. Chem, ) J, 257.13341 (19
82)], and the activity value per 111 g of protein was measured. As shown in Table 1, pTB652-infected CO3-7 cells or pTB65
Approximately 3 degrees of C kinase activity was detected in the cytoplasmic fraction of 3-infected CO3-7 cells compared to the cytoplasmic fraction of uninfected cells used as a control experiment.

第1表   プラスミドpTB652 、またはp T
 11653DNAのトランスフェクションによるラッ
ト脳Cキナーゼの産生 感染させたプラ 感染細胞細胞質分画中のCキナスミド
DNA   −ゼ活性(pmole/ll1in/mg
)pT8652        68.82pTB65
3        78.30非感染        
25.46 (6)感染細胞より得られたCキナーゼの解析:上記の
方法で得られた細胞質分画を、それぞれ6倍量の0.5
mM EGTA、 0.5mM  EDTA 10mM
2−メルカプトエタノールを含む20mMトリス塩酸緩
衝液(p H7,5) (緩衝液A)で希釈した後。
Table 1 Plasmid pTB652 or pT
Production of rat brain C-kinase by transfection of 11653 DNA. C-kinasmid DNA-ase activity (pmole/llin/mg
)pT8652 68.82pTB65
3 78.30 non-infectious
25.46 (6) Analysis of C kinase obtained from infected cells: The cytoplasmic fraction obtained by the above method was diluted with 6 times the amount of 0.5
mM EGTA, 0.5mM EDTA 10mM
After dilution with 20mM Tris-HCl buffer (pH 7,5) containing 2-mercaptoethanol (buffer A).

ファルマシアFPLC−Mono Qカラム(0,5X
50.ファルマシアHR515)にのせた。緩衝液へで
カラムを洗った後、20m QのO−0,6M NaC
aを含む緩衝液Aの直線濃度勾配により、Cキナーゼ活
性を溶出した。第10図に示すように、pTB652感
染細胞およびpTB653感染細胞由来の検体において
は、非感染細胞由来のそれに比べ、明らかに多量の酵素
活性が検出された。
Pharmacia FPLC-Mono Q column (0,5X
50. Pharmacia HR515). After washing the column with buffer, 20 mQ of O-0,6M NaC
C kinase activity was eluted by a linear gradient of buffer A containing a. As shown in FIG. 10, a clearly higher amount of enzyme activity was detected in the samples derived from pTB652-infected cells and pTB653-infected cells compared to that from uninfected cells.

Mono Qカラムより溶出された活性画分(各30u
g)をLaemmliの方法(Laemmli、 U、
に、 (1970)「ネイチャー(Nature)J 
227680−6853により8.5%SDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動した後、Towbinらの方法
(Towbin H,ら(1979) rプロシージン
グ・オブ・ザ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエ
ンスJ  (Proc、Natl、Accid、Sci
、U、S、A、)互、4350−4354)により、ニ
トロセルロースフィルターに移した。これを4℃で15
0n+M NaCQ 。
Active fraction eluted from Mono Q column (30u each
g) by Laemmli's method (Laemmli, U,
(1970) “Nature J.
227680-6853, followed by 8.5% SDS polyacrylamide gel electrophoresis using the method of Towbin et al. , Accid, Sci
, U, S, A,), 4350-4354) and transferred to a nitrocellulose filter. This at 4℃ for 15
0n+M NaCQ.

5%カゼイン、20%正常ウマ血清を含むio+mMト
リス塩酸緩衝液(pH7,5)中で一装置き、次に、1
50 taM NaCQ 、 1%カゼインおよび抗C
キナーゼ抗体(P、 J Parker博士より分与、
Coussens L、S。
One device was placed in IO+mM Tris-HCl buffer (pH 7,5) containing 5% casein, 20% normal horse serum, then 1
50 taM NaCQ, 1% casein and anti-C
Kinase antibody (kindly provided by Dr. P and J Parker,
Coussens L, S.

(1986) rサイエンスJ (5cience)2
33,859−866)を含む1011Mトリス塩酸緩
衝液(pH7,5)中にて、室温で1時間放置した。0
.05%Tween 20,150!IIMNaCQを
含むio+aMトリス塩酸l1IWi液−(pH7,5
)中でフィルターを洗った後、1%カゼイン、150m
M NaCQ 、 0.1 p Ci/m Q ”’ 
Iプロティン八を含むトリス塩酸緩衝液中にて、室温で
1.5時間放置した。フィルターを上記と同様にして洗
った後、X線フィルムに抗体と反応したタンパクバンド
を露光させた。第1.1図に示すように、感染細胞由来
の検体では、ラット脳より精製したCキナーゼと同じ位
置に、明らかに抗体と反応するタンパクバンドが検出さ
れた。
(1986) rScience J (5science) 2
33,859-866) in 1011M Tris-HCl buffer (pH 7.5), and left at room temperature for 1 hour. 0
.. 05% Tween 20,150! io+aM Tris-HCl IWi solution containing IIMNaCQ (pH 7,5
) After washing the filter in 1% casein, 150 m
M NaCQ , 0.1 p Ci/m Q"'
The mixture was left in a Tris-HCl buffer containing Protein I for 1.5 hours at room temperature. After washing the filter in the same manner as above, the protein band that had reacted with the antibody was exposed to X-ray film. As shown in Figure 1.1, in the sample derived from infected cells, a protein band that clearly reacted with the antibody was detected at the same position as C kinase purified from rat brain.

(7)感染細胞より得られたCキナーゼの精fM:pT
B652の5′非翻訳領域を短くしたpTB707 (
55塩基対の5′−非翻訳領域をもつ)およびp T 
B 653の5′非翻訳領域を短くしたp T B 7
08(55塩基対の5′−非翻訳領域をもつ)を感染さ
せたCO3−7細胞lこおいても、上記と同様の結果が
得られた。
(7) C-kinase sperm fM obtained from infected cells: pT
pTB707, which shortens the 5' untranslated region of B652 (
with a 55 base pair 5'-untranslated region) and pT
pT B 7 with a shortened 5' untranslated region of B 653
Similar results were obtained in CO3-7 cells infected with 08 (having a 5'-untranslated region of 55 base pairs).

そこでp T B 707およびpTB708感染CO
3−7細胞(各100mmシャーレ50枚分)より上記
と同様の方法にて、細胞質画分を得た後、 Mono 
Qカラム(I X 10 am *フアルマシアHR1
0/ 10)により活性画分を分取し、さらにヒドロキ
シルアパタイトカラムにより部分精製したe Mono
 Qカラムの活性画分を等址の0.5++M E G 
T A 、 0.5mM E D T A10% グリ
セロール、10+aMメルカプトエタノールを含む20
m Mリン酸カリウム緩衝液(pH7,5)(緩衝液B
)で希釈した後、ハイトロキシルアパタイトカラム(0
,78X 10cm 、に0KEN Type S)を
用いて、フアルマシアFPLCシステムにより、20−
280mMリン酸カリウムを含む緩衝液Bの直線濃度勾
配により、Cキナーゼ活性を溶出させた。第12図に示
すように、ラット脳より精製したCキナーゼは3つのピ
ーク(第12図のDの左よりピーク1,2゜3)に分か
れるのに対して、非感染細胞由来の検体ではピーク3の
みの活性しか観察されなかった。
Therefore pTB707 and pTB708 infected CO
After obtaining the cytoplasmic fraction from 3-7 cells (50 100 mm petri dishes each) in the same manner as above,
Q column (I X 10 am *Pharmacia HR1
0/10) and then partially purified using a hydroxylapatite column.
The active fraction of the Q column is equal to 0.5++ M E G
TA, 0.5mM EDT A20 containing 10% glycerol, 10+aM mercaptoethanol
m M potassium phosphate buffer (pH 7,5) (buffer B
) and then diluted with hytroxylapatite column (0
, 78 x 10 cm, 0KEN Type S) using a Pharmacia FPLC system.
C kinase activity was eluted with a linear gradient of buffer B containing 280 mM potassium phosphate. As shown in Figure 12, C-kinase purified from rat brain is divided into three peaks (peaks 1 and 2°3 from the left of D in Figure 12), whereas samples derived from uninfected cells have three peaks. Only 3 activities were observed.

一方、感染細胞由来の検体では、ピーク2およびピーク
3に対応する活性が観察された。このことより感染細胞
においてはピーク2に対応するCキナーゼ活性がプラス
ミドDNAを感染させることにより発現されたと考えら
れる。
On the other hand, activities corresponding to peaks 2 and 3 were observed in samples derived from infected cells. This suggests that C kinase activity corresponding to peak 2 was expressed in infected cells by infection with plasmid DNA.

実施例5 (1)ラットCキナーゼ■型(α型)cDNAを含むフ
ァージの単離とそのDNA塩基配列の決定実施例4(1
)で得られたラット脳mRNA由来のcDNAライブラ
リーを大腸菌C600、IIflAを宿主として、軟寒
天プレート上に、約lXl0’クローンずっ10枚まき
、これをニトロセルロースフィルター(ミリボア社、H
ATFフィルター)上に移した後、0.5N NaOH
溶液でとかし露出変性したファージDNAをフィルター
上に乾燥固定した。一方、既に公知(Parkerら、
サイエンス(Science) 233.853−85
9 (1986) )のウシCキナーゼαのアミノ酸配
列(アミノ酸No、162−170)に対応する塩基配
列を有するオリゴペプチド(” TCCGTGACCT
CGGCCTTCAGGTAGAT” )を化学合成し
、この5′末端をT4ポリヌクレオチドキナーゼ、〔γ
−32P〕ATPを用いて32pで標識してラットCキ
ナーゼ■型(α型)のスクリーニングプローブとした。
Example 5 (1) Isolation of phage containing rat C kinase ■ type (α type) cDNA and determination of its DNA base sequence Example 4 (1)
), using E. coli C600 and IIflA as hosts, approximately 10 clones of approximately 1X10' were spread on a soft agar plate, and filtered through a nitrocellulose filter (Millivore, H
ATF filter), then 0.5N NaOH
The phage DNA that had been dissolved and exposed and denatured in a solution was dried and fixed on a filter. On the other hand, it is already known (Parker et al.
Science 233.853-85
An oligopeptide ("TCCGTGACCT") having a base sequence corresponding to the amino acid sequence (amino acid number, 162-170) of bovine C-kinase α (1986))
CGGCCTTCAGGTAGAT") was chemically synthesized, and its 5' end was linked to T4 polynucleotide kinase, [γ
The probe was labeled with 32p using -32P]ATP to provide a screening probe for rat C kinase type II (α type).

標識したプローブと、DNAを固定したフィルターを標
識゛プローブを含む、5XSSPE (0,9M Na
CQ 50mMリン酸ナトリウム緩衝液p H7。
5XSSPE (0.9M Na
CQ 50mM sodium phosphate buffer pH7.

4)、 5 XDenhardts、 0.1%S D
 S 、 100μg/mQ変性サケ***DNA溶液1
0m Q中で42℃、16時間会合反応を行い、反応後
、フィルターを6×SSC(I X S S C=0.
15M NaCQ、0.015Mクエン酸ナトリウム)
0.1%SDS溶液中で室温で30分ずつ2回、さらに
同溶液で60℃で30分間ずつ2回洗浄した。洗浄した
フィルターを乾燥させた後、ラジオオートグラムをとり
、プローブと反応するクローンを検索した。この方法に
より得られたクローン λCKRα5のcDNA部分の
塩基配列をジデオキシヌクレオチド合成鎖停止法によっ
て決定した。
4), 5×Denhardts, 0.1% S.D.
S, 100 μg/mQ denatured salmon sperm DNA solution 1
The association reaction was carried out at 42° C. for 16 hours in 0 m
15M NaCQ, 0.015M sodium citrate)
It was washed twice in a 0.1% SDS solution at room temperature for 30 minutes each and then twice in the same solution at 60° C. for 30 minutes each. After drying the washed filter, a radioautogram was taken to search for clones that reacted with the probe. The base sequence of the cDNA portion of clone λCKRα5 obtained by this method was determined by the dideoxynucleotide synthetic chain termination method.

第13図にラットCキナーゼ■型(q型)のアミノ酸コ
ード領域の塩基配列、およびこれより予想されるアミノ
酸配列を示した。
FIG. 13 shows the base sequence of the amino acid coding region of rat C kinase ■ type (q type) and the amino acid sequence predicted from this.

(2)ラットCキナーゼ■型(α型)cDNAの動物細
胞での発現 λCKRα5を制限酵素EcoRIで分解し、約3.l
KbのcDNA部分を分離した。一方、実施例4(3)
で得られたpTB652をEcoRlで分解し、cDN
A部分を除いた約4.3にbのDNA断片を分離した。
(2) Expression of rat C kinase ■ type (α type) cDNA in animal cells λCKRα5 was digested with the restriction enzyme EcoRI. l
The cDNA part of Kb was isolated. On the other hand, Example 4 (3)
The pTB652 obtained was digested with EcoRl, and the cDNA
A DNA fragment of approximately 4.3 and b was separated from the portion A.

これら2つのDNA断片をT4DNAリガーゼで連結し
、動物細胞発現用プラスミド pTr3755を構築し
た。このp T B 755より大腸菌形質転換体E、
 coil DHI/ p TB755 (I FO1
4612、FERM BP−1382)を得た。このプ
ラスミド pTB755を実施例4(5)に示した方法
により、サルC087細胞に感染させた後、細胞質分画
を得た。この細胞質分画を実施例4(7)に示した方法
により、Mono Qカラム、および、ハイトロキシル
アパタイトカラムクロマトグラフィーを行い、発現され
たラットCキナーゼ■型(α型)のカラムクロマトグラ
フィー上での挙動を調べた(第 14図)。
These two DNA fragments were ligated using T4 DNA ligase to construct a plasmid pTr3755 for animal cell expression. From this pT B 755, E. coli transformant E,
coil DHI/ p TB755 (I FO1
4612, FERM BP-1382). After infecting monkey C087 cells with this plasmid pTB755 by the method shown in Example 4 (5), a cytoplasmic fraction was obtained. This cytosolic fraction was subjected to Mono Q column and hytroxylapatite column chromatography according to the method shown in Example 4 (7), and the expressed rat C kinase ■ type (α type) was subjected to column chromatography. The behavior was investigated (Fig. 14).

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図は実施例1の(1)でラットC−キナーゼから得
られた4種類のペプチド分画分のアミノ酸配列を示す図
である。 第2図はラットC−キナーゼc D N A部分の塩基
配列および該塩基配列より予測されるアミノ酸配列を示
した図である。 第3図はヒトC−キナーゼcDNA部分の簡単な制限酵
素図である。 第4図はヒトC−キナーゼcDNAの一部の塩基配列お
よびその配列より推測されるアミノ酸配列を示した図で
ある。 第5図及び第6図はラットC−キナーゼcDNA部分の
塩基配列および該塩基配列より予測されるアミノ酸配列
(第2図)とヒトC−キナーゼCDNAの一部の塩基配
列およびその配列より推測されるアミノ酸配列(第4図
)との相同関係を示す図である。 第7図は実施例4で得られた2つの型のラットIEiC
−キナーゼクローンの重なりの様子を示す図である。 第8図はラット脳Cキナーゼ■型(β−1)及び■型(
β−2)のcDNAの金塩〕ル配列および、これより予
想されるアミノ酸配列を示す。四角で囲った部分は、n
型(β−2)のアミノ酸配列第622〜673番目に相
当する部分を示す。 第9図はラット脳Cキナーゼの動物発現用プラスミドの
構築を示す。 第1θ図は感染細胞または非感染細胞由来の細胞質画分
のMono Qカラムクロマトグラフィーにおける、C
キナーゼ活性の挙動を示している。 A:pTB652感染細胞由来、B : p T 13
653感染細胞由来、C:非感染細胞由来 第11図は、SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動で
分画した抗体タンパクの抗Cキナーゼ抗体を反応させた
後のオートラジオグラ11を示している。 a:ラット脳より精製したCキナーゼ、b:非感染細胞
由来、c:pTB652感染細胞由来、d:pTB65
3感染細胞由来 第12図は感染細胞または非感染細胞由来の細胞質画分
のMono Qカラム上での活性画分をハイトロキシル
アパタイトカラムクロマトグラフィーした時のCキナー
ゼ活性の挙動を示している。 A:pTB707感染細胞由来、B:pTB708感染
細胞由来、C:非感染細胞由来、D:ラット脳Cキナー
ゼ 第13図はラットCキナーゼ■型(α型)のタンパクコ
ード領域の塩基配列および、それより推測されるアミノ
酸配列を示す。 第14図は、感染細胞または非感染細胞由来の細胞質両
分のMono Qカラム上での活性画分をハイトロキシ
ルアパタイトカラムクロマトグラフィーした時のCキナ
ーゼ活性の挙動を示している。 A:ラット脳山来Cキナーゼ、B:pTB755感染細
胞由来〔Cキナーゼ夏1型(α型)発現細胞由来)、C
:pTB707感染細胞由来〔CキナーゼI型(β−1
)発現細胞由来〕、D:pTB756感染細胞由来〔C
キナーゼγ型発現細胞由来。 (Knopfらセル(Cell) 46.491−50
2 (1986))、E:非感染細胞由来。
FIG. 1 is a diagram showing the amino acid sequences of four types of peptide fractions obtained from rat C-kinase in Example 1 (1). FIG. 2 shows the base sequence of the rat C-kinase cDNA portion and the amino acid sequence predicted from the base sequence. FIG. 3 is a simple restriction diagram of the human C-kinase cDNA portion. FIG. 4 shows a partial base sequence of human C-kinase cDNA and an amino acid sequence deduced from the sequence. Figures 5 and 6 show the base sequence of the rat C-kinase cDNA portion, the amino acid sequence predicted from the base sequence (Figure 2), the base sequence of a portion of the human C-kinase cDNA, and the predicted amino acid sequence based on the sequence. FIG. 4 is a diagram showing homology with the amino acid sequence (FIG. 4). Figure 7 shows two types of rat IEiC obtained in Example 4.
- It is a diagram showing the state of overlapping of kinase clones. Figure 8 shows rat brain C kinase type ■ (β-1) and type ■ (
The gold salt sequence of β-2) cDNA and the amino acid sequence predicted from this are shown. The part surrounded by a square is n
The portion corresponding to the 622nd to 673rd amino acid sequence of type (β-2) is shown. Figure 9 shows the construction of a plasmid for animal expression of rat brain C kinase. Figure 1θ shows the C
The behavior of kinase activity is shown. A: pTB652 infected cell origin, B: pT13
653-infected cell origin, C: non-infected cell origin Figure 11 shows an autoradiogram 11 after the antibody protein fractionated by SDS polyacrylamide gel electrophoresis was reacted with an anti-C kinase antibody. a: C kinase purified from rat brain, b: derived from uninfected cells, c: derived from pTB652 infected cells, d: pTB65
FIG. 12 shows the behavior of C kinase activity when the active fraction of the cytoplasmic fraction from infected cells or uninfected cells was subjected to hytroxylapatite column chromatography on a Mono Q column. A: derived from pTB707 infected cells, B: derived from pTB708 infected cells, C: derived from uninfected cells, D: rat brain C kinase. Figure 13 shows the nucleotide sequence of the protein coding region of rat C kinase ■ type (α type) and its The deduced amino acid sequence is shown below. FIG. 14 shows the behavior of C kinase activity when active fractions of both cytoplasm from infected cells and non-infected cells were subjected to hytroxylapatite column chromatography on a Mono Q column. A: rat brain mountain C kinase, B: derived from pTB755 infected cells [derived from cells expressing C kinase summer type 1 (α type)], C
: Derived from pTB707 infected cells [C kinase type I (β-1
) derived from expressing cells], D: derived from pTB756 infected cells [C
Derived from cells expressing kinase γ type. (Knopf et al. Cell 46.491-50
2 (1986)), E: derived from uninfected cells.

Claims (11)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)アミノ酸配列: 【遺伝子配列があります。】 を含有するポリペプチドであるヒト蛋白質リン酸化酵素
C; 同一の活性を有する上記ポリペプチドの一部;もしくは 上記アミノ酸配列が部分的に変換され、かつ同一の活性
を有するポリペプチド。
(1) Amino acid sequence: [There is a gene sequence. ] Human protein kinase C, which is a polypeptide containing human protein kinase C; a part of the above polypeptide having the same activity; or a polypeptide in which the above amino acid sequence is partially converted and having the same activity.
(2)ヒト蛋白質リン酸化酵素Cをコードする塩基配列
を含有する組み換えDNA。
(2) Recombinant DNA containing a base sequence encoding human protein kinase C.
(3)ヒト蛋白質リン酸化酵素Cが、 アミノ酸配列: 【遺伝子配列があります。】 を含有するポリペプチドであるヒト蛋白質リン酸化酵素
C;同一の活性を有する上記ポリペプチドの一部;もし
くは上記アミノ酸配列が部分的に変換され、かつ同一の
活性を有するポリペプチドである特許請求の範囲第2項
記載のDNA。
(3) Human protein kinase C has the following amino acid sequence: [There is a gene sequence. ] Human protein kinase C which is a polypeptide containing; a part of the above polypeptide having the same activity; or a patent claim which is a polypeptide in which the above amino acid sequence is partially converted and has the same activity. DNA according to range 2.
(4)塩基配列: 【遺伝子配列があります。】 を含有する塩基配列である特許請求の範囲第2項記載の
DNA。
(4) Base sequence: [There is a gene sequence. ] The DNA according to claim 2, which is a base sequence containing the following.
(5)ヒト蛋白質リン酸化酵素Cをコードする塩基配列
を含有するDNAを含有するベクターで形質転換された
形質転換体。
(5) A transformant transformed with a vector containing DNA containing a base sequence encoding human protein kinase C.
(6)ヒト蛋白質リン酸化酵素Cをコードする塩基配列
を含有するDNAを含有するベクターで形質転換された
形質転換体を培地に培養し、培養物中にヒト蛋白質リン
酸化酵素Cを生成蓄積せしめ、これを採取することを特
徴とする該酵素の製造法。
(6) A transformant transformed with a vector containing a DNA containing a base sequence encoding human protein kinase C is cultured in a medium, and human protein kinase C is produced and accumulated in the culture. , a method for producing the enzyme, which comprises collecting the enzyme.
(7)第8図または第13図で示されるアミノ酸配列を
含有するポリペプチドであるラット蛋白質リン酸化酵素
C; 同一の活性を有する上記ポリペプチドの一部;もしくは 上記アミノ酸配列が部分的に変換され、かつ同一の活性
を有するポリペプチド。
(7) Rat protein kinase C, which is a polypeptide containing the amino acid sequence shown in FIG. 8 or FIG. 13; a part of the above polypeptide having the same activity; or the above amino acid sequence is partially converted and have the same activity.
(8)ラット蛋白質リン酸化酵素Cをコードする塩基配
列を含有する組み換えDNA。
(8) Recombinant DNA containing a base sequence encoding rat protein kinase C.
(9)ラット蛋白質リン酸化酵素Cが第8図または第1
3図で示されるアミノ酸配列を含有するポリペプチド; 同一の活性を有する上記ポリペプチドの一部;もしくは 上記アミノ酸配列が部分的に変換され、かつ同一の活性
を有するポリペプチドである特許請求の範囲第8項記載
のDNA。
(9) Rat protein kinase C is shown in Figure 8 or 1.
A polypeptide containing the amino acid sequence shown in Figure 3; a part of the above polypeptide having the same activity; or a polypeptide in which the above amino acid sequence is partially converted and having the same activity. DNA according to item 8.
(10)ラット蛋白質リン酸化酵素Cをコードする塩基
配列を含有するDNAを含有するベクターで形質転換さ
れた形質転換体。
(10) A transformant transformed with a vector containing DNA containing a base sequence encoding rat protein kinase C.
(11)ラット蛋白質リン酸化酵素Cをコードする塩基
配列を含有するDNAを含有するベクターで形質転換さ
れた形質転換体を培地に培養し、培養物中にヒト蛋白質
リン酸化酵素Cを生成蓄積せしめ、これを採取すること
を特徴とする該酵素の製造法。
(11) A transformant transformed with a vector containing DNA containing a base sequence encoding rat protein kinase C is cultured in a medium, and human protein kinase C is produced and accumulated in the culture. , a method for producing the enzyme, which comprises collecting the enzyme.
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