JP7486497B2 - 上皮または内皮バリア機能の改善 - Google Patents

上皮または内皮バリア機能の改善 Download PDF

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Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１９年１月１６日に出願された米国仮出願第６２／７９３，０８８号の優先権を主張する。本出願の内容は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
政府の利益
本発明は、国立衛生研究所により授与されたＨＬ１２０５２１およびＨＬ１３１１４３による政府の支援によってなされた。政府は本発明において一定の権利を有する。
本発明は、上皮または内皮のバリア機能の改善に関する。
上皮および内皮バリアは、生命にとって不可欠である。内皮は血管系の内側を覆って、組織への栄養素および酸素の供給を確実にする一方で、上皮は組織と外部環境との間にバリアを形成し、有害な物質の侵入から臓器を保護する。どちらのバリアも、傷害や感染に対する自然免疫反応において重要な役割を果たす。したがって、上皮または内皮バリアの機能不全が様々な疾患の根底にある。例えば、急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）は生命を脅かす肺疾患であり、米国では毎年１９０，６００人以上が罹患し、７４，５００人が死亡している（１、２）。肺胞上皮および内皮バリアの損傷はＡＲＤＳの特徴であり、感染、誤嚥性症候群、輸血、および機械的力等のいくつかの要因によって引き起こされる可能性がある（４）。内皮バリアの損傷および修復は十分に特徴付けられているが、上皮の損傷および修復の機構はほとんど解明されていない。現在の治療法は、疾患の根底にある病態生理学を標的とするのではなく、支持療法に依存している（３）。したがって、上皮および内皮バリア機能を改善するための薬剤および方法が必要である。
本発明は、いくつかの態様において上述の必要性に対応する。
一態様において、本発明は、上皮または内皮バリアの完全性または機能を改善する方法を特徴とする。この方法は、バリアの１つまたは複数の細胞における筋緊張性ジストロフィーキナーゼ関連Ｃｄｃ４２結合キナーゼα（ＭＲＣＫα）のレベルを増加させることを含む。いくつかの例において、バリアは、肺胞上皮バリア等の上皮バリアである。ＭＲＣＫαのレベルは、ＭＲＣＫα遺伝子の酵素レベルまたは発現レベルであり得る。ＭＲＣＫαのレベルを増加させることは、ＭＲＣＫαポリペプチドまたはＭＲＣＫαポリペプチドをコードする第１の核酸を１つまたは複数の細胞に導入することを含み得る。この方法は、１つまたは複数の細胞におけるＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ（ＮＫＡ）β１サブユニットのレベル（例えば、ＮＫＡ遺伝子β１の活性レベルまたは発現レベル）を増加させることをさらに含み得る。これは、ＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドまたはＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドをコードする第２の核酸を細胞に導入することにより、ＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドのレベルを増加させることによって達成することができる。さらに、ＮＫＡ β１サブユニットのレベルは、ＮＫＡ β１遺伝子の活性レベルまたは発現レベルであり得る。細胞は肺胞上皮細胞であってもよく、対象においてインビトロまたはインビボであり得る。第１の核酸または第２の核酸は、同じ発現ベクターまたは２つの異なる発現ベクター内にあってもよい。
上皮または内皮バリアの機能不全に関連する疾患または状態を治療する方法も提供される。この方法は、それを必要とする対象の上皮または内皮バリアの１つまたは複数の細胞におけるＭＲＣＫαのレベルを増加させることを含む。疾患または状態の例として、急性肺損傷、急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）、および喘息からなる群から選択される１つが挙げられる。
第２の態様において、本発明は、上述のＭＲＣＫαおよびＮＫＡ β１サブユニットをコードする核酸分子または核酸分子のセットを提供する。核酸分子または核酸分子のセットは、発現カセット、ベクター、宿主細胞、ウイルスまたはウイルス様粒子中に単離するまたは存在することができる。
本発明はさらに、（ｉ）核酸分子または核酸分子のセット、ベクター、宿主細胞、上記のウイルスまたはウイルス様粒子、および（ｉｉ）薬学的に許容される担体または賦形剤を含む医薬組成物を提供する。核酸分子、核酸分子のセット、ベクター、宿主細胞、ウイルス、およびウイルス様粒子のうちの１つまたは複数を含むキットも提供される。
本発明の１つまたは複数の実施形態の詳細は、以下の明細書に記載される。本発明の他の特徴、目的、および利点は、明細書および特許請求の範囲から明らかになるであろう。
ＮＫＡ β１（β１）サブユニットの過剰発現が肺胞Ｉ型バリアの完全性を高めたことを示す一連の図および写真である。（図１Ａ）インビトロで培養した場合、ラット初代ＡＴＩＩ細胞は表現型ＡＴＩ細胞に分化した。ＡＴＩＩマーカー（ＳＰＣ）およびＡＴＩマーカー（Ｔ１ａ）のｑＰＣＲ分析のために細胞を溶解した。（図１Ｂ）単離後３日目に、ラットβ１サブユニットを発現するプラスミドまたは対照としてのｐＣＤＮＡ３空プラスミドを細胞にエレクトロポレーションした。２４時間後、ウェスタンブロットのために細胞を溶解した。（図１Ｃ）ＡＴＩ細胞のウェスタンブロットの定量化。（図１Ｄ）ＡＴＩＩ細胞を単離し、ラットβ１サブユニットを発現するプラスミドまたは対照としてのｐＣＤＮＡ３空プラスミドを直ちにトランスフェクトした。２４時間後、ウェスタンブロットのために細胞を溶解した。（図１Ｅ）ＡＴＩＩ細胞のウェスタンブロットの定量化。＊＊ｐ＜０．０５、＊ｐ＜０．０１。 β１サブユニットの過剰発現が肺胞Ｉ型バリア機能を高めたことを示す一連の図および写真である。（図２Ａ）ＡＴＩ細胞（単離後３日目）に、ラットβ１サブユニットを発現するプラスミドまたは対照としてのｐＣＤＮＡ３空プラスミドをエレクトロポレーションした。２４時間後、細胞をオクルディン、ｚｏ－１、ｚｏ－２、クローディン－４について染色した。赤色はタイトジャンクション構成タンパク質の染色を示し、青色は核染色のためのＤＡＰＩを示す。スケールバー：７０ｍｍ。（図２Ｂ）ＡＴＩＩ細胞を単離し、次いで、単離後１日目に、４ｍｇ／ｍｌ ｐＣＭＶ－Ｔｅｔ３Ｇプラスミドおよび１６ｍｇ／ｍｌ ｐＴｅｔ３Ｇ－ヒトβ１プラスミドをコトランスフェクトした。次いで、フィブロネクチンでコーティングした１２ウェルトランスウェルプレートに細胞を播種した。２日目の２４時間後、１μｇ／ｍｌのｄｏｘを加えてβ１遺伝子発現を誘導した。ＴＥＥＲは２４時間ごとに測定した。統計分析には二元配置ＡＮＯＶＡを使用した。＊＊＊ｐ＜０．００１。（図２Ｃ）４日目のＴＥＥＲ測定後、３ｋＤテキサスレッドデキストランおよび４０ｋＤ ＦＩＴＣデキストランに対する透過性を２時間の期間にわたって測定した。＊＊ｐ＜０．０１。 β１サブユニットを介したタイトジャンクションのアップレギュレーションがイオン輸送に依存しないことを示す一連の写真である。（図３Ａ）ＡＴＩ細胞（単離後３日目）に、マウスβ２サブユニットを発現するプラスミドまたは対照としてのｐＣＤＮＡ３空プラスミドをトランスフェクトした。２４時間後、ウェスタンブロット分析のために細胞を溶解した。（図３Ｂ）ＡＴＩ細胞（単離後３日目）に、ＤＤＫタグを含むマウスβ３サブユニットを発現するプラスミドまたは対照としてのｐＣＤＮＡ３空プラスミドをトランスフェクトした。２４時間後、ウェスタンブロット分析のために細胞を溶解した。（図３Ｃ）ＡＴＩ細胞に、ラットβ１サブユニットを発現するプラスミドまたはｐＣＤＮＡ３空プラスミドをトランスフェクトし、その後直ちに０、１０ｎＭ、１００ｎＭまたは１０００ｎＭのウアバインで処理した。２４時間後、ウェスタンブロットを行った。 ＭＲＣＫαがβ１サブユニットと相互作用してタイトジャンクションを安定化させることを示す一連の写真と図である。（図４Ａ）ＭＲＣＫαとβ１サブユニットとの相互作用が、共免疫沈降の使用により確認された。全細胞ライセートの５％をインプットに使用した。β２またはβ３サブユニットは、ＭＲＣＫαと共免疫沈降しなかった。（図４Ｂ）ＡＴＩ細胞におけるβ１サブユニットとＭＲＣＫαとの共染色。スケールバー：２０μｍ。（図４Ｃ）ＡＴＩ細胞に、スクランブルｓｉＲＮＡ（ｓｉＳｃｒａｍｂｌｅ）またはＭＲＣＫαに対するｓｉＲＮＡ（ｓｉＭＲＣＫα）をトランスフェクトした。２４時間後、免疫ブロット分析のために細胞を溶解した。（図４Ｄ）（Ｃ）のウェスタンブロットのデンシトメトリー。 β１を介した肺胞バリアの緊密性にはＭＲＣＫαが必要であったことを示す一連の図および写真である。（図５Ａ）単離の２４時間後、ＡＴＩＩ細胞にｓｉＲＮＡ（スクランブル対照またはＭＲＣＫαに対する）およびプラスミド（ＣＭＶ－ｔｅｔおよびＴｅｔ－β１）をコトランスフェクトした。２日目に、１μｇ／μｌのｄｏｘを加えて遺伝子発現を誘導した。次いで、３日目から５日目まで２４時間ごとにＴＥＥＲを測定した。（図５Ｂ）単離の２４時間後、ＡＴＩＩ細胞にプラスミド（ＣＭＶ－ｔｅｔおよびＴｅｔ－β１）をコトランスフェクトし、２μＭのＭＲＣＫα阻害剤ＢＤＰ５２９０で直ちに処理した。２４時間後にＴＥＥＲを測定した。統計分析は、二元配置ＡＮＯＶＡを使用して行った。＊ｐ＜０．０５、＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１。（図５Ｃ）ルシフェラーゼ、β１およびｓｉＳｃｒａｍｂｌｅ、またはβ１およびｓｉＭＲＣＫαをトランスフェクトした後、４８時間ドキシサイクリンで処理したまたはドキシサイクリンなしで処理した細胞におけるｚｏ－１の免疫蛍光染色。画像は３つの別々の実験を表している。スケールバー：１００ｕｍ。 ＭＲＣＫαの過剰発現が上皮バリア機能を高めたことを示す一連の図および写真である。（図６Ａ）単離の１日後に、ＡＴＩＩ細胞に空のプラスミドまたはＭＲＣＫαをトランスフェクトした。次いで、２４時間間隔でＴＥＥＲを測定した。統計分析は、二元配置ＡＮＯＶＡを使用して行った。Ｎ＝６、＊＊＊＊ｐ＜０．０００１。（図６Ｂ）トランスフェクションの４８時間後のオクルディンおよびｚｏ－１の免疫蛍光染色。データは３つの独立した実験の代表である。スケールバー：７０ｕｍ。 β１サブユニットの過剰発現によりＭＲＣＫα下流経路が活性化されたことを示す一連の図および写真である。（図７Ａ）単離後３日目に、ラットβ１サブユニットを発現するプラスミドまたは対照としてのｐＣＤＮＡ３空プラスミドを細胞にエレクトロポレーションした。２４時間後、ウェスタンブロットのために細胞を溶解した。（図７Ｂ）単離後１日目に、ｐＣＭＶ－ｔｅｔおよびｐＴｅｔ－β１を細胞にコトランスフェクトし、２０μＭのブレビスタチンまたは対照としてのＤＭＳＯで処理した。さらに２４時間後、１μｇ／ｍｌのドキシサイクリンを加えて遺伝子発現を誘導した。２４時間後にＴＥＥＲを測定した。＊＊＊ｐ＜０．００１。（図７Ｃ）ＡＴＩ細胞に、ラットβ１サブユニットを発現するプラスミドまたはｐＣＤＮＡ３空プラスミドをトランスフェクトし、その後直ちに最終濃度０、１ｕＭ、１０ｕＭまたは１００ｕＭのブレビスタチンで処理した。オクルディンのウェスタンブロットを２４時間後に行った。 ヒトＡＲＤＳ患者の肺胞上皮におけるＭＲＣＫαレベルの低下を示す一連の写真および図である。（図８Ａ）対照ドナーおよびＡＲＤＳ患者におけるＭＲＣＫαについての肺切片の免疫蛍光法の代表的な画像（緑色）。上のパネルは、２０倍の対物レンズ倍率で撮影された画像を示し、下のパネルは、上部のパネルの四角で囲まれた領域の６３倍の対物レンズ倍率で撮影された画像を示す。（図８Ｂ）肺胞におけるＭＲＣＫα発現の定量化。ＲＯＩ（関心領域）を肺胞領域内に描画し、ＭＲＣＫおよびＤＡＰＩの統合ピクセル強度の比率を各ＲＯＩについて計算した。合計３人の正常ドナーおよび５人のＡＲＤＳ患者が定量化に使用され、各サンプルについて３つのランダムフィールドが選択された。データは平均値±標準偏差として表され、正常対照はＮ＝９、ＡＲＤＳはＮ＝１５、両側ｔ検定、＊＊＊＊ｐ＜０．０００１である。（図８Ｃ）β１サブユニットの作業モデルは、肺胞上皮バリアの完全性を増加させる。Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼのβ１サブユニットはＭＲＣＫαと相互作用し、その活性化を助け、より高いミオシンリン酸化をもたらし、最終的にはタイトジャンクションを安定化させる。 ＡＴＩＩ細胞からＡＴＩ細胞への分化の特徴を示す一連の図および写真である。（図９Ａ）ＡＴＩ細胞を、２０ｍｇ／ｍｌのフィブロネクチンコーティングまたは対照としてのＰＢＳを有する１２ウェルトランスウェルプレート上で培養した。ＴＥＥＲは、播種後２４時間ごとに測定する（各群でｎ＝４）。（図９Ｂ）４日目の後、細胞を固定し、オクルディンおよびｚｏ－１について染色した。画像は２０倍で撮影された。赤色：オクルディンまたはｚｏ－１。青色：ＤＡＰＩ。（図９Ｃ）単離後３日目、細胞がコンフルエントになり、ＡＴＩ表現型を表示したときに、１μｇ／ｍｌのＬＰＳを加え、２４時間後にＴＥＥＲを測定し、続いて（図９Ｄ）３ｋＤ ＦＩＴＣ－デキストランに対する透過性をアッセイした。＊＊ｐ＜０．０５、＊ｐ＜０．０１． 以下を示す一連の写真および図である：（図１０Ａ）ＡＴＩ細胞（単離後３日目）に、３００Ｖおよび２０ミリ秒の方形波を用いてＧＦＰプラスミドをエレクトロポレーションした。トランスフェクションの２４時間後、同じフィールドで細胞を位相差およびＧＦＰについて画像化した。代表的な３枚の画像が示された。スケールバー：７０ｍｍ。（図１０Ｂ）ＡＴＩＩ単離後３日目に、ラットβ１サブユニットを発現するプラスミドまたは対照としてのｐＣＤＮＡ３空プラスミドを細胞にエレクトロポレーションした。エレクトロポレーションの２４時間後、定量的ＰＣＲ分析のためにｍＲＮＡを採取した。 以下を示す一連の写真および図である：（図１１Ａ）１６ＨＢＥ１４ｏ－細胞に、エレクトロポレーションにより、ｐＣＭＶ－ｔｅｔ調節プラスミドおよびｐＴｅｔ３Ｇ－ヒトβ１サブユニット発現プラスミドをコトランスフェクトし、その後直ちに０、１、１０、１００、および１０００ｎｇ／ｍｌのドキシサイクリンを加えた。エレクトロポレーションの２４時間後、ウェスタンブロットのために細胞を溶解した。（図１１Ｂ）１６ＨＢＥ１４ｏ－細胞に、エレクトロポレーションにより、ｐＣＭＶ－ｔｅｔプラスミドおよびｔｅｔ－ルシファーゼプラスミドをコトランスフェクトした。トランスフェクション後、細胞を１μｇ／ｍｌのドキシサイクリンまたは対照としてのＨ２Ｏで処理した。細胞をレポーター溶解バッファーで１日置きに溶解し、発光を測定した。ＲＬＵ：相対発光単位。 質量分析で検出されたＭＲＣＫαの配列断片（配列番号２）を示す（下線部）。 ヒトＡＲＤＳ患者の肺切片におけるＭＲＣＫαレベルの低下を示す一連の写真である。（図１３Ａ）。３人の正常な対照ドナーおよび６人のＡＲＤＳ患者の切片からのＭＲＣＫαの染色。強度の定量化のために、各患者につき３つのランダムなフィールドを選択した。ＡＲＤＳ患者５番からの画像は、バックグラウンド信号が高いため、分析から除外された。（図１３Ｂ）。対照ドナーからのわずかなＭＲＣＫαとオクルディンとの共染色。（図１３Ｃ）対照ドナーおよびＡＲＤＳ患者の気道におけるＭＲＣＫαの代表的な染色。 インビボでのＭＲＣＫαの役割を示す一連の図である。雄のＣ５７ｂｌａｃｋ６マウス（ｎ＝６）を気管内投与によりＬＰＳ（５ｍｇ／ｋｇ）で損傷させ、１日後、示されるように、経胸壁エレクトロポレーションによりＤＮＡ（１００μｇの５０μｌ ＰＢＳ）を肺に送達した。マウスに、タンパク質を発現しないプラスミド（ｐｃＤＮＡ３）、Ｎａ＋／Ｋ－ＡＴＰアーゼβ１サブユニット、ＭＲＣＫα、またはＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットとＭＲＣＫαプラスミドとの組み合わせを投与した。ＬＰＳもＤＮＡも投与しない一連のナイーブマウスも使用した。ＤＮＡ送達の２日後、（図１４Ａ）肺水腫の重量測定分析（湿潤乾燥比）および（図１４Ｂ）気腔における浸潤免疫細胞の測定のための気管支肺胞洗浄液（ＢＡＬ）の採取のために肺を摘出した。統計分析は二元配置ＡＮＯＶＡによるものであり、ｐ値は図に示される。 β１サブユニットの上位１５個の相互作用タンパク質を示す表である。 文献から既知のβ１相互作用タンパク質を示す表である。 ＬＰＳ損傷肺をＭＲＣＫαで処理すると肺水腫が軽減したことを示す図である。ＬＰＳ（５ｍｇ／ｋｇ）をマウスに吸引投与し、１日後、５０μｌ中の１００μｇのプラスミドをエレクトロポレーションにより肺に送達した。２日後、重量分析のために肺を摘出した。湿潤乾燥比は、平均±ＳＥＭ（ｎ＝１１～１３）として示される。統計分析は、二元配置ＡＮＯＶＡによるものであった。ｐＣＤＮＡ３と比較して＊Ｐ＜０．０５または＊＊＊Ｐ＜０．００１。 ＬＰＳ損傷肺をＭＲＣＫαで処理すると肺損傷が軽減することを示す一連の写真である。ＬＰＳ（５ｍｇ／ｋｇ）をマウスに吸引投与し、１日後、５０μｌ中の１００μｇのプラスミドをエレクトロポレーションにより肺に送達した（ｎ＝６）。２日後、肺を摘出し、ホルマリンで膨張固定し、パラフィンに包埋して切片化した。ヘマトキシリンおよびエオシン染色を用いて組織学的特徴を比較した。代表的な画像を示す。 ＬＰＳ損傷肺をＭＲＣＫαで処理すると、ＢＡＬＦのＰＭＮが減少することを示す一連の写真および図である。ＬＰＳ（５ｍｇ／ｋｇ）をマウスに吸引投与し、１日後、５０μｌ中の１００μｇのプラスミドをエレクトロポレーションにより肺に送達した（ｎ＝６）。２日後、マウスからＢＡＬＦを採取し、細胞を数え（図１９Ｂ）、サイトスピンによる示差的染色（図１９Ａ）を使用して、浸潤しているＰＭＮの数を定量化した（図１９Ｃ）。統計分析は、二元配置ＡＮＯＶＡによるものであった。ｐＣＤＮＡ３と比較して＊＊Ｐ＜０．０１または＊＊Ｐ＜０．００１。 ＬＰＳ損傷肺をＭＲＣＫαで処理すると、タイトジャンクション構成タンパク質のレベルが増加することを示す一連の写真である。ＬＰＳ（５ｍｇ／ｋｇ）をマウスに吸引投与し、１日後、５０μｌ中の１００μｇのプラスミドまたは生理食塩水のみをエレクトロポレーションにより肺に送達した（ｎ＝６）。別の群の動物には、追加の投与またはエレクトロポレーションを一切行わずにＬＰＳのみを投与した。２日後、オクルディンおよびＺＯ－１レベルのウェスタンブロット分析のために肺を摘出した。 ＬＰＳ損傷肺をＭＲＣＫαで処理するとＬＰＳによって誘発される肺漏出が軽減することを示す図である。マウスを気管内ＬＰＳ（５ｍｇ／ｋｇ）で処理し、１日後、示されたプラスミドをエレクトロポレーションした。肺の透過性は、血液から気道へのエバンスブルー色素（ＥＢＤ）の漏出によって測定した。遺伝子導入の４７時間後、尾静脈注射によりＥＢＤ（３０ｍｇ／ｋｇ）を投与した。１時間後、肺を灌流して血管系のＥＢＤを除去した。灌流肺から抽出されたＥＢＤを、６２０ｎｍおよび７４０ｎｍで測定することにより定量化し、平均±ＳＥＭ（ｎ＝７－１１）として示した。統計分析は、二元配置ＡＮＯＶＡによるものであった。 マウスの肺において、ＭＲＣＫαの過剰発現が肺胞液クリアランスに影響を及ぼさなかったことを示す図である。５０μｌ中の１００μｇのプラスミドを、吸引およびエレクトロポレーションによりマウスの肺に投与した。２日後、生きているマウスにおいてＡＦＣを測定し、３０分で排出された総注入量のパーセンテージとして示した。プロカテロール（エバンスブルー色素注入液中１０－８Ｍ）を、陽性対照として導入遺伝子を投与していないマウスの１つのコホートに加えた。統計分析は、一元配置ＡＮＯＶＡ（平均±ＳＥＭ；ｎ＝６－７）により行った。
本発明は、少なくとも一部、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットが肺胞タイトジャンクションを調節するシグナル伝達経路の予想外の発見に基づいている。内皮と上皮の両方がタイトジャンクションを形成するため、本発明は、上皮または内皮バリア機能を改善し、特定の肺障害または肺疾患等の関連疾患を治療するのに有用である。
無傷の上皮バリアは、肺機能およびホメオスタシスに不可欠である。バリアの破壊は、最大４０％の死亡率を伴う致命的な肺病態であるＡＲＤＳ等の深刻な病気を引き起こす可能性がある。Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ（ＮＫＡ）は、全ての哺乳動物細胞で発現するイオンポンプであり、肺バリアの完全性に影響を与えることにより、ＡＲＤＳの病原性において重要な役割を果たすことが示されている。しかしながら、その根底にある機構は未知である。ここでは、遺伝的、薬理学的、およびタンデム質量分析のアプローチにより、ＮＫＡ β１サブユニットが、アクチン細胞骨格を調節するプロテインキナーゼであるＭＲＣＫαを必要とするポンプ非依存機構において肺胞上皮タイトジャンクションを増強することが実証された。ＭＲＣＫαと相互作用することにより、β１サブユニットはミオシン軽鎖の活性化を増加させ、タイトジャンクションの発現を安定化させる。この効果は、β１サブユニットに特異的であるが、β２またはβ３アイソフォームには特異的ではない。重要なことに、ＡＲＤＳ患者では肺胞および小気道におけるＭＲＣＫαの発現が大幅に減少する。総合すると、本明細書に開示されるデータは、ＮＫＡ β１サブユニットによる肺胞バリア緊密性の分子経路を解明し、ＡＲＤＳおよび他のバリア関連ヒト疾患の新しい治療法を開発する道を開いた。
肺胞上皮／内皮バリアおよびＭＲＣＫα
肺胞上皮バリアは、肺胞上皮Ｉ型細胞（ＡＴＩ）および肺胞ＩＩ型細胞（ＡＴＩＩ）からなる。両方の細胞型で発現するタイトジャンクションは、組織の完全性を調整し、通常の状態では、ほとんどのイオン、溶質、およびタンパク質の自由な通過を制限するが、ＡＲＤＳ等の疾患では漏出しやすくなる（５、６）。タイトジャンクションは、膜貫通タンパク質（オクルディン、クローディン、およびＪＡＭ）、足場タンパク質（ｚｏ－１、ｚｏ－２、ｚｏ－３、シングリン等）、およびシグナル伝達タンパク質（ＲｈｏファミリーＧＴＰアーゼ、キナーゼ、ホスファターゼ）を含む大きなタンパク質ファミリーからなる（７）。タイトジャンクションがどのように破壊するかについての現在の知識と比較して、特に肺上皮組織において、その発現および機能を回復するための経路についてはほとんど記述されていない。
強固なバリア機能に加えて、肺胞上皮バリアのもう１つの重要な特性は、体液バランスである。ＡＴＩとＡＴＩＩの両方で発現するイオンチャネルおよびトランスポーターは、上皮バリアを通過するベクトルイオン輸送によって肺液のバランスを維持する。その中でも、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼが最も重要である。Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼは、触媒αサブユニットおよび非触媒βサブユニットのヘテロ二量体であり、αサブユニットの成熟および膜ターゲティングを促進する。ＡＲＤＳでは、両方のサブユニットの発現が低下するか、側底膜へのターゲティングが中断される可能性があり、これが肺浮腫の発症につながる（８－１１）。
イオン輸送の回復および肺浮腫の軽減を目的として、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼの直接遺伝子送達を介してその発現を増強する研究が行われた（１２－１８）。驚くべきことに、タイトジャンクション構成タンパク質の発現の増加および肺胞バリア透過性の低下によって示されるように、非触媒β１サブユニットが肺胞上皮バリアに保護を付与することがわかった（１３，１８）。しかしながら、その根底にある分子機構は未知である。
本明細書に開示されるように、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットが肺胞タイトジャンクションを調節するシグナル伝達経路を解明するための研究が行われた。Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼのバリア増強効果は、β１サブユニットに特異的であり、イオン輸送活性に依存しないと考えられることが最初に証明された。質量分析を使用して、β１サブユニットの多くの新しい相互作用パートナーが同定された。
その中には、セリン／スレオニンプロテインキナーゼであるＭＲＣＫαがある。機能喪失、化学的阻害、および機能獲得実験を使用して、β１サブユニットがＭＲＣＫαに結合して活性化し、それによって非筋肉ミオシンＩＩをリン酸化し、タイトジャンクション発現を増加させる新規分子経路が明らかになった。興味深いことに、ＡＲＤＳ患者ではＭＲＣＫαのタンパク質発現が大幅に減少する。総合すると、本発明は、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼから肺胞上皮タイトジャンクションへの新しい分子経路を特定した。この経路を標的とすることは、ＡＲＤＳを治療するための新しい治療戦略を提供する。以下のリストは、ＭＲＣＫα（ＣＤＣ４２ＢＰＡとしても知られる）のオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ；配列番号：１）のｃＤＮＡ配列およびアミノ酸配列（配列番号：２）である。
配列番号１
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配列番号：２：（１７３２ ａａ）
ＭＳＧＥＶＲＬＲＱＬＥＱＦＩＬＤＧＰＡＱＴＮＧＱＣＦＳＶＥＴＬＬＤＩＬＩＣＬＹＤＥＣＮＮＳＰＬＲＲＥＫＮＩＬＥＹＬＥＷＡＫＰＦＴＳＫＶＫＱＭＲＬＨＲＥＤＦＥＩＬＫＶＩＧＲＧＡＦＧＥＶＡＶＶＫＬＫＮＡＤＫＶＦＡＭＫＩＬＮＫＷＥＭＬＫＲＡＥＴＡＣＦＲＥＥＲＤＶＬＶＮＧＤＮＫＷＩＴＴＬＨＹＡＦＱＤＤＮＮＬＹＬＶＭＤＹＹＶＧＧＤＬＬＴＬＬＳＫＦＥＤＲＬＰＥＤＭＡＲＦＹＬＡＥＭＶＩＡＩＤＳＶＨＱＬＨＹＶＨＲＤＩＫＰＤＮＩＬＭＤＭＮＧＨＩＲＬＡＤＦＧＳＣＬＫＬＭＥＤＧＴＶＱＳＳＶＡＶＧＴＰＤＹＩＳＰＥＩＬＱＡＭＥＤＧＫＧＲＹＧＰＥＣＤＷＷＳＬＧＶＣＭＹＥＭＬＹＧＥＴＰＦＹＡＥＳＬＶＥＴＹＧＫＩＭＮＨＫＥＲＦＱＦＰＡＱＶＴＤＶＳＥＮＡＫＤＬＩＲＲＬＩＣＳＲＥＨＲＬＧＱＮＧＩＥＤＦＫＫＨＰＦＦＳＧＩＤＷＤＮＩＲＮＣＥＡＰＹＩＰＥＶＳＳＰＴＤＴＳＮＦＤＶＤＤＤＣＬＫＮＳＥＴＭＰＰＰＴＨＴＡＦＳＧＨＨＬＰＦＶＧＦＴＹＴＳＳＣＶＬＳＤＲＳＣＬＲＶＴＡＧＰＴＳＬＤＬＤＶＮＶＱＲＴＬＤＮＮＬＡＴＥＡＹＥＲＲＩＫＲＬＥＱＥＫＬＥＬＳＲＫＬＱＥＳＴＱＴＶＱＡＬＱＹＳＴＶＤＧＰＬＴＡＳＫＤＬＥＩＫＮＬＫＥＥＩＥＫＬＲＫＱＶＴＥＳＳＨＬＥＱＱＬＥＥＡＮＡＶＲＱＥＬＤＤＡＦＲＱＩＫＡＹＥＫＱＩＫＴＬＱＱＥＲＥＤＬＮＫＥＬＶＱＡＳＥＲＬＫＮＱＳＫＥＬＫＤＡＨＣＱＲＫＬＡＭＱＥＦＭＥＩＮＥＲＬＴＥＬＨＴＱＫＱＫＬＡＲＨＶＲＤＫＥＥＥＶＤＬＶＭＱＫＶＥＳＬＲＱＥＬＲＲＴＥＲＡＫＫＥＬＥＶＨＴＥＡＬＡＡＥＡＳＫＤＲＫＬＲＥＱＳＥＨＹＳＫＱＬＥＮＥＬＥＧＬＫＱＫＱＩＳＹＳＰＧＶＣＳＩＥＨＱＱＥＩＴＫＬＫＴＤＬＥＫＫＳＩＦＹＥＥＥＬＳＫＲＥＧＩＨＡＮＥＩＫＮＬＫＫＥＬＨＤＳＥＧＱＱＬＡＬＮＫＥＩＭＩＬＫＤＫＬＥＫＴＲＲＥＳＱＳＥＲＥＥＦＥＳＥＦＫＱＱＹＥＲＥＫＶＬＬＴＥＥＮＫＫＬＴＳＥＬＤＫＬＴＴＬＹＥＮＬＳＩＨＮＱＱＬＥＥＥＶＫＤＬＡＤＫＫＥＳＶＡＨＷＥＡＱＩＴＥＩＩＱＷＶＳＤＥＫＤＡＲＧＹＬＱＡＬＡＳＫＭＴＥＥＬＥＡＬＲＮＳＳＬＧＴＲＡＴＤＭＰＷＫＭＲＲＦＡＫＬＤＭＳＡＲＬＥＬＱＳＡＬＤＡＥＩＲＡＫＱＡＩＱＥＥＬＮＫＶＫＡＳＮＩＩＴＥＣＫＬＫＤＳＥＫＫＮＬＥＬＬＳＥＩＥＱＬＩＫＤＴＥＥＬＲＳＥＫＧＩＥＨＱＤＳＱＨＳＦＬＡＦＬＮＴＰＴＤＡＬＤＱＦＥＲＳＰＳＣＴＰＡＳＫＧＲＲＴＶＤＳＴＰＬＳＶＨＴＰＴＬＲＫＫＧＣＰＧＳＴＧＦＰＰＫＲＫＴＨＱＦＦＶＫＳＦＴＴＰＴＫＣＨＱＣＴＳＬＭＶＧＬＩＲＱＧＣＳＣＥＶＣＧＦＳＣＨＩＴＣＶＮＫＡＰＴＴＣＰＶＰＰＥＱＴＫＧＰＬＧＩＤＰＱＫＧＩＧＴＡＹＥＧＨＶＲＩＰＫＰＡＧＶＫＫＧＷＱＲＡＬＡＩＶＣＤＦＫＬＦＬＹＤＩＡＥＧＫＡＳＱＰＳＶＶＩＳＱＶＩＤＭＲＤＥＥＦＳＶＳＳＶＬＡＳＤＶＩＨＡＳＲＫＤＩＰＣＩＦＲＶＴＡＳＱＬＳＡＳＮＮＫＣＳＩＬＭＬＡＤＴＥＮＥＫＮＫＷＶＧＶＬＳＥＬＨＫＩＬＫＫＮＫＦＲＤＲＳＶＹＶＰＫＥＡＹＤＳＴＬＰＬＩＫＴＴＱＡＡＡＩＩＤＨＥＲＩＡＬＧＮＥＥＧＬＦＶＶＨＶＴＫＤＥＩＩＲＶＧＤＮＫＫＩＨＱＩＥＬＩＰＮＤＱＬＶＡＶＩＳＧＲＮＲＨＶＲＬＦＰＭＳＡＬＤＧＲＥＴＤＦＹＫＬＳＥＴＫＧＣＱＴＶＴＳＧＫＶＲＨＧＡＬＴＣＬＣＶＡＭＫＲＱＶＬＣＹＥＬＦＱＳＫＴＲＨＲＫＦＫＥＩＱＶＰＹＮＶＱＷＭＡＩＦＳＥＱＬＣＶＧＦＱＳＧＦＬＲＹＰＬＮＧＥＧＮＰＹＳＭＬＨＳＮＤＨＴＬＳＦＩＡＨＱＰＭＤＡＩＣＡＶＥＩＳＳＫＥＹＬＬＣＦＮＳＩＧＩＹＴＤＣＱＧＲＲＳＲＱＱＥＬＭＷＰＡＮＰＳＳＣＣＹＮＡＰＹＬＳＶＹＳＥＮＡＶＤＩＦＤＶＮＳＭＥＷＩＱＴＬＰＬＫＫＶＲＰＬＮＮＥＧＳＬＮＬＬＧＬＥＴＩＲＬＩＹＦＫＮＫＭＡＥＧＤＥＬＶＶＰＥＴＳＤＮＳＲＫＱＭＶＲＮＩＮＮＫＲＲＹＳＦＲＶＰＥＥＥＲＭＱＱＲＲＥＭＬＲＤＰＥＭＲＮＫＬＩＳＮＰＴＮＦＮＨＩＡＨＭＧＰＧＤＧＩＱＩＬＫＤＬＰＭＮＰＲＰＱＥＳＲＴＶＦＳＧＳＶＳＩＰＳＩＴＫＳＲＰＥＰＧＲＳＭＳＡＳＳＧＬＳＡＲＳＳＡＱＮＧＳＡＬＫＲＥＦＳＧＧＳＹＳＡＫＲＱＰＭＰＳＰＳＥＧＳＬＳＳＧＧＭＤＱＧＳＤＡＰＡＲＤＦＤＧＥＤＳＤＳＰＲＨＳＴＡＳＮＳＳＮＬＳＳＰＰＳＰＡＳＰＲＫＴＫＳＬＳＬＥＳＴＤＲＧＳＷＤＰ
以下のリストはＮＫＡ β１のアミノ酸配列（配列番号３、３０３ ａａ）
ＭＡＲＧＫＡＫＥＥＧＳＷＫＫＦＩＷＮＳＥＫＫＥＦＬＧＲＴＧＧＳＷＦＫＩＬＬＦＹＶＩＦＹＧＣＬＡＧＩＦＩＧＴＩＱＶＭＬＬＴＩＳＥＦＫＰＴＹＱＤＲＶＡＰＰＧＬＴＱＩＰＱＩＱＫＴＥＩＳＦＲＰＮＤＰＫＳＹＥＡＹＶＬＮＩＶＲＦＬＥＫＹＫＤＳＡＱＲＤＤＭＩＦＥＤＣＧＤＶＰＳＥＰＫＥＲＧＤＦＮＨＥＲＧＥＲＫＶＣＲＦＫＬＥＷＬＧＮＣＳＧＬＮＤＥＴＹＧＹＫＥＧＫＰＣＩＩＩＫＬＮＲＶＬＧＦＫＰＫＰＰＫＮＥＳＬＥＴＹＰＶＭＫＹＮＰＮＶＬＰＶＱＣＴＧＫＲＤＥＤＫＤＫＶＧＮＶＥＹＦＧＬＧＮＳＰＧＦＰＬＱＹＹＰＹＹＧＫＬＬＱＰＫＹＬＱＰＬＬＡＶＱＦＴＮＬＴＭＤＴＥＩＲＩＥＣＫＡＹＧＥＮＩＧＹＳＥＫＤＲＦＱＧＲＦＤＶＫＩＥＶＫＳ
タイトジャンクションの完全性または機能の改善
Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼは、細胞からＮａ＋を移動させ、Ｋ＋を取り込むその輸送活性でよく知られている。本明細書における結果により、この酵素の新しい機能が特定された。具体的には、小さな非触媒β１サブユニットが、タンパク質相互作用およびタンパク質キナーゼＭＲＣＫαの活性化を含む輸送非依存機構を通じて、肺胞上皮バリアの完全性を促進することがわかった（図８Ｃ）。ｓｉＲＮＡまたは薬理学的阻害剤のいずれかを使用したＭＲＣＫαの阻害は、オクルディンのアップレギュレーション、およびβ１サブユニットの過剰発現によって誘導されるＴＥＥＲの増加を防ぎ、一方で、バリア機能を増強するにはＭＲＣＫαの過剰発現のみで十分であった。ＭＲＣＫαの活性化と一致して、β１サブユニットの過剰発現は、Ｓｅｒ１９でのミオシン軽鎖キナーゼのリン酸化を増加させた（３２）。ミオシンＩＩ ＡＴＰアーゼ活性の特異的阻害剤であるブレビスタチンは、β１サブユニットの過剰発現によるＴＥＥＲの増加を抑制した。総合すると、これらのデータは、β１サブユニットがＭＲＣＫα活性化およびミオシン－アクチン活性を制御することによって上皮タイトジャンクション機能を増加させることを示している。
シグナル伝達経路を解読するための調査中に、本発明は、遺伝子発現の効率的かつ用量依存的な誘導を可能にするＡＴＩ様細胞を使用して、肺胞上皮バリアの細胞モデルを確立した。このモデルを使用して、タイトジャンクションのアップレギュレーション、電気抵抗の増加、および蛍光トレーサーに対する透過性の低下によって示されるように、β１サブユニットの過剰発現がバリアの完全性の改善をもたらすことが実証された。今日まで、これは、β１サブユニットが肺の上皮細胞バリア機能を増強することを裏付ける最初の直接的な証拠である。この研究は、マウスおよびブタにおける既存のデータを補足し（１６、１８、４５）、ヒトの臨床用途にＡＲＤＳ遺伝子治療アプローチを適用するための機構的基礎を提供する。ここで確立された細胞モデルは、喘息等のバリア欠陥を特徴とする他の肺疾患の研究に使用することができる。注目すべきことに、エレクトロポレーションを使用して、ヌクレオフェクションを使用した以前の研究に匹敵する高いトランスフェクション効率が達成された（４６）。テトラサイクリン誘導性プラスミドと組み合わせることで、本発明は、たとえ細胞が播種されて、既に緊密な単層を形成した後でも、時間依存性および用量依存性の遺伝子発現を達成することができた。これにより、異なるプラスミドのトランスフェクション中に発生する実験的変動が減少し、それ自体がタイトジャンクション構成タンパク質の発現または局在を調節することが示されているウイルスベクターを使用せずに、遺伝的摂動に応答するバリア機能の測定が可能になる（４７）。
本明細書に開示されるデータは、β１サブユニットが、ＡＴＩにおいてタイトジャンクションを特異的にアップレギュレートするが、ＡＴＩＩではそうではないことを示唆している。この細胞型の特異性は、さらなる調査を正当化する。１つの可能性は、タイトジャンクションの再利用にはカベオリンを介したエンドサイトーシスが必要であるため、ＡＴＩＩには存在しないがＡＴＩにはカベオラが存在することによるものである（４２、４８）。別の可能性は、これらの細胞型におけるＭＲＣＫαレベルの不均衡によるものである。ここでのデータは、β１がＭＲＣＫαとの相互作用によってバリアの完全性を改善することを示唆している。したがって、ＡＴＩＩよりもＡＴＩにおけるＭＲＣＫαの発現が高いことは、β１の過剰発現時のタイトジャンクションの変化の違いを説明し得る。肺切片におけるＭＲＣＫαとＡＴＩおよびＡＴＩＩのマーカーとの共染色は、この仮説を検証することが期待される。
本明細書に開示されるデータは、ウアバイン処理によって示されるようなイオン輸送活性がβ１を介したタイトジャンクションのアップレギュレーションに必要ではないことを示唆している。ウアバインは、その濃度に応じて、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼに対して様々な機能を有する。低濃度（２０ｎＭ未満）では、ウアバインは、細胞間のＮａ＋およびＫ＋レベルを変化させるのに十分な酵素を阻害するには不十分であるが、シグナル伝達によって増殖および遺伝子発現等の多くの生物学的プロセスに影響を与える（４９）。対照的に、より高い濃度（１００ｎＭ超）では、ウアバインは、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼα１サブユニットの内在化およびリソソーム分解を誘導することによりポンプ活性を阻害する（５０）。ここで、低濃度および高濃度のウアバインで処理したＡＴＩ細胞からのデータは、輸送活性だけでは、β１の過剰発現によって引き起こされるタイトジャンクションの過剰発現の増加を説明できないことを示した。タイトジャンクションのイオン非依存性調節は、全てがα１サブユニットと機能的複合体を形成することができる異なる形態のβサブユニットアイソフォームを使用することによりさらに確認された。β１のみがオクルディンおよびｚｏ－１をアップレギュレートするという発見は、β１サブユニットが他の２つのアイソフォームとは別の独自のシグナル伝達機能を有することを示すものである。驚くべきことに、β２サブユニットではなく、β３サブユニットの過剰発現により、２４時間後にβ１タンパク質レベルが低下し、結果としてオクルディンおよびｚｏ－１レベルが低下した。β３を過剰発現するこの効果は、β１をノックダウンする効果を模倣し、タイトジャンクションのアップレギュレーションにポンプ活性は必要ないという発明者の仮説をさらに支持するものである。β２サブユニットではなく、β１サブユニットとβ３サブユニットとの間のこのような競合機構が文献で報告されていることは言及する価値がある（５１）。β１ノックアウトマウスは高いβ３サブユニット発現を示したが（５２）、マウスにおけるβ２サブユニットの過剰発現はβ１サブユニットレベルを低下させなかった（５３）。ＬＰＳ誘発性肺損傷の治療における３つのサブユニットの効果を比較する実験は、本明細書に開示される結果をさらに裏付けるであろう。本明細書に開示されるデータを考慮すると、ＬＰＳ誘発性肺損傷を有するマウスへのβ１サブユニットの遺伝子導入は、損傷の重症度を軽減することが予測できる。β２サブユニットの同様の導入は、いずれの考えられる効果も有しないであろう。β３サブユニットの同様の導入は、損傷を悪化させる可能性さえある。
結果は、β１サブユニットを介したタイトジャンクションのアップレギュレーションが、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼのイオン輸送活性とは無関係のプロセスであることを示している。これは、αサブユニットまたは上皮性ナトリウムチャネルではなく、β１サブユニットのみが、肺透過性を低下させ、既存のＡＲＤＳを有するマウスを治療するという、発明者の研究室（１５、１６、１８）および他の研究者（１２－１４、６１）による以前の知見と一致する。重要なことに、β２またはβ３サブユニットの過剰発現もまたイオン輸送活性の増加をもたらすはずであるが、タイトジャンクションは誘導しないため、タイトジャンクションのアップレギュレーションは、β２またはβ３アイソフォームではなく、β１サブユニットだけに限定されているという今回の発見は、この結論をさらに裏付けるものである。
イオン輸送活性の測定（輸送に依存するＡＴＰ加水分解（６２）または８６Ｒｂ＋の取り込みによる）により、β２またはβ３サブユニットがα１β２またはα１β３複合体を形成できなかった可能性、または、これらの２つの複合体が、α１β１と比較して低いイオン輸送活性を有していた可能性を排除することができる。しかしながら、β２およびβ３サブユニットがα１サブユニットと機能的複合体を形成することが示されており（６３，６４）、また実際に、α１β２複合体はα１β１複合体よりもさらに高い輸送活性を有することが報告されているため（６５）、どちらの可能性も低い。β１およびβ２のキメラ（β１のＮ末端細胞質ドメインまたはＣ末端細胞外ドメインのいずれかを、対応するβ２配列で置き換える）もまた、β１を介したタイトジャンクションのアップレギュレーションはその輸送活性に依存しないが、特定のアミノ酸配列を必要とすることの正当性をさらに立証する。
ここに提示された結果により、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼα１サブユニット、ＥＲタンパク質ウォルフラミン（５４）、コートマーサブユニットβ（５５）、および致死性巨大幼虫タンパク質（５６）を含む、β１サブユニットのいくつかの既知のタンパク質相互作用が確認された。β１サブユニットと相互作用すると以前に報告されたいくつかのタンパク質は（５７－６０）、本明細書に開示される分析では検出されないが、それはおそらく、それらのタンパク質が神経系において主に発現し、肺での発現が低いためである。さらに重要なことに、多くの新しい結合パートナーが同定された。今日まで、これはβ１サブユニット相互作用ネットワークの最初のプロテオミクス解析である。多くの内在性膜タンパク質のインタラクトームは、それらの疎水性、低発現、およびそれらの膜貫通セグメントにおけるトリプシン切断部位の欠如のために、未知のままであるか、または十分に特徴付けられていない（６６、６７）。本発明は、β１サブユニットのタンパク質相互作用の知識を大幅に深めた。この研究から同定されたタンパク質パートナーは、さらなる実験によって確認することができ、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼの活性および細胞機能に関する重要な情報を提供する。
マウス胚へのｓｉＲＮＡ注入を用いた以前の研究では、おそらくはアクチン細胞骨格の調節を介して、タイトジャンクションの適切な分布にはβ１サブユニットが必要であることが提案された（３０）。ここに提示されたデータは、ＭＲＣＫαがこれらのプロセスに関与していると考えられることを示唆している。ＭＲＣＫαは、アクチン－ミオシン活性を調節することにより、細胞の移動、分極、およびジャンクション形成に関与する（３０、３３、６８）。ＭＲＣＫαの活性化は、β１サブユニットと相互作用することによって増加する。β１サブユニットとの会合は、ナトリウムカルシウム交換体１（６９）または皮質下嚢胞１を有する大脳白質脳症（５９）でβ１サブユニットに見られるのと同様に、ＭＲＣＫαの原形質膜局在を増加させる可能性がある。別の可能性は、ＭＲＣＫαとのβ１の会合が、分子内でキナーゼドメインと相互作用し、その活性を負に制御する２つの遠位ＣＣドメインに結合することにより、ＭＲＣＫαの自己阻害を無効にするということである（２８）。これらの２つの事象は同時に発生する場合もある。
本明細書に開示される結果からの１つの顕著な発見は、ＡＲＤＳ患者の肺がより少ない量のＭＲＣＫαを発現する傾向があるということである。ＡＲＤＳの遺伝的感受性は、これまでのところＭＲＣＫαと関連付けられていない。しかしながら、その下流の標的の１つであるミオシン軽鎖キナーゼは、ＡＲＤＳの罹患率および帰結に関連している（７０）。さらに、最近の研究により、ＭＲＣＫαがアポトーシス後の上皮における押し出しに関与していることが示唆された（７１）。上皮における押し出しは、層のバリア機能を維持しながら、死滅する細胞または不要な細胞が上皮から除去されるプロセスである（７２）。今日まで、肺におけるＭＲＣＫαの生理学的および病理学的役割を調査した研究はない。ＭＲＣＫαの減少が上皮における押し出しの欠陥をもたらし、それによって肺が最終的にＡＲＤＳにつながる損傷を受けやすくなるかどうかを調査することは非常に興味深いであろう。
ＡＲＤＳ患者の肺が有意に低い量のＭＲＣＫαを発現する理由は不明である。１つの可能性は、遺伝的原因（遺伝子コピー数の減少やエピジェネティックな修飾等）によるＭＲＣＫαの基本転写がより低いことである。別の可能性は、炎症等のＡＲＤＳの危険因子がＭＲＣＫαレベルをダウンレギュレートすることである。いずれにしても、ＭＲＣＫαは、ＡＲＤＳ、またはバリア欠陥を特徴とする他のヒト疾患を治療するための有用な薬物標的である。現在、ＭＲＣＫαの阻害剤のみが同定されている（３５，７３）。ＭＲＣＫαの活性化は、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニット上の相互作用ドメインに対応するペプチドを使用することによって達成され得る。このようなペプチドモジュレーターは、上皮バリア機能を増強するための有望な薬物でもあり、最終的にはＡＲＤＳの単純な薬理学的治療につながる可能性がある。
本明細書に開示されるデータは、タイトジャンクションの調節におけるＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットの輸送以外の役割を示した。本発明は、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼおよびＭＲＣＫαの理解を深め、遺伝子治療をヒトの臨床試験に進める上で価値のあるものである。したがって、本発明は、上皮または内皮バリアの完全性または機能を改善するための薬剤および方法を提供する。方法は、一般に、上皮または内皮バリアの１つまたは複数の細胞におけるＭＲＣＫαのレベルを増加させることを含む。方法は、ＮＫＡ β１のレベルを増加させることをさらに含む。特定の耐用において、本発明は、関連疾患を治療するための組成物および方法を提供する。
本発明は、上皮または内皮バリアの完全性または機能に関連する障害の危険性がある（または罹患しやすい）、または障害を有する対象を治療する予防的方法および治療的方法の両方を提供する。本発明の別の態様は、治療目的でＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１の発現または活性を調節する方法に関する。
したがって、例示的な実施形態において、本発明の調節方法は、細胞を、該細胞に関連するＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１活性の１つまたは複数の活性を調節する活性薬剤または活性化合物と接触させることを含む。
ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１活性を調節する活性化合物は、核酸もしくはタンパク質、ＭＲＣＫαタンパク質の天然に存在する標的分子（例えば、ＭＲＣＫαリガンドまたは基質）、ＭＲＣＫαアゴニストもしくはアンタゴニスト、ＭＲＣＫαアゴニストもしくはアンタゴニストのペプチド模倣物、または他の小分子等の本明細書に記載されるような薬剤であり得る。一実施形態において、活性化合物は、１つまたは複数のＭＲＣＫα活性を刺激する。そのような刺激活性化合物の例として、活性なＭＲＣＫαタンパク質、および細胞に導入されたＭＲＣＫαをコードする核酸分子が挙げられる。いくつかの実施形態において、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１活性を調節する活性化合物は、ＮＫＡ β１タンパク質もしくはポリペプチド、またはＮＫＡ β１をコードする核酸分子であり得る。
これらの調節方法は、インビトロで（例えば、細胞を活性化合物と共に培養することにより）、またはインビボで（例えば、活性化合物を対象に投与することにより）実施することができる。したがって、本発明は、ＭＲＣＫαタンパク質または核酸分子の異常または不十分な発現もしくは活性を特徴とする疾患または障害、例えば肺障害に苦しむ個体を治療する方法を提供する。一実施形態において、方法は、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１の発現または活性を調節する（例えば、アップレギュレートする）活性化合物、または活性化合物の組み合わせを投与することを含む。別の実施形態において、方法は、減少した、異常な、または望ましくないＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１の発現または活性を補完するための治療として、キメラＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１タンパク質または核酸分子を投与することを含む。
本発明はまた、正常な対立遺伝子を発現させるための遺伝子導入によるか、または精製されたＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１または組換えＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１またはＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１類似体を用いたタンパク質置換によるかにかかわらず、例えば肺障害の治療に有益な、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１の置換を提供する。肺疾患の病態は、急性肺損傷、ＡＲＤＳ、および喘息を含む。他の例として、特発性肺線維症（ＩＰＦ）、剥離性間質性肺炎（ＤＩＰ）、通常の間質性肺炎（ＵＩＰ）、非特異性間質性肺炎（ＮＳＩＰ）、ならびに嚢胞性線維症、気腫、肺線維症、気管支拡張症、および再発性感染症等の炎症性および遺伝性肺疾患を含む他の形態の肺疾患が挙げられる。
活性薬剤、例えば、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１遺伝子またはタンパク質は、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルコリンを含む界面活性剤様リン脂質を含む薬学的に有用な製剤のエアロゾルまたは吸入によって投与することができる。
遺伝子治療
上で概説したように、本発明の一態様は、上皮バリアの１つまたは複数の細胞におけるＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１のレベルを増加させることを含む、上皮または内皮バリアの完全性または機能を改善する方法を含む。本発明の他の態様は、それを必要とする対象の上皮または内皮バリアの１つまたは複数の細胞におけるＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１のレベルを増加させることを含む、上皮または内皮バリアの機能不全に関連する疾患または状態を治療する方法を含む。
一実施形態において、遺伝子治療によって、平滑筋、上皮細胞、および内皮細胞等の肺および気道の細胞にＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１機能を供給するための方法が提供される。ＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１遺伝子、改変されたＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１遺伝子、または該遺伝子の一部は、遺伝子が染色体外に残るようにベクターで細胞に導入され得るか、または発現のために対象の染色体ＤＮＡに組み込まれ得る。これらの方法は、そのような治療を必要とする対象に、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１遺伝子を過剰発現させるための、治療有効量のＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１遺伝子、またはそれらの薬学的に許容される組成物を投与することを提供する。
ＭＲＣＫαまたはＮＫＡ β１遺伝子または該遺伝子の一部は、対象の標的細胞のゲノムを構成する染色体ＤＮＡに組み込まれてもよいか（共有結合している）または組み込まれなくてもよい。遺伝子は、該遺伝子が染色体外に残るように細胞に導入することができる。そのような状況では、遺伝子は染色体外の位置から細胞によって発現されるであろう。細胞はまた、外因性ＤＮＡが染色体に組み込まれた場所で形質転換され、その結果、染色体複製によって娘細胞に受け継がれる。遺伝子は、染色体外の維持または宿主への組み込みのために適切なベクターに導入され得る。組換えおよび染色体外維持のための遺伝子を導入するためのベクターは当該技術分野で既知であり、任意の好適なベクターを使用することができる。エレクトロポレーション、リン酸カルシウム共沈およびウイルス形質導入等の細胞へのＤＮＡの導入方法は当該技術分野で既知であり、方法の選択は当業者の能力の範囲内である。
本明細書に記載されるような本発明の遺伝子は、ＲＮＡの形態またはＤＮＡの形態であり得るポリヌクレオチドまたは核酸であり、ＤＮＡには、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、および合成ＤＮＡが含まれる。ＤＮＡは二本鎖または一本鎖であり得、一本鎖である場合、コード鎖または非コード（アンチセンス）鎖であり得る。配列番号２によって識別される成熟ポリペプチドをコードするＭＲＣＫαポリヌクレオチドのコード配列は、配列番号１と同一でもまたは異なってもよい。しかしながら、遺伝暗号の冗長性または縮重の結果として、上記コード配列は同じ成熟ポリペプチドをコードする。
成熟ＭＲＣＫαまたはＮＫＡ β１ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドまたは核酸は以下を含み得る：成熟ポリペプチドのコード配列のみ、成熟ポリペプチドのコード配列および追加のコード配列、成熟ポリペプチドのコード配列（および任意選択的に追加のコード配列）、ならびに非コード配列、例えば、成熟ポリペプチドのコード配列のイントロンまたは非コード配列５’および／もしくは３’。
本発明のポリヌクレオチドまたは核酸組成物もしくは分子は、当業者には容易に理解されるように、ＲＮＡ、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、合成形態、ならびにセンス鎖およびアンチセンス鎖の両方の混合ポリマーを含むことができ、化学的もしくは生化学的に修飾されるか、または非天然もしくは誘導体化ヌクレオチド塩基を含み得る。そのような修飾は、例えば、標識、メチル化、類似体による天然に存在するヌクレオチドのうちの１つ以上の置換、ヌクレオチド間修飾、例えば、非荷電結合（例えば、メチルホスホネート、ホスホトリエステル、ホスホアミデート、カルバメート等）、荷電結合（例えば、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート等）、ペンダント部分（例えば、ポリペプチド）、挿入剤（例えば、アクリジン、ソラレン等）、キレート剤、アルキル化剤、および修飾結合（例えば、アルファアノメリック核酸等）等を含む。水素結合および他の化学的相互作用を介して指定された配列に結合する能力においてポリヌクレオチドを模倣する合成分子も含まれる。そのような分子は当該技術分野で既知であり、例えば、ペプチド結合が分子の主鎖中のリン酸結合に取って代わるものを含む。
ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１導入遺伝子のインビボ発現は、特定の組織への直接的な導入遺伝子の注入、例えば、裸のＤＮＡもしくはＤＮＡ－カチオン性リポソーム複合体の直接的な気管内、筋肉内もしくは動脈内注射、または後に再注入を伴う宿主細胞のエクスビボトランスフェクションによって行うことができる。
インビトロおよびインビボの両方で、機能的な新しい遺伝物質を細胞に導入するための複数のアプローチが既知である。これらのアプローチは、発現させる遺伝子の改変レトロウイルスへの組み込み；非ウイルスベクターへの組込み；または、リガンド特異性に基づく輸送システムに連結されたリポソームを介して異種プロモーター－エンハンサー要素に結合された導入遺伝子の送達；または裸のＤＮＡ発現ベクターの使用を含む。導入遺伝子の組織への直接注入は、局所的な発現をもたらす。ＰＣＴ／ＵＳ９０／０１５１５（Ｆｅｌｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ．）は、インビボで脊椎動物の細胞の内部に薬学的または免疫原性ポリペプチドをコードする遺伝子を送達する方法を対象としている。ＰＣＴ／ＵＳ９０／０５９９３（Ｂｒｉｇｈａｍ）は、発現構築物の静脈内注射または気管内注射のいずれかに続いて、哺乳動物の肺細胞における導入遺伝子の発現を得るための方法を対象としている。ほとんどの遺伝子治療戦略は、レトロウイルスまたはＤＮＡウイルスベクターへの導入遺伝子の挿入に依存してきたが、脂質担体を使用して宿主の肺細胞をトランスフェクトすることができる。
上記のポリヌクレオチドまたは核酸は、好適な宿主細胞で複製することにより生成することができる。所望の断片をコードする天然または合成ポリヌクレオチド断片は、原核細胞または真核細胞に導入および複製できる組換えポリヌクレオチド構築物、通常はＤＮＡ構築物に組み込むことができる。通常、ポリヌクレオチド構築物は、酵母または細菌等の単細胞宿主での複製に適している可能性があるが、培養された哺乳動物または植物または他の真核細胞株への（ゲノム内への組み込みを用いたおよび用いない）導入を意図する場合もある。
ポリヌクレオチドまたは核酸は、化学合成によって生成することもでき、市販の自動オリゴヌクレオチド合成機で行うことができる。二本鎖断片は、相補鎖を合成し、適切な条件下で鎖をアニーリングするか、または適切なプライマー配列を有するＤＮＡポリメラーゼを使用して相補鎖を付加することによって、化学合成の一本鎖生成物から得ることができる。
原核生物または真核生物宿主への導入のために調製されたポリヌクレオチドまたは核酸構築物は、所望のポリペプチドをコードする意図されたポリヌクレオチド断片を含む、宿主によって認識される複製系を含んでもよく、好ましくは、ポリペプチドコードセグメントに作動可能に連結された転写および翻訳開始調節配列も含む。発現ベクターは、例えば、複製起点または自律複製配列（ＡＲＳ）および発現制御配列、プロモーター、エンハンサー、ならびに必要な処理情報部位、例えば、リボソーム結合部位、ＲＮＡスプライス部位、ポリアデニル化部位、転写ターミネーター配列、およびｍＲＮＡ安定化配列を含み得る。天然のＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１タンパク質から、または他の受容体から、または同じもしくは関連する腫の分泌ポリペプチドからかどうかにかかわらず、適切な場合には分泌シグナルが含まれてもよく、それによってタンパク質が細胞膜を横断することおよび／または細胞膜に留まることを可能にし、したがって、その機能的トポロジーを達成するか、または細胞から分泌される。そのようなベクターは、当該技術分野で周知の標準的な組換え技術によって調製することができる。
適切なプロモーターおよび他の必要なベクター配列は、宿主で機能するように選択することができ、適切な場合、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１遺伝子と自然に関連する配列を含んでもよい。多くの有用なベクターが当該技術分野で既知であり、ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ、ＮＥＷ ＥＮＧＬＡＮＤ ＢＩＯＬＡＢＳ、ＰＲＯＭＥＧＡ ＢＩＯＴＥＣＨ等の販売業者から入手することができる。ｔｒｐ、ｌａｃおよびファージプロモーター、ｔＲＮＡプロモーター、ならびに解糖酵素プロモーター等のプロモーターが、原核生物宿主において使用され得る。有用な酵母プロモーターは、メタロチオネイン、３－ホスホグリセリン酸キナーゼ、またはエノラーゼもしくはグリセルアルデヒド－３－リン酸デヒドロゲナーゼ等の他の解糖酵素、マルトースおよびガラクトースの利用に関与する酵素等のプロモーター領域を含む。適切な非生来の哺乳動物プロモーターには、ＳＶ４０由来の初期および後期プロモーター、またはマウスモロニー白血病ウイルス、マウス腫瘍ウイルス、鳥肉腫ウイルス、アデノウイルスＩＩ、ウシパピローマウイルスもしくはポリオーマに由来するプロモーターが含まれ得る。さらに、構築物は、遺伝子の複数のコピーが作られ得るように、増幅可能な遺伝子に連結されてもよい。
一実施形態において、核酸構築物は、ＲＮＡポリメラーゼＩＩＩ、ＲＮＡポリメラーゼＩＩ、ＣＭＶプロモーターおよびエンハンサー、ＳＶ４０プロモーター、ＨＢＶプロモーター、ＨＣＶプロモーター、ＨＳＶプロモーター、ＨＰＶプロモーター、ＥＢＶプロモーター、ＨＴＬＶプロモーター、ＨＩＶプロモーター、およびｃｄｃ２５Ｃプロモーター、サイクリンαプロモーター、ｃｄｃ２プロモーター、ｂｍｙｂプロモーター、ＤＨＦＲプロモーター、ならびにＥ２Ｆ－１プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのプロモーターを含むことができる。いくつかの実施形態において、長期発現のためにユビキチンＣプロモーターを使用することができる。
本発明の一実施形態によれば、ＭＲＣＫαまたはＮＫＡ β１遺伝子治療によって、平滑筋および上皮細胞等の肺および気道の細胞にＭＲＣＫαまたはＮＫＡ β１機能を供給する方法が提供される。ＭＲＣＫαもしくはＮＫＡ β１遺伝子、改変されたＭＲＣＫαまたはＮＫＡ β１遺伝子、または該遺伝子の一部は、遺伝子が染色体外に残るように、ベクターで細胞に導入され得る。そのような状況では、遺伝子は染色体外の位置から細胞によって発現されるであろう。
本発明によれば、そのような治療を必要とする患者に、治療有効量のＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１をコードする核酸、またはその薬学的に許容される組成物を投与することを含む、気道疾患の治療方法が提供される。本方法の態様は、第１の核酸を単独で、またはＭＲＣＫαのコード配列を含むベクターで、および任意選択的に第２の核酸を単独で、またはＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドをコードするベクターで投与することを含む。場合によっては、第１の核酸は両方のコード配列を含んでもよい。核酸を利用する遺伝子治療法も提供される。本発明の実施形態は、本方法で使用される組成物、例えば、核酸のみ、またはベクターおよびキット中等の組成物を含む。
この方法は、対象（例えば、哺乳動物）に投与された場合、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１遺伝子の発現の増加をもたらし得る。対象へのベクターの投与は、疾患または状態の１つまたは複数の症状またはマーカーを改善し得る。
ベクター
本明細書に開示されるように、本発明の一態様は、ベクター中の核酸である。例えば、遺伝子治療法等の任意の便利な方法を使用して、目的のベクターを対象に適用すると、対象の細胞内で１つまたは複数の目的のコード配列が発現し、細胞の生物活性を調節し得る生物学的に活性な生成物を生成する。場合によっては、ベクターは、ＭＲＣＫαのコード配列を含む核酸ベクターである。場合によっては、核酸ベクターは、１つまたは複数のＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１のコード配列を含む。
場合によっては、ベクターは、遺伝子治療での使用に適したＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１のコード配列を含む。目的の遺伝子治療ベクターは、機能的なＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１タンパク質の発現を可能にするプロモーター等の調節エレメントに機能的に連結され、標的細胞におけるその活性を示す、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１タンパク質をコードするポリヌクレオチド断片を含むあらゆる種類の粒子を含む。場合によっては、ＭＲＣＫαは、配列番号１に記載の核酸配列によってコードされるか、またはＭＲＣＫαの活性断片または機能的同等物である。場合によっては、ベクターは、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーター等の構成的プロモーターである調節配列を含む。
遺伝子治療ベクターに使用されるＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１配列は、対象と同じ種に由来し得る。霊長類、有蹄動物、ネコ、イヌ、または飼育されたペットもしくは飼いならされた哺乳動物、ウサギ、ブタ、ウマ、ヒツジ、ウシ、またはヒト等の任意の便利な動物からの配列を含む、任意の便利なＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１配列、またはその断片もしくは機能的同等物が、対象ベクターに用いられ得る。例えば、ヒトにおける遺伝子治療は、ヒトＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１配列を使用して行うことができる。
したがって、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１をコードする核酸分子およびそれらの類似体は、（ｉ）上皮もしくは内皮バリアの完全性もしくは機能の改善、または（ｉｉ）バリア機能不全に関連する障害の治療に使用することができる。類似体の例として、ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡ、合成、トランスジェニック、および遺伝子活性化方法から生成されるかどうかを問わない組換えベクター発現を含むがこれらに限定されない合成または製造の方法にかかわらず、ＭＲＣＫαアイソフォーム、模倣物、断片、ハイブリッドタンパク質、上記の融合タンパク質のオリゴマーおよびマルチマー、上記のホモログを挙げることができる。
ポリペプチド
いくつかの実施形態において、本発明は、細胞にＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１ポリペプチドを導入する方法を提供する。一実施形態において、ＭＲＣＫαはヒトＭＲＣＫαである。一実施形態において、ヒトＭＲＣＫαは、配列番号２に示されるアミノ酸配列を有する。「ＭＲＣＫα」という用語は、１つ以上のアミノ酸残基が変更、欠失、または挿入されており、本明細書で報告されるもの等の修飾されていないタンパク質に匹敵する生物活性を有する、配列番号２のタンパク質の変異体も意味する。ＭＲＣＫαの多数のスプライス変異体が当該技術分野で既知であり、わずかに異なる翻訳タンパク質をもたらす。それらのいくつかはアミノ酸残基の約５０に違いを有し得るが、残りは同じであり、一方、他のいくつかの変異体はわずかにより小さなタンパク質を生成する。これらの変異体は、配列番号１と同じ活性を有する可能性がある。このような変異体の例には、ＮＭ＿００１３６６０１１．１、ＮＭ＿００１３６６０１９．１、ＮＭ＿００３６０７．３、ＮＭ＿００１３６６０１０．１、ＸＭ＿０１７００２５８１．２、およびＸＭ＿０１１５４４３０７．３が含まれる。
ＭＲＣＫαの比活性は、当該技術分野で既知の、または本明細書に記載される様々なアッセイによって決定することができる。
ＭＲＣＫαのアミノ酸配列変異体は、ＭＲＣＫαをコードするヌクレオチド配列に適切な修飾を導入することによって、またはペプチド合成によって調製することができる。そのような修飾は、例えば、ＭＲＣＫαのアミノ酸配列内における残基の欠失および／または挿入および／または置換を含む。最終構築物がヒトＭＲＣＫαに匹敵する生物学的活性を有する限り、最終構築物に到達するために、欠失、挿入、および置換の任意の組み合わせを行うことができる。
本明細書で使用される場合、「保存的配列修飾」という用語は、ＭＲＣＫαの活性に大幅に影響を与えないまたはそれを変化させないアミノ酸修飾を指す。「保存的アミノ酸置換」は、アミノ酸残基が、類似の側鎖を有するアミノ酸残基で置換されたものである。類似の側鎖を有するアミノ酸残基のファミリーは、当該技術分野で定義されている。
アミノ酸置換は、場合によっては、（ａ）置換領域のペプチド骨格の構造、（ｂ）標的部位における分子の電荷もしくは疎水性、または（ｃ）側鎖のバルクの維持に対する効果が大幅には異ならない置換を選択することによって行うことができる。例えば、天然に存在する残基は、側鎖の特性に基づいて群に分割することができる：（１）疎水性アミノ酸（ノルロイシン、メチオニン、アラニン、バリン、ロイシン、およびイソロイシン）；（２）中性親水性アミノ酸（システイン、セリン、スレオニン、アスパラギン、およびグルタミン）；（３）酸性アミノ酸（アスパラギン酸およびグルタミン酸）；（４）塩基性アミノ酸（ヒスチジン、リジン、およびアルギニン）；（５）鎖の配向に影響を与えるアミノ酸（グリシンおよびプロリン）；および（６）芳香族アミノ酸（トリプトファン、チロシン、およびフェニルアラニン）。これらの群の中で行われる置換は、保存的置換と見なすことができる。置換の例として、限定されないが、アラニンに対するバリン、アルギニンに対するリジン、アスパラギンに対するグルタミン、アスパラギン酸に対するグルタミン酸、システインに対するセリン、グルタミンに対するアスパラギン、グルタミン酸に対するアスパラギン酸、グリシンに対するプロリン、ヒスチジンに対するアルギニン、イソロイシンに対するロイシン、ロイシンに対するイソロイシン、リジンに対するアルギニン、メチオニンに対するロイシン、フェニルアラニンに対するロイシン、プロリンに対するグリシン、セリンに対するスレオニン、スレオニンに対するセリン、トリプトファンに対するチロシン、チロシンに対するフェニルアラニン、および／またはバリンに対するロイシンの置換が挙げられる。例示的な置換を下の表に示す。アミノ酸置換をヒトＭＲＣＫαに導入し、ヒトＭＲＣＫαの生物活性の保持について生成物をスクリーニングすることができる。
本明細書において、ＭＲＣＫαの「機能的同等物」は、ＭＲＣＫα活性を有するポリペプチドまたはＭＲＣＫα活性を有するポリペプチドをコードする核酸分子を指す。機能的同等物は、親ＭＲＣＫα配列（例えば、配列番号２）と比較して、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％、１００％またはそれ以上の活性を示し得る。機能的同等物は、人工であり得るかまたは天然に存在し得る。例えば、母集団内の配列の天然に存在する変異体は、機能的に同等の範囲内に属する。他の種に由来するＭＲＣＫα配列、例えばマウスＭＲＣＫα配列も「機能的同等物」という用語の範囲内に属する。特定の実施形態において、機能的同等物は、親配列に対して少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、９９．５％、９９．９％の同一性を有するヌクレオチド配列を有する核酸であるさらなる実施形態において、機能的同等物は、親配列に対して少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、９９．５％、９９．９％の同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドである。機能的同等物の場合、配列同一性は核酸の全長に沿って計算されるべきである。機能的同等物は、親配列と比較した場合、１つまたは複数、例えば２、３、４、５、１０、１５、２０、３０またはそれ以上のヌクレオチドの挿入、欠失および／または置換を含み得る。
「機能的同等物」という用語は、親アミノ酸配列に対して少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、９９．５％、９９．９％の配列同一性を有するＭＲＣＫαポリペプチドをコードする核酸配列も包含するが、遺伝暗号の縮重のために、親核酸配列に対してほとんど相同性を示さない。
本明細書で使用される場合、「活性断片」という用語は、ＭＲＣＫαキナーゼ活性を有するポリペプチドまたはＭＲＣＫαキナーゼ活性を有するポリペプチドをコードする核酸分子を指すが、それは親ポリヌクレオチド配列に示される核酸の断片または親ポリペプチド配列に示されるアミノ酸配列である。活性断片は、ＭＲＣＫαキナーゼ活性が保持されているか、または触媒ドメインを有している限り、どのようなサイズであってもよい。断片は、より短い断片とより長い親配列の間のアライメントの長さに沿って、親配列に対して少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、９９．５％、１００％の同一性を有する。
これらの断片を含む融合タンパク質は、本発明の実施に必要な核酸ベクターに含まれ得る。例えば、ポリペプチド配列または相同配列からの追加の５、１０、２０、３０、４０、５０、またはさらに１００アミノ酸残基が、ポリペプチド断片が正しく折りたたまれ、生物活性を示す能力を損なうことなく、Ｃ末端および／またはＮ末端のいずれかまたは両方に含まれてもよい。配列同一性は、例えばＢＬＡＳＴ（Ａｌｔｓｃｈｕｌ Ｓ Ｆ，Ｇｉｓｈ Ｗ，Ｍｉｌｌｅｒ Ｗ，Ｍｙｅｒｓ Ｅ Ｗ，Ｌｉｐｍａｎ Ｄ Ｊ（１９９０）．“Ｂａｓｉｃ ｌｏｃａｌ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ｓｅａｒｃｈ ｔｏｏｌ”．Ｊ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ ２１５（３）：４０３－４１０）およびＰＡＳＴＡ（Ｌｉｐｍａｎ，ＤＪ；Ｐｅａｒｓｏｎ，ＷＲ（１９８５））．“Ｒａｐｉｄ ａｎｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｐｒｏｔｅｉｎ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｓｅａｒｃｈｅｓ”．Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２７（４６９３）：１４３５－４１；ｈｔｔｐ：／／ｆａｓｔａ．ｂｉｏｃｈ．ｖｉｒｇｉｎｉａ．ｅｄｕ／ｆａｓｔａ ｗｗｗ２／ｆａｓｔａ ｌｉｓｔ２．ｓｈｔｍｌ）およびこれらのアライメントプログラムのバリエーションを含む当該技術分野における様々な方法のいずれか１つによって計算することができる。
本出願に記載のポリペプチドは、当該技術分野で既知の従来の方法によって調製することができる。
ウイルスベクター
目的のベクターを対象に送達する際には、任意の便利なウイルスを利用することができる。目的のウイルスには、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）、単純ヘルペスウイルス、およびレンチウイルスが含まれるが、これらに限定されない。ウイルス遺伝子治療ベクターは当該技術分野で周知である。例えば、Ｈｅｉｌｂｒｏｎｎ＆Ｗｅｇｅｒ（２０１０）Ｈａｎｄｂ Ｅｘｐ Ｐｈａｒｍａｃａｌ．１９７：１４３－７０を参照のこと。目的のベクターには、レトロウイルス、アデノウイルス（ＡｄＶ）、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）、レンチウイルス、ポックスウイルス、アルファウイルス、およびヘルペスウイルスに基づくもの等の、組み込み型および非組込み型ベクターが含まれる。
場合によっては、ＡＡＶ等の非組込み型ウイルスベクターが用いられてもよい。一態様において、非組込み型ベクターは、いずれの永久的な遺伝子改変も引き起こさない。ベクターは成体組織を標的とし、対象が発生の初期段階から構成的発現の影響を受けないようにすることができる。場合によっては、非組込み型ベクターには、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１発現細胞の過剰増殖を回避するための安全性機構が効果的に組み込まれる。細胞が急速に増殖し始めると、細胞はベクター（および結果としてタンパク質の発現）を失う可能性がある。
目的の非組込み型ベクターには、ガットレスアデノウイルス、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）、インテグラーゼ欠損レンチウイルス、ポックスウイルス、アルファウイルス、ヘルペスウイルス等のアデノウイルス（ＡｄＶ）に基づくものが含まれる。特定の実施形態において、本発明で使用される非組込み型ベクターは、天然のアデノ随伴ウイルス粒子に類似した、アデノ随伴ウイルスに基づく非組み込みベクターである。アデノ随伴ウイルスに基づく非組込み型ベクターの例には、任意のＡＡＶ血清型、すなわち、ＡＡＶＩ、ＡＡＶ２、ＡＡＶ３、ＡＡＶ４、ＡＡＶ５、ＡＡＶ６、ＡＡＶ７、ＡＡＶ８、ＡＡＶ９、ＡＡＶＩ０、ＡＡＶＩＩ、および偽型ＡＡＶに基づくベクターが含まれる。目的のベクターには、免疫原性が低く、安全性プロファイルが優れており、広範囲の組織を高効率で形質導入できるものが含まれる。場合によっては、ベクターは有糸***後の細胞に形質導入され、関連疾患の小型および大型動物モデルの両方で長期的な遺伝子発現（最長で数年）を維持することができる。
医薬組成物
別の態様において、本発明は、治療有効量のＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１、またはＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１をコードする核酸配列、および薬学的に許容される担体を含む医薬組成物を提供する。好ましくは、コード核酸配列は、プラスミドＤＮＡまたはウイルス等の発現ベクター内に含まれる。医薬組成物は、患者の気道、例えば、鼻、副鼻腔、咽喉および肺への、例えば、点鼻薬としての、点鼻剤としての、吸入剤としての噴霧、気化、または当該技術分野で既知の他の方法による投与に適合させることができる。投与は、当業者が決定できるように、連続的または明確な間隔で行うことができる。
医薬組成物は、薬学的に有用な組成物を調製するための既知の方法に従って製剤化することができる。さらに、本明細書で使用される場合「薬学的に許容される担体」という句は、標準的な薬学的に許容される担体のいずれかを意味する。薬学的に許容される担体は、希釈剤、アジュバント、および媒体、ならびに移植担体、および本発明の活性成分と反応しない不活性で非毒性の固体または液体の充填剤、希釈剤、またはカプセル化材料を含むことができる。例として、リン酸緩衝生理食塩水、生理食塩水、水、および油／水エマルション等のエマルションが挙げられるが、これらに限定されない。担体は、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、および液体ポリエチレングリコール等）、それらの好適な混合物、および植物油を含む溶媒または分散媒であり得る。薬学的に許容される担体を含む製剤は、当業者に周知の多くの情報源に記載されており、容易に入手可能である。例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｍａｒｔｉｎ ＥＷ［１９９５］Ｅａｓｔｏｎ Ｐｅｎｎｓｙｌａｖａｎｉａ、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ，１９．ｓｕｐ．ｔｈ ｅｄ．）は、本発明に関連して使用され得る製剤について記載している。非経口投与に適した製剤は、例えば、抗酸化剤、緩衝剤、静菌剤、および製剤を意図するレシピエントの血液と等張にする溶質を含み得る水性滅菌注射溶液、ならびに懸濁剤および増粘剤を含み得る水性および非水性の滅菌懸濁液を含む。製剤は、単位用量または複数回用量の容器、例えば密封されたアンプルおよびバイアルに提示され得、使用前に滅菌液体担体、例えば注射用水の条件のみを必要とするフリーズドライ（凍結乾燥）状態で保存され得る。即時注射用溶液および懸濁液は、滅菌粉末、顆粒、錠剤等から調製することができる。上に具体的に述べた成分に加えて、本発明の製剤は、当該製剤の種類を考慮して当該技術分野における従来の他の薬剤を含むことができることを理解されたい。
医薬組成物は、上皮または内皮バリアの機能不全に関連する疾患または状態に関連する症状の予防または緩和をもたらす任意の経路によって対象に投与することができる。例えば、核酸分子は、非経口、静脈内（ＩＶ）、筋肉内（ＩＭ）、皮下（ＳＣ）、皮内（ＩＤ）、経口、鼻腔内等で投与することができる。鼻腔内投与の例は、噴霧剤、点鼻薬、散剤またはゲル剤によるものであり得、米国特許第６，４８９，３０６号、ＵＳ２０１８／０３４４８１６、ＵＳ２００６／００７８５５８、ＵＳ２００８／００７０８５８、ＵＳ２０１８／０２９８０５７、およびＵＳ２０１５／０３１３９２４にも記載されており、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。／本発明の一実施形態は、鼻腔スプレーとしての組成物の投与である。しかしながら、他の薬物投与の手段は、十分に本発明の範囲内である。
ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ βポリペプチドまたはコード核酸分子は、個々の患者の臨床状態、投与の部位および方法、投与のスケジュール、患者の年齢、性別、体重、ならびに医師に既知である他の要因を考慮して、適切な医療行為に従って投与および服用され得る。したがって、本明細書の目的のための薬学的に「有効な量」は、当該技術分野で既知であるような考慮事項によって決定される。例えば、ポリペプチドまたはコード核酸分子の有効量は、インビボで発現させた場合に、治療有効量のＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１を提供するのに必要な量である。ＭＲＣＫαおよび／もしくはＮＫＡ β１またはコード核酸分子の量は、完全な予防および生存率の改善またはより迅速な回復を含むがこれらに限定されない改善、あるいは関連疾患および当業者によって適切な基準として選択されるような他の指標の改善または排除を達成するために有効でなければならない。本発明によれば、好適な単回用量サイズは、好適な期間にわたって１回以上投与された場合に、患者の症状を予防または緩和（軽減または排除）することができる用量である。当業者は、哺乳動物のサイズおよび投与経路に基づいて、全身投与に適切な単回用量サイズを容易に決定することができる。
治療用途
本発明による医薬組成物は、一般に全身投与することができる。治療される障害に応じて、本明細書に記載の医薬組成物は、経口、非経口（例えば、静脈内、皮下、皮内、筋肉内、関節内、動脈内、滑液嚢内、胸骨内、髄腔内、病巣内または頭蓋内注射を介して）、局所、粘膜（例えば、直腸または膣）、鼻腔、頬側、眼内、吸入スプレーを介して（例えば、吸入投与、噴霧剤、または乾燥粉末装置を介して送達される）または移植されたリザーバーを介して投与され得る。
特定の実施形態において、本開示は、本明細書に開示される活性医薬品を含む医薬組成物の有効量を、それを必要とする対象に投与することを含む、呼吸窮迫または呼吸器疾患を治療または予防する方法を提供する。
特定の実施形態において、対象は急性呼吸窮迫症候群；アルコール性肺症候群；敗血症関連肺障害；細菌性およびウイルス性肺炎；人工呼吸器誘発肺損傷；気管支肺異形成（ＢＰＤ）；喘息；気管支、アレルギー性、内因性、外因性または塵埃喘息；慢性または難治性の喘息；晩期喘息または気道過敏症；慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）；気管支炎；気腫；アレルギー性鼻炎；または嚢胞性線維と診断されている。呼吸器疾患の他の例として、限定されないが、風邪ウイルス感染、気管支炎、肺炎、結核、肺組織の刺激、花粉症および他の呼吸器アレルギー、喘息、気管支炎、単純および粘液膿性慢性気管支炎、不特定の慢性気管支炎（慢性気管支炎ＮＯＳ、慢性気管炎および慢性気管気管支炎を含む）、気腫、他の慢性閉塞性肺疾患、喘息、喘息状態および気管支拡張症が挙げられる。他の呼吸器疾患には、アレルギー性および非アレルギー性鼻炎、ならびに気道および肺の非悪性増殖性および／または炎症性疾患が含まれる。気道経路または肺の非悪性増殖性および／または炎症性疾患は、以下の１つまたは複数を意味する：（１）外因性アレルギー性肺胞炎等の肺胞炎、ならびに細胞毒性および／またはアルキル化剤等によって引き起こされる薬物毒性；（２）ウェゲナー肉芽腫症、アレルギー性肉芽腫症、肺血管腫症および特発性肺線維症、慢性好酸球性肺炎、好酸球性肉芽腫およびサルコイドーシス等の血管炎。
特定の実施形態において、本明細書に開示される薬剤は、抗生物質、抗ウイルス剤、抗炎症剤、気管支拡張剤、または粘液希釈剤等の他の薬剤と組み合わせて投与される。そのような薬剤の例として、グルココルチコイド受容体アゴニスト（ステロイド性および非ステロイド性）、例えば、トリアムシノロン、トリアムシノロンアセトニド、プレドニゾン、モメタゾンフロエート、ロテプレドノールエタボネート、フルチカゾンプロピオン酸、フルチカゾンフロエート、フルオシノロンアセトニド、デキサメタゾンシペシル酸エステル、デスイソブチリルシクレソニド、プロピオン酸クロベタゾール、シクレソニド、プロピオン酸ブチキソコート、ブデソニド、ジプロピオン酸ベクロメタゾン、ジプロピオン酸アルクロメタゾン；ロスマピモド等のｐ３８アンタゴニスト；ホスホジエステラーゼ（ＰＤＥ）阻害剤、例えば、メチルキサンタニン、テオフィリン、およびアミノフィリン；選択的ＰＤＥアイソザイム阻害剤、ＰＤＥ４阻害剤およびアイソフォームＰＤＥ４Ｄ、例えばテトミラスト、ロフルミラスト、オグレミラスト、イブジラスト、ロノミラスト；ケモカイン受容体機能のモジュレーター、例えば、ビクリビロック、マラビロック、セニクリビロック、ナバリキシン；ロイコトリエン生合成阻害剤、５－リポキシゲナーゼ（５－ＬＯ）阻害剤、および５－リポキシゲナーゼ活性化タンパク質（ＦＬＡＰ）アンタゴニスト、例えばＴＡ２７０（４－ヒドロキシ－１－メチル－３－オクチルオキシ－７－シナピノイルアミノ－２（１Ｈ）キノリノン）、例えば、セチリュートン、リコフェロン、キフラポン、ジロートン、ザフィルルカスト、またはモンテルカスト；およびレスベラトロールおよびピセアタンノール等のミエロペルオキシダーゼアンタゴニストが挙げられる。
本明細書に開示される組成物および薬剤を投与する方法には、例えば、吸入器またはネブライザーの使用による肺投与、およびエアロゾル化剤を含む製剤が含まれるが、これらに限定されない。例えば、ＵＳ２０１８／０２９８０５７、米国特許第６，０１９，９６８号、同第５，９８５，２００号、同第５，９８５，３０９号、同第５，９３４，２７２号、同第５，８７４，０６４号、同第５，８５５，９１３号、同第５，２９０，５４０号、および同第４，８８０，０７８号、ならびにＰＣＴ公開第ＷＯ９２／１９２４４号、同第ＷＯ９７／３２５７２号、同第ＷＯ９７／４４０１３号、同第ＷＯ９８／３１３４６号、および同第ＷＯ９９／６６９０３号を参照のこと。特定の実施形態において、治療が必要な領域に局所的に医薬組成物を投与することが望ましい場合がある。これは、例えば、限定するものではないが、局所注入、注射、またはインプラントによって達成することができ、上記インプラントは、ＳＩＬＡＳＴＩＣ膜等の膜または繊維を含む、多孔性、非多孔性、またはゼラチン質の材料である。特定の実施形態において、エアロゾル化剤または噴射剤は、ハイドロフルオロアルカン、１，１，１，２－テトラフルオロエタン、１，１，１，２，３，３，３－ヘプタフルオロプロパン、プロパン、ｎ－ブタン、イソブテン、二酸化炭素、空気、窒素、亜酸化窒素、ジメチルエーテル、トランス－１，３，３，３－テトラフルオロプロパ－１－エン、またはそれらの組み合わせである。特定の実施形態において、本開示は経口投与を想定している。
ヒトまたは他の霊長類におけるエアロゾル送達の場合、エアロゾルは、哺乳動物宿主がエアロゾルを肺に引き込むことができるマウスピース、フェイスマスク等を通してエアロゾルを送達する医療用ネブライザーシステムによって生成される。様々なネブライザーが当該技術分野で既知であり、本発明の方法に使用することができる。ネブライザーシステムの選択は、肺胞または気道への送達（すなわち、気管、一次、二次または三次気管支等）が望ましいかどうかに依存する。必要な投与量で刺激が強すぎない特定の核酸組成物が選択される。
気道送達に有用なネブライザーには、喘息の治療に通常使用されるものが含まれる。そのようなネブライザーも市販されている。使用される化合物の量は、肺および気道へのＤＮＡまたは複合体の進入後に細胞の十分なトランスフェクションを提供し、トランスフェクトされた細胞において治療レベルの転写および／または翻訳を提供するのに十分な量である。治療レベルの転写および／または翻訳は、核酸組成物の宿主哺乳動物の肺、特に肺胞または気管支肺および細気管支肺平滑筋、ならびに気管、気管支、気管支、細気管支、および肺胞の上皮細胞への投与後の宿主哺乳動物の疾患を予防、治療、または緩和するのに十分な量である。したがって、エアロゾル化された核酸製剤の有効量は、治療を行うのに十分な用量、すなわち、症状の緩和または軽減を引き起こし、症状の悪化を抑制し、症状の発症を防止する等に十分な用量である。有効量を構成する予め設定された組成物の投与量は、当業者が適切な対照を用いて日常的な試験を行うことにより、本開示を考慮して決定することができる。適切な治療群と対照との比較により、特定の投与量が特定の症状の予防または軽減に効果的であるかどうかが分かる。
哺乳動物宿主に送達される核酸の総量は、エアロゾル化される総量、ネブライザーの種類、粒径、哺乳動物宿主の呼吸パターン、肺疾患の重症度、エアロゾル化された溶液中の核酸組成物の濃度、および吸入療法の長さを含む、多くの要因に依存する。
相互作用する要因にもかかわらず、当業者は、特にエアロゾルの粒径が最適化されている場合、効果的なプロトコルを容易に設計することができるであろう。ネブライザーの効率の推定に基づくと、送達される有効用量は、通常、約１ｍｇ／治療～約５００ｍｇ／治療の範囲内であるが、対象および所望の結果に応じて、より多くのまたはより少ない用量も効果的であり得る。より深刻な状態を治療する場合、一般により高用量を投与することが望ましい。一般に、核酸が宿主細胞のゲノムに組み込まれていない場合、達成される結果に応じてアドホックベースで治療を繰り返すことができる。治療が繰り返される場合、哺乳動物宿主は、治療に対する有害な免疫反応がないことを確認するために監視される。治療の頻度は、患者の健康状態および病歴だけでなく、投与１回当たりに投与される核酸組成物の量等の、多くの要因に依存する。
キット
本開示はキットも提供し、キットは、本発明の方法に使用される１つまたは複数の構成要素、例えば、本明細書に記載されるようなベクターを含む。いくつかの実施形態において、主題のキットは、ベクター（本明細書に記載されるような）、ならびにプロモーター、ウイルス、細胞、および緩衝液から選択される１つまたは複数の構成要素を含む。本明細書に記載の構成要素のいずれも、例えば、細胞、ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１をコードする構築物（例えば、ベクター）、発現系での使用に適した構成要素（例えば、細胞、クローニングベクター、複数のクローニング部位（ＭＳＣ）、双方向プロモーター、内部リボソーム侵入部位（ＩＲＥＳ）等）等が、キットで提供され得る。構築物、クローニングベクター、および発現系の作製および使用に適した様々な構成要素が、主題のキットで使用され得る。キットは、チューブ、緩衝液等、および使用説明書も含む場合がある。キットの様々な試薬成分は、別々の容器内に存在してもよいか、または必要に応じて、それらの一部もしくは全てを単一容器内で事前に組み合わせて試薬混合物にしてもよい。
上記の構成要素に加えて、キットは、主題の方法を実施するための指示をさらに含み得る。これらの指示は、様々な形でキット内に存在してもよく、その中の１つまたは複数がキットに含まれている場合がある。これらの指示が存在する可能性のある１つの形態は、好適な媒体または基材、例えば、情報が印刷された１枚または複数の紙片、キットのパッケージ、パッケージ挿入物等に印刷された情報である。これらの指示の別の形態は、情報が記録されているコンピュータ可読媒体、例えばディスケット、コンパクトディスク（ＣＤ）、ハードドライブ等である。存在する可能性のあるこれらの指示のさらに別の形態は、削除されたサイトの情報にアクセスするためにインターネットを介して使用できるウェブサイトのアドレスである。
本発明の態様は、例えば上記のような核酸ベクターを含むウイルス粒子を提供することを含む。任意の便利なウイルス粒子を利用することができ、上記のウイルスベクター粒子が含まれる。
本発明の態様は、核酸ベクターを含む細胞を提供することを含む。目的のベクターが提供される細胞は、行われる特定の応用に応じて異なり得る。目的の標的細胞には、真核細胞、例えば動物細胞が含まれ、特定の種類の動物細胞には、昆虫、線虫、または哺乳動物細胞が含まれるが、これらに限定されない。例として、ウマ、ウシ、ヒツジ、イヌ、ネコ、ネズミ、非ヒト霊長類およびヒト細胞を含む、様々な哺乳動物細胞を使用することができる。様々な種の中で、上皮、内皮、肺、造血、神経、グリア、間葉、皮膚、粘膜、間質、筋肉（平滑筋細胞を含む）、脾臓、網状内皮、肝臓、腎臓、胃腸、線維芽細胞、および他の細胞型。等の、様々な種類の細胞を使用することができる。
定義
本明細書で使用される「遺伝子治療」という用語は、目的の遺伝物質（例えば、ＤＮＡまたはＲＮＡ）を宿主に移入して、遺伝的または後天的な疾患または状態の表現型を治療または予防することを指す。目的の遺伝物質は、インビボでの生成が所望される生成物（例えば、タンパク質、ポリペプチド、ペプチド、または機能的ＲＮＡ）をコードする。例えば、目的の遺伝物質は、治療的価値のあるホルモン、受容体、酵素、ポリペプチドまたはペプチドをコードすることができる。（１）エクスビボおよび（２）インビボ遺伝子治療という、遺伝子治療の２つの基本的なアプローチが進化してきた。エクスビボ遺伝子治療では、患者から細胞が取り出され、培養しながらインビトロで処理される。通常、機能置換遺伝子は、適切な遺伝子送達ビヒクル／方法（トランスフェクション、形質導入、相同組換え等）および必要に応じて発現系を介して細胞に導入され、その後、改変された細胞が培養で増殖され、宿主／患者に戻される。これらの遺伝的に再移植された細胞は、トランスフェクトされた遺伝子産物をインサイチュで生成することが示されている。インビボ遺伝子治療では、標的細胞が対象から取り出されるのではなく、導入される遺伝子がインサイチュで、すなわちレシピエントの体内で、レシピエント生物の細胞に導入される。あるいは、宿主の遺伝子に欠陥がある場合、その遺伝子はインサイチュで修復される。これらの遺伝的操作された細胞は、トランスフェクトされた遺伝子産物をインサイチュで生成することが示されている。
「ペプチド」、「ポリペプチド」、および「タンパク質」という用語は、ポリマー中のアミノ酸残基の配置を説明するために本明細書で互換的に使用される。ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質は、希少アミノ酸および合成アミノ酸類似体に加えて、標準の２０の天然に存在するアミノ酸から構成され得る。それらは、長さまたは翻訳後修飾（例えば、グリコシル化またはリン酸化）に関係なく、任意のアミノ酸鎖であり得る。
「組換え」ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質は、組換えＤＮＡ技術によって、すなわち、所望のペプチドをコードする外因性ＤＮＡ構築物によって形質転換された細胞から生成される生成される、ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質を指す。「合成」ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質は、化学合成によって調製されたペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質を指す。「組換え」という用語は、例えば、細胞、または核酸、タンパク質、またはベクターに関して使用される場合、細胞、核酸、タンパク質、またはベクターが、異種核酸もしくはタンパク質の導入によって、または天然の核酸もしくはタンパク質の改変によって修飾されているか、あるいは細胞がそのように改変された細胞に由来することを示す。前述の配列の１つまたは複数および異種配列を含む融合タンパク質は、本発明の範囲内にある。異種のポリペプチド、核酸、または遺伝子は、外来種に由来するものであるか、または同じ種に由来する場合は、その元の形態から実質的に改変されたものである。２つの融合されたドメインまたは配列は、天然に存在するタンパク質または核酸において互いに隣接していない場合、互いに異種である。
本発明に開示されるペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質の保存的修飾または機能的同等物は、ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質のポリペプチド誘導体、例えば、１つ以上の点突然変異、挿入、欠失、短縮、融合タンパク質、またはそれらの組み合わせを有するタンパク質を指す。それは、親ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質（本発明に開示されるもの等）の活性を実質的に保持している。一般に、保存的修飾または機能的同等物は、少なくとも６０％（例えば、６０％～１００％の任意の数（両端の数を含む）、例えば、６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、および９９％を含む）親（例えば、配列番号２）と同一である。
核酸またはポリヌクレオチドは、ＤＮＡ分子（例えば、ｃＤＮＡもしくはゲノムＤＮＡ）、ＲＮＡ分子（例えば、ｍＲＮＡ）、またはＤＮＡもしくはＲＮＡ類似体を指す。ＤＮＡまたはＲＮＡ類似体は、ヌクレオチド類似体から合成することができる核酸分子は、一本鎖または二本鎖であり得るが、好ましくは二本鎖ＤＮＡである。「単離された核酸」は、その構造が任意の天然に存在する核酸の構造または天然に存在するゲノム核酸の任意の断片の構造と同一ではない核酸を指す。したがって、この用語は、例えば、（ａ）天然に存在するゲノムＤＮＡ分子の一部の配列を有するが、それが天然に存在する生物のゲノムの分子のその部分に隣接するコード配列の両方には隣接していないＤＮＡ；（ｂ）得られた分子が天然に存在するベクターまたはゲノムＤＮＡと同一ではない様式で、原核生物または真核生物のベクターまたはゲノムＤＮＡに組み込まれた核酸；（ｃ）ｃＤＮＡ、ゲノム断片、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって生成された断片、または制限断片等の別個の分子；および（ｄ）ハイブリッド遺伝子、すなわち融合タンパク質をコードする遺伝子の一部である組換えヌクレオチド配列を包含する。上記の核酸を用いて、本発明のタンパク質を発現させることができる。この目的のために、核酸を好適な調節配列に作動可能に連結させて発現ベクターを生成することができる。
ベクターは、それが連結された別の核酸を輸送することができる核酸分子を指す。ベクターは、自律複製または宿主ＤＮＡへの組み込みが可能である。ベクターの例として、プラスミド、コスミド、またはウイルスベクターが挙げられる。ベクターは、宿主細胞における核酸の発現に適した形態の核酸を含む。好ましくは、ベクターは、発現される核酸配列に作動可能に連結された１つまたは複数の調節配列を含む。
「調節配列」には、プロモーター、エンハンサー、および他の発現制御要素（例えば、ポリアデニル化シグナル）が含まれる。調節配列には、ヌクレオチド配列の構成的発現を指示する配列、ならびに組織特異的調節および／または誘導配列が含まれる。発現ベクターの設計は、形質転換される宿主細胞の選択、所望のタンパク質またはＲＮＡの発現レベル等の要因に依存し得る。発現ベクターを宿主細胞に導入して、本発明のポリペプチドを生成することができる。プロモーターは、ＲＮＡポリメラーゼがＤＮＡに結合してＲＮＡ合成を開始するように指示するＤＮＡ配列として定義される。強力なプロモーターは、ｍＲＮＡを高頻度で開始させるものである。
「作動可能に連結された」または「作動可能に連結された」という用語は、そのように記載された隣接配列がそれらの通常の機能を果たすように構成または組み立てられた隣接配列の配置を指すために本明細書において使用される。したがって、コード配列に作動可能に連結された隣接配列は、コード配列の複製、転写、および／または翻訳を生じさせ得る。例えば、プロモーターがそのコード配列の転写を指示することができる場合、コード配列はプロモーターに作動可能に連結される。隣接配列は、正しく機能する限り、コード配列と連続している必要はない。したがって、例えば、介在する翻訳されていないが転写配列は、プロモーター配列とコード配列との間に存在する可能性があり、プロモーター配列は依然としてコード配列に「作動可能に連結されている」と見なすことができる。ポリペプチドをコードする各ヌクレオチド配列は、典型的には、それ自身の作動可能に連結されたプロモーター配列を有する。
本明細書で使用される「発現カセット」は、適切な宿主細胞において特定のヌクレオチド配列の発現を指示することができる核酸配列を意味し、終結シグナルに作動可能に連結され得る目的のヌクレオチド配列に作動可能に連結され得るプロモーターを含み得る。コード領域は通常、目的の機能的ＲＮＡをコードする。目的のヌクレオチド配列を含む発現カセットは、キメラであり得る。発現カセットは、天然に存在するが、異種発現に有用な組換え形態で得られたものであってもよい。発現カセット内のヌクレオチド配列の発現は、宿主細胞がある特定の刺激に曝露された場合にのみ転写を開始する構成的プロモーターまたは調節可能プロモーターの制御下にあり得る。多細胞生物の場合、プロモーターは特定の組織または器官または発生段階に特異的でもあり得る。
そのような発現カセットは、目的のヌクレオチド配列に連結された転写開始領域を含むことができる。そのような発現カセットには、目的の遺伝子が調節領域の転写調節下となるように挿入するための複数の制限部位が提供される。発現カセットは、選択可能なマーカー遺伝子をさらに含み得る。
「コード配列」は、特定のアミノ酸配列をコードするＤＮＡまたはＲＮＡ配列を指す。それは、「中断されていないコード配列」、すなわち、ｃＤＮＡ等のイントロンを欠くか、または適切なスプライスジャンクションによって結合された１つまたは複数のイントロンを含み得る。
本明細書で使用される場合、２つのアミノ酸配列間のパーセント相同性は、２つの配列間のパーセント同一性と同等である。２つの配列間のパーセント相同性は、２つの配列の最適なアラインメントのために導入する必要がある、ギャップの数および各ギャップの長さを考慮に入れた、それらの配列によって共有される同一位置の数の関数であり（すなわち、％相同性＝同一位置の数／位置の総数×１００）。２つの配列間の配列の比較およびパーセント同一性の決定は、後述の非限定的な例に記載されるように、数学的アルゴリズムを使用して達成することができる。
２つのアミノ酸配列間のパーセント同一性は、ＡＬＩＧＮプログラム（バージョン２．０）に組み込まれたＥ．Ｍｅｙｅｒｓ ａｎｄ Ｗ．Ｍｉｌｌｅｒのアルゴリズム（Ｃｏｍｐｕｔ．Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｓｃｉ．，４：１１－１７（１９８８））を使用して、ＰＡＭ１２０重み残基表、ギャップ長ペナルティ１２、ギャップペナルティ４を用いて決定することができる。さらに、２つのアミノ酸配列間のパーセント同一性は、ＧＣＧソフトウェアパッケージ（ｗｗｗ．ｇｃｇ．ｃｏｍで入手可能）のＧＡＰプログラムに組み込まれたＮｅｅｄｌｅｍａｎ ａｎｄ Ｗｕｎｓｃｈ（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４８：４４４－４５３（１９７０））アルゴリズムを使用して、Ｂｌｏｓｓｕｍ ６２マトリックスまたはＰＡＭ２５０マトリックスのいずれか、および１６、１４、１２、１０、８、６、もしくは４のギャップ重みは、または１、２、３、４、５、もしくは６の長さ重みを用いて決定することができる。
本明細書で使用される場合、「治療すること」または「治療」は、障害、障害の症状、障害に続発する病態、または障害に対する素因を、治癒する、軽減する、緩和する、治療する、その発症を遅延する、予防する、または改良する目的での、障害を有する、または障害を発症するリスクがある対象への化合物または薬剤の投与を指す。「予防する」、「予防すること」、「予防」、「予防的治療」等の用語は、障害または状態を発症していないが、発症するリスクがあるかまたは発症しやすい対象において障害または状態を発症する可能性を低減することを指す。
有効量は、治療される対象に治療効果を与えるために必要な活性化合物／薬剤の量を指す。有効用量は、当業者に認識されるように、治療される状態の種類、投与経路、賦形剤の使用、および他の治療的処置との併用の可能性に応じて変化する。
「医薬組成物」という用語は、組成物をインビボまたはエクスビボでの診断または治療用途に特に適したものにする、活性薬剤と不活性または活性な担体との組み合わせを指す。
「薬学的に許容される担体」は、対象に投与された後、または対象において、望ましくない生理学的効果を引き起こさない。医薬組成物中の担体は、活性成分に適合性があり、それを安定化させることができるという意味においても「許容され」なければならない。１つまたは複数の可溶化剤を、活性化合物の送達のための薬学的担体として利用することができる。薬学的に許容される担体の例として、限定されないが、剤形として使用可能な組成物を得るための生体適合性のビヒクル、アジュバント、添加剤、および希釈剤が挙げられる。他の担体の例として、コロイド状酸化ケイ素、ステアリン酸マグネシウム、セルロース、およびラウリル硫酸ナトリウムが挙げられる。
「対象」は、ヒトおよび非ヒト動物を指す。非ヒト動物の例として、全ての脊椎動物、例えば、非ヒト哺乳動物、非ヒト霊長類（特に高等霊長類）、イヌ、げっ歯類（例えば、マウスまたはラット）、モルモット、ネコ、およびウサギ等の哺乳動物、ならびに鳥類、両生類、爬虫類等の非哺乳動物が挙げられる。一実施形態において、対象はヒトである。別の実施形態において、対象は、実験的な非ヒト動物または疾患モデルとして好適な動物である。
本明細書で使用される場合、「肺疾患」は、原因または病因に関係なく、気腫、単球浸潤、線維症、上皮細胞異形成、ならびにＩＩ型上皮細胞および肺胞マクロファージ中の細胞内脂質の非定型蓄積を特徴とする一連の肺疾患に関連すると当業者によって一般的に認識される障害および状態を指す。これらには、「気道閉塞性疾患」、例えば、気道閉塞、アレルギー、喘息、急性炎症性肺疾患、慢性炎症性肺疾患、慢性閉塞性肺異形成、気腫、肺気腫、慢性閉塞性気腫、成人呼吸窮迫症候群、気管支炎、慢性気管支炎、慢性喘息性気管支炎、慢性閉塞性気管支炎、および間質性肺疾患等の呼吸器疾患が含まれるが、これらに限定されない。
本明細書に開示されるように、いくつかの範囲の値が提供される。文脈上明確に別段の指示のない限り、下限の単位の１０分の１までの、その範囲の上限と下限との間にある各介在値もまた具体的に開示されることを理解されたい。任意の記載される値または記載される範囲内の介在値と、その記載される範囲内の任意の他の記載される値または介在値との間の各小さい範囲は、本発明に含まれる。これらのより小さい範囲の上限および下限は、その範囲に独立して含まれてもまたは除外されてもよく、記載される範囲内に任意の具体的に除外される限界があることを条件として、より小さい範囲にいずれか一方もしくは両方の限界が含まれるか、またはどちらも含まれていない各範囲も本発明に包含される。記載される範囲が限界の一方または両方を含む場合、それらの含まれる限界のいずれかまたは両方を除外した範囲も本発明に含まれる。
「約」という用語は、一般に、示された数のプラスまたはマイナス１０％を指す。例えば、「約１０％」は、９％～１１％の範囲を示す場合があり、「約１」は、０．９～１．１を意味する場合がある。「約」の他の意味は、四捨五入等の文脈から明らかであり得るため、例えば「約１」は０．５～１．４を意味する場合もある。
実施例１ 材料および方法
この実施例では、以下の実施例２～９で使用される材料および方法について説明する。
プラスミドおよびｓｉＲＮＡ
この試験で使用されたプラスミドは、様々な供給元から入手した。ｐＣＤＮＡ３およびｐＣＭＶ－ＥＧＦＰプラスミドは、ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ（Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）から購入した。マウスＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ２サブユニット、およびＭｙｃ－ＤＤＫタグ付きのマウスＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ３サブユニットは、ＯＲＩＧＥＮＥ（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）から入手した。Ｔｅｔ－Ｏｎ ３Ｇ薬物誘導性遺伝子発現系は、ＣＬＯＮＴＥＣＨ（Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ，ＣＡ）から購入した。ヒトＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットコード配列を、ＳａｌＩおよびＢａｍＨＩ制限酵素部位でｐＴＲＥ３Ｇベクターに挿入した。ヒトＭＲＣＫαプラスミドは、Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ＢｅｒｎのＰａｏｌｏ Ａｒｍａｎｄｏ Ｇａｇｌｉａｒｄｉ博士から贈られた（３１）。ノックダウンは、製造者の指示に従ってＴＲＩＦＥＣＴＡ ＤＳＩＲＮＡキット（ＩＤＴ、Ｃｏｒａｌｖｉｌｌｅ，ＩＡ）を使用して行った。１００万個の細胞ごとに１００ｎＭのｓｉＲＮＡを使用した。
抗体および阻害剤
ウェスタンブロット用の一次抗体は、抗Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニット（ＵＰＳＴＡＴＥ、０５－３８２番）、抗オクルディン（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、７１－１５００番）、抗ｚｏ－１（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、６１－７３００番）、抗ｚｏ－２（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、７１－１４００番）、抗アクチン（ＳＩＧＭＡ、Ａ２０６６番）、抗ＧＡＰＤＨ（ＭＩＬＩＰＯＲＥ、ＣＢ１－００１番）、抗Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ２サブユニット（ＡＢＣＡＭ、ａｂ１８５２１０番）、抗ＤＤＫ（ＯＲＩＧＥＮＥ、ＴＡ５００１１－１００番）、抗ＭＲＣＫα（ＳＡＮＴＡ ＣＲＵＺ、ｓｃ－３７４５６８番）、抗ＭＹＰＴ１（ＣＥＬＬ ＳＩＧＮＡＬＩＮＧ、２６３４Ｓ番）、抗ホスホ－ＭＹＰＴ１（Ｔｈｒ６９６、ＣＥＬＬ ＳＩＧＮＡＬＩＮＧ、５１６３Ｓ番）、抗ミオシン軽鎖２（ＣＥＬＬ ＳＩＧＮＡＬＩＮＧ、３６７２Ｓ番）、および抗ホスホ－ミオシン軽鎖２（Ｓｅｒ１９、ＣＥＬＬ ＳＩＧＮＡＬＩＮＧ、３６７２Ｓ番）を含む。免疫蛍光用の一次抗体は、抗オクルディン－Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ５９４（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、３３１５９４番）、抗ｚｏ－１－Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ５９４（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、３３９１９４番）、抗ＭＣＫα（ＦＩＳＨＥＲ、ＰＡ１－１００３８番）を含む。ＭＲＣＫαの阻害剤ＢＤＰ５２９０は、ＡＯＢＩＯＵＳ（Ｇｌｏｕｃｅｓｔｅｒ、ＭＡ）から購入した。ミオシン阻害剤ブレビスタチンはＡＢＣＡＭから購入した。
一次細胞の単離および細胞培養
初代ラット肺胞上皮ＩＩ型細胞を、Ｄｏｂｂｓ（７４）によって記載されたＩｇＧパニング手法を使用して単離した。簡潔に述べると、Ｓｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙラット（２００～２５０ｇ）から肺を外科的に摘出し、灌流し、洗浄し、１ｍｇ／ｍｌのエラスターゼ（ＷＯＲＴＨＩＮＧＴＯＮ ＢＩＯＣＨＥＭＩＣＡＬ、Ｌａｋｅｗｏｏｄ，ＮＪ）で処理して上皮細胞を遊離させた。次に、肺葉を分離し、切断し、細かく刻み、濾過し、１５００ｒｐｍで１５分間スピンダウンした。ＦＢＳを含まないＤＭＥＭで細胞を再懸濁し、２つのＩｇＧプレートに移した。３７℃で１時間インキュベートした後、接着していない細胞（主にＡＴＩＩ細胞）を新しいチューブに移し、１５００ｒｐｍで１５分間遠心分離した。１０％ ＦＢＳを含むＤＭＥＭに細胞を再懸濁し、フィブロネクチンでコーティングしたプレートに播種した。プレートをフィブロネクチンでコーティングするために、ウシ血漿（Ｆ１１４１、ＳＩＧＭＡ－ＡＬＤＲＩＣＨ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）からの２０μｇ／ｍｌのフィブロネクチンを１００ｍｍ培養プレート（３ｍｌを使用）またはトランスウェルプレートの上部チャンバー（４００μｌを使用）に加えた。プレートを３７℃で３時間放置した。残留溶液を除去し、細胞を加える前に、プレートを組織培養フード内で少なくとも３０分間乾燥させた。１６ＨＢＥ１４ｏ－ヒト気管支上皮細胞は、以前に報告されたようにダルベッコ改変イーグル培地中で培養した（１８）。
トランスフェクション
トランスフェクションは、ＧＥＮＥ ＰＵＬＳＥＲ ＭＸＣＥＬＬエレクトロポレーションシステム（ＢＩＯＲＡＤ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）を使用したエレクトロポレーションにより行った。ＡＴＩ細胞の条件は、３００Ｖ、１０００Ω、２０ミリ秒の１つの方形波パルスであった。
ウェスタンブロット
細胞を、プロテアーゼ阻害剤（ＣＯＭＰＬＥＴＥ、Ｍｉｎｉ、ＥＤＴＡフリーの錠剤；ＲＯＣＨＥ、Ｂａｓｅｌ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）およびホスファターゼ阻害剤（ＰＨＯＳＳＴＯＰ Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ Ｃｏｃｋｔａｉｌ、ＲＯＣＨＥ、Ｂａｓｅｌ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を補充したレポーター溶解緩衝液（１ｘ、ＰＲＯＭＥＧＡ）で溶解した。タンパク質を１０％ＳＤＳ－ＰＡＧＥで分離し、ＰＶＤＦ膜に転写し、室温で２時間または４℃で一晩、一次抗体でプローブした。二次抗体とインキュベーションして展開した後、フィルム（ＢＩＯＭＡＸ ＭＲフィルム；ＣＡＲＥＳＴＲＥＡＭ ＨＥＡＬＴＨ、Ｒｏｃｈｅｓｔｅｒ，ＮＹ）上で、またはＣＨＥＭＩＤＯＣ ＩＭＡＧＩＮＧ ＳＹＳＴＥＭ（ＢＩＯ－ＲＡＤ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ．ＣＡ）を使用してバンドを検出し、ＩＭＡＧＥ ＳＴＵＤＩＯ（商標）ＬＩＴＥソフトウェア（ＬＩ－ＣＯＲ、Ｌｉｎｃｏｌｎ，ＮＥ）またはＩＭＡＧＥ ＬＡＢソフトウェア（ＢＩＯ－ＲＡＤ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）を使用して定量化した。
ｑＰＣＲ
ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ、Ｈｉｌｄｅｎ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を使用して全ＲＮＡを単離した。分光光度法によりＲＮＡ濃度を決定した後、１００～１０００ｎｇの全ＲＮＡをｃＤＮＡ合成に使用した。ＲＥＶＥＲＳＥ ＴＲＡＮＳＣＲＩＰＴＩＯＮ ＳＹＳＴＥＭ（ＰＲＯＭＥＧＡ、Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）を使用して逆転写を行った。１０マイクロリットルの反応液を１００μｌに希釈し、ＩＴＡＱ（商標）ＵＮＩＶＥＲＳＡＬ ＳＹＢＲ（登録商標）ＧＲＥＥＮ ＳＵＰＥＲＭＩＸ（ＢＩＯＲＡＤ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）を使用する定量的リアルタイムＰＣＲのために１マイクロリットルを取り出した。プライマーの特異性は、融解曲線分析およびゲル電気泳動により確認した。ｑＰＣＲは、ＣＦＸ ＣＯＮＮＥＣＴ ＲＥＡＬ ＴＩＭＥ ＰＣＲ ＤＥＴＥＣＴＩＯＮ ＳＹＳＴＥＭ（ＢＩＯＲＡＤ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）で行った。試料を３通りアッセイした。相対的なＲＮＡレベルは、ΔΔＣｔ法を使用して定量化し（７５）、特に指定がない限り、内因性対照ＧＡＰＤＨに対して正規化した。
免疫蛍光
細胞を３回洗浄した後、室温で１５分間、ＰＢＳ中の４％パラホルムアルデヒドで固定した。固定した細胞をＰＢＳで洗浄し、ＰＢＳ中の０．２％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００で１０分間透過処理した。ＰＢＳで洗浄した後、トランスウェルインサートをブロッキング試薬（ＤＡＫＯ ＰＲＯＴＥＩＮ ＢＬＯＣＫ ＳＥＲＵＭ ＦＲＥＥ、ＡＧＩＬＥＮＴ）で１時間ブロックし、一次抗体とともに４℃で一晩インキュベートした。核を２．５μｇ／ｍｌのＤＡＰＩで５分間染色し、次いでＰＢＳで２回洗浄した。次いで、清浄なカミソリの刃を使用してトランスウェル膜を注意深く切り取り、ＰｒｏＬｏｎｇ褪色防止用封入剤（ＦＩＳＨＥＲ、Ｗａｌｔｈａｍ，ＭＡ）を使用してスライドガラスに封入した。スライドをＬｅｉｃａ ＤＭＩ６０００顕微鏡下で検査し、オープンソースソフトウェアＭＡＮＡＧＥＲまたはＶＯＬＯＣＩＴＹソフトウェア（ＶＥＬＯＣＩＴＹ ＩＮＣ．）を使用して写真をキャプチャした。ＡＲＤＳ患者からのヒト肺の組織切片は、Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ承認のプロトコルを使用して、Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｒｏｃｈｅｓｔｅｒの病理学部門によって提供された。全ての試料は剖検で採取された。合計で、６人のＡＲＤＳ患者から１６の切片と、３人のＡＲＤＳのない対照患者から７つの切片を得た。対応する各セクションのＨ＆Ｅ染色は、様々な程度の肺損傷および浮腫の内容を示す。免疫蛍光染色のために、組織切片を脱パラフィンして再水和した。次いで、抗原検索ステップを実行して、後続の抗体結合および免疫蛍光のためにエピトープを露出させた。
ＴＥＥＲ
アッセイの前に、１２ウェルトランスウェルプレート（孔径０．４μｍのポリエステル膜インサートを備えた１２ｍｍトランスウェル；ＣＯＲＮＩＮＧ、Ｃｏｒｎｉｎｇ，ＮＹ）上で培養した細胞を組織培養フードに１５分間移し、培地を室温に平衡化させた。ＴＥＥＲは、上皮電圧計（ＥＶＯＭ２；ＷＯＲＬＤ ＰＲＥＣＩＳＩＯＮ ＩＮＳＴＲＵＭＥＮＴＳ、Ｓａｒａｓｏｔａ，ＦＬ）を使用して測定した。３つの読み取り値を記録し、各ウェルについて平均した。ＴＥＥＲを計算するために、細胞を含まないフィブロネクチンでコーティングしたインサートの抵抗（ブランク抵抗）を、測定された抵抗から差し引き、次いで１．１２ｃｍ２を乗じてインサートの表面積を求めた。
透過性
蛍光トレーサーに対する透過性は、以前に記載した修正プロトコルを使用して測定した（７６）。ＴＥＥＲ測定後、上部および下部のトランスウェルチャンバーをＰ緩衝液（ｐＨ７．４の１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、１ｍＭピルビン酸ナトリウム、１０ｍＭグルコース、３ｍＭ ＣａＣｌ２、および１４５ｍＭ ＮａＣｌ）で２回洗浄した。１００μｇ／ｍＬの４０ｋＤ ＦＩＴＣ－デキストランおよび１００μｇ／ｍＬの３ｋＤ テキサスレッド－デキストランを含む５００マイクロリットルの新たに調製した溶液を、頂端区画に加えた。１０００マイクロリットルのＰ緩衝液を下部チャンバーに加えた。３７℃で２時間インキュベートした後、１００μｌの基本培地を回収し、輸送されたデキストランの蛍光をＳＰＥＣＴＲＡＭＡＸ Ｍ５マルチモードマイクロプレートリーダー（ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＤＥＶＩＣＥＳ、Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，ＣＡ）で測定した。励起波長および発光波長は、それぞれ、ＦＩＴＣで４９２ｎｍおよび５２０ｎｍ、テキサスレッドで５９６ｎｍおよび６１５ｎｍである。標準曲線と比較することによりトレーサーの量を算出した。透過係数は、以下の式を使用して決定した（７７）：Ｐｃ（ｃｍ／ｍｉｎ）＝Ｖ／（ＡｘＣｏ）ｘ（Ｃ／Ｔ）、式中、Ｖは下部区画容積（１ｍｌ）、Ａは膜の表面積（ここで使用される１２ウェルトランスウェルの場合は１．１２ｃｍ２）、Ｃｏは時間０での上部区画のデキストラン濃度（０．１ｍｇ／ｍｌ）、Ｃは時間Ｔ（２時間）での下部区画のデキストラン濃度である。
免疫沈降および質量分析
１枚の１００ｍｍプレートからの細胞を１ｍｌのＩＰ溶解緩衝液（１％ ＮＰ－４０、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ ＨＣｌ、ｐＨ８．０）で溶解し、２５ゲージシリンジで１０回ホモジナイズした。製造者（ＭＩＬＴＥＮＹＩ ＢＩＯＴＥＣ、Ｂｅｒｇｉｓｃｈ－Ｇｌａｄｂａｃｈ，Ｇｅｒｍａｎｙ）の指示に従ってμＭＡＣＳ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇキットを使用して免疫沈降を行った。事前に清澄化した試料を、抗ＭＲＣＫα抗体（ＰＡ１－１００３８、１：５０希釈；ＦＩＳＨＥＲ、Ｗａｌｔｈａｍ，ＭＡ）、抗β１抗体（ＵＰＳＴＡＴＥ、０５－３８２、１：２５０希釈）、または対照としてのＩｇＧとともに４℃で一晩インキュベートした。溶出液をＳＤＳ－ＰＡＧＥグラジエントゲル（４～２０％）により分析した。各レーンをほぼ同じサイズの１０個の小片に切断した。次いで、ゲルのバンドを脱染し、還元し、トリプシンで一晩消化した。次いで、消化されたペプチド混合物を、Ｏｒｂｉｔｒａｐシステムを使用してＬＣ－ＭＳ／ＭＳ分析に供した。
β１サブユニットと相互作用するタンパク質の無標識定量化
Ｔｈｅｒｍｏの原データをｍｇｆ形式に変換した。結果として得られたピークリストを、ＰＲＯＴＥＩＮ ＰＲＯＳＰＥＣＴＯＲ（ｖ５．２２．０）を使用して以下の設定で検索した：最大１つの切断部位が欠落しているプロテアーゼとしてのトリプシン、ＭＳに対する１０ｐｐｍの質量許容誤差、ＭＳ／ＭＳについてそれぞれ０．５Ｄａ（イオントラップ）および０．０５Ｄａ（ＯＲＢＩＴＲＡＰ）、固定としてのカルバミドメチル化（Ｃ）、可変修飾としての酸化（Ｍ）およびリン酸化（Ｓ／Ｔ／Ｙ）。ＰＲＯＴＥＩＮ ＰＲＯＳＰＥＣＴＯＲからの結果を取得し、社内のＰｙｔｈｏｎスクリプトを使用してクリーンアップした。ＮＳＡＦ測定を使用したタンパク質の定量化については以前に記載されている（２３）。データの正規化、注釈、および統計分析は、Ｐｅｒｓｅｕｓを使用して実行した（７８）。ＮＳＡＦの統計分析には、スチューデントのｔ検定が使用された（７９）。
実施例２ β１サブユニットの過剰発現が肺胞タイトジャンクションの発現を増加させる。
肺胞上皮バリアの細胞間結合の大部分は、隣接するＡＴＩ細胞間にあり、その表面の９５％を覆っている（５）。残念ながら、既存の細胞株はインビボでのＡＴＩの遺伝的特徴および表現型特徴を完全に再現しておらず、ＡＴＩ細胞を直接単離することは技術的な課題をもたらす（１９）。これを克服するために、ラットの初代ＡＴＩＩ細胞が使用されたが、それは、該細胞を単離してインビトロで培養するとＡＴＩ細胞に分化することができるためである（２０）。プロセス中の表現型の変化を追跡するために、ＡＴＩＩ（ＳＰＣ）またはＡＴＩ（Ｔ１α）に特異的な遺伝子についてｑＰＣＲ分析を行った（図１Ａ）。ＳＰＣ ｍＲＮＡレベルは、単離後２４時間から４８時間で１５分の１に低下したことから、ＡＴＩＩ表現型の喪失が示唆される。対照的に、Ｔ１αレベルは、単離後５日目まで継続的に増加し、ＡＴＩ表現型への移行を示した。２０μｇ／ｍｌのフィブロネクチンでコーティングされたトランスウェルプレートで培養した場合、これらの細胞は、１６ＨＢＥ１４ｏまたはＣａｌｕ－３細胞で測定されたものに匹敵するかまたはそれ以上の、細胞単層全体の電気抵抗の測定値であるＴＥＥＲを示し（図９Ａ）（２１）、細胞膜に局在するオクルディンおよびｚｏ－１のほぼ連続的な染色が見られた（図９Ｂ）。一方、１μｇ／ｍｌのリポ多糖で処理した場合、これらの細胞はＴＥＥＲの低下および４ｋＤデキストランに対する透過性の増加を示したことから（図９Ｃおよび図９Ｄ）、上皮バリアの損傷が示唆される。これらのデータは、この初代ラットＡＴＩ培養系が、肺胞上皮バリアを研究するための適切なモデルとしての役割を果たすことを示している。
次に、上皮バリアにおけるその機能を調べるために、β１サブユニットをＡＴＩ細胞で過剰発現させた。脂質ベースのアプローチは、これらの細胞に検出可能なトランスフェクションをもたらさなかったが、３００Ｖおよび２０ミリ秒の方形波を使用したエレクトロポレーションは、ＥＧＦＰ発現プラスミドによって決定されるように、最小限の細胞死を伴って約５０％のトランスフェクション効率をもたらした（図１０Ａ）。同じアプローチを使用して、ラットβ１サブユニットをコードするプラスミドをＡＴＩ細胞にトランスフェクトし、２４時間後にタイトジャンクションの発現を測定した。ｍＲＮＡレベルでは、β１サブユニットのレベルが上昇したにもかかわらず、β１サブユニットの過剰発現はオクルディンまたはｚｏ－１に影響を与えなかった（図１０Ｂ）。しかしながら、タンパク質レベルでは、オクルディンの３．９倍の増加、ｚｏ－１の２．５倍の増加、およびｚｏ－２の８．２倍の増加が観察された（図１Ｂおよび図１Ｃ）。驚くべきことに、β１サブユニットがＡＴＩＩ細胞にトランスフェクトされた場合、これらのタイトジャンクション構成タンパク質のいずれも発現の増加を示さなかった（図１Ｄおよび図１Ｅ）。同様の結果が、ヒトＡＴＩＩ細胞株であるＡ５４９細胞でも観察された（データは示さず）。これらのデータは、β１サブユニットがタンパク質レベルでタイトジャンクションの発現を増加させ、そのような効果が肺胞のＡＴＩ細胞に特異的であることを示すものである。
実施例３ β１サブユニットの過剰発現は、肺胞Ｉ型バリアの完全性を高める。
β１サブユニットがＡＴＩ細胞においてタイトジャンクションのタンパク質発現を増加させたことを考慮して、これらの細胞におけるそれらの局在を分析した。免疫蛍光染色により、細胞膜上のオクルディン、ｚｏ－１、ｚｏ－２、およびクローディン－４のレベルの上昇が確認された（図２Ａ）。次に、肺胞上皮バリアに対するβ１サブユニットの機能的効果を調査するためにアッセイを行った。エレクトロポレーションでは細胞をトリプシン処理する必要があり、それによって細胞単層が破壊され、ＴＥＥＲおよび透過性アッセイが妨げられるため、ラットβ１サブユニットをＴｅｔ－ｏｎプラスミドにクローニングすることにより、ドキシサイクリン誘導系を作製してβ１サブユニットの発現を制御した。これにより、エレクトロポレーション後、細胞培養培地にドキシクリンを添加するだけで、ＡＴＩ細胞の遺伝子発現をオンにすることができる。このシステムを使用してβ１サブユニットの発現を制御できるかどうかを調べるために、ヒト気管支上皮細胞株である１６ＨＢＥ１４ｏ－細胞に、エレクトロポレーションによりｐＣＭＶ－ｔｅｔ調節プラスミドおよびｐＴｅｔ３Ｇ－ヒトβ１サブユニット発現プラスミドをコトランスフェクトし、その後直ちに増加する濃度のドキシサイクリン（０、１、１０、１００、１０００ｎｇ／ｍｌ）を加えた。イムノブロット分析は、ドキシサイクリンがトランスフェクションの２４時間後にβ１サブユニットの用量依存的なアップレギュレーションを引き起こし、１０００ｎｇ／ｍｌで最大誘導が見られたことを示した（図１１Ａ）。その結果、オクルディンおよびｚｏ－１の発現も増加し、ｐＣＭＶ－ラットβ１プラスミドを使用した以前の知見が裏付けられた。さらに、ルシフェラーゼレポータープラスミドを使用すると、一過性のトランスフェクションがトランスフェクション後７日まで遺伝子のアップレギュレーションをもたらすことが明らかになった（図１１Ｂ）。
このシステムを使用して、ＡＴＩ細胞のタイトジャンクション機能に対するβ１サブユニットの役割を調べるためのアッセイを行った。ドキシサイクリンを培地に加える前は、細胞単層間でＴＥＥＲに有意差は見られなかった（図１０Ｂ）。しかしながら、１μｇ／ｍｌのドキシサイクリンを加えた後、ドキシクリン処理群でＴＥＥＲが有意に高くなり（３日目および４日目）、バリアの完全性の増加が示唆された。ＴＥＥＲの測定と一致して、３ｋＤデキストランおよび４０ｋＤデキストランに対する透過性は、ドキシサイクリン処理後、それぞれ３３．２％および１８．５％低下した（図２Ｃ）。総合すると、これらのデータは、β１サブユニットの過剰発現が肺胞上皮バリア機能の改善をもたらすことを示した。
実施例４ β１サブユニットを介したタイトジャンクションのアップレギュレーションは、イオン輸送に依存しない。
Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼのβサブユニットは、αサブユニットの成熟および膜輸送を促進し、それによってイオン輸送活性を増加させる（２２）。この活性がβ１サブユニットのバリア増強効果に必要な場合、β２またはβ３アイソフォームの過剰発現はβ１と同じ効果を有する可能性がある。これを調べるために、単離の３日後、ＡＴＩ細胞がＡＴＩ表現型を表示したときに、ＡＴＩ細胞にマウスβ２サブユニットまたはマウスβ３サブユニットをコードするプラスミドをトランスフェクトした。次いで、２４時間後、ウェスタンブロットによりタイトジャンクション構成タンパク質のレベルを評価した。β１サブユニットとは対照的に、β２アイソフォームの過剰発現はオクルディンまたはｚｏ－１の発現を増加させず（図３Ａ）、β３サブユニットの過剰発現は、そのレベルをそれどころか低下させた（図３Ｂ）。
驚くべきことに、β３サブユニットの過剰発現はβ１サブユニットの総レベルを低下させ、おそらくこれら２つのβアイソフォームのαサブユニットへの競合的結合を示唆していることがわかった。ポンプ活性がバリア増強効果を媒介していないことをさらに確認するために、β１サブユニットによるトランスフェクション後に、ＡＴＰ依存性ナトリウム－カリウム交換を阻害する強心配糖体であるウアバインで細胞を処理した。イムノブロット分析は、ウアバインが試験したいずれの濃度でもオクルディンのアップレギュレーションをブロックしなかったことを示した（図３Ｃ）。総合すると、これらの結果は、β１サブユニットがトランスポート非依存性の機構を通じてタイトジャンクションのバリア機能を促進することを示している。
実施例５ ＭＲＣＫαは、上皮バリアの完全性を調節するβ１相互作用タンパク質である。
上記の知見は、β１サブユニットを介した上皮バリアの緊密性がそのイオン輸送活性とは無関係であることを示唆しているため、β１相互作用タンパク質が役割を果たす可能性があるという仮説が立てられた。しかしながら、文献で報告されたこれらのタンパク質はほんのわずかであり、それらのほとんどは神経系でのみ発現される（表Ｓ１／図１６）。肺上皮細胞のβ１サブユニットと相互作用しているタンパク質を体系的に特定するために、タンデム質量分析を使用した。
１６ＨＢＥ１４ｏ－細胞からの細胞ライセートは、プロテインＧ磁気ビーズと、陰性対照としてβ１サブユニットに対する抗体またはＧＦＰに対する抗体とを使用して免疫沈降した。次いで、得られたタンパク質複合体をゲル精製し、トリプシン消化に供した。スペクトルについてデータベースで検索した後、３つの独立した実験から２９３６の固有のタンパク質が特定された（補足ファイル）。次いで、各タンパク質に割り当てられた固有のペプチドの数を数えることに基づくラベルフリーの定量法である正規化されたスペクトル存在量係数（ＮＳＡＦ）を使用して、それらの相対存在量を定量化した（２３）。合計１３８のタンパク質が潜在的な相互作用の基準に合格した（ｐ＜０．０５、スチューデントのｔ検定）。これらのタンパク質の遺伝子オントロジー（ＧＯ）濃縮分析（２４、２５）により、ユビキチン化膜タンパク質のエンドソーム選別に関与する２つのプロセスであるエンドソーム輸送選別複合体（ＥＳＣＲＴ）分解および多胞体組織化を含む生物学的プロセスのための有意な濃縮が明らかになった。表１（図１５）は、上位１５の相互作用タンパク質を示す。いくつかの相互作用物質は、β１自体の調節に重要な役割を果たし得る。例えば、ＭＯＧＳ（マンノシルオリゴ糖グルコシダーゼ）は、そのＮ－グリコシル化に関与している可能性があり、ＤＴＸ３Ｌ（Ｅ３ユビキチン－タンパク質リガーゼＤＴＸ３Ｌ）は、そのユビキチン化に関与している可能性がある。
次に、ＧＯが「細胞間結合」という用語を含むタンパク質をさらに調べた。β１サブユニットのこれらの相互作用物質は、肺胞上皮バリアの完全性を促進する際にその機能を媒介し得る。実際に、上位１５の相互作用物質のうち２つは、「細胞間結合」を表すＧＯの用語を有する：ＰＤＣＤ６ＩＰ（プログラム細胞死６相互作用タンパク質またはＡｌｉｘ）およびＣＤＣ４２ＢＰＡ（筋強直性ジストロフィーキナーゼ関連ＣＤＣ４２結合キナーゼアルファまたはＭＲＣＫα）。Ａｌｉｘは、アクトミオシンタイトジャンクション極性複合体の組み立ておよび上皮バリアの完全性の維持に関与している。しかしながら、Ａｌｉｘの喪失は、タイトジャンクションのタンパク質量ではなく、編成に影響を与える（２６）。したがって、ＭＲＣＫαをさらに調べた。
ＭＲＣＫαはセリン／スレオニンタンパク質キナーゼであり、細胞骨格の再編成におけるＣｄｃ４２の下流エフェクターである（２７）。本来の状態では、ＭＲＣＫαはそのキナーゼ活性をブロックするホモ二量体を形成する（２８）。一旦、活性化されると、ＭＲＣＫαは、ミオシン軽鎖キナーゼ２およびＬＩＭキナーゼを含む基質をリン酸化し、それによってアクチン－ミオシンの収縮を調節する（２９）。自己阻害性二量体化の解離は、Ｒａｐ１（３０）およびＰＤＫ１（３１）等の多くの因子によって誘発され得るＭＲＣＫα活性化の前提条件である。細胞骨格を調節することにより、活性化されたＭＲＣＫαは、細胞移動（３１、３２）、細胞極性（３３）、および内皮接合部形成（３０、３４）等の多くの細胞プロセスに関与する。β１サブユニットがＭＲＣＫαを介して肺胞上皮バリアの完全性を高め得るという仮説が立てられた。
ＭＲＣＫαは質量分析で４０％を超える配列包括度を有するが（図１２）、共免疫沈降実験によりβ１サブユニットとの相互作用を確認するためにアッセイを行った。３つのβアイソフォームのうち、β１サブユニットのみがＭＲＣＫαプルダウン複合体で検出され、この相互作用の特異性が示唆された（図４Ａ）。ＡＴＩ細胞におけるさらなる免疫蛍光染色は、β１が細胞膜上でＭＲＣＫαと共局在することを示した（図４Ｂ）。上皮バリア機能におけるＭＲＣＫαの役割を解読するために、ＡＴＩ細胞でその発現をノックダウンし、タイトジャンクションのタンパク質レベルを評価した。ＭＲＣＫαに対する低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）をトランスフェクトした細胞は、オクルディンとｚｏ－１の両方のレベルが有意に低いことを示し（図４Ｃおよび図４Ｄ）、ＭＲＣＫαがタイトジャンクション構成タンパク質の発現を安定化し得ることが示唆された。
ＭＲＣＫαの機能喪失はタイトジャンクションを損なうため、β１サブユニットがＭＲＣＫαとの相互作用によって肺胞バリア機能を増強するという仮説が立てられた。この仮説を検証するために、最初にｓｉＲＮＡを使用してＭＲＣＫαをノックダウンし、続いてドキシサイクリンを使用してβ１の過剰発現を誘導した。ＴＥＥＲは、ドキシサイクリンの添加後２４、４８、および７２時間にはＡＴＩ単層で有意に高かったが、ＭＲＣＫαに対するｓｉＲＮＡを細胞にトランスフェクトすると消失した（図５Ａ）。これをさらに確認するために、ＭＲＣＫαの強力な阻害剤である細胞を２μＭのＢＤＰ５２９０で処理し（３５）、バリアの完全性をＴＥＥＲで評価した。ｓｉＲＮＡノックダウンと一致して、ベースラインのＴＥＥＲはＭＲＣＫα阻害時に減少した。さらに重要なことに、阻害剤による処理は、β１サブユニットが誘発するバリア完全性の増加を妨げた（図５Ｂ）。免疫蛍光染色により、β１サブユニットがｚｏ－１の膜組織化を促進することも確認されたが、これはＭＲＣＫαがノックダウンされたときには観察されなかった所見である（図５Ｃ）。まとめると、これらのデータは、ＭＲＣＫαの活性化による肺胞バリア機能の改善におけるβ１サブユニットの重要な役割を示している。
実施例６ ＭＲＣＫα過剰発現のみで肺胞バリア機能を改善することができる。
上記のデータは、ＭＲＣＫαがβ１によって誘導されるＡＴＩ細胞上皮バリア増強の下流メディエーターであったことを示唆しているため、肺胞バリア機能を改善するにはＭＲＣＫαの活性増加のみで十分であると推測された。この仮説を検証するために、ＡＴＩＩ細胞にＭＲＣＫαプラスミドをトランスフェクトし、ＴＥＥＲを使用してバリアの完全性を測定した。トランスフェクションの２４時間後、ＴＥＥＲに有意差は検出されなかった。しかしながら、トランスフェクションの４８時間後および７２時間後の両方で、ＭＲＣＫαをトランスフェクトした細胞に空のプラスミド対照と比較して有意に高い値が観察された（図６Ａ）。この結果と一致して、オクルディンおよびｚｏ－１は、ＭＲＣＫαトランスフェクション時により高い強度および細胞間境界への局在の増加を示した（図６Ｂ）。これらの結果は、肺胞上皮バリアの完全性を促進するにはＭＲＣＫαの過剰発現のみで十分であることを示している。
実施例７ 非筋肉ミオシンＩＩの活性化は、タイトジャンクションのβ１サブユニットの安定化を媒介する。
これまでの結果は、β１サブユニット相互作用タンパク質ＭＲＣＫαが肺胞タイトジャンクションを促進するために必要かつ必須であるという仮説を支持している。この結論をさらに実証するために、ミオシン軽鎖キナーゼ２（ミオシンホスファターゼＭＹＰＴ１の阻害により直接的または間接的に）、ＬＩＭキナーゼ、およびミオシン（２９－３１、３３、３６－３８）を含むＭＲＣＫα下流経路の活性化を調べるためのアッセイを行ったこれらの基質のリン酸化は、ウェスタンブロット分析を使用して評価した。β１サブユニットの過剰発現により、Ｓｅｒ１９でミオシン軽鎖２（ＭＬＣ２）のリン酸化が２倍に誘導されることがわかった（図７Ａ）。したがって、このデータは、β１サブユニットがＭＲＣＫαと相互作用して活性化することをさらに裏付けるものである。
アクチン－ミオシンの活性化は、タイトジャンクション複合体の集合を調節し（３９）、またエンドサイトーシス分解を通して、それらの定常状態レベル（４０－４２）を調節する。ＭＬＣ２の活性化は、ジャンクションへの動員、周囲のアクチン束の形成、およびバリアの成熟を促進する（３０、３３、３４、４３、４４）。したがって、ＭＬＣ２のβ１を介した活性化がバリアの完全性の増加に関与しているかどうかを調査するために、アッセイを行った。ミオシンＩＩの特異的阻害剤である２０μＭブレビスタチンの前処理は、β１サブユニットの過剰発現によって誘導されるＴＥＥＲの増加を防いだ（図７Ｂ）。この結果と一致して、ウェスタンブロット分析は、ブレビスタチンによるＡＴＩ細胞の処理がオクルディンのアップレギュレーションを有意に抑制することを示した（図７Ｃ）。総合すると、これらの結果は、ミオシンＩＩの活性化が、β１を介したタイトジャンクションの安定化および肺胞上皮バリアの増強に必要であることを示唆している。
実施例８ ヒトＡＲＤＳ患者はＭＲＣＫαの発現低下を示す。
ＭＲＣＫαが肺胞バリアの完全性を調節することを考慮して、ＡＲＤＳにおいてその発現が変化するかどうかを調べた。免疫蛍光染色は、ＡＲＤＳ患者の肺が、対照ドナーの肺と比較してはるかに低いレベルのＭＲＣＫαを発現し（図１３Ａおよび図８Ａ）、相対蛍光強度が平均３０％少ないことを示した（図８Ｂ）。肺胞に加えて、小気道も、特にオクルディンが発現している繊毛および基底細胞において、高レベルのＭＲＣＫαを発現した（図１３Ｂ）。重要なことに、これらの組織の染色強度もＡＲＤＳ患者で減少した（図１３Ｃ）。総合すると、これらのデータは、肺のＭＲＣＫαのレベルがより低いことがＡＲＤＳの病態に関連していることを示している。
実施例９ インビボでのＭＲＣＫαの役割
この実施例では、インビボでのＭＲＣＫαの役割を調べるためにアッセイを行った。簡潔に述べると、肺炎感染または細菌性敗血症を模倣し、急性肺損傷／急性呼吸窮迫症候群（ＡＬＩ／ＡＲＤＳ）を引き起こすＬＰＳでマウスの肺を損傷させた。１日後、肺が好中球および肺水腫液で満たされたとき、図１４Ａおよび図１４Ｂに示される様々なタンパク質をコードするプラスミドをエレクトロポレーションにより肺に送達した。プラスミドは、対照プラスミド（「空」、遺伝子産物を発現しないため、加えられるＤＮＡの良好な陰性対照である）、およびＮａ／Ｋ－ＡＴＰアーゼ（「ｂ１」）のβ１サブユニット、ＭＲＣＫα（「ＭＲＣＫ」）、またはβ１サブユニットとＭＲＣＫαとの組み合わせ（「ｂ１＋ＭＲＣＫ」）をコードするものを含む。その２日後、肺を採取し、損傷のエンドポイントについて調べた。
エンドポイントは、肺組織の湿潤乾燥比、および気管支肺胞洗浄液（ＢＡＬＦ）中の浸潤免疫細胞の総数であった。湿潤乾燥比は肺水腫の尺度であり、比率が高いほど肺の水分または浮腫が多く、したがって肺損傷がより大きい。ＢＡＬＦは、肺がどの程度損傷しているかを示す指標であり、細胞の数が多い場合は重度の損傷を示す。データ（図１４Ａおよび１４Ｂ）は、肺へのＭＲＣＫαの遺伝子導入だけでも少し効果があったことを示しているが、β１サブユニットとともに送達した場合、その効果はより顕著であり、統計学的に非常に有意であった。このことは、ＭＲＣＫを単独で使用してＡＬＩ／ＡＲＤＳを治療し、β１サブユニットと組み合わせて最適な治療を行うことができることを示すものであった。これらの結果は、ＭＲＣＫαがインビボで機能することを示した。
実施例１０ ＭＲＣＫαは肺胞－毛細血管上皮－内皮バリア機能を改善する
この実施例では、インビボでの肺胞－毛細血管上皮－内皮バリア機能を改善するためのＭＲＣＫαの役割を調べるために、追加のアッセイを行った。
方法および材料
プラスミド
プラスミドｐｃＤＮＡ３は、ＰＲＯＭＥＧＡ（Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）から入手した。ｐＣＭＶ－ＭＲＣＫαは、ＣＭＶプロモーターからヒトＭＲＣＫαを発現し、ｐＣＭＶ－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１は、以前に記載されたように、ＧＦＰタグ付きラットＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットを発現する（Ｇａｇｌｉａｒｄｉ，Ｐ．Ａ．，ｅｔ ａｌ．，Ｊ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ ２０６：４１５－３４、およびＭａｃｈａｄｏ－Ａｒａｎｄａ，Ｄ．，ｅｔ ａｌ．，Ａｍ Ｊ Ｒｅｓｐｉｒ Ｃｒｉｔ Ｃａｒｅ Ｍｅｄ １７１：２０４－１１）。ＱＩＡＧＥＮ ＧＩＧＡ－ＰＲＥＰ ＫＩＴＳ（ＱＩＡＧＥＮ、Ｃｈａｔｓｗｏｒｔｈ，ＣＡ）を使用してプラスミドを精製し、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、１ｍＭエチレンジアミン四酢酸、および１４０ｍＭ ＮａＣｌに懸濁した。
インビボでの遺伝子導入および急性肺損傷の誘導
雄のＣ５７ＢＬ／６マウス（９～１１週）をイソフルランで麻酔し、１００μｇの各プラスミドを、Ｌｉｎ，Ｘ．，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ ２３：４８９－９９に以前に記載されたように、吸引によって、５０μの１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、１ｍＭ ＥＤＴＡ、および１４０ｍＭ ＮａＣｌ中でマウスの肺に送達した（β１とＭＲＣＫαの両方を送達した場合、エレクトロポレーションの前にそれぞれ１００μｇを投与した）。ＥＣＭ８３０エレクトロポレーター（ＢＴＸ，ＨＡＲＶＡＲＤ ＡＰＰＡＲＡＴＵＳ、Ｈｏｌｌｉｓｔｏｎ，ＭＡ）を用いてマウスの胸部に配置された電気生理学的な皮膚電極（ＭＥＤＴＲＯＮＩＣ、Ｒｅｄｍｏｎｄ，ＷＡ）を使用して、２００Ｖ／ｃｍの電界強度で８つの１０ミリ秒の方形波パルスを直ちに印加した。遺伝子導入の１日前に、全てのＬＰＳチャレンジマウスに、吸引によって、５０μｌのリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）中の５ｍｇ／ｋｇのＬＰＳ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ Ｏ５５：Ｂ５、１５，０００，０００ エンドトキシンユニット／ｍｇ タンパク質；ＳＩＧＭＡ－ＡＬＤＲＩＣＨ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を投与した。（ｎ＝５～１１マウス／群）。全ての実験手順は、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｔｈｅ Ａｃｃｒｅｄｉｔａｔｉｏｎ ｏｆ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌ Ｃａｒｅ承認施設で、実験動物のケアと使用に関する施設のガイドラインに従って実施された。
生きたマウスの肺胞液クリアランス（ＡＦＣ）の測定
この試験で使用した方法は、Ｌｉｎ，Ｘ．，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ ２３：４８９－９９およびＭｕｔｌｕ，Ｇ．Ｍ．，ｅｔ ａｌ．，Ｃｉｒｃ Ｒｅｓ ９４：１０９１－１００に以前に記載されたように、生きたマウスで行われた。簡潔に述べると、３７℃の体温に維持されたマウスをジアゼパム（５ｍｇ／ｋｇ、腹腔内投与）およびペントバルビタール（５０ｍｇ／ｋｇ、ジアゼパムの１０分後に腹腔内投与）で麻酔した。５ｍｍ、２０ゲージの血管カテーテル（ＢＥＣＴＯＮ－ＤＩＣＫＥＮＳＯＮ、Ｓａｎｄｙ，ＵＴ）で気管にカニューレを挿入し、カテーテルを小動物人工呼吸器に接続した後、臭化パンクロニウム（０．０４ｍｇ、腹腔内投与）で麻痺させた。マウスは、１００％酸素、および１分当たり１６０呼吸の頻度で、１０ｍｌ／ｋｇの１回換気量で換気した。５％無酸性のエバンスブルーで標識したウシ血清アルブミン（０．１５ｍｇ／ｍｌ、ＳＩＧＭＡ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を含む等浸透圧性の（３２４ｍＯｓｍ）０．９％ ＮａＣｌ溶液３００ｍｌを、１０秒にわたって気管内カテーテルに注入し、その後２００μｌの空気を注入して液体を肺胞腔に配置した。マウスを３０度に傾けて仰臥位を維持し、３０分間換気した後、両側気胸を作製するために開胸し、気管カテーテルからの流体の吸引を容易にした。吸引液中のタンパク質濃度は、Ｂｒａｄｆｏｒｄアッセイ（ＢＩＯ－ＲＡＤ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＩＥＳ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）を使用して評価し、ＡＦＣは以下の式を用いて計算した：ＡＦＣ＝１－（Ｃ０／Ｃ３０）、式中、Ｃ０は、注入前の注入液のタンパク質濃度であり、Ｃ３０は、３０分の機械的換気の終わりに得られた試料のタンパク質濃度である。クリアランスは、排出された総注入量／３０分のパーセンテージとして表される。プロカテロール（特異的β２ＡＲアゴニスト、１０－８Ｍ）を陽性対照として注入液中で投与した。
湿潤乾燥比の測定
ＬＰＳ誘発急性肺損傷の総肺水分含有量への影響は、ＬＰＳの注入から７２時間後に決定した。マウスを左腎動脈および左腎静脈の断裂により失血させた後、肺を切除し、表面の液体を吸い取った。湿潤肺重量を評価し、７０℃のハイブリダイゼーションオーブンに７２時間肺を入れた後、安定した乾燥重量を得た。
気管支肺胞洗浄（ＢＡＬ）分析
ＢＡＬは、Ｌｉｎ，Ｘ．，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ ２３：４８９－９９およびＭｕｔｌｕ，Ｇ．Ｍ．，ｅｔ ａｌ．，Ａｍ Ｊ Ｒｅｓｐｉｒ Ｃｒｉｔ Ｃａｒｅ Ｍｅｄ １７６：５８２－９０に以前に記載されたように行った。簡潔に述べると、滅菌ＰＢＳの２つの別々の０．５ｍｌアリコートを、洗浄のためにマウスの肺に注入した。直ちに処理するために液体を氷上に置き、血球計数器を使用して洗浄液中の細胞の総数を数えた。ＢＡＬからの細胞は、サイトスピン後にＤＩＦＦ－ＱＵＩＫ（商標）（ＳＩＥＭＥＮＳ、Ｎｅｗａｒｋ，ＤＥ）で染色した。
組織学的分析
マウスを屠殺した直後に、２０ｃｃ／ｋｇの１０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）緩衝化ホルマリンで肺を膨張させ、パラフィン包埋切片に使用した。切片（５μｍ）をヘマトキシリンおよびエオシンで染色し、盲検化し、肺の炎症反応および病理学的変化の分析について検討した。
肺透過性分析
肺の透過性は、血液から気道へのエバンスブルー色素（ＥＢＤ）の漏出によって測定した（Ｂａｌｕｋ，Ｐ．，ｅｔ ａｌ．，Ｂｒ Ｊ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ １２６：５２２－８およびＭａｍｍｏｔｏ，Ａ．，ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔ Ｃｏｍｍｕｎ ４：１７５９）。ＬＰＳの気管内投与によりマウス（ｎ＝７～１１）をチャレンジし、１日後、α１－ＥＮａＣまたはβ１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼのみを発現するプラスミドを肺にエレクトロポレーションした。遺伝子導入の４７時間後、尾静脈注射によってＥＢＤ（３０ｍｇ／ｋｇ、ＳＩＧＭＡ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を投与した。１時間後、肺を５ｍｌの滅菌ＰＢＳで灌流して血管系内のＥＢＤを除去し、次いで取り出し、写真を撮影し、６０℃で乾燥させた。２４時間後、３７℃のホルムアミド（ＦＩＳＨＥＲ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ）中でＥＢＤを２４時間抽出し、６２０ｎｍおよび７４０ｎｍで分光光度的に測定することにより定量化し、式Ｅ６２０（ＥＢＤ）＝Ｅ６２０－（１．４２６×Ｅ７４０＋０．０３０）を用いて補正した（Ｓｔａｎｄｉｆｏｒｄ，ＴＪ，ｅｔ ａｌ．，Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ １５５：１５１５－２４）。
ウェスタンブロット分析
ウェスタンブロットは、Ｌｉｎ，Ｘ．，ｅｔ ａｌ．Ａｍ Ｊ Ｒｅｓｐｉｒ Ｃｒｉｔ Ｃａｒｅ Ｍｅｄ １８３：１６８９－９７に以前に記載されたように行った。簡潔に述べると、プロテアーゼ阻害剤を含む溶解緩衝液に肺組織を可溶化した。３０μｇの総タンパク質を１０％ ＳＤＳ－ＰＡＧＥにロードし、ＰＶＤＦ膜に転写し、オクルディン（ＴＨＥＲＭＯ ＦＩＳＨＥＲ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ、Ｗａｌｔｈａｍ，ＭＡ）、ＺＯ－１（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）、またはＧＡＰＤＨ（ＳＩＧＭＡ－ＡＬＤＲＩＣＨ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）に対する一時抗体でプローブした。二次抗体とインキュベーションして展開した後、ＣＨＥＭＩＤＯＣ ＩＭＡＧＩＮＧ ＳＹＳＴＥＭ（ＢＩＯ－ＲＡＤ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ．ＣＡ）を使用してバンドを検出し、ＩＭＡＧＥ ＳＴＵＤＩＯ（商標）ＬＩＴＥソフトウェア（ＬＩ－ＣＯＲ、Ｌｉｎｃｏｌｎ，ＮＥ）またはＩＭＡＧＥ ＬＡＢソフトウェア（ＢＩＯ－ＲＡＤ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）を使用して定量化した。
統計分析
定量的結果は、インビボ試験では平均±ＳＥＭ、インビトロ実験では平均±ＳＤとして表される。データを一元配置ＡＮＯＶＡまたは二元配置ＡＮＯＶＡで統計的に評価し、Ｐ値＜０．０５は統計的に有意であると見なした。
結果
既存のＬＰＳ誘発性肺損傷を有するマウスにＭＲＣＫαを遺伝子導入すると、肺損傷の複数の指標が減少する。
Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼのβ１サブユニットをマウスの肺に遺伝子導入すると、その後のＬＰＳ誘発性肺損傷を防ぎ、既存のＬＰＳ誘発性肺損傷を治療することができる。重量分析によって測定されるこの肺水腫の減少は、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼの機能による肺からの活発な流体除去の増加と、β１サブユニットの過剰発現によって誘発されるバリア機能の増加の両方の組み合わせに起因するものであった。培養細胞では、β１サブユニットがＭＲＣＫαを介してバリア機能をアップレギュレートするシグナルを伝達することが示されたため、ＭＲＣＫαの過剰発現が既存のＬＰＳ誘発性肺損傷を有する肺における肺水腫の減少にもつながり得るかどうかを調べるためにアッセイを行った。
簡潔に述べると、ＬＰＳ（５ｍｇ／ｋｇ）の気管内投与によりマウスの肺を損傷させ、１日後、β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼまたはＭＲＣＫαを発現するプラスミドを個別にまたは組み合わせて肺にエレクトロポレーションした。２日後、湿潤乾燥比、組織学的分析、ＢＡＬタンパク質レベルおよび細胞性の測定によって損傷を評価した。β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼの遺伝子導入により、非発現性の空の対照プラスミド（ｐＣＤＮＡ３）を投与したＬＰＳ損傷動物と比較して、湿潤乾燥比の低下（図１７）、損傷の組織学的徴候の減少（図１８）、ならびにマウスのＢＡＬＦ中の総細胞数およびＰＭＮ数の減少がもたらされた（図１９）。これらの結果は、前述した以前の知見を裏付けるものである。
ＭＲＣＫαの遺伝子導入だけで、ｐｃＤＮＡ３と比較して、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼのβ１サブユニットよりもわずかに大きい程度まで動物の湿潤乾燥比を低下させ、組織学による肺損傷の軽減、ならびにいくらか減少したレベルのＢＡＬ中の総細胞数およびＰＭＮを示したが、その減少は統計的有意性に達しなかった（図１５～図１９）。しかしながら、β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼまたはＭＲＣＫαプラスミドの両方がマウスに同時送達された場合に、最も程度の高い治療効果が見られた。これらの結果は、マウスにおける既存の急性肺損傷を治療するためにＭＲＣＫαを単独で使用できることを示唆しているが、最大の効果はβ１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ遺伝子導入と組み合わせても同様に見られる可能性がある。
ＭＲＣＫαの遺伝子導入だけで、ＬＰＳ損傷肺のタイトジャンクション構成タンパク質のレベルを増加させる。
ＭＲＣＫαの遺伝子導入だけで、培養細胞で見られるように、およびβ１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼの遺伝子導入後にマウスの肺で見られるように、タイトジャンクション構成タンパク質のレベルを増加できるかどうかを判断するために、健康な肺およびＬＰＳ損傷肺の両方でタイトジャンクション構成タンパク質ＺＯ－１およびオクルディンの発現を測定した。ＬＰＳによる肺の損傷は、ＺＯ－１とオクルディンの両方のレベルを低下させた。図２０に示すように、生理食塩水または対照プラスミドｐｃＤＮＡ３の送達は、ＬＰＳ損傷動物におけるＺＯ－１またはオクルディンの発現に影響を与えなかった。対照的に、β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ、ＭＲＣＫα、またはこれら２つの組み合わせを発現するプラスミドの送達は、健康な動物におけるＺＯ－１とオクルディンの両方の発現を３～４倍と大幅に増強した。β１がＭＲＣＫαを介してシグナルを伝達すると仮定すると、これらのタイトジャンクション構成タンパク質の誘導に、プラスミドの単独または組み合わせによる違いは見られなかった。これらの結果は、膜のタイトジャンクション構成タンパク質レベルおよびタイトジャンクション活性を増加させるにはＭＲＣＫαの遺伝子導入のみで十分であるという培養細胞における知見を裏付けるものである。
Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットおよび／またはＭＲＣＫαのいずれかの遺伝子導入により、マウスのＬＰＳ損傷肺の透過性が改善される。
タイトジャンクションのβ１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼおよびＭＲＣＫαによる調節がＬＰＳ誘発性ＡＬＩの治療に寄与するかどうかをさらに調べるために、血液から気道へのエバンスブルー色素の漏出によって肺透過性を測定した。内皮および／または上皮バリアの破壊により、ＬＰＳに応答した肺漏出は、ナイーブマウスと比較して３倍～４倍増加した（図２１）。ＬＰＳ注入後の対照プラスミドｐｃＤＮＡ３の導入は、肺漏出に変化をもたらさず、またエレクトロポレーションの非存在下でのＰＢＳの投与も変化をもたらさなかった。β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼの遺伝子導入は、ＭＲＣＫα単独またはβ１サブユニットと組み合わせた遺伝子導入と同様に、ＬＰＳ単独と比較して、以前にＬＰＳによって誘発された肺漏出を著しく減少させた。まとめると、これらの結果は、ＭＲＣＫαの遺伝子導入が肺漏出の阻害に重要な役割を果たし、したがって内皮および／または上皮バリア（複数可）を機能的に増強することを示唆している。
Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットの過剰発現は、マウスの肺における肺胞液クリアランスを増強するが、ＭＲＣＫαは増強しない。
以前の研究では、エレクトロポレーションを介したβ１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ遺伝子導入により、肺胞液クリアランス（ＡＦＣ）が単離されたラットの肺で７４％、マウスの肺で４３％増加したことが報告されている。培養細胞における結果は、β１Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼによるＭＲＣＫαの活性化を示しているが、この活性化が双方向であるかどうか、すなわちＭＲＣＫαもまたβ１Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼを活性化することができ、ＡＦＣの増加をもたらすかどうかを調べるためにアッセイが行われた。
ＭＲＣＫαの過剰発現がＡＦＣの増加をもたらすかどうかを決定するために、β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼまたはＭＲＣＫαをコードするプラスミドを、個別に、または組み合わせて、吸引およびエレクトロポレーションによりマウスの肺に送達した。２日後、換気、酸素添加、および血清ｐＨを維持する、機械的に換気された無傷の肺モデルの変更例を使用して、生きたマウスでＡＦＣを測定した（図２２）。Ｍｕｔｌｕ，ＧＭ，ｅｔ ａｌ．，Ｃｉｒｃ Ｒｅｓ ９４：１０９１－１００およびＭｕｔｌｕ，ＧＭ，ｅｔ ａｌ．，Ｃｉｒｃ Ｒｅｓ ９６：９９９－１００５。
空のプラスミドであるｐｃＤＮＡ３のエレクトロポレーションは、ナイーブマウスと比較してＡＦＣを増加させなかった。対照的に、β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼの遺伝子導入は、ＡＦＣを１１５％有意に増加させ、これは以前に見られたものよりも高かった（Ｍｕｔｌｕ，ＧＭ，ｅｔ ａｌ．，Ｃｉｒｃ Ｒｅｓ ９４：１０９１－１００およびＭｕｔｌｕ，ＧＭ，ｅｔ ａｌ．，Ｃｉｒｃ Ｒｅｓ ９６：９９９－１００５）。同様に、肺胞上皮β２－アドレナリン受容体特異的アゴニストであるプロカテロール（１０－８ｍｏｌ／Ｌ）を注入液に含めると、ＡＦＣが１４５％増加した。しかしながら、エレクトロポレーション後にマウスの肺でＭＲＣＫαを過剰発現させた場合、ｐｃＤＮＡ３で見られたまたはナイーブな動物に見られたものを上回るＡＦＣの増加は見られなかった。さらに、β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼと組み合わせたＭＲＣＫαのマウス肺へのエレクトロポレーションは、β１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ単独で見られるものを超えてＡＦＣを有意に増加させることができなかった。これらの結果は、ＭＲＣＫαがＡＦＣを駆動するβ１－Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼイオンチャネル活性を増加させるために信号を戻さないことを示唆している。
総合すると、この結果は、マウスの肺におけるＭＲＣＫαの過剰発現だけで、タイトジャンクション構成タンパク質レベルをアップレギュレートすることにより、既存のＬＰＳ誘発性急性肺損傷を治療することができ、その結果、肺胞－毛細血管上皮－内皮バリア機能を改善することを明確に示している。ＭＲＣＫα単独での遺伝子送達後、肺水腫が減少し、組織学的肺損傷が軽減し、浸潤する好中球の数が減少し、肺透過性が低下するが、これらは全て、速度または肺胞液クリアランスに影響を与えない。さらに、Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼβ１サブユニットと同時投与すると、その効果はさらに顕著になる。これは、ＭＲＣＫαの過剰発現がＡＬＩ／ＡＲＤＳの治療として使用され得ることを示唆するものである。
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８．Ｐｅｔｅｒａｎｄｅｒｌ Ｃ，Ｍｏｒａｌｅｓ－Ｎｅｂｒｅｄａ Ｌ，Ｓｅｌｖａｋｕｍａｒ Ｂ，Ｌｅｃｕｏｎａ Ｅ，Ｖａｄａｓｚ Ｉ，Ｍｏｒｔｙ ＲＥ，ｅｔ ａｌ．Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ－ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｐａｒａｃｒｉｎｅ ｃｒｏｓｓｔａｌｋ ｉｎｈｉｂｉｔｓ ｌｕｎｇ ｅｄｅｍａ ｃｌｅａｒａｎｃｅ ｄｕｒｉｎｇ ｉｎｆｌｕｅｎｚａ ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ．２０１６；１２６（４）：１５６６－８０．
９．Ｎｉｅｔｏ－Ｔｏｒｒｅｓ ＪＬ，Ｄｅｄｉｅｇｏ ＭＬ，Ｖｅｒｄｉａ－Ｂａｇｕｅｎａ Ｃ，Ｊｉｍｅｎｅｚ－Ｇｕａｒｄｅｎｏ ＪＭ，Ｒｅｇｌａ－Ｎａｖａ ＪＡ，Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ－Ｄｅｌｇａｄｏ Ｒ，ｅｔ ａｌ．Ｓｅｖｅｒｅ ａｃｕｔｅ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ｓｙｎｄｒｏｍｅ ｃｏｒｏｎａｖｉｒｕｓ ｅｎｖｅｌｏｐｅ ｐｒｏｔｅｉｎ ｉｏｎ ｃｈａｎｎｅｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｐｒｏｍｏｔｅｓ ｖｉｒｕｓ ｆｉｔｎｅｓｓ ａｎｄ ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ．ＰＬｏＳ ｐａｔｈｏｇｅｎｓ．２０１４；１０（５）：ｅ１００４０７７．
１０．Ｈｅｌｅｎｉｕｓ ＩＴ，Ｄａｄａ ＬＡ，ａｎｄ Ｓｚｎａｊｄｅｒ ＪＩ．Ｒｏｌｅ ｏｆ ｕｂｉｑｕｉｔｉｎａｔｉｏｎ ｉｎ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｄｕｒｉｎｇ ｌｕｎｇ ｉｎｊｕｒｙ．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｈｏｒａｃｉｃ Ｓｏｃｉｅｔｙ．２０１０；７（１）：６５－７０．
１１．Ｃｏｍｅｌｌａｓ ＡＰ，Ｂｒｉｖａ Ａ，Ｄａｄａ ＬＡ，Ｂｕｔｔｉ ＭＬ，Ｔｒｅｊｏ ＨＥ，Ｙｓｈｉｉ Ｃ，ｅｔ ａｌ．Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉｎ－１ ｉｍｐａｉｒｓ ａｌｖｅｏｌａｒ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｖｉａ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ＥＴＢ ｒｅｃｅｐｔｏｒ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ａｎｄ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｃａｒｅ ｍｅｄｉｃｉｎｅ．２００９；１７９（２）：１１３－２２．
１２．Ｆａｃｔｏｒ Ｐ，Ｄｕｍａｓｉｕｓ Ｖ，Ｓａｌｄｉａｓ Ｆ，ａｎｄ Ｓｚｎａｊｄｅｒ ＪＩ．Ａｄｅｎｏｖｉｒａｌ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｏｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ＮＡ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｂｅｔａ１ ｓｕｂｕｎｉｔ ｇｅｎｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｌｕｎｇ ｅｄｅｍａ ｃｌｅａｒａｎｃｅ ａｎｄ ｉｍｐｒｏｖｅｓ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｄｕｒｉｎｇ ａｃｕｔｅ ｈｙｐｅｒｏｘｉｃ ｌｕｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ｉｎ ｒａｔｓ．Ｃｈｅｓｔ．１９９９；１１６（１ Ｓｕｐｐｌ）：２４Ｓ－５Ｓ．
１３．Ｆａｃｔｏｒ Ｐ，Ｄｕｍａｓｉｕｓ Ｖ，Ｓａｌｄｉａｓ Ｆ，Ｂｒｏｗｎ ＬＡ，ａｎｄ Ｓｚｎａｊｄｅｒ ＪＩ．Ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｏｆ ａｎ Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰａｓｅ ｂｅｔａ１ ｓｕｂｕｎｉｔ ｇｅｎｅ ｉｍｐｒｏｖｅｓ ａｌｖｅｏｌａｒ ｆｌｕｉｄ ｃｌｅａｒａｎｃｅ ａｎｄ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｉｎ ｈｙｐｅｒｏｘｉｃ ｒａｔｓ．Ｈｕｍ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．２０００；１１（１６）：２２３１－４２．
１４．Ａｄｉｒ Ｙ，Ｆａｃｔｏｒ Ｐ，Ｄｕｍａｓｉｕｓ Ｖ，Ｒｉｄｇｅ ＫＭ，ａｎｄ Ｓｚｎａｊｄｅｒ ＪＩ．Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｌｉｑｕｉｄ ｃｌｅａｒａｎｃｅ ｄｕｒｉｎｇ ｖｅｎｔｉｌａｔｉｏｎ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｌｕｎｇ ｉｎｊｕｒｙ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ａｎｄ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｃａｒｅ ｍｅｄｉｃｉｎｅ．２００３；１６８（１２）：１４４５－８．
１５．Ｍａｃｈａｄｏ－Ａｒａｎｄａ Ｄ，Ａｄｉｒ Ｙ，Ｙｏｕｎｇ ＪＬ，Ｂｒｉｖａ Ａ，Ｂｕｄｉｎｇｅｒ ＧＲ，Ｙｅｌｄａｎｄｉ ＡＶ，ｅｔ ａｌ．Ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａ＋，Ｋ＋－ＡＴＰａｓｅ ｂｅｔａ１ ｓｕｂｕｎｉｔ ｕｓｉｎｇ ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｌｕｎｇ ｌｉｑｕｉｄ ｃｌｅａｒａｎｃｅ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ａｎｄ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｃａｒｅ ｍｅｄｉｃｉｎｅ．２００５；１７１（３）：２０４－１１．
１６．Ｍｕｔｌｕ ＧＭ，Ｍａｃｈａｄｏ－Ａｒａｎｄａ Ｄ，Ｎｏｒｔｏｎ ＪＥ，Ｂｅｌｌｍｅｙｅｒ Ａ，Ｕｒｉｃｈ Ｄ，Ｚｈｏｕ Ｒ，ｅｔ ａｌ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａ＋，Ｋ＋ －ＡＴＰａｓｅ ｒｅｓｃｕｅｓ ｅｎｄｏｔｏｘｉｎ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｌｕｎｇ ｉｎｊｕｒｙ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ａｎｄ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｃａｒｅ ｍｅｄｉｃｉｎｅ．２００７；１７６（６）：５８２－９０．
１７．Ｅｍｒ ＢＭ，Ｒｏｙ Ｓ，Ｋｏｌｌｉｓｃｈ－Ｓｉｎｇｕｌｅ Ｍ，Ｇａｔｔｏ ＬＡ，Ｂａｒｒａｖｅｃｃｈｉａ Ｍ，Ｌｉｎ Ｘ，ｅｔ ａｌ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｇｅｎｅ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ Ｎａ＋，Ｋ＋ －ＡＴＰａｓｅ，ａｎｄ ＥＮａＣ ｓｕｂｕｎｉｔｓ ｔｏ ｔｈｅ ｌｕｎｇ ａｔｔｅｎｕａｔｅｓ ａｃｕｔｅ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ｄｉｓｔｒｅｓｓ ｓｙｎｄｒｏｍｅ ｉｎ ａ ｔｗｏ－ｈｉｔ ｐｏｒｃｉｎｅ ｍｏｄｅｌ．Ｓｈｏｃｋ．２０１５；４３（１）：１６－２３．
１８．Ｌｉｎ Ｘ，Ｂａｒｒａｖｅｃｃｈｉａ Ｍ，Ｋｏｔｈａｒｉ Ｐ，Ｙｏｕｎｇ ＪＬ，ａｎｄ Ｄｅａｎ ＤＡ． ｂｅｔａ１－Ｎａ（＋），Ｋ（＋）－ＡＴＰａｓｅ ｇｅｎｅ ｔｈｅｒａｐｙ ｕｐｒｅｇｕｌａｔｅｓ ｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎｓ ｔｏ ｒｅｓｃｕｅ ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ－ｉｎｄｕｃｅｄ ａｃｕｔｅ ｌｕｎｇ ｉｎｊｕｒｙ．Ｇｅｎｅ ｔｈｅｒａｐｙ．２０１６；２３（６）：４８９－９９．
１９．Ｍａｒｃｏｎｅｔｔ ＣＮ，Ｚｈｏｕ Ｂ，Ｓｕｎｏｈａｒａ Ｍ，Ｐｏｕｌｄａｒ ＴＭ，Ｗａｎｇ Ｈ，Ｌｉｕ Ｙ，ｅｔ ａｌ．Ｃｒｏｓｓ－Ｓｐｅｃｉｅｓ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｅ Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ Ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｓ Ｎｅｗ Ａｌｖｅｏｌａｒ Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ Ｔｙｐｅ Ｉ Ｃｅｌｌ－Ｓｐｅｃｉｆｉｃ Ｇｅｎｅｓ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ｃｅｌｌ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１７；５６（３）：３１０－２１．
２０．Ｃｈｅｅｋ ＪＭ，Ｅｖａｎｓ ＭＪ，ａｎｄ Ｃｒａｎｄａｌｌ ＥＤ．Ｔｙｐｅ Ｉ ｃｅｌｌ－ｌｉｋｅ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ｉｎ ｔｉｇｈｔ ａｌｖｅｏｌａｒ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｍｏｎｏｌａｙｅｒｓ．Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ｃｅｌｌ ｒｅｓｅａｒｃｈ．１９８９；１８４（２）：３７５－８７．
２１．Ｗａｎ Ｈ，Ｗｉｎｔｏｎ ＨＬ，Ｓｏｅｌｌｅｒ Ｃ，Ｓｔｅｗａｒｔ ＧＡ，Ｔｈｏｍｐｓｏｎ ＰＪ，Ｇｒｕｅｎｅｒｔ ＤＣ，ｅｔ ａｌ．Ｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｉｍｍｏｒｔａｌｉｚｅｄ ｈｕｍａｎ ｂｒｏｎｃｈｉａｌ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅｓ Ｃａｌｕ－３ ａｎｄ １６ＨＢＥ１４ｏ．Ｔｈｅ Ｅｕｒｏｐｅａｎ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ｊｏｕｒｎａｌ．２０００；１５（６）：１０５８－６８．
２２．Ｈａｓｌｅｒ Ｕ，Ｗａｎｇ Ｘ，Ｃｒａｍｂｅｒｔ Ｇ，Ｂｅｇｕｉｎ Ｐ，Ｊａｉｓｓｅｒ Ｆ，Ｈｏｒｉｓｂｅｒｇｅｒ ＪＤ，ｅｔ ａｌ．Ｒｏｌｅ ｏｆ ｂｅｔａ－ｓｕｂｕｎｉｔ ｄｏｍａｉｎｓ ｉｎ ｔｈｅ ａｓｓｅｍｂｌｙ，ｓｔａｂｌｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ，ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｒｏｕｔｉｎｇ，ａｎｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．１９９８；２７３（４６）：３０８２６－３５．
２３．Ｐａｏｌｅｔｔｉ ＡＣ，Ｐａｒｍｅｌｙ ＴＪ，Ｔｏｍｏｍｏｒｉ－Ｓａｔｏ Ｃ，Ｓａｔｏ Ｓ，Ｚｈｕ Ｄ，Ｃｏｎａｗａｙ ＲＣ，ｅｔ ａｌ．Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ ｐｒｏｔｅｏｍｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｍａｍｍａｌｉａｎ Ｍｅｄｉａｔｏｒ ｃｏｍｐｌｅｘｅｓ ｕｓｉｎｇ ｎｏｒｍａｌｉｚｅｄ ｓｐｅｃｔｒａｌ ａｂｕｎｄａｎｃｅ ｆａｃｔｏｒｓ．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ．２００６；１０３（５０）：１８９２８－３３．
２４．Ａｓｈｂｕｒｎｅｒ Ｍ，Ｂａｌｌ ＣＡ，Ｂｌａｋｅ ＪＡ，Ｂｏｔｓｔｅｉｎ Ｄ，Ｂｕｔｌｅｒ Ｈ，Ｃｈｅｒｒｙ ＪＭ，ｅｔ ａｌ．Ｇｅｎｅ ｏｎｔｏｌｏｇｙ：ｔｏｏｌ ｆｏｒ ｔｈｅ ｕｎｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｙ．Ｔｈｅ Ｇｅｎｅ Ｏｎｔｏｌｏｇｙ Ｃｏｎｓｏｒｔｉｕｍ．Ｎａｔ Ｇｅｎｅｔ．２０００；２５（１）：２５－９．
２５．Ｔｈｅ Ｇｅｎｅ Ｏｎｔｏｌｏｇｙ Ｃ． Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｇｅｎｅ Ｏｎｔｏｌｏｇｙ ｋｎｏｗｌｅｄｇｅｂａｓｅ ａｎｄ ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ．Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２０１７；４５（Ｄ１）：Ｄ３３１－Ｄ８．
２６．Ｃａｍｐｏｓ Ｙ，Ｑｉｕ Ｘ，Ｇｏｍｅｒｏ Ｅ，Ｗａｋｅｆｉｅｌｄ Ｒ，Ｈｏｒｎｅｒ Ｌ，Ｂｒｕｔｋｏｗｓｋｉ Ｗ，ｅｔ ａｌ．Ａｌｉｘ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｓｓｅｍｂｌｙ ｏｆ ｔｈｅ ａｃｔｏｍｙｏｓｉｎ－ｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎ ｐｏｌａｒｉｔｙ ｃｏｍｐｌｅｘ ｐｒｅｓｅｒｖｅｓ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｐｏｌａｒｉｔｙ ａｎｄ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｂａｒｒｉｅｒ．Ｎａｔ Ｃｏｍｍｕｎ．２０１６；７：１１８７６．
２７．Ｌｅｕｎｇ Ｔ，Ｃｈｅｎ ＸＱ，Ｔａｎ Ｉ，Ｍａｎｓｅｒ Ｅ，ａｎｄ Ｌｉｍ Ｌ． Ｍｙｏｔｏｎｉｃ ｄｙｓｔｒｏｐｈｙ ｋｉｎａｓｅ－ｒｅｌａｔｅｄ Ｃｄｃ４２－ｂｉｎｄｉｎｇ ｋｉｎａｓｅ ａｃｔｓ ａｓ ａ Ｃｄｃ４２ ｅｆｆｅｃｔｏｒ ｉｎ ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ ｃｙｔｏｓｋｅｌｅｔａｌ ｒｅｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ．Ｍｏｌ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１９９８；１８（１）：１３０－４０．
２８．Ｔａｎ Ｉ，Ｓｅｏｗ ＫＴ，Ｌｉｍ Ｌ，ａｎｄ Ｌｅｕｎｇ Ｔ． Ｉｎｔｅｒｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎｄ ｉｎｔｒａｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｒｅｇｕｌａｔｅ ｃａｔａｌｙｔｉｃ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｍｙｏｔｏｎｉｃ ｄｙｓｔｒｏｐｈｙ ｋｉｎａｓｅ－ｒｅｌａｔｅｄ Ｃｄｃ４２－ｂｉｎｄｉｎｇ ｋｉｎａｓｅ ａｌｐｈａ．Ｍｏｌ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．２００１；２１（８）：２７６７－７８．
２９．Ｕｎｂｅｋａｎｄｔ Ｍ，ａｎｄ Ｏｌｓｏｎ ＭＦ．Ｔｈｅ ａｃｔｉｎ－ｍｙｏｓｉｎ ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ ＭＲＣＫ ｋｉｎａｓｅｓ：ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ，ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ ａｎｄ ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ｈｕｍａｎ ｃａｎｃｅｒ．Ｊ Ｍｏｌ Ｍｅｄ（Ｂｅｒｌ）．２０１４；９２（３）：２１７－２５．
３０．Ａｎｄｏ Ｋ，Ｆｕｋｕｈａｒａ Ｓ，Ｍｏｒｉｙａ Ｔ，Ｏｂａｒａ Ｙ，Ｎａｋａｈａｔａ Ｎ，ａｎｄ Ｍｏｃｈｉｚｕｋｉ Ｎ． Ｒａｐ１ ｐｏｔｅｎｔｉａｔｅｓ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ｊｕｎｃｔｉｏｎｓ ｂｙ ｓｐａｔｉａｌｌｙ ｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇ ｍｙｏｓｉｎ ＩＩ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｎｄ ａｃｔｉｎ ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｃｅｌｌ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１３；２０２（６）：９０１－１６．
３１．Ｇａｇｌｉａｒｄｉ ＰＡ，ｄｉ Ｂｌａｓｉｏ Ｌ，Ｐｕｌｉａｆｉｔｏ Ａ，Ｓｅａｎｏ Ｇ，Ｓｅｓｓａ Ｒ，Ｃｈｉａｎａｌｅ Ｆ，ｅｔ ａｌ．ＰＤＫ１－ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ＭＲＣＫａｌｐｈａ ｒｅｇｕｌａｔｅｓ ｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ ｃｅｌｌ ｍｉｇｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｌａｍｅｌｌｉｐｏｄｉａ ｒｅｔｒａｃｔｉｏｎ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｃｅｌｌ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１４；２０６（３）：４１５－３４．
３２．Ｗｉｌｋｉｎｓｏｎ Ｓ，Ｐａｔｅｒｓｏｎ ＨＦ，ａｎｄ Ｍａｒｓｈａｌｌ ＣＪ．Ｃｄｃ４２－ＭＲＣＫ ａｎｄ Ｒｈｏ－ＲＯＣＫ ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ ｃｏｏｐｅｒａｔｅ ｉｎ ｍｙｏｓｉｎ ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｅｌｌ ｉｎｖａｓｉｏｎ．Ｎａｔｕｒｅ ｃｅｌｌ ｂｉｏｌｏｇｙ．２００５；７（３）：２５５－６１．
３３．Ｚｉｈｎｉ Ｃ，Ｖｌａｓｓａｋｓ Ｅ，Ｔｅｒｒｙ Ｓ，Ｃａｒｌｔｏｎ Ｊ，Ｌｅｕｎｇ ＴＫＣ，Ｏｌｓｏｎ Ｍ，ｅｔ ａｌ．Ａｎ ａｐｉｃａｌ ＭＲＣＫ－ｄｒｉｖｅｎ ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｔｉｃ ｐａｔｈｗａｙ ｃｏｎｔｒｏｌｓ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｐｏｌａｒｉｔｙ．Ｎａｔｕｒｅ ｃｅｌｌ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１７；１９（９）：１０４９－６０．
３４．Ｍａｒｓｔｏｎ ＤＪ，Ｈｉｇｇｉｎｓ ＣＤ，Ｐｅｔｅｒｓ ＫＡ，Ｃｕｐｐ ＴＤ，Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ＤＪ，Ｐａｎｉ ＡＭ，ｅｔ ａｌ．ＭＲＣＫ－１ Ｄｒｉｖｅｓ Ａｐｉｃａｌ Ｃｏｎｓｔｒｉｃｔｉｏｎ ｉｎ Ｃ． ｅｌｅｇａｎｓ ｂｙ Ｌｉｎｋｉｎｇ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ Ｐａｔｔｅｒｎｉｎｇ ｔｏ Ｆｏｒｃｅ Ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ．Ｃｕｒｒ Ｂｉｏｌ．２０１６；２６（１６）：２０７９－８９．
３５．Ｕｎｂｅｋａｎｄｔ Ｍ，Ｃｒｏｆｔ ＤＲ，Ｃｒｉｇｈｔｏｎ Ｄ，Ｍｅｚｎａ Ｍ，ＭｃＡｒｔｈｕｒ Ｄ，ＭｃＣｏｎｎｅｌｌ Ｐ，ｅｔ ａｌ．Ａ ｎｏｖｅｌ ｓｍａｌｌ－ｍｏｌｅｃｕｌｅ ＭＲＣＫ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｂｌｏｃｋｓ ｃａｎｃｅｒ ｃｅｌｌ ｉｎｖａｓｉｏｎ．Ｃｅｌｌ Ｃｏｍｍｕｎ Ｓｉｇｎａｌ．２０１４；１２：５４．
３６．Ｓｕｍｉ Ｔ，Ｍａｔｓｕｍｏｔｏ Ｋ，Ｓｈｉｂｕｙａ Ａ，ａｎｄ Ｎａｋａｍｕｒａ Ｔ． Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ＬＩＭ ｋｉｎａｓｅｓ ｂｙ ｍｙｏｔｏｎｉｃ ｄｙｓｔｒｏｐｈｙ ｋｉｎａｓｅ－ｒｅｌａｔｅｄ Ｃｄｃ４２－ｂｉｎｄｉｎｇ ｋｉｎａｓｅ ａｌｐｈａ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．２００１；２７６（２５）：２３０９２－６．
３７．Ｔａｎ Ｉ，Ｙｏｎｇ Ｊ，Ｄｏｎｇ ＪＭ，Ｌｉｍ Ｌ，ａｎｄ Ｌｅｕｎｇ Ｔ． Ａ ｔｒｉｐａｒｔｉｔｅ ｃｏｍｐｌｅｘ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ＭＲＣＫ ｍｏｄｕｌａｔｅｓ ｌａｍｅｌｌａｒ ａｃｔｏｍｙｏｓｉｎ ｒｅｔｒｏｇｒａｄｅ ｆｌｏｗ．Ｃｅｌｌ．２００８；１３５（１）：１２３－３６．
３８．Ｌｅｅ ＩＣ，Ｌｅｕｎｇ Ｔ，ａｎｄ Ｔａｎ Ｉ． Ａｄａｐｔｏｒ ｐｒｏｔｅｉｎ ＬＲＡＰ２５ ｍｅｄｉａｔｅｓ ｍｙｏｔｏｎｉｃ ｄｙｓｔｒｏｐｈｙ ｋｉｎａｓｅ－ｒｅｌａｔｅｄ Ｃｄｃ４２－ｂｉｎｄｉｎｇ ｋｉｎａｓｅ（ＭＲＣＫ）ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ＬＩＭＫ１ ｐｒｏｔｅｉｎ ｉｎ ｌａｍｅｌｌｉｐｏｄｉａｌ Ｆ－ａｃｔｉｎ ｄｙｎａｍｉｃｓ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．２０１４；２８９（３９）：２６９８９－７００３．
３９．Ｓｐａｄａｒｏ Ｄ，Ｌｅ Ｓ，Ｌａｒｏｃｈｅ Ｔ，Ｍｅａｎ Ｉ，Ｊｏｎｄ Ｌ，Ｙａｎ Ｊ，ｅｔ ａｌ．Ｔｅｎｓｉｏｎ－Ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ Ｓｔｒｅｔｃｈｉｎｇ Ａｃｔｉｖａｔｅｓ ＺＯ－１ ｔｏ Ｃｏｎｔｒｏｌ ｔｈｅ Ｊｕｎｃｔｉｏｎａｌ Ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｉｔｓ Ｉｎｔｅｒａｃｔｏｒｓ．Ｃｕｒｒ Ｂｉｏｌ．２０１７；２７（２４）：３７８３－９５ ｅ８．
４０．Ｓｈｅｎ Ｌ，ａｎｄ Ｔｕｒｎｅｒ ＪＲ．Ａｃｔｉｎ ｄｅｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｄｉｓｒｕｐｔｓ ｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎｓ ｖｉａ ｃａｖｅｏｌａｅ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｅｎｄｏｃｙｔｏｓｉｓ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ ｃｅｌｌ．２００５；１６（９）：３９１９－３６．
４１．Ｎｉｇｈｏｔ ＰＫ，ａｎｄ Ｂｌｉｋｓｌａｇｅｒ ＡＴ．Ｃｈｌｏｒｉｄｅ ｃｈａｎｎｅｌ ＣｌＣ－２ ｍｏｄｕｌａｔｅｓ ｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎ ｂａｒｒｉｅｒ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｖｉａ ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ ｏｆ ｏｃｃｌｕｄｉｎ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ Ｃｅｌｌ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ．２０１２；３０２（１）：Ｃ１７８－８７．
４２．Ｍａｒｃｈｉａｎｄｏ ＡＭ，Ｓｈｅｎ Ｌ，Ｇｒａｈａｍ ＷＶ，Ｗｅｂｅｒ ＣＲ，Ｓｃｈｗａｒｚ ＢＴ，Ａｕｓｔｉｎ ＪＲ，２ｎｄ，ｅｔ ａｌ．Ｃａｖｅｏｌｉｎ－１－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｏｃｃｌｕｄｉｎ ｅｎｄｏｃｙｔｏｓｉｓ ｉｓ ｒｅｑｕｉｒｅｄ ｆｏｒ ＴＮＦ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎ ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｉｎ ｖｉｖｏ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｃｅｌｌ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１０；１８９（１）：１１１－２６．
４３．Ｓｍｕｔｎｙ Ｍ，Ｃｏｘ ＨＬ，Ｌｅｅｒｂｅｒｇ ＪＭ，Ｋｏｖａｃｓ ＥＭ，Ｃｏｎｔｉ ＭＡ，Ｆｅｒｇｕｓｏｎ Ｃ，ｅｔ ａｌ．Ｍｙｏｓｉｎ ＩＩ ｉｓｏｆｏｒｍｓ ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｍｏｄｕｌｅｓ ｔｈａｔ ｓｕｐｐｏｒｔ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｚｏｎｕｌａ ａｄｈｅｒｅｎｓ．Ｎａｔｕｒｅ ｃｅｌｌ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１０；１２（７）：６９６－Ｕ１４７．
４４．Ｉｔｏｈ Ｍ，Ｔｓｕｋｉｔａ Ｓ，Ｙａｍａｚａｋｉ Ｙ，ａｎｄ Ｓｕｇｉｍｏｔｏ Ｈ． Ｒｈｏ ＧＴＰ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｆａｃｔｏｒ ＡＲＨＧＥＦ１１ ｒｅｇｕｌａｔｅｓ ｔｈｅ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ｏｆ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｊｕｎｃｔｉｏｎｓ ｂｙ ｃｏｎｎｅｃｔｉｎｇ ＺＯ－１ ａｎｄ ＲｈｏＡ－ｍｙｏｓｉｎ ＩＩ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ．Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ Ｕ Ｓ Ａ．２０１２；１０９（２５）：９９０５－１０．
４５．Ｅｍｒ ＢＭ，Ｒｏｙ Ｓ，Ｋｏｌｌｉｓｃｈ－Ｓｉｎｇｕｌｅ Ｍ，Ｇａｔｔｏ ＬＡ，Ｂａｒｒａｖｅｃｃｈｉａ Ｍ，Ｌｉｎ Ｘ，ｅｔ ａｌ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ Ｍｅｄｉａｔｅｄ Ｇｅｎｅ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ Ｎａ＋，Ｋ＋－ＡＴＰａｓｅ ａｎｄ ＥＮａＣ Ｓｕｂｕｎｉｔｓ ｔｏ ｔｈｅ Ｌｕｎｇ Ａｔｔｅｎｕａｔｅｓ Ａｃｕｔｅ Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ Ｄｉｓｔｒｅｓｓ Ｓｙｎｄｒｏｍｅ ｉｎ ａ Ｔｗｏ－Ｈｉｔ Ｐｏｒｃｉｎｅ Ｍｏｄｅｌ．Ｓｈｏｃｋ．２０１４．
４６．Ｇｒｚｅｓｉｋ ＢＡ，Ｖｏｈｗｉｎｋｅｌ ＣＵ，Ｍｏｒｔｙ ＲＥ，Ｍａｙｅｒ Ｋ，Ｈｅｒｏｌｄ Ｓ，Ｓｅｅｇｅｒ Ｗ，ｅｔ ａｌ．Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｇｅｎｅ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｔｏ ｐｒｉｍａｒｙ ａｌｖｅｏｌａｒ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌｓ ｂｙ ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｉｏｎ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ Ｌｕｎｇ ｃｅｌｌｕｌａｒ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ．２０１３；３０５（１１）：Ｌ７８６－９４．
４７．Ｔｏｒｒｅｓ－Ｆｌｏｒｅｓ ＪＭ，ａｎｄ Ａｒｉａｓ ＣＦ．Ｔｉｇｈｔ Ｊｕｎｃｔｉｏｎｓ Ｇｏ Ｖｉｒａｌ！Ｖｉｒｕｓｅｓ．２０１５；７（９）：５１４５－５４．
４８．Ｈａｃｋｅｔｔ ＴＬ，ｄｅ Ｂｒｕｉｎ ＨＧ，Ｓｈａｈｅｅｎ Ｆ，ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｅｒｇｅ Ｍ，ｖａｎ Ｏｏｓｔｅｒｈｏｕｔ ＡＪ，Ｐｏｓｔｍａ ＤＳ，ｅｔ ａｌ．Ｃａｖｅｏｌｉｎ－１ ｃｏｎｔｒｏｌｓ ａｉｒｗａｙ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｂａｒｒｉｅｒ ｆｕｎｃｔｉｏｎ．Ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ａｓｔｈｍａ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ｃｅｌｌ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１３；４９（４）：６６２－７１．
４９．Ｌｉｎｇｒｅｌ ＪＢ．Ｔｈｅ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｃａｒｄｉｏｔｏｎｉｃ Ｓｔｅｒｏｉｄ／Ｏｕａｂａｉｎ－Ｂｉｎｄｉｎｇ Ｓｉｔｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ．Ａｎｎｕａｌ ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ．２０１０；７２：３９５－４１２．
５０．Ｃｈｅｒｎｉａｖｓｋｙ－Ｌｅｖ Ｍ，Ｇｏｌａｎｉ Ｏ，Ｋａｒｌｉｓｈ ＳＪ，ａｎｄ Ｇａｒｔｙ Ｈ． Ｏｕａｂａｉｎ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｌｙｓｏｓｏｍａｌ ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰａｓｅ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．２０１４；２８９（２）：１０４９－５９．
５１．Ｙｏｓｈｉｍｕｒａ ＳＨ，Ｉｗａｓａｋａ Ｓ，Ｓｃｈｗａｒｚ Ｗ，ａｎｄ Ｔａｋｅｙａｓｕ Ｋ． Ｆａｓｔ ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ａｕｘｉｌｉａｒｙ ｓｕｂｕｎｉｔ ｏｆ Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｐｌａｓｍａ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｏｆ ＨｅＬａ ｃｅｌｌｓ．Ｊ Ｃｅｌｌ Ｓｃｉ．２００８；１２１（Ｐｔ １３）：２１５９－６８．
５２．Ｆｌｏｄｂｙ Ｐ，Ｋｉｍ ＹＨ，Ｂｅａｒｄ ＬＬ，Ｇａｏ Ｄ，Ｊｉ Ｙ，Ｋａｇｅ Ｈ，ｅｔ ａｌ．Ｋｎｏｃｋｏｕｔ Ｍｉｃｅ Ｒｅｖｅａｌ ａ Ｍａｊｏｒ Ｒｏｌｅ ｆｏｒ Ａｌｖｅｏｌａｒ Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ Ｔｙｐｅ Ｉ Ｃｅｌｌｓ ｉｎ Ａｌｖｅｏｌａｒ Ｆｌｕｉｄ Ｃｌｅａｒａｎｃｅ．Ａｍｅｒｉｃａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ｃｅｌｌ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１６．
５３．Ｃｌｉｆｆｏｒｄ ＲＪ，ａｎｄ Ｋａｐｌａｎ ＪＨ．Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｓｕｂｕｎｉｔ ａｂｕｎｄａｎｃｅ ｂｙ ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ ｒｅｐｒｅｓｓｉｏｎ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．２００９；２８４（３４）：２２９０５－１５．
５４．Ｚａｔｙｋａ Ｍ，Ｒｉｃｋｅｔｔｓ Ｃ，ｄａ Ｓｉｌｖａ Ｘａｖｉｅｒ Ｇ，Ｍｉｎｔｏｎ Ｊ，Ｆｅｎｔｏｎ Ｓ，Ｈｏｆｍａｎｎ－Ｔｈｉｅｌ Ｓ，ｅｔ ａｌ．Ｓｏｄｉｕｍ－ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ＡＴＰａｓｅ １ ｓｕｂｕｎｉｔ ｉｓ ａ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐａｒｔｎｅｒ ｏｆ Ｗｏｌｆｒａｍｉｎ，ａｎ ｅｎｄｏｐｌａｓｍｉｃ ｒｅｔｉｃｕｌｕｍ ｐｒｏｔｅｉｎ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ＥＲ ｓｔｒｅｓｓ．Ｈｕｍａｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｇｅｎｅｔｉｃｓ．２００８；１７（２）：１９０－２００．
５５．Ｍｏｒｔｏｎ ＭＪ，Ｆａｒｒ ＧＡ，Ｈｕｌｌ Ｍ，Ｃａｐｅｎｄｅｇｕｙ Ｏ，Ｈｏｒｉｓｂｅｒｇｅｒ ＪＤ，ａｎｄ Ｃａｐｌａｎ ＭＪ．Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｛ｂｅｔａ｝－ＣＯＰ ｒｅｇｕｌａｔｅｓ ｔｈｅ ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ ｎｅｗｌｙ ｓｙｎｔｈｅｓｉｚｅｄ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．２０１０；２８５（４４）：３３７３７－４６．
５６．Ｈａｔｚｏｌｄ Ｊ，Ｂｅｌｅｇｇｉａ Ｆ，Ｈｅｒｚｉｇ Ｈ，Ａｌｔｍｕｌｌｅｒ Ｊ，Ｎｕｒｎｂｅｒｇ Ｐ，Ｂｌｏｃｈ Ｗ，ｅｔ ａｌ．Ｔｕｍｏｒ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｉｎ ｂａｓａｌ ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅｓ ｖｉａ ｄｕａｌ ｎｏｎ－ｃｅｌｌ－ａｕｔｏｎｏｍｏｕｓ ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ａ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｂｅｔａ ｓｕｂｕｎｉｔ．Ｅｌｉｆｅ．２０１６；５．
５７．Ｍａｏ Ｈ，Ｆｅｒｇｕｓｏｎ ＴＳ，Ｃｉｂｕｌｓｋｙ ＳＭ，Ｈｏｌｍｑｖｉｓｔ Ｍ，Ｄｉｎｇ Ｃ，Ｆｅｉ Ｈ，ｅｔ ａｌ．ＭＯＮａＫＡ，ａ ｎｏｖｅｌ ｍｏｄｕｌａｔｏｒ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｓｍａ ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ：ｔｈｅ ｏｆｆｉｃｉａｌ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ．２００５；２５（３５）：７９３４－４３．
５８．Ｂｒｉｇｎｏｎｅ ＭＳ，Ｌａｎｃｉｏｔｔｉ Ａ，Ｍａｃｉｏｃｅ Ｐ，Ｍａｃｃｈｉａ Ｇ，Ｇａｅｔａｎｉ Ｍ，Ａｌｏｉｓｉ Ｆ，ｅｔ ａｌ．Ｔｈｅ ｂｅｔａ１ ｓｕｂｕｎｉｔ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｐｕｍｐ ｉｎｔｅｒａｃｔｓ ｗｉｔｈ ｍｅｇａｌｅｎｃｅｐｈａｌｉｃ ｌｅｕｃｏｅｎｃｅｐｈａｌｏｐａｔｈｙ ｗｉｔｈ ｓｕｂｃｏｒｔｉｃａｌ ｃｙｓｔｓ ｐｒｏｔｅｉｎ １（ＭＬＣ１）ｉｎ ｂｒａｉｎ ａｓｔｒｏｃｙｔｅｓ：ｎｅｗ ｉｎｓｉｇｈｔｓ ｉｎｔｏ ＭＬＣ ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ．Ｈｕｍａｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｇｅｎｅｔｉｃｓ．２０１１；２０（１）：９０－１０３．
５９．Ｌａｎｃｉｏｔｔｉ Ａ，Ｂｒｉｇｎｏｎｅ ＭＳ，Ｍｏｌｉｎａｒｉ Ｐ，Ｖｉｓｅｎｔｉｎ Ｓ，Ｄｅ Ｎｕｃｃｉｏ Ｃ，Ｍａｃｃｈｉａ Ｇ，ｅｔ ａｌ．Ｍｅｇａｌｅｎｃｅｐｈａｌｉｃ ｌｅｕｋｏｅｎｃｅｐｈａｌｏｐａｔｈｙ ｗｉｔｈ ｓｕｂｃｏｒｔｉｃａｌ ｃｙｓｔｓ ｐｒｏｔｅｉｎ １ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｌｙ ｃｏｏｐｅｒａｔｅｓ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ＴＲＰＶ４ ｃａｔｉｏｎ ｃｈａｎｎｅｌ ｔｏ ａｃｔｉｖａｔｅ ｔｈｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｏｆ ａｓｔｒｏｃｙｔｅｓ ｔｏ ｏｓｍｏｔｉｃ ｓｔｒｅｓｓ：ｄｙｓｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｂｙ ｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｍｕｔａｔｉｏｎｓ．Ｈｕｍａｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｇｅｎｅｔｉｃｓ．２０１２；２１（１０）：２１６６－８０．
６０． ｄｅ Ｊｕａｎ－Ｓａｎｚ Ｊ，Ｎｕｎｅｚ Ｅ，Ｖｉｌｌａｒｅｊｏ－Ｌｏｐｅｚ Ｌ，Ｐｅｒｅｚ－Ｈｅｒｎａｎｄｅｚ Ｄ，Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ－Ｆｒａｔｉｃｅｌｌｉ ＡＥ，Ｌｏｐｅｚ－Ｃｏｒｃｕｅｒａ Ｂ，ｅｔ ａｌ．Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰａｓｅ ｉｓ ａ ｎｅｗ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ ｐａｒｔｎｅｒ ｆｏｒ ｔｈｅ ｎｅｕｒｏｎａｌ ｇｌｙｃｉｎｅ ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ ＧｌｙＴ２ ｔｈａｔ ｄｏｗｎｒｅｇｕｌａｔｅｓ ｉｔｓ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｖｏ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ：ｔｈｅ ｏｆｆｉｃｉａｌ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ．２０１３；３３（３５）：１４２６９－８１．
６１．Ｆａｃｔｏｒ Ｐ，Ｓａｌｄｉａｓ Ｆ，Ｒｉｄｇｅ Ｋ，Ｄｕｍａｓｉｕｓ Ｖ，Ｚａｂｎｅｒ Ｊ，Ｊａｆｆｅ ＨＡ，ｅｔ ａｌ．Ａｕｇｍｅｎｔａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｕｎｇ ｌｉｑｕｉｄ ｃｌｅａｒａｎｃｅ ｖｉａ ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｏｆ ａ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｂｅｔａ１ ｓｕｂｕｎｉｔ ｇｅｎｅ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ．１９９８；１０２（７）：１４２１－３０．
６２．Ｂａｒｔｏｌｏｍｍｅｉ Ｇ，Ｍｏｎｃｅｌｌｉ ＭＲ，ａｎｄ Ｔａｄｉｎｉ－Ｂｕｏｎｉｎｓｅｇｎｉ Ｆ． Ａ ｍｅｔｈｏｄ ｔｏ ｍｅａｓｕｒｅ ｈｙｄｒｏｌｙｔｉｃ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ａｄｅｎｏｓｉｎｅｔｒｉｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅｓ（ＡＴＰａｓｅｓ）．ＰｌｏＳ ｏｎｅ．２０１３；８（３）：ｅ５８６１５．
６３．Ｃｈｒｕｅｗｋａｍｌｏｗ Ｎ，Ｐａｔａ Ｓ，Ｍａｈａｓｏｎｇｋｒａｍ Ｋ，Ｌａｏｐａｊｏｎ Ｗ，Ｋａｓｉｎｒｅｒｋ Ｗ，ａｎｄ Ｃｈｉａｍｐａｎｉｃｈａｙａｋｕｌ Ｓ． ｂｅｔａ３ ｓｕｂｕｎｉｔ ｏｆ Ｎａ，Ｋ ＡＴＰａｓｅ ｒｅｇｕｌａｔｅｓ Ｔ ｃｅｌｌ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｎｏ ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ Ｎａ，Ｋ ＡＴＰａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ．Ｉｍｍｕｎｏｂｉｏｌｏｇｙ．２０１５．
６４．Ｔｏｋｈｔａｅｖａ Ｅ，Ｃｌｉｆｆｏｒｄ ＲＪ，Ｋａｐｌａｎ ＪＨ，Ｓａｃｈｓ Ｇ，ａｎｄ Ｖａｇｉｎ Ｏ． Ｓｕｂｕｎｉｔ Ｉｓｏｆｏｒｍ Ｓｅｌｅｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ Ａｓｓｅｍｂｌｙ ｏｆ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ａｌｐｈａ－ｂｅｔａ Ｈｅｔｅｒｏｄｉｍｅｒｓ．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．２０１２；２８７（３１）：２６１１５－２５．
６５．Ｈｉｌｂｅｒｓ Ｆ，Ｋｏｐｅｃ Ｗ，Ｉｓａｋｓｅｎ ＴＪ，Ｈｏｌｍ ＴＨ，Ｌｙｋｋｅ－Ｈａｒｔｍａｎｎ Ｋ，Ｎｉｓｓｅｎ Ｐ，ｅｔ ａｌ．Ｔｕｎｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｂｙ ｔｈｅ ｂｅｔａ ｓｕｂｕｎｉｔ．Ｓｃｉ Ｒｅｐ．２０１６；６：２０４４２．
６６．Ｐａｎｋｏｗ Ｓ，Ｂａｍｂｅｒｇｅｒ Ｃ，Ｃａｌｚｏｌａｒｉ Ｄ，Ｂａｍｂｅｒｇｅｒ Ａ，ａｎｄ Ｙａｔｅｓ ＪＲ，３ｒｄ．Ｄｅｅｐ ｉｎｔｅｒａｃｔｏｍｅ ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｂｙ ｃｏ－ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ．Ｎａｔｕｒｅ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ．２０１６；１１（１２）：２５１５－２８．
６７．Ｖｉｔ Ｏ，ａｎｄ Ｐｅｔｒａｋ Ｊ．Ｉｎｔｅｇｒａｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｉｎ ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ．Ｈｏｗ ｔｏ ｂｒｅａｋ ｏｐｅｎ ｔｈｅ ｂｌａｃｋ ｂｏｘ？Ｊ Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ．２０１７；１５３：８－２０．
６８．Ｇａｇｌｉａｒｄｉ ＰＡ，Ｂｌａｓｉｏ Ｌ，Ｐｕｌｉａｆｉｔｏ Ａ，Ｓｅａｎｏ Ｇ，Ｃｈｉａｎａｌｅ Ｆ，Ｓｅｓｓａ Ｒ，ｅｔ ａｌ．ＰＤＫ１ ｒｅｇｕｌａｔｅｓ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ｍｉｇｒａｔｉｏｎ ｔｈｒｏｕｇｈ ＭＲＣＫ．Ｆｅｂｓ Ｊ．２０１３；２８０：３７８－．
６９．Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｍ ＳＬ，Ｇｏｐａｌａｋｒｉｓｈｎａｐｉｌｌａｉ Ａ，Ｇａｎｇａｄｈａｒａｎ Ｖ，Ｄｕｎｃａｎ ＲＬ，ａｎｄ Ｂａｒｗｅ ＳＰ．Ｓｏｄｉｕｍ－ｃａｌｃｉｕｍ ｅｘｃｈａｎｇｅｒ １ ｒｅｇｕｌａｔｅｓ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ｍｉｇｒａｔｉｏｎ ｖｉａ ｃａｌｃｉｕｍ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｓｉｇｎａｌ－ｒｅｇｕｌａｔｅｄ ｋｉｎａｓｅ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．２０１５；２９０（２０）：１２４６３－７３．
７０．Ａｃｏｓｔａ－Ｈｅｒｒｅｒａ Ｍ，Ｐｉｎｏ－Ｙａｎｅｓ Ｍ，Ｐｅｒｅｚ－Ｍｅｎｄｅｚ Ｌ，Ｖｉｌｌａｒ Ｊ，ａｎｄ Ｆｌｏｒｅｓ Ｃ． Ａｓｓｅｓｓｉｎｇ ｔｈｅ ｑｕａｌｉｔｙ ｏｆ ｓｔｕｄｉｅｓ ｓｕｐｐｏｒｔｉｎｇ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｉｌｉｔｙ ａｎｄ ｏｕｔｃｏｍｅｓ ｏｆ ＡＲＤＳ．Ｆｒｏｎｔｉｅｒｓ ｉｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ．２０１４；５：２０．
７１．Ｇａｇｌｉａｒｄｉ ＰＡ，Ｓｏｍａｌｅ Ｄ，Ｐｕｌｉａｆｉｔｏ Ａ，Ｃｈｉａｖｅｒｉｎａ Ｇ，ｄｉ Ｂｌａｓｉｏ Ｌ，Ｏｎｅｔｏ Ｍ，ｅｔ ａｌ．ＭＲＣＫ ａｌｐｈａ ｉｓ ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｂｙ ｃａｓｐａｓｅ ｃｌｅａｖａｇｅ ｔｏ ａｓｓｅｍｂｌｅ ａｎ ａｐｉｃａｌ ａｃｔｉｎ ｒｉｎｇ ｆｏｒ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ｅｘｔｒｕｓｉｏｎ．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１８；２１７（１）：２３１－４９．
７２．Ｇｕｄｉｐａｔｙ ＳＡ，ａｎｄ Ｒｏｓｅｎｂｌａｔｔ Ｊ．Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ｅｘｔｒｕｓｉｏｎ：Ｐａｔｈｗａｙｓ ａｎｄ ｐａｔｈｏｌｏｇｉｅｓ．Ｓｅｍｉｎ Ｃｅｌｌ Ｄｅｖ Ｂｉｏｌ．２０１７；６７：１３２－４０．
７３．Ｕｎｂｅｋａｎｄｔ Ｍ，Ｂｅｌｓｈａｗ Ｓ，Ｂｏｗｅｒ Ｊ，Ｃｌａｒｋｅ Ｍ，Ｃｏｒｄｅｓ Ｊ，Ｃｒｉｇｈｔｏｎ Ｄ，ｅｔ ａｌ．Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ｏｆ ｐｏｔｅｎｔ ａｎｄ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ＭＲＣＫ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｗｉｔｈ ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ｓｋｉｎ ｃａｎｃｅｒ．Ｃａｎｃｅｒ ｒｅｓｅａｒｃｈ．２０１８．
７４．Ｄｏｂｂｓ ＬＧ，Ｇｏｎｚａｌｅｚ Ｒ，ａｎｄ Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＭＣ．Ａｎ ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｉｓｏｌａｔｉｎｇ ｔｙｐｅ ＩＩ ｃｅｌｌｓ ｉｎ ｈｉｇｈ ｙｉｅｌｄ ａｎｄ ｐｕｒｉｔｙ．Ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ｄｉｓｅａｓｅ．１９８６；１３４（１）：１４１－５．
７５．Ｌｉｖａｋ ＫＪ，ａｎｄ Ｓｃｈｍｉｔｔｇｅｎ ＴＤ．Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｇｅｎｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｄａｔａ ｕｓｉｎｇ ｒｅａｌ－ｔｉｍｅ ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ ＰＣＲ ａｎｄ ｔｈｅ ２（Ｔ）（－Ｄｅｌｔａ Ｄｅｌｔａ Ｃ）ｍｅｔｈｏｄ．Ｍｅｔｈｏｄｓ．２００１；２５（４）：４０２－８．
７６．Ｌａｒｒｅ Ｉ，Ｌａｚａｒｏ Ａ，Ｃｏｎｔｒｅｒａｓ ＲＧ，Ｂａｌｄａ ＭＳ，Ｍａｔｔｅｒ Ｋ，Ｆｌｏｒｅｓ－Ｍａｌｄｏｎａｄｏ Ｃ，ｅｔ ａｌ．Ｏｕａｂａｉｎ ｍｏｄｕｌａｔｅｓ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎ．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ．２０１０；１０７（２５）：１１３８７－９２．
７７．Ｓｔｒｅｎｇｅｒｔ Ｍ，ａｎｄ Ｋｎａｕｓ ＵＧ．Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｂａｒｒｉｅｒ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ｉｎ ｐｏｌａｒｉｚｅｄ ｌｕｎｇ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌｓ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ．２０１１；７６３：１９５－２０６．
７８．Ｔｙａｎｏｖａ Ｓ，Ｔｅｍｕ Ｔ，Ｓｉｎｉｔｃｙｎ Ｐ，Ｃａｒｌｓｏｎ Ａ，Ｈｅｉｎ ＭＹ，Ｇｅｉｇｅｒ Ｔ，ｅｔ ａｌ．Ｔｈｅ Ｐｅｒｓｅｕｓ ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａｌ ｐｌａｔｆｏｒｍ ｆｏｒ ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ（ｐｒｏｔｅ）ｏｍｉｃｓ ｄａｔａ．Ｎａｔｕｒｅ ｍｅｔｈｏｄｓ．２０１６；１３（９）：７３１－４０．
７９．Ｍｏｒｒｉｓ ＪＨ，Ｋｎｕｄｓｅｎ ＧＭ，Ｖｅｒｓｃｈｕｅｒｅｎ Ｅ，Ｊｏｈｎｓｏｎ ＪＲ，Ｃｉｍｅｒｍａｎｃｉｃ Ｐ，Ｇｒｅｎｉｎｇｅｒ ＡＬ，ｅｔ ａｌ．Ａｆｆｉｎｉｔｙ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ－ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ ａｎｄ ｎｅｔｗｏｒｋ ａｎａｌｙｓｉｓ ｔｏ ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄ ｐｒｏｔｅｉｎ－ｐｒｏｔｅｉｎ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ．Ｎａｔｕｒｅ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ．２０１４；９（１１）：２５３９－５４．
８０．Ｊｏｒｇｅｎｓｅｎ ＰＬ，Ｈａｋａｎｓｓｏｎ ＫＯ，ａｎｄ Ｋａｒｌｉｓｈ ＳＪＤ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ：Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｓｉｔｅｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ．Ａｎｎｕａｌ ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ．２００３；６５：８１７－４９．
８１．Ｔｏｋｈｔａｅｖａ Ｅ，Ｓｕｎ Ｈ，Ｄｅｉｓｓ－Ｙｅｈｉｅｌｙ Ｎ，Ｗｅｎ Ｙ，Ｓｏｎｉ ＰＮ，Ｇａｂｒｉｅｌｌｉ ＮＭ，ｅｔ ａｌ．ＦＸＹＤ５ Ｏ－ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｅｄ ｅｃｔｏｄｏｍａｉｎ ｉｍｐａｉｒｓ ａｄｈｅｓｉｏｎ ｂｙ ｄｉｓｒｕｐｔｉｎｇ ｃｅｌｌ－ｃｅｌｌ ｔｒａｎｓ－ｄｉｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｂｅｔａ１ ｓｕｂｕｎｉｔｓ．Ｊ Ｃｅｌｌ Ｓｃｉ．２０１６．
８２．Ｂａｒｗｅ ＳＰ，Ａｎｉｌｋｕｍａｒ Ｇ，Ｍｏｏｎ ＳＹ，Ｚｈｅｎｇ Ｙ，Ｗｈｉｔｅｌｅｇｇｅ ＪＰ，Ｒａｊａｓｅｋａｒａｎ ＳＡ，ｅｔ ａｌ．Ｎｏｖｅｌ ｒｏｌｅ ｆｏｒ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ ｉｎ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｏｓｉｔｏｌ ３－ｋｉｎａｓｅ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ａｎｄ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｃｅｌｌ ｍｏｔｉｌｉｔｙ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ ｃｅｌｌ．２００５；１６（３）：１０８２－９４．
８３．Ｇｏｒｏｋｈｏｖａ Ｓ，Ｂｉｂｅｒｔ Ｓ，Ｇｅｅｒｉｎｇ Ｋ，ａｎｄ Ｈｅｉｎｔｚ Ｎ． Ａ ｎｏｖｅｌ ｆａｍｉｌｙ ｏｆ ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ ｗｉｔｈ ｂｅｔａ ｓｕｂｕｎｉｔｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａ，Ｋ－ＡＴＰａｓｅ．Ｈｕｍａｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｇｅｎｅｔｉｃｓ．２００７；１６（２０）：２３９４－４１０．
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前述の実施例および好ましい実施形態の記載は、特許請求の範囲によって定義される本発明を限定するものではなく、例示するものとして解釈されるべきである。容易に理解されるように、上記の特徴の多数の変形例および組み合わせは、特許請求の範囲に記載される本発明から逸脱することなく用いられ得る。そのような変形例は、本発明の範囲からの逸脱とはみなされず、そのような全ての変形例は、以下の特許請求の範囲に含まれることが意図される。本明細書において言及される全ての参考文献は、その全体が参考により組み込まれる。
更なる実施形態：
（実施形態１）
上皮または内皮バリアの完全性または機能を改善する方法であって、前記バリアの１つまたは複数の細胞における筋緊張性ジストロフィーキナーゼ関連Ｃｄｃ４２結合キナーゼα（ＭＲＣＫα）のレベルを増加させることを含む、方法。
（実施形態２）
前記上皮バリアが肺胞上皮バリアである、実施形態１に記載の方法。
（実施形態３）
ＭＲＣＫαのレベルが、ＭＲＣＫα遺伝子の酵素レベルまたは発現レベルである、実施形態１または２に記載の方法。
（実施形態４）
ＭＲＣＫαのレベルを増加させることが、ＭＲＣＫαポリペプチドまたはＭＲＣＫαポリペプチドをコードする第１の核酸を１つまたは複数の細胞に導入することを含む、実施形態１～３のいずれか一項に記載の方法。
（実施形態５）
前記１つまたは複数の細胞におけるＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ（ＮＫＡ）β１サブユニットのレベルを増加させることをさらに含む、実施形態１～４のいずれか一つに記載の方法。
（実施形態６）
ＮＫＡ β１サブユニットのレベルが、ＮＫＡ β１遺伝子の活性レベルまたは発現レベルである、実施形態５に記載の方法。
（実施形態７）
ＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドのレベルを増加させることが、ＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドまたはＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドをコードする第２の核酸を前記細胞に導入することを含む、実施形態５または６に記載の方法。
（実施形態８）
前記細胞が肺胞上皮細胞である、実施形態１～７のいずれか一つに記載の方法。
（実施形態９）
細胞がインビトロである、実施形態１～８のいずれか一つに記載の方法。
（実施形態１０）
前記細胞が対象のインビボである、実施形態１～８のいずれか一つ記載の方法。
（実施形態１１）
前記第１の核酸または前記第２の核酸が発現ベクター中にある、実施形態４または７に記載の方法。
（実施形態１２）
上皮または内皮バリアの機能不全に関連する疾患または状態を治療する方法であって、それを必要とする対象の上皮または内皮バリアの１つまたは複数の細胞におけるＭＲＣＫαのレベルを増加させることを含む、方法。
（実施形態１３）
前記１つまたは複数の細胞におけるＮａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ（ＮＫＡ）β１サブユニットのレベルを増加させることをさらに含む、実施形態１２に記載の方法。
（実施形態１４）
前記疾患または状態が、急性肺損傷、急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）、および喘息からなる群から選択される、実施形態１２または１３に記載の方法。
（実施形態１５）
ＭＲＣＫαおよび／またはＮＫＡ β１サブユニットをコードする核酸分子または核酸分子のセット。
（実施形態１６）
実施形態１５に記載の核酸分子または核酸分子のセットを含む、ベクター。
（実施形態１７）
実施形態１５に記載の核酸分子または核酸分子のセットを含む、宿主細胞。
（実施形態１８）
実施形態１５に記載の核酸分子または核酸分子のセットを含む、ウイルスまたはウイルス様粒子。
（実施形態１９）
医薬組成物であって、
（ｉ）実施形態１５に記載の核酸分子または核酸分子のセット、実施形態１６に記載のベクター、実施形態１７に記載の宿主細胞、または実施形態１８に記載のウイルスもしくはウイルス様粒子、および
（ｉｉ）薬学的に許容される担体または賦形剤、を含む、医薬組成物。
（実施形態２０）
実施形態１５に記載の核酸分子または核酸分子のセット、実施形態１６に記載のベクター、実施形態１７に記載の宿主細胞、および実施形態１８に記載のウイルスまたはウイルス様粒子のうちの１つ以上を含む、キット。

Claims (12)

  1. 上皮または内皮バリアの完全性または機能を改善するための組成物であって、筋緊張性ジストロフィーキナーゼ関連Ｃｄｃ４２結合キナーゼα（ＭＲＣＫα）ポリペプチドまたはＭＲＣＫαポリペプチドをコードする第１の核酸を含み、
    バリアの１つまたは複数の細胞におけるＭＲＣＫαのレベルが、ＭＲＣＫαポリペプチドまたはＭＲＣＫαポリペプチドをコードする第１の核酸を前記１つまたは複数の細胞に導入することによって増加する、組成物。
  2. 前記上皮バリアが肺胞上皮バリアである、請求項１に記載の組成物。
  3. ＭＲＣＫαのレベルが、ＭＲＣＫα遺伝子の酵素レベルまたは発現レベルである、請求項１または２に記載の組成物。
  4. Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ（ＮＫＡ）β１サブユニットポリペプチドまたはＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドをコードする第２の核酸をさらに含み、
    前記１つまたは複数の細胞におけるＮＫＡ β１サブユニットのレベルが、ＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドまたはＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドをコードする第２の核酸を前記１つまたは複数の細胞に導入することによって増加する、請求項１～３のいずれか一項に記載の組成物。
  5. ＮＫＡ β１サブユニットのレベルが、ＮＫＡ β１遺伝子の活性レベルまたは発現レベルである、請求項４に記載の組成物。
  6. 前記細胞が肺胞上皮細胞である、請求項１～５のいずれか一項に記載の組成物。
  7. 細胞がインビトロである、請求項１～６のいずれか一項に記載の組成物。
  8. 前記細胞が対象のインビボである、請求項１～６のいずれか一項記載の組成物。
  9. 前記第１の核酸または前記第２の核酸が発現ベクター中にある、請求項１または４に記載の組成物。
  10. それを必要とする対象において上皮または内皮バリアの機能不全に関連する疾患または状態を治療するための医薬であって、ＭＲＣＫαポリペプチドまたはＭＲＣＫαポリペプチドをコードする第１の核酸を含み、
    上皮または内皮バリアの１つまたは複数の細胞におけるＭＲＣＫαのレベルが、ＭＲＣＫαポリペプチドまたはＭＲＣＫαポリペプチドをコードする第１の核酸を前記１つまたは複数の細胞に導入することによって増加する、医薬。
  11. Ｎａ＋／Ｋ＋－ＡＴＰアーゼ（ＮＫＡ）β１サブユニットポリペプチドまたはＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドをコードする第２の核酸をさらに含み、
    前記１つまたは複数の細胞におけるＮＫＡ β１サブユニットのレベルが、ＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドまたはＮＫＡ β１サブユニットポリペプチドをコードする第２の核酸を前記１つまたは複数の細胞に導入することによって増加する、請求項１０に記載の医薬。
  12. 前記疾患または状態が、急性肺損傷、急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）、および喘息からなる群から選択される、請求項１０または１１に記載の医薬。
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