JP7417231B2 - Immunochromatographic method and kit for detecting anti-interferon gamma antibodies - Google Patents
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Description
本開示は、対象から得た生物学的サンプル、好ましくは体液サンプルにおける任意の抗インターフェロンγ（ＩＦＮ－γ）抗体の存在を検出するための免疫クロマトグラフィーに基づく試験装置に関する。さらに、本開示はまた、免疫クロマトグラフィーによる手法に基づき、対象の生物学的サンプルにおける任意の抗ＩＦＮ－γ抗体の存在を検出するための方法を提供する。本開示の装置及び方法は、抗ＩＦＮ－γ抗体の存在を検出するために用いることができる。 The present disclosure relates to an immunochromatography-based test device for detecting the presence of any anti-interferon gamma (IFN-gamma) antibodies in a biological sample, preferably a body fluid sample, obtained from a subject. Additionally, the present disclosure also provides methods for detecting the presence of any anti-IFN-γ antibodies in a biological sample of a subject based on immunochromatographic techniques. The devices and methods of the present disclosure can be used to detect the presence of anti-IFN-γ antibodies.
インターフェロンγ（ＩＦＮ－γ）は、ＣＤ４＋Ｔヘルパー細胞型１（Ｔｈ１）リンパ球、ＣＤ８＋細胞傷害性リンパ球、及びＮＫ細胞によって作り出される自然免疫及び特異的免疫の活性化に必要とされるサイトカインである。Ｂ細胞、ＮＫＴ、プロフェッショナルな抗原提示細胞（ＡＰＣ）などの細胞は、ＩＦＮ－γを分泌することができる。インターフェロンは、外来微生物の侵入に対して細胞を守り、ヒト免疫系における種々の機序を調節し、ウイルス、抑制、及び発がんの活性化を阻害する（非特許文献１、非特許文献２）。また、以前の研究により、ＩＦＮ－γが抗ウイルス活性を有することが示された。したがって、これは、抗ウイルス処置を開発するための理想的な候補として、十分に研究されている。さらに、ＩＦＮ－γはまた、抗がん作用を有することも分かっている。その機序は十分に理解されていないが、ＩＦＮ－γは、細胞***時に正常な細胞及びがん細胞の両方に阻害作用を示している。がん細胞が正常な細胞よりも速く***することを考慮すると、ＩＦＮ－γの阻害作用は、さらなるがん細胞の攻撃においてナチュラルキラー細胞に直接的に影響を与えながら、がん細胞に大きな影響を持つと予想される。 Interferon-γ (IFN-γ) is a cytokine required for the activation of innate and specific immunity produced by CD4+ T helper cell type 1 (Th1) lymphocytes, CD8+ cytotoxic lymphocytes, and NK cells. . Cells such as B cells, NKT, and professional antigen presenting cells (APCs) can secrete IFN-γ. Interferon protects cells against the invasion of foreign microorganisms, regulates various mechanisms in the human immune system, inhibits viral suppression, and activation of carcinogenesis (Non-Patent Document 1, Non-Patent Document 2). Previous studies have also shown that IFN-γ has antiviral activity. Therefore, it is well studied as an ideal candidate for developing antiviral treatments. Furthermore, IFN-γ has also been found to have anti-cancer effects. Although its mechanism is not fully understood, IFN-γ exhibits inhibitory effects on both normal cells and cancer cells during cell division. Considering that cancer cells divide faster than normal cells, the inhibitory effect of IFN-γ has a large impact on cancer cells while directly affecting natural killer cells in further attacking cancer cells. expected to have.
さらに、ＩＦＮ－γはまた、そのモノクローナル抗体を作製するため動物における刺激に使用されており、このモノクローナル抗体は、その後、結核感染の診断のための酵素結合免疫吸着法（ＥＬＩＳＡ）システム又はインターフェロンγ遊離アッセイ（ＩＧＲＡ）に使用される（非特許文献３、非特許文献４、非特許文献５）。ＩＦＮ－γは、基礎研究目的、及び診断用キットの製造を含む医薬開発目的の研究の両方で使用されている。しかしながら、抗ＩＦＮ－γ抗体のモノクローナル抗体を使用して製造した診断用キットは、生産コストが高いため高価になり得る。組換えインターフェロンγ（組換えＩＦＮ－γ）は、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）細胞、哺乳動物細胞、酵母細胞、原生動物細胞、又は植物細胞の少なくとも１つを使用するシステムにおいて産生することができる。それにもかかわらず、細菌を使用する産生システムが、一般に比較的低い産生コストで最も高い産生量を得られることが知られている。 Additionally, IFN-γ has also been used for stimulation in animals to generate its monoclonal antibodies, which are then used in enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) systems or interferon-γ for the diagnosis of tuberculosis infection. used in release assay (IGRA) (Non-patent Document 3, Non-Patent Document 4, Non-Patent Document 5). IFN-γ is used both for basic research purposes and in research for pharmaceutical development purposes, including the manufacture of diagnostic kits. However, diagnostic kits produced using anti-IFN-γ monoclonal antibodies can be expensive due to high production costs. Recombinant interferon gamma (recombinant IFN-gamma) can be produced in a system using at least one of E. coli cells, mammalian cells, yeast cells, protozoan cells, or plant cells. Nevertheless, production systems using bacteria are known to generally provide the highest yields at relatively low production costs.
近年、医療上の診断及びスクリーニングを支援するため、ＩＦＮ－γを試験及び検出する方法が開発されている。例えば、特許文献１は、ＩＦＮ－γに対する抗体を公開しており、これは、使用する２つの抗体がＩＦＮ－γ分子の別の位置に結合して、ＩＦＮ－γ検出を行うものである、二重抗体サンドイッチＥＬＩＳＡに基づくＥＬＩＳＡシステムに使用できる。上述の特許文献１に公開されている抗体が実際にＩＦＮ－γに対して作用する抗体を検出する目的を果たすにもかかわらず、使用するプラットフォームは、簡便且つユーザーに配慮しているとは考えにくい。患者において抗ＩＦＮ－γ抗体をスクリーニングするため、マイクロタイタープレート、フローサイトメトリー、様々な試薬などを使用して、上述の特許文献１に公開されたような一般的なＥＬＩＳＡを行う必要性により、実験室環境外、及び／又は熟練した実験の技術者が存在しない場合において、同様の試験が実行不可能になり得る。したがって、許容可能な実行時間内で信頼性の高い結果をもたらすことができるとともに、未熟な作業員が実験ツールを利用しなくてもそうした試験を行える代わりのプラットフォームが、大きく評価されることとなる。 Recently, methods have been developed to test and detect IFN-γ to aid in medical diagnosis and screening. For example, Patent Document 1 discloses an antibody against IFN-γ, in which the two antibodies used bind to different positions of the IFN-γ molecule to perform IFN-γ detection. Can be used in ELISA systems based on double antibody sandwich ELISA. Although the antibody disclosed in Patent Document 1 mentioned above actually serves the purpose of detecting antibodies that act against IFN-γ, the platform used is not considered to be simple and user-friendly. Hateful. Due to the need to perform a general ELISA, such as that disclosed in the above-mentioned US Pat. Similar tests may be impractical outside of a laboratory environment and/or in the absence of skilled laboratory technicians. Therefore, alternative platforms that can provide reliable results within acceptable execution times and that allow unskilled personnel to perform such tests without the use of laboratory tools would be greatly appreciated. .
本開示は、対象から得た血液サンプルなどの体液サンプル中の抗ＩＦＮ－γ抗体の存在を検出するための装置又は試験キットを提供することを狙いとする。好ましくは、開示の装置又は試験キットは、必要な結果を得るように免疫クロマトグラフィー方法において機能する。 The present disclosure aims to provide a device or test kit for detecting the presence of anti-IFN-γ antibodies in a body fluid sample, such as a blood sample obtained from a subject. Preferably, the disclosed device or test kit functions in an immunochromatography method to obtain the required results.
本開示のさらなる目的は、いずれの実験ツールも使用せずに実験室環境外で試験結果をもたらすことができる、抗ＩＦＮ－γ抗体をスクリーニングするための試験キットを提供することである。したがって、開示の試験キットは、一般的なＥＬＩＳＡプラットフォームと比較して、ユーザーに配慮したものである。 A further object of the present disclosure is to provide a test kit for screening anti-IFN-γ antibodies that can yield test results outside a laboratory environment without using any experimental tools. Therefore, the disclosed test kit is user friendly compared to common ELISA platforms.
また、本開示の他の目的は、抗ＩＦＮ－γ抗体をスクリーニングするため、比較的低コストで製造可能な試験キットを提供することを狙いとする。特に、開示の試験キットの作製に使用するＩＦＮ－γは、適合する細胞株において発現して採取される組換えペプチドである。 Another object of the present disclosure is to provide a test kit for screening anti-IFN-γ antibodies that can be manufactured at relatively low cost. In particular, the IFN-γ used to create the disclosed test kit is a recombinant peptide expressed and harvested in a compatible cell line.
本開示の他の目的は、組換えＩＦＮ－γを含む免疫クロマトグラフィープラットフォームを使用して体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体の存在をスクリーニングするための方法に関する。 Other objects of the present disclosure relate to methods for screening for the presence of anti-IFN-γ antibodies in body fluid samples using an immunochromatography platform comprising recombinant IFN-γ.
本開示の一態様は、対象から得た体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体の存在を検出するための装置に関する。一般に、上述の装置は、体液サンプルを含む溶媒相を付着させるためのサンプル領域と、ビオチンで標識した第１組換えＩＦＮ－γ、及びシグナル部分を連結した第１抗体を含む複数の第１複合体を含浸させた反応領域であって、第１抗体は、標識したビオチンに結合することで第１複合体を形成するように第１組換えＩＦＮ－γにカップリングする、反応領域と、複数の第２組換えＩＦＮ－γを固定させた試験領域とを含む。好ましくは、サンプル領域、反応領域、及び試験領域は、クロマトグラフィーの固相の第１端部から第２端部へと連続して配置される。 One aspect of the present disclosure relates to a device for detecting the presence of anti-IFN-γ antibodies in a body fluid sample obtained from a subject. Generally, the above-described device includes a sample region for depositing a solvent phase containing a body fluid sample, a first complex comprising a first recombinant IFN-γ labeled with biotin, and a first antibody to which a signal moiety is linked. a plurality of reaction regions impregnated with the body, wherein the first antibody couples to the first recombinant IFN-γ to form a first complex by binding to labeled biotin; and a test region on which a second recombinant IFN-γ is immobilized. Preferably, the sample area, reaction area and test area are arranged in succession from a first end to a second end of the chromatographic solid phase.
開示の装置の多くの実施形態では、溶媒相は、体液サンプルに存在する抗ＩＦＮ－γ抗体と共に固相の第１端部から第２端部へと移動して、第１複合体が、反応領域において抗ＩＦＮ－γ抗体に連結して第２複合体を形成し、第１複合体と第２複合体とが試験領域にさらに移動して、第２複合体が固定した第２組換えＩＦＮ－γに結合して第１視覚シグナルを提供するようになる。試験領域において得られた第１視覚シグナルは、体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体の存在を示す。 In many embodiments of the disclosed device, the solvent phase moves from a first end of the solid phase to a second end of the solid phase with anti-IFN-γ antibodies present in the body fluid sample, so that the first complex is reacted with The second complex is linked to the anti-IFN-γ antibody in the region to form a second complex, the first complex and the second complex are further moved to the test region, and the second complex binds to the immobilized second recombinant IFN. -gamma to provide the first visual signal. The first visual signal obtained in the test area indicates the presence of anti-IFN-γ antibodies in the body fluid sample.
さらなる実施形態では、開示の装置は、そこに固着するとともに第１抗体に結合するように構成された基質を含むコントロール領域をさらに含む。コントロール領域は、クロマトグラフィーの固相において試験領域の後及び試験領域に隣接して配置される。 In a further embodiment, the disclosed device further comprises a control region comprising a substrate affixed thereto and configured to bind the first antibody. The control area is placed after and adjacent to the test area on the chromatographic solid phase.
開示の装置のさらなる実施形態では、試験領域において結合していない第１複合体及び第２複合体はコントロール領域にさらに移動し、第１複合体及び第２複合体が第１抗体によって基質に結合して、第２視覚シグナルを提供する。 In a further embodiment of the disclosed device, the unbound first and second complexes in the test area are further transferred to the control area, and the first and second complexes are bound to the substrate by the first antibody. to provide a second visual signal.
いくつかの実施形態において、開示の装置は、コントロール領域の一端部につながって、第２端部の少なくとも一部を形成する吸収要素をさらに含む。好ましくは吸収剤は、セルロース繊維シート、ろ紙、及びパルプのいずれか１つ又は組合せである。 In some embodiments, the disclosed device further includes an absorbent element connected to one end of the control region and forming at least a portion of the second end. Preferably, the absorbent is any one or a combination of cellulose fiber sheets, filter paper, and pulp.
開示の装置の一部の実施形態において、第２組換えＩＦＮ－γ及び／又は基質は合成膜に固定されている。 In some embodiments of the disclosed device, the second recombinant IFN-γ and/or substrate is immobilized on a synthetic membrane.
さらなる実施形態において、開示の装置のシグナル部分は金ナノ粒子（ＡｕＮＰ）、蛍光物質、又は量子ドットである。 In further embodiments, the signal moiety of the disclosed device is a gold nanoparticle (AuNP), a fluorescent material, or a quantum dot.
本開示のさらなる態様は、対象から得た体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体の存在を検出するための方法に関する。上述の方法は、実質的に、サンプル領域において体液サンプルを含む溶媒相を付着させるステップと、体液サンプルに存在する抗ＩＦＮ－γ抗体と共に溶媒相を反応領域に誘導し、該反応領域は、ビオチンで標識した第１組換えＩＦＮ－γ、及びシグナル部分を連結した第１抗体を含む複数の第１複合体を含浸させており、該第１抗体は、標識したビオチンに結合することで第１複合体を形成するように第１組換えＩＦＮ－γにカップリングし、該第１複合体は、反応領域において抗ＩＦＮ－γ抗体に連結して第２複合体を形成するように構成される、ステップと、溶媒相を、形成した第２複合体及び第１複合体と共に、複数の第２組換えＩＦＮ－γを固定した試験領域にさらに移動させるように誘導し、該第２複合体は固定した第２組換えＩＦＮ－γに結合して、第１視覚シグナルを提供するように構成される、ステップとを含む。好ましくは、サンプル領域、反応領域、及び試験領域は、クロマトグラフィーの固相の第１端部から第２端部へと連続して配置される。 Further aspects of the present disclosure relate to methods for detecting the presence of anti-IFN-γ antibodies in a body fluid sample obtained from a subject. The method described above essentially comprises the steps of depositing a solvent phase containing a body fluid sample in a sample region and directing the solvent phase together with an anti-IFN-γ antibody present in the body fluid sample into a reaction region, the reaction region containing biotin A plurality of first complexes containing a first recombinant IFN-γ labeled with biotin and a first antibody linked to a signal moiety are impregnated, and the first antibody binds to the labeled biotin to cause the first antibody to bind to the first antibody. coupled to a first recombinant IFN-γ to form a complex, the first complex being configured to link to an anti-IFN-γ antibody in the reaction region to form a second complex. , inducing the solvent phase to further transport the plurality of second recombinant IFN-γ along with the formed second complex and the first complex to the immobilized test area, the second complex being and configured to bind to the immobilized second recombinant IFN-γ and provide the first visual signal. Preferably, the sample area, reaction area and test area are arranged in succession from a first end to a second end of the chromatographic solid phase.
開示の方法のいくつかの実施形態において、試験領域において得られた第１視覚シグナルは、体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体の存在を示す。 In some embodiments of the disclosed method, the first visual signal obtained in the test area indicates the presence of anti-IFN-γ antibodies in the body fluid sample.
さらなる実施形態では、開示の方法は、そこに固着するとともに第１抗体に結合するように構成された基質を含むコントロール領域にさらに移動させるように、溶媒相を誘導し、該コントロール領域は、クロマトグラフィーの固相において試験領域の後に隣接して配置され、試験領域において結合していない第１複合体及び第２複合体はコントロール領域に移動し、第１複合体及び第２複合体が第１抗体によって基質に結合して、第２視覚シグナルを提供する、ステップをさらに含むことができる。 In further embodiments, the disclosed method directs the solvent phase to further transfer to a control region comprising a substrate affixed thereto and configured to bind to a first antibody, the control region being chromatographically The first complex and the second complex that are not bound in the test area are placed adjacent to the test area in the solid phase of the graph, and the first complex and the second complex are placed adjacent to the test area, and the first complex and the second complex are placed in the control area. The method can further include binding to the substrate by the antibody to provide a second visual signal.
以下、本開示は、好ましい実施形態において、及び添付の発明を実施するための形態及び図面を参照して記載する。しかしながら、発明を実施するための形態が本開示の好ましい実施形態及び図面に言及することは、種々の開示の実施形態の説明を容易にするためのみであることが理解され、当業者が添付の特許請求の範囲の範囲から逸脱することなく種々の変形を考案し得るということが想定される。 The present disclosure will now be described in preferred embodiments and with reference to the accompanying detailed description and drawings. However, it is understood that the Detailed Description of the Invention refers to the preferred embodiments of the present disclosure and the drawings only to facilitate the description of the various embodiments of the disclosure, and those skilled in the art may refer to the accompanying drawings. It is envisioned that various modifications may be devised without departing from the scope of the claims.
本明細書において使用するとき、「実施形態において」という表現は、必ずしもすべての実施形態においてではなく一部の実施形態においてを意味する。 As used herein, the phrase "in an embodiment" means in some, but not necessarily all embodiments.
本明細書で使用するとき、成分の濃度、条件、他の測定値などの文脈における、「ほぼ」又は「約」という用語は、記載した値の＋／－５％、又は記載した値の＋／－４％、又は記載した値の＋／－３％、又は記載した値の＋／－２％、又は記載した値の＋／－１％、又は記載した値の＋／－０．５％、又は記載した値の＋／－０％を意味する。 As used herein, the term "approximately" or "about" in the context of ingredient concentrations, conditions, other measurements, etc. means +/-5% of the stated value, or +/-5% of the stated value. /-4%, or +/-3% of the stated value, or +/-2% of the stated value, or +/-1% of the stated value, or +/-0.5% of the stated value , or +/-0% of the stated value.
本明細書において発明を実施するための形態にわたって使用する「検出可能な部分」、「シグナル部分」、「レポート部分」、及び／又は「レポーター」という用語は、形成された抗原－抗体複合体の存在を示して、標的化合物、分子の存在、試験した対象の病状を確認するため、デバイス又は肉眼のいずれかで検出可能なシグナルを放出することができる化合物を指す。シグナルは、低周波数、又はＥＬＩＳＡ若しくはそこから派生して変更した任意の他の方法のような基質－酵素活性による色彩変化の形態であり得る。 As used throughout this detailed description, the terms "detectable moiety," "signal moiety," "reporting moiety," and/or "reporter" refer to Refers to a compound that can emit a signal detectable either by the device or by the naked eye to indicate the presence and confirm the presence of the target compound, molecule, and disease state of the subject being tested. The signal may be in the form of a low frequency or color change due to substrate-enzyme activity, such as ELISA or any other method modified therefrom.
「組換えインターフェロンγ」及び「組換えＩＦＮ－γ」という用語は、ＩＦＮ－γを分泌又は産生できるようにした、１つ以上の操作細胞株から採取した人工ＩＦＮ－γを指すように、本明細書にわたって互換的に使用される。 The terms "recombinant interferon-gamma" and "recombinant IFN-gamma" are used herein to refer to artificial IFN-gamma harvested from one or more engineered cell lines that are capable of secreting or producing IFN-gamma. used interchangeably throughout the specification.
図１及び図２を参照すると、本開示の一態様は、対象から得た体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）の存在を検出するための装置を対象としている。抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）はＩｇＧ、ＩｇＭ、又はＩｇＡのものとすることができる。実質的に、上述の装置は、体液サンプルを含む溶媒相を付着させるためのサンプル領域（１）と、ビオチンで標識した第１組換えＩＦＮ－γ（１０）、及びシグナル部分を連結した第１抗体（２０）を含む複数の第１複合体を含浸させ、該第１抗体（２０）は、標識したビオチンに結合することで第１複合体を形成するように第１組換えＩＦＮ－γ（１０）にカップリングする、反応領域（２）又はコンジュゲート領域と、複数の第２組換えＩＦＮ－γ（４０）を固定させた試験領域（３）とを含む。好ましくは、第１抗体（２０）（抗ビオチン抗体）とシグナル部分とは、０．１～０．５ｍｇ：０．５～５．０ｍＬの比である。 Referring to FIGS. 1 and 2, one aspect of the present disclosure is directed to an apparatus for detecting the presence of an anti-IFN-γ antibody (30) in a body fluid sample obtained from a subject. Anti-IFN-γ antibodies (30) can be IgG, IgM, or IgA. Essentially, the above-described device comprises a sample region (1) for depositing a solvent phase containing a body fluid sample, a first recombinant IFN-γ labeled with biotin (10), and a first recombinant IFN-γ to which a signal moiety is linked. A plurality of first complexes containing an antibody (20) are impregnated, and the first antibody (20) is mixed with a first recombinant IFN-γ ( 10), a reaction region (2) or conjugate region, and a test region (3) on which a plurality of second recombinant IFN-γ (40) are immobilized. Preferably, the ratio of the first antibody (20) (anti-biotin antibody) and signal moiety is 0.1 to 0.5 mg:0.5 to 5.0 mL.
好ましくは、サンプル領域（１）、反応領域（２）、及び試験領域（３）は、図２に示すようにクロマトグラフィーの固相の第１端部から第２端部へと連続して配置される。本開示におけるクロマトグラフィーの固相は、体液サンプルを保持する溶媒相を、サンプル領域（１）から反応領域（２）を通過して試験領域（３）へと移動させて、クロマトグラフィー毛管作用に基づいて連続的かつ自然に抗体ＥＬＩＳＡを行うことができるように、様々な材料を使用して構成した複合材料とすることができる。溶媒相及び標的の抗ＩＦＮ－γ抗体は、存在する場合、固相において画定した各領域に予め配置した種々の試薬と接触して反応するように構成される。固相は、好ましくは、第１端部及び第２端部を有する基層を形成するセルロース又はプラスチックのストリップ、試験領域（３）及び試験領域（３）に隣接する任意のコントロール領域（４）を設けるため、基層表面の一部に重なる合成膜、並びに開示の装置を使用する反応時間終了までに第２端部に達する過剰な溶媒相を吸収するため第２端部周りに組み込まれる吸収材料を含む。特に、組換えＩＦＮ－γは、試験領域（３）内の試験ラインにおいて０．１～１．０μｇの量で合成膜に固定される。一部の実施形態において、合成膜はガラス繊維からから作製される。開示の装置における試験領域（３）の前の反応領域（２）の表面において、開示の装置を使用して試験した任意の生物学的サンプルに見受けられる抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）に即座に結合するように、第１複合体を含浸させる又は配置する。サンプル領域（１）に関して、これは開示の装置の第１端部又は第１端部の一部を形成する。試験を開始する及び／又は抗ＩＦＮ－γ抗体を検出するため、対象の体液、又は体液と１つ以上の緩衝液との混合物であり得る溶媒相を、そこに付着させる。一部の実施形態において、体液は、対象の血液サンプル又は血清サンプルとすることができる。体液は、溶媒相をサンプル領域（１）に付着させる際、二重抗体サンドイッチＥＬＩＳＡを行うため、希釈するか又は他の試薬と混合してもよい。開示の装置の一部の実施形態において、ろ過要素をサンプル領域（１）に備えて、体液に見受けられるいくつかの大きな細胞成分が第２端部に移動しないように捕らえることができる。これらの細胞成分は、反応又は試験の終了時に得られる結果に影響し得る。 Preferably, the sample zone (1), the reaction zone (2) and the test zone (3) are arranged sequentially from a first end to a second end of the chromatographic solid phase as shown in FIG. be done. The chromatographic solid phase in the present disclosure moves the solvent phase holding the body fluid sample from the sample area (1) through the reaction area (2) and into the test area (3) through chromatographic capillary action. Composite materials can be constructed using a variety of materials so that antibody ELISA can be performed continuously and spontaneously. The solvent phase and the targeting anti-IFN-γ antibody, if present, are configured to contact and react with various reagents previously placed in each defined region of the solid phase. The solid phase preferably comprises a strip of cellulose or plastic forming a base layer having a first end and a second end, a test area (3) and an optional control area (4) adjacent to the test area (3). a synthetic membrane overlapping a portion of the substrate surface and an absorbent material incorporated around the second end to absorb excess solvent phase that reaches the second end by the end of the reaction time using the disclosed apparatus. include. In particular, recombinant IFN-γ is immobilized on the synthetic membrane in an amount of 0.1-1.0 μg in the test line within the test area (3). In some embodiments, the synthetic membrane is made from glass fibers. On the surface of the reaction area (2) in front of the test area (3) in the disclosed device, anti-IFN-γ antibodies (30) found in any biological sample tested using the disclosed device are immediately detected. The first composite is impregnated or arranged to bond. Regarding the sample area (1), this forms the first end or part of the first end of the disclosed device. To initiate the test and/or detect anti-IFN-γ antibodies, a solvent phase, which can be a body fluid of the subject or a mixture of a body fluid and one or more buffers, is deposited thereon. In some embodiments, the body fluid can be a blood or serum sample of the subject. The body fluid may be diluted or mixed with other reagents to perform a double antibody sandwich ELISA when applying the solvent phase to the sample area (1). In some embodiments of the disclosed device, a filtration element can be provided in the sample region (1) to trap some large cellular components found in the body fluid from migrating to the second end. These cellular components can influence the results obtained at the end of the reaction or test.
図２に示すように、溶媒相は、好ましくは、体液サンプルに存在する抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）と共に固相の第１端部から第２端部へと移動して、第１複合体が、反応領域（２）において抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）に連結して第２複合体を形成するようになる。作製する固相の材料及び形状、並びに寸法に起因して、溶媒相は、クロマトグラフィー毛管作用の影響のもと、第１端部から第２端部へと移動する。反応領域（２）を通過した後、いずれの抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）にも結合していない第１複合体、及び形成された第２複合体は、試験領域（３）にさらに移動して、第２複合体は、即座に第１視覚シグナルを提供するため、固定した第２組換えＩＦＮ－γ（４０）に結合する。さらに具体的には、存在する場合、体液サンプルに存在する抗ＩＦＮ－γ抗体は、それぞれ第１組換えＩＦＮ－γ（１０）及び第２組換えＩＦＮ－γに免疫学的にカップリングすることができる対の結合部位を有する。試験領域（３）の試験ラインにおいて視覚的に検出可能なシグナルを放出するため、反応領域（２）に移動した抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）は、その一方の結合部位を、反応領域（２）に予め配置された第１複合体に組み込まれた第１組換えＩＦＮ－γ（１０）と反応させて、第２複合体を生じさせることになる。反応領域（２）の後、未反応又は未結合の第１複合体と第２複合体とは、溶媒相と共に、クロマトグラフィー毛管作用のもと、試験領域（３）にさらに移動する。試験領域（３）において、形成した第２複合体において既に一方の結合部位を第１組換えＩＦＮ－γ（１０）に連結させた抗ＩＦＮ－γ抗体の他方の結合部位は、試験領域（３）の試験ラインに固着又は固定した第２組換えＩＦＮ－γ（４０）に免疫学的に連結する。試験ラインにおいて固着した第２組換えＩＦＮ－γに結合することによって第２複合体を固定させることで、第１抗体（２０）に標識したシグナル部分は試験ラインにおいて濃縮されて、それにより、好ましくは、試験した体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）の検出を裏付ける肉眼又は適合するシグナルリーダーによって見る又は観察するために十分に強力なシグナルを、蓄積させて放出する。好ましくは、固定した第２組換えＩＦＮ－γ（４０）と第１複合体とは、１：１～１：１０のモル比である。 As shown in FIG. 2, the solvent phase preferably moves from the first end of the solid phase to the second end with the anti-IFN-γ antibody (30) present in the body fluid sample to bind the first complex. is linked to the anti-IFN-γ antibody (30) in the reaction region (2) to form a second complex. Due to the material and shape and dimensions of the solid phase produced, the solvent phase moves from the first end to the second end under the influence of chromatographic capillary action. After passing through the reaction area (2), the first complex that is not bound to any anti-IFN-γ antibody (30) and the formed second complex further move to the test area (3). The second complex then binds to the immobilized second recombinant IFN-γ (40) to immediately provide the first visual signal. More specifically, the anti-IFN-γ antibodies present in the body fluid sample, if present, are immunologically coupled to a first recombinant IFN-γ (10) and a second recombinant IFN-γ, respectively. It has paired binding sites that allow for In order to emit a visually detectable signal in the test line of the test area (3), the anti-IFN-γ antibody (30) transferred to the reaction area (2) transfers one of its binding sites to the reaction area (2). ) to form a second complex. After the reaction zone (2), the unreacted or unbound first and second complexes, together with the solvent phase, move further into the test zone (3) under chromatographic capillary action. In the test region (3), the other binding site of the anti-IFN-γ antibody, which has already linked one binding site to the first recombinant IFN-γ (10) in the second complex formed, is connected to the test region (3). ) is immunologically linked to a second recombinant IFN-γ (40) that is affixed or immobilized to the test line. By immobilizing the second complex by binding to the second recombinant IFN-γ immobilized in the test line, the signal moiety labeled on the first antibody (20) is concentrated in the test line, thereby preferably It accumulates and emits a signal that is strong enough to be seen or observed by the naked eye or by a compatible signal reader, confirming the detection of anti-IFN-γ antibodies (30) in the body fluid sample tested. Preferably, the immobilized second recombinant IFN-γ (40) and the first complex are in a molar ratio of 1:1 to 1:10.
一部の実施形態において、シグナル部分は金ナノ粒子（ＡｕＮＰ）であって、シグナル部分を備えた第１抗体（２０）がＡｕＮＰ標識抗ビオチン抗体（２０）となる。試験領域（３）において第１視覚シグナルを得ることは、体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）の存在を示す。あるいは、体液サンプルはいずれの抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）も有さず、試験領域（３）は、開示の装置における試験ランの終了後でも第１視覚シグナルを有さないということもある。開示の装置のいくつかの実施形態において、シグナル部分は、金属粒子（すなわちＡｕＮＰ又はコロイド金、金／銀、白金など）、蛍光物質、又は量子ドットから選択することができる。 In some embodiments, the signal moiety is a gold nanoparticle (AuNP), and the first antibody (20) with the signal moiety is an AuNP-labeled anti-biotin antibody (20). Obtaining a first visual signal in the test area (3) indicates the presence of anti-IFN-γ antibodies (30) in the body fluid sample. Alternatively, the body fluid sample may not have any anti-IFN-γ antibodies (30) and the test area (3) may not have a first visual signal even after the end of the test run in the disclosed device. In some embodiments of the disclosed device, the signal moiety can be selected from metal particles (ie, AuNPs or colloidal gold, gold/silver, platinum, etc.), fluorescent materials, or quantum dots.
上述のように、開示の装置は、固相において試験領域（３）に続くコントロール領域（４）をさらに含むことができる。コントロール領域（４）も試験領域（３）のように合成膜に配置されることを留意しておくことが重要である。合成膜の平面により、図２に示すような第１抗体（２０）又は抗ビオチン抗体に親和性を有する基質（５０）が、試験ラインにおける第２組換えＩＦＮ－γ（４０）の永続的な配置と類似してコントロール領域（４）内のコントロールラインに永続的に固着されるということが可能になる。より具体的には、開示の装置は、そこに固着されるとともに第１抗体（２０）に結合するように構成された基質（５０）を含むコントロール領域（４）をさらに含み、コントロール領域（４）は、クロマトグラフィーの固相において試験領域（３）の後に隣接して配置されている。いくつかの実施形態では、基質（５０）は、０．５～１．０μｇの量でコントロールライン（４）に固定したウサギ抗ヤギＩｇＧとすることができる一方、第１抗体（２０）は、基質（５０）が第１抗体に対する必要な免疫学的親和性を有するように、ヤギ由来のものである。より具体的には、開示の装置の一部の実施形態は、第１複合体を反応領域又はコンジュゲート領域（２）に含浸させる前に第１複合体を形成するため、１～５００μｇ／ｍＬの濃度のビオチン標識ＩＦＮ－γ（１０）と反応するように、ＡｕＮＰ標識ヤギ抗ビオチン又は第１抗体（２０）を０．１～０．５ｍｇの量で有する。試験領域（３）の後、試験領域（３）において結合していない第１複合体及び第２複合体はコントロール領域（４）にさらに移動して、第１複合体及び第２複合体が第１抗体（２０）によって基質（５０）に結合して、第２視覚シグナルを提供する。ここでも、シグナル部分はコントロールラインで濃縮されて、濃縮されたシグナル部分が、肉眼又は適合するシグナルリーダーによって検出可能である十分に強力なシグナルを蓄積させて提供する。試験した体液において抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）が存在しない場合でも、反応領域（２）からの第１複合体は、固着した第２組換えＩＦＮ－γ（４０）に結合することなく、ゆえに第１視覚シグナルを得ずに、溶媒と共に、必ず試験領域（３）を通って流れて、コントロール領域（４）に達してそれに固着した基質（５０）によって捕捉される。より好ましくは、コントロールラインは、試験した体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γの存在にかかわらず、第２視覚シグナルを得るように、又は、第１視覚シグナルの欠如若しくは抗ＩＦＮ－γの検出に関して得た陰性の結果が開示の装置の欠陥によってもたらされたものではないことを確認するように構成される。コントロールラインは、開示の装置における負のコントロールとして機能する。 As mentioned above, the disclosed device can further include a control region (4) following the test region (3) in the solid phase. It is important to note that the control area (4) is also located on the synthetic membrane like the test area (3). The plane of the synthetic membrane allows the first antibody (20) or the substrate (50) with affinity for the anti-biotin antibody, as shown in Figure 2, to be able to permanently absorb the second recombinant IFN-γ (40) in the test line. Similar to the arrangement it is possible to be permanently attached to the control line in the control area (4). More specifically, the disclosed device further comprises a control region (4) comprising a substrate (50) affixed thereto and configured to bind the first antibody (20); ) is located adjacent to and after the test area (3) in the solid phase of the chromatography. In some embodiments, the substrate (50) can be rabbit anti-goat IgG immobilized on the control line (4) in an amount of 0.5-1.0 μg, while the first antibody (20) is The substrate (50) is of goat origin so that it has the necessary immunological affinity for the first antibody. More specifically, some embodiments of the disclosed devices provide 1-500 μg/mL for forming the first complex prior to impregnating the reaction region or conjugate region (2) with the first complex. AuNP-labeled goat anti-biotin or the first antibody (20) in an amount of 0.1 to 0.5 mg to react with biotin-labeled IFN-γ (10) at a concentration of . After the test area (3), the first complex and the second complex that are not bound in the test area (3) further move to the control area (4), and the first complex and the second complex are bound to the control area (4). 1 antibody (20) to the substrate (50) to provide a second visual signal. Again, the signal moiety is concentrated in the control line such that the concentrated signal moiety accumulates and provides a signal strong enough to be detectable by the naked eye or by a suitable signal reader. Even in the absence of anti-IFN-γ antibodies (30) in the body fluid tested, the first complex from the reactive region (2) does not bind to the anchored second recombinant IFN-γ (40) and thus Without obtaining a first visual signal, it necessarily flows with the solvent through the test area (3) and reaches the control area (4) where it is captured by the substrate (50) fixed thereto. More preferably, the control line is obtained such that a second visual signal is obtained regardless of the presence of anti-IFN-γ in the body fluid sample tested, or with regard to the absence of a first visual signal or the detection of anti-IFN-γ. It is configured to confirm that the negative result was not caused by a defect in the disclosed device. The control line functions as a negative control in the disclosed device.
一部の実施形態では、基質（５０）は、コントロールライン又はコントロール領域（４）において接触する第１抗体（２０）を含む第１複合体及び／又は第２複合体を効率的に捕捉するため、第１抗体（２０）に対して免疫学的に有効な第２抗体とすることができる。より好ましくは、固定した第２組換えＩＦＮ－γ（４０）と基質（５０）とは、１：２～１：１０のモル比である。 In some embodiments, the substrate (50) is configured to efficiently capture the first complex and/or the second complex comprising the first antibody (20) that it contacts at the control line or region (4). , the second antibody can be immunologically effective against the first antibody (20). More preferably, the immobilized second recombinant IFN-γ (40) and substrate (50) are in a molar ratio of 1:2 to 1:10.
多くの実施形態では、開示の装置は、合成膜の一端部が、サンプル領域（１）、及びサンプル領域（１）と試験領域（３）との間に挿入された反応領域（２）に重なり合うようにプラスチック又は紙のストリップに重ねられた、試験領域（３）の試験ライン及びコントロール領域（４）のコントロールラインを有する合成膜を有する。さらに、溶媒相が通過する平面のフリースペースには、溶媒相と共に通過する試薬及び／又は細胞化合物に対して化学的に不活性の環境を作り出す、コーティング（６０）の層がさらに重ねられている。コーティング（６０）の層は、好ましくは、非特異的シグナル遮断タンパク質から作製される。例えば、コーティングは、合成膜の表面にコーティング前にＰＢＳに溶解される、ウシ血清アルブミン及び／又は脱脂乳のリン酸化タンパク質から構成することができる。 In many embodiments, the disclosed apparatus has one end of the synthetic membrane overlapping a sample region (1) and a reaction region (2) inserted between the sample region (1) and the test region (3). The composite membrane has a test line in the test area (3) and a control line in the control area (4) superimposed on a plastic or paper strip. Additionally, the planar free space through which the solvent phase passes is overlaid with a further layer of coating (60) that creates a chemically inert environment for reagents and/or cellular compounds passing with the solvent phase. . The layer of coating (60) is preferably made of non-specific signal blocking proteins. For example, the coating can consist of bovine serum albumin and/or skim milk phosphoproteins that are dissolved in PBS prior to coating on the surface of the synthetic membrane.
上述のように、本開示の装置の一部の実施形態は、コントロール領域（４）の一端部につながって、第２端部の少なくとも一部を形成する吸収要素をさらに含むことができる。第２端部における吸収剤の存在により、第２端部に達する過剰な溶媒相を吸収することに加えて、溶媒相及び他の試薬を第２端部に向かって流すようにする、毛管作用を高めることができる。好ましくは、吸収剤は、セルロース繊維シート、ろ紙、及びパルプのいずれか１つ又は組合せである。 As mentioned above, some embodiments of the device of the present disclosure may further include an absorbent element connected to one end of the control region (4) and forming at least a portion of the second end. The presence of an absorbent at the second end causes capillary action to cause the solvent phase and other reagents to flow towards the second end, in addition to absorbing excess solvent phase reaching the second end. can be increased. Preferably, the absorbent is any one or a combination of cellulose fiber sheets, filter paper, and pulp.
本開示の他の態様は、対象から得た体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）の存在を検出するための方法である。好ましくは、上述の方法は、サンプル領域（１）において体液サンプルを含む溶媒相を付着させるステップと、体液サンプルに存在する抗ＩＦＮ－γ抗体と共に溶媒相を反応領域（２）に誘導し、該反応領域（２）は、ビオチンで標識した第１組換えＩＦＮ－γ（１０）、及びシグナル部分を連結した第１抗体（２０）を含む複数の第１複合体を含浸させており、該第１抗体（２０）は、標識したビオチンに結合することで第１複合体を形成するように第１組換えＩＦＮ－γ（１０）にカップリングし、該第１複合体は、反応領域（２）において抗ＩＦＮ－γ抗体に連結して第２複合体を形成するように構成される、ステップと、溶媒相を、形成した第２複合体及び第１複合体と共に、複数の第２組換えＩＦＮ－γ（４０）を固定した試験領域（３）にさらに移動させるように誘導し、該第２複合体は固定した第２組換えＩＦＮ－γ（４０）に結合して、第１視覚シグナルを提供するように構成される、ステップとを含む。好ましくは、サンプル領域（１）、反応領域（２）、及び試験領域（３）は、クロマトグラフィーの固相の第１端部から第２端部へと連続して配置される。誘導するステップは、溶媒相をサンプル領域（１）において付着させる際、クロマトグラフィーの固相のクロマトグラフィー毛管作用の影響のもと、自然に行われるということに留意することが重要である。また、試験領域（３）において得た第１視覚シグナルは、体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）の存在を示す。 Another aspect of the disclosure is a method for detecting the presence of anti-IFN-γ antibodies (30) in a body fluid sample obtained from a subject. Preferably, the method described above comprises the steps of depositing a solvent phase comprising a body fluid sample in the sample region (1) and directing the solvent phase together with the anti-IFN-γ antibody present in the body fluid sample into the reaction region (2), The reaction region (2) is impregnated with a plurality of first complexes including a first recombinant IFN-γ labeled with biotin (10) and a first antibody (20) linked with a signal moiety; 1 antibody (20) is coupled to the first recombinant IFN-γ (10) to form a first complex by binding to labeled biotin, and the first complex is coupled to the reaction region (20). ) and a solvent phase, together with the formed second complex and the first complex, comprising a plurality of second recombinants configured to link to the anti-IFN-γ antibody to form a second complex. IFN-γ (40) is induced to migrate further into the immobilized test area (3), and the second complex binds to the immobilized second recombinant IFN-γ (40) and transmits the first visual signal. and comprising steps configured to provide. Preferably, the sample zone (1), the reaction zone (2) and the test zone (3) are arranged in succession from the first end to the second end of the chromatographic solid phase. It is important to note that the inducing step takes place naturally under the influence of the chromatographic capillary action of the chromatographic solid phase as the solvent phase is deposited in the sample area (1). The first visual signal obtained in the test area (3) also indicates the presence of anti-IFN-γ antibodies (30) in the body fluid sample.
上述したように、溶媒相及び標的の抗ＩＦＮ－γ抗体は、存在する場合、固相において画定した各領域に予め配置した種々の試薬と接触して反応するように構成される。固相は、好ましくは、第１端部及び第２端部を有する基層を形成するセルロース又はプラスチックのストリップ、試験領域（３）及び試験領域（３）に隣接する任意のコントロール領域（４）を設けるため、基層表面の一部に重なる合成膜、並びに開示の方法の終了までに第２端部に達する過剰な溶媒相を吸収するため第２端部周りに組み込まれる吸収材料を含む。特に、組換えＩＦＮ－γは、０．１～１．０μｇの量で試験領域（３）内の試験ラインにおける合成膜に固定される。開示の装置における試験領域（３）の前の反応領域（２）の表面において、試験した任意の生物学的サンプルに見受けられる抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）に即座に結合するように、第１複合体を含浸させる又は配置する。試験を開始する及び／又は抗ＩＦＮ－γ抗体を検出するため、対象の体液、又は体液と１つ以上の緩衝液との混合物であり得る溶媒相を、そこに付着させる。一部の実施形態において、体液は、対象の血液サンプル又は血清サンプルとすることができる。開示の方法は、溶媒相をサンプル領域（１）に付着させる際、二重抗体サンドイッチＥＬＩＳＡを行うため、体液を希釈するか又は他の試薬と混合する、前処理ステップをさらに含むことができる。さらなる実施形態では、開示の方法は、体液に見受けられるいくらかの大きな細胞成分を捕らえるためサンプル領域（１）に備え得る、ろ過要素を使用して、体液サンプルをろ過するステップをさらに含む。 As mentioned above, the solvent phase and the targeting anti-IFN-γ antibody, if present, are configured to contact and react with various reagents pre-disposed in each defined region of the solid phase. The solid phase preferably comprises a strip of cellulose or plastic forming a base layer having a first end and a second end, a test area (3) and an optional control area (4) adjacent to the test area (3). The method includes a synthetic membrane overlying a portion of the substrate surface and an absorbent material incorporated around the second end to absorb excess solvent phase that reaches the second end by the end of the disclosed method. In particular, recombinant IFN-γ is immobilized on the synthetic membrane in the test line in the test area (3) in an amount of 0.1-1.0 μg. At the surface of the reaction area (2) in front of the test area (3) in the disclosed device, a first Impregnating or placing the composite. To initiate the test and/or detect anti-IFN-γ antibodies, a solvent phase, which can be a body fluid of the subject, or a mixture of a body fluid and one or more buffers, is deposited thereon. In some embodiments, the body fluid can be a blood or serum sample of the subject. The disclosed method may further include a pretreatment step of diluting or mixing the body fluid with other reagents for performing a double antibody sandwich ELISA when depositing the solvent phase on the sample area (1). In a further embodiment, the disclosed method further comprises filtering the body fluid sample using a filtration element, which may be provided in the sample region (1) to capture any large cellular components found in the body fluid.
いくつかの好ましい実施形態において、開示の方法は、そこに固着するとともに第１抗体に結合するように構成された基質（５０）を含むコントロール領域（４）にさらに移動させるように、溶媒相を誘導するステップをさらに含む。コントロール領域（４）は、クロマトグラフィーの固相において試験領域（３）の後に隣接して配置され、試験領域（３）において結合していない第１複合体及び第２複合体は、溶媒相と共に、必然的にコントロール領域（４）に移動する。基質に対する免疫学的親和性に起因して、第１複合体及び第２複合体が第１抗体（２０）によって基質（５０）に結合して、第２視覚シグナルを提供する。特に、試験領域（３）において結合していない第１複合体及び第２複合体はコントロール領域（４）にさらに移動して、第１複合体及び第２複合体が第１抗体（２０）によって基質（５０）に結合して、第２視覚シグナルを提供する。シグナル部分はコントロールラインで濃縮されて、濃縮されたシグナル部分が、肉眼又は適合するシグナルリーダーによって検出可能である十分に強力なシグナルを蓄積させて提供する。試験した体液において抗ＩＦＮ－γ抗体（３０）が存在しない場合でも、反応領域（２）からの第１複合体は、固着した第２組換えＩＦＮ－γ（４０）に結合することなく、ゆえに第１視覚シグナルを得ずに、溶媒と共に、必ず試験領域（３）を通って流れて、コントロール領域（４）に達してそれに固着した基質（５０）によって捕捉される。より好ましくは、コントロールラインは、試験した体液サンプルにおける抗ＩＦＮ－γの存在にかかわらず、第２視覚シグナルを得るように、又は、第１視覚シグナルの欠如若しくは抗ＩＦＮ－γの検出に関して得た陰性の結果が、クロマトグラフィーの固相若しくは試薬の異常、若しくは開示の方法を不適切に行ったことによってもたらされたものではないことを確認するように構成される。さらなる実施形態では、第２組換えＩＦＮ－γ（４０）及び／又は基質（５０）は、開示の方法において合成膜に固定されている。 In some preferred embodiments, the disclosed method further transfers the solvent phase to a control region (4) containing a substrate (50) affixed thereto and configured to bind to a first antibody. The method further includes the step of inducing. A control area (4) is placed adjacently after the test area (3) in the solid phase of the chromatography, and the unbound first and second complexes in the test area (3) are carried out together with the solvent phase. , inevitably moves to the control area (4). Due to immunological affinity for the substrate, the first complex and the second complex are bound by the first antibody (20) to the substrate (50) to provide a second visual signal. In particular, the first and second complexes that are not bound in the test area (3) further move to the control area (4), and the first and second complexes are removed by the first antibody (20). Binds to substrate (50) to provide a second visual signal. The signal moiety is concentrated in the control line such that the concentrated signal moiety accumulates and provides a signal strong enough to be detectable by the naked eye or by a suitable signal reader. Even in the absence of anti-IFN-γ antibodies (30) in the body fluid tested, the first complex from the reactive region (2) does not bind to the anchored second recombinant IFN-γ (40) and thus Without obtaining a first visual signal, it necessarily flows with the solvent through the test area (3) and reaches the control area (4) where it is captured by the substrate (50) fixed thereto. More preferably, the control line is obtained such that a second visual signal is obtained regardless of the presence of anti-IFN-γ in the body fluid sample tested, or with regard to the absence of a first visual signal or the detection of anti-IFN-γ. It is configured to ensure that the negative result is not caused by anomalies in the chromatographic solid phase or reagents, or improper performance of the disclosed method. In a further embodiment, the second recombinant IFN-γ (40) and/or substrate (50) is immobilized on a synthetic membrane in the disclosed method.
開示の方法の多くの実施形態では、シグナル部分はＡｕＮＰ、蛍光物質、又は量子ドットである。 In many embodiments of the disclosed methods, the signal moiety is an AuNP, a fluorescent material, or a quantum dot.
以下の実施例は、本明細書に記載する特定の実施形態に本開示を限定するという意図なく、本開示をさらに記載することを目的としている。 The following examples are intended to further describe the disclosure without intending to limit the disclosure to the particular embodiments described herein.
実施例１
ＩＦＮ－γ産生を試験するため、間接ＥＬＩＳＡを行った。マイクロタイタープレートを、ウェルあたり５０μＬの組換えＩＦＮ－γでコーティングし、保湿チャンバ内において４℃で一晩インキュベートした。以下のステップを室温で行った。コーティングしたウェルを、ＰＢＳ中の０．０５％のＴｗｅｅｎ２０で３回洗浄し、２００μＬのブロッキング溶液（２％の脱脂乳を含むＰＢＳ）で１時間ブロッキングした。５回の洗浄後、５０μＬのマウス抗ＨｉｓタグｍＡｂを添加して、１時間インキュベートした。５回の洗浄後、５０μＬのＨＲＰコンジュゲートヤギ抗マウス免疫グロブリンを添加して、１時間インキュベートした。反応をＴＭＢ基質によって生じさせ、１ＮのＨＣＩによって停止した。吸光度をＥＬＩＳＡリーダーによって４５０ｎｍにおいて測定した。
Example 1
Indirect ELISA was performed to test IFN-γ production. Microtiter plates were coated with 50 μL of recombinant IFN-γ per well and incubated overnight at 4° C. in a humidified chamber. The following steps were performed at room temperature. Coated wells were washed three times with 0.05% Tween 20 in PBS and blocked for 1 hour with 200 μL of blocking solution (2% nonfat milk in PBS). After 5 washes, 50 μL of mouse anti-His tag mAb was added and incubated for 1 hour. After 5 washes, 50 μL of HRP-conjugated goat anti-mouse immunoglobulin was added and incubated for 1 hour. Reactions were generated with TMB substrate and stopped with 1N HCI. Absorbance was measured at 450 nm by an ELISA reader.
図３は、抗ｈｉｓタグｍＡｂを使用した間接ＥＬＩＳＡによる組換えＩＦＮ－γ分析の結果を示す。組換えＩＦＮ－γを調製し、ＥＬＩＳＡを使用して確認した。組換えＩＦＮ－γコーティングウェルは、マウス抗ＨｉｓタグｍＡｂでプローブした際、陽性のシグナルを示した。この結果は、可溶、封入体、リフォールディング形態を含むＩＦＮ－γタンパク質が、マウス抗ｈｉｓタグ抗体と反応することを示唆した。しかしながら、一部の条件におけるＩＦＮ－γ調製物は異なる結合活性を示した。 Figure 3 shows the results of recombinant IFN-γ analysis by indirect ELISA using anti-his tag mAb. Recombinant IFN-γ was prepared and confirmed using ELISA. Recombinant IFN-γ coated wells showed a positive signal when probed with mouse anti-His tag mAb. This result suggested that IFN-γ protein, including soluble, inclusion bodies, and refolded forms, reacted with the mouse anti-his tag antibody. However, IFN-γ preparations in some conditions showed different binding activities.
図４は、抗ＩＦＮ－γ ｍＡｂ及びＨＲＰで標識したヤギ抗マウスＩｇを使用した間接ＥＬＩＳＡによる組換えＩＦＮ－γ分析の結果を示す。この結果は、可溶、封入体、リフォールディング形態を含むＩＦＮ－γタンパク質が、マウス抗ＩＦＮ－γ ｍＡｂ抗体と反応することを示唆した。 Figure 4 shows the results of recombinant IFN-γ analysis by indirect ELISA using anti-IFN-γ mAb and HRP-labeled goat anti-mouse Ig. This result suggested that IFN-γ protein, including soluble, inclusion bodies, and refolded forms, reacted with the mouse anti-IFN-γ mAb antibody.
可溶形態で調製した組換えＩＦＮ－γと、封入体（ＩＢ）を溶解したＩＦＮ－γタンパク質とを、両方の抗体で標識したとき、光学密度（ＯＤ）が４５０ｎｍにおけるほぼすべての試験において検出されることが見受けられる。しかし、ＰＢＳ緩衝液に溶解したＩＦＮ－γ可溶化タンパク質は、概して非常に低いＯＤ検出を示した。 When recombinant IFN-γ prepared in soluble form and IFN-γ protein dissolved in inclusion bodies (IB) were labeled with both antibodies, the optical density (OD) was detected in almost all tests at 450 nm. It can be seen that this is done. However, IFN-γ solubilized protein dissolved in PBS buffer generally showed very low OD detection.
ＩＢを溶解して精製したタンパク質調製物において、抗ｈｉｓタグｍＡｂ及び抗ＩＦＮ－γ ｍＡｂの結合活性を観察した。観察結果は、試験結果が試験条件によってわずかな違いを示し得るものの、可溶形態のＩＦＮ－γタンパク質の調製物と同様であった。 The binding activity of anti-his tag mAb and anti-IFN-γ mAb was observed in protein preparations purified by lysis of IB. The observed results were similar for the preparation of soluble form of IFN-γ protein, although the test results may show slight differences depending on the test conditions.
実施例２
形成した可溶ＩＦＮ－γ及びリフォールディングＩＦＮ－γを含むＩＦＮ－γの二量体特性を試験するため、二重抗体サンドイッチＥＬＩＳＡを行った。マイクロタイタープレートを、ウェルあたり５０μＬのマウス抗ＩＦＮ－γクローンＢ２７（ｐＨ９．６の重炭酸緩衝液中で０．５μｇ／ｍＬ）でコーティングし、保湿チャンバ内において４℃で一晩インキュベートした。以下のステップを室温で行った。コーティングしたウェルを、ＰＢＳ中の０．０５％のＴｗｅｅｎ２０で３回洗浄し、２００μＬのブロッキング溶液（１％の脱脂乳を含むＰＢＳ）で１時間ブロッキングした。５回の洗浄後、５０μＬの０．５μｇ／ｍＬビオチン標識マウス抗ＩＦＮ－γクローンＢ２７を添加して、１時間インキュベートした。５回の洗浄後、５０μＬの１：１０，０００希釈のストレプトアビジン－ＨＲＰを添加して、１時間インキュベートした。反応をＴＭＢ基質によって生じさせ、１ＮのＨＣＩによって停止した。吸光度をＥＬＩＳＡリーダーによって４５０ｎｍにおいて測定した。
Example 2
To test the dimeric nature of IFN-γ, including formed soluble IFN-γ and refolded IFN-γ, a double antibody sandwich ELISA was performed. Microtiter plates were coated with 50 μL per well of mouse anti-IFN-γ clone B27 (0.5 μg/mL in bicarbonate buffer, pH 9.6) and incubated overnight at 4° C. in a humidified chamber. The following steps were performed at room temperature. Coated wells were washed three times with 0.05% Tween 20 in PBS and blocked with 200 μL of blocking solution (1% nonfat milk in PBS) for 1 hour. After washing five times, 50 μL of 0.5 μg/mL biotin-labeled mouse anti-IFN-γ clone B27 was added and incubated for 1 hour. After five washes, 50 μL of 1:10,000 dilution streptavidin-HRP was added and incubated for 1 hour. Reactions were generated with TMB substrate and stopped with 1N HCI. Absorbance was measured at 450 nm by an ELISA reader.
図５は、二重抗体サンドイッチＥＬＩＳＡによる、可溶形態及び封入体（ＩＢ）溶液として調製した組換えインターフェロンγの二量体分析を、作製したタンパク質サンプルにおいて行ったことを示す。最も低い光学密度（ＯＤ）を有するＰＢＳ緩衝液中のＩＦＮ－γ可溶化タンパク質を除いて、高光学密度（ＯＤ）を観察した。 Figure 5 shows that dimer analysis of recombinant interferon-gamma prepared as soluble form and inclusion body (IB) solution was performed on the generated protein samples by double antibody sandwich ELISA. High optical densities (OD) were observed, except for the IFN-γ solubilized protein in PBS buffer, which had the lowest optical density (OD).
この結果は、すべての可溶及びＩＢの組換えインターフェロンγが二量体タンパク質であるが、ＰＢＳ緩衝液中のＩＦＮ－γ可溶化タンパク質のみが最も小さい二量体化特性を有することを示す。したがって、様々なサンプルのインターフェロンγタンパク質が異なる二量体化特性を有している。 This result indicates that all soluble and IB recombinant interferon-gamma is a dimeric protein, but only the IFN-gamma solubilized protein in PBS buffer has the least dimerization properties. Therefore, interferon gamma proteins from various samples have different dimerization properties.
実施例３
二重抗原サンドイッチＥＬＩＳＡによる抗インターフェロンγ検出の方法を得た後、二重抗原サンドイッチＥＬＩＳＡによる、２０人の成人発症性の免疫不全症（ＡＯＩＤ）患者（標準の間接ＥＬＩＳＡによって陽性の結果を確認）の血清における抗インターフェロンγ検出のため、２０人の実際の患者の血清を使用して、試験を行い、結果を標準の間接ＥＬＩＳＡと比較した。
Example 3
After obtaining a method for anti-interferon gamma detection by dual-antigen sandwich ELISA, 20 adult-onset immunodeficiency (AOID) patients (confirmed positive results by standard indirect ELISA) by dual-antigen sandwich ELISA For the detection of anti-interferon gamma in the serum of patients, a test was performed using 20 real patient sera and the results were compared with a standard indirect ELISA.
マイクロプレートウェルを、１０μｇ／ｍＬの濃度で、ウェルあたり５０μＬの、精製したインターフェロンγでコーティングし、４℃で１６～１８時間、加湿ボックス内に置いた。リン酸緩衝食塩液（ＰＢＳ）中の０．０５％のＴｗｅｅｎ２０でプレートを５回洗浄し、軽くたたいて乾燥させた後、ウェルあたり２００μＬでＰＢＳ中の２％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を用いたブロッキング溶液を添加し、プレートを室温で１時間、加湿ボックスに保管した。 Microplate wells were coated with 50 μL of purified interferon-γ per well at a concentration of 10 μg/mL and placed in a humidified box for 16-18 hours at 4°C. Wash the plates five times with 0.05% Tween 20 in phosphate-buffered saline (PBS), pat dry, and then add 2% bovine serum albumin (BSA) in PBS at 200 μL per well. Blocking solution was added and the plate was stored in a humidified box at room temperature for 1 hour.
２０人すべてのＡＯＩＤ患者における個々の血清を、ＰＢＳ中の２％ＢＳＡで１：１００希釈に調製してから、プレートを、ＰＢＳ中の０．０５％のＴｗｅｅｎ２０で洗浄し、軽くたたいて乾燥させた。１：１０００、１：５００、及び１：１００希釈の強力に陽性の血清を、ウェルあたり５０μＬで添加し、プレートを室温で１時間、加湿ボックスに保管し、プレートをＰＢＳ中の０．０５％のＴｗｅｅｎ２０で５回洗浄して、軽くたたいて乾燥させた。 Individual sera in all 20 AOID patients were prepared at a 1:100 dilution in 2% BSA in PBS, then the plates were washed with 0.05% Tween 20 in PBS and tapped dry. I let it happen. Strongly positive sera at 1:1000, 1:500, and 1:100 dilutions were added at 50 μL per well, the plates were kept in a humidified box for 1 hour at room temperature, and the plates were diluted with 0.05% in PBS. Washed 5 times with Tween 20 and patted dry.
１μｇ／ｍＬの濃度のビオチン標識ＩＦＮ－γを、ウェルあたり５０μＬでマイクロプレートに添加し、プレートを室温で１時間、加湿ボックスに保管した。プレートを、高ストリンジェンシーの洗浄緩衝液で５回洗浄し、軽くたたいて乾燥させた後、１：５０００希釈のＨＲＰ抗ビオチンｍＡｂを、ウェルあたり５０μＬで添加し、プレートを室温で１時間、加湿ボックスに保管した。その後、プレートを、ＰＢＳ中の０．０５％のＴｗｅｅｎ２０で５回洗浄した。プレートを乾燥させた後、ＨＲＰ反応のため、５０μＬのＴＭＢ基質（３，３′，５，５′－テトラメチルベンジジン）をウェルごとに添加した。西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）とＴＭＢとの反応を、６ＮのＨＣＬをウェルあたり５０μＬ添加して、１５分で停止させた。４５０ｎｍでの光学密度（ＯＤ４５０）をＥＬＩＳＡマイクロプレートリーダーで測定した。 Biotin-labeled IFN-γ at a concentration of 1 μg/mL was added to the microplate at 50 μL per well, and the plate was kept in a humidified box at room temperature for 1 hour. After washing the plate 5 times with high stringency wash buffer and tapping dry, HRP anti-biotin mAb at a 1:5000 dilution was added at 50 μL per well and the plate was incubated at room temperature for 1 h. Stored in a humidified box. The plates were then washed 5 times with 0.05% Tween 20 in PBS. After drying the plate, 50 μL of TMB substrate (3,3',5,5'-tetramethylbenzidine) was added per well for HRP reaction. The reaction between horseradish peroxidase (HRP) and TMB was stopped in 15 minutes by adding 50 μL of 6N HCL per well. Optical density at 450 nm (OD450) was measured with an ELISA microplate reader.
図６は、抗ＩＦＮ－γ自己抗体の検出のため、標準／従来の方法である間接ＥＬＩＳＡを適用したＡＯＩＤ患者の試験結果を示す。活性（ｎ＝６）又は不活性（ｎ＝１４）疾患のいずれかの、２０人のＡＯＩＤ患者の血清のうち、すべてが陽性である。 Figure 6 shows the results of testing AOID patients applying standard/conventional method indirect ELISA for detection of anti-IFN-γ autoantibodies. Of the 20 AOID patient sera with either active (n=6) or inactive (n=14) disease, all are positive.
同じ２０人のＡＯＩＤ患者における抗ＩＦＮ－γ自己抗体の検出のため、二重抗原サンドイッチＥＬＩＳＡ法を適用することにおいて、血清希釈は１：１００を選択した。反応を１５分で停止し、ＯＤ値を４５０ｎｍで測定し、活性群（Ａ）（ｎ＝６）又は不活性群（Ｉ）（ｎ＝１４）のいずれかの各患者は、上述の方法による抗インターフェロンγ抗体検出において異なる陽性の結果を示しており、この結果は重症度に相関するわけではない。さらに、陽性の結果を決定するためのしきい値を、平均が０．１７である、個々の血清のバックグラウンド値から得たカットオフ値から考慮し、図７に示すように、２０人の患者におけるすべての陽性の結果をもたらした。 For the detection of anti-IFN-γ autoantibodies in the same 20 AOID patients, a serum dilution of 1:100 was chosen in applying the double antigen sandwich ELISA method. The reaction was stopped at 15 minutes, the OD value was measured at 450 nm, and each patient in either active group (A) (n = 6) or inactive group (I) (n = 14) was treated by the method described above. They show differentially positive results in anti-interferon-gamma antibody detection, and these results do not correlate with severity. Furthermore, the threshold for determining a positive result was considered from the cut-off value obtained from the background value of the individual sera, with an average of 0.17, and as shown in Fig. 7, 20 yielded all positive results in patients.
間接ＥＬＩＳＡ及び二重抗原サンドイッチＥＬＩＳＡの両方の方法の比較において、図８に示すようにＯＤデータをノーマライズした。両方の方法から得た結果が各患者において類似したことが観察され得る。患者Ｉ００２を除いて、二重抗原サンドイッチＥＬＩＳＡ技術による結果は、間接ＥＬＩＳＡのものよりも高い値をもたらし、これは、ＩｇＭ又はＩｇＡであり得る、ＩｇＧではない他の種類の抗インターフェロンγ抗体の存在によるものであり得る。 In the comparison of both indirect ELISA and dual antigen sandwich ELISA methods, the OD data was normalized as shown in Figure 8. It can be observed that the results obtained from both methods were similar in each patient. With the exception of patient I002, the results with the double antigen sandwich ELISA technique yielded higher values than those of the indirect ELISA, which may be due to the presence of other types of anti-interferon-gamma antibodies, which may be IgM or IgA, but not IgG. This may be due to
実施例４
二重抗原サンドイッチＥＬＩＳＡに基づいて機能する本開示の装置又は試験キットの一実施形態の作製は、以下のプロセスを含むことができる。
Ａ．試験領域（３）において組換えＩＦＮ－γを固定し、及びコントロール領域（４）において金ナノ粒子標識抗ビオチン（２０）の特異的基質を固定し、組換えＩＦＮ－γ及び基質の両方を合成膜に固着し、合成膜の空き領域をコーティング（６０）で覆う。
Ｂ．反応領域（２）においてビオチン標識ＩＦＮ－γ（１０）とカップリングした金ナノ粒子標識抗ビオチン（又は第１抗体）（２０）を含む複数の第１複合体を含浸させ、ビオチン標識ＩＦＮ－γ（１０）は、血清サンプルに存在するいずれかの抗ＩＦＮ－γ抗体と自然に結合して、陽性の結果を得る。
Ｃ．プラスチックストリップ又クロマトグラフィーの固相の中央においてプロセスＡから得た試験領域（３）及びコントロール領域（４）を含む合成膜を配置することによって試験キットを作製する。反応領域に隣接する合成膜の端部は、各領域の端部が互いに物理的に接触するように、結合領域（２）の一端部でつながる。上述のストリップは、重なり合うようにコントロール領域（４）の一端部につながる吸着材料を組み込んだ接触領域（５）をさらに含むことができる。
Example 4
The production of one embodiment of the disclosed device or test kit that operates based on a dual antigen sandwich ELISA can include the following process.
A. Immobilization of recombinant IFN-γ in the test area (3) and immobilization of a specific substrate of gold nanoparticle-labeled anti-biotin (20) in the control area (4) to synthesize both recombinant IFN-γ and substrate It adheres to the membrane and covers the empty areas of the synthetic membrane with a coating (60).
B. A plurality of first complexes containing gold nanoparticle-labeled anti-biotin (or first antibody) (20) coupled with biotin-labeled IFN-γ (10) are impregnated in the reaction region (2), and biotin-labeled IFN-γ (10) naturally binds to any anti-IFN-γ antibodies present in the serum sample, giving a positive result.
C. A test kit is made by placing a synthetic membrane containing a test area (3) and a control area (4) from process A in the center of a plastic strip or chromatographic solid phase. The edges of the synthetic membrane adjacent to the reaction zone join at one end of the binding zone (2) such that the edges of each zone are in physical contact with each other. The strip described above may further comprise a contact area (5) incorporating an adsorbent material leading to one end of the control area (4) in an overlapping manner.
実施例５
コロイド金コンジュゲーション（ＣＧＣ）を検証し、開示の実施形態に使用するビオチンで標識した第１組換えインターフェロンγ又はビオチン標識ＩＦＮ－γの濃度を最適化するため、コロイド金で標識したヤギ抗ビオチンを、１００、１０、及び１μｇ／ｍＬの異なる３つの濃度のビオチン標識ＩＦＮ－γに適用して、直接ドットブロットアッセイを行い、１０μｇ／ｍＬウサギ抗ヤギＩｇＧを陽性コントロールとし、ＰＢＳを陰性コントロールとした。図９ａに示すように、赤紫色又は暗紫色のドットが、ビオチン標識ＩＦＮ－γをコーティング／固定した領域又は部分にのみ現れた。したがって、ＣＧＣ標識した抗ビオチンは、開示の実施形態においてレポート又はシグナリングに特異的に機能する。一方で、組換えＩＦＮ－γを、ビオチン標識ＩＦＮ－γに適用したとき、図９ｂに示すように、赤紫色又は暗紫色のドットは現れない。
Example 5
Goat anti-biotin labeled with colloidal gold to validate colloidal gold conjugation (CGC) and optimize the concentration of biotin-labeled first recombinant interferon-gamma or biotin-labeled IFN-gamma for use in disclosed embodiments. was applied to biotin-labeled IFN-γ at three different concentrations of 100, 10, and 1 μg/mL to perform a direct dot blot assay, with 10 μg/mL rabbit anti-goat IgG as a positive control and PBS as a negative control. did. As shown in Figure 9a, red-purple or dark-purple dots appeared only in the areas or parts where biotin-labeled IFN-γ was coated/immobilized. Thus, CGC-labeled anti-biotin functions specifically for reporting or signaling in the disclosed embodiments. On the other hand, when recombinant IFN-γ is applied to biotin-labeled IFN-γ, no red-purple or dark-purple dots appear, as shown in FIG. 9b.
図１０は、サンプルにおける抗インターフェロンγ抗体の有無を検出するための本開示の実施形態の精度を示す写真であり、試験領域及びコントロール領域における２つの視覚シグナルが、５つすべての陽性血清（１～５）において観察される一方、コントロール領域は単独で陰性血清（６～１０）において可視化された。 Figure 10 is a photograph illustrating the accuracy of an embodiment of the present disclosure for detecting the presence or absence of anti-interferon-gamma antibodies in a sample, where two visual signals in the test area and control area ~5), while control regions were visualized alone in negative sera (6-10).
本開示は、本明細書において広範に記載するとともに、以下において記載する、その構造、方法、又は他の必須の特徴から逸脱することなく、他の特定の態様においても実現され得る。記載の実施形態は、あらゆる点で例示としてのみ考慮され、限定するものではない。したがって、本開示の範囲は、上述の発明を実施する形態の記載ではなく、添付の特許請求の範囲によって示される。特許請求の範囲の同等物の趣旨及び範囲内に該当するすべての変更は、その範囲内に包含される。 The present disclosure may be embodied in other specific aspects without departing from the structure, method, or other essential characteristics thereof, as broadly described herein and described below. The described embodiments are to be considered in all respects only as illustrative and not limiting. The scope of the disclosure is, therefore, indicated by the appended claims rather than by the detailed description set forth above. All changes that come within the spirit and range of equivalents of the claims are to be embraced within their scope.
参照符号の説明
Claims (13)
前記体液サンプルを含む溶媒相を付着させるためのサンプル領域と、
ビオチンで標識した第１組換えインターフェロンγ、及びシグナル部分を連結した第１抗体を含む複数の第１複合体を含浸させた反応領域であって、前記第１抗体は、標識した前記ビオチンに結合することで前記第１複合体を形成するように前記第１組換えインターフェロンγにカップリングする、反応領域と、
複数の第２組換えインターフェロンγを固定させた試験領域と、
そこに固着されるとともに前記第１抗体に対する免疫学的親和性を有する第２抗体を含むコントロール領域とを含み、
前記サンプル領域、前記反応領域、前記試験領域及び前記コントロール領域は、クロマトグラフィーの固相の第１端部から第２端部へと連続して配置され、
前記溶媒相は、前記体液サンプルに存在する前記抗インターフェロンγ抗体と共に前記固相の前記第１端部から前記第２端部へと移動して、前記第１複合体が、前記反応領域において前記抗インターフェロンγ抗体に連結して第２複合体を形成し、前記第１複合体と前記第２複合体とが前記試験領域にさらに移動して、前記第２複合体が固定した前記第２組換えインターフェロンγに結合して第１視覚シグナルを提供し、
前記試験領域において得られた前記第１視覚シグナルは、前記体液サンプルにおける前記抗インターフェロンγ抗体の存在を示す、装置。 A device for detecting the presence of anti-interferon gamma antibodies in a body fluid sample obtained from a subject, the device comprising:
a sample area for depositing a solvent phase containing the body fluid sample;
A reaction region impregnated with a plurality of first complexes including a first recombinant interferon γ labeled with biotin and a first antibody linked to a signal moiety, the first antibody binding to the labeled biotin. a reactive region that couples to the first recombinant interferon gamma to form the first complex;
a test region having a plurality of second recombinant interferon γ immobilized ;
a control region comprising a second antibody affixed thereto and having immunological affinity for the first antibody ;
the sample region, the reaction region , the test region and the control region are arranged sequentially from a first end to a second end of a chromatographic solid phase;
The solvent phase moves from the first end to the second end of the solid phase together with the anti-interferon-gamma antibody present in the body fluid sample, so that the first complex is transferred to the reaction region. The second complex is linked to an anti-interferon gamma antibody to form a second complex, the first complex and the second complex further move to the test area, and the second complex is immobilized by the second complex. binding to engineered interferon gamma to provide a first visual signal;
The device, wherein the first visual signal obtained in the test area indicates the presence of the anti-interferon gamma antibody in the body fluid sample.
サンプル領域において前記体液サンプルを含む溶媒相を付着させるステップと、
前記体液サンプルに存在する抗インターフェロンγ抗体と共に前記溶媒相を反応領域に誘導し、前記反応領域は、ビオチンで標識した第１組換えインターフェロンγ、及びシグナル部分を連結した第１抗体を含む複数の第１複合体を含浸させており、前記第１抗体は、標識した前記ビオチンに結合することで前記第１複合体を形成するように前記第１組換えインターフェロンγにカップリングし、前記第１複合体は、前記反応領域において前記抗インターフェロンγ抗体に連結して第２複合体を形成するように構成される、ステップと、
前記溶媒相を、形成した前記第２複合体及び前記第１複合体と共に、複数の第２組換えインターフェロンγを固定した試験領域にさらに移動させるように誘導し、前記第２複合体は固定した前記第２組換えインターフェロンγに結合して、第１視覚シグナルを提供するように構成される、ステップと、
前記溶媒相を、そこに固着するとともに前記第１抗体に対する免疫学的親和性を有する第２抗体を含むコントロール領域にさらに移動させるように誘導し、前記試験領域において結合していない前記第１複合体及び前記第２複合体は前記コントロール領域に移動し、前記第１複合体及び前記第２複合体が前記第１抗体によって前記第２抗体に結合して、第２視覚シグナルを提供するステップとを含み、
前記サンプル領域、前記反応領域、前記試験領域及び前記コントロール領域は、クロマトグラフィーの固相の第１端部から第２端部へと連続して配置され、
前記試験領域において得られた前記第１視覚シグナルは、前記体液サンプルにおける前記抗インターフェロンγ抗体の存在を示す、方法。 1. A method for detecting the presence of anti-interferon gamma antibodies in a body fluid sample obtained from a subject, the method comprising:
depositing a solvent phase containing the body fluid sample in a sample region;
The solvent phase together with the anti-interferon gamma antibodies present in the body fluid sample is introduced into a reaction region, and the reaction region contains a plurality of antibodies containing a first recombinant interferon gamma labeled with biotin and a first antibody linked to a signal moiety. the first antibody is coupled to the first recombinant interferon γ to form the first complex by binding to the labeled biotin; a complex is configured to link to the anti-interferon gamma antibody in the reaction region to form a second complex;
The solvent phase, together with the formed second complex and the first complex, is further induced to migrate to a test area where a plurality of second recombinant interferon-gamma are immobilized, and the second complex is immobilized. configured to bind to said second recombinant interferon gamma and provide a first visual signal ;
inducing said solvent phase to migrate further into a control region containing a second antibody anchored thereto and having immunological affinity for said first antibody, said first complex not bound in said test region; the body and the second complex move to the control region, and the first complex and the second complex bind to the second antibody by the first antibody to provide a second visual signal. including;
the sample region, the reaction region , the test region and the control region are arranged sequentially from a first end to a second end of a chromatographic solid phase;
The method, wherein the first visual signal obtained in the test area indicates the presence of the anti-interferon gamma antibody in the body fluid sample.
12. The method according to claim 11 , wherein the signal moiety is an AuNP, a fluorescent substance, or a quantum dot.
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