JP7242057B2

JP7242057B2 - 薬物性腎損傷を予防及び治療するための方法

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Publication number: JP7242057B2
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Inventors: 季男李
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Description

本発明は、腎臓病変の予防及び治療におけるプラスミノーゲンの作用に関するものであり、さらには異なる原因に起因する腎臓病変及びその関連疾患の治療に対して全く新しい治療ストラテジーを提供する。

腎臓病変とは、様々な原因によって引き起こされる腎臓の構造変化及び機能不全のことである。腎臓病変は、腎臓組織の構造に損傷を与え、ついでにその機能に影響を与えてしまう。腎臓病変は、例えば、感染、炎症、アレルギーなどによる糸球体腎炎、慢性腎盂腎炎、ネフローゼ症候群、腎機能不全、糸球体硬化症、メサンギウム過形成、尿細管間質性病変、尿細管萎縮症などの原発性病変であり得る一方、その他の疾患に続発し得るものであり、例えば、虚血、グルコース代謝、脂肪代謝障害などの代謝障害、腫瘍、及びその他の疾患によって腎臓病変が引き起こされ得る。

例えば、高血圧、糖尿病、アテローム性動脈硬化症などの疾患にはしばしば腎臓病変が伴う。高血圧はよく見られる慢性疾患の一つであり、その主な症状は全身性動脈圧の上昇であり、高血圧症患者の血圧がうまくコントロールされていないと、脳卒中、冠状動脈性心臓病、網膜症、及び慢性腎臓病などの合併症が発生しやすい。そして、長期的な高血圧は、ますます多くの組織や臓器に影響を及ぼす。そのため、高血圧によりもたらされる害を減らすように、高血圧及び高血圧の合併症を強化して予防する必要がある^［１］。

糖尿病性腎症（ｄｉａｂｅｔｉｃｎｅｐｈｒｏｐａｔｈｙ，ＤＮ）は糖尿病のよく見られる主な合併症であり、糖尿病による死亡や障害の主な原因である。診断と治療が時宜を得ていない場合、ＤＮが腎臓病の末期まで進行すると、透析、ひいては腎臓移植しか使用できない。早期のＤＮの主な病理学的特徴は、糸球体肥大、糸球体及び尿細管基底膜の肥厚、ならびにメサンギウム領域における細胞外マトリックスの進行性蓄積であり、後期は、糸球体、尿細管間質性線維症である。早期の臨床症状は、糸球体濾過率の低下であり、その後、微量アルブミン尿、動脈血圧上昇、タンパク尿、体液貯留が出てきて、最終的に腎不全になる^［２］。

糖尿病性腎症は、糖尿病の微小血管合併症であり、高血糖や酸化ストレスなどの要因に関係し、高血糖は、微量アルブミン尿の発生において重要な要素である^［３］。尿中微量アルブミンは、糖尿病性腎症の進行を予測することができる。糖尿病性アテローム性動脈硬化症は糖尿病性大血管合併症に属し、高血糖、血管内皮機能不全、インスリン抵抗等の要因と密接に関連している。近年来、タンパク尿症はアテローム性動脈硬化症と密接に関連していることは研究により分かった^［４］。

先進国では、糖尿病性腎症及び高血圧性腎動脈硬化症は慢性腎臓病の主な原因となっている。中国では、これら二つの疾患は依然として様々な病因の中で原発性糸球体腎炎に次ぐが、近年来顕著に上昇する傾向がある。

全身性硬化症、全身性エリテマトーデス、全身性血管炎、アレルギー性紫斑病、多発性筋炎、血栓性微小血管症等の全身性アレルギー疾患は、よく腎臓に影響を与える。

ほとんどの薬物とその代謝物は腎臓から***されるので、薬物によって引き起こされる腎損傷の発生率は高い。研究によれば、薬物による急性尿細管壊死（ａｃｕｔｅｔｕｂｕｌａｒｎｅｃｒоｓｉｓ，ＡＴＮ）または急性間質性腎炎（ａｃｕｔｅｉｎｔｅｒｓｔｉｔｉａｌｎｅｐｈｒｉｔｉｓ，ＡＩＮ）の発生率は１８．３％と高く、その中で、抗生物質による腎損傷の発生率は３６％に達している^［５］。

アミノグリコシド系アミノグリコシド系抗生物質などの抗感染症薬は、グラム陰性菌感染症の治療に広く使用されているが、腎毒性はその臨床的応用を制限している^［６］。

抗ウイルス剤アシクロビル（ａｃｉｃｌоｖｉｒ，ＡＣＶ）は、ヘルペスウイルスに対するデオキシグアノミンの環状類似体である。アシクロビルを大量に非経口投与すると、１０％～４８％の患者に急性腎不全（ａｃｕｔｅｒｅｎａｌｆａｉｌｕｒｅ，ＡＲＦ）を引き起こす可能性がある。これは、アシクロビルが尿細管に沈着し、毒性免疫反応または過敏反応等(hypersensitivity)を起こすことにより腎閉塞を引き起こすからであるかもしれない^［７］。アデフォビル（ａｄｅｄоｖｉｒ，ＡＤＶ）及びシドフォビル（ｃｉｄоｆоｖｉｒ，ＣＤＶ）はヌクレオシド類似体として、臨床的には一般的にＢ型肝炎及びＡＩＤＳを治療するために使用されている。その腎毒性は、しばしば尿細管壊死及び間質性線維症として現れる^［８］。

シクロスポリンＡ（ｃｙｃｌоｓｐоｒｉｎｅＡ，ＣｓＡ）のような免疫抑制剤は、免疫抑制剤として臓器移植及び自己免疫疾患の治療に広く用いられている。ＣｓＡ治療を受けた患者の約３０％が中等度から重度の腎機能障害を有すると報告されている。腎障害のメカニズムは、腎血管収縮と内皮細胞の損傷による虚血、及び腎尿細管上皮細胞に対するＣｓＡの直接な毒性作用である^［９］。

シスプラチン（ｃｉｓｐｌａｔｉｎ，Ｃｉｓ）などの抗腫瘍薬は細胞増殖阻害剤であり、精巣癌、卵巣癌、前立腺癌、肺癌、骨癌及び頭頚部癌などの固形腫瘍の治療に広く使用されている。Ｃｉｓは高い抗腫瘍効率を有するが、それとともに、用量依存性の腎毒性等があり^［１０］、主には高窒素血症、多尿症、及び腎不全として現れ、糸球体と腎尿細管の両方の損傷を特徴としている。

アセチルサリチル酸（ａｃｅｔｙｌｓａｌｉｃｙｌｉｃａｃｉｄ，ＡＳＡ）などの非ステロイド系抗炎症薬は、世界で最も広く使用されている解熱鎮痛抗炎症薬である。解熱鎮痛のための投与量はめったに有害反応を引き起こさないが、大量の薬物を長期間使用すると、副作用を起こしやすい。それは、酸化的リン酸化デカップリングによりカリウムイオンが尿細管細胞から逃げ出し、カリウム欠乏症を起こし、尿中の尿酸***が高すぎるようになる。損傷が大きい場合、間質性腎炎、腎臓乳頭壊死及び腎機能低下が起こる可能性がある^［１１］。

アリストロク酸（ａｒｉｓｔоｌоｃｈｉｃａｃｉｄ，ＡＡ）などの天然物活性成分はアリストロキア由来の腎毒素として、有名なアリストロク酸腎症（ａｒｉｓｔоｌоｃｈｉｃａｃｉｄｎｅｐｈｒоｐａｔｈｙ，ＡＡＮ）の病因である^［１２］。ＡＡによって引き起こされる腎臓損傷の部位は主に腎尿細管にあり、細胞のアポトーシスまたは死亡を引き起こし、そして腎臓間質性線維芽細胞の増殖を阻害し、尿細管萎縮及びオリゴ細胞性間質性線維症をもたらす。

利尿薬は、尿細管による水や電解質の再吸収を抑制することによって排出尿量を増やす薬物である。各種の利尿薬に潜在的な腎毒性があり、使用後に腎損傷を引き起こす可能性がある。利尿薬によって引き起こされる腎毒性は、該薬物の細胞毒性、免疫応答、アレルギー反応及び代謝障害などの有害反応と関連しており、腎臓損傷の悪化を防ぐために腎毒性薬物との併用をなるべく避けるべきである。また、多くのその他の薬剤も腎損傷を引き起こす可能性がある。例えば、サルファ系薬物はよくサルファ結晶の形成を引き起こし、尿管を閉塞して閉塞性腎症を引き起こす^［１３］。脂質低下薬スタチンは横紋筋融解症を引き起こす可能性があり、それに次いで尿細管壊死を引き起こしてしまう^［１４］。

腎臓疾患は後期段階へ進行すると、腎機能の部分的または全体的な喪失を引き起こし、すなわち、腎不全という病理学的状態になる。腎不全は急性腎不全と慢性腎不全に分けられ、急性腎不全の病状の進行が速く、通常は腎臓への血液の供給が不足で、何らかの要因によって腎臓の機能が障害され、あるいは毒物によって損傷され、急性腎不全が引き起こされる。慢性腎不全の主な原因は長期の腎臓病変であり、時間と病気の進行につれて腎臓の機能が徐々に低下し、腎不全を引き起こす。

慢性腎不全とは、様々な腎臓病によって引き起こされる緩徐進行性腎障害であり、最終的に***及び腎機能の完全な喪失に至り、臨床症状と生化学的内分泌などの代謝障害とからなる一連の臨床的症候群を引き起こす。原発性疾患の発症から腎不全の発症まで、間隔は数年から十何年という範囲であり得る。

***は、慢性腎不全の最終段階である。慢性腎不全は、様々な原因による腎臓損傷及び進行性の悪化の結果である。よく見られる基礎疾患は、原発性糸球体腎炎、尿細管間質性腎炎、糖尿病性腎症等がある。その臨床症状は主に、腎機能障害、代謝性廃棄物の貯留、水、電解質及び酸塩基のバランス障害であり、これらによって機体内部環境の安定性を維持することができなくなる。腎機能損傷の程度に応じて、慢性腎不全を、腎機能不全補償期、腎機能不全代償不全期、腎機能減衰期、***期との四段階に分けることができる。

慢性腎不全の早期段階では、臨床的には原発性疾患の症状のみが観察され、検査中にクレアチニンクリアランス率が減少することのみは観察できる。***代償期にある患者は常にストレス下にあり、腎機能が突然悪化し、水、電解質、酸塩基代謝障害、タンパク質、糖類、脂肪及びビタミン代謝障害、食欲不振または消化不良が現れ、症状が悪化すると、食欲不振、吐き気、嘔吐、または下痢などの胃腸症状のような***の早期症状が現れ、臨床的には可逆性***といい、ストレス要因が取り除かれると、腎機能は代償期に回復することができる。病状が健康なネフロンが体の最低要件を満たすことができない時に進行した場合、ストレス因子がなくても、***の症状も徐々に現れ、水や電解質の代謝異常、体内での代謝産物の蓄積などの全身症状、及び心血管系、呼吸器系、血液系の中毒症状として現れる。

慢性腎不全の薬物治療は主に、症状の緩和、疾患の進行の遅延、及び合併症の予防という三つの面に集中している。具体的には、例えば、アシドーシス及び水、電解質障害の修正、高血圧の治療、感染の予防、高脂血症の治療、及び心血管系、呼吸器系及び血液系の合併症の治療が挙げられ、また、血液透析や腹膜透析のような***の代替透析治療、あるいは腎臓移植を行うことができる。

「急性腎損傷（ａｃｕｔｅｋｉｄｎｅｙｉｎｊｕｒｙ，ＡＫＩ）」は、長年に使用されてきた急性腎不全（ａｃｕｔｅｒｅｎａｌｆａｉｌｕｒｅ，ＡＲＦ）の代わりに使用される、近年に提出された新しい用語であり、しかも広く認められている。ＡＫＩはよく見られる臨床症候群であり、主に腎機能の急速な低下及び代謝性廃棄物の蓄積を症状とする。ＡＫＩの発生率は高く、年に上昇しているトレンドがある。海外報告によれば、過去１０年間でＡＫＩの発生率は０．６５‰から５‰に上昇し、透析を必要とするＡＫＩの発生率は０．２９５‰である^{［１５～１６］}。入院患者におけるＡＫＩの発生率は１．９％であり、集中治療室では高くとも６０％に達する^［１７］。現時点ではＡＫＩを治療する特効薬はなく、重症患者にとって腎代替療法が必要である^［１８］。ＡＫＩの予後も楽観的ではなく、ＡＴＮとＲＥＮＡＬの研究^{［１９～２０］}によれば、重症患者のＡＫＩ後の病死率はそれぞれ５３．０％と４４．７％であり、生存者も慢性腎臓病、さらに末期腎臓病までに進行しやすいと報告されている^［２１］。そのため、ＡＫＩはますます臨床医に重視されてきている。

様々な原因による腎臓組織損傷について、より効果的な治療薬を見つけるのが望まれている。本発明は研究により、プラスミノーゲンが損傷した腎臓組織の修復及び腎機能の回復を促進することができるとともに、損傷した腎臓組織細胞のアポトーシスを抑制し、その線維症を低下することができることを見出した。よって、プラスミノーゲンは腎臓病を治療するための新しい薬剤になる見込みがある。

本発明は下記項に係る。

一つの局面において、本発明は、項１．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、薬物によって引き起こされる被験者の腎組織損傷及びその関連疾患を予防及び／または治療するための方法に係る。

項２．前記薬物は腎毒性薬物である、項１に記載の方法。

項３．前記薬物は腎臓から***される薬物である、項１または２に記載の方法。

項４．前記薬物は、化学療法薬物、血圧降下薬、脂質低下薬、血糖降下薬、非ステロイド系抗炎症薬、抗生物質薬、抗ウイルス薬を含む、項１～３のいずれか１項に記載の方法。

項５．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の修復を促進する、項１～４のいずれか１項に記載の方法。

項６．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の線維性を軽減する、項１～５のいずれか１項に記載の方法。

項７．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織のアポトーシスを軽減する、項１～６のいずれか１項に記載の方法。

項８．前記薬物によって引き起こされる被験者の腎組織損傷は、急性腎組織損傷である、項１～７のいずれか１項に記載の方法。

項９．前記薬物によって引き起こされる被験者の腎組織損傷は、慢性腎組織損傷である、項１～７のいずれか１項に記載の方法。

項１０．前記プラスミノーゲンは、腎臓機能の回復を促進する、項１～９のいずれか１項に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項１１．前記薬物を投与する前、投与と同時、及び／または投与した後に被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の腎臓を保護して薬物による損傷を軽減または防止する方法に係る。

もう一つの局面において、本発明は、項１２．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の腎臓病変によって引き起こされる腎組織損傷及びその関連疾患を予防及び／または治療するための方法に係る。

項１３．前記薬物はシスプラチンである、項１３に記載の方法。

項１４．前記腎組織損傷は、感染、炎症、アレルギー反応、自己免疫、虚血、微小血管疾患、血栓症、外傷、放射線損傷、糖質代謝障害、電解質異常、脂肪代謝障害、腫瘍性腎臓病変による腎組織損傷を含む、項１２または１３に記載の方法。

項１５．前記腎臓病変は、高血圧、糖尿病、アテローム性動脈硬化症、全身性硬化症、全身性エリテマトーデス、高脂血症、非ホジキンリンパ腫、多発性骨髄腫、全身性血管炎、アレルギー性紫斑病、多発性筋炎、血栓性微小血管症からなる群より選ばれる全身性疾患によって引き起こされる腎臓病変である、項１２～１４のいずれか１項に記載の方法。

項１６．前記腎臓病変は慢性腎臓病である、項１２～１５のいずれか１項に記載の方法。

項１７．前記慢性腎臓病は、慢性糸球体腎炎、慢性腎盂腎炎、ネフローゼ症候群、腎機能不全または***である、項１２～１６のいずれか１項に記載の方法。

項１８．前記慢性腎臓病は、糸球体硬化症、メサンギウム過形成、尿細管間質性病変、腎間質性線維症、尿細管萎縮症である、項１７に記載の方法。

項１９．前記慢性腎臓病は、薬物によって引き起こされる慢性腎損傷である、項１２～１８のいずれか１項に記載の方法。

項２０．前記慢性腎臓病は、化学療法薬物、血圧降下薬、脂質低下薬、血糖降下薬、非ステロイド系抗炎症薬、抗生物質薬、抗ウイルス薬によって引き起こされる慢性腎損傷である、項１９に記載の方法。

項２１．前記化学療法薬物はシスプラチンである、項２０に記載の方法。

項２２．前記腎臓病変は、急性腎臓病である、項１２～１５のいずれか１項に記載の方法。

項２３．前記急性腎臓病は、急性糸球体腎炎、急性腎盂腎炎、急性腎損傷、急性腎障害、急性腎機能不全、急性尿細管壊死症である、項１２～１５のいずれか１項に記載の方法。

項２４．前記急性腎損傷は、化学療法薬物によって引き起こされる急性腎損傷である、項２２または２３に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項２５．被験者に予防及び／または治療に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、慢性腎損傷を予防及び／または治療するための方法に係る。

項２６．前記慢性腎損傷は、慢性腎臓病によって引き起こされる腎組織損傷である、項２５に記載の方法。

項２７．前記慢性腎臓病は、慢性糸球体腎炎、慢性腎盂腎炎、ネフローゼ症候群、腎機能不全または***である、項２６に記載の方法。

項２８．前記慢性腎臓病は、糸球体硬化症、メサンギウム過形成、尿細管間質性病変、腎間質性線維症、腎不全、尿細管萎縮症である、項２６に記載の方法。

項２９．前記慢性腎損傷は、全身性疾患に関連した腎組織損傷である、項２５～２８のいずれか１項に記載の方法。

項３０．前記全身性疾患は、高血圧、糖尿病、アテローム性動脈硬化症、全身性硬化症、全身性エリテマトーデス、高脂血症、非ホジキンリンパ腫、多発性骨髄腫、全身性血管炎、アレルギー性紫斑病、多発性筋炎、血栓性微小血管症からなる群より選ばれる、項２９に記載の方法。

項３１．前記全身性疾患は、全身性硬化症である、項３０に記載の方法。

項３２．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の修復を促進することができる、項１～３１のいずれか１項に記載の方法。

項３３．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の線維性を軽減することができる、項１～３１のいずれか１項に記載の方法。

項３４．前記プラスミノーゲンは、アポトーシス抑制タンパク質Ｂｃｌ－２の発現を促進し、腎組織細胞のアポトーシスを抑制することができる、項１～３１のいずれか１項に記載の方法。

項３５．前記プラスミノーゲンは、腎臓機能の回復を促進することができる、項１～３１のいずれか１項に記載の方法。

項３６．前記プラスミノーゲンは、腎臓による尿素窒素及び／またはクレアチニンの排除を促進することができる、項３５に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項３７．被験者に予防及び／または治療に必要な有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、急性腎損傷を予防及び／または治療するための方法に係る。

項３８．前記急性腎損傷は、急性糸球体腎炎、急性腎盂腎炎、急性腎不全、急性腎機能不全、急性尿細管壊死である、項３７に記載の方法。

項３９．前記急性腎損傷は、化学療法薬物によって引き起こされる急性腎損傷である、項３７または３８に記載の方法。

項４０．前記化学療法薬物はシスプラチンである、項３９に記載の方法。

項４１．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の線維性を軽減することができる、項３７～４０のいずれか１項に記載の方法。

項４２．前記プラスミノーゲンは、アポトーシス抑制タンパク質Ｂｃｌ－２の発現を促進し、腎組織細胞のアポトーシスを抑制することができる、項３７～４０のいずれか１項に記載の方法。

項４３．前記プラスミノーゲンは、腎臓機能の回復を促進することができる、項３７～４０のいずれか１項に記載の方法。

項４４．前記プラスミノーゲンは、腎臓による尿素窒素及び／またはクレアチニンの排除を促進することができる、項４３に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項４５．被験者に予防及び／または治療に必要な有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、腎組織損傷に関連する疾患を予防及び／または治療するための方法に係る。

項４６．前記腎組織損傷に関連する疾患は、血尿、タンパク尿、円柱尿（cylinderuria）、糸球体濾過量の減少、乏尿、無尿、代謝物貯留、水分、電解質及び酸塩基バランス障害、腎線維症、腎不全、***からなる群より選ばれる、項４５に記載の方法。

項４７．前記プラスミノーゲンは配列２、６、８、１０または１２と少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、且つ依然プラスミノーゲン活性を有するものである、項１～４６のいずれか１項に記載の方法。

項４８．前記プラスミノーゲンは配列２、６、８、１０または１２において、１－１００、１－９０、１－８０、１－７０、１－６０、１－５０、１－４５、１－４０、１－３５、１－３０、１－２５、１－２０、１－１５、１－１０、１－５、１－４、１－３、１－２、１個のアミノ酸を添加、削除及び／または置換したものであり、且つ依然プラスミノーゲン活性を有するタンパク質である、項１～４７のいずれか１項に記載の方法。

項４９．前記プラスミノーゲンはプラスミノーゲン活性フラグメントを含有し、且つ依然プラスミノーゲン活性を有するタンパク質である、項１～４８のいずれか１項に記載の方法。

項５０．前記プラスミノーゲンは、Ｇｌｕ－プラスミノーゲン、Ｌｙｓ－プラスミノーゲン、ミニプラスミノーゲン、マイクロプラスミノーゲン、δ－プラスミノーゲンまたはそれらのプラスミノーゲン活性を保持した変異体である、項１～４９のいずれか１項に記載の方法。

項５１．前記プラスミノーゲンは、血圧降下薬、脂質低下薬、抗生物質薬、抗凝固薬、血栓溶解薬、利尿薬、抗腫瘍薬、血糖降下薬、非ステロイド系抗炎症薬、免疫調節薬、抗感染薬、抗ウイルス薬、ホルモン、天然物活性成分からなる群より選ばれる１種以上の薬物と組み合わせて投与することができる、項１～５０のいずれか１項に記載の方法。

項５２．前記プラスミノーゲンは、天然または合成のヒトプラスミノーゲン、または依然プラスミノーゲン活性を保持した変異体若しくはフラグメントである、項１～５１のいずれか１項に記載の方法。

項５３．前記プラスミノーゲンは、霊長類動物またはげっ歯類動物に由来するヒトプラスミノーゲンのオルソログ、または依然プラスミノーゲン活性を保持した変異体若しくはフラグメントである、項１～５１のいずれか１項に記載の方法。

項５４．前記プラスミノーゲンのアミノ酸配列は配列２、６、８、１０または１２に示される通りである、項１～５３のいずれか１項に記載の方法。

項５５．前記プラスミノーゲンは、ヒト天然プラスミノーゲンである、項１～５４のいずれか１項に記載の方法。

項５６．前記被験者はヒトである、項１～５５のいずれか１項に記載の方法。

項５７．前記被験者はプラスミノーゲンが不足、または欠乏している、項１～２６のいずれか１項に記載の方法。

項５８．前記不足または欠乏は、先天的、継発的及び／または局所的である、項５７に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項５９．項１～５８のいずれか１項に記載の方法に使用されるプラスミノーゲンに係る。

もう一つの局面において、本発明は、項６０．薬学的に許容される担体及び項１～５８のいずれか１項に記載の方法に使用されるプラスミノーゲンを含む薬物組成物に係る。

もう一つの局面において、本発明は、項６１．（ｉ）請求項１～５８のいずれか１項に記載の方法に使用されるプラスミノーゲンと、（ｉｉ）前記プラスミノーゲンを前記被験者に送達するための手段（ｍｅａｎｓ）とを含む、予防性または治療性キットに係る。

項６２．前記手段はシリンジまたはバイアルである、項６１に記載のキット。

項６３．項１～５８のいずれか１項に記載の方法を実施するように前記プラスミノーゲンを前記被験者に投与することを指示するラベルまたはプロトコルをさらに含む、項６１または６２に記載のキット。

もう一つの局面において、本発明は、ラベルを含む容器と、
（ｉ）項１～５８のいずれか１項に記載の方法に使用されるプラスミノーゲン、またはプラスミノーゲンを含む薬物組成物とを含む製品であって、前記ラベルは、項１～５８のいずれか１項に記載の方法を実施するように前記プラスミノーゲンまたは組成物を前記被験者に投与することを指示する、製品に係る。

項６５．その他の薬物を含む、もう一つ以上の部材または容器をさらに含む、項６１～６３のいずれか１項に記載のキット、または項６４に記載の製品。

項６６．前記その他の薬物は、脂質低下薬、抗血小板薬、血圧降下薬、抗張血管薬、血糖降下薬、抗凝固薬、血栓溶解薬、肝臓保護薬、抗不整脈薬、強心薬、利尿薬、抗感染薬、抗ウイルス薬、免疫調節薬、炎症調節薬、抗腫瘍薬、ホルモン薬、チロキシンからなる群より選ばれる、項６５に記載のキットまたは製品。

本発明はさらに、項１～５８のいずれか１項に記載の方法を実施するためのプラスミノーゲンの用途に係る。

本発明はさらに、プラスミノーゲンの項１～５８のいずれか１項に記載の方法に用いられる薬物、薬物組成物、製品、キットの製造における用途に係る。

本発明はさらに下記項に係る。

ひとつの局面において、本発明は、項１．腎組織損傷リスク、腎組織損傷の疑いがある、または腎組織損傷の危険性がある被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

項２．前記腎組織損傷は、感染、炎症、アレルギー反応、自己免疫、虚血、血栓症、外傷、放射線損傷、糖質代謝障害、脂肪代謝障害、ガンによる腎組織損傷を含む、項１に記載の方法。

項３．前記慢腎組織損傷は、高血圧、糖尿病、アテローム性動脈硬化症、全身性硬化症、全身性エリテマトーデス、高脂血症、非ホジキンリンパ腫、多発性骨髄腫、全身性血管炎、アレルギー性紫斑病、多発性筋炎、血栓性微小血管症からなる群より選ばれる全身性疾患による腎組織損傷である、項１または２に記載の方法。

項４．前記腎組織損傷は、慢性腎臓病によって引き起こされる腎組織損傷である、項１または２に記載の方法。

項５．前記慢性腎臓病は、慢性糸球体腎炎、慢性腎盂腎炎、ネフローゼ症候群、腎機能不全、腎不全または***である、項４に記載の方法。

項６．前記慢性腎臓病は、薬物によって引き起こされる慢性腎損傷である、項１または２に記載の方法。

項７．前記薬物は、化学療法薬物、血圧降下薬、脂質低下薬、血糖降下薬、非ステロイド系抗炎症薬、抗生物質薬、抗ウイルス薬である、項６に記載の方法。

項８．前記薬物は化学療法薬物であり、具体的にはシスプラチンである、項７に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項９．腎組織を保護するための有効量のプラスミノーゲンを被験者に投与することを含む、被験者の急性腎組織損傷を予防及び／または治療するための方法に係る。

項１０．前記プラスミノーゲンは、急性腎組織損傷によって引き起こされる腎組織細胞のアポトーシスを軽減する、項９に記載の方法。

項１１．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の修復を促進する、項９または１０に記載の方法。

項１２．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の線維性を軽減する、項９～１１のいずれか１項に記載の方法。

項１３．前記プラスミノーゲンは、腎機能の回復を促進する、項９～１２のいずれか１項に記載の方法。

項１４．前記腎損傷は、急性糸球体腎炎、急性腎盂腎炎、急性腎損傷、急性腎障害、急性腎機能不全、急性尿細管壊死症である、項１～１３のいずれか１項に記載の方法。

項１５．前記急性腎損傷は、化学療法薬物によって引き起こされる急性腎損傷である、項１～１３のいずれか１項に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項１６．被験者に腎組織を保護するための有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の慢性腎損傷を予防または治療するための方法に係る。

項１７．前記プラスミノーゲンは腎組織細胞のアポトーシスを軽減する、項１６に記載の方法。

項１８．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の修復を促進する、項１６または１７に記載の方法。

項１９．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の線維性を軽減する、項１６～１８のいずれか１項に記載の方法。

項２０．前記プラスミノーゲンは、腎機能の回復を促進する、項１６～１９のいずれか１項に記載の方法。

項２１．前記慢性腎損傷は、腎組織の慢性疾患によって引き起こされる腎組織損傷である、項１６～２０のいずれか１項に記載の方法。

項２２．前記慢性腎損傷は、他の疾患によって引き起こされる、または他の疾患に伴う腎組織損傷である、項１６～２０のいずれか１項に記載の方法。

項２３．前記他の疾患は、高血圧、糖尿病、アテローム性動脈硬化症、高脂血症、肝炎、肝硬変、冠状動脈性心臓病、狭心症、心筋梗塞を含む、項２２に記載の方法。

項２４．前記他の疾患は、高血圧、糖尿病、アテローム性動脈硬化症、高脂血症である、項２３に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項２５．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の脂質沈着によって引き起こされる腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

項２６．前記脂質沈着は、被験者の異常な脂肪代謝または異常な糖質代謝による高脂血症によって引き起こされる、項２５に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項２７．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の糖尿病によって引き起こされる、または糖尿病に伴う腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

もう一つの局面において、本発明は、項２８．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の高脂血症によって引き起こされる、または高脂血症に伴う腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

もう一つの局面において、本発明は、項２９．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者のアテローム性動脈硬化症によって引き起こされる、またはアテローム性動脈硬化症に伴う腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

もう一つの局面において、本発明は、項３０．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の虚血性腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

項３１．前記プラスミノーゲンは腎組織細胞のアポトーシスを軽減する、項３０に記載の方法。

項３２．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の修復を促進する、項３０または３１に記載の方法。

項３３．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の線維性を軽減する、項３０～３２のいずれか１項に記載の方法。

項３４．前記プラスミノーゲンは、腎機能の回復を促進する、項３０～３３のいずれか１項に記載の方法。

項３５．前記虚血は、血管内腔の狭窄によって引き起こされる、項３０～３４のいずれか１項に記載の方法。

項３６．前記虚血は、血栓が血管を閉塞することによって引き起こされる、項３０～３４のいずれか１項に記載の方法。

項３７．前記虚血は、高血圧、糖尿病、アテローム性動脈硬化症、心臓病によって引き起こされる、項３５または３６に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項３８．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の虚血再灌流腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

もう一つの局面において、本発明は、項３９．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の自己免疫性腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

項４０．前記自己免疫性腎組織損傷は、全身性硬化症によって引き起こされる、項３９に記載の方法。

もう一つの局面において、本発明は、項４１．被験者に有効量のプラスミノーゲンを投与することを含む、被験者の炎症性腎組織損傷を予防または治療するための方法に係る。

項４２．前記炎症は、急性または慢性腎実質炎症または腎間質性炎症である、項４１に記載の方法。

項４３．前記プラスミノーゲンは腎組織細胞のアポトーシスを軽減する、項４２に記載の方法。

項４４．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の修復を促進する、項４２または４３に記載の方法。

項４５．前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の線維性を軽減する、項４１～４４のいずれか１項に記載の方法。

項４６．前記プラスミノーゲンは、腎機能の回復を促進する、項４１～４５のいずれか１項に記載の方法。

項５４．前記プラスミノーゲンのアミノ酸配列は配列２、６、８、１０または１２に示される、項１～５３のいずれか１項に記載の方法。

前記方法の一部の実施形態において、前記プラスミノーゲンは全身または局所投与により投与され、好ましくは、静脈内、筋肉内、皮下という経路により投与される。前記方法の一部の実施形態において、前記プラスミノーゲンは適切なポリペプチド担体または安定剤と組み合わせて投与する。前記方法の一部の実施形態において、前記プラスミノーゲンは毎日０．０００１～２０００ｍｇ／ｋｇ、０．００１～８００ｍｇ／ｋｇ、０．０１～６００ｍｇ／ｋｇ、０．１～４００ｍｇ／ｋｇ、１～２００ｍｇ／ｋｇ、１～１００ｍｇ／ｋｇ、１０～１００ｍｇ／ｋｇ（体重一キロあたりで計算）または０．０００１～２０００ｍｇ／ｃｍ²、０．００１～８００ｍｇ／ｃｍ²、０．０１～６００ｍｇ／ｃｍ²、０．１～４００ｍｇ／ｃｍ²、１～２００ｍｇ／ｃｍ²、１～１００ｍｇ／ｃｍ²、１０～１００ｍｇ／ｃｍ²（体表面積平方センチメートルあたりで計算）の用量を投与し、好ましくは少なくとも一回繰り返し、好ましくは少なくとも毎日投与する。

本発明は、本発明に係る実施形態どうしの技術的特徴のすべての組み合わせを明確にカバーし、且つこれらの組み合わせた技術構成は前記実施形態が単独且つ明確に開示されているように、本出願で明確に開示されている。また、本発明はさらに各実施形態及び要素のすべてのサブの組み合わせを明確にカバーし、この組み合わせた技術構成は本明細書中において明確に開示されている。

図１はシスプラチン損傷モデルマウスにプラスミノーゲンを７日投与したあとの腎臓のＩｇＭ免疫染色の観察結果を示したものである。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群であり、Ｃは定量分析の結果である。その結果、プラスミノーゲン投与群のＩｇＭ陽性発現は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに低く、しかもその差が統計学的に有意である（＊は、Ｐ＜０．０５を表す）ことは示されている。これは、プラスミノーゲンがシスプラチンによる腎損傷の修復を促進できることを示している。図２はシスプラチン損傷モデルマウスにプラスミノーゲンを７日投与したあとの腎臓ＩＶ型コラーゲン免疫染色の代表的写真である。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群である。その結果、プラスミノーゲン投与群のＩＶ型コラーゲンの陽性発現は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに低いことは示されている。これは、プラスミノーゲンがシスプラチンによる腎線維症を改善できることを示している。図３はプリンにより誘発された慢性腎損傷モデルマウスにプラスミノーゲンを１０日投与した後の腎臓ＨＥ染色の代表的写真である。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群であり、ＣとＤはＰＬＧ^－／－群である。その結果、ＰＬＧ^－／－マウスの腎臓病変が最も重度であり、大量の膿キャスト（矢印に示される）、少量のプリン結晶（三角で表記されている）、大面積の腎尿細管萎縮、及び扁平上皮細胞が見えられる。ＰＬＧ^－／－マウスと比べ、溶媒ＰＢＳ投与対照群のマウスの腎損傷は軽い。糸球体萎縮及び腎尿細管の壊死は依然として深刻であるが、明らかなプリン結晶は見られず、膿キャストも比較的に軽い。プラスミノーゲン投与群のマウスの腎尿細管の萎縮面積は、ＰＢＳ投与対照群より小さく、腎尿細管の拡張も軽く、膿キャストは発見していない。これは、プラスミノーゲンが慢性腎不全モデルマウスの腎損傷を軽減できることを示している。図４はプリンにより誘発された慢性腎損傷モデルマウスにプラスミノーゲンを１０日投与した後の腎臓シリウスレッド染色の代表的写真である。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群であり、ＣはＰＬＧ^－／－群であり、Ｄは定量分析結果である。その結果、プラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群のコラーゲン沈着はＰＬＧ^－／－群より明らかに少なく、しかもその差が統計学的に有意である（＊は、Ｐ＜０．０５を表し、＊＊は、Ｐ＜０．０１を表す）ことは示されている。また、プラスミノーゲン投与群のコラーゲン沈着は、溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに少ない。これは、プラスミノーゲンが慢性腎不全モデルマウスの腎線維症を修復する過程において肝心な役割を果たすことを示している。図５はプリンにより誘発された慢性腎損傷モデルマウスにプラスミノーゲンを１０日投与した後の腎臓のＢｃｌ－２免疫組織化学的染色の代表的写真である。Ａはブランク対照群であり、Ｂは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｃはプラスミノーゲン投与群である。その結果、プラスミノーゲン投与群の腎臓の陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに深く、しかもブランク対照群のマウスの発現レベルに近いことは示されている。これは、プラスミノーゲンが慢性腎不全モデルマウスの腎細胞アポトーシス抑制分子Ｂｃｌ－２の発現を促進でき、それによってマウス腎組織細胞のアポトーシスを抑制できることを示している。図６はプリンに誘発された慢性腎損傷モデルマウスにプラスミノーゲンを１０日投与した後の腎臓のＩｇＭ免疫組織化学的染色の写真である。Ａはブランク対照群であり、Ｂは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｃはプラスミノーゲン投与群である。その結果、プラスミノーゲン投与群マウスの腎臓ＩｇＭの陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群より浅く、しかも範囲は対照群より小さく、着色は正常マウスにより近いことは示されている。これは、プラスミノーゲン投与後、腎損傷が明らかに改善されており、プラスミノーゲンが慢性腎損傷マウスの腎損傷に対して顕著な修復効果を持っていることを示している。図７はプリンにより誘発された慢性腎損傷モデルマウスにプラスミノーゲンを４日投与した後の腎フィブリン免疫組織化学的染色の代表的写真である。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群であり、ＣはＰＬＧ^－／－群である。その結果、溶媒ＰＢＳ投与対照群の腎フィブリンの陽性着色はプラスミノーゲン投与群マウスより深く、しかもＰＬＧ^－／－群の着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群より深いことは示されている。これは、プラスミノーゲンが腎損傷を軽減できることを示している。図８は２４～２５週齢の糖尿病マウスにプラスミノーゲンを３１日投与した後の腎臓のＩＶ型コラーゲン免疫染色の代表的写真である。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群である。その結果、プラスミノーゲン投与群のＩＶコラーゲン陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに浅いことは示されている。これは、プラスミノーゲンが糖尿病マウスの腎線維症を改善できることを示している。図９は２６週齢の糖尿病マウスにプラスミノーゲンを３５日投与した後の腎臓マッソン（ｍａｓｓоｎ）染色の代表的写真である。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群である。その結果、溶媒ＰＢＳ投与対照群の腎間質に軽度の線維症があり、過形成した線維症は青色である。プラスミノーゲン投与群の腎間質線維症は明らかに減少している。これは、プラスミノーゲンが糖尿病マウスの腎間質線維症を低下させることができることを示している。図１０はブレオマイシンにより誘発された全身性硬化症モデルマウスにプラスミノーゲンを２１日投与した後の腎臓シリウスレッド染色の代表的写真である。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群である。その結果、ゼブラマイシンにより誘発された全身性硬化症モデルマウスにおいて、溶媒ＰＢＳ投与対照群の腎臓コラーゲン沈着がプラスミノーゲン投与群より明らかに多いことは示されている。これは、プラスミノーゲンが全身性硬化症マウスの腎線維症を効果的に減少させたことを示している。図１１はプリンにより誘発された慢性腎損傷モデルマウスの血清尿素窒素検出の結果を示すものである。その結果、ＰＬＧ^＋／＋群の血清における尿素窒素濃度がＰＬＧ^－／－群より明らかに低く、しかもその差が統計学的に有意である（＊は、Ｐ＜０．０５を表す）ことは示されている。これは、プラスミノーゲンが慢性腎不全モデルマウスの腎機能を顕著に改善できることを示している。図１２はプリンにより誘発された慢性腎損傷モデルマウスにプラスミノーゲンを４日投与した後の血清クレアチニン濃度の検出結果を示すものである。その結果、溶媒ＰＢＳ投与対照群とプラスミノーゲン投与群の血清クレアチニン濃度がＰＬＧ^－／－群マウスより明らかに低く、しかもその差が統計学的に有意である（＊は、Ｐ＜０．０５を表す）ことは示されている。また、プラスミノーゲン投与群の血清クレアチニン濃度は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに低い。これは、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルマウスの腎機能を顕著に改善できることを示している。図１３は葉酸によって誘発された急性腎損傷マウスの血清尿素窒素の検出結果を示すものである。その結果、プラスミノーゲン投与群の血清中の尿素窒素濃度は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに低く、しかもその差が統計学的に有意に近い（Ｐ＝０．０６）ことは示されている。これは、プラスミノーゲンが急性腎損傷モデルマウスの腎機能を顕著に改善できることを示している。図１４はプラスミノーゲンを３０日投与した後の３％コレステロール高脂血症モデルマウスの腎臓オイルレッドＯ染色の観察結果を示すものである。Ａはブランク対照群であり、Ｂは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｃはプラスミノーゲン投与群であり、Ｄは定量分析結果である。その結果、プラスミノーゲン投与群マウスの腎脂肪沈着（矢印に表記される）は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに少なく、しかもその差が統計学的に有意である。また、プラスミノーゲン投与群の脂質沈着レベルはブランク対照群マウスに似ている。これは、プラスミノーゲンが高脂血症モデルマウスの腎臓における脂肪の沈着を低減でき、それによって脂肪沈着による腎損傷を減少させることができることを示している。図１５はプラスミノーゲンを７日投与した後の葉酸による急性腎損傷モデルマウスの腎臓ＨＥ染色の代表的写真である。Ａはブランク対照群であり、Ｂは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｃはプラスミノーゲン投与群である。その結果、ブランク対照群の腎臓核は円形または楕円形であり、細胞質は赤色に染色され、糸球体及び腎尿細管は正常な形態を呈する。溶媒ＰＢＳ投与対照群では腎に大量の腎尿細管上皮細胞が扁平化し（太い矢印に表記される）、刷子縁が剥がれ、一部の核濃縮が観察され、一部の腎尿細管のみにわずかに染色された細胞質が呈され、一部の腎尿細管には膿キャスト（細い矢印に表記される）も見えられ、糸球体及び腎間質性に軽度の炎症細胞浸潤が示されている。溶媒ＰＢＳ投与対照群と比べ、プラスミノーゲン投与群の腎尿細管拡張及び上皮細胞扁平化は明らかに改善され、腎尿細管細胞質の大部分は赤色に染色され、膿キャストは見られていない。これは、プラスミノーゲンが葉酸によって誘発された急性腎損傷を改善できることを示している。図１６はプラスミノーゲンを７日投与した後の葉酸急性腎損傷モデルマウスの腎臓Ｂｃｌ－２免疫組織化学的観察結果を示すものである。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群であり、Ｃは定量分析の結果である。その結果、プラスミノーゲン投与群の腎臓Ｂｃｌ－２の陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに多く、しかもその差が統計学的に有意である（＊は、Ｐ＜０．０５を示す）。これは、プラスミノーゲンが急性腎損傷モデルマウスの腎細胞アポトーシス抑制分子Ｂｃｌ－２の発現を促進でき、それによって急性腎損傷マウスの腎組織細胞をアポトーシスから保護できることを示している。図１７はプラスミノーゲンを７日投与した後の葉酸による急性腎損傷モデルマウスの腎臓のＩｇＭ免疫組織化学的観察結果を示すものである。Ａは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｂはプラスミノーゲン投与群である。その結果、プラスミノーゲン投与群マウスの腎臓ＩｇＭの陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群より浅く、しかも範囲は対照群より小さいことは示されている。これは、プラスミノーゲンの注射後、腎臓のＩｇＭの発現は明らかに低下し、プラスミノーゲンが葉酸による急性腎損傷マウスの腎損傷を効果的に減少させることができることを示している。図１８はプラスミノーゲンを３０日投与した後の３％コレステロール高脂血症モデルマウスの腎臓シリウスレッド染色の観察結果を示すものである。Ａはブランク対照群であり、Ｂは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｃはプラスミノーゲン投与群であり、Ｄは定量分析の結果である。その結果、プラスミノーゲン投与群の腎臓コラーゲン沈着（矢印に表記される）は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに少なく、しかもその差が統計学的に有意である。プラスミノーゲン投与群の線維症は基本的に正常レベルに回復している。これは、プラスミノーゲンが３％コレステロール高脂血症モデルマウスの腎線維症を効果的に減少させることができることを示している。図１９はプラスミノーゲンを７日投与した後の虚血再灌流による急性腎損傷モデルマウスの腎臓ＨＥ染色の代表的写真である。Ａは偽手術群であり、Ｂは溶媒ＰＢＳ投与対照群であり、Ｃはプラスミノーゲン投与群である。その結果、偽手術群の糸球体毛細血管は開存的であり、腎尿細管細胞質は赤色に染色され、正常な腎尿細管形態を呈する。溶媒ＰＢＳ投与対照群の糸球体には軽度の炎症細胞浸潤（三角で表記されている）が見えられ、腎間質に大量の炎症細胞浸潤が見えられ、一部の腎尿細管に膿キャスト（細い矢印に表記される）があり、少量の腎尿細管核濃縮、大面積の上皮細胞扁平化（太い矢印に表記される）、腎尿細管の拡張が見えられる。溶媒ＰＢＳ投与対照群と比べ、プラスミノーゲン投与群には、少量の腎尿細管上皮のみが扁平化しており、ほとんどの腎尿細管は正常な腎尿細管の形態に回復しており、細胞質は赤色に染色され、明らかな腎尿細管萎縮は発見されず、腎間質に軽度の炎症細胞浸潤のみがあり、偽手術群の形態に近い。これは、プラスミノーゲンが虚血再灌流による急性腎損傷モデルマウスの腎損傷を改善できることを示している。

発明の詳細な説明
「腎臓病変」とは、様々な原因に起因する腎臓構造と機能障害のことである。

「プラスミン」は血液中に存在する非常に重要な酵素であり、フィブリン凝塊をフィブリン分解生成物及びＤ－二量体に加水分解する。

「プラスミノーゲン」はプラスミンの酵素前駆体の形であり、ｓｗｉｓｓｐｒｏｔ中の配列に基づいて、シグナルペプチドの天然ヒト由来プラスミノーゲンのアミノ酸配列（配列４）は計算によれば８１０個のアミノ酸からなり、分子量は約９２ｋＤであり、主に肝臓において合成され且つ血液中で循環できる糖タンパク質であり、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列３に示される通りである。フルサイズのプラスミノーゲンは七つのドメインを含む：Ｃ末端に位置するセリンプロテアーゼドメイン、Ｎ末端に位置するＰａｎＡｐｐｌｅ（ＰＡｐ）ドメイン及び５つのＫｒｉｎｇｌｅドメイン（Ｋｒｉｎｇｌｅ１－５）を含む。ｓｗｉｓｓｐｒｏｔ中の配列を参照すれば、そのシグナルペプチドは残基Ｍｅｔ１－Ｇｌｙ１９を含み、Ｐａｐは残基Ｇｌｕ２０－Ｖａｌ９８を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ１は残基Ｃｙｓ１０３－Ｃｙｓ１８１を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ２は残基Ｇｌｕ１８４－Ｃｙｓ２６２を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ３は残基Ｃｙｓ２７５－Ｃｙｓ３５２を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ４は残基Ｃｙｓ３７７－Ｃｙｓ４５４を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ５は残基Ｃｙｓ４８１－Ｃｙｓ５６０を含む。ＮＣＢＩデータによれば、セリンプロテアーゼドメインは残基Ｖａｌ５８１－Ａｒｇ８０４を含む。

Ｇｌｕ－プラスミノーゲンは天然のフルサイズのプラスミノーゲンであり、７９１個のアミノ酸からなる（１９個のアミノ酸からなるシグナルペプチドを含まない）。該配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列１に示される通りであり、そのアミノ酸配列は配列２に示される通りである。体内において、さらにＧｌｕ－プラスミノーゲンの第７６－７７位のアミノ酸の位置で加水分解することにより形成されたＬｙｓ－プラスミノーゲンが存在し、例えば配列６に示されるものであり、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列５が示す通りである。δ－プラスミノーゲン（δ－ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ）はフルサイズのプラスミノーゲンにＫｒｉｎｇｌｅ２－Ｋｒｉｎｇｌｅ５構造の欠損が生じているフラグメントであり、Ｋｒｉｎｇｌｅ１及びセリンプロテアーゼドメインしか含有せず^{［２２、２３］}、δ－プラスミノーゲンのアミノ酸配列（配列８）を報告している文献があり^［２３］、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は例えば配列７である。ミニプラスミノーゲン（Ｍｉｎｉ－ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ）はＫｒｉｎｇｌｅ５及びセリンプロテアーゼドメインからなり、残基Ｖａｌ４４３－Ａｓｎ７９１（シグナルペプチドＧｌｕ－プラスミノーゲン配列を含まないＧｌｕ残基を開始アミノ酸とする）について文献が報告しており^［２４］、そのアミノ酸配列は配列１０に示される通りであり、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列９が示す通りである。しかしマイクロプラスミノーゲン（Ｍｉｃｒｏ－ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ）はセリンプロテアーゼドメインのみ含有し、そのアミノ酸配列は残基Ａｌａ５４３－Ａｓｎ７９１（シグナルペプチドを含まないＧｌｕ－プラスミノーゲン配列のＧｌｕ残基は開始アミノ酸である）と文献が報告し^［２５］、特許文献ＣＮ１０２１５４２５３Ａはそれが残基Ｌｙｓ５３１－Ａｓｎ７９１を含むと開示し（シグナルペプチドを含まないＧｌｕ－プラスミノーゲン配列のＧｌｕ残基を開始アミノ酸とする）、本特許の配列は特許文献ＣＮ１０２１５４２５３Ａを参照でき、そのアミノ酸配列は配列１２に示される通りであり、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列１１に示される通りである。

本発明の「プラスミン」と「フィブリンプラスミン」、「繊維タンパクプラスミン」は互いに置き換えて使用でき、その意味は同じである。「プラスミノーゲン」と「フィブリンプラスミノーゲン」、「繊維タンパクプラスミノーゲン」は互いに置き換えて使用でき、その意味は同じである。

本願において、プラスミノーゲンの「欠乏」とは、被験者体内のプラスミノーゲンの含有量または活性が正常な人より低く、被験者の正常な生理学的機能に影響を及ぼすのに十分に低いことをいう。プラスミノーゲンの「欠乏」の意味は、被験者体内のプラスミノーゲンの含有量または活性が正常な人より明らかに低く、活性または発現が極微量であり、外部供給によってのみ正常な生理学的機能を維持できることである。

当業者は以下のように理解できる。本発明のプラスミノーゲンのすべての技術構成はプラスミンに適用でき、そのため、本発明に記載の技術構成はプラスミノーゲン及びプラスミンをカバーするものである。

循環プロセスにおいて、プラスミノーゲンは閉鎖した非活性コンフォメーションであるが、血栓または細胞表面に結合した際、プラスミノーゲン活性化剤（ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎａｃｔｉｖａｔｏｒ，ＰＡ）の介在下において、開放性のコンフォメーションを有する活性プラスミンとなる。活性を有するプラスミンはさらにフィブリン凝塊をフィブリン分解生成物及びＤ－二量体に加水分解させ、これにより血栓を溶解させる。そのうちプラスミノーゲンのＰａｐドメインはプラスミノーゲンを非活性閉鎖コンフォメーションにする重要なエピトープであり、しかしＫＲドメインは受容体及び基質上のリジン残基と結合できるものである。プラスミノーゲン活性化剤としての酵素は、既に複数種類知られ、組織プラスミノーゲン活性化剤（ｔＰＡ）、ウロキナーゼプラスミノーゲン活性化剤（ｕＰＡ）、カリクレイン及び凝結因子ＸＩＩ（ハーゲマン因子）などを含む。

「プラスミノーゲン活性フラグメント」とはプラスミノーゲンタンパク質において、基質中のターゲット配列と結合してタンパク質加水分解機能を発揮できる活性フラグメントである。本発明のプラスミノーゲンに係る技術構成が、プラスミノーゲン活性フラグメントでプラスミノーゲンの代替とする技術構成を含む。本発明に記載のプラスミノーゲン活性フラグメントはプラスミノーゲンのセリンプロテアーゼドメインを含むタンパク質であり、好ましくは、本発明に記載のプラスミノーゲン活性フラグメントは配列１４、配列１４と少なくとも８０％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％の同一性のアミノ酸配列を含有するタンパク質を含むものである。そのため、本発明に記載のプラスミノーゲンは該プラスミノーゲン活性フラグメントを含み、且つ依然として該プラスミノーゲン活性を有するタンパク質を含む。

現在、血液中のプラスミノーゲン及びその活性測定方法は以下を含む：組織フィブリンプラスミノーゲン活性化剤の活性に対する測定（ｔ－ＰＡＡ）、血漿組織プラスミノーゲン活性化剤抗原に対する測定（ｔ－ＰＡＡｇ）、血漿組織プラスミノーゲン活性に対する測定（ｐｌｇＡ）、血漿組織プラスミノーゲン抗原に対する測定（ｐｌｇＡｇ）、血漿組織プラスミノーゲン活性化剤の阻害物活性に対する測定、血漿組織プラスミノーゲン活性化剤の阻害物抗原に対する測定、血漿プラスミン－抗プラスミン複合物に対する測定（ＰＡＰ）。最もよく見られる測定方法は発色基質法である：測定対象(被験者)の血漿中にストレプトキナーゼ（ＳＫ）と発光基質を添加し、測定対象の血漿中のＰＬＧはＳＫの作用下においてプラスミンとなり、後者は発光基質に作用し、それから分光光度計で測定し、吸光度の増加はプラスミノーゲンの活性と正比例の関係となる。この他にも免疫化学法、ゲル電気泳動法、免疫比濁法、放射免疫拡散法などを用いて血液中のフィブリンプラスミノーゲン活性に対して測定を行うことができる。

「オルソログ（ｏｒｔｈｏｌｏｇ）」とは異なる種どうしのホモログであり、タンパク質の相同物もＤＮＡの相同物も含む。それは具体的に異なる種どうしの同じ祖先の遺伝子から進化して得られるタンパク質または遺伝子を言う。本発明のプラスミノーゲンはヒト天然プラスミノーゲンを含み、さらには異なる種に由来する、プラスミノーゲン活性を有するプラスミノーゲンオルソログを含む。

「保存的置換バリアント」とはそのうちの一つの指定されたアミノ酸残基が改変されたがタンパク質または酵素の全体のコンフォメーション及び機能を変えないものであり、これは類似の特性（例えば酸性、アルカリ性、疎水性など）のアミノ酸でペアレントタンパク質中のアミノ酸配列中のアミノ酸を置換するものを含むがこれらに限られない。類似の性質を有するアミノ酸は知られている通りである。例えば、アルギニン、ヒスチジン及びリジンは親水性のアルカリ性アミノ酸であり且つ互いに置き換えることができる。同じように、イソロイシンは疎水アミノ酸であり、ロイシン、メチオニンまたはバリンによって置換されることができる。そのため、機能の類似する二つのタンパク質またはアミノ酸配列の類似性は異なる可能性もある。例えば、ＭＥＧＡＬＩＧＮアルゴリズムに基づいて７０％～９９％の類似性（同一性）を有する。「保存的置換バリアント」はさらにＢＬＡＳＴまたはＦＡＳＴＡアルゴリズムに基づいて６０％以上のアミノ酸同一性を有するポリペプチドまたは酵素を含み、７５％以上に達すればさらによく、最も好ましくは８５％以上に達し、さらには９０％以上に達するのが最も好ましく、さらに天然またはペアレントタンパク質または酵素と比較して同じまたは基本的に類似する性質または機能を有する。

「分離された」プラスミノーゲンとは天然環境から分離及び／または回収されたプラスミノーゲンタンパク質である。いくつかの実施形態において、前記プラスミノーゲンは（１）９０％を超える、９５％を超える、または９８％を超える純度（重量で計算した場合）になるまで精製し、例えばＬｏｗｒｙ法によって決まるもので、例えば９９％（重量で計算した場合）を超えるまで精製する、（２）少なくともスピニングカップ配列分析装置によりＮ末端または内部アミノ酸配列の少なくとも１５個の残基が得られる程度になる精製する、または（３）同質性になるまで精製する。該同質性はクマシーブリリアントブルーまたは銀染色により還元性または非還元性条件下のドデシル硫酸ナトリウムーポリアクリルアミノゲル電気泳動（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）によって決まるものである。分離されたプラスミノーゲンはバイオエンジニアリング技術により組み換え細胞から製造することができ、さらに少なくとも一つの精製ステップで分離されたプラスミノーゲンを含む。

用語の「ポリペプチド」、「ペプチド」及び「タンパク質」は本明細書において互いに置き換えて使用でき、いかなる長さのアミノ酸の重合体を指し、遺伝的にコードされた及び非遺伝的にコードされたアミノ酸、化学的または生化学的に修飾されまたは派生したアミノ酸、及び修飾されたペプチド主鎖を有するポリペプチドを含む。該用語は融合タンパク質を含み、異種性アミノ酸配列を有する融合タンパク質を含むがこれに限られず、異種性と同種性由来のリーダー配列（Ｎ端メチオニン残基を有するか有しない）を含む融合物；等々である。

参照ペプチド配列の「アミノ酸配列同一性パーセンテージ（％）」の定義は、必要に応じてギャップを導入することで最大のパーセンテージ配列の同一性を実現した後、如何なる保存的な置換も配列同一性の一部として見なさない場合、候補配列中における参照ポリペプチド配列中のアミノ酸残基と同じアミノ酸残基のパーセンテージである。パーセンテージのアミノ酸配列の同一性を測定することを目的とした比較は本分野の技術範囲における複数種類の方式によって実現でき、例えば公衆が入手できるコンピュータソフトウエア、例えばＢＬＡＳＴ、ＢＬＡＳＴ－２、ＡＬＩＧＮまたはＭｅｇａｌｉｇｎ（ＤＮＡＳＴＡＲ）ソフトウエアによって実現できる。当業者は配列をアライメントするための適切なパラメータを決めることができ、該パラメータが比較対象の配列のフルサイズに対して最大比較の要求を実現するための如何なるアルゴリズムも含む。しかし、本発明の目的のために、アミノ酸配列の同一性パーセンテージは配列比較コンピュータソフトウエアＡＬＩＧＮ－２により得られるものである。

ＡＬＩＧＮ－２を用いることによりアミノ酸配列を比較する場合、所定のアミノ酸配列Ａの所定のアミノ酸配列Ｂに対するアミノ酸配列同一性％（または所定のアミノ酸配列Ｂに対して、と、またはについてのあるアミノ酸配列と同一性を有する又は含む所定のアミノ酸配列Ａともいう）は以下のように計算される：
分数Ｘ／Ｙ×１００

そのうちＸは配列アライメントプログラムＡＬＩＧＮ－２において該プログラムのＡ及びＢのアライメントにおいて同一でマッチングすると評価したアミノ酸残基の数であり、且つそのうちＹはＢにおけるアミノ酸残基の総数である。以下のように理解するべきである：アミノ酸配列Ａの長さとアミノ酸配列Ｂの長さが等しくない場合、ＡのＢに対するアミノ酸配列の同一性％は、ＢのＡに対するアミノ酸配列同一性％とは異なる。特に断りのない限り、本文中において使用するすべてのアミノ酸配列同一性値％は前記の段落に記載の通りであり、ＡＬＩＧＮ－２コンピュータプログラムによって得られるものである。

本文において使用されているように、用語の「治療」及び「処理」は期待される薬理及び／または生理的効果が得られることを言う。前記効果は疾患またはその症状を完全または一部予防すること、及び／または疾患及び／またはその症状を一部または完全に治癒するものとすることができる。さらに以下を含む：（ａ）疾患が被験者の体内で発生することを予防し、前記被験者は疾患の要因を持っているが、該疾患を有すると診断されていない状況であること；（ｂ）疾患を抑制し、その形成を阻害すること；及び（ｃ）疾患及び／またはその症状を減軽し、即ち疾患及び／またはその症状を減退させること。

用語の「個体」、「被験者」及び「患者」は本明細書中において互いに置き換えて使用でき、哺乳動物を指し、ネズミ（ラット、マウス）、ヒト以外の霊長類、ヒト、イヌ、ネコ、有蹄動物（例えばウマ、ウシ、ヒツジ、ブタ、ヤギ）などを含むがこれらに限られない。

「治療上有効量」または「有効量」とは、哺乳動物またはその他の被験者に投与して疾患の治療に用いられる際に疾患の前記予防及び／または治療を実現できるプラスミノーゲンの量である。「治療上有効量」は使用するプラスミノーゲン、治療しようとする被験者の疾患及び／または症状の重症度及び年齢、体重などに従って変化するものである。

２．本発明のプラスミノーゲンの調製
プラスミノーゲンは治療の用途に用いられるために、自然界から分離及び精製されるものでもよく、標準的な化学ペプチド合成技術によって合成することでもよい。化学的手法によりポリペプチドを合成する際、液相または固相で合成を行うことができる。固相ポリペプチド合成（ＳＰＰＳ）（配列のＣ末端アミノ酸を不溶性支持体に附着させ、順番に配列中の残りのアミノ酸を添加する）はプラスミノーゲンの化学的合成に適したものである。各種形式のＳＰＰＳ、例えばＦｍｏｃ及びＢｏｃは、プラスミノーゲンの合成に用いることができる。固相合成に用いられる技術は以下に記載されている：Ｂａｒａｎｙ及びＳｏｌｉｄ－ＰｈａｓｅＰｅｐｔｉｄｅＳｙｎｔｈｅｓｉｓ；３－２８４ページ、ＴｈｅＰｅｐｔｉｄｅｓ：Ａｎａｌｙｓｉｓ，Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，Ｂｉｏｌｏｇｙ．第二巻：ＳｐｅｃｉａｌＭｅｔｈｏｄｓｉｎＰｅｐｔｉｄｅＳｙｎｔｈｅｓｉｓ，ＰａｒｔＡ．，Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ，ｔらＪ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，８５：２１４９－２１５６（１９６３）；Ｓｔｅｗａｒｔら，ＳｏｌｉｄＰｈａｓｅＰｅｐｔｉｄｅＳｙｎｔｈｅｓｉｓ，２ｎｄｅｄ．ＰｉｅｒｃｅＣｈｅｍ．Ｃｏ．，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，Ｉｌｌ．（１９８４）；及びＧａｎｅｓａｎＡ．２００６ＭｉｎｉＲｅｖ．ＭｅｄＣｈｅｍ．６：３－１０及びＣａｍａｒｅｒｏＪＡら２００５ＰｒｏｔｅｉｎＰｅｐｔＬｅｔｔ．１２：７２３－８。簡単に言えば、その上にペプチド鎖が構築されている機能性ユニットにより不溶性の多孔ビーズを処理する。カップリング／脱保護の繰り返し循環後に、附着した固相の遊離Ｎ末端アミンと単一のＮ保護を受けているアミノ酸ユニットをカップリングさせる。それから、該ユニットを脱保護し、他のアミノ酸と接続する新しいＮ末端アミンを露出させる。ペプチドを固相上に固定したままにし、それからそれを切除する。

標準的な組み換え方法により本発明のプラスミノーゲンを生産する。例えば、プラスミノーゲンをコードする核酸を発現ベクター中に挿入し、それと発現ベクター中の制御配列を操作可能に接続させる。発現制御配列はプロモーター（例えば天然に関連されているプロモーター、または異種由来のプロモーター）、シグナル配列、エンハンサーエレメント及び転写終了配列を含むが、これらに限られない。発現の制御はベクター中の真核プロモーターシステムとすることができ、前記ベクターは真核宿主細胞（例えばＣＯＳまたはＣＨＯ細胞）を形質転換またはトランスフェクションさせる。一旦ベクターを適切な宿主に導入すれば、ヌクレオチド配列の高レベル発現及びプラスミノーゲンの収集及び精製に適した条件下において宿主を維持する。

適切な発現ベクターは通常宿主体内において附加体または宿主染色体ＤＮＡの整合部分として複製される。通常、発現ベクターは選択マーカー（例えばアンピシリン耐性、ハイグロマイシン耐性、テトラサイクリン耐性、カナマイシン耐性またはネオマイシン耐性）を含み、インビトロで所望のＤＮＡ配列によって形質転換されたそれらの細胞に対して測定を行うことに有用である。

大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ）はターゲット抗体をコードするポリヌクレオチドをクローンする原核宿主細胞の例である。その他の使用に適した微生物宿主は桿菌を含み、例えばバチルス・サブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓ）及びその他の腸内細菌科（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒｉａｃｅａｅ）、例えばサルモネラ属（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）、セラチア属（Ｓｅｒｒａｔｉａ）、及び各種シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）種である。これらの原核宿主において、発現ベクターを生成でき、通常は宿主細胞と相容する発現制御配列（例えば複製開始点）を含むものである。また、多くの公知のプロモーターが存在し、例えば乳糖プロモーターシステム、トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーターシステム、β－ラクタマーゼプロモーターシステム、またはファージλ由来のプロモーターシステムである。プロモーターは一般的に発現を制御し、必要に応じて遺伝子配列を制御する場合に、転写及び翻訳を起動するために、さらにリボソームの結合位置配列を有してもよい。

その他の微生物、例えば酵母も発現に用いることができる。酵母（例えばサッカロミセス（Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ））及びピキア（Ｐｉｃｈｉａ）が適した酵母宿主細胞の例であり、そのうちの適切な担体は必要に応じて発現制御配列（例えばプロモーター）、複製開始点、終止配列など含む。典型的なプロモーターは３－ホスホグリセリン酸キナーゼ及びその他の糖分解酵素を含む。誘導型酵母プロモーターにはアルコール脱水素酵素、イソチトクロムＣ、及び麦芽糖とガラクトースの利用のための酵素のプロモーターを含む。

微生物以外に、哺乳動物細胞（例えば体外細胞培養物中において培養された哺乳動物細胞）も本発明のプラスミノーゲンの発現および生成に用いることができる（例えば目的抗－Ｔａｕ抗体をコードするポリヌクレオチド）。例えばＷｉｎｎａｃｋｅｒ，ＦｒｏｍＧｅｎｅｓｔｏＣｌｏｎｅｓ，ＶＣＨＰｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ｎ．Ｙ．，Ｎ．Ｙ．（１９８７）参照。適した哺乳動物宿主細胞はＣＨＯ細胞系、各種Ｃｏｓ細胞系、ＨｅＬａ細胞、骨髄腫細胞系、及び形質転換されたＢ細胞またはハイブリドーマを含む。これらの細胞に用いられる発現ベクターは発現制御配列、例えば複製開始点、プロモーター、及びエンハンサー（Ｑｕｅｅｎら，Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅｖ．８９：４９（１９８６））、及び必要とされる加工情報サイト、例えばリボソームの結合サイト、ＲＮＡの切断サイト、ポリアデノシン酸化サイト、及び転写ターミネーター配列を含むことができる。適切な発現制御配列の例はウサギ免疫グロブリン遺伝子、ＳＶ４０、アデノウイルス、ウシ乳頭腫ウイルス、サイトメガロウイルスなどの派生のプロモーターである。Ｃｏら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４８：１１４９（１９９２）を参照すること。

一旦合成（化学または組み換え的に）されれば、本分野の標準的な手順、例えば硫酸アンモニウム沈殿、アフィニテイカラム、カラムクロマトグラフィー、高速液相クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、ゲル電気泳動などにより本発明に記載のプラスミノーゲンを精製することができる。該プラスミノーゲンは基本的に純粋なものであり、例えば少なくとも約８０％から８５％の純度で、少なくとも約８５％～９０％の純度で、少なくとも約９０％～９５％の純度で、または９８％～９９％の純度またはさらに純度が高いものであり、例えば汚染物を含まず、前記汚染物は例えば細胞砕片、目的抗体以外の大分子などである。

３．薬物配合剤
所望の純度のプラスミノーゲンと必要に応じた薬用担体、賦形剤、または安定化剤（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ，第１６版，Ｏｓｏｌ，Ａ．ｅｄ．（１９８０））を混合して凍結乾燥製剤または水溶液を形成して治療用の配合剤を得る。許容可能な担体、賦形剤、安定化剤は所要の用量及び濃度下において被験者に対して毒性がなく、さらに例えばリン酸塩、クエン酸塩及びその他の有機酸などの緩衝剤を含む。抗酸化剤はアスコルビン酸和メチオニンを含む；防腐剤（例えばオクタデシルジメチルベンジルアンモニウムクロリド；塩化ヘキサメチレンジアミン；塩化ベンザルコニウム（ｂｅｎｚａｌｋｏｎｉｕｍｃｈｌｏｒｉｄｅ）、ベンゼトニウムクロリド；フェノール、ブタノールまたはベンジルアルコール；アルキルパラヒドロキシ安息香酸エステル、例えばメチルまたはプロピルパラヒドロキシ安息香酸エステル；ピロカテコール；レソルシノール；シクロヘキサノール；３－ペンタノール；ｍ－クレゾール）；低分子量ポリペプチド（少なくとも１０個の残基を有するもの）；タンパク質例えば血清アルブミン、ゼラチン、または免疫グロブリン；親水性重合体、例えばポリビニルピロリドン；アミノ酸、例えばグリシン、グルタミン、アスパラギン酸、ヒスチジン、アルギニンまたはリシンである；単糖、二糖及びその他の炭水化物はグルコース、マンノース、またはデキストリンを含む；キレート剤は例えばＥＤＴＡである；糖類は例えばショ糖、マンニトール、フコースまたはソルビトールである；塩形成対イオン、例えばナトリウム；金属複合体（例えば亜鉛－タンパク複合体）；及び／または非イオン界面活性剤、例えばＴＷＥＥＮＴＭ、ＰＬＵＲＯＮＩＣＳＴＭまたはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）である。好ましくは凍結乾燥された抗－ＶＥＧＦ抗体配合剤であり、ＷＯ９７／０４８０１に記載されているとおりであり、本明細書において参考とされるものである。

本発明の配合剤は治療を必要とする具体的な症状の必要とする一種類以上の活性化合物を含有してもよく、好ましくは活性が相補的で互いに副作用を有しないものである。例えば、血圧降下薬、抗不整脈薬、糖尿病治療薬等である。

本発明のプラスミノーゲンは例えば凝集技術または界面重合によって作られるマイクロカプセル中に内包ことができ、例えば、膠質薬物輸送系（例えば、リポソーム、アルブミンミクロスフェア、マイクロエマルジョン剤、ナノ粒子及びナノカプセル）中に入れまたは粗エマルジョン状液中のヒドロキシメチルセルロースまたはゲルーマイクロカプセル及びポリ―（メタアクリル酸メチル）マイクロカプセル中に入れることができる。これらの技術はＲｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ１６ｔｈｅｄｉｔｉｏｎ，Ｏｓｏｌ，Ａ．Ｅｄ．（１９８０）に開示されている。。

体内に投与することに用いられる本発明のプラスミノーゲンは必ず無菌である必要がある。これは凍結乾燥及び再度配合する前または後に除菌濾過膜で濾過することで容易に実現できる。

本発明のプラスミノーゲンは緩衝製剤を調製できる。緩衝製剤の適切な実例は一定の形状を有し且つ糖タンパクを含む固体の疎水性重合体の半透過マトリックスを含み、例えば膜またはマイクロカプセルである。緩衝基質の実例はポリエステル、水性ゲル（例えばポリ（２－ヒドロキシエチル－メタアクリル酸エステル）（Ｌａｎｇｅｒら，Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｍａｔｅｒ．Ｒｅｓ．，１５：１６７－２７７（１９８１）；Ｌａｎｇｅｒ，Ｃｈｅｍ．Ｔｅｃｈ．，１２：９８－１０５（１９８２））またはポリ（ビニールアルコール）、ポリラクチド（米国特許３７７３９１９，ＥＰ５８，４８１）、Ｌ－グルタミン酸とエチル－Ｌ－グルタミン酸の共重合体（Ｓｉｄｍａｎ，ら，Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ２２：５４７（１９８３）），分解できないエチレン－ビニルアセテート（ｅｔｈｙｌｅｎｅ－ｖｉｎｙｌａｃｅｔａｔｅ）（Ｌａｎｇｅｒ，ら，出所は前記と同じ）、または分解可能な乳酸－ヒドロキシ酢酸共重合体、例えばＬｕｐｒｏｎＤｅｐｏｔＴＭ（乳酸－ヒドロキシ酢酸共重合体及びリュープロレリン（ｌｅｕｐｒｏｌｉｄｅ）酢酸エステルからなる注射可能なミクロスフェア体）、及びポリＤ－（－）－３－ヒドロキシ酪酸を含む。重合体、例えばエチレン－酢酸エチル及び乳酸－ヒドロキシ酢酸は、持続的に分子を１００日間以上放出することができ、しかしいくつかの水性ゲルがタンパク質を放出する時間は比較的短い。関連のメカニズムに応じてタンパク質を安定化させる合理的なストラテジーにより設計できる。例えば、凝集のメカニズムが硫化ジスルフィド結合の交換によって分子間Ｓ－Ｓ結合を形成するであれば、メルカプト基残基を修飾することにより、酸性溶液中から凍結乾燥させ、湿度を制御し、適切な添加剤を用いて、及び特定の重合体基質組成物を開発することで安定化を実現できる。

４．投与及び使用量
異なる方式、例えば静脈内、腹膜内、皮下、頭蓋骨内、髄腔内、動脈内（例えば頸動脈）、筋肉内、鼻内、体表または皮内投与または脊髄または脳内輸送により本発明の薬物組成物の投与を実現できる。エアロゾル製剤例えば鼻噴霧製剤は活性化剤を含有する精製した水性またはその他の溶液及び防腐剤と等張剤を含有する。このような製剤を鼻粘膜と相容し得るｐＨ及び等張状態に調整する。

一部の場合において、以下の方式により本発明のプラスミノーゲン薬剤組成物を修飾または配合することができ、これにより血液脳関門を通過できる能力を提供する。各種の腸内及び胃腸外の投与経路、内服、静脈内等を用いて患者に対して血栓及び／または血栓関連疾患を患っている個体に対してこのようなプラスミノーゲンの組成物を投与することを含む。

胃腸外での投与に用いられる製造物は無菌水性または非水性溶液、懸濁液及び乳剤を含む。非水性溶媒の例はプロピレングリコール、ポリエチレングリコール、例えばオリーブオイルのような植物油、及び注射可能な有機エステル、例えばオレイン酸エチルである。水性担体は水、アルコール性／水性溶液、乳剤または懸濁液を含み、食塩水及び緩衝媒介を含む。胃腸外媒介物は塩化ナトリウム溶液、リンガーデキストロース、デキストロース及び塩化ナトリウム、または固定油である。静脈内媒介物は液体及び栄養補充物、電気分解補充物などを含む。されには防腐剤及びその他の添加剤、例えば抗微生物製剤、抗酸化剤、キレート剤、不活性ガスなども存在してもよい。

いくつかの実施形態において、本発明のプラスミノーゲンは血液脳関門の通過を促進する薬剤と配合されている。いくつかの場合において、本発明のプラスミノーゲンは直接またはリンカにより血液脳関門の通過を促進する担体分子、ペプチドまたはタンパク質と融合する。一部の実施形態において、本発明のプラスミノーゲンは内在性血液脳関門（ＢＢＢ）受容体に結合するポリペプチドと融合する。プラスミノーゲンと内在性血液脳関門受容体に結合するポリペプチドは、ＢＢＢの通過を促進する。内在性血液脳関門（ＢＢＢ）受容体に結合するポリペプチドは抗体、例えばモノクローナル抗体、またはその抗原結合フラグメントを含み、それは特異的に内在性ＢＢＢ受容体に結合する。適切な内在性ＢＢＢ受容体はインスリン受容体を含むがこれに限られず、抗体はリポソームに内包されたものである。例えば米国特許公開書類Ｎｏ．２００９／０１５６４９８を参照すること。

医療関係者は各種臨床的要素により用量案を決めることができる。例えば医学分野で公知のように、任意の患者の用量は複数の要素によって決められ、これらの要素は患者の体型、体表面積、年齢、投与される具体的な化合物、性別、投与回数及び経路、全体の健康度、及び同時に投与するその他の薬物を含む。本発明が含有するプラスミノーゲンの薬物組成物の用量の範囲は例えば被験者体重に対して毎日約０．０００１～２０００ｍｇ／ｋｇであり、または約０．００１～５００ｍｇ／ｋｇ（例えば０．０２ｍｇ／ｋｇ，０．２５ｍｇ／ｋｇ，０．５ｍｇ／ｋｇ，０．７５ｍｇ／ｋｇ，１０ｍｇ／ｋｇ，５０ｍｇ／ｋｇなど）とすることができる。例えば、用量は１ｍｇ／ｋｇ体重または５０ｍｇ／ｋｇ体重または１－５０ｍｇ／ｋｇの範囲とすることができ、または少なくとも１ｍｇ／ｋｇである。この例示性の範囲より高いまたは低い用量もカバーされ、特に前記の要素を考慮した場合である。前記範囲中の中間用量も本発明の範囲内に含まれるものである。被験者は毎日、隔日、毎週または経験分析によって決められた任意のスケジュール表に従ってこのような用量を投与できる。例示的な用量のスケジュール表は連続数日１－１０ｍｇ／ｋｇ投与することである。本発明の薬物の投与過程において血栓及びその関連疾患の治療効果及び安全性はリアルタイムに評価、定期的に評価すべきである。

５．治療の効力
本発明の一つの実施形態はプラスミノーゲンを用いて被験者を治療した後、治療効力及び治療安全性に対して判断を行うことに係る。その臨床上における治療効力を判断する方法は以下の指標を測定することにより腎臓機能を評価することを含むが、これらに限られない：血清クレアチニンレベル、クレアチニン除去率、２４－時間尿タンパク排出率（ＵＡＥＲ）、糸球体濾過率、尿アルブミン／クレアチニン比、アルブミン分泌率及び腎臓生検等である。例えば、糸球体濾過率は糸球体の過剰濾過及び過剰灌流の状況を示すことができ、これは糖尿病性腎症の早期症状の緩和の程度を示すものである。糸球体濾過率は腎臓から１分間に生じる濾液の体積であり、各種方法によって決めることができ、例えばプロテオグリカン、イオタラム酸塩またはイオヘキソールのような濾過マーカーの尿除去率を測定することで測定できる。最もよく見られる方法は、クレアチニン（筋肉によって生じさらに血液中に放出されるタンパク質）の除去率を知ることによって糸球体濾過率を予測することである。クレアチニン除去率（通常はｍｌ／分と示される）は所定時間（例えば１２時間または２４時間）内の尿液中で収集されたクレアチニンレベル及び血液中のクレアチニンレベルを比較することによって知ることができる。成人男性の典型的なクレアチニン除去率は約９７－１３７ｍｌ／分であり、成人女性は約８８－１２８ｍｌ／分である。クレアチニン除去率と尿クレアチニン***は正比例の関係であり、血清クレアチニン濃度と逆比例の関係である。

通常はクレアチニン除去率／糸球体濾過率または尿アルブミン排出率を主な効力評価指標とする。これとともにその他の二次的な指標を加えて本発明の薬物の対応の合併症に対する効力を評価し、例えばトリグリセリド、総コレステロール、低密度リポタンパク等を用いて血中脂質変化を評価し、治療前後の収縮圧、拡張圧のレベルを測定することを増やすことによって高血圧状況の緩和の程度などについて評価する。

６．製品または薬物キット
本発明の一つの実施形態は製品または薬物キットに係るものであり、糖尿病腎症を治療するための本発明のプラスミノーゲンを含有する。前記製品は好ましくは一つの容器、ラベルまたはプロトコルを含む。適切な容器はボトル、小瓶、注射器などである。容器は各種材料例えばガラスまたはプラスチックから作られることができる。前記容器は組成物を含有し、前記組成物は本発明の疾患または症状を有効に治療し且つ無菌の入口を有する（例えば前記容器は静脈輸液用パックまたはバイアルであり、皮下注射針によって貫通される栓を含む）。前記組成物中の少なくとも一種類の活性化剤がプラスミノーゲンである。前記容器上にあるまたは添付されているラベルは前記組成物を本発明の前記糖尿病によって引き起こされる糖尿病性腎症及びその関連疾患の治療に用いられると説明するものである。前記製品はさらに薬用緩衝液を含有する第二容器を含み、前記薬用緩衝液は例えばリン酸塩緩衝の食塩水、リンガー溶液及びグルコース溶液を含む。さらには商業及び使用者の角度から見ると必要とされるその他の物質、即ちその他の緩衝液、希釈剤、濾過物、針及び注射器を含むことができる。また、前記製品は使用説明を有するプロトコルを含み、これは例えば前記組成物の使用者にプラスミノーゲン組成物及び疾患の治療に伴うその他の薬物を患者に投与することを指示するものである。

［実施例１］
実施例１は、プラスミノーゲンがシスプラチンによる腎損傷の修復を促進することに関するものである。
８～９週齢の健康なオスＣ５７マウスを１０匹取り、ランダムに二つの群に分け、それぞれ溶媒ＰＢＳ投与対照群及びプラスミノーゲン投与群で、各群５匹ずつである。群分けが完了した後に、１０ｍｇ／Ｋｇ体重で一回経腹腔でシスプラチンを注射し^［３３］、化学療法損傷モデルを構築した。モデル構築が完了した後にプラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを同じ方法で投与した。実験開始当日を０日目として体重を測ってから群分けし、一日目からシスプラチンを腹腔注射してモデル構築を行い、モデル構築後３時間以内にプラスミノーゲンまたは溶媒ＰＢＳを投与し、投与期間は７日間である。８日目にマウスを殺処分し、腎臓を取って１０％中性フルマリン固定液において２４～４８時間固定を行った。固定後の腎臓組織をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは４μｍであり、切片を脱パラフィンさせさらに浸水してから一回水洗いした。クエン酸で３０分間修復し、室温にて１０分間冷却してから水でやさしく洗い流した。ＰＡＰマーカーで組織を丸で囲み、３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。５％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で３０分間ブロッキングした；時間になった後、ヒツジ血清液を廃棄し、ヤギ抗マウスＩｇＭ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）を滴加して室温で１時間インキュベーションし、ＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で呈色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複染色して、流水で５分間流した。段階的に脱水してから透徹にし封入させ、切片を顕微鏡下で２００倍にて観察した。
ＩｇＭ抗体は、アポトーシス細胞及び壊死細胞の排除において重要な役割を果たし、組織器官損傷の局所的ＩｇＭ抗体のレベルは、損傷の程度と正比例に相関している^{［２９，３０］}。よって、検出した組織器官の局所的ＩｇＭ抗体のレベルは該組織器官の損傷状況を反映することができる。
その結果、プラスミノーゲン投与群（図１Ｂ）のＩｇＭ陽性発現は、溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１Ａ）より明らかに低く、しかもその差が統計学的に有意である（図１Ｃ）。これは、プラスミノーゲンが腎損傷の修復を促進できることを示している。

［実施例２］
実施例２は、プラスミノーゲンがシスプラチン化学療法損傷モデルマウスの腎線維症を軽減することに関するものである。
８～９週齢の健康なオスＣ５７マウスを１０匹取り、ランダムに二つの群に分け、それぞれ溶媒ＰＢＳ投与対照群及びプラスミノーゲン投与群で、各群５匹ずつである。群分けが完了した後に、化学療法損傷モデルを構築し、１０ｍｇ／Ｋｇ体重で一回経腹腔でシスプラチンを注射した^［３３］。モデル構築が完了した後にプラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与した。実験開始当日を０日目として体重を測ってから群分けし、一日目からシスプラチンを腹腔注射してモデル構築を行い、モデル構築後３時間以内にプラスミノーゲンまたは溶媒ＰＢＳを投与し、投与期間は７日間である。８日目にマウスを殺処分し、腎臓を取って４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓組織をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは４μｍであり、切片を脱パラフィンさせさらに浸水してから一回水洗いした。ＰＡＰマーカーで組織を丸で囲み、３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。５％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で３０分間ブロッキングした；時間になった後、ヒツジ血清液を廃棄し、ウサギ抗マウスＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を滴加して室温で１時間インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で呈色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複染色して、流水で５分間ブルーイングさせてからＴＢＳで１回洗った。段階的に脱水してから透徹にし封入させ、切片を顕微鏡下で２００倍にて観察した。
その結果、溶媒ＰＢＳ投与対照群（図２Ａ）の腎臓ＩＶ型コラーゲンの陽性発現はプラスミノーゲン投与群（図２Ｂ）より明らかに高い。これは、プラスミノーゲンがシスプラチンによる損傷モデルマウスの腎線維症を軽減できることを示している。

［実施例３］
実施例３は、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルの腎臓に対する保護作用に関するものである。
８～９週齢のＰＬＧ^＋／＋マウス２０匹、及びＰＬＧ^－／－マウス６匹を取り、ＰＬＧ^＋／＋マウスをランダムに二つの群に分け、それぞれプラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群１０匹ずつとした。プラスミノーゲン投与群、溶媒ＰＢＳ投与対照群、及びＰＬＧ^－／－マウスに毎日０．２５％のプリン飼料（南通トロフィー）を給餌し、慢性腎損傷モデルを構築した^［２６］。モデル構築した当日を１日目として投薬を始めた。プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、モデル構築投薬を１０日間連続し、ＰＬＧ^－／－マウスは処置しなかった。１１日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓組織をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせさらに浸水してヘマトキシリン及びエオシンで染色（ＨＥ染色）させ、１％塩酸エタノールで分別させ、アンモニア水でブルーイングさせ、さらにアルコールで段階的に脱水させてキシレンで透徹にし、中性ゴムに封入させ、切片を光学顕微鏡下で２００倍（図３Ａ、Ｂ、Ｃ）、４００倍（１Ｄ）にて観察した。
その結果、ＰＬＧ^－／－マウスの腎臓（図３Ｃ、３Ｄ）病変が最も重度であり、大量の膿キャスト（矢印に示される）、少量のプリン結晶（三角で表記されている）、大面積の腎尿細管萎縮、及び扁平上皮細胞が観察される。ＰＬＧ^－／－マウスと比べ、溶媒ＰＢＳ投与対照群のマウスの腎（図３Ａ）損傷は軽い。糸球体萎縮及び腎尿細管の壊死は依然として深刻であるが、明らかなプリン結晶は見られず、膿キャストも比較的に軽い。プラスミノーゲン投与群のマウス（図３Ｂ）の腎尿細管の萎縮面積は、ＰＢＳ投与対照群より小さく、腎尿細管の拡張も軽く、膿キャストは発見していない。これは、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルマウスの腎損傷を修復できることを示している。

［実施例４］
実施例４は、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルの腎線維症を修復することに関するものである。
８～９週齢のＰＬＧ^＋／＋マウス１２匹、及びＰＬＧ^－／－マウス６匹を取り、ＰＬＧ^＋／＋マウスをランダムに二つの群に分け、それぞれプラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群６匹ずつとした。慢性腎損傷モデルの構築方法は実施例１と同様である。モデル構築した当日を１日目として投薬を始めた。プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、モデル構築投薬を１０日間連続し、ＰＬＧ^－／－マウスは処置しなかった。１１日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせてから１回水洗い、０．１％シリウスレッドで６０分間染色させた後、流水で洗い、ヘマトキシリンで１分間染色してから流水で洗い、１％塩酸エタノール及びアンモニア水で分別させてブルーイングさせ、流水で洗い、乾燥させてから封入し、切片を顕微鏡下で２００倍にて観察した。
シリウスレッド染色は、コラーゲンを長期的に染色することができ、病理学的切片の特殊染色法として、シリウスレッド染色はコラーゲン組織を特異的に表示することができる。
その結果、プラスミノーゲン投与群（図４Ｂ）と溶媒ＰＢＳ投与対照群（図４Ａ）のコラーゲン沈着はＰＬＧ^－／－群（図４Ｃ）より明らかに少なく、しかもその差が統計学的に有意である（図４Ｄ）ことは示されている。また、プラスミノーゲン投与群のコラーゲン沈着は、溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに少ない。これは、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルマウスの腎線維症を修復する過程において肝心な役割を果たすことを示している。

［実施例５］
実施例５は、プラスミノーゲンが慢性腎損傷マウスの腎臓アポトーシス抑制タンパク質Ｂｃｌ－２の発現を促進することに関するものである。
８～９週齢のオスＰＬＧ^＋／＋マウス１８匹を取り、ランダムに三つの群に分け、それぞれブランク対照群、プラスミノーゲン投与群、及び溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群６匹ずつとした。慢性腎損傷モデルの構築方法は実施例１と同様である。モデル構築した当日を１日目として投薬を始めた。ブランク対照群に通常の維持食を給餌した。プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、モデル構築投薬を１０日間連続し、ブランク対照群マウスは処置しなかった。モデル構築投薬を始めた日を１日目として、１１日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせてから１回水洗った。ＰＡＰマーカーで組織を丸で囲み、３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。５％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で３０分間ブロッキングした；時間になった後、ヒツジ血清液を廃棄し、ウサギ抗マウスＢｃｌ－２抗体（Ａｂｃａｍ）を滴加して４℃で終夜インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で呈色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複染色して、流水で５分間流した。アルコールで段階的に脱水させてキシレンで透徹にし、中性ゴムに封入させ、切片を光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
Ｂｃｌ－２は細胞アポトーシス抑制タンパク質であり、アポトーシス刺激因子により発現が低くなる^{［２７，２８］}。Ｂｃｌ－２免疫組織化学的結果によって、プラスミノーゲン投与群（図５Ｃ）の腎臓Ｂｃｌ－２の陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群（図５Ｂ）より明らかに深く、しかもブランク対照群（図５Ａ）のＢｃｌ－２の陽性着色の程度に近いことは示されている。これは、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルマウスの腎細胞アポトーシス抑制分子Ｂｃｌ－２の発現を促進でき、それによって慢性腎損傷マウスの腎組織細胞をアポトーシスから保護することに寄与できることを示している。

［実施例６］
実施例６は、プラスミノーゲンが慢性腎損傷マウスの腎臓の局所損傷を改善することに関するものである。
８～９週齢のオスＰＬＧ^＋／＋マウス１８匹を取り、ランダムに三つの群に分け、それぞれブランク対照群、プラスミノーゲン投与群、及び溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群６匹ずつとした。慢性腎損傷モデルの構築方法は実施例１と同様である。モデル構築した当日を１日目として投薬を始めた。ブランク対照群に通常の維持食を給餌した。プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、モデル構築投薬を１０日間連続し、ブランク対照群マウスは処置しなかった。１１日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせてから１回水洗った。ＰＡＰマーカーで組織を丸で囲み、３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。５％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で３０分間ブロッキングした；時間になった後、ヒツジ血清液を廃棄し、ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）を滴加して室温で１時間インキュベーションし、ＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で呈色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複染色して、流水で５分間流した。段階的に脱水させて透徹にして封入させ、切片を顕微鏡下で２００倍にて観察した。
ＩｇＭ抗体は、アポトーシス細胞及び壊死細胞の排除において重要な役割を果たし、組織器官損傷の局所ＩｇＭ抗体のレベルは、損傷の程度と正比例に相関している^{［２９，３０］}。よって、検出した組織器官の局所ＩｇＭ抗体のレベルは該組織器官の損傷程度を反映することができる。
その結果、プラスミノーゲン投与群（図６Ｃ）マウスの腎臓ＩｇＭの陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群（図６Ｂ）より浅く、しかも範囲は対照群より小さく、着色はブランク対照マウス（図６Ａ）に非常に近いことは示されている。これは、プラスミノーゲンの注射後、糸球体損傷が明らかに改善されており、プラスミノーゲンが慢性腎損傷マウスの腎損傷に対して顕著な修復効果を持っていることを示している。

［実施例７］
実施例７は、プラスミノーゲンが慢性腎損傷マウスの腎臓フィブリンの発現を減少することに関するものである。
８～９週齢のＰＬＧ^＋／＋マウス１２匹、及びＰＬＧ^－／－マウス６匹を取り、ＰＬＧ^＋／＋マウスをランダムに二つの群に分け、それぞれプラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群６匹ずつとした。慢性腎損傷モデルの構築方法は実施例１と同様である。モデル構築した当日を１日目として投薬を始めた。モデル構築と投薬期間は４日間であり、ブランク対照群に通常の維持食を給餌した。プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、ＰＬＧ^－／－マウスは処置しなかった。５日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせてから１回水洗った。ＰＡＰマーカーで組織を丸で囲み、３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。５％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で３０分間ブロッキングした；時間になった後、ヒツジ血清液を廃棄し、ウサギ抗マウスＢｃｌ－２抗体（Ａｂｃａｍ）を滴加して４℃で終夜インキュベーションし、ＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、ＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で呈色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複染色して、流水で５分間流した。段階的に脱水させて透徹にして封入させ、切片を光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
フィブリノーゲンはフィブリンの前駆体であり、組織に損傷が存在する状況下において、生体の損傷に対する応答反応として、フィブリノーゲンはフィブリンに加水分解されて損傷部位に沈着する^{［３１，３２］}。そのため、損傷局所のフィブリンのレベルを損傷程度の一つの指標とすることができる。
その結果、溶媒ＰＢＳ投与対照群（図７Ａ）の腎フィブリンの陽性着色はプラスミノーゲン投与群マウス（図７Ｂ）より深く、しかもＰＬＧ^－／－群（図７Ｃ）の着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群より深いことは示されている。これは、プラスミノーゲンが一定の程度で腎臓組織の損傷を修復できることを示している。

［実施例８］
実施例８は、プラスミノーゲンが糖尿病マウスの腎線維症を軽減することに関するものである。
２４～２５週齢のオスｄｂ／ｄｂマウス１０匹を取り、ランダムに二つの群に分け、それぞれ溶媒ＰＢＳ投与対照群とプラスミノーゲン投与群で、各群５匹ずつとした。実験開始当日を０日目として体重を測ってから群分けし、１日目からプラスミノーゲンまたはＰＢＳを投与し、３１日間連続して投与した。プラスミノーゲン投与群マウスに２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与した。プラスミノーゲンを３１日間投与した後にマウスを殺処分して腎臓組織を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓組織をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは４μｍであり、切片を脱パラフィンさせてから１回水洗った。ＰＡＰマーカーで組織を丸で囲み、３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。５％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で３０分間ブロッキングした；時間になった後、ヒツジ血清液を廃棄し、ＩＶコラーゲンのウサギポリクローナル抗体（Ａｂｃａｍ）を滴加して４℃で終夜インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗った。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で呈色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複染色して、流水で５分間流した。段階的に脱水させて透徹にして封入させ、切片を光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
糖尿病性腎症は糖尿病の慢性合併症であり、糸球体硬化症及び腎間質性線維症はその典型的な病理学的変化である^［３４］。本発明実験の結果によって、プラスミノーゲン投与群（図８Ｂ）のＩＶコラーゲン陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群（図８Ａ）より明らかに浅いことは示されている。これは、プラスミノーゲンが糖尿病マウスの腎線維症を軽減できることを示している。

［実施例９］
実施例９は、プラスミノーゲンが糖尿病マウスの腎線維症を軽減することに関するものである。
２６週齢のオスｄｂ／ｄｂマウス１０匹を取り、ランダムに二つの群に分け、それぞれ溶媒ＰＢＳ投与対照群とプラスミノーゲン投与群で、各群５匹ずつとした。実験開始当日を０日目として体重を測ってから群分けし、１日目からプラスミノーゲンまたはＰＢＳを投与し、３５日間連続して投与した。プラスミノーゲン投与群マウスに２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与した。３６日目にマウスを殺処分して腎臓組織を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓組織をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは４μｍであり、切片を脱パラフィンさせて浸水してから重クロム酸カリウム溶液に終夜置いた。鉄ヘマトキシリンで３～５分間染色して流水で流した。１％塩酸エタノールで分別させてアンモニア水で１秒処理してから水で洗った。ポンソー酸性マゼンタ溶液にて８分間染色し、水中で素早く濯いだ。１％リンモリブデン酸水溶液で約２分間処理し、アニリンブルー溶液にて６分間複染色した。１％氷酢酸で約１分間濯いだ。無水エタノールで脱水させてキシレンで透徹にしてから封入し、切片を光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
マッソン（Ｍａｓｓｏｎ）染色は組織の線維症を示すことができる。その結果、溶媒ＰＢＳ投与対照群（図９Ａ）の腎間質に軽度の線維症があり、過形成した線維症は青色である。溶媒ＰＢＳ投与対照群と比べ、プラスミノーゲン投与群（図９Ｂ）の腎間質線維症は明らかに減少している。これは、プラスミノーゲンが糖尿病マウスの腎線維症を低下させることができることを示している。

［実施例１０］
実施例１０は、プラスミノーゲンが全身性硬化症モデルマウスの腎線維症を減少させることに関するものである。
１２週齢のＣ５７オスマウス１０匹を取り、体重をはかった後にランダムに二つの群に分け、それぞれ溶媒ＰＢＳ投与対照群とプラスミノーゲン投与群で、各群５匹ずつとした。すべてのマウスに１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でブレオマイシンを皮下注射して全身性硬化症を誘発させ^［３５］、当日からプラスミノーゲンまたはＰＢＳを投与し、その日を１日目とし、２１日間連続して投与した。プラスミノーゲン投与群マウスに１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与した。２２日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせて１回水で洗い、０．１％シリウスレッド飽和ピクリン酸で３０分間染色した後、流水で２分間流し、ヘマトキシリンで１分間染色してから流水で流し、１％塩酸エタノールで分別させてアンモニア水でブルーイングさせ、流水で流した。乾燥した後に中性ゴムに封入させ、光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
その結果、ブレオマイシンにより誘発された全身性硬化症モデルマウスにおいて、溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１０Ａ）の腎臓コラーゲン沈着がプラスミノーゲン投与群（図１０Ｂ）より明らかに多いことは示されている。これは、プラスミノーゲンが全身性硬化症マウスの腎線維症を効果的に減少させたことを示している。

［実施例１１］
実施例１１は、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルマウスの腎臓機能の修復を促進することに関するものである。
８～９週齢のＰＬＧ^＋／＋マウス１０匹、及びＰＬＧ^－／－マウス６匹を取り、慢性腎損傷モデルの構築方法は実施例１と同様である。モデル構築の当日を１日目とし、モデル構築期間は１０日間である。１１日目に眼球を摘出して採血し、遠心分離して上澄み液を取り、血清中の尿素窒素濃度を測定した。尿素窒素含有量は、尿素窒素検出キット（南京建成生物工程研究所、品目番号Ｃ０１３－２）を用い、該尿素窒素検出キットに記載された方法に従って測定した。
その結果、ＰＬＧ^＋／＋群の血清における尿素窒素濃度がＰＬＧ^－／－群より明らかに低く、しかもその差が統計学的に有意である（図１１）ことは示されている。これは、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルマウスの腎機能を顕著に改善できることを示している。

［実施例１２］
実施例１２は、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルマウスの腎臓機能の修復を促進することに関するものである。
８～９週齢のＰＬＧ^＋／＋マウス２０匹、及びＰＬＧ^－／－マウス６匹を取り、ＰＬＧ^＋／＋マウスをランダムに二つの群に分け、それぞれプラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群１０匹ずつとした。慢性腎損傷モデルの構築方法は実施例１と同様である。モデル構築の当日を１日目としてその日から投薬し、投与期間は４日間である。プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、ＰＬＧ^－／－マウスは処置しなかった。５日目に眼球を摘出して採血し、遠心分離して上澄み液を取り、血清中のクレアチニン濃度を測定した。血清クレアチニン濃度は、クレアチニン検出キット（南京建成生物工程研究所、品目番号Ｃ０１１－２）を用い、該キットに記載された方法に従って測定した。
その結果、溶媒ＰＢＳ投与対照群とプラスミノーゲン投与群の血清クレアチニン濃度がＰＬＧ^－／－群マウスより明らかに低く、しかもその差が統計学的に有意であることは示されている。また、プラスミノーゲン投与群の血清クレアチニン濃度は溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１２）より明らかに低い。これは、プラスミノーゲンが慢性腎損傷モデルマウスの腎機能を顕著に改善できることを示している。

［実施例１３］
実施例１３は、プラスミノーゲンが急性腎損傷モデルマウスの腎臓機能の修復を促進することに関するものである。
７週齢のオスＣ５７マウス９匹を取り、ランダムに二つの群に分け、プラスミノーゲン投与群で５匹、溶媒ＰＢＳ投与対照群で４匹とした。すべてのマウスに２５０ｍｇ／ｋｇ体重で一回経腹腔で葉酸（ｓｉｇｍａＡ７８７６）溶液を注射し、急性腎損傷を誘発した^［３６］。葉酸を０．３ｍоｌ／ＬＮａＨＣＯ_３に溶解した。モデル構築の当日を１日目とし、その日からプラスミノーゲンまたは溶媒ＰＢＳを投与し、プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、投与期間は７日間である。８日目に眼球を摘出して採血し、遠心分離して上澄み液を取り、血清中の尿素窒素濃度を測定した。尿素窒素含有量は、尿素窒素検出キット（南京建成生物工程研究所、品目番号Ｃ０１３－２）を用い、該尿素窒素検出キットに記載された方法に従って測定した。
その結果、プラスミノーゲン投与群の血清中の尿素窒素濃度は溶媒ＰＢＳ投与対照群より明らかに低く、しかもその差が統計学的な有意に近い（Ｐ＝０．０６）（図１３）ことは示されている。これは、プラスミノーゲンが急性腎損傷モデルマウスの腎機能を顕著に改善できることを示している。

［実施例１４］
実施例１４は、プラスミノーゲンが３％コレステロール高脂血症モデルマウスの腎脂肪沈着を低減することに関するものである。
９週齢のオスＣ５７マウス１６匹に３％コレステロール高脂肪食（南通トロフィー）を４週間給餌して高脂血症を誘発し^{［３７，３８］}、このモデルを３％コレステロール高脂血症モデルとし、モデル化後のマウスに引き続き３％コレステロール高脂肪食を与えた。また、同じ週齢のオスＣ５７マウスを５匹取ってブランク対照群とし、実験期間中に通常の維持食を給餌した。投薬の３日前に各マウスから５０μＬの血液を採取し、総コレステロールを測定し、モデルマウスを総コレステロール濃度と体重によってランダムに二つの群に分け、プラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群で８匹ずつとした。投薬し始めた日を１日目とし、プラスミノーゲン投与群マウスに１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、投与期間は３０日間である。３１日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。それぞれ１５％、３０％スクロース中において４℃で終夜沈めさせ、ＯＣＴで包埋処理を行い、凍結切片の厚みは８μｍであり、オイルレッドＯで１５分間染色し、７５％アルコールで５秒間分別し、そしてヘマトキシリンで３０秒間核を染色し、グリセリンゼラチンに封入させた。切片を光学顕微鏡下で４００倍にて観察した。
オイルレッドＯ染色は脂質沈着を示し、脂質沈着の程度を反映することができる^［３７］。その結果、プラスミノーゲン投与群（図１４Ｃ）マウスの腎脂肪沈着（矢印に表記される）は溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１４Ｂ）より明らかに少なく、しかもその差が統計学的に有意である（図１４Ｄ）。また、プラスミノーゲン投与群の脂質沈着レベルはブランク対照群マウス（図１４Ａ）に似ている。これは、プラスミノーゲンが高脂血症モデルマウスの腎臓における脂肪の沈着を低減でき、それによって脂肪沈着による腎損傷を減少させることができることを示している。

［実施例１５］
実施例１５は、プラスミノーゲンが葉酸急性腎損傷モデルマウスの腎損傷を改善することに関するものである。
７週齢のオスＣ５７マウス１５匹を取り、ランダムに三つの群に分け、ブランク対照群で３匹、プラスミノーゲン投与群で７匹、溶媒ＰＢＳ投与対照群で５匹とした。プラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群マウスに２５０ｍｇ／ｋｇ体重で一回経腹腔で葉酸（ｓｉｇｍａＡ７８７６）溶液を注射し、急性腎損傷モデルを誘発し^［３６］、ブランク対照群に一回経腹腔で同じ体積のＮａＨＣＯ_３溶液を注射した。葉酸を０．３ｍоｌ／ＬＮａＨＣＯ_３に溶解した。モデル構築の当日を１日目とし、その日からプラスミノーゲンまたは溶媒ＰＢＳを投与し、プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈により投与し、投与期間は７日間である。８日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせさらに浸水してヘマトキシリン及びエオシンで染色（ＨＥ染色）させ、１％塩酸エタノールで分別させ、アンモニア水でブルーイングさせ、さらにアルコールで段階的に脱水させてキシレンで透徹にし、中性ゴムに封入させ、切片を光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
その結果、ブランク対照群（図１５Ａ）の腎臓核は円形または楕円形であり、細胞質は赤色に染色され、糸球体及び腎尿細管は正常な形態を呈する。溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１５Ｂ）では腎に大部分の腎尿細管上皮細胞が扁平化し（太い矢印に表記される）、刷子縁が剥がれ、一部の核濃縮が観察され、一部の腎尿細管のみにわずかに染色された細胞質が呈され、一部の腎尿細管には膿キャスト（細い矢印に表記される）も見えられ、糸球体及び腎間質性に軽度の炎症細胞浸潤が示されている。溶媒ＰＢＳ投与対照群と比べ、プラスミノーゲン投与群（図１５Ｃ）の腎尿細管拡張及び上皮細胞扁平化は明らかに改善され、腎尿細管細胞質の大部分は赤色に染色され、膿キャストは見られていない。これは、プラスミノーゲンが葉酸によって誘発された急性腎損傷を改善できることを示している。

［実施例１６］
実施例１６は、プラスミノーゲンが葉酸急性腎損傷モデルマウスの腎臓Ｂｃｌ－２の発現を促進することに関するものである。
７週齢のオスＣ５７マウス１２匹を取り、ランダムに二つの群に分け、プラスミノーゲン投与群で７匹、溶媒ＰＢＳ投与対照群で５匹とした。すべてのマウスに２５０ｍｇ／ｋｇ体重で一回経腹腔で葉酸（ｓｉｇｍａＡ７８７６）溶液を注射し、急性腎損傷を誘発した^［３６］。葉酸を０．３ｍоｌ／ＬＮａＨＣＯ_３に溶解した。モデル構築の当日を１日目とし、その日からプラスミノーゲンまたは溶媒ＰＢＳを投与し、プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、投与期間は７日間である。８日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせて浸水してから１回水洗った。ＰＡＰマーカーで組織を丸で囲み、３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。５％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で３０分間ブロッキングした；時間になった後、ヒツジ血清液を廃棄し、ウサギ抗マウスＢｃｌ－２抗体（Ａｂｃａｍ）を滴加して４℃で終夜インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で呈色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複染色して、流水で５分間流した。アルコールで段階的に脱水させてキシレンで透徹にし、中性ゴムに封入させ、切片を光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
Ｂｃｌ－２免疫組織化学的結果によって、プラスミノーゲン投与群（図１６Ｂ）の腎臓Ｂｃｌ－２の陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１６Ａ）より明らかに深く、しかもその差が統計学的に有意である（図１６Ｃ）ことは示されている。これは、プラスミノーゲンが急性腎損傷モデルマウスの腎細胞アポトーシス抑制タンパクＢｃｌ－２の発現を促進でき、それによって急性腎損傷マウスの腎組織細胞をアポトーシスから保護することに寄与できることを示している。

［実施例１７］
実施例１７は、プラスミノーゲンが葉酸による急性腎損傷モデルマウスの腎損傷を低減することに関するものである。
７週齢のオスＣ５７マウス１２匹を取り、ランダムに二つの群に分け、プラスミノーゲン投与群で７匹、溶媒ＰＢＳ投与対照群で５匹とした。すべてのマウスに２５０ｍｇ／ｋｇ体重で一回経腹腔で葉酸（ｓｉｇｍａＡ７８７６）溶液を注射し、急性腎損傷を誘発した^［３６］。葉酸を０．３ｍоｌ／ＬＮａＨＣＯ_３溶液に溶解した。モデル構築の当日を１日目とし、その日からプラスミノーゲンまたは溶媒ＰＢＳを投与し、プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、投与期間は７日間である。８日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。固定後の腎臓をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせて浸水してから１回水洗った。ＰＡＰマーカーで組織を丸で囲み、３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、０．０１ＭＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。５％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で３０分間ブロッキングした；時間になった後、ヒツジ血清液を廃棄し、ヤギ抗マウスＩｇＭ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）を室温で１時間インキュベーションし、ＰＢＳで２回洗い、毎回５分間であった。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で呈色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複染色して、流水で５分間流した。段階的に脱水させて透徹にし、切片を光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
その結果、プラスミノーゲン投与群（図１７Ｂ）マウスの腎臓ＩｇＭの陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１７Ａ）より浅く、しかも範囲は対照群より小さいことは示されている。これは、プラスミノーゲンの注射後、腎臓ＩｇＭの発現は明らかに低下し、プラスミノーゲンが葉酸による急性腎損傷マウスの腎損傷を効果的に低減できることを示している。

［実施例１８］
実施例１８は、プラスミノーゲンが３％コレステロール高脂血症モデルマウスの腎線維症を低減することに関するものである。
９週齢のオスＣ５７マウス１６匹に３％コレステロール高脂肪食（南通トロフィー）を４週間給餌して高脂血症を誘発し^{［３７，３８］}、このモデルを３％コレステロール高脂血症モデルとし、モデル化後のマウスに引き続き３％コレステロール高脂肪食を与えた。また、同じ週齢のオスＣ５７マウスを５匹取ってブランク対照群とし、実験期間中に通常の維持食を給餌した。投薬の３日前に各マウスから５０μＬの血液を採取し、総コレステロールを測定し、モデルマウスを総コレステロール濃度と体重によってランダムに二つの群に分け、プラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群で８匹ずつとした。投薬し始めた日を１日目とし、プラスミノーゲン投与群マウスに１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、投与期間は３０日間である。３１日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４～４８時間固定を行った。固定後の組織をアルコールで段階的に脱水させ及びキシレンで透徹化処理した後にパラフィンで包埋処理を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせて浸水して１回水で洗い、０．１％シリウスレッド飽和ピクリン酸で３０分間染色した後、流水で２分間流し、ヘマトキシリンで１分間染色してから流水で流し、１％塩酸エタノールで分別させてアンモニア水でブルーイングさせ、流水で流した。乾燥した後に中性ゴムに封入させ、光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
その結果、プラスミノーゲン投与群（図１８Ｃ）の腎臓コラーゲン沈着（矢印に表記される）は溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１８Ｂ）より明らかに少なく、しかもその差が統計学的に有意である（図１８Ｄ）。プラスミノーゲン投与群の線維症は基本的に正常レベルに回復している（図１８Ａ）。これは、プラスミノーゲンが３％コレステロール高脂血症モデルマウスの腎線維症を効果的に減少させることができることを示している。

［実施例１９］
実施例１９は、プラスミノーゲンが虚血再灌流による急性腎損傷モデルマウスの腎損傷を低減することに関するものである。
７～９週齢のオスＰＬＧ^＋／＋マウス９匹を取り、ランダムに三つの群に分け、偽手術群、プラスミノーゲン投与群、及び溶媒ＰＢＳ投与対照群で、各群３匹ずつとした。すべてのマウスに５０ｍｇ／ｋｇ体重で経腹腔でペントバルビタールナトリウムを注射して麻酔した。プラスミノーゲン投与群と溶媒ＰＢＳ投与対照群マウスの腹部にすき間を開け、腎臓を露出させ、両側の動脈と静脈を分離し、両側の動脈と静脈を血管クランプでクリップし、クリップした後に腎臓を腹腔に移動させて創傷を４５分間閉じた。時間になった後腎臓を再び露出させ、血管クランプを取り除き、腎臓の状況を観察し、再灌流を確定した後に創傷を縫合した。偽手術群では腹部にすき間を開け、虚血処理をせずに腎臓を露出させ、時間になった後に創傷を縫合した^［３９］。術後、各マウスに３７℃の生理食塩水１ｍＬを経腹腔注射した。手術中に体温を３６．５～３８℃に維持した。モデル構築の当日を１日目とし、その日からプラスミノーゲンまたは溶媒ＰＢＳを投与し始め、プラスミノーゲン投与群に１ｍｇ／０．１ｍＬ／匹／日でプラスミノーゲンを尾静脈注射により投与し、溶媒ＰＢＳ投与対照群にも同じ体積のＰＢＳを尾静脈注射により投与し、偽手術群マウスには注射処置をしなかった。投与期間は７日間である。８日目にマウスを殺処分して腎臓を取り、４％パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行った。組織切片の厚みは３μｍであり、切片を脱パラフィンさせて浸水してヘマトキシリン及びエオシンで染色（ＨＥ染色）させ、１％塩酸エタノールで分別させ、アンモニア水でブルーイングさせ、さらにアルコールで段階的に脱水させてキシレンで透徹にし、中性ゴムに封入させ、光学顕微鏡下で２００倍にて観察した。
その結果、偽手術群（図１９Ａ）の糸球体毛細血管は開存的であり、腎尿細管細胞質は赤色に染色され、正常な腎尿細管形態を呈する。溶媒ＰＢＳ投与対照群（図１９Ｂ）の糸球体には軽度の炎症細胞浸潤（三角で表記されている）が見えられ、腎間質に大量の炎症細胞浸潤が見えられ、一部の腎尿細管に膿キャスト（細い矢印に表記される）があり、少量の腎尿細管核濃縮、大面積の上皮細胞扁平化（太い矢印に表記される）、腎尿細管の拡張が見えられる。溶媒ＰＢＳ投与対照群と比べ、プラスミノーゲン投与群（図１９Ｃ）には、少量の腎尿細管上皮のみが扁平化しており、ほとんどの腎尿細管は正常な腎尿細管の形態に回復しており、細胞質は赤色に染色され、明らかな腎尿細管萎縮は発見されず、腎間質に軽度の炎症細胞浸潤のみがあり、偽手術群の形態に近い。これは、プラスミノーゲンが虚血再灌流による急性腎損傷モデルマウスの腎損傷を改善できることを示している。

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Claims

有効量の、配列番号２のプラスミノーゲンおよびそれと少なくとも９０％のアミノ酸同一性を有するその保存的置換バリアントからなる群から選択されるプラスミノーゲンを含む、化学療法薬物によって引き起こされる被験者の腎組織損傷を予防及び／または治療するための薬物組成物。
前記薬物は腎毒性薬物である、請求項１に記載の薬物組成物。
前記薬物は腎臓から***される薬物である、請求項１または２に記載の薬物組成物。
前記薬物はシスプラチンである、請求項１または２に記載の薬物組成物。
前記プラスミノーゲンは、損傷した腎組織の修復を促進する、腎臓機能の回復を促進する、損傷した腎組織の線維性を軽減する、及び／または損傷した腎組織のアポトーシスを軽減する、請求項１～４のいずれか１項に記載の薬物組成物。
前記薬物によって引き起こされる被験者の腎組織損傷は、急性腎組織損傷または慢性腎組織損傷である、請求項１～５のいずれか１項に記載の薬物組成物。
前記プラスミノーゲンは、腎臓機能の回復を促進する、請求項１～６のいずれか１項に記載の薬物組成物。
前記プラスミノーゲンは、腎臓による尿素窒素及び／またはクレアチニンの排除を促進する、請求項１～７のいずれか１項に記載の薬物組成物。