JP7197106B2 - lipid nanoparticles - Google Patents

Description

本発明は、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞への薬効成分のキャリアとして有用な脂質ナノ粒子に関する。 The present invention relates to lipid nanoparticles useful as carriers of active ingredients to cells expressing hyaluronic acid receptors.

がん細胞へと効率的な薬剤送達を可能とするために、がん細胞に積極的に取り込まれる機能を持ったドラッグデリバリーシステムの開発が盛んに行われている。がん細胞が選択的に発現する受容体として、ヒアルロン酸受容体であるＣＤ４４が報告されている（非特許文献１及び２参照。）。このがん細胞におけるＣＤ４４の選択的発現を利用して、薬剤を含有するナノ粒子にヒアルロン酸を結合させることにより、ＣＤ４４を持つがん細胞に選択的に薬剤送達を行う手法が試みられてきた。 In order to enable efficient drug delivery to cancer cells, drug delivery systems with a function of being actively taken up by cancer cells are being actively developed. CD44, which is a hyaluronic acid receptor, has been reported as a receptor selectively expressed by cancer cells (see Non-Patent Documents 1 and 2). Taking advantage of this selective expression of CD44 in cancer cells, attempts have been made to selectively deliver drugs to CD44-bearing cancer cells by binding hyaluronic acid to drug-containing nanoparticles. .

ヒアルロン酸はＮ－アセチルグルコサミンとグルクロン酸の二糖が連結した構造を有する多糖である。従来は、この構造のうち、グルクロン酸のカルボン酸がナノ粒子へヒアルロン酸を相互作用させるための特徴的構造として用いられてきた。例えば、メソポーラスシリカからなるナノ粒子表面上にアミノ基を付与し、ヒアルロン酸のカルボン酸との脱水縮合によりアミド結合を形成させて、ナノ粒子表面にヒアルロン酸を結合させる方法が開示されている（非特許文献３参照。）。また、リポソームを用いた例としては、リポソームを構成する脂質に極性部にアミノ基を含むホスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）を混合してリポソームを形成させたのちに、リポソーム表面上のアミノ基とヒアルロン酸を脱水縮合により結合させる手法が用いられている（非特許文献４参照。）。また、Suraceらはヒアルロン酸のカルボン酸に対してＰＥを結合させた誘導体を予め合成し、これをもってリポソームの構成脂質として加える方法を提唱している（非特許文献５参照。）。 Hyaluronic acid is a polysaccharide having a structure in which disaccharides of N-acetylglucosamine and glucuronic acid are linked. Conventionally, among these structures, the carboxylic acid of glucuronic acid has been used as a characteristic structure for allowing nanoparticles to interact with hyaluronic acid. For example, a method of attaching an amino group to the surface of a nanoparticle made of mesoporous silica, forming an amide bond through dehydration condensation of hyaluronic acid with a carboxylic acid, and binding hyaluronic acid to the nanoparticle surface has been disclosed ( See Non-Patent Document 3). Further, as an example using a liposome, phosphatidylethanolamine (PE) containing an amino group in the polar part is mixed with a lipid constituting the liposome to form a liposome, and then the amino group on the surface of the liposome and hyaluronic acid are mixed. are combined by dehydration condensation (see Non-Patent Document 4). In addition, Surace et al. have proposed a method of preliminarily synthesizing a derivative in which PE is bound to a carboxylic acid of hyaluronic acid and adding it as a constituent lipid of a liposome (see Non-Patent Document 5).

一方で、ヒアルロン酸中のグルクロン酸が持つ負電荷に着目する研究もある。El Kechaiらはリポソームを構成する脂質として正電荷を有する脂質ステアリルアミンを添加しておき、リポソーム形成後に負電荷を有するヒアルロン酸を単純混合することによって複合体形成させている（非特許文献６参照。）。Jiangらはリポソームを構成する脂質に正電荷を有するアルギニンのオリゴ体と脂質の結合体を予め脂質に加えてリポソームを形成することで、上記と同様に単純混合によるヒアルロン酸とナノ粒子表面を相互作用させている（非特許文献７参照。）。 On the other hand, there is also research focusing on the negative charge of glucuronic acid in hyaluronic acid. El Kechai et al. added a positively charged lipid stearylamine as a lipid constituting the liposome, and formed a complex by simply mixing negatively charged hyaluronic acid after liposome formation (see Non-Patent Document 6). .). Jiang et al. formed liposomes by adding positively charged arginine oligo- and lipid conjugates to the lipids constituting the liposomes. It works (see Non-Patent Document 7).

Ponta et al., Nature Reviews Molecular Cell Biology，2003，vol.4, p.33-45.Ponta et al., Nature Reviews Molecular Cell Biology, 2003, vol.4, p.33-45. Pozza et al., Biochimica et Biophysica Acta, 2013, vol.1828, p.1396-1404.Pozza et al., Biochimica et Biophysica Acta, 2013, vol.1828, p.1396-1404. He et al., Biomaterials，2012，vol.33, p.4392-4402.He et al., Biomaterials，2012，vol.33, p.4392-4402. Peer et al., Neoplasia，2004，vol.6, p.343-353.Peer et al., Neoplasia, 2004, vol.6, p.343-353. Surace et al., Molecular Pharmaceutics，2009，vol.6, p.1062-1073.Surace et al., Molecular Pharmaceutics, 2009, vol.6, p.1062-1073. El Kechai et al., International Journal of Pharmaceutics，2015，vol.487, p.187-196.El Kechai et al., International Journal of Pharmaceutics, 2015, vol.487, p.187-196. Jiang et al., Biomaterials，2012，vol.33, p.9246-9258.Jiang et al., Biomaterials，2012，vol.33, p.9246-9258. Banerji et al., Nature Structural & Molecular Biology，2007，vol.14, p.234-239.Banerji et al., Nature Structural & Molecular Biology, 2007, vol.14, p.234-239. Li et al., Biochimica et Biophysica Acta, 2001, vol.1513, p.193-206.Li et al., Biochimica et Biophysica Acta, 2001, vol.1513, p.193-206. Arpicco et al., European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics，2013，vol.85，p.373-380.Arpicco et al., European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics, 2013, vol.85, p.373-380.

ヒアルロン酸は生体内に天然に存在する物質であり安全性は高いことから、生体内で適合性の高い標的化リガンドとして非常に有用である。そのため、多くのグループが上記のような構造を有するナノ粒子を作成しているが、未だ高効率で薬剤をがん細胞に送達可能なドラッグデリバリーシステムは存在しない。この理由として、上記の修飾方法ではヒアルロン酸とＣＤ４４の相互作用が不十分である可能性が挙げられる。実際、ヒアルロン酸とＣＤ４４の相互作用には、グルクロン酸中のカルボン酸とＣＤ４４のＡｌａ１０２、Ａｌａ１０３との水素結合が重要であることが報告されている（非特許文献８参照。）。上記のようにグルクロン酸中のカルボン酸をナノ粒子との修飾に使用してしまうことで、ヒアルロン酸とＣＤ４４の結合活性が失われていることが予想される。また、一般的に負電荷を帯びたナノ粒子の取り込みは著しく悪いことが報告されており、ヒアルロン酸を修飾したナノ粒子は強い負電荷を帯び効率的な細胞内取り込み機構が作用しない。このように、ヒアルロン酸の構造上受容体との相互作用に重要な部位を維持したままナノ粒子表面に提示し、かつ負電荷による取り込みの阻害を克服するヒアルロン酸のナノ粒子の修飾方法の開発は必要不可欠である。 Since hyaluronic acid is a substance that naturally exists in vivo and is highly safe, it is very useful as a highly compatible targeting ligand in vivo. Therefore, many groups have created nanoparticles having the above structure, but there is still no drug delivery system capable of delivering drugs to cancer cells with high efficiency. A possible reason for this is the insufficient interaction between hyaluronic acid and CD44 in the modification method described above. In fact, it has been reported that the hydrogen bond between the carboxylic acid in glucuronic acid and Ala102 and Ala103 of CD44 is important for the interaction between hyaluronic acid and CD44 (see Non-Patent Document 8). It is expected that the binding activity between hyaluronic acid and CD44 is lost by using the carboxylic acid in glucuronic acid for modification with nanoparticles as described above. In addition, it has been reported that negatively charged nanoparticles are generally remarkably poorly uptaken, and hyaluronic acid-modified nanoparticles are strongly negatively charged, and the efficient intracellular uptake mechanism does not work. Thus, development of a method for modifying hyaluronic acid nanoparticles that presents them on the nanoparticle surface while maintaining the structurally important sites for interaction with the receptors of hyaluronic acid and overcomes the inhibition of uptake due to negative charges. is essential.

本発明は、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞への薬効成分のキャリアとして有用な脂質ナノ粒子を提供することを目的とする。 An object of the present invention is to provide lipid nanoparticles that are useful as carriers of active ingredients for cells expressing hyaluronic acid receptors.

本発明者らは、ヒアルロン酸の末端の還元糖であるＮ－アセチルグルコサミンの水酸基に、直鎖状の疎水性基を備える中性脂質を直接又は間接的に連結させたヒアルロン酸誘導体が、ヒアルロン酸とＣＤ４４との結合活性を保持した脂質誘導体であること、このヒアルロン酸誘導体を脂質ナノ粒子を構成する脂質分子として用いることにより、ヒアルロン酸受容体との相互作用に重要な構造が粒子表面に提示されており、ＣＤ４４を持つ細胞への取り込み効率に優れた脂質ナノ粒子が得られることを見出し、本発明を完成させた。 The present inventors have found that a hyaluronic acid derivative obtained by directly or indirectly linking a neutral lipid having a linear hydrophobic group to the hydroxyl group of N-acetylglucosamine, which is a reducing sugar at the terminal of hyaluronic acid, is hyaluronic acid. By using a lipid derivative that retains the binding activity between acid and CD44, and by using this hyaluronic acid derivative as a lipid molecule that constitutes a lipid nanoparticle, a structure that is important for interaction with a hyaluronic acid receptor is formed on the particle surface. The present inventors have completed the present invention based on the finding that lipid nanoparticles can be obtained that are shown and have excellent uptake efficiency into CD44-bearing cells.

すなわち、本発明は、以下の脂質ナノ粒子を提供するものである。
［１］ ４０～１００ｋＤａのヒアルロン酸の末端の還元糖であるＮ－アセチルグルコサミンの水酸基に、直鎖状の疎水性基を備える中性脂質が直接又は間接的に連結されたヒアルロン酸誘導体を含有し、
前記中性脂質が、１本の飽和脂肪酸残基と１本の不飽和脂肪酸残基を備えるジアシルグリセロリン脂質である、脂質ナノ粒子。
［２］ 脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する前記ヒアルロン酸誘導体の割合が０．５～１５モル％である、前記［１］の脂質ナノ粒子。
［３］ さらに、カチオン性脂質を含む、前記［１］又は［２］の脂質ナノ粒子。
［４］ さらに、中性脂質を含む、前記［１］～［３］のいずれかの脂質ナノ粒子。
［５］ さらに、グリセロリン脂質及びスフィンゴリン脂質を含む、前記［１］～［４］のいずれかの脂質ナノ粒子。
［６］ 低分子化合物、低分子核酸、及びペプチドからなる群より選択される１種以上を含有する、前記［１］～［５］のいずれかの脂質ナノ粒子。
［７］ 薬効成分を含有しており、標的細胞へ前記薬効成分を送達するキャリアである、前記［１］～［６］のいずれかの脂質ナノ粒子。
［８］ 前記標的細胞が、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞である、前記［７］の脂質ナノ粒子。
［９］ 抗がん剤を含有しており、悪性胸膜中皮腫／胸膜播種した肺がんの治療に用いられる、前記［１］～［８］のいずれかの脂質ナノ粒子。 Specifically, the present invention provides the following lipid nanoparticles.
[1] Contains a hyaluronic acid derivative in which a neutral lipid having a linear hydrophobic group is directly or indirectly linked to the hydroxyl group of N-acetylglucosamine, which is a terminal reducing sugar of 40 to 100 kDa hyaluronic acid. death,
Lipid nanoparticles, wherein the neutral lipid is a diacylglycerophospholipid with one saturated fatty acid residue and one unsaturated fatty acid residue.
[2] The lipid nanoparticles of [1], wherein the hyaluronic acid derivative accounts for 0.5 to 15 mol% of the total amount of lipids constituting the lipid nanoparticles.
[3] The lipid nanoparticles of [1] or [2], further comprising a cationic lipid.
[4] The lipid nanoparticles of any one of [1] to [3], further comprising a neutral lipid.
[5] The lipid nanoparticles of any one of [1] to [4], further comprising glycerophospholipid and sphingophospholipid.
[6] The lipid nanoparticles of any one of [1] to [5], containing one or more selected from the group consisting of low-molecular-weight compounds, low-molecular-weight nucleic acids, and peptides.
[7] The lipid nanoparticle according to any one of [1] to [6], which contains a medicinal ingredient and is a carrier that delivers the medicinal ingredient to target cells.
[8] The lipid nanoparticles of [7], wherein the target cells are cells expressing hyaluronic acid receptors.
[9] The lipid nanoparticle according to any one of [1] to [8], which contains an anticancer agent and is used for the treatment of malignant pleural mesothelioma/pleural dissemination lung cancer.

本発明に係る脂質ナノ粒子は、粒子表面にヒアルロン酸受容体との相互作用に重要なグルクロン酸に由来するカルボン酸が、遊離のヒアルロン酸と同様に高い自由度で提示されており、ＣＤ４４を持つ細胞への取り込み効率に優れている。このため、当該脂質ナノ粒子に薬効成分を内包させることにより、がん細胞などのＣＤ４４を持つ細胞への選択的送達能に優れた薬剤キャリアナノ粒子が得られる。 In the lipid nanoparticles according to the present invention, carboxylic acid derived from glucuronic acid, which is important for interaction with hyaluronic acid receptors, is presented on the particle surface with a high degree of freedom similar to free hyaluronic acid. Efficient uptake into cells with Therefore, by encapsulating a medicinal ingredient in the lipid nanoparticles, drug carrier nanoparticles with excellent selective delivery to cells having CD44 such as cancer cells can be obtained.

実施例１において、ＨＭＭ３細胞における、非修飾蛍光標識リポソーム、ＨＡ混合蛍光標識リポソーム、及びＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）の測定結果を、リポソームのＤＯＴＡＰの含有量ごとに示した図である。In Example 1, the results of measurement of the amount of uptake (fluorescence intensity, AU) of unmodified fluorescently labeled liposomes, mixed HA fluorescently labeled liposomes, and HA-PE modified fluorescently labeled liposomes in HMM3 cells were compared with DOTAP of the liposomes. It is the figure shown for every content. 実施例１において、Ｈ２２６細胞における、非修飾蛍光標識リポソーム、ＨＡ混合蛍光標識リポソーム、及びＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）の測定結果を、リポソームのＤＯＴＡＰの含有量ごとに示した図である。In Example 1, the results of measurement of the amount of uptake (fluorescence intensity, AU) of unmodified fluorescently labeled liposomes, mixed HA fluorescently labeled liposomes, and HA-PE modified fluorescently labeled liposomes in H226 cells were compared with DOTAP of the liposomes. It is the figure shown for every content. 実施例１において、ＨＭＭ３細胞における、非修飾蛍光標識リポソーム及びＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）の測定結果を、リポソームが含有するカチオン性脂質ごとに示した図である。In Example 1, the measurement results of the amount of uptake (fluorescence intensity, AU) of unmodified fluorescently labeled liposomes and HA-PE modified fluorescently labeled liposomes in HMM3 cells were shown for each cationic lipid contained in the liposomes. It is a diagram. 実施例１において、Ｈ２２６細胞における、非修飾蛍光標識リポソーム及びＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）の測定結果を、リポソームが含有するカチオン性脂質ごとに示した図である。In Example 1, the measurement results of the amount of uptake (fluorescence intensity, AU) of unmodified fluorescently labeled liposomes and HA-PE modified fluorescently labeled liposomes in H226 cells were shown for each cationic lipid contained in the liposomes. It is a diagram. 実施例１において、Ｈ２２６細胞における、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）による修飾量（モル％）を変化させた際のＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）の変化を示した図である。In Example 1, changes in the uptake amount (fluorescence intensity, AU) of HA-PE-modified fluorescently labeled liposomes in H226 cells when the modification amount (mol%) with HA-PE (SOPE) was changed. It is a figure showing. 実施例１において、ＨＭＭ１細胞、ＨＭＭ３細胞、及びＨ２２６細胞における、非修飾蛍光標識リポソーム及びＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）の測定結果を示した図である。1 is a diagram showing the measurement results of the amount of uptake (fluorescence intensity, AU) of unmodified fluorescent-labeled liposomes and HA-PE-modified fluorescent-labeled liposomes in HMM1 cells, HMM3 cells, and H226 cells in Example 1. FIG. . 実施例１において、Ｈ２２６細胞における、ＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームの相対取り込み量の測定結果を、リポソームが含有するＨＡ－ＰＥ体の含有量（モル％）及びヒアルロン酸の大きさ（ｋＤａ）ごとに示した図である。In Example 1, the relative uptake amount of HA-PE-modified fluorescently labeled liposomes in H226 cells was measured for each HA-PE body content (mol%) contained in the liposomes and the size (kDa) of hyaluronic acid. is a diagram shown in FIG. 実施例１において、非修飾蛍光標識リポソーム（左）又はＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソーム（右）を取り込ませたＨ２２６細胞の蛍光画像である。FIG. 2 shows fluorescence images of H226 cells loaded with unmodified fluorescently labeled liposomes (left) or HA-PE modified fluorescently labeled liposomes (right) in Example 1. FIG. 実施例２において、ＣＤＤＰ内封非修飾リポソーム、ＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム、及びフリーのＣＤＤＰを取り込ませたＨＭＭ３細胞の細胞生存率（％）の測定結果を示した図である。2 is a diagram showing the measurement results of cell viability (%) of HMM3 cells into which CDDP-encapsulating unmodified liposomes, CDDP-encapsulating HA-PE-modified liposomes, and free CDDP were incorporated in Example 2. FIG. 実施例２において、ＣＤＤＰ内封非修飾リポソーム、ＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム、及びフリーのＣＤＤＰを取り込ませたＨ２２６細胞の細胞生存率（％）の測定結果を示した図である。FIG. 10 is a diagram showing measurement results of cell viability (%) of H226 cells into which CDDP-encapsulating unmodified liposomes, CDDP-encapsulating HA-PE-modified liposomes, and free CDDP were incorporated in Example 2. FIG. 実施例２において、ＣＤＤＰを内封していないＨＡ－ＰＥ修飾リポソームを取り込ませたＨＭＭ３細胞の細胞生存率（％）の測定結果を示した図である。FIG. 2 is a diagram showing the measurement results of cell viability (%) of HMM3 cells into which HA-PE modified liposomes not encapsulating CDDP were incorporated in Example 2. FIG. 実施例２において、ＣＤＤＰを内封していないＨＡ－ＰＥ修飾リポソームを取り込ませたＨ２２６細胞の細胞生存率（％）の測定結果を示した図である。2 is a diagram showing the measurement results of cell viability (%) of H226 cells incorporated with HA-PE modified liposomes not encapsulating CDDP in Example 2. FIG. 実施例３において、ＰＢＳ、ＣＤＤＰ単剤、又はＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームを投与した悪性胸膜中皮腫胸腔内播種マウスの生存率（％）の経時的変化を示した図である。FIG. 10 is a diagram showing temporal changes in the survival rate (%) of malignant pleural mesothelioma intrathoracic disseminated mice to which PBS, CDDP single agent, or CDDP-encapsulating HA-PE-modified liposomes were administered in Example 3. FIG.

本発明に係る脂質ナノ粒子は、表面が脂質膜によって被覆されているナノ粒子であり、この表面の脂質膜を構成する脂質分子の一部に、ヒアルロン酸に中性脂質が連結されたヒアルロン酸誘導体を含む。ヒアルロン酸誘導体に由来するヒアルロン酸が、ヒアルロン酸受容体と相互作用することにより、このヒアルロン酸誘導体を含む脂質ナノ粒子は、ヒアルロン酸誘導体を発現している細胞内に取り込まれる。 The lipid nanoparticles according to the present invention are nanoparticles whose surface is coated with a lipid membrane, and hyaluronic acid in which a neutral lipid is linked to hyaluronic acid in a part of the lipid molecules constituting the lipid membrane on the surface. Including derivatives. When hyaluronic acid derived from hyaluronic acid derivatives interacts with hyaluronic acid receptors, lipid nanoparticles containing this hyaluronic acid derivative are incorporated into cells expressing the hyaluronic acid derivative.

［ヒアルロン酸誘導体］
本発明に係る脂質ナノ粒子は、ヒアルロン酸の末端の還元糖であるＮ－アセチルグルコサミンの水酸基に、直鎖状の疎水性基を備える中性脂質が直接又は間接的に連結されたヒアルロン酸誘導体を含有する。このヒアルロン酸誘導体（以下、「本発明に係るヒアルロン酸誘導体」ということがある。）は、中性脂質に由来する直鎖状の疎水性基部分が脂質ナノ粒子の粒子表面を構成する脂質膜に埋まっており、ヒアルロン酸部分が粒子表面に構造上十分な自由度で露出している。このため、本発明に係る脂質ナノ粒子は、従来の、粒子表面にヒアルロン酸を単に静電的に付着させた脂質ナノ粒子や、ヒアルロン酸がグルクロン酸由来のカルボキシル基で脂質ナノ粒子の粒子表面を構成する脂質分子に結合している脂質ナノ粒子よりも、ヒアルロン酸受容体との結合活性が高く、ヒアルロン酸受容体を細胞表面に備える細胞へ選択的にかつ効率よく取り込まれる。 [Hyaluronic Acid Derivative]
The lipid nanoparticles according to the present invention are hyaluronic acid derivatives in which a neutral lipid having a linear hydrophobic group is directly or indirectly linked to the hydroxyl group of N-acetylglucosamine, which is a reducing sugar at the terminal of hyaluronic acid. contains This hyaluronic acid derivative (hereinafter sometimes referred to as "hyaluronic acid derivative according to the present invention") is a lipid membrane in which a linear hydrophobic group portion derived from a neutral lipid constitutes the particle surface of a lipid nanoparticle. , and the hyaluronic acid portion is exposed on the particle surface with a sufficient degree of structural freedom. For this reason, the lipid nanoparticles according to the present invention are conventional lipid nanoparticles in which hyaluronic acid is simply electrostatically attached to the particle surface, or lipid nanoparticles in which hyaluronic acid is a carboxyl group derived from glucuronic acid. It has a higher binding activity with hyaluronic acid receptors than lipid nanoparticles bound to lipid molecules that constitute , and is selectively and efficiently incorporated into cells with hyaluronic acid receptors on the cell surface.

本発明に係るヒアルロン酸誘導体は、ヒアルロン酸の末端の還元糖であるＮ－アセチルグルコサミンの水酸基に、直鎖状の疎水性基を備える中性脂質を連結させることにより得られる。ヒアルロン酸と中性脂質は、直接連結させてもよく、間接的に連結させてもよい。ヒアルロン酸の末端のＮ－アセチルグルコサミンの水酸基と中性脂質とが連結基により間接的に連結されている場合、当該連結基としては、本発明の効果を損なわないものであれば特に限定されるものではなく、例えば、ペプチド鎖、糖鎖、ポリエチレングリコール（ＰＯＥ）鎖、炭化水素鎖、核酸鎖等を用いることができ、これらの２種以上を、直接、又はエーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、シリルエーテル結合、アミド結合、カルボニル基、シロキサン結合等の基を介して連結させた基であってもよい。 The hyaluronic acid derivative according to the present invention is obtained by linking a neutral lipid having a linear hydrophobic group to the hydroxyl group of N-acetylglucosamine, which is a terminal reducing sugar of hyaluronic acid. Hyaluronic acid and neutral lipids may be directly or indirectly linked. When the hydroxyl group of N-acetylglucosamine at the terminal of hyaluronic acid and the neutral lipid are indirectly linked by a linking group, the linking group is particularly limited as long as it does not impair the effects of the present invention. Instead of things, for example, peptide chains, sugar chains, polyethylene glycol (POE) chains, hydrocarbon chains, nucleic acid chains, etc. can be used, and two or more of these can be used directly, or ether bonds, thioether bonds, ester bonds , a silyl ether bond, an amide bond, a carbonyl group, or a siloxane bond.

ヒアルロン酸の末端のＮ－アセチルグルコサミンの水酸基に連結させる中性脂質としては、本発明のヒアルロン酸誘導体が脂質ナノ粒子の粒子表面の脂質膜に固定されるための足場となり得る直鎖状の疎水性基を備える中性脂質であれば、特に限定されるものではない。直鎖状の疎水性基が脂質膜を構成する他の脂質分子の疎水性部位と相互作用することにより、本発明に係るヒアルロン酸誘導体は、脂質膜中に安定して存在することができる。脂質ナノ粒子を構成する他の脂質分子との相互作用の点から、当該直鎖状の疎水性基としては、直鎖状の炭化水素基を含む基であることが好ましく、脂肪酸残基であることがより好ましい。 As the neutral lipid to be linked to the hydroxyl group of N-acetylglucosamine at the terminal of hyaluronic acid, a linear hydrophobic chain that can serve as a scaffold for fixing the hyaluronic acid derivative of the present invention to the lipid membrane on the particle surface of the lipid nanoparticle. It is not particularly limited as long as it is a neutral lipid having a sexual group. The hyaluronic acid derivative according to the present invention can stably exist in the lipid membrane by interaction of the linear hydrophobic group with the hydrophobic sites of other lipid molecules that constitute the lipid membrane. From the viewpoint of interaction with other lipid molecules that constitute the lipid nanoparticles, the linear hydrophobic group is preferably a group containing a linear hydrocarbon group, such as a fatty acid residue. is more preferable.

本発明に係るヒアルロン酸誘導体を構成する中性脂質としては、脂質膜の構成成分として汎用されていることから、グリセロ脂質又はスフィンゴ脂質が好ましい。グリセロ脂質としては、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファリジルコリン、カルジオリピン、プラスマロゲン等の中性のグリセロリン脂質；スルホキシリボシルグリセリド、ジグリコシルジグリセリド、ジガラクトシルジグリセリド、ガラクトシルジグリセリド、グリコシルジグリセリド等のグリセロ糖質が挙げられる。スフィンゴ脂質としては、スフィンゴミエリン、セラミドホスホリルグリセロール、セラミドホスホリルエタノールアミン等の中性のスフィンゴリン脂質；ガラクトシルセレブロシド、ラクトシルセレブロシド、ガングリオシド等のスフィンゴ糖質が挙げられる。これらのグリセロ脂質又はスフィンゴ脂質が２以上の直鎖状の脂肪酸残基を有する場合、全ての脂肪酸残基が同一の基であってもよく、互いに異なる基であってもよい。 As the neutral lipid constituting the hyaluronic acid derivative according to the present invention, glycerolipids or sphingolipids are preferable because they are widely used as constituents of lipid membranes. Glycerolipids include neutral glycerophospholipids such as phosphatidylethanolamine, phosphatidylcholine, cardiolipin, and plasmalogen; be done. Sphingolipids include neutral sphingophospholipids such as sphingomyelin, ceramide phosphorylglycerol and ceramide phosphorylethanolamine; and sphingosaccharides such as galactosylcerebroside, lactosylcerebroside and ganglioside. When these glycerolipids or sphingolipids have two or more linear fatty acid residues, all the fatty acid residues may be the same group or different groups.

これらのグリセロ脂質又はスフィンゴ脂質における脂肪酸残基は特に限定されないが、例えば、炭素数１２～２４の飽和又は不飽和の脂肪酸残基を挙げることができ、炭素数１４～２０の飽和又は不飽和の脂肪酸残基が好ましい。具体的には、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、アラキジン酸、アラキドン酸、ベヘン酸、リグノセリン酸などの脂肪酸由来のアシル基を挙げることができる。なお、当該脂肪酸残基は、１個以上の炭素－炭素単結合間に、エステル結合（-COO-）、アミド結合（-CONH-）、エーテル結合（-O-）、カルボニル結合（-CO-）、及びカーボネート結合（-OCOO-）からなる群より選択される１以上の結合が挿入されていてもよい。 Fatty acid residues in these glycerolipids or sphingolipids are not particularly limited. Fatty acid residues are preferred. Specific examples include acyl groups derived from fatty acids such as lauric acid, myristic acid, palmitic acid, palmitoleic acid, stearic acid, oleic acid, linoleic acid, linolenic acid, arachidic acid, arachidonic acid, behenic acid, and lignoceric acid. can be done. The fatty acid residue has an ester bond (-COO-), an amide bond (-CONH-), an ether bond (-O-), a carbonyl bond (-CO-) between one or more carbon-carbon single bonds. ), and a carbonate bond (-OCOO-) may be inserted.

本発明のヒアルロン酸誘導体としては、ヒアルロン酸が、グリセロ脂質又はスフィンゴ脂質の親水性基部分と、直接又は間接的に連結された誘導体が好ましく、ヒアルロン酸が、グリセロリン脂質と、直接又は間接的に連結された誘導体がより好ましく、ヒアルロン酸が、２本の脂肪酸残基を備えるグリセロリン脂質（ジアシルグリセロリン脂質）と、直接又は間接的に連結された誘導体がさらに好ましい。中でも、ヒアルロン酸が、２本の飽和脂肪酸残基を備えるジアシルグリセロリン脂質又は１本の飽和脂肪酸残基と１本の不飽和脂肪酸残基を備えるジアシルグリセロリン脂質と、直接又は間接的に連結された誘導体が特に好ましい。ジアシルグリセロリン脂質の２本の脂肪酸残基のうち、少なくとも一方が自由度の高い飽和脂肪酸残基であることにより、脂質膜により安定して保持される（例えば、非特許文献９参照。）。具体的には、ラウリン酸残基、ミリスチン酸残基、パルミチン酸残基、パルミトレイン酸残基、ステアリン酸残基、オレイン酸残基、リノール酸残基、リノレン酸残基、アラキジン酸残基、アラキドン酸残基、ベヘン酸残基、及びリグノセリン酸残基からなる群より選択される１種又は２種の脂肪酸残基を備えるジアシルグリセロリン脂質が挙げられる。 As the hyaluronic acid derivative of the present invention, a derivative in which hyaluronic acid is directly or indirectly linked to a hydrophilic group portion of glycerolipid or sphingolipid is preferred, and hyaluronic acid is directly or indirectly linked to a glycerophospholipid. Linked derivatives are more preferred, and derivatives in which hyaluronic acid is linked directly or indirectly to a glycerophospholipid with two fatty acid residues (diacylglycerophospholipid) are even more preferred. Among them, hyaluronic acid is directly or indirectly linked to a diacylglycerophospholipid with two saturated fatty acid residues or a diacylglycerophospholipid with one saturated fatty acid residue and one unsaturated fatty acid residue. Derivatives are particularly preferred. Since at least one of the two fatty acid residues of the diacylglycerophospholipid is a saturated fatty acid residue with a high degree of freedom, it is stably retained by the lipid membrane (see, for example, Non-Patent Document 9). Specifically, lauric acid residue, myristic acid residue, palmitic acid residue, palmitoleic acid residue, stearic acid residue, oleic acid residue, linoleic acid residue, linolenic acid residue, arachidic acid residue, Examples include diacylglycerophospholipids having one or two fatty acid residues selected from the group consisting of arachidonic acid residues, behenic acid residues, and lignoceric acid residues.

脂質ナノ粒子を構成する脂質分子に占める本発明のヒアルロン酸誘導体の割合が少なすぎると、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞（標的細胞）への送達効率（脂質ナノ粒子が、ヒアルロン酸誘導体を発現している細胞内に取り込まれる効率）が不十分となるおそれがある。一方で、脂質ナノ粒子を構成する脂質分子に占める本発明のヒアルロン酸誘導体の割合が多すぎると、脂質ナノ粒子の膜安定性が低下するおそれがある。本発明に係る脂質ナノ粒子としては、標的細胞への送達効率と粒子の安定性の両方を向上させられることから、脂質ナノ粒子を構成する脂質分子に占める本発明のヒアルロン酸誘導体の割合（［本発明のヒアルロン酸誘導体の量（ｍｏｌ）］／（［脂質ナノ粒子を構成する全脂質の量（ｍｏｌ）］）×１００％）は、０．５モル％以上が好ましく、０．５～１５モル％であることがより好ましく、０．５～１０モル％であることがさらに好ましく、１～６モル％であることがよりさらに好ましく、１～４モル％であることが特に好ましい。 If the ratio of the hyaluronic acid derivative of the present invention to the lipid molecules constituting the lipid nanoparticles is too small, the delivery efficiency to cells expressing hyaluronic acid receptors (target cells) (lipid nanoparticles (efficiency of uptake into cells expressing ) may be insufficient. On the other hand, if the ratio of the hyaluronic acid derivative of the present invention to the lipid molecules constituting the lipid nanoparticles is too high, the membrane stability of the lipid nanoparticles may decrease. Since the lipid nanoparticles according to the present invention can improve both the delivery efficiency to target cells and the stability of the particles, the ratio of the hyaluronic acid derivative of the present invention to the lipid molecules constituting the lipid nanoparticles ([ The amount (mol) of the hyaluronic acid derivative of the present invention]/([amount of total lipids constituting the lipid nanoparticles (mol)]) × 100%) is preferably 0.5 mol% or more, and 0.5 to 15 It is more preferably 0.5 to 10 mol %, even more preferably 1 to 6 mol %, and particularly preferably 1 to 4 mol %.

本発明に係る脂質ナノ粒子を構成する本発明のヒアルロン酸誘導体は、１種類のみであってもよく、２種類以上であってもよい。本発明に係る脂質ナノ粒子を構成する本発明のヒアルロン酸誘導体が２種類以上である場合、本発明のヒアルロン酸誘導体の量は、脂質ナノ粒子を構成する脂質分子のうち、本発明のヒアルロン酸誘導体に相当する脂質分子の合計量を意味する。 The hyaluronic acid derivative of the present invention that constitutes the lipid nanoparticle of the present invention may be of one type or two or more types. When two or more kinds of hyaluronic acid derivatives of the present invention constitute the lipid nanoparticles of the present invention, the amount of the hyaluronic acid derivatives of the present invention is the hyaluronic acid of the present invention among the lipid molecules constituting the lipid nanoparticles. It means the total amount of lipid molecules corresponding to the derivative.

本発明に係るヒアルロン酸誘導体を構成するヒアルロン酸としては、特に限定されるものではなく、天然に存在する様々なヒアルロン酸をそのまま用いることができる。使用するヒアルロン酸の大きさも特に限定されるものではなく、例えば、１０ｋＤａ以上の大きさのものを用いることができ、脂質ナノ粒子が充分な効率で細胞へ取り込まれることが期待できることから、１０～１０００ｋＤａの大きさであることが好ましく、２０～８００ｋＤａの大きさであることがより好ましく、２０～６００ｋＤａの大きさであることがさらに好ましく、４０～１００ｋＤａの大きさであることがよりさらに好ましい。また、ヒアルロン酸受容体との相互作用を損なわない限りにおいて、各種修飾を施したヒアルロン酸であってもよい。 The hyaluronic acid constituting the hyaluronic acid derivative according to the present invention is not particularly limited, and various naturally occurring hyaluronic acids can be used as they are. The size of the hyaluronic acid to be used is also not particularly limited. A size of 1000 kDa is preferred, a size of 20-800 kDa is more preferred, a size of 20-600 kDa is even more preferred, and a size of 40-100 kDa is even more preferred. Further, hyaluronic acid subjected to various modifications may be used as long as the interaction with the hyaluronic acid receptor is not impaired.

［中性脂質］
本発明に係る脂質ナノ粒子を構成する脂質のうち、本発明のヒアルロン酸誘導体以外の脂質分子としては、特に限定されるものではないが、より粒子の安定性が向上することから、粒子表面の脂質膜の構成脂質に中性脂質が含まれていることが好ましい。中性脂質としては、前記で列挙されたものを用いることができ、中性のグリセロ脂質又はスフィンゴ脂質が好ましく、中性のグリセロリン脂質又はスフィンゴリン脂質がより好ましい。 [Neutral lipid]
Of the lipids constituting the lipid nanoparticles according to the present invention, the lipid molecules other than the hyaluronic acid derivative of the present invention are not particularly limited, but since the stability of the particles is further improved, the particle surface It is preferable that the constituent lipids of the lipid membrane contain neutral lipids. As the neutral lipid, those listed above can be used, and neutral glycerolipids or sphingolipids are preferred, and neutral glycerophospholipids or sphingolipids are more preferred.

脂質ナノ粒子を構成する脂質分子に占める中性脂質の割合が多いほど、粒子表面の脂質膜の安定性が高くなり、粒子径を小さくした場合でも十分な送達効率が達成できる。このため、本発明に係る脂質ナノ粒子においては、脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する中性脂質の量の割合（［中性脂質の量（ｍｏｌ）］／（［脂質ナノ粒子を構成する全脂質の量（ｍｏｌ）］）×１００％）は、１モル％以上が好ましく、３モル％以上がより好ましく、２５モル％以上がさらに好ましく、３０～７０モル％がよりさらに好ましく、５０～７０モル％が特に好ましい。 The higher the proportion of neutral lipids in the lipid molecules that make up the lipid nanoparticles, the higher the stability of the lipid membrane on the particle surface, and sufficient delivery efficiency can be achieved even when the particle size is reduced. Therefore, in the lipid nanoparticles according to the present invention, the ratio of the amount of neutral lipids to the total amount of lipids constituting the lipid nanoparticles ([amount of neutral lipids (mol)] / ([constituting lipid nanoparticles Total lipid amount (mol)]) × 100%) is preferably 1 mol% or more, more preferably 3 mol% or more, still more preferably 25 mol% or more, even more preferably 30 to 70 mol%, 50 to 70 mol % is particularly preferred.

本発明に係る脂質ナノ粒子を構成する中性脂質は、１種類のみであってもよく、２種類以上であってもよい。本発明に係る脂質ナノ粒子を構成する中性脂質が２種類以上である場合、中性脂質の量は、脂質ナノ粒子を構成する脂質分子のうち、中性脂質に相当する脂質分子の合計量を意味する。 Only one kind of neutral lipids constituting the lipid nanoparticles according to the present invention may be used, or two or more kinds thereof may be used. When there are two or more types of neutral lipids constituting the lipid nanoparticles according to the present invention, the amount of neutral lipids is the total amount of lipid molecules corresponding to neutral lipids among the lipid molecules constituting the lipid nanoparticles. means

［カチオン性脂質］
本発明に係る脂質ナノ粒子は、表面の脂質膜を構成する脂質分子の一部に、カチオン性脂質を含むことが好ましい。カチオン性脂質を構成脂質に含むことにより、本発明に係る脂質ナノ粒子の標的細胞への取り込み効率がより改善される。 [Cationic lipid]
The lipid nanoparticles according to the present invention preferably contain cationic lipids as part of the lipid molecules that form the lipid membrane on the surface. By including a cationic lipid in the constituent lipids, the uptake efficiency of the lipid nanoparticles according to the present invention into target cells is further improved.

カチオン性脂質としては、例えば、ＤＯＤＡＣ（ｄｉｏｃｔａｄｅｃｙｌｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）、ＤＯＴＭＡ（Ｎ－（２，３－ｄｉｏｌｅｙｌｏｘｙ）ｐｒｏｐｙｌ－Ｎ，Ｎ，Ｎ－ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ）、ＤＤＡＢ（ｄｉｄｏｄｅｃｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ）、ＤＯＴＡＰ（１，２－ｄｉｏｌｅｏｙｌｏｘｙ－３－ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｐｒｏｐａｎｅ）、ＤＣ－Ｃｈｏｌ（３β－Ｎ－（Ｎ’，Ｎ’，－ｄｉｍｅｔｈｙｌ－ａｍｉｎｏｅｔｈａｎｅ）－ｃａｒｂａｍｏｌ ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ）、ＤＭＲＩＥ（１，２－ｄｉｍｙｒｉｓｔｏｙｌｏｘｙｐｒｏｐｙｌ－３－ｄｉｍｅｔｈｙｌｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ ａｍｍｏｎｉｕｍ）、ＤＯＳＰＡ（２，３－ｄｉｏｌｅｙｌｏｘｙ－Ｎ－［２（ｓｐｅｒｍｉｎｅｃａｒｂｏｘａｍｉｄｏ）ｅｔｈｙｌ］－Ｎ，Ｎ－ｄｉｍｅｔｈｙｌ－１－ｐｒｏｐａｎａｍｉｎｕｍ ｔｒｉｆｌｕｏｒｏａｃｅｔａｔｅ）、ＤＳＴＡＰ（１，２－ｄｉｓｔｅａｒｏｙｌ－３－ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｐｒｏｐａｎｅ）、ＤＯＤＡＰ（ｄｉｏｌｅｏｙｌ－３－ｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ－ｐｒｏｐａｎｅ）等が挙げられる。好ましいカチオン性脂質はＤＯＴＭＡ、ＤＳＴＡＰ又はＤＯＤＡＰであり、特に好ましくはＤＯＴＭＡが挙げられる。カチオン性脂質は単独で又は２種以上を混合して使用することができる。カチオン性脂質において、ＤＯＴＭＡ及びＤＳＴＡＰは４級アミンを有しており，常に正電荷を帯びているが，ＤＯＤＡＰは３級アミンを有しており，生理的ｐＨにおいて電荷を持たないものである。このようにカチオン性脂質の種類、配合量を変更することで、カチオン性脂質の構造、特徴に幅を持たせることができる。 Examples of cationic lipids include DODAC (dioctadecyldimethylammonium chloride), DOTMA (N-(2,3-dioleyloxy)propyl-N,N,N-trimethylammonium), DDAB (didodecylammonium bromidex-2-dimethylammonium), DOTAP (1, 3-trimethylammonium propane), DC-Chol (3β-N-(N',N',-dimethyl-aminoethane)-carbamol cholesterol), DMRIE (1,2-dimethyloxypropyl-3-dimethylhydroxyethylammonium2, 3PA (2) －ｄｉｏｌｅｙｌｏｘｙ－Ｎ－［２（ｓｐｅｒｍｉｎｅｃａｒｂｏｘａｍｉｄｏ）ｅｔｈｙｌ］－Ｎ，Ｎ－ｄｉｍｅｔｈｙｌ－１－ｐｒｏｐａｎａｍｉｎｕｍ ｔｒｉｆｌｕｏｒｏａｃｅｔａｔｅ）、ＤＳＴＡＰ（１，２－ｄｉｓｔｅａｒｏｙｌ－３－ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｐｒｏｐａｎｅ）、ＤＯＤＡＰ（ｄｉｏｌｅｏｙｌ－３－ｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ－ｐｒｏｐａｎｅ）等is mentioned. Preferred cationic lipids are DOTMA, DSTAP or DODAP, particularly preferred is DOTMA. A cationic lipid can be used individually or in mixture of 2 or more types. Among cationic lipids, DOTMA and DSTAP have a quaternary amine and are always positively charged, whereas DODAP has a tertiary amine and is uncharged at physiological pH. By changing the type and blending amount of the cationic lipid in this manner, the structure and characteristics of the cationic lipid can be varied.

脂質ナノ粒子を構成する脂質分子に占めるカチオン性脂質の割合が多いほど、標的細胞への脂質ナノ粒子の取り込み効率が高くなる。このため、本発明に係る脂質ナノ粒子においては、脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対するカチオン性脂質の量の割合（［カチオン性脂質の量（ｍｏｌ）］／（［脂質ナノ粒子を構成する全脂質の量（ｍｏｌ）］）×１００％）は、２０モル％以上であることが好ましい。一方で、脂質ナノ粒子を構成する脂質分子に占めるカチオン性脂質の割合が多すぎると、粒子径を十分に小さくすることが困難な場合がある。標的細胞への脂質ナノ粒子の取り込み効率が十分であり、かつ粒子径が十分に小さい脂質ナノ粒子が得られることから、本発明に係る脂質ナノ粒子における脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対するカチオン性脂質の量の割合は、３０モル％以上であることがより好ましく、３０～７０モル％がさらに好ましく、３０～５０モル％がよりさらに好ましい。 The higher the proportion of cationic lipids in the lipid molecules constituting the lipid nanoparticles, the higher the efficiency of uptake of the lipid nanoparticles into target cells. Therefore, in the lipid nanoparticles according to the present invention, the ratio of the amount of cationic lipid to the total amount of lipids constituting the lipid nanoparticles ([amount of cationic lipid (mol)] / ([constituting lipid nanoparticles The total lipid amount (mol)])×100%) is preferably 20 mol % or more. On the other hand, if the proportion of cationic lipids in the lipid molecules constituting the lipid nanoparticles is too high, it may be difficult to sufficiently reduce the particle size. The efficiency of lipid nanoparticle uptake into target cells is sufficient, and lipid nanoparticles with a sufficiently small particle size can be obtained. The ratio of the amount of the lipid is more preferably 30 mol % or more, still more preferably 30 to 70 mol %, even more preferably 30 to 50 mol %.

本発明に係る脂質ナノ粒子がカチオン性脂質を含む場合、粒子を構成するカチオン性脂質は、１種類のみであってもよく、２種類以上であってもよい。本発明に係る脂質ナノ粒子を構成するカチオン性脂質が２種類以上である場合、カチオン性脂質の量は、脂質ナノ粒子を構成する脂質分子のうち、カチオン性脂質に相当する脂質分子の合計量を意味する。 When the lipid nanoparticles according to the present invention contain cationic lipids, the number of cationic lipids constituting the particles may be one, or two or more. When there are two or more types of cationic lipids constituting the lipid nanoparticles according to the present invention, the amount of cationic lipids is the total amount of lipid molecules corresponding to cationic lipids among the lipid molecules constituting the lipid nanoparticles. means

［その他の脂質］
本発明に係る脂質ナノ粒子は、その構成脂質が、本発明のヒアルロン酸誘導体と中性脂質とのみからなる粒子であってもよく、本発明のヒアルロン酸誘導体と中性脂質とカチオン性脂質とのみからなる粒子であってもよく、さらにその他の脂質を含む粒子であってもよい。その他の脂質としては、一般的にリポソームを形成する際に使用される脂質を用いることができる。このような脂質としては、例えば、正又は負に帯電したリン脂質、ステロール、又は飽和若しくは不飽和の脂肪酸等が挙げられる。これらは１種又は２種以上を組み合わせて用いることができる。 [Other lipids]
The lipid nanoparticles according to the present invention may be particles whose constituent lipids are composed only of the hyaluronic acid derivative of the present invention and a neutral lipid. Particles consisting of only may be used, and particles containing other lipids may be used. As other lipids, lipids generally used for forming liposomes can be used. Such lipids include, for example, positively or negatively charged phospholipids, sterols, saturated or unsaturated fatty acids, and the like. These can be used singly or in combination of two or more.

正又は負に帯電したリン脂質としては、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、セラミドホスホリルグリセロールホスファート、ホスファチジン酸などを挙げることができる。ステロールとしては、例えば、コレステロール、コレステロールコハク酸、ラノステロール、ジヒドロラノステロール、デスモステロール、ジヒドロコレステロール等の動物由来のステロール；スチグマステロール、シトステロール、カンペステロール、ブラシカステロール等の植物由来のステロール（フィトステロール）；チモステロール、エルゴステロール等の微生物由来のステロールなどが挙げられる。 Positively or negatively charged phospholipids include phosphatidylserine, phosphatidylinositol, phosphatidylglycerol, ceramide phosphorylglycerol phosphate, phosphatidic acid, and the like. Examples of sterols include animal-derived sterols such as cholesterol, cholesterol succinate, lanosterol, dihydrolanosterol, desmosterol and dihydrocholesterol; plant-derived sterols (phytosterols) such as stigmasterol, sitosterol, campesterol and brassicasterol; Examples thereof include microorganism-derived sterols such as zymosterol and ergosterol.

本発明に係る脂質ナノ粒子が、本発明のヒアルロン酸誘導体と中性脂質とその他の脂質分子とを含む場合には、脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する本発明のヒアルロン酸誘導体と中性脂質との合計量の割合は、５０モル％以上であればよく、６０モル％以上が好ましく、７０モル％以上がより好ましく、８０モル％以上がさらに好ましく、９０モル％以上がよりさらに好ましい。本発明に係る脂質ナノ粒子が、本発明のヒアルロン酸誘導体と中性脂質とカチオン性脂質とその他の脂質分子とを含む場合には、脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する本発明のヒアルロン酸誘導体と中性脂質とカチオン性脂質との合計量の割合は、５０モル％以上であればよく、６０モル％以上が好ましく、７０モル％以上がより好ましく、８０モル％以上がさらに好ましく、９０モル％以上がよりさらに好ましい。 When the lipid nanoparticles according to the present invention contain the hyaluronic acid derivative of the present invention, a neutral lipid and other lipid molecules, the hyaluronic acid derivative of the present invention and the neutral The ratio of the total amount with the lipid may be 50 mol% or more, preferably 60 mol% or more, more preferably 70 mol% or more, still more preferably 80 mol% or more, and even more preferably 90 mol% or more. When the lipid nanoparticles according to the present invention contain the hyaluronic acid derivative of the present invention, a neutral lipid, a cationic lipid and other lipid molecules, the hyaluronic acid of the present invention relative to the total amount of lipids constituting the lipid nanoparticles The ratio of the total amount of the derivative, the neutral lipid and the cationic lipid may be 50 mol% or more, preferably 60 mol% or more, more preferably 70 mol% or more, further preferably 80 mol% or more, and 90 mol% or more is even more preferred.

［脂質ナノ粒子］
本発明に係る脂質ナノ粒子の形態は特に限定されないが、例えば、水系溶媒に分散した形態として一枚膜リポソーム、多重層リポソーム、球状ミセル、又は不定型の層状構造物などを挙げることができる。本発明に係る脂質ナノ粒子としては、一枚膜リポソーム、多重層リポソームであることが好ましい。 [Lipid nanoparticles]
The form of the lipid nanoparticles according to the present invention is not particularly limited, but examples thereof include unilamellar liposomes, multilamellar liposomes, spherical micelles, and amorphous layered structures as forms dispersed in an aqueous solvent. Lipid nanoparticles according to the present invention are preferably unilamellar liposomes or multilamellar liposomes.

本発明に係る脂質ナノ粒子の大きさは、標的細胞が生体内の比較的深奥部に存在する場合でも高い送達効率が得られやすいことから、平均粒子径が５００ｎｍ以下であることが好ましく、平均粒子径が４００ｎｍ以下であることがより好ましく、平均粒子径が３００ｎｍ以下であることがさらに好ましい。なお、脂質ナノ粒子の平均粒子径とは、動的光散乱法（Dynamic light scattering：ＤＬＳ）により測定された個数平均粒子径を意味する。動的光散乱法による測定は、市販のＤＬＳ装置等を用いて常法により行うことができる。 Regarding the size of the lipid nanoparticles according to the present invention, the average particle size is preferably 500 nm or less because high delivery efficiency is likely to be obtained even when target cells exist in a relatively deep part of the body. More preferably, the particle size is 400 nm or less, and more preferably the average particle size is 300 nm or less. The average particle size of lipid nanoparticles means the number average particle size measured by dynamic light scattering (DLS). Measurement by the dynamic light scattering method can be performed by a conventional method using a commercially available DLS device or the like.

本発明に係る脂質ナノ粒子には、必要に応じて適宜の表面修飾などを行うことができる。
例えば、本発明に係る脂質ナノ粒子の核内移行を促進するために、例えば、脂質ナノ粒子を３糖以上のオリゴ糖化合物で表面修飾することもできる。３糖以上のオリゴ糖化合物の種類は特に限定されないが、例えば、３～１０個程度の糖ユニットが結合したオリゴ糖化合物を用いることができ、好ましくは３～６個程度の糖ユニットが結合したオリゴ糖化合物を用いることができる。 The lipid nanoparticles according to the present invention can be subjected to appropriate surface modification or the like as necessary.
For example, in order to promote nuclear translocation of lipid nanoparticles according to the present invention, the lipid nanoparticles can be surface-modified, for example, with an oligosaccharide compound having three or more sugars. The type of tri- or more oligosaccharide compound is not particularly limited, but for example, an oligosaccharide compound in which about 3 to 10 sugar units are bonded can be used, and preferably about 3 to 6 sugar units are bonded. Oligosaccharide compounds can be used.

オリゴ糖化合物としてより具体的には、例えば、セロトリオース（Cellotriose：β-D-グルコピラノシル-(1→4)-β-D-グルコピラノシル-(1→4)-D-グルコース）、カコトリオース（Chacotriose：α-L-ラムノピラノシル-(1→2)-[α-L-ラムノピラノシル-(1→4)]-D-グルコース）、ゲンチアノース（Gentianose：β-D-フルクトフラノシル β-D-グルコピラノシル-(1→6)-α-D-グルコピラノシド）、イソマルトトリオース（Isomaltotriose：α-D-グルコピラノシル-(1→6)-α-D-グルコピラノシル-(1→6)-D-グルコース）、イソパノース（Isopanose：α-D-グルコピラノシル-(1→4)-[α-D-グルコピラノシル-(1→6)]-D-グルコース）、マルトトリオース（Maltotriose：α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-D-グルコース）、マンニノトリオース（Manninotriose：α-D-ガラクトピラノシル-(1→6)-α-D-ガラクトピラノシル-(1→6)-D-グルコース）、メレジトース（Melezitose：α-D-グルコピラノシル-(1→3)-β-D-フルクトフラノシル=α-D-グルコピラノシド）、パノース （Panose：α-D-グルコピラノシル-(1→6)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-D-グルコース）、プランテオース（Planteose: α-D-ガラクトピラノシル-(1→6)-β-D-フルクトフラノシル=α-D-グルコピラノシド）、ラフィノース（Raffinose：β-D-フルクトフラノシル=α-D-ガラクトピラノシル-(1→6)-α-D-グルコピラノシド）、ソラトリオース（Solatriose：α-L-ラムノピラノシル-(1→2)-[β-D-グルコピラノシル-(1→3)]-D-ガラクトース）、ウンベリフェロース（Umbelliferose：β-D-フルクトフラノシル=α-D-ガラクトピラノシル-(1→2)-α-D-ガラクトピラノシド）などの３糖化合物；リコテトラオース（Lycoテトラose：β-D-グルコピラノシル-(1→2)-[β-D-キシロピラノシル-(1→3)]-β-D-グルコピラノシル-(1→4)-β-D-ガラクトース）、マルトテトラオース（Maltoテトラose：α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-D-グルコース）、スタキオース（Stachyose：β-D-フルクトフラノシル=α-D-ガラクトピラノシル-(1→6)-α-D-ガラクトピラノシル-(1→6) -α-D-グルコピラノシド）などの４糖化合物；マルトペンタオース（Maltopentaose：α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-D-グルコース）、ベルバスコース（Verbascose：β-D-フルクトフラノシル=α-D-ガラクトピラノシル-(1→6)-α-D-ガラクトピラノシル-(1→6)-α-D-ガラクトピラノシル-(1→6)-α-D-グルコピラノシド）などの５糖化合物；マルトヘキサオース（Maltohexaose: α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-α-D-グルコピラノシル-(1→4)-D-グルコース）などの６糖化合物を挙げることができるが、これらに限定されることはない。 More specifically, the oligosaccharide compound includes, for example, cellotriose (β-D-glucopyranosyl-(1→4)-β-D-glucopyranosyl-(1→4)-D-glucose), chacotriose (Chacotriose: α -L-rhamnopyranosyl-(1→2)-[α-L-rhamnopyranosyl-(1→4)]-D-glucose), gentianose (β-D-fructofuranosyl β-D-glucopyranosyl-(1) →6)-α-D-glucopyranoside), Isomaltotriose (α-D-glucopyranosyl-(1→6)-α-D-glucopyranosyl-(1→6)-D-glucose), Isopanose : α-D-glucopyranosyl-(1→4)-[α-D-glucopyranosyl-(1→6)]-D-glucose), Maltotriose (Maltotriose: α-D-glucopyranosyl-(1→4)- α-D-glucopyranosyl-(1→4)-D-glucose), manninotriose (α-D-galactopyranosyl-(1→6)-α-D-galactopyranosyl-(1 →6)-D-glucose), Melezitose (Melezitose: α-D-glucopyranosyl-(1→3)-β-D-fructofuranosyl = α-D-glucopyranoside), Panose (Panose: α-D-glucopyranosyl -(1→6)-α-D-glucopyranosyl-(1→4)-D-glucose), Planteose (α-D-galactopyranosyl-(1→6)-β-D-fructo furanosyl = α-D-glucopyranoside), raffinose (β-D-fructofuranosyl = α-D-galactopyranosyl-(1→6)-α-D-glucopyranoside), solatriose -L-rhamnopyranosyl-(1→2)-[β-D-glucopyranosyl-(1→3)]-D-galactose), umbelliferose (β-D-fructofuranosyl = α-D-galactose) pyranosyl-(1→2)-α-D-galactopyranoside); xylopyranosyl-(1→3)]-β-D-glucopyranosyl-(1→4)-β-D-galactose ), maltotetraose (Maltotetraose: α-D-glucopyranosyl-(1→4)-α-D-glucopyranosyl-(1→4)-α-D-glucopyranosyl-(1→4)-D-glucose) , Stachyose Tetrasaccharide compounds such as Maltopentaose (Maltopentaose: α-D-glucopyranosyl-(1→4)-α-D-glucopyranosyl-(1→4)-α-D-glucopyranosyl-(1→4)-α- D-glucopyranosyl-(1→4)-D-glucose), verbascose (β-D-fructofuranosyl = α-D-galactopyranosyl-(1→6)-α-D-galacto Pentasaccharide compounds such as pyranosyl-(1→6)-α-D-galactopyranosyl-(1→6)-α-D-glucopyranoside); Maltohexaose: α-D-glucopyranosyl-( 1→4)-α-D-glucopyranosyl-(1→4)-α-D-glucopyranosyl-(1→4)-α-D-glucopyranosyl-(1→4)-α-D-glucopyranosyl-(1→ 4)-D-glucose) and other hexasaccharide compounds, but are not limited to these.

好ましくはグルコースの３量体ないし６量体であるオリゴ糖化合物を用いることができ、さらに好ましくはグルコースの３量体又は４量体であるオリゴ糖化合物を用いることができる。より具体的には、イソマルトトリオース、イソパノース、マルトトリオース、マルトテトラオース、マルトペンタオース、又はマルトヘキサオースなどを好適に用いることができ、これらのうち、グルコースがα1-4結合したマルトトリオース、マルトテトラオース、マルトペンタオース、又はマルトヘキサオースがさらに好ましい。特に好ましいのはマルトトリオース又はマルトテトラオースであり、最も好ましいのはマルトトリオースである。オリゴ糖化合物による脂質ナノ粒子の表面修飾量は特に限定されないが、例えば、総脂質量に対して１～３０モル％程度、好ましくは２～２０モル％程度、より好ましくは５～１０モル％程度である。 An oligosaccharide compound that is a glucose trimer or glucose hexamer can be preferably used, and an oligosaccharide compound that is a glucose trimer or glucose tetramer can be more preferably used. More specifically, isomaltotriose, isopanose, maltotriose, maltotetraose, maltopentaose, maltohexaose and the like can be preferably used. Triose, maltotetraose, maltopentaose or maltohexaose are more preferred. Particularly preferred is maltotriose or maltotetraose, most preferred is maltotriose. The amount of surface modification of the lipid nanoparticles with the oligosaccharide compound is not particularly limited. is.

オリゴ糖化合物で脂質ナノ粒子を表面修飾する方法は特に限定されないが、例えば、脂質ナノ粒子をガラクトースやマンノースなどの単糖で表面を修飾したリポソーム（国際公開第２００７／１０２４８１号）が知られているので、この刊行物に記載された表面修飾方法を採用することができる。上記刊行物の開示の全てを参照により本明細書の開示として含める。この手段はポリアルキレングリコール化脂質に単糖化合物を結合して脂質ナノ粒子の表面修飾を行なう方法であり、この手段により脂質ナノ粒子の表面をポリアルキレングリコールにより同時に修飾することができるので好ましい。 Although the method of surface-modifying lipid nanoparticles with an oligosaccharide compound is not particularly limited, for example, liposomes in which the surface of lipid nanoparticles is modified with monosaccharides such as galactose and mannose (International Publication No. 2007/102481) are known. Therefore, the surface modification method described in this publication can be employed. The entire disclosure of the above publications is incorporated herein by reference. This method is a method of modifying the surface of lipid nanoparticles by binding a monosaccharide compound to a polyalkyleneglycol lipid, and is preferable because the surface of lipid nanoparticles can be simultaneously modified with polyalkyleneglycol by this method.

脂質ナノ粒子の表面をポリアルキレングリコールなどの親水性ポリマーで修飾することによりリポソームの血中滞留性などの安定性を高めることができる場合がある。この手段については、例えば、特開平１－２４９７１７号公報、特開平２－１４９５１２号公報、特開平４－３４６９１８号公報、特開２００４－１０４８１号公報などに記載されている。親水性ポリマーとしてはポリアルキレングリコールが好ましい。ポリアルキレングリコールとしては、例えば、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリテトラメチレングリコール、ポリヘキサメチレングリコールなどを用いることができる。ポリアルキレングリコールの分子量は、例えば３００～１０，０００程度、好ましくは５００～１０，０００程度、さらに好ましくは１，０００～５，０００程度である。 By modifying the surface of lipid nanoparticles with a hydrophilic polymer such as polyalkylene glycol, stability such as retention in blood of liposomes can be enhanced in some cases. This means is described, for example, in JP-A-1-249717, JP-A-2-149512, JP-A-4-346918, and JP-A-2004-10481. Polyalkylene glycol is preferred as the hydrophilic polymer. As polyalkylene glycol, for example, polyethylene glycol, polypropylene glycol, polytetramethylene glycol, polyhexamethylene glycol, etc. can be used. The molecular weight of polyalkylene glycol is, for example, about 300 to 10,000, preferably about 500 to 10,000, more preferably about 1,000 to 5,000.

ポリアルキレングリコールによる脂質ナノ粒子の表面修飾は、例えばポリアルキレングリコール修飾脂質を脂質膜構成脂質として用いて脂質ナノ粒子を構築することにより容易に行なうことができる。例えば、ポリエチレングリコールによる修飾を行う場合には、ステアリル化ポリエチレングリコール（例えばステアリン酸PEG45(STR-PEG45)など）を用いることができる。その他、N-[カルボニル－メトキシポリエチレングリコール-2000]-1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、n-[カルボニル-メトキシポリエチレングリコール-5000]-1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、N-[カルボニル-メトキシポリエチレングリコール-750]-1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、N-[カルボニル-メトキシポリエチレングリコール-2000]-1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、N-[カルボニル-メトキシポリエチレングリコール-5000]-1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミンなどのポリエチレングリコール誘導体などを用いることもできるが、ポリアルキレングリコール化脂質はこれらに限定されることはない。 Surface modification of lipid nanoparticles with polyalkylene glycol can be easily performed, for example, by constructing lipid nanoparticles using polyalkylene glycol-modified lipids as lipid membrane-constituting lipids. For example, when modifying with polyethylene glycol, stearylated polyethylene glycol (eg, PEG45 stearate (STR-PEG45), etc.) can be used. Others, N-[carbonyl-methoxypolyethylene glycol-2000]-1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine, n-[carbonyl-methoxypolyethylene glycol-5000]-1,2-dipalmitoyl -sn-glycero-3-phosphoethanolamine, N-[carbonyl-methoxypolyethylene glycol-750]-1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine, N-[carbonyl-methoxypolyethylene glycol -2000]-1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine, N-[carbonyl-methoxypolyethylene glycol-5000]-1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanol Polyethylene glycol derivatives such as amines can also be used, but polyalkylene glycolated lipids are not limited to these.

また、ポリアルキレングリコールにオリゴ糖化合物を結合させることにより、ポリアルキレングリコール及びオリゴ糖化合物による表面修飾を同時に達成することができる。もっとも、脂質ナノ粒子をポリアルキレングリコールやオリゴ糖化合物で表面修飾する方法は上記の方法に限定されることはなく、例えば、ステアリル化されたポリアルキレングリコールやオリゴ糖化合物など脂質化された化合物を脂質ナノ粒子の構成脂質として使用することにより、表面修飾を行なうことができる場合もある。 Also, by bonding an oligosaccharide compound to a polyalkylene glycol, surface modification with the polyalkylene glycol and the oligosaccharide compound can be achieved at the same time. However, the method of surface-modifying lipid nanoparticles with polyalkylene glycols or oligosaccharide compounds is not limited to the above methods. For example, lipidated compounds such as stearylated polyalkylene glycols and oligosaccharide compounds In some cases, surface modification can be performed by using lipids as constituent lipids of lipid nanoparticles.

本発明に係る脂質ナノ粒子の製造にあたり、血中滞留性を高めるための脂質誘導体として、例えば、グリコフォリン、ガングリオシドＧＭ１、ホスファチジルイノシトール、ガングリオシドＧＭ３、グルクロン酸誘導体、グルタミン酸誘導体、ポリグリセリンリン脂質誘導体などを利用することもできる。また、血中滞留性を高めるための親水性ポリマーとして、ポリアルキレングリコールのほかにデキストラン、プルラン、フィコール、ポリビニルアルコール、スチレン－無水マレイン酸交互共重合体、ジビニルエーテル－無水マレイン酸交互共重合体、アミロース、アミロペクチン、キトサン、マンナン、シクロデキストリン、ペクチン、カラギーナンなどを表面修飾に用いることもできる。 In the production of lipid nanoparticles according to the present invention, lipid derivatives for improving blood retention include, for example, glycophorin, ganglioside GM1, phosphatidylinositol, ganglioside GM3, glucuronic acid derivatives, glutamic acid derivatives, polyglycerol phospholipid derivatives, and the like. can also be used. In addition to polyalkylene glycol, dextran, pullulan, ficoll, polyvinyl alcohol, styrene-maleic anhydride alternating copolymer, and divinyl ether-maleic anhydride alternating copolymer are also used as hydrophilic polymers for increasing blood retention. , amylose, amylopectin, chitosan, mannan, cyclodextrin, pectin, carrageenan, etc. can also be used for surface modification.

本発明に係る脂質ナノ粒子は、ステロール、又はグリセリン若しくはその脂肪酸エステルなどの膜安定化剤、トコフェロール、没食子酸プロピル、パルミチン酸アスコルビル、又はブチル化ヒドロキシトルエンなどの抗酸化剤、荷電物質、及び膜ポリペプチドなどからなる群から選ばれる１種又は２種以上の物質を含んでいてもよい。正荷電を付与する荷電物質としては、例えば、ステアリルアミン、オレイルアミンなどの飽和若しくは不飽和脂肪族アミン；ジオレオイルトリメチルアンモニウムプロパンなどの飽和若しくは不飽和カチオン性合成脂質；又は、カチオン性ポリマーなどを挙げることができ、負電荷を付与する荷電物質としては、例えば、ジセチルホスフェート、コレステリルヘミスクシネート、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸などを挙げることができる。膜ポリペプチドとしては、例えば、膜表在性ポリペプチド、又は膜内在性ポリペプチドなどが挙げられる。これらの物質の配合量は特に限定されず、目的に応じて適宜選択することができる。 The lipid nanoparticles according to the present invention contain sterols or membrane stabilizers such as glycerol or fatty acid esters thereof, antioxidants such as tocopherol, propyl gallate, ascorbyl palmitate, or butylated hydroxytoluene, charged substances, and membrane stabilizers. It may contain one or more substances selected from the group consisting of polypeptides and the like. Examples of charged substances that impart positive charge include saturated or unsaturated aliphatic amines such as stearylamine and oleylamine; saturated or unsaturated cationic synthetic lipids such as dioleoyltrimethylammonium propane; or cationic polymers. Examples of charged substances that impart a negative charge include dicetyl phosphate, cholesteryl hemisuccinate, phosphatidylserine, phosphatidylinositol, and phosphatidic acid. Membrane polypeptides include, for example, surface-to-membrane polypeptides and integral-to-membrane polypeptides. The blending amount of these substances is not particularly limited, and can be appropriately selected according to the purpose.

また、本発明に係る脂質ナノ粒子には、例えば、温度変化感受性機能、膜透過機能、遺伝子発現機能、及びｐＨ感受性機能などのいずれか１つ又は２つ以上の機能を付与することができる。これらの機能を適宜付加することにより、例えば遺伝子を含む核酸などを内包する脂質ナノ粒子の血液中での滞留性を向上させ、肝臓や脾臓などの細網内皮系組織による捕捉率を低下させるとともに、標的細胞におけるエンドサイトーシスの後にエンドソームから効率的に脂質ナノ粒子を脱出させて核内に移行させることができ、核内において高い遺伝子発現活性を達成することが可能になる。 In addition, the lipid nanoparticles according to the present invention can be imparted with one or more functions such as a temperature change sensitive function, a membrane permeation function, a gene expression function, and a pH sensitive function. By appropriately adding these functions, for example, the retention of lipid nanoparticles encapsulating nucleic acids including genes is improved in the blood, and the capture rate by reticuloendothelial tissues such as liver and spleen is reduced. , can efficiently escape lipid nanoparticles from endosomes after endocytosis in target cells and translocate into the nucleus, enabling high gene expression activity to be achieved in the nucleus.

本発明に係る脂質ナノ粒子の製造方法は特に限定されず、当業者に利用可能な任意の方法を採用することができる。一例を挙げれば、全ての脂質成分をクロロホルムなどの有機溶媒に溶解し、エバポレータによる減圧乾固や噴霧乾燥機による噴霧乾燥を行うことによって脂質膜を形成した後、水系溶媒を乾燥した上記の混合物に添加し、さらにホモジナイザーなどの乳化機、超音波乳化機、又は高圧噴射乳化機などにより乳化することで製造することができる。また、リポソームを製造する方法としてよく知られている方法、例えば逆相蒸発法などによっても製造することができる。脂質ナノ粒子の大きさを制御したい場合には、孔径のそろったメンブランフィルターなどを用いて、高圧下でイクストルージョン（押し出し濾過）を行えばよい。 The method for producing the lipid nanoparticles according to the present invention is not particularly limited, and any method available to those skilled in the art can be adopted. For example, all the lipid components are dissolved in an organic solvent such as chloroform, dried under reduced pressure using an evaporator or spray-dried using a spray dryer to form a lipid film, and the above mixture obtained by drying the aqueous solvent. and emulsifying with an emulsifier such as a homogenizer, an ultrasonic emulsifier, or a high-pressure injection emulsifier. It can also be produced by a method well known as a method for producing liposomes, such as the reverse phase evaporation method. When it is desired to control the size of lipid nanoparticles, extrusion (extrusion filtration) may be performed under high pressure using a membrane filter with a uniform pore size.

水系溶媒（分散媒）の組成は特に限定されないが、例えば、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩液などの緩衝液、生理食塩水、細胞培養用の培地などを挙げることができる。これら水系溶媒（分散媒）は脂質ナノ粒子を安定に分散させることができるが、さらに、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、イノシトール、リボース、キシロース糖の単糖類、乳糖、ショ糖、セロビオース、トレハロース、マルトースなどの二糖類、ラフィノース、メレジノースなどの三糖類、シクロデキストリンなどの多糖類、エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、マルチトールなどの糖アルコールなどの糖（水溶液）や、グリセリン、ジグリセリン、ポリグリセリン、プロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、ポリエチレングリコール、エチレングリコールモノアルキルエーテル、ジエチレングリコールモノアルキルエーテル、1,3-ブチレングリコールなどの多価アルコール（水溶液）などを加えてもよい。この水系溶媒に分散した脂質ナノ粒子を安定に長期間保存するには、凝集抑制などの物理的安定性の面から水系溶媒中の電解質を極力排除することが望ましい。また、脂質の化学的安定性の面からは水系溶媒のｐＨを弱酸性から中性付近（ｐＨ３．０～８．０程度）に設定し、及び／又は窒素バブリングなどにより溶存酸素を除去することが望ましい。 The composition of the aqueous solvent (dispersion medium) is not particularly limited. can be done. These aqueous solvents (dispersion media) can stably disperse lipid nanoparticles, and furthermore, monosaccharides such as glucose, galactose, mannose, fructose, inositol, ribose, xylose sugar, lactose, sucrose, cellobiose, trehalose, Disaccharides such as maltose, trisaccharides such as raffinose and melezinose, polysaccharides such as cyclodextrin, sugars (aqueous solutions) such as sugar alcohols such as erythritol, xylitol, sorbitol, mannitol and maltitol, glycerin, diglycerin and polyglycerin Polyhydric alcohols (aqueous solutions) such as propylene glycol, polypropylene glycol, ethylene glycol, diethylene glycol, triethylene glycol, polyethylene glycol, ethylene glycol monoalkyl ether, diethylene glycol monoalkyl ether, 1,3-butylene glycol, etc. may be added. . In order to stably store the lipid nanoparticles dispersed in the aqueous solvent for a long period of time, it is desirable to eliminate electrolytes in the aqueous solvent as much as possible from the viewpoint of physical stability such as inhibition of aggregation. In terms of chemical stability of lipids, the pH of the aqueous solvent should be set from weakly acidic to near neutral (about pH 3.0 to 8.0), and/or the dissolved oxygen should be removed by nitrogen bubbling or the like. is desirable.

得られた脂質ナノ粒子の水性分散物を凍結乾燥又は噴霧乾燥する場合には、例えば、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、イノシトール、リボース、キシロース糖の単糖類、乳糖、ショ糖、セロビオース、トレハロース、マルトースなどの二糖類、ラフィノース、メレジノースなどの三糖類、シクロデキストリンなどの多糖類、エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、マルチトールなどの糖アルコールなどの糖（水溶液）を用いると安定性を改善できる場合がある。また、上記水性分散物を凍結する場合には、例えば、前記の糖類やグリセリン、ジグリセリン、ポリグリセリン、プロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、ポリエチレングリコール、エチレングリコールモノアルキルエーテル、ジエチレングリコールモノアルキルエーテル、1,3-ブチレングリコールなどの多価アルコール（水溶液）を用いると安定性を改善できる場合がある。 When freeze-drying or spray-drying the resulting aqueous dispersion of lipid nanoparticles, for example, glucose, galactose, mannose, fructose, inositol, ribose, xylose monosaccharides, lactose, sucrose, cellobiose, trehalose, Stability can be improved by using sugars (aqueous solutions) such as disaccharides such as maltose, trisaccharides such as raffinose and melezinose, polysaccharides such as cyclodextrin, and sugar alcohols such as erythritol, xylitol, sorbitol, mannitol and maltitol. There is Further, when freezing the aqueous dispersion, for example, the above sugars, glycerin, diglycerin, polyglycerin, propylene glycol, polypropylene glycol, ethylene glycol, diethylene glycol, triethylene glycol, polyethylene glycol, ethylene glycol monoalkyl ether , diethylene glycol monoalkyl ether, 1,3-butylene glycol, and other polyhydric alcohols (aqueous solutions) may improve stability.

本発明に係る脂質ナノ粒子は、脂質膜で覆われた粒子内部に、標的の細胞内に送達する目的の成分を内包していることが好ましい。本発明に係る脂質ナノ粒子は、ヒアルロン酸受容体との相互作用部位が粒子表面に露出しているため、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞へ選択的に取り込まれる。すなわち、本発明に係る脂質ナノ粒子は、脂質膜の内部に内包した成分を、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞の細胞内へ効率よく送達させることができる。このため、本発明に係る脂質ナノ粒子は、目的の成分をヒアルロン酸受容体を発現している細胞へ送達させるキャリアとして有用である。 The lipid nanoparticles according to the present invention preferably contain a target component to be delivered into target cells inside the particles covered with a lipid membrane. The lipid nanoparticles according to the present invention are selectively taken up by cells expressing hyaluronic acid receptors because the interaction sites with hyaluronic acid receptors are exposed on the particle surface. That is, the lipid nanoparticles according to the present invention can efficiently deliver components encapsulated inside lipid membranes into cells expressing hyaluronic acid receptors. Therefore, the lipid nanoparticles according to the present invention are useful as carriers for delivering target components to cells expressing hyaluronic acid receptors.

本発明に係る脂質ナノ粒子が粒子内部に内包する成分としては、内包可能な大きさであれば特に限定されるものではなく、本発明に係る脂質ナノ粒子には、核酸、糖類、ペプチド類、低分子化合物、金属化合物など任意の物質を封入することができる。本発明に係る脂質ナノ粒子に内包させる成分としては、低分子化合物、低分子核酸、及びペプチドからなる群より選択される１種以上であることが好ましい。低分子核酸としては、例えば、ｓｉＲＮＡ、ｍｉｃｒｏＲＮＡ、核酸アプタマー、デコイ核酸、リボザイム、ＣｐＧオリゴ核酸等が挙げられる。 The components that the lipid nanoparticles according to the present invention enclose inside the particles are not particularly limited as long as they have sizes that can be encapsulated. The lipid nanoparticles according to the present invention include nucleic acids, sugars, peptides, Any substance such as a low-molecular-weight compound or a metal compound can be enclosed. The component to be encapsulated in the lipid nanoparticles according to the present invention is preferably one or more selected from the group consisting of low-molecular-weight compounds, low-molecular-weight nucleic acids, and peptides. Examples of low molecular weight nucleic acids include siRNA, microRNA, nucleic acid aptamers, decoy nucleic acids, ribozymes, CpG oligonucleic acids and the like.

ｓｉＲＮＡは２１～２３塩基対からなる低分子二本鎖ＲＮＡであり、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）に関与し、ｍＲＮＡの破壊によって配列特異的に遺伝子の発現を抑制する。合成のｓｉＲＮＡがヒトの細胞においてＲＮＡ干渉を引き起こすことが報告されており、ｓｉＲＮＡを用いたＲＮＡ干渉により遺伝子をノックダウンすることができることから、医薬としての利用やがんなどの治療分野において応用が期待されている。本発明に係る脂質ナノ粒子に内包されるｓｉＲＮＡの種類は特に限定されず、ＲＮＡ干渉を引き起こすことができるものであればいかなるものを使用してもよいが、一般的には、２１～２３塩基対の二本鎖ＲＮＡであって、ＲＮＡ鎖の３’部分が２塩基分突出した構造をとり、それぞれの鎖は５’末端にリン酸基と３’末端にヒドロキシル基を有する構造のＲＮＡを本発明におけるｓｉＲＮＡとして使用することができる。また、リボース骨格の２’位のヒドロキシル基がメトキシ基、フルオロ基、又はメトキシエチル基に、ホスホジエステル結合がホスホロチオエート結合に一部置換されたｓｉＲＮＡも含まれる。 siRNAs are small double-stranded RNAs consisting of 21-23 base pairs that are involved in RNA interference (RNAi) and suppress gene expression in a sequence-specific manner by disrupting mRNAs. Synthetic siRNA has been reported to cause RNA interference in human cells, and since genes can be knocked down by RNA interference using siRNA, it can be used as a medicine and applied in the treatment field such as cancer. Expected. The type of siRNA encapsulated in the lipid nanoparticles according to the present invention is not particularly limited, and any siRNA that can cause RNA interference may be used. A pair of double-stranded RNA having a structure in which the 3′ portion of the RNA strand protrudes by two bases, and each strand has a phosphate group at the 5′ end and a hydroxyl group at the 3′ end. It can be used as siRNA in the present invention. Also included are siRNAs in which the hydroxyl group at the 2'-position of the ribose backbone is partially substituted with a methoxy group, fluoro group, or methoxyethyl group, and the phosphodiester bond is partially substituted with a phosphorothioate bond.

本発明に係る脂質ナノ粒子は、脂質膜で覆われた粒子内部に薬効成分を内包する薬剤キャリアであることが好ましい。当該薬効成分としては、特に限定されるものではなく、抗がん剤、抗炎症剤、抗菌剤、抗ウイルス剤などの任意の医薬の有効成分を使用できる。抗がん剤としては、例えば、ドキソルビシン、ダウノルビシン、シスプラチン、オキザリプラチン、カルボプラチン、パクリタキセル、イリノテカン、ＳＮ－３８、アクチノマイシンＤ、ビンクリスチン、ビンブラスチン、メトトレキサート、アザチオプリン、フルオロウラシル、マイトマイシンＣ、ドセタキセル、シクロホスファミド、カペシタビン、エピルビシン、ゲムシタビン、ミトキサントロン、ロイコボリン、ビノレルビン、トラスツズマブ、エトポシド、エストラムスチン、プレドニゾン、インターフェロンα、インターロイキン－２、ブレオマイシン、イホスファミド、メスナ、アルトレタミン、トポテカン、シタラビン、メチルプレドニゾロン、デキサメタゾン、メルカプトプリン、チオグアニン、フルダラビン、ゲムツズマブ、イダルビシン、ミトキサントロン、トレチノイン、アレムツズマブ、クロランブシル、クラドリビン、イマチニブ、エピルビシン、ダカルバジン、プロカルバジン、メクロレタミン、リツキシマブ、デニロイキンジフチトクス、トリメトプリム／スルファメトキサゾール、アロプリノール、カルムスチン、タモキシフェン、フィルグラスチム、テモゾロマイド、メルファラン、ビノレルビン、アザシチジン、サリドマイド、およびマイトマイシン等が挙げられる。抗炎症剤としては、例えば、フェニルブタゾン、アセトアミノフェン、イブプロフェン、インドメタシン、スリンダク、ピロキシカム、ジクロフェナック、プレドニゾン、ベクロメタゾン、デキサメタゾン等が挙げられる。抗菌剤としては、例えば、アムホテリシンＢ等が挙げられる。抗ウイルス剤として、ビダラビン、アシクロビル、トリフルオロチミジン等が挙げられる。 The lipid nanoparticles according to the present invention are preferably drug carriers that enclose a medicinal ingredient inside the particles covered with a lipid membrane. The medicinal ingredient is not particularly limited, and any active medicinal ingredient such as an anticancer agent, an anti-inflammatory agent, an antibacterial agent, and an antiviral agent can be used. Examples of anticancer agents include doxorubicin, daunorubicin, cisplatin, oxaliplatin, carboplatin, paclitaxel, irinotecan, SN-38, actinomycin D, vincristine, vinblastine, methotrexate, azathioprine, fluorouracil, mitomycin C, docetaxel, and cyclophosphamide. , capecitabine, epirubicin, gemcitabine, mitoxantrone, leucovorin, vinorelbine, trastuzumab, etoposide, estramustine, prednisone, interferon-alpha, interleukin-2, bleomycin, ifosfamide, mesna, altretamine, topotecan, cytarabine, methylprednisolone, dexamethasone, Mercaptopurine, thioguanine, fludarabine, gemtuzumab, idarubicin, mitoxantrone, tretinoin, alemtuzumab, chlorambucil, cladribine, imatinib, epirubicin, dacarbazine, procarbazine, mechlorethamine, rituximab, denileukin diftitox, trimethoprim/sulfamethoxazole, allopurinol , carmustine, tamoxifen, filgrastim, temozolomide, melphalan, vinorelbine, azacitidine, thalidomide, and mitomycin. Anti-inflammatory agents include, for example, phenylbutazone, acetaminophen, ibuprofen, indomethacin, sulindac, piroxicam, diclofenac, prednisone, beclomethasone, dexamethasone and the like. Antibacterial agents include, for example, amphotericin B and the like. Antiviral agents include vidarabine, acyclovir, trifluorothymidine and the like.

本発明に係る脂質ナノ粒子は、ヒアルロン酸受容体の発現量が少ない細胞よりも、ヒアルロン酸受容体の発現量が多い細胞に対して、より多く取り込まれる。送達効率がヒアルロン酸受容体の発現量に依存しているため、ヒアルロン酸受容体の発現量の多い細胞に対して選択的に取り込ませることができる。この選択性の高さから、本発明に係る脂質ナノ粒子は、抗がん剤を内包する薬剤キャリアであって、ヒアルロン酸受容体を高発現しているがんに対するがん治療に使用される医薬品として特に有用である。がん細胞がヒアルロン酸受容体を高発現しているがんとしては、例えば、悪性胸膜中皮腫、胸膜播種性肺がん等が挙げられる。 The lipid nanoparticles according to the present invention are taken up more by cells with high hyaluronic acid receptor expression levels than in cells with low hyaluronic acid receptor expression levels. Since the delivery efficiency depends on the expression level of the hyaluronic acid receptor, it can be selectively incorporated into cells with high expression levels of the hyaluronic acid receptor. Due to this high selectivity, the lipid nanoparticles according to the present invention are drug carriers encapsulating anticancer drugs, and are used for cancer therapy against cancers that highly express hyaluronic acid receptors. It is particularly useful as a pharmaceutical. Cancers in which cancer cells highly express hyaluronic acid receptors include, for example, malignant pleural mesothelioma, pleural disseminated lung cancer, and the like.

本発明に係る脂質ナノ粒子を薬剤キャリアとして使用する場合、本発明に係る脂質ナノ粒子が投与される動物は、特に限定されるものではなく、ヒトであってもよく、ヒト以外の動物であってもよい。非ヒト動物としては、ウシ、ブタ、ウマ、ヒツジ、ヤギ、サル、イヌ、ネコ、ウサギ、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等の哺乳動物や、ニワトリ、ウズラ、カモ等の鳥類等が挙げられる。 When the lipid nanoparticles of the present invention are used as drug carriers, animals to which the lipid nanoparticles of the present invention are administered are not particularly limited, and may be humans or animals other than humans. may Non-human animals include mammals such as cows, pigs, horses, sheep, goats, monkeys, dogs, cats, rabbits, mice, rats, hamsters and guinea pigs, and birds such as chickens, quails and ducks.

次に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。 EXAMPLES Next, the present invention will be described in more detail with reference to examples, but the present invention is not limited to the following examples.

［実施例１］
ヒアルロン酸誘導体を含むリポソームの、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞への取り込みを調べた。 [Example 1]
We investigated the uptake of liposomes containing hyaluronic acid derivatives into cells expressing hyaluronic acid receptors.

＜ヒアルロン酸誘導体の製造＞
Arpiccoらの方法（非特許文献１０参照。）の改変法により、ヒアルロン酸とホスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）とを結合させたヒアルロン酸脂質誘導体（ＨＡ－ＰＥ体）を製造した。 <Production of hyaluronic acid derivative>
A hyaluronic acid lipid derivative (HA-PE form) in which hyaluronic acid and phosphatidylethanolamine (PE) are combined was produced by a modified method of Arpicco et al. (see Non-Patent Document 10).

具体的には、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）１００ｍＬに分子量が５０ｋＤａのヒアルロン酸２．５ｇ（５０μｍｏｌ）を懸濁し、６０℃に加熱した。３０分間攪拌した後、ＤＳＰＥ（distearoyl-sn-glycerophosphoethanolamine）３７．４ｍｇ（５０μｍｏｌ）を添加し、１０ｍＬ酢酸を滴下した。さらに２時間攪拌した後、ナトリウムトリアセトキシボロヒドリド２６．４ｍｇ（１２５μｍｏｌ）を加え、その後９６時間攪拌を続けた。常温まで冷却した後、反応溶液を逆相クロマトグラフィー｛有利溶媒；水：メタノール（連続勾配）｝に供することにより、合成されたＨＡ－ＰＥ体（ＤＳＰＥ）を精製した。 Specifically, 2.5 g (50 µmol) of hyaluronic acid having a molecular weight of 50 kDa was suspended in 100 mL of dimethylsulfoxide (DMSO) and heated to 60°C. After stirring for 30 minutes, 37.4 mg (50 μmol) of DSPE (distearoyl-sn-glycerophosphoethanolamine) was added, and 10 mL of acetic acid was added dropwise. After stirring for an additional 2 hours, 26.4 mg (125 μmol) of sodium triacetoxyborohydride was added, followed by continued stirring for 96 hours. After cooling to room temperature, the synthesized HA-PE form (DSPE) was purified by subjecting the reaction solution to reverse phase chromatography {advantageous solvent: water:methanol (continuous gradient)}.

ＤＳＰＥに代えて、ＳＯＰＥ（stearoyl-oleoyl-glycerophosphoethanolamine）を用いて同様に反応を行い、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）を単離した。 A similar reaction was carried out using SOPE (stearoyl-oleoyl-glycerophosphoethanolamine) instead of DSPE to isolate HA-PE form (SOPE).

＜ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの製造＞
ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームを、エクストゥルーダー法を用いて製造した。カチオン性脂質としてＤＯＴＡＰ（1,2-dioleoyl-3-trimethylammonium-propane）を用いた。まず、ＤＳＰＣ（distearoyl-sn- gylcerolphosphocholine）とコレステロール（chol）とカチオン性脂質を５０－ｘ：５０：ｘ（ｘ＝０、５、又は１０）の割合（モル比）で総量４０００ｎｍｏｌを、ガラス試験管に添加した後、溶媒を留去することで当該ガラス試験管内に脂質薄膜を作製した。次いで、このガラス試験管内にＰＢＳ（phosphate-buffered saline）添加して脂質薄膜を水和させた後に、超音波処理を行うことでリポソームを得た。 <Production of HA-PE modified liposome>
HA-PE modified liposomes were manufactured using the extruder method. DOTAP (1,2-dioleoyl-3-trimethylammonium-propane) was used as a cationic lipid. First, DSPC (distearoyl-sn-gylcerolphosphocholine), cholesterol (chol) and cationic lipid were mixed at a ratio (molar ratio) of 50-x: 50: x (x = 0, 5, or 10), and the total amount was 4000 nmol. After addition to the tube, a lipid film was produced in the glass test tube by distilling off the solvent. Next, PBS (phosphate-buffered saline) was added to the glass test tube to hydrate the lipid thin film, followed by ultrasonic treatment to obtain liposomes.

粒子径を一定のサイズにするために、得られたリポソームに対して、４００、２００、又は１００ｎｍの細孔を有するポリカーボネート膜を用いて整粒処理を行った。整粒したリポソームをＨＡ－ＰＥ体と混合し、加熱下でインキュベートすることにより、ＨＡ－ＰＥ体を脂質膜へ挿入して、ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームを得た。動的光散乱法により算出されたこのＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの平均粒子径は１００～２００ｎｍであった。 In order to make the particle size constant, the obtained liposomes were subjected to sizing treatment using a polycarbonate membrane having pores of 400, 200, or 100 nm. The sized liposomes were mixed with the HA-PE compound and incubated under heating to insert the HA-PE compound into the lipid membrane to obtain HA-PE modified liposomes. The average particle size of this HA-PE modified liposome calculated by the dynamic light scattering method was 100 to 200 nm.

＜非修飾リポソームの製造＞
非修飾リポソームは、ガラス試験管に添加する脂質（総量４０００ｎｍｏｌ）を、ＤＳＰＣとコレステロールを５０：５０の割合（モル比）とした以外は＜ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの製造＞と同様して、超音波処理後整粒することによって製造した。 <Production of unmodified liposome>
Non-modified liposomes were prepared in the same manner as in <Production of HA-PE modified liposomes>, except that the lipids (total amount: 4000 nmol) added to the glass test tube were adjusted to DSPC and cholesterol at a ratio (molar ratio) of 50:50. It was prepared by sizing after sonication.

＜ＨＡ混合リポソームの製造＞
非修飾リポソームに、ヒアルロン酸を混合して、ヒアルロン酸を粒子表面に付着させたリポソーム（ＨＡ混合リポソーム）を得た。 <Production of HA mixed liposome>
The unmodified liposome was mixed with hyaluronic acid to obtain a liposome having hyaluronic acid attached to the particle surface (HA mixed liposome).

＜ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの細胞への取り込み量の測定＞
ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームをさらに3,3'-dioctadecyloxacarbo-cyanine perchlorateにより蛍光標識したリポソーム（ＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソーム）を細胞の培地に添加して、当該細胞への取り込み量を調べた。ＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームを取り込ませる細胞は、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞のうち、悪性胸膜中皮腫由来ＨＭＭ３細胞と胸膜播種肺がん由来Ｈ２２６細胞を用いた。 <Measurement of uptake amount of HA-PE modified liposome into cells>
The HA-PE-modified liposomes were further fluorescently labeled with 3,3'-dioctyloxacarbo-cyanine perchlorate (HA-PE-modified fluorescently labeled liposomes) were added to the cell culture medium, and the uptake amount into the cells was examined. Among cells expressing hyaluronic acid receptors, HMM3 cells derived from malignant pleural mesothelioma and H226 cells derived from pleural disseminated lung cancer were used as cells into which HA-PE-modified fluorescently labeled liposomes were incorporated.

具体的には、各細胞を培養容器に播種して２４時間培養した後、培養培地にＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームを添加して２時間インキュベートした。その後、細胞を剥離して、フローサイトメーター（ＦＡＣＳ）により細胞内に取り込まれた蛍光量を測定した。また、比較対象として、ＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームに代えて、赤色蛍光物質3,3'-dioctadecyloxacarbo-cyanine perchlorateにより蛍光標識した非修飾リポソーム（非修飾蛍光標識リポソーム）及びＨＡ混合リポソーム（ＨＡ混合蛍光標識リポソーム）を用いて同様にして細胞内に取り込まれた蛍光量を測定した。 Specifically, each cell was seeded in a culture vessel and cultured for 24 hours, and then HA-PE-modified fluorescence-labeled liposomes were added to the culture medium and incubated for 2 hours. After that, the cells were detached and the amount of fluorescence taken into the cells was measured using a flow cytometer (FACS). For comparison, instead of the HA-PE-modified fluorescent-labeled liposomes, unmodified liposomes fluorescently-labeled with a red fluorescent substance 3,3'-dioctyloxacarbo-cyanine perchlorate (unmodified fluorescent-labeled liposomes) and HA-mixed liposomes (HA-mixed liposomes) were also used. Fluorescence-labeled liposomes) were used to measure the amount of fluorescence taken up into cells in the same manner.

ＨＡ－ＰＥ体（ＤＳＰＥ）を２モル％含有させて製造された各蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）を測定した結果を図１に示す。ＨＭＭ３細胞における結果を図１Ａに、Ｈ２２６細胞における結果を図１Ｂに、それぞれ示す。非修飾蛍光標識リポソームとＨＡ－ＰＥ修飾リポソームとＨＡ混合蛍光標識リポソームの細胞への取り込み量は、いずれも、ＤＯＴＡＰの含有量依存的に増大していた。より詳細には、ＤＯＴＡＰの含有量が１０モル％の非修飾蛍光標識リポソームでは、ＤＯＴＡＰなしの非修飾蛍光標識リポソームよりも細胞への取り込み量が約１０～２０倍程度増大していた。ＨＡ混合蛍光標識リポソームにおいても、非修飾蛍光標識リポソームよりもやや少ないものの、ＤＯＴＡＰの含有量が１０モル％のリポソームではＤＯＴＡＰなしのリポソームよりも細胞への取り込み量が約８～１５倍程度増大していた。一方で、ＤＯＴＡＰの含有量が１０モル％のＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームでは、ＤＯＴＡＰなしのＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームよりも細胞への取り込み量が約２００倍以上増大していた。つまり、リポソームに対してカチオン性脂質を添加することによる取り込み効率改善効果と、ＨＡ－ＰＥ体により粒子表面をヒアルロン酸で修飾することによる取り込み効率改善効果は、統計学的に有意な交互作用を有していた。リポソームに対してカチオン性脂質を添加することによる取り込み効率改善効果と、粒子表面にヒアルロン酸を付着させることによる取り込み効率改善効果とは、交互作用はなかった。 FIG. 1 shows the results of measuring the uptake amount (fluorescence intensity, AU) of each fluorescence-labeled liposome produced by containing 2 mol % of HA-PE form (DSPE). The results for HMM3 cells are shown in FIG. 1A, and the results for H226 cells are shown in FIG. 1B. The amounts of unmodified fluorescently labeled liposomes, HA-PE modified liposomes, and mixed HA fluorescently labeled liposomes all increased in a DOTAP content-dependent manner. More specifically, unmodified fluorescently labeled liposomes with a DOTAP content of 10 mol % showed about 10 to 20 times more uptake into cells than unmodified fluorescently labeled liposomes without DOTAP. In the case of HA-mixed fluorescence-labeled liposomes as well, although the amount was slightly lower than that of the unmodified fluorescence-labeled liposomes, the liposomes containing 10 mol % DOTAP exhibited an approximately 8 to 15-fold increase in cell uptake as compared to the liposomes containing no DOTAP. was On the other hand, in the HA-PE modified fluorescently labeled liposome with a DOTAP content of 10 mol %, the uptake into cells was increased by about 200 times or more as compared to the HA-PE modified fluorescently labeled liposome without DOTAP. In other words, there is a statistically significant interaction between the effect of improving the uptake efficiency by adding a cationic lipid to liposomes and the effect of improving the uptake efficiency by modifying the particle surface with hyaluronic acid using HA-PE. had. There was no interaction between the effect of improving uptake efficiency by adding cationic lipids to liposomes and the effect of improving uptake efficiency by attaching hyaluronic acid to the particle surface.

続いて、ヒアルロン酸に結合させる足場の脂質の取り込み効率に対する影響を調べた。具体的には、ＨＡ－ＰＥ体（ＤＳＰＥ）に代えてＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）を用いて同様にして製造された各蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）を測定した。次いで、各細胞の取り込み量の測定結果に基づき、ＤＯＴＡＰの含有量が１０モル％のリポソームについて、非修飾蛍光標識リポソームの取り込み量を１とした相対取り込み量を求めた。ＨＡ－ＰＥ体（ＤＳＰＥ）を含有するリポソームの結果とＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）を含有するリポソームの結果を表１に示す。 Subsequently, the influence of scaffolds attached to hyaluronic acid on lipid uptake efficiency was investigated. Specifically, the uptake amount (fluorescence intensity, AU) of each fluorescence-labeled liposome produced in the same manner using HA-PE (SOPE) instead of HA-PE (DSPE) was measured. . Next, based on the measurement results of the amount of uptake in each cell, the relative uptake amount was calculated with the amount of uptake of the unmodified fluorescence-labeled liposome as 1 for the liposomes containing 10 mol % of DOTAP. Table 1 shows the results for liposomes containing HA-PE isomer (DSPE) and liposomes containing HA-PE isomer (SOPE).

この結果、ＨＡ－ＰＥ体（ＤＳＰＥ）で修飾したＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームとＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）で修飾したＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームのいずれであっても、非修飾蛍光標識リポソームよりも細胞内への取り込み量を４～７倍程度上昇させた。特に、２本の脂肪酸残基のうち、両方が飽和脂肪酸残基であるＨＡ－ＰＥ体（ＤＳＰＥ）で修飾したリポソームよりも、１本が飽和脂肪酸残基、残る１本が不飽和脂肪酸残基であるＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）で修飾したリポソームのほうが、やや細胞内への取り込み量が高い傾向が観察された。 As a result, both the HA-PE-modified fluorescence-labeled liposomes modified with the HA-PE isomer (DSPE) and the HA-PE-modified fluorescence-labeled liposomes modified with the HA-PE isomer (SOPE) showed that the unmodified fluorescence-labeled liposomes The amount of uptake into the cells was increased by about 4 to 7 times. In particular, of the two fatty acid residues, one is a saturated fatty acid residue and the remaining one is an unsaturated fatty acid residue, compared with a liposome modified with an HA-PE form (DSPE) in which both are saturated fatty acid residues. It was observed that the liposomes modified with the HA-PE form (SOPE) tended to have slightly higher intracellular uptake.

次いで、リポソームに含有させるカチオン性脂質の取り込み効率に対する影響を調べた。リポソームを構成する脂質に対し、カチオン性脂質の含有量は１０モル％とし、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）の含有量は２モル％とした。具体的には、ＤＯＴＡＰに代えて、ＤＳＴＡＰ、ＤＤＡＢ、又はＤＣ－Ｃｈｏｌを用いて同様にして製造された各ＨＡ－ＰＥ（ＳＯＰＥ）蛍光標識リポソームの取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）を測定した。対照として、非修飾蛍光標識リポソームも同様にして製造し、細胞への取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）を測定した。測定結果を図２に示す。ＨＭＭ３細胞における結果を図２Ａに、Ｈ２２６細胞における結果を図２Ｂに、それぞれ示す。図に示すように、いずれのカチオン性脂質を用いた場合でも、カチオン性脂質を含まないリポソームよりも、取り込み量を顕著に増大していた。中でも、ＤＯＴＡＰを含有させたリポソームが、他のカチオン性脂質を含有させたリポソームよりも取り込み効率が最も向上していた。 Next, the influence of the cationic lipid contained in the liposome on the uptake efficiency was investigated. The content of the cationic lipid was 10 mol % and the content of the HA-PE compound (SOPE) was 2 mol % relative to the lipid constituting the liposome. Specifically, the uptake amount (fluorescence intensity, AU) of each HA-PE (SOPE) fluorescence-labeled liposome produced in the same manner using DSTAP, DDAB, or DC-Chol instead of DOTAP was measured. It was measured. As a control, unmodified fluorescence-labeled liposomes were also produced in the same manner, and the amount of uptake into cells (fluorescence intensity, AU) was measured. The measurement results are shown in FIG. The results for HMM3 cells are shown in FIG. 2A, and the results for H226 cells are shown in FIG. 2B. As shown in the figure, the use of any cationic lipid significantly increased the amount of uptake compared to liposomes containing no cationic lipid. Among them, DOTAP-containing liposomes showed the highest uptake efficiency than liposomes containing other cationic lipids.

さらに、リポソームに含有させるＨＡ－ＰＥ体の量の取り込み効率に対する影響を調べた。まず、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）の含有量をリポソームの脂質総量に対して０．５～６モル％に変化させてＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームを調製した。カチオン性脂質（ＤＯＴＡＰ）の含有量は１０モル％とした。次いで、製造された各ＨＡ－ＰＥ（ＳＯＰＥ）蛍光標識リポソームのＨ２２６細胞への取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）を測定した。測定結果を図３に示す（ｎ＝３）。この結果、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）の含有量（修飾量）が２モル％の場合に最も取り込み量が多く、取り込み効率の向上効果が高いことがわかった。 Furthermore, the influence of the amount of HA-PE form contained in the liposomes on the uptake efficiency was investigated. First, HA-PE-modified fluorescence-labeled liposomes were prepared by varying the content of HA-PE (SOPE) from 0.5 to 6 mol % relative to the total lipid content of the liposome. The content of cationic lipid (DOTAP) was 10 mol %. Next, the amount of uptake (fluorescence intensity, AU) of each HA-PE (SOPE) fluorescence-labeled liposome produced into H226 cells was measured. The measurement results are shown in FIG. 3 (n=3). As a result, it was found that when the content (modification amount) of the HA-PE form (SOPE) was 2 mol %, the amount of uptake was the largest and the effect of improving the uptake efficiency was high.

また、細胞のヒアルロン酸受容体の発現量のＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの取り込み効率に対する影響も調べた。具体的には、ＨＭＭ３細胞とＨ２２６細胞に加えて、ＣＤ４４の発現が少ないＨＭＭ１細胞に対して、非修飾蛍光標識リポソーム（ＤＯＴＡＰ含有量：１０モル％）とＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソーム（ＤＯＴＡＰ含有量：１０モル％、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）の含有量：２モル％）の取り込み量を測定した。測定結果を図４に示す。図に示すように、ＨＭＭ１細胞では、ＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームでは、非修飾蛍光標識リポソームと同様ほとんど取り込みは観察されなかった。これらの結果から、ＨＡ－ＰＥ体で修飾したリポソームは、細胞表面のヒアルロン酸受容体に特異的に結合して細胞内へ取り込まれることが確認された。 In addition, the influence of the expression level of hyaluronic acid receptors in cells on the uptake efficiency of HA-PE modified liposomes was also investigated. Specifically, in addition to HMM3 cells and H226 cells, unmodified fluorescently labeled liposomes (DOTAP content: 10 mol%) and HA-PE modified fluorescently labeled liposomes (DOTAP-containing amount: 10 mol %, content of HA-PE form (SOPE): 2 mol %) was measured. The measurement results are shown in FIG. As shown in the figure, almost no uptake was observed with HA-PE modified fluorescently labeled liposomes as well as unmodified fluorescently labeled liposomes in HMM1 cells. From these results, it was confirmed that the HA-PE-modified liposome specifically binds to the hyaluronic acid receptor on the cell surface and is taken up into the cell.

また、リポソームを修飾するＨＡ－ＰＥ体のヒアルロン酸の大きさのＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの取り込み効率に対する影響も調べた。具体的には、ＨＡ－ＰＥ体を製造する際に用いるヒアルロン酸を、５０ｋＤａに代えて８ｋＤａ又は５００ｋＤａにした以外は同様にしてＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソーム（ＤＯＴＡＰ含有量：１０モル％、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）の含有量：０．５～１０モル％）を調製した。次いで、製造された各ＨＡ－ＰＥ（ＳＯＰＥ）蛍光標識リポソームと非修飾蛍光標識リポソームのＨ２２６細胞への取り込み量（蛍光強度、Ａ．Ｕ．）を測定し、非修飾蛍光標識リポソームの取り込み量を１とした相対取り込み量を求めた。各ＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームの相対取り込み量の結果を図５に示す（ｎ＝３）。この結果、５００ｋＤａのヒアルロン酸から得られたＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームでもＨＡ－ＰＥ体で修飾することによる細胞への取り込み効率向上の効果は得られた。一方で、８ｋＤａのヒアルロン酸から得られたＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームは、相対取り込み量が１未満であり、ＨＡ－ＰＥ体で修飾することによる細胞への取り込み効率向上の効果は観察されなかった。これは、リポソーム表面のヒアルロン酸が小さく、ヒアルロン酸受容体との相互作用が弱いためと推察された。 In addition, the influence of the size of hyaluronic acid in HA-PE modified liposomes on the uptake efficiency of HA-PE modified liposomes was also investigated. Specifically, HA-PE-modified fluorescence-labeled liposomes (DOTAP content: 10 mol%, HA - PE body (SOPE) content: 0.5 to 10 mol%) was prepared. Next, the amount of uptake (fluorescence intensity, AU) of each of the manufactured HA-PE (SOPE) fluorescently labeled liposomes and unmodified fluorescently labeled liposomes into H226 cells was measured, and the amount of uptake of the unmodified fluorescently labeled liposomes was calculated. The relative uptake was determined as 1. The results of relative uptake of each HA-PE-modified fluorescence-labeled liposome are shown in FIG. 5 (n=3). As a result, even the HA-PE-modified fluorescence-labeled liposome obtained from 500 kDa hyaluronic acid showed the effect of improving the uptake efficiency into cells by modifying it with HA-PE. On the other hand, the HA-PE-modified fluorescence-labeled liposome obtained from 8 kDa hyaluronic acid had a relative uptake amount of less than 1, and the effect of improving the uptake efficiency into cells by modification with HA-PE was not observed. rice field. It is speculated that this is because the amount of hyaluronic acid on the liposome surface is small and the interaction with hyaluronic acid receptors is weak.

また、非修飾蛍光標識リポソーム（ＤＯＴＡＰ含有量：１０モル％）又はＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソーム（ＤＯＴＡＰ含有量：１０モル％、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）の含有量：２モル％）を取り込ませたＨ２２６細胞における各リポソームの細胞内局在を調べた。具体的には、各リポソームを取り込ませた細胞を蛍光核酸染色剤で核染色し、蛍光顕微鏡を用いて、リポソームの細胞内局在を観察した。各細胞の核染色画像（上段）とリポソーム蛍光画像（3,3'-dioctadecyloxacarbo-cyanine perchlorateの蛍光画像、下段）を図６に示す。ＨＡ－ＰＥ修飾蛍光標識リポソームを取り込ませた細胞では、非修飾蛍光標識リポソームを取り込ませた細胞よりも、細胞内に多くの赤色蛍光が観察されており、より多くのリポソームが細胞内に取り込まれていた。また、細胞内のリポソームには、エンドソームと共局在しているものも多く認められた。これは、ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームが、細胞膜のヒアルロン酸受容体と結合するだけではなく、その後エンドサイトーシスにより細胞内へ取り込まれていることを示唆している。 In addition, unmodified fluorescently labeled liposomes (DOTAP content: 10 mol%) or HA-PE modified fluorescently labeled liposomes (DOTAP content: 10 mol%, HA-PE (SOPE) content: 2 mol%) were incorporated. The subcellular localization of each liposome was examined in H226 cells that had been exposed to the cells. Specifically, the nucleus of each liposome-incorporated cell was stained with a fluorescent nucleic acid stain, and the intracellular localization of the liposome was observed using a fluorescence microscope. FIG. 6 shows nuclear staining images (upper) and liposome fluorescence images (3,3′-dioctyloxacarbo-cyanine perchlorate fluorescence images, lower) of each cell. In the cells into which the HA-PE-modified fluorescent-labeled liposomes were incorporated, more red fluorescence was observed in the cells than in the cells into which the unmodified fluorescent-labeled liposomes were incorporated, indicating that more liposomes were incorporated into the cells. was In addition, many intracellular liposomes co-localized with endosomes. This suggests that the HA-PE-modified liposomes not only bind to hyaluronic acid receptors on the cell membrane, but are then taken up into cells by endocytosis.

［実施例２］
ヒアルロン酸誘導体を含むリポソームの薬剤キャリアとして効果を調べるために、当該リポソームに抗がん剤を内包させて、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞に対するＣＤＤＰの殺細胞効果を調べた。抗がん剤としては、シスプラチン（ＣＤＤＰ）を用いた。 [Example 2]
In order to examine the effects of liposomes containing hyaluronic acid derivatives as drug carriers, anticancer drugs were encapsulated in the liposomes, and the cell-killing effect of CDDP on cells expressing hyaluronic acid receptors was examined. Cisplatin (CDDP) was used as an anticancer agent.

＜ＣＤＤＰ内封リポソームの製造＞
脂質膜を水和する際の溶媒として、ＣＤＤＰを溶解させた溶媒を用いた以外は実施例１と同様にして、ＣＤＤＰを内封したＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム（ＤＯＴＡＰ含有量：１０モル％、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）の含有量：２モル％）を製造した。対照として、同様にしてＣＤＤＰを内包する非修飾リポソーム（ＤＯＴＡＰ含有量：１０モル％）も製造した。内封されなかったＣＤＤＰは限外濾過によって除去した。得られたリポソームのＣＤＤＰ内封率を、高周波誘導結合プラズマ発光分光分析法で測定したところ、およそ１０％であった。 <Production of CDDP-encapsulating liposome>
CDDP-encapsulated HA-PE modified liposomes (DOTAP content: 10 mol%, HA - content of PE body (SOPE): 2 mol%). As a control, an unmodified CDDP-encapsulating liposome (DOTAP content: 10 mol %) was also prepared in the same manner. Unencapsulated CDDP was removed by ultrafiltration. The CDDP encapsulation rate of the resulting liposomes was measured by high frequency inductively coupled plasma atomic emission spectroscopy and found to be approximately 10%.

＜ＣＤＤＰ内封リポソームの細胞への取り込み＞
ＨＭＭ３細胞及びＨ２２６細胞の培養培地に、各ＣＤＤＰ内封リポソームをＣＤＤＰ量として０．１～２０μｇ／ｍＬとなる量（脂質量として１０～２０００μＭ）添加して、４８時間培養した。培養後にＷＳＴアッセイを行い、細胞生存率（％）を測定した。対照として、リポソームに内封していないＣＤＤＰを等量培養培地に添加して４８時間培養した細胞に対してもＷＳＴアッセイを行い、細胞生存率（％）を測定した。測定結果を図７に示す。ＨＭＭ３細胞における結果を図７Ａに、Ｈ２２６細胞における結果を図７Ｂに、それぞれ示す。この結果、ＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームを取り込ませた細胞では、ＣＤＤＰ内封非修飾リポソームを取り込ませた細胞と比較して、５０％の殺細胞活性（ＥＣ_５０）としておよそ１／１０の値を示した。また、このＥＣ_５０は、リポソームに内封していないＣＤＤＰ（フリーＣＤＤＰ）とほぼ同様の値であった。リポソームに内封しているにもかかわらず、フリーのＣＤＤＰとほぼ同程度に高い殺細胞活性を示したことから、ＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームは薬剤キャリアとして非常に優れていることが明らかである。 <Uptake of CDDP-encapsulated liposomes into cells>
Each CDDP-encapsulating liposome was added to the culture medium of HMM3 cells and H226 cells in an amount of 0.1 to 20 μg/mL as CDDP (10 to 2000 μM as lipid) and cultured for 48 hours. After culturing, WST assay was performed to measure cell viability (%). As a control, WST assay was also performed on cells cultured for 48 hours by adding an equal amount of CDDP not encapsulated in liposomes to the culture medium, and the cell viability (%) was measured. The measurement results are shown in FIG. The results for HMM3 cells are shown in FIG. 7A, and the results for H226 cells are shown in FIG. 7B. As a result, the 50% cell-killing activity (EC ₅₀ ) of the cells incorporated with the CDDP-encapsulated HA-PE-modified liposomes was approximately 1/10 compared to the cells incorporated with the CDDP-encapsulated unmodified liposomes. showed the value. _In addition, this EC50 value was almost the same as that of CDDP not encapsulated in liposomes (free CDDP). Despite being encapsulated in liposomes, it exhibited almost the same level of cell-killing activity as free CDDP, demonstrating that CDDP-encapsulated HA-PE modified liposomes are excellent drug carriers. is.

また、ＣＤ４４の活性化はがん細胞の増悪を招くことが知られている。そこで、ＣＤＤＰを内封していないＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの細胞増殖への影響を調べた。具体的には、ＨＭＭ３細胞及びＨ２２６細胞の培養培地に、ＣＤＤＰを内封していないＨＡ－ＰＥ修飾リポソームを添加して４８時間培養し、ＷＳＴアッセイを行い、細胞生存率（％）を測定した。測定結果を図８に示す。ＨＭＭ３細胞における結果を図８Ａに、Ｈ２２６細胞における結果を図８Ｂに、それぞれ示す。この結果、ＣＤＤＰを内封していないＨＡ－ＰＥ修飾リポソームを取り込ませた細胞では、細胞生存率への影響はほとんど見られず、ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームはＣＤ４４を介在するがん細胞の増悪を誘導しなかった。 In addition, activation of CD44 is known to cause exacerbation of cancer cells. Therefore, the effect of HA-PE modified liposomes not encapsulating CDDP on cell proliferation was examined. Specifically, HA-PE modified liposomes not encapsulating CDDP were added to the culture medium of HMM3 cells and H226 cells, cultured for 48 hours, WST assay was performed, and cell viability (%) was measured. . FIG. 8 shows the measurement results. The results for HMM3 cells are shown in FIG. 8A, and the results for H226 cells are shown in FIG. 8B. As a result, cells incorporated with HA-PE modified liposomes not encapsulating CDDP showed almost no effect on cell viability, and HA-PE modified liposomes inhibited CD44-mediated exacerbation of cancer cells. did not induce.

［実施例３］
悪性胸膜中皮腫胸腔内播種マウスを用いて、ＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの抗腫瘍効果を評価した。 [Example 3]
Mice with malignant pleural mesothelioma intrathoracic dissemination were used to evaluate the antitumor effect of CDDP-encapsulated HA-PE modified liposomes.

＜悪性胸膜中皮腫胸腔内播種マウスの作製＞
５×１０^６個のＨ２２６細胞を、４週齢の雄の免疫不全マウス（BALB/cAJcl nu/nu）の右肺側胸腔内へ移植して、悪性胸膜中皮腫胸腔内播種マウスを作製した。 <Preparation of malignant pleural mesothelioma intrathoracic disseminated mice>
5×10 ⁶ H226 cells were transplanted into the thoracic cavity on the right lung side of 4-week-old male immunodeficient mice (BALB/cAJcl nu/nu) to prepare malignant pleural mesothelioma intrathoracic disseminated mice. .

＜ＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム＞
実施例２と同様にして、ＣＤＤＰを内封したＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム（ＤＯＴＡＰ含有量：１０モル％、ＨＡ－ＰＥ体（ＳＯＰＥ）の含有量：２モル％）を製造した。得られたＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームは、平均粒子径が２６２．１±２９．１ｎｍ、多分散度指数（ＰＤＩ）が０．３４６±０．０６、ゼータ電位が－３６．４±２．７９ｍＶであった。 <CDDP-encapsulated HA-PE modified liposome>
In the same manner as in Example 2, CDDP-encapsulated HA-PE modified liposomes (DOTAP content: 10 mol %, HA-PE (SOPE) content: 2 mol %) were produced. The resulting CDDP-encapsulated HA-PE modified liposome had an average particle size of 262.1±29.1 nm, a polydispersity index (PDI) of 0.346±0.06, and a zeta potential of −36.4±2. 0.79 mV.

＜悪性胸膜中皮腫胸腔内播種マウスへのＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム投与＞
Ｈ２２６細胞を移植してから７、１４、２１、２８日後に、ＰＢＳ、ＣＤＤＰ単剤（１．５ｍｇ／ｋｇ）、又はＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム（ＣＤＤＰ量として１．５ｍｇ／ｋｇ）を、右肺側胸腔内へと投与し、体重変化と生存率を経時的に測定した。生存率の経時的変化を図９に示す。エンドポイントは、日本学術会議が提唱するガイドラインを参考にし、７日間で２５％の体重減少が確認された時点とした。その結果、生存平均日数は、ＰＢＳ投与群が３６．５日、ＣＤＤＰ単剤（フリーＣＤＤＰ）投与群が２６．０日であった。フリーＣＤＤＰ投与群には、ＰＢＳ投与群よりも早期に死亡する個体が認められた。これらの個体の死因は、フリーＣＤＤＰの毒性に由来するものと推察された。一方で、ＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム投与群では、Ｈ２２６細胞移植後４６日後まで死亡個体は見られなかった。また、Ｈ２２６細胞移植後４６日後のＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム投与群について、Ｈ２２６細胞の拡散状況を確認したところ、背側の壁側胸膜にもＨ２２６細胞が拡散している個体もあったが、多くは背側の壁側胸膜にわずかに拡散していることが観察されたのみであり、ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームに内封したＣＤＤＰは、強く腫瘍の成長を抑制し得ることが確認された。 <Administration of CDDP-encapsulated HA-PE modified liposomes to malignant pleural mesothelioma intrathoracic disseminated mice>
7, 14, 21, and 28 days after transplantation of H226 cells, PBS, CDDP alone (1.5 mg/kg), or CDDP-encapsulated HA-PE modified liposomes (CDDP amount: 1.5 mg/kg) were administered. , was administered into the thoracic cavity on the right side of the lung, and changes in body weight and survival rate were measured over time. FIG. 9 shows changes in survival rate over time. The end point was defined as the point at which 25% weight loss was confirmed in 7 days with reference to the guidelines advocated by the Science Council of Japan. As a result, the average survival days were 36.5 days for the PBS administration group and 26.0 days for the CDDP single agent (free CDDP) administration group. Some animals in the free CDDP-administered group died earlier than those in the PBS-administered group. The cause of death of these individuals was presumed to be derived from the toxicity of free CDDP. On the other hand, in the CDDP-encapsulated HA-PE modified liposome-administered group, no dead animals were observed until 46 days after H226 cell transplantation. In addition, 46 days after H226 cell transplantation, the CDDP-encapsulated HA-PE modified liposome-administered group was examined for the diffusion of H226 cells. However, most of them were only observed to diffuse slightly into the parietal pleura on the dorsal side, confirming that CDDP encapsulated in HA-PE modified liposomes can strongly suppress tumor growth. rice field.

また、犠牲個体の腎臓を摘出し、ヘマトキシリンエオシン染色によりＣＤＤＰの副作用が報告されている腎臓の組織切片を観察した。この結果、フリーＣＤＤＰ投与群で認められた尿細管の壊死が、ＣＤＤＰ内封ＨＡ－ＰＥ修飾リポソーム投与群では見られなかった。つまり、ＣＤＤＰのような毒性の高い薬効成分をＨＡ－ＰＥ修飾リポソームに内封することにより、それ自身の毒性を抑えつつ目的の薬効を得られることがわかった。 In addition, the kidneys of the sacrificed individuals were removed and stained with hematoxylin-eosin to observe tissue sections of kidneys reported to have side effects of CDDP. As a result, necrosis of the renal tubule observed in the free CDDP administration group was not observed in the CDDP encapsulating HA-PE modified liposome administration group. In other words, by encapsulating a highly toxic medicinal ingredient such as CDDP in HA-PE-modified liposomes, it was found that desired medicinal efficacy could be obtained while suppressing the toxicity of the liposome itself.

静脈内投与したヒアルロン酸は受容体を介して大部分が肝臓、一部が腎臓に移行する。そこで、ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームの肝臓及び腎臓への分布を調べた。この結果、ＨＡ－ＰＥ修飾リポソームは、非修飾リポソームと比較して、これらの臓器への分布の増加は確認されなかった。 Intravenously administered hyaluronic acid migrates mostly to the liver and partly to the kidneys via receptors. Therefore, the distribution of HA-PE-modified liposomes to the liver and kidney was investigated. As a result, HA-PE-modified liposomes did not show increased distribution to these organs compared to unmodified liposomes.

Claims (9)

４０～１００ｋＤａのヒアルロン酸の末端の還元糖であるＮ－アセチルグルコサミンの水酸基に、直鎖状の疎水性基を備える中性脂質が直接又は間接的に連結されたヒアルロン酸誘導体を含有し、
前記中性脂質が、１本の飽和脂肪酸残基と１本の不飽和脂肪酸残基を備えるジアシルグリセロリン脂質である、脂質ナノ粒子。 A hyaluronic acid derivative in which a neutral lipid having a linear hydrophobic group is directly or indirectly linked to the hydroxyl group of N-acetylglucosamine, which is a terminal reducing sugar of 40 to 100 kDa hyaluronic acid,
Lipid nanoparticles, wherein the neutral lipid is a diacylglycerophospholipid with one saturated fatty acid residue and one unsaturated fatty acid residue. 脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する前記ヒアルロン酸誘導体の割合が０．５～１５モル％である、請求項１に記載の脂質ナノ粒子。 The lipid nanoparticle according to claim 1, wherein the ratio of the hyaluronic acid derivative to the total amount of lipids constituting the lipid nanoparticle is 0.5 to 15 mol%. さらに、カチオン性脂質を含む、請求項１又は２に記載の脂質ナノ粒子。 3. Lipid nanoparticles according to claim 1 or 2, further comprising a cationic lipid. さらに、中性脂質を含む、請求項１～３のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。 Lipid nanoparticles according to any one of claims 1 to 3, further comprising neutral lipids. さらに、グリセロリン脂質及びスフィンゴリン脂質を含む、請求項１～４のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。 Lipid nanoparticles according to any one of claims 1 to 4, further comprising glycerophospholipids and sphingophospholipids. 低分子化合物、低分子核酸、及びペプチドからなる群より選択される１種以上を含有する、請求項１～５のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。 The lipid nanoparticles according to any one of claims 1 to 5, containing one or more selected from the group consisting of low-molecular-weight compounds, low-molecular-weight nucleic acids, and peptides. 薬効成分を含有しており、標的細胞へ前記薬効成分を送達するキャリアである、請求項１～６のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。 The lipid nanoparticle according to any one of claims 1 to 6, which contains a medicinal ingredient and is a carrier that delivers the medicinal ingredient to target cells. 前記標的細胞が、ヒアルロン酸受容体を発現している細胞である、請求項７に記載の脂質ナノ粒子。 Lipid nanoparticles according to claim 7, wherein the target cells are cells expressing hyaluronic acid receptors. 抗がん剤を含有しており、悪性胸膜中皮腫／胸膜播種した肺がんの治療に用いられる、請求項１～８のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。 The lipid nanoparticle according to any one of claims 1 to 8, which contains an anticancer agent and is used for treatment of malignant pleural mesothelioma/pleural dissemination lung cancer.

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