JP6581758B2 - 幹細胞及びそのデータを獲得する方法 - Google Patents

幹細胞及びそのデータを獲得する方法 Download PDF

Info

Publication number
JP6581758B2
JP6581758B2 JP2014127875A JP2014127875A JP6581758B2 JP 6581758 B2 JP6581758 B2 JP 6581758B2 JP 2014127875 A JP2014127875 A JP 2014127875A JP 2014127875 A JP2014127875 A JP 2014127875A JP 6581758 B2 JP6581758 B2 JP 6581758B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cells
stem cells
sample
data
cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2014127875A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2015006183A5 (ja
JP2015006183A (ja
Inventor
ワン ジェイムズ
ワン ジェイムズ
ケイ チェン スティーブ
ケイ チェン スティーブ
リン モウ−シウン
リン モウ−シウン
イェン，ユン
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Stembios Technologies Inc
Original Assignee
Stembios Technologies Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Stembios Technologies Inc filed Critical Stembios Technologies Inc
Publication of JP2015006183A publication Critical patent/JP2015006183A/ja
Publication of JP2015006183A5 publication Critical patent/JP2015006183A5/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP6581758B2 publication Critical patent/JP6581758B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5094—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for blood cell populations
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5044—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
    • G01N33/5073—Stem cells
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
    • G01N15/10—Investigating individual particles
    • G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
    • G01N15/1456—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry without spatial resolution of the texture or inner structure of the particle, e.g. processing of pulse signals
    • G01N15/1459—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry without spatial resolution of the texture or inner structure of the particle, e.g. processing of pulse signals the analysis being performed on a sample stream

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Ecology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

本発明は細胞及びそのデータを獲得する方法に関するものであり、特に幹細胞及びそのデータを獲得する方法に関する。
幹細胞研究の発展につれて、幹細胞はすでに予防医学の先駆物であると見なされており、加えて近年ではその関連産業の成長も加速化を示し、人類が幹細胞の医療応用に対する需要が目立ってきている。幹細胞は体内細胞の修復及び更新を担っているため、幹細胞は体の器官と組織の健康を維持する機能がある。よって、幹細胞は体の健康を維持する決定的な要素を見なさすことができ、幹細胞によって健康を見直す新しい風潮が持ち上がってきている。
本発明の主な目的は、ヒトまたは動物体内の幹細胞（例えば、多能性幹細胞）をまず培養、活性化（または化学反応）、流動、刺激、生成または増加させた後にヒトまたは動物の末梢血から獲得、収集または収穫する多種の方法を提供する。
本発明のもう一つの目的は、多種の幹細胞データ（例えば、ある種の幹細胞がヒトまたは動物の組織試料における単位体積当たりの数）の獲得方法を提供する。
前述目的を達成するため、本発明から幹細胞を獲得する方法を提供する。係る方法は、個体（例えば、ヒトまたは動物）に所定の行為を受け入れるかまたは行わせるステップ（１）と、個体に所定の行為を行わせたか、或いは受けさせた後に所定の時間を待機させるステップ（２）と、個体が所定の待機時間を経過した後に、個体から組織試料を採取するステップ（３）と、組織試料から複数の幹細胞を収集するステップ（４）と、を含む。所定の行為は、例えば薬草またはフコイダンを含有する物質の服用を含む。係る所定の時間は３０分〜２時間、または１〜１２時間、あるいは１２〜３６時間である。係る組織試料は、例えば個体の末梢血を含めることができる。幹細胞は、複数の多能性幹細胞（例えば、大きさが０．１〜６マイクロメータのＣＤ９（＋）、ＣＤ３４９（＋）細胞、大きさが０．１〜６マイクロメータのＣＤ３４９（＋）細胞、大きさが０．１〜６マイクロメータのＬｇｒ５（＋）細細胞、大きさが０．１〜６マイクロメータＣＤ９（−）、ＳＳＥＡ４（＋）細胞）を含めることができる。前述した幹細胞の獲得方法は例えば幹細胞を収集した後に、これらの幹細胞をセ氏０度以下の環境に貯蔵することを含めることができる。幹細胞は、歯のインプラント治療手術、整形手術、がんの治療、組織修復の治療、膝半月板損傷の治療または関節炎治療に応用できる。
前述目的を達成するため、本発明から幹細胞データを獲得する方法を提供する。本発明の方法は、個体（例えば、ヒトまたは動物）から組織試料を獲得するステップ（１）と、係る組織試料を処理することによって、試験試料を獲得するステップ（２）と、血球計數器（ｈｅｍｏｃｙｔｏｍｅｔｅｒ）を用いて、試験試料の第１部分のうち第１グループの顆粒数を計算して、第１試料を獲得するステップ（３）と、フローサイトメーター（ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ）を用いて、試験試料の第２部分のうち第２グループの顆粒の所定種の細胞数計算によって、第２データを獲得するステップ（４）と、第１データと第２データの基づき、第３データを獲得するステップ（５）と、を含む。係る組織試料は、個体の末梢血を含めることができる。第１グループの顆粒の大きさが第２グループの顆粒より大きいかまたは実質上に閾値の大きさ（ｔｈｒｅｓｈｏｌｄ ｓｉｚｅ）と等しい。係る閾値の大きさは、例えば１マイクロメータである。係る第２グループの顆粒は例えば、複数の白血球、複数の赤血球、複数の血小板及び／または複数の顆粒細胞（ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ）を含めることができる。係る種の幹細胞は、一種の多分化能幹細胞または一種の多能性幹細胞（例えば、大きさが０．１〜６マイクロメータのＣＤ９（＋）、ＣＤ３４９（＋）細胞、大きさが０．１〜６マイクロメータのＣＤ３４９（＋）細胞、大きさが０．１〜６マイクロメータのＬｇｒ５（＋）細細胞、大きさが０．１〜６マイクロメータＣＤ９（−）、ＳＳＥＡ４（＋）細胞）を含めることができる。第１データは例えば、第１グループの顆粒が試験試料の単位体積当たりの数を含めることができる。第２データは例えば、係る種の細胞数が第２グループの顆粒の数に占めるパーセントを含めることができる。そして、第３データは例えば、係る種の幹細胞が組織試料に占める単位体積当たりの数を含めることができる。前述目的を達成するため、本発明から幹細胞データを獲得する方法を提供する。係る方法は、個体（例えば、ヒトまたは動物）から組織試料を獲得するステップ（１）と、係る組織試料を処理することによって、試験試料を獲得するステップ（２）と、試験試料の第１部分のうち、第１グループの顆粒の数を計算することによって、第１データを獲得するステップ（３）と、試験試料の第２部分のうち第２グループの顆粒の数を計算することによって、第２データを獲得するステップ（４）と、第１データと第２データの基づき、第３データを獲得するステップ（５）と、を含む。係る組織試料は、例えば個体の末梢血を含めることができる。第１グループの顆粒の大きさが第２グループの顆粒より大きいかまたは実質上に閾値の大きさと等しい、係る閾値の大きさは例えば、１マイクロメータである。係る第２グループの顆粒は例えば、複数の白血球、複数の赤血球、複数の血小板及び／または複数の顆粒細胞を含めることができる。幹細胞は、一種の多分化能幹細胞または一種の多能性幹細胞（例えば、大きさが０．１〜６マイクロメータのＣＤ９（＋）、ＣＤ３４９（＋）細胞と、大きさが０．１〜６マイクロメータのＣＤ３４９（＋）細胞、大きさが０．１〜６マイクロメータのＬｇｒ５（＋）細細胞と、大きさが０．１〜６マイクロメータＣＤ９（−）、ＳＳＥＡ４（＋）細胞）を含めることができる。第１データは例えば、第１グループの顆粒が試験試料の単位体積当たりの数を含めることができる。第２データは例えば、係る種の細胞数が第２グループの顆粒の数に占めるパーセントを含めることができる。そして、第３データは例えば、係る種の幹細胞が組織試料に占める単位体積当たりの数を含めることができる。前述の幹細胞データの獲得方法は、例えば血球計算器を使用し、ステップ（３）を行い、フローサイトメーターを使用して、ステップ（４）を行うことができる。
精製工程を示すフロー図（その１）である。 精製工程を示すフロー図（その２）である。 精製工程を示すフロー図（その３）である。 精製工程を示すフロー図（その４）である。 精製工程を示すフロー図（その５）である。 精製工程を示すフロー図（その６）である。 本発明の一実施例に基づき、個体の組織試料から大量に幹細胞を獲得、収集、または収穫する方法のフロー図である。 本発明の一実施例に基づき、一種または多種の新種類の幹細胞を発見あるいは検出する方法のフロー図である。 本発明の一実施例に基づき、一種または多種の行為あるいは刺激が特定の疾患を患う個体を治癒または治療する効果の確認、決定または評価する方法のフロー図である。 ３名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用する前と服用後に示す幹細胞データである。 ３名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用する前と服用後に示す幹細胞データである。 ３名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用する前と服用後に示す幹細胞データである。 ３名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用する前と服用後に示す幹細胞データである。 ３名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用する前と服用後に示す幹細胞データである。 ３名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用する前と服用後に示す幹細胞データである。 本発明の一実施例に基づき、ヒト幹細胞データを獲得する方法のフロー図である。 フローサイトメーターに用いる前方向の散乱係数と／側面方向の散乱係数図（その１）である。 あるフコイダン補助剤の内容／成分情報である。 フコイダンの一部の分子構造である。 本発明の一実施例に基づき、個体の幹細胞データを獲得する方法のフロー図である。 本発明の一実施例に基づき、幹細胞データを獲得するための測量または分析方法のフロー図である。 本発明の一実施例に基づき、幹細胞データを獲得するための測量または分析方法のフロー図である。 本発明の一実施例に基づき、幹細胞データを獲得するための測量または分析方法のフロー図である。 血球計算器に示す顕微鏡グリッド（ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｉｃ ｇｒｉｄ）である。 フローサイトメーターに用いる前方向の散乱係数と／側面方向の散乱係数図（その２）である。 ヒト被験者がフコイダン補助剤を服用または摂取後、１．５時間における幹細胞データである。 フローサイトメーターの蛍光分布図であり、細胞核／細胞質比が比較的高い区域にある細胞の蛍光強度分布を示す。 本発明の一実施例に基づき、一つの実験組の４つの特定時点における参加者の幹細胞データを獲得する方法のフロー図である。 本発明の一実施例に基づき、一つの対照組の４つの特定時点における参加者の幹細胞データを獲得する方法のフロー図である。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 ５名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させ前と服用させた後の幹細胞データである。 １名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させる前と服用させた後の幹細胞データである。 １名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させる前と服用させた後の幹細胞データである。
以下に本発明の一部の実施例を開示されるが、当業者であれば描かれた実施例の説明に基づき、本発明のその他の実施例及び本発明の範疇において思料し、自らの実施例に変化や修飾することは可能であることをあらかじめに説明しておく。
図面は本発明の実施例を説明することを目的としており、よって、すべての実施例を開示しておらず、他の実施例によって取り取り代わるか、あるいは使用することは可能である。内容の重複を避けて、より効率的な説明を図るため、明らかなもの及び必要でない細部説明を省略する。それに対して、詳細説明の代りに実施例を説明する。同じ素子番号が異なる図面に示される場合は、同じまたは類似する構成品あるいはステップを示されている。
以下の説明を添付図面と合わせて参照することによって、本発明の態様をより詳しく理解できる。ただし、係る添付図面はあくまでも説明を目的としており、これに制限されるべきでない。さらに、図面は本発明の原理を説明するために描かれおり、実際の比例ではないことをあらかじめに説明して置く。
まず、本発明の用語の定義とその記述を説明し、引き続き本発明の各実施例を詳しく説明する。
＜大きさ（Ｚ）の定義＞
本発明において、以下の段落に触れる大きさ（Ｚ）は、細胞（例えば、幹細胞または生体細胞）の大きさを指す。大きさ（Ｚ）は例えば（ただし、限定ではない）、（１）細胞生物学分野で細胞の大きさまたは長さを代表する従来の定義と、（２）細胞の直径（特に細胞の形状が実質上球体のとき）と、（３）細胞長軸の長さ（特に細胞の形状が実質上楕円体のとき）と、（４）細胞の幅（細胞の形状が立方体に近いとき）と、（５）細胞の長さ（細胞の形状が直方体に近いとき）または（６）細胞の最大断面または横方向の大きさを記述または定義に関わる。光学顕微鏡または電子顕微鏡（例えば、走査型電子顕微鏡）から得られた細胞画像、またはフローサイトメーター（ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ）より獲得されたデータ（例えば、二次元の点、プロファイルまたは密度図）は、大きさ（ｚ）（直径、長さ、幅或いは最大の横断面または横方向の大きさのいずれか）の判定・測定に利用することができる。光学顕微鏡または電子顕微鏡から獲得された細胞映像は、例えば細胞の二次元の断面図または立体構造のいずれでも良い。一例として、光学顕微鏡または電子顕微鏡（例えば、走査型電子顕微鏡）を用いて、まず二次元の断面画像を得てから、係る二次元の断面画像における細胞最大の横断面または横方向の大きさを測定することを用いて、細胞の大きさ（Ｚ）が得られる。
＜幹細胞の定義＞
幹細胞は多くの種類を有しており、多能性幹細胞（ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）と、多能性幹細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）と、前駆幹細胞（ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）を含む。前駆幹細胞は、特異的な幹細胞または単能性幹細胞（ｕｎｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）ともいう。ＳＢ−１細胞、ＳＢ−２細胞、卵割球様幹細胞（ｂｌａｓｔｏｍｅｒｅ−ｌｉｋｅ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＢＬＳＣ）や超小型胚様幹細胞（ｖｅｒｙ ｓｍａｌｌ ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ−ｌｉｋｅ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＶＳＥＬ）などは、いずれも多能性幹細胞に属する。間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＭＳＣ）、多能性成体前駆細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ａｄｕｌｔ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ， ＭＡＰＣ）、骨髄由来間葉系幹細胞（ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＢＭＳＣ）、多能性成体幹細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ａｄｕｌｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＭＡＳＣ）などは、いずれも多分化能幹細胞に属する。さらに、神経幹細胞（ｎｅｕｒａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、網膜幹細胞（ｒｅｔｉｎａ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、嗅球幹細胞（ｏｌｆａｃｔｏｒｙ ｂｕｌｂｓ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、表皮幹細胞（ｅｐｉｄｅｒｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、腸管幹細胞（ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、筋肉幹細胞（ｍｕｓｃｌｅ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、膵臓幹細胞（ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、心臓幹細胞（ｈｅａｒｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、肝臓幹細胞（ｌｉｖｅｒ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、腎臓幹細胞（ｋｉｄｎｅｙ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、内皮幹細胞（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、脂肪または脂肪由来幹細胞（ａｄｉｐｏｃｙｔｅ ｏｒ ａｄｉｐｏｓｅ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、骨髄から単離した成人の多系統誘導性細胞（ｍａｒｒｏｗ−ｉｓｏｌａｔｅｄ ａｄｕｌｔ ｍｕｌｔｉｌｉｎｅａｇｅ ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ （ＭＩＡＭＩ）ｃｅｌｌ）、前間葉系幹細胞（ｐｒｅ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ｐｒｅ−ＭＳＣ）、多能性前駆細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌｓ， ＭＰＰ）、系統限定前駆細胞（ｌｉｎｅａｇｅ−ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ， ＬＲＰ）、通常骨髄前駆細胞（ｃｏｍｍｏｎ ｍｙｅｌｏｉｄ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ， ＣＭＰ）やリンパ球共通前駆細胞（ｃｏｍｍｏｎ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ， ＣＬＰ）などは、いずれも前駆幹細胞に属する。
以降の段落において、細胞（表面）マーカーの後ろに付けた符号「＋」とは、幹細胞にはこの種の細胞（表面）マーカーを表現することができることを指す。つまり、フローサイトメーターがある種（特定マーカー用）抗原によって、幹細胞の表面に存在するこの種の細胞（表面）マーカーを検出することができる。細胞（表面）マーカーの後ろに付けた符号「−」とは、幹細胞にはこの種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。つまり、この種の細胞（表面）マーカーは幹細胞の表面に存在しておらず、かつフローサイトメーターがある種の（特定マーカー用）抗体によって、この種の幹細胞表面の（表面）マーカーを検出することもできない。従って、プラス符号「＋」は幹細胞にとって、細胞（表面）マーカーが陽性反応（ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）を示し、マイナス符号「−」は幹細胞にとって、細胞（表面）マーカーが陰性反応（ｎｅｇａｔｉｖｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）を示す。
ＳＢ−１細胞は、細胞核を含む多能性幹細胞であると共に、ＣＤ９（＋）、ＣＤ３４９（＋）細胞またはＣＤ３４９（＋）細胞であっても良い。ＳＢ−１細胞は（例えばＣＤ９（＋）、ＣＤ３４９（＋）細胞と、ＣＤ３４９（＋）細胞の大きさ（寸法の記述は前述大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、限られない）、４マイクロメータ（ｍｉｃｒｏｍｅｔｅｒ）、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。ＣＤ９（＋）、ＣＤ３４９（＋）細胞の例として、ＳＢ−１細胞はＣＤ９とＣＤ３４９と２種の細胞（表面）マーカーを示すことができる。さらに、ＳＢ−１細胞はＣＤ９（＋）とＣＤ３４９（＋）によって、その特徴を記述することができる。ＣＤ３４９（＋）細胞の例として、ＳＢ−１細胞はＣＤ３４９の細胞（表面）マーカーを示すことができる。さらに、ＳＢ−１細胞はＣＤ３４９（＋）によって、その特徴を記述することができる。
ＳＢ−２細胞は、細胞核を含む多能性幹細胞であると共に、ＣＤ９（−）、ＳＳＥＡ４（＋）細胞またはＬｇｒ５（＋）細胞であっても良い。ＳＢ−２細胞は（例えばＣＤ９（−）、ＳＳＥＡ４（＋）細胞と、Ｌｇｒ５（＋）細胞の大きさ（寸法の記述は前述大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、限られない）、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。ＣＤ９（−）、ＳＳＥＡ４（＋）細胞の例として、ＳＢ−２細胞はＳＳＥＡ４の（表面）マーカーを示すことができるが、ＣＤ９細胞の（表面）マーカーを示すことができない。さらに、ＳＢ−２細胞はＣＤ９（−）とＳＳＥＡ４（＋）によって、その特徴を記述することができる。Ｌｇｒ５（＋）細胞の例として、ＳＢ−２細胞はＬｇｒ５の細胞（表面）マーカーを示すことができる。さらに、ＳＢ−２細胞はＬｇｒ５（＋）によって、その特徴を記述することができる。
卵割球様幹細胞（ＢＬＳＣ）は、細胞核を含む多能性幹細胞であると共に、ＣＤ６６ｅ（＋）細胞であっても良い。ＣＤ６６ｅ（＋）多能性幹細胞（つまり、卵割球様幹細胞）の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。卵割球様幹細胞はＣＤ６６ｅの種の細胞（表面）マーカーを示すことができるため、ＣＤ６６ｅ（＋）によって、その特徴を記述することができる。
超小型胚様幹細胞（ＶＳＥＬ）は、細胞核を含む多能性幹細胞であると共にＣＤ１３３（＋）、ＣＤ４５（−）， Ｌｉｎ（−）細胞またはＣＸＣＲ４（＋）、ＣＤ４５（−）、Ｌｉｎ（−）細胞であっても良い。超小型胚様幹細胞（例えばＣＤ１３３（＋）， ＣＤ４５（−）， Ｌｉｎ（−）多能性幹細胞とＣＸＣＲ４（＋）、ＣＤ４５（−）、Ｌｉｎ（−）多能性幹細胞の大きさ（寸法の記述は前述大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、限られない）、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。ＣＤ１３３（＋）、ＣＤ４５（−）、Ｌｉｎ（−）多能性幹細胞の例として、超小型胚様幹細胞には、ＣＤ１３３の細胞（表面）マーカーを表現することができるが、ただし、ＣＤ４５とＬｉｎとの２種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。さらに、超小型胚様幹細胞はＣＤ１３３（＋）、ＣＤ４５（−）とＬｉｎ（−）によって、その特徴を記述することができる。ＣＸＣＲ４（＋）、ＣＤ４５（−）、Ｌｉｎ（−）多能性幹細胞の例として、超小型胚様幹細胞には、ＣＸＣＲ４の細胞（表面）マーカーを表現することができるが、ただし、ＣＤ４５とＬｉｎとの２種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。さらに、超小型胚様幹細胞はＣＸＣＲ４（＋）、ＣＤ４５（−）、Ｌｉｎ（−）によって、その特徴を記述することができる。そのほかに、超小型胚様幹細胞は赤血球よりやや小さい。
間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＭＳＣ） は細胞核を有する多分化能幹細胞であり、かつＣＤ１３（＋）多能性成体幹細胞、ＣＤ２９（＋）多能性成体幹細胞、ＣＤ４４（＋）多能性成体幹細胞、ＣＤ７３（＋）多能性成体幹細胞、ＣＤ９０（＋）多能性成体幹細胞またはＣＤ１０５（＋）多能性成体幹細胞であっても良い。間葉系幹細胞は、以下ＣＤ１３、ＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５に示す一種または複数種の細胞（表面）マーカーを表現することができる。従って、間葉系幹細胞はＣＤ１３（＋）、ＣＤ２９（＋）、ＣＤ４４（＋）、ＣＤ７３（＋）、Ｃ９０（＋）とＣＤ１０５（＋）のいずれかの一種または複数種の特徴を有する。
間葉系幹細胞は、さまざまなグループによって組み合わされたものである。よって、各種の大きさと形状を有する。一例として、ある種の間葉系幹細胞の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、これらに限定されない）、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。さらに、一部の間葉系幹細胞の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい。
造血幹細胞（ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＨＳＣ）は細胞核を有する多分化能幹細胞であり、かつＣＤ３４（＋）、ｃＫｉｔ（−）、ＣＤ３８（−）、Ｌｉｎ（−）細胞またはＣＤ１５０（＋）、ＣＤ２４４（−）、ＣＤ４８（−）細胞であっても良い。造血幹細胞は（例えばＣＤ３４（＋）、ｃＫｉｔ（−）、ＣＤ３８（−）、Ｌｉｎ（−）多分化能幹細胞とＣＤ１５０（＋）、ＣＤ２４４（−）、ＣＤ４８（−）多分化能幹細胞の大きさ（寸法の記述は前述大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、限られない）は、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。ＣＤ３４（＋）， ｃＫｉｔ（−）， ＣＤ３８（−）， Ｌｉｎ（−）多分化能または前駆幹細胞の例として、造血幹細胞にはＣＤ３４の細胞（表面）マーカーを表現することができるが、ただし、ｃＫｉｔとＣＤ３８とＬｉｎとの３種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。さらに、造血幹細胞はＣＤ３４（＋）、ｃＫｉｔ（−）、ＣＤ３８（−）とＬｉｎ（−）によって、その特徴を記述することができる。ＣＤ１５０（＋）， ＣＤ２４４（−）， ＣＤ４８（−多分化能または前駆幹細胞の例として、造血幹細胞にはＣＤ１５０の細胞（表面）マーカーを表現することができるが、ただし、ＣＤ２４４とＣＤ４８この２種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。さらに、造血幹細胞はＣＤ１５０（＋）、ＣＤ２４４（−）和ＣＤ４８（−）によって、その特徴を記述することができる。
多能性成体前駆細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ａｄｕｌｔ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ， ＭＡＰＣ） は細胞核を有する多分化能幹細胞であり、かつＣＤ１３（＋）， ＳＳＥＡ１（＋）細胞であっても良い。ＣＤ１３（＋）、ＳＳＥＡ１（＋）多分化能幹細胞（つまり、多能性成体前駆細胞）は、ＣＤ１３とＳＳＥＡ１この種の細胞（表面）マーカーを表現することができる。従って、多能性成体前駆細胞は、ＣＤ１３（＋）とＳＳＥＡ１（＋）によって、その特徴を記述することができる。多能性成体前駆細胞（例えば、ＣＤ１３（＋）、ＳＳＥＡ１（＋））多分化能幹細胞の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい（ただし、これらに限定されない）、例えば、８〜１５マイクロメータの範囲であっても良い。
骨髄由来間葉系幹細胞（ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＢＭＳＣ） は細胞核を有する多分化能幹細胞であり、かつＣＤ１０５（＋）多分化能幹細胞、ＣＤ１１７（＋）多分化能幹細胞またはＣＤ１３（＋）， ＳＳＥＡ３（＋）多分化能幹細胞であっても良い。ＣＤ１０５（＋）多分化能幹細胞の例として、骨髄由来間葉系幹細胞ＣＤ１０５の細胞（表面）マーカーを表現することができるため、ＣＤ１０５（＋）には、その特徴を記述することができる。ＣＤ１１７（＋）多分化能幹細胞の例として、骨髄由来間葉系幹細胞ＣＤ１１７の細胞（表面）マーカーを表現することができるため、よって、ＣＤ１１７（＋）によって、その特徴を記述することができる。ＣＤ１３（＋）、ＳＳＥＡ３（＋）多分化能幹細胞の例として、骨髄由来間葉系幹細胞ＣＤ１３とＳＳＥＡ３と２種の細胞（表面）マーカーを表現することができるため、ＣＤ１３（＋）とＳＳＥＡ３（＋）によって、その特徴を記述することができる。骨髄由来間葉系幹細胞（例えば、ＣＤ１０５（＋））多分化能幹細胞、ＣＤ１１７（＋）多分化能幹細胞と、ＣＤ１３（＋）， ＳＳＥＡ３（＋）多分化能幹細胞）の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、これらに限定されない）、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい、例えば、８〜１５マイクロメータの範囲であっても良い。
多能性成体幹細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ａｄｕｌｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ＭＡＳＣ） は細胞核を有する多分化能幹細胞であり、かつＯｃｔ４（＋）多分化能幹細胞、Ｎａｎｏｇ（＋）またはＲＥＸＬ（＋）多分化能幹細胞であっても良い。Ｏｃｔ４（＋）多分化能幹細胞の例として、多能性成体幹細胞にはＯｃｔ４の細胞（表面）マーカーを表現することができるため、Ｏｃｔ４（＋）によって、その特徴を記述することができる。Ｎａｎｏｇ（＋）多分化能幹細胞の例として、多能性成体幹細胞Ｎａｎｏｇの細胞（表面）マーカーを表現することができるため、Ｎａｎｏｇ（＋）によって、その特徴を記述することができる。ＲｅｘＩ（＋）多分化能幹細胞の例として、多能性成体幹細胞にはＲｅｘＩの細胞（表面）マーカーを表現することができるため、ＲｅｘＩ（＋）によって、その特徴を記述することができる。多能性成体幹細胞（例えば、Ｏｃｔ４（＋））多分化能幹細胞、Ｎａｎｏｇ（＋）多分化能幹細胞と、ＲｅｘＩ（＋）多分化能幹細胞）の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、これらに限定されない）、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい、例えば、８〜１５マイクロメータの範囲であっても良い。
成人の多系統誘導性（ｍａｒｒｏｗ−ｉｓｏｌａｔｅｄ ａｄｕｌｔ ｍｕｌｔｉｌｉｎｅａｇｅ ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ， ＭＩＡＭＩ）細胞は、細胞核を含む前駆幹細胞であり、かつＣＤ２９（＋）、ＣＤ６３（＋）、ＣＤ８１（＋）、ＣＤ１２２（＋）、ＣＤ１６４（＋）先駆幹細胞であっても良い。成人の多系統誘導性細胞によって、ＣＤ２９、ＣＤ６３、ＣＤ８１、ＣＤ１２２とＣＤ１６４この５種の細胞（表面）、マーカーを表現できるため、ＣＤ２９（＋）、ＣＤ６３（＋）、ＣＤ８１（＋）、ＣＤ１２２（＋）とＣＤ１６４（＋）をもって、その特徴を記述することができる。多成人の多系統誘導性細胞（例えば、ＣＤ２９（＋）， ＣＤ６３（＋）， ＣＤ８１（＋）， ＣＤ１２２（＋）， ＣＤ１６４（＋）先駆幹細胞）の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、これらに限定されない）、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい、例えば、８〜１５マイクロメータの範囲であっても良い。
前間葉系幹細胞（ｐｒｅ−ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ， ｐｒｅ−ＭＳＣ）は細胞核を含む先駆細胞であり、かつＳＳＥＡ１（＋）先駆幹細胞であっても良い。前間葉系幹細胞によって、ＳＳＥＡ１細胞の（表面）マーカーを表現できるため、ＳＳＥＡ１（＋）をもって、その特徴を記述することができる。前間葉系幹細胞（例えばＳＳＥＡ１（＋））先駆幹細胞の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、これらに限定されない）、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい、例えば、８〜１５マイクロメータの範囲であっても良い。
多能性前駆細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ， ＭＰＰ）は細胞核を含む先駆細胞であり、かつＣＤ３４（＋）， ｃＫｉｔ（＋）， ＣＤ３８（−）， Ｌｉｎ（−）細胞またはＣＤ１５０（−）， ＣＤ２４４（＋）， ＣＤ４８（−）細胞であっても良い。多能性前駆細胞（例えば、ＣＤ３４（＋）， ｃＫｉｔ（＋）， ＣＤ３８（−）， Ｌｉｎ（−）先駆幹細胞とＣＤ１５０（−）， ＣＤ２４４（＋）， ＣＤ４８（−）先駆幹細胞）の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、これらに限定されない）、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい、例えば、８〜１５マイクロメータの範囲であっても良い。ＣＤ３４（＋）， ｃＫｉｔ（＋）， ＣＤ３８（−）， Ｌｉｎ（−）前駆幹細胞の例として、多能性前駆幹細胞にはＣＤ３４とｃＫｉｔの２種の細胞（表面）マーカーを表現することができるが、ただし、ＣＤ３８とＬｉｎの２種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。さらに、多能性前駆幹細胞はＣＤ３４（＋）ＣＤ３４（＋）、ｃＫｉｔ（＋）、ＣＤ３８（−）とＬｉｎ（−）によって、その特徴を記述することができる。ＣＤ１５０（−）、ＣＤ２４４（＋）、ＣＤ４８（−）前駆幹細胞の例として、多能性前駆幹細胞にはＣＤ２４４の細胞（表面）マーカーを表現することができるが、ただし、ＣＤ１５０とＣＤ４８この２種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。多能性前駆幹細胞はＣＤ１５０（−）、ＣＤ２４４（＋）とＣＤ４８（−）によって、その特徴を記述することができる。
系統限定前駆細胞（ｌｉｎｅａｇｅ−ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ， ＬＲＰ）は細胞核を含む先駆細胞であり、かつＣＤ３４（−）、ｃＫｉｔ（＋）、ＣＤ３８（−）、Ｌｉｎ（−）細胞またはＣＤ１５０（−）， ＣＤ２４４（＋）， ＣＤ４８（−）細胞であっても良い。系統限定前駆細胞（例えば、ＣＤ３４（−）， ｃＫｉｔ（＋）， ＣＤ３８（−）， Ｌｉｎ（−）先駆幹細胞とＣＤ１５０（−）， ＣＤ２４４（＋）， ＣＤ４８（＋）先駆幹細胞）の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、これらに限定されない）、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい、例えば、８〜１５マイクロメータの範囲であっても良い。ＣＤ３４（−）， ｃＫｉｔ（＋）， ＣＤ３８（−）， Ｌｉｎ（−）前駆幹細胞の例として、系統限定前駆細胞にはｃＫｉｔの種の細胞（表面）マーカーを表現することができるが、ただし、ＣＤ３４、ＣＤ３８とＬｉｎこの３種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。系統限定前駆細胞はＣＤ３４（−）、ｃＫｉｔ（＋）、ＣＤ３８（−）とＬｉｎ（−）によって、その特徴を記述することができる。ＣＤ１５０（−）、ＣＤ２４４（＋）、ＣＤ４８（＋）前駆幹細胞の例として、系統限定前駆細胞にはＣＤ２４４とＣＤ４８この２種の細胞（表面）マーカーを表現することができるが、ただし、ＣＤ１５０の種の細胞（表面）マーカーを表現することができない。系統限定前駆細胞はＣＤ１５０（−）、ＣＤ２４４（＋）とＣＤ４８（＋）によって、その特徴を記述することができる。
通常骨髄前駆細胞（ｃｏｍｍｏｎ ｍｙｅｌｏｉｄ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ）またはリンパ球共通前駆細胞（ｃｏｍｍｏｎ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ）は細胞核を含む先駆細胞であり、かつＣＤ９０（＋）細胞であっても良い。通常骨髄前駆細胞またはリンパ球共通前駆細胞（例えば、ＣＤ９０（＋）前駆幹細胞）の大きさ（前述細胞の大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は（ただし、これらに限定されない）、６マイクロメータ、７マイクロメータまたは１０マイクロメータより大きい、例えば、８〜１５マイクロメータの範囲であっても良い。通常骨髄前駆細胞またはリンパ球共通前駆細胞は、ＣＤ９０の細胞（表面）マーカーを表現することができるため、ＣＤ９０（＋）によって、その特徴を記述することができる。
造血先駆幹細胞（ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ， ＨＰＣ）は細胞核を含む先駆細胞であり、かつＣＤ２４（＋）先駆幹細胞、ＣＤ３８（＋）先駆幹細胞、ＣＤ４８（＋）先駆幹細胞、ＣＤ２４４（＋）先駆幹細胞またはＣＸＣＲ４（＋）先駆幹細胞であっても良い。造血先駆幹細胞は、以下ＣＤ２４、ＣＤ３８、ＣＤ４８、ＣＤ２４４とＣＸＣＲ４に示す一種または複数種の細胞（表面）マーカーを表現することができる。従って、造血先駆幹細胞はＣＤ２４（＋）、ＣＤ３８（＋）、ＣＤ４８（＋）、ＣＤ２４４（＋）とＣＸＣＲ４（＋）のいずれかの一種または複数種の特徴を有する。
間葉系前駆細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ）は細胞核を含む先駆細胞であり、かつＣＸＣＲ４（＋）先駆幹細胞、ＳＳＥＡ１（＋）先駆幹細胞、ＣＤ２７１（＋）先駆幹細胞またはＳｔｒｏ−１（＋）先駆幹細胞であっても良い。間葉系前駆細胞は、以下のＣＸＣＲ４、ＳＳＥＡ１、ＣＤ２７１とＳｔｒｏ−１に示す一種または複数種の細胞（表面）マーカーを表現することができる。従って、間葉系前駆細胞はＣＸＣＲ４（＋）、ＳＳＥＡ１（＋）、ＣＤ２７１（＋）またはＳｔｒｏ−１（＋）のいずれかの一種または複数種の特徴を有する。
＜行為または刺激（Ｘ）に関する説明＞
複数種の行為または刺激（Ｘ）の事例を以下のとおり説明する。これらの項目は事前の評価によって、個体（例えば、ヒトまたは非ヒトの体（例えばの体））の体内に含む一種または特定の複数種の幹細胞の細胞数を有効に増加させることができる。
行為または刺激（Ｘ３）は、下記の項目を含む。
１．薬品の服用、係る薬品は例えば、合成薬品または天然抽出物を含有する薬品などである。
２．薬草または漢方薬の服用、係る薬草または漢方薬であり、例えば冬虫夏草、朝鮮人参、枸杞、霊芝、ベニクスノキタケ及び／またはアガリクス茸などである。
３．例えば、栄養錠剤または栄養粉末などの栄養補助食品または健康補助食品（ｄｉｅｔａｒｙ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ）を服用する。係る栄養補助食品または健康補助食品には、ビタミン（例えばビタミンＡ、ビタミンＢ、ビタミンＢグループ、ビタミンＢ１２、ビタミンＤ、ビタミンＤ３、ビタミンＥなど）、大量または微量な鉱物質（例えばカルシウム、ナトリウム、カリウム、フッ素、臭素、クロミウム、ヨウ素、珪素、セレニウム、ベリリウム、コバルト、バナジウム、ニッケルなど）、多糖（ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ）、高分子量フコース含有の糖蛋白質（ｈｉｇｈ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｗｅｉｇｈｔ ｆｕｃｏｓｅ−ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ）、藻類（クロレラ、藍藻、褐藻など）、フコース（ｆｕｃｏｓｅ）、褐藻の特殊成分 − フコイダン（ｆｕｃｏｉｄａｎ）、低分子フコイダン（ｏｌｉｇｏ ｆｕｃｏｉｄａｎ）、藻類、フコイダンを含める褐藻（例えば、沖縄県に生息する褐藻）、もずく（Ｍｏｚｕｋｕ）、クロレラ、藍藻、褐藻（もずく、昆布（ｋｅｌｐ）、若布（ｕｎｄａｒｉａ ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ）、ヒジキ（ｓａｒｇａｓｓｕｍ ｆｕｓｉｆｏｒｍｅ）など）、植物化学物質（ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ）（例えば、イソフラボン（ｉｓｏｆｌａｖｏｎｅｓ）、植物エストロゲン（ｐｈｙｔｏｅｓｔｒｏｇｅｎ）など）、リコペン（ｌｙｃｏｐｅｎｅ）、緑茶エッセンス（ｇｒｅｅｎ ｔｅａ ｅｓｓｅｎｃｅ）、没食子酸エピガロカテキン（ｅｐｉｇａｌｌｏｃａｔｅｃｈｉｎ ｇａｌｌａｔｅ， ＥＧＣＧ）、糖鎖栄養素（ｇｌｕｃｏｎｕｔｒｉｅｎｔｓ）（例えば、ガラクトース（Ｇａｌａｃｔｏｓｅ）、キシロース（Ｘｙｌｏｓｅ）、グルコース（Ｇｌｕｃｏｓｅ）、マンノース（Ｍａｎｎｏｓｅ）、Ｎ−アセチルグルコサミン（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ ｇｌｕｃｏｓａｍｉｎｅ）、アセチルガラクトサミン（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ ｇａｌａｃｔｏｓａｍｉｎｅ）、アセチルノイラミン酸（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ ｎｅｕｒａｍｉｎｉｃ ａｃｉｄ）など）、魚油、チャンチン、植物、葉っぱ、果実、野菜、魚、海藻、または藻類の栄養素いずれかの一種または複数種の物質或いは成分を含まれている。
４．精進食飲食の励行。
５．健康食品または有機食品の摂取。
６．代替（非伝統的な）薬品の服用
７．代替療法または代替治療（例えば、ゲルソン治療（Ｇｅｒｓｏｎ ｔｈｅｒａｐｙ）、ブルース癌症療法（ｔｈｅ Ｂｒｅｕｓｓ ｃａｎｃｅｒ ｃｕｒｅ）など）の受け入れ。
８．鍼治療の受け入れ。
９．マッサージ（例えば、足裏マッサージ）の受け入れ。
１０．運動する（例えば、歩行、ジョギング、ダンス、体操、ヨガー、有酸素運動、太極拳など）。
１１．睡眠（その目的は睡眠品質の評価）を取る。
１２．瞑想。
１３．個人、保健専門家または医師が設計した健康改善計画または疾病治療計画の進行。
１４．体内器官を改善できる栄養補助食品の服用、例えば、前立腺の健康状態を改善できるリコペンの服用。
１５．怪我の治療、治療手術による創傷治療または疾病の治療をするために、リハビリテーション計画の進行。
１６．薬用酒の飲用（薬用酒は一種または複数種の薬材を酒に所定の期間を漬けて作られる）、例えば、朝鮮人参薬用酒（朝鮮人参薬用酒は朝鮮人参を高アルコール濃度の米酒に１か月漬けて作られる）。
１７．政府部門または機関（例えば、米国食品医薬品局）が認可された特定の疾患治療（例えば、癌症、皮膚病、腎臓病など）の薬物の服用。
１８．政府部門が認可された特定の疾患治療（例えば、癌症、皮膚病、腎臓病など）方法の受け入れ。
１９．祈祷または神様への礼拝などの宗教活動の取り組みや参与。
２０．太陽光（または日光）の直接または間接照射を受け、照射を受ける時間は例えば、 （１）日出前１０分間から日出後５０分間まで（この時間帯に大量な赤外線を有する）の朝時間帯、（２）午前１１時３０分（１１：３０ ＡＭ）から午後１２時３０分（１２：３０ ＰＭ）まで（この時間帯に大量な紫外線を有する）の昼時間帯、または（３）日没前５０分間から日没後１０分間まで（この時間帯に大量な赤外線を有する）の午後の時間帯。
２１．可視光のフルスペクトル（ｓｐｅｃｔｒｕｍ）、赤外線のフルスペクトル、赤光のフルスペクトル、緑光のフルスペクトル、青光のフルスペクトル、紫外線のフルスペクトルまたは前述一種以上が混合された光線のフルスペクトルを含む蛍光灯または発光ダイオード（ＬＥＤ）の出射光源の照射。
２２．病気の後、けがの後または手術後に体の治癒力に用いる方法または治療（例えば、高濃度酸素治療）など、体の治癒力改善の計画、治療、方法、機器及び／またはシステムの進行、受け入れ。
２３．コーヒーの摂取（例えば、ブラックコーヒー）。
２４．お茶の摂取（例えば、緑茶、紅茶またはジャスミン茶）。
２５．赤ワインの摂取。
２６．メラトニン（ｍｅｌａｔｏｎｉｎ）の服用。
２７．音楽の鑑賞、例えばモーツァルトの交響曲または交響曲或ベートーヴェン交響曲。
２８．一錠または複数錠のフコイダン補助剤を服用する。そのうち、フコイダン補助剤は、６０重量パーセント以上のフコイダンまたは低分子フコイダンが好ましい。フコイダン補助剤については、以下の第１実験と図１１の説明を参考する。
２９．フコイダンまたは低分子フコイダンを含む物質を注射する（例えば、栄養補助食品またはサプリメント）。
３０．４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄フコイダン補助剤を摂取または服用する。係るフコイダン補助剤は、８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）の日本もずく粉末（沖縄フコイダン補助剤については、以下の第１実験と図１１の説明を参考する）を服用または摂取する。そのうち、そのうち、４．５グラムの沖縄フコイダン補助剤は例えば、３グラム（または２グラム以上）のフコイダンあるいは６０重量パーセントを超えるフコイダンである。その一部分のフコイダンの分子構造を図１２に示す。
３１．ホルモン補助剤の服用または注射。
３２．（１）各種のアミノ酸（例えば、アルギニン（Ａｒｇｉｎｉｎｅ）、ヒスチジン（Ｈｉｓｔｉｄｉｎｅ）、リシン（Ｌｙｓｉｎｅ）、アスパラギン酸（Ａｓｐａｒｔｉｃ ａｃｉｄ）、グルタミン酸（Ｇｌｕｔａｍｉｃ ａｃｉｄ）、セリン（Ｓｅｒｉｎｅ）、トレオニン（またはスレオニン、Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）、アスパラギン（Ａｓｐａｒａｇｉｎｅ）、グルタミン（Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ）、システイン（Ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、セレノシスチン（Ｓｅｌｅｎｏｃｙｓｔｅｉｎｅ）、グリシン（Ｇｌｙｃｉｎｅ）、プロリン（Ｐｒｏｌｉｎｅ）、トリプトファン（Ｔｒｙｐｔｏｐｈａｎ）、アラニン（Ａｌａｎｉｎｅ）、バリン（Ｖａｌｉｎｅ）、イソロイシン（Ｉｓｏｌｅｕｃｉｎｅ）、ロイシン（Ｌｅｕｃｉｎｅ）、メチオニン（Ｍｅｔｈｉｏｎｉｎｅ）、フェニルアラニン（Ｐｈｅｎｙｌａｌａｎｉｎｅ）、チロシン（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ）など）、（２）均衡アミノ酸（ｂａｌａｎｃｅｄ ａｍｉｎｏ ａｃｉｄ）、または（３）９種の体に必要なアミノ酸（ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リシン、メチオニン、フェニルアラニン、トレオニン、トリプトファンと、バリン）などの栄養補助食品、栄養製品、栄養エキス、栄養飲料、栄養補充剤または栄養食品の摂取。例として、（ａ）小豆、緑豆または黒豆を含む発酵製品、（ｂ）一種または複数種の果物（甜菜（ｓｕｇａｒ ｂｅｅｔ）、リンゴ、グアバ、キーウィフルーツ、ぶどう、パイナップル、ドラゴンフルーツ、青パパイヤ、トマト、アボカドなど）を含む発酵物の液体、飲料またドリンクや（ｃ）一種または複数種の薬材を酒に所定の期間を漬けて作られた薬用酒、例えば、朝鮮人参を高アルコール濃度の米酒に１か月を漬けて作られる朝鮮人参薬用酒などが挙げられる。
そのほかに、前述の行為または刺激（Ｘ）によって、投与量、強さ、持続時間、頻度（それぞれの行為は、例えば一種以上の細部行為（ｓｕｂ−ａｃｔｉｏｎ）を含み、例えば、１時間置きに１錠の薬物を合計３回服用する）及び／または時間（例えば、１日の時間帯（朝、正午、午後、夕方、夜）、食事前、食事中、食事後、または季節（春、夏、秋、冬）など）などのさまざまな要素に配慮を加える。一例として、個体（例えば、ヒトの体、非ヒトの体）が薬物または栄養補助食品を服用する場合は、投与量（例えば、グラム数）と、時間（例えば、朝食前、朝食後、寝る前）などの要素を配慮に加える。さらに別例として、個体（例えば、ヒトの体、非ヒトの体）が太陽光の照射を受けるときに、１日の時間帯（例えば、朝、正午または午後）、季節（例えば、春、夏、秋または冬）及び照射持続時間（例えば、３０分間、１時間または２時間）などの要素を配慮に加える。
＜個体（Ｓ）及び組織試料（Ｐ）の説明＞
個体（Ｓ）としては、例えば子供、青少年、成年男子、成年女子または老人などヒトの体。または、個体（Ｓ）は非ヒトの体（または非人体動物という）例えば、ペット（動物）、農場の動物、実験動物、または疾患モデル動物（ｄｉｓｅａｓｅ−ｍｏｄｅｌ ａｎｉｍａｌ）であっても良い。以下に、ペット、農場動物、実験動物、または疾患モデル動物の事例は、霊長類動物（例えば、猿またはゴリラ）、犬、げっ歯動物（例えば、ねずみまたはテンジクネズミ）、ねこ、馬、牛、羊、豚、にわとり、鴨、鵞鳥、鳥、象、蛙、魚などを挙げられる。個体（Ｓ）の説明は、以下の各実施例において適用する。本発明において、個体（Ｓ）は参加者または被験者とも言う。
各種細胞を含有する組織試料（Ｐ）は、個体（Ｓ）の体液（ｂｏｄｉｌｙ ｆｌｕｉｄ）または固形組織（ｓｏｌｉｄ ｔｉｓｓｕｅ）から取り出し、獲得、取得または採取することができる。個体（Ｓ）の体液は、例えば血液（例えば末梢血（ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｂｌｏｏｄ））または骨髄などである。個体（Ｓ）がヒトの体のとき、体液はヒトの骨髄またはヒトの血液（例えば、末梢血）であっても良い。末梢血は体内に循環して流れる血液をいう。個体（Ｓ）の固形組織は、例えば神経、筋肉、皮膚、内臓、骨格、腎臓、肝臓、膵臓、胸腺、脂肪細胞または脂肪組織などである。組織試料（Ｐ）が個体（Ｓ）の体液から獲得される場合は、組織試料（Ｐ）は、例えば末梢血試料、全血検体または骨髄試料などの体液試料であっても良い。全血は、個体（Ｓ）（例えば、ヒトの体）の末梢血を採取し獲得した後に、その他の処理前に抗凝固剤と混合したものである。組織試料（Ｐ）は個体（Ｓ）の固形組織から獲得される場合、組織試料（Ｐ）は例えば、筋肉試料または脂肪細胞試料などの個体組織試料であっても良い。個体（Ｓ）がヒトの体である場合、組織試料（Ｐ）は、ヒトの骨格試料またはヒトの全血検体（例えば、末梢血試料または全血検体）であっても良い。
＜検査または測定方法（Ｍ０）＞
個体（詳細内容は、個体（Ｓ）の説明を参照）から採取した組織試料が血液試料（例えば、末梢血試料または全血検体）のとき、検査または測定方法（Ｍ０）は、解析前の準備工程（Ｙ０）を実行した後に、解析工程（Ｔ０）を実行することによって、一種または複数種の幹細胞（前述とおり）の結果またはデータを獲得する。結果またはデータは例えば、各種の細胞数を含む。
分析前の準備工程（Ｙ０）において、個体から採取される全血検体を以下に示す２種の方式のいずれかの１種によって処理することができる。
準備工程（Ｙ０）に用いる第１種方式は以下のとおり説明する。まず、全血検体（前述個体から採取する）を入れた試験管にカクテル（ｃｏｃｋｔａｉｌ）を加え、全血検体とカクテルとを均一に混合した後には、全血検体が得られる。一例として、カクテルが１００マイクロリットル（μＬ）のＲｏｓｅｔｔｅＳｅｐ
（外）
Figure 0006581758
ヒト前駆幹細胞濃縮カクテル（ＲｏｓｅｔｔｅＳｅｐ
（外）
Figure 0006581758
Ｈｕｍａｎ Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ Ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ Ｃｏｃｋｔａｉｌ）である場合、試験管内には、２ミリリットル（ｍＬ）の全血検体を入れた。引き続き、全血検体を室温（例えば、２７℃前後）にて、所定の時間（例えば、２０分前後）を培養する。培養完了後、第１溶液を用いて全血検体を希釈し、ゆっくりと両者を混合させる。混合完了後には、希釈試料が得られる。係る第１溶液は、例えば２％の牛胎児血清（ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ， ＦＢＳ）／燐酸緩衝生理食塩水（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ， ＰＢＳ）である。引き続き、試薬（例えば、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ
（外）
Figure 0006581758
）を入れた試験管に希釈試料をゆっくりと入れる。入れる過程では、希釈試料と試薬とが相互に混合してしまうことを避けて、試料が試薬の上面に位置させるようにする。引き続き、希釈試料と試薬とを含有する混合物を室温（例えば、２７℃前後）にて、適切な回転速度（例えば、毎分３，０００回転）で所定の時間（例えば、２０分間）を遠心し、遠心完了後は、４つの顕著な成層構造が形成される。これらの４つの顕著な成層構造は、上から下に向けて、血漿層と、多種の細胞を含む細胞層、試薬層、赤血球層から構成されている。引き続き、血漿層と、多種細胞を含む細胞層と、試薬層との上半分とをもう一つの試験管に入れて、適切な回転速度（例えば、毎分３，０００回転）で所定の時間（例えば、２０分間）を遠心し、遠心完了後には、遠心試料が得られる。引き続き、遠心試料の上澄み液（ｓｕｐｅｒｎａｔａｎｔ）を取り除き、遠心試料内の複数種細胞を第２溶液（例えば、２％のＦＢＳ／ＰＢＳ）に再び懸濁させる。さらに、適切量の緩衝液（例えば、３Ｘ赤血球分解液（ｒｅｄ−ｂｌｏｏｄ−ｃｅｌｌ （ＲＢＣ）ｌｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ）を第２溶液に加え、緩衝液を含まれた第２溶液を室温で所定の時間（例えば、１０分間）培養した後に、第３溶液（例えば、２％のＦＢＳ／ＰＢＳ）に用いて、第２溶液（このときは、緩衝液が含まれている）内の複数種細胞を２回洗い流す。洗い流し完了後、複数種の細胞を第４溶液（例えば、１％または２％ウシ血清アルブミン（ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ ａｌｂｕｍｉｎ， ＢＳＡ）を含む燐酸緩衝生理食塩水）に再び懸濁させて、複数種の細胞と第４溶液の混合物を獲得する。本発明において、０．１グラムのウシ血清アルブミンを１０ミリリットルの燐酸緩衝生理食塩水緩衝液に溶かせることによって、１％のウシ血清アルブミンを含む燐酸緩衝生理食塩水緩衝液を得ることができる。０．２グラムのウシ血清アルブミンを１０ミリリットルの燐酸緩衝生理食塩水緩衝液に溶かせることによって、２％のウシ血清アルブミンを含む燐酸緩衝生理食塩水緩衝液を得ることができる。引き続き、適切な抗体を含む試薬を複数種の細胞と第４溶液の混合物に加えて、試験試料が形成される。試験試料は、以降の解析工程（Ｔ０）に使用される。
準備工程（Ｙ０）に用いる第２種方式は以下のとおり説明する。まず、６％のヒドロキシエチル澱粉（Ｈｅｔａｓｔａｒｃｈ）を全血検体（前述個体から採取）に加え（６％ヒドロキシエチル澱粉と全血検体との体積比１：５）、血液試料を獲得する。６％のヒドロキシエチル澱粉は一種の溶液であり、燐酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に６％のヒドロキシエチル澱粉を含有しており、つまり、毎１００ミリリットル（ｍＬ）の燐酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に６グラムのヒドロキシエチル澱粉を含有している。引き続き、血液試料を室温（例えば、２７℃）で所定の時間（例えば、３０分間以上）を静置または培養する。血液試料が上下２つの成層構造に形成された後に、下層構造（すなわち、赤血球層）を撹乱しない前提において、上層構造（すなわち、細胞層）をピペット（ｐｉｐｅｔｔｅ）から取り出し、試験管に入れた後に、試験管内の上層構造を適切な回転速度（例えば、毎分３，０００回転）で所定の時間（例えば、１５分間）を遠心し、遠心完了後、遠心試料が得られる。引き続き、遠心試料の上澄み液を取り除き、適量な食塩水（例えば、ＰＢＳ）を用いて、遠心試料の粒子を洗い流す。引き続き、粒子を適量な食塩水（例えば、１％または２％のウシ血清アルブミンを含む燐酸緩衝生理食塩水緩衝液）に再び懸濁させて、粒子と適切な溶液を含む混合物を獲得する。引き続き、適切な抗体を含む試薬を粒子と適切な溶液の混合物に加えて、試験試料が形成される。試験試料は、以降の解析工程（Ｔ０）に使用される。
準備工程（Ｙ０）を完了した後、解析工程（Ｔ０）に進み、準備工程（Ｙ０）の第１種または第２種方法から獲得した試験試料を解析し、血液試料に関わる一種または複数種の幹細胞一組の結果またはデータを取得する。係る組の結果またはデータは、定量、定性または記述などの方式によって示すことが可能である。ここでいう一種または複数種の幹細胞は、少なくとも一種の多機能幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞、ＳＢ−２細胞、卵割球様幹細胞、超小型胚様幹細胞、他の種の多機能幹細胞及び／または一つのグループから選択された２種または以上の多機能幹細胞）、少なくとも一種の多能性幹細胞（例えば、間葉系幹細胞、他の種の多機能幹細胞及び／または一つのグループから選択された２種または以上の多機能幹細胞）、造血幹細胞及び少なくとも一種の先駆細胞のうち、一種または複数種の幹細胞を指す。
解析工程（Ｔ０）は、流動細胞計測法（ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ）によって、達成することができる。流動細胞計測法はフローサイトメーター（ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｅｒという解析機器）を用いて、細胞の計算、細胞の分類及び生物マーカー検出などのステップによって、血液試料のパラメータを解析することができる。フローサイトメーターは、血液試料に含まれる特定細胞（表面）マーカーが陽性反応を示すか否かを解析することに用いられる。フローサイトメーターによって、前述一種または複数種の幹細胞に関する結果またはデータは、幹細胞の種類及び前述一種または複数種の幹細胞の関連数値（例えば、数量、百分比及び／または大きさ）と、を含む。
＜検査または測定方法（Ｍ１）＞
検査または測定方法（Ｍ１）は、精製工程（Ｙ１）を実施してから、解析工程（Ｔ１）を実施する方法によって完成する。精製工程（Ｙ１）は、以下に示す３つの方式のうち、いずれかの一つの方式を用いて、個体（詳細内容は、個体（Ｓ）の説明を参照）から組織試料を採取する。組織試料の説明は、組織試料（Ｐ）を参照する。一例として、組織試料が個体の体液（例えば、ヒトの血液、末梢血試料または骨髄）から採取される場合、組織試料は、体液試料（例えば、末梢血試料、全血検体または骨髄試料）である。そして、組織試料が前述個体の固形組織（例えば、筋肉試料または脂肪細胞）から採取された場合、組織試料は固形組織試料（例えば、筋肉試料または脂肪細胞試料）である。このほか、組織試料が前述個体の固形組織から採取された場合、精製工程（Ｙ１）を実施する前に、組織試料にコラゲナーゼ（ｃｏｌｌａｇｅｎａｓｅ）を加えて、組織試料とコラゲナーゼとを所定の温度下（係る温度は、例えば３７℃前後、または３０℃以上または３５〜３９℃或いは３０〜４０℃）において、少なくとも６または８時間作用させる。
図１に示すように、精製工程（Ｙ１）の第１種の方式において、まず、前述組織試料に抗凝血剤（例えば、二価陽イオンキレート剤）を含む収集袋１０に移す。係る二価陽イオンキレート剤（ｄｉｖａｌｅｎｔ ｃａｔｉｏｎ ｃｈｅｌａｔｉｎｇ ａｇｅｎｔ）は、エチレンジアミン四酢酸（ｅｔｈｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅｔｅｔｒａａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ， ＥＤＴＡ）であっても良い。引き続き、収集袋１０の底部に装着されたフィルタ１１によって、組織試料の小さい細胞を収集袋１０から流れ出して、試験管１２ａに収集される。フィルタ１１を通過できる小さい細胞の大きさ（大きさの定義は前述した大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、４マイクロメータ（ｍｉｃｒｏｍｅｔｅｒ）、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。引き続き、遠心分離器１３を用いて、試験管１２ａを所定の遠心力（例えば、１，０００ｇ、７００ｇ以上、１，３００ｇ以上、５００ｇ〜２，５００ｇ、８００ｇ〜１，６００ｇ）によって、所定の時間（例えば、１８分前後、１２分以上、１６分以上、１０〜３０分、１５〜２２分）を遠心させる。試験管１２ａの遠心を完了した後、これらの小さい細胞を分離させる。最後に、これらの小さい細胞を溶液（係る溶液に、例えばＰＢＳとＢＳＡとを含有する）に入れて、これらの小さい細胞を再び係る溶液に再び懸濁させて、これらの小さい細胞とこの溶液を含む試験試料１４ａが得られる。試験試料１４ａは、以降の解析工程（Ｔ１）に使用される。
精製工程（Ｙ１）の第２種の方式において、まず、図２に示すように、もし前述組織試料は個体の固形組織から採取された場合、コラゲナーゼによって処理された組織試料（前述とおり）を試験管１２ｂに入れる。引き続き、遠心機１３を用いて、低速度の遠心力（例えば、１００ｇ、５０ｇ〜４５０ｇ、または８０ｇ〜２５０ｇ）によって、試験管１２ｂを所定の時間（例えば、１０分前後、８分以上、１２分以上、８〜１５分、９〜２０分）に遠心した後、さらに高速度の遠心力（例えば、１，０００ｇ、７００ｇ以上、１，３００ｇ以上、５００ｇ〜２，５００ｇ、８００ｇ〜１，６００ｇ）によって、試験管１２ｂを所定の時間（例えば、１８分前後、１２分以上、１６分以上、１０〜３０分、１５〜２２分）に遠心する。試験管１２ａの遠心を完了した後、組織試料から小さい細胞を分離させる。分離されたこれらの小さい細胞の大きさ（大きさの定義は前述した大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。最後に、これらの小さい細胞を溶液（係る溶液に、例えばＰＢＳとＢＳＡとを含有する）に入れて、これらの小さい細胞を再び係る溶液に再び懸濁させて、これらの小さい細胞とこの溶液を含む試験試料１４ｂが得られる。試験試料１４ｂは、以降の解析工程（Ｔ１）に使用される。
精製工程（Ｙ１）の第３種の方式において、図３に示すように、もし前述組織試料が被測定者の体液から採取された場合、組織試料を赤血球分解液１６で所定の時間（例えば、１０分前後、８分以上、１２分以上、８〜１５分、９〜２０分）培養するか、または所定の時間作用させることによって、組織試料に含まれるすべての赤血球細胞を取り除く。引き続き、組織試料と、赤血球分解液１６を含有する混合液を試験管１２ｃに入れる。引き続き、遠心機１３を用いて、低速度の遠心力（例えば、１００ｇ、５０ｇ〜４５０ｇ、または８０ｇ〜２５０ｇ）によって、試験管１２ｃを所定の時間（例えば、１０分前後、８分以上、１２分以上、８〜１５分または９〜２０分）に遠心した後、さらに高速度の遠心力（例えば、１，０００ｇ、７００ｇ以上、１，３００ｇ以上、５００ｇ〜２，５００ｇ、８００ｇ〜１，６００ｇ）によって、試験管１２ｃを所定の時間（例えば、１８分前後、１２分以上、１６分以上、１０〜３０分または１５〜２２分）に遠心する。試験管１２ｃの遠心を完了した後、組織試料と赤血球分解液１６を含有する混合液から小さい細胞を分離させる。分離されたこれらの小さい細胞の大きさ（大きさの定義は前述した大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。最後に、これらの小さい細胞を溶液（係る溶液に、例えばＰＢＳとＢＳＡとを含有する）に入れて、小さい細胞を再び係る溶液に再び懸濁させて、小さい細胞とこの溶液を含む試験試料１４ｃが得られる。試験試料１４ｃは、以降の解析工程（Ｔ１）に使用される。
精製工程（Ｙ１）で、試験試料１４ａ、１４ｂまたは１４ｃを得た後、解析工程（Ｔ１）において、試験試料１４ａ、１４ｂまたは１４ｃに対して解析を行うことによって、前述組織試料から一種または複数種の小さい幹細胞に関する結果或いはデータを獲得する。係る組の結果またはデータは、定量、定性または記述などの方式によって示すことが可能である。このほか、図１、図２または図３に示す解析機器１５ａ（例えば、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ， ＲＴ−ＰＣＲ）装置またはフローサイトメーター）は、解析工程（Ｔ１）の進行に使用される。前述一種または複数種の小さい幹細胞に関する結果またはデータは、小さい幹細胞の種類及び前述一種または複数種の小さい幹細胞の種類の関連数値（例えば、数量、百分比及び／または大きさの大きさ）を含む。ここでいう、一種または複数種の小さい幹細胞は、少なくとも一種の多機能幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞、ＳＢ−２細胞、卵割球様幹細胞、超小型胚様幹細胞、他の種の多機能幹細胞及び／または一つのグループから選択された２種または以上の多機能幹細胞）、少なくとも一種の多能性幹細胞（例えば、間葉系幹細胞、他の種の多機能幹細胞及び／または一つのグループから選択された２種または以上の多機能幹細胞）、造血幹細胞及び少なくとも一種の先駆細胞のうち、一種または複数種の幹細胞を指す。これらの小さい細胞の大きさ（大きさの定義は前述した大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。
解析工程（Ｔ１）は、流動細胞計測法または逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）解析（例えば、リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ解析（ｒｅａｌ−ｔｉｍｅ ＲＴ−ＰＣＲ ａｎａｌｙｓｉｓ））といった２種の方式によって達成することができる。流動細胞計測法は、フローサイトメーター（この計器は、一種の解析機器１５ａである）を用いて、細胞の計算、細胞の分類及び生物マーカー検出などの方式によって、試料のパラメータを解析することができる。フローサイトメーター１５ａは、試料に含まれる特定細胞（表面）マーカーが陽性反応を示すか否かを解析するときに用いられる。ＲＴ−ＰＣＲ解析法は（リアルタイム）は、ＲＴ−ＰＣＲ装置（この装置は、一種の解析機器１５ａである）を用いて、試料に含まれる幹細胞の遺伝子表現を検出と定量することができる。ＲＴ−ＰＣＲ解析法によって得られた結果として、幹細胞に表される各種の遺伝子が分かり、これらの遺伝子は、例えばＯｃｔ４、Ｎａｎｏｇ、Ｎｅｓｔｉｎ及びα−フェトプロテイン（ａｌｐｈａ−ｆｅｔｏ ｐｒｏｔｅｉｎ）などが挙げられる。
＜検査または測定方法（Ｍ２）＞
検査または測定方法（Ｍ２）は、精製工程（Ｙ２）を実施してから、解析工程（Ｔ２）を実施する方法によって完成する。精製工程（Ｙ２）は、以下に示す３つの方式のうち、いずれかの一つの方式を用いて、個体（詳細内容は、個体（Ｓ）の説明を参照）から組織試料を採取する。組織試料の説明は、組織試料（Ｐ）を参照する。一例として、組織試料が個体の体液（例えば、ヒトの血液、末梢血試料または骨髄）から採取された場合、組織試料は体液試料（例えば、末梢血試料、全血検体または骨髄試料）である。そして、組織試料が前述個体の固形組織（例えば、筋肉試料または脂肪細胞）から採取された場合、組織試料は固形組織試料（例えば、筋肉試料または脂肪細胞試料）である。このほか、組織試料が前述個体の固形組織から採取される場合、精製工程（Ｙ２）を実施する前に、組織試料にコラゲナーゼ（ｃｏｌｌａｇｅｎａｓｅ）を加えて、組織試料とコラゲナーゼとを所定の温度下（係る温度は、例えば３７℃前後、または３０℃以上または３５〜３９℃或いは３０〜４０℃）において、少なくとも６または８時間作用させる。
精製工程（Ｙ２）の第１種の方式は、図４に示すように、まず、前述組織試料に抗凝血剤（例えば、二価陽イオンキレート剤）を含む収集袋１０または貯蔵器１９に移して、組織試料と抗凝結剤とを含有する混合液が得られる。前述二価陽イオンキレート剤は、例えばエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）であっても良い。引き続き、混合液を試験管２０ａに入れる。引き続き、遠心分離器１３を用いて、試験管２０ａを所定の遠心力（例えば、１，０００ｇ、７００ｇ以上、１，３００ｇ以上、５００ｇ〜２，５００ｇまたは８００ｇ〜１，６００ｇ）によって、所定の時間（例えば、１８分前後、１２分以上、１６分以上、１０〜３０分または１５〜２２分）を遠心させる。試験管２０ａの遠心を完了した後、大きい細胞と小さい細胞を含むすべての細胞を分離させる。これらの小さい細胞の大きさ（大きさの定義は前述した大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、４マイクロメータ、５マイクロメータまたは６マイクロメータより小さいかまたは等しい。一例として、０．１〜６マイクロメータ、０．５〜６マイクロメータ、１〜６マイクロメータ、０．１〜５マイクロメータ、０．５〜５マイクロメータ、１〜５マイクロメータ、０．１〜４マイクロメータ、０．５〜４マイクロメータまたは１〜４マイクロメータのいずれかの範囲であっても良い。これらの大きい細胞の大きさ（大きさの定義は前述した大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、例えば６マイクロメータより大きい。最後に、前述大きい細胞と小さい細胞を含むすべての細胞を溶液（係る溶液に、例えばＰＢＳとＢＳＡを含有する）に入れて、これらの細胞を係る溶液に再び懸濁させて、これらの細胞とこの溶液を含む試験試料２１ａが得られる。試験試料２１ａは、以降の解析工程（Ｔ２）に使用される。
精製工程（Ｙ２）の第２種の方式において、まず、図５に示すように、もし前述組織試料は個体の固形組織から採取された場合、コラゲナーゼによって処理された組織試料（前述とおり）を試験管２０ｂに入れる。続いて、遠心機１３を用いて、高回転速度による遠心力（例えば、１，０００ｇ、７００ｇ以上、１，３００ｇ以上、５００ ｇ〜２，５００ｇまたは８００ｇ〜１，６００ｇ）によって、試験管２０ｂを所定の時間（例えば、１８分前後、１２分以上、１６分以上、１０〜３０分または１５〜２２分）遠心する。試験管２０ａの遠心を完了した後、大きい細胞と小さい細胞を含むすべての細胞を分離させる。ここでの大きい細胞と、小さい細胞の説明は、前述精製工程（Ｙ２）における第１種方式の関連説明を参照する。最後に、前述大きい細胞と小さい細胞を含むすべての細胞を溶液（係る溶液に、例えばＰＢＳとＢＳＡとを含有する）に入れて、これらの細胞を係る溶液に再び懸濁させてこれらの細胞とこの溶液を含む試験試料２１ｂが得られる。試験試料２１ｂは、以降の解析工程（Ｔ２）に使用される。
精製工程（Ｙ２）の第６種の方式において、図３に示すように、もし前述組織試料は体液から採取される場合、組織試料を赤血球分解液２２で所定の時間（例えば、１０分前後、８分以上、１２分以上、８〜１５分または９〜２０分）を培養するか、または所定の時間作用させることによって、組織試料に含まれるすべての赤血球細胞を取り除く。引き続き、組織試料と、赤血球分解液２２とを含有する混合液を試験管２０ｃに入れる。続いて、遠心機１３を用いて、高回転速度による遠心力（例えば、１，０００ｇ、７００ｇ以上、１，３００ｇ以上、５００ｇ〜２，５００ｇまたは８００ｇ〜１，６００ｇ）によって、試験管２０ｃを所定の時間（例えば、１８分前後、１２分以上、１６分以上、１０〜３０分または１５〜２２分）遠心する。試験管２０ｃの離心を完了した後に、組織試料と、赤血球分解液２２とを含有する混合液から大きい細胞と、小さい細胞を含む全ての細胞を分離させる。ここでの大きい細胞と、小さい細胞の説明は、前述精製工程（Ｙ２）における第１種方式の関連説明を参照する。最後に、前述大きい細胞と小さい細胞を含むすべての細胞を溶液（係る溶液に、例えばＰＢＳとＢＳＡとを含有する）に入れて、これらの細胞を係る溶液に再び懸濁させてこれらの細胞とこの溶液を含む試験試料２１ｃが得られる。試験試料２１ｃは、以降の解析工程（Ｔ２）に使用される。
精製工程（Ｙ２）で、試験試料２１ａ、２１ｂまたは２１ｃを得た後、解析工程（Ｔ２）において、試験試料２１ａ、２１ｂまたは２１ｃに対して解析を行うことによって、前述組織試料から一種または複数種の幹細胞に関する一組の結果或いはデータを獲得する。係る組の結果またはデータは、定量、定性または記述などの方式によって示すことが可能である。このほか、図４、図５または図６に示す解析機器１５ｂ（例えば、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）装置またはフローサイトメーター）は、解析工程（Ｔ２）の進行に使用される。前述一種または複数種の幹細胞に関する結果またはデータは、幹細胞の種類及び前述一種または複数種の幹細胞の関連数値（例えば、数量、百分比及び／または大きさの大きさ）を含む。このほか、ここに述べる一種または複数種の小さい幹細胞は、（詳細内容は、解析工程（Ｔ１）の説明を参照）及び／または一種または複数種の大きい幹細胞（例えば、少なくとも一種の多能性幹細胞（例えば、ある種の間葉系幹細胞）を含む。これらの大きい細胞の大きさ（大きさの定義は前述した大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、例えば６マイクロメータより大きい。
解析工程（Ｔ２）は、流動細胞計測法または逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）法（例えば、リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ解析法（ｒｅａｌ−ｔｉｍｅ ＲＴ−ＰＣＲ ａｎａｌｙｓｉｓ））といった２種の方式によって達成することができる。流動細胞計測法は、フローサイトメーター（この計器は、一種の解析機器１５ｂである）を用いて、細胞の計算、細胞の分類及び生物マーカー検出などの方式によって、試料のパラメータを解析することができる。フローサイトメーター１５ｂは、試料に含まれる特定細胞（表面）マーカーに陽性反応を示すか否かを解析することに用いられる。ＲＴ−ＰＣＲ解析法は（リアルタイム）ＲＴ−ＰＣＲ装置（この装置は、一種の解析機器１５ｂである）を用いて、試料に含まれる幹細胞の遺伝子表現を検出と定量することができる。ＲＴ−ＰＣＲ解析法によって、得られたけ結果として、幹細胞に表される各種の遺伝子が分かり、これらの遺伝子は、例えばＯｃｔ４、Ｎａｎｏｇ、Ｎｅｓｔｉｎ及びα−フェトプロテインなどが挙げられる。
以上の段落で表現または言及した項目、規格、定義、方法、材料、プロセス、設備、ステップなどは、以下に示すすべての実施例に適用することができる。例えば、以下の段落において、「大きさ」の定義は前述大きさ（Ｚ）に関する説明を参考し、「個体」の定義は前述個体（Ｓ）に関する説明を参考し、「組織試料」の定義は前述組織試料に関する説明を参考することができる。
以下の段落において、一つの生物（例えば、ヒトの体または動物の体）から幹細胞を大量に獲得、収集または収穫する方法を説明する。図７Ａは、本発明の一実施例に基づき、個体の組織試料から、大量な幹細胞を獲得、収集、または収穫する方法のフロー図である。幹細胞は例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞を指す。図７Ａを参照する。ステップ５１において、個体に一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせるか或いは受けさせる。例えば、栄養補助食品の服用または健康補助食品の服用（例えば、６０重量パーセント以上のフコイダンまたは低分子フコイダンの補助剤あるいは、以下の第１実験と図１１に言及するフコイダン補助剤）を一錠または複数錠を服用し、政府部門または機関（例えば、米国食品医薬品局）によって許可された一種または複数種の薬物及び／または一種の薬草または漢方薬を服用する。係る個体（つまり、前述の生物）に関する説明は、個体（Ｓ）に関する説明を参考することができる。係る個体は例えば、ヒトまたは動物（例えば、犬、ねこ、豚、ニワトリ、鴨または牛）であっても良い。そのほかに、前述ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激の実行に際し、投与量、強さ、持続時間、実行頻度（それぞれの行為は例えば、１時間置きに１錠の薬物または健康補助食品を合計３回服用する）及び／または実行時間（例えば、１日の時間帯（朝、正午、午後、夕方、夜）、食事前、食事中、食事後、または季節（春、夏、秋、冬）など）などのさまざまな要素に配慮を加える。一例として、個体に薬物または栄養補助食品あるいはフコイダン補助剤を服用させる場合は、投与量（例えば、グラム数）及び実行時間（例えば、朝食前、朝食後または寝る前）などの要素を配慮に加える。ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激は、個体にステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激を所定の時間を行わせた後か或いは受けさせた後に、個体の末梢血試料に含む特定種または複数種の幹細胞（例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞）を増加することができる。
ステップ５２で、個体が前述の一種または複数種の行為または刺激（Ｘ） を行わせた後か或いは受けさせた後に、個体を所定の（予定の）時間、例えば、１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間を待機させる。ステップ５１とステップ５２を実行することによって、生体内部の幹細胞数を増加または拡大することができる。引き続き、ステップ５３において、個体から組織試料（例えば、末梢血試料）を獲得する。組織試料の説明は組織試料（Ｐ）を参照する。引き続き、ステップ５４において、組織試料に対して一種の幹細胞の獲得、収集または収穫工程あるいは方法を実行することによって、以上の特定種または複数種の幹細胞（例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞）を大量に獲得、収集または収穫する。例えば、組織試料を前述の幹細胞の獲得、収集または収穫工程あるいは方法を実行することによって、組織試料からＳＢ−１細胞および／またはＳＢ−２細胞を大量に獲得、収集または収穫することができる。
引き続き、ステップ５５において、前述幹細胞の獲得、収集または収穫工程あるいは方法を実行することによって、組織試料から獲得する一種または複数種の幹細胞は後の目的（ＰＳ）（詳細内容は、以下の段落において説明する）、セ氏０度以下の温度にて寄託（または貯蔵）させる（例えば、セ氏マイナス３０度またはセ氏マイナス８０度）の設備（例えば、冷凍庫）に所定の時間（例えば、１か月または１年以上）を貯蔵する。係る設備は、貯蔵所（例えば、細胞バンク）によって提供される。貯蔵されたこれらの幹細胞は獲得、収集、または収穫した後の所定時間（例えば、１か月、３か月、６か月、１年、２年、５年または１０年）を経過した後に、目的（ＰＳ）によって、前述した同じ個体またはもう一つの個体に使用される。ここでいう、もう一つの個体は例えば、前述個体と同じ生物分類の種であると共に、前述個体と同じ血液型（例えば、Ａ型、Ｂ型、Ｃ型またはＡＢ型）であっても良い。
貯蔵されたこれらの幹細胞は、以下の目的（ＰＳ）に使用できる。係る目的（ＰＳ）は、幹細胞治療、アンチエイジング治療、若返り（ｒｅｖｅｒｓｅ ａｇｉｎｇ）治療または製品、外傷の治療または製品、顔の整形治療または製品、整形手術、侵襲性美容医学治療、非侵襲性美容医学治療または製品、形成外科手術、癌症治療、変性疾患治療、自己免疫疾患、歯の治療、歯のインプラント手術、やけど治療、膝半月板損傷治療、関節炎治療、膝関節炎治療、骨損傷治療、骨折治療、組織修復治療、組織または臓器の複製、生殖的クローン（ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅ ｃｌｏｎｉｎｇ）、治療的クローン（ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｃｌｏｎｉｎｇ）、化粧品、スキンケア製品、フェスマスク、飼料添加物、栄養補助食品、補助的製品を含む。一つの事例において、貯蔵されたこれらの幹細胞は、適切な方法（例えば、注射または塗る）によって、前述個体または前述もう一つの個体組織または臓器（例えば、皮膚、骨、関節、歯、肝臓または腎臓）に使用することができる。もう一つの事例において、貯蔵されたこれらの幹細胞は所定の緩衝液（例えば、塩）と混合した後に、適切な方法（例えば、注射または塗る）によって、混合した緩衝液を前述個体または前述もう一つの個体の組織または臓器（例えば、皮膚、骨、関節、歯、肝臓または腎臓）に使用することができる。
もう一つの実施例において、前述幹細胞の獲得、収集または収穫工程あるいは方法によって、前述組織試料から獲得した一種または複数種の幹細胞は、前述した温度セ氏０度以下の設備に貯蔵することなく、前述目的（ＰＳ）に使用することができる。または前述幹細胞の獲得、収集または収穫工程あるいは方法によって、前述組織試料から獲得した一種または複数種の幹細胞は、前述した温度セ氏０度以下の設備に貯蔵する代わりに、適切な方法（例えば、注射または塗る）によって、前述個体または前述もう一つの個体の組織または臓器（例えば、皮膚、骨、関節、歯、肝臓または腎臓）に使用することができる。ここでいう、もう一つの個体は例えば、前述個体と同じ生物分類の種であると共に、前述個体と同じ血液型（例えば、Ａ型、Ｂ型、Ｃ型またはＡＢ型）であっても良い。
もう一つの実施例において、ステップ５３から獲得した組織試料を細胞バンクまたは（例えば、冷蔵庫または冷凍庫）冷蔵設備のような温度セ氏０以下（例えば、セ氏マイナス３０度またはセ氏マイナス８０度）の環境に貯蔵することができる。組織試料を所定の期間（例えば、１か月、３か月、６か月、１年、２年、５年または１０年）を経過した後、冷蔵設備から組織試料を取り出して、組織試料に対して、幹細胞の獲得、収集または収穫工程を実施することによって、組織試料から前述した一種または複数種の幹細胞を獲得、収集または収穫することができる（例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞）。例えば、組織試料を前述の幹細胞の獲得、収集または収穫工程あるいは方法を実行することによって、組織試料からＳＢ−１細胞および／またはＳＢ−２細胞を獲得、収集または収穫することができる。または前述幹細胞の獲得、収集または収穫工程あるいは方法によって、組織試料から獲得した一種または複数種の幹細胞を前述した目的（ＰＳ）に使用するか、あるいは適切な方法（例えば、注射または塗る）によって、前述個体または前述もう一つの個体の組織または臓器（例えば、皮膚、骨、関節、歯、肝臓または腎臓）に使用することができる。ここでいう、もう一つの個体は例えば、前述個体と同じ生物分類の種であると共に、前述個体と同じ血液型（例えば、Ａ型、Ｂ型、Ｃ型またはＡＢ型）であっても良い。
もう一つの実施例において、ステップ５３から獲得した組織試料を細胞バンクまたは（例えば、冷蔵庫または冷凍庫）冷蔵設備のような温度セ氏０以下（例えば、セ氏マイナス３０度またはセ氏マイナス８０度）の環境に貯蔵することができる。組織試料に例えば、前述したＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞など特定種または複数種の幹細胞（例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞）を含む。組織試料を所定の期間（例えば、１か月、３か月、６か月、１年、２年、５年または１０年）を経過した後、冷蔵設備から組織試料を取り出して、組織試料を前述した目的（ＰＳ）に使用するか、あるいは適切な方法（例えば、注射または塗る）によって、前述個体または前述もう一つの個体の組織または臓器（例えば、皮膚、骨、関節、歯、肝臓または腎臓）に使用することができる。ここでいう、もう一つの個体は例えば、前述個体と同じ生物分類の種であると共に、前述個体と同じ血液型（例えば、Ａ型、Ｂ型、Ｃ型またはＡＢ型）であっても良い。
もう一つの実施例において、ステップ５３から獲得した組織試料を細胞バンクまたは（例えば、冷蔵庫または冷凍庫）冷蔵設備のような（極端な）低温環境を所定の期間（例えば、１か月、３か月、６か月、１年、２年、５年または１０年）に貯蔵する代わりに、適切な方法（例えば、注射または塗る）によって、前述個体または前述もう一つの個体の組織または臓器（例えば、皮膚、骨、関節、歯、肝臓または腎臓）に使用することができる。ここでいう、もう一つの個体は例えば、前述個体と同じ生物分類の種であると共に、前述個体と同じ血液型（例えば、Ａ型、Ｂ型、Ｃ型またはＡＢ型）であっても良い。このほかに、前述組織試料に例えば、前述したＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞など特定種または複数種の幹細胞（例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞）を含む。
もう一つの実施例において、ステップ５３から獲得した組織試料をまだ判別されていないまたは発見されていない一種または複数種の新種類の幹細胞の発見または検出に用いられる。本実施例において、以下の段落は、組織試料を個体の末梢血から採取することを事例として説明する。個体にステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせるか或いは受けさせる前に、個体の末梢血は、前述一種または複数種の新種類の幹細胞を含まないか、もしくは非常に少ない（つまり、非常に低いかまたは検出できない数をいう）の前述一種または複数種の新種類の幹細胞しか含まれていない。よって、前述一種または複数種の新種類の幹細胞は、フローサイトメーターまたはその他の測定器具には検出できないか、あるいは非常に難しい。個体がステップ５１とステップ５２を実行した後、前述一種または複数種の新種類の幹細胞は、個体の末梢血内部に増加、活性化反応、流動、生成または刺激反応が行われる。よって、フローサイトメーターまたはその他の測定器のいずれかによって、前述一種または複数種の新種類の幹細胞を発見できる。詳細内容は以下に示すステップ５９の説明を参照する。
新種類の幹細胞の発見方法によって、前述一種または複数種の新種類の幹細胞を発見または検出することができる。図７Ｂ、一種または複数種の新種類の幹細胞を発見または検出する方法のフロー図を参照する。図７Ｂに示すように、順を追ってステップ５１からステップ５３を実行した後に、ステップ５９を実行する。ステップ５９において、一種または複数種の新種類の幹細胞を発見または検出する解析方法（前述の検査または測定方法（Ｍ０）、（Ｍ１）または（Ｍ２））を用いて、ステップ５３によって、獲得した組織試料（例えば、末梢血検体）を処理する。前述解析方法は、組織試料の細胞に細胞核を有するか否かの検出ステップと、組織試料の細胞が一種または複数種の選定された細胞の（表面）マーカーを表現できるか否かのステップを含む。
もう一つの実施例において、前述の検査または測定方法（Ｍ０）、（Ｍ１）または（Ｍ２））、図９に示すステップ６１からステップ７０、図１４Ａから図１４Ｃに示すステップ１からステップ２０を実行した後に、後述の整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）あるいは後述の単独システム、装置、計器または工具（ＴＤ）を用いて、図７Ａに示すステップ５３から獲得した組織試料のうち、前述個体がステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）行わせた後か、或いは受けさた後の幹細胞データ（以下「データＡ」という）を獲得することができる。データＡは例えば、各種細胞数、各種幹細胞に占めるパーセント及び／または一種または複数種の幹細胞がステップ５３から獲得された組織試料のうち、１ミリリットルの数（つまり、一種または複数種の幹細胞がステップ５３から獲得した組織試料の単位体積当たりの数）を含む。ここでいう幹細胞は例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞を指す。例えば、データＡはＳＢ−１細胞の数量または百分比、ＳＢ−２細胞の数量または百分比、卵割球様細胞の数または百分比、超小型胚様細胞の数または百分比、間葉系細胞の数または百分比、造血細胞の数または百分比、一種または複数種の多能性幹細胞、多分化能幹細胞及び／または前駆細胞の数または百分比、及び／または一種または複数種の多能性幹細胞、多分化能幹細胞及び／または前駆幹細胞がステップ５３の実行によって獲得された組織試料の単位体積当たりの数を含む。データＡは、個体の病期（ｄｉｓｅａｓｅ ｓｔａｇｅ）、治療経過（ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｐｒｏｇｒｅｓｓ）、健康状態、及び／または生理的条件の臨床診断または監視、決定、確認または評価に使用することができる。
または、データＡはステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）が特定種疾患を患う個体の治療または治癒効果（または効用）に使用することができる。この事例において、ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）の投与量、強さ、持続時間、実行頻度及び／または実行時間を制御することによって、前述した特定疾患を患う個体の治療または治癒することができる。前述した特定疾患は例えば、前立腺癌、肝臓癌、胃癌、口腔癌、大腸癌、乳がん、肺がん、鼻咽腔癌、子宮頸がん、皮膚癌、食道癌、膀胱癌、膵臓癌、子宮内膜癌、卵巣癌、胆嚢癌、甲状腺がん、白血病、悪性リンパ腫、非ホジキンリンパ腫、メラノーマ、パーキンソン症（ｐａｒｋｉｎｓｏｎｉｓｍ）、アルツハイマー病（Ａｌｚｈｅｉｍｅｒ’ｓ ｄｉｓｅａｓｅ）、老人性痴呆（ｄｅｍｅｎｔｉａ）、糖尿病、アレルギー性鼻炎、脳腫瘍、後天性免疫不全症候群（ａｃｑｕｉｒｅｄ ｉｍｍｕｎｏｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ ｓｙｎｄｒｏｍｅ）などを含む。この事例において、前述個体がステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせる前か、或いは受けさせる前の幹細胞データ（以下「データＢ」という）を獲得することができる。そのあとは、データＡとデータＢを比較することによって、ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）が特定種疾患を患う個体の治療または治癒効果（または効用）を確認、決定または評価することができる。図７Ｃ、この事例に基づき、ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）が特定種疾患を患う個体の治療または治癒効果（または効用）を確認、決定または評価する方法のフロー図を参照する。
図７Ｃに示すように、ステップ４９において、前述個体から組織試料を取り出し、獲得、取得または採取する（以下「第１組織試料」という）。第１組織試料の説明は前述の組織試料（Ｐ）を参照する。引き続き、ステップ５０において、第１検査または測定方法を用いて、第１組織試料を検査または測定し、第１組織試料に含む一種または複数種の幹細胞に関わる第１の幹細胞データ（つまり、データＢ）を獲得する。第１の幹細胞データは、定量、定性または記述などの方式によって示すことが可能である。第１検査または測定方法は例えば、幹細胞の取得及び／または測定のステップを含む。第１検査または測定方法の説明は、検査または測定方法（Ｍ０）、（Ｍ１）または（Ｍ２）の説明と、図９のステップ６１からステップ７０の説明または、図１４Ａないし１４Ｃのステップ１〜２０の説明を参照する。第１検査または測定方法のほかに、第１の幹細胞データは、後述の整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）あるいは後述の単独システム、装置、計器または工具（ＴＤ）によって、獲得することができる。
第１の幹細胞データは、複数の結果またはデータＲ１、１−Ｒａ， Ｂを含む、そのうちａは正整数（例えば、２〜１００のいずれかの整数）であり、ｂも正整数である（例えば、１、または２）。Ｒの１番目の下付きの数字（つまり、Ｒの後ろにある数字 − １〜ａ）は、所定の種の選定された幹細胞を表す。Ｒの２番目の下付きの数字（つまり、１番目の下付きの数字の後ろにある数字 − １〜ｂ）は、所定の種データのタイプを表す。
以下は、Ｒの１番目の下付きの数字について説明する。Ｒの１番目の下付きの数字が１のとき、係る結果またはデータＲ１．１−Ｒ１，ｂは、例えば「ＳＢ−１細胞」の結果またはデータに関わる。Ｒの１番目の下付きの数字が２のとき、係る結果またはデータＲ２．１−Ｒ２，ｂは、例えば「ＳＢ−２細胞」の結果またはデータに関わる。Ｒの１番目の下付きの数字が３のとき、係る結果またはデータＲ３，１−Ｒ３，ｂは、例えば「卵割球様幹細胞（ＢＬＳＣ）」の結果またはデータに関わる。Ｒの１番目の下付きの数字が４のとき、係る結果またはデータＲ４．１−Ｒ４，ｂは、例えば「超小型胚様幹細胞（ＶＳＥＬ）」の結果またはデータに関わる。Ｒの１番目の下付きの数字が５のとき、係る結果またはデータＲ５，１−Ｒ５，ｂは、例えば「所定の種の多分化能幹細胞（例えば、間葉系幹細胞、多能性成体前駆細胞」の結果またはデータに関わる。Ｒの１番目の下付きの数字が６のとき、係る結果またはデータＲ６．１−Ｒ６，ｂは、例えば「もう一種の多分化能幹細胞（例えば、造血幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞、または多能性成体幹細胞」の結果またはデータに関わる。Ｒの１番目の下付きの数字が７のとき、係る結果またはデータＲ７，１−Ｒ７，ｂは、例えば「所定の種の先駆幹細胞（例えば、前間葉系幹細胞、多能性前駆幹細胞、系統限定前駆細胞、通常骨髄前駆細胞、リンパ球共通前駆細胞または造血前駆細胞）の結果またはデータに関わる。Ｒの１番目の下付きの数字が８のとき、係る結果またはデータＲ８．１−Ｒ８，ｂは、例えば「もう一種の前駆幹細胞（例えば、骨髄から単離した成人の多系統誘導性細胞または間葉系前駆細胞」の結果またはデータに関わる。
以下は、Ｒの２番目の下付きの数字について説明する。Ｒの２番目の下付きの数字が１のとき、係る結果またはデータＲ１，１−Ｒａ，１は、例えば「細胞数」の結果またはデータに関わる。Ｒの２番目の下付きの数字が２のとき、係る結果またはデータＲ１，２−Ｒａ，２は、例えば「幹細胞の百分比」の結果またはデータに関わる。Ｒの２番目の下付きの数字が３のとき、係る結果またはデータＲ１，３−Ｒａ，３は、例えば「幹細胞が組織試料（例えば、前述の第１組織試料）における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル当たり）の数」の結果またはデータに関わる。
従って、結果またはデータＲ１，１は、ＳＢ−１細胞の数を代表または表示することができる。従って、結果またはデータＲ１，２は、ＳＢ−１細胞の百分比を代表または表示することができる。結果またはデータＲ１，３は、ＳＢ−１細胞が組織試料（例えば、前述の第１組織試料）における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル当たり）の数を代表または表示することができる。従って、結果またはデータＲ２，１は、ＳＢ−２細胞の数を代表または表示することができる。従って、結果またはデータＲ２，２は、ＳＢ−２細胞の百分比を代表または表示することができる。結果またはデータＲ２，３は、ＳＢ−２細胞が組織試料（例えば、前述の第１組織試料）における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル当たり）の数を代表または表示することができる。その他の結果またはデータは、これに基づいて類推することができるため、ここでの説明を省略する。
図７Ｃを参照する。ステップ４９またはステップ５０を実行完了（または完成）した後、順を追って、前述のステップ５１からステップ５３を実行し、ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせた後か、或いは受けさせせた後の個体から組織試料を取り出し、獲得、取得または採取する（以下「第２の組織試料」という）。第２の組織試料の説明は前述の組織試料（Ｐ）を参照する。第１と第２の組織試料は例えば、個体の同じ種の組織から獲得された２つの試料であっても良い。第１と第２の組織試料は例えば、個体の末梢血、骨、筋肉、脂肪細胞または脂肪組織から獲得することができる。一つの実例において、第１と第２の組織試料は例えば、同じく末梢血検体であっても良い。
引き続き、ステップ５６において、第２の検査または測定方法を用いて、第２の組織試料を検査または測定し、第２の組織試料に含む一種または複数種の幹細胞に関わる第２の幹細胞データ（つまり、データＡ）を獲得する。第２の幹細胞データは、定量、定性または記述などの方式によって示すことが可能である。第２の検査または測定方法は例えば、幹細胞の取得及び／または測定のステップを含む。第２の検査または測定方法の説明は、検査または測定方法（Ｍ０）、（Ｍ１）または（Ｍ２）の説明と、図９のステップ６１からステップ７０の説明または、図１４Ａないし１４Ｃのステップ１〜２０の説明を参照する。第２の検査または測定方法のほかに、第２の幹細胞データは、後述の整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）あるいは後述の単独システム、装置、計器または工具（ＴＤ）によって、獲得することができる。
第２の幹細胞データは、ステップ５０に述べる第１の幹細胞と同じタイプの情報内容を含み、つまり、第２の幹細胞に対応の結果またはデータＲ１，１−Ｒａ，ｂを含む。そのうち、Ｒの１番目と２番目の下付きの数字は、ステップ５０に述べる第１の幹細胞データＲ１，１−Ｒａ，ｂにて、定義、記述または説明されている。同じタイプの情報内容を獲得すると共に、実験誤差を軽減するため、本実施例において、同じ方式（例えば、検査、評価または測定方法（Ｍ０）、（Ｍ１）または（Ｍ２））を用いて、図９に示すステップ６１からステップ７０または図１４Ａ〜１４Ｃに示すステップ１〜２０）或いは、同じ計器（例えば、整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）もしくは単独システム、装置、計器または工具（ＴＤ）によって、第１の幹細胞データと第２の幹細胞データを獲得するための第１と第２の検査または測定方法を実行する。
引き続き、ステップ５７において、第１の幹細胞データと第２の幹細胞データを解析する（例えば、第１の幹細胞データと第２の幹細胞データとの比較を含む）ことによって、ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）が前述特定の疾患を患う個体に対する治癒または治療の効果（または効能）を確認、決定または評価することができる。第１の幹細胞データと第２の幹細胞データは例えば、評価または検査報告にまとめることができる。そのほかに、図７Ｃのステップ４９、ステップ５０、ステップ５１、ステップ５２、ステップ５３、ステップ５６とステップ５７も、ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（例えば、以下の第１実験と図１１に言及するフコイダン補助剤を一錠または複数錠の服用または摂取）の効果（または効能）を確認、決定または評価することができる。
引き続き、図７Ｃに示すように、ステップ５６またはステップ５７を実行完了（または完成）した後、もし必要を認めるときは、ステップ５８を実行しても良い。つまり、同じ個体が順を追って、ステップ５１、ステップ５２、ステップ５３、ステップ５６とステップ５７を一回または複数回を行わせる。ステップ５８において、ステップ５３を実行するたびに、ステップ５２を実行完了（または完成）した後に、同じ個体から組織試料を獲得または得られる。ステップ５８において、毎回に検査または測定方法（ステップ５６に述べる検査または測定方法）を用いて、同じ個体から獲得した組織試料のすべては、組織試料のうちの一種または複数種の幹細胞に関わる幹細胞データ（その説明は、ステップ５０に述べる第１の幹細胞データを参照する）を獲得することができる。ステップ５８において、現在の幹細胞データと前回の幹細胞データと比較するたびに（例えば、ステップ５７に述べる第１の幹細胞データと第２の幹細胞データとの比較）ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）が前述特定の疾患を患う個体に対する治癒または治療の効果（または効能）を確認、決定または評価することができる。ステップ５８より獲得した各組の幹細胞データは、ステップ５０に述べる第１の幹細胞と同じタイプの情報内容を含み、つまり、ステップ５８より獲得した各組の幹細胞に対応の結果またはデータＲ１，１−Ｒａ，ｂを含む。そのうち、Ｒの１番目と２番目の下付きの数字は、ステップ５０に述べる第１の幹細胞データＲ１，１−Ｒａ，ｂにて、定義、記述または説明されている。そのほかに、図７Ｃのステップ５８も、ステップ５１に述べる一種または複数種の行為または刺激（例えば、第１実験と図１１に言及するフコイダン補助剤を一錠または複数錠の服用または摂取）の効果（または効能）を確認、決定または評価することができる。
以下の段落は、ヒトの末梢血細胞数を増加させる方法の事例を用いて、第１の実験及びその実験の結果を説明する。図８Ａ〜８Ｆは、３名のヒト被験者に３０錠フコイダン補助剤を経口に服用する前と服用後に示す幹細胞データである。ステップ４９からステップ５３と、ステップ５６からステップ５８の方法により、３名のヒト被験者から図８Ａ〜８Ｆの幹細胞データを獲得することができる。第１の実験は、ヒト被験者にそれぞれステップ５１を実行し、３０錠フコイダン補助剤を経口に服用させる。一錠当たりのフコイダン補助剤の重量は１５１．３ミリグラム（ｍｇ）、しかも０．１グラムのフコイダン（抽出方式により、日本の沖縄県海域に生息する褐藻から獲得する）と、０．０４グラムの食物繊維を含む。このフコイダン補助剤は、日本の沖縄県現地に生産できる。褐藻は藻類の一種である。フコイダン野種類は、例えばもずく、昆布、わかめ、ひじきなど様々な種類がある。クロレラ、ラン藻類は、海岸付近地または浅海に生息し、光合成の作用により成長する。紅藻は浅海に生息していて、かつ微弱な光線によって光合成の作用により成長する。フコイダンは、クロレラ／ラン藻と紅藻との間の海域に生息している。つまり、フコイダンは海の深度の中間帯に生息している。
図１１、第１の実験に用いられたフコイダン補助剤の内容／成分の情報を参照する。図１１に示すように、一錠のフコイダン補助剤に含むものは、８０重量パーセントのもずく粉末（ｍｏｚｕｋｕ ｐｏｗｄｅｒ）と、１５重量パーセントの結晶セルロース（ｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ）と、３重量パーセントのショ糖脂肪酸エステル（ｓｕｃｒｏｓｅ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄ ｅｓｔｅｒｓ）と、２重量パーセントの精細シリカを含む。もずく粉末は、日本の沖縄県周辺海域で生息しているもずく褐藻（一種の海藻）から抽出または（取り出す）である。引き続き、もずく粉末に結晶セルロースと、ショ糖脂肪酸エステルと、精細シリカとを混合すれば、フコイダン補助剤の錠剤を獲得するうことができる。第１の実験において、各被験者に３０錠のフコイダン補助剤を経口に服用させる。つまり、各被験者に４．５グラ克（３．５グラム以上）の沖縄県産のフコイダン補助剤を服用させる。係る沖縄県産のフコイダン補助剤の８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末である。３０錠のフコイダン補助剤（つまり、約４．５グラム前後の沖縄県産のフコイダン補助剤）に３グラム（または２グラム以上）のフコイダン、或いは６０重量パーセント以上のフコイダンを含まれている。よって、各被験者に３グラム（または２グラム以上）のフコイダンを服用させる。
第１の実験において、この３名の被験者それぞれの体重は、約７５キログラム前後である。つまり、フコイダン補助剤の投与量は、体重キロの当たり約４０ミリグラムである。または、フコイダン補助剤の体重キロ当たりは、２０ミリグラム以上、３０ミリグラム、４０ミリグラムまたは５０ミリグラムを服用させても良い。図１２、フコイダンの一部の分子構造を示し、多環構造を含み、それぞれの環状構造は５つの炭素原子（Ｃ）と一つの酸素原子（Ｏ）を含まれている。そのほかに、分子構造は、例えばＳＯ３またはＨ複数の基（ｒａｄｉｃａｌ）Ｒを含む。ＳＯ３基は、フコイダンにおいて、非常に重要な役割を持っている。沖縄県産のフコイダン補助剤のうち、硫黄（Ｓ）がフコイダン分子に約１２重量パーセントを占めている。本発明の実施例によるフコイダン補助剤の硫黄（Ｓ）は、フコイダン分子に占める重量パーセントは６重量パーセント、８重量パーセントまたは１０重量パーセントを超えていても良い。または、このフコイダン補助剤の硫黄（Ｓ）は、フコイダン分子に占める重量パーセントは１２重量パーセント、１６重量パーセントまたは２０重量パーセントを超えていても良い。
第１の実験において、３名の被験者のバックグランドは、それぞれ（１）被験者Ａが年齢３０歳近くの女性で、実験データは図８Ａと８Ｂに示す。（２）被験者Ｂが年齢５５歳前後の男性で、実験データは図８Ｃと８Ｄに示す。（３）被験者Ｃが年齢５０歳を上回る男性で、実験データは図８Ｅと８Ｆに示す。図８Ａと図８Ｂに示す幹細胞データは、被験者Ａがフコイダン補助剤を服用または摂取前、服用または摂取後の１．５時間、服用または摂取２４時間後と４８時間における、それぞれの幹細胞データ（合計２７種の幹細胞）の百分比を示す。図８Ｃと図８Ｄに示す幹細胞データは、被験者Ｂがフコイダン補助剤を服用または摂取前、服用または摂取後の１．５時間、服用または摂取２４時間後と４８時間における、それぞれの幹細胞データ（合計２７種の幹細胞）の百分比を示す。図８Ｅと図８Ｆに示す幹細胞データは、被験者Ｃがフコイダン補助剤を服用または摂取前、服用または摂取後の１．５時間、服用または摂取２４時間後と４８時間における、それぞれの幹細胞データ（合計２７種の幹細胞）の百分比を示す。
幹細胞の研究に用いる実験方法、用於幹細胞研究的實驗方法、工程と基準（其係包括使用一フローサイトメーターの使用を含む）は、すでに以上の段落に説明されている。図９のステップ６１からステップ７０は、各被験者がフコイダン補助剤を服用または摂取前、服用または摂取後の１．５時間、服用または摂取２４時間後と４８時間における、それぞれの幹細胞データ（合計２７種の幹細胞）の百分比を獲得することができる。引き続き、図９に示すように、ステップ６１において、個体（例えば、前述３名の被験者のいずれかの１名）から５ミリリットルの末梢血を獲得するかまたは採取した後に、５ミリリットルの末梢血を第１の試験管に入れて、二価陽イオンキレート剤（例えば、エチレンジアミン四酢酸）と混合する。引き続き、ステップ６２において、１ミリリットルの６％ヒドロキシエチル澱粉を第１の試験管に入れた５ミリリットルの末梢血に加えて、第１の中間試料を形成する。６％ヒドロキシエチル澱粉は一種の溶液であり、燐酸緩衝生理食塩水に６％のヒドロキシエチル澱粉を含有しており、つまり、毎１００ミリリットル（ｍＬ）の燐酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に６グラムのヒドロキシエチル澱粉を含有している。引き続き、ステップ６３において、第１の中間試料を室温（例えば、２７℃）で所定の時間（例えば、３０分間以上）を静置または培養する。第１の中間試料が上下２つの成層構造に形成された後に、下層層構造（すなわち、赤血球層）を撹乱しないことを前提とする場合において、上層構造（すなわち、細胞層）をピペット（ｐｉｐｅｔｔｅ）から取り出し、第２試験管に入れる。引き続き、ステップ６４において、第２試験管内の上層構造を適切な回転速度（例えば、毎分３，０００回転）で所定の時間（例えば、１５分間）を遠心し、遠心完了後、遠心試料が得られる。引き続き、ステップ６５において、遠心試料の上澄み液を取り除く。引き続き、ステップ６６において、適切な塩溶液（例えば、ＰＢＳ）を用いて、遠心試料の顆粒を洗い流して、顆粒を３ミリリットルの第１の溶液（例えば、１％または２％のウシ血清アルブミンを含む燐酸緩衝生理食塩水緩衝液）に再び懸濁させて、３ミリリットルの試料を獲得する。
引き続き、ステップ６７において、３ミリリットルの試料を複数の試料容器（例えば、試験管）に小分けする。それぞれの試料容器に、３ミリリットルの試料を含有する１００マイクロリットル（ｍｉｃｒｏｌｉｔｅｒ）の溶液を含む（以下、１００マイクロリットル試料という）を含む。引き続き、それぞれの試料容器に例えば、特定種の染色剤（例えば、一種の特定抗体または複数種の特定抗体を含む）を添加することができる。それぞれの試料容器に添加する染色剤が互いに異なっていても可能なため、よって、それぞれの試料容器の染色剤に含む一種または複数種の抗体が異なっていても良い。よって、これらの試料容器に添加する染色体は、互いに異なる種を含む抗体である。それぞれの試料容器に特定種の染色剤を添加する目的は、特定種の細胞（表面）マーカーまたは複数種の特定の幹細胞を識別するためである。染色剤に含む各種の抗体は特定種の細胞（表面）マーカー、特定幹細胞または複数の特定幹細胞または細胞（表面）マーカーの識別に使用することができる。これらの染色剤に含む各種の抗体は、これらの染色剤に含むその他の種の抗体と異なる。よって、それぞれの試料容器は第２中間試料を含み、かつ、それぞれの第２中間試料も前述に対応した染色剤（一種または複数の特定種抗体を含む）によって染色された１００ミリリットルの試料から構成される。
引き続き、ステップ６８において、これらの試料容器の第２中間試料を室温（例えば、２７℃）で所定の時間（例えば、３０分間以上）を静置または培養する。引き続き、ステップ６９において、それぞれの第２中間試料と、およそ４００ミリリットルの第２の溶液（例えば、１％または２％のウシ血清アルブミンを含む燐酸緩衝生理食塩水緩衝液）と混合して、体積が５００ミリリットルの試料（以下「５００ミリリットルの試料」という）を形成する。それぞれの５００ミリリットルの試料とも１００ミリリットルの試料（互いに対応された種の染色剤（この染色剤に一種または複数種の抗体を含む）によって染色）と第２の溶液との混合物である。引き続き、ステップ７０において、フローサイトメーターを用いてこれらの試料容器のうちの５００ミリリットルの試料を解析することによって、幹細胞データを獲得する。第１の実験において、フローサイトメーターを用いて、それぞれの５００ミリリットルの試料のうち、百万顆粒（幹細胞、その他の細胞及び添加から由来する染色剤または第２の溶液の顆粒を含む）の計算と解析が行われる。
図９のステップ７０において、フローサイトメーターによって測定された前方散乱係数（ｆｏｒｗａｒｄ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ， ＦＳＣ）と側方散乱係数（ｓｉｄｅ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ， ＳＳＣ）によって、前述したそれぞれの５００ミリリットルの試料のうち、百万顆粒（幹細胞、その他の細胞及び添加から由来する染色剤または第２の溶液の顆粒を含む）を対応した複数の細胞グループまたは顆粒グループに仕分けることができる。図１０、前述フローサイトメーターの前方散乱係数／側方散乱係数図に使用していて、かつ、所定の５００ミリリットルの試料のうち、百万顆粒（幹細胞、その他の細胞及び添加から由来する染色剤または第２の溶液の顆粒を含む）の複数の細胞グループまたは顆粒グループを示す。引き続き、図１０を参照する。そのうち、横軸は範囲が１０３〜１０７．２の前方散乱係数を示し、縦軸は、範囲が１０１〜１０７．２の側方散乱係数図を示す。本実施例において、前方散乱係数は、一つの細胞または顆粒の表面積あるいは大きさに関わるかもしくは比例を形成し、側方散乱係数は、一つの細胞または顆粒の粒度（ｇｒａｎｕｌａｒｉｔｙ）または内部の複雑度に関わるかもしくは比例を形成する。図１０に示す垂直破線８１右側区域の点状物は例えば、大きさが１マイクロメータより大きい顆粒または細胞を表す。図１０に示す水平破線８２上方区域の点状物は例えば、側方散乱係数が１０２より大きい顆粒または細胞を表す。図１０に示す細胞グループまたは顆粒グループは、（１）例えば、区域Ｐ１に示す微粒子（ｍｉｃｒｏ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ）と、（２）例えば、区域Ｐ３に示す細胞、その大きさが１マイクロメータより大きく、かつ側方散乱係数が１０２より大きいと、（３）例えば、区域Ｐ４に示す未知の微粒子と、（４）例えば、区域Ｐ５に示す染色緩衝液（ｓｔａｉｎｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）と、（５）例えば、区域Ｐ６に示すリンパ球（ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ）と、（６）例えば、区域Ｐ７に赤血球と、（７）例えば、区域Ｐ８に示す顆粒細胞（ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ）と、（８）例えば、区域Ｐ９に示す血小板を含む。区域Ｐ３は、区域Ｐ１、区域Ｐ６、区域Ｐ７、区域Ｐ８と区域Ｐ９を含む。興味を示す細胞または顆粒（以下「すべての細胞または顆粒ＴＳ」という）は、区域Ｐ３に存在しているが、区域Ｐ１、区域Ｐ６、区域Ｐ７、区域Ｐ８と区域Ｐ９には存在しない。すべての細胞または顆粒ＴＳは、前述２７種の幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）のうち、一種または複数種を含む。本発明において、他の５００マイクロリットルは、図１０に述べる細胞グループまたは顆粒グループと同じの細胞グループまたは顆粒グループを含む。
フローサイトメーターによって、５００マイクロリットルに含むすべての細胞または顆粒ＴＳの数及びすべての細胞または顆粒ＴＳのうち、選定された種類の幹細胞数を測定（または獲得）できる。続いて、前述データを利用することによって、図８Ａ〜８Ｆに示す「前述２７種の幹細胞のうち、各種細胞数またはその合計数がすべての細胞または顆粒ＴＳに占める数量またはその合計数の百分比」を獲得できる。図８Ａ〜８Ｆに示す各種の幹細胞の百分比は、各種細胞数またはその合計数を対応のすべて細胞または顆粒ＴＳの数または合計数で割って、それぞれの割り算結果を１００％（割り算結果をパーセンテージに換算するため）に掛け合わせる計算方式により獲得することができる。ステップ７０において、前述フローサイトメーターから獲得した幹細胞データは「各種の幹細胞（合計２７種の幹細胞）の数または合計数がすべての細胞または顆粒ＴＳに占める数量またはその合計数の百分比」を含む。
従って、ステップ６１からステップ７０に示す方法を前述３名のヒト被験者に行わせることによって、図８Ａ〜８Ｆに示す各ヒト被験者が前述フコイダン補助剤を食用または摂取させる前と食用または摂取後の１．５時間、服用または摂取２４時間後及び４８時間の「各種の幹細胞（合計２７種の幹細胞）の数または合計数がすべての細胞または顆粒ＴＳに占める数量またはその合計数の百分比」を獲得することができる。獲得した百分比データを利用することによって、各ヒト被験者が前述フコイダン補助剤を食用または摂取させる前と食用または摂取後の１．５時間における各種の幹細胞（合計２７種の幹細胞）の変化百分率（ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅ ｃｈａｎｇｅ）と、前述フコイダン補助剤を食用または摂取させる前と食用または摂取２４時間後における各種の幹細胞（合計２７種の幹細胞）の変化百分率または前述フコイダン補助剤を食用または摂取させる前と食用または摂取後の４８時間における各種の幹細胞（合計２７種の幹細胞）の変化百分率を獲得することができる。これらの変化百分率は、幹細胞が体内での培養または育成する場合の最高な収穫（または獲得）のタイミング（例えば、フコイダン補助剤を食用または摂取２４時間後）を構築または獲得できる。
再び図８Ａ〜８Ｆを参照する。３名のヒト被験者にフコイダン補助剤を食用または摂取させる前のデータと、３名のヒト被験者にフコイダン補助剤を食用または摂取させた後２４時間のデータを比較した結果、ほとんどの種の幹細胞に百分比の増加が確認されている。特に、ＳＢ−１細胞、ＣＤ４４（＋）多分化能幹細胞、ＣＤ１３（＋）多分化能幹細胞、ＣＤ７３（＋）多分化能幹細胞、ＣＤ９０（＋）多分化能幹細胞、ＣＤ３４（＋）造血幹細胞、ＣＤ４８（＋）前駆幹細胞、ＣＤ２４４（＋）前駆幹細胞、ＣＤ１４０ｂ（＋）前駆幹細胞、ＣＤ１１７（＋）前駆幹細胞、ＣＤ１０（＋）前駆幹細胞及びＣＤ３３（＋）前駆幹細胞の百分比が２倍またはそれ以上の増加を示されている。前述１２種の幹細胞が２倍またはそれ以上の増加を示されたことは、３名のヒト被験者にフコイダン補助剤を食用または摂取させた２４時間後、前述１２種の幹細胞「細胞数または合計数が対応のすべての細胞または顆粒ＴＳの数量または合計数に占めるパーセント」と、３名のヒト被験者にフコイダン補助剤を食用または摂取させる前、前述１２種の幹細胞「細胞数または合計数が対応のすべての細胞または顆粒ＴＳの数量または合計数に占めるパーセント」と比較する方式によって確認された。
図８Ａ〜８Ｆに示す幹細胞データによると、前述フコイダン補助剤を服用することは、ある種類の幹細胞の百分比が、３名のヒト被験者にフコイダン補助剤を食用または摂取させた後２４時間の末梢血に少なくとも２倍の増加を示されている。ここでいう、「２倍の増加」は、「ある種類の幹細胞がフコイダン補助剤を服用させる前の百分比」と、「これらの特定幹細胞がフコイダン補助剤を服用させた２４時間後（その他特定時間、例えば、１．５時間後、３時間後、６時間後、９時間後、１２時間後、１８時間後、３０時間後また３６時間後）との比較を言う。このほかに、図８Ａ〜８Ｆの幹細胞データから、他の種の幹細胞もそれぞれ１．５倍、３倍または４倍の増加が示されている。よって、フコイダン（褐藻の一種の主要成分）を経口に服用することは、ヒトまたは動物の末梢血に幹細胞を増やせる有効な方法と言える。以上をまとめると、一種の行為例えば、３グラム（つまり、２グラム以上）のフコイダン（例えば、前述フコイダン補助剤から由来する）を経口に服用、または一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせることは、ヒトまたは動物の末梢血の幹細胞を少なくとも１．５倍（またはそれ以上）、２倍（またはそれ以上）、３倍（またはそれ以上）、４倍（またはそれ以上）の増加を引き起こし、誘発、活性化または化学反応ができる。
一部の準則条件（または標準レベル）は、ステップ５３で獲得した組織試料（ステップ５１の一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を実行させるか、または受け入れることによって、取得される）を図７Ａのステップ５４に示す幹細胞の収穫、獲得または採取に使用できるか否かの判断を設定することができる。例えば、図７Ａに示すように、測定結果またはデータからＳＢ−１細胞の数または合計数がすべての細胞または顆粒ＴＳの数または合計数が２０％、２５％または３０％より大きいか、ＳＢ−２細胞の数または合計数がすべての細胞または顆粒ＴＳの数または合計数が２０％、２５％または３０％より大きい、及び／または卵割球様細胞の数または合計数がすべての細胞または顆粒ＴＳの数または合計数が５％または１０％より大きいとき、ステップ５３から獲得した組織試料（ステップ５１の一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を実行させるか、または受け入れることによって、取得される）を幹細胞の収穫、獲得または採取に使用することができる。または、図７Ａに示すように、測定結果またはデータによって、ＳＢ−１細胞、ＳＢ−２細胞及び／または卵割球様幹細胞が少なくとも１．５倍（または以上）の増加、２倍（または以上）の増加あるいは３倍（または以上）の増加が示されたとき、ステップ５３から獲得した組織試料（ステップ５１の一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を実行させるか、または受け入れることによって、取得される）を幹細胞の収穫、獲得または採取に使用することができる。ここでいうｘ倍（例えば、１．５倍、２倍または３倍）増加は、すでに以上の段落に定義されている。図８Ａ〜８Ｆに示された結果から、フコイダン補助剤を服用することによって、ヒトまたは動物の末梢血に含む細胞数を増加できることが証明されている。従って、フコイダン補助剤（一種の行為または刺激（Ｘ）を服用することによって、ヒトのある種の幹細胞数の増加に有益する標識、記号、陳述または符号を一種の製品（例えば、前述フコイダン補助剤）の包装、容器または包装紙に貼り付けるかあるいは印字することができる。もう一つの事例において、図８Ａ〜８Ｆに示す結果は、例えばフコイダン補助剤を経口に服用する行為に関わる投与量、強さ、持続時間、実行頻度及び／または実行時間がヒトの一部の幹細胞数の増加に有益するか否かの判断ができる。図８Ａ〜８Ｆに示す結果から、フコイダン補助剤（３０錠のフコイダン補助剤に３グラム（または２グラム以上）のフコイダン）を毎日または１回に３０錠を服用することは、一部の疾病または怪我あるいは健康維持に使用できることが分かる。
一般状況において、図８Ａ〜８Ｆに述べる２７種の幹細胞が組織において、安静または休眠状態（ｑｕｉｅｓｃｅｎｔ）を認められるが、しかし、フコイダン補助剤を食用または摂取させることによって、これら２７種の幹細胞を末梢血に移動または動員し、かつ損傷の組織を修復するために、この２７種の幹細胞を活性化または分化させることができる。従って、フコイダンの成分は、幹細胞がある適切な位置（例えば、筋肉または骨髄）から血液に移動または動員する機制、或いは幹細胞の活性化または生成する機制に主役を担っている。言い換えれば、褐藻の主要成分フコイダンは、幹細胞にとって、一種の動員（または移動）装置、発生装置または活性化（或いは化学反応）装置であっても良い。前述の実施例は、一種または複数種の幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）の動員、生成または活性化（或いは化学反応）に使用できる。
図１３、個体の幹細胞データを獲得する方法を参照する。図１３に示すように、ステップ１０１において、一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を実験対象（前述の個体（Ｓ））に行わせるかまたは受け入れさせる事例である。例えば、実験対象（または実験組参加者という）をステップ１０１に、３０錠のフコイダン補助剤を経口に服用させる（例えば、図１１と１２に示すフコイダン補助剤）。よって、実験対象はステップ１０１において、３グラム（つまり、２グラム以上）のフコイダンを服用していた。または、実験対象をステップ１０１において、例えばフコイダンあるいは低分子フコイダンを含む栄養補助食品またはサプリメントの注射を受ける。引き続き、ステップ１０２において、実験対象をステップ１０１に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れた後、実験対象を所定（予定の）時間、例えば、１．５時間、１２時間、２４時間、４８時間、０．５〜３時間または１〜２時間を待機させる。引き続き、ステップ１０３において、特定時点に実験対象から末梢血を採取して、採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、血液試料（つまり、組織試料）を獲得する。前述特定時点は、係る（予定の）時間を終了する時点を指す。血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいか又は等しい。引き続き、ステップ１０４において、血液試料に測量または分析方法（以下「測量方法， ＭＴ」という）を実行し、実験対象の特定時点の幹細胞データを獲得する。幹細胞データは、実験対象が特定時点における末梢血の単位体積当たり（例えば、１ミリリットル当たり）の各種の幹細胞数（例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞）の数量を含む。血液試料にステップ１０４の測量方法ＭＴを実行する前に、血液試料は例えば温度が１℃〜３０℃（例えば、１℃〜１０℃、１０℃〜２０℃または２０℃〜３０℃）の環境に貯蔵することができる。ステップ１０３より獲得した血液試料から、ステップ１０４の血液試料に対する測量方法ＭＴを行う時間の間隔は、３０分、６０分、１２時間、２４時間、４８時間、７２時間または１週間、例えば、１０〜３０分、３０〜６０分、０．５〜２時間、２〜１２時間、１２〜２４時間、２４〜４８時間または４８〜７２時間とする。
図１３のステップ１０４に述べる測量方法ＭＴは、例えば図１４Ａのステップ１〜８、図１４Ｂのステップ９〜１４及び図１４Ｃのステップ１５〜２０を含めても良い。引き続き、図１４Ａに示すように、ステップ１において、６％のヒドロキシエチル澱粉を含む赤血球凝集剤（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅ ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ ａｇｅｎｔ）を血液試料（例えば、末梢血）が入れた採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）に入れて、第１の中間試料を形成する。６％のヒドロキシエチル澱粉を含む赤血球凝集剤は、例えばＨｅｔａＳｅｐ
（外）

Figure 0006581758
（登録商標）溶液であっても良い。血液試料を入れた採血管は、例えば図１３のステップ１０３で獲得することができる。血液試料は、個体（前述の個体（Ｓ））の末梢血を採取し、採取した血液試料を前述採血管に入れる。血液試料にステップ１を実行する前に、血液試料は例えば、温度が１〜３０℃（例えば、１〜１０℃、１０〜２０℃または２０〜３０℃）の環境に貯蔵することができる。血液試料を獲得してから、ステップ１の血液試料に対する測量方法ＭＴを行う時間の間隔は、３０分、６０分、１２時間、２４時間、４８時間、７２時間または１週間、例えば、１０〜３０分、３０〜６０分、０．５〜２時間、２〜１２時間、１２〜２４時間、２４〜４８時間または４８〜７２時間とする。血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいか又は等しい。血液試料と６％のヒドロキシエチル澱粉を含む赤血球凝集剤の体積比は、例えば５：１であっても良い。６％ヒドロキシエチル澱粉は一種の溶液であり、燐酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に６％のヒドロキシエチル澱粉を含有しており、つまり、毎１００ミリリットル（ｍＬ）の燐酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に６グラムのヒドロキシエチル澱粉を含有している。
引き続き、ステップ２において、中間試料を第１試験管（例えば、ｆａｌｃｏｎ試験管）に入れて、第１の中間試料を室温（例えば、２７℃前後）にて所定の時間（例えば、３０〜９０分）を培養する。第１試験管の第１の中間試料が上下２つの成層構造に形成された後に、下層層構造（すなわち、赤血球層）を撹乱しないことを前提とする場合において、ピペットを用いて上層構造（すなわち、細胞層）を取り出し第２試験管に入れる。引き続き、ステップ３において、第２試験管内の上層構造を適切な回転速度（例えば、毎分１，８００回転または毎分３，０００回転）で所定の時間（例えば、１０〜２０分間）を遠心し、遠心完了後、第１遠心試料が得られる。引き続き、ステップ４において、第１遠心試料の上澄み液を取り除き、第１遠心試料の顆粒をカルシウムとマグネシウムを含まない第１の塩溶液（例えば、カルシウムとマグネシウムを含まないダルベッコ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ）燐酸緩衝生理食塩水緩衝液）に再び懸濁させて、第２中間試料を形成する。第１遠心試料に含む顆粒の一部は、血液試料から由来する。引き続き、ステップ５において、第２試験管内の上層構造を適切な回転速度（例えば、毎分１，８００回転または毎分３，０００回転）で所定の時間（例えば、１０〜２０分間）を遠心し、遠心完了後、第２遠心試料が得られる。
引き続き、ステップ６において、第２遠心試料の上澄み液を取り除き、第２遠心試料の顆粒をカルシウムとマグネシウムを含まない第２の塩溶液（例えば、カルシウムとマグネシウムを含まないダルベッコ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ）燐酸緩衝生理食塩水緩衝液）に再び懸濁させて、第３中間試料を形成する。第２遠心試料に含む顆粒の一部は、血液試料から由来する。引き続き、ステップ７において、第３試験管内の上層構造を適切な回転速度（例えば、毎分１，８００回転または毎分３，０００回転）で所定の時間（例えば、１０〜２０分間）を遠心し、遠心完了後、第３遠心試料が得られる。引き続き、ステップ８において、第３遠心試料の上澄み液を取り除き、第３遠心試料の顆粒をカルシウムとマグネシウムを含まない第１の塩溶液（例えば、１％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）燐酸緩衝生理食塩水緩衝液）に再び懸濁させて、処理済みの試料（以下「処理済み試料」という）を獲得する。本発明において、０．１グラムのウシ血清アルブミンを１０ミリメートルの燐酸緩衝生理食塩水緩衝液に溶かせることによって、１％のウシ血清アルブミンの燐酸緩衝生理食塩水緩衝液が得られる。第３遠心試料に含む顆粒の一部は、血液試料から由来する。処理済み試料の体積は、０．８ミリメートルまたは３ミリメートルより大きいかまたは等しい、しかもステップ１に述べる血液試料の体積より小さくても良い。第１の培養液の体積は、処理済み試料の体積にほぼ等しいことができる。
引き続き、図１４Ｂを参照する。ステップ８の実行によって処理済み試料を獲得した後、順を追って、ステップ９〜１４を実行する。ステップ９において、処理済み試料から一部分（以下「第１部分の試料」という）を取り出した後に、第１部分の試料を第３試験管に分ける。引き続き、ステップ１０において、染色剤（例えば、トリパンブルー（ｔｒｙｐａｎ ｂｌｕｅ））を第１部分の試料を入れた第３試験管に加えて、染色剤と第１部分の試料と混合させて、第１試験試料を形成する。第１部分の試料の体積は、例えば５マイクロリットル（ｍｉｃｒｏｌｉｔｅｒ）〜５０マイクロリットル（例えば、１０マイクロリットル）、しかも染色剤の体積に等しいことができる。引き続き、ステップ１１において、一部の第１部分の試料（この部分の体積は、例えば１０〜２０マイクロリットル（例えば、１０マイクロリットル））、これを血球計算器（ｈｅｍｏｃｙｔｏｍｅｔｅｒ）のチャンバー（ｃｈａｍｂｅｒ）に入れる。この血球計算器は、前述チャンバー下方に位置する顕微鏡グリッド（ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｉｃ ｇｒｉｄ）を有する（図１５）。この顕微鏡グリッドは４つの幅１ミリメートル（ｍｍ）の正方形（１ミリメートル幅正方形ともいう）１００ａ〜１００ｄを形成していて、かつ４の正方形１００ａ〜１００ｄのうち、それぞれをさらに１６の幅が０．２５ミリメートルの正方形（０．２５ミリメートル幅正方形ともいう）分ける。この他に、カーバーガラスを前述チャンバーの上に被せる。カーバーガラス底部の表面と前述チャンバーとの間の空間の深さは０．１ミリメートルである。これにより、４つの１ミリメートル幅正方形１００ａ〜１００ｄそれぞれは０．１立方ミリメートル（ｍｍ３）または１０−４ミリリットルを表す。
図１４Ｂを参照する。ステップ１１を実行完了（または完成）した後、ステップ１２に説明したとおり、血球計算器顕微鏡のステージ（ｓｔａｇｅ）に乗せる。顕微鏡の総合倍率は、例えば２００倍より大きいかまたは等しい。この他に、係る顕微鏡は、拡大倍率が１０倍より大きいかまたは等しい接眼レンズ（ｏｃｕｌａｒ ｌｅｎｓ）と、拡大倍率が２０倍より大きいかまたは等しい対物レンズ（ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ ｌｅｎｓ）を含めても良い。引き続き、ステップ１３において、顕微鏡の視野範囲を通じて、１ミリメートル幅正方形１００ａのうち、一つの０．２５ミリメートル幅正方形範囲における、１マイクロメータより大きいかまたは等しい細胞（≧１ミクロン細胞ともいう）を計数（または計算）によって、≧１ミクロン細胞が１ミリメートル幅正方形１００ａ範囲における、前述０．２５ミリメートル幅正方形範囲の数（または合計数）を獲得できる。よって、≧１ミクロン細胞が１ミリメートル幅正方形１００ａ範囲における０．２５ミリメートル幅正方形の数（または合計数）を１６に掛け合わせることによって（１ミリメートル幅正方形１００ａ範囲における０．２５ミリメートル幅正方形の数）、≧１ミクロン細胞１がミリメートル幅正方形１００ａ範囲の数（または合計数）を推定できる。引き続き、ステップ１４において、≧１ミクロン細胞が１ミリメートル幅正方形１００ａ範囲の数（または合計数）と、希釈係数（例えば、１．５、２または３より大きいか又は等しい）を掛けて、掛け算結果を１ミリメートル幅正方形１００ａ範囲の体積（つまり、１０−４ミリリットル）で割ることによって、≧１ミクロン細胞が処理済み試料における１ミリリットルの数（つまり、≧１ミクロン細胞が処理済み試料における単位体積当たりの数）を推定できる。例えば、第１部分の試料の体積を第１部分の試料と同じ染色剤によって希釈される場合、前述希釈係数は、例えば２であっても良い。ステップ１３とステップ１４に説明する≧１ミクロン細胞は、例えば微粒子、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む）及び各種幹細胞を含む。そのうち、微粒子は細胞核または細胞質を含まなくても良い。
さらに、ステップ１４において、例えば≧１ミクロン細胞が処理済み試料における１ミリリットルの数は、まず、≧１ミクロン細胞が血球計算器の１ミリメートル幅正方形範囲の計算（または数量）の平均値と、上述希釈係数を掛けて、掛け算結果を血球計算器の１ミリメートル幅正方形範囲の体積の平均値（つまり、１０−４ミリリットル）で割る方式で算出しても良い。この場合において、ステップ１３は、（１）顕微鏡の視野において、１ミリメートル幅正方形範囲（合計４つを有し、つまり１ミリメートル幅正方形１００ａ〜１００ｄ）のうち、０．２５ミリメートル幅正方形の大きさが１マイクロメータの細胞（≧１ミクロン細胞ともいう）の数より大きいかまたは等しい細胞を算出することによって、４つの≧１ミクロン細胞の原始数（または合計数）を獲得することと、（２）それぞれの≧１ミクロン細胞の原始数（または合計数）を１６に掛ける（４つの１ミリメートル幅正方形１００ａ〜１００ｄにおける、それぞれの１ミリメートル幅正方形範囲の０．２５ミリメートル幅正方形の数）ことによって、≧１ミリメートル幅正方形範囲（合計４つを有し、つまり１ミリメートル幅正方形１００ａ〜１００ｄ）における数（または合計数）を推定できる。よって、≧１ミクロン細胞が血球計算器における１ミリメートル幅正方形の計数（または数量）平均値は、≧１ミクロン細胞が１ミリメートル幅正方形範囲（合計４つを有し、つまり１ミリメートル幅正方形１００ａ〜１００ｄ）における数（または合計数）を足し計算した結果を４で割る（血球計算器における１ミリメートル幅正方形の数、合計４つを有し、つまり１ミリメートル幅正方形１００ａ〜１００ｄ）ことで獲得することができる。
引き続き、図１４Ｃを参照する。ステップ８の実行によって処理済み試料を獲得した後、順を追って、ステップ１５〜２０を実行する。ステップ１５において、処理済み試料から他の一部分（以下「第２部分の試料」という）を取り出した後に、第２部分の試料を複数の容器（例えば、試験管）に分ける。これにより、各試料容器にＬマイクロリットルの第２部分の試料（Ｌマイクロリットルの第２部分の試料は以下「小さい部分試料」という）を含む。そのうち、Ｌは例えば、５０〜２５０のうち、いずれかの数（例えば、１００）であっても良い。処理済み試料が均一していて、かつほぼ同じの内容物を含める場合において、第２部分の試料は、ステップ９に述べる第１部分の試料とほぼ同じの内容物を仮定することができる。第２部分の試料の総容積は、０．５ミリリットルから１８マイクロリットル（例えば、２ミリリットル）の間であっても良い。試料容器の数は、例えば２〜５０個であっても良い。引き続き、ステップ１６において、それぞれの試料容器に、一種の特定染色剤（例えば、一種または複数種の抗体を含む）を加える。それぞれの試料容器に加える染色剤は、互いに異なっていても良い。かつ、一種または複数種の特定抗体を含むことができる。それぞれの試料容器の染色剤に含む抗体は、互いに異なる一種または複数種の抗体であっても良い。れぞれの試料容器に一種または複数種の染色剤を加える目的は、一種または複数種の特定細胞（表面）マーカー、或いは一種または複数種の幹細胞（各種の幹細胞に関する説明は、本発明の「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞（表面）マーカー）によってその特徴を記述できる）を識別するためである。これらの染色剤のうち、各種の抗体は、一種の特定細胞（表面）マーカーと、一種の幹細胞または選択された複数種の幹細胞或いは細胞（表面）マーカーを識別することができる、かつ、これらの染色剤のうちの他種抗体によって識別される幹細胞または細胞（表面）マーカーとは一様でない。よって、それぞれの試料容器は第４中間試料を含み、かつ、それぞれの第４中間試料も前述に対応した染色剤（一種または複数の特定種抗体を含む）によって染色された小さい部分試料から構成される。
引き続き、ステップ１７において、これらの試料容器の第４中間試料を室温（例えば、２７℃）で所定の時間（例えば、３０分間以上）を培養する。続いて、ステップ１８において、これらの試料容器それぞれの第４中間試料を第２培養液（例えば、１％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）燐酸緩衝生理食塩水緩衝液）と混合し、複数の第２試験試料（「フローサイトメーター試料」ともいう）を形成する。それぞれの第２試験試料とも小さい部分試料（互いに対応された種の染色剤（この染色剤に一種または複数種の抗体を含む）によって染色）と第２培養液との混合物である。それぞれの第２試験試料の体積は、２５０〜１，２５０マイクロリットルであり、例えば、５００マイクロリットル。第４中間試料との混合に用いる第２培養液の体積は、２００〜１，０００マイクロリットルであり（例えば、４００マイクロリットル）、しかも対応の小さい部分試料の体積より大きい。
引き続き、ステップ１９において、フローサイトメーターを用いて、第２試験試料を解析することによって、複数組のデータを獲得する。各組のデータ（対応する第２試験試料から獲得する）は、大きさが１マイクロメータより大きいかまたは等しい細胞の数（以下「細胞数Ｃ１」という）と、細胞核／細胞質の比較的高い値の区域の細胞数以下「細胞数Ｃ２」という）と、一種の特定（または選択された）細胞核／細胞質の比較的高い値の区域の数が細胞数Ｃ２に占めるパーセント（以下「幹細胞の百分比ＳＰ」）を含む。前述一種の特定（または選択された）幹細胞は、例えば本発明が「幹細胞の定義」に説明したいずれか一種の幹細胞、或いは本発明が「幹細胞の定義」に説明した一種または複数種の細胞（表面）マーカー（例えばＣＤ３４９（＋）、Ｌｇｒ５（＋）またはＣＤ６６ｅ（＋））によって、その特徴を記述した幹細胞である。細胞核／細胞質の比較的高い値の区域の細胞の大きさ（大きさの定義は前述した大きさ（Ｚ）の定義を参照する）は、例えば１マイクロメータ、１．１マイクロメータ、１．５マイクロメータ、２マイクロメータ、２．１マイクロメータまたは３マイクロメータ、或いは１〜１５マイクロメータ（例えば、２〜６マイクロメータより大きいかまたは等しい）である。この他に、細胞核／細胞質の比較的高い値の区域の細胞は、細胞核及び／または細胞質を有し、かつ、「幹細胞の定義」に説明した各種の幹細胞、（例えば、前述一種の特定（または選択された）幹細胞）を含むが、微粒子、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む）はほとんど含まれていない。ステップ１３とステップ１４とステップ１９に説明した大きさが１マイクロメータより大きいかまたは等しい（閾値の大きさ（ｔｈｒｅｓｈｏｌｄ ｓｉｚｅ）である）の細胞は、大体同じ性質または特性を有する。ステップ１９に述べる大きさが１マイクロメータより大きいかまたは等しい細胞は、例えば微粒子、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む）及び、細胞核／細胞質の比較的高い値の区域の細胞を含む。そのうち、微粒子は、細胞核または細胞質を含まなくても良い。
前述各組のデータのうち、細胞数Ｃ１は、（１）細胞数Ｃ２と、（２）顆粒細胞の数と、（３）血小板の数と、（４）赤血球の数と、（５）白血球の数及び、（６）微粒子の数を含む。図１６、前述フローサイトメーターに使用される前方散乱係数／側方散乱係数図を参照する。図１６に示すように、横軸は前方散乱係数を表し、縦軸は側方散乱係数を表す。フローサイトメーターを使用して、それぞれの第２試験試料を解析する前に、図１６に示す前方散乱係数／側方散乱係数は、あらかじめフローサイトメーターに設定しても良い。図１６に示す前方散乱係数／側方散乱係数は、（１）血小板の区域Ｐ１と、（２）微顆粒の区域Ｐ２と、（３）赤血球と白血球の区域Ｐ３と、（４）例えばＰ４に示す細胞核／細胞質の比較的高い値の区域と、（５）顆粒細胞の区域（図示しない）と、を含む。フローサイトメーターを使用して、それぞれの第２試験試料を解析する前に、マイクロビーズ（ｍｉｃｒｏｂｅａｄｓ）またはポリマー顆粒を使用し、フローサイトメーターの前方散乱係数を１マイクロメータ大きさの対応（近似）値に設定して置く。この（近似）値は、細胞の大きさが１マイクロメータより大きいかまたは等しい閾値領域（ｔｈｒｅｓｈｏｌｄ ｒｅｇｉｏｎ）を定義または（構築）すると共に、この閾値領域より大きさが１マイクロメータより大きいかまたは等しい細胞を確定または測定することによって、この閾値領域の細胞数Ｃ１を獲得する。前述区域Ｐ１〜Ｐ４と、前述顆粒細胞の区域ともこの特定区域に位置している。ステップ１９において、フローサイトメーターは、（１）対応の細胞数Ｃ１が特定数に達した（５０万、８０万または１００万より大きいかまたは等しい）或いは、（２）対応の細胞数Ｃ２が特定数に達した（１０００、１５００、２０００、２５００、３０００または３５００より大きいかまたは等しい）に達するまで、それぞれの第２試験試料を解析し続けられる。よって、それぞれの第２試験試料の解析を完了した後、第２試験試料に関わる前述複数組のデータ（一つの第２試験試料から一組のデータを獲得できる）を獲得できる。
引き続き、図１４Ｃに示すように、ステップ１４とステップ１９を実行完了（または完成）した後、幹細胞を獲得するために、続いて、図１４Ｃのステップ２０を実行する。ステップ２０において、≧１ミクロン細胞が１ミリリットル当たりの処理済み試料に占める数（ステップ１４によって、獲得する）及び、前述細胞数Ｃ１、細胞数Ｃ２と幹細胞の百分比ＳＰを含む複数組のデータ（ステップ１９によって、獲得する）に基づき、係る幹細胞データを算出（または獲得）することができる。係る幹細胞データは、例えばすべての種の特定幹細胞（例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した幹細胞）が血液試料の１ミリリットル当たりの数（前述すべての種の特定幹細胞が血液試料の単位体積当たりの数ともいう）を含む。すべての特定幹細胞が血液試料１ミリリットル当たりの数を獲得するため、以下の計算ステップを実行する。
（１）細胞核／細胞質の比較的高い値の区域Ｐ４から得た細胞数Ｃ２を前述細胞の大きさが１マイクロメータより大きいかまたは等しい特定区域から得た細胞数Ｃ１で割って、（割り算結果をパーセンテージに置き換えるため）その結果を１００％に掛けて、細胞数Ｃ２が細胞数Ｃ１に占めるパーセント（細胞数Ｃ１と細胞数Ｃ２に関わる一種のデータ）を獲得するステップと、
（２）細胞数Ｃ２が細胞数Ｃ１に占めるパーセントと、選定された幹細胞に関わる幹細胞の百分比ＳＰを掛け合わせて、（かけ算結果をパーセンテージに置き換えるため）掛け算結果に１００％を掛けることによって、選定された幹細胞が細胞数Ｃ１に占めるパーセント（処理済み試料に関わると共に、選定された幹細胞Ｃ１に関わるデータ）を獲得するステップと、
（３）選定された幹細胞が細胞数Ｃ１に占めるパーセントと、≧１ミクロン細胞に処理済み試料の１ミリリットル当たりの数（ステップ１４によって、獲得する）を掛けることによって、選定された幹細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数（つまり、選定された幹細胞が処理済み試料における単位体積当たりの数）を獲得する、選定された幹細胞と、処理済み試料との関係に関わるデータのを獲得するステップと、
（４）処理済み試料の体積と血液試料体積との比率は、処理済み試料の体積（単位は、ミリリットル）を血液試料の体積（単位は、ミリリットル）で割ることによって体積変動係数（または試料調製係数という）を獲得する。
（５）選定された幹細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数に体積変動係数を掛けることによって、選定された幹細胞が血液試料の１ミリリットル当たりの数（つまり、選定された幹細胞が血液試料の単位体積当たりの数）を獲得する。これは選定された幹細胞と血液試料との関係に関わるデータであり、しかも選定された幹細胞が個体（図１３に説明した実験対象）の末梢血の１ミリリットル当たりの数を表すことができる。前述選定された幹細胞は、例えば本発明が「幹細胞の定義」に説明したいずれか一種の幹細胞、或いは本発明が「幹細胞の定義」に説明した一種または複数種の細胞（表面）マーカー（例えばＣＤ３４９（＋）、Ｌｇｒ５（＋）またはＣＤ６６ｅ（＋））によって、その特徴を記述した幹細胞である。前述幹細胞データをより精確に獲得するため、選定された幹細胞に関わる細胞数Ｃ２は１，０００個の細胞、１，５００個の細胞、２，０００個の細胞または２，５００個の細胞より大きいかまたは等しい。
より詳しく言えば、図１４Ｂに説明した細胞数の大きさは、所定の閾値の大きさより大きいかまたは等しい（≧１ミクロン細胞の数または４つの≧１ミクロン細胞の原始数の事例において、所定の閾値の大きさは１マイクロメータ）細胞数の計算によって獲得し、図１４Ｃに説明した細胞数Ｃ１は、所定の閾値の大きさより大きいかまたは等しい（この事例において、所定の閾値の大きさは、１マイクロメータに等しい）の計算（または計数）によって獲得する。所定の閾値の大きさは、この事例に説明した１マイクロメータのほか、例えば、０．５マイクロメータ、０．８マイクロメータ、１．５マイクロメータ、２マイクロメータまたは３マイクロメータであっても良い。細胞数Ｃ１が所定の閾値の大きさより大きいかまたは等しい（この事例において、所定の閾値の大きさは、１マイクロメータに等しい）の細胞数計算によって獲得された場合は、それぞれの第２試験試料の分析に用いるフローサイトメーターは、大きさを所定の閾値の大きさに設定する（この事例において、所定の閾値の大きさは、１マイクロメータに等しい）マイクロビーズまたはポリマー顆粒をもって、前方散乱係数／側方散乱係数図における前方散乱係数の（近似）値を設定し、細胞の大きさが所定の閾値の大きさの閾値領域（ｔｈｒｅｓｈｏｌｄ ｒｅｇｉｏｎ）を定義または（構築）すると共に、この閾値区域によって、大きさが所定の閾値の大きさより大きいかまたは等しい（この事例において、所定の閾値の大きさは、１マイクロメータに等しい）の細胞を確定または測定する。
図１３、図１４Ａ、図１４Ｂと図１４Ｃに述べる方法に基づき、本発明は例えば単独システム、装置、計器または工具（ＡＤ）にを使用して、ステップ２０に言及した幹細胞データ（図１３に述べる実験対象の血液試料に関わる）を獲得することができる。この単独システム、装置、計器または工具（ＡＤ）は例えば、
（１）図１３のステップ１０３に説明したとおり、実験対象（または個体）から血液試料を獲得または採取できる第１装置、計器、または工具と、
（２）図１４Ａのステップ１〜８に説明したとおり、血液試料を処理することによって、処理済み試料（試験試料）を獲得または調製できる、第２装置、計器、または工具（例えば、遠心機）と、
（３）図１４Ｂのステップ９〜１４に説明した血球計算器（及び顕微鏡）を使用して、処理済み試料の第１部分の顆粒または細胞の処理をさらに含む第１方法を使用して、処理済み試料の第１部分から第１データを獲得する（例えば、図１４Ｂのステップ１４から獲得した≧１ミクロン細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数）第３装置と、計器、または工具（例えば、血球計算器、顕微鏡と、ソフトウエアをコンパイルするためのプロセッサー／コンピュータ）と、
（４）図１４Ｃのステップ１５〜２０に説明したフローサイトメーターを使用して、処理済み試料の第２部分の顆粒または細胞数を計算する第２方法を使用し、第２データ（例えば、選定された幹細胞に関わる百分比ＳＰ）及び第３データ（選定された幹細胞に関わる細胞数Ｃ２が選定された幹細胞に関わる細胞数Ｃ１に占めるパーセント）を獲得するための第４装置と、計器、または工具（例えば、フローサイトメーターとプロセッサー／コンピュータを含む）と、
（５）血液試料に関わる第６データ（例えば、選定された幹細胞が血液試料における１ミリリットル当たりの数）を獲得するため、（ａ）第２データと第３データに対して第１演算または計算を実行（例えば、第２データに第３データを掛け合わせる（例えば、細胞数百分比ＳＰに細胞数Ｃ２が細胞数Ｃ１に占めるパーセントを掛ける）、掛け算結果に１００％を掛けて、処理済み試料に関わる第４データ（例えば、選定された細胞数が細胞数Ｃ１に占めるパーセント）を獲得すると、（ｂ）第１データと第４データに対して第１演算または計算（例えば、第１データに第４データを掛け合わせて（例えば、≧１ミクロン細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数に、選定された細胞数が細胞数Ｃ１に占めるパーセントを掛ける））、処理済み試料に関わる第５データ（例えば、選定された幹細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数）を獲得すると、（ｃ）処理済み試料の体積と血液試料の体積に対して第３演算または計算を実行（例えば、処理済み試料の体積を血液試料の体積で割る）することによって、前述体積変動（または試料調製）係数（例えば、処理済み試料の体積と血液試料の体積との比率）すると、（ｄ）第５データと体積変動（または試料調製）係数に対して、第４演算または計算（例えば、第５データに体積変動（或樣本準備）係数を掛ける（例えば、選定された幹細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数に、処理済み試料の体積と血液試料の体積との比率を掛ける））の実行を処理する第５装置と、計器、または工具（例えば、コンピュータまたはプロセッサー）と、を含む。
この他に、前述第１ないし第５装置と、計器、または工具のうち、いずれかの２つまたはそれ以上の装置と、計器、または工具或いを前述いずれかの２つ以上の装置と、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具もしくは単独装置、計器、または工具に統合して組合せることもできる。例えば、第１と第２装置、計器、または工具を第１と第２装置、計器、または工具の機能を備えた第１整合装置、計器、または工具或いは第１単独装置に組み合わせて整合するか、もしくは第３、第４と第５装置、計器、または工具を第３、第４と第５装置、計器、または工具の機能を備えた第２整合装置、計器、または工具或いは第２単独装置、計器、または工具に組み合わせて整合することもできる。さらに、第２、第３、第４と第５装置、計器、または工具を第２、第３、第４と第５装置、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具あるいは単独装置に組み合わせて整合することもできる。さらに、第２、第３と第４装置、計器、または工具を第２、第３、第４装置、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具あるいは単独装置、計器、または工具に組み合わせて整合することもできる。さらに、第３、第４装置、計器、または工具を第３と第４装置、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具あるいは単独装置、計器、または工具に組み合わせて整合することもできる。さらに、第４、第５装置、計器、または工具を第４と第５装置、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具か、あるいは単独装置、計器、または工具に組み合わせて整合することもできる。
本発明において、第３装置、計器、または工具は、大きさが所定の閾値の大きさ（の事例において、所定の閾値の大きさは、１マイクロメータに等しい）より大きいかまたは等しい細胞が処理済み試料における単位体積当たりの数の獲得に用いられ、第４装置と第５装置、計器、または工具は、大きさが所定の閾値の大きさ（この事例において、所定の閾値の大きさは、１マイクロメータに等しい）の細胞（処理済み試料に関わる）に占めるパーセントの獲得に用いられる。獲得した前述細胞が処理済み試料の１ミリリットル当たりの数に、獲得した前述選定された幹細胞の百分比を掛けることによって、選定された幹細胞が処理済み試料の１単位体積当たりの数を獲得することができる。選定された幹細胞が処理済み試料における１単位体積当たりの数に、前述体積変動（または試料調製）係数を掛けることによって、選定された幹細胞が血液試料の１単位体積当たりの数を獲得することができる。第３装置、計器、または工具はによって、獲得した細胞数データを第４と第５装置、計器、または工具によって獲得する選定された幹細胞の百分比を獲得する方法を用いることによって、選定された幹細胞が末梢血における数をより精確に獲得することができる。
図１３、図１４Ａ、図１４Ｂと図１４Ｃに述べる方法に基づき、本発明は例えば単独システム、装置、計器または工具（ＴＤ）にを使用して、ステップ２０に言及した幹細胞データ（図１３に述べる実験対象の血液試料に関わる）を獲得することができる。この単独システム、装置、計器または工具（ＴＤ）は、（１）図１３のステップ１０３に説明した実験対象（または個体）から血液試料を獲得或いは採取できる第１機能と、（２）図１４Ａのステップ１〜８に説明した血液試料を処理することによって、処理済み試料（試験試料）を獲得または調製する第２機能と、（３）第１方法（例えば、図１４Ｂのステップ９〜１４に記述した方法）によって、処理済み試料の第１部分から第１データ（例えば、１４Ｂのステップ１４で獲得した≧１ミクロン細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数）を獲得することができる第３機能と、（４）第２方法（例えば、図１４Ｃのステップ１５〜２０に記述した方法）によって、処理済み試料の第２部分から第２データ（例えば、選定された幹細胞に関わる幹細胞の百分比ＳＰ）と、第３データ（例えば、選定された幹細胞に関わる細胞数Ｃ２が選定された幹細胞に関わる細胞数Ｃ１に占めるパーセント）を獲得することができる第４機能と、（５）第２データと第３データに対して、第１演算または計算を実行する（例えば、第２データを第３データに掛ける（例えば、幹細胞の百分比ＳＰを細胞数Ｃ２が細胞数Ｃ１に占めるパーセントに掛ける）、掛け算結果に１００％を掛ける）することによって、処理済み試料に関わる第４データ（例えば、選択された細胞数が細胞数Ｃ１に占めるパーセント）を獲得することができる第５機能と、（６）第１データと第４データに対して第２演算または計算を実行することによって（例えば、第１データを第４データに掛ける（例えば、≧１ミクロン細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数に、選定された細胞数が細胞数Ｃ１に占めるパーセントを掛ける））、処理済み試料に関わる第５データ（例えば、選定された幹細胞が処理済み試料における１ミリリットル当たりの数）を獲得することができる第６機能と、（７）処理済み試料の体積と血液試料の体積に対して、第３演算または計算を実行することによって（例えば、処理済み試料の体積を血液試料の体積で割る）、前述体積変動（または試料調製）係数（例えば、処理済み試料の体積と血液試料の体積との比率）を獲得することができる第７機能と、（８）第５データと体積変動（または試料調製）係数に対して、第４演算または計算を実行することによって（例えば、第５データに体積変動（たは試料調製）係数（例えば、選定された幹細胞が血液試料における１ミリリットル当たりの数に処理済み試料の体積と血液試料の体積との比率を掛ける））を掛けて、血液試料に関わる第６データ（例えば、選定された幹細胞が血液試料における１ミリリットル当たりの数）を獲得することができる第８機能と、を提供または実行することができる。
単独システム、装置、計器または工具（ＴＤ）によって提供される第３機能は、大きさが所定の閾値の大きさより大きいかまたは等しい（この事例において、所定の閾値の大きさは、１マイクロメータに等しい）細胞が処理済み試料の単位体積当たりの数の獲得に使用できることができる。単独システム、装置、計器または工具（ＴＤ）によって提供される第４機能と第５機能は、選定された幹細胞の大きさが所定の閾値の大きさより大きいかまたは等しい（この事例において、所定の閾値の大きさは、１マイクロメータに等しい）の細胞に占めるパーセントの獲得に使用できることができる。獲得した前述細胞が処理済み試料の１ミリリットル当たりの数に、獲得した前述選定された幹細胞の百分比を掛けることによって、選定された幹細胞が処理済み試料の１単位体積当たりの数を獲得することができる。選定された幹細胞が処理済み試料における１単位体積当たりの数に、前述体積変動（または試料調製）係数を掛けることによって、選定された幹細胞が血液試料の１単位体積当たりの数を獲得することができる。単独システム、装置、計器、または工具（ＴＤ）の第３機能によって、獲得した細胞数データを単独システム、装置、計器、または工具（ＴＤ）の第４機能と第５機能によって、選定された幹細胞の百分比を獲得する方法を用いることによって、選定された幹細胞が末梢血における数をより精確に獲得することができる。
一部の事例において、本発明は単独システム、装置、計器、または工具を用いて、前述第１〜８機能のうち、いずれかの２つ（またはそれ以上）の機能を実行することができる。例えば、係る単独システム、装置、計器、または工具を使用することによって、前述第３と第４機能、前述第２、第３と第４機能、前述第３、第４、第５、第６、第８機能、或いは前述第３〜第８機能、を提供または実行することができる。
引き続き、図１７Ａにおいて、年齢が５５歳前後の男性（実験対象）がフコイダン補助剤を食用または摂取１．５時間後の幹細胞データを示す。本発明は、係る男性に図１３に述べる方法を行わせることによって、図１７Ａに示す幹細胞データを獲得された。この事例において、係る男性はステップ１０１において、フコイダン補助剤３０錠を経口に服用させ、係るフコイダン補助剤は、例えば図１１と図１２に言及したフコイダン補助剤と同じであっても良い。よって、係る男性はステップ１０１において、３グラム（つまり、２グラム以上）のフコイダンを服用させた。ステップ１０２において、係る男性にフコイダン補助剤３０錠を服用させた後に、１．５時間を待機させる。ステップ１０３において、係る男性の末梢血を採取し、採取された末梢血を採血管に入れて、１０ミリリットルの血液試料を獲得する。引き続き、図１４Ａのステップ１〜８を実行することによって、１０ミリリットルの血液試料を３ミリリットルの処理済み試料に処理する。３ミリリットルの処理済み試料を２つの部分に分けて、一つの部分（以下「第１部分」という）を図１４Ｂのステップ９〜１４に使用し、もう一つの部分（以下「第２部分」という）を図１４Ｃのステップ１５〜１９に使用する。３ミリリットルの処理済み試料の第１部分を図１４Ｂのステップ９〜１４を実行した後、図１７Ａの（Ａ）に示す、≧１ミクロン細胞が３ミリリットルの処理済み試料における１ミリリットル当たりの数を獲得することができる。３ミリリットルの処理済み試料の第２部分を図１４Ｃのステップ１５〜１９を実行した後、図１７Ａの（Ｂ）欄、（Ｃ）欄、と（Ｅ）欄に示す、それぞれの幹細胞（図１７Ａに示すとおり、合計５種の幹細胞を有する）に関わる細胞数Ｃ１、細胞数Ｃ２と、幹細胞の百分比ＳＰを獲得することができる。３ミリリットルの処理済み試料の第２部分をステップ１５〜１８を実行した後、複数の第２試験試料（フローサイトメーターともいう）を獲得することができる。この事例において、ステップ１９において、フローサイトメーターは対応の細胞数Ｃ１が１００万または対応の細胞数Ｃ２が２５００に達するまで、絶えずにそれぞれの第２試験試料の解析が行わる。第２試験試料の解析を完了した後、これらの第２試験試料（３ミリリットルの処理済み試料の第２部分に対して、ステップ１５〜１８を実行することによって、獲得する）に関わる複数組のデータ（一つの第２試験試料につき、一組のデータを獲得できる）を獲得することができる。
ステップ１４の実行によって獲得された≧１ミクロン細胞が３ミリリットルの処理済み試料の数及び、ステップ１９の実行によって獲得されたすべての幹細胞に関わるデータの細胞数Ｃ１、細胞数Ｃ２と、幹細胞百分比ＳＰを隠した後、引き続き、ステップ２０を実行し、係る男性がフコイダン補助剤を食用または摂取１．５時間後の幹細胞データを獲得することができる。係る幹細胞データは、すべての幹細胞（例えば、図１７Ａに示すとおり、合計５種の幹細胞を有する）がこの男性にフコイダン補助剤を食用または摂取させた後、１．５時間の末梢血におけるミリリットル当たりの数を含む。以下は、ＣＤ２４（＋）先駆幹細胞の事例を説明する。図１７Ａに示すように、ＣＤ２４（＋）先駆幹細胞は係る男性がフコイダン補助剤を食用または摂取させた１．５時間後の末梢血の１ミリメートル当たりの数は、（１）第（１）列の（Ｃ）欄に示す２，５００（細胞核／細胞質の比較的高い値の区域Ｐ４の細胞数Ｃ２）を第（１）列の（Ｂ）欄に示す９９５，９１８（細胞の大きさが１ミリメートルより大きいかまたは等しい区域の細胞数Ｃ１）で割って、割り算結果（つまり、０．００２５）に１００％を掛ける（割り算結果をパーセンテージに置き換えるため）ことによって、第（１）列の（Ｄ）欄に示す０．２５％（細胞数Ｃ２が細胞数Ｃ１に占めるパーセント）を獲得すると、（２）第（１）列の（Ｄ）欄に示す０．２５％に第（１）列の（Ｅ）欄に示す４６％を掛ける（ＣＤ２４（＋）先駆細胞数が細胞数Ｃ２に占めるパーセント）、掛け算結果（つまり、０．００１１５）に１００％を掛けることによって（掛け算結果をパーセンテージに置き換えるため）、第（１）列の（Ｆ）欄に示す０．１１５０％（つまり、ＣＤ２４（＋）先駆細胞数が細胞数Ｃ１に占めるパーセント）を獲得すると、（３）第（１）列の（Ｆ）欄に示す０．１１５０％に第（１）列の（Ａ）欄に示す１．７７Ｅ＋０８を掛けることによって（つまり、≧１ミクロン細胞が３ミリメートルの処理済み試料の１ミリメートル当たりの数）、第（１）列の（Ｇ）欄に示す２０３，５５０（つまり、ＣＤ２４（＋）先駆幹細胞が３ミリメートルの処理済み試料の１ミリメートル当たりの数）を獲得すると、（４）３ミリメートル（処理済み試料の体積）を１０ミリメートル（血液試料の体積）で割ることによって、０．３という数値（前述体積変動（または試料調製）係数）を獲得すると、（５）第（１）列の（Ｇ）欄に示す２０３，５５０（ＣＤ２４（＋）先駆幹細胞が３ミリメートルの処理済み試料の１ミリメートル当たりの数）に０．３を掛けることによって（前述体積変動（または試料調製）係数）、第（１）列の（Ｈ）欄に示す６１，０６５（ＣＤ２４（＋）先駆幹細胞が１０ミリメートル血液試料の１ミリメートル当たりの数）を獲得する。これをＣＤ２４（＋）先駆幹細胞が係る男性にフコイダン補助剤を食用または摂取させた１．５時間後の末梢血の１ミリメートル当たりの数を代表とする計算方式によって、獲得することができる。そのほかに、前述計算方法は、関連数値から他種の幹細胞がこの男性がフコイダン補助剤を食用または摂取させた１．５時間後の末梢血の１ミリリットル当たりの数を算出することができる。ここでの説明を省略する。
図１７Ｂはフローサイトメーターの蛍光分布図であり、細胞核／細胞質比が比較的高い区域にある細胞の蛍光強度分布を示されている。蛍光分布図において、細胞は垂直線７７によって、左右２つの部分に分けている。垂直線７７右側の細胞はＣＤ２４に対して、陽性反応を示すため、ＣＤ２４（＋）先駆幹細胞に属する。垂直線７７左側の細胞は、ＣＤ２４陰性反応を示す。そのため、フローサイトメーターは、垂直線７７によって、ＣＤ２４（＋）先駆幹細胞を識別することによって、図１７Ａの第（１）列の（Ｅ）欄に言及するＣＤ２４（＋）先駆細胞数を獲得することができる。
図１８は、実験対象（前述した個体（Ｓ））が４つの特定時点の幹細胞データを獲得する一種の方法を示す。これをもって、実験対象が一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れさせた後（シリーズ的な自発行為または刺激（Ｘ）から選択された行為）の理想（または最適）幹細胞の収穫時間帯を確認することができる。そのうち、収穫した一種または複数種の幹細胞は、実験対象と同じ生物分類の個体または組織試料（本発明が「個体（Ｓ）及び組織試料（Ｐ）」の記述に説明した組織試料）より獲得される。引き続き、図１８のステップ２１において、第１特定時点に実験対象から末梢血を採取して、採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、第１血液試料（つまり、組織試料）を獲得する。第１血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいか又は等しい。引き続き、ステップ２２において、第１血液試料に前述した測量方法ＭＴを実行することによって、実験対象が第１特定時点の第１幹細胞データを獲得する。この第１幹細胞データは、例えば特定幹細胞が第１特定時点における実験対象の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数、つまり、特定幹細胞が実験対象の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数に関わる第１獲得データ、特定幹細胞は、本発明が「幹細胞の定義」に説明した一種または複数種の細胞（表面）マーカー（例えば、ＣＤ３４９（＋）、Ｌｇｒ５（＋）またはＣＤ６６ｅ（＋））によって、その特徴を記述した幹細胞である）。図１４Ａ〜１４Ｃに述べる方法は、第１血液試料の処理及び計算に用いることができる。第１血液試料にステップ２２の測量方法ＭＴを実行する前に、第１血液試料は例えば、温度が１〜３０℃（例えば、１〜１０℃、１０°Ｃ〜２０℃または２０〜３０℃）の環境に貯蔵することができる。ステップ２１より獲得した第１血液試料から、ステップ２２の第１血液試料に対する測量方法ＭＴを行う時間の間隔は、３０分、６０分、１２時間、２４時間、４８時間、７２時間または１週間、例えば、１０〜３０分、３０〜６０分、０．５〜２時間、２〜１２時間、１２〜２４時間、２４〜４８時間または４８〜７２時間とする。そのほかに、この実施例は前述整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）或いは前述独立システム、計器、工具または装置（ＴＤ）によって、第１幹細胞データを獲得することができる。
ステップ２１に述べる第１血液試料を獲得した後、引き続きステップ２３を実行する。ステップ２３において、実験対象にシリーズ的な自発行為または刺激を含む、一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせるかまたは受け入れさせる。例えば、実験対象は例えば、３０錠のフコイダン補助剤（例えば、前述第１実験と図１１に述べるフコイダン補助剤）を経口に服用させる。よって、実験対象はステップ２３において、３グラム（つまり、２グラム以上）のフコイダンを服用している。または、実験対象にフコイダンを含むあるいは低分子フコイダン物質或いは物品を含む（例えば、栄養補助食品またはサプリメント）の注射を受ける。ステップ２１に述べる第１特定時点は、ステップ２３を実行する前の時点であっても良い。実験対象に一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れさせた後、以下に示すステップ２４〜２６の第１方法、以下に示すステップ２７〜２９の第２方法及び、以下に示すステップ３０〜３２の第３方法を行わせる。
第１方法は、ステップ２４において、実験対象にステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れさせた後、実験対象に第１時間帯（つまり、第１所定時間）例えば、１．５時間、３０分から３時間、１〜２時間または４５分から１２時間を待機させる。引き続き、ステップ２５において、第２特定時点に実験対象から末梢血を採取して、採取した末梢血を採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、第２血液試料を獲得する。第２血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいかまたは等しい、かつ第１血液試料と同じ体積であっても良い。第２特定時点は、第１時間帯を終了する時点である。引き続き、ステップ２６において、第２血液試料に前述した測量方法ＭＴを実行することによって、実験対象が第２特定時点の第２幹細胞データを獲得する。この第２幹細胞データは、例えば特定幹細胞が第２特定時点における実験対象の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数、つまり、特定幹細胞が実験対象の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数に関わる第２獲得データである。図１４Ａ〜１４Ｃに述べる方法は、第２血液試料の処理及び計算に用いることができる。第２血液試料をステップ２６の測量方法ＭＴを行う前に、第２血液試料を制御された環境に貯蔵することができる。係る環境の温度は、ステップ２２の測量方法ＭＴを実行する前の第１血液試料を貯蔵するときと同じ温度である。ステップ２５を実行することによって、第２血液試料を獲得してから、ステップ２６に進み、第２血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と、ステップ２１を実行することによって、第１血液試料を獲得してから、ステップ２２に進み、第１血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と同じであっても良い。そのほかに、この実施例は前述整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）或いは前述独立システム、計器、工具または装置（ＴＤ）によって、第２幹細胞データを獲得することができる。
第２方法は、ステップ２７において、実験対象にステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れさせた後、実験対象に第２時間帯（つまり、第２所定時間）例えば、２４時間、１２時間〜３６時間または３〜３６時間を待機させる。引き続き、ステップ２８において、第３特定時点に実験対象から末梢血を採取して、採取した末梢血を採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、第３血液試料を獲得する。第３血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいかまたは等しい、かつ第１血液試料と第２血液試料と同じ体積であっても良い。第３特定時点は、第２時間帯を終了する時点である。引き続き、ステップ２９において、第３血液試料に前述した測量方法ＭＴを実行することによって、実験対象が第３特定時点の第３幹細胞データを獲得する。この第３幹細胞データは、例えば特定幹細胞が第３特定時点における実験対象の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数、つまり、特定幹細胞が実験対象の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数に関わる第３獲得データである。図１４Ａ〜１４Ｃに述べる方法は、第３血液試料の処理及び計算に用いることができる。第３血液試料をステップ２９の測量方法ＭＴを行う前に、第３血液試料を制御された環境に貯蔵することができる。係る環境の温度は、ステップ２２の測量方法ＭＴを実行する前の第１血液試料を貯蔵するときと同じ温度である。ステップ２８を実行することによって、第３血液試料を獲得してから、ステップ２９に進み、第３血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と、ステップ２１を実行することによって、第１血液試料を獲得してから、ステップ２２に進み、第１血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と同じであっても良い。そのほかに、この実施例は前述整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）或いは前述独立システム、計器、工具または装置（ＴＤ）によって、第３幹細胞データを獲得することができる。
第３方法は、ステップ３０において、実験対象にステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れさせた後、実験対象に第３時間帯（つまり、第３所定時間）例えば、４８時間、３６〜６０時間、６０〜８４時間または８４時間以上を待機させる。引き続き、ステップ３１において、第４特定時点に実験対象から末梢血を採取して、採取した末梢血を採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、第４血液試料を獲得する。第４血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいかまたは等しい、かつ第１血液試料と、第２血液試料と第３血液試料と同じ体積であっても良い。第４特定時点は、第３時間帯を終了する時点である。引き続き、ステップ３２において、第４血液試料に前述した測量方法ＭＴを実行することによって、実験対象が第４特定時点の第４幹細胞データを獲得する。この第４幹細胞データは、例えば特定幹細胞が第４特定時点における実験対象の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数、つまり、特定幹細胞が実験対象の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数に関わる第４獲得データである。図１４Ａ〜１４Ｃに述べる方法は、第４血液試料の処理及び計算に用いることができる。第４血液試料をステップ３２の測量方法ＭＴを行う前に、第４血液試料を制御された環境に貯蔵することができる。係る環境の温度は、ステップ２２の測量方法ＭＴを実行する前の第１血液試料を貯蔵するときと同じ温度である。ステップ３１を実行することによって、第４血液試料を獲得してから、ステップ３２に進み、第４血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と、ステップ２１を実行することによって、第１血液試料を獲得してから、ステップ２２に進み、第１血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と同じであっても良い。そのほかに、この実施例は前述整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）或いは前述独立システム、計器、工具または装置（ＴＤ）によって、第４幹細胞データを獲得することができる。
ステップ２２、２６、２９とステップ３２を実行することによって、獲得した第１〜４幹細胞データと単位体積当たりの特定種の細胞数に関わる変化量、（１）第２幹細胞データのうち特定幹細胞が第２特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数に対する、第１幹細胞データのうち特定幹細胞が第１特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの変化量Δ１と、（２）第３幹細胞データのうち特定幹細胞が第３特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数に対する、第１幹細胞データのうち特定幹細胞が第１特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの変化量Δ２と、（３）第４幹細胞データのうち特定幹細胞が第４特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数に対する、第１幹細胞データのうち特定幹細胞が第１特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの変化量Δ３と、を獲得できる。つまり、ステップ２２によって獲得した第１獲得データと、ステップ２６によって獲得した第２獲得データに、第１解析演算を実行することによって、変化量Δ１を獲得できる。この第１解析演算は、第１獲得データと第２獲得データの比較を含む、ステップ２２によって獲得した第１獲得データとステップ２９によって獲得した第３獲得データに、第２解析演算を実行することによって、変化量Δ２を獲得できる。この第２解析演算は、第１獲得データと第３獲得データの比較を含む、ステップ２２によって獲得した第１獲得データと、ステップ３２によって獲得した第４獲得データに、第３解析演算を実行することによって、変化量Δ３を獲得できる。この第３解析演算は、第１獲得データと第４獲得データの比較を含む。
変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、２つの変化量を比較することによって（例えば、変化量Δ１と変化量Δ２とを比較する）、特定幹細胞に関わる変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最も大きい変化量を獲得または見つけ出すことができ、続いて、実験対象に適用できる特定幹細胞の最適な収穫時間帯（例えば、第１時間帯、第２時間帯または第３時間帯）及び／または最適な収穫時点（例えば、第２〜４特定時点のうちいずれかの一つ時点）を確定、見つけ出すまたは獲得する。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大変化量がΔ１のとき、最適な収穫時間帯は第１時間帯、最適な収穫時点は第２特定時点である。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大変化量がΔ２のとき、最適な収穫時間帯は第２時間帯、最適な収穫時点は第３特定時点である。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大変化量がΔ３のとき、最適な収穫時間帯は第３時間帯、最適な収穫時点は第４特定時点である。よって、ある個体（実験対象または実験対象と同じ生物分類の個体）から特定幹細胞を採取するときは、係る個体がステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受けさせた後の最適な収穫時点に係る個体から組織試料を採取し（本発明が「個体（Ｓ）及び組織試料（Ｐ）」の記述に説明した組織試料）、採取した組織試料から特定幹細胞を獲得することができる。そのほかに、実験対象をステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせるたまたは受け入れさせた後（体内に特定幹細胞を培養または育成）、図１８に述べる方法（ステップ２１〜３２を含む）は、例えば特定幹細胞が実験対象の末梢血における増加数のモニタリングに使用できる。
その他に、本発明において、同じ生物分類の複数の実験対象に対して、図１８に述べる方法を行わせることによって、それぞれの実験対象に関わる第１〜４幹細胞データ（詳細は、図１８の第１〜４幹細胞データの説明を参照する）を獲得することができる。これらの実験対照から獲得した第１ないし第４幹細胞データによって、単位体積当たりの特定幹細胞に関わる変化量は、（１）それぞれの実験対象の係る特定幹細胞が第２特定時点における末梢血の体積当たりの数（第２幹細胞データに属する）が、係る特定幹細胞が第１特定時点における末梢血の体積当たりの数（第１幹細胞データに属する）に対する変化量Δ１と、（２）それぞれの実験対象の係る特定幹細胞が第３特定時点における末梢血の体積当たりの数（第３幹細胞データに属する）が、係る特定幹細胞が第１特定時点における末梢血の体積当たりの数（第１幹細胞データに属する）に対する変化量Δ２と、（３）それぞれの実験対象の係る特定幹細胞が第４特定時点における末梢血の体積当たりの数（第４幹細胞データに属する）が、係る特定幹細胞が第１特定時点における末梢血の体積当たりの数（第１幹細胞データに属する）Δ３と、を含む。
これらの実験対象から獲得し、かつ係る特定幹細胞に関わる変化量Δ１、Δ２、Δ３分布のうち、２つごとの変化量分布の比較を行うことによって（例えば、ＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ１の分布と、ＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ２の分布を比較する）、係る特定幹細胞に関わる変化量分布から、もっとも統計意義を持つ変化量分布がこれらの実験対象の係る特定幹細胞における最適な収穫時間帯（例えば、第１時間帯、第２時間帯または第３時間帯）及び／または最適な収穫時点（例えば、第２から第４特定時点のうち、いずれかの一つの時点）を知るまたは見つけ出す或いは獲得することができる。
係る特定幹細胞に関わる変化量分布から、もっとも統計意義を持つ変化量分布が係る特定幹細胞に関わる変化量Δ１の分布であるとき、最適な収穫時間帯は第１時間帯であり、最適な収穫時点は第２特定時点である。係る特定幹細胞に関わる変化量分布から、もっとも統計意義を持つ変化量分布が係る特定幹細胞に関わる変化量Δ２の分布であるとき、最適な収穫時間帯は第２時間帯であり、最適な収穫時点は第３特定時点である。係る特定幹細胞に関わる変化量分布から、もっとも統計意義を持つ変化量分布が係る特定幹細胞に関わる変化量Δ３の分布であるとき、最適な収穫時間帯は第３時間帯であり、最適な収穫時点は第４特定時点である。よって、ある個体（例えば、実験対象または実験対象と同じ生物分類の個体またはこれらの実験対象のうち、いずれかの一つ）から特定幹細胞を採取するときは、係る個体がステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受けさせたあとの最適な収穫タイミングに、係る個体から組織試料を採取し（本発明が「個体（Ｓ）及び組織試料（Ｐ）」の記述に説明した組織試料）、採取した組織試料から特定幹細胞を獲得することができる。
引き続き、図１９対照者（例えば、前述した個体（Ｓ））が４つの特定時点における幹細胞データを獲得する方法を参照する。この方法によって獲得した幹細胞データと、図１８に述べる実験対象から獲得した幹細胞データ（つまり、図１８に述べるを用いることによって獲得した幹細胞データ）との比較を行うことによって、実験対象が異なる２つの時点（実験対象がステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受けさせた後２つの異なる時点）における、２組の幹細胞データの変化は、ステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）から由来することを確認できる。対照者は、図１８のステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせていないかまたは受けさせていない場合を除き、図１９に述べる対照者に用いる方法は図１８に説明した実験対象に用いる方法と同じである。図１９に述べる対照者に用いる方法によって獲得した幹細胞データは、図１８に述べる変化量（「図１８に述べた実験対象に用いる方法によって、獲得した幹細胞データ」に関わる）の評価基準に用いることができる。
引き続き、図１９のステップ３３において、対照者（または対照組参加者という）の第５特定時点の末梢血を採取して、採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、第５血液試料を獲得する。第５血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいかまたは等しい、かつ図１８のステップ２１に述べる第１血液試料と同じ体積であっても良い。第５特定時点は、図１９に述べる対照者に用いる方法を開始する時点である。引き続き、ステップ３４において、第５血液試料に前述した測量方法ＭＴを実行することによって、実験対象が第５特定時点の第５幹細胞データを獲得する。この第５幹細胞データは、例えば特定された幹細胞が第５特定時点における対照者の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数、つまり、特定された幹細胞が対照者の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数に関わる第５獲得データである。図１４Ａ〜１４Ｃに述べる方法は、第５血液試料の処理及び計算に用いることができる。記述は図１９に示す種の特定幹細胞と、図１８に示す種の特定幹細胞と同じであっても良い。第５血液試料をステップ３４の測量方法ＭＴを行う前に、第５血液試料を制御された環境に貯蔵することができる。係る環境の温度は、ステップ２２の測量方法ＭＴを実行する前の第１血液試料を貯蔵するときと同じ温度である。ステップ３３を実行することによって、第５血液試料を獲得してから、ステップ３４に進み、第５血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と、ステップ２１を実行することによって、第１血液試料を獲得してから、ステップ２２に進み、第１血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と同じであっても良い。ステップ３３に述べる第５血液試料を採取した後に、以下のステップ３５からステップ３７を含む第４方法と、以下のステップ３８からステップ４０を含む第５方法と、以下のステップ４１からステップ４３を含む第６方法を実行される。
第４方法はステップ３５において、ステップ３３に述べる第５血液試料を採取した後、対照者に、例えば１．５時間、３０分から３時間、１〜２時間または４５分から１２時間の第４時間帯（つまり、第４所定時間）を待機させる。時間の長さについて、第４時間帯は例えば、図１８のステップ２４に述べる第１時間帯に等しい。引き続き、ステップ３６において、第６特定時点に対照者から末梢血を採取して、採取した末梢血を採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、第６血液試料を獲得する。第６血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいかまたは等しい、かつ第５血液試料と同じ体積であっても良い。第６特定時点は、第４時間帯を終了する時点である。引き続き、ステップ３７において、第６血液試料に前述した測量方法ＭＴを実行することによって、実験対象が第６特定時点の第６幹細胞データを獲得する。この第６幹細胞データは、例えば特定された幹細胞が第６特定時点における対照者の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数、つまり、特定された幹細胞が対照者の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数に関わる第６獲得データである。図１４Ａ〜１４Ｃに述べる方法は、第６血液試料の処理及び計算に用いることができる。第６血液試料をステップ３７の測量方法ＭＴを行う前に、第６血液試料を制御された環境に貯蔵することができる。係る環境の温度は、ステップ２２の測量方法ＭＴを実行する前の第１血液試料を貯蔵するときと同じ温度である。ステップ３６を実行することによって、第６血液試料を獲得してから、ステップ３７に進み、第６血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と、ステップ２１を実行することによって、第１血液試料を獲得してから、ステップ２２に進み、第１血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と同じであっても良い。
第５方法はステップ３８において、ステップ３３に述べる第５血液試料を採取した後、対照者に、例えば２４時間、１２〜３６時間、または３〜３６２時間の第５時間帯（つまり、第５所定時間）を待機させる。時間の長さについて、第５時間帯は例えば、図１８のステップ２７に述べる第２時間帯に等しい。引き続き、ステップ３９において、第７特定時点に対照者から末梢血を採取して、採取した末梢血を採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、第７血液試料を獲得する。第７血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいかまたは等しい、かつ第５血液試料及び第６血液試料と同じ体積であっても良い。第７特定時点は、第５時間帯を終了する時点である。引き続き、ステップ４０において、第７血液試料に前述した測量方法ＭＴを実行することによって、実験対象が第７特定時点の第７幹細胞データを獲得する。この第７幹細胞データは、例えば特定された幹細胞が第７特定時点における対照者の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数、つまり、特定された幹細胞が対照者の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数に関わる第７獲得データである。図１４Ａ〜１４Ｃに述べる方法は、第７血液試料の処理及び計算に用いることができる。第７血液試料をステップ４０の測量方法ＭＴを行う前に、第７血液試料を制御された環境に貯蔵することができる。係る環境の温度は、ステップ２２の測量方法ＭＴを実行する前の第１血液試料を貯蔵するときと同じ温度である。ステップ３９を実行することによって、第７血液試料を獲得してから、ステップ４０に進み、第７血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と、ステップ２１を実行することによって、第１血液試料を獲得してから、ステップ２２に進み、第１血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と同じであっても良い。
第６方法はステップ４１において、ステップ３３に述べる第５血液試料を採取した後、対照者に、例えば４８時間、３６〜６０時間、６０〜８４時間または８４時間以上の第６時間帯（つまり、第６所定時間）を待機させる。時間の長さについて、第６時間帯は例えば、図１８のステップ３０に述べる第３時間帯に等しい。引き続き、ステップ４２において、第８特定時点に対照者から末梢血を採取して、採取した末梢血を採血管（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）試験管）入れて、第８血液試料を獲得する。第８血液試料の体積は、例えば５ミリリットルまたは１０ミリリットルより大きいかまたは等しい、かつ第５血液試料と、第６血液試料と、第７血液試料と同じ体積であっても良い。第８特定時点は、第６時間帯を終了する時点である。引き続き、ステップ４３において、第８血液試料に前述した測量方法ＭＴを実行することによって、実験対象が第８特定時点の第８幹細胞データを獲得する。この第８幹細胞データは、例えば特定された幹細胞が第８特定時点における対照者の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数、つまり、特定された幹細胞が対照者の末梢血の単位当たりの体積（例えば、１ミリリットル）の数に関わる第８獲得データである。図１４Ａ〜１４Ｃに述べる方法は、第８血液試料の処理及び計算に用いることができる。第８血液試料をステップ４３の測量方法ＭＴを行う前に、第８血液試料を制御された環境に貯蔵することができる。係る環境の温度は、ステップ２２の測量方法ＭＴを実行する前の第１血液試料を貯蔵するときと同じ温度である。ステップ４２を実行することによって、第８血液試料を獲得してから、ステップ４３に進み、第８血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と、ステップ２１を実行することによって、第１血液試料を獲得してから、ステップ２２に進み、第１血液試料に測量方法ＭＴを実行するまでの時間間隔と同じであっても良い。
ステップ２２、２６、２９、３２の実行によって獲得した第１ないし第４幹細胞データと、ステップ３４、３７、４０、４３の実行によって獲得した第５ないし第８幹細胞データは、（１）第２幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第２特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数が、第１幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第１特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数に対する変化量Δ１と、（２）第３幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第３特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数が、第１幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第１特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数に対する変化量Δ２と、（３）第４幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第４特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数が、第１幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第１特定時点における実験対象の末梢血の単位体積当たりの数に対する変化量Δ３と、（４）第６幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第６特定時点における対照者の末梢血の単位体積当たりの数が、第５幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第５特定時点における対照者の末梢血の単位体積当たりの数に対する変化量δ１と、（５）第７幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第７特定時点における対照者の末梢血の単位体積当たりの数が、第５幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第５特定時点における対照者の末梢血の単位体積当たりの数に対する変化量δ２と、（６）第８幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第８特定時点における対照者の末梢血の単位体積当たりの数が、第５幹細胞データのうち、係る種の特定幹細胞が第５特定時点における対照者の末梢血の単位体積当たりの数に対する変化量δ３と、を含む係る種の特定幹細胞数に関わる変化量を得ることができる。
ステップ２２の実行によって、獲得した第１獲得データと、ステップ２６の実行によって、獲得した第２獲得データを第１解析演算によって、変化量Δ１を獲得することができる。係る第１解析演算は、第１獲得データと第２獲得データとの比較を含む。ステップ２２の実行によって、獲得した第１獲得データと、ステップ２９の実行によって、獲得した第３獲得データを第２解析演算によって、変化量Δ２を獲得することができる。係る第２解析演算は、第１獲得データと第３獲得データとの比較を含む。ステップ２２の実行によって、獲得した第１獲得データと、ステップ３２の実行によって、獲得した第４獲得データを第３解析演算によって、変化量Δ３を獲得することができる。係る第３解析演算は、第１獲得データと第４獲得データとの比較を含む。ステップ３４の実行によって、獲得した第５獲得データと、ステップ３７の実行によって、獲得した第６獲得データを第４解析演算によって、変化量δ１を獲得することができる。係る第４解析演算は、第５獲得データと第６獲得データとの比較を含む。ステップ３４の実行によって、獲得した第５獲得データと、ステップ４０の実行によって、獲得した第７獲得データを第５解析演算によって、変化量δ２を獲得することができる。係る第５解析演算は、第５獲得データと第７獲得データとの比較を含む。ステップ３４の実行によって、獲得した第５獲得データと、ステップ４３の実行によって、獲得した第８獲得データを第６解析演算によって、変化量δ３を獲得することができる。係る第６解析演算は、第５獲得データと第８獲得データとの比較を含む。
変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、２つごとの変化量を比較することによって、係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち最大の変化量を知るかまたは見つけ出した後に、変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量と、変化量δ１、δ２、δ３のうち対応の変化量との比較を行い、変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち最大の変化量がステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）によって、引き起こされたかを判断する。もし、変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量（統計上）が明らかに変化量δ１、δ２、δ３のうち対応の変化量より優れるときは、変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量はステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）から引き起こされたことを確認（または確定）することができる。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ１のとき変化量δ１、δ２、δ３のうち対応の変化量が変化量δ１である。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ２のとき変化量δ１、δ２、δ３のうち対応の変化量が変化量δ２である。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ３のとき変化量δ１、δ２、δ３のうち対応の変化量が変化量δ３である。前述方法の使用によって、係る種の特定幹細胞の最適な収穫タイミングを獲得することができる。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ１であり、かつ変化量Δ１が（統計上）明らかに変化量δ１より優れるときは、係る種の特定幹細胞に適用できる最適な収穫タイミングは、ステップ２４に述べる第１時間帯である。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ２であり、かつ変化量Δ２が（統計上）明らかに変化量δ２より優れるときは、係る種の特定幹細胞に適用できる最適な収穫タイミングは、ステップ２７に述べる第２時間帯である。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ３であり、かつ変化量Δ３が（統計上）明らかに変化量δ３より優れるときは、係る種の特定幹細胞に適用できる最適な収穫タイミングは、ステップ３０に述べる第３時間帯である。この他に、前述方法の使用によって、係る種の特定幹細胞の最適な収穫タイミングを獲得することができる。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ１であり、かつ変化量Δ１が（統計上）明らかに変化量δ１より優れるときは、係る種の特定幹細胞に適用できる最適な収穫タイミングは、ステップ２５に述べる第２時間帯である。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ２であり、かつ変化量Δ２が（統計上）明らかに変化量δ２より優れるときは、係る種の特定幹細胞に適用できる最適な収穫タイミングは、ステップ２８に述べる第３時間帯である。変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量が変化量Δ３であり、かつ変化量Δ３が（統計上）明らかに変化量δ３より優れるときは、係る種の特定幹細胞に適用できる最適な収穫タイミングは、ステップ３１に述べる第４時間帯である。もし、変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量（統計上）が変化量δ１、δ２、δ３のうち対応の変化量より明らかに優れていないときは、変化量Δ１、Δ２、Δ３のうち、最大の変化量はステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）から引き起こされたことを確認（または確定）することはできない。
よって、ある個体（実験対象または実験対象と同じ生物分類の個体）から特定幹細胞を採取するときは、係る個体がステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受けさせた後の最適な収穫時点に係る個体から組織試料を採取し（本発明が「個体（Ｓ）及び組織試料（Ｐ）」の記述に説明した組織試料）、採取した組織試料から特定幹細胞を獲得することができる。
このほか、本発明は例えば複数の同じ生物種の対照者をそれぞれ図１９に述べる方法を実行することによって、それぞれの対照者に関わる第５ないし第８幹細胞データ（詳しい説明は、図１９に述べる第５ないし第８幹細胞データを参照する）を獲得し、複数の同じ生物種の実験対象をそれぞれ図１８に述べる方法を実行することによって、それぞれ実験対象に関わる第１ないし第４幹細胞データ（（詳しい説明は、図１８に述べる第１ないし第４幹細胞データを参照する）を獲得することができる。これらの実験対象から獲得した第１ないし第４幹細胞データと、これらの対象者から獲得した第５ないし第８幹細胞データによって、
（１）それぞれの実験対象の係る種の特定幹細胞が第２時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第２幹細胞に属する）が、係る種の特定幹細胞が第１時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第１幹細胞に属する）に対する変化量Δ１と、
（２）それぞれの実験対象の係る種の特定幹細胞が第３時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第３幹細胞に属する）が、係る種の特定幹細胞が第１時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第１幹細胞に属する）に対する変化量Δ２と、
（３）それぞれの実験対象の係る種の特定幹細胞が第４時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第４幹細胞に属する）が、係る種の特定幹細胞が第１時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第１幹細胞に属する）に対する変化量Δ３と、
（４）それぞれの対照者の係る種の特定幹細胞が第６時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第６幹細胞に属する）が、係る種の特定幹細胞が第５時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第５幹細胞に属する）に対する変化量δ１と、
（５）それぞれの対照者の係る種の特定幹細胞が第７時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第７幹細胞に属する）が、係る種の特定幹細胞が第５時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第５幹細胞に属する）に対する変化量δ２と、
（６）それぞれの対照者の係る種の特定幹細胞が第８時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第８幹細胞に属する）が、係る種の特定幹細胞が第５時間帯における末梢血の単位体積当たりの数（第５幹細胞に属する）に対する変化量δ３と、
を含める種の特定の細胞数に関わる変化量を得ることができる。
これらの実験対象から獲得した、係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ１、Δ２、Δ３分布のうち、２つごとの変化量分布を比較することによって（例えば、ＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ１の分布と、ＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ２の分布と比較する）、係る種の特定幹細胞に関わる変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量の分布を知るかまたは見つけ出すことができる。引き続き、係る種の特定幹細胞の変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量分布と、係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ１、δ２、δ３分布のうち、対応の変化量分布と比較することによって（例えば、ＳＢ−１細胞に関わる変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量分布がＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ１の分布であるときは、ＳＢ−１細胞に関わる変化量δ１の分布と、ＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ１の分布を比較する）、係る種の特定幹細胞に関わる変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量の分布は（例えば、ＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ１の分布）、ステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）によって引き起こされたかを判断することができる。もし、係る種の特定幹細胞の変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量分布（例えば、ＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ１の分布）は統計上、明らかに係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ１、δ２、δ３のうち、対応の変化量分布（例えば、ＳＢ−１細胞に関わる変化量δ１の分布）より優れるときは、係る種の特定幹細胞に関わる変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量分布（例えば、ＳＢ−１細胞に関わる変化量Δ１の分布）は、ステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）によって引き起こされたことを確認（または確定）することができる。係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ１、Δ２、Δ３分布のうち、もし、変化量Δ１の分布がもっとも統計意義を有する変化量分布であるとき、係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ１、δ２、δ３分布のうち、対応の変化量は係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ１の分布である。係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ１、Δ２、Δ３分布のうち、もし、変化量Δ２の分布がもっとも統計意義を有する変化量分布であるとき、係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ１、δ２、δ３分布のうち、対応の変化量は係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ２の分布である。係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ１、Δ２、Δ３分布のうち、もし、変化量Δ３の分布がもっとも統計意義を有する変化量分布であるとき、係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ１、δ２、δ３分布のうち、対応の変化量は係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ３の分布である。もし、係る種の特定幹細胞に関わる変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量は統計上明らかに、係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ１、δ２、δ３分布のうち、対応の変化量分布を優れていないときは、ステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）によって引き起こされたことを確認（または確定）することはできない。前述方法の使用によって、これらの実験対象の最適な収穫タイミングを獲得することができる。係る種の特定幹細胞の変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量分布は、係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ１の分布であり、かつ係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ１の分布が統計上明らかに、係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ１の分布を優れるときは、これらの実験対象に係る種の特定幹細胞の最適な収穫タイミングは、それぞれステップ２４に述べる第１時間帯と、ステップ２５に述べる第２時間帯である。係る種の特定幹細胞の変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量分布は、係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ２の分布であり、かつ係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ２の分布が統計上明らかに、係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ２の分布を優れるときは、これらの実験対象に係る種の特定幹細胞の最適な収穫タイミングは、それぞれステップ２７に述べる第２時間帯と、ステップ２８に述べる第３時間帯である。係る種の特定幹細胞の変化量分布のうち、もっとも統計意義を有する変化量分布は、係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ３の分布であり、かつ係る種の特定幹細胞に関わる変化量Δ３の分布が統計上明らかに、係る種の特定幹細胞に関わる変化量δ３の分布を優れるときは、これらの実験対象に係る種の特定幹細胞の最適な収穫タイミングは、それぞれステップ３０に述べる第３時間帯と、ステップ３１に述べる第４時間帯である。よって、ある個体（例えば、実験対象または実験対象と同じ生物分類の個体またはこれらの実験対象のうち、いずれかの一つ）から特定幹細胞を採取するときは、係る個体がステップ２３に述べる一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受けさせたあとの最適な収穫タイミングに、係る個体から組織試料を採取し（本発明が「個体（Ｓ）及び組織試料（Ｐ）」の記述に説明した組織試料）、採取した組織試料から特定幹細胞を獲得することができる。
以下の段落は、各種のヒトのミリメートル当たりの末梢血細胞数を増加させる方法の事例を用いて、第２実験及びその関連の幹細胞データを説明する。第２実験において、ヒト被験者５名を選択し第２実験の実験組とする。これら５名のヒト被験者を図１８に述べる方法を行わせる。この他に、ヒト被験者１名（以下「被験者ＣＰ」という）を選択し第２実験組の対照組とする。被験者ＣＰを図１９に述べる方法を行わせる。実験組のうち、５名のヒト被験者は、それぞれ（１）被験者Ｅ１：年齢が５５歳前後の男性、幹細胞データを図２０Ａと図２０Ｂに示し、（２）被験者Ｅ２：年齢が４０歳を上回る男性、幹細胞データを図２０Ｃと図２０Ｄに示し、（３）被験者Ｅ３：年齢が５５歳前後の男性、幹細胞データを図２０Ｅと図２０Ｆに示し、（４）被験者Ｅ４：年齢が３５歳前後の男性、幹細胞データを図２０Ｇと図２０Ｈに示し、（５）被験者Ｅ５：年齢が２５歳前後の女性、幹細胞データを図２０Ｉと図２０Ｊに示す。被験者ＣＰは年齢が２５歳前後の女性、幹細胞データを図２０Ｋと図２０Ｌに示す。各被験者が４つの時間帯における幹細胞データを獲得するため、被験者Ｅ１−Ｅ４はそれぞれに図１８のステップ２１からステップ３２に述べる方法を行わせる。被験者Ｅ５が３つの時間帯における幹細胞データを獲得するため、被験者Ｅ５は、図１８のステップ２１からステップ２９に述べる方法を行わせるする。それぞれの実験対象（つまり、被験者Ｅ１−Ｅ５）に行わせる方法のうち、被験者Ｅ１−Ｅ５はすべて図１８のステップ２３において、フコイダン補助剤３０錠を経口に服用させる（図１１と図１２に述べるフコイダン補助剤と同じであっても良い）。つまり、被験者Ｅ１−Ｅ５すべてを図１８のステップ２３において、３グラム（つまり、２グラム以上）のフコイダンを服用させる。この他に、５名の被験者Ｅ１−Ｅ５それぞれの体重は、約６５キログラムである。つまり、フコイダン補助剤の投与量は、体重キロの当たり約４６ミリグラムである。または、フコイダン補助剤の体重キロ当たりは、２０ミリグラム以上、３０ミリグラム、４０ミリグラムまたは５０ミリグラムを服用させても良い。
図２０Ａと図２０Ｂ、被験者Ｅ１が４つの時間帯における各種の幹細胞（合計２３種の幹細胞）が末梢血の１ミリメートル当たりの数を参照する。図２０Ｃと図２０Ｄ、被験者Ｅ２が４つの時間帯における各種の幹細胞（合計２３種の幹細胞）が末梢血の１ミリメートル当たりの数を参照する。図２０Ｅと図２０Ｆ、被験者Ｅ３が４つの時間帯における各種の幹細胞（合計２３種の幹細胞）が末梢血の１ミリメートル当たりの数を参照する。図２０Ｇと図２０Ｈ、被験者Ｅ４が４つの時間帯における各種の幹細胞（合計２３種の幹細胞）が末梢血の１ミリメートル当たりの数を参照する。これら４名の被験者Ｅ１−Ｅ４に使用された４つの時間帯は、それぞれ（１）第１時間帯、フコイダン補助剤を食用または摂取させる前の時点、つまり、図１８のステップ２１に述べる第１時間帯と、（２）第２時間帯、フコイダン補助剤を食用または摂取させた後１．５時間、つまり、図１８のステップ２４に述べる第１時間帯を終了する時点と、（３）第３時間帯、フコイダン補助剤を食用または摂取させた後２４時間、つまり、図１８のステップ２７に述べる第２時間帯と、（４）第４時間帯、フコイダン補助剤を食用または摂取させた後４８時間、つまり、図１８のステップ３０に述べる第３時間帯を終了する時点である。
図２０Ｉと図２０Ｊ、被験者Ｅ５が３つの時間帯における各種の幹細胞（合計２３種の幹細胞）が末梢血の１ミリメートル当たりの数を参照する。被験者Ｅ５に使用された３つの時間帯は、それぞれ（１）第１時間帯、フコイダン補助剤を食用または摂取させる前の時点、つまり、図１８のステップ２１に述べる第１時間帯と、（２）第２時間帯、フコイダン補助剤を食用または摂取させた後１．５時間、つまり、図１８のステップ２４に述べる第１時間帯を終了する時点と、（３）第３時間帯、フコイダン補助剤を食用または摂取させた後２４時間、つまり、図１８のステップ２７に述べる第２時間帯を終了する時点である。
この他に、被験者ＣＰが４つの時間帯における幹細胞データを獲得するため、被験者ＣＰを図１９のステップ３３からステップ４３に述べる方法を行わせる。ステップを通じて、被験者ＣＰはいずれのフコイダン補助剤も服用していない。図２０Ｋと図２０Ｌ、被験者ＣＰが４つの時間帯における各種の幹細胞（合計２３種の幹細胞）が末梢血の１ミリメートル当たりの数を参照する。被験者ＣＰに使用された４つの時間帯は、それぞれ（１）第５時間帯、被験者ＣＰから血液試料を採取する時点（つまり、図１９のステップ３３に述べる第５時間帯）と、（２）第６時間帯、第５時間帯を実行した１．５時間後（つまり、図１９のステップ３５に述べる第４時間帯を終了する第６時間帯）と、（３）第７時間帯、第５時間帯を実行した２４時間後（つまり、図１９のステップ３８に述べる第５時間帯を終了する第７時間帯）と、（４）第８時間帯、第５時間帯を実行した４８時間後（つまり、図１９のステップ４１に述べる第６時間帯を終了する第８時間帯）である。
図２０Ａないし図２０Ｌに示す幹細胞データから、一部の特定幹細胞（以下に挙げる幹細胞）にとって、最適な収穫時間タイミングは、体内に幹細胞を育成後１．５時間またはフコイダン補助剤を食用（または摂取）後１．５時間が示されている。被験者Ｅ１−Ｅ５がフコイダン補助剤を食用（または摂取）後１．５時間が採取した末梢血のうち、１ミリメートル当たりの数が２倍の増加を示した幹細胞は、ＳＢ−１細胞、ＳＢ−２細胞、卵割球様幹細胞、ＳＳＥＡ４（＋）多機能幹細胞、ＣＤ１３（＋）多分化能幹細胞、ＣＤ９０（＋）多分化能幹細胞、ＣＤ１０５（＋）多分化能幹細胞、ＣＤ３４（＋）造血幹細胞、ＣＤ１５０（＋）造血幹細胞、ＣＤ２４（＋）前駆幹細胞、ＳＳＥＡ１（＋）前駆幹細胞、ＣＤ４５（＋）前駆幹細胞、ＣＤ３３（＋）前駆幹細胞、ＣＤ１０（＋）前駆幹細胞と、ＣＸＣＲ１（＋）幹細胞。
この他に、図２０Ａないし図２０Ｌに示す幹細胞データから、フコイダン補助剤（第１実験と、図１１に述べるフコイダン補助剤）を服用することによって、一部種の幹細胞がヒトまたは動物がフコイダン補助剤を食べた（または摂取した）後２４時間の末梢血の１ミリメートル当たりの数は、少なくとも２倍の増加を示されている。ここの「２倍の増加」は、「ある種の幹細胞は個体（例えばヒトまたは動物）がフコイダン補助剤を食用または摂取される前の末梢血の１ミリメートル当たりの数」と、「所定種の幹細胞は、係る個体がフコイダン補助剤を食用または摂取させた１．５時間後の末梢血の１ミリリットル当たりの数」との比例を指す。これ以外に、図２０Ａないし図２０Ｌに示す幹細胞データから、所定種の幹細胞が被験者Ｅ１、Ｅ２、Ｅ３、Ｅ４またはＥ５がフコイダン補助剤を食用または摂取させた１．５時間後の末梢血の１ミリリットル当たりの数が１．５倍、３倍あるいは４倍の増加を示されている。よって、フコイダン（褐藻の一種の主要成分）を経口に服用することは、ヒトまたは動物の末梢血に幹細胞を増やせる有効な方法と言える。以上をまとめると、一種の行為例えば、３グラム（つまり、２グラム以上）のフコイダン（例えば、前述フコイダン補助剤から由来する）を経口に服用、または一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）を行わせることは、ヒトまたは動物の末梢血の幹細胞を少なくとも１．５倍（またはそれ以上）、２倍（またはそれ以上）、３倍（またはそれ以上）、４倍（またはそれ以上）の増加を引き起こし、誘発、活性化または化学反応ができる。補発明をまとめると、以下に示す多種の方法が提供されている。
第１個体（例えばヒトの体または動物の体）から幹細胞を収穫（または獲得）及び貯蔵する方法は、（１）第１個体に所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせる、例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産の褐藻補助剤、係る沖縄県産の褐藻補助剤は８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末を服用させる。そのうち、４．５グラムの沖縄県産の褐藻補助剤に３グラム（または２グラム以上）のフコイダンまたは６０重量パーセントを超えるフコイダンを含む。第１個体体内の一種または複数種の選択された幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）の数を有効に増加できることを事前に評価するステップと、（２）第１個体が係る行為を行わせたかまたは受けさせた後、第１個体にある（所定）期間、例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間を待機させるステップと、（３）第１個体にある（所定）期間を待機させた後、第１個体から組織試料（例えば、ヒトの体または動物の体の末梢血）を採取するステップと、（４）係る組織試料から所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫、収集または取得するステップと、（５）所定種または選択された所定種の幹細胞を機関（例えば、細胞バンク）から提供した温度セ氏０度（例えば、セ氏マイナス３０度以下またはセ氏マイナス８０度以下）の施設（例えば、冷蔵庫）に所定期間（例えば、１か月または１年以上）を保管（または貯蔵）するステップと、を含む。一つの事例において、所定種または選択された所定種の幹細胞を保管（または貯蔵）した後、所定種または選択された所定種の幹細胞は、適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第１個体に使用させる。もう一つの事例において、所定種または選択された所定種の幹細胞を保管（または貯蔵）した後、所定種または選択された所定種の幹細胞は、適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第２個体（例えば、もう一つのヒトの体または動物の体）に使用させる。
第１個体（例えばヒトの体または動物の体）を貯蔵する方法は、（１）第１個体に所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせる、例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産の褐藻補助剤、係る沖縄県産の褐藻補助剤は８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末を服用させる。そのうち、４．５グラムの沖縄県産の褐藻補助剤に３グラム（または２グラム以上）のフコイダンまたは６０重量パーセントを超えるフコイダンを含む。第１個体体内の一種または複数種の選択された幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）の数を有効に増加できることを事前に評価するステップと、（２）第１個体が係る行為を行わせたかまたは受けさせた後、第１個体にある（所定）期間、例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間を待機させるステップと、（３）第１個体にある（所定）期間を待機させた後、第１個体から組織試料（例えば、ヒトの体または動物の体の末梢血）を採取するステップと、（４）所定種または選択された所定種の幹細胞を含む組織試料を機関（例えば、細胞バンク）から提供した、温度セ氏０度（例えば、セ氏マイナス３０度以下またはセ氏マイナス８０度以下）の施設（例えば、冷蔵庫）に所定期間（例えば、１か月または１年以上）を保管（または貯蔵）するステップと、を含む。一つの事例において、所定種または選択された所定種の幹細胞を含む組織試料を保管（または貯蔵）した後、所定種または選択された所定種の幹細胞は、適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第１個体に使用させる。一つの事例において、所定種または選択された所定種の幹細胞を含む組織試料を保管（または貯蔵）した後、所定種または選択された所定種の幹細胞は、適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第２個体（例えば、もう一つのヒトの体または動物の体）に使用させる。
第１個体（例えばヒトの体または動物の体）を収穫（または獲得）する方法は、（１）第１個体に所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせる、例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産の褐藻補助剤、係る沖縄県産の褐藻補助剤は８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末を服用させる。そのうち、４．５グラムの沖縄県産の褐藻補助剤に３グラム（または２グラム以上）のフコイダンまたは６０重量パーセントを超えるフコイダンを含む。第１個体体内の一種または複数種の選択された幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）の数を有効に増加できることを事前に評価するステップと、（２）第１個体が係る行為を行わせたかまたは受けさせた後、第１個体にある（所定）期間、例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間を待機させるステップと、（３）第１個体にある（所定）期間を待機させた後、第１個体から組織試料（例えば、ヒトの体または動物の体の末梢血）を採取するステップと、（４）係る組織試料から所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫または取得するステップと、を含む。一つの事例において、組織試料から所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫または取得した後（この後に所定種または選択された所定種の幹細胞を温度セ氏０度（例えば、セ氏マイナス３０度またはセ氏マイナス８０度以下）の施設（例えば、冷蔵庫）に所定期間（例えば、１か月以上または１年以上）を保管（または貯蔵）するステップを有しないかまたは省略して、所定種または選択された所定種の幹細胞を適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第１個体に使用させる。もう一つの事例において、組織試料から所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫または取得した後（この後に所定種または選択された所定種の幹細胞を温度セ氏０度（例えば、セ氏マイナス３０度またはセ氏マイナス８０度以下）の施設（例えば、冷蔵庫）に所定期間（例えば、１か月以上または１年以上）を保管（または貯蔵）するステップを有しないかまたは省略して、所定種または選択された所定種の幹細胞を適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第２個体（例えば、もう一つのヒトの体または動物の体）に使用させる。
第１個体（例えばヒトの体または動物の体）の幹細胞を貯蔵する方法は、（１）第１個体に所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせる、例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産の褐藻補助剤、係る沖縄県産の褐藻補助剤は８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末を服用させる。そのうち、４．５グラムの沖縄県産の褐藻補助剤に３グラム（または２グラム以上）のフコイダンまたは６０重量パーセントを超えるフコイダンを含む。第１個体体内の一種または複数種の選択された幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）の数を有効に増加できることを事前に評価するステップと、（２）第１個体が係る行為を行わせたかまたは受けさせた後、第１個体にある（所定）期間、例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間を待機させるステップと、（３）第１個体にある（所定）期間を待機させた後、第１個体からに所定種または選択された所定種の幹細胞を含む組織試料（例えば、ヒトの体または動物の体の末梢血）を採取するステップと、を含む。一つの事例において、組織試料から所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫または取得した後（この後に所定種または選択された所定種の幹細胞を温度セ氏０度（例えば、セ氏マイナス３０度またはセ氏マイナス８０度以下）の施設（例えば、冷蔵庫）に所定期間（例えば、１か月以上または１年以上）を保管（または貯蔵）するステップを有しないかまたは省略して、所定種または選択された所定種の幹細胞を適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第１個体に使用させる。一つの事例において、組織試料から所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫または取得した後（この後に所定種または選択された所定種の幹細胞を温度セ氏０度（例えば、セ氏マイナス３０度またはセ氏マイナス８０度以下）の施設（例えば、冷蔵庫）に所定期間（例えば、１か月以上または１年以上）を保管（または貯蔵）するステップを有しないかまたは省略して、所定種または選択された所定種の幹細胞を適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第１個体に使用させる。
第１個体（例えばヒトの体または動物の体）から幹細胞を収穫（または獲得）及び貯蔵する方法は、（１）第１個体に所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせる、例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産の褐藻補助剤、係る沖縄県産の褐藻補助剤は８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末を服用させる。そのうち、４．５グラムの沖縄県産の褐藻補助剤に３グラム（または２グラム以上）のフコイダンまたは６０重量パーセントを超えるフコイダンを含む。第１個体体内の一種または複数種の選択された幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）の数を有効に増加できることを事前に評価するステップと、（２）第１個体が係る行為を行わせたかまたは受けさせた後、第１個体にある（所定）期間、例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間を待機させるステップと、（３）第１個体にある（所定）期間を待機させた後、第１個体から組織試料（例えば、ヒトの体または動物の体の末梢血）を採取するステップと、（４）所定種または選択された所定種の幹細胞を機関（例えば、細胞バンク）から提供した温度セ氏０度（例えば、セ氏マイナス３０度以下またはセ氏マイナス８０度以下）の施設（例えば、冷蔵庫）に所定期間（例えば、１か月または１年以上）を保管（または貯蔵）するステップと、（５）所定種または選択された所定種の幹細胞を含む組織試料を保管（または貯蔵）した後、組織試料から所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫または獲得するステップと、を含む。一つの事例において、所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫または採取した後、所定種または選択された所定種の幹細胞は、適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第１個体に使用させる。もう一つの事例において、所定種または選択された所定種の幹細胞を収穫または採取した後、所定種または選択された所定種の幹細胞は、適切な方法（例えば、注射または塗布する）によって、第２個体（例えば、もう一つのヒトの体または動物の体）に使用させる。
新種の幹細胞を発見する（まだ発見されていない幹細胞）方法は、（１）個体を（例えば、ヒトの体または動物の体）に所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせる。例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産フコイダン補助剤を服用する係る沖縄県産フコイダン補助剤に８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末を服用する。そのうち、４．５グラムの沖縄県産フコイダン補助剤は３グラム（または２グラム以上）のフコイダン或いは６０重量パーセントを超えるフコイダンを含む。係る行為は確実に体内の一種または複数種の細胞数をの数を有効に増加できることを事前に評価するステップと、（２）個体が行為を行わせたかまたは受け入れさせた後、個体にある（所定）期間、例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間を待機させるステップと、（３）個体にある（所定）期間を待機させた後、個体から組織試料（例えば、ヒトの体または動物の体の末梢血）を採取するステップと、（４）フローサイトメーターを用いて、組織試料のうち細胞に細胞核を含むか否かを解析するステップと、組織試料が一種または複数種の選択された幹細胞（表面）マーカーを表現できる及び／または表現できないことを確認するステップとを含めた、新種の幹細胞を検出する解析方法を用いて組織試料を処理するステップと、を含む。
所定の行為（例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産フコイダン補助剤を服用させる。係る沖縄県産フコイダン補助剤に８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末である。そのうち、４．５グラムの沖縄県産フコイダン補助剤は３グラム（または２グラム以上）のフコイダン或いは６０重量パーセントを超えるフコイダンのを含む）が所定の疾病（例えば、がん、パーキンソン症またはアルツハイマー症）を患う個体（例えばヒトの体または動物の体）に対する治療効果を評価する方法は、（１）個体から第１組織試料（例えば、末梢血検体）を獲得するステップと、（２）解析または測量方法（例如前面所述的測量方法ＭＴ）或いは装置、計器もしくは設備（例えば、前述整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）あるいは前述した単独システム、計器、工具または装置（ＴＤ））を用いて、第１組織試料から一種または複数種の選択された幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）情報に関わる第１幹細胞データを獲得する料ステップと、（３）第１組織試料または第１幹細胞データを獲得した後、個体に所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせるステップと、（４）個体が所定の行為を行わせたかまたは受け入れさせた後に、個体を例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間の所定（予定の）期間を待機させるステップと、（５）個体が係る（予定の）期間を待たせた後、個体から第２組織試料（例えば、末梢血検体）を獲得するステップと、（６）解析または測量方法或いは装置、計器もしくは設備を用いて、第２組織試料から係る種または係る特定幹細胞情報に関わる第２幹細胞データを獲得するステップと、（７）第１幹細胞データと第２幹細胞データの比較を含めた第１幹細胞データと第２幹細胞データを解析するステップと、を含む。係る種または係る特定幹細胞は例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞を指す。第１幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が第１組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数を含む、つまり、第１組織試料のうち、係る種または係る特定幹細胞の単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数である。第２幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が第２組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数を含む、つまり、第２組織試料のうち、係る種または係る特定幹細胞の単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数である。第１幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が顆粒の大きさが所定の閾値の大きさ区域に占める百分比より大きいかまたは等しい、第１組織試料に関わる第１百分比をさらに含む。第２幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が顆粒の大きさが所定の閾値の大きさ区域に占める百分比より大きいかまたは等しい、第２組織試料に関わる第２百分比をさらに含む。閾値の大きさは例えば、０．５ミリメートル、０．８ミリメートル、１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。
行為（例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産フコイダン補助剤、係る沖縄県産フコイダン補助剤は８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末を含む。そのうち、４．５グラムのフコイダン補助剤は３グラム（または２グラム以上）のフコイダン、或いは６０重量パーセント以上のフコイダンを含む）の服用が所定の疾病（例えば、がん、パーキンソン症またはアルツハイマー症）を患う個体（例えばヒトの体または動物の体）に対する治療効果を評価する方法は、（１）個体から第１組織試料（例えば、末梢血検体）を獲得するステップと、（２）解析または測量方法（例えば、前述した測量方法ＭＴ）または装置、計器或いは設備（例えば、前述した整合システム、計器、工具または装置（ＡＤ）もしくは、前述した単独システム、計器、工具または装置（ＴＤ））を用いて、第１組織試料から一種または複数種の選択された幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）に関わる第１幹細胞データを獲得するステップと、（３）第１組織試料または第１幹細胞データを獲得した後、個体に所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせるステップと、（４）個体に所定の行為を行わせたかまたは受け入れさせた後、個体を例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間の第１（予定の）時間を待機させるステップと、（５）個体が第１（予定の）時間を待機した後、個体から第２組織試料（例えば、末梢血検体）を採取するステップと、（６）解析または測量方法、或いは装置、計器または設備を用いて、第２組織試料から係る種または係る特定幹細胞に関わる第２幹細胞データを獲得するステップと、（７）第２幹細胞データと第１幹細胞データとの比較を含む、第２幹細胞データと第１幹細胞データに第１解析を実行するステップと、（８）第２組織試料または第２幹細胞データを獲得した後、個体を再び所定の行為を行わせるかまたは受け入れさせるステップと、（９）個体に行為を再び行わせるかまたは受け入れさせた後、個体を例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間の第２（予定の）時間を待機させるステップと、（１０）個体に第２（予定の）時間を待機させた後、個体から第３組織試料（例えば、末梢血検体）を採取するステップと、（１１）解析または測量方法、或いは装置、計器または設備を用いて、第３組織試料から係る種または係る特定幹細胞に関わる第３幹細胞データを獲得するステップと、（１２）第３幹細胞データと、第１または第２幹細胞の比較を含める、第３幹細胞データと、第１または第２幹細胞に対して、第２解析を実行するステップと、を含む。係る種または係る特定幹細胞は例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞を指す。第１幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が第１組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数を含む、つまり、第１組織試料のうち、係る種または係る特定幹細胞の単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数である。第２幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が第２組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数を含む、つまり、第２組織試料のうち、係る種または係る特定幹細胞の単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数である。第３幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が第３組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数を含む、つまり、第３組織試料のうち、係る種または係る特定幹細胞の単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数である。第１幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が顆粒の大きさが所定の閾値の大きさ区域に占める百分比より大きいかまたは等しい、第１組織試料に関わる第１百分比をさらに含む。第２幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が顆粒の大きさが所定の閾値の大きさ区域に占める百分比より大きいかまたは等しい、第２組織試料に関わる第２百分比をさらに含む。第３幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が顆粒の大きさが所定の閾値の大きさ区域に占める百分比より大きいかまたは等しい、第３組織試料に関わる第３百分比をさらに含む。閾値の大きさは例えば、０．５ミリメートル、０．８ミリメートル、１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。
一種または複数種の前述行為または刺激（Ｘ）（例えば、４．５グラム（または３．５グラム以上）の沖縄県産フコイダン補助剤、係る沖縄県産フコイダン補助剤は８０重量パーセント（または７０重量パーセント以上）のもずく粉末を含む。そのうち、４．５グラムのフコイダン補助剤は３グラム（または２グラム以上）のフコイダン、或いは６０重量パーセント以上のフコイダンを含むの服用）を評価または測定する方法は、（１）個体（例えば、ヒトの体または動物の体）から第１組織試料（例えば、末梢血検体）を獲得するステップと、（２）解析または測量方法（例えば、前述した測量方法ＭＴ）または装置、計器或いは設備（例えば、前述した整合システム、計器、工具または装置（ＡＤ）もしくは、前述した単独システム、計器、工具または装置（ＴＤ））を用いて、第１組織試料から、一種または複数種の選択された幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞及び／またはＳＢ−２細胞）情報に関わる第１幹細胞データを獲得するステップと、（３）第１組織試料または第１幹細胞データを獲得した後、個体に一種または複数種の前述した行為または刺激（Ｘ）を行わせるかまたは受け入れさせるステップと、（４）個体に一種または複数種の前述行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れさせた後、個体を例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間の所定（予定の）時間を待機させるステップと、（５）個体が所定（予定の）時間を待機した後、個体から第２組織試料（例えば、末梢血検体）を採取するステップと、（６）解析または測量方法或いは装置、計器または設備を用いて、第２組織試料から一種または複数種の選択された幹細胞に関わる第２幹細胞データを獲得するステップと、（７）第１幹細胞データと第２幹細胞データの比較を含む、第１幹細胞データと第２幹細胞データを解析するステップと、を含む。係る種または係る特定幹細胞は例えば、本発明において「幹細胞の定義」で説明した一種または複数種の幹細胞を指す。第１幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が第１組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数を含む、つまり、第１組織試料のうち、係る種または係る特定幹細胞の単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数である。第２幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が第２組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数を含む、つまり、第２組織試料のうち、係る種または係る特定幹細胞の単位体積当たり（例えば、１ミリメートル当たり）の数である。第１幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が顆粒の大きさが所定の閾値の大きさ区域に占める百分比より大きいかまたは等しい、第１組織試料に関わる第１百分比をさらに含む。第２幹細胞データは例えば、係る種または係る特定幹細胞が顆粒の大きさが所定の閾値の大きさ区域に占める百分比より大きいかまたは等しい、第２組織試料に関わる第２百分比をさらに含む。閾値の大きさは例えば、０．５ミリメートル、０．８ミリメートル、１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。
個体が一種または複数種の前述行為または刺激（Ｘ）を行わせるかまたは受け入れさせることによって、体内に係る選定された幹細胞増加数の監視に用いる方法であって、個体が係る一種または複数種の行為または刺激（Ｘ）によって、体内に係る種の選定された幹細胞を培養または育成し、個体（例えば、前述したヒトの体と非ヒトの体）末梢血のうち選択された種の幹細胞（例えば、ＳＢ−１細胞またはＳＢ−２細胞）の数を監視する方法は、（１）個体から第１組織試料（例えば、末梢血検体）を獲得するステップと、（２）解析または測量方法（例えば、前述した測量方法（ＭＴ）または装置、計器或いは設備（例えば、前述した整合システム、装置、計器または工具（ＡＤ）もしくは前述した単独システム、計器、工具または装置（ＴＤ））を用いて、第１組織試料から単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の係る種の選定された幹細胞に関わる第１データを獲得するステップと、（３）第１組織試料を獲得した後、個体を係る一種または複数種の前述行為または刺激（Ｘ）を行わせるかまたは受け入れさせるステップと、（４）個体に係る一種または複数種の前述行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れさせた後、個体を例えば１５〜６０分、２０〜１００分、３０分から２時間、０．５〜３時間、１〜１２時間、１２〜３６時間または３６〜５０時間の第１所定（予定の）時間を待機させるステップと、（５）個体に所定（予定の）時間を待機させた後、個体から第２組織試料（例えば、末梢血検体）を採取するステップと、（６）解析または測量方法或いは装置、計器または設備を用いて、第２組織試料から単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の選択された種の幹細胞に関わる第２データを獲得するステップと、（７）第１データと第２データの比較を含む、第１データと第２データに対する第１解析を実行するステップと、（８）個体に一種または複数種の前述行為または刺激（Ｘ）を行わせたかまたは受け入れさせた後、個体を例えば１２〜３６時間または３６〜６０時間の第１所定（予定の）時間と異なる第２所定（予定の）時間を待機させるステップと、（９）個体に第２所定（予定の）時間を待機させた後、個体から第３組織試料（例えば、末梢血検体）を採取するステップと、（１０）解析または測量方法或いは装置、計器または設備を用いて、第３組織試料から単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の選択された種の幹細胞に関わる第３幹細胞データを獲得するステップと、（１１）単位体積当たり（例えば、１ミリリットル））の選択された種の幹細胞に関わる第２変化量を獲得するため、第１データと第３データに対する第２解析を実行するステップと、を含む。該第２解析は、該第１データと該第３データを比較することを含むことができる。第１、第２、第３組織試料は、例えば個体の末梢血検体から採取することができる。前述選定された幹細胞は、例えば本発明が「幹細胞の定義」に説明したいずれか一種の幹細胞、或いは本発明が「幹細胞の定義」に説明した一種または複数種の細胞（表面）マーカー（例えばＣＤ３４９（＋）、Ｌｇｒ５（＋）またはＣＤ６６ｅ（＋））によって、その特徴を記述した幹細胞である。
組織試料（例えば、末梢血検体）の幹細胞データ（例えば、単位体積当たり幹細胞データの数）を獲得する方法は、（１）個体（例えば、ヒトの体または動物の体）から組織試料（体積は例えば、１０ミリメートル）を獲得するステップと、（２）試験試料（体積は、例えば３ミリメートル）を獲得または調製するため、組織試料を処理するステップと、（３）血球計算器（ｈｅｍｏｃｙｔｏｍｅｔｅｒ）を用いて、第１部分の顆粒数を算出する第１方法を用いて、試験試料の第１部分から第１データ（例えば、単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の第１グループの特定顆粒（細胞を含む）の数）を獲得するテップと、（４）試験試料は均一であり、しかも、ほぼ同じ内容物の状態を有し、第２部分は第１部分とほぼ同じ内容物を有することを仮定し、第１グループの特定顆粒と、第３グループの特定顆粒がほぼ同じ性質または特性を有し、第１グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒の大きさは閾値大きさより大きいかまたは等しい（例えば、０．５ミリメートル、０．８ミリメートル、１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートルまたは３ミリメートル）、フローサイトメーター（ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ）を用いて、第２部分の顆粒数を算出する第２方法を用いて、試験試料の第２部分から第２データ（例えば、一種の特定細胞数が第２グループの特定顆粒（細胞を含む）の数に占めるパーセント）と、第３データ（例えば、第２グループの特定顆粒の数が第３グループ特定顆粒（細胞を含む）の数に占めるパーセント）を獲得するステップと、（５）第２データと第３データに対する第１演算または計算（例えば、第２データに第３データを掛ける）を実行することによって、試験試料に関わる第４データ（例えば、係る特定幹細胞が第３グループの特定顆粒に占める数の百分比）を獲得するステップと、（６）第１データと第４データに対する第２演算または計算（例えば、第１データに第４データを掛ける）を実行することによって、試験試料に関わる第５データ（例えば、係る特定幹細胞が試験試料の単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数）を獲得するステップと、（７）第５データと体積変動（または試料調製）係数に対する第３演算または計算（例えば、第５データに体積変動（または試料調製）係数）を実行することによって、組織試料（例えば、末梢血）に関わる第６データ（例えば、係る種の特定幹細胞が組織試料の単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数）を獲得するステップと、を含む。前述した組織試料の幹細胞データの方法は、試験試料の体積と組織試料の体積に対する第４演算または計算（例えば、試験試料の体積を組織試料の体積で割る）を実行することによって、体積変動（または試料調製）係数を獲得するステップを含めても良い。
幹細胞データは、例えば係る種の特定幹細胞が個体の末梢血における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数を含めても良い。第３グループの特定顆粒は、第２グループの特定顆粒と、他のグループの顆粒及び／または細胞（例えば、微粒子または、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む））を含む。第２グループの特定顆粒は、係る種の特定幹細胞を含むが、微粒子、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む）はほとんど含まれていない。（第１グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒）の閾値大きさは、例えば０．５ミリメートル、０．８ミリメートル、１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。第２グループの特定顆粒のうち、顆粒の大きさは例えば、１ミリメートル、１．１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートル、２．１ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。第１グループの特定顆粒、第２グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒のうち、各グループの特定顆粒は例えば、一グループの細胞であるかまたは一グループの細胞を含む。係る特定幹細胞は、例えば本発明の「幹細胞定義」に言及するいずれの種の多機能幹細胞、いずれかの種の多分化能幹細胞、いずれの種の先駆幹細胞である。組織試料は例えば、血液、末梢血またはその他組織であっても良い。個体は例えば、ヒトまたは動物であっても良い。ステップ（２）に述べる組織試料の処理は、赤血球凝集剤と組織試料を混ぜ合わせて、赤血球凝集剤と組織試料を混合した後、組織試料から由来する顆粒を溶液または培養液に懸濁させるステップを含む。溶液または培養液は、例えばカルシウムとマグネシウムを含まない塩溶液またはウシ血清アルブミンを含むリン酸塩緩衝液であっても良い。組織試料から試験試料を調製する方法に基づいて、体積変動（または試料調製）係数を算出または獲得することができる。例えば、１０ミリリットルの組織試料を３ミリリットルの試験試料に処理した場合、体積変動（または試料調製）係数は３／１０（つまり、試験試料の体積と組織試料の体積の比率）となる。
総括すると、血球計算器（顕微鏡も合わせて）は、大きさが閾値の大きさより大きいかまたは等しい顆粒（細胞を含む）が試験試料（組織試料（例えば、末梢血）を処理して形成する）における単位体積当たりの（例えば、１ミリリットル）の数を獲得するものであり、フローサイトメーターは係る特定幹細胞の大きさが閾値大きさより大きいかまたは等しい顆粒（細胞を含む）に占めるパーセント（試験試料に関わる）である。獲得した大きさが前述閾値大きさより大きいかまたは等しい顆粒が試験試料の単位体積当たりの数に獲得した係る特定幹細胞の大きさを前述閾値大きさより大きいかまたは等しいに占めるパーセントを掛けることによって、係る特定幹細胞が試験試料における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数を獲得することができる。選定された幹細胞が試験試料における１単位体積当たりの数に、前述体積変動（または試料調製）係数を掛けることによって、係る特定幹細胞が組織試料（例えば、末梢血）の１単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数を獲得することができる。従いまして、前述細胞の計数データ（つまり、前述した血球計数の計数に獲得したデータ）と、前述特定幹細胞の百分比（つまり、フローサイトメーターによって測量された前述データ）を結合することによって、係る特定幹細胞が末梢血における数をより精確に獲得することができる。
本実施例において、個体（例えば、ヒトの体）の組織試料（例えば、末梢血）に関わる幹細胞データ（例えば、単位体積当たりの細胞数）を獲得するため、前述した整合システム、装置、計器または工具を用いる。整合システム、装置、計器または工具は、（１）個体から組織試料（体積は、例えば１０ミリリットル）の獲得または取得に用いる第１装置、計器または工具と、（２）組織試料を処理することによって、試験試料（体積は例えば、３ミリリットル）を獲得または調製する第２装置、計器または工具（例えば、遠心機を含む）と、（３）試験試料の第１部分から第１データ（例えば、単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）のうち第１グループの特定顆粒の数）の獲得に用いる第３装置、計器または工具（例えば、血球計算器、顕微鏡、ソフトウエアを内蔵したプロセッサーまたはコンピュータを含む）と、（４）試験試料は均一していて、かつ、ほぼ同じ内容物の状態を有し、第１部分が第２部分とほぼ同じ内容物を有することを仮定し、さらに、第１グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒がほぼ同じ性質または特性を有し、第１グループの特定顆粒の大きさと、第３グループの特定顆粒の大きさが閾値大きさより大きいかまたは等しい。試験試料の第２部分から第２データ（例えば、所定種の細胞数が第２グループの特定顆粒の数に占めるパーセント）と、第３データ（例えば、第２グループの特定顆粒の数が第３グループの特定顆粒の数に占めるパーセント）の獲得に用いる第４装置、計器または工具（例えば、フローサイトメーターと、プロセッサーまたはコンピュータを含む）と、（５）（ａ）試験試料に関わる第４データ（例えば、係る特定種の細胞数が第３グループの特定顆粒の数に占めるパーセント）を獲得するため、第２データと第３データに対する第１演算または計算（例えば、第２データに第３データを掛ける）と、（ｂ）試験試料に関わる第５データ（例えば、係る特定幹細胞が試験試料における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数）を獲得するため、第１データと第４データに対して、第２演算または計算（例えば、第１データに第４データを掛ける）と、（ｃ）組織試料に関わる第６データ（例えば、係る特定幹細胞が組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数）を獲得するため、第５データと体積変動（または試料調製）係数）に対して第３演算または計算と、を含める演算または計算（例えば、第５データに体積変動（または試料調製）係数を掛ける）を実行する第５装置、計器または工具（例えば、コンピュータまたはプロセッサー）と、を含む。第５装置、計器または工具は、試験試料の体積と組織試料の体積に対して、第４演算または計算（例えば、試験試料の体積を組織試料の体積で割る）を実行し、体積変動（または試料調製）係数）を獲得する演算または計算に用いることができる。この他に、前述第１、第２、第３、第４及び第５装置と、計器、または工具のうち、いずれかの２つまたはそれ以上の装置と、計器、または工具、或いは前述いずれかの２つ以上の機能を処理可能な整合装置、計器、または工具もしくは単独装置、計器、または工具に統合し組合せることもできる。例えば、第１と第２装置、計器、または工具を第１と第２装置、計器、または工具の機能を備えた第１整合装置、計器、または工具或いは第１単独装置、計器、または工具に組み合わせて整合するか、もしくは第３、第４と第５装置、計器、または工具を第３、第４と第５装置、計器、または工具の機能を備えた第２整合装置、計器、または工具或いは第２単独装置に組み合わせて整合することもできる。さらに、第２、第３、第４と第５装置、計器、または工具を第２、第３、第４と第５装置、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具あるいは単独装置に組み合わせて整合することもできる。または、第２、第３と第４装置、計器、または工具を第２、第３、第４装置、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具あるいは単独装置に組み合わせて整合することもできる。或いは第３、第４装置、計器、または工具を第３と第４装置、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具あるいは単独装置に組み合わせて整合することもできる。もしくは、第４、第５装置、計器、または工具を第４と第５装置、計器、または工具の機能を備えた整合装置、計器、または工具あるいは単独装置に組み合わせて整合することもできる。幹細胞データは、例えば係る種の特定幹細胞が個体の末梢血における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数を含めても良い。第３グループの特定顆粒は、第２グループの特定顆粒と、他のグループの顆粒及び／または細胞（例えば、微粒子または、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む））を含む。第２グループの特定顆粒は、係る種の特定幹細胞を含むが、微粒子、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む）はほとんど含まれていない。（第１グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒）の閾値大きさは、例えば０．５ミリメートル、０．８ミリメートル、１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。第２グループの特定顆粒のうち、顆粒の大きさは例えば、１ミリメートル、１．１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートル、２．１ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。第１グループの特定顆粒、第２グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒のうち、各グループの特定顆粒は例えば、一グループの細胞かまたは一グループの細胞を含む。係る特定幹細胞は、例えば本発明の「幹細胞定義」に言及するいずれの種の多機能幹細胞、いずれかの種の多分化能幹細胞、いずれの種の先駆幹細胞である。係る組織試料は、例えば末梢血検体であっても良い。個体は例えば、ヒトまたは動物であっても良い。組織試料を第２装置、計器、または工具を用いて処理するときは、赤血球凝集剤と組織試料を混ぜ合わせて、赤血球凝集剤と組織試料を混合した後、組織試料から由来する顆粒を溶液または培養液に懸濁させるステップを含めても良い。溶液または培養液は、例えばカルシウムとマグネシウムを含まない塩溶液またはウシ血清アルブミンを含むリン酸塩緩衝液であっても良い。組織試料から試験試料を調製する方法に基づいて、体積変動（または試料調製）係数を算出または獲得することができる。例えば、１０ミリリットルの組織試料を３ミリリットルの試験試料に処理した場合、体積変動（または試料調製）係数は３／１０（つまり、試験試料の体積と組織試料の体積の比率）となる。総括すると、第３装置、計器、または工具は、大きさが閾値の大きさより大きいかまたは等しい顆粒（細胞を含む）が試験試料（組織試料（例えば、末梢血）を処理して形成する）における単位体積当たりの（例えば、１ミリリットル）の数を獲得するものであり、第４と第５装置、計器、または工具は、係る特定幹細胞の大きさが閾値大きさより大きいかまたは等しい顆粒（細胞を含む）に占めるパーセント（試験試料に関わる）である。獲得した大きさが前述閾値大きさより大きいかまたは等しい顆粒が試験試料の単位体積当たりの数に獲得した係る特定幹細胞の大きさを前述閾値大きさより大きいかまたは等しいに占めるパーセントに掛けることによって、係る特定幹細胞が試験試料における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数を獲得することができる。選定された幹細胞が試験試料における１単位体積当たりの数に、前述体積変動（または試料調製）係数を掛けることによって、係る特定幹細胞が組織試料（例えば、末梢血）の１単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数を獲得することができる。従いまして、前述した細胞の計数データ（第３装置、計器、または工具より提供される）と、前述した係る特定幹細胞のパーセント（第４と第５装置、計器、または工具より提供される）を結合することによって、係る特定幹細胞が末梢血における数をより精確に獲得することができる。
本発明において、（１）個体から組織試料（体積は、例えば１０ミリリットル）を獲得または取得する第１機能と、（２）組織試料を処理することによって試験試料（体積は、例えば３ミリリットル）を獲得または調製する第２機能と、（３）試験試料の第１部分から第１データ（例えば、単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の第１グループ特定顆粒の数）を獲得する第３機能と、（４）試験試料は均一していて、かつ、ほぼ同じ内容物の状態を有し、第１部分が第２部分とほぼ同じ内容物を有することを仮定し、さらに、第１グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒がほぼ同じ性質または特性を有し、第１グループの特定顆粒の大きさと、第３グループの特定顆粒の大きさが閾値大きさより大きいかまたは等しい。試験試料の第２部分から第２データ（例えば、所定種の細胞数が第２グループの特定顆粒の数に占めるパーセント）と、第３データ（例えば、第２グループの特定顆粒の数が第３グループの特定顆粒の数に占めるパーセント）の獲得に用いる第４機能と、（５）第２データと第３データに対して第１演算または計算（例えば、第２データに第３データを掛ける）を実行することによって、試験試料に関わる第４データ（例えば、係る特定種の細胞数が第３グループの特定顆粒の数に占めるパーセント）を獲得する第５機能と、（６）第１データと第４データに対して、第２演算または計算（例えば、第１データに第４データを掛ける）を実行することによって、試験試料に関わる第５データ（例えば、係る特定幹細胞が試験試料における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数）を獲得する第６機能と、（７）試験試料の体積と組織試料の体積に対して第３演算または計算（例えば、試験試料の体積を組織試料の体積で割る）を実行することによって、体積変動（または試料調製）係数）を獲得する第７機能と、（８）第５データと体積変動（または試料調製）係数）に対して第４演算または計算（例えば、第５データに体積変動（または試料調製）係数を掛ける）を実行することによって、組織試料に関わる第６データ（例えば、係る特定幹細胞が組織試料における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数）を獲得する第８機能と、合計８つの機能のうちいずれかの２つ（またはそれ以上）の機能を提供または実行することができる単独システム、装置、計器、または工具をさらに提供されている。
係る特定幹細胞が組織試料における単位体積当たりの数は、例えば係る特定幹細胞が個体の末梢血における単位体積当たりの数であっても良い。第３グループの特定顆粒は、第２グループの特定顆粒と、他のグループの顆粒及び／または細胞（例えば、微粒子または、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む））を含む。第２グループの特定顆粒は、係る種の特定幹細胞を含むが、微粒子、顆粒細胞、赤血球、血小板、白血球（リンパ球を含む）はほとんど含まれていない。（第１グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒）の閾値大きさは、例えば０．５ミリメートル、０．８ミリメートル、１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。第２グループの特定顆粒のうち、顆粒の大きさは例えば、１ミリメートル、１．１ミリメートル、１．５ミリメートル、２ミリメートル、２．１ミリメートルまたは３ミリメートルであっても良い。第１グループの特定顆粒、第２グループの特定顆粒と第３グループの特定顆粒のうち、各グループの特定顆粒は例えば、一グループの細胞であるかまたは一グループの細胞を含む。係る特定幹細胞は、例えば本発明の「幹細胞定義」に言及するいずれの種の多機能幹細胞、いずれかの種の多分化能幹細胞、いずれの種の先駆幹細胞である。係る組織試料は、例えば末梢血検体であっても良い。個体は例えば、ヒトまたは動物であっても良い。第２機能に述べる組織試料の処理は、赤血球凝集剤と組織試料を混ぜ合わせて、赤血球凝集剤と組織試料を混合した後、組織試料から由来する顆粒を溶液または培養液に懸濁させるステップを含む。溶液または培養液は、例えばカルシウムとマグネシウムを含まない塩溶液またはウシ血清アルブミンを含むリン酸塩緩衝液であっても良い。組織試料から試験試料を調製する方法に基づいて、体積変動（または試料調製）係数を算出または獲得することができる。例えば、１０ミリリットルの組織試料を３ミリリットルの試験試料に処理した場合、体積変動（または試料調製）係数は３／１０（つまり、試験試料の体積と組織試料の体積の比率）となる。
一つの事例において、係る単独システム、装置、計器、または工具は、第３と第４機能をさらに提供または実行することができる。もう一つの事例において、係る単独システム、装置、計器、または工具は、第２、第３と第４機能をさらに提供または実行することができる。さらに一つの事例において、係る単独システム、装置、計器、または工具は、第３ないし第６機能及び第８機能をさらに提供または実行することができる。さらに一つの事例において、係る単独システム、装置、計器、または工具は、第３ないし第８機能をさらに提供または実行することができる。さらに一つの事例において、係る単独システム、装置、計器、または工具は、第１ないし第８機能をさらに提供または実行することができる。
総括すると、係る単独システム、装置、計器、または工具によって提供される第３機能は、大きさが閾値の大きさより大きいかまたは等しい顆粒（細胞を含む）が試験試料（組織試料（例えば、末梢血）を処理して形成する）における単位体積当たりの（例えば、１ミリリットル）の数を獲得するものであり、係る単独システム、装置、計器、または工具によって提供される第４と第５機能は、係る特定幹細胞の大きさが閾値大きさより大きいかまたは等しい顆粒（細胞を含む）に占めるパーセント（試験試料に関わる）である。獲得した大きさが前述閾値大きさより大きいかまたは等しい顆粒が試験試料の単位体積当たりの数に獲得した係る特定幹細胞の大きさを前述閾値大きさより大きいかまたは等しいに占めるパーセントに掛けることによって、係る特定幹細胞が試験試料における単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数を獲得することができる。選定された幹細胞が試験試料における１単位体積当たりの数に、前述体積変動（または試料調製）係数を掛けることによって、係る特定幹細胞が組織試料（例えば、末梢血）の１単位体積当たり（例えば、１ミリリットル）の数を獲得することができる。従いまして、前述した細胞の計数データ（単独システム、装置、計器、または工具の第３機能より提供される）と、前述した係る特定幹細胞のパーセント（単独システム、装置、計器、または工具の第４と第５機能によって提供される）を結合することによって、係る特定幹細胞が末梢血における数をより精確に獲得することができる。
以上は実施例をもって、本発明の特徴を説明しており、当業者が本発明の内容を理解し、かつこれに基づいて実施を可能にすることを目的としており、本発明の特許請求範囲を制限されべきでない。よって、本発明で開示された精神に基づいて完成された等効果の修飾または修正は、なお以下の述べる特許請求範囲に含む。
１０ 収集バッグ
１１ フィルタ
１２ａ 試験管
１２ｂ 試験管
１２ｃ 試験管
１３ 遠心機
１４ａ 試験試料
１４ｂ 試験試料
１４ｃ 試験試料
１５ａ 解析機器
１５ｂ 解析機器
１６ 赤血球分解液
１９ 貯蔵器
２０ａ 試験管
２０ｂ 試験管
２０ｃ 試験管
２１ａ 試験試料
２１ｂ 試験試料
２１ｃ 試験試料
２２ 赤血球分解液
１〜２０ ステップ
２１〜４３ ステップ
４９〜５９ ステップ
６１〜７０ ステップ
７７ 垂直線
８１ 垂直破線
８２ 水平破線
１００ａ １ミリメートルの正方形
１００ｂ １ミリメートルの正方形
１００ｃ １ミリメートルの正方形
１００ｄ １ミリメートルの正方形
１０１〜１０４ ステップ

Claims (7)

  1. 幹細胞数を獲得する方法であって、以下のステップ：
    被験者から獲得された末梢血試料を試験試料に加工するステップであって、前記加工するステップは、前記末梢血試料を最上層および最下層に分離するステップと、前記最上層から前記試験試料を獲得するステップとを含むステップと、
    前記試験試料から第１の部分と第２の部分とを取り出すステップと、
    第１のデータを獲得するように、前記第１の部分において粒子の第１のグループをカウントするステップであって、前記カウントするステップは、１．０マイクロメーター以上のサイズを有する細胞の数を獲得するために血球計算器を使用することを含み、前記第１のデータは、前記試験試料において１．０マイクロメーター以上のサイズを有する細胞の単位体積当たりの数である試験試料細胞数を含むステップと、
    第２のデータを獲得するように、前記第２の部分における粒子の第２のグループにおける細胞をカウントするステップであって、前記カウントするステップは、前記第２の部分において幹細胞の１つ以上のタイプの各々の数、１．０マイクロメーター以上のサイズを有する細胞の数（細胞数Ｃ１）、及び前方散乱係数対側方散乱係数のグラフにおける高い細胞核／細胞質比を有する領域における細胞の数（細胞数Ｃ２）を獲得するフローサイトメーターを使用するステップを含み、前記幹細胞の１つ以上のタイプはＬｇｒ５（＋）幹細胞を含み、前記第２のデータは前記細胞数Ｃ１における前記幹細胞の１つ以上のタイプの各々のパーセンテージを含み、前記第２のデータは、
    （ｉ）前記細胞数Ｃ１における前記細胞数Ｃ２のパーセンテージを獲得するステップと、
    （ｉｉ）前記細胞数Ｃ２における前記幹細胞の１つ以上のタイプの各々のパーセンテージを獲得するステップと（パーセンテージＳＰ）、
    （ｉｉｉ）Ｃ１中のＣ２のパーセンテージにＳＰ及び１００％を掛けるステップと、
    を含むプロセスにより獲得されるステップと、
    前記第１のデータと前記第２のデータとに基づいて、第３のデータを獲得するステップであって、前記第３のデータは、前記末梢血試料における前記幹細胞の１つ以上のタイプの各々の単位体積当たりの数であり、前記第３のデータは、
    （ｉ）Ｃ１における前記幹細胞の１つ以上のタイプの各々のパーセンテージに試験試料の細胞数を掛けることにより、前記試験試料における前記幹細胞の１つ以上のタイプの各々の単位体積当たりの数を獲得するステップと、
    （ｉｉ）体積変化を獲得するため、前記試験試料の体積を前記末梢血試料の体積で割ること、及び前記体積変化に前記試験試料における前記幹細胞の１つ以上のタイプの各々の単位体積当たりの数を掛けることにより、前記末梢血試料における前記幹細胞の１つ以上のタイプの各々の単位体積当たりの数を獲得するステップと、
    を含むプロセスにより獲得されるステップと、
    を含む、幹細胞数を獲得する方法。
  2. 前記細胞数Ｃ１は、白血球、赤血球、血小板、及び顆粒細胞のカウントを含む、請求項１に記載の方法。
  3. 前記幹細胞の１つ以上のタイプは、ＣＤ２４（＋）、ＣＤ３３（＋）、ＣＤ３４９（＋）、ＳＳＥＡ１（＋）、ＳＳＥＡ４（＋）、ＣＤ９（＋）、ＣＤ１３３（＋）、またはＣＤ６６ｅ（＋）幹細胞をさらに含む、請求項１に記載の方法。
  4. 前記末梢血試料が、前記被験者が行為を行った後に前記被験者から獲得される、請求項1に記載の方法。
  5. 前記行為は生薬またはフコイダンを含有する組成物を服用することである、請求項４に記載の方法。
  6. 請求項１に記載の方法であって、前記加工するステップは、
    第１の中間試料を獲得するため、ＥＤＴＡ試験管中で、前記末梢血と赤血球凝集剤とを混合するステップと、
    前記第１の中間試料を、最上層と最下層とに分離するまでインキュベートするステップと、
    前記最上層を収集するステップと、
    第１のペレットを獲得するため、前記最上層を遠心分離するステップと、
    第２の中間試料を獲得するため、第１の塩溶液に前記第１のペレットを再懸濁させるステップであって、前記第１の塩溶液はカルシウムおよびマグネシウムを含まない、ステップと、
    第２のペレットを獲得するため、前記第２の中間試料を遠心分離するステップと、
    第３の中間試料を獲得するため、第２の塩溶液に前記第２のペレットを再懸濁させるステップであって、前記第１の塩溶液はカルシウムおよびマグネシウムを含まない、ステップと、
    第３のペレットを獲得するため、前記第３の中間試料を遠心分離するステップと、および
    前記試験試料を獲得するため、培養液に前記第３のペレットを再懸濁させるステップと、
    を含む方法。
  7. 前記フローサイトメーターを用いて前記幹細胞の１つ以上のタイプを同定するため、前記第２の部分を１つ以上の細胞表面マーカーで標識するステップをさらに含む、請求項６に記載の方法。
JP2014127875A 2013-06-24 2014-06-23 幹細胞及びそのデータを獲得する方法 Active JP6581758B2 (ja)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201361838359P 2013-06-24 2013-06-24
US61/838,359 2013-06-24
US201361912563P 2013-12-06 2013-12-06
US61/912,563 2013-12-06

Publications (3)

Publication Number Publication Date
JP2015006183A JP2015006183A (ja) 2015-01-15
JP2015006183A5 JP2015006183A5 (ja) 2017-08-03
JP6581758B2 true JP6581758B2 (ja) 2019-09-25

Family

ID=51947635

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2014127876A Pending JP2015006184A (ja) 2013-06-24 2014-06-23 幹細胞及びそのデータを獲得する方法
JP2014127875A Active JP6581758B2 (ja) 2013-06-24 2014-06-23 幹細胞及びそのデータを獲得する方法

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2014127876A Pending JP2015006184A (ja) 2013-06-24 2014-06-23 幹細胞及びそのデータを獲得する方法

Country Status (5)

Country Link
US (3) US20140377760A1 (ja)
EP (2) EP2818544A1 (ja)
JP (2) JP2015006184A (ja)
CN (2) CN104232580A (ja)
TW (2) TWI640884B (ja)

Families Citing this family (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8563307B2 (en) 2009-02-24 2013-10-22 James Wang Treatment of immunosuppression-related disorders
US8679474B2 (en) 2010-08-04 2014-03-25 StemBios Technologies, Inc. Somatic stem cells
TWI614340B (zh) 2011-09-28 2018-02-11 幹細胞生物科技股份有限公司 體幹細胞及其製備方法
JP6495174B2 (ja) 2012-12-06 2019-04-03 ステムバイオス テクノロジーズ，インコーポレイテッド Ｌｇｒ５＋体性幹細胞
EP2746770A1 (en) 2012-12-21 2014-06-25 Stembios Technologies, Inc. Method for evaluating effect of action on subject based on stem celldynamics
JP2015006184A (ja) * 2013-06-24 2015-01-15 ステムバイオス テクノロジーズ, インコーポレイテッドStembios Technologies, Inc. 幹細胞及びそのデータを獲得する方法
US20160136203A1 (en) * 2014-11-19 2016-05-19 StemBios Technologies, Inc. Somatic stem cells for treating bone defects
CN105687245A (zh) * 2014-12-13 2016-06-22 干细胞生物科技公司 制备注射液的方法
US20160271185A1 (en) * 2015-03-16 2016-09-22 StemBios Technologies, Inc. Method of preparing solution containing stem cells
EP3328400A4 (en) * 2015-07-28 2019-03-27 Stembios Technologies, Inc. COMPOSITION AND METHOD FOR INHIBITING HISTONATE ACETYLASE
US10221385B2 (en) * 2016-05-27 2019-03-05 Fenwal, Inc. Cell processing system and method with post-separation cell count control
US10654000B2 (en) * 2016-07-13 2020-05-19 Fenwal, Inc. Cell processing system and method with centralized data management, monitoring and/or control
WO2018144981A1 (en) * 2017-02-06 2018-08-09 StemBios Technologies, Inc. Use of somatic stem cells for increasing autophagy
CN109234162A (zh) * 2018-10-22 2019-01-18 广东省心血管病研究所 一种干细胞自动培养***

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5955257A (en) * 1997-10-21 1999-09-21 Regents Of The University Of Minnesota Infusible grade short-term cell storage medium for mononuclear cells
US20020142462A1 (en) * 1997-11-26 2002-10-03 Ildstad Suzanne T. Methods for mobilizing hematopoietic facilitating cells and hematopoietic stem cells into the peripheral blood
AU1705599A (en) * 1997-11-26 1999-06-15 Allegheny University Of The Health Sciences Methods for mobilizing hematopoietic facilitating cells and hematopoietic stem cells into the peripheral blood
US7112576B1 (en) * 1999-12-10 2006-09-26 Regents Of The University Of Minnesota Compositions and methods for cryopreservation of peripheral blood lymphocytes
JP2003073300A (ja) * 2001-09-03 2003-03-12 Morinaga Milk Ind Co Ltd 造血前駆細胞動員増強剤
JP3968383B2 (ja) * 2004-09-01 2007-08-29 株式会社日本メディカル総研 血液細胞の新規分類法ならびにそれを利用したテイラーメード治療および予防
WO2007087367A2 (en) * 2006-01-25 2007-08-02 Mount Sinai School Of Medicine Methods and compositions for modulating the mobilization of stem cells
CN1945326A (zh) * 2006-10-13 2007-04-11 江西特康科技有限公司 基于视觉形态的五分类全血细胞分析方法
US20090104160A1 (en) * 2007-02-01 2009-04-23 Moraga Biotechnology Corporation Mobilization of Stem Cells After Trauma and Methods Therefor
EP2022848A1 (en) * 2007-08-10 2009-02-11 Hubrecht Institut A method for identifying, expanding, and removing adult stem cells and cancer stem cells
TW201017149A (en) * 2008-08-06 2010-05-01 Invitrox Inc Use of focused light scattering techniques in biological applications
US20130149311A1 (en) * 2010-05-07 2013-06-13 Institut De Recherches Cliniques De Montreal Gfi1b modulation and uses thereof
EP3153173A1 (en) * 2010-06-28 2017-04-12 Stemtech International, Inc. Methods and compositions for enhancing stem cell mobilization
EP2601290B1 (en) * 2010-08-04 2019-03-27 Stembios Technologies, Inc. Somatic stem cells
EP2514817B1 (en) * 2011-04-19 2017-08-30 Hualien Tzu Chi Hospital, Buddhist Tzu Chi Medical Foundation Non-tumorigenic expansion of pluripotent stem cells
JP2015006184A (ja) * 2013-06-24 2015-01-15 ステムバイオス テクノロジーズ, インコーポレイテッドStembios Technologies, Inc. 幹細胞及びそのデータを獲得する方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN104232580A (zh) 2014-12-24
TWI640884B (zh) 2018-11-11
TW201920951A (zh) 2019-06-01
JP2015006184A (ja) 2015-01-15
JP2015006183A (ja) 2015-01-15
TW201502832A (zh) 2015-01-16
CN104232567A (zh) 2014-12-24
US20180024122A1 (en) 2018-01-25
US20140377760A1 (en) 2014-12-25
EP2818545A1 (en) 2014-12-31
EP2818544A1 (en) 2014-12-31
US20190257819A1 (en) 2019-08-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6581758B2 (ja) 幹細胞及びそのデータを獲得する方法
US20190105346A1 (en) Method of preparing injection solution
US20180031542A1 (en) Method for increasing number of stem cells in human or animal bodies
US20190350986A1 (en) Method of preparing solution containing stem cells
CN107847525A (zh) 用于抑制组蛋白去乙酰酶的组合物及方法
TW201819623A (zh) 用於降低膽紅素位準之組成物及方法
CN110099921A (zh) 体干细胞用于降低il-6水平的用途
TW201821089A (zh) 用於增加介白素-1受體拮抗物之位準的組成物及方法
TW201821088A (zh) 用於降低肝細胞生長因子之位準的組成物及方法
TW201907926A (zh) 體幹細胞用於增加蛋白質精胺酸甲基轉移酶(prmt)位準的用途

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20170621

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20170621

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20180424

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20180515

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20180815

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20181009

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20181112

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20190205

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20190426

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20190621

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20190806

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20190902

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 6581758

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250