JP6491486B2 - 8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体、8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオチド誘導体及びポリヌクレオチド誘導体ならびにプローブ - Google Patents
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Description
本願発明者らも、次式で示されるプリン塩基のC8位に二重結合又は三重結合を介して蛍光性分子を導入してなる化合物が周辺の極性環境の違いによって蛍光発光波長を大きく変化させることを報告した(特許文献1:特開2011−37796号公報)。
しかし、一般的に、プリン塩基のC8位に置換基を導入すると、置換基とDNAの糖−リン酸バックボーンとが衝突し、その上、ヌクレオシドの糖と塩基とが通常のanti配座からsyn配座へと反転しやすくなってしまうため、C8位に置換基を導入したヌクレオシドを用いた場合にはDNAの二重らせん構造が不安定化することが知られている。DNAの二重らせん構造が不安定化すると、その影響によっても周辺の極性環境が変化してしまうため、蛍光ヌクレオシドと対面塩基とのマッチ−ミスマッチの違いによる周辺極性環境の変化を正確に検出できない場合がある。
また、プリン塩基のC7位に置換基を導入した化合物は、DNAの二重らせん構造を不安定化しない点では優れているが、例えば、7−デアザアデニン塩基などは一般的にマッチすると考えられるチミン塩基の他に、シトシン塩基とも水素結合を形成する場合があり、塩基識別能の点で改良の余地がある。また、この化合物を用いた場合、DNAのメジャーグルーブに蛍光色素を導入することになるが、この位置に導入された蛍光色素は上下のGC塩基対により強く蛍光消光されてしまい、利用できるDNA配列に制限があった。
[1]下記式(I):
で示される化合物。
[2]前記R2が、下記式:
[3]前記Xが炭素−炭素三重結合(−C≡C−)である、[1]又は[2]に記載の化合物。
[4]前記R1が水素原子である、[1]〜[3]のいずれか一項に記載の化合物。
[5][1]〜[4]のいずれか一項に記載の化合物を含むプローブ。
[6]下記式(II):
で示される化合物。
[7]前記R1が水素原子である、[6]に記載の化合物。
[8]下記式(III):
で示される化合物。
[9]前記R2が、下記式:
[10]前記Xが炭素−炭素三重結合(−C≡C−)である、[8]又は[9]に記載の化合物。
[11]前記R1が水素原子である、[8]〜[10]のいずれか一項に記載の化合物。
[12]ポリヌクレオチドにおいて少なくとも1つのヌクレオチドが[8]〜[11]のいずれか一項に記載の化合物で置換されてなるポリヌクレオチド誘導体。
[13][12]に記載のポリヌクレオチド誘導体を含むプローブ。
[14]下記式(i):
で示される化合物。
[15]前記R1が水素原子である、[14]に記載の化合物。
[16]下記式(ii):
で示される化合物。
[17]前記R1が水素原子である、[16]に記載の化合物。
[18]下記式(iii):
で示される化合物。
[19]前記R1が水素原子である、[18]に記載の化合物。
[20]下記式(iv):
で示される化合物。
[21]前記R1が水素原子である、請求項20に記載の化合物。
本発明の好ましい態様によれば、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体は、周辺の極性環境等の微細環境の変化に伴って蛍光発光波長を変化させることができる。この性質を利用して、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体を、例えば生体内における極性環境等の微細環境の変化を検出するためのプローブとして用いることができる。本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体は、ヌクレオシド型の化合物であるため、蛍光物質のみの場合と比べて溶解性が良好であり、細胞膜透過性も向上すると考えられることから、生体内における局所的な極性環境等の微細環境の変化を検出するためのプローブとしての有用性は高いと考えられる。
また、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体は、ヌクレオシド型の化合物であるため、オリゴヌクレオチド鎖へ容易に導入することが可能である。本発明の好ましい態様によれば、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体を導入してなる本発明のポリヌクレオチド誘導体は、mRNAやタンパク質、更には細胞内における局所的な極性環境等の微細環境の調査用プローブとして利用可能である。また、本発明の好ましい態様によれば、本発明のポリヌクレオチド誘導体は、対面塩基のマッチ−ミスマッチの違いに伴って生じる極性環境等の微細環境の変化によって蛍光発光波長を変化させることから、対面塩基の種類を蛍光発光色で識別する遺伝子検出用のプローブとして利用可能である。本発明のポリヌクレオチド誘導体は、蛍光発光色の違いによって塩基の種類を判別することができるため、遺伝子検査用キットとして利用しやすいといった利点がある。
で示される化合物である。
本発明の好ましい態様によれば、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体は、周辺の極性環境等の微細環境の変化に伴って蛍光発光波長を大きく変化させることができる。例えば極性の高い環境下では長波長側に極大をもつブロードな発光が観測され、極性の低い環境下では短波長側に極大を持つ蛍光発光が観測される。
このように本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体は、周辺の極性環境等の微細環境の変化に伴って蛍光発光波長が大きく変化する特徴的な性質を有しており、周辺の微細環境の変化を蛍光発光色の違いによって識別することが可能である。この性質を利用して、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体を、例えば、生体内における極性環境等の微細環境の変化を検出するためのプローブとして用いることができる。
パラジウム試薬としては、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)、ビス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II)ジクロリドなどを用いることができる。
銅試薬としては、ヨウ化銅などを用いることができる。
塩基としては、トリエチルアミン、N,N−ジイソプロピルエチルアミンなどを用いることができる。
エチニル基を有する縮合環は、化合物(iii)に対して、等モルないしやや過剰で用いることが好ましく、その使用量は、化合物(iii)に対して1.0〜1.2(モル倍量)が好ましい。
パラジウム試薬及び銅試薬は、それぞれ、触媒量で用いればよく、化合物(iii)に対して0.01〜0.1(モル倍量)が好ましい。
塩基は、化合物(iii)に対して5〜10(モル倍量)の範囲で用いることが好ましい。
反応は溶媒中で行うことが好ましく、溶媒としては、テトラヒドロフラン、ジエチルエーテルなどのエーテル系溶媒、塩化メチレン、o−ジクロロベンゼンなどのハロゲン化炭化水素、N,N−ジメチルホルムアミド(DMF)などのアミド、ジメチルスルホキシドなどのスルホキシド、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族化合物などを用いることができる。
反応温度は、20〜100℃が好ましく、50〜80℃がより好ましい。また、反応時間は、1〜6時間が好ましく、2〜4時間がより好ましい。
反応終了後は、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物(Ia)を得ることができる。
パラジウム試薬としては、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)、ビス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II)ジクロリドなどを用いることができる。パラジウム試薬は、触媒量で用いればよく、化合物(iii)に対して0.01〜0.1(モル倍量)が好ましい。
塩基としては、炭酸カリウム、炭酸ナトリウムなどを用いることができる。
塩基は、化合物(iii)に対して5〜10(モル倍量)の範囲で用いることが好ましい。
ボロン酸又はボロン酸エステルを有する縮合環は、化合物(iii)に対して、等モルないしやや過剰で用いることが好ましく、その使用量は、化合物(iii)に対して1.0〜1.2(モル倍量)が好ましい。
反応は溶媒中で行うことが好ましく、溶媒としては、化合物(Ia)の製造方法において例示した溶媒と同じものを使用することができる。
反応温度は、50〜120℃が好ましく、80〜100℃がより好ましい。また、反応時間は、1〜6時間が好ましく、2〜4時間がより好ましい。
反応終了後は、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物(Ib)を得ることができる。
パラジウム試薬としては、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)、ビス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II)ジクロリドなどを用いることができる。パラジウム試薬は、触媒量で用いればよく、化合物(iii)に対して0.01〜0.1(モル倍量)が好ましい。
塩基としては、トリエチルアミン、炭酸カリウム、炭酸ナトリウムなどを用いることができる。
反応は溶媒中で行うことが好ましく、溶媒としては、化合物(Ia)の製造方法において例示した溶媒と同じものを使用することができる。
反応温度は、50〜120℃が好ましく、80〜100℃がより好ましい。また、反応時間は、1〜6時間が好ましく、2〜4時間がより好ましい。
反応終了後は、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物(Ic)を得ることができる。
<工程1>
まず、化合物aをアセトニトリルに懸濁させた。これに、水素化ナトリウムを加え、室温〜50℃の油浴中で30分〜1時間反応させる。その後、2−デオキシ−3,5−ジ−O−(p−トルオイル)−α−D−リボフラノシルクロリド又は3,5−ジ−O−(p−トルオイル)−α−D−リボフラノシルクロリドを加え、室温で15分〜30分反応させる。
水素化ナトリウムの使用量は、化合物aに対して1.0〜1.2(モル倍量)が好ましい。
2−デオキシ−3,5−ジ−O−(p−トルオイル)−α−D−リボフラノシルクロリド又は3,5−ジ−O−(p−トルオイル)−α−D−リボフラノシルクロリドは、化合物aに対して、等モルないしやや過剰で用いることが好ましく、その使用量は、化合物aに対して1.0〜1.2(モル倍量)が好ましい。
反応終了後は、必要に応じて、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物bを得ることができる。
次に、化合物bを0.5M ナトリウムメトキシド溶液に溶解させ、室温で30分〜1時間反応させる。反応終了後、希塩酸で反応溶液を中和させ、析出した塩をエタノールで吸引濾過し除去する。必要に応じて、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物cを得ることができる。
次に、化合物cをヒドラジン無水物に溶解させ、90〜100℃の油浴中で1〜2時間反応させる。溶媒を留去した後、得られた残渣にエタノールとラネーニッケルを加え、1〜2時間還流させる。反応終了後、ラネーニッケルを吸引濾過により除去し、濾液を減圧濃縮により溶媒を留去する。必要に応じて、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物(i)を得ることができる。
化合物(i)とイミダゾールを溶媒中に溶解させ、これにtert−ブチルジメチルシリルクロリドを加えて、室温で10〜20時間反応させる。反応終了後、必要に応じて、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物dを得ることができる。
イミダゾールの使用量は、化合物(i)に対して2.0〜3.0(モル倍量)であることが好ましい。
また、tert−ブチルジメチルシリルクロリドの使用量は、化合物(i)に対して2.0〜3.0(モル倍量)であることが好ましい。
溶媒としては、テトラヒドロフラン、ジエチルエーテルなどのエーテル系溶媒、塩化メチレン、o−ジクロロベンゼンなどのハロゲン化炭化水素、N,N−ジメチルホルムアミド(DMF)などのアミド、ジメチルスルホキシドなどのスルホキシド、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族化合物などを用いることができる。
次に、化合物dを溶媒中に溶解させ、これにN−ヨードスクシンイミドを加えて、室温で10〜20時間反応させる。必要に応じて、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物eを得ることができる。
N−ヨードスクシンイミドの使用量は、化合物dに対して1.0〜2.0(モル倍量)であることが好ましい。
溶媒としては、工程4で用いられる溶媒で例示したものと同じものを使用することができる。
次に、化合物eを溶媒中に溶解させ、テトラブチルアンモニウムフルオリドを加えて、室温で30分〜1時間反応させる。反応終了後、反応液に酢酸を加えて中和する。溶媒を留去し、必要に応じて、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物(iii)を得ることができる。
テトラブチルアンモニウムフルオリドの使用量は、化合物eに対して2.0〜2.5(モル倍量)であることが好ましい。
溶媒としては、工程4で用いられる溶媒で例示したものと同じものを使用することができる。
<工程7>
化合物(i)を溶媒中に溶解させ、これにN,N−ジ−n−ブチルホルムアミドジメチルアセタールを加えて、60〜80℃の油浴中で1〜2時間反応させる。反応終了後、溶媒を留去し、必要に応じて、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物fを得ることができる。
N,N−ジ−n−ブチルホルムアミドジメチルアセタールの使用量は、化合物(i)に対して1.0〜2.0(モル倍量)であることが好ましい。
溶媒としては、テトラヒドロフラン、ジエチルエーテルなどのエーテル系溶媒、塩化メチレン、o−ジクロロベンゼンなどのハロゲン化炭化水素、N,N−ジメチルホルムアミド(DMF)などのアミド、ジメチルスルホキシドなどのスルホキシド、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族化合物などを用いることができる。
化合物fを無水ピリジンに溶解させ、これに4,4’−ジメトキシトリチルクロリドを加えて、室温で1〜2時間反応させる。反応終了後、必要に応じて、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物gを得ることができる。
4,4’−ジメトキシトリチルクロリドの使用量は、化合物fに対して1.0〜1.2(モル倍量)であることが好ましい。
化合物gをアセトニトリルに溶解させ、これにトリエチルアミンと2−シアノジイソプロピルクロロホスホロアミジトを加えて、室温で30分〜1時間反応させる。反応終了後、必要に応じて、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、化合物(i)のアミダイト体である化合物(ii)を得ることができる。
本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオチド誘導体は、上述した本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体にリン酸がエステル結合してなる化合物であり、
下記式(III):
で示される化合物である。
sは1、2又は3であるが、1又は3が好ましく、ポリヌクレオチド誘導体に容易に導入できることから3が特に好ましい。
あるいは、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体に触媒量の4,4’−ジメトキシトリチルクロリドを加えて反応させて得られる化合物を、トリエチルアミンの存在下、更に2−シアノエチルジイソプロピルクロロホスホロアミダイトと反応させて、下記式(II):
で示されるアミダイト体を得、得られたアミダイト体を直接DNA自動合成機にかけることで、本発明のポリヌクレオチド誘導体を得ることができる。
<工程10>
化合物(I)を溶媒中に溶解させ、これにN,N−ジ−n−ブチルホルムアミドジメチルアセタールを加えて、60〜80℃の油浴中で1〜2時間反応させる。反応終了後、溶媒を留去し、必要に応じて、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物hを得ることができる。
N,N−ジ−n−ブチルホルムアミドジメチルアセタールの使用量は、化合物(I)に対して1.0〜2.0(モル倍量)であることが好ましい。
溶媒としては、テトラヒドロフラン、ジエチルエーテルなどのエーテル系溶媒、塩化メチレン、o−ジクロロベンゼンなどのハロゲン化炭化水素、N,N−ジメチルホルムアミド(DMF)などのアミド、ジメチルスルホキシドなどのスルホキシド、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族化合物などを用いることができる。
化合物hを無水ピリジンに溶解させ、これに4,4’−ジメトキシトリチルクロリドを加えて、室温で1〜2時間反応させる。反応終了後、必要に応じて、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して化合物iを得ることができる。
4,4’−ジメトキシトリチルクロリドの使用量は、化合物hに対して1.0〜1.2(モル倍量)であることが好ましい。
化合物iをアセトニトリルに溶解させ、これにトリエチルアミンと2−シアノジイソプロピルクロロホスホロアミジトを加えて、室温で30分〜1時間反応させる。反応終了後、必要に応じて、分液操作を行い、反応物を抽出した有機層を減圧濃縮する。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、化合物(I)のアミダイト体である化合物(II)を得ることができる。
本発明において、ポリヌクレオチド誘導体はオリゴヌクレオチド誘導体であってもよい。本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオチド誘導体の塩基数は特に制限されなく、例えば2から1000が好ましく、2から200がより好ましく、2から100が特に好ましい。
本発明の好ましい態様によれば、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体は、周辺の極性環境等の微細環境の変化に応じて蛍光発光色を変化させることができる。この性質を利用して、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体を、局所的な極性環境等の微細環境の変化を検出するためのプローブとして用いることができる。
本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体は、ヌクレオシド型の化合物であるため、蛍光物質のみの場合と比べて溶解性が良好であり、細胞膜透過性も向上すると考えられることから、それ自体、生体内等における局所的な極性環境等の微細環境の変化を検出するためのプローブとして利用可能である。
また、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体は、ヌクレオシド型の化合物であるため、ヌクレオチド誘導体を合成し、オリゴヌクレオチド鎖へ容易に導入することが可能である。本発明の好ましい態様によれば、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体又は8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオチド誘導体をオリゴヌクレオチド鎖へ導入してなるポリヌクレオチド誘導体は、mRNA、タンパク質又は細胞内における局所的な極性環境等の微細環境の調査用プローブとして利用することができる。
また、DNA又はRNAが二重鎖を形成すると、鎖中に含まれるリン酸基の影響により局所的な極性環境が変化することが知られているため、本発明のポリヌクレオチド誘導体を標的DNAやRNAを検出する試薬として利用することもできる。本発明の好ましい態様によれば、本発明のポリヌクレオチド誘導体は、対面塩基のマッチ−ミスマッチの違いに伴って生じる極性環境等の微細環境の変化により蛍光発光波長を変化させることができる。特に、本発明のポリヌクレオチド誘導体は、対面塩基がフルマッチのチミン塩基の場合に蛍光発光波長を変化させることから、対面のチミン塩基の識別に利用することができる。
上記のとおり、本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体、8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオチド誘導体又はポリヌクレオチド誘導体を用いることによって、生体内等における局所的な環境の変化を検出することができる。
下記スキームに従って8−アザ−3,7−ジデアザ−2’−デオキシアデノシン(化合物4)及びそのホスホロアミダイト体(化合物7)を合成し、DNA鎖に導入した。
化合物1(1.00 g, 6.5 mmol)をアセトニトリル(100 ml)中に懸濁させた。これに、水素化ナトリウム(339 mg, 8.5 mmol)を加え、50℃の油浴中で反応させた。1時間後、室温に冷却してから、2−デオキシ−3,5−ジ−O−(p−トルオイル)−α−D−リボフラノシルクロリド(2.66 g, 6.8 mmol)を加え、室温で30分反応させた。反応終了後、懸濁液を吸引濾過により濾塊を除去した。続いて、濾液を減圧濃縮により溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、酢酸エチルークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物2(1.77 g, 54 %)を得た。
1H-NMR (CDCl3, 400 MHz) δ 2.41 (s, 3H), 2.44 (s, 3H), 2.75 (m, 1H), 3.59 (m, 1H), 4.44 (dd, J = 6.4, 13.2 Hz, 1H), 4.60-4.65 (complex, 2H), 5.90 (m, 1H), 6.55 (m, 1H), 7.20 (m, 2H), 7.28 (m, 2H), 7.45 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 7.85 (m, 2H), 7.98 (m, 2H), 8.12 (s, 1H), 8.16 (d, J = 6.0 Hz, 1H); 13C-NMR (CDCl3, 100 MHz) δ 21.7, 21.7, 36.4, 63.8, 75.1, 82.9, 87.3, 104.3, 121.0, 126.0, 126.8, 129.1 (2C), 129.3 (2C), 129.7 (2C), 129.8 (2C), 134.4, 143.9 (2C), 143.9, 144.4, 145.3, 166.0, 166.2
化合物2(1.18 g, 2.3 mmol)を0.5M ナトリウムメトキシド溶液に溶解させ、室温で30分反応させた。反応終了後、希塩酸で反応溶液を中和させ、析出した塩をエタノールで吸引濾過させ除去した。濾液を減圧濃縮により溶媒を留去し、再度エタノールを加え、析出した塩を取り除く操作を合計3回行なった。残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物3(566 mg, 90 %)を得た。
1H-NMR (DMSO-d6, 400 MHz) δ 2.33 (ddd, J = 4.4, 6.4, 13.2 Hz, 1H), 2.87 (ddd, J = 6.0, 6.0, 13.2 Hz, 1H), 3.34 (m, 1H), 3.50 (m, 1H), 3.85 (m, 1H), 4.46 (m, 1H), 4.72 (dd, J = 5.2, 5.6 Hz, 1H), 5.32 (d, J = 4.4 Hz, 1H), 6.63 (dd, J = 6.0, 6.4 Hz, 1H), 7.91 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 8.21 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 8.41 (s, 1H); 13C-NMR (DMSO-d6, 100 MHz) δ 38.4, 62.1, 70.8, 86.4, 87.9, 105.5, 119.7, 133.7, 143.4, 143.6, 144.0
化合物3(800 mg, 3.0 mmol)をヒドラジン無水物(8 ml)に溶解させ、90℃の油浴中で2時間反応させた。溶媒を留去した後、得られた残渣をエタノール(50 ml)とラネーニッケルを加え、2時間還流させた。反応終了後、吸引濾過を行い、ラネーニッケルを除去した。続いて、濾液を減圧濃縮により溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルム(1%アンモニア水含有)の混合溶液で溶出し、化合物4(400 mg, 54 %)を得た。
1H-NMR (DMSO-d6, 400 MHz) δ 2.24 (ddd, J = 4.4, 6.8, 13.2 Hz, 1H), 2.83 (m, 1H), 3.34 (m, 1H), 3.49 (m, 1H), 3.81 (m, 1H), 4.42 (m, 1H), 4.72 (t, J = 5.6 Hz, 1H), 5.26 (d, J = 4.0 Hz, 1H), 6.40 (m, 1H), 6.73 (br, 2H), 6.83 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 7.68 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 8.21 (s, 1H); 13C-NMR (DMSO-d6, 100 MHz) δ 38.3, 62.4, 71.0, 85.6, 87.5, 94.6, 108.1, 133.8, 144.0, 144.4, 154.0
化合物4(50.0 mg, 0.20 mmol)をDMF(3 ml)に溶解させ、これにN,N−ジ−n−ブチルホルムアミドジメチルアセタール(0.14 ml, 0.60 mmol)を加えて、80℃の油浴中で1時間反応させた。反応後、溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物5(72.9 mg, 93 %)を得た。
1H-NMR (DMSO-d6, 400 MHz) δ 0.94 (m, 6H), 1.32 (m, 4H), 1.61 (m, 4H), 2.27 (ddd, J = 4.4, 6.4, 12.8 Hz, 1H), 2.86 (m, 1H), 3.30-3.41 (complex, 5H), 3.49 (m, 1H), 3.58 (m, 1H), 3.82 (m, 1H), 4.45 (m, 1H), 4.73 (t, J = 5.6 Hz, 1H), 5.28 (d, J = 4.0 Hz, 1H), 7.23 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 7.95 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 8.09 (s, 1H), 8.71 (s, 1H); 13C-NMR (DMSO-d6, 100 MHz) δ 13.6, 13.7, 19.2, 19.6, 28.7, 30.7, 38.3, 44.2, 50.6, 62.4, 71.0, 85.8, 87.5, 99.1, 115.5, 134.4, 143.4, 144.5, 155.5, 157.0
化合物5(70.0 mg, 0.18 mmol)を無水ピリジン(3 ml)に溶解させ、これに4,4’−ジメトキシトリチルクロリド(73.0 mg, 0.22 mmol)を加えて、室温で1時間反応させた。反応後、溶媒を留去し、得られた残渣に酢酸エチルを加え、炭酸水素ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回それぞれ分液操作を行い、有機層を硫酸ナトリウム(無水)で乾燥させた。硫酸ナトリウムをろ過後、溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物6(103 mg, 83 %)を得た。
1H-NMR (acetone-d6, 400 MHz) δ 0.98 (m, 6H), 1.41 (m, 4H), 1.69 (m, 4H), 2.43 (m, 1H), 3.07-3.17 (complex, 3H), 3.47 (t, J = 7.2 Hz, 2H), 3.66 (m, 2H), 3.72 (s, 3H), 3.74 (s, 3H), 4.09 (m, 1H), 4.46 (m, 1H), 4.77 (m, 1H), 6.52 (dd, J = 4.0, 6.8 Hz, 1H), 6.66-6.75 (complex, 4H), 7.11-7.38 (complex, 10H), 8.00 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 8.04 (s, 1H), 8.80 (s, 1H); 13C-NMR (acetone-d6, 100 MHz) δ 14.0, 14.2, 20.5, 20.9, 30.4, 32.0, 39.6, 45.6, 52.1, 55.4 (2C), 65.5, 72.6, 86.5, 86.9, 87.1, 100.0, 113.7 (4C), 117.5, 127.3, 128.4 (2C), 129.0 (2C), 130.8 (2C), 131.0 (2C), 135.2, 136.9, 137.0, 144.4, 145.8, 146.4, 156.5, 158.4, 159.4, 159.4
化合物6(60.0 mg, 8.7×10-2 mmol)をアセトニトリル(1 ml)に溶解させ、これにトリエリルアミン(0.5 ml)と2−シアノジイソプロピルクロロホスホロアミジト(100 μl,)を加えて、室温で30分反応させた。反応後、反応溶液に酢酸エチルを加え、炭酸水素ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回それぞれ分液操作を行い、有機層を硫酸ナトリウム(無水)で乾燥させた。硫酸ナトリウムをろ過後、溶媒を留去し、粗生成物である化合物7を得た。
得られた化合物7をアセトニトリル600μlに溶解し、DNA自動合成機(製造元:アプライドバイオシステムズ社、型番:3400 DNAシンセサイザー)を用いてDNA鎖へ導入し、オリゴヌクレオチドDNA(ODN1)を得た。
下記スキームに従って3−ヨード−8−アザ−3,7−ジデアザ−2’−デオキシアデノシン(化合物10)を合成した。
化合物4(170 mg, 0.68 mmol)とイミダゾール(462 mg, 6.8 mmol)をDMF(5 ml)に溶解させ、これにtert−ブチルジメチルシリルクロリド(512 mg, 3.4 mmol)を加えて、室温で一晩中反応させた。反応後、溶媒を留去し、得られた残渣に酢酸エチルを加え、塩化アンモニウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回それぞれ分液操作を行い、有機層を硫酸ナトリウム(無水)で乾燥させた。硫酸ナトリウムをろ過後、溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物8(245 mg, 75 %)を得た。
1H-NMR (CDCl3, 400 MHz) δ -0.02 (s, 3H), -0.01 (s, 3H), 0.13 (s, 6H), 0.86 (s, 9H), 0.93 (s, 9H), 2.29 (ddd, J = 3.2, 6.4, 13.2 Hz, 1H), 3.05 (m, 1H), 3.65 (complex, 2H), 3.99 (m, 1H), 4.66 (m, 1H), 5.08 (br, 2H), 6.38 (m, 1H), 6.91 (d, J = 6.4 Hz, 1H), 7.85 (d, J = 6.4 Hz, 1H), 7.93 (s, 1H); 13C-NMR (CDCl3, 100 MHz) δ -5.5 (2C), -4.7 (2C), 18.0, 18.4, 25.8 (3C), 25.9 (3C), 38.7, 63.5, 72.8, 86.9, 87.9, 97.0, 109.1, 132.3, 143.5, 144.9, 152.8
化合物8(230 mg, 0.48 mmol)をDMF(6 ml)に溶解させ、これにN−ヨードスクシンイミド(216 mg, 0.96 mmol)を加えて、室温で一晩中反応させた。反応後、溶媒を留去し、得られた残渣に酢酸エチルを加え、炭酸水素ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回それぞれ分液操作を行い、有機層を硫酸ナトリウム(無水)で乾燥させた。硫酸ナトリウムをろ過後、溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物9(272 mg, 94 %)を得た。
1H-NMR (CDCl3, 400 MHz) δ -0.05 (s, 3H), -0.02 (s, 3H), 0.14 (s, 6H), 0.85 (s, 9H), 0.94 (s, 9H), 2.32 (ddd, J = 4.0, 6.4, 13.2 Hz, 1H), 3.14 (ddd, J = 6.0, 6.0, 13.2 Hz, 1H), 3.58-3.66 (complex, 2H), 4.00 (m, 1H), 4.69 (m, 1H), 5.09 (br, 2H), 7.41 (dd, J = 6.0, 6.4 Hz, 1H), 7.84 (s, 1H), 8.13 (s, 1H); 13C-NMR (CDCl3, 100 MHz) δ -5.4 (2C), -4.7, -4.6, 18.0, 18.3, 25.8 (3C), 25.9 (3C), 38.5, 57.5, 63.6, 72.8, 84.8, 87.6, 111.3, 132.3, 143.8, 152.5, 152.8
化合物9(260 mg, 0.43 mmol)をTHF(10 ml)に溶解させ、テトラブチルアンモニウムフルオリド(1M, 0.90 ml, 0.90 mmol)を加えて、室温で1時間反応させた。反応後、反応液に酢酸(51 μl, 0.90 mmol)を加えて中和した。溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物10(136 mg, 84 %)を得た。
1H-NMR (DMSO-d6, 400 MHz) δ 2.29 (ddd, J = 4.4, 6.0, 13.2 Hz, 1H), 2.99 (ddd, J = 6.0, 6.0, 13.2 Hz, 1H), 3.27 (m, 1H), 3.44 (m, 1H), 3.80 (m, 1H), 4.44 (m, 1H), 4.68 (t, J = 5.6 Hz, 1H), 5.25 (d, J = 4.4 Hz, 1H), 6.96 (br, 2H), 7.27 (t, J = 6.0 Hz, 1H), 7.96 (s, 1H), 8.23 (s, 1H); 13C-NMR (DMSO-d6, 100 MHz) δ 38.1, 55.4, 62.4, 71.1, 84.2, 87.6, 110.6, 133.9, 143.0, 152.7, 154.0
下記スキームに従って3位にエチニルナフタレンを連結した8−アザ−3,7−ジデアザ−2’−デオキシアデノシン誘導体(化合物12)を合成した。
化合物10(61.1 mg, 0.16 mmol)、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)(9.4 mg, 0.81×10-2 mmol)、ヨウ化銅(1.5 mg, 0.79×10-2 mmol)および1−エチニルナフタレン(30.4 mg, 0.20 mmol)をDMF(5 ml)に溶解させた。これにさらにトリエチルアミン(0.3 ml)を加えて、60℃の油浴中で1時間反応させた。反応後、溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物12(62.0 mg, 95 %)を得た。
1H-NMR (DMSO-d6, 400 MHz) δ 2.33 (ddd, J = 4.0, 6.8, 13.2 Hz, 1H), 3.01 (m, 1H), 3.38 (m, 1H), 3.52 (m, 1H), 3.91 (m, 1H), 4.49 (m, 1H), 4.75 (m, 1H), 5.29 (d, J = 4.4 Hz, 1H), 7.42 (m, 1H), 7.43 (br, 2H), 7.54-7.72 (complex, 3H), 7.85-8.02 (complex, 3H), 8.18 (s, 1H), 8.39 (s, 1H), 8.47 (m, 1H); 13C-NMR (DMSO-d6, 100 MHz) δ 38.2, 62.4, 71.1, 85.5, 87.8, 89.9, 90.9, 91.5, 107.6, 120.5, 125.6, 125.8, 126.7, 127.4, 128.4, 128.4, 129.9, 132.0, 132.9, 134.6, 142.2, 150.0, 154.2
化合物12を、それぞれ、10μMの濃度で各種溶媒(メタノール、エタノール、2−プロパノール、1,4−ジオキサン、アセトニトリル、テトラヒドロフラン(THF)、N,N−ジメチルホルムアミド(DMF)、酢酸エチル、ジメチルスルホキシド(DMSO)、グリセロール、エチレングリコール)に溶解し、紫外可視分光光度計UV−2550(株式会社島津製作所)を用いてUVスペクトルを測定した。
化合物12を、10μMの濃度で各種溶媒(メタノール、エタノール、2−プロパノール、1,4−ジオキサン、アセトニトリル、テトラヒドロフラン(THF)、N,N−ジメチルホルムアミド(DMF)、酢酸エチル、ジメチルスルホキシド(DMSO)、グリセロール、エチレングリコール)に溶解し、蛍光光度計RF−5300PC(株式会社島津製作所)を用いて蛍光スペクトルを測定した。
化合物12を、10μMの濃度で各種溶媒(メタノール、エタノール、2−プロパノール、1,4−ジオキサン、アセトニトリル、テトラヒドロフラン(THF)、N,N−ジメチルホルムアミド(DMF)、酢酸エチル、ジメチルスルホキシド(DMSO)、グリセロール、エチレングリコール)に溶解し、蛍光光度計RF−5300PC(株式会社島津製作所)を用いて励起スペクトルを測定した。
下記スキームに従って、実施例3で得られた本発明の8−アザ−3,7−ジデアザアデニンヌクレオシド誘導体(化合物12)をアミダイト化し、DNA鎖に導入した。
化合物12(40.0 mg, 0.10 mmol)をDMF(2 ml)に溶解させ、これにN,N−ジ−n−ブチルホルムアミドジメチルアセタール(72 μl, 0.30 mmol)を加えて、80℃の油浴中で2時間反応させた。反応後、溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、メタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物13(42.0 mg, 78 %)を得た。
1H-NMR (DMSO-d6, 400 MHz) δ 0.95 (m, 6H), 1.34 (m, 4H), 1.62 (m, 4H), 2.36 (ddd, J = 4.0, 6.8, 13.2 Hz, 1H), 3.04 (m, 1H), 3.37 (m, 1H), 3.44-3.55 (complex, 3H), 3.62 (m, 2H), 3.92 (m, 1H), 4.51 (m, 1H), 4.75 (m, 1H), 5.30 (d, J = 4.4 Hz, 1H), 7.44 (m, 1H), 7.56-7.75 (complex, 3H), 7.91-8.03 (complex, 3H), 8.25 (s, 1H), 8.38 (s, 1H), 8.50 (m, 1H), 8.85 (s, 1H); 13C-NMR (DMSO-d6, 100 MHz) δ 13.6, 13.7, 19.2, 19.6, 28.7, 30.6, 38.2, 44.5, 50.9, 62.5, 71.1, 85.5, 87.9, 89.5, 93.0, 95.2, 115.2, 120.1, 125.7, 125.8, 126.8, 127.5, 128.4, 128.9, 130.4, 132.0, 132.9, 135.2, 142.5, 149.1, 156.3, 157.2
化合物13(42.0 mg, 7.8×10-2 mmol)を無水ピリジン(2 ml)に溶解させ、これに4,4’−ジメトキシトリチルクロリド(31.6 mg, 9.3×10-2 mmol)を加えて、室温で2時間反応させた。反応後、溶媒を留去し、得られた残渣に酢酸エチルを加え、炭酸水素ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回それぞれ分液操作を行い、有機層を硫酸ナトリウム(無水)で乾燥させた。硫酸ナトリウムをろ過後、溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムに吸着させ、エタノールークロロホルムの混合溶液で溶出し、化合物14(64.2 mg, 98 %)を得た。
1H-NMR (acetone-d6, 400 MHz) δ 1.00 (m, 6H), 1.43 (m, 4H), 1.73 (m, 4H), 2.51 (m, 1H), 3.16 (m, 1H), 3.20-3.28 (complex, 2H), 3.53 (t, J = 7.2 Hz, 2H), 3.68-3.72 (complex, 8H), 4.21 (m, 1H), 4.46 (d, J = 4.8 Hz, 1H), 4.86 (m, 1H), 6.70 (m, 4H), 7.09-7.41 (complex, 9H), 7.54 (dd, J = 4.0, 6.8 Hz, 1H), 7.56-7.73 (complex, 3H), 7.97-8.01 (complex, 3H), 8.16 (s, 1H), 8.42 (s, 1H), 8.74 (m, 1H), 8.92 (s, 1H); 13C-NMR (acetone-d6, 100 MHz) δ 14.0, 14.2, 20.4, 20.8, 30.0, 31.9, 39.7, 45.9, 52.4, 55.4 (2C), 65.6, 72.7, 86.5, 86.9, 87.1, 90.7, 93.7, 97.2, 113.7 (4C), 117.0, 122.0, 126.4, 127.2, 127.2, 127.5, 128.1, 128.3 (2C), 129.0 (2C), 129.2, 129.5, 130.8 (2C), 131.0 (2C), 131.3, 133.7, 134.3, 135.9, 136.9, 137.0, 143.9, 146.4, 150.0, 157.1, 158.5, 159.3, 159.4
化合物14(64.2 mg, 7.8×10-2 mmol)をアセトニトリル(1 ml)に溶解させ、これにトリエチルアミン(0.5 ml)と2−シアノジイソプロピルクロロホスホロアミジト(150 μl,)を加えて、室温で30分反応させた。反応後、反応溶液に酢酸エチルを加え、炭酸水素ナトリウム水溶液で2回、飽和食塩水で1回それぞれ分液操作を行い、有機層を硫酸ナトリウム(無水)で乾燥させた。硫酸ナトリウムをろ過後、溶媒を留去し、粗生成物である化合物15を得た。
得られた化合物15をアセトニトリル600μlに溶解し、DNA自動合成機(製造元:アプライドバイオシステムズ社、型番:3400 DNAシンセサイザー)を用いてDNA鎖へ導入し、オリゴヌクレオチドDNA(ODN2)を得た。
実施例5で得られたオリゴヌクレオチドDNAを、0.1Mの濃度でNaClを含む50mMリン酸バッファーに2.5μMの濃度になるように溶解した。これに相補的な配列を有するターゲットDNA(cODN2)を2.5μMの濃度になるように各種加え、紫外可視分光光度計UV−2550(株式会社島津製作所)にてUV吸収スペクトルを測定した。
実施例5で得られたオリゴヌクレオチドDNAを、0.1Mの濃度でNaClを含む50mMリン酸バッファーに2.5μMの濃度になるように溶解した。これに相補的な配列を有するターゲットDNA(cODN2)を2.5μMの濃度になるように各種加え、蛍光光度計RF−5300PC(株式会社島津製作所)にて蛍光スペクトルを測定した。
実施例5で得られたオリゴヌクレオチドDNAを、0.1Mの濃度でNaClを含む50mMリン酸バッファーに2.5μMの濃度になるように溶解した。これに相補的な配列を有するターゲットDNA(cODN2)を2.5μMの濃度になるように各種加え、蛍光光度計RF−5300PC(株式会社島津製作所)にて励起スペクトルを測定した。
Tm値(融解温度:melting temperature)は、特定の条件下における固有のDNA高次構造の熱安定性の指標である。実施例5で得られたオリゴヌクレオチドDNA(ODN2)に各種相補鎖(N=T,C,G,A)を加えたときのTm値及びその変化量を次の手順に従って測定し、DNA二重らせん構造の熱安定性を評価した。
濃度2.5μMに調製したDNA溶液を8連マイクロセルに移し、紫外可視分光光度計(製造元:島津製作所、型番:UV−2550)を用いて4〜90℃の範囲で測定を行い、中線法を用いてTm値を算出した。また、天然オリゴヌクレオチドDNAのTm値をもとに、変化量を算出した。結果を表3に示す。
Claims (21)
- 下記式(I):
で示される化合物。 - 前記R2が、下記式:
- 前記Xが炭素−炭素三重結合(−C≡C−)である、請求項1又は2に記載の化合物。
- 前記R1が水素原子である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の化合物。
- 請求項1〜4のいずれか一項に記載の化合物を含むプローブ。
- 下記式(II):
で示される化合物。 - 前記R1が水素原子である、請求項6に記載の化合物。
- 下記式(III):
で示される化合物。 - 前記R2が、下記式:
- 前記Xが炭素−炭素三重結合(−C≡C−)である、請求項8又は9に記載の化合物。
- 前記R1が水素原子である、請求項8〜10のいずれか一項に記載の化合物。
- ポリヌクレオチドにおいて少なくとも1つのヌクレオチドが請求項8〜11のいずれか一項に記載の化合物で置換されてなるポリヌクレオチド誘導体。
- 請求項12に記載のポリヌクレオチド誘導体を含むプローブ。
- 下記式(i):
で示される化合物。 - 前記R1が水素原子である、請求項14に記載の化合物。
- 下記式(ii):
で示される化合物。 - 前記R1が水素原子である、請求項16に記載の化合物。
- 下記式(iii):
で示される化合物。 - 前記R1が水素原子である、請求項18に記載の化合物。
- 下記式(iv):
で示される化合物。 - 前記R1が水素原子である、請求項20に記載の化合物。
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