JP6354100B2 - Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを哺乳動物の受精卵にエレクトロポレーションにより導入する方法 - Google Patents
Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを哺乳動物の受精卵にエレクトロポレーションにより導入する方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP6354100B2 JP6354100B2 JP2017500735A JP2017500735A JP6354100B2 JP 6354100 B2 JP6354100 B2 JP 6354100B2 JP 2017500735 A JP2017500735 A JP 2017500735A JP 2017500735 A JP2017500735 A JP 2017500735A JP 6354100 B2 JP6354100 B2 JP 6354100B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- voltage
- electrodes
- mrna
- per
- cas9
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 108020004999 messenger RNA Proteins 0.000 title claims description 223
- 108091033409 CRISPR Proteins 0.000 title claims description 222
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 141
- 238000004520 electroporation Methods 0.000 title claims description 117
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 title description 18
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 claims description 155
- 108020005004 Guide RNA Proteins 0.000 claims description 97
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 51
- 238000010362 genome editing Methods 0.000 claims description 44
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 39
- 108091028113 Trans-activating crRNA Proteins 0.000 claims description 35
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 claims description 24
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 claims description 21
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 claims description 19
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 claims description 19
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 claims description 19
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 18
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 14
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 12
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 claims description 11
- 101710163270 Nuclease Proteins 0.000 claims description 10
- 230000027455 binding Effects 0.000 claims description 6
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 claims description 6
- 230000002441 reversible effect Effects 0.000 claims description 6
- 102000029812 HNH nuclease Human genes 0.000 claims description 5
- 108060003760 HNH nuclease Proteins 0.000 claims description 5
- 229940046166 oligodeoxynucleotide Drugs 0.000 claims description 3
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 claims 3
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 47
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 42
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 30
- 230000034431 double-strand break repair via homologous recombination Effects 0.000 description 25
- 150000001413 amino acids Chemical group 0.000 description 23
- 101150099234 FGF10 gene Proteins 0.000 description 19
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 18
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 17
- 108091032973 (ribonucleotides)n+m Proteins 0.000 description 16
- 108700028369 Alleles Proteins 0.000 description 16
- 238000010354 CRISPR gene editing Methods 0.000 description 15
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 15
- 238000013518 transcription Methods 0.000 description 15
- 230000035897 transcription Effects 0.000 description 15
- 210000002459 blastocyst Anatomy 0.000 description 12
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 11
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 11
- 239000013598 vector Substances 0.000 description 11
- 230000005782 double-strand break Effects 0.000 description 9
- 210000003414 extremity Anatomy 0.000 description 9
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 9
- 210000001109 blastomere Anatomy 0.000 description 8
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 8
- 238000000520 microinjection Methods 0.000 description 8
- BASFCYQUMIYNBI-UHFFFAOYSA-N platinum Chemical compound [Pt] BASFCYQUMIYNBI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 230000008685 targeting Effects 0.000 description 8
- 210000004340 zona pellucida Anatomy 0.000 description 8
- 238000012300 Sequence Analysis Methods 0.000 description 7
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 7
- -1 crRNA Proteins 0.000 description 7
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 6
- 230000005856 abnormality Effects 0.000 description 6
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 6
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 6
- 238000007894 restriction fragment length polymorphism technique Methods 0.000 description 6
- 241000894007 species Species 0.000 description 6
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 6
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 5
- 239000012124 Opti-MEM Substances 0.000 description 5
- 241000191940 Staphylococcus Species 0.000 description 5
- 230000004720 fertilization Effects 0.000 description 5
- 210000003141 lower extremity Anatomy 0.000 description 5
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 5
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 5
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 5
- 230000004568 DNA-binding Effects 0.000 description 4
- 241000588650 Neisseria meningitidis Species 0.000 description 4
- 241000194020 Streptococcus thermophilus Species 0.000 description 4
- 241000589892 Treponema denticola Species 0.000 description 4
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 description 4
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 4
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 4
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 description 4
- 230000037361 pathway Effects 0.000 description 4
- 229910052697 platinum Inorganic materials 0.000 description 4
- 102000040650 (ribonucleotides)n+m Human genes 0.000 description 3
- 230000033616 DNA repair Effects 0.000 description 3
- 108091034117 Oligonucleotide Proteins 0.000 description 3
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 3
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 3
- 101150063416 add gene Proteins 0.000 description 3
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 3
- 238000012217 deletion Methods 0.000 description 3
- 230000037430 deletion Effects 0.000 description 3
- 230000006780 non-homologous end joining Effects 0.000 description 3
- 210000003101 oviduct Anatomy 0.000 description 3
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 3
- 108091079001 CRISPR RNA Proteins 0.000 description 2
- 108020004705 Codon Proteins 0.000 description 2
- 241000186216 Corynebacterium Species 0.000 description 2
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 description 2
- KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N Isopropanol Chemical compound CC(C)O KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 238000010459 TALEN Methods 0.000 description 2
- 241000204652 Thermotoga Species 0.000 description 2
- 108010043645 Transcription Activator-Like Effector Nucleases Proteins 0.000 description 2
- 241000589886 Treponema Species 0.000 description 2
- 241000589634 Xanthomonas Species 0.000 description 2
- 241000607734 Yersinia <bacteria> Species 0.000 description 2
- 108010017070 Zinc Finger Nucleases Proteins 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 2
- 210000000805 cytoplasm Anatomy 0.000 description 2
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 2
- 238000013461 design Methods 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 102000034287 fluorescent proteins Human genes 0.000 description 2
- 108091006047 fluorescent proteins Proteins 0.000 description 2
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 2
- 230000037431 insertion Effects 0.000 description 2
- 230000006517 limb development Effects 0.000 description 2
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 2
- 230000008722 morphological abnormality Effects 0.000 description 2
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 2
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 2
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- DAEPDZWVDSPTHF-UHFFFAOYSA-M sodium pyruvate Chemical compound [Na+].CC(=O)C([O-])=O DAEPDZWVDSPTHF-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- 230000002103 transcriptional effect Effects 0.000 description 2
- 210000001364 upper extremity Anatomy 0.000 description 2
- CYDQOEWLBCCFJZ-UHFFFAOYSA-N 4-(4-fluorophenyl)oxane-4-carboxylic acid Chemical compound C=1C=C(F)C=CC=1C1(C(=O)O)CCOCC1 CYDQOEWLBCCFJZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 4-amino-1-[(2r)-6-amino-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-amino-3-phenylpropanoyl]amino]-3-phenylpropanoyl]amino]-4-methylpentanoyl]amino]hexanoyl]piperidine-4-carboxylic acid Chemical compound C([C@H](C(=O)N[C@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H](CCCCN)C(=O)N1CCC(N)(CC1)C(O)=O)NC(=O)[C@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C1=CC=CC=C1 FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 0.000 description 1
- 241000589291 Acinetobacter Species 0.000 description 1
- 241000567147 Aeropyrum Species 0.000 description 1
- 241000207208 Aquifex Species 0.000 description 1
- 241000726110 Azoarcus Species 0.000 description 1
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 241000589876 Campylobacter Species 0.000 description 1
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 1
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 1
- 241000700198 Cavia Species 0.000 description 1
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 1
- 108091092236 Chimeric RNA Proteins 0.000 description 1
- 241000191366 Chlorobium Species 0.000 description 1
- 241000588881 Chromobacterium Species 0.000 description 1
- 241000725101 Clea Species 0.000 description 1
- 241000193403 Clostridium Species 0.000 description 1
- 241000699800 Cricetinae Species 0.000 description 1
- 102220605874 Cytosolic arginine sensor for mTORC1 subunit 2_D10A_mutation Human genes 0.000 description 1
- 241000605716 Desulfovibrio Species 0.000 description 1
- 102000002322 Egg Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010000912 Egg Proteins Proteins 0.000 description 1
- 241000283086 Equidae Species 0.000 description 1
- 241000588698 Erwinia Species 0.000 description 1
- 241000588722 Escherichia Species 0.000 description 1
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 1
- 241000605909 Fusobacterium Species 0.000 description 1
- 241001135750 Geobacter Species 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 239000012981 Hank's balanced salt solution Substances 0.000 description 1
- 108010003272 Hyaluronate lyase Proteins 0.000 description 1
- 102000001974 Hyaluronidases Human genes 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 description 1
- 229930182816 L-glutamine Natural products 0.000 description 1
- 241000589248 Legionella Species 0.000 description 1
- 208000007764 Legionnaires' Disease Diseases 0.000 description 1
- 206010024503 Limb reduction defect Diseases 0.000 description 1
- 241000186781 Listeria Species 0.000 description 1
- 241001074903 Methanobacteria Species 0.000 description 1
- 241000203353 Methanococcus Species 0.000 description 1
- 241000204675 Methanopyrus Species 0.000 description 1
- 241000205276 Methanosarcina Species 0.000 description 1
- 241000589345 Methylococcus Species 0.000 description 1
- 241000192041 Micrococcus Species 0.000 description 1
- 241000186359 Mycobacterium Species 0.000 description 1
- 241000204031 Mycoplasma Species 0.000 description 1
- 241000588653 Neisseria Species 0.000 description 1
- 241000605122 Nitrosomonas Species 0.000 description 1
- 108700026244 Open Reading Frames Proteins 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 description 1
- 241000606860 Pasteurella Species 0.000 description 1
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 1
- 241000607568 Photobacterium Species 0.000 description 1
- 241000204826 Picrophilus Species 0.000 description 1
- 241000605894 Porphyromonas Species 0.000 description 1
- 241000288906 Primates Species 0.000 description 1
- 108010076504 Protein Sorting Signals Proteins 0.000 description 1
- 241000205226 Pyrobaculum Species 0.000 description 1
- 241000205160 Pyrococcus Species 0.000 description 1
- 241000607142 Salmonella Species 0.000 description 1
- 241000193996 Streptococcus pyogenes Species 0.000 description 1
- 241000187747 Streptomyces Species 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- 241000205101 Sulfolobus Species 0.000 description 1
- 241000186339 Thermoanaerobacter Species 0.000 description 1
- 241000204667 Thermoplasma Species 0.000 description 1
- 241000589596 Thermus Species 0.000 description 1
- 241000605941 Wolinella Species 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 238000000246 agarose gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 229910052782 aluminium Inorganic materials 0.000 description 1
- XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N aluminium Chemical compound [Al] XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000000539 amino acid group Chemical group 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 1
- 229910002091 carbon monoxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000003197 catalytic effect Effects 0.000 description 1
- 230000005779 cell damage Effects 0.000 description 1
- 230000032823 cell division Effects 0.000 description 1
- 208000037887 cell injury Diseases 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- ZYWFEOZQIUMEGL-UHFFFAOYSA-N chloroform;3-methylbutan-1-ol;phenol Chemical compound ClC(Cl)Cl.CC(C)CCO.OC1=CC=CC=C1 ZYWFEOZQIUMEGL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002487 chromatin immunoprecipitation Methods 0.000 description 1
- 210000001771 cumulus cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 210000001671 embryonic stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 239000013604 expression vector Substances 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 210000003754 fetus Anatomy 0.000 description 1
- 210000003194 forelimb Anatomy 0.000 description 1
- 230000037433 frameshift Effects 0.000 description 1
- 108020001507 fusion proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000037865 fusion proteins Human genes 0.000 description 1
- 238000003197 gene knockdown Methods 0.000 description 1
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052737 gold Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010931 gold Substances 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 229960002773 hyaluronidase Drugs 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 210000004263 induced pluripotent stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000004962 mammalian cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 150000002739 metals Chemical class 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 210000000472 morula Anatomy 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 230000005937 nuclear translocation Effects 0.000 description 1
- 210000004940 nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 210000004681 ovum Anatomy 0.000 description 1
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 description 1
- 239000012474 protein marker Substances 0.000 description 1
- 238000001742 protein purification Methods 0.000 description 1
- 238000009790 rate-determining step (RDS) Methods 0.000 description 1
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 1
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 1
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 1
- 238000004904 shortening Methods 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 229940005581 sodium lactate Drugs 0.000 description 1
- 239000001540 sodium lactate Substances 0.000 description 1
- 235000011088 sodium lactate Nutrition 0.000 description 1
- 229940054269 sodium pyruvate Drugs 0.000 description 1
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 230000002194 synthesizing effect Effects 0.000 description 1
- 210000001550 testis Anatomy 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 108091006106 transcriptional activators Proteins 0.000 description 1
- 108091008023 transcriptional regulators Proteins 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 description 1
- 210000004291 uterus Anatomy 0.000 description 1
- 210000001325 yolk sac Anatomy 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
- C12N9/22—Ribonucleases RNAses, DNAses
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
- A01K67/027—New or modified breeds of vertebrates
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
- A01K67/027—New or modified breeds of vertebrates
- A01K67/0275—Genetically modified vertebrates, e.g. transgenic
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
- C12N15/90—Stable introduction of foreign DNA into chromosome
- C12N15/902—Stable introduction of foreign DNA into chromosome using homologous recombination
- C12N15/907—Stable introduction of foreign DNA into chromosome using homologous recombination in mammalian cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2217/00—Genetically modified animals
- A01K2217/07—Animals genetically altered by homologous recombination
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2227/00—Animals characterised by species
- A01K2227/10—Mammal
- A01K2227/105—Murine
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/111—General methods applicable to biologically active non-coding nucleic acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/113—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
- C12N15/1136—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing against growth factors, growth regulators, cytokines, lymphokines or hormones
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
- C12N2310/10—Type of nucleic acid
- C12N2310/20—Type of nucleic acid involving clustered regularly interspaced short palindromic repeats [CRISPRs]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2320/00—Applications; Uses
- C12N2320/30—Special therapeutic applications
- C12N2320/32—Special delivery means, e.g. tissue-specific
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Mycology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
本特許出願は、日本国特許出願第２０１５−０３１００６号について優先権を主張するものであり、ここに参照することによって、その全体が本明細書中へ組み込まれるものとする。
本発明は、Ｃａｓ９タンパク質をコードするｍＲＮＡ（Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ）を哺乳動物の受精卵にエレクトロポレーションにより導入する方法に関する。本発明は、また、上記方法を利用して、Ｃａｓ９を発現する哺乳動物の受精卵を製造すること、哺乳動物の受精卵でゲノム編集を行うこと、ゲノム編集された哺乳動物の受精卵を作製すること、または、遺伝子改変動物を作製することに関する。
本発明は、Ｃａｓ９タンパク質をコードするｍＲＮＡ（Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ）を哺乳動物の受精卵にエレクトロポレーションにより導入する方法に関する。本発明は、また、上記方法を利用して、Ｃａｓ９を発現する哺乳動物の受精卵を製造すること、哺乳動物の受精卵でゲノム編集を行うこと、ゲノム編集された哺乳動物の受精卵を作製すること、または、遺伝子改変動物を作製することに関する。
遺伝子改変動物は、現在、医学および生物学を含む様々な研究分野において、生物の基本的メカニズムの解明のために、あるいは、ヒトの疾患のモデルとして、使用されている。迅速な遺伝子改変動物の作製手段として、ＺＦＮ（ジンクフィンガーヌクレアーゼ（Zinc-Finger Nucleases））、ＴＡＬＥＮ（転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ（Transcription Activator-Like Effector Nucleases））およびＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系（群生性等間隔短回文反復関連システム（Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeat-Associated System））などの人工制限酵素を利用する系が、近年注目を集めている。これらの新しい技術はゲノム編集と呼ばれ、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）や人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）を利用せずに、幅広い生物のゲノムを改変することを可能にした。
ゲノム編集による遺伝子改変動物の作製は、通常、前核期胚に人工制限酵素の遺伝子をマイクロインジェクションすることにより行われる。現在はこの方法が主流であるが、細胞の損傷を防ぐには、熟練された手技を要する。さらに、マイクロインジェクションでは、専用の機械を使用して前核期胚に１つずつＤＮＡおよび／またはＲＮＡを注入しなければならず、多数の細胞を同時に処理する場合には不便である。
エレクトロポレーションは、目的の遺伝子を、細胞または組織に導入するのに有用な手段であり、多くの生物種で幅広く用いられてきた。マウスでは、この技法は、胎児および出生後の個体の脳、精巣および筋肉を含む様々な組織に使用されてきた。一方、受精卵への遺伝子導入は、主にマイクロインジェクションにより行われてきた。例えば、直鎖状ＤＮＡをゲノムに挿入するために前核へのマイクロインジェクションが使用され、所望の遺伝子をゲノムに挿入せず、一過性に発現させるために、環状プラスミドまたはｍＲＮＡのマイクロインジェクションが使用されてきた。最近になって確立されたマウスのゲノム編集も、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡ（ガイドＲＮＡ）、または、これらのＲＮＡを発現するプラスミドを受精卵の細胞質または前核に１つずつマイクロインジェクションすることにより実施されている。マイクロインジェクションは、かなりの時間と熟練された手技を必要とし、ゲノム編集による遺伝子改変マウスの作製において技術的律速段階となっている（非特許文献１）。
マウス受精卵に遺伝子を導入するのに、エレクトロポレーションは今まで殆ど使用されていない。例外としては、内在性遺伝子をノックダウンするために、タンパク質をコードしないｄｓＲＮＡをエレクトロポレーションによりマウス受精卵に導入したことが報告されている（非特許文献２）。この方法は、エレクトロポレーションの前に酸性タイロード液により透明帯を除去または薄化する処理を必要とするが、透明帯は着床前の胚にとって重要な構造であり、その酸性タイロードによる処理はマウス胚に対して毒性作用があることが知られているので、この方法は実用的ではない。また、この方法では１ｋｂ未満の短いＲＮＡが導入されたにすぎない。酸性タイロード処理を行わないエレクトロポレーションも報告されているが、５００ｂｐ程度のｄｓＤＮＡを、マウスの胚盤胞期胚に導入したにすぎない（非特許文献３）。
ごく最近、透明帯を処理していないラット受精卵へのエレクトロポレーションによるＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡの導入が報告された（非特許文献４）。この報告では、１０００〜２０００ｎｇ／μｌの高濃度のｍＲＮＡが使用されたにも拘わらず、ゲノム編集の効率は非常に低く、出生児の９％未満がゲノム編集されたに留まる。
Wang, H. et al., Cell 153, 910-918 (2013)
Grabarek, JB. et al., Genesis 32:269-276 (2002)
Soares, ML. et al., BMC Developmental Biology 2005, 5:28
Kaneko, T. et al., Scientific Reports 4, 6382 (2014)
Peng, H. et al., (2012) PLos ONE 7(8): e43748
Ohnishi Y. et al., Nucleic Acids Research, 2010, Vol.38, No.15 5141-5151
Mazari, E. et al., Development (2014) 141, 2349-2359
Yasue A., et al., Scientific Reports 4, 5705 (2014)
Yang, H. et al., Cell 154, 1370-1379 (2013)
Mashiko, D. et al., Scientific Reports 3, 3355 (2013)
本発明者らは、鋭意研究の末、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを哺乳動物の受精卵に導入するためのエレクトロポレーションの最適条件を決定し、本発明を完成した。
本発明は、哺乳動物の受精卵にＣａｓ９タンパク質をコードするｍＲＮＡ（Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ）を導入する方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む方法を提供する。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む方法を提供する。
本発明は、また、Ｃａｓ９を発現する哺乳動物の受精卵の製造方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む方法を提供する。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む方法を提供する。
本発明は、また、哺乳動物の受精卵でゲノム編集を行う方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を含む溶液並びに受精卵の混合物を置くこと、ここで、さらなる核酸分子は、ｃｒＲＮＡ（CRISPR RNA）およびｔｒａｃｒＲＮＡ（trans-activating CRISPR RNA）の組合せまたはｇＲＮＡである、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む方法を提供する。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を含む溶液並びに受精卵の混合物を置くこと、ここで、さらなる核酸分子は、ｃｒＲＮＡ（CRISPR RNA）およびｔｒａｃｒＲＮＡ（trans-activating CRISPR RNA）の組合せまたはｇＲＮＡである、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む方法を提供する。
本発明は、また、ゲノム編集された哺乳動物の受精卵の作製方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を含む溶液並びに受精卵の混合物を置くこと、ここで、さらなる核酸分子は、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組合せまたはｇＲＮＡである、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む方法を提供する。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を含む溶液並びに受精卵の混合物を置くこと、ここで、さらなる核酸分子は、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組合せまたはｇＲＮＡである、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む方法を提供する。
本発明は、また、上記の方法で得られる受精卵をレシピエント動物に移植することを含む、遺伝子改変動物の作製方法を提供する。
本発明により、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡをエレクトロポレーションにより哺乳動物の受精卵に導入することができる。
特に具体的な定めのない限り、本明細書で使用される用語は、有機化学、医学、薬学、発生生物学、細胞生物学、分子生物学、微生物学等の分野における当業者に一般的に理解されるとおりの意味を有する。以下にいくつかの本明細書で使用される用語についての定義を記載するが、これらの定義は、本明細書において、一般的な理解に優先する。
本明細書では、数値が「約」の用語を伴う場合、その値の±１０％の範囲を含むことを意図する。数値の範囲は、両端点の間の全ての数値および両端点の数値を含む。範囲に関する「約」は、その範囲の両端点に適用される。従って、例えば、「約２０〜３０」は、「２０±１０％〜３０±１０％」を含むものとする。
エレクトロポレーション
本発明で使用するエレクトロポレーターは、電気パルスの発生装置を意味し、本発明の段階（ａ）および（ｂ）を実施できるものであればどのようなものでもよい。エレクトロポレーターは、例えば、BioRad社、BTX社、BEX社、Intracel社、Eppendorf社などから購入できる。
本発明で使用するエレクトロポレーターは、電気パルスの発生装置を意味し、本発明の段階（ａ）および（ｂ）を実施できるものであればどのようなものでもよい。エレクトロポレーターは、例えば、BioRad社、BTX社、BEX社、Intracel社、Eppendorf社などから購入できる。
本発明において、「エレクトロポレーション用電極」は、従来のエレクトロポレーション法において使用されるあらゆる電極を含む。例えば、白金、金、アルミニウムなどの金属からなる電極が挙げられる。通常、２本の電極が約０.２５ｍｍないし約１０ｍｍ、例えば約０.５ｍｍないし約４ｍｍまたは約１ｍｍないし約２ｍｍのギャップをあけて配置され、そのギャップにＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くことができる。電極は、混合物を入れるための容器と組み合わせたキュベット電極であってもよい。エレクトロポレーション用電極は、例えば、BioRad社、BTX社、BEX社、Intracel社、Eppendorf社などから購入できる。
本発明の段階（ａ）において、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液は、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを、例えば、約３０ｎｇ／μｌないし約２０００ｎｇ／μｌ、約５０ｎｇ／μｌないし約１０００ｎｇ／μｌ、約５０ｎｇ／μｌないし約５００ｎｇ／μｌ、約５０ｎｇ／μｌないし約３００ｎｇ／μｌ、約５０ｎｇ／μｌないし約２００ｎｇ／μｌ、約２００ｎｇ／μｌないし約１０００ｎｇ／μｌ、約２００ｎｇ／μｌないし約５００ｎｇ／μｌまたは約２００ｎｇ／μｌないし約３００ｎｇ／μｌの濃度で含む。本発明のある実施態様では、溶液は約２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む。一定の電気条件下では、溶液中のＣａｓ９ ｍＲＮＡの濃度が高いほど、ｍＲＮＡ導入量は多くなる。
本発明の段階（ａ）において、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液は、エレクトロポレーションに使用できる任意の溶液にＣａｓ９ ｍＲＮＡを溶解したものである。エレクトロポレーションに使用できる溶液は、エレクトロポレーションを実施する間に受精卵が生存できる培地またはバッファーであればよく、例えば、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ、ＰＢＳ、ＨＢＳ、ＨＢＳＳ、Ｈａｎｋｓ、ＨＣＭＦなどの培地またはバッファーが含まれる。好ましくは、溶液は血清を含まない。
本発明の段階（ａ）において、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物をエレクトロポレーション用電極の間に置く。Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵を予め混合したものを電極間に添加しても、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵を別々に電極間に添加してもよい。混合物は、上記電極のギャップを満たす体積で、例えば、約１μｌないし約５０μｌ、好ましくは約１.５μｌないし約１５μｌ、より好ましくは、約２μｌないし約１０μｌの体積で使用する。本発明のある実施態様では、混合物の体積は約５μｌである。
本発明の段階（ｂ）では、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度によって規定される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成するように、電極間に電圧をかける。最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）は、下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される。
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
本発明の段階（ｂ）において、ｍＲＮＡ導入効率は、電極間にかける電圧と通電時間に依存する。ｍＲＮＡ導入効率は、通電時間がｔ（ｍｓｅｃ）であり、電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される。但し、電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖの場合は式（ＩＩ）を用いてｍＲＮＡ導入効率を算出し、電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖの場合は式（ＩＩＩ）を用いてｍＲＮＡ導入効率を算出し、電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖの場合は式（ＩＶ）を用いてｍＲＮＡ導入効率を算出する。
本発明の段階（ｂ）において、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、段階（ａ）の溶液のＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上であればよい。例えば、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が５０ｎｇ／μｌのとき、Ｒｍｉｎは１７.６であり、Ｒは１７.６以上であればよく、例えば２５以上、好ましくは２７.１以上である。例えば、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が２００ｎｇ／μｌのとき、Ｒｍｉｎは４.４１であり、Ｒは４.４１以上であればよく、好ましくは７.９以上であり、より好ましくは１４.７以上であり、最も好ましくは２７.１以上である。
例えば、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が５０ｎｇ／μｌのとき、Ｒｍｉｎは１７.６である。このＲｍｉｎ以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成するには、例えば、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖの電圧を約３１ｍｓｅｃ以上、約３０Ｖの電圧を約１７ｍｓｅｃ以上、約４０Ｖの電圧を約１１ｍｓｅｃ以上、約５０Ｖの電圧を約７.５ｍｓｅｃ以上かける。好ましくは、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖの電圧を約３６ｍｓｅｃ以上、約３０Ｖの電圧を約２１ｍｓｅｃ以上、約４０Ｖの電圧を約１４ｍｓｅｃ以上、約５０Ｖの電圧を約１１ｍｓｅｃ以上かける。特に好ましくは、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖの電圧を約３７ｍｓｅｃ以上、約３０Ｖの電圧を約２２ｍｓｅｃ以上、約４０Ｖの電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、約５０Ｖの電圧を約１２ｍｓｅｃ以上かける。ある実施態様では、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖの電圧を約２１ｍｓｅｃかける。
例えば、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が２００ｎｇ／μｌのとき、Ｒｍｉｎは４.４１である。このＲｍｉｎ以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成するには、例えば、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖの電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、約３０Ｖの電圧を約５ｍｓｅｃ以上、約４０Ｖの電圧を約３.８ｍｓｅｃ以上、約５０Ｖの電圧を約１.６ｍｓｅｃ以上かける。好ましくは、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖの電圧を約２１ｍｓｅｃ以上、約３０Ｖの電圧を約９ｍｓｅｃ以上、約４０Ｖの電圧を約６ｍｓｅｃ以上、約５０Ｖの電圧を約３ｍｓｅｃ以上かける。より好ましくは、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖの電圧を約２９ｍｓｅｃ以上、約３０Ｖの電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、約４０Ｖの電圧を約１０ｍｓｅｃ以上、約５０Ｖの電圧を約６ｍｓｅｃ以上かける。特に好ましくは、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖの電圧を約３７ｍｓｅｃ以上、約３０Ｖの電圧を約２２ｍｓｅｃ以上、約４０Ｖの電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、約５０Ｖの電圧を約１２ｍｓｅｃ以上かける。ある実施態様では、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖの電圧を約２１ｍｓｅｃかける。
本発明の段階（ｂ）において、ｍＲＮＡ導入効率は電圧および通電時間に伴って増加するが、電圧が高すぎると、あるいは、通電時間が長すぎると、受精卵の生存率が低下する傾向がある。本発明の段階（ｂ）において、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖ、好ましくは約２０Ｖないし約４０Ｖ、さらに好ましくは約２５Ｖないし約３５Ｖ、最も好ましくは約３０Ｖである。通電時間は、電圧と通電時間の積の値が、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下、さらに好ましくは約８１０ｍｓｅｃ以下、より好ましくは約６３０Ｖｍｓｅｃ以下であるように設定する。
段階（ｂ）における電圧は一定であっても、変動してもよい。本発明のある実施態様では、段階（ｂ）における電圧は一定である。その場合、エレクトロポレーターとして、従来のスクエアパルス式エレクトロポレーターを使用できる。
本発明のある実施態様では、電圧を複数のパルスに分けてかける。例えば、電圧を２回ないし１５回、３回ないし１１回、５回ないし９回、または、６回ないし８回のパルスに分けてかける。本発明のある実施態様では、電圧を７回のパルスに分けてかける。各パルスの時間は、例えば、約０.０１ｍｓｅｃ〜約３３ｍｓｅｃ、約０.５ｍｓｅｃ〜約１５ｍｓｅｃ、約１ｍｓｅｃ〜約１０ｍｓｅｃ、約２ｍｓｅｃないし約５ｍｓｅｃ、例えば、約３ｍｓｅｃである。各パルス間の間隔は、例えば、約０.５ないし約５００ｍｓｅｃ、好ましくは約５ないし約２５０ｍｓｅｃ、より好ましくは約１０ないし約１５０ｍｓｅｃ、さらに好ましくは約８０ないし１２０ｍｓｅｃである。本発明のある実施態様では、パルス間の間隔は約９７ｍｓｅｃである。
本発明において、電圧を複数のパルスに分けてかける場合、各パルスの大きさは同じであっても、異なっていてもよい。
本発明において、電圧を複数のパルスに分けてかける場合、各パルスの大きさは同じであっても、異なっていてもよい。
本発明において、電圧を複数のパルスに分けてかける場合、各パルスの方向は同じであってもよく、少なくとも１つのパルスの方向が他のパルスと逆であってもよい。また、両方向のパルスを用いる場合、各方向のパルスはいかなる順序であってもよい。例えば、一方向のパルスを連続してかけた後に逆方向のパルスをかけてもよく、各方向のパルスを交互にかけてもよく、各方向のパルスをランダムにかけてもよい。
本発明において、「逆方向のパルス」は、２本のエレクトロポレーション用電極の一方を陽極とし、他方を陰極とするパルスに対して、陽極と陰極を入れ替えた場合のパルスを意味する。同様に、「逆方向の電圧」は、２本のエレクトロポレーション用電極の一方を陽極とし、他方を陰極とする電圧に対して、陽極と陰極を入れ替えた場合の電圧を意味する。
本発明において、段階（ｂ）の代わりに、下記の段階（ｃ）および（ｄ）を実施してもよい。
（ｃ）下式（Ｂ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ｂ） Ｒｍｉｎ＝４４１／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下、好ましくは５４０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
（ｄ）式（Ｂ）により算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に段階（ｃ）とは逆方向の電圧をかけること、ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下、好ましくは５４０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
の各段階を含み、
段階（ｃ）および（ｄ）で電圧を２回以上のパルスに分けてかける場合、一方向のパルスを連続してかけた後に逆方向のパルスをかけてもよく、各方向のパルスを交互にかけてもよく、各方向のパルスをランダムにかけてもよい。
段階（ｃ）および（ｄ）では、段階（ｂ）に準じて、電圧および通電時間等の条件を決定し得る。
（ｃ）下式（Ｂ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ｂ） Ｒｍｉｎ＝４４１／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下、好ましくは５４０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
（ｄ）式（Ｂ）により算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に段階（ｃ）とは逆方向の電圧をかけること、ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下、好ましくは５４０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
の各段階を含み、
段階（ｃ）および（ｄ）で電圧を２回以上のパルスに分けてかける場合、一方向のパルスを連続してかけた後に逆方向のパルスをかけてもよく、各方向のパルスを交互にかけてもよく、各方向のパルスをランダムにかけてもよい。
段階（ｃ）および（ｄ）では、段階（ｂ）に準じて、電圧および通電時間等の条件を決定し得る。
ゲノム編集
本発明において、「ゲノム編集」は、人工制限酵素を使用して哺乳動物細胞の１つまたはそれ以上の遺伝子を改変することを意味する。ゲノム編集により、対立遺伝子の一方または両方が改変される。本発明では、細菌由来のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系を使用してゲノム編集を行う。ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系の詳細は、例えば、Wang, H. et al., Cell, 153, 910-918 (2013) および米国特許第８６９７３５９号に記載されており、これらの文献を引用により本明細書の一部とする。
本発明において、「ゲノム編集」は、人工制限酵素を使用して哺乳動物細胞の１つまたはそれ以上の遺伝子を改変することを意味する。ゲノム編集により、対立遺伝子の一方または両方が改変される。本発明では、細菌由来のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系を使用してゲノム編集を行う。ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系の詳細は、例えば、Wang, H. et al., Cell, 153, 910-918 (2013) および米国特許第８６９７３５９号に記載されており、これらの文献を引用により本明細書の一部とする。
一般的に、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系によるゲノム編集には、エンドヌクレアーゼのＣａｓ９タンパク質およびｇＲＮＡが必要である。ｇＲＮＡは、細菌のｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを組み合わせて１つのキメラＲＮＡにしたものである。従って、ｇＲＮＡは、ｃｒＲＮＡの標的配列特異性と、Ｃａｓ９タンパク質の足場となるｔｒａｃｒＲＮＡの特性を併せ持つ。ｇＲＮＡとＣａｓ９が細胞内で発現されると、ゲノム内の標的配列が永続的に改変され得る。
ｇＲＮＡ／Ｃａｓ９タンパク質複合体は、ｇＲＮＡ配列とゲノムＤＮＡ内の標的配列との相補的塩基結合により、標的配列にリクルートされる。ｇＲＮＡ／Ｃａｓ９タンパク質複合体が標的配列に結合するためには、ゲノム内の標的配列は、標的配列の直後にＰＡＭ（プロトスペーサー隣接モチーフ（Protospacer Adjacent Motif））配列を含まなければならない。ｇＲＮＡ／Ｃａｓ９タンパク質複合体の標的配列への結合は、Ｃａｓ９タンパク質をゲノム内の標的配列に局在化させ、Ｃａｓ９タンパク質はＤＮＡの両方の鎖を切断し、ＤＳＢ（二本鎖切断（Double Strand Break））を引き起こす。ＤＳＢは、ＮＨＥＪ（非相同末端結合（Non-Homologous End Joining））ＤＮＡ修復経路、または、ＨＤＲ（相同組換え修復）経路により修復され得る。ＮＨＥＪ修復経路は、ＤＳＢの部位にしばしば塩基の挿入／欠損を与え、それはフレームシフトおよび／または停止コドンをもたらし、標的遺伝子のオープンリーディングフレームを破壊し得る。ＨＤＲ経路は、ＤＳＢを修復するために、修復鋳型の存在を必要とする。ＨＤＲでは、修復鋳型の配列が、切断された標的配列に忠実に複写される。修復鋳型とＨＤＲを利用して、標的遺伝子に所望の変異を導入できる。
Ｃａｓ９タンパク質
野生型Ｃａｓ９タンパク質は、ＲｕｖＣおよびＨＮＨの２つの機能的ヌクレアーゼドメインを有し、これらは各々、ＤＮＡの二本鎖の異なる鎖を切断する。これらのドメインの両方が活性である場合、Ｃａｓ９タンパク質はゲノムＤＮＡにＤＳＢ（二本鎖切断）を引き起こす。ＲｕｖＣまたはＨＮＨのいずれかの触媒活性のみを有するＣａｓ９タンパク質も開発されている。この場合、Ｃａｓ９タンパク質は標的ＤＮＡのいずれかの鎖のみを切断する。例えば、スタフィロコッカス・ピオゲニス（Streptococcus pyogenes）由来のＣａｓ９タンパク質のＲｕｖＣドメインは、Ｄ１０Ａ変異により不活性化され、ＨＮＨドメインはＨ８４０Ａ変異により不活性化される。
野生型Ｃａｓ９タンパク質は、ＲｕｖＣおよびＨＮＨの２つの機能的ヌクレアーゼドメインを有し、これらは各々、ＤＮＡの二本鎖の異なる鎖を切断する。これらのドメインの両方が活性である場合、Ｃａｓ９タンパク質はゲノムＤＮＡにＤＳＢ（二本鎖切断）を引き起こす。ＲｕｖＣまたはＨＮＨのいずれかの触媒活性のみを有するＣａｓ９タンパク質も開発されている。この場合、Ｃａｓ９タンパク質は標的ＤＮＡのいずれかの鎖のみを切断する。例えば、スタフィロコッカス・ピオゲニス（Streptococcus pyogenes）由来のＣａｓ９タンパク質のＲｕｖＣドメインは、Ｄ１０Ａ変異により不活性化され、ＨＮＨドメインはＨ８４０Ａ変異により不活性化される。
Ｃａｓ９タンパク質のＤＮＡ結合活性は、そのヌクレアーゼ活性から独立している。ヌクレアーゼ活性を担うＲｕｖＣおよびＨＮＨが不活性であり、Ｃａｓ９タンパク質がヌクレアーゼ活性を全く持たない場合でも、Ｃａｓ９タンパク質はｇＲＮＡ依存的にＤＮＡに結合する能力を保持する。従って、ヌクレアーゼとして不活性なＣａｓ９タンパク質（ｄＣａｓ９タンパク質）を、分子生物学的ツールとして利用することができる。例えば、ｇＲＮＡを利用してｄＣａｓ９タンパク質を既知の転写調節ドメインに結合させることにより、遺伝子の発現を活性化または抑制する転写レギュレーターとして利用することができる。例えば、転写活性化因子と融合させたｄＣａｓ９タンパク質は、標的配列の転写を活性化できる。逆に、ｄＣａｓ９タンパク質のみが標的配列に結合すると、転写を抑制し得る。遺伝子のプロモーターに近い領域にあるｇＲＮＡ標的配列を選択することにより、様々な遺伝子の転写を調節することができる。あるいは、クロマチン免疫沈降などにおいて、エピトープタグに融合させたｄＣａｓ９タンパク質を、任意のゲノムＤＮＡ配列を標的とするｇＲＮＡと共に使用することにより、ゲノムＤＮＡを精製できる。ＧＦＰ、ｍｃｈｅｒｒｙなどの蛍光タンパク質マーカーと融合させたｄＣａｓ９タンパク質を、任意のゲノムＤＮＡ配列を標的とするｇＲＮＡと組み合わせて、生きている細胞で検出可能なＤＮＡ標識として使用することもできる。
本発明において、「Ｃａｓ９タンパク質」は、ｇＲＮＡ依存的にＤＮＡに結合する能力を有するタンパク質を意味し、ＲｕｖＣおよびＨＮＨヌクレアーゼ活性の両方を有するものも、ＲｕｖＣおよびＨＮＨヌクレアーゼ活性のいずれかまたは両方を有さないものも含まれる。Ｃａｓ９タンパク質のＤＮＡ結合活性およびヌクレアーゼ活性は、例えば、引用により本明細書の一部とするSamuel H. Sternberg et al., Nature 507, 62-67 (2014) に記載の方法により測定できる。
本発明において、「Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ」は、Ｃａｓ９タンパク質をコードするｍＲＮＡを意味し、Ｃａｓ９タンパク質のアミノ酸配列に翻訳され得るヌクレオチド配列であれば、どのようなヌクレオチド配列を有してもよい。
本発明のある実施態様では、Ｃａｓ９タンパク質は、ＣＲＩＳＰＲ系を有する細菌に由来するものである。ＣＲＩＳＰＲ系を有することが知られている細菌には、アエロピュルム属（Aeropyrum）、ピュロバクルム属（Pyrobaculum）、スルフォロブス属（Sulfolobus）、アルカエオグロブス属（Archaeoglobus）、ハロアーキュラ属（Halocarcula）、メタノバクテリウム属（Methanobacteriumn）、メタノコックス属（Methanococcus）、メタノサルキナ属（Methanosarcina）、メタノピュルス属（Methanopyrus）、ピュロコックス属（Pyrococcus）、ピクロフィルス属（Picrophilus）、テルモプラズマ属（Thermoplasma）、コリネバクテリウム属（Corynebacterium）、マイコバクテリウム属（Mycobacterium）、ストレプトマイセス属（Streptomyces）、アクウィフェクス属（Aquifex）、ポルフィロモナス属（Porphyromonas）、クロロビウム属（Chlorobium）、サーマス属（Thermus）、バシラス属（Bacillus）、リステリア属（Listeria）、スタフィロコッカス属（Staphylococcus）、クロストリジウム属（Clostridium）、サーモアナエロバクター属（Thermoanaerobacter）、マイコプラズマ属（Mycoplasma）、フソバクテリウム属（Fusobacterium）、アゾアルカス属（Azoarcus）、クロモバクテリウム属（Chromobacterium）、ナイセリア属（Neisseria）、ニトロソモナス属（Nitrosomonas）、デスルフォビブリオ属（Desulfovibrio）、ジオバクター属（Geobacter）、マイクロコッカス属（Micrococcus）、カンピロバクター属（Campylobacter）、ウォリネラ属（Wolinella）、アシネトバクター属（Acinetobacter）、エルウィニア属（Erwinia）、エスケリキア属（Escherichia）、レジオネラ属（Legionella）、メチロコッカス属（Methylococcus）、パスツレラ属（Pasteurella）、フォトバクテリウム属（Photobacterium）、サルモネラ属（Salmonella）、ザントモナス属（Xanthomonas）、エルシニア属（Yersinia）、トレポネーマ属（Treponema）およびテルモトガ属（Thermotoga）などに属する細菌が含まれる。例えば、Ｃａｓ９タンパク質は、スタフィロコッカス・ピオゲニス、ナイセリア・メニンギティディス（Neisseria meningitidis）、ストレプトコッカス・サーモフィラス（Streptococcus thermophilus）、トレポネーマ・デンティコラ（Treponema denticola）などの細菌に由来するものである。
本発明のある実施態様では、Ｃａｓ９タンパク質は、他のタンパク質またはペプチドとの融合タンパク質であり得る。他のタンパク質またはペプチドには、例えば、蛍光タンパク質、転写調節因子、エピトープタグ、タンパク質精製用タグ、核移行シグナルペプチドなどが含まれる。
本発明のある実施態様では、Ｃａｓ９タンパク質は、図１に示す配列番号１ないし４のいずれかのアミノ酸配列に約８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、Ｃａｓ９タンパク質のｇＲＮＡ依存的ＤＮＡ結合活性を有し、場合によりＲｕｖＣヌクレアーゼ活性およびＨＮＨヌクレアーゼ活性のいずれかまたは両方を有するタンパク質であり得る。例えば、Ｃａｓ９タンパク質は、配列番号１ないし４のいずれかのアミノ酸配列を含むか、または、配列番号１ないし４のいずれかのアミノ酸配列からなる。あるいは、Ｃａｓ９タンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列に約８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、Ｃａｓ９タンパク質のｇＲＮＡ依存的ＤＮＡ結合活性を有し、場合によりＲｕｖＣおよび／またはＨＮＨヌクレアーゼ活性を有するタンパク質であり得る。例えば、Ｃａｓ９タンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列を含むか、または、配列番号１のアミノ酸配列からなる。配列番号１ないし４は、各々、スタフィロコッカス・ピオゲニス、ナイセリア・メニンギティディス、ストレプトコッカス・サーモフィラス、トレポネーマ・デンティコラ由来のＣａｓ９タンパク質のアミノ酸配列である。
本発明のある実施態様では、Ｃａｓ９タンパク質は、配列番号１ないし４のいずれかのアミノ酸配列に、約８０％以上、例えば約８５％以上、好ましくは約９０％以上、より好ましくは約９５％以上、より好ましくは約９７％以上、より好ましくは約９８％以上、より好ましくは約９９％以上、より好ましくは約９９.５％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む。アミノ酸配列同一性は、配列を最適にアライメントした場合に、２つの配列において同一であるアミノ酸残基の割合を意味する。従って、例えば、９０％アミノ酸配列同一性とは、最適にアライメントされた２つのアミノ酸配列において９０％のアミノ酸が同一であることを意味する。アミノ酸配列のアライメントおよび同一性の計算の方法は当業者に周知であり、例えば、BLAST等のプログラムを利用することができる。
所望のＣａｓ９タンパク質のアミノ酸配列をコードするＤＮＡをインビトロ転写用ベクターにクローニングし、インビトロで転写することにより、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを得ることができる。適するインビトロ転写用ベクターは、当業者に公知である。Ｃａｓ９タンパク質をコードするＤＮＡがクローニングされているインビトロ転写用ベクターも公知であり、例えば、Origene 社から購入できる pT7-Cas9 が含まれる。インビトロ転写の方法は、当業者に公知である。
本発明のある実施態様では、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液は、１種またはそれ以上のさらなる核酸分子を含み、当該核酸分子がＣａｓ９ ｍＲＮＡと共に受精卵に導入される。さらなる核酸分子は、例えば、ｇＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡまたはｓｓＯＤＮであり得、ｇＲＮＡ単独、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組合せ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮの組合せ、または、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮの組合せを使用できる。
溶液中のｇＲＮＡの濃度は、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡの濃度に対して、重量で１：２０〜１：１、例えば１：２であり得る。例えば、溶液は、２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび１００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡを含み得る。溶液中のｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの濃度は、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡの濃度に対して、重量で１：１：２０〜１：１：１、例えば１：１：２であり得る。例えば、溶液は、２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡ、１００ｎｇ／μｌのｃｒＲＮＡおよび１００ｎｇ／μｌのｔｒａｃｒＲＮＡを含み得る。溶液中のｓｓＯＤＮの濃度は、２００〜１０００ｎｇ／μｌ、例えば６００ｎｇ／μｌであり得る。
ｇＲＮＡ
ゲノム編集には、標的特異的なｇＲＮＡが必要である。本発明において、「ガイドＲＮＡ」または「ｇＲＮＡ」は、ｃｒＲＮＡとｔｒａｃｒＲＮＡが融合した人工１本鎖ＲＮＡを意味する。ｃｒＲＮＡとｔｒａｃｒＲＮＡの間にリンカー配列が存在してもよい。Ｃａｓ９タンパク質はｇＲＮＡの存在下で標的特異的にゲノムＤＮＡに結合できる。
ゲノム編集には、標的特異的なｇＲＮＡが必要である。本発明において、「ガイドＲＮＡ」または「ｇＲＮＡ」は、ｃｒＲＮＡとｔｒａｃｒＲＮＡが融合した人工１本鎖ＲＮＡを意味する。ｃｒＲＮＡとｔｒａｃｒＲＮＡの間にリンカー配列が存在してもよい。Ｃａｓ９タンパク質はｇＲＮＡの存在下で標的特異的にゲノムＤＮＡに結合できる。
ｃｒＲＮＡは、細菌の内在性ＲＮＡに由来し、ｇＲＮＡの配列特異性を担う。本発明において、ｃｒＲＮＡは、ゲノムＤＮＡ内の標的配列またはそれに相補的な配列を含む。標的配列としては、ゲノムＤＮＡ内で、その直後にＰＡＭ配列を有するヌクレオチド配列を選択する。標的配列は、ゲノムＤＮＡのいずれの鎖にあってもよい。標的配列の選択および／またはｇＲＮＡの設計に利用できる数々のツール、および、バイオインフォマティックスにより予想された様々な種の様々な遺伝子についての標的配列のリストを利用することができ、例えば、引用により本明細書の一部とするFeng Zhang lab's Target Finder、Michael Boutros lab's Target Finder (E-CRISP)、RGEN Tools: Cas-OFFinder、CasFinder: Flexible algorithm for identifying specific Cas9 targets in genomes、CRISPR Optimal Target Finder などが挙げられる。
Ｃａｓ９タンパク質がＤＮＡに結合するためには、ゲノムＤＮＡ内の標的配列は、標的配列の直後にＰＡＭ配列を有する必要がある。ＰＡＭ配列は、ゲノムＤＮＡ内の標的配列の直後に存在するが、ｇＲＮＡ内の標的配列の直後には存在しない。Ｃａｓ９タンパク質は、標的配列の直後にＰＡＭ配列を有するいかなるＤＮＡ配列にも結合できる。ＰＡＭ配列は、Ｃａｓ９タンパク質が由来する細菌の種により異なる。最も広く使用されているＣａｓ９タンパク質はスタフィロコッカス・ピオゲニスに由来し、対応するＰＡＭ配列は、標的配列の３’末端の直後に位置するＮＧＧの配列である。様々な細菌の種とＰＡＭ配列の組合せが知られており、例えば、ナイセリア・メニンギティディス：ＮＮＮＮＧＡＴＴ、ストレプトコッカス・サーモフィラス：ＮＮＡＧＡＡ、トレポネーマ・デンティコラ：ＮＡＡＡＡＣなどが挙げられる。これらの配列において、Ｎは、Ａ、Ｔ、ＧおよびＣのいずれかの塩基を示す。
ｔｒａｃｒＲＮＡは、ｃｒＲＮＡの一部と相補的に結合し、ヘアピン構造を形成する。この構造がＣａｓ９に認識され、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびＣａｓ９の複合体が形成される。従って、ｔｒａｃｒＲＮＡはｇＲＮＡのＣａｓ９タンパク質結合能力を担う。ｔｒａｃｒＲＮＡは、細菌の内在性ＲＮＡに由来し、細菌の種によって異なる配列を有する。本発明のｔｒａｃｒＲＮＡは、上記のＣＲＩＳＰＲ系を有することが知られている細菌のものであり得、好ましくは、ゲノム編集に使用するｔｒａｃｒＲＮＡとＣａｓ９タンパク質は、同じ細菌の種に由来する。例えば、スタフィロコッカス・ピオゲニス、ナイセリア・メニンギティディス、ストレプトコッカス・サーモフィラス、トレポネーマ・デンティコラのｔｒａｃｒＲＮＡを使用できる。
所望のｇＲＮＡ配列を有するＤＮＡをインビトロ転写用ベクターにクローニングし、インビトロで転写することにより、ｇＲＮＡを得ることができる。適するインビトロ転写用ベクターは、当業者に公知である。また、ｇＲＮＡの標的配列以外の配列を含むインビトロ転写用ベクターが当分野で公知である。標的配列のオリゴヌクレオチドを合成し、そのようなベクターに挿入し、インビトロ転写することにより、ｇＲＮＡを得ることができる。そのようなベクターには、例えば、addgene から購入できる、pUC57-sgRNA expression vector、pCFD1-dU6:1gRNA、pCFD2-dU6:2gRNA pCFD3-dU6:3gRNA、pCFD4-U6:1_U6:3tandemgRNAs、pRB17、pMB60、DR274、SP6-sgRNA-scaffold、pT7-gRNA、DR274、pUC57-Simple-gRNA backbone、並びに、Origene社から購入できるpT7-Guide-IVTが含まれる。インビトロ転写の方法は、当業者に公知である。
ｇＲＮＡの代わりに、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組合せを使用してもよい。ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組合せを使用する場合、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡは各々分離したＲＮＡ分子であり、これらの重量比は１：１０〜１０：１、例えば１：１であり得る。
ＨＤＲ（相同組換え修復）
ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系では、また、ＨＤＲを利用して、標的配列の特定のヌクレオチドを改変することもできる。ＨＤＲによりゲノムＤＮＡ配列内のヌクレオチドを改変するためには、ＨＤＲの際に、所望の配列を含むＤＮＡ修復鋳型が存在しなければならない。本発明のある実施態様では、ＤＮＡ修復鋳型として、ｓｓＯＤＮ（一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド）を用いることができる。ｓｓＯＤＮは、ＤＳＢの上流および下流の配列に高い相同性を有する。各相同性領域の長さと位置は導入しようとする改変のサイズに依存する。適する鋳型の存在下で、ＨＤＲは、Ｃａｓ９タンパク質によるＤＳＢの部位で、特定のヌクレオチドを改変できる。ｓｓＯＤＮを設計する際には、修復された遺伝子がＣａｓ９タンパク質により切断されないように、ｓｓＯＤＮが、直後にＰＡＭ配列を有する標的配列を含まないように設計する。例えば、ＰＡＭ配列に対応する配列をｓｓＯＤＮ中では別の配列にすることにより、ｓｓＯＤＮがＣａｓ９タンパク質により切断されないようにできる。ｓｓＯＤＮの設計方法の詳細は、例えば、引用により本明細書の一部とするYang, H. et al., Cell, 154(6), 1370-9 (2013) に記載されている。ｓｓＯＤＮは、通常、ｇＲＮＡおよびＣａｓ９ ｍＲＮＡと共に細胞に導入される。
ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系では、また、ＨＤＲを利用して、標的配列の特定のヌクレオチドを改変することもできる。ＨＤＲによりゲノムＤＮＡ配列内のヌクレオチドを改変するためには、ＨＤＲの際に、所望の配列を含むＤＮＡ修復鋳型が存在しなければならない。本発明のある実施態様では、ＤＮＡ修復鋳型として、ｓｓＯＤＮ（一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド）を用いることができる。ｓｓＯＤＮは、ＤＳＢの上流および下流の配列に高い相同性を有する。各相同性領域の長さと位置は導入しようとする改変のサイズに依存する。適する鋳型の存在下で、ＨＤＲは、Ｃａｓ９タンパク質によるＤＳＢの部位で、特定のヌクレオチドを改変できる。ｓｓＯＤＮを設計する際には、修復された遺伝子がＣａｓ９タンパク質により切断されないように、ｓｓＯＤＮが、直後にＰＡＭ配列を有する標的配列を含まないように設計する。例えば、ＰＡＭ配列に対応する配列をｓｓＯＤＮ中では別の配列にすることにより、ｓｓＯＤＮがＣａｓ９タンパク質により切断されないようにできる。ｓｓＯＤＮの設計方法の詳細は、例えば、引用により本明細書の一部とするYang, H. et al., Cell, 154(6), 1370-9 (2013) に記載されている。ｓｓＯＤＮは、通常、ｇＲＮＡおよびＣａｓ９ ｍＲＮＡと共に細胞に導入される。
本発明において、「受精卵にＣａｓ９タンパク質をコードするｍＲＮＡを導入する」または「受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡを導入する」は、エレクトロポレーションされた受精卵、または、当該受精卵に由来する細胞の少なくとも１個において、Ｃａｓ９タンパク質が発現され得る量で、受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡを導入することを意味する。好ましくは、エレクトロポレーションされた受精卵、または、当該受精卵に由来する細胞の少なくとも１個において、ｇＲＮＡの存在下でゲノム中の少なくとも１つの標的遺伝子のゲノム編集が起こり得る量で、受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡを導入する。
本発明のある実施態様では、本発明の方法は、ゲノム編集が起こったことを確認する段階をさらに含む。ゲノム編集が起こったことは、当分野で知られている様々な方法により確認できる。例えば、標的遺伝子の表現型が知られている場合に、その表現型の変化を検出することにより、あるいは、受精卵または受精卵から発生した胚の細胞において、標的配列を含むゲノムＤＮＡの配列を解読することにより確認できる。ＨＤＲの場合は、ｓｓＯＤＮに制限酵素切断部位を組み込むことにより、ＲＦＬＰ（制限断片長多型）で評価することも可能である。これらの方法は、当分野で周知である。
本発明において、「哺乳動物」は、哺乳綱に分類されるあらゆる生物を含む。哺乳動物は、例えば、霊長目（例えば、サル、ヒトなど）、齧歯目（例えば、マウス、ラット、モルモット、ハムスターなど）、ウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、イヌ、ネコ、ウサギなどを含む。ある実施態様では、哺乳動物は齧歯目である。ある実施態様では、哺乳動物はマウスである。
本発明において、「受精卵」は、受精後の卵または胚を意味し、受精卵（１細胞期）および２細胞期から胚盤胞期までの発生初期胚を含む。受精卵は、体内または体外で受精した受精卵であり得、卵子または受精卵として冷凍保存されたものであってもよい。受精卵の調製、培養および保存の方法は、当分野で公知である。好ましくは、エレクトロポレーションに使用する前に、エレクトロポレーション用の溶液で受精卵を洗浄し、培養培地を除去する。本発明のある実施態様では、受精卵は、１細胞期ないし桑実胚期、好ましくは１細胞期ないし８細胞期、より好ましくは１細胞期ないし４細胞期、より好ましくは１細胞期ないし２細胞期、例えば１細胞期のものである。本発明のある実施態様では、受精の約６時間後以降、好ましくは約９時間後以降、より好ましくは約１２時間後以降にエレクトロポレーションを実施する。本発明のある実施態様では、受精の約６時間〜約１８時間後、好ましくは約９時間〜約１５時間後、より好ましくは約１１時間〜１３時間後、例えば約１２時間後にエレクトロポレーションを実施する。受精卵は、通常、透明帯と呼ばれる保護膜を有する。透明帯は、酸性タイロード液処理などにより除去または薄化できるが、本発明の方法においては、透明帯は除去または薄化しても、しなくてもよい。好ましくは、透明帯を除去または薄化していない受精卵を使用する。
本発明のある実施態様は、エレクトロポレーションされた受精卵を培養し、受精卵の生存を確認する段階を含む。受精卵の培養方法は、当業者に周知である。受精卵の生存は、エレクトロポレーション後に受精卵の少なくとも１回の細胞***が起こったことを観察することにより確認できる。
本発明のある実施態様では、ゲノム編集された哺乳動物の受精卵を得ることができる。本発明のある実施態様は、また、本発明の方法で得られる受精卵をレシピエント動物に移植することを含む遺伝子改変動物の作製方法を提供する。レシピエント動物は、通常、受精卵と同じ動物種の偽妊娠状態のメスであり、その卵管に受精卵を移植する。受精卵（胚）の発生段階によっては、子宮に移植する場合もあり得る。受精卵を移植されたレシピエント動物は、遺伝子改変動物を出産することができる。遺伝子改変動物の作製方法は当業者に公知であり、例えば、引用により本明細書の一部とするManipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual, Fourth Edition (Cold Spring Harbor Press) に記載の方法を用いる。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上の電圧を約１５ｍｓｅｃ以上、または、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約９ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約２００ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
ある実施態様では、本発明の方法は、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、約５０ｎｇ／μｌ以上のＣａｓ９ ｍＲＮＡ、ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを含む溶液および１細胞期の受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）電極間に、電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上の電圧を約２１ｍｓｅｃ以上かけること、
ただし、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む。
以下に、本発明の実施態様を例示する。
［１］哺乳動物の受精卵にＣａｓ９タンパク質をコードするｍＲＮＡ（Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ）を導入する方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む、方法。
［１］哺乳動物の受精卵にＣａｓ９タンパク質をコードするｍＲＮＡ（Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ）を導入する方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む、方法。
［２］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約４０Ｖである、項目［１］に記載の方法。
［３］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２５Ｖないし約３５Ｖである、項目［１］または項目［２］に記載の方法。
［４］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖである、項目［１］ないし項目［３］のいずれかに記載の方法。
［５］ｍＲＮＡ濃度が約５０ｎｇ／μｌないし約１０００ｎｇ／μｌである、項目［１］ないし項目［４］のいずれかに記載の方法。
［６］ｍＲＮＡ濃度が約５０ｎｇ／μｌないし約２００ｎｇ／μｌである、項目［１］ないし項目［５］のいずれかに記載の方法。
［３］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２５Ｖないし約３５Ｖである、項目［１］または項目［２］に記載の方法。
［４］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖである、項目［１］ないし項目［３］のいずれかに記載の方法。
［５］ｍＲＮＡ濃度が約５０ｎｇ／μｌないし約１０００ｎｇ／μｌである、項目［１］ないし項目［４］のいずれかに記載の方法。
［６］ｍＲＮＡ濃度が約５０ｎｇ／μｌないし約２００ｎｇ／μｌである、項目［１］ないし項目［５］のいずれかに記載の方法。
［７］ｍＲＮＡ濃度が約５０ｎｇ／μｌ以上であり、ｍＲＮＡ導入効率が約２５以上である、項目［１］ないし項目［６］のいずれかに記載の方法。
［８］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上であり、通電時間が約３６ｍｓｅｃ以上である、項目［７］に記載の方法。
［９］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上であり、通電時間が約２１ｍｓｅｃ以上である、項目［７］に記載の方法。
［１０］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖ以上であり、通電時間が約１４ｍｓｅｃ以上である、項目［７］に記載の方法。
［１１］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上であり、通電時間が約１１ｍｓｅｃ以上である、項目［７］に記載の方法。
［８］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上であり、通電時間が約３６ｍｓｅｃ以上である、項目［７］に記載の方法。
［９］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上であり、通電時間が約２１ｍｓｅｃ以上である、項目［７］に記載の方法。
［１０］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖ以上であり、通電時間が約１４ｍｓｅｃ以上である、項目［７］に記載の方法。
［１１］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上であり、通電時間が約１１ｍｓｅｃ以上である、項目［７］に記載の方法。
［１２］ｍＲＮＡ濃度が約２００ｎｇ／μｌ以上であり、ｍＲＮＡ導入効率が約４.４１以上である、項目［１］ないし項目［６］のいずれかに記載の方法。
［１３］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上であり、通電時間が約１５ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１４］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上であり、通電時間が約５ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１５］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上であり、通電時間が約９ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１６］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖ以上であり、通電時間が約３.８ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１７］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上であり、通電時間が約１.６ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１３］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖ以上であり、通電時間が約１５ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１４］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上であり、通電時間が約５ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１５］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖ以上であり、通電時間が約９ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１６］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖ以上であり、通電時間が約３.８ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１７］電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上であり、通電時間が約１.６ｍｓｅｃ以上である、項目［１２］に記載の方法。
［１８］電圧が一定である、項目［１］ないし項目［１７］のいずれかに記載の方法。
［１９］電圧と総通電時間の積が、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、項目［１］ないし項目［１８］のいずれかに記載の方法。
［２０］電圧を２回ないし１５回のパルスに分けてかける、項目［１］ないし項目［１９］のいずれかに記載の方法。
［２１］電圧を５回ないし１１回のパルスに分けてかける、項目［１］ないし項目［２０］のいずれかに記載の方法。
［２２］パルス間に約１０ないし約１５０ｍｓｅｃの間隔を空ける、項目［２０］または項目［２１］に記載の方法。
［２３］各パルスの方向が同じである、項目［２０］ないし項目［２２］のいずれかに記載の方法。
［２４］少なくとも１つのパルスの方向が他のパルスと逆である、項目［２０］ないし項目［２２］のいずれかに記載の方法。
［１９］電圧と総通電時間の積が、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下である、項目［１］ないし項目［１８］のいずれかに記載の方法。
［２０］電圧を２回ないし１５回のパルスに分けてかける、項目［１］ないし項目［１９］のいずれかに記載の方法。
［２１］電圧を５回ないし１１回のパルスに分けてかける、項目［１］ないし項目［２０］のいずれかに記載の方法。
［２２］パルス間に約１０ないし約１５０ｍｓｅｃの間隔を空ける、項目［２０］または項目［２１］に記載の方法。
［２３］各パルスの方向が同じである、項目［２０］ないし項目［２２］のいずれかに記載の方法。
［２４］少なくとも１つのパルスの方向が他のパルスと逆である、項目［２０］ないし項目［２２］のいずれかに記載の方法。
［２５］哺乳動物の受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡを導入する方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｃ）下式（Ｂ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ｂ） Ｒｍｉｎ＝４４１／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
（ｄ）式（Ｂ）により算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に段階（ｃ）とは逆方向の電圧をかけること、ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
の各段階を含み、
段階（ｃ）および（ｄ）で電圧を２回以上のパルスに分けてかける場合、一方向のパルスを連続してかけた後に逆方向のパルスをかけてもよく、各方向のパルスを交互にかけてもよく、各方向のパルスをランダムにかけてもよい、
方法。
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｃ）下式（Ｂ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ｂ） Ｒｍｉｎ＝４４１／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約３０Ｖのとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約３０Ｖないし約４０Ｖのとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約４０Ｖないし約５０Ｖのとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり約５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
（ｄ）式（Ｂ）により算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に段階（ｃ）とは逆方向の電圧をかけること、ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり約２０Ｖないし約５５Ｖであり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり約６３０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
の各段階を含み、
段階（ｃ）および（ｄ）で電圧を２回以上のパルスに分けてかける場合、一方向のパルスを連続してかけた後に逆方向のパルスをかけてもよく、各方向のパルスを交互にかけてもよく、各方向のパルスをランダムにかけてもよい、
方法。
［２６］受精卵が１細胞期または２細胞期のものである、項目［１］ないし項目［２５］のいずれかに記載の方法。
［２７］受精卵が１細胞期のものである、項目［１］ないし項目［２６］のいずれかに記載の方法。
［２８］受精の約１２時間後にエレクトロポレーションを実施する、項目［１］ないし項目［２７］のいずれかに記載の方法。
［２９］齧歯目の受精卵を使用する、項目［１］ないし項目［２８］のいずれかに記載の方法。
［３０］マウスの受精卵を使用する、項目［１］ないし項目［２９］のいずれかに記載の方法。
［２７］受精卵が１細胞期のものである、項目［１］ないし項目［２６］のいずれかに記載の方法。
［２８］受精の約１２時間後にエレクトロポレーションを実施する、項目［１］ないし項目［２７］のいずれかに記載の方法。
［２９］齧歯目の受精卵を使用する、項目［１］ないし項目［２８］のいずれかに記載の方法。
［３０］マウスの受精卵を使用する、項目［１］ないし項目［２９］のいずれかに記載の方法。
［３１］Ｃａｓ９タンパク質が、配列番号１ないし配列番号４のいずれかのアミノ酸配列に約９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、ｇＲＮＡ依存的にＤＮＡに結合するタンパク質である、項目［１］ないし項目［３０］のいずれかに記載の方法。
［３２］Ｃａｓ９タンパク質が、ＲｕｖＣヌクレアーゼ活性およびＨＮＨヌクレアーゼ活性のいずれかまたは両方を有する、項目［１］ないし項目［３１］のいずれかに記載の方法。
［３３］Ｃａｓ９タンパク質が配列番号１ないし配列番号４のいずれかのアミノ酸配列を含む、項目［１］ないし項目［３２］のいずれかに記載の方法。
［３４］Ｃａｓ９タンパク質が配列番号１のアミノ酸配列を含む、項目［１］ないし項目［３３］のいずれかに記載の方法。
［３２］Ｃａｓ９タンパク質が、ＲｕｖＣヌクレアーゼ活性およびＨＮＨヌクレアーゼ活性のいずれかまたは両方を有する、項目［１］ないし項目［３１］のいずれかに記載の方法。
［３３］Ｃａｓ９タンパク質が配列番号１ないし配列番号４のいずれかのアミノ酸配列を含む、項目［１］ないし項目［３２］のいずれかに記載の方法。
［３４］Ｃａｓ９タンパク質が配列番号１のアミノ酸配列を含む、項目［１］ないし項目［３３］のいずれかに記載の方法。
［３５］溶液が１種またはそれ以上のさらなる核酸分子を含み、該核酸分子がＣａｓ９ ｍＲＮＡと共に受精卵に導入される、項目［１］ないし項目［３４］のいずれかに記載の方法。
［３６］さらなる核酸分子がｇＲＮＡまたはｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組合せである、項目［３５］に記載の方法。
［３７］さらなる核酸分子がｇＲＮＡである、項目［３５］または項目［３６］に記載の方法。
［３８］溶液がｓｓＯＤＮをさらに含む、項目［３６］または項目［３７］に記載の方法。
［３９］エレクトロポレーションされた受精卵を培養し、受精卵の生存を確認する段階をさらに含む、項目［１］ないし項目［３８］のいずれかに記載の方法。
［３６］さらなる核酸分子がｇＲＮＡまたはｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組合せである、項目［３５］に記載の方法。
［３７］さらなる核酸分子がｇＲＮＡである、項目［３５］または項目［３６］に記載の方法。
［３８］溶液がｓｓＯＤＮをさらに含む、項目［３６］または項目［３７］に記載の方法。
［３９］エレクトロポレーションされた受精卵を培養し、受精卵の生存を確認する段階をさらに含む、項目［１］ないし項目［３８］のいずれかに記載の方法。
［４０］項目［１］ないし項目［３９］のいずれかに記載の方法により、哺乳動物の受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡを導入することを含む、Ｃａｓ９を発現する哺乳動物の受精卵の製造方法。
［４１］項目［３５］ないし項目［３８］のいずれかに記載の方法により、哺乳動物の受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を導入することを含む、哺乳動物の受精卵でゲノム編集を行う方法。
［４２］ゲノム編集が起こったことを確認する段階をさらに含む、項目［４１］に記載の方法。
［４３］項目［３５］ないし項目［３８］のいずれかに記載の方法により、哺乳動物の受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を導入することを含む、ゲノム編集された哺乳動物の受精卵の作製方法。
［４４］遺伝子改変動物の作製方法であって、項目［４３］に記載の方法で得られる受精卵をレシピエント動物に移植することを含む、方法。
［４１］項目［３５］ないし項目［３８］のいずれかに記載の方法により、哺乳動物の受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を導入することを含む、哺乳動物の受精卵でゲノム編集を行う方法。
［４２］ゲノム編集が起こったことを確認する段階をさらに含む、項目［４１］に記載の方法。
［４３］項目［３５］ないし項目［３８］のいずれかに記載の方法により、哺乳動物の受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を導入することを含む、ゲノム編集された哺乳動物の受精卵の作製方法。
［４４］遺伝子改変動物の作製方法であって、項目［４３］に記載の方法で得られる受精卵をレシピエント動物に移植することを含む、方法。
本発明により、エレクトロポレーションで、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを哺乳動物の受精卵に、効率的かつ迅速に導入することができる。エレクトロポレーションの利点は、胚の生存率が高いこと、および、特別な手技を必要とせず、時間のかからない技術であることである。１００個の受精卵の細胞質または前核にｍＲＮＡをマイクロインジェクションする場合、熟練者であっても１時間以上を要するが、エレクトロポレーションは、これを数分で、単純な作業で、達成できる。加えて、市販のエレクトロポレーションシステムの価格は、マイクロインジェクションシステムよりも一般的に安い。従って、本発明は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系によるゲノム編集およびこれを利用した遺伝子改変動物の作製の効率を高め、迅速化し、コストを低減することに貢献し得る。
材料と方法
ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡの調製
ｐＣＳ２−ｍＣｈｅｒｒｙは、木下典行博士（基礎生物学研究所、日本）から譲り受けた。ｈＣａｓ９プラスミド（ｐＸ３３０）は、Addgene（ケンブリッジ、マサチューセッツ州、米国）から購入した。ｐＸ３３０から切り出したｈＣａｓ９を、ｐＳＰ６４ベクター（Promega）のＳＰ６プロモーターの下流につなぎ（ｐＳＰ６４−ｈＣａｓ９）、ｍＲＮＡ合成に使用した。ｐＣＳ２−ｍＣｈｅｒｒｙおよびｐＳＰ６４−ｈＣａｓ９を、各々ＮｏｔＩおよびＳａｌＩにより直鎖状にした。直鎖状プラスミドを鋳型として、インビトロＲＮＡ転写キット（mMESSAGE mMACHINE SP6 Transcription Kit, Ambion, オースティン、テキサス州、米国）を使用して、ｍＣｈｅｒｒｙおよびｈＣａｓ９のｍＲＮＡを合成した。
ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡの調製
ｐＣＳ２−ｍＣｈｅｒｒｙは、木下典行博士（基礎生物学研究所、日本）から譲り受けた。ｈＣａｓ９プラスミド（ｐＸ３３０）は、Addgene（ケンブリッジ、マサチューセッツ州、米国）から購入した。ｐＸ３３０から切り出したｈＣａｓ９を、ｐＳＰ６４ベクター（Promega）のＳＰ６プロモーターの下流につなぎ（ｐＳＰ６４−ｈＣａｓ９）、ｍＲＮＡ合成に使用した。ｐＣＳ２−ｍＣｈｅｒｒｙおよびｐＳＰ６４−ｈＣａｓ９を、各々ＮｏｔＩおよびＳａｌＩにより直鎖状にした。直鎖状プラスミドを鋳型として、インビトロＲＮＡ転写キット（mMESSAGE mMACHINE SP6 Transcription Kit, Ambion, オースティン、テキサス州、米国）を使用して、ｍＣｈｅｒｒｙおよびｈＣａｓ９のｍＲＮＡを合成した。
Ｆｇｆ１０またはｍＣｈｅｒｒｙを標的とするオリゴヌクレオチド対をアニーリングし、ｐＤＲ２７４ベクター（addgene）のＢｓａＩ制限酵素部位に挿入した。オリゴヌクレオチドの配列は以下の通りである。Ｆｇｆ１０（５’−ＧＧＡＧＡＧＧＡＣＡＡＡＡＡＡＣＡＡＧＡ−３’（配列番号５）およびその相補的配列）およびｍＣｈｅｒｒｙ（５’−ＧＧＣＣＡＣＧＡＧＴＴＣＧＡＧＡＴＣＧＡＧＧＧ−３’（配列番号６）およびその相補的配列）。ＤｒａＩによる切断後、MEGAshortscript T7 Transcription Kit（Ambion、オースティン、テキサス州、米国）を使用してｇＲＮＡを合成した。
合成したＲＮＡ（ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡ）は、フェノールクロロホルムイソアミルアルコール抽出およびイソプロパノール沈殿により精製した。沈殿したＲＮＡをＯｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉに２〜４μｇ／μｌの濃度で溶解し、使用するまで−２０℃で保存した。ＲＮＡを吸光光度計およびアガロースゲル電気泳動で定量した。ｓｓＯＤＮは、Sigma から乾燥状態で購入し、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉに１μｇ／μｌの濃度で溶解し、使用するまで−２０℃で保存した。
マウス系統
ＩＣＲ（日本クレア）またはＢ６Ｄ２Ｆ１（Ｃ５７ＢＬ／６ｘＤＢＡ２Ｆ１）（日本ＳＬＣ）のメスのマウスを使用した。ＩＣＲ系統は主にエレクトロポレーション条件の決定に使用し、Ｂ６Ｄ２Ｆ１系統はゲノム編集に使用した。
ＩＣＲ（日本クレア）またはＢ６Ｄ２Ｆ１（Ｃ５７ＢＬ／６ｘＤＢＡ２Ｆ１）（日本ＳＬＣ）のメスのマウスを使用した。ＩＣＲ系統は主にエレクトロポレーション条件の決定に使用し、Ｂ６Ｄ２Ｆ１系統はゲノム編集に使用した。
受精卵の回収
同系統のオスと自然交配させたＩＣＲまたはＢ６Ｄ２Ｆ１のメスの卵管からＥ０.５（Ｅの後の数字は、受精後の日数を示す。Ｅ０.５は、腟栓を確認した日の暗期の中間点から１２時間後である。）で受精卵を回収した。１％ヒアルロニダーゼ／Ｍ２培地（Sigma）でインキュベートすることにより、受精卵を覆っている卵丘細胞を除去した。Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙを標的とするゲノム編集実験では、Ｒ２６−Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙのオス（RIKEN CDB、日本）と交配させたＢ６Ｄ２Ｆ１メスに由来する受精卵を使用した。回収した受精卵を、エレクトロポレーションに使用するまで、ｍＷＭ培地（アーク・リソース、日本）またはＫＳＯＭ培地（９５ｍＭ ＮａＣｌ、２.５ｍＭ ＫＣｌ、０.３５ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４・７Ｈ２Ｏ、０.２ｍＭ ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、０.２ｍＭ グルコース、１０ｍＭ 乳酸ナトリウム、２５ｍＭ ＮａＨＣＯ３、０.２ｍＭ ピルビン酸ナトリウム、１.７１ｍＭ ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ、０.０１ｍＭ Ｎａ２−ＥＤＴＡ・２Ｈ２Ｏ、１ｍＭ Ｌ−グルタミン、１ｍｇ／ｍｌＢＳＡ）中で培養した。
同系統のオスと自然交配させたＩＣＲまたはＢ６Ｄ２Ｆ１のメスの卵管からＥ０.５（Ｅの後の数字は、受精後の日数を示す。Ｅ０.５は、腟栓を確認した日の暗期の中間点から１２時間後である。）で受精卵を回収した。１％ヒアルロニダーゼ／Ｍ２培地（Sigma）でインキュベートすることにより、受精卵を覆っている卵丘細胞を除去した。Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙを標的とするゲノム編集実験では、Ｒ２６−Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙのオス（RIKEN CDB、日本）と交配させたＢ６Ｄ２Ｆ１メスに由来する受精卵を使用した。回収した受精卵を、エレクトロポレーションに使用するまで、ｍＷＭ培地（アーク・リソース、日本）またはＫＳＯＭ培地（９５ｍＭ ＮａＣｌ、２.５ｍＭ ＫＣｌ、０.３５ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４・７Ｈ２Ｏ、０.２ｍＭ ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、０.２ｍＭ グルコース、１０ｍＭ 乳酸ナトリウム、２５ｍＭ ＮａＨＣＯ３、０.２ｍＭ ピルビン酸ナトリウム、１.７１ｍＭ ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ、０.０１ｍＭ Ｎａ２−ＥＤＴＡ・２Ｈ２Ｏ、１ｍＭ Ｌ−グルタミン、１ｍｇ／ｍｌＢＳＡ）中で培養した。
エレクトロポレーション
白金ブロック電極（長さ：１０ｍｍ、幅：３ｍｍ、高さ：０.５ｍｍ、ギャップ：１ｍｍ）（株式会社ベックス（以下、BEXと称する）、東京、日本）を外注して使用した（図２ａ）。CUY21EDIT II（BEX）またはCUY21 Vivo-SQ（BEX）に接続した電極を、実体顕微鏡上にセットした。ｍＷＭ培地中で培養されている受精卵をＯｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ（Life technologies）で３回洗浄し、血清含有培地を除去した。次いで、ＲＮＡを含有するＯｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ溶液（５μｌ）で満たした電極のギャップに受精卵を並べ、エレクトロポレーションを行った。電気的条件は、特記しない限り、３０Ｖ（３ｍｓｅｃのパルス＋９７ｍｓｅｃの間隔）×７回であった。エレクトロポレーションの後、すぐに受精卵を電極から回収し、Ｍ２培地で４回、ｍＷＭ培地で２回洗浄した。次いで、受精卵を、ｍＷＭ培地中、３７℃で、５％ＣＯ２インキュベーター内で、２細胞期まで培養した。
白金ブロック電極（長さ：１０ｍｍ、幅：３ｍｍ、高さ：０.５ｍｍ、ギャップ：１ｍｍ）（株式会社ベックス（以下、BEXと称する）、東京、日本）を外注して使用した（図２ａ）。CUY21EDIT II（BEX）またはCUY21 Vivo-SQ（BEX）に接続した電極を、実体顕微鏡上にセットした。ｍＷＭ培地中で培養されている受精卵をＯｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ（Life technologies）で３回洗浄し、血清含有培地を除去した。次いで、ＲＮＡを含有するＯｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ溶液（５μｌ）で満たした電極のギャップに受精卵を並べ、エレクトロポレーションを行った。電気的条件は、特記しない限り、３０Ｖ（３ｍｓｅｃのパルス＋９７ｍｓｅｃの間隔）×７回であった。エレクトロポレーションの後、すぐに受精卵を電極から回収し、Ｍ２培地で４回、ｍＷＭ培地で２回洗浄した。次いで、受精卵を、ｍＷＭ培地中、３７℃で、５％ＣＯ２インキュベーター内で、２細胞期まで培養した。
蛍光シグナルの検出および分析
ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光のシグナル強度を、エレクトロポレーションの１５時間後に測定した。ニプコー円板共焦点ユニットＣＳＵ−Ｗ１（横河電機、日本）を備えた Axio Observer.Z1 倒立顕微鏡（Zeiss、ドイツ）を使用した。蛍光シグナルは、EM-CCD カメラImageM（浜松ホトニクス、日本）により検出し、データはＨＣイメージソフトウェアならびにNIH ImageJ(http://imagej.nih.gov/ij/)で分析した。測定される蛍光強度は、蛍光シグナルの取得および解析の条件に依存する相対値であり、条件が全て一致する場合にのみ比較可能である。
ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光のシグナル強度を、エレクトロポレーションの１５時間後に測定した。ニプコー円板共焦点ユニットＣＳＵ−Ｗ１（横河電機、日本）を備えた Axio Observer.Z1 倒立顕微鏡（Zeiss、ドイツ）を使用した。蛍光シグナルは、EM-CCD カメラImageM（浜松ホトニクス、日本）により検出し、データはＨＣイメージソフトウェアならびにNIH ImageJ(http://imagej.nih.gov/ij/)で分析した。測定される蛍光強度は、蛍光シグナルの取得および解析の条件に依存する相対値であり、条件が全て一致する場合にのみ比較可能である。
Ｆｇｆ１０およびＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙのゲノム編集
Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよび、Ｆｇｆ１０またはＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙを標的とするｇＲＮＡを、上記の通り、Ｂ６Ｄ２Ｆ１のメスから回収した受精卵に、Ｅ０.５でエレクトロポレーションにより導入した。ＨＤＲによるノックインの研究には、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡと共にｓｓＯＤＮを導入した。Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙ用のｓｓＯＤＮの配列は、以下の通りである；５’−ＡＧＴＴＣＡＴＧＣＧＣＴＴＣＡＡＧＧＴＧＣＡＣＡＴＧＧＡＧＧＧＣＴＣＣＧＴＧＡＡＴＴＣＡＴＡＡＣＴＴＣＧＴＡＴＡＧＣＡＴＡＣＡＴＴＡＴＡＣＧＡＡＧＴＴＡＴＣＧＡＧＧＧＣＧＡＧＧＧＣＣＧＣＣＣＣＴＡＣＧＡＧＧＧＣＡＣＣＣＡＧＡＣＣＧＣＣ−３’（配列番号７）、および、５’−ＣＧＴＧＡＡＣＧＧＣＣＡＣＧＡＧＴＴＣＧＡＧＡＴＡＴＣＧＡＧＧＧＣＧＡＧＧＧＣＧＡＧＧＧＣＣＧＣＣＣ−３’（配列番号８）。生存している２細胞期の胚を、偽妊娠マウスの卵管に、膣栓が生じた日に移植した。あるいは、胚をインビトロで胚盤胞期（Ｅ４.５）まで培養した。
Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよび、Ｆｇｆ１０またはＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙを標的とするｇＲＮＡを、上記の通り、Ｂ６Ｄ２Ｆ１のメスから回収した受精卵に、Ｅ０.５でエレクトロポレーションにより導入した。ＨＤＲによるノックインの研究には、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡと共にｓｓＯＤＮを導入した。Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙ用のｓｓＯＤＮの配列は、以下の通りである；５’−ＡＧＴＴＣＡＴＧＣＧＣＴＴＣＡＡＧＧＴＧＣＡＣＡＴＧＧＡＧＧＧＣＴＣＣＧＴＧＡＡＴＴＣＡＴＡＡＣＴＴＣＧＴＡＴＡＧＣＡＴＡＣＡＴＴＡＴＡＣＧＡＡＧＴＴＡＴＣＧＡＧＧＧＣＧＡＧＧＧＣＣＧＣＣＣＣＴＡＣＧＡＧＧＧＣＡＣＣＣＡＧＡＣＣＧＣＣ−３’（配列番号７）、および、５’−ＣＧＴＧＡＡＣＧＧＣＣＡＣＧＡＧＴＴＣＧＡＧＡＴＡＴＣＧＡＧＧＧＣＧＡＧＧＧＣＧＡＧＧＧＣＣＧＣＣＣ−３’（配列番号８）。生存している２細胞期の胚を、偽妊娠マウスの卵管に、膣栓が生じた日に移植した。あるいは、胚をインビトロで胚盤胞期（Ｅ４.５）まで培養した。
ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９によるＦｇｆ１０またはＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子の変異を調べるために、胚の卵黄嚢からゲノムを調製した。ｇＲＮＡ標的に隣接するゲノム領域を、特異的プライマーを使用するＰＣＲにより増幅させた：Ｆｇｆ１０Ｆｗｄ（５’−ＣＡＧＣＡＧＧＴＣＴＴＡＣＣＣＴＴＣＣＡ−３’（配列番号９））およびＦｇｆ１０Ｒｅｖ（５’−ＴＡＣＡＧＧＧＧＴＴＧＧＧＧＡＣＡＴＡＡ−３’（配列番号１０））、Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙＦｗｄ（ＧＡＧＧＧＣＡＣＴＡＡＧＧＣＡＧＴＣＡＣ（配列番号１１））およびＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙＲｅｖ（ＣＣＣＡＴＧＧＴＣＴＴＣＴＴＣＴＧＣＡＴ（配列番号１２））。Ｆｇｆ１０またはＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙのＰＣＲ増幅産物を、ｐＭＤ２０（タカラバイオ株式会社、滋賀、日本）ベクターにクローニングした。各胚から１０種のプラスミドを単離し、ゲノム領域を配列解読した。配列解読は、BigDye Terminator Cycle Sequencing Kit ver. 3.1 および ABI 3500 Genetic Analyser （Applied Biosystems, フォスターシティ、カリフォルニア州、米国）を使用して行った。
ｍＲＮＡをマウス受精卵に導入するためのエレクトロポレーションの条件
透明帯を酸で処理せずにマウス受精卵にｍＲＮＡを導入するためのエレクトロポレーションの条件を調べた。図２ａに示すエレクトロポレーションシステムを用意した。ギャップ距離１ｍｍ、長さ１０ｍｍ、幅３ｍｍ、高さ０.５ｍｍであり、電極間に５μｌの溶液を保持できる白金ブロック電極（図２ｃ）を実体顕微鏡（図２ａ左）にセットし、エレクトロポレーター（CUY21EDIT II）（図２ａ右）に連結した。このシステムを使用して、約４０個〜５０個の受精卵を同時に処理できる。エレクトロポレーションに先立ち、マウスの受精卵を手技により一列に並べた。インビトロで転写した４００ｎｇ／μｌのｍＣｈｅｒｒｙ ｍＲＮＡをエレクトロポレーションにより受精卵に導入し、ｍＣｈｅｒｒｙの蛍光強度および胚盤胞期までの胚の生存率をモニタリングすることにより、ｍＲＮＡ導入の効率を評価した。図２ａは、この実験で使用したエレクトロポレーション装置の写真である。図２ｂは、図２ａの四角で囲んだ部分の拡大図である。図２ｃは、白金ブロック電極の模式図である。受精卵は、電極間のギャップ中のｍＲＮＡ溶液中に置かれている。図２ｄは、電極間のギャップに置かれた受精卵の顕微鏡像である。図２ｅは、マウスの受精卵にｍＲＮＡを導入するためのエレクトロポレーション条件の模式図であり、１０Ｖないし５０Ｖ、３ｍｓｅｃのスクエアパルスを、９７ｍｓｅｃの間隔で、３回ないし１１回反復することを示す。
透明帯を酸で処理せずにマウス受精卵にｍＲＮＡを導入するためのエレクトロポレーションの条件を調べた。図２ａに示すエレクトロポレーションシステムを用意した。ギャップ距離１ｍｍ、長さ１０ｍｍ、幅３ｍｍ、高さ０.５ｍｍであり、電極間に５μｌの溶液を保持できる白金ブロック電極（図２ｃ）を実体顕微鏡（図２ａ左）にセットし、エレクトロポレーター（CUY21EDIT II）（図２ａ右）に連結した。このシステムを使用して、約４０個〜５０個の受精卵を同時に処理できる。エレクトロポレーションに先立ち、マウスの受精卵を手技により一列に並べた。インビトロで転写した４００ｎｇ／μｌのｍＣｈｅｒｒｙ ｍＲＮＡをエレクトロポレーションにより受精卵に導入し、ｍＣｈｅｒｒｙの蛍光強度および胚盤胞期までの胚の生存率をモニタリングすることにより、ｍＲＮＡ導入の効率を評価した。図２ａは、この実験で使用したエレクトロポレーション装置の写真である。図２ｂは、図２ａの四角で囲んだ部分の拡大図である。図２ｃは、白金ブロック電極の模式図である。受精卵は、電極間のギャップ中のｍＲＮＡ溶液中に置かれている。図２ｄは、電極間のギャップに置かれた受精卵の顕微鏡像である。図２ｅは、マウスの受精卵にｍＲＮＡを導入するためのエレクトロポレーション条件の模式図であり、１０Ｖないし５０Ｖ、３ｍｓｅｃのスクエアパルスを、９７ｍｓｅｃの間隔で、３回ないし１１回反復することを示す。
Ｅ０.５の受精卵を使用して、パルス時間を３ｍｓｅｃに、パルスの回数を５回に固定し、様々な電圧（１０Ｖ〜５０Ｖ）でエレクトロポレーションを行った。図３ａは、様々な電圧でエレクトロポレーションされた胚のｍＣｈｅｒｒｙの蛍光強度（●）および胚盤胞期までの生存率（■）をプロットしたものである。２０Ｖ以上の電圧で蛍光が観察され、蛍光強度は、２０Ｖで４.４１、３０Ｖで１４.７、４０Ｖで２６.４６、５０Ｖで３９.６９であり、電圧に伴って上昇した。蛍光強度の相対比率は、２０Ｖ：３０Ｖ：４０Ｖ：５０Ｖ＝０.３：１.０：１.８：２.７であった。生存率は３０Ｖまでは１００％であったが、４０Ｖ以上で電圧に伴って低下し、５０Ｖで約５０％に至った。
電圧およびパルス時間を３０Ｖおよび３ｍｓｅｃに固定し、パルスの反復回数を変化させた（３回、５回、７回、９回および１１回）。図３ｂは、様々なパルスの反復回数でエレクトロポレーションされた胚のｍＣｈｅｒｒｙの蛍光強度（●）および胚盤胞期までの生存率（■）をプロットしたものである。ｍＣｈｅｒｒｙの蛍光強度は、３回で７.９、５回で１４.７、７回で２７.１、９回で４０.６、１１回で６５.９であり、パルスの回数に伴って増大した。胚盤胞期までの生存率は７回の反復で低下し始め、１１回の反復で約５０％に至った。
ｍＣｈｅｒｒｙの蛍光強度はｍＣｈｅｒｒｙ ｍＲＮＡの導入量に比例するので、上記の実験で測定された蛍光強度を、ｍＲＮＡ導入効率の相対値とみなすことができる。図４は、図３ｂに示した電圧３０Ｖでの各通電時間における蛍光強度および図３ａから導かれる電圧毎の蛍光強度の相対比率（２０Ｖ：３０Ｖ：４０Ｖ：５０Ｖ＝０.３：１.０：１.８：２.７）に基づいて、各通電時間でのｍＲＮＡ導入効率Ｒを電圧毎に予想したグラフである。
Excel ソフトウェアを使用して、図４に示すグラフの近似式を作成した。各電圧でのｍＲＮＡ導入効率Ｒは、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）を用いて、以下の近似式で表される。
２０Ｖ Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔ
３０Ｖ Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔ
４０Ｖ Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔ
５０Ｖ Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔ
２０Ｖ Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔ
３０Ｖ Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔ
４０Ｖ Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔ
５０Ｖ Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔ
両方向のパルスを用いるエレクトロポレーション
実施例１と同様に、Ｅ０.５の受精卵にエレクトロポレーションによりｍＣｈｅｒｒｙ ｍＲＮＡを導入した。電圧およびパルス時間を３０Ｖおよび３ｍｓｅｃに固定し、パルスの反復回数および電圧の方向を図５ｃに示す通りに変化させた。図５において、×６は、一方向から６回のパルスを与えたことを示す。×＋３−３は、一方向から３回のパルスを与え、続いて逆方向から３回のパルスを与えたことを示す。×ａｌｔ±３は、両方向からのパルスを交互に３回ずつ与えたことを示す。×＋６−６および×ａｌｔ±６も同様である。ｍＣｈｅｒｒｙの蛍光強度は、電圧の方向に拘わらず、パルスの回数に伴って増加した（図５ａ）。胚盤胞期までの生存率はいずれも高く（図５ｂ）、特に、×＋６−６および×ａｌｔ±６で、一方向から１２回のパルスを与えた場合に比べて高かった。
実施例１と同様に、Ｅ０.５の受精卵にエレクトロポレーションによりｍＣｈｅｒｒｙ ｍＲＮＡを導入した。電圧およびパルス時間を３０Ｖおよび３ｍｓｅｃに固定し、パルスの反復回数および電圧の方向を図５ｃに示す通りに変化させた。図５において、×６は、一方向から６回のパルスを与えたことを示す。×＋３−３は、一方向から３回のパルスを与え、続いて逆方向から３回のパルスを与えたことを示す。×ａｌｔ±３は、両方向からのパルスを交互に３回ずつ与えたことを示す。×＋６−６および×ａｌｔ±６も同様である。ｍＣｈｅｒｒｙの蛍光強度は、電圧の方向に拘わらず、パルスの回数に伴って増加した（図５ａ）。胚盤胞期までの生存率はいずれも高く（図５ｂ）、特に、×＋６−６および×ａｌｔ±６で、一方向から１２回のパルスを与えた場合に比べて高かった。
Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡのエレクトロポレーションによる、Ｆｇｆ１０遺伝子のゲノム編集
上記のエレクトロポレーション条件をＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９によるゲノム編集に利用できるか否かを調べた。
上記のエレクトロポレーション条件をＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９によるゲノム編集に利用できるか否かを調べた。
肢の発生に必須であるＦｇｆ１０遺伝子を標的とした。Ｆｇｆ１０のホモ接合性変異胚は、四肢がない状態で発生することが既に示されており（引用により本明細書の一部とするSekine, K. et al., Nature Genetics 21, 138-141(1999)）、遺伝子の破壊を表現型により容易に確認できる。さらに、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系によるこの遺伝子の破壊が、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡのマイクロインジェクションにより実施されている（引用により本明細書の一部とするYasue, A. et al., Scientific Reports 4, 5705 (2014)）。
Yasue, A. et al. で使用されたのと同じ＃５６３と呼ばれるＦｇｆ１０の標的配列を有するｇＲＮＡ（配列番号５のヌクレオチド配列を含む）およびＣａｓ９ ｍＲＮＡを、種々の濃度で、３０Ｖ、３ｍｓｅｃの電気パルスを７回繰り返すエレクトロポレーションにより、Ｅ０.５の受精卵に導入した。図６ａは、本実験で使用した標的配列（下線）およびＰＡＭ配列（ＡＧＧ、大文字）を含む、Ｆｇｆ１０座位のゲノム構造を示す。胚を２細胞期まで発生させ、偽妊娠のメスに移植した。Ｅ１５またはＥ１６でマウスを解剖し、胚の形態を観察した。肢の異常によって、胚を３つの表現型のカテゴリーに分類した：タイプＩの胚には肢がなく、タイプＩＩの胚は形態に種々の異常を有し（例えば、後肢の欠損、前肢および後肢の短縮など）、タイプＩＩＩの胚は正常に見える。図６ｂは、異なる肢の表現型を示す３つのカテゴリーの胚の代表例、即ち、肢なし、肢の異常（左：後肢の欠損、右：前肢および後肢の短縮）または正常を示す。図６ｃは、Ｃａｓ９およびｇＲＮＡのエレクトロポレーションの肢の発生に対する影響をまとめたグラフである。各実験で使用したＲＮＡの濃度をグラフの左に示す。各列の数字は、各カテゴリーの表現型を示す胚の数を表す。
表１は、使用したＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡの濃度、２細胞期の生存率、Ｅ１５またはＥ１６での胚の生存率を示す。表２は、Ｃａｓ９ ＲＮＡおよびｇＲＮＡのエレクトロポレーションによるＦｇｆ１０変異胚の生成を示す。
表１：エレクトロポレーションされた胚の生存率
表２：エレクトロポレーションされた胚の形態異常
エレクトロポレーションされた受精卵の２細胞期の生存率（表１において、９４〜９５％）は、マイクロインジェクションの場合（Yasue, A. et al.において、３４〜３５％）と比較して大幅に高かった。
表１：エレクトロポレーションされた胚の生存率
表２：エレクトロポレーションされた胚の形態異常
４００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび２００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡをエレクトロポレーションに使用すると、９７％（３８／３９）の胚が特異的な肢の異常を示した。これらの胚のうち、３４個の胚は完全に前肢および後肢を失っており、従来の標的遺伝子組換えにより得られたＦｇｆ１０のホモ接合性変異体の表現型と同様であった。残りの４個の胚は、様々な肢の異常を有した。２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび１００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡをエレクトロポレーションに使用すると、８２％（３１／３８）の胚が肢の異常を示した。１００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび５０ｎｇ／μｌのｇＲＮＡでは４６％（１９／４１）の胚が、全部分および一部分的な肢の異常を示した。５０ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび２５ｎｇ／μｌのｇＲＮＡでは、形態観察では殆どの胚が正常に見えた。
これらの胚でＦｇｆ１０遺伝子が破壊されたか否かを調べるために、胚のゲノム配列を分析した。４個の無作為に選択された胚に由来する各１０個のクローンにおいて、標的配列の周辺のゲノム領域を増幅させ、配列を解読した。標的配列の周辺のゲノム領域の野生型配列は、ｔｇａａｔｇｇａａａａｇｇａｇｃｔｃｃｃａｇｇａｇａｇｇａｃａａａａａａｃａａｇａＡＧＧａａａａａｃａｃｃｔｃｔｇｃｔｃａである（下線は標的として使用した配列を示す。大文字はＰＡＭ配列（ＡＧＧ）を示す）（配列番号１３）。結果を表３に示す。
表３：Ｆｇｆ１０変異体の配列分析
表中、同一の受精卵について同じ変異のタイプが２回以上記載されている場合、各クローンの配列は異なる。
表３：Ｆｇｆ１０変異体の配列分析
４００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび２００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡを使用すると、配列解読した全てのクローンが塩基の挿入または欠失（インデル）または変異を有し、野生型配列は検出されなかった。これらの結果は、Ｆｇｆ１０遺伝子の両対立遺伝子が、４００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび２００ｎｇ／μｌｇのｇＲＮＡを用いるエレクトロポレーションにより破壊されたことを示す。さらに、各胚は、４種以下のインデルを有した。従って、ゲノム編集はエレクトロポレーション後に非常に迅速に、１細胞期または２細胞期に起こったと推定できる。５０ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび２５ｎｇ／μｌのｇＲＮＡを使用すると、殆どの胚が正常に見えたが、配列分析により、これらの胚に由来するクローンのいくつかにインデルまたは変異が検出された。
これらの結果は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ系によるゲノム編集にエレクトロポレーションを利用できること、および、ゲノム編集の効率はＲＮＡ濃度に依存することを示し、高濃度のＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡでは両対立遺伝子がほぼ全ての細胞で破壊されたが、低濃度では、変異細胞（いずれかまたは両方の対立遺伝子に変異を有する細胞）と野生型細胞のキメラ胚が得られたことを示唆する。
Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡのエレクトロポレーションによる、ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子のゲノム編集
Ｒｏｓａ２６遺伝子座にＨｉｓｔｏｎ２ｂ（Ｈ２ｂ）−ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子を有する受精卵（引用により本明細書の一部とするAbe et al., Genesis 49, 579-590 (2011)）をエレクトロポレーションに使用した。この受精卵から発生した胚では、Ｒｏｓａ２６プロモーターの制御下でＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙが遍在性に発現され、ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光が４〜８細胞期の全ての核で観察される。Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙを標的とするゲノム編集が起こり、遺伝子が破壊されると、ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光は消失する。
Ｒｏｓａ２６遺伝子座にＨｉｓｔｏｎ２ｂ（Ｈ２ｂ）−ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子を有する受精卵（引用により本明細書の一部とするAbe et al., Genesis 49, 579-590 (2011)）をエレクトロポレーションに使用した。この受精卵から発生した胚では、Ｒｏｓａ２６プロモーターの制御下でＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙが遍在性に発現され、ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光が４〜８細胞期の全ての核で観察される。Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙを標的とするゲノム編集が起こり、遺伝子が破壊されると、ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光は消失する。
この実験では、３０Ｖ、３ｍｓｅｃの電気パルスを７回繰り返すエレクトロポレーションで、ゲノム編集を可能にするＲＮＡ濃度の下限を調べた。Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙを標的とするｇＲＮＡを受精卵（Ｅ０.５）に導入し、ＫＳＯＭ培地中、インビトロで胚盤胞期（Ｅ４.５）まで培養し、核のｍＣｈｅｒｒｙ蛍光を調べた。２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび１００ｎｇ／μｌのｍＣｈｅｒｒｙ ｇＲＮＡ以上の濃度で受精卵をエレクトロポレーションすると、ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光は完全に消失した。５０〜１００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび２５〜５０ｎｇ／μｌのｇＲＮＡの濃度では、いくつかの割球はｍＣｈｅｒｒｙ蛍光陰性であり、いくつかは陽性であった。２５ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび１２.５ｎｇ／μｌのｇＲＮＡでのエレクトロポレーションは、Ｈ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙの発現に影響を与えなかったので、この濃度は、３０Ｖ、３ｍｓｅｃの電気パルスを７回繰り返すエレクトロポレーションによりゲノム編集を達成するには低すぎることが示された。
次に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡとｇＲＮＡのどちらの濃度がゲノム編集の成否を定めているのかを調べた。Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度を２５ｎｇ／μｌに固定し、ｇＲＮＡ濃度を変動させたところ、２００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡを使用してもゲノム編集は起こらなかった。一方、２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡを使用すると、ｇＲＮＡを１０ｎｇ／μｌに減らしてもゲノム編集は起こった。Ｆｇｆ１０を標的とするｇＲＮＡを使用しても、同じ結果が得られた。これらの結果は、エレクトロポレーションによるゲノム編集の成否は、ｇＲＮＡの濃度ではなく、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡの濃度に依存することを示す。
高濃度のＣａｓ９ ｍＲＮＡを使用するエレクトロポレーションによるゲノム編集
実施例４と同様の実験により、２０００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび１０００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡを使用し、ゲノム編集を達成する電気条件を調べた。Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡをＥ０.５のマウス受精卵に導入し、インビトロで胚盤胞期（Ｅ４.５）まで培養し、核のｍＣｈｅｒｒｙ蛍光を調べた。結果を図７に示す。エレクトロポレーションを行わなかった胚では全ての割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が見られた（図７ａ）。３０Ｖ、０.０５ｍｓｅｃ×２回では、一部の割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失し、３０Ｖ、０.１０ｍｓｅｃ×２回では、全ての割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失した（図７ｂ）。２０Ｖ、０.０５ｍｓｅｃ×２回では、全ての割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が残り、２０Ｖ、０.２０ｍｓｅｃ×２回では、一部の割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失し（矢頭）、２０Ｖ、１.００ｍｓｅｃ×２回では、全ての割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失した（図７ｃ）。
実施例４と同様の実験により、２０００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび１０００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡを使用し、ゲノム編集を達成する電気条件を調べた。Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡをＥ０.５のマウス受精卵に導入し、インビトロで胚盤胞期（Ｅ４.５）まで培養し、核のｍＣｈｅｒｒｙ蛍光を調べた。結果を図７に示す。エレクトロポレーションを行わなかった胚では全ての割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が見られた（図７ａ）。３０Ｖ、０.０５ｍｓｅｃ×２回では、一部の割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失し、３０Ｖ、０.１０ｍｓｅｃ×２回では、全ての割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失した（図７ｂ）。２０Ｖ、０.０５ｍｓｅｃ×２回では、全ての割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が残り、２０Ｖ、０.２０ｍｓｅｃ×２回では、一部の割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失し（矢頭）、２０Ｖ、１.００ｍｓｅｃ×２回では、全ての割球でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失した（図７ｃ）。
ゲノム編集のためのエレクトロポレーション条件の検討
実施例４と同様の実験により、２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび１００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡを使用して、ゲノム編集を達成するエレクトロポレーションの条件を検討した。様々な電圧（２０〜５０Ｖ）およびパルスの時間（６〜３３ｍｓｅｃ）のエレクトロポレーションにより、Ｅ０.５の受精卵５〜１２個に同時に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを導入した。表３に示すエレクトロポレーション条件により、Ｅ４.５の時点でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失している割球が観察され、ゲノム編集が起こったことが示された。
表４：ゲノム編集を達成するエレクトロポレーション条件
実施例４と同様の実験により、２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡおよび１００ｎｇ／μｌのｇＲＮＡを使用して、ゲノム編集を達成するエレクトロポレーションの条件を検討した。様々な電圧（２０〜５０Ｖ）およびパルスの時間（６〜３３ｍｓｅｃ）のエレクトロポレーションにより、Ｅ０.５の受精卵５〜１２個に同時に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡを導入した。表３に示すエレクトロポレーション条件により、Ｅ４.５の時点でｍＣｈｅｒｒｙの蛍光が消失している割球が観察され、ゲノム編集が起こったことが示された。
表４：ゲノム編集を達成するエレクトロポレーション条件
２００ｎｇ／μｌのＣａｓ９ ｍＲＮＡを使用すると、電圧２０Ｖ、通電時間１５ｍｓｅｃでゲノム編集が起こった。実施例１で測定した通り、この電気条件でのｍＲＮＡ導入効率は４.４１である。
エレクトロポレーションによるｓｓＯＤＮの導入およびＨＤＲ
エレクトロポレーションによりｓｓＯＤＮをマウスの受精卵に導入でき、ＨＤＲによるノックイン対立遺伝子を生成できるか否かを調べた。ｌｏｘＰおよびＥｃｏＲＩ認識配列（３７塩基）の両側に隣接する４０塩基長の相同領域を有する１１７塩基のｓｓＯＤＮ（配列番号７）を使用した。Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ、ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子を標的とするｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを、実施例４で使用したものと同様のＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子を有する受精卵にエレクトロポレーションした。胚を２細胞期まで発生させ、偽妊娠のメスに移植した。図８ａは、標的配列および、３７塩基のｌｏｘＰ配列およびＥｃｏＲＩ認識部位を挿入するためのｓｓＯＤＮの模式図である。置き換えられた対立遺伝子は、ｌｏｘＰ配列中の停止コドンにより機能を失い、核のｍＣｈｅｒｒｙ蛍光は消失する。ｓｓＯＤＮによる置換を、ＥｃｏＲＩ切断およびＲＦＬＰ（制限断片長多型）によりスクリーニングした。
エレクトロポレーションによりｓｓＯＤＮをマウスの受精卵に導入でき、ＨＤＲによるノックイン対立遺伝子を生成できるか否かを調べた。ｌｏｘＰおよびＥｃｏＲＩ認識配列（３７塩基）の両側に隣接する４０塩基長の相同領域を有する１１７塩基のｓｓＯＤＮ（配列番号７）を使用した。Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ、ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子を標的とするｇＲＮＡおよびｓｓＯＤＮを、実施例４で使用したものと同様のＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子を有する受精卵にエレクトロポレーションした。胚を２細胞期まで発生させ、偽妊娠のメスに移植した。図８ａは、標的配列および、３７塩基のｌｏｘＰ配列およびＥｃｏＲＩ認識部位を挿入するためのｓｓＯＤＮの模式図である。置き換えられた対立遺伝子は、ｌｏｘＰ配列中の停止コドンにより機能を失い、核のｍＣｈｅｒｒｙ蛍光は消失する。ｓｓＯＤＮによる置換を、ＥｃｏＲＩ切断およびＲＦＬＰ（制限断片長多型）によりスクリーニングした。
エレクトロポレーションした１１個すべての胚で、ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光が消失した。図８ｂは、エレクトロポレーションされた代表的な胚の写真である。エレクトロポレーションされた胚ではｍＣｈｅｒｒｙ蛍光は完全に消失し、一方、エレクトロポレーションしなかった対照の胚は蛍光シグナルを示した。図８ｃは、回収した胚のＲＦＬＰ分析の結果を示す。ＥｃｏＲＩ認識部位が挿入された対立遺伝子はＥｃｏＲＩにより２本のバンド（１３８ｂｐｓおよび３７４ｂｐｓ）に切断される。切断されていない対立遺伝子は４９７ｂｐｓである。＃３、６、８および９の胚で、切断されたバンドが観察された。即ち、ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光が消失した胚のうち、４個がＥｃｏＲＩ切断陽性であった。＃１および７の予想外のバンドは、標的遺伝子の長い欠損を示す。
ＥｃｏＲＩ切断陽性の胚の配列分析の結果を表５に示す。標的配列の周辺のゲノム領域の野生型配列は、ｇｔｇａａｃｇｇｃｃａｃｇａｇｔｔｃｇａｇａｔｃｇａＧＧＧｃｇａである（下線は標的として使用した配列を示す。大文字はＰＡＭ配列（ＧＧＧ）を示す）（配列番号１４）。
表５：ＨＤＲによるｌｏｘＰおよびＥｃｏＲＩ部位ノックイン胚の配列分析
表５：ＨＤＲによるｌｏｘＰおよびＥｃｏＲＩ部位ノックイン胚の配列分析
配列分析により、これらの胚のすべてがＨＤＲ置換された対立遺伝子を有することが明らかになった。これらのうち、３個の胚（＃６、８、９）は、ＨＤＲ置換された対立遺伝子に加えて、１種ないし３種のインデルを有する対立遺伝子を有した。残りの１個の胚（＃３）は、ＨＤＲ置換された対立遺伝子のみを有した。これは、全ての細胞の両方の対立遺伝子がＨＤＲ置換された配列を有することを示す。
また、ＨＤＲによるＨ２ｂ−ｍＣｈｅｒｒｙ遺伝子へのＥｃｏＲＶ部位のノックインにも成功した（表６および図９）。図９ａは、標的配列、およびＥｃｏＲＶ認識部位を挿入するためのｓｓＯＤＮ（配列番号８）の模式図である。図９ｂは、回収した胚のＲＦＬＰ分析の結果を示す。ＥｃｏＲＶが挿入された対立遺伝子は２本のバンド（３４１ｂｐｓおよび９２ｂｐｓ）に切断される。切断されていない対立遺伝子は４３１ｂｐｓである。＃２、３、５および６の胚で、切断されたバンドが観察された。
これらの胚の配列分析の結果を表６に示す。標的配列の周辺のゲノム領域の野生型配列は、ｇｔｇａａｃｇｇｃｃａｃｇａｇｔｔｃｇａｇａｔｃｇａＧＧＧｃｇａである（下線は標的として使用した配列を示す。大文字はＰＡＭ配列（ＧＧＧ）を示す）（配列番号１４）。
表６：ＨＤＲによるＥｃｏＲＶ部位ノックイン胚の配列分析
表中、同一の受精卵について同じ変異のタイプが２回以上記載されている場合、各クローンの配列は異なる。
表６：ＨＤＲによるＥｃｏＲＶ部位ノックイン胚の配列分析
また、Ｆｇｆ１０遺伝子へのＸｂａＩ部位のノックインにも成功した（データ非開示）。これらの結果は、エレクトロポレーションにより、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡおよびｇＲＮＡのみならず、ｓｓＯＤＮも受精卵に導入でき、ＨＤＲによるノックイン対立遺伝子が得られることを示す。
Claims (20)
- マウスの受精卵にＣａｓ９タンパク質をコードするｍＲＮＡ（Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ）を導入する方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｂ）下式（Ａ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ａ） Ｒｍｉｎ＝８８２／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり２５Ｖ以上、３０Ｖ未満のとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり３０Ｖ以上、４０Ｖ未満のとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり４０Ｖ以上、５０Ｖ未満のとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり２５Ｖより高く、５５Ｖ以下であり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり９９０Ｖｍｓｅｃ以下である、
の各段階を含む、方法。 - Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が５０ｎｇ／μｌ〜１０００ｎｇ／μｌである、請求項１に記載の方法。
- Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が５０ｎｇ／μｌ以上であり、２７.１以上のｍＲＮＡ導入効率を達成する電圧と通電時間で電極間に電圧をかける、請求項１または２に記載の方法。
- Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が１００ｎｇ／μｌ以上であり、１４.７以上のｍＲＮＡ導入効率を達成する電圧と通電時間で電極間に電圧をかける、請求項１または２に記載の方法。
- Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が２００ｎｇ／μｌ以上であり、７.９以上のｍＲＮＡ導入効率を達成する電圧と通電時間で電極間に電圧をかける、請求項１または２に記載の方法。
- Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が１００ｎｇ／μｌ以上であり、２７．１以上のｍＲＮＡ導入効率を達成する電圧と通電時間で電極間に電圧をかける、請求項１ないし請求項４のいずれかに記載の方法。
- Ｃａｓ９ ｍＲＮＡ濃度が２００ｎｇ／μｌ以上であり、１４.７以上のｍＲＮＡ導入効率を達成する電圧と通電時間で電極間に電圧をかける、請求項１ないし請求項４のいずれかに記載の方法。
- 電圧を１５までのパルスでかける、請求項１ないし請求項７のいずれかに記載の方法。
- マウスの受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡを導入する方法であって、
（ａ）エレクトロポレーション用電極の間に、Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを含む溶液および受精卵の混合物を置くこと、
（ｃ）下式（Ｂ）によりＣａｓ９ ｍＲＮＡ濃度ｃ（ｎｇ／μｌ）から算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に電圧をかけること、
式（Ｂ） Ｒｍｉｎ＝４４１／ｃ
ただし、ｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）は、通電時間ｔ（ｍｓｅｃ）から、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり２５Ｖ以上、３０Ｖ未満のとき、式（Ｉ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３−０.００５７×ｔ２＋０.２８４７×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり３０Ｖ以上、４０Ｖ未満のとき、式（ＩＩ）Ｒ＝０.００１５×ｔ３−０.０１９１×ｔ２＋０.９４８９×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり４０Ｖ以上、５０Ｖ未満のとき、式（ＩＩＩ）Ｒ＝０.０００５×ｔ３＋０.０５０８×ｔ２＋０.９９２２×ｔにより、
電圧が電極間距離１ｍｍ当たり５０Ｖ以上のとき、式（ＩＶ）Ｒ＝０.００７８×ｔ３−０.１４１４×ｔ２＋３.０１０３×ｔにより、算出される値である、
ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり２５Ｖより高く、５５Ｖ以下であり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり６３０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
（ｄ）式（Ｂ）により算出される最低ｍＲＮＡ導入効率（Ｒｍｉｎ）以上のｍＲＮＡ導入効率（Ｒ）を達成する電圧と通電時間で、電極間に段階（ｃ）とは逆方向の電圧をかけること、ただし、電圧は電極間距離１ｍｍ当たり２５Ｖより高く、５５Ｖ以下であり、電圧と通電時間の積は、電極間距離１ｍｍ当たり６３０Ｖｍｓｅｃ以下であり、電圧は２回以上のパルスに分けてかけてもよい、
の各段階を含み、
段階（ｃ）および（ｄ）で電圧を２回以上のパルスに分けてかける場合、一方向のパルスを連続してかけた後に逆方向のパルスをかけてもよく、各方向のパルスを交互にかけてもよく、各方向のパルスをランダムにかけてもよい、
方法。 - Ｃａｓ９タンパク質が、配列番号１ないし配列番号４のいずれかのアミノ酸配列に９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、ｇＲＮＡ依存的にＤＮＡに結合するタンパク質である、請求項１ないし請求項９のいずれかに記載の方法。
- Ｃａｓ９タンパク質が、ＲｕｖＣヌクレアーゼ活性およびＨＮＨヌクレアーゼ活性のいずれかまたは両方を有する、請求項１ないし請求項１０のいずれかに記載の方法。
- Ｃａｓ９タンパク質が配列番号１ないし配列番号４のいずれかのアミノ酸配列を含む、請求項１ないし請求項１１のいずれかに記載の方法。
- Ｃａｓ９タンパク質が配列番号１のアミノ酸配列を含む、請求項１ないし請求項１２のいずれかに記載の方法。
- 溶液が１種またはそれ以上のさらなる核酸分子を含み、該核酸分子がｇＲＮＡまたはｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組合せであり、該核酸分子がＣａｓ９ ｍＲＮＡと共に受精卵に導入される、請求項１ないし請求項１３のいずれかに記載の方法。
- さらなる核酸分子がｇＲＮＡである、請求項１４に記載の方法。
- 溶液が一本鎖オリゴデオキシヌクレオチド（ｓｓＯＤＮ）をさらに含む、請求項１４または請求項１５に記載の方法。
- 請求項１ないし請求項１６のいずれかに記載の方法により、マウスの受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡを導入することを含む、Ｃａｓ９を発現するマウスの受精卵の製造方法。
- 請求項１４ないし請求項１６のいずれかに記載の方法により、マウスの受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を導入することを含む、マウスの受精卵でゲノム編集を行う方法。
- 請求項１４ないし請求項１６のいずれかに記載の方法により、マウスの受精卵にＣａｓ９ ｍＲＮＡおよびさらなる核酸分子を導入することを含む、ゲノム編集されたマウスの受精卵の作製方法。
- 遺伝子改変マウスの作製方法であって、請求項１９に記載の方法で得られるマウスの受精卵を、レシピエントマウスに移植することを含む、方法。
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2015031006 | 2015-02-19 | ||
| JP2015031006 | 2015-02-19 | ||
| PCT/JP2016/054735 WO2016133165A1 (ja) | 2015-02-19 | 2016-02-18 | Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを哺乳動物の受精卵にエレクトロポレーションにより導入する方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPWO2016133165A1 JPWO2016133165A1 (ja) | 2017-11-30 |
| JP6354100B2 true JP6354100B2 (ja) | 2018-07-11 |
Family
ID=56689029
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2017500735A Active JP6354100B2 (ja) | 2015-02-19 | 2016-02-18 | Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを哺乳動物の受精卵にエレクトロポレーションにより導入する方法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US20180064073A1 (ja) |
| EP (1) | EP3260539B1 (ja) |
| JP (1) | JP6354100B2 (ja) |
| CN (1) | CN107406846A (ja) |
| WO (1) | WO2016133165A1 (ja) |
Families Citing this family (31)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CA2853829C (en) | 2011-07-22 | 2023-09-26 | President And Fellows Of Harvard College | Evaluation and improvement of nuclease cleavage specificity |
| US20150044192A1 (en) | 2013-08-09 | 2015-02-12 | President And Fellows Of Harvard College | Methods for identifying a target site of a cas9 nuclease |
| US9359599B2 (en) | 2013-08-22 | 2016-06-07 | President And Fellows Of Harvard College | Engineered transcription activator-like effector (TALE) domains and uses thereof |
| US9526784B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-12-27 | President And Fellows Of Harvard College | Delivery system for functional nucleases |
| US9340800B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-05-17 | President And Fellows Of Harvard College | Extended DNA-sensing GRNAS |
| US9388430B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-07-12 | President And Fellows Of Harvard College | Cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof |
| US20150166982A1 (en) | 2013-12-12 | 2015-06-18 | President And Fellows Of Harvard College | Methods for correcting pi3k point mutations |
| US10077453B2 (en) | 2014-07-30 | 2018-09-18 | President And Fellows Of Harvard College | CAS9 proteins including ligand-dependent inteins |
| EP4269577A3 (en) | 2015-10-23 | 2024-01-17 | President and Fellows of Harvard College | Nucleobase editors and uses thereof |
| SG11201900907YA (en) | 2016-08-03 | 2019-02-27 | Harvard College | Adenosine nucleobase editors and uses thereof |
| WO2018031683A1 (en) | 2016-08-09 | 2018-02-15 | President And Fellows Of Harvard College | Programmable cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof |
| JP6958917B2 (ja) * | 2016-08-10 | 2021-11-02 | 国立大学法人 東京医科歯科大学 | 遺伝子ノックイン細胞の作製方法 |
| US11542509B2 (en) | 2016-08-24 | 2023-01-03 | President And Fellows Of Harvard College | Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing |
| CN110214180A (zh) | 2016-10-14 | 2019-09-06 | 哈佛大学的校长及成员们 | 核碱基编辑器的aav递送 |
| EP3546575A4 (en) * | 2016-11-28 | 2019-12-11 | Osaka University | GENOMEDITIERUNGSVERFAHREN |
| US10745677B2 (en) | 2016-12-23 | 2020-08-18 | President And Fellows Of Harvard College | Editing of CCR5 receptor gene to protect against HIV infection |
| WO2018124155A1 (ja) * | 2016-12-27 | 2018-07-05 | 国立大学法人群馬大学 | 条件付きノックアウト動物の製造方法 |
| EP3592853A1 (en) | 2017-03-09 | 2020-01-15 | President and Fellows of Harvard College | Suppression of pain by gene editing |
| EP3592777A1 (en) | 2017-03-10 | 2020-01-15 | President and Fellows of Harvard College | Cytosine to guanine base editor |
| CN110914426A (zh) | 2017-03-23 | 2020-03-24 | 哈佛大学的校长及成员们 | 包含核酸可编程dna结合蛋白的核碱基编辑器 |
| CN108660161B (zh) * | 2017-03-31 | 2023-05-09 | 中国科学院脑科学与智能技术卓越创新中心 | 基于CRISPR/Cas9技术的制备无嵌合基因敲除动物的方法 |
| WO2018209320A1 (en) | 2017-05-12 | 2018-11-15 | President And Fellows Of Harvard College | Aptazyme-embedded guide rnas for use with crispr-cas9 in genome editing and transcriptional activation |
| WO2019023680A1 (en) | 2017-07-28 | 2019-01-31 | President And Fellows Of Harvard College | METHODS AND COMPOSITIONS FOR EVOLUTION OF BASIC EDITORS USING PHAGE-ASSISTED CONTINUOUS EVOLUTION (PACE) |
| US11319532B2 (en) | 2017-08-30 | 2022-05-03 | President And Fellows Of Harvard College | High efficiency base editors comprising Gam |
| JP2021500036A (ja) | 2017-10-16 | 2021-01-07 | ザ ブロード インスティテュート, インコーポレーテッドThe Broad Institute, Inc. | アデノシン塩基編集因子の使用 |
| CN107988267A (zh) * | 2017-12-18 | 2018-05-04 | 赛业（苏州）生物科技有限公司 | 一种高通量对受精卵进行基因编辑的电转方法 |
| JP2019118291A (ja) * | 2017-12-28 | 2019-07-22 | 株式会社ベックス | エレクトロポレーション用チャンバー及びチャンバーホルダー |
| CN109777837A (zh) * | 2018-12-26 | 2019-05-21 | 首都医科大学 | 一种利用CRISPR/Cas9***构建致死基因全身性敲除小鼠模型的方法 |
| BR112021018607A2 (pt) | 2019-03-19 | 2021-11-23 | Massachusetts Inst Technology | Métodos e composições para editar sequências de nucleotídeos |
| CN116096873A (zh) | 2020-05-08 | 2023-05-09 | 布罗德研究所股份有限公司 | 同时编辑靶标双链核苷酸序列的两条链的方法和组合物 |
| CN115044618A (zh) * | 2022-07-29 | 2022-09-13 | 福建省妇幼保健院 | 一种无创性基因转染人类胚胎的方法 |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| MX362866B (es) * | 2012-05-25 | 2019-02-20 | Univ California | Metodos y composiciones para la modificacion de adn objetivo dirigida por arn y para la modulacion de la transcripcion dirigida por arn. |
| JP5774657B2 (ja) * | 2013-10-04 | 2015-09-09 | 国立大学法人京都大学 | エレクトロポレーションを利用した哺乳類の遺伝子改変方法 |
| CN107002098A (zh) * | 2014-09-29 | 2017-08-01 | 杰克逊实验室 | 通过电穿孔高效率、高通量产生遗传修饰哺乳动物 |
-
2016
- 2016-02-18 US US15/551,791 patent/US20180064073A1/en not_active Abandoned
- 2016-02-18 EP EP16752551.8A patent/EP3260539B1/en active Active
- 2016-02-18 WO PCT/JP2016/054735 patent/WO2016133165A1/ja active Application Filing
- 2016-02-18 JP JP2017500735A patent/JP6354100B2/ja active Active
- 2016-02-18 CN CN201680010946.3A patent/CN107406846A/zh active Pending
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US20180064073A1 (en) | 2018-03-08 |
| JPWO2016133165A1 (ja) | 2017-11-30 |
| EP3260539A4 (en) | 2018-08-22 |
| EP3260539A1 (en) | 2017-12-27 |
| CN107406846A (zh) | 2017-11-28 |
| EP3260539B1 (en) | 2021-10-06 |
| WO2016133165A1 (ja) | 2016-08-25 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP6354100B2 (ja) | Ｃａｓ９ ｍＲＮＡを哺乳動物の受精卵にエレクトロポレーションにより導入する方法 | |
| Hashimoto et al. | Electroporation of Cas9 protein/sgRNA into early pronuclear zygotes generates non-mosaic mutants in the mouse | |
| JP6855543B2 (ja) | 植物プロトプラストからゲノム編集植物体を高効率で製造する方法 | |
| CN107208078B (zh) | 使用成对向导rna进行靶向遗传修饰的方法和组合物 | |
| JP6190995B2 (ja) | 簡便で高効率の遺伝子改変非ヒト哺乳動物の作製方法 | |
| JP2024023239A (ja) | 配列操作のための最適化されたＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ二重ニッカーゼ系、方法および組成物 | |
| JP2021121220A (ja) | Ｃａｓ９タンパク質のマルチサイクルエレクトロポレーションによる遺伝子修飾非ヒト哺乳動物 | |
| CA2989830A1 (en) | Crispr enzyme mutations reducing off-target effects | |
| JP6980218B2 (ja) | Ｃａｓ９タンパク質を哺乳動物の受精卵に導入する方法 | |
| EP2858486A2 (en) | Methods and compositions for generating conditional knock-out alleles | |
| JP6958917B2 (ja) | 遺伝子ノックイン細胞の作製方法 | |
| CA2961954A1 (en) | High efficiency, high throughput generation of genetically modified mammals by electroporation | |
| EP3546575A1 (en) | Genome editing method | |
| CN110484549B (zh) | 基因组靶向修饰方法 | |
| Hiruta et al. | Targeted gene disruption by use of CRISPR/Cas9 ribonucleoprotein complexes in the water flea Daphnia pulex | |
| Yuan et al. | A transgenic core facility’s experience in genome editing revolution | |
| Li et al. | Simultaneous gene editing by injection of mRNAs encoding transcription activator-like effector nucleases into mouse zygotes | |
| CN113881708A (zh) | 对动物受精卵进行电转染基因编辑的方法及其应用 | |
| Zhang et al. | Crispr/Cas9‐mediated cleavages facilitate homologous recombination during genetic engineering of a large chromosomal region | |
| KR20190023602A (ko) | 생식조절인자의 유전적 조작 및 이의 용도 | |
| EP1661992B1 (en) | Method of screening for homologous recombination events | |
| WO2024076688A2 (en) | Synthetic genomic safe harbors and methods thereof | |
| CN112997966A (zh) | 一种基于CRISPR/Cas9技术敲入miRNA-125a的小鼠模型及构建方法 | |
| JP2019068762A (ja) | 遺伝子改変不完全変態昆虫の作製方法 | |
| Mayshar et al. | Genetic manipulation of human embryonic stem cells |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20170908 |
|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20170908 |
|
| A871 | Explanation of circumstances concerning accelerated examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A871 Effective date: 20170908 |
|
| A975 | Report on accelerated examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971005 Effective date: 20171031 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20171114 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20180111 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20180220 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20180410 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20180424 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20180523 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 6354100 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |