JP5757636B2 - 植物病原体阻害剤組合せおよび使用方法 - Google Patents

Description

植物の植物病原体に対する抵抗性を誘導するアントラキノン誘導体を含有する植物抽出物と、抗微生物剤、生物学的防除剤および／または殺真菌活性を有する界面活性剤とを用いる、植物病原体感染を調節するために有用な組合せ、組成物および方法が本明細書で開示されている。

植物病原体に対する植物抵抗性
植物は、細菌、真菌およびウイルスなどの感染性因子によって引き起こされる病害に対する抵抗性に関する極めて効果的な機構を進化させてきた。この抵抗性は、いくつかの機構によって生じることができるが、そのうち最もよく知られているのは、全身獲得抵抗性（ｓｙｓｔｅｍｉｃ ａｑｕｉｒｅｄ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ（ＳＡＲ）；Ｒｏｓｓ，１９６１（非特許文献１）；Ｄｕｒｒａｎｔ ａｎｄ Ｄｏｎｇ，２００４（非特許文献２））および全身誘導抵抗性（ｉｎｄｕｃｅｄ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ（ＩＳＲ）；ｖａｎ Ｌｏｏｎら，１９９８（非特許文献３））である。最も単純な例では、誘導因子は、植物病原体それ自体であり、他の例では、誘導因子は、化学的化合物（サリチル酸、ベンゾ（１，２，３）チアジアゾール−７−カルボチオ酸Ｓ−メチルエステル（別名、ＢＴＨ））または物理的衝撃（例えば、水もしくは熱ストレス）のいずれかであることができる（Ｗａｌｔｅｒｓら，２００５（非特許文献４））。これは、低レベルの代謝的摂動の段階的発現と持続に依存するようである。ファイトアレキシン蓄積の誘発因子は、適用部位で誘発され、局所的防御に関与し得るが、これとは異なり、全身抵抗性の誘導因子は、感染後速やかに応答するように植物を全体として感作させる。これらの応答には、ファイトアレキシン蓄積と、木化と、キチナーゼおよびグルカナーゼの活性の増強とが含まれる。

オオイタドリ（ｇｉａｎｔ ｋｎｏｔｗｅｅｄ）（Ｍａｒｒｏｎｅ Ｂｉｏ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎｓ，Ｉｎｃ．により、ＭＩＬＳＡＮＡ（登録商標）およびＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）として販売されているオオイタドリ（Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａ ｓａｃｈａｌｉｎｅｎｓｉｓ））由来の抽出物は、主に真菌に有毒なフェノール化合物の植物中での蓄積を誘導することによって、ウリ科植物および他の作物のうどん粉病および他の植物病害を抑制する（Ｄａａｙｆら，１９９５（非特許文献５）；Ｗｕｒｍｓら，１９９９（非特許文献６）；Ｓｃｈｍｉｔｔ，２００２（非特許文献７））。最近、処方されたオオイタドリ（ｇｉａｎｔ ｋｎｏｔｗｅｅｄ）抽出物は、コムギうどん粉病菌を含む様々な作物および植物病原体における抵抗性を誘導する際にも大きな効率を示した（Ｖｅｃｈｅｔら，２００９（非特許文献８））。ＩＳＲ作用様式に加えて、処方されたオオイタドリ抽出物は、コムギうどん粉病菌（ｗｈｅａｔ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ）（コムギうどん粉病菌（Ｂｌｕｍｅｒｉａ ｇｒａｍｉｎｉｓ ｆ．ｓｐ．ｔｒｉｔｉｃｉ）；Ｒａｎｄｏｕｘら，２００８（非特許文献９））に対する直接的な静真菌効果を有することも最近示された。

殺真菌剤抵抗性
殺真菌剤抵抗性は、植物病原体を含む有害生物でよく見られる現象である。殺真菌剤（特に、シングルサイト作用様式を有するもの）が頻繁に使用されると、標的とされた病原体は、高い選択圧のために殺真菌剤に適応することができる。有害生物は、５〜５０世代以内に殺虫剤に対する抵抗性を発生させることができると推定されている（Ｍａｙ，１９８５（非特許文献１０））。ほとんどの植物病原体は、１つの成長期がこの範囲に収まり、したがって、殺真菌剤抵抗性を素早く発生させることができる。例えば、ベノミルは、それが最初に商業用途で登録されてから、ウリ科植物のうどん粉病の抑制に対する効力を失うまで１年しかかからなかった（ＭｃＧｒａｔｈ，２００１（非特許文献１１））。

キノン外部阻害剤（別名、ＱｏＩ殺真菌剤またはストロビルリン）は、それが１９９６年に導入されて以来、農業的に重要な真菌病原体を抑制するために広く使用されている。ストロビルリンは、ミトコンドリアにおけるシトクロムｂｃ１複合体を阻害することによって呼吸経路を遮断し、それによって、呼吸鎖における電子伝達プロセスを遮断し、アデノシン三リン酸（ＡＴＰ）の欠如によるエネルギー欠乏を引き起こす（Ｂａｒｔｌｅｔｔら，２００２（非特許文献１２））。ストロビルリンおよびシングルサイト作用様式を有する他の殺真菌剤（例えば、脱メチル化阻害剤（ＤＭＩ））は、植物病原体の間で抵抗性を発生させやすい。これまで、いくつかの植物病原性真菌は、ストロビルリン（Ｔｕｔｔｌｅ ＭｃＧｒａｔｈ，２００３（非特許文献１３）；Ｆｒａａｉｊｅら，２００３（非特許文献１４））およびＤＭＩ殺真菌剤（Ｓｃｈｎａｂｅｌら，２００４（非特許文献１５））に対する圃場抵抗性を発生させ、そして、適切な抵抗性管理戦略を開発するために相当な努力が世界中でなされ、抵抗性発生の危険性を最小限に抑えるプログラムおよびローテーションで殺真菌剤と他の抗真菌化合物をどのように組み合わせるかということに関する詳細な提案がなされた（Ｔｕｔｔｌｅ ＭｃＧｒａｔｈ，２００６（非特許文献１６）；Ｗｙｅｎａｎｄｔら，２００９（非特許文献１７））。

殺真菌剤抵抗性を抑制するための方法
殺真菌剤抵抗性を管理する最も一般的な戦略は、抵抗性を発生させやすい部位特異的殺真菌剤を組合せ（事前混合物またはタンク混合物）にして使用することである。抵抗性の管理に加えて、タンク混合は、１つの殺真菌剤が失敗した場合の代償機構および病原体に対する選択圧を低下させるために用量を減らす方法も提供する（ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｏｓｃｈ ａｎｄ Ｇｉｌｌｉｇａｎ，２００８（非特許文献１８））。場合によっては、タンク混合物にしたまたはローテーションにしたシングルサイト殺真菌剤とマルチサイト殺真菌剤の組合せは、相加的相互作用またはさらには相乗的相互作用を提供することができる（Ｇｉｓｉ，１９９６（非特許文献１９））。ＨｏｌｂおよびＳｃｈｎａｂｅｌ（２００８）（非特許文献２０）は、ＤＭＩ殺真菌剤と元素硫黄のタンク混合物を用いた圃場研究で褐色腐敗病（灰星病菌（Ｍｏｎｉｌｉｎｉａ ｆｒｕｃｔｉｃｏｌａ））の抑制の改善を示すことができ、また、Ｒｅｕｖｅｎｉ（２００１）（非特許文献２１）は、ネクタリンのうどん粉病を抑制するために、ストロビルリンおよびポリオキシンＢ殺真菌剤を硫黄と組み合わせて使用する利点を示した。

植物防御誘導因子（例えば、オオイタドリの抽出物）は、他のＳＡＲ／ＩＳＲ産物および生物防除剤（ＢＣＡ）とのタンク混合物およびローテーションにして試験されてきた（Ｈａｆｅｚら，１９９９（非特許文献２２）；ＢｅｌａｎｇｅｒおよびＢｅｎｙａｇｏｕｂ，１９９７（非特許文献２３）；Ｓｃｈｍｉｔｔら，２００２（非特許文献２４）；ＳｃｈｍｉｔｔおよびＳｅｄｄｏｎ，２００５（非特許文献２５）；Ｂａｒｄｉｎら，２００８（非特許文献２６））。これらの研究の目的は、主に、様々な種類の植物抽出物と生物防除剤との適合性を示すことであった。Ｋｏｎｓｔａｔｉｎｉｄｏｕ−Ｄｏｌｔｓｉｎｉｓら（２００７）（非特許文献２７）は、ブドウのうどん粉病に対してオオイタドリ産物をシュードジマ・フロックロサ（Ｐｓｅｕｄｏｚｙｍａ ｆｌｏｃｃｕｌｏｓａ）産物とのローテーションで試験し、両方の産物を交互に適用することによって、オオイタドリの効力が改善されることを見出した。同じ研究で、硫黄とオオイタドリをローテーションで交互にしても有益な効果はなかった。ＢｅｌａｎｇｅｒおよびＢｅｎｙａｇｏｕｂ（１９９７）（非特許文献２３）は、温室でキュウリうどん粉病に対して用いたとき、酵母に似た真菌であるシュードジマ・フロックロサが、オオイタドリと適合することを見出した。同様に、Ｂｏｋｓｈｉら（２００８）（非特許文献２８）は、全身獲得抵抗性の活性化因子であるベンゾチアジアゾールとＭＩＬＳＡＮＡ（登録商標）のキュウリうどん粉病に対する併用効果を評価し、ベンゾチアジアゾールとのローテーションで用いられるＭＩＬＳＡＮＡ（登録商標）が、圃場のうどん粉病に対する効果的な抑制策を提供することを見出した。しかしながら、病害の重症度および回収された収穫量データに基づいて、陽性の効果が相加的であるかまたは相乗的であるかを判定することはできなかった。

殺虫剤の相乗作用は、「殺虫剤の組合せに対する生物の全応答が個々の成分の合計よりも大きい２以上の化合物の同時作用」と定義されている（Ｎａｓｈ，１９８１（非特許文献２９））。したがって、殺真菌剤が相乗的に相互作用する場合、各々の個々の殺真菌剤の表示比率未満で、高レベルの病害抑制が達成される。通常、最良の効果は、異なる作用様式（ｍｏｄｅ
ｏｆ ａｃｔｉｏｎ（ＭＯＡ））を有する殺真菌剤の組合せで達成されるが、相乗作用は、同様の作用様式を有する製品の組合せ使用でも示されている（Ｄｅ Ｗａａｒｄ，１９９６（非特許文献３０））。殺真菌剤の相乗作用は、大半は、実験室研究で示されているが（ＳａｍｏｕｃｈａおよびＣｏｈｅｎ，１９８４（非特許文献３１）；Ｇｉｓｉ，１９９６（非特許文献１９））、一部の例では（ＫａｒａｏｇｌａｄｉｎｉｓおよびＫａｒａｄｉｍｏｓ，２００６（非特許文献３２）；ＢｕｒｐｅｅおよびＬａｔｉｎ，２００８（非特許文献３３））、相乗作用は、圃場研究でも見出されている。さらに、殺真菌剤（重炭酸塩および精製留出油）以外の抗真菌化合物の相乗作用が、バラうどん粉病および黒斑病に対して示されている（Ｈｏｒｓｔら，１９９２（非特許文献３４））。

Ｇａｎｄｈｉ，Ｎ．Ｒ．，Ｖ．Ｐ．Ｓｋｅｂｂａ，ｅｔ ａｌ．（２００７）．Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ ｒｈａｍｎｏｌｉｐｉｄ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ ｕｓｅ，ＵＳ ｐａｔｅｎｔ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｎｕｍｂｅｒ ２００７０１９１２９２．ＵＳＰＴＯ．ＵＳＡ：２７ｐ．

Ｒｏｓｓ，Ａ．Ｆ．（１９６１）．"Ｓｙｓｔｅｍｉｃ ａｃｑｕｉｒｅｄ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｌｏｃａｌｉｚｅｄ ｖｉｒｕｓ ｉｎｆｅｃｔｉｏｎｓ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ" Ｖｉｒｏｌｏｇｙ １４：３４０−３５８． Ｄｕｒｒａｎｔ，Ｗ．Ｅ．ａｎｄ Ｘ．Ｄｏｎｇ（２００４）．"Ｓｙｓｔｅｍｉｃ ａｃｑｕｉｒｅｄ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ．" Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｖｉｅｗ ｉｎ Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ４２：１８５−２０９． ｖａｎ Ｌｏｏｎら，１９９８ Ｗａｌｔｅｒｓ，Ｄ．，Ｄ．Ｗａｌｓｈ，ｅｔ ａｌ．（２００５）．"Ｉｎｄｕｃｅｄ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｆｏｒ ｐｌａｎｔ ｄｉｓｅａｓｅ ｃｏｎｔｒｏｌ：ｍａｘｉｍｉｚｉｎｇ ｔｈｅ ｅｆｆｉｃａｃｙ ｏｆ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｅｌｉｃｉｔｏｒｓ．" Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ８５：１３６８−１３７３． Ｄａａｙｆ，Ｆ．，Ａ．Ｓｃｈｍｉｔｔ，ｅｔ ａｌ．（１９９５）．"Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｅｘｔｒａｃｔｓ ｏｆ Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａ ｓａｃｈａｌｉｎｅｎｓｉｓ ｏｎ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ａｎｄ ｌｅａｆ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｌｏｎｇ Ｅｎｇｌｉｓｈ ｃｕｃｕｍｂｅｒ．" Ｐｌａｎｔ Ｄｉｓｅａｓｅ ７９：５７７−５８０． Ｗｕｒｍｓ，Ｋ．，Ｃ．Ｌａｂｂｅ，ｅｔ ａｌ．（１９９９）．"Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ Ｍｉｌｓａｎａ ａｎｄ Ｂｅｎｚｏｔｈｉａｄｉａｚｏｌｅ ｏｎ ｔｈｅ ｕｌｔｒａｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｈａｕｓｔｏｒｉａ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ．" Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ８９：７２８−７３６． Ｓｃｈｍｉｔｔ，Ａ．（２００２）．"Ｉｎｄｕｃｅｄ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｂｙ ｐｌａｎｔ ｅｘｔｒａｃｔｓ ｆｒｏｍ Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａ ｓａｃｈａｌｉｎｅｎｓｉｓ：ａ ｃａｓｅ ｓｔｕｄｙ．" Ｂｕｌｌ．ＩＯＢＣ／ＷＰＲＳ ２５：８３−８９ Ｖｅｃｈｅｔ，Ｌ．，Ｌ．Ｂｕｒｋｅｔｏｖａ，ｅｔ ａｌ．（２００９）．"Ａ ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ ｓｔｕｄｙ ｏｆ ｔｈｅ ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ ｏｆ ｓｅｖｅｒａｌ ｓｏｕｒｃｅｓ ｏｆ ｉｎｄｕｃｅｄ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ（Ｂｌｕｍｅｒｉａ ｇｒａｍｉｎｉｓ ｆ．ｓｐ．ｔｒｉｔｉｃｉ） ｉｎ ｗｈｅａｔ ｕｎｄｅｒ ｆｉｅｌｄ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ．" Ｃｒｏｐ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ ２８：１５１−１５４． Ｒａｎｄｏｕｘら，２００８（非特許文献９） Ｍａｙ，Ｒ．Ｍ．（１９８５）．"Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ．" Ｎａｔｕｒｅ ３１５：１２−１３． ＭｃＧｒａｔｈ，Ｍ．Ｔ．（２００１）．"Ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｉｎ ｃｕｃｕｒｂｉｔ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ：Ｅｘｐｅｒｉｅｎｃｅｓ ａｎｄ ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ．" Ｐｌａｎｔ Ｄｉｓｅａｓｅ ８５：２３６−２４５． Ｂａｒｔｌｅｔｔ，Ｄ．Ｗ．，Ｊ．Ｍ．Ｃｌｏｕｇｈ，ｅｔ ａｌ．（２００２）．"６４９−６６２．" Ｐｅｓｔ Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ ５８：６４９−６６２． Ｔｕｔｔｌｅ ＭｃＧｒａｔｈ，Ｍ．（２００３）．"Ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｏｆ ｓｔｒｏｂｉｌｕｒｉｎ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ａｎｄ ｉｍｐａｃｔ ｏｎ ｍａｎａｇｉｎｇ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｏｎ ｃｕｃｕｒｂｉｔｓ．" Ｃｏｒｎｅｌｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ；Ｖｅｇｅｔａｂｌｅ ＭＤ Ｏｎｌｉｎｅ Ｒｅｔｒｉｅｖｅｄ Ｊｕｌｙ １９，２００９，２００９，ｆｒｏｍ ｈｔｔｐ：／／ｖｅｇｅｔａｂｌｅｍｄｏｎｌｉｎｅ．ｐｐａｔｈ．ｃｏｒｎｅｌｌ．ｅｄｕ／ＮｅｗｓＡｒｔｉｃｌｅｓ／Ｃｕｃ＿Ｓｔｒｏｂ．ｈｔｍ． Ｆｒａａｉｊｅ，Ｂ．，Ｊ．Ａ．Ｌｕｃａｓ，ｅｔ ａｌ．（２００３）．ＱｏＩ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｃｅｒｅａｌ ｐａｔｈｏｇｅｎｓ ｉｎ ｔｈｅ ＵＫ．ＢＣＰＣ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｎｇｒｅｓｓ − Ｃｒｏｐ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ａｌｔｏｎ，Ｈａｎｔｓ，ＵＫ，ｐｐ．６８９−６９４． Ｓｃｈｎａｂｅｌ，Ｇ．，Ｂ．Ｋ．Ｂｒｙｓｏｎ，ｅｔ ａｌ．（２００４）．"Ｒｅｄｕｃｅｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｉｎ Ｍｏｎｉｌｉｎｉａ ｆｒｕｃｔｉｃｏｌａ ｔｏ ｐｒｏｐｉｃｏｎａｚｏｌｅ ｉｎ Ｇｅｏｒｇｉａ ａｎｄ ｉｍｐｌｃａｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ｄｉｓｅａｓｅ ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ" Ｐｌａｎｔ Ｄｉｓｅａｓｅ ８８：１０００−１００４． Ｔｕｔｔｌｅ ＭｃＧｒａｔｈ，Ｍ．（２００６）．"Ｇｕｉｄｅｌｉｎｅｓ ｆｏｒ ｍａｎａｇｉｎｇ ｃｕｃｕｒｂｉｔ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｉｎ ２００６．" Ｃｏｒｎｅｌｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｖｅｇｅｔａｂｌｅ ＭＤ Ｏｎｌｉｎｅ Ｒｅｔｒｉｅｖｅｄ Ｊｕｌｙ １９，２００９，２００９，ｆｒｏｍ ｈｔｔｐ：／／ｖｅｇｅｔａｂｌｅｍｄｏｎｌｉｎｅ．ｐｐａｔｈ．ｃｏｒｎｅｌｌ．ｅｄｕ／ＮｅｗｓＡｒｔｉｃｌｅｓ／Ｃｕｃ＿ＰＭ＿２００６．ｈｔｍｌ． Ｗｙｅｎａｎｄｔ，Ｃ．Ａ．，Ｍ．Ｔ．ＭｃＧｒａｔｈ，ｅｔ ａｌ．（２００９）．"Ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ ｇｕｉｄｅｌｉｎｅｓ ｆｏｒ ｃｕｃｕｒｂｉｔ ｄｏｗｎｙ ａｎｄ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｃｏｎｔｒｏｌ ｉｎ ｔｈｅ ｍｉｄ−Ａｔｌａｎｔｉｃ ａｎｄ Ｎｏｒｔｈｅａｓｔ ｒｅｇｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ ＵＳ．" Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ９９（２００９ ＡＰＳ Ａｎｎｕａｌ Ｍｅｅｔｉｎｇ Ａｂｔｓｒａｃｔｓ ｏｆ Ｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｏｎｓ）：Ｓ１４４−Ｓ１４４． Ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｏｓｃｈ，Ｆ．ａｎｄ Ｃ．Ａ．Ｇｉｌｌｉｇａｎ（２００８）．"Ｍｏｄｅｌｓ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｄｙｎａｍｉｃｓ．" Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｖｉｅｗ ｉｎ Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ４６：１２３−１４７． Ｇｉｓｉ，Ｕ．（１９９６）．"Ｓｙｎｅｒｇｉｓｔｉｃ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｉｎ ｍｉｘｔｕｒｅｓ" Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ８６：１２７３−１２７９． Ｈｏｌｂ，Ｉ．Ｊ．ａｎｄ Ｇ．Ｓｃｈｎａｂｅｌ（２００８）．"Ｔｈｅ ｂｅｎｅｆｉｔｓ ｏｆ ｃｏｍｂｉｎｉｎｇ ｅｌｅｍｅｎｔａｌ ｓｕｌｆｕｒ ｗｉｔｈ ａ ＤＭＩ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ ｔｏ ｃｏｎｔｒｏｌ Ｍｏｎｉｌｉｎｉａ ｆｒｕｃｔｉｃｏｌａ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｔｏ ｐｒｏｐｉｃｏｎａｚｏｌｅ．" Ｐｅｓｔ Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ ６４：１５６−１６４． Ｒｅｕｖｅｎｉ，Ｍ．（２００１）．"Ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ（Ｓｐｈａｅｒｏｔｈｅｃａ ｐａｎｎｏｓａ）ｏｆ ｎｅｃｔａｒｉｎｅｓ ｉｎ Ｉｓｒａｅｌ ｕｓｉｎｇ ｓｔｒｏｂｉｌｕｒｉｎ ａｎｄ ｐｏｌｙｏｘｉｎ Ｂ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ；ｍｉｘｔｕｒｅｓ ｗｉｔｈ ｓｕｌｆｕｒ；ａｎｄ ｅａｒｌｙ ｂｌｏｏｍ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．" Ｃｒｏｐ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ ２０：６６３−６６８． Ｈａｆｅｚ，Ｍ．Ｂ．，Ａ．Ｓｃｈｍｉｔｔ，ｅｔ ａｌ．（１９９９）．"Ｔｈｅ ｓｉｄｅ−ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｅｘｔｒａｃｔｓ ａｎｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ ｏｆ Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａ ｓａｃｈａｌｉｎｅｎｓｉｓ（Ｆ． Ｓｃｈｍｉｄｔ） Ｎａｋａｉ ａｎｄ ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｔｈｅ ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ ｏｒｇａｎｉｓｍ Ｔｒｉｃｈｏｇｒａｍｍａ ｃａｃｏｅｃｉａｅ Ｍａｒｃｈａｌ（Ｈｙｍ．，Ｔｒｉｃｈｏｇｒａｍｍａｔｉｄａｅ）．" Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｅｎｔｏｍｏｌｏｇｙ １２３：３６３−３６８． Ｂｅｌａｎｇｅｒ，Ｒ．Ｒ．ａｎｄ Ｍ．Ｂｅｎｙａｇｏｕｂ（１９９７）．"Ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ ａｎｄ ｐｒｏｓｐｏｅｃｔｓ ｆｏｒ ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗｓ ｉｎ ｔｈｅ ｇｒｅｅｎｈｏｕｓｅ．" Ｃａｎａｄｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ １９：３１０−３１４． Ｓｃｈｍｉｔｔ，Ａ．，Ｓ．Ｋｕｎｚ，ｅｔ ａｌ．（２００２）．Ｕｓｅ ｏｆ Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａ ｓａｃｈａｌｉｎｅｎｓｉｓ ｐｌａｎｔ ｅｘｔｒａｃｔｓ，ｃｌａｙ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ ａｎｄ Ｂｒｅｖｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｂｒｅｖｉｓ ａｇａｉｎｓｔ ｆｕｎｇａｌ ｄｉｓｅａｓｅｓ ｏｆ ｇｒａｐｅ ｂｅｒｒｉｅｓ． Ｆｏｒｄｅｒｇｅｍｅｉｎｓｃｈａｆｔ Ｏｋｏｌｏｇｉｓｈｅｒ Ｏｂｓｔｂａｕ ｅ．Ｖ．（ＦＯＫＯ） ａｎｄ ｄｅｒ Ｓｔａａｔｌｉｃｈｅｎ Ｌｅｈｒ− ｕｎｄ Ｖｅｒｓｕｃｈｓａｎｓｔａｌｔ ｆｕｒ Ｗｅｉｎ− ｕｎｄ Ｏｂｓｔｂａｕ（ＬｖＷＯ） Ｗｅｉｎｓｂｅｒｇ．１０ｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ ｏｎ ｃｕｌｔｉｃａｔｉｏｎ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ ａｎｄ ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｐｒｏｂｌｅｍｓ ｉｎ ｏｒｇａｎｉｃ ｆｒｕｉｔ−ｇｒｏｗｉｎｇ ａｎｄ ｖｉｔｉｃｕｌｔｕｒｅ；ｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｏｎｓ ａｔ ｔｈｅ ｍｅｅｔｉｎｇ ｆｒｏｍ ０４−０７．０２．２００２Ｗｅｉｎｓｂｅｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ，ｐｐ．１４６−１５１． Ｓｃｈｍｉｔｔ，Ａ．ａｎｄ Ｂ．Ｓｅｄｄｏｎ（２００５）．Ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｐａｔｈｏｇｅｎｓ ｗｉｔｈ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ＢＣＡｓ ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｅｘｔｒａｃｔｓ − ａｄｖａｎｔａｇｅｓ ａｎｄ ｄｉｓａｄｖａｎｔａｇｅｓ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ ａｎｄ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｕｓｅ．Ｍｏｄｅｒｎ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ａｎｄ ａｎｔｉｆｕｎｇａｌ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ＩＶ． Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ １４ｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｒｅｉｎｈａｒｄｓｂｒｕｎｎ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ ２００４，ＢＣＰＣ，Ａｔｌｏｎ，ＵＫ，ｐｐ．２０５−２２５． Ｂａｒｄｉｎ，Ｍ．，Ｊ．Ｆａｒｇｕｅｓ，ｅｔ ａｌ．（２００８）．"Ｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙ ｂｅｔｗｅｅｎ ｂｉｏｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｃｏｎｔｒｏｌ ｇｒｅｙ ｍｏｌｄ，ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ａｎｄ ｗｈｉｔｅｆｌｙ ｏｎ ｔｏｍａｔｏ．" Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｏｎｔｒｏｌ ４６：４７６−４８３． Ｋｏｎｓｔａｎｔｉｎｉｄｏｕ−Ｄｏｌｔｓｉｎｉｓ，Ｓ．，Ｅ．Ｍａｒｋｅｌｌｏｕ，ｅｔ ａｌ．（２００７）．"Ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｏｆ ｇｒａｐｅ ｉｎ Ｇｒｅｅｃｅ ｕｓｉｎｇ Ｓｐｏｒｏｄｅｘ Ｌ ａｎｄ Ｍｉｌｓａｎａ．" Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｄｉｓｅａｓｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ １１４：２５６−２６２． Ｂｏｋｓｈｉ，Ａ．Ｉ．，Ｊ．Ｊｏｂｌｉｎｇ，ｅｔ ａｌ．（２００８）．"Ａ ｓｉｎｇｌｅ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｉｌｓａｎａ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ Ｂｉｏｎ ａｓｓｉｓｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ａｎｄ ｈｅｌｐｓ ｏｖｅｒｃｏｍｅ ｙｉｅｌｄ ｌｏｓｓｅｓ．" Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ８３：７０１−７０６． Ｎａｓｈ，１９８１ Ｄｅ Ｗａａｒｄ，Ｍ．Ａ．（１９９６）．"Ｓｙｎｅｒｇｉｓｍ ａｎｄ ａｎｔａｇｏｎｉｓｍ ｉｎ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ ｍｉｘｔｕｒｅｓ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｓｔｅｒｏｌ ｄｅｍｅｔｈｙｌａｔｉｏｎ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ．" Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ８６：１２８０−１２８３． Ｓａｍｏｕｃｈａ，Ｙ．ａｎｄ Ｙ．Ｃｏｈｅｎ（１９８４）．"Ｓｙｎｅｒｇｙ ｂｅｔｗｅｅｎ ｍｅｔａｌａｘｙｌ ａｎｄ ｍａｃｏｚｅｂ ｉｎ ｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇ ｄｏｗｎｙ ｍｉｌｄｅｗ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒｓ．" Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ７４：１４３４−１４３７． Ｋａｒａｏｇｌａｎｉｄｉｓ，Ｇ．Ｓ．ａｎｄ Ｄ．Ａ．Ｋａｒａｄｉｍｏｓ（２００６）． "Ｅｆｆｉｃａｃｙ ｏｆ ｓｔｒｏｂｉｌｕｒｉｎｓ ａｎｄ ｍｉｘｔｕｒｅｓ ｗｉｔｈ ＤＭ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｉｎ ｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｉｎ ｆｉｅｌｄ−ｇｒｏｗｎ ｓｕｇａｒ ｂｅｅｔ．" Ｃｒｏｐ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ ２５：９７７−９８３． Ｂｕｒｐｅｅ，Ｌ．ａｎｄ Ｒ．Ｌａｔｉｎ（２００８）．"Ｒｅａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ ｓｙｎｅｒｇｉｓｍ ｆｏｒ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｄｏｌｌａｒ ｓｐｏｔ．" Ｐｌａｎｔ Ｄｉｓｅａｓｅ ９２：６０１−６０６． Ｈｏｒｓｔ，Ｒ．Ｋ．，Ｓ．Ｏ．Ｋａｗａｍｏｔｏ，ｅｔ ａｌ．（１９９２）．"Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｓｏｄｉｕｍ ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ ａｎｄ ｏｉｌｓ ｏｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ａｎｄ ｂｌａｃｋ ｓｐｏｔ ｏｎ ｒｏｓｅｓ．" Ｐｌａｎｔ Ｄｉｓｅａｓｅ ７６：２４７−２５１． Ｊａｍｅｓ，Ｗ．Ｃ．（１９７１）．Ａ ｍａｎｕａｌ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｋｅｙｓ ｆｏｒ ｐｌａｎｔ ｄｉｓｅａｓｅｓ． Ｓｔ．Ｐａｕｌ，ＭＮ，Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ． Ｌｉｍｐｅｌ，Ｌ．Ｅ．，Ｐ．Ｈ．Ｓｃｈｕｌｄｔ，ｅｔ ａｌ．（１９６２）．Ｎ．Ｅ．Ｗｅｅｄ Ｃｏｎｔｒｏｌ Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ． Ｒｉｃｈｅｒ，Ｄ．（１９８７）．"Ｓｙｎｅｒｇｉｓｍ − ａ ｐａｔｅｎｔ ｖｉｅｗ．" Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ １９：３０９−３１５． Ｓｕ，Ｈ．，Ａ．Ｈ．Ｃ．ｖａｎ Ｂｒｕｇｇｅｎ，ｅｔ ａｌ．（２００４）．"Ｓｐｏｒｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｒｅｍｉａ ｌａｃｔｕｃａｅ ａｆｆｅｃｔｅｄ ｂｙ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ，ｒｅｌａｔｉｖｅ ｈｕｍｉｄｉｔｙ，ａｎｄ ｗｉｎｄ ｉｎ ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ．" Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ９４：３９６−４０１ Ｈｗａｎｇ，Ｓ．Ｆ．，Ｈ．Ｗａｎｇ，ｅｔ ａｌ．（２００６）．"Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｓｅｅｄ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ａｎｄ ｒｏｏｔ ｐａｔｈｏｇｅｎｓ ｏｎ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ａｎｄ ｙｉｅｌｄ ｏｆ ａｌｆａｌｆａ，ｂｉｒｄｆｏｏｔ ｔｒｅｆｏｉｌ ａｎｄ ｓｗｅｅｔｃｌｏｖｅｒ．" Ｐｌａｎｔ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ Ｊｏｕｒｎａｌ ５：３２２−３２８． Ｂｒａｕｎ，Ｕ．，Ｔ．Ａ．Ｃｏｏｋ，ｅｔ ａｌ．（２００２）．Ｔｈｅ ｔａｘｏｎｏｍｙ ｏｆ ｔｈｅ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗ ｆｕｎｇｉ． Ｔｈｅ ｐｏｗｄｅｒｙ ｍｉｌｄｅｗｓ：ａ ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ ｔｒｅａｔｉｓｅ．Ｒ．Ｒ．Ｂｅｌａｎｇｅｒ，Ｗ．Ｒ．Ｂｕｓｈｎｅｌｌ，Ａ．Ｊ．Ｄｉｋ ａｎｄ Ｔ．Ｌ．Ｗ．Ｃａｒｖｅｒ．Ｓｔ．Ｐａｕｌ，ＭＮ，ＡＰＳ Ｐｒｅｓｓ：１３−５５．

（ａ）植物に由来する抽出物、ここで、該抽出物は、植物病原体に対する植物抵抗性（「植物病原体」とも称される）を誘導する１以上のアントラキノン誘導体を含有する、と、（ｂ）（ｉ）非元素、非湿潤性硫黄を欠く、または言い換えると、含有しない、非ベンゾジアチアゾール系、非ビタミンＥ系、非有機リン系の抗微生物剤、（ｉｉ）殺真菌活性を有する界面活性剤ならびに（ｉｉｉ）非バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）、非シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）、非ブレビバチルス（Ｂｒｅｖａｂａｃｉｌｌｕｓ）、非レカニシリウム（Ｌｅｃａｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）、非アンペロミセス（Ａｍｐｅｌｏｍｙｃｅｓ）、非フォーマ（Ｐｈｏｍａ）、非シュードジマ（Ｐｓｅｕｄｏｚｙｍａ）生物学的防除剤（例えば、ストレプトミセス属の種（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｓｐ．）、バークホルデリア属の種（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ ｓｐ．）、トリコデルマ属の種（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｓｐ．）、グリオクラディウム属の種（Ｇｌｉｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）に由来する薬剤または殺真菌および／もしくは殺昆虫活性を有する天然油もしくは油製品）からなる群から選択される１以上の抗植物病原体剤と、を含む組合せが開示され、特許請求されている。

特定の実施形態では、組合せは、（ａ）タデ科に由来する抽出物と、（ｂ）非元素もしくは非湿潤性硫黄を欠くまたは含有しない、非ベンゾジアチアゾール系、非ビタミンＥ系、非有機リン系の抗真菌剤および／または抗菌剤とを含む。

１つの特定の実施形態では、組合せは、（ａ）タデ科（例えば、オオイタドリ）に由来する抽出物と、（ｂ）限定するものではないが、ミクロブタニル、キノキシフェン、アゾキシストロビン、アシベンゾラル−Ｓ−メチル、メフェノキサム、トリフルミゾール、フルジオキソニル、プロピコナゾールを含み得るシングルサイト殺真菌剤および／またはマルチサイト殺真菌剤とを含む。

別の特定の実施形態では、組合せは、（ａ）タデ科（例えば、オオイタドリ）に由来する抽出物と、（ｂ）殺真菌および／または殺昆虫活性を有する天然油または油製品とを含む。

さらに別の特定の実施形態では、組合せは、組成物、特に、植物病原体または真菌感染の調節に使用される組成物である。本発明はさらに、これらの組成物の処方における抽出物および抗植物病原体剤の使用に関する。

本発明はさらに、（ａ）植物に由来する抽出物、ここで、該植物は、植物病原体に対する植物抵抗性を誘導するアントラキノン誘導体を含有する、と、（ｂ）非元素もしくは非湿潤性硫黄を欠くまたは含有しない非ビタミンＥ系、非有機リン系の抗微生物剤（例えば、抗真菌剤および／または抗菌剤）とを含む、植物病原体感染の調節に使用される相乗的組合せに関する。特定の実施形態では、抗微生物剤は、ベンゾジアチアゾール（例えば、アシベンゾラル−Ｓ−メチル）、トリアゾール（例えば、プロピコナゾール）またはストロビルリン（例えば、アゾキシストロビン）である。

上述の組合せを組成物へと処方することもできる。

本発明はさらに、植物における植物病原体感染を調節するための方法であって、植物および／またはその種子および／または該植物を生育させるのに使用される基板に、該植物病原体感染を調節するのに有効な量の上に示した本発明の組合せを適用することを含む、方法に関する。

特定の実施形態では、本発明は、植物における真菌および／または細菌感染を調節するための方法であって、植物および／またはその種子および／または該植物を生育させるのに使用される基板に、該真菌および／または細菌感染を調節するのに有効な量の本発明の組合せを適用することを含む、方法に関する。

抽出物と該抗植物病原体剤（例えば、抗真菌および／または抗菌剤）とを、連続的に、同時にまたは組み合わせて間欠的に投与してもよい。本明細書で定義するように、「植物病原体感染」は、植物病原性の細菌、真菌、昆虫、線虫および／または軟体動物による植物の感染を意味する。

本発明はさらに、（ｉ）非元素もしくは非湿潤性硫黄を欠く、または言い換えると、含有しない、非ビタミンＥ系、非有機リン系の抗微生物剤、（ｉｉ）殺真菌活性を有する界面活性剤ならびに／または（ｉｉｉ）非バチルス、非シュードモナス、非ブレビバチルス、非レカニシリウム、非アンペロミセス、非フォーマ、非シュードジマ生物学的防除剤（例えば、ストレプトミセス属の種、バークホルデリア属の種、トリコデルマ属の種、グリオクラディウム属の種に由来する薬剤または殺真菌および／もしくは殺昆虫活性を有する天然油もしくは油性製品）に対する植物病原体（例えば、真菌および／または細菌）の抵抗性を減少させるための方法であって、それを必要とする植物に、該抵抗性の出現を減少させるのに有効な量の本発明の組合せを適用することを含む、方法に関する。特定の実施形態では、本発明は、非元素または非湿潤性硫黄、非ベンゾジアチアゾール系、非ビタミンＥ系、非有機リン系の抗真菌および／または抗菌剤に対する真菌および／または細菌の抵抗性を減少させるための方法に関する。さらに別の特定の実施形態では、本発明は、本発明の組合せを用いて、殺真菌および／または殺昆虫活性を有する天然油もしくは油性製品に対する真菌および／または細菌の抵抗性を減少させるための方法に関する。これは、出現頻度または出現率を低下させることによって達成してもよい。上述の抗病原性薬剤に対する植物病原体の抵抗性は、少なくとも５０％低下させることができる。

本発明はさらに、植物病原体感染を調節するための組成物を製造するための、（ａ）植物に由来する抽出物、ここで、該抽出物は、植物病原体に対する植物抵抗性を誘導するアントラキノン誘導体を含有する、と、（ｂ）（ｉ）非元素、非湿潤性硫黄を欠く、非ベンゾジアチアゾール系、非ビタミンＥ系、非有機リン系の抗微生物剤、（ｉｉ）殺真菌活性を有する界面活性剤および（ｉｉｉ）非バチルス、非シュードモナス、非ブレビバチルス、非レカニシリウム、非アンペロミセス、非フォーマ、非シュードジマ生物学的防除剤からなる群から選択される１以上の抗植物病原体剤と、の使用、ならびに植物病原体感染を調節するための相乗的組成物を製造するための、（ａ）植物に由来する抽出物、ここで、該植物は、植物病原体に対する植物抵抗性を誘導するアントラキノン誘導体を含有する、と、（ｂ）ベンゾジアチアゾール系抗微生物剤と、の使用に関する。

本発明はさらに、（ａ）タデ科に由来する抽出物と、（ｂ）（ｉ）非元素または非湿潤性硫黄を欠く、非ベンゾジアチアゾール系、非ビタミンＥ系、非有機リン系の抗微生物剤、（ｉｉ）殺真菌活性を有する界面活性剤および（ｉｉｉ）非バチルス、非シュードモナス、非ブレビバチルス、非レカニシリウム、非アンペロミセス、非フォーマ、非シュードジマ生物学的防除剤からなる群から選択される１以上の抗植物病原体剤とを含むキットに関する。このキットはさらに、添付文書を含んでいてもよい。

値の範囲が提供されている場合、その範囲の上限と下限の間の、文脈から明らかにそうでないと示されない限り、下限の１０分の１の位までの、各々の介在する値、および任意の他の記述された範囲またはその記述された範囲内の介在する値は、本発明に包含されることが理解される。記述された範囲内の特に除外される限度次第で、これらのより小さい範囲の上限および下限がそのより小さい範囲内に独立に含まれ得ることも本発明に包含される。記述された範囲がこれらの限度の一方または両方を含む場合、その含まれた限度のどちらか一方または両方を除外する範囲も本発明に含まれる。

別途定義しない限り、本明細書で使用される全ての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般に理解されているものと同じ意味を有する。本明細書に記載されているものと同様または同等の任意の方法および材料を本発明の実施または試験において用いることができるが、好ましい方法および材料がここに記載されている。さらに、本発明は、特定の実施形態を参照して記載されているが、様々な等価物、変更および修正を用いることができ、かつそれらも依然として本発明の範囲内にあることが明白であるので、その詳細は、限定的なものとみなされるべきではない。

様々な参考文献が本明細書の全体を通して引用されており、その各々は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。

本明細書および添付の特許請求の範囲で使用されるように、単数形の「１つの（ａ）」、「１つの（ａｎ）」および「その（ｔｈｅ）」は、文脈から明らかにそうでないことが示されない限り、複数の指示対象を含むことに留意しなければならない。例えば、「真菌（ａ ｆｕｎｇｕｓ）」は、「真菌（ｆｕｎｇｉ）」も包含する。

本明細書で定義されるように、「調節する（ｍｏｄｕｌａｔｅ）」という用語は、植物病原体感染の量または植物病原体感染の蔓延速度を変化させることを意味するために用いられる。

抽出物
本発明の組合せ、組成物および方法で使用される植物抽出物は、植物の有害生物、特に、植物の植物病原体（例えば、植物病原性の細菌、真菌、昆虫、線虫）に対して使用される生化学的農業製品としておよび／または軟体動物駆除剤としてアントラキノン誘導体を含有する。「含有する」は、該アントラキノン誘導体を生じさせる抽出物も包含する。特定の実施形態では、本発明の組成物および方法で使用される本発明のアントラキノン誘導体は、主要活性成分または主要活性成分のうちの１つである。

アントラキノン誘導体としては、フィスシオン、エモジン、クリソファノール、ベンチロキノン、エモジングリコシド、クリソファノールグリコシド、フィスシオングリコシド、３，４−ジヒドロキシ−１−メトキシアントラキノン−２−カルボキシアルデヒド、ダムナカンタールが挙げられるが、これらに限定されない。これらの誘導体は、以下の、同様の構造を共有する：

（ここで、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５、Ｒ６、Ｒ７およびＲ８は、水素、ヒドロキシル、ヒドロキシルアルキル、ハロゲン、カルボキシル、アルキル、アルキルオキシル、アルケニル、アルケニルオキシル、アルキニル、アルキニルオキシル、ヘテロシクリル、芳香族、またはアリール基、糖（例えば、グルコース）である）。

特定の実施形態では、本発明は、限定するものではないが、タデ科、クロウメモドキ科、マメ科、ツルボラン科、およびアカネ科などを含む植物の科に由来する抽出物に含まれるアントラキノン誘導体に関する。これらの化合物は、葉、茎、皮、根および果実などの、植物の任意の部分からのものであることができる。植物材料は、湿った植物材料および乾燥した植物材料であることができるが、好ましくは乾燥した植物材料である。生化学的農業製品に適合するために、抽出および精製で使用される溶媒およびプロセスは、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｐｒｏｇｒａｍ（ＮＯＰ）［ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ａｍｓ．ｕｓｄａ．ｇｏｖ／ＡＭＳｖ１．０／ｎｏｐ，］の要件を満たさなければならない。

より具体的な実施形態では、植物抽出物は、タデ科のメンバーに由来する。本明細書で定義されるように、「に由来する」は、特定の源から直接単離もしくは入手されること、または、特定の源から直接単離もしくは入手された物質もしくは生物を同定する特徴を有していることを意味する。特定の実施形態では、該組合せでの抽出物は、アントラキノン誘導体のフィスシオンおよび場合により、エモジンを含有する。タデ科のメンバーとしては、限定するものではないが、アセトセッラ（Ａｃｅｔｏｓｅｌｌａ）、アンティゴノン（Ａｎｔｉｇｏｎｏｎ）、アリストカプサ（Ａｒｉｓｔｏｃａｐｓａ）、ビルデルディキア（Ｂｉｌｄｅｒｄｙｋｉａ）、ブルンニキア（Ｂｒｕｎｎｉｃｈｉａ）、ケントロステギア（Ｃｅｎｔｒｏｓｔｅｇｉａ）、コリザンテ（Ｃｈｏｒｉｚａｎｔｈｅ）、コッコロバ（Ｃｏｃｃｏｌｏｂａ）、コッコロビス（Ｃｏｃｃｏｌｏｂｉｓ）、コッコロボ（Ｃｏｃｃｏｌｏｂｏ）、コルクルム（Ｃｏｒｃｕｌｕｍ）、デデクケラ（Ｄｅｄｅｃｋｅｒａ）、デロピルム（Ｄｅｌｏｐｙｒｕｍ）、デントケラス（Ｄｅｎｔｏｃｅｒａｓ）、ドデカエマ（Ｄｏｄｅｃａｈｅｍａ）、エメクス（Ｅｍｅｘ）、エリオゴヌム（Ｅｒｉｏｇｏｎｕｍ）、ファフォピルム（Ｆａｆｏｐｙｒｕｍ）、ファゴピルム（Ｆａｇｏｐｙｒｕｍ）、ファロピア（Ｆａｌｌｏｐｉａ）、ギルマニア（Ｇｉｌｍａｎｉａ）、ゴオドマニア（Ｇｏｏｄｍａｎｉａ）、ハルフォルディア（Ｈａｒｆｏｒｄｉａ）、ホルリステリア（Ｈｏｌｌｉｓｔｅｒｉａ）、コエニギア（Ｋｏｅｎｉｇｉａ）、ラスタッリアエア（Ｌａｓｔａｒｒｉａｅａ）、ムクロネア（Ｍｕｃｒｏｎｅａ）、ムエレンベッキア（Ｍｕｅｈｌｅｎｂｅｃｋｉａ）、ネマカウリス（Ｎｅｍａｃａｕｌｉｓ）、オキシリア（Ｏｘｙｒｉａ）、オキシテカ（Ｏｘｙｔｈｅｃａ）、ペルスカリオア（Ｐｅｒｓｃａｒｉｏａ）、ペルシカリア（Ｐｅｒｓｉｃａｒｉａ）、プレウロプテルス（Ｐｌｅｕｒｏｐｔｅｒｕｓ）、ポドプテルス（Ｐｏｄｏｐｔｅｒｕｓ）、ポリゴネッラ（Ｐｏｌｙｇｏｎｅｌｌａ）、ポリゴヌム（Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ）、プテロステギア（Ｐｔｅｒｏｓｔｅｇｉａ）、ダイオウ（Ｒｈｅｕｍ）、ルメクス（Ｒｕｍｅｘ）、ルプレクティア（Ｒｕｐｒｅｃｈｔｉａ）、ステノゴヌム（Ｓｔｅｎｏｇｏｎｕｍ）、システノテカ（Ｓｙｓｔｅｎｏｔｈｅｃａ）、ティサネッラ（Ｔｈｙｓａｎｅｌｌａ）、トヴァラ（Ｔｏｖａｒａ）、トラカウロン（Ｔｒａｃａｕｌｏｎ）、トリプラリス（Ｔｒｉｐｌａｒｉｓ）が挙げられ、さらにより具体的な実施形態では、抽出物は、イタドリ（別称、ファロピア）属の種またはダイオウ種に由来していてもよい。最も具体的な実施形態では、抽出物は、オオイタドリに由来する。

抗植物病原体剤
次に、処方された抽出物（例えば、ＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）およびＭＩＬＳＡＮＡ（登録商標）という商標名で市販されている製品）は、他の抗植物病原体剤、植物抽出物、生物農薬、無機作物保護剤（例えば、銅）、界面活性剤（例えば、ラムノリピッド；Ｇａｎｄｈｉら，２００７（特許文献１））もしくは天然油（例えば、殺虫特性を有するパラフィン系オイルおよびティーツリー油）またはシングルサイト作用様式、マルチサイト作用様式もしくは未知の作用様式のいずれかを有する化学的殺真菌剤もしくは殺菌剤と組み合わせて使用することができる。本明細書で定義されるように、「抗植物病原体剤」は、植物での植物病原体の増殖を調節するか、または、植物病原体による植物の感染を防ぐ薬剤である。植物病原体としては、真菌、細菌、ウイルス、昆虫、線虫および／または軟体動物が挙げられるが、これらに限定されない。

特定の実施形態では、抗植物病原体剤は、生物農薬（別称、生物防除剤）である。この生物防除剤は、より具体的な実施形態では、非バチルス、非シュードモナス、非ブレビバチルス、非レカニシリウム、非アンペロミセス、非フォーマ、非シュードジマ生物学的防除剤であり、ストレプトミセス属の種、バークホルデリア属の種、トリコデルマ属の種、グリオクラディウム属の種に由来する薬剤である。あるいは、薬剤は、殺真菌および／または殺昆虫活性を有する天然油または油製品（例えば、パラフィン系オイル、ティーツリー油、レモングラス油、丁子油、桂皮油、柑橘油、ローズマリー油）である。

上で述べたように、抗植物病原体剤は、シングルサイト抗真菌剤であってもよく、これには、ベンズイミダゾール、脱メチル化阻害剤（ＤＭＩ）（例えば、イミダゾール、ピペラジン、ピリミジン、トリアゾール）、モルホリン、ヒドロキシピリミジン、アニリノピリミジン、ホスホロチオレート、キノン外部阻害剤、キノリン、ジカルボキシミド、カルボキシミド、フェニルアミド、アニリノピリミジン、フェニルピロール、芳香族炭化水素、桂皮酸、ヒドロキシアニリド、抗生物質、ポリオキシン、アシルアミン、フタルイミド、ベンゼノイド（キシリルアラニン）が含まれ得るが、これらに限定されない。より具体的な実施形態では、抗真菌剤は、イミダゾール（例えば、トリフルミゾール）、ピペラジン、ピリミジンおよびトリアゾール（例えば、ビテルタノール、ミクロブタニル、ペンコナゾール、プロピコナゾール、トリアジメホン、ブロムコナゾール、シプロコナゾール、ジニコナゾール、フェンブコナゾール、ヘキサコナゾール、テブコナゾール、テトラコナゾール、プロピコナゾール）からなる群から選択される脱メチル化阻害剤である。最も具体的な実施形態では、抗真菌剤はミクロブタニルである。さらに別の特定の実施形態では、抗真菌剤は、キノン外部阻害剤（例えば、ストロビルリン）である。ストロビルリンには、アゾキシストロビン、クレソキシム−メチルまたはトリフロキシストロビンが含まれ得るが、これらに限定されない。さらに別の特定の実施形態では、抗真菌剤は、キノン、例えば、キノキシフェン（５，７−ジクロロ−４−キノリル４−フルオロフェニルエーテル）である。

またさらなる実施形態では、抗微生物剤は、ニトリル（例えば、クロロニトリルまたはフルジオキソニル）、キノキサリン、スルファミド、ホスホネート、ホスファイト、ジチオカルバメート、クロロアルキルチオ、フェニルピリジン−アミン、シアノ−アセトアミドオキシムからなる群から選択される非無機系の化学的マルチサイト殺真菌剤である。

さらに別の実施形態では、抗植物病原体剤は抗菌剤である。この抗菌剤としては、カルバメート、オルガノホスフェート、シクロジエンオルガノクロライド、フェニルピラゾール、ピレスロイド、ピレトリン、ネオニコチノイド、ニトログアナジン、ニコチン、スピノシン、グリコシド、幼若ホルモン類似体および他の昆虫増殖調節因子、ピリジンアゾメチン、ピリジンカルボキサミド、テトラジン、チアゾリジノン、２，４−ジフェニルオキシゾリン誘導体、有機スズ、ピロール、ブプロフェジン、ヒドラメチルノン、ナフトキノン誘導体、ピリダジノン、フェノキシピラゾール、テトロン酸、カルバゼート、ロテノン、有機塩素化合物−ジフェニル脂肪族化合物が挙げられるが、これらに限定されない。

使用
該植物抽出物または処方された製品は、タンク混合物中の他の成分（単数または複数）と同時に、または成長期の間、予め決められた順序および適用間隔にしたプログラム（ローテーションと呼ばれる連続適用）で使用することができる。製品表示で推奨されているよりも低い濃度で上述の殺虫製品と組み合わせて用いたとき、２以上の製品（そのうちの１つは、該植物抽出物である）の組み合わせた効力は、好ましい実施形態では、一緒に添加した各々の個々の成分の効果よりも高い。したがって、殺虫効果は、これら２つ（またはそれより多く）の製品間の相乗作用によって増強され、植物病原性株間の殺虫剤抵抗性の発生の危険性が低下する。

本発明の範囲内で防御されるべき標的植物は、例えば、以下の植物種：穀草類（コムギ、オオムギ、ライムギ、カラスムギ、コメ、ソルガムおよび関連作物）、ビート（サトウダイコンおよび飼料用ビート）、ポムおよびソフトフルーツ（リンゴ、西洋ナシ、プラム、モモ、アーモンド、サクランボ、イチゴ、ラズベリーおよびブラックベリー）、マメ科植物（マメ、平マメ、エンドウマメおよびダイズ）、油脂植物（セイヨウアブラナ、マスタード、ポピー、オリーブ、ヒマワリ、ココナツ、ヒマシ油植物、カカオマメおよび落花生）、ウリ科植物（キュウリ、メロン、カボチャ、ナス）、繊維植物（綿、亜麻、麻およびジュート）、柑橘果実（オレンジ、レモン、グレープフルーツおよびマンダリン）、野菜（ホウレンソウ、レタス、アスパラガス、キャベツ、ニンジン、タマネギ、トマト、ジャガイモおよびパプリカ）、クスノキ科（アボカド、シナモンおよびショウノウ）またはトウモロコシ、タバコ、ナッツ、コーヒー、サトウキビ、茶、つる、ホップ、バナナなどの植物ならびに天然ゴム植物、ならびに観賞植物（キク科植物）、土壌の浸食または乾燥を防ぐ草または一般的な丈の低い被覆作物の地帯を含み、樹木および多年生植物の栽培（果実プランテーション、ホッププランテーション、トウモロコシ畑、ブドウ園など）において有用である。

本発明における製品の組合せを適用する好ましい方法は、担体を伴うまたは伴わない、葉面適用（噴霧、散布、散粉、拡散または注入）である。適用の数および適用の比率は、病原体による感染の危険性によって決まる。例えば、本特許に含まれる組合せおよび混合物による葉面殺虫剤処理は、製品表示で推奨されているよりも２５〜１０，０００倍低い比率で、７〜１４日ごとに１回行なうことができる。本発明において標的とされている製品混合物および組合せはまた、種子を活性成分を含有する液体製剤に含浸するかまたは種子を固体製剤でコーティングするかのいずれかによって、種子に適用してもよい。特別な例では、さらなる種類の適用も可能である。これらには、土壌灌注または植物の茎もしくは芽の選択的処理が含まれる。

本発明の混合物および、必要に応じて固体または液体補助剤は、公知の方法で調製される。例えば、混合物は、活性成分を溶媒、固体担体および、必要に応じて表面活性化合物（界面活性剤）などの増量剤とともに均一に混合し、かつ／または粉砕することによって調製してもよい。組成物はまた、さらなる成分（例えば、安定化剤、粘度調節物質、結合剤、補助剤ならびに肥料または特別な効果を得るための他の活性成分）を含有していてもよい。

以下に示すように、前述の目的および利点の達成において、相乗的または相加的効果をもたらす比率で２以上の製品を用いることによって、それらの効力を増大させるための方法の実施例。ここに記載された組成物および方法は、温室栽培されたキュウリ（キュウリ（Ｃｕｃｕｍｉｓ ｓａｔｉｖｕｓ））における病害発生率および重症度を低下させるのに効果的であることが証明されているが、その概念は、他の植物品種および種についても効果的に用いることができる。これらの組成物および方法は、キュウリうどん粉病に対して特に効果的であるが、それらは、他の真菌、細菌、およびウイルスによる植物病害（例えば、灰色カビ病、斑点病、青枯れ病、赤カビ病、炭疽病、タバコモザイクウイルスなど）にも同様に適用することができる。

材料および方法
うどん粉病（実施例Ｉ〜ＶおよびＸ〜ＸＩ）
研究は温室で実施した。相乗作用についての研究の実験デザインは、ＢｕｒｐｅｅおよびＬａｔｉｎ（２００８）（非特許文献３３）に従った。処理の効力を調べるために、キュウリうどん粉病菌（Ｓｐｈａｅｒｏｔｈｅｃａ ｆｕｌｉｇｉｎｅａ）によって引き起こされるうどん粉病を用いた。

キュウリ種子の栽培品種「ＳＭＲ ５８」（Ｉｒｗｉｎ ＆ Ｓｏｎｓ Ａｇ Ｓｕｐｐｌｙ，Ｉｎｃ．Ｃｈｅｓｈｉｒｅ，ＯＲ）を鉢植え用の土混合物（Ｒｏｄ ＭｃＬｅｌｌａｎ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｍａｒｙｓｖｉｌｌｅ，ＯＨ）を含むプラスチックの４インチの鉢で生育させた。第２本葉期で植物を処理した。様々な比率の化合物を、植物１つ当たり葉の表側に２ｍｌおよび葉の裏側に１ｍｌで、２オンス霧吹きを用いて噴霧した。接種する前に、処理した植物を蛍光灯の下で３〜４時間放置して、乾燥させた。

接種菌の保存に役立つキュウリ植物の病気の葉を切断することによって、キュウリのうどん粉病の病原体であるキュウリうどん粉病菌の分生子懸濁液を調製した。この懸濁液を１ｍｌ当たり２．０×１０^５分生子に調整し、植物１つ当たり葉の表側に２ｍｌで、２オンス霧吹きを用いて適用した。接種された植物を温室に置き、処理を２５℃〜３０℃で、４〜６反復完全乱塊法で配置した。

第１葉の病害の重症度（コロニーで被覆された面積率）をＪａｍｅｓ（１９７１）（非特許文献３５）に従って評価した。病害の重症度および抑制率を分散分析（ＡＮＯＶＡ）で分析し、処理の平均をフィッシャーの最小有意差法（Ｆｉｓｈｅｒ’ｓ Ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ Ｌｅａｓｔ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ）（ＬＳＤ）を用いてｐ＝０．０５水準で比較した。相乗効果を計算し、リンペルの式（Ｌｉｍｐｅｌら，１９６２（非特許文献３６）；Ｒｉｃｈｅｒ，１９８７（非特許文献３７））で分析した。

レタスべと病（実施例ＶＩ〜ＶＩＩ）
特定の種類の病原体である卵菌綱を抑制するＭＢＩ−１０６とアシベンゾラル−Ｓ−メチルまたはメフェノキサムの相乗作用を、Ｓｕら（２００４）（非特許文献３８）に従って、レタスべと病菌を用いて試験した。

べと病の接種菌を調製するために、各々約２０〜３０個のレタスの種子を５ｍｍペトリ皿に入れ、滅菌水をやり、次に、発芽後に１／２濃度のホーグランド溶液を供給した。ペトリ皿を２０℃の成長チャンバーに７〜１０日間置いた。レタスべと病菌（Ｂｒｅｍｉａ ｌａｃｔｕｃａｅ）の芽胞をレタス子葉に接種し、胞子形成が起こるよう、１５℃で７〜１０日間培養した。胞子形成のある子葉を切り落とし、滅菌水の入ったファルコンチューブに入れた。子葉を１５秒間、３回ボルテックス処理し、１００ｕμｍメッシュに通して濾過し、胞子嚢を回収した。接種するために、溶液を０．５〜１．０×１０^５胞子／ｍｌに調整した。

４つの被験植物を各２インチの鉢に播種した後、２０℃で７〜１０日間置き、子葉を成長させた。植物は、第１本葉が現われたときに、試験可能な状態となった。

レタス植物をこれらの材料で処理し、一晩乾燥させておいた。その後、植物に胞子嚢溶液を接種した。処理を４反復完全乱塊法で配置した。接種された植物を暗所で成長チャンバーに４８時間置き、その後、１２時間明期の下、１５℃でインキュベートした。接種してから８〜１０日後、子葉を病害の重症度（胞子嚢柄で被覆された面積率）について評価した。

種子の処理（実施例ＶＩＩＩ〜ＩＸ）
下記の実験はダイズで実施されたが、穀草類、トウモロコシ、綿、およびジャガイモなどの他の作物でも同様の手順を用いた。

実験は、Ｈｗａｎｇら（２００６）（非特許文献３９）によって開発された手順に従って温室で実施した。紋枯病菌（Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ ｓｏｌａｎｉ）の分離株をポテトデキストロース寒天プレート上で増殖させ、カラスムギまたはコムギの粒に接種するために５日間培養した。粒１リットルを室温（２５℃）で一晩浸漬させ、水道水で３回すすいだ。８×１２インチのオートクレーブバッグに限度の１／３まで粒を詰め、１２１℃で１５分間オートクレーブした。その後、オートクレーブした粒に、紋枯病菌の５日間培養物の１×１ｃｍプラグをバッグ１袋当たり５つ接種し、室温（２５℃）で５日間培養した。バッグをラミナーフローフード内で開けたままにして、粒を完全に乾燥させた。

コーティングしようとする１０ｇのブランク種子サンプルをフラスコに入れた。コーティング剤ＳＥＰＩＲＥＴ（登録商標）１１７１−Ｏ（Ｂｅｃｋｅｒ Ｕｎｄｅｒｗｏｏｄ Ｌｔｄ．，Ａｍｅｓ，ＩＡ）を目的の化合物とともにフラスコの中に入れ、種子が化合物を捕捉するようにフラスコを激しく振盪させた。この手順を、栽培品種「ホワイトライオン（Ｗｈｉｔｅ Ｌｉｏｎ）」（Ｋｉｔａｚａｗａ Ｓｅｅｄ Ｃｏ．，Ｏａｋｌａｎｄ，ＣＡ）または「バイキング２２６５（Ｖｉｋｉｎｇ ２２６５）」（Ｊｏｈｎｎｙ’ｓ Ｓｅｌｅｃｔｅｄ Ｓｅｅｄｓ，Ｗｉｎｓｌｏｗ，ＭＥ）の新鮮な種子サンプルを用いて同じフラスコの中で繰り返して、処理した。種子をコーティングした後、播種するまで風乾させておいた。

土壌を調製するために、接種菌を含む５００ミリリットルの乾燥粒を１５秒間３回ブレンドし、粉末を１：１（ｖ／ｖ）で滅菌砂と混合して、接種菌を希釈した。ダイズが反復試験で様々な病害レベルを発生させるよう、砂混合物をさらに用いて、１：３５０〜１：８００（接種菌：土壌）の様々な比率の土壌混合物を調製した。

コーティングされた種子を感染土壌を含む鉢に播種した。各処理について、完全乱塊法で配置し、温室中２５〜３０℃に置いて、３回反復した。

１０〜２０日後、病害圧力および温度によって、各処理の出現を評価し、比較した。植物材料の各複製物について測定した地面より上の部分の重さを量ることによって、バイオマスを測定した。

実施例Ｉ．処方されたオオイタドリ抽出物とミクロブタニルとの間の相乗効果（試験Ｉ）。
１５００×および２０００×という表示比率よりも１０倍低く希釈したＭＢＩ−１０６（Ｍａｒｒｏｎｅ Ｂｉｏ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｄａｖｉｓ，ＣＡにより、ＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）ＳＣとして市販されている処方されたオオイタドリ抽出物）と、０．２５μｇ／ｍｌ、０．１μｇ／ｍｌ、および０．０５μｇ／ｍｌの濃度（推奨表示比率よりも４５０〜２，２５０倍低い）のミクロブタニル（ＲＡＬＬＹ（登録商標）４０Ｗとして処方されたもの、Ｄｏｗ ＡｇｒｏＳｃｉｅｎｃｅｓ ＬＬＣ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）とを、単独でまたはタンク混合物にして適用した。

病害の重症度は、単独で用いたときの重症度よりも、０．２５μｇ／ｍｌのミクロブタニルと組み合わせた１５００×および２０００×のＭＢＩ−１０６で有意に軽減した（表１）。抑制効力の有意な増加は、０．２５μｇ／ｍｌおよび０．０５μｇ／ｍｌの比率のミクロブタニルとタンク混合した２０００×のＭＢＩ−１０６の組合せで見られた（表２）。

実施例ＩＩ．オオイタドリ抽出物とミクロブタニルとの間の相乗効果（試験ＩＩ）。
ＭＢＩ−１０６（ＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）ＳＣとして処方されたもの）とミクロブタニル（ＲＡＬＬＹ（登録商標）４０Ｗとして処方されたもの）とを用いる第２の試験では、２０００×（表示比率よりも１０倍低い）希釈のＭＢＩ−１０６を０．２５、０．１、および０．０５μｇ／ｍｌの比率のミクロブタニルと組み合わせたときに、ならびに１５００×のＭＢＩ−１０６を０．０５μｇ／ｍｌのミクロブタニルとタンク混合したときに、より高い効力が見られた（表３）。有意な相乗効果は、１５００×および２０００×で希釈したＭＢＩ−１０６を最小比率の０．０５μｇ／ｍｌのミクロブタニルと組み合わせたときに示された（表４）。

実施例ＩＩＩ．処方されたオオイタドリ抽出物とキノキシフェンとの間の相乗効果。
１５００×または２０００×で希釈したＭＢＩ−１０６を、単独でまたは０．０５および０．０１μｇ／ｍｌ（表示比率よりも２，０００〜１０，０００倍低い）のキノキシフェン（ＱＵＩＮＴＥＣ（登録商標）として処方されたもの、Ｄｏｗ ＡｇｒｏＳｃｉｅｎｃｅｓ ＬＬＣ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）と組み合わせて、単独でまたはタンク混合物にして適用した。結果を表５および６に示す。最も有意な相乗効果および病害抑制の増強は、０．０１μｇ／ｍＬのキノキシフェンを伴う２０００×のオオイタドリ製品希釈で見られた。キノキシフェンは、初期の細胞シグナル伝達においてＧタンパク質に影響を及ぼす新しいマルチサイト作用様式を有する。

実施例ＩＶ．処方されたオオイタドリ抽出物とアゾキシストロビンとの間の相乗効果。
１５００×または２０００×で希釈したＭＢＩ−１０６を、単独でまたは０．２５、０．５、１．０、５．０、および１０μｇ／ｍＬの比率（推奨表示比率よりも２５〜１０２０倍低い）のアゾキシストロビン（ＱＵＡＤＲＩＳ（登録商標）として処方されたもの、Ｓｙｎｇｅｎｔａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ，ＤＥ）と組み合わせて、単独でまたはタンク混合物にして適用した。結果を表７および８に示す。全ての試験した組合せのうち、２０００×希釈のオオイタドリ抽出物と５．０または０．５μｇ／ｍＬのいずれかのアゾキシストロビンとを含む混合物によって、最大の相乗作用が得られ、殺真菌抗力は、単一化合物使用データと比較して予想されたものよりも有意に大きかった。

実施例Ｖ．処方されたオオイタドリ抽出物とトリフルミゾールとの間の相乗効果。
２５００×希釈（表示比率よりも１０倍低い）のＭＢＩ−１０６（Ｍａｒｒｏｎｅ Ｂｉｏ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｄａｖｉｓ，ＣＡにより、ＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）ＳＣとして市販されている処方されたオオイタドリ抽出物）と、１．０μｇ／ｍｌ、０．５μｇ／ｍｌ、および０．２５μｇ／ｍｌの濃度（推奨表示比率よりも１５０〜６００倍低い）のトリフルミゾール（ＰＲＯＣＵＲＥ（登録商標）４８０ＳＣとして処方されたもの、Ｃｈｅｍｔｕｒａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｍｉｄｄｌｅｂｕｒｙ，ＣＴ）とを、単独でまたはタンク混合物にして適用した。

病害の重症度は、ＭＢＩ−１０６を単独で用いた処理と比較して、トリフルミゾールと組み合わせた２５００×希釈のＭＢＩ−１０６を噴霧した処理で有意に軽減した（Ｐ＜０．０００１）（表９）。効力の相乗効果は、１．０μｇ／ｍｌ、０．５μｇ／ｍｌ、および０．２５μｇ／ｍｌの比率のトリフルミゾールとタンク混合した２５００×のＭＢＩ−１０６の組合せで見られた（表１０）。

実施例ＶＩ．レタスべと病の抑制におけるオオイタドリ抽出物とアシベンゾラル−Ｓ−メチルとの間の相乗効果。
ＭＢＩ−１０６（Ｍａｒｒｏｎｅ Ｂｉｏ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｄａｖｉｓ，ＣＡにより、ＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）ＳＣとして市販されている処方されたオオイタドリ抽出物）を、２００×希釈して単独でまたは２５μｇ／ｍｌの濃度のアシベンゾラル−Ｓ−メチル（ＡＣＴＩＧＡＲＤ（登録商標）として処方されたもの、Ｓｙｎｇｅｎｔａ Ｃｒｏｐ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ，Ｉｎｃ．，Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＮＣ）と組み合わせて用いて、レタスべと病を抑制した。

病害の重症度は、それらを単独で用いた処理と比較して、アシベンゾラル−Ｓ−メチルと組み合わせた２００×希釈のＭＢＩ−１０６で有意に軽減した（ｐ＝０．０００４）（表１１）。２００×のＭＢＩ−１０６とアシベンゾラル−Ｓ−メチルのタンク混合物での効力には相乗効果がある（表１２）。

実施例ＶＩＩ．レタスべと病の抑制におけるオオイタドリ抽出物とメフェノキサムとの間の相乗効果。
イタドリとＭＢＩ−１０６の相乗効果を調べるために、Ｍａｒｒｏｎｅ Ｂｉｏ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｄａｖｉｓ，ＣＡによる処方された製品ＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）ＭＥを、３７．５μｇ／ｍｌ、７５．０μｇ／ｍｌ、および１５０μｇ／ｍｌの濃度のメフェノキサム（ＲＩＤＯＭＩＬ ＧＯＬＤ（登録商標）として処方されたもの、Ｓｙｎｇｅｎｔａ Ｃｒｏｐ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ，Ｉｎｃ．，Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＮＣ）と組み合わせて４００×希釈率で用いて、レタスべと病を抑制した。

病害の重症度は、それらを各濃度で単独で用いた処理と比較して、メフェノキサムと組み合わせた４００×希釈のＭＢＩ−１０６で有意に軽減した（ｐ＜０．０００１）（表１３）。２００×のＭＢＩ−１０６とメフェノキサムのタンク混合物の効力における相乗効果は、ＭＢＩ−１０６と各濃度のメフェノキサムの組合せで見られた（表１４）。

実施例ＶＩＩＩ．種子処理剤としてのオオイタドリ抽出物および紋枯病菌の抑制におけるアゾキシストロビンとのその相乗作用。
オオイタドリを５％（ｗ／ｗ）のエタノールで抽出し、単独でまたは０．０２９８ｇ／ｋｇ種子のアゾキシストロビン（ＱＵＡＤＲＩＳ（登録商標）、Ｓｙｎｇｅｎｔａ Ｃｒｏｐ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ，Ｉｎｃ．，Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＮＣ）と組み合わせて、０．２１１７ｇ／ｋｇ種子で種子のコーティングに用いて、ダイズの紋枯病菌を抑制した。

出現率は、接種された未処理対照と比較して、ＭＢＩ−１０６で処理した接種された種子でより高く、アゾキシストロビンと組み合わせて用いたとき、出現率は、どちらかの製品を単独で用いたときよりも高かった（表１５）。相乗効果は、両方の材料を組み合わせて用いたときに見られた（表１６）。

実施例ＩＸ．種子処理剤としてのオオイタドリ抽出物および紋枯病菌の抑制におけるフルジオキソニルとのその相乗作用。
また、オオイタドリのエタノール抽出物を、単独でまたはフルジオキソニル（Ｓｙｎｇｅｎｔａ Ｃｒｏｐ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ，Ｉｎｃ．，Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＮＣにより、Ｓｃｈｏｌａｒ（登録商標）として処方されたもの）と組み合わせて、０．０３１７５ｇ／ｋｇ種子および０．６３５ｇ／ｋｇ種子の比率で種子のコーティングに用いて、ダイズの紋枯病菌を抑制した。出現率およびバイオマスは、接種された未処理対照と比較して、ＭＢＩ−１０６で処理した接種された種子でより高く、０．０５９６ｇ／ｋｇ種子の比率のフルジオキソニルと組み合わせて用いたときも、より高かった（表１７）。相乗効果は、フルジオキソニルと組み合わせて用いたとき、２つの比率のＭＢＩ−１０６で見られた（表１８）。

実施例Ｘ．キュウリうどん粉病の抑制における処方されたオオイタドリ抽出物とプロピコナゾールとの間の相乗効果。
２５００×希釈のＭＢＩ−１０６（Ｍａｒｒｏｎｅ Ｂｉｏ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｄａｖｉｓ，ＣＡにより、ＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）ＭＥとして市販されている処方されたオオイタドリ抽出物）と、１．０μｇ／ｍｌの濃度のプロピコナゾール（ＰＲＯＰＩＭＡＸ（登録商標）ＥＣとして処方されたもの、Ｄｏｗ ＡｇｒｏＳｃｉｅｎｃｅｓ ＬＬＣ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）とを、単独でまたはタンク混合物にして適用した。

病害の重症度は、プロピコナゾールと組み合わせた２５００×希釈のＭＢＩ−１０６を噴霧した処理で有意に軽減した（Ｐ＜０．０００１）（表１９）。プロピコナゾールとタンク混合した２５００×のＭＢＩ−１０６の組合せでの抑制効力には相乗効果がある（表２０）。

実施例ＸＩ．キュウリうどん粉病の抑制におけるオオイタドリ抽出物とキノキシフェンとの間の相乗効果（試験ＩＩ）。
ＭＢＩ−１０６（Ｍａｒｒｏｎｅ Ｂｉｏ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｄａｖｉｓ，ＣＡにより、ＲＥＧＡＬＩＡ（登録商標）ＳＣとして市販されている処方されたオオイタドリ抽出物）を、２０００×希釈にして単独でまたは０．５、０．２５、および０．１ｕｇ／ｍｌの３つの濃度のアゾキシストロビンと組み合わせて用いて、キュウリうどん粉病を抑制した。

アゾキシストロビン処理と組み合わせた２０００×希釈のＭＢＩ−１０６での抑制効力は、それらを単独で用いるよりも高い（表２１）。２０００×のＭＢＩ−１０６のタンク混合物の抑制効力における相乗効果は、ＭＢＩ−１０６と各濃度のアゾキシストロビンの組合せで存在する（表２２）。

Claims (5)

1. （ａ）イタドリ（Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａ）種に由来する抽出物、ここで、前記植物は、植物病原体に対する植物抵抗性を誘導する１以上のアントラキノン誘導体を含有し、ここで、前記誘導体は、
   （ｉ）以下の構造
   

   

   （式中、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５、Ｒ６、Ｒ７、およびＲ８は、水素、ヒドロキシル、ヒドロキシルアルキル、ハロゲン、カルボキシル、アルキル、または糖である）を有する、と、
   （ｂ）少なくとも１つの脱メチル化阻害剤である化学農薬、と
   を含み、
   脱メチル化阻害剤がトリフルミゾール、ミクロブタニル、プロピコナゾールから選択される植物病原体感染の調節に使用される相乗的組合せであって、ここで、前記相乗的組合せの抑制効力をＥ、リンペルの式に従って算出される予想される効力Ｅ_ｅとしたときの相乗効果がＥ／Ｅ_ｅを決定することによって測定され、かつＥ／Ｅ_ｅが少なくとも１．２である、相乗的組合せ。
2. （ａ）イタドリ（Ｒｅｙｎｏｕｔｒｉａ）種に由来する抽出物、ここで、前記植物は、植物病原体に対する植物抵抗性を誘導する１以上のアントラキノン誘導体を含有し、ここで、前記誘導体は、
   （ｉ）以下の構造
   

   

   （式中、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５、Ｒ６、Ｒ７、およびＲ８は、水素、ヒドロキシル、ヒドロキシルアルキル、ハロゲン、カルボキシル、アルキル、または糖である）を有する、と、
   （ｂ）少なくとも１つの化学農薬、と
   を含み、
   前記化学農薬が、メフェノキサム、フルジオキソニル、キノキシフェンから選択される、植物病原体感染の調節に使用される相乗的組合せであって、ここで、前記相乗的組合せの抑制効力をＥ、リンペルの式に従って算出される予想される効力Ｅ_ｅとしたときの相乗効果がＥ／Ｅ_ｅを決定することによって測定され、かつＥ／Ｅ_ｅが少なくとも１．２である、相乗的組合せ。
3. 前記組合せが組成物である、請求項１又は２に記載の相乗的組合せ。
4. 前記Ｅ／Ｅｅが少なくとも１．３である、請求項１ないし３のいずれかに記載の相乗的組合せ。
5. 植物における植物病原体感染を調節するための方法であって、前記植物および／またはその種子および／または前記植物を生育させるのに使用される基板に、前記植物病原体感染を調節するのに有効な量の請求項１又は２の組合せを適用することを含む方法。