JP5488594B2 - プリンリボヌクレオシド及びリボヌクレオチドの製造方法 - Google Patents
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Description
この細菌は、プリンヌクレオシドを生産することができ、3−ヘキスロース−6−リン酸合成酵素活性が減少するよう改変されたものである。この細菌は、バチルス属に属する。
. J. Bacteriol., 94: 1124-1130, 1967)。最近、バチルス属の株が植物から単離され、これらはバチルス・アミロリケファシエンスの別個の生態型であると考えられている(Reva et al., Taxonomic characterization and plant colonizing abilities of some bacteria related to Bacillus amyloliquefaciens and Bacillus subtilis. FEMS Microbiol. Ecol., 48:249-259, 2004)。前記の株の1つであるバチルス・アミロリケファシエンス FZB42の全ヌクレオチド配列が決定されている(Chen et al., Comparative analysis
of the complete genome sequence of the plant growth-promoting bacterium Bacillus amyloliquefaciens FZB42. Nat. Biotechnol., 25: 1007-1014, 2007)。
発現調節配列を改変することによっても低減させることができる。
イノシン生産KMBS375株(KMBS375: Ppur*-ΔattΔpurAΔpurRΔpupGΔdeoDguaB24;参考例)である。他の親バチルス株には、バチルス・ズブチリスAJ12707株(FERM P-12951)(特願昭61-13876号(JP6113876A2))、バチルス・ズブチリスAJ3772株(FERM P-2555)(特願昭62-014794号(JP62014794A2))、バチルス・プミリス(Bacillus pumilus)NA-1102
(FERM BP-289)、バチルス・ズブチリス NA-6011 (FERM BP-291)、バチルス・ズブチリス
G1136A (ATCC No. 19222)(米国特許第3,575,809号)、2005年10月3日にVKPMにバチルス・アミロリケファシエンス G1136A (VKPM B-8994)として寄託され2006年10月13日に国際寄託に移行され、再同定されたバチルス・アミロリケファシエンス AJ1991、バチルス・ズブチリス NA-6012 (FERM BP-292)(米国特許第4,701,413号)、バチルス・プミリス Gottheil No. 3218 (ATCC No. 21005)(米国特許第3,616,206号)、バチルス・アミロリケファシエンスAS115-7株 (VKPM B-6134)(ロシア特許第2003678号)等が含まれる。バチルス・サブチルスKMBS16株も使用することができる。この株は、公知のバチルス・ズブチリス 168 trpC2株の誘導体であり、プリンリプレッサー(purR::spc)をコードするpurR遺伝子、スクシニルAMP合成酵素(purA::erm)をコードするpurA遺伝子、及びプリンヌクレオシドホスホリラーゼ(deoD::kan)をコードするdeoD遺伝子全てが変異を含むものである(ロシア特許出願第2002103333号、米国特許第7,326,546号(2008))。
改変されたpurオペロン調節領域を有するイノシン生産性バチルス・ズブチリス株が記載されている(米国特許第7,326,546号(2008))。
イノシン及び/又はグアノシンのようなヌクレオシドを製造する方法は、培養培地中で細菌を培養し、培養培地中でヌクレオシドを生産して蓄積させ、培養培地からヌクレオシドを回収する工程を含む。
プリンヌクレオチドを製造する方法は、培養培地中で細菌を培養し、所望のプリンヌクレオシドをリン酸化し、細菌によって培地中に排出させ、プリンヌクレオチドを回収する工程を含む。更に、5’−イノシン酸を製造する方法は、培養培地中で細菌を培養し、イノシンをリン酸化し、細菌によって培養物中に排出させ、5’−イノシン酸を回収する工程を含む。更に、5’−キサンチル酸を製造する方法は、培養培地中で細菌を培養し、キサントシンをリン酸化し、細菌によって培養培地中に排出させ、5’−キサンチル酸を回収する工程を含む。更に、5’−グアニル酸を製造する方法は、培養培地中で細菌を培養し、グアノシンをリン酸化し、細菌によって培養培地中に排出させ、5’−グアニル酸を回収する工程を含む。そして、5’−グアニル酸を製造する方法は、培養培地中で細菌を培養し、キサントシンをリン酸化し、細菌によって培養培地中に排出させ、5’−キサンチル酸をアミノ化し、5’−グアニル酸を回収する工程を含む。
al, Phosphorylation of nucleosides by the mutated acid phosphatase from Morganella morganii. Appl. Environ. Microbiol., 66:2811-2816 (2000))又はポリリン酸(塩)、フェニルリン酸(塩)、又はカルバミルリン酸(塩)をリン酸供与体として利用する酸性ホスファターゼ(国際公開第9637603号パンフレット)等を使用することができる。また、p-ニトロフェニルリン酸(Mitsugi, K., et al, Agric. Biol. Chem., 28, 586-600 (1964))、無機リン酸(特願昭第42-1185号又は特開昭42-1185号公報(JP42-1186))、又はアセチルリン酸(特願昭第61-41555号又は特開昭第61-41555号公報(JP61-41555))を基質として利用したヌクレオシドのC-2', 3'又は5'位置へのリン酸基(phosphoryl group)の転移を触媒することのできるホスファターゼ等も使用することができる。ヌクレオシドキナーゼの例としては、E. coli由来のグアノシン/イノシンキナーゼ(Mori, H. et. al. Cloning of a guanosine-inosine kinase gene of Escherichia coli and characterization of the purified gene product. J. Bacteriol. 177:4921-4926 (1995);国際公開第9108286号パンフレット)等を使用することができる。Hammer-Jespersen, K.によって記載されたヌクレオシドホスホトランスフェラーゼ(Nucleoside catabolism, p. 203-258. In A Munch-Petesen (ed.), Metabolism of nucleotides, nucleosides, and nucleobases in microorganism. 1980, Academic Press, New York)等を使用することができる。POCl3のようなリン酸化試薬等を使用してヌクレオシドの化学的リン酸化を行うことができる(Yoshikawa, K. et. al. Studies of phosphorylation. III. Selective phosphorylation of unprotected nucleosides. Bull. Chem. Soc. Jpn. 42:3505-3508 (1969))。
バチルス・ズブチリスイノシン生産菌KMBS375の染色体上のhxlA遺伝子を不活性化するために(KMBS375株の構築は参考例に記載されている)、pKS1プラスミド(Shatalin K. Y.とNeyfakh A. A., FEMS Microbiology Letters, 245: 315-9 (2005))(図1)の2つのマルチクローニングサイトにhxlA遺伝子の上流及び下流領域をクローン化した。プライマーP1(配列番号5)及びP2(配列番号6)を用いバチルス・ズブチリス KMBS375の染色体
DNAを鋳型(template)として使用するPCRによって、hxlA遺伝子の上流領域の886 bp断片の増幅を行った。プライマーP1及びP2は、それぞれエンドヌクレアーゼSacII及びPstIの認識部位を含んでいる。プライマーP3(配列番号7)及びP4(配列番号8)を用いバチルス・ズブチリス KMBS375の染色体DNAを鋳型として使用するPCRによって、hxlA遺伝子の下流領域の923 bp断片の増幅を行った。プライマーP3及びP4は、それぞれエンドヌクレアーゼClaI及びKpnIの認識部位を含んでいる。P1及びP2を使用したPCR産物を精製し、エンドヌクレアーゼSacII及びPstIを用いて消化した後、pKS1プラスミドの対応する部位にクローン化した。P3及びP4を使用したPCR産物を精製し、エンドヌクレアーゼClaI及びKpnIを用いて消化した後、同様にpKS1プラスミドの対応する部位にクローン化した。両者の断片をクローン化した後、KmRカセット並びにhxlA遺伝子の上流及び下流領域を含むプラスミドをエンドヌクレアーゼSacII及びKpnIにより消化し、この結果得られた断片(3194 bp)をバチルス由来の非複製pBluescript II KSベクター(Stratagene)にサブクローン化した。この結果得られたプラスミドを使用してバチルス・ズブチリス KMBS375を形質転換し、12のKmR形質転換体を単離した。KmRカセットの組込みによってhxlA遺伝子が不活性化されたことを確認するために、プライマーP1及びP4を使用したコントロールPCR実験を行った。プライマーP1及びP4を使用しhxlA遺伝子の野生型対立遺伝子を用いたPCRによって得られたDNA断片の大きさは2476 bpである。これに対して、3194 bpのDNA断片の存在により、hxlA遺伝子へのKmRカセットの組込みが確認される。プライマーP5(配列番号9:プライマーP5は、P1プライマーに相補的な領域の上流であって、hxlA遺伝子の翻訳開始位置から1013 bpの位置に局在する領域に相補的な20塩基を含む)及びプライマーP6(配列番号10:プライマーP6は、KmRカセット内に局在する領域に相補的な21塩基を含む)を使用する追加的なコントロールPCR実験では、1491 bpのPCR生成断片の存在により、KMBS375染色体上のhxlA遺伝子へのKmRカセットの組込みが確認される。組込まれたKmRカセットを含むKMBS375形質転換体の1つを次のプロセスに使用した。この株は、KMBS375Δhxl::Kmと命名した。
イノシン生産に対するhxlAの不活性化の効果を試験するために、バチルス・ズブチリスKMBS375株及びKMBS375Δhxl::Km株をそれぞれL-ブロス中で34℃で18時間培養した後、0.3
mlの培養物を20×200 mm試験管中の3mlの発酵培地に接種し、34℃で72時間ロータリーシェーカー上で培養した。結果を表1に示す。
グルコース 30.0
NH4Cl 32.0
KH2PO4 1.0
MgSO4・7H2O 0.4
FeSO4・7H2O 0.01
MnSO4・5H2O 0.01
マメノ-TN (Mameno-TN) (大豆加水分解物) 1.35(全窒素として)
DL-メチオニン 0.3
アデニン 0.1
グアニン 0.05
消泡剤(アデカノール) 0.5 ml
CaCO3 50.0
pH 6.0 (KOHによる)
Luna C18(2) 250×3mm、5u(Phenomenex、米国)。
緩衝液:2%v/v C2H5OH;0.8%v/vトリエチルアミン;0.5%v/v酢酸(氷酢酸);pH 4.5。温度:30℃。
流速:0.3 ml/分。
注入容積:5μl。
検出:UV 250 nm。
保持時間(分):
キサントシン 13.7
イノシン 9.6
ヒポキサンチン 5.2
グアノシン 11.4
アデノシン 28.2
<バチルス・ズブチリス 168 Marburgの原栄養株の構築>
バチルス・ズブチリス 168 Marburg(ATCC6051)は、染色体上の変異対立遺伝子trpC2(trpC;インドール-3-グリセリンリン酸合成酵素(indole-3-glycerol phosphate synthase)遺伝子)によりTrp栄養要求株である(Albertini A. M.とA. Galizzi, 1999)。バチルス・ズブチリス 168 Marburg株は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(American Type Culture Collection (ATCC)(住所P. O. Box 1549 Manassas, VA 20108、米国))から取得することができる。(バチルス・ズブチリス 168 (trpC2)のtrpオペロンの配列の再掲載。Microbiology, 145: 3319-3320)。trpC2開始コドンから位置328以降の3つのヌクレオチド「att」を有するtrpC2対立遺伝子を、以下のようにしてPCR増幅しバチルス・ズブチリス 168 Marburgに導入した。
trpC+対立遺伝子の5'末端及びその上流領域を増幅するに際し、GenBank(Accession No. NC_000964)及びAlbertiniとGalizzi(Microbiology, 145: 3319-3320)からの情報に基いて、PCRプライマー7(配列番号11)及び8(配列番号12)を設計した。
アガロースゲル電気泳動の後に、trpC+対立遺伝子の断片をゲルから抽出した。DubnauとDavidoff-Abelson(Dubnau, D. and R. Davidoff-Abelson, J. Mol. Biol., 56: 209-221 (1971))によって記載されたようにして調製したバチルス・ズブチリス 168 Marburgのコンピテント細胞をDNA断片で形質転換し、最小培地寒天平板上で生育することのできるコロニーを選択した。染色体DNAをコロニーから調製した。鋳型としての染色体DNA並びに7(配列番号11)及び10(配列番号14)のプライマーを使用するPCRによってDNA断片を増幅した後に配列決定し、他のPCR誘導変異が不在であるtrpC2対立遺伝子への3つのヌクレオチドの挿入を確認した。このようにして得られた形質転換体はTrp栄養要求株ではなく、この株をKMBS275と命名した。
ヒスチジノールリン酸アミノトランスフェラーゼをコードするhisC遺伝子においてフレーム内欠失(in-frame deletion)を作成し(ΔhisC:403番目〜606番目の204ヌクレオチドの欠失)、以下のようにしてバチルス・ズブチリス 168 Marburg株(trpC2)に導入した。
ΔhisCの5'末端及びその上流領域を増幅するに際し、GenBank(Accession No. NC_000964)からの情報に基いてPCRプライマー11(配列番号15)及び12(配列番号16)を設計した。プライマー38は、その5'末端にEcoRI部位を含む。プライマー38は、フレーム内欠失によって生成した接合部(junction)を含む。
増幅した断片をEcoRI及びBamHIにより消化し(37℃、一夜)、アガロースゲルを使用して分離した。目的断片をゲルから抽出し、同一酵素で予め消化した(37℃、3時間)バチルス・ズブチリス染色体組込みベクターpJPM1(Mueller, J. P.、G. Bukusoglu and A. L. Sonenshein. 1992. Transcriptional regulation of Bacillus subtilis glucose starvation-inducible genes: control of gsiA by the ComP-ComA signal transduction system. J. Bacteriol. 174:4361-4373.)と連結した。正しく挿入されたΔhisC遺伝子を含むプラスミドを選択し、DNA配列決定によって他のPCR誘導性変異を有さないことを確認し、pKM186と命名した。
前記したように調製したバチルス・ズブチリス 168 Marburg株のコンピテント細胞をpKM186により形質転換し、2.5μg/mLのクロラムフェニコール(Cm)を含有するLB寒天平板上で生育することのできるコロニー(シングルクロスオーバー組換え体)を選択した。
1.KMBS350(ΔpurAΔpurRΔpupG)の構築
破壊型のpupG、purR、及びpurA遺伝子(それぞれグアノシン/イノシンホスホリラーゼ、プリンオペロンリプレッサー、スクシニルAMP合成酵素)をバチルス・ズブチリス 168 Marburgから誘導した組換えKMBS276株(ΔhisCtrpC2)に順次導入し、この株から以下のようにして原栄養株を得た。
ΔpupGの5'末端及びその上流領域を増幅するに際し、GenBank(Accession No. NC_000964)からの情報に基いてPCRプライマー15(配列番号19)及び16(配列番号20)を設計した。プライマー42は、その5'末端にBamHI部位を含む。プライマー43は、フレーム内欠失によって生成した接合部を含む。
del 9600 (Perkins Elmer))を行い、ΔpupGの5'末端領域及び上流領域を含む断片を増幅した。
増幅した断片をBamHIにより消化し(37℃、一夜)、アガロースゲルを使用して分離した。目的断片をゲルから抽出し、同一酵素で予め消化した(37℃、3時間)バチルス・ズブチリス染色体組込みベクターpJPM1(J. Bacteriol. 174: 4361-4373)と連結した後、子ウシ腸ホスファターゼを用いた処理を行った。正しく挿入されたΔpupG遺伝子を含むプラスミドを選択し、DNA配列決定によって他のPCR誘導性変異を有さないことを確認し、pKM199と命名した。
前記したようにして調製したKMBS276株のコンピテント細胞をpKM199により形質転換し、2.5μg/mLのCmを含有するLB寒天平板上で生育することのできるコロニー(シングルクロスオーバー組換え体)を選択した。
ΔpurRの5'末端及びその上流領域を増幅するに際し、GenBank(Accession No. NC_000964)からの情報に基いてPCRプライマー19(配列番号23)及び20(配列番号24)を設計した。プライマー46は、その5'末端にBamHI部位を含む。プライマー47は、フレーム内欠失によって生成した接合部を含む。
増幅した断片をBamHIにより消化し(37℃、一夜)、アガロースゲルを使用して分離した。目的断片をゲルから抽出し、同一酵素で予め消化した(37℃、3時間)バチルス・ズブチリス染色体組込みベクターpJPM1(J. Bacteriol. 174: 4361-4373)と連結した後、子ウシ腸ホスファターゼを用いた処理を行った。正しく挿入されたΔpurR遺伝子を含むプラスミドを選択し、DNA配列決定によって他のPCR誘導性変異を有さないことを確認し、pKM200と命名した。
前記したように調製したKMBS334株のコンピテント細胞をpKM200により形質転換し、2.5μg/mLのCmを含有するLB寒天平板上で生育することのできるコロニー(シングルクロスオーバー組換え体)を選択した。
ΔpurAの5'末端及びその上流領域を増幅するに際し、GenBank(Accession No. NC_000964)からの情報に基いてPCRプライマー23(配列番号27)及び24(配列番号28)を設計した。プライマー50は、その5'末端にBamHI部位を含む。プライマー51は、フ
レーム内欠失によって生成した接合部を含む。
増幅した断片をBamHIにより消化し(37℃、一夜)、アガロースゲルを使用して分離した。目的断片をゲルから抽出し、同一酵素で予め消化した(37℃、3時間)バチルス・ズブチリス染色体組込みベクターpJPM1(J. Bacteriol. 174: 4361-4373)と連結した後、子ウシ腸ホスファターゼを用いた処理を行った。正しく挿入されたΔpurA遺伝子を含むプラスミドを選択し、DNA配列決定によって他のPCR誘導性変異を有さないことを確認し、pKM208と命名した。
前記したように調製したKMBS337株のコンピテント細胞をpKM208により形質転換し、2.5μg/mLのCmを含有するLB寒天平板上で生育することのできるコロニー(シングルクロスオーバー組換え体)を選択した。
前記したように調製したKMBS349株のコンピテント細胞をKMBS275由来の染色体DNA(<バチルス・ズブチリス 168 Marburgの原栄養株の構築>参照)により形質転換し、20mg/Lのアデニン(Ade)を含有する最小培地寒天平板上で生育することのできるコロニーを選択した。
IMPデヒドロゲナーゼをコードするguaB遺伝子におけるグアニン栄養要求性リーキー(leaky)変異guaB24(米国特許出願公開第2006275874号(US2006275874A1)に記載されたguaB(A1)と同一)を、バチルス・ズブチリス 168 Marburgから誘導した組換えKMBS349株(ΔpurAΔpurRΔpupGΔhisCtrpC2)に導入し、結果的に得られた株から以下のようにして原栄養株を取得した。
前記したように調製したKMBS349株(ΔpurAΔpurRΔpupGΔhisCtrpC2)のコンピテント細胞を、KMBS193(guaB::kantrpC;米国特許出願公開第2006275874号明細書(US2006275874A1))由来の染色体DNAにより形質転換し、2.5μg/mlのカナマイシン(Kan)を補填したLB培地の平板上で生育することのできるコロニーを選択した。
前記したように調製したKMBS351株(guaB::kanΔpurAΔpurRΔpupGΔhisCtrpC2)のコンピテント細胞を、YMBS9の染色体DNA(guaB24trpC2;KMBS193のコンピテント細胞を、バチルス・ズブチリス 168 Marburgの誘導株における染色体上のguaB24変異を含むguaB領域のPCR増幅により得られるDNAにより形質転換することによって、YMBS9が得られる)により形質転換し、20mg/LのAde、His、及びTrpを含有する最小培地寒天平板上で生育できるコロニーを選択した。
前記したように調製したKMBS353株のコンピテント細胞を、KMBS350の染色体DNAにより形質転換し(1.KMBS350(ΔpurAΔpurRΔpupG)の構築参照)、20mg/LのAdeを含有する最小培地寒天平板上で生育することのできるコロニーを選択した。
改変されたプリンオペロンプロモーター(Ppur)及び部分的に欠失したアテニュエータ配列(Ppur*-Δatt;Ppur1-Δattと同一、米国特許出願公開第2006275874号明細書(US20
06275874A1)に記載されている)、破壊型のpurA遺伝子、IMPデヒドロゲナーゼをコードするguaB遺伝子におけるグアニン栄養要求性リーキー変異guaB24(米国特許出願公開第2006275874号明細書(US2006275874A1)に記載されたguaB(A1)と同一)、並びに破壊型の、プリンヌクレオシドホスホリラーゼをコードするdeoD遺伝子を、以下のようにして、バチルス・ズブチリス 168 Marburgから誘導された組換え体KMBS337株(ΔpurRΔpupGΔhisCtrpC2;1.(2)ΔpurR(31番目〜825番目の795のヌクレオチドのフレーム内欠失)のKMBS334への導入参照)に順次導入した。
前記したようにして調製したKMBS337株(ΔpurRΔpupGΔhisCtrpC2)のコンピテント細胞を、KMBS198(Ppur::cattrpC2;米国特許出願公開第2006275874号明細書(US2006275874A1))の染色体DNAにより形質転換し、LB+Gua+Cm培地上で生育することのできるコロニーを選択した。
前記したように調製したKMBS340株(Ppur::catΔpurRΔpupGΔhisCtrpC2)のコンピテント細胞を、KMBS261(Ppur1-ΔattpurR::spcΔpupG*trpC2;米国特許出願公開第2006275874号明細書(US2006275874A1))由来の染色体DNAにより形質転換し、20mg/LのTrp及びHisを含有する最小培地寒天平板上で生育することのできるコロニーを選択した。
前記したようにして調製したKMBS352株(Ppur*-ΔattΔpurRΔpupGΔhisCtrpC2)のコンピテント細胞を、KMBS350の染色体DNA(ΔpurAΔpurRΔpupG;1.KMBS350(ΔpurAΔpurRΔpupG)の構築参照)により形質転換し、20mg/LのHis及びAdeを含有する最小培地寒天平板上で生育することのできるコロニーを選択した。
前記したようにして調製したKMBS359株(Ppur*-ΔattΔpurAΔpurRΔpupG)のコンピテ
ント細胞を、KMBS351(guaB::kanΔpurAΔpurRΔpupGΔhisCtrpC2;2.(1)KMBS349からのguaB破壊株の構築参照)の染色体DNAにより形質転換し、2.5μg/mlのKanを補填したLB+Gua培地の平板上で生育することのできるコロニーを選択した。
前記したようにして調製したKMBS364株(guaB::kanPpur*-ΔattΔpurAΔpurRΔpupG)のコンピテント細胞を、KMBS356の染色体DNA(guaB24ΔpurAΔpurRΔpupG;2.(3)trpC+及びhisC+のKMBS353への導入参照)により形質転換し、20mg/LのAdeを含有する最小培地寒天平板上で生育することのできるコロニーを選択した。
(i)組換えPCRによるΔdeoDの増幅
ΔdeoDの5'末端及びその上流領域を増幅するに際し、GenBank(Accession No. NC_000964)からの情報に基いてPCRプライマー27(配列番号31)及び28(配列番号32)を設計した。プライマー54は、その5'末端にBamHI部位を含む。プライマー55は、フレーム内欠失によって生成した接合部を含む。
9600 (Perkins Elmer))を行い、ΔdeoDの3'末端領域及び下流領域を含む断片を増幅した。
増幅した断片をBamHIにより消化し(37℃、一夜)、アガロースゲルを使用して分離した。目的断片をゲルから抽出し、同一酵素で予め消化した(37℃、3時間)バチルス・ズブチリス染色体組込みベクターpJPM1(J. Bacteriol. 174: 4361-4373)と連結した後、子ウシ腸ホスファターゼを用いた処理を行った。正しく挿入されたΔdeoD遺伝子を含むプラスミドを選択し、DNA配列決定によって他のPCR誘導性変異を有さないことを確認し、pKM201と命名した。
前記したように調製したKMBS365株のコンピテント細胞をpKM201により形質転換し、2.5μg/mLのCmを含有するLB+Gua寒天平板上で生育することのできるコロニー(シングルクロスオーバー組換え体)を選択した。
Claims (10)
- プリンヌクレオシド生産能を有し、3−ヘキスロース−6−リン酸合成酵素(HPS)活性が減少するよう改変されたバチルス属細菌を培養培地中で培養し、プリンヌクレオシドを培養培地中に排出させ、プリンヌクレオシドを培養培地から回収することを含む、プリンヌクレオシドの製造方法。
- 前記バチルス属細菌は、3−ヘキスロース−6−リン酸合成酵素(HPS)をコードする遺伝子の発現が低減するよう改変されたバチルス属細菌である、請求項1記載のプリンヌクレオシドの製造方法。
- 前記発現は、前記遺伝子を不活性化させることによって低減された、請求項2記載のプリンヌクレオシドの製造方法。
- 前記遺伝子がhxlA遺伝子である、請求項2または3記載のプリンヌクレオシドの製造方法。
- 前記hxlA遺伝子は、配列番号2もしくは4のアミノ酸配列、または配列番号2もしくは4のアミノ酸配列において1〜5個のアミノ酸の欠失、挿入、付加もしくは置換を含むアミノ酸配列を含む、請求項4記載のプリンヌクレオシドの製造方法。
- 前記バチルス属細菌は、バチルス・ズブチリスである請求項1〜5のいずれか一項に記載のプリンヌクレオシドの製造方法。
- 前記バチルス属細菌は、バチルス・アミロリケファシエンスである請求項1〜5のいずれか一項に記載のプリンヌクレオシドの製造方法。
- 前記プリンヌクレオシドが、イノシン、キサントシン、グアノシン、及びアデノシンからなる群から選択される請求項1〜7のいずれか一項に記載のプリンヌクレオシドの製造方法。
- プリンヌクレオシド生産能を有し、3−ヘキスロース−6−リン酸合成酵素(HPS)活性が減少するよう改変されたバチルス属細菌を培養培地中で培養し、プリンヌクレオシドを培養培地中に排出させ、プリンヌクレオシドをリン酸化し、プリンヌクレオチドを単離することを含む、プリンヌクレオチドの製造方法。
- プリンヌクレオチドが、5'-イノシン酸、キサントシン-5'-リン酸、5'-グアニル酸、及び5'-アデニル酸からなる群から選択される請求項9記載のプリンヌクレオチドの製造方法。
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