JP5074656B2 - 改良されたマイコプラズマハイオニューモニエバクテリンワクチン - Google Patents
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Description
本発明は、マイコプラズマ ハイオニューモニエ(Mycoplasma hyopneumoniae)に対する予防免疫性を誘導するための改良法であって、特に、マイコプラズマ ハイオニューモニエによる感染に対してレシピエント動物を単回投与にて免疫化するのに有効な量で、不活性化されたマイコプラズマ ハイオニューモニエバクテリンを用いる方法に関する。
マイコプラズマ ハイオニューモニエは、ブタのマイコプラズマ肺炎の病原体である。この疾患は、低下した体重増加および乏しい栄養効率のために養豚産業において経済的損失の重要な原因である。該疾患は、慢性のせき、くすんだヘアコート、発育遅延および数週間続く元気のない様子を引き起こす。特に腹部先端(ventral apical)および心臓葉(cardiac lobes)における硬化の紫色から灰色の特徴的な領域が感染した動物において認められる。該疾患はほとんど死亡を引き起こさないが、罹患したブタは、死亡またはストレスに帰する日和見感染の病原体による二次感染をしばしば被りやすい。経済的損失だけでも、一年で2億〜2億5千万ドルと見積もられている。
マイコプラズマ ハイオニューモニエにより引き起こされる感染および疾患に対するブタおける使用に適した、および他のバクテリンおよび/または類毒素と組み合わせて用いられてよいワクチン組成物を提供することが、本発明の別の目的である。
本発明の他の目的および態様は、以下に示す詳細な説明から明らかとなろう。
本明細書に用いるように、「バクテリン」は、不活性化された、および所定のアジュバントと組み合わせて、動物に投与された場合に、予防免疫性を誘発して疾患または感染から保護することができる細菌回収物である。
「アジュバント」は、ワクチン組成物において、マイコプラズマ ハイオニューモニエバクテリンの免疫原性および効力を高める1またはそれ以上の物質から成る組成物を意味する。
「免疫化量」は、マイコプラズマ ハイオニューモニエに対して免疫化を提供するバクテリンの量である。「免疫化量」は、種、品種、年齢、サイズ、健康状態、および動物が同じ生物体に対するワクチンをすでに受容しているかどうかに依存するであろう。
ワクチンは、当該分野で常套である方法により、新たに回収した培養物から調製されてよい(例えば、米国特許第5,338,543号または米国特許第5,565,205号ならびに以下の実施例2を参照されたい)。つまり、生物体を、PPLO(プレウロニューモニエ様生物体)完全培地[Difco. Laboratories]などの培養培地中で増殖させてよい。生物体の増殖は、色調変化単位(color changing unit)(CCU)を測定するなどの常套法によりモニターし、そして、有意に高い力価に達した時に回収する。処方のためにワクチン中に含ませる前に、常套法によりストックをさらに濃縮するかまたは凍結乾燥してよい。Thomas, et al., Agri-Practice, Vol. 7 No. 5, pp. 26-30に記載されているような他の方法を用いることができる。
本発明のワクチンは、一般に、不活性化されたマイコプラズマ ハイオニューモニエ、代謝可能なオイル、ポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレンブロックコポリマー、およびアクリル酸ポリマーを水中油型エマルジョンの形態で含む。ワクチンは好ましくは、0.5〜10g/Lの範囲内の濃度でアクリル酸ポリマーを含む。ワクチンは、好ましくは2〜6ml/Lの範囲内の濃度で代謝可能なオイルを含む。ワクチンは好ましくは、1〜3ml/Lの範囲内の濃度でポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーを含む。
以下の実施例により、本発明を、その範囲を制限することなくさらに説明することを意図する。
マイコプラズマ ハイオニューモニエバクテリン
ワクチン組成物の調製
ウイルスストックに関する記載. マイコプラズマ ハイオニューモニエは、かなり多数の容易に入手可能な源から得ることができる。一具体例において、マイコプラズマ ハイオニューモニエ株P−5722−3を用いてよい。培養物は、インディアナ州ウェストラファイエットにあるPurdue大学のC. Armstrong氏から得た。マイコプラズマ ハイオニューモニエ培養物を受け取った後、7回マイコプラズマ ハイオニューモニエブロスに通し、マスターシードを確立した。
用いた保存剤の組成および割合.
回収したバクテリンをチメロサールおよびエチレンジアミネートテトラ−酢酸、テトラ−ナトリウム塩(EDTA)のそれぞれわずか0.01および0.07%の添加により保存する。アンピシリンU.S.Pは、増殖培地中、0.250g/lで存在する。残存アンピシリン濃度は、回収した液体の体積に依存して最終生成物において変化し、完成した生成物における残存アンピシリン濃度は30μg/mlを超えない。
1またはそれ以上のテルペン炭化水素を含む代謝可能なオイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物、例えばスクアラン/プロニックL121混合物を、10gの塩化ナトリウム、0.25gの塩化カリウム、2.72gのリン酸ナトリウム二塩基酸、0.25gのリン酸カリウム一塩基酸、20mLのプルロニックL121(BASFコーポレーション)、40mLのスクアラン(コダック)、3.2mLのトゥイーン80を1000mlに対して十分量の900mLの精製水中に溶解することにより調製する。混合後、成分をオートクレーブしてよい。混合物を次いで、適当なエマルジョンが形成されるまで均質化する。ホルマリンを0.2%の最終濃度まで添加してよく、またはチメロサールを1:10,000の最終濃度まで添加してよい。
十分量のマイコプラズマ ハイオニューモニエ濃縮物を、アジュバント、保存剤、および希釈剤と、アジテーターを備えた無菌容器中に無菌状態で合わせ、そして30分ほど混合する。
容器. 製品を無菌の200-500ミクロンのフィルターエレメントを通して粗濾過し、次いで9CFR114.6中にて指定される条件下で、無菌最終容器中へ、充填操作のために指定された部屋の中で充填してよい。ガラス性またはプラスチック容器をゴム栓でふさぎ、そしてアルミニウム封印紙でしわをつけて封じる。各2.0mlの投与製剤は、2×109ほどのマイコプラズマ ハイオニューモニエDNA細胞同等物を含む。
効能試験のためのアッセイ法:6〜7週齡の、Harlan Sprague Dawleyまたは他のふさわしい供給業者からの委託販売のICR雌マウスを用いる。最少20匹が、それぞれ未知および引用のバクテリンでの免疫化のために必要である。最少5匹のマウスを非予防接種対照として確保する。試験および引用バクテリンは、別個に完全に混合する。5/8インチの針による25ゲージで適合させた無菌の使い捨ての注射器を用いて、マウスを、宿主動物投与量の10分の1(0.2mL)にて鼠蹊領域に皮下接種する。マウスの各グループを別個の単位として飼育し、14日間、食餌および水を自由に摂ることができるようにする。各マウスを次いで麻酔する。麻酔したマウスを仰向けにする。一つの手で頭を押さえ、一つの前足を体から離して伸ばす。解剖用のメスを用いて、伸ばした前足と胸部の間に約1/2−インチの長さの皮膚切開をなし、腕の動脈を切断する。針のない3.0mLの注射器を用いて、切開にて溜まる血液を集める。血液をラベルをつけた試験管に注ぎ、そして凝血させる。血餅が生じた管を1,000×gにて遠心分離し、血餅から血清を分離する。個々の血清を−20℃またはそれより低温で、試験まで貯蔵する。
アフィニティ精製した抗−マウスIgGペルオキシダーゼー標識コンジュゲートを、KirkegaardおよびPerry Laboratories, Inc.から得た(カタログ番号074-1802)。コンジュゲートの最適の希釈を決定するための方法を以下に示す。ペルオキシダーゼ基質溶液(ABTS)は、KirkegaardおよびPerry, Incから得る。
コンジュゲートの滴定:Immulon II平底プレートを、10mMのGBS中に希釈した、20μg/mLのマイコプラズマ ハイオニューモニエ完全細胞抗原で100μl/ウェルにて覆う。プレートを1時間ほど37℃+2℃にてインキュベートし、次いで18時間ほどおよび1週間ほど2−7℃へと移す。使用前にプレートを、各洗浄の間に1分間の浸漬時間を取って、3回PBSTにて洗浄し、次いで液を除いて乾燥させる。陽性対照血清のPBST中1:40希釈物を調製し、次いで希釈した陽性血清(100μL/ウェル)をプレート中のウェルの半分に添加する。PBSTをウェルの残りの半分に添加する。プレートを1時間室温でインキュベートし、その後プレートを3回洗浄する。コンジュゲートした血清は、PBSTで、1:100希釈で始め、1:10,240希釈で終える2倍連続希釈する。100μlの各コンジュゲート希釈物を陽性血清の4つのウェルおよびPBSTの4つのウェルに添加し、次いで1時間半室温にて反応させる。プレートを4回洗浄し、次いで100μlのペルオキシダーゼ基質溶液(abts)をウェル当たりに添加する。プレートを、Tλ=450の2波長設定にて読む。PBST対照の値を陽性対照血清の値から差し引いた場合に陽性対照血清に関して0.850〜1.050の記録を示すコンジュゲートの希釈を選択する。
マイコプラズマ ハイオニューモニエ抗原は、完全細胞調製物であり、フォート・ダッジアニマルヘルスにより供給される。
ELISAを以下のように行う。Dynatech Immulon II平底マイクロタイタープレートを用いる。1バイアルの凍結乾燥したマイコプラズマ ハイオニューモニエ完全細胞抗原をグリシン緩衝塩水(GBS)で10mlへと復元する。復元したマイコプラズマタンパク質の濃度は20μg/mLである。100μl(2μg)の希釈抗原を次いでプレートの全ウェルに添加する。プレートを37±2℃にて1時間ほどインキュベートし、次いで最短18時間、および最長1週間2−7℃へ移す。プレートを、各洗浄の間に1分間浸漬して、PBSTで3回洗浄し、次いで液を除いて乾燥させる。血清をPBSTにて1:40に希釈する。陽性対照血清を各プレートに関して4倍にて含める。ウェル当たりのサンプル容積は100μlである。シリアル試験血清サンプルおよび引用血清サンプルは、同じプレートにおいて2倍で試験する。プレートを1時間室温でインキュベートし、次いで3回PBSTで洗浄する。PBSTにて希釈した、100μlの抗−マウスIgGペルオキシダーゼ−標識コンジュゲート(KirkegaardおよびPerry)を全ウェルに添加し、次いでウェルを30分間室温にてインキュベートする。プレートを4回PBSTで洗浄する。100μlのペルオキシダーゼ基質溶液(ABTS)を全ウェルに添加し、次いでプレートを、器械をPBST対照ウェルに対してブランクにする場合に陽性対照血清が0.850〜1.050のOD405(450)に達するまでインキュベートする。プレートを記録し、次いでPBSTウェルに対してブランクをとる。有効な試験であるためには、引用バクテリンで接種したマウスの血清は0.500の最小平均値を生じなければならず、および非ワクチン処置対照マウスの血清は、0.100の最大平均値を超えてはならない。または、引用バクテリンで接種したマウスの血清の平均値と非予防接種対照マウスの血清の平均値の間の差は、0.400より大きいか、それと等しくなければならない。
試験ワクチン:
試験のためのワクチンは、1またはそれ以上のテルペン炭化水素を含む代謝可能なオイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの5%の混合物(スクアラン/プルロニックL121混合物)をアジュバントとして、および0.2%のアクリル酸ポリマー(カルボポル)、および2×109のM.ハイオニューモニエDNA細胞同等物(MHDCE)を1投与量当たりに用いて、実施例1に記載する方法に従い調製した。
本試験は、3週齡における実施例2のワクチンの単回投与予防接種により誘導される、ブタにおける4ヶ月の免疫性持続(DOI)を立証するために設計した。
2つの別個の動物試験を、本試験に関して行った。両試験の全ブタは予防接種の時点で血清陰性であり(抗体力価<10)、動物がマイコプラズマ ハイオニューモニエに罹患しやすいことを示した。対照群の全ブタは、攻撃前、ずっと血清陰性であった。これは、予防接種したブタにおける免疫反応がワクチンによるものであり、いずれの環境への暴露によるものでもなかったことを示す。
結論として、実施例2のワクチンにより、3週齡のブタにおける単回投与の予防接種後4ヶ月での毒性のM.ハイオニューモニエ攻撃に対して予防免疫性が誘導される。
2つの別個の試験を本試験において行った。試験1では、67匹(67)のブタを、マイクロソフトエクセル無作為化プログラムを用いて4つの群に割り当てた。24匹(24)のブタを実施例2に従い調製したワクチンの単回投与にて筋肉内(IM)にて18-21日齡にて予防接種した。24匹(24)のブタを攻撃対照として、および10匹のブタを非攻撃対照として用いた。9匹のブタを市販の製品、Infelvac M.hyo(登録商標)、[シリアル271032、Boehringer Ingelheim (BI)により製造]で、ラベルの指示に従って、IMにて予防接種した。5匹のブタ(実施例2のワクチンで予防接種した2匹のブタ、BIワクチンで予防接種した1匹、および2匹の対照)は、予防接種に関係のない理由のために、予防接種維持期間中に死亡した。予防接種群および攻撃対照群の残るブタを14mLの毒性M.ハイオニューモニエ(1.4×106生物体)で、予防接種後4ヶ月で攻撃した。全4群のブタを攻撃後30日で安楽死させ、そして、肺障害を、試験における各ブタに関してスコアした。
予防接種群における各ブタに、試験ワクチンの単回2ml投与量を首の側面にてIMにて施した。
毒性M.ハイオニューモニエ攻撃ストック、凍結(−70℃)肺ホモジェネートは、アイオワ州立大学(ISU)からDr. Eileen Thacker氏により調製された。攻撃ストックは純粋であることが確認され、そして、mL当たり約107のM.ハイオニューモニエを含んだ。推奨される攻撃投与量は、1:100希釈ストックの10ml(即ち、1.0×106生物体)である。
攻撃の日、ホモジェネートを温水下に迅速に溶解し、滅菌M.ハイオニューモニエ増殖培地を用いてISUによる推奨に従い希釈した。ブタに、50mg/mLのキシラジン、50mg/mLのケタミン、および100mg/mLのテラゾールから成るキシラジン−ケタミン−テラゾール(登録商標)の混合物を鎮静剤として飲ませた。麻酔薬の混合物は、IMにて0.01−0.02mL/Ib体重にて与えた。各ブタに、攻撃物質の14mL(第1試験)または10mL(第2試験)の単回投与を気管内投与した。針の配置が正確であることを保証するために、空気を攻撃投与の投与前に注射器に引き入れた。非予防接種非攻撃対照ブタは別の部屋に維持し、そして攻撃しなかった。
攻撃後(DPC)30日にて、全ブタを安楽死させた。肺を取り出し、そして著しい肺障害を、試験群に関する知識を持たない個人によりスコアした。
血液サンプルを予防接種日(0DPV)、予防接種後1ヶ月(1MPV)、4MPV/0DPC、および30DPCにおいて、競合ELISAキット(DAKO Co.により製造)により検出されるM.ハイオニューモニエに対する血清抗体のために、全ブタから収集した。血清サンプルは試験前、−20℃にて貯蔵した。
肺障害スコアを、分散分析(ANOVA)により、予防接種群および非予防接種群の間で比較した。肺スコアを逆正弦変換して、残差の分布を改良した。
結果および論考
血清学:両試験の全ブタを、市販の競合ELISAキットにより、1:10の血清希釈を全試験に関して用いて、M.ハイオニューモニエに対する血清抗体に関して試験した。全ブタは予防接種の時点で血清陰性であり(抗体力価<10)、動物がM.ハイオニューモニエに罹患しやすいことを示した。対照群の全ブタは攻撃前ずっと血清陰性のままであった。これは、予防接種したブタにおける免疫化反応がワクチンによるものであり、およびいずれの環境の暴露にもよるものではないことを示す。予防接種群における全ブタおよび攻撃対照群のブタのほとんど(試験1の22匹のブタの内の18匹および試験2の25匹のブタの内の15匹)は攻撃後M.ハイオニューモニエに対して血清変換し、一方、全非攻撃動物は血清陰性をのままであった。これは、攻撃がM.ハイオニューモニエ特異的であったことを示す。試験動物の血清学的状態を、表1にまとめる。
第1試験は、実施例2のワクチンが、予防接種後4ヶ月でのISUにより推奨されるよりも高レベルの攻撃に対して予防することができる強い免疫化を刺激することができるかどうかを決定するために行った。この試験は、実施例2のワクチンを市場入手可能なIngelvbac M. hyo(登録商標)と、予防接種後4ヶ月で予防免疫化を刺激するその能力に関して比較するものであった。
試験2における予防接種および攻撃対照群のブタは、ISUにより推奨される攻撃投与量(1.0×106生物体)にて、予防接種後4ヶ月にて評価し、4ヶ月のDOIを立証した。肺の障害の割合を表3にまとめる。対照群は10.4%の平均の肺障害を有した。予防接種群は5.5%の平均の肺障害を有した。予防接種群と対照群の間には優位な差があった(p=0.031)。これは、実施例2のワクチンが予防免疫性を刺激するのに効果的であり、予防免疫性が、3週齡のブタにおける単回投与の予防接種後、少なくとも4ヶ月持続し得ることを示す。
2つの試験が明らかに異なる一方で、群における試験の効果は有意ではなかった。群の効果の大きさは、2つの試験の間で同様であった。つまり、群の効果は試験を考慮せずに評価することができた。フルモデルの分析は群と試験の間の相互作用が有意ではないことを示したので、これは、群の効果が両試験において同じであったという見解を支持し、そして2つの試験からのデータの組み合わせを単一の分析とすることが正当化される。このようにして、2つの試験からの実施例2のワクチンに関係するデータを合わせ、そして肺の障害に関する逆正弦変換変数を、独立変数として群および試験を用いて分析した場合(縮約モデル)、該群は統計学的に有意である(p=0.013)。
単回投与による投与の6ヶ月後の毒性攻撃に対する本発明のワクチン組成物により誘導される長期免疫性の評価
実施例1および2に記載する本質的に同じ方法を用いて、および以下に示す量を用いて、試験ワクチンAを調製した。
33匹の21日齡のブタを本評価に加えた。20匹のブタを3週齡にてワクチンAの単回投与にて筋肉内にて(IM)予防接種した。10匹のブタを非予防接種対照として、および3匹のブタを非予防接種環境対照として用いた。
全ブタは予防接種の時点で血清陰性であり(抗体力価<10)、動物が、M.ハイオニューモニエに罹患しやすいことを示した。対照群における全ブタは、攻撃前、ずっと血清陰性のままであった。これは、予防接種したブタにおける免疫化反応がワクチンによるものであり、いかなる環境への暴露によるものでもなかったことを示す。
本評価にて得られたデータは、試験ワクチンAが、単回投与の予防接種の6ヶ月後の毒性M.ハイオニューモニエ攻撃に対して長期の予防免疫性を誘導したことを立証する。
33匹の21日齡のブタを、マイコロソフトエクセル無作為化プログラムを乱雑に(by litter)用いて3つの群(予防接種群、攻撃対照群、および非攻撃環境対照群)に無作為に割り当てた。20匹のブタを3週齡にて試験ワクチンAの単回投与にて筋肉内に予防接種した。10匹のブタを攻撃対照として、および3匹のブタを非攻撃環境対照として用いた。予防接種群および攻撃対照群のブタを、予防接種の6ヶ月後にブタ当たり10mLの毒性M.ハイオニューモニエ(1.0×106生物体)培養物で攻撃した。3匹の非予防接種ブタを、非攻撃対照として用いた。攻撃ブタおよび非攻撃対照ブタを、攻撃後26日にて安楽死させ、そして肺障害を各ブタに関してスコアした。
予防接種群の各ブタには、首の側面にIMにて、単回2mLの投与量の試験ワクチンを与えた。
毒性M.ハイオニューモニエ攻撃ストック、凍結(<−70℃)肺ホモジェネートは、アイオワ州立大学(ISU)からDr. Eileen Thackerにより調製された。攻撃ストックは純粋であることが確認され、そして約107のM.ハイオニューモニエ生物体をmL当たりに含んだ。
ブタを1:100希釈のストック10mL(即ち、約1.0×106生物体)で攻撃した。
攻撃の日、ホモジェネートを温水下で迅速に解凍し、そしてISUによる推奨に従い、滅菌M.ハイオニューモニエ増殖培地を用いて希釈した。ブタに、50mg/mLのキシラジン、50mg/mLのケタミン、および100mg/mLのテラゾールから成るキシラジン−ケタミン−テラゾール(登録商標)の混合物を鎮静剤として飲ませた。麻酔薬の混合物は、IMにて0.01−0.02mL/Ib体重にて与えた。各ブタに攻撃物質の単回10mL投与量(1.0×106生物体)を、気管内投与した。針の配置が正確であることを保証するために、攻撃投与の投与前に空気を注射器に引き入れた。非予防接種非攻撃対照ブタは別の部屋に維持し、そして攻撃はしなかった。
攻撃後(DPC)26日にて、全ブタを安楽死させた。肺を取り出し、そして著しい肺障害を、実施例3に記載するようにスコアした。
血液サンプルを、予防接種の日(0DPV)、35DPV、−1DPC、および26DPCにて、競合ELISAキット(DAKO Co.により製造)により検出されるようなM.ハイオニューモニエに対する血清抗体の測定のために収集した。血清サンプルは、試験される前、<−20℃にて貯蔵した。
肺障害スコアを、片側ANOVAにより、予防接種と対照の間で比較した。肺障害スコアを逆正弦変換して、残差の分布を改良した。肺障害スコアに関する正規性の仮定は疑わしかったので、肺障害スコアと逆正弦変換肺障害スコアを、Wilcoxon Rank Sum試験により分析した。有意なレベルはp<0.05に設定した。非パラメトリックなWilcoxon Rnak Sum試験からの結果を、報告のために用いた。
血清学
全ブタを、全試験の1:10血清希釈を用いて、市販の競合ELISAキットにより、M.ハイオニューモニエに対する血清抗体に関して試験した。疑わしい試験結果を有するサンプルは、キットの説明に従い、データ分析において陽性として扱う。全ブタは予防接種の時点で血清陰性であり(抗体力価<10)、動物がM.ハイオニューモニエに罹患しやすいことを示した。対照群における全ブタは攻撃前、ずっと血清陰性のままであった。予防接種後、20匹の予防接種ブタの15匹(15/20)が少なくとも一度、M.ハイオニューモニエに対して血清陽性となった(35DPVおよび−1DPCにて収集されたサンプル)。これは、予防接種ブタにおける免疫化反応がワクチンによるものであり、いずれの環境への暴露によるものでもなかったことを示す。全予防接種ブタ、および攻撃対照群の10匹のブタの内の4匹が、攻撃後、M.ハイオニューモニエに対して血清陽性となったが、全非攻撃動物は血清陰性のままであった。試験動物の血清学的状態を表4にまとめる。
試験ワクチンAで予防接種した20匹のブタおよび10匹の非予防接種対照ブタを、予防接種の6ヶ月後に毒性M.ハイオニューモニエ(ブタ当たり1.0×106生物体)で攻撃した。3匹のブタを非攻撃対照として用いた。20匹の予防接種ブタの内の8匹(40%)が攻撃後に肺障害を進行させなかったが、対照群においては、10匹のブタの内の1匹のみ(10%)が肺障害を有しなかった。肺障害の割合を表5にまとめる。予防接種ブタは3.6%の平均の肺障害スコアを有し、および攻撃対照ブタは14.6%の平均の肺障害スコアを有した。予防接種群における肺障害は、対照よりも有意に少なかった(p=0.0215)。
Claims (17)
- マイコプラズマ ハイオニューモニエによる感染に対してヒト以外の動物を免疫化するためのワクチン組成物であって、
免疫化量のマイコプラズマ ハイオニューモニエバクテリン;
アクリル酸ポリマー、および代謝可能なオイルとポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物を含むアジュバント混合物;および、
医薬上許容されるキャリアを含み、単回投与後、6ヶ月の期間、該ヒト以外の動物にてマイコプラズマ ハイオニューモニエからの予防免疫性を誘発するところの組成物。 - アジュバント混合物が、アクリル酸ポリマーの、代謝可能なオイルとポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーとの混合物に対する比率が1:25〜1:50である、アクリル酸ポリマーと、1またはそれ以上のテルペン炭化水素を含む代謝可能なオイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物とから成る、請求項1記載のワクチン組成物。
- アジュバント混合物が、ワクチン組成物の1−25%v/vを構成する、請求項1記載のワクチン組成物。
- アクリル酸ポリマーが、1%v/vの最終濃度で存在し、およびテルペン炭化水素とポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーとの混合物が 5%〜約10%v/vの最終濃度で存在する、請求項3記載のワクチン組成物。
- アジュバント混合物が、ワクチン組成物の2%〜15%v/vを構成する、請求項3記載のワクチン組成物。
- アジュバント混合物が、ワクチン組成物の5%〜12%v/vを構成する、請求項5記載のワクチン組成物。
- 代謝可能なオイルがスクアランまたはスクアレンである、請求項1記載のワクチン組成物。
- アクリル酸ポリマーがカルボポルである、請求項6または請求項7記載のワクチン組成物。
- ヘモフィラス パラサイス、パスツレラ マルトシダ、ストレプトコッカム サイス、アクチノバシラス プレウロニューモニエ、ボルデテラ ブロンキセプチカ、サルモネラ コレラおよびレプトスピラ細菌から成る群から選択される少なくとも一つのバクテリンをさらに含む、請求項1〜8のいずれか1項記載のワクチン組成物。
- マイコプラズマ ハイオニューモニエにより引き起こされる疾患に対してブタ動物を保護する方法であって、
免疫化量のマイコプラズマ ハイオニューモニエバクテリン;
アクリル酸ポリマーと、代謝可能なオイルおよびポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物とから成るアジュバント混合物;および、
医薬上許容されるキャリアから成るワクチン組成物を当該ブタ動物に投与することを含み、単回投与後、6ヶ月の期間、マイコプラズマ ハイオニューモニエ疾患に対して当該ブタ動物に予防免疫性を誘発するところの方法。 - バクテリンの免疫化量が、1×108〜3×1011 MHDCE/mLである、請求項10記載の方法。
- バクテリンの免疫化量が、1×109〜3×109MHDCE/mLである、請求項11記載の方法。
- ワクチン組成物が、筋肉内、皮下、腹腔内、エアゾル、経口、または鼻腔内経路により投与される、請求項10記載の方法。
- アジュバント混合物が、1−25%v/vの最終濃度で存在している、アクリル酸ポリマーおよび1またはそれ以上のテルペン炭化水素から成る代謝可能なオイルとポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物から成る、請求項10記載の方法。
- アジュバント混合物のアクリル酸ポリマーがカルボポルである、請求項14記載の方法。
- アジュバント混合物の代謝可能なオイルが、スクアレンおよびスクアランからなる群から選択されるテルペン炭化水素である、請求項14記載の方法。
- ヘモフィラス パラサイス、パスツレラ マルトシダ、ストレプトコッカム サイス、アクチノバシラス プレウロニューモニエ、ボルデテラ ブロンキセプチカ、サルモネラ コレラおよびレプトスピラ細菌から成る群から選択される少なくとも一つのさらなるバクテリンを同時投与することをさらに含む、請求項10〜16のいずれか1項記載の方法。
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