JP4920412B2 - 軟骨組織欠損の予防または回復における、cxcl6ケモカインの使用 - Google Patents
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Description
トロおよびインビボにて、ヒトおよびネズミ白血球両方に対する、特定の走化強度において、劇的な差を示す。CXCL6は、単球上で走化性効果を持たない、特定の顆粒球誘因物質であると報告されている(Van Damme et al.(1997)前掲)。
た(Votta et al.(2000)J Cell Physiol.183,196−207)。Doitsidouら((2003)Cell 11,647−59)およびWrightら((2002)J Exp Med.195,1145−1154)は、それぞれ、始源生殖細胞および造血幹細胞の遊走における、SDF−1およびそのレセプターCXCR4の役割を証明している。Kingら((2000)Blood 97,1534−1542および(2001)J.Immunol.164,3774−3782)は、CXCL2(GroBeta)のアミノ末端短化における、造血活性での劇的な増加を記述しており、この短化バージョンが、造血幹細胞を集結可能であることを示している。米国特許第6,410,268号では、癌および白血病の処置において適用可能である、特に骨髄幹細胞の、CXCL6を用いる、幹細胞集結における可能性のある役割について推測している。
287,13−33)に示されている。原核および真核発現−システム(酵母、バキュロウイルス、哺乳動物細胞)のような、本発明の時点で、当業者に公知の組換え体DNA技術を、CXCL6の産出のために使用可能である。Froyen et al.((1997)Eur J Biochem 243,762−769)は、大腸菌(E.Coli)のペリプラズマへのCXCL6の発現を記述している。COS細胞内、およびバキュロウイルス発現システム内でのCXCL6の発現が、米国特許第6,410,268号で記述されている。生物学的に活性なCXCL6はまた、化学合成、続いて、ジスルフィド結合の導入によって得られた(Wutys et al.(1997)前掲)。CXCL6を得るための方法はさらに、欧州特許第08044876号にて記述されている。
and Yoshie (2000)前掲、にその総説がある)約8,000〜14,000の分子量を持つ、小ペプチドに関し、白血球のような細胞の移動を指向可能である。
Methods.33,239−247によって記述されたような)マイクロチャンバーを用いて測定可能である。マイクロチャンバーの下コンパートメントに試験試料をロードし、上コンパートメントを、細胞を含む培地でみたす。下および上コンパートメントを、5μmポア−サイズポリカーボネート膜によって分離する。インキュベーション期間の後、膜を取り除き、固定して染色し、試験試料の走化性効果を、膜を介して遊走した細胞の数をスコア化することによって決定する。再び陽性および陰性コントロールを含める。インビボ注入のような、化合物の走化性活性を測定するための他の方法が、当該技術分野で記述されている。
い軟骨組織を意味する。
される、そして転写開始部位、転写開始因子およびRNAポリメラーゼに対する結合部位を含む、DNA領域を意味する。プロモーターはまた、エンハンサーまたは転写の阻害因子のような、他の調節タンパク質に関する結合部位を含んでも良い。
類(前駆体細胞の軟骨形成能力に、陽性に、または陰性に関連した、前駆体細胞によるマーカーの発現、または前駆体細胞の分化、または軟骨形成細胞の成熟後、成熟軟骨細胞の軟骨細胞安定性と陽性に、または陰性に関連したマーカーの発現)に関して、スクリーニング可能である。同様のスクリーニングを実施して、骨形成細胞中のCXCL6発現における、化合物の効果をアッセイ可能である。したがって、本発明は、細胞の軟骨形成および/または骨形成の可能性を調節する化合物に関してスクリーニングするための方法を提供する。
号にて開示されたもののような、軟骨細胞表現型安定性に陰性に関連した)陰性マーカー類のいずれかであり得る。任意に、細胞または細胞集団の同定は、(軟骨細胞集団に関するALK−1のような)該細胞集団に関する軟骨細胞表現型安定性に対する陰性マーカーの発現に対する、CXCL6の発現の比に依存して実施可能である。好ましくは、この比は、2:1またはそれ以上、より具体的には5:1またはそれ以上でありうる。軟骨細胞表現型安定性に関するマーカーの使用は、(自己細胞移植(ACT)でのような)骨軟骨欠損の予防または回復での使用のために、細胞集団の品質制御および選別を含む、多数の適用のために、軟骨形成細胞の継代細胞拡大による継代のモニタリングのために、そして軟骨細胞表現型安定性を得るため、または維持するために好適な培養状態を同定するために、興味深い。(たとえば、定期検出のための、DNAアレイまたはDNAチップにて)軟骨細胞表現型安定性に対する陽性マーカーを用いるための、そのような適用および方法が、国際特許第WO01/24833号に記述されている。
発明の好ましい実施形態にしたがって、CXCL6の発現のために遺伝子工学的に改変した細胞、またはインビボにて、DNAの導入のためのベクターを、処置すべき、軟骨組織または骨軟骨欠損の環境に、局所で投与する。
骨髄に由来するヒトMSCsを、TGFベータによって、軟骨組織産出細胞へ分化するように刺激可能であることが記述された(Mackay et al.(1998)Tissue Eng 4,415−28)。異なる分化工程におけるCXCケモカイン類の関与を査定するために、滑膜から得た間充織幹細胞のミクロマスペレットを、10%熱不活性化血清を含む培地中でプレートした。3時間後、485マイクロリットルのSF培地を加えた。次の日、SF培地をリフレッシュし、抗体および増殖因子、TGFベータ(5ng/ml)、CXCR1またはCXCR2への抗体(最終濃度5g/ml)、または可溶性CXCR1およびCXCR2のいずれかを、100×溶液(5μl/ウェル)中に加えた。これらの細胞による、軟骨組織を産出する能力を、全量マイクロマスのアルシアンブルー染色、およびO.D.での染色の検出によって測定した。結果を図1に示す。
ヒト関節軟骨細胞の3つのプールを、任意の関節疾患に患っていないヒトドナーからの関節軟骨組織より得た。簡単に記すと、軟骨組織を、完全な厚さに切断して、ペニシリン、ストレプトマイシンおよびアンホテリシンB(ライフ テクノロジーズ(Life Technologies))を含む、(ライフ テクノロジーズから入手した)ハンクスのバランス塩溶液(Hank’s Balanced Salt Solution(「
HBSS」)中に配置した。37℃で5分間、HBSS中で2回洗浄した後、関節組織を細かくミンチし、10%FBS(バイオウィテーカー(Biowittaker))、ペニシリン、ストレプトマイシンおよびアンホテリシンBを含む、高グルコース含有ダルベッコ改変イーグル培地(Dulbecco’s Modified Eagle Medium(「DMEM」)(ライフテクノロジーズ)中の、無菌0.2%未精製コラゲナーゼ(ライフテクノロジーズ)中に入れた。37℃にて一晩インキュベートした後、細胞を、10%FBS、100ユニット/mlペニシリン、100μg/mlストレプトマイシン、および0.25μg/mlのアンホテリシンBで補充した、DMEM培養培地中で2回洗浄し、生細胞の数に対して調整するために、トリパン−ブルー排除試験で計数した。得られた細胞を、単層にて培養した。第一継代(P0)において、2つの分液(各5×106細胞)を、国際特許第WO01/24833号にて記述したように、軟骨細胞安定性に関して、インビボで注入した。より小さな分液を使用して、RNA抽出物を得、残りを再プレートした。総RNAを、(ライフ テクノロジーズから入手可能な)Thermoscriptを用いて逆転写し、半定量PCR解析のために使用した。継代5後、2つの試料を、脱分化軟骨細胞による、II型コラーゲン発現の助けとなることが知られている系である、低融解−アガロース培養中に入れた。二ヶ月後、コロニー形成が豊富であり、培養をRNA抽出のために回収した。半定量RT−PCR解析を、CXC6の発現のために実施した。
本実験の目的は、大骨軟骨欠損の回復における、CXCL6の効果を実証することであった。
動物:7匹の、乳を分泌しておらず、妊娠していないメスSaanenヤギを使用した(4匹処置−3匹コントロール)。すべてのヤギは、2年齢またはそれ以上であり、CAE(ヤギ関節炎および脳炎ウイルス(Caprine Arthritis and Encephalitis Virus)−陰性認定農園から供給された。
実験デザイン
前麻酔実験、および前投薬(キシラジン 0.2mg/kg+アトロピン 0.02mg/kgIM、抗生物質:アンピシリン10mg/kg、および鎮痛剤:フェンタニル0.1mg/kgIM)の後、ヤギをケタミン(2mg/kg)およびミダゾラム(0.5mg/kg)を用いて、一般麻酔をかけた。一般麻酔を、イソフランおよび酸素での吸入麻酔によって維持した。動物を、ECGおよびMAPによってモニタし、NaCl 0.9%で、静脈注入ラインを与えた。
−左後外側褥瘡、屈曲左脚ぶら下がり自由
−定期クリッピング、左膝関節領域の消毒およびドレーピング
−膝蓋靱帯の中央に接した、+/−7cmの皮膚切開
−膝、膝蓋靱帯に内側に隣接する小関節切開への、直線中央アプローチ、Hoffa脂肪パッドの部分の除去
−6mm深骨軟骨欠損を、6mmバーを用いて、左内側大腿顆の中心部分で作製する。
−欠損を、ガーゼ綿棒で乾燥させる。
骨欠損を、担体として使用される、吸収ゼラチンスポンジ(Spongostan(商標)−0.6cm×0.6cm×0.6cm−PBSにて飽和)の一部で充填した。全ての欠損を、軟骨繊維上に縫合した、骨膜フラップで密封した。
臨床評価、実験室試験およびフォローアップ
手術前および屠殺時、血液および尿試料をとった。血液試料を、多数の因子(Hb、Hct、RBC、MCV、MCH、MCHC、RDW、WBC+ホーミュラ、エオシン、Count、Thromb、Ret.、Fe、フィブリノーゲン+TP/Fibr、Ratio、Na、K、Cl、Ca、PO4、MG、Ureum、TP+電気泳動、AST、GGT、AP、LDH)に関して試験した。尿を、赤血球細胞およびタンパク質の存在に関して試験した。屠殺の際に滑液を、細胞計数、TP、結晶、細菌学によって調査した。
評価の基準
屠殺前に、動物の関節を、筋肉萎縮、歩行の足跡解析に関して評価した。
−組織形態(もしあれば、軟骨線維の型)
−炎症の存在
−構造統合性(円柱構造の存在)
−軟骨細胞クラスタリング
−タイドマークの形成
−軟骨下骨形成
−表面の構造
−側面統合性(移植片の1つまたは両方の末端で結合しているかどうか)
−規定統合性
結果
図2および3は、CXCL6−処置膝において発生している回復において、CXCL6を加えなかった欠損と比較した差違を示している。CXCL6がない状態で、関節欠損ゾーンが血管化し、主に、線維−軟骨組織からなることを見ることができる。CXCL6処置欠損において、ヒアリン軟骨組織と下骨の回復が存在する。CXCL6で処置した関節
欠損、およびCXCL6で処置しない関節欠損に関する評価基準の概説を、表2にて提供している。
Claims (9)
- インビボでの軟骨組織または骨の形成の促進用の組成物であって、CXCL6−発現細胞を含み、プロモーターの制御下、前記CXCL6をコードしている外来DNAを含む、CXCL6−発現細胞を含む組成物。
- 軟骨組織または骨軟骨欠損の予防または処置のための、請求項1に記載の組成物。
- 前記CXCL6−発現細胞が、軟骨形成細胞である、請求項1または2に記載の組成物。
- 前記CXCL6−発現細胞が、マトリックス中に埋め込まれたものである、請求項1〜3のいずれかに記載の組成物。
- 前記骨軟骨欠損が、炎症に関連しない、関節表面欠損である、請求項2に記載の組成物。
- インビボで安定ヒアリン軟骨組織を産生するための軟骨細胞懸濁液または集団のマーカーとしての、発現されたCXCL6のインビトロでの使用。
- インビトロでの軟骨組織および/または骨形成の促進のための、CXCL6の使用。
- インビトロにて始源細胞集団において、軟骨細胞表現型安定性を誘導するか、または回復される方法であって、前記始源細胞集団に、CXCL6を投与する段階を含む、方法。
- インビトロにて前駆体細胞集団の、軟骨組織への分化を誘導する、または回復させる方法であって、前記始源細胞集団に、CXCL6を投与する段階を含む、方法。
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