JP4769939B2 - Microfluidic enzyme sensor - Google Patents

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Description

この発明はマイクロ流体酵素センサ、詳しくは単一の培養細胞の微小部位から放出された生体分子を、細胞の近傍で高感度かつ高速に計測可能なマイクロ流体酵素センサに関する。   The present invention relates to a microfluidic enzyme sensor, and more particularly to a microfluidic enzyme sensor capable of measuring a biomolecule released from a minute part of a single cultured cell with high sensitivity and high speed in the vicinity of the cell.

近年、細胞レベルでの診断・治療技術、および、細胞を利用した創薬技術において、従来から行われている多数の細胞集団のふるまい、平均値を扱う手法ではなく、単一細胞レベルの挙動を計測制御する技術の開発が必要となっている。特に、細胞から放出される生体分子の計測は、細胞機能の解明および細胞活動のモニタリングに必要不可欠である。その中でも酵素反応を利用したセンシング技術(電気化学的な分析法)は、アセチルコリン、グルタミン酸、グルコースなど、多くの生体分子を選択的に検出することができる点で優れている。
しかしながら、酵素センサを利用し、単一細胞の微小部位から放出される生体分子を、空間的にも時間的にも高分解能で計測するには、酵素電極の微小化に伴うノイズの増加の問題、固定化酵素量の減少による測定電流量の減少の問題、細胞とセンサとの精密な位置決めの問題など、多くの解決すべき課題が存在し、実用的なセンサは未だ開発されていないのが実情である。
In recent years, in cell-level diagnosis and treatment technology and drug discovery technology using cells, the behavior of a large number of cell populations and the method of handling the average value, which is conventionally performed, are not handled by a single cell level. Development of measurement and control technology is required. In particular, measurement of biomolecules released from cells is indispensable for elucidating cell functions and monitoring cell activities. Among them, a sensing technique (electrochemical analysis method) using an enzyme reaction is excellent in that it can selectively detect many biomolecules such as acetylcholine, glutamic acid, and glucose.
However, using an enzyme sensor to measure biomolecules released from a small part of a single cell with high resolution, both spatially and temporally, the problem of increased noise due to the miniaturization of enzyme electrodes There are many problems to be solved, such as a problem of a decrease in the amount of measurement current due to a decrease in the amount of immobilized enzyme, a problem of precise positioning between cells and sensors, and practical sensors have not been developed yet. It is a fact.

この点を踏まえて、以下、酵素センサの従来技術を説明する。
従来、例えばプローブ型の微小電極を細胞近傍に配置し、単一細胞からの生体分子を計測する方法が知られている。
また、特許文献1に示すように、アレイ状に配置された電極上に酵素を固定化し、その電極上でスライスされた脳の海馬などから放出されるグルタミン酸を計測する技術が開発されている。これは、大きい生体組織、複数細胞における生体分子の空間的分布を計測する際など、同時多点的な計測に適している。
Based on this point, the prior art of the enzyme sensor will be described below.
Conventionally, for example, a method of measuring a biomolecule from a single cell by arranging a probe-type microelectrode near the cell is known.
Further, as shown in Patent Document 1, a technique has been developed in which an enzyme is immobilized on an electrode arranged in an array, and glutamic acid released from a brain hippocampus or the like sliced on the electrode is measured. This is suitable for simultaneous multipoint measurement, for example, when measuring the spatial distribution of biomolecules in a large biological tissue or a plurality of cells.

特開2001−108647号公報JP 2001-108647 A

しかしながら、前述した従来のプローブ型の微小電極を有する酵素センサでは、細胞と電極との距離を精密に制御することが難しく、微小電極の微小化に伴い微小電極上に固定化される酵素量が極めて少なくなり、充分な応答電流を得ることができない。
また、特許文献1にあっては、アレイ状に配置された微小な電極上に酵素を固定化し、その電極上で、細胞から放出されたグルタミン酸を計測する。そのため、同じように電極の微小化に伴い酵素固定化量が減少するとともに、応答電流がノイズレベルまで減少する。よって、単一細胞の微小部位を計測する方法としては好適でない。
However, in the enzyme sensor having the conventional probe type microelectrode described above, it is difficult to precisely control the distance between the cell and the electrode, and the amount of enzyme immobilized on the microelectrode due to the microelectrode miniaturization is small. It becomes extremely small and a sufficient response current cannot be obtained.
In Patent Document 1, an enzyme is immobilized on a minute electrode arranged in an array, and glutamic acid released from cells is measured on the electrode. Therefore, in the same manner, the amount of enzyme immobilized decreases with the miniaturization of the electrode, and the response current decreases to the noise level. Therefore, it is not suitable as a method for measuring a minute part of a single cell.

そこで、発明者は鋭意研究の結果、酵素を電極上に固定化せず、連通孔付きの隔膜によって、細胞を培養するチャンバと区分されたマイクロリザーバ内で酵素を流体として貯留すれば、生体分子の効率的な酵素反応を実現させ、単一の培養細胞の微小部位から放出される神経伝達物質などの生体分子を細胞の直下付近で高感度かつ高速に計測することができることを知見し、この発明を完成させた。   Therefore, as a result of earnest research, the inventor did not immobilize the enzyme on the electrode, and if the enzyme was stored as a fluid in a microreservoir separated from the chamber for culturing cells by a diaphragm with a communication hole, a biomolecule We have realized that it is possible to measure highly sensitive and high-speed biomolecules such as neurotransmitters released from a minute part of a single cultured cell near the cell. Completed the invention.

この発明は、単一の培養細胞の微小部位から放出された生体分子の濃度を、細胞の近傍で高感度かつ高速に計測することができるマイクロ流体酵素センサを提供することを目的としている。   An object of the present invention is to provide a microfluidic enzyme sensor capable of measuring the concentration of a biomolecule released from a micro site of a single cultured cell with high sensitivity and high speed near the cell.

請求項1に記載の発明は、細胞を培養するチャンバと、酵素溶液を貯液するためのマイクロリザーバと、前記チャンバと前記マイクロリザーバとを区分するとともに、前記チャンバと前記マイクロリザーバとを連通する連通孔が形成された隔膜と、前記マイクロリザーバに配置され、前記細胞から放出された生体分子の濃度を電気化学的に計測する電極とを備えたマイクロ流体酵素センサである。 The invention according to claim 1 separates the chamber for culturing cells, the microreservoir for storing the enzyme solution, the chamber and the microreservoir, and communicates the chamber and the microreservoir. A microfluidic enzyme sensor comprising a diaphragm in which a communication hole is formed and an electrode that is disposed in the microreservoir and electrochemically measures the concentration of a biomolecule released from the cell.

請求項1に記載の発明によれば、細胞の直下に連通孔を配置することが可能となり、この場合には、細胞から放出された生体分子が直ちに連通孔を通じてマイクロリザーバに拡散される。これにより、マイクロリザーバ中の酵素存在下で、効率的な酵素反応を起こすことができる。このとき、酵素反応に伴う生成物を、電気化学的な電極反応に伴う電流値として検出し、生体分子の濃度を知ることができる。例えば、生体分子がグルタミン酸、酵素がグルタミン酸酸化酵素の場合、その生成物は過酸化水素である。この過酸化水素が電極反応によって電子を電極に受け渡すため、その電流値からグルタミン酸の濃度を検出することができる。このときの反応式を次式に示す。   According to the first aspect of the present invention, it is possible to dispose the communication hole immediately below the cell. In this case, the biomolecule released from the cell is immediately diffused into the micro reservoir through the communication hole. Thereby, an efficient enzyme reaction can be caused in the presence of the enzyme in the microreservoir. At this time, the product accompanying the enzyme reaction can be detected as a current value accompanying the electrochemical electrode reaction, and the concentration of the biomolecule can be known. For example, when the biomolecule is glutamate and the enzyme is glutamate oxidase, the product is hydrogen peroxide. Since this hydrogen peroxide delivers electrons to the electrode by an electrode reaction, the concentration of glutamic acid can be detected from the current value. The reaction formula at this time is shown in the following formula.

L−glutamate+O+HO →
α−ketoglutarate+NH +H (1)
また、作用電極上で起こる反応は以下の通りである。
→ 2H+O+2e
このように、酵素を電極に固定化せず、流体として利用したので、電極の微小化に伴う酵素固定化量が減少するという問題が発生せず、効率的な酵素反応により、高感度でかつ高速な生体分子の濃度計測が可能となる。
L-glutamate + O 2 + H 2 O →
α-ketoglutarate + NH 4 + + H 2 O 2 (1)
The reaction that takes place on the working electrode is as follows.
H 2 O 2 → 2H + + O 2 + 2e
As described above, since the enzyme is not immobilized on the electrode but used as a fluid, there is no problem that the amount of enzyme immobilized due to the miniaturization of the electrode is reduced. High-speed biomolecule concentration measurement is possible.

マイクロ流体酵素センサの本体となる基板(チャンバ、マイクロリザーバの各構成部材)は限定されない。例えば、シリコン単結晶基板、SOI基板、ガラス基板、シリコーン樹脂などを採用することができる。シリコン単結晶基板の場合には、例えば2枚の基板間に隔膜(薄膜/隔壁)を介在させたものでもよい。具体的には、一方のシリコン単結晶基板を切欠して隔膜を露出させることでチャンバを形成し、他方のシリコン単結晶基板を切欠して隔膜を露出させることによりマイクロリザーバを形成する。   The substrate (each component of the chamber and microreservoir) that is the main body of the microfluidic enzyme sensor is not limited. For example, a silicon single crystal substrate, an SOI substrate, a glass substrate, a silicone resin, or the like can be used. In the case of a silicon single crystal substrate, for example, a substrate (a thin film / partition wall) interposed between two substrates may be used. Specifically, the chamber is formed by notching one of the silicon single crystal substrates and exposing the diaphragm, and forming the micro reservoir by notching the other silicon single crystal substrate and exposing the diaphragm.

基板がSOI基板の場合には、支持基板用ウェーハにチャンバを形成し、活性層にマイクロリザーバを形成し、さらにチャンバとマイクロリザーバの間の隔膜に連通孔を穿設したものでもよい。また、片面に隔膜を形成させたシリコン単結晶基板を加工することによりチャンバと連通孔とを形成し、別にガラス基板あるいはシリコーン樹脂でマイクロリザーバを形成し、それらを貼り合わせることで製作してもよい。
チャンバの大きさは、1個の細胞が固定可能であれば、特に限定されない。例えば、縦20μm〜1cm、横20μm〜1cm、深さ20μm〜5mmでもよい。チャンバの隔膜の素材としては、隔膜に細胞を接着させる場合があることから、細胞に対して接着性の良い材料が好適である。例えば、シリコン酸化膜などを採用することができる。しかしながら、細胞に対して接着性が低い材料でも、例えば隔膜の表面にコラーゲンなどの細胞への接着性を高める生体材料をコーティングすれば使用に耐え得る。
When the substrate is an SOI substrate, a chamber may be formed in the support substrate wafer, a microreservoir may be formed in the active layer, and a communication hole may be formed in the diaphragm between the chamber and the microreservoir. Also, it can be manufactured by forming a chamber and a communication hole by processing a silicon single crystal substrate having a diaphragm formed on one side, forming a microreservoir with a glass substrate or silicone resin, and bonding them together. Good.
The size of the chamber is not particularly limited as long as one cell can be fixed. For example, it may be 20 μm to 1 cm in length, 20 μm to 1 cm in width, and 20 μm to 5 mm in depth. As a material for the diaphragm of the chamber, a cell having a good adhesiveness to the cell is preferable because cells may adhere to the diaphragm. For example, a silicon oxide film or the like can be employed. However, even a material having low adhesiveness to cells can be used if the surface of the diaphragm is coated with a biomaterial that improves adhesion to cells such as collagen.

隔膜の厚さは限定されない。例えば0.5μm程度でもよい。なるべく薄い方がチャンバとマイクロリザーバとの距離が短くなり、測定の感度や応答速度は高まる。ただし、0.1μm以下になると薄すぎて隔膜が破損し易い。
連通孔の口径は、細胞の測定部位の寸法に応じて決定される。例えば、直径10μm程度の細胞うち、直径約0.5μmの部分を測定したい場合には、直径0.5μm程度の連通孔が必要となる。できるだけ小さい連通孔とした方が空間的な分解能は高まるものの、その分だけ、通過する生体分子の量が減少するので計測は難しくなる。
連通孔の形成数は限定されない。例えば1つでもよいし、2つ以上でもよい。
マイクロリザーバの寸法は限定されない。例えば、幅1μm〜1mm、深さ1μm〜1mm、長さ20μm〜1cmでもよい。
The thickness of the diaphragm is not limited. For example, it may be about 0.5 μm. The thinner the thickness, the shorter the distance between the chamber and the microreservoir, and the measurement sensitivity and response speed increase. However, when the thickness is 0.1 μm or less, the membrane is too thin and the diaphragm is easily damaged.
The diameter of the communication hole is determined according to the dimension of the cell measurement site. For example, when it is desired to measure a portion having a diameter of about 0.5 μm among cells having a diameter of about 10 μm, a communication hole having a diameter of about 0.5 μm is required. Although the spatial resolution increases when the communication hole is made as small as possible, the amount of biomolecules passing therethrough decreases, and measurement becomes difficult.
The number of communication holes formed is not limited. For example, one may be sufficient and two or more may be sufficient.
The dimensions of the microreservoir are not limited. For example, the width may be 1 μm to 1 mm, the depth may be 1 μm to 1 mm, and the length may be 20 μm to 1 cm.

マイクロリザーバ中に貯液される酵素溶液の種類は、計測対象の生体分子により任意に変更される。例えば、神経伝達物質の1つであるグルタミン酸を測定する場合には、グルタミン酸酸化酵素を、培地あるいは生理食塩水に溶解して酵素溶液とする。その他、グルコースの酸化を触媒するグルコースオキシダーゼ、アセチルコリンの加水分解を触媒するアセチルコリンエステラーゼ、コリンの酸化を触媒するコリンオキシダーゼなどが挙げられる。
酵素溶液の濃度は限定されない。例えば、50ユニット程度でもよい。1ユニットとは、1分間に基質(例えばグルタミン酸など)1μmolの変化(酸化還元など)を触媒する量である。濃度が高い方が効率的な酵素反応を期待することができる。
The type of enzyme solution stored in the microreservoir is arbitrarily changed depending on the biomolecule to be measured. For example, when measuring glutamate, which is one of neurotransmitters, glutamate oxidase is dissolved in a medium or physiological saline to obtain an enzyme solution. Other examples include glucose oxidase that catalyzes the oxidation of glucose, acetylcholinesterase that catalyzes the hydrolysis of acetylcholine, and choline oxidase that catalyzes the oxidation of choline.
The concentration of the enzyme solution is not limited. For example, it may be about 50 units. One unit is an amount that catalyzes a change (oxidation reduction, etc.) of 1 μmol of substrate (eg, glutamic acid, etc.) per minute. The higher the concentration, the more efficient enzyme reaction can be expected.

マイクロリザーバに配置される電極には、生体分子の酵素反応に伴う生成物と電子の授受を行う作用電極、参照電極、対向電極の3つが必要となる。作用電極の材料としては、白金が最適である。
作用電極の寸法は、連通孔の寸法(口径)および形成数などによって決定される。例えば、縦1μm〜1mm、横1μm〜1mmでもよい。寸法が大きい方が、電極反応に伴う応答電流量の増加は期待できるものの、空間的な分解能は低下する。
Three electrodes are required for the electrodes arranged in the microreservoir, that is, a working electrode, a reference electrode, and a counter electrode that exchange electrons with a product accompanying an enzyme reaction of a biomolecule. Platinum is the most suitable material for the working electrode.
The size of the working electrode is determined by the size (diameter) of the communication hole and the number of formations. For example, it may be 1 μm to 1 mm in length and 1 μm to 1 mm in width. A larger dimension can be expected to increase the amount of response current associated with the electrode reaction, but the spatial resolution decreases.

参照電極の材料は、銀−塩化銀または酸化イリジウムなど、電極電位が安定する不分極性電極が望ましい。銀−塩化銀電極は寿命が短いため、より長寿命化が期待できる酸化イリジウムの方が望ましい。参照電極の寸法は限定されない。例えば、縦10μm〜5mm、横10μm〜5mmでもよい。
対向電極の材料は白金が望ましい。対向電極の寸法は、作用電極の寸法を大きく上回る必要がある。例えば、作用電極の表面積の100倍程度あれば充分である。
The material of the reference electrode is preferably a nonpolarizable electrode with stable electrode potential, such as silver-silver chloride or iridium oxide. Since the silver-silver chloride electrode has a short lifetime, iridium oxide, which can be expected to have a longer lifetime, is desirable. The dimensions of the reference electrode are not limited. For example, the length may be 10 μm to 5 mm and the width may be 10 μm to 5 mm.
The counter electrode material is preferably platinum. The size of the counter electrode needs to be much greater than the size of the working electrode. For example, about 100 times the surface area of the working electrode is sufficient.

請求項2に記載の発明は、前記電極は、前記生体分子の酵素反応に伴う生成物と電子の授受を行う作用電極と、参照電極と、対向電極とを有し、前記隔膜のうち、前記連通孔の形成部分に前記作用電極が形成され、前記連通孔は、ナノ単位のポア径を有する多孔質のナノポーラス構造体によって塞がれた請求項1に記載のマイクロ流体酵素センサである。 According to a second aspect of the present invention, the electrode includes a working electrode that exchanges electrons with a product accompanying an enzyme reaction of the biomolecule, a reference electrode, and a counter electrode. 2. The microfluidic enzyme sensor according to claim 1 , wherein the working electrode is formed in a portion where the communication hole is formed, and the communication hole is closed by a porous nanoporous structure having a nano-unit pore diameter.

請求項2に記載の発明によれば、連通孔を通過してチャンバからマイクロリザーバに達した生体分子の酵素反応によって発生した生成物を、連通孔の形成部分に形成された作用電極により即座に検出することができ、応答性が高まる。また、その生成物がマイクロリザーバ内で拡散して濃度が低下する前に生成物を検出できるので、検出感度の向上にも寄与する。
さらに、連通孔に構成されたナノポーラス構造体により、分子径の小さな生体分子はチャンバから連通孔を通過してマイクロリザーバへ到達し、分子径の大きな酵素分子は連通孔を通過しない。そのため、マイクロリザーバからチャンバへ達しない、いわゆるフィルタリング効果を実現することができる。その結果、酵素がマイクロリザーバから漏出せず、酵素溶液の濃度は低下しない。よって、酵素反応の反応性は一定の値で持続する。
According to the second aspect of the present invention, the product generated by the enzymatic reaction of the biomolecule that has passed through the communication hole and reached the microreservoir from the chamber is immediately generated by the working electrode formed in the formation part of the communication hole. It can be detected and responsiveness is increased. Further, since the product can be detected before the product diffuses in the microreservoir and the concentration is lowered, it contributes to the improvement of detection sensitivity.
Furthermore, due to the nanoporous structure formed in the communication hole, a biomolecule having a small molecular diameter passes through the communication hole from the chamber and reaches the microreservoir, and an enzyme molecule having a large molecular diameter does not pass through the communication hole. Therefore, a so-called filtering effect that does not reach the chamber from the micro reservoir can be realized. As a result, the enzyme does not leak from the microreservoir and the concentration of the enzyme solution does not decrease. Therefore, the reactivity of the enzyme reaction continues at a constant value.

ナノポーラス構造体の素材は限定されない。例えば、白金黒、多孔質シリコン、多孔質ガラスまたはゼオライトなどが挙げられる。
ナノポーラス構造体のポア径は、計測対象の生体分子および使用する酵素の分子径により決定される。例えば、生体分子としてグルタミン酸、酵素としてグルタミン酸酸化酵素を想定する場合、グルタミン酸の分子径は約0.8nm、グルタミン酸酸化酵素の分子径は約8.2nmである。そのため、ナノポーラス構造体のポア径は、0.8〜8.2nmとする必要がある。さらには、なるべくグルタミン酸分子の通過が容易であることが望ましいことから、ナノポーラス構造体のポア径は8nm程度以下で、かつ8nm程度に近い値とした方がよい。例えば5〜7nm程度である。
The material of the nanoporous structure is not limited. For example, platinum black, porous silicon, porous glass, or zeolite can be used.
The pore diameter of the nanoporous structure is determined by the biomolecule to be measured and the molecular diameter of the enzyme used. For example, when glutamic acid is assumed as the biomolecule and glutamic acid oxidase is assumed as the enzyme, the molecular diameter of glutamic acid is about 0.8 nm, and the molecular diameter of glutamic acid oxidase is about 8.2 nm. Therefore, the pore diameter of the nanoporous structure needs to be 0.8 to 8.2 nm. Furthermore, since it is desirable that the glutamic acid molecules pass through as easily as possible, the pore diameter of the nanoporous structure is preferably about 8 nm or less and close to about 8 nm. For example, it is about 5 to 7 nm.

請求項3に記載の発明は、前記ナノポーラス構造体は、白金黒製である請求項2に記載のマイクロ流体酵素センサである。   The invention according to claim 3 is the microfluidic enzyme sensor according to claim 2, wherein the nanoporous structure is made of platinum black.

請求項3に記載の発明によれば、ナノ単位のポア径を有する多孔質の白金で、自身がフィルタリング効果を有する白金黒自体が電極材料となり、さらにそのナノポーラス構造により極めて大きな表面積を有する。そのため、連通孔を通過した生体分子が酵素反応により発生した生成物を、即座にかつ効率的に、大きな応答電流として検出することが可能となる。   According to the third aspect of the present invention, the platinum black itself, which is porous platinum having a nano-unit pore diameter and has a filtering effect itself, serves as an electrode material, and has a very large surface area due to its nanoporous structure. Therefore, it is possible to immediately and efficiently detect a product generated by the enzymatic reaction of the biomolecule that has passed through the communication hole as a large response current.

白金黒の形成方法としては、例えば電気メッキ法などを採用することができる。例えば、連通孔周辺上に白金黒のシード層としての白金薄膜を、スパッタリングまたは真空蒸着などにより形成し、その後、濃度1〜3%の白金酸溶液30ml中に酢酸鉛10mgを混入した溶液中で、電流密度が30mA/cmとなるように、白金薄膜にマイナス側の電圧を印加することで形成される。電気メッキは、少なくとも白金黒が連通孔を埋めるまで継続する必要がある。
白金黒のフィルタリング効果は、溶液の濃度、電流密度、メッキ時間などのメッキ条件(形成条件)により制御することができる。例えば、上述したメッキ条件で、メッキ時間を90秒としたとき、グルタミン酸が通過し、グルタミン酸酸化酵素が通過しないだけのポア径が実現されることを、発明者は確認している。
As a method for forming platinum black, for example, an electroplating method can be employed. For example, a platinum thin film as a platinum black seed layer is formed on the periphery of the communication hole by sputtering or vacuum deposition, and then in a solution in which 10 mg of lead acetate is mixed in 30 ml of a platinum acid solution having a concentration of 1 to 3%. , By applying a negative voltage to the platinum thin film so that the current density is 30 mA / cm 2 . The electroplating needs to be continued until at least platinum black fills the communication hole.
The filtering effect of platinum black can be controlled by plating conditions (formation conditions) such as solution concentration, current density, and plating time. For example, when the plating time is 90 seconds under the above-described plating conditions, the inventor has confirmed that a pore diameter that allows glutamic acid to pass but prevents glutamic acid oxidase from passing is realized.

請求項4に記載の発明は、前記隔膜のうち、前記連通孔の形成部分のマイクロリザーバ側には白金薄膜が形成され、該白金薄膜には、前記連通孔を埋めるように、前記白金黒製のナノポーラス構造体が積層された請求項3に記載のマイクロ流体酵素センサである。   According to a fourth aspect of the present invention, a platinum thin film is formed on a micro reservoir side of a portion where the communication hole is formed in the diaphragm, and the platinum thin film is made of the platinum black so as to fill the communication hole. The microfluidic enzyme sensor according to claim 3, wherein the nanoporous structures are stacked.

請求項4に記載の発明によれば、白金黒製のナノポーラス構造体により連通孔を塞ぐ際、いったん隔膜の連通孔の形成部分のマイクロリザーバ側に白金薄膜を形成し、この白金薄膜をシード層(種層)としてナノポーラス構造体を形成するので、ナノポーラス構造体で確実に連通孔を埋めることが可能であり、ナノポーラス構造体全体の形状及び寸法を白金薄膜のパターニングにより規定できるという効果が得られる。
白金薄膜の厚さは、例えば0.1〜0.5μmである。白金薄膜の形成方法としては、スパッタリング法や真空蒸着法などを採用することができる。白金薄膜の形成範囲は、少なくとも連通孔の形成部分のマイクロリザーバ側を含み、連通孔の寸法(口径)および形成数などによって決定される。例えば、縦1μm〜1mm、横1μm〜1mmでもよい。
According to the fourth aspect of the present invention, when the communication hole is closed with the nanoporous structure made of platinum black, the platinum thin film is once formed on the micro reservoir side of the communication hole forming portion of the diaphragm, and the platinum thin film is used as the seed layer. Since the nanoporous structure is formed as the (seed layer), it is possible to reliably fill the communication holes with the nanoporous structure, and the effect that the shape and dimensions of the entire nanoporous structure can be defined by patterning of the platinum thin film is obtained. .
The thickness of the platinum thin film is, for example, 0.1 to 0.5 μm. As a method for forming the platinum thin film, a sputtering method, a vacuum deposition method, or the like can be employed. The formation range of the platinum thin film includes at least the microreservoir side of the formation portion of the communication hole, and is determined by the size (diameter) of the communication hole, the number of formation, and the like. For example, it may be 1 μm to 1 mm in length and 1 μm to 1 mm in width.

請求項1に記載の発明によれば、酵素を電極に固定化せず、流体として用いたので、効率の良い酵素反応と電極反応とを期待することができる。また、通常の酵素固定化電極ではその寿命および特性の経時変化が問題となるが、この発明ではマイクロリザーバの酵素を送液して連通孔の直下付近の酵素を入れ替えるので、長時間の計測が可能となる。
さらに、マイクロリザーバ中の酵素を計測対象分子に応じて入れ替えることにより、様々な生体分子の濃度測定に対応することができる。酵素は高価である。そのため、従来では電極上に固定化されていたが、この発明ではマイクロリザーバの微小化により酵素使用量は極微量となり、酵素を流体として用いたことによる欠点は、最小限に抑えることができる。以上により、細胞レベルでの診断・治療技術、および、細胞を利用した創薬技術などにおいて、単一細胞レベルの応答を高感度かつ高速に計測することが可能な汎用性の高い有益なマイクロ流体酵素センサを提供することができる。
According to the first aspect of the present invention, since the enzyme is used as a fluid without being immobilized on the electrode, an efficient enzyme reaction and electrode reaction can be expected. In addition, with a normal enzyme-immobilized electrode, the change in its life and characteristics over time becomes a problem, but in this invention, the enzyme in the microreservoir is exchanged and the enzyme in the vicinity of the communication hole is replaced, so that a long time measurement is possible. It becomes possible.
Furthermore, by changing the enzyme in the microreservoir according to the molecule to be measured, it is possible to cope with the concentration measurement of various biomolecules. Enzymes are expensive. For this reason, it is conventionally immobilized on the electrode. However, in the present invention, the amount of enzyme used is extremely small due to the miniaturization of the microreservoir, and the disadvantages caused by using the enzyme as a fluid can be minimized. Based on the above, a versatile and useful microfluid that can measure a single-cell level response with high sensitivity and high speed in cell-level diagnosis and treatment technology, cell-based drug discovery technology, etc. An enzyme sensor can be provided.

特に、請求項2に記載の発明によれば、隔膜のうち、連通孔の形成部分に作用電極を形成したので、チャンバからマイクロリザーバに達した生体分子の酵素反応により発生した生成物を、作用電極により即座に検出することができ、応答性が高まる。また、生成物がマイクロリザーバ内で拡散して濃度低下する前に生成物を検出できるため、検出感度も高まる。
さらに、連通孔に構成されたナノポーラス構造体により、分子径の小さな生体分子はチャンバから連通孔を通過してマイクロリザーバへ到達し、分子径の大きな酵素分子は連通孔を通過しない。その結果、酵素がマイクロリザーバから漏出せず、酵素溶液の濃度は低下しない。よって、酵素反応の反応性は一定の値で持続する。
In particular, according to the invention described in claim 2, since the working electrode is formed in the portion of the diaphragm where the communication hole is formed, the product generated by the enzymatic reaction of the biomolecule reaching the micro reservoir from the chamber It can be detected immediately by the electrode, and the responsiveness increases. Further, since the product can be detected before the product diffuses in the microreservoir and decreases in concentration, the detection sensitivity is also increased.
Furthermore, due to the nanoporous structure formed in the communication hole, a biomolecule having a small molecular diameter passes through the communication hole from the chamber and reaches the microreservoir, and an enzyme molecule having a large molecular diameter does not pass through the communication hole. As a result, the enzyme does not leak from the microreservoir and the concentration of the enzyme solution does not decrease. Therefore, the reactivity of the enzyme reaction continues at a constant value.

また、請求項3に記載の発明によれば、フィルタリング効果を有し、かつ表面積が大きい白金黒を電極材料としたので、連通孔を通過した生体分子が酵素反応により発生した生成物を、即座にかつ効率的に、大きな応答電流として検出することが可能となる。   According to the invention described in claim 3, since platinum black having a filtering effect and a large surface area is used as the electrode material, the product generated by the enzymatic reaction of the biomolecule that has passed through the communication hole is immediately Therefore, it can be detected as a large response current efficiently.

また、請求項4に記載の発明によれば、白金黒製のナノポーラス構造体により連通孔を塞ぐ際、いったん隔膜の連通孔の形成部分のマイクロリザーバ側に白金薄膜を形成し、この白金薄膜をシード層としてナノポーラス構造体を形成したので、ナノポーラス構造体で確実に連通孔を埋めることが可能であり、ナノポーラス構造体全体の形状及び寸法を白金薄膜のパターニングにより規定できるという効果が得られる。 According to the fourth aspect of the present invention, when the communication hole is closed by the nanoporous structure made of platinum black, the platinum thin film is once formed on the microreservoir side of the part where the communication hole of the diaphragm is formed. Since the nanoporous structure is formed as the seed layer, it is possible to reliably fill the communication hole with the nanoporous structure, and an effect is obtained that the shape and dimensions of the entire nanoporous structure can be defined by patterning of the platinum thin film.

以下、この発明の実施例を具体的に説明する。   Examples of the present invention will be specifically described below.

図1において、10はこの発明の実施例1に係るマイクロ流体酵素センサで、このマイクロ流体酵素センサ10は、シリコンウェーハ11、細胞21を培養するチャンバ12、酵素溶液を貯えるマイクロリザーバ15、チャンバ12とマイクロリザーバ15とを隔てるシリコン酸化膜(隔膜)13、そのシリコン酸化膜13に形成された1個または複数の連通孔14、マイクロリザーバ15に電気化学的な計測を行うために配置された3電極(作用電極16,17、参照電極18、対向電極19)、および、保持基板20により構成される。   In FIG. 1, reference numeral 10 denotes a microfluidic enzyme sensor according to Embodiment 1 of the present invention. The microfluidic enzyme sensor 10 includes a silicon wafer 11, a chamber 12 for culturing cells 21, a microreservoir 15 for storing an enzyme solution, and a chamber 12. A silicon oxide film (diaphragm) 13 separating the microreservoir 15, one or a plurality of communication holes 14 formed in the silicon oxide film 13, and the microreservoir 15 are arranged for electrochemical measurement. An electrode (working electrodes 16, 17, reference electrode 18, counter electrode 19) and holding substrate 20 are configured.

細胞21は、直径10μm程度の動物の神経細胞である。
チャンバ12は、平面視して四角形(縦5mm、横5mm)を有した厚さ350μmのシリコンウェーハ11の中央部を切欠して得られた平面視して四角形(縦約600μm、横約600μm)の凹部である。
マイクロリザーバ15は、長さ5mm、幅50μm、深さ10μmの平面視して矩形状の流路(空間)で、チャンバ12の一部分の直下に、シリコン酸化膜13を介して配置される。すなわち、チャンバ12とマイクロリザーバ15とは、シリコン酸化膜13を中間にして上下配置されている。
The cell 21 is an animal nerve cell having a diameter of about 10 μm.
The chamber 12 has a quadrangle (approximately 600 μm in length and approximately 600 μm in length) in plan view obtained by cutting out the central portion of a 350 μm thick silicon wafer 11 having a quadrangle (5 mm in length and 5 mm in width) in plan view. It is a recessed part.
The microreservoir 15 is a rectangular flow path (space) having a length of 5 mm, a width of 50 μm, and a depth of 10 μm, and is disposed via a silicon oxide film 13 immediately below a portion of the chamber 12. That is, the chamber 12 and the microreservoir 15 are vertically arranged with the silicon oxide film 13 in the middle.

シリコン酸化膜13の膜厚は0.5μmである。シリコン酸化膜13のチャンバ側の面は細胞21の培養面となるので、細胞21の接着性を高めるためにコラーゲンなどの接着分子をコーティングする。シリコン酸化膜13のマイクロリザーバ15との対向部分には、前記1個または複数の連通孔14が形成される。各連通孔14は、平面視して1辺0.5μm程度の正方形状を有している。
シリコン酸化膜13のマイクロリザーバ側には、生体分子の濃度の電気化学的計測を行う作用電極(白金薄膜)16が、連通孔14のマイクロリザーバ側の形成部分を覆うような配置で形成される。作用電極(白金薄膜)16の膜厚は約0.1μmで、平面視して1辺10μm程度の正方形状で、連通孔14と同じ口径の連通孔を有している。作用電極16上には、ナノポーラス構造を有する白金黒により別の作用電極(白金黒)17が、連通孔14を埋めるように形成されている。作用電極17の膜厚は約0.5μmで、平面視して1辺11μm程度の正方形状を有している。
The thickness of the silicon oxide film 13 is 0.5 μm. Since the surface of the silicon oxide film 13 on the chamber side serves as a culture surface for the cells 21, an adhesion molecule such as collagen is coated to improve the adhesion of the cells 21. The one or more communication holes 14 are formed in a portion of the silicon oxide film 13 facing the micro reservoir 15. Each communication hole 14 has a square shape with a side of about 0.5 μm in plan view.
On the microreservoir side of the silicon oxide film 13, a working electrode (platinum thin film) 16 that performs electrochemical measurement of the biomolecule concentration is formed so as to cover the formation part of the communication hole 14 on the microreservoir side. . The working electrode (platinum thin film) 16 has a film thickness of about 0.1 μm, a square shape with a side of about 10 μm in plan view, and a communication hole having the same diameter as the communication hole 14. On the working electrode 16, another working electrode (platinum black) 17 is formed so as to fill the communication hole 14 with platinum black having a nanoporous structure. The working electrode 17 has a thickness of about 0.5 μm, and has a square shape with a side of about 11 μm in plan view.

シリコン酸化膜13のマイクロリザーバ側で、かつ作用電極16の近傍(チャンバ12の形成領域内)には、前記電気化学的計測のための参照電極18が形成される。参照電極18の素材は銀−塩化銀(酸化イリジウムでもよい)で、平面視して1辺50μm程度の正方形状を有している。
シリコン酸化膜13のマイクロリザーバ側には、参照電極18の近傍(チャンバ12の形成領域外)に、電気化学的計測のための対向電極19が形成される。対向電極19の素材は白金で、平面視して50μm×100μm程度の矩形状を有している。
保持基板20はシリコーン樹脂製(ガラス製でもよい)で、厚さ5mm、平面視して四角形(縦20mm、横20mm)を有している。
A reference electrode 18 for electrochemical measurement is formed on the micro reservoir side of the silicon oxide film 13 and in the vicinity of the working electrode 16 (in the formation region of the chamber 12). The material of the reference electrode 18 is silver-silver chloride (or iridium oxide), and has a square shape with a side of about 50 μm in plan view.
On the micro reservoir side of the silicon oxide film 13, a counter electrode 19 for electrochemical measurement is formed in the vicinity of the reference electrode 18 (outside the formation region of the chamber 12). The material of the counter electrode 19 is platinum, and has a rectangular shape of about 50 μm × 100 μm in plan view.
The holding substrate 20 is made of a silicone resin (may be made of glass), and has a thickness of 5 mm and a quadrangle (20 mm long, 20 mm wide) in plan view.

次に、実施例1における作用電極17のフィルタリング効果と測定原理を、培養神経細胞から放出されるグルタミン酸を計測する場合について、図2を用いて説明する。チャンバ12中には、細胞21を培養するための培地が貯えられており、細胞21から放出される神経伝達物質(グルタミン酸)22が培地中に溶存する。培地には、DME培地(シグマアルドリッチジャパン社製)が採用されている。ただし、RPMI1640培地(シグマアルドリッチジャパン社製)でもよい。
一方、マイクロリザーバ15中には、酵素(グルタミン酸酸化酵素)23を培地(生理食塩水でもよい)に溶かした溶液が満たされている。生理食塩水には、ダルベッコりん酸緩衝生理食塩水(Bio Whittaker社製)が採用され、その組成はCaCl・2HOが0.13g/L、KClが0.20g/L、KHPOが0.20g/L、MgCl・6HOが0.10g/L、NaClが8.0g/L、NaHPO・7HOが2.16g/Lである。また、酵素の濃度は50ユニットである。
Next, the filtering effect and measurement principle of the working electrode 17 in Example 1 will be described using FIG. 2 in the case of measuring glutamic acid released from cultured nerve cells. In the chamber 12, a medium for culturing the cells 21 is stored, and a neurotransmitter (glutamic acid) 22 released from the cells 21 is dissolved in the medium. A DME medium (manufactured by Sigma Aldrich Japan) is employed as the medium. However, RPMI 1640 medium (manufactured by Sigma-Aldrich Japan) may be used.
On the other hand, the microreservoir 15 is filled with a solution in which an enzyme (glutamate oxidase) 23 is dissolved in a medium (which may be physiological saline). As the physiological saline, Dulbecco's phosphate buffered physiological saline (manufactured by Bio Whittaker) is adopted, and its composition is 0.13 g / L for CaCl 2 · 2H 2 O, 0.20 g / L for KCl, and KH 2 PO. 4 is 0.20 g / L, MgCl 2 .6H 2 O is 0.10 g / L, NaCl is 8.0 g / L, and Na 2 HPO 4 · 7H 2 O is 2.16 g / L. The enzyme concentration is 50 units.

チャンバ12とマイクロリザーバ15とは、シリコン酸化膜13により隔てられており、シリコン酸化膜13を貫通する連通孔14は作用電極17で埋められている。作用電極17はナノポーラス構造を有し、電気メッキによる成膜の条件を予め調節することにより、そのポア径を約5nm程度に設定している。具体的には、濃度1〜3%の白金酸溶液30ml中に酢酸鉛10mgを混入した溶液中で、電流密度30mA/cm 、メッキ時間90秒というメッキ条件で、作用電極17が形成される。 The chamber 12 and the microreservoir 15 are separated from each other by a silicon oxide film 13, and a communication hole 14 penetrating the silicon oxide film 13 is filled with a working electrode 17. The working electrode 17 has a nanoporous structure, and the pore diameter is set to about 5 nm by previously adjusting the conditions of film formation by electroplating. Specifically, the working electrode 17 is formed under the plating conditions of a current density of 30 mA / cm 2 and a plating time of 90 seconds in a solution in which 10 mg of lead acetate is mixed in 30 ml of a platinum acid solution having a concentration of 1 to 3%. .

分子量から算出される神経伝達物質22の分子径は約0.8nmである。そのため、神経伝達物質22は作用電極17を通過し、拡散によりチャンバ12からマイクロリザーバ15に到達する。一方、酵素23の分子径は約8.2nmである。そのため、酵素23は作用電極17を通過せず、マイクロリザーバ15に留まる。
以上の形態により、細胞21から放出された神経伝達物質22は、連通孔14内の作用電極17の一部を透過し、マイクロリザーバ15中で酵素23と出会い、効率よく酵素反応を起こし過酸化水素を発生する。この過酸化水素は、直ちに作用電極16,17と電子の授受を行い、電気化学的に電流値として計測される。
The molecular diameter of the neurotransmitter 22 calculated from the molecular weight is about 0.8 nm. Therefore, the neurotransmitter 22 passes through the working electrode 17 and reaches the microreservoir 15 from the chamber 12 by diffusion. On the other hand, the molecular diameter of the enzyme 23 is about 8.2 nm. Therefore, the enzyme 23 does not pass through the working electrode 17 and remains in the microreservoir 15.
With the above configuration, the neurotransmitter 22 released from the cell 21 permeates a part of the working electrode 17 in the communication hole 14, encounters the enzyme 23 in the microreservoir 15, efficiently causes an enzyme reaction, and peroxidizes. Generate hydrogen. This hydrogen peroxide immediately exchanges electrons with the working electrodes 16 and 17 and is electrochemically measured as a current value.

このように、酵素23を作用電極17に固定化せず、流体として用いたので、効率的な酵素反応と電極反応とを期待することができる。また、通常の酵素固定化電極ではその寿命および特性の経時変化が問題となるが、ここではマイクロリザーバ15の酵素23を送液して連通孔14の直下付近の酵素23を入れ替えるようにしたので、長時間の計測が可能となる。
さらに、マイクロリザーバ15中の酵素23を計測対象分子に応じて入れ替えることにより、様々な生体分子の濃度測定に対応することもできる。また、酵素23は高価であるため、従来では電極上に固定化されていたものの、ここではマイクロリザーバ15の微小化により酵素使用量は極微量となり、酵素23を流体として用いたことでの欠点は最小限に抑えられる。このようにして、細胞レベルでの診断・治療技術、および、細胞21を利用した創薬技術などにおいて、単一細胞レベルの応答を高感度かつ高速に計測することが可能な汎用性の高い有益なマイクロ流体酵素センサ10が得られる。
Thus, since the enzyme 23 was not immobilized on the working electrode 17 and used as a fluid, an efficient enzyme reaction and electrode reaction can be expected. In addition, with normal enzyme-immobilized electrodes, the change in the life and characteristics over time becomes a problem. Here, the enzyme 23 in the micro reservoir 15 is fed to replace the enzyme 23 immediately below the communication hole 14. Measurement for a long time is possible.
Furthermore, by replacing the enzyme 23 in the microreservoir 15 according to the molecule to be measured, it is possible to cope with the concentration measurement of various biomolecules. In addition, since the enzyme 23 is expensive and conventionally immobilized on the electrode, the amount of the enzyme used becomes extremely small due to the microreservoir 15 being miniaturized here, and the disadvantage of using the enzyme 23 as a fluid. Is minimized. In this way, in the diagnosis / treatment technology at the cell level and the drug discovery technology using the cell 21, etc., it is highly versatile and useful to measure a single cell level response with high sensitivity and high speed. A microfluidic enzyme sensor 10 is obtained.

また、ここではシリコン酸化膜13のうち、連通孔14の形成部分に作用電極16を形成するようにしたので、チャンバ12からマイクロリザーバ15に達した生体分子の酵素反応により発生した生成物を、作用電極16により即座に検出することができ、応答性を高めることができる。また、生成物がマイクロリザーバ15内で拡散して濃度低下する前に生成物を検出できるため、検出感度も高まる。
さらに、連通孔14を塞ぐナノポーラス構造体の作用電極17により、分子径の小さな生体分子はチャンバ12から連通孔14を通過してマイクロリザーバ15へ到達し、分子径の大きな酵素分子は連通孔14を通過しない。その結果、酵素23がマイクロリザーバ15から漏出せず、酵素溶液の濃度は低下しない。よって、酵素反応の反応性は一定の値で持続する。
さらにまた、フィルタリング効果を有し、かつ表面積が大きい白金黒を電極材料(作用電極17)としたので、連通孔14を通過した生体分子が酵素反応により発生した生成物を、即座にかつ効率的に、大きな応答電流として検出することが可能となる。
そして、作用電極17により連通孔14を塞ぐ際、シリコン酸化膜13の連通孔14の形成部分のマイクロリザーバ15側にいったん作用電極16を形成し、これをシード層として作用電極17を形成したので、作用電極17で確実に連通孔14を埋めることが可能であり、作用電極17全体の形状及び寸法を作用電極16のパターニングにより規定できるという効果が得られる。
In addition, since the working electrode 16 is formed in the formation portion of the communication hole 14 in the silicon oxide film 13 here, the product generated by the enzymatic reaction of the biomolecule reaching the micro reservoir 15 from the chamber 12 is It can be detected immediately by the working electrode 16, and the responsiveness can be enhanced. Further, since the product can be detected before the product diffuses in the microreservoir 15 and the concentration is lowered, the detection sensitivity is also increased.
Further, the working electrode 17 of the nanoporous structure that closes the communication hole 14 allows biomolecules having a small molecular diameter to pass from the chamber 12 through the communication hole 14 to the micro reservoir 15, and enzyme molecules having a large molecular diameter are connected to the communication hole 14. Do not pass through. As a result, the enzyme 23 does not leak from the micro reservoir 15 and the concentration of the enzyme solution does not decrease. Therefore, the reactivity of the enzyme reaction continues at a constant value.
Furthermore, since platinum black having a filtering effect and a large surface area is used as the electrode material (working electrode 17), the product generated by the enzymatic reaction of the biomolecule that has passed through the communication hole 14 can be immediately and efficiently produced. In addition, it can be detected as a large response current.
Then, when the communication hole 14 is closed by the working electrode 17, the working electrode 16 is once formed on the microreservoir 15 side of the formation portion of the silicon oxide film 13 and the working electrode 17 is formed using this as a seed layer. It is possible to reliably fill the communication hole 14 with the working electrode 17, and the effect that the shape and dimensions of the working electrode 17 as a whole can be defined by patterning of the working electrode 16 is obtained.

次に、実施例1のマイクロ流体酵素センサ10の製造方法を説明する。ここでは、マイクロ流体酵素センサ10を半導体加工技術により製造するものとする。
まず、直径50mm、厚さ350μmの単結晶のシリコンウェーハ11の一方の面に熱酸化によりシリコン酸化膜13を形成する。その形成条件は、酸素流量1L/min、アンモニア流量120cc/min、温度1100℃、熱酸化時間は5時間である。
Next, the manufacturing method of the microfluidic enzyme sensor 10 of Example 1 is demonstrated. Here, the microfluidic enzyme sensor 10 is manufactured by a semiconductor processing technique.
First, a silicon oxide film 13 is formed on one surface of a single crystal silicon wafer 11 having a diameter of 50 mm and a thickness of 350 μm by thermal oxidation. The formation conditions are an oxygen flow rate of 1 L / min, an ammonia flow rate of 120 cc / min, a temperature of 1100 ° C., and a thermal oxidation time of 5 hours.

次に、シリコンウェーハ11を、その他方の面側からシリコン酸化膜13が露出するまで、24〜27容量%、約80℃のTMAH(水酸化テトラメチルアンモニウム)溶液により異方性エッチングする。これにより、細胞21を培養するチャンバ12が形成される。
次にまた、シリコン酸化膜13に、1辺が数0.5μmの正方形状の連通孔14を集束イオンビーム・エッチングなどにより形成する。そのエッチング条件は、イオンビーム径が22nm、プローブ電流が3.6pAであり、連通孔1個当たりのエッチング時間は約30秒である。
そして、シリコン酸化膜13上の連通孔14の周辺に作用電極16を、シリコン酸化膜13上の他の箇所に参照電極18と対向電極19を、スパッタリングによりそれぞれ形成する。そのスパッタ条件は、RF出力が100W、チャンバ内圧力が0.67Paである。
Next, the silicon wafer 11 is anisotropically etched with a TMAH (tetramethylammonium hydroxide) solution at 24 to 27% by volume and about 80 ° C. until the silicon oxide film 13 is exposed from the other surface side. Thereby, the chamber 12 for culturing the cells 21 is formed.
Next, a square communication hole 14 having a side of several 0.5 μm is formed in the silicon oxide film 13 by focused ion beam etching or the like. The etching conditions are an ion beam diameter of 22 nm, a probe current of 3.6 pA, and an etching time per communication hole is about 30 seconds.
Then, the working electrode 16 is formed around the communication hole 14 on the silicon oxide film 13, and the reference electrode 18 and the counter electrode 19 are formed at other locations on the silicon oxide film 13 by sputtering. The sputtering conditions are an RF output of 100 W and a chamber internal pressure of 0.67 Pa.

それから、図3(a)〜図3(c)に示すように、上述したメッキ条件で、作用電極16のみに白金黒を電気メッキすることで、連通孔14を白金黒で埋め、作用電極(白金黒)17を形成する。
このように製作されたデバイスの下側に、幅50μm、高さ10μmのマイクロリザーバ15を介在して、シリコーン樹脂(またはガラス基板)により厚さ5mmの保持基板20を構成することで、マイクロ流体酵素センサ10が作製される。マイクロリザーバ15及び保持基板20の具体的な製造は以下のようにして行う。まず、直径50mm、厚さ350μmのシリコンウェーハ上に、厚膜レジストSU−8(化薬マイクロケム社製)でマイクロリザーバ15の鋳型を形成し、そのシリコンウェーハを直径50mmのシャーレなどの容器内に固定する。次に、その容器内に、液状のシリコーン樹脂であるPDMS(WPI社製SYLG184)と専用凝固剤を10:1に混合した溶剤を、5mm程度の厚さになるまで流し込む。そして、60℃の電気炉内で約1時間シリコーン樹脂を固化した後、シリコーン樹脂をシリコンウェーハより剥がすことで、マイクロリザーバ15と保持基板20が同時に完成される。
Then, as shown in FIGS. 3A to 3C, platinum black is electroplated only on the working electrode 16 under the above-described plating conditions, so that the communication hole 14 is filled with platinum black, and the working electrode ( Platinum black) 17 is formed.
By forming a holding substrate 20 having a thickness of 5 mm with a silicone resin (or glass substrate) via a micro reservoir 15 having a width of 50 μm and a height of 10 μm on the lower side of the device thus manufactured, The enzyme sensor 10 is produced. The specific manufacture of the microreservoir 15 and the holding substrate 20 is performed as follows. First, a mold of the micro reservoir 15 is formed on a silicon wafer having a diameter of 50 mm and a thickness of 350 μm with a thick film resist SU-8 (manufactured by Kayaku Microchem Co.), and the silicon wafer is placed in a container such as a petri dish having a diameter of 50 mm. Secure to. Next, a liquid silicone resin PDMS (SYLG184 manufactured by WPI) and a special coagulant mixed in a ratio of 10: 1 is poured into the container to a thickness of about 5 mm. Then, after solidifying the silicone resin in an electric furnace at 60 ° C. for about 1 hour, the silicone resin is peeled off from the silicon wafer, whereby the microreservoir 15 and the holding substrate 20 are completed simultaneously.

この発明の実施例1に係るマイクロ流体酵素センサの使用状態を示す要部拡大断面図である。It is a principal part expanded sectional view which shows the use condition of the microfluidic enzyme sensor which concerns on Example 1 of this invention. この発明の実施例1に係るマイクロ流体酵素センサの連通孔周辺におけるフィルタリング効果と測定原理を説明する要部拡大断面図である。It is a principal part expanded sectional view explaining the filtering effect and measurement principle in the periphery of the communicating hole of the microfluidic enzyme sensor which concerns on Example 1 of this invention. (a)〜(c)この発明の実施例1に係るマイクロ流体酵素センサの作用電極(白金黒)の形成方法を示すフローシートである。(A)-(c) It is a flow sheet which shows the formation method of the working electrode (platinum black) of the microfluidic enzyme sensor which concerns on Example 1 of this invention.

符号の説明Explanation of symbols

10 マイクロ流体酵素センサ、
11 シリコンウェーハ、
12 チャンバ、
13 シリコン酸化膜(隔膜)、
14 連通孔、
15 マイクロリザーバ、
16 作用電極(電極)、
17 作用電極(電極/ナノポーラス構造体)、
18 参照電極(電極)、
19 対向電極(電極)、
20 保持基板
21 細胞、
22 神経伝達物質(グルタミン酸)、
23 酵素(グルタミン酸酸化酵素)。
10 microfluidic enzyme sensor,
11 Silicon wafer,
12 chambers,
13 Silicon oxide film (diaphragm),
14 communication holes,
15 microreservoir,
16 working electrode (electrode),
17 Working electrode (electrode / nanoporous structure),
18 Reference electrode (electrode),
19 Counter electrode (electrode),
20 holding substrate 21 cells,
22 neurotransmitter (glutamic acid),
23 Enzyme (glutamate oxidase).

Claims (4)

細胞を培養するチャンバと、
酵素溶液を貯液するためのマイクロリザーバと、
前記チャンバと前記マイクロリザーバとを区分するとともに、前記チャンバと前記マイクロリザーバとを連通する連通孔が形成された隔膜と、
前記マイクロリザーバに配置され、前記細胞から放出された生体分子の濃度を電気化学的に計測する電極とを備えたマイクロ流体酵素センサ。
A chamber for culturing cells;
A microreservoir for storing the enzyme solution;
Separating the chamber and the microreservoir, and a diaphragm formed with a communication hole communicating the chamber and the microreservoir,
A microfluidic enzyme sensor comprising an electrode that is disposed in the microreservoir and electrochemically measures the concentration of a biomolecule released from the cell.
前記電極は、前記生体分子の酵素反応に伴う生成物と電子の授受を行う作用電極と、参照電極と、対向電極とを有し、
前記隔膜のうち、前記連通孔の形成部分に前記作用電極が形成され、
前記連通孔は、ナノ単位のポア径を有する多孔質のナノポーラス構造体によって塞がれた請求項1に記載のマイクロ流体酵素センサ。
The electrode has a working electrode for transferring a product and an electron accompanying an enzyme reaction of the biomolecule, a reference electrode, and a counter electrode,
Of the diaphragm, the working electrode is formed in a portion where the communication hole is formed,
The microfluidic enzyme sensor according to claim 1, wherein the communication hole is closed by a porous nanoporous structure having a pore size of nano units.
前記ナノポーラス構造体は、白金黒製である請求項2に記載のマイクロ流体酵素センサ。   The microfluidic enzyme sensor according to claim 2, wherein the nanoporous structure is made of platinum black. 前記隔膜のうち、前記連通孔の形成部分のマイクロリザーバ側には白金薄膜が形成され、
該白金薄膜には、前記連通孔を埋めるように、前記白金黒製のナノポーラス構造体が積層された請求項3に記載のマイクロ流体酵素センサ。
Of the diaphragm, a platinum thin film is formed on the microreservoir side of the formation portion of the communication hole,
The microfluidic enzyme sensor according to claim 3, wherein the platinum black nanoporous structure is laminated on the platinum thin film so as to fill the communication hole.
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