JP4660756B2 - ダイヤモンドチップへの蛋白質/ペプチドの固定化方法 - Google Patents
ダイヤモンドチップへの蛋白質/ペプチドの固定化方法 Download PDFInfo
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ジーンシリコンC4(3mm×3mm)、ジーンスライドDLC(東洋鋼鈑)、96穴マイクロプレートU底(Greiner)、384穴マイクロプレート平底(NUNC)を購入して用いた。オボムコイド(OVM)(SIGMA)、フロイントの完全アジュバント(DIFCO)、ネンブタール(大日本製薬)、Hybond-C Gridded membranes(Amersham)、スキムミルク、Peroxidase-F(ab’)2goat anti rabbit IgG(H+L)(ZYMED)、ECL(Amersham)、CNBr-cativated Sepharose 4B(Pharmacia)、ImmunoPure IgG Purification Kit(PIERCE)、7MGuanigine-HCl(pH8.6)、Dithiothreitol(DTT)、トリプシン(SigmaまたはPromega)、α-Cyano-4-hydroxycinnamic acid(Sigma)、Non-immunized rabbit IgG、Goat anti-rabbit IgG(H+L)Cy3,Cy5conjugate(ZYMED)、抗ヒトIgG抗体(Fc specific)Cy3,Cy5conjugate(ZYMED)、抗ヒトIgE抗体(Fc specific)Cy3,Cy5conjugate(ZYMED)、WSCD・HCl (ペプチド研究所)、NHS(ペプチド研究所)、DMSO(和光純薬)、防腐剤(0.5%チメロサール)を購入して用いた。
ダイヤモンド/DLC(Diamond-like Carbon)チップによる抗原(アレルゲン)の検出と特異抗体の定量における諸条件を検討するため、以下に示す(1)〜(6)の一連の操作を行った。チップの活性化から蛍光検出までの基本操作手順を図1に示す。
DLCチップを96穴マイクロプレートに入れ、MilliQ水で1回洗浄後、50μLの活性化試薬(100mM WSC,20mM NHS,0.1M リン酸カリウム緩衝液;pH6.0)をプレートに分注し、室温で30分間遮光した状態で振とうしながら反応させた。反応液を吸引除去後、MilliQ水でチップを十分に洗浄し、8連チューブにチップを移し卓上遠心機を用いチップの水分を直ちに完全に除去した。
0.1Mリン酸カリウム緩衝液(pH6.0)にDMSOを30%の濃度で添加し、この溶液にスポッティングを行うアレルゲンを溶解した。アレルゲンはSTAMPU MANマイクロアレイヤー(日本レーザー電子)を用いてスポッティングした。チップをマイクロアレイヤーのサンプリング用ホルダーにセットしてスポット操作を行った。スポット後、チップを37℃の条件下にクールインキュベーター:CN−25A(三菱電機エンジニアリング)でインキュベートした。
チップを96穴マイクロプレートに移し、50mMのTTBS[0.05% Tween20,20mM Tris−HCl(pH7.5),150mM NaCl]を加え、プレートシェーカーを用いて洗浄作業を行った。固定化反応後に残存する活性基を処理するため、150mMのNaCl含有1M Tris−HCl(pH8.0)を加え、遮光した状態下に1時間室温で反応させ未反応基を完全に不活性化した。さらに、チップへの抗体の非特異的反応をブロックするため、遮光条件下に0.1%BSAを含むPBS溶液と4℃で一晩反応させた。
ブロッキングバッファーを吸引除去し、抗体希釈バッファー[60mg/mLBSA,PBS(pH7.4)、0.05%Tween20]で種々の濃度に1次抗体を希釈した後、チップの入ったプレートに分注し遮光条件下に室温で5時間振とうしながら反応させた。
1次抗体反応液を吸引除去し、洗浄バッファーを加え、プレートシェーカーを用いて洗浄作業を行った。次に蛍光標識した2次抗体を、0.1%BSAを含むPBS溶液で1.5μg/mLに希釈し、チップの入ったプレートに分注して遮光条件下に室温で1時間振とうして反応させた。
2次抗体との反応後、反応液を吸引除去し、洗浄バッファーとMilliQ水でチップを洗浄し、水分を除去するためにスピンダウンを行った。次にFLA−8000蛍光スキャナー:FLA−8000(FUJIFILM)を用いて蛍光強度を測定し、各チップから得られたスポットの蛍光強度の数値化を行った。
上記基本操作(1)におけるチップの活性化反応後、チップをMilliQ水で洗浄し、次いで基本操作(2)のカップリング反応による蛋白質/ペプチドの固定化操作が行われるが、この蛋白質/ペプチドの固定化操作の前処理として、十分な除湿、乾燥が蛋白質/ペプチドの固定化量と固定化量の均一性に及ぼす影響について調べた。
蛋白質/ペプチドの活性は、複雑な立体構造に依存しており、蛋白質/ペプチドを基板表面に固定化する際の溶媒(0.1M リン酸カリウム緩衝液、pH6.0)に添加する添加剤が重要である。そこで、添加剤として、1)一般に蛋白質の安定化剤として使用される10〜30%のグリセロール、2)20〜40%のDMSO、3)20〜40%のPEG(分子量300)を、それぞれ用いた場合の蛋白質/ペプチドの固定化量と固定化量の均一性に及ぼす影響について、基板の種類[ダイヤモンドコーティング(GENE DIA)、ダイヤモンドライクカーボン(DLC)チップ]、基板の素材(シリコン、ガラス、ステンレス)も加味して調べてみた。
蛋白質/ペプチドを固定化する際に、DLCとジーンダイヤでは4℃よりも室温か37℃において結合量は多かった。室温と37℃の間では37℃の方が幾分固定化量が多かった(図4)。
蛋白質/ペプチドを固定化する際に、DLCとジーンダイヤでは固定化反応の反応時間(1hr,3hr,一晩)について至適条件を検討した。その結果、37℃(42℃まで)の反応温度条件で3時間反応させることで、チップ上での蛋白質/ペプチドの結合量が最も多く、バラツキなく安定して結合させることができた。
抗原として各種濃度(50,75,100,200fmol/スポット)のオボムコイドをスポティングした後、4℃,室温(RT),37℃の各温度条件にてチップを3時間乾燥した。1M Tris−HCl(pH8)/150mM NaCl,及びBSAでブロッキング処理後、患者プール血清を60%BSAを含むPBS/0.05%Tween20溶液で10倍希釈して室温で5時間反応させた。二次抗体として約1.5μg/mLのCy3標識ヤギ抗ヒトIgE抗体を用いて1時間反応させ蛍光検出した。結果を図5に示す。また、3時間の乾燥処理を終夜乾燥処理に代える以外は同様にして蛍光検出した。結果を図6に示す。
(1)タンパク質のカップリング、洗浄およびブロッキング
1.5ml平底アシストチューブ内においてチップを100mM WSC、20mM NHSにより活性化した後、直接抗体結合法あるいはプロテインG間接抗体結合法においてそれぞれタンパク質のカップリングを行った。直接抗体結合法として、ウサギIgGあるいは抗マウスTNF−α抗体を0.1M MES(pH4.5)にて1.5μg/mLに希釈後、カップリング反応をおこなった。また、プロテインG間接抗体結合法として、プロテインGを0.1M MES(pH4.5)にて20μg/mLに希釈調製し、プロテインG分子をカップリングした。未反応のタンパク質は0.05%Tween20を含有するTBSで10回洗浄することにより除去した。洗浄は、洗浄液を加えた後30秒間静置し、吸引除去した。ブロッキングは150mM NaCl含有1M Tris−HCl(pH8.0)を加え、室温で1時間反応させた後、0.1%BSAを含むPBS溶液中で4℃で一晩反応させた。さらにプロテインG間接抗体結合法の場合、ウサギIgGあるいは抗マウスTNF−α抗体を0.1%BSAを含むPBSで0.5μg/mL希釈調製し、室温で1時間振とうさせることによりチップ上に抗体分子を固定化させた。
チップ上に固定化した抗体分子の結合量は、酵素標識2次抗体を用いて標識された酵素の活性測定により検量線から定量算定した。2次抗体にはAP標識抗ウサギIgG(H+L)に対するヤギのF(ab’)2フラグメントを用いた。APの基質としては、pNPPを0.1M 2-amino-2-methyl-1,3-propandiol緩衝液(pH10.3)で2mg/mLに調製し、室温で5 分反応させた後、0.75N NaOHで反応を停止させ、405nmの吸光度を測定した。
チップ上に固定化した抗体分子が捕捉する抗原分子の結合量は、Biosource社のマウスTNF−αイムノアッセイキットを用いて測定した。抗原溶液はマウスTNF−αを0.05%Tween20含有ブロッキング溶液で6250pg/mLに調製し、抗体チップと室温で90分間反応させた後、ビオチン化抗マウスTNF−α抗体と反応させるABC法により検出した。
(1)グリセロールの影響について
まず、直接抗体結合法において抗体のカップリング時におけるグリセロール添加の影響を検討した。DLCの場合、30%グリセロール存在下では抗体結合量が減少したのに対して、ジーンダイヤを用いた場合、抗体結合量が増加した(図7参照)。この差は、DLCとジーンダイヤの各基板表面の物理化学的特性によるものと推測されるが、さらに検討が必要である。さらに、プロテインG間接抗体結合法においても、DLCの場合30%グリセロール存在下では抗体結合量は減少した(図7参照)。これより、グリセロールの添加は、タンパク質の安定化には適切ではないと考えられた。
次に、直接抗体結合法において抗体のカップリング時にグリセロールではなくDMSOを添加した場合の影響について検討した。DLC、ジーンダイヤともに30%DMSO添加時において抗体結合量は飛躍的に増加した(図8参照)。データは示していないが、10%DMSOでは影響はほとんど見られなかった。しかし、DLCとジーンダイヤでは反応温度による違いが見られ、DLCでは室温よりも37℃において抗体結合量は多かったのに対し、ジーンダイヤでは反対の結果が得られた。さらに、抗体結合量だけでなく抗体の活性が維持されているかを検討するために、直接抗体結合法により固定化した抗TNF−α抗体が抗原であるTNF−αを捕捉できるかを解析した。その結果、30%DMSO存在下において抗体だけでなく、抗原結合量も増加することが確認できた(図9参照)。これより、30%DMSO存在下において微量の抗体でも固定化量が増加することにより抗原捕捉能力が増加することが明らかになった。
Claims (15)
- 化学修飾したダイヤモンド/DLC(Diamond-like Carbon)チップを活性化試薬により活性化した後、蛋白質/ペプチドを前記チップ上にスポッティングしてカップリング反応を行う、チップ上に蛋白質/ペプチドを固定する方法であって、スポッティング添加剤としてジメチルスルホキシド(DMSO)を用いることを特徴とする蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- 20〜40%DMSOを用いることを特徴とする請求項1記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- 30%DMSOを用いることを特徴とする請求項2記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- カップリング反応後、30〜45℃で2〜4時間乾燥させることを特徴とする請求項1〜3のいずれか記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- 活性化試薬が、WSCD・HCl及びNHSを含有する溶液であることを特徴とする請求項1〜4のいずれか記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- カップリング反応を行った後、未反応活性基のブロッキング操作を行うことを特徴とする請求項1〜5のいずれか記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- 蛋白質/ペプチドが、抗原又は抗体であることを特徴とする請求項1〜6のいずれか記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- 抗原がアレルゲンであることを特徴とする請求項7記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- アレルゲンがアレルゲンエピトープ又はアレルゲンエピトープを含むペプチドであることを特徴とする請求項8記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- アレルゲンエピトープ又はアレルゲンエピトープを含むペプチドとして、化学修飾されたペプチドを用いることを特徴とする請求項9記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- アレルゲンエピトープを含むペプチドとして、MHCクラスII分子に結合するペプチド部分のN末端側及び/又はC末端側に少なくとも2個以上のアミノ酸が付加されたエピトープ含有ペプチドを用いることを特徴とする請求項9記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- アレルゲンエピトープを含むペプチドとして、アレルゲンのエピトープを含むプロテアーゼ分解ペプチドを用いることを特徴とする請求項10〜11のいずれか記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- プロテアーゼ分解ペプチドが、トリプシン分解ペプチドであることを特徴とする請求項12記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- アレルゲンとして、食物アレルゲンを用いることを特徴とする請求項9〜13のいずれか記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
- 食物アレルゲンとして、カゼインナトリウム、α−カゼイン、β−カゼイン、κ−カゼイン、α−ラクトアルブミン、β−ラクトグロブリン、オボムコイド、オボアルブミン、コンアルブミンから選ばれる1種又は2種以上のアレルゲンを用いることを特徴とする請求項14記載の蛋白質/ペプチドの固定化方法。
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