JP4361276B2 - Akt活性の阻害物質 - Google Patents
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Description
R2は水素、アミノ、C1〜6アルキルアミノ、ジ−C1〜6アルキルアミノ、アミノ−C1〜6アルキル、C1〜6アルキルアミノ−(C1〜6)アルキルまたはジ(C1〜6アルキル)アミノ−(C1〜6)アルキルを独立に表し、
rは1〜3であり、
sは1〜3である。
2−[4−(2−アミノプロプ−2−イル)フェニル]−3−フェニルキノキサリン
本発明の化合物は、適切な鼻腔内用媒体および送達具を局所的に使用することによって鼻腔内用の形で、あるいは当業者によく知られている形の皮膚パッチを使用し経皮的経路によって、投与することができる。経皮的な送達系の形で投与するためには、当然ながら、薬の投与は薬の処方中は断続的ではなく連続的なものであろう。
Ac2O 無水酢酸;
Boc t−ブトキシカルボニル;
DBU 1,8−ジアザバイシクロ[5.4.0]ウンデス−7−エン;
HRP セイヨウワサビペルオキシダーゼ;
NFDM 無脂肪乾燥乳
文献中で知ることができ、あるいは実験手順において例示することができる、本発明の化合物を生成させるために使用する反応、さらにエステル加水分解、保護基の開裂などの他の標準的な操作をスキーム1に示す。スキーム中に示す置換基RおよびRaは、置換基R1およびR2を表す。しかしながら、それらの環への結合場所は単なる例示的なものであり、制限を意味するものではない。
必要な中間体が市販されている場合もあり、あるいは文献の手順に従ってこれらを調製することができる。スキーム1に示すように、適切に置換されたフェニルアセチリドをヨウ化銅と反応させて、対応する銅アセチリドIを形成することができる。次いで中間体Iを適切に置換された求電子性フェニル成分と反応させて、非対称に置換されたジフェニルアセチレンIIを得ることができる。NBSとの反応、次に加水分解によって、置換ベンジルIIIが得られ、次いでこれを1,2−フェニルジアミンに結合させて、本発明の化合物を得る。さまざまな置換および非置換ベンジルは、商業的に得ることもできる。
与えられた実施例は、本発明のさらなる理解を助長することを目的とする。使用した個々の物質、種および条件は、本発明をさらに例示することを目的とするものであり、その妥当な範囲を制限することを目的とするものではない。
21.0gの4−ヨード安息香酸、100mlの無水EtOH、および6mlの濃硫酸の混合物を、攪拌しながら6日間還流させた。この時間の終わりに、沸騰によって反応混合物を濃縮し、さらに4mlの濃硫酸を加えた。次いで混合物をさらに11日間還流させ、その後混合物を冷却し、50gの氷および150mlのEt2Oを加えた。相を分離させ、水性層をEt2Oを用いて抽出した。一体にした有機相を水、飽和NaHCO3水溶液、さらに水で洗浄した。次いで有機相をMgSO4で乾燥させ、真空下で濃縮して、透明で茶色がかった液体として表題の化合物を得た。
2.76gのエチル4−ヨード安息香酸(ステップ1に記載したように調製したもの)を、10mlの無水Et2Oに溶かした冷却(氷/H2O)溶液に、26.5mlの1.52M CH3MgBr/Et2O溶液を5分間かけて加えた。混合物を氷浴温度で2.5時間攪拌し、次いで6mlのH2Oをゆっくりと加えることによって急冷した。反応混合物を濾過し、固形残留物をエーテルですすいだ。一体にした濾過物をMgSO4で乾燥させ、真空下で濃縮して、透明で黄色がかった液体として表題の化合物を得た。
19mlの氷酢酸を、スラリーが形成されるまで氷浴中で冷却した。4.18gのシアン化ナトリウムを30分間かけて加えた。10.3mlの濃硫酸を95mlの氷酢酸に溶かした冷却(氷/H2O)溶液を、シアン化物溶液に15分間かけて加えた。氷浴を除去し、19.92gのα,α−ジメチル−4−ヨードベンジルアルコール(ステップ2に記載したように調製したもの)を、10分間かけて加えた。生成した白い懸濁液を90分攪拌した。一晩室温で放置した。反応混合物を氷上に注ぎ、水およびエーテルを加えた。この混合物を固体Na2CO3を用いて中和した。
10.7gのフェニルアセチレンを500mlの無水エタノールに溶かした溶液に、20gのヨウ化銅を250mlの濃縮NH4OHに溶かした溶液および100mlの水を加えた。溶液を30分攪拌し、次いで濾過した。回収した固体を水、95%エタノール水溶液、次いでエーテルで洗浄した。次いで固体を回収し、真空下で乾燥させて、鮮やかな黄色の固体として表題の化合物を得た。
ステップ3に記載したヨードフェニル化合物11.83g、銅(I)フェニルアセチリド6.74g、および乾燥ピリジン165mlの混合物を、120℃で72時間攪拌した。次いでこの反応混合物を冷却し、混合物を約300gの氷および水上に注ぎ、激しく攪拌した。次いで混合物を1:1ベンゼン:ジエチルエーテルを用いて抽出した。有機溶液を3N塩酸で洗浄し、MgSO4で乾燥させ、濾過および濃縮し、ベンゼン/シクロヘキサンから再結晶化させた固体を得て、表題の化合物を得た。
ステップ5からの1−[4−(2−ホルムアミドプロプ−2−イル)フェニル]−2−フェニルアセチレン(4.81g)を、30mlの乾燥DMSOに溶かした。N−ブロモスクシンアミド(NBS)(5.65g)を加え、反応混合物を室温で96時間攪拌した。このときに500mgのNBSを加え、反応混合物をさらに24時間攪拌した。次いで反応混合物を水上に注ぎ、水性混合物をベンゼンを用いて抽出した。一体にした有機相を水で洗浄し、MgSO4で乾燥させた。次いで有機スラリーを濾過し、真空中で濃縮して表題の化合物を得た。
ステップ6からの4−(2−ホルムアミドプロプ−2−イル)−ベンジル(6.17g)を、100mlの氷酢酸、84mlの水、および6mlの濃縮HClに溶かした。この混合物を還流において3時間攪拌し、次いで真空下において60℃で溶媒を除去した。残留物を遊離塩基形に転換させ、有機溶媒を用いて抽出し、水で洗浄し、乾燥させ濃縮して、表題の化合物を油として得た。
ステップ7からの4−(2−アミノプロプ−2−イル)−ベンジル1.0g、o−フェニレンジアミン0.406g、氷酢酸25ml、水15mlの混合物を4.5時間還流させた。次いで混合物を、室温で一晩放置した。次いで溶媒の大部分を真空下で除去し、残留物を30mlの水中に取り出し、50mlの6N NaOH水溶液を加えた。沈殿したゴムをクロロホルムを用いて抽出した。有機溶液を水で洗浄し、MgSO4で乾燥させ、真空下で濃縮した。
97.0gのベンジルを1リットルの95%EtOHに懸濁させたスラリーに、20gの水素化ホウ素ナトリウムを加えた。10分攪拌した後、混合物を1リットルの水で希釈し、混合物を活性炭を用いて処理した。次いで混合物をスーパーセルを介して濾過し、濾過物を加熱し、若干濁るまでさらに2リットルの水で希釈した。次いで混合物を0〜5℃に冷却し、生成した結晶を回収し、冷水で洗浄した。次いで結晶を、真空中で乾燥させた。
150mlの発煙硝酸を−10℃に冷却し、25gのヒドロベンゾイン(ステップ1に記載したように調製したもの)を、温度−10℃と−5℃の間に保ちながらをゆっくりと少しずつ加えた。反応混合物をさらに2時間0℃に保った。70mlの水を加え、混合物を30分間還流させ、次いで500gの砕いた氷上に注いだ。残留物をデカンテーションによって混合物から分離し、次いで残留物を500mlの水と共に沸騰させた。水層は除去した。
3.8gの4,4’−ジニトロベンジルを、EtOH中に溶けた3.8gの10%ルテニウム担持炭素を用いて水素下で還元した。混合物をスーパーセルを介して濾過し、濾過物を真空下で濃縮して乾燥させた。水に50%変性エタノールを溶かしたものに残留物を溶かし、Darcoで処理し、濾過した。濾過物を0℃に冷却し、生成した結晶を回収し、水に50%変性エタノールを溶かしたもので洗浄した。次いで結晶を加熱ランプの下で乾燥させ、黄色い粉末として表題の化合物を得た。
1.0g(4.17mmole)の4,4’−ジアミノベンジルおよび0.45gのo−フェニレンジアミンを250mlの氷酢酸に溶かした混合物を、50℃で15分加熱し、次いで室温で16時間攪拌した。次いで混合物を80℃に加熱し、ゆっくりと冷却した。溶媒を真空下で除去し、残留物をエタノールに再溶解させ、真空下で除去した。
pS2neoベクター(2001年4月3日にATCCにATCCとして寄託された)を、以下のように作製した。pRmHA3ベクター(Nucl.Acid Res.16:1043〜1061(1988)中に記載されたように作製した)をBgIIを用いて切断し、2734bpの断片を単離した。pUChsneoベクター(EMBO J.4:167〜171(1985)中に記載されたように作製した)もBgIIを用いて切断し、4029bpのバンドを単離した。これら2つの単離断片を1つに連結させて、pS2neo−1という名のベクターを生成した。このプラスミドは、メタロチオニンプロモーターとアルコールデヒドロゲナーゼポリA付加部位の間にポリリンカーを含む。これは、熱ショックプロモーターによって働くneo耐性遺伝子も有する。pS2neo−1ベクターは、Psp5IIおよびBsiWIを用いて切断した。2つの相補的オリゴヌクレオチドを合成し、次いでアニール化した(CTGCGGCCGC(配列番号1)およびGTACGCGGCCGCAG(配列番号2))。切断したpS2neo−1とアニール化したオリゴヌクレオチドを1つに連結させて、第2のベクターpS2neoを生成した。この転換ではNotI部位を加えて、S2細胞へのトランスフェクションの前に線状化を促進した。
5’CGCGAATTCAGATCTACCASTEAGCGACGTGGCTATTGTG3’(配列番号3)、および3’プライマー:
5’CGCTCTAGAGGATCCTCAGGCCGTGCTGCTGGC3’(配列番号4)を使用して、PCR(Clontech)によって増幅させた。5’プライマーは、EcoRIおよびBglII部位を含んでいた。3’プライマーは、クローニング目的でXbaIおよびBamHI部位を含んでいた。生成したPCR産物を、EcoRI/XbaI断片としてpGEM3Z(Promega)にサブクローニングした。発現/精製目的で、中央部Tタグを、PCRプライマー:5’GTACGATGCTGAACGATATCTTCG3’(配列番号5)を使用して、完全長Akt1遺伝子の5’端に加えた。生成したPCR産物は、5’KpnI部位および3’BamHI部位を含んでおり、これらを使用して、昆虫細胞の発現ベクター、pS2neoを含むビオチンタグとインフレームである断片をサブクローニングした。
(5’GAATACATGCCGATGGAAAGCGACΔGGGGCTGAAGAGATGGAGGTG3’(配列番号6)、および
5’CCCCTCCATCTCTTCAGCCCCΔGTCGCTTTCCATCGGCATGTATTC)3’(配列番号7)を使用して2ステップで行った。最終PCR産物をKpnIおよびSmaIで消化し、pS2neo完全長Akt1KpnI/SmaI切断ベクターに連結させ、クローンの5’端を欠失型に効果的に置き換えた。
5’GAATTCAGATCTACCATGAGCGATGTTACCATTGTG3’(配列番号8)、およびカルボキシ末端オリゴプライマー:
5’TCTAGATCTTATTCTCGTCCACTTGCAGAG3’(配列番号9)を使用して、成体の脳のcDNA(Clontech)のPCRによって増幅させた。これらのプライマーは、クローニング目的で5’EcoRI/BglII部位および3’XbaI/BglII部位を含んでいた。生成したPCR産物は、pGEM4Z(Promega)のEcoRIおよびXbaI部位にクローニングした。発現/精製目的で、中央部Tタグを、PCRプライマー:5’GGTACCATGGAATACATGCCGATGGAAAGCGATGTTACCATTGTGAAG3’(配列番号10)を使用して、完全長Akt3クローンの5’端に加えた。生成したPCR産物は、昆虫細胞の発現ベクター、pS2neoを含むビオチンタグに関してインフレームクローニングが可能である5’KpnI部位を含んでいた。
5’AAGCTTAGATCTACCATGAATGAGGTGTCTGTC3’(配列番号11)、およびカルボキシ末端オリゴプライマー:
5’GAATTCGGATCCTCACTCGCGGATGCTGGC3’(配列番号12)を使用して、PCRによって増幅させた。これらのプライマーは、クローニング目的で5’HindIII/BglII部位および3’EcoRI/BgmHI部位を含んでいた。生成したPCR産物は、pGEM3Z(Promega)のHindIII/EcoRI部位にサブクローニングした。発現/精製目的で、中央部Tタグを、PCRプライマー:5’GGTACCATGGAATACATGCCGATGGAAAATGAGGTGTCTGTCATCAAAG3’(配列番号13)を使用して、完全長Akt2の5’端に加えた。生成したPCR産物は、前に記載したようにpS2neoベクターにサブクローニングした。
pS2neo発現ベクター中の、クローニングしたAkt1、Akt2、Akt3およびΔPH−Akt1遺伝子を含むDNAを精製し、これを使用して、DrosophilaのS2細胞(ATCC)をリン酸カルシウム法によってトランスフェクトした。抗生物質(G418、500μg/ml)耐性細胞の集まりを選択した。細胞を1.0L容積(〜7.0×106/ml)に広げ、ビオチンおよびCuSO4を、それぞれ50μMおよび50mMの最終濃度まで加えた。細胞を27℃で72時間増殖させ、遠心分離によって採取した。細胞ペーストを必要とするまで−70℃で凍結させた。
実施例13に記載した1リットルのS2細胞からの細胞ペーストを、50mlの1%CHAPSを緩衝液A:(50mM Tris pH7.4、1mM EDTA、1mM EGTA、0.2mM AEBSF、10μg/mlのベンズアミジン、5μg/mlのロイペプチン、それぞれアプロチニンおよびペプスタチン、10%グリセロールおよび1mM DTT)に溶かしたものを用いて、音波処理によって溶かした。可溶性分画を、9mg/mlの抗中央Tモノクローナル抗体を充填したProtein G Sepharose高速(Pharmacia)カラム上で精製し、75μMのEYMPME(配列番号14)ペプチドを25%グリセロールを含む緩衝液Aに溶かしたものを用いて溶出させた。Akt/PKB含有分画を集め、SDS−PAGEによってタンパク質純度を評価した。精製したタンパク質は、標準的なBradfordプロトコルを使用して定量化した。精製したタンパク質を液体窒素で急速冷凍し、−70℃で保存した。
ここでの手順は、ヒトの組み換え活性Akt/PBKイソ型またはAkt/PBK突然変異体による、ビオチン化GSK3由来ペプチドのリン酸化を測定する、キナーゼアッセイを記載するものである。33P標識ビオチン化産物を、Streptavidin coated Flashplates(NEN LifeSciences)またはStreptavidin Membrane Filter Plates(Promega)を使用して、捕獲および検出することができる。あるいは、2つの追加的なリシン残基を有するGSK3由来ペプチドを基質として使用し、Phosphocellulose Membrane Filter Plates(Polyfiltronics)を使用して後に捕獲した。
活性のあるヒトAkt:以下の活性のあるヒトAktイソ型を、in vitroアッセイで使用した:活性のあるヒトAkt1(Upstate Biotechnology、カタログ番号14〜276、15μg/37μl(6.76μM)から得たもの)または組み換え脂質活性化Akt1(実施例5に記載したように調製したもの)、Akt2(実施例5に記載したように調製したもの)、Akt3(実施例5に記載したように調製したもの)、およびΔPH−Akt1(実施例5に記載したように調製したもの)。
A.10×アッセイ緩衝液:500mM HEPES、pH7.5
1% PEG
1mM EDTA
1mM EGTA
20mM β−グリセロールリン酸
B.活性Akt(500nM):希釈液(1×アッセイ緩衝液、10%グリセロール、0.1%β−メルカプトエタノール、1.0μMミクロシスチンLRおよび1.0mMのEDTA)を、37μlの活性のあるAktイソ型(6.76μM)を含むバイアルに加えた。各分量を液体窒素中で急速冷凍し、−70℃で保存した。
C.1mMのAkt特異的ペプチド基質を50mM Tris pH7.5、1mM DTTに溶かしたもの。
D.100mM DTTを脱イオン水に溶かしたもの。
E.100×Protease Inhibitor Cocktail(PIC):1mg/mlのベンズアミジン、0.5mg/mlのペプスタチン、0.5mg/mlのロイペプチン、0.5mg/mlのアプロチニン。
F.3mM ATP、200mM MgCl2をH2Oに溶かしたもの、pH7.9。
G.50%(v/v)グリセロール。
H.1%(wt/v)BSA(10mg/ml)を脱イオン水に溶かしたもの、0.02%(w/v)NaN3。
I.125mM EDTA。
J.0.75%(wt/v)リン酸。
K.2.5M 塩化カリウム
L.Tris Buffered Saline(TBS)、25mM Tris、0.15M 塩化ナトリウム、pH7.2(BupH Tris Buffered Saline Pack、Pierce カタログ番号28376)。
ステップ1:
試験化合物を100%DMSOに溶かした溶液1μlを、20μlの2×基質溶液(20uM GSK3ペプチド、300μM ATP、20mM MgCl2、20μCi/ml[γ33P]ATP、1×アッセイ緩衝液、5%グリセロール、1mM DTT、1×PIC、0.1%BSAおよび100mM KCl)に加えた。19μlの2×酵素溶液(6.4nM活性Akt/PKB、1×アッセイ緩衝液、5%グリセロール、1mM DTT、1×PICおよび0.1%BSA)を加えることによって、リン酸化反応を開始させた。次いで反応混合物を、室温で45分間培養した。
125mMのEDTA170μlを加えることによって、反応を停止させた。停止させた反応の混合物200μlを、Streptavidin Flashplate(登録商標)PLUS(NEN Life Sciences、カタログ番号SMP103)に移した。このプレートを、プレート攪拌器上で10分以上室温で培養した。それぞれのウェルの中味を吸引し、ウェル当たり200μlのTBSで2回ウェルをすすいだ。次いでウェル当たり200μlのTBSで5分間、3回ウェルを洗浄し、洗浄ステップ中プラットフォーム型の攪拌器上で、プレートを室温で培養した。
ステップ1:
前述のStreptavidin Flash Plateアッセイのステップ1に記載した酵素反応を行った。
20μlの7.5M塩酸グアニジンを加えることによって、反応を停止させた。停止させた反応の混合物50μlを、Streptavidin filter plate(SAM2(商標)Biotin Captuer Plate Promega、カタログ番号V7542)に移し、真空をかける前に反応混合物を、フィルター上で1〜2分間培養した。
ステップ1:
Streptavidin Flash Plateアッセイ(前述)のステップ1に記載したように、ビオチン−GGRARTSSFAEPGの代わりにKKGGRARTSSFAEPG(配列番号16)を基質として使用して、酵素反応を行った。
20μlの0.75%H3PO4を加えることによって、反応を停止させた。停止させた反応の混合物50μlを、フィルタープレート(UNIFILTER(商標)、Whatman P81 Strong Cation Exchanger、White Polystyrene96 Well Plates、Polyfiltronics、カタログ番号7700〜3312)に移し、真空をかける前に反応混合物を、フィルター上で1〜2分間培養した。
それぞれ個々のPKAアッセイは、以下の成分からなる:
1)5×PKAアッセイ緩衝液(200mM Tris pH7.5、100mM MgCl2、5mM 2−メルカプトエタノール、0.5mM EDTA)10μl
2)水に希釈したKemptide(Sigma)の50μMストック10μl
3)33P−ATP(1.0μlの33P−ATP[10mCi/ml]を非標識ATPの50μMストック200μlに希釈することによって調製したもの)10μl
4)適切な溶媒調節用希釈液または阻害物質希釈液10μl
5)0.5mg/mlのBSAに希釈したPKA触媒サブユニット(UBIカタログ番号14〜114)の70nMストック10μl
最終アッセイ濃度はTris pH7.5は40mM、MgCl2は20mM、2−メルカプトエタノールは1mM、EDTAは0.1mM、Kemptideは10μM、33P−ATPは10μM、PKAは14nM、およびBSAは0.1mg/mlであった。
それぞれのPKCアッセイは、以下の成分からなる:
1)10×PKC同時活性緩衝液(2.5mM EGTA、4mM CaCl2)5μl
2)5×PKC活性緩衝液(1.6mg/mlのホスファチジルセリン、0.16mg/mlのジアシルグリセロール、100mM Tris pH7.5、50mM MgCl、5mM 2−メルカプトエタノール)10μl
3)33P−ATP(1.0μlの33P−ATP[10mCi/ml]を非標識ATPの100μMストック100μlに希釈することによって調製したもの)5μl
4)水に希釈したミエリン塩基性タンパク質(MBP、UBI)の350μg/mlのストック10μl
5)適切な溶媒調節用希釈液または阻害物質希釈液10μl
6)0.5mg/mlのBSAに希釈したPKCの50ng/mlのストック(UBIカタログ番号14〜115からのイソ型の混合物)10μl
最終アッセイ濃度は以下の通り:EGTAは0.25mM、CaClは0.4mM、Tris pH7.5は20mM、MgClは10mM、2−メルカプトエタノールは1mM、ホスファチジルセリンは0.32mg/ml、ジアシルグリセロールは0.032mg/ml、33P−ATPは10μM、MBPは70μg/ml、PKCは10ng/ml、BSAは0.1mg/mlであった。
細胞(たとえば活性化Akt/PKBを含むLnCaPまたはPTEN(−/−)腫瘍細胞株)を、100mMの皿中で平板培養した。細胞が約70〜80%融合したとき、細胞に5mlの新鮮な培地を再度与え、試験化合物を溶液に加えた。対照は未処理細胞、賦形剤処理細胞、およびそれぞれ20μMまたは200nMのLY294002(Sigma)またはウォルトマニン(Sigma)で処理した細胞を含んでいた。細胞を2時間培養し、培地を除去し、細胞をPBSで洗浄し、破壊し遠心管に移した。細胞をペレット状にし、PBSで再度洗浄した。最後に、細胞ペレットを、溶解用緩衝液(20mM Tris pH8、140mM NaCl、2mM EDTA、1% Triton、1mM ピロリン酸ナトリウム、10mM β−グリセロールリン酸、10mM NaF、0.5mm NaVO4、1μMミクロシスチン、および1×Protease Inhibitor Cocktail)に再懸濁させ、15分間氷上に置き、おだやかに攪拌して細胞を溶かした。溶解物をBeckman tabletop超遠心分離機において、100,000×gで4℃において20分間回転させた。上澄みタンパク質は、標準的なBradfordプロトコル(BioRad)によって定量化し、必要となるまで−70℃で保存した。
MCF7細胞(PTEN(+/+)であるヒト乳癌系)を、100mMプレート当たり細胞1×106個で平板培養した。細胞が約70〜80%融合したとき、細胞に5mlの血清を含まない培地を再度与え、一晩培養した。翌朝、化合物を加え、細胞を1〜2時間培養し、30分かけてヘレグリンを加え(Aktの活性化を誘導するために)、前に記載したように細胞を分析した。
癌細胞の増殖の阻害物質としてのin vivoでの有効性は、当分野でよく知られているいくつかのプロトコルによって確認することができる。
Claims (11)
- 薬剤担体と、該薬剤担体中に分散している治療上有効量の請求項1に記載の化合物と、を含む薬剤組成物。
- 薬剤担体と、該薬剤担体中に分散している治療上有効量の請求項3に記載の化合物と、を含む薬剤組成物。
- 哺乳動物においてAktの1つ以上のイソ型を選択的に阻害するための、請求項4に記載の薬剤組成物。
- 哺乳動物においてAktの1つ以上のイソ型を選択的に阻害するための、請求項5に記載の薬剤組成物。
- 哺乳動物において癌を治療するための、請求項4に記載の薬剤組成物。
- 哺乳動物において癌を治療するための、請求項5に記載の薬剤組成物。
- 請求項1に記載の化合物と薬剤として許容される担体とを組み合わせることによって作製された、薬剤組成物。
- 請求項1に記載の化合物と薬剤として許容される担体とを組み合わせることを含む、薬剤組成物を作製するための方法。
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