JP4359670B2

JP4359670B2 - 凍結用具

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Publication number: JP4359670B2
Application number: JP2004054966A
Authority: JP
Inventors: 正二郎笠; 修二上田; 美幸森
Original assignee: Fukuoka Prefectural Government
Current assignee: Fukuoka Prefectural Government
Priority date: 2004-02-27
Filing date: 2004-02-27
Publication date: 2009-11-04
Anticipated expiration: 2024-02-27
Also published as: JP2005239685A

Description

本発明は、卵子、胚や組織細胞などの生物学的標本を凍結保存する際に使用する凍結用具に関する。

産業として確立している牛の胚移植技術に用いられる胚は、受胚牛の発情周期に合わせて移植を行うのが一般的である。そのため、生産した胚を液体窒素である凍結物質の中で一定期間保存することが必要である。このような生物標本の生存性を維持したまま長期間保存する方法として、低温での凍結保存法が多く利用されている。

凍結保存の従来法としては、保存液を氷結させて細胞内の自由水を脱水しながらゆっくりと冷却する緩慢冷却法と、高濃度耐凍剤を含んだ保存液を超急速に冷却してガラス化状に固化させることにより、種々の生物標本を高い生存性を維持したまま長期間保存することが可能なガラス化法とが知られている。

例えば、特許文献１には、生物学的標本を移動用器具に置いて、この移動用器具を直接凍結物質の中に置くことにより、生物学的標本を直接凍結物質に暴露し、ガラス化することが記載されている。また、移動用器具として、ループ、ネットおよびヘラからなる群から選択すること、好ましくはループであることが記載されている。なお、ヘラについての詳細な記載はない。

また、特許文献２には、ガラス化に用いる用具として、耐寒性材料により形成された本体部と、本体部の一端に取り付けられ、可撓性かつ透明性かつ液体窒素耐性材料により形成された卵付着保持用ストリップと、卵付着保持用ストリップを被包可能に本体部に着脱自在に取り付けられる一端が封鎖され、かつ耐寒性材料により形成された筒状部材からなる卵凍結保存用具が記載されている。卵付着保持用ストリップは、本体部の一端の円柱状部の先端に形成された軸方向に延びる凹部に、真っ直ぐに取り付けられている。

特表２００２−５４３０４１号公報特開２００２−３１５５７３号公報

緩慢冷却法により牛胚を凍結すると、胚が凍結により障害を受けてしまうため、胚移植の融解時に生存率の減少が見られる。特に、体外受精胚は、従来の凍結による悪影響の感受性が高く、融解後７２時間後の生存率が７０％に達しない。そのため、移植後の受胎率も自ずと低い傾向にある。

そこで、別の保存法として高濃度耐凍剤を用いたガラス化法が考案され、牛胚移植技術においても、卵子および胚のガラス化技術が実験レベルで利用されているのであるが、商業レベルで利用するためには、ガラス化の費用が高いという問題がある。

また、特許文献２に記載の用具にあっては、卵付着保持用ストリップが、本体部の一端の円柱状部の先端に真っ直ぐに取り付けられているため、本体部を手で保持して卵付着保持用ストリップの先端部を液体窒素に浸漬する際、この卵付着保持用ストリップの先端に付着させた卵子およびガラス化液が安定しにくい。

そこで、本発明においては、標本の長期保存において融解後の標本の生存性を維持しつつ、保存作業を確実かつ簡便に行うことが可能な凍結用具を提供することを目的とする。

本発明の凍結用具は、卵子、胚や細胞組織などの生物学的標本を凍結液で包被して一端に保持し、凍結物質の中に浸漬することによりガラス化するための凍結用具であって、直線糸状の本体部と、この本体部の一端に勾配を設けて形成された平面状の保持部とを備えたものである。

本発明の凍結用具では、本体部の一端に平面状の保持部が勾配を設けて形成されているため、この平面状の保持部の平面が略水平となるように本体部を斜め下向きに保持した状態を維持したまま、平面状の保持部の上面に凍結液で包被した生物学的標本を滴下して保持し、凍結物質の中へ浸漬することにより、生物学的標本のガラス化を行うことができる。

ここで、平面状の保持部の本体部に対する勾配は、２０〜４０°とするのが望ましい。この範囲とすることで、凍結液で包被した生物学的標本の滴下および保持並びに凍結物質の中への浸漬時の作業性を維持しつつ、凍結用具全体の幅を小さくすることができる。勾配が２０°より小さい場合、保持部の平面を略水平とするためには本体部を水平に近く保持することになり、生物学的標本および凍結液の重量によってこれらの滴下時および保持時に本体部が斜めになってしまい、保持部の平面を略水平に維持するのが困難となることがある。一方、勾配が４０°より大きい場合、保持部の平面を略水平とするためには本体部を垂直に近く保持することになり、顕微鏡下で生物学的標本および凍結液の滴下および保持を行う場合に、顕微鏡に干渉してしまい、これらの作業が困難となることがある。

また、本発明の凍結用具は、本体部の他端に磁力により引き寄せ可能な磁性体材料を備えたものとするのが望ましい。これにより、ガラス化後、凍結用具ごとそのまま細い標本保存筒内に入れて冷凍保存した生物学的標本を、この細い標本保存筒から取り出す際、磁力によって本体部の他端を引き寄せて容易に取り出すことができる。

また、この本体部の他端は、着色したものとするのが望ましい。これにより、ガラス化後、凍結用具ごとそのまま細い標本保存筒内に入れて冷凍保存した生物学的標本を、この着色によって識別することができる。

また、本体部および保持部は、有色透明とするのが望ましい。これにより、本体部および保持部が光を透過するため、凍結液で包被した生物学的標本をそのまま顕微鏡で確認することができるとともに、有色であることから、凍結物質の中に浸漬した際、凍結物質内で凍結用具を容易に視認することができる。

また、本体部は、ポリアミド繊維製の糸とするのが望ましい。本体部がポリアミド繊維製の糸であれば、−１９０〜−２００℃の凍結物質内に浸漬されても、可撓性を保持することができる。

（１）直線糸状の本体部と、この本体部の一端に勾配を設けて形成された平面状の保持部とを備えたことにより、平面状の保持部の平面が略水平となるように本体部を斜め下向きに保持した状態を維持したまま、平面状の保持部の上面に凍結液で包被した生物学的標本を滴下して保持し、凍結物質の中へ浸漬することができる。これにより、ガラス化法による保存作業を確実かつ簡便に行うことができ、標本を高い生存性を維持したまま凍結保存することができる。また、保持部の上面に滴下した生物学的標本を含む凍結液が本体部と保持部との境界で堰き止められるため、少ない凍結液で確実に生物学的標本を包被することができる。さらに、この凍結用具は、主に直線糸状の本体部と、この本体部の一端に勾配を設けて形成された平面状の保持部とから構成され、簡単な構造であることから、安価に提供でき、ガラス化の費用を低廉とすることができる。

（２）勾配を２０〜４０°とすることで、凍結液で包被した生物学的標本の滴下および保持並びに凍結物質の中への浸漬時の作業性を維持しつつ、凍結用具全体の幅を小さくすることができるため、細い標本保存筒からの出し入れ作業も容易となる。

（３）本体部の他端に磁力により引き寄せ可能な磁性体材料を備えたことにより、ガラス化後、凍結用具ごとそのまま細い標本保存筒内に入れて冷凍保存した生物学的標本を、この細い標本保存筒から取り出す際、磁力によって本体部の他端を引き寄せて容易に取り出すことができる。

（４）本体部の他端を着色したことにより、ガラス化後、凍結用具ごとそのまま細い標本保存筒内に入れて冷凍保存した生物学的標本を、着色によって識別することができ、生物学的標本を容易に管理することが可能となる。

（５）本体部および保持部が、有色透明であることにより、凍結液で包被した生物学的標本をそのまま顕微鏡で確認することができるとともに、有色であることから、凍結物質の中に浸漬した際、凍結物質内で凍結用具を容易に視認することができ、作業性が向上する。

（６）本体部が、ポリアミド繊維製の糸であることにより、−１９０〜−２００℃の凍結物質内に浸漬されても、可撓性を保持することができるため、本体部に加わる力が保持部に保持された生物学的標本および凍結液に伝わることがなく、生物学的標本を損傷することがない。

図１は本発明の実施の形態における凍結用具１を示す図であって、（ａ）は側面図、（ｂ）は平面図、（ｃ）は凍結液で包被した生物学的標本を保持した状態を示す側面図、（ｄ）は凍結液で包被した生物学的標本を保持した状態を示す平面図である。図１に示すように、本実施形態における凍結用具１は、卵子、胚や細胞組織などの生物学的標本（以下、「標本」と称す。）Ｅを凍結液Ｌで包被して一端に保持し、凍結物質の中に浸漬することによりガラス化するための用具であって、本体部２、保持部３および識別部４により構成される。

本体部２は、耐寒性、液体窒素耐性、耐伸縮性かつ耐変質性を有するポリアミド繊維（例えば、表面円滑ナイロン等）からなる直線糸状の線維素材である。この本体部２の全長は５〜４０ｍｍ、直径は０．２〜０．４ｍｍである。また、本体部２は有色透明とすることにより、凍結物質の中に浸漬した際、凍結物質内でその目視確認が容易となり、かつピンセットなどの把持具による把持および誘導が容易となるようにしている。

保持部３は、本体部２の延長であり、本体部２の一端に２０〜４０°の勾配を設けて平面状に形成されたものである。保持部３の幅は、０．３〜０．６ｍｍ、長さは０．５〜２．０ｍｍである。なお、少なくとも保持部３の内側（本体部２とのなす角が鈍角である面（以下、「上面」と称す。）の側）は、平面状とする。また、保持部３は、本体部２と同じ材質であり、保持部３の厚さは約０．１ｍｍである。

保持部３は、本体部２と同様、有色透明であるため、凍結液Ｌにより包被した標本Ｅを平面部の内側に滴下すると、標本がピペット内から保持部３に移行したことを容易に確認できる。また、この保持部３から凍結物質内へと浸漬していく際も、保持部３が凍結物質内へ挿入されていくのを容易に確認できる。

なお、本体部２および保持部３は、ポリアミド繊維製であるため、−１９０〜−２００℃の凍結物質内に浸漬されても、可撓性を保持することができる。したがって、本体部２に外部から加わる力が保持部３に保持された標本Ｅおよび凍結液Ｌに伝わることがなく、標本Ｅを損傷することがない。

また、このポリアミド繊維製の本体部２の全長が５〜４０ｍｍであるため、可撓性を有する本体部２自らの重量に耐えて直線状を保つことができ、過剰な振動も本体部２から保持部３へ伝わらないため、凍結液Ｌで包被した生物学的標本Ｅの保持部３への滴下が容易に行える。また、凍結物質内での凍結用具１の視認が容易である。

なお、本体部２の全長が５ｍｍより短い場合、凍結用具１の小型化による取り扱いが不便になり、凍結物質内での凍結用具１の存在確認が困難となる。また、全長が４０ｍｍより長い場合、可撓性を有する本体部２自らの重量で傾斜が起こり、また、過剰な振動が本体部２から保持部３へ伝わるようになるため、保持部３への凍結液Ｌで包被した生物学的標本Ｅの滴下が困難となる。

また、本体部２の直径が０．２ｍｍよりも小さく過細な場合、凍結用具１の強度が減少してしまうため、凍結液Ｌで包被した生物学的標本Ｅの滴下が困難となるとともに、凍結物質内での凍結用具１の確認が困難となる。また、本体部２の直径が０．４ｍｍよりも大きく過大な場合、凍結完了後に標本保存筒内へ多数保存するのが困難となる。

また、保持部３の幅が０．３〜０．６ｍｍ、長さが０．５〜２．０ｍｍであることによって、滴下量を少なくすることができ、滴下量が少ないことによって、生存性の高い凍結を行うことが可能となる。なお、保持部３の長さが０．５ｍｍより短い場合、保持部３の長さが小さすぎることによって滴下作業が困難になるとともに、滴下量が少なすぎて生物学的標本Ｅの凍結が困難となる。また、２．０ｍｍより長い場合、滴下量が過剰となり、高い生存性の凍結が困難となる。

識別部４は、本体部２に対して保持部３の反対側の他端に形成されている。識別部４は、外径０．５〜０．８ｍｍ、内径０．３〜０．５ｍｍの１〜２ｍｍ長の着色鉄製管を、本体部２の末端部に包被装着したものである。また、装着した鉄製管は、振動や伸縮による本体部２からの脱落を防止する目的で、本体部２の反対側の保持部３の平面部と同じ側の面を軽度に押し潰して平面化している。

なお、この識別部４は、磁性体材料としての強磁性体である鉄により形成されているため、磁力により引き寄せ可能である。そのため、磁石等の利用により、この識別部４を引き寄せることで、本実施形態における凍結用具１を容易に誘導することが可能である。

次に、上記構成の凍結用具１の使用法について、図２を参照して説明する。図２は本実施形態における凍結、保存および融解の工程を示す説明図である。なお、生物体を取り扱うにあたり、本凍結用具１は、清浄かつ滅菌用ガスや生物死活線等で滅菌処理したものを使用する。

（凍結法）
標本の凍結方法は、図２に示すように、（ア）一またはそれ以上の標本Ｅを平衡液Ｂ₁，Ｂ₂で数段階平衡した後、凍結液Ｌに短時間浸漬する。その後、標本Ｅを凍結液Ｌとともにパスツールピペット５に吸引し、（イ）実体顕微鏡下で確認しながら、ピンセット６により把持する凍結用具１の保持部３に滴下し、（ウ）決められた時間に凍結用具１全体を液体窒素等の凍結物質Ｆに投入し凍結する。次に、（ウ）凍結した凍結用具１の識別部４側を保持し、既存の耐寒性の標本保存筒７に凍結物質Ｆとともに挿入し、（エ）閉蓋して保管器８で保存する。

（融解法）
標本の融解方法は、図２に示すように、（オ）予め用意した凍結物質Ｆ内へ保管器８から取り出した標本保存筒７を入れ、標本保存筒７から凍結用具１を引き出し、（カ）識別部４を保持して、速やかに融解希釈液Ｗに保持部３を投入し、融解する。（キ）融解した標本Ｅは顕微鏡下で必要な段階希釈（希釈液Ｗ₁，Ｗ₂）を行い、保存液Ｍに投入後、種々の作業に利用する。

以上のように、本実施形態における凍結用具１は、直線糸状の本体部２と、この本体部２の一端に勾配を設けて形成された平面状の保持部３とを備えたことにより、平面状の保持部３の平面が略水平となるように本体部２を斜め下向きに保持した状態を維持したまま、平面状の保持部３の上面に凍結液Ｌで包被した標本Ｅを滴下して保持し、凍結物質Ｆの中へ浸漬することができる（図２（イ）、（ロ）参照。）。

したがって、本実施形態における凍結用具１を利用することで、ガラス化法による保存作業を確実かつ簡便に行うことができ、標本Ｅを高い生存性を維持したまま凍結保存することができる。また、本実施形態における凍結用具１では、保持部３の上面に滴下した標本Ｅを含む凍結液Ｌが本体部２と保持部３との境界で堰き止められるため、少ない凍結液で確実に標本Ｅを包被することができる。

本実施形態における凍結用具１では、滴下に必要な液量は約０．３μｌと極少量である。このように本実施形態における凍結用具１では、標本Ｅの凍結に必要な凍結液Ｌは微少量であるため、凍結物質Ｆに直接暴露することで、融解後の生存率の高い超急速冷却が可能である。

また、保持部３の本体部２に対する勾配を２０〜４０°とすることで、凍結液Ｌで包被した標本Ｅの滴下および保持並びに凍結物質Ｆの中への浸漬時の作業性を維持しつつ、凍結用具１全体の幅を小さくすることができるため、細い標本保存筒７であっても出し入れ作業が容易である。

また、本体部２の保持部３と反対側の他端に磁力により引き寄せ可能な磁性体材料である鉄により形成された識別部５を備えたことにより、ガラス化後、凍結用具１ごとそのまま細い標本保存筒７内に入れて冷凍保存した標本Ｅを、この細い標本保存筒７から取り出す際、磁力によってこの識別部５を引き寄せて容易に取り出すことができる。

また、この識別部５を着色していることから、ガラス化後、凍結用具１ごとそのまま細い標本保存筒７内に入れて冷凍保存する場合に、この冷凍保存した標本Ｅを、この識別部５の着色によって識別することができ、標本Ｅを容易に管理することが可能となる。

また、本体部２および保持部３が、有色透明であることにより、凍結液Ｌで包被した標本Ｅをそのまま顕微鏡で確認することができるとともに、有色であることから、凍結物質Ｆの中に浸漬した際、凍結物質Ｆ内で凍結用具１を容易に視認することができ、作業性が向上している。

また、本実施形態における凍結用具１は、その材質により常温において、過剰な圧力等を加えない限り、変性、伸縮、脆弱化することがないため、衛生的処理を行うことで再利用することも可能である。

本実施形態における凍結用具１を用いてウシ体外受精胚の超急速ガラス化を行い、その生存性を調査した。

（１）卵子採取
と畜場でと畜された雌ウシから卵巣を切り取り、２０℃の抗生物質を添加したビタミンＢ１加リンゲル液で洗浄後、と畜から６時間内に卵胞卵子を吸引した。吸引は、直径１０ｍｍ以内の形態的に正常な卵胞から、１８ゲージまたは２０ゲージの鈍尖注射針を装着した注射筒に予め吸引しておいた０．３％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を添加したダルベッコリン酸緩衝液（Ｄ−ＰＢＳ）とともに、卵丘細胞卵子複合体（ＣＯＣｓ）を吸引した。

（２）卵子成熟
形態的に良好なＣＯＣｓを、５％仔ウシ血清（ＣＳ）を添加したＴＣＭ１９９（卵子成熟液）で２回洗浄後、１ウェルあたり５０個のＣＯＣｓを流動パラフィンで覆った卵子成熟液５００μｌで、５％ＣＯ₂、９５％空気および３８．５℃の気相条件下で２０時間から２２時間成熟した。

（３）体外受精
黒毛和種牛凍結***を３８℃で融解後、融解***をテオフィリンおよびカフェインを添加したブラケットとオリファント液（ＢＯ液）で希釈して遠心分離を２回施して洗浄し、濃縮***を***濃度で１０⁷／ｍｌにＢＳＡおよびヘパリンを添加したＢＯ液で***液を調製した。***液で２００μｌドロップを作成し、成熟卵子５０個を導入し、流動パラフィンで覆い、５％ＣＯ₂、９５％空気および３８．５℃の気相条件下で４時間媒精した。

（４）体外発生
媒精完了した卵子を、１０％ＣＳを添加したグルコース不含ＴＣＭ１９９（初期発生培地）で洗浄後、１ウェルあたり５０個の卵子を卵子成熟に用いた同じウェルに、初期発生培地５００μｌ内で３日または４日培養し、その後１０％ＣＳを添加したＴＣＭ１９９（後期発生培地）に交換し、その後２日おきに新鮮な後期発生培地２００μｌを交換し、受精８日まで培養した。培養気相条件は５％ＣＯ₂、９５％空気および３８．５℃で行った。

（５）供試胚
体外受精後７日または８日において、形態的に栄養膜細胞が単層で均一に発育した上、充実した内部細胞塊を有している拡張胚盤胞期胚を、２０％ＣＳ添加Ｄ−ＰＢＳ（保存液）で洗浄後、３７℃の保存液中で保存して、緩慢冷却による凍結またはガラス化に供試した。

（６）胚の緩慢冷却凍結
発生胚を１０％エチレングリコール、０．１Ｍシュクロースおよび２０％ＣＳを添加したＤ−ＰＢＳ（１０ＥＳ）に導入し、１５分平衡し、０．２５ｍｌプラスチックストローに吸引封入した。プログラムフリーザを用い、−７℃の冷媒中にストローをセットし、２分経過後液体窒素で冷却した金属製ピンセットを用い強制植氷した。強制植氷して１０分経過後、０．３℃／分で緩慢冷却して、−３０℃に到達した後、液体窒素へ導入し保存した。

（７）胚の超急速ガラス化
発生胚を２種類のガラス化液でガラス化した。１つは、１０％グリセロール、０．１Ｍシュクロース、０．１Ｍキシロースおよび１％ポリエチレングリコールを添加したＤ−ＰＢＳ（ＶＳ１）、および、１０％グリセロール、１０％エチレングリコール、０．２Ｍシュクロース、０．２Ｍキシロースおよび２％ポリエチレングリコールを添加したＤ−ＰＢＳ（ＶＳ２）に順次５分前平衡し、２０％グリセロール、２０％エチレングリコール、０．３Ｍシュクロース、０．３Ｍキシロースおよび３％ポリエチレングリコールを添加したＤ−ＰＢＳ（ＧＥＳＸ）に浸漬した。

もう一つのガラス化は、１０％エチレングリコール、１０％ジメチルスルホキシドおよび２０％ＣＳを添加したＴＣＭ１９９で５分前平衡を行い、２０％ジメチルスルホキシド、２０％エチレングリコールおよび２０％ＣＳを添加したＴＣＭ１９９（ＶＳ）に浸漬して、ＧＥＳＸも同様に胚をパスツールピペットで吸い上げ、実体顕微鏡下で凍結用具１の保持部３に滴下した。

胚をＧＥＳＸまたはＶＳへ浸漬してから３０秒後に凍結用具１を、素早く液体窒素に投入し、超急速ガラス化を行った。ガラス化した凍結用具１は、液体窒素中で市販の耐寒性サンプルチューブに導入後、封閉して液体窒素内で保存した。

（８）緩慢冷却凍結胚の融解
凍結ストローを液体窒素から取り出し、室温で６秒保持し、その後３０℃温湯中で２０秒維持することで胚を融解した。次に融解したストローを室温で５分保持し、封印側をストローカッターで切断し、ストローの綿栓側から圧力をかけ、凍結液とともに胚を押し出した。次に胚を保存液に導入して凍結液を希釈した。

（９）超急速ガラス化胚の加温
液体窒素からピンセットでガラス化した凍結用具１をつまみ、保持部３を素早く０．５Ｍシュクロースおよび２０％ＣＳを添加したＤ−ＰＢＳへ導入して、胚を凍結用具１から加温離脱した。この状態で５分浸漬し、次に胚を０．２５Ｍシュクロースおよび２０％ＣＳを添加したＤ−ＰＢＳへ導入し、再び５分浸漬してガラス化液の希釈を行った。加温希釈は室温下で行い、ガラス化液希釈後は３７℃の保存液に導入して保存した。

（１０）融解または加温胚の培養
融解または加温した緩慢冷却凍結胚および超急速ガラス化胚は、１００μＭベータメルカプトエタノールおよび２０％ウシ胎仔血清を添加したＴＣＭ１９９（培養液）で数回洗浄後、流動パラフィンで覆った１胚あたり２０μｌの培養液ドロップで７２時間培養した。培養の気相条件は５％ＣＯ₂、９５％空気および３８．５℃で行った。

（１１）保存胚の生存性調査
融解または加温した胚は培養開始から２４時間、４８時間および７２時間で生存、発育および状態を観察した。

（１２）統計処理
保存胚の融解または加温後の生存胚数および透明帯脱出胚数を同系列内でカイ自乗検定を行った。

（１３）保存胚の生存率
融解または加温後培養した体外受精胚の生存率は、２４時間後で１０ＥＳ：７２％、ＶＳ：８７％およびＧＥＳＸ：１００％、４８時間後で６７％、８６％および９９％、７２時間後で６５％、８３％および９９％とガラス化液ＶＳおよびＧＥＳＸは８０％以上の生存率を維持した。

しかし、緩慢冷却区は２４時間後で生存率７２％であり、その後も経時的に下降が見られ、両ガラス化液は緩慢冷却液より有意（ｐ＜０．０５）に高い生存率を示した。また、両ガラス化液では加温後７２時間後で９９％の生存性を示したＧＥＳＸがＶＳより有意（ｐ＜０．００１）に高い生存率を示した。表１に保存胚の融解または加温後生存率を示す。表１から分かるように、ａとｂの有意差はｐ＜０．０５、ｃとｄの有意差はｐ＜０．０１、ｅとｆの有意差はｐ＜０．００５、ｇとｈの有意差はｐ＜０．００１、ｉとｊの有意差はｐ＜０．０００５であった。

（１４）保存胚の透明帯脱出率
融解または加温後培養した体外受精胚の透明帯脱出率は、２４時間後で１０ＥＳ：１５％、ＶＳ：１０％およびＧＥＳＸ：６２％、４８時間後で３３％、５１％および９６％、７２時間後で４８％、６１％および９７％と全ての試験区で経時的に上昇が見られた。４８時間および７２時間後ではガラス化が緩慢冷却より透明帯脱出率が高い傾向にあった。特に、ガラス化液ＧＥＳＸは加温後２４時間後で６２％、４８時間後には９６％が透明帯を脱出し、脱出した胚は細胞発育並びに内部細胞塊の形態等良好な発生経過を示した。表２に保存胚の融解または加温後透明帯脱出率を示す。表２から分かるように、ａとｂの有意差はｐ＜０．０５、ｃとｄの有意差はｐ＜０．０００５であった。

本発明の凍結用具は、卵子、胚や組織細胞などの生物学的標本を凍結保存する用具として有用である。特に、種々の生物標本を高い生存性を維持したまま長期間保存することが可能なガラス化法の凍結用具として好適である。

本発明の実施の形態における凍結用具１を示す図であって、（ａ）は側面図、（ｂ）は平面図、（ｃ）は凍結液で包被した生物学的標本を保持した状態を示す側面図、（ｄ）は凍結液で包被した生物学的標本を保持した状態を示す平面図である。本実施形態における凍結、保存および融解の工程を示す説明図である。

符号の説明

１凍結用具
２本体部
３保持部
４識別部

Claims

生物学的標本を凍結液で包被して一端に保持し、凍結物質の中に浸漬することによりガラス化し、ガラス化後、そのまま標本保存筒内に入れて冷凍保存するための凍結用具であって、ポリアミド繊維からなる直径０．２ｍｍ〜０．４ｍｍの直線糸状の本体部と、この本体部の一端に勾配を設けて形成された平面状の保持部とを備え、前記本体部の前記保持部に対して反対側の他端に磁力により引き寄せ可能な磁性体材料を備えた凍結用具。
前記勾配は、２０〜４０°である請求項１記載の凍結用具。
前記磁性体材料は、鉄である請求項１または２に記載の凍結用具。
前記本体部の前記保持部に対して反対側の他端を着色した請求項１から３のいずれかに記載の凍結用具。
前記本体部および保持部は、有色透明である請求項１から４のいずれかに記載の凍結用具。