JP4276091B2 - 環境中のダイオキシン類の測定に適した抗ダイオキシン類モノクローナル抗体およびそれを産生するハイブリドーマ - Google Patents
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Description
また、本発明は、該抗体を作製する際の免疫原として、免疫測定法において抗体を固定化するための化合物またはダイオキシン類と競合させるための化合物(コンペティター)として、あるいは、測定系の標準物質として有用なフェノキサチイン誘導体およびその製造方法に関する。
また、以前より環境中の汚染物質として知られていたポリ塩化ビフェニル(PCB)のうち、4種類のノンオルトPCBと8種類のモノオルトPCBの計12種類のコプラナーPCBも、ダイオキシンと同様の生物作用を示すことにより、ダイオキシン類として測定されることとなった。
高菅ら、第11回環境化学討論会講演要旨集、p.136、2002年 藤平ら、環境浄化技術、vol.2, No.5, p.63、2003年
また、本発明の目的は、上記の目的を達成するために、WHO-TEF値が定められた17種類のPCDDおよびPCDFのうち指標異性体だけでなくTEQ値への寄与の高い数種類の5塩素および6塩素のダイオキシン異性体にも高い交差反応性を有し、かつ測定溶媒中で抗原との安定な反応性を有するモノクローナル抗体を提供することであった。
で示されるフェノキサチイン誘導体をハプテンとしてキャリアータンパク質に結合させ、得られたコンジュゲートを免疫原として用いて動物を免疫し、免疫動物由来の抗体産生細胞とミエローマ細胞を融合させることによって、目的の抗ダイオキシン類モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞が得られることを見い出した。
最終免疫より3日後に、免疫動物より抗体産生細胞を回収する。抗体産生細胞は、脾臓細胞、リンパ節由来B細胞などであってよい。この抗体産生細胞をミエローマ細胞と常法に従って細胞融合させる。ミエローマ細胞としては、マウス、ラット、ヒト由来の細胞株が挙げられる。細胞融合法としては、ポリエチレングリコール法、電気的融合法などが挙げられる。
なお、抗体および測定系に供するダイオキシン誘導体の標識が必要である場合には、放射性同位元素、酵素、蛍光物質など、当分野で周知のものを用い、常法通り行ってよい。
実施例1:フェノキサチイン誘導体の合成
(1)6-(3,7,8-トリクロロフェノキサチイン-2-イロキシ)ヘキサン酸の合成
3,4-ジクロロフェノールをメタノールに溶解し、等量の水酸化カリウムを加えた後、溶媒を留去した。残渣にトルエンを加え、溶媒を減圧下に留去した後、減圧下に100℃で1時間乾燥させた。これに、4-ブロモ-2-クロロアニソールと塩化第一銅と無水ピリジンを加え、撹拌下に24時間加熱還流した。溶媒を減圧下に留去した後、残渣にクロロホルムと水を加え、分液し、有機層を1N塩酸および水で順次洗浄した後、溶媒を減圧下に留去した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精製し、3,3',4-トリクロロ-4'-メトキシジフェニルエーテルを得た。
これを1,1,2,2-テトラクロロエタンに溶解し、無水塩化アルミニウムと塩化硫黄を加え、撹拌下に80℃で1時間反応させた。反応終了後、水を加え、クロロホルムで抽出し、有機相の溶媒を減圧下に留去した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精製し、2,3,7-トリクロロ-8-メトキシフェノキサチインを得た。
次いで、これを無水ジクロロメタンに溶解し、三臭化ホウ素のジクロロメタン溶液を加え、室温で一晩撹拌した。反応液を氷中にあけ、ジクロロメタンで抽出し、有機相の溶媒を減圧下に留去した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精製し、3,7,8-トリクロロフェノキサチイン-2-オールを得た。
これを、ジメチルホルムアミドに溶解し、無水炭酸カリウムとブロモヘキサン酸エチルを加え、60℃で一晩撹拌した。溶媒を減圧下に留去し、残渣にジクロロメタンと水を加え、分液し、有機層を水で洗浄した後、溶媒を減圧下に留去した。残渣をジオキサンとメタノールの混液に溶解し、撹拌下に10N水酸化ナトリウムを加え、室温で1時間反応させた。この反応液を塩酸で中和し、減圧下に濃縮し、残渣にクロロホルムと水を加えて溶解させた。この溶液を塩酸で酸性とした後、分液し、有機層を水で洗浄し、溶媒を減圧下に留去した。残渣をエタノールで洗浄し、エタノールから再結晶して6-(3,7,8-トリクロロフェノキサチイン-2-イロキシ)ヘキサン酸を通算収率7.5%で得た。
1H-NMR(270MHz、DMSO-d6):δ 12.01(br、1H)、7.67(s、1H)、7.24(s、1H)、7.13(s、1H)、7.09(s、1H)、4.01(t、2H)、2.23(t、2H)、1.72(m、2H)、1.57(m、2H)、1.42(m、2H)。
上記(1)における3,4-ジクロロフェノールの代わりに、2,3,4-トリクロロフェノールを用いて同様な操作を行ない、6-(3,6,7,8-テトラクロロフェノキサチイン-2-イロキシ)ヘキサン酸を通算収率4.3%で得た。
1H-NMR(270MHz、DMSO-d6):δ 12.01(br、1H)、7.67(s、1H)、7.24(s、1H)、7.13(s、1H)、4.01(t、2H)、2.23(t、2H)、1.72(m、2H)、1.57(m、2H)、1.42(m、2H)。
実施例1で合成した2種類のフェノキサチイン誘導体を、該誘導体のカルボン酸を利用して、キャリアータンパク質としての牛血清アルブミン(BSA)に結合させた。
6-(3,7,8-トリクロロフェノキサチイン-2-イロキシ)ヘキサン酸(ハプテンI-1)のジメチルホルムアミド溶液に、N-ヒドロキシスクシンイミドおよび1-エチル-3-(3-ジエチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩、N,N-ジイソプロピルエチルアミンを加え、室温で一晩撹拌した。反応終了後、反応液を減圧下に濃縮し、残渣をクロロホルムで抽出した。抽出液を水で洗浄した後、減圧下に濃縮し、残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精製し、N-スクシンイミジル-6-(3,7,8-トリクロロフェノキサチイン-2-イロキシ)ヘキサノエートを得た。
これをジメチルスルホキシド(DMSO)に溶解し、50mMリン酸緩衝液(pH8.0)に溶解したBSA溶液に、氷冷撹拌下に滴下し、室温にて一晩撹拌した。反応液をPBS(−)で平衡化したセファデックスカラムに添加し、同緩衝液で展開して、ハプテンI-1とBSAとのコンジュゲートを精製した。
6-(3,6,7,8-テトラクロロフェノキサチイン-2-イロキシ)ヘキサン酸(ハプテンI-2)を用いて、上記と同様な操作を行ない、ハプテンI-2とBSAとのコンジュゲートを調製した。
(1)マウスの免疫
マウスへの毒性を軽減したフェノキサチイン誘導体コンジュゲート(II-1およびII-2)を免疫原として、またRAS R-700(RIBI社)をアジュバントとして用いて、マウスの免疫を行った。即ち、抗原溶液とアジュバントを1:1(容量比)で混合して十分に乳化させ、次いで、乳化液をBALB/cマウス(7〜8週齢、雌)の腹腔内に投与し(200μl)、マウスを免疫感作した。追加免疫を約2〜3週間の間隔で行い、追加免疫より1週間経過後に尾静脈より採血し、ELISA法により血中抗体価を測定して、抗体価の推移を観察した。
II-1またはII-2に対する抗体の高産生が認められたマウスの尾静脈内に、II-1またはII-2を投与して最終免疫を行った。最終免疫より3日後にマウスより脾臓を摘出し、脾臓細胞を調製した。対数増殖期にあるミエローマ細胞(P3-X63-Ag8.653あるいはSp2/O)と脾臓細胞を1:5になるように混合し、ポリエチレングリコール(PEG)法にて細胞融合を行った。融合後の細胞を、HAT(ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジン)添加の10%FCS含有RPMI 1640培地中に懸濁させた。この懸濁液を、脾臓細胞数が1〜2×105細胞/ウエルになるように、96ウエル培養プレートに播種し、37℃および5%CO2下で培養した。
細胞融合より7〜10日後に、クローンの増殖が見られたウエルの培養上清を用いて抗体価を測定した。抗体価の測定はELISA法によって行った。
マイクロタイタープレート(CORNING社)の各ウエルに、0.25〜1μg/mlのII-1およびII-2のPBS(−)希釈溶液(50μl)を加え、室温で1時間静置して固定化した。また、キャリアータンパク質に対する抗体誘導クローンを除外する為に、BSAをウエルに固定化し、このウエルを対照とした。各ウエルを、洗浄液[0.05%Tween20を含むPBS(−)](300μl)で3回洗浄した。次いで、脱イオン水で4倍希釈して調製したブロックエース(雪印社)溶液(300μl)を各ウエルに添加し、室温で2時間静置してブロッキングを行った。各ウエルを洗浄液(300μl)で3回洗浄した後、20%DMSOおよび0.01%Triton-X100の溶液(25μl)、および1次抗体を含む培養上清(25μl)を各ウエルに添加して混和し、室温で10〜30分間静置して抗原抗体反応を行わせた。
次いで、洗浄液(300μl)で各ウエルを3回洗浄した後、プレート固定化II-1またはII-2に結合した1次抗体を検出するために、脱イオン水で10倍希釈したブロックエースにて3000倍希釈に調製した西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG(γ鎖認識)(KPL社)を、2次抗体溶液として加え(50μl)、室温で1時間反応させた。ウエルを洗浄液(300μl)で同様に3回洗浄した後、3,3',5,5'-テトラメチルベンジジン(TMB)溶液(KPL社)を各ウエルに加え、室温で発色反応を行った。5〜15分後に1Mリン酸(50μl)を加えて反応を停止させ、マイクロプレートリーダー(マルチスキャン、Labsystems社)にて直ちに450nmでの吸光度を測定した。II-1またはII-2を固定化した各ウエルの吸光度と対照の吸光度の差を、その抗原に対する試料抗体の結合活性とし、対照の吸光度が高いクローンは除いた。
抗体価の測定に用いた方法に準じて、マイクロタイタープレートの各ウエルに抗原II-1およびII-2を固定化し、洗浄した。次いで、脱イオン水で4倍希釈したブロックエース溶液(300μl)を各ウエルに添加し、室温で2時間静置してブロッキングを行った。各ウエルを洗浄液(300μl)で3回洗浄した後、1次抗体を含む培養上清(25μl)と、種々の濃度の、ダイオキシン類に類似の構造を持ち、毒性を低減したスクリーニング用化合物であるフェノキサチイン誘導体(I-1、I-2)ならびにダイオキシン類の20%DMSOおよび0.01%Triton-X100の溶液(25μl)、さらに対照として、フェノキサチイン誘導体もダイオキシン類も含まない20%DMSOおよび0.01%Triton-X100の溶液(25μl)を各ウエルに添加して混和し、室温で10〜30分間静置して抗原抗体反応を行わせた。
次いで、洗浄液(300μl)で各ウエルを3回洗浄した後、プレート固定化II-1またはII-2に結合した1次抗体を検出するために、脱イオン水で10倍希釈したブロックエースにて3000倍希釈に調製した西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG(γ鎖認識)(50μl)を、2次抗体溶液として加え、室温で1時間反応させた。ウエルを洗浄液(300μl)で同様に3回洗浄した後、TMB溶液を各ウエルに加え、室温で発色反応を行った。5〜15分後に1Mリン酸(50μl)を加えて反応を停止させ、マイクロプレートリーダーにて直ちに450nmでの吸光度を測定した。20%DMSOおよび0.01%Triton-X100の溶液のみを添加し、フェノキサチイン誘導体もダイオキシン類も添加していないウエルの吸光度値(対照OD;B0)に対する、フェノキサチイン誘導体またはダイオキシン類の添加時のウエルの吸光度値(B)の割合(B/B0)を算出し、1次抗体の反応性を判断した。抗原に対する結合活性が高く、かつ継続的に高い抗体産生が確認されたウエルのハイブリドーマを選び、拡大培養し、限界希釈法によってクローニングに供した。
BALB/cマウスの腹腔内にプリスタン[2,6,10,14-テトラメチルペンタデカン(和光純薬)](0.5ml)を投与し、2〜3週間飼育した。予め、対数増殖期に維持しておいたモノクローナル抗体産生ハイブリドーマDx02-I-1を回収し、培養上清を除き、次いでFCS不含のRPMI 1640にて1×107細胞/0.5mlになるよう細胞液を調製した。この細胞液を、プリスタン前投与したBALB/cマウスの腹腔中に移植し、10〜14日後に漏出した腹水を腹部より注射器で回収した。採取した腹水を、孔サイズ0.22μmφのフィルターを用いて濾過した後、濾液をプロテインG-セファロースカラム(Amersham Bionsiens社)によるアフィニティークロマトグラフィーによって常法に従い精製し、モノクローナル抗体を調製した。
(1)アイソタイプ分析
II-1またはII-2を固定化抗原とし、マウスタイパーキット(BIO-RAD)を用いて、樹立したハイブリドーマDx02-I-1が産生するモノクローナル抗体Dx02-I-0のアイソタイプ分析を行った。この結果、H鎖はIgG1であり、L鎖はκであった。
上記の間接競合法に従い、精製抗体(Dx02-I-0)を用いて、2,3,4,7,8-PeCDFによる阻害実験を実施した。マイクロタイタープレートにII-1を室温で1時間固定化した後、洗浄液(300μl)で3回洗浄した。次いで、脱イオン水で4倍希釈して調製したブロックエース溶液(300μl)をウエルに添加し、室温で2時間のブロッキングを行った。ウエルを洗浄液で3回洗浄した後、100ng/mlから3倍希釈して調製した種々の濃度のダイオキシン類(20%DMSOおよび0.01%Triton-X100の溶液)あるいは対照としてダイオキシン類を含まない20%DMSOおよび0.01%Triton-X100の溶液(25μl)、および1次抗体、即ち精製したモノクローナル抗体(25μl)を各ウエルに添加して混和し、室温で10〜30分間静置して抗原抗体反応を行わせた。
次いで、ウエルを洗浄し、これに2次抗体、即ち脱イオン水で10倍希釈したブロックエースにて3000倍希釈に調製した西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG(γ鎖認識)(50μl)を加え、室温で1時間反応させた。ウエルを洗浄した後、TMB溶液を加え、室温で発色反応を行った。5〜15分後に1Mリン酸(50μl)を加えて反応を停止させ、マイクロプレートリーダーにて直ちに450nmでの吸光度を測定した。対照OD(B0)に対するダイオキシン類添加時のウエルの吸光度値(B)の割合(B/B0)を算出し、その値を、添加したダイオキシ類の濃度に対してプロットし、典型的なS字の阻害曲線を得た(図1)。
この結果、本発明のモノクローナル抗体を用いて、およそ1ng/ml以下の2,3,4,7,8-PeCDFを検出することが可能な高感度な測定系を構築しうることが示された。
モノクローナル抗体Dx02-I-0を用いて、間接競合法により、毒性値を有する17種類のダイオキシン類および12種類のコプラナーPCBに対する交差反応性を評価した。マイクロタイタープレートの各ウエルにII-1(50μl)を添加し、室温で1時間静置させた後に洗浄した。ブロッキングを行った後、プレートの各ウエルに、20%DMSOおよび0.01%Triton-X100に溶解させた種々の濃度のダイオキシン類(25μl)あるいは対照としてダイオキシン類を含まない20%DMSOおよび0.01%Triton-X100の溶液(25μl)および0.01〜0.1%BSAで希釈した抗体溶液(25μl)とを添加し、室温で10〜30分間反応させた。
次いで、固相に結合した抗体に対する2次抗体、即ちペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG抗体(γ鎖認識)およびTMBを用いて発色反応を行い、酵素反応を停止させた後、直ちに450nmにおける吸光度を測定した。種々のダイオキシン類に対してB/B0値をプロットし、得られた図よりIC50値を算出し、これらの値から抗体の交差反応性を求めた(表3)。
本実験で用いた抗体は、TEQに対する寄与が高いと考えられる数種類の5塩素および6塩素のPCDDおよびPCDFのうち、発明者らがターゲットとしたダイオキシン異性体に高い交差反応性を示した。即ち、1,2,3,7,8-PeCDFへの反応性を100%としたとき、1,2,3,6,7,8-HxCDDに93%、1,2,3,7,8,9-HxCDDに86%、2,3,4,6,7,8-HxCDFに93%の反応性を示し、4種類の5および6塩素ダイオキシン異性体に対して極めて高い反応性を有することがわかった。さらに、この抗体は、1,2,3,4,7,8,9-HpCDFに34%、2,3,7,8-TeCDDに13%、2,3,4,7,8-PeCDFに16%の反応性を示した。
本発明により得られたモノクローナル抗体Dx02-I-0を用いて、9種類の濃度の環境試料(排ガスなど)のダイオキシン分析を実施した。公定法に従い、環境試料に前処理を施し、DMSO置換し、間接競合法にて測定した。標準曲線にて2,3,4,7,8-PeCDF値に換算したELISA値を、GC/MS値に対してプロットしたところ、良好な相関関係が得られた(図2)。即ち、この抗体を用いて、環境試料中のダイオキシン分析に適した測定系を構築できることが確認された。
抗体価の測定方法に準じて、モノクローナル抗体Dx02-I-0のDMSO中での反応性を評価した。
本測定系においては、測定試料と抗体とを1:1で反応させるため、試料溶液は1/2に希釈されることとなる。図3に結果を示したが、ダイオキシン誘導体II-1に対する反応性は、DMSO終濃度が25%のときに最大であり、40%を超えると急激に低下した。即ち、環境試料モニタリングなどにおいて、本抗体は、DMSO溶液として得られる環境試料をわずか2倍に希釈するのみで測定系に供することができる。また、この測定系は、サブppb(10−9)レベルのダイオキシンを含有する試料も十分に測定可能であり、高感度な測定系であることが示された。
Claims (5)
- WHO-TEF値が定められたポリクロロジベンゾ-パラ-ジオキシン(PCDD)およびポリクロロジベンゾフラン(PCDF)のうち、5塩素および6塩素を有するダイオキシン異性体に高い親和性を有する、ハイブリドーマ細胞株Dx02-I-1(FERM BP-08583)によって産生されるモノクローナル抗体Dx02-I-0。
- 請求項1記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞株Dx02-I-1(FERM BP-08583)。
- (a)ダイオキシン類を含有する試料を請求項1記載のモノクローナル抗体と抗原抗体反応させ;
(b)抗体と結合したダイオキシン類あるいはダイオキシン類とは未反応の抗体を検出する;
ことを含んでなる試料中のダイオキシン類を分析するための免疫測定法。
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