JP4067684B2 - Separation method using solid support - Google Patents

Separation method using solid support Download PDF

Info

Publication number
JP4067684B2
JP4067684B2 JP08250899A JP8250899A JP4067684B2 JP 4067684 B2 JP4067684 B2 JP 4067684B2 JP 08250899 A JP08250899 A JP 08250899A JP 8250899 A JP8250899 A JP 8250899A JP 4067684 B2 JP4067684 B2 JP 4067684B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
carrier
solid phase
substance
phase carrier
present
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP08250899A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2000275227A (en
Inventor
裕之 米川
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Olympus Corp
Original Assignee
Olympus Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Olympus Corp filed Critical Olympus Corp
Priority to JP08250899A priority Critical patent/JP4067684B2/en
Publication of JP2000275227A publication Critical patent/JP2000275227A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP4067684B2 publication Critical patent/JP4067684B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、固相担体を用いて検体中の物質を分離する方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
固相担体を用いて物質を分離する方法は汎用性が高く、臨床検査等の分野において様々な物質を分離、精製、検出するために広く用いられている。
【0003】
従来の方法は、▲1▼所望の物質を担体に吸着させる操作、▲2▼担体を洗浄する操作(B/F分離操作)、及び▲3▼担体から物質を溶出させる操作、さらに、必要に応じて▲4▼検体から担体を除去する操作からなる。
【0004】
例えば、特開平09−019292は、磁性シリカ粒子を用いて核酸を分離する方法を開示しており、該方法では、核酸を吸着させた磁性シリカ粒子のみを磁石で集めることにより、検体中から核酸を分離する。該方法においても、磁石で粒子を回収した後、該粒子を複数回洗浄する操作(B/F分離操作)、及び粒子に吸着した核酸を粒子から溶出させる操作が必須である。
【0005】
このように、固相担体を用いて物質を分離する従来の方法では、担体に核酸を吸着させたままでは核酸を利用できないので、固相担体に吸着された物質を溶出して担体を除去する操作が必要であった。しかし、物質が固相担体の間隙中に固着されたりするために、溶出操作において物質を完全に溶出することは困難なので、溶出操作が存在すると測定感度が低下してしまう。
さらに、従来の方法では、溶出ステップの後に固相担体に吸着されやすい成分(検出用の酵素等)を添加する場合には、該成分が固相担体に吸着されることによる影響を除去するために、検体から固相担体を完全に除去する必要があった。このような場合には、溶出操作後に、検体を別の反応容器に移し替えるという操作が不可避であり、多くの消耗品を使用しなければならないという欠点が存在した。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、従来技術に存在するこのような欠点を克服するためになされたものであり、溶出操作を必要とせず、従来技術に比べて操作が簡便で且つ高い測定感度を有する、固相担体を用いて物質を分離する方法を提供することを目的とする。
【0007】
【課題を解決するための手段】
上記課題を解決するために、本発明は、
固相担体を用いて、検体中に存在する所望の物質を分離する方法であって、
(1)固相担体に所望の物質を吸着させるステップ、
(2)前記固相担体を洗浄するステップ、及び
(3)前記固相担体を溶解せしめるステップ
を具備する方法を提供する。
【0008】
【発明の実施の形態】
本発明は、固相担体を用いて、検体中に存在する所望の物質を分離する方法に関する。
【0009】
本方法は、担体に吸着した被検物質を担体から分離するために、従来の溶出操作に代えて、担体自体を溶解せしめる操作を用いることを特徴とする。
【0010】
本方法の概要は、図1のとおりである。
【0011】
まず、分離すべき成分(図中〜)を含有する検体と固相担体(○)を混合する(ステップ1)。該成分と固相担体は、特異的に結合する(ステップ2)。続く洗浄操作によって、固相担体に結合しなかった不要な成分(□)を除去する(ステップ3)。続いて、担体を溶解し(ステップ4)、必要に応じてそのまま検出操作を行う(ステップ5)。
【0012】
本発明の方法の特徴である溶解操作には、検体中で安定で、且つ適当な条件を選択して容易に溶解させ得る担体が必須である。とりわけ、被検物質が生体成分である場合は、一般に変性、失活しやすいので、生体成分に実質的に影響を与えないような比較的温和な溶解条件を用いなければならない
従来、固相担体としては、ゼラチン、アラビアゴム、シリカ粒子等が用いられてきたが、従来の担体は、検体中での安定性を増大させるために、安定な素材から構成されていたり、架橋処理等の安定化処理が施されている。このため、従来の担体は容易に溶解せず、本発明の方法に適用するには適していない。
【0013】
これに対し、本発明者は、低濃度の界面活性剤を含有する水溶液中においては、架橋されていないゼラチン担体であっても長時間安定に存在し得ること、及び該非架橋担体は、高温下(95℃、2分)又はpH10以上の溶液中で容易に溶解することを見出した。該非架橋ゼラチン担体は、本発明に用いるのに適している。
【0014】
本発明は、本発明者によって見出された上記知見に基づいてなされたものである。しかしながら、本発明の技術的思想は、あくまでも溶出操作に代えて溶解操作を用いる点に存することに留意しなければならない。すなわち、用いる担体の種類及び溶解条件は、分離すべき物質の種類に応じて、本発明を実施する者が適宜選択することができる。
【0015】
本発明の方法は、任意の検体中の任意の物質を分離するのに使用し得る。とりわけ、本発明の方法は、生体成分を分離するのに適している。
【0016】
本明細書において、「検体」とは、本発明の方法を用いて分離される物質を含有する試料を意味する。従って、「検体」には、血液、尿、唾液、消化管液、生検組織、生細胞等の生体試料が含まれ得るが、生体試料に限定されない。
【0017】
本明細書において、「生体成分」とは、動物、植物、微生物、ウイルス等の生物中に存在し得る成分であって、▲1▼組織、細胞、細胞内小器官、微生物、ウイルス等の細胞及び組織、▲2▼核酸、抗体・酵素のようなタンパク質、ペプチド、多糖類等の高分子、▲3▼単糖類、脂質、ビタミン、低分子ホルモンの低分子が含まれる。また、「生体成分」は、生物中に存在する天然物質に限られない。従って、アレルゲン、ウイルス、細菌等の侵入物質、体内に投与又は吸収された医薬品、人工物質等も本明細書にいう「生体成分」に含まれ得る。
【0018】
本発明の方法では、所望の被検物質を選択的に吸着し、且つ所望の条件下で溶解させ得る任意の固相担体を用いることができる。
【0019】
担体に被検物質を吸着させるためには、固相担体に検体を添加すればよい。通常は、固相担体を含有する溶液中に検体を添加する。
【0020】
本明細書で、「固相担体」とは、所望の物質に対する吸着能を有し、且つ該物質を吸着させるステップにおいて、安定な固相を形成しているとともに、後述するような溶解方法によって、上述した生体成分の所要の生物学的作用を損なうことなく溶解し得る物質をいう。
【0021】
物質を分離するために用いられる固相担体は、当業者に周知であって、様々な担体が市販されている。本発明に用いるのに適した担体には、ゼラチン、寒天、ポリアクリルアミドなどのゲル、ゼラチンとアラビアゴムの混合物、アガロース、デキストラン類等の多糖類がある。
【0022】
固相担体としては、ゼラチンが多用されているが、安定性を増大せしめるために、市販の担体用ゼラチンには、架橋処理等の安定化処理がなされている。従って、本発明の方法に用いる場合、架橋処理のような安定化処理を行わずに担体を調製するか、又は市販の担体中の安定化処理を除去することが好ましい。ゼラチンとアラビアゴムを主成分とする担体の調製法が、例えば特開平1-25060に開示されている。
【0023】
所望の物質を特異的に吸着し得るようにするために、担体表面の修飾を行うこともできる。修飾を行う場合には、担体形成中、好ましくは粒子形成の終了直前に、表面処理に必要な成分をゆっくり添加する。
【0024】
例えば、吸着すべき物質が核酸である場合には、SiO2、ポリエチレン−イミン(PEI)、SiO2/Na2O等を用いることができる。細胞を吸着させる場合、CAM(細胞接着分子)、レクチン等を使用し得る。
【0025】
また、吸着すべき物質の性状に応じて、帯電した物質、脂溶性物質によって表面処理してもよい。
【0026】
さらに、特定の物質のみを選択的に吸着せしめるために、抗体又は抗体断片、抗原、受容体、核酸プローブ等を担体に添加してもよい。
【0027】
本方法では、担体に所望の物質を吸着させた後に、洗浄操作を行う。該操作は、従来法の洗浄操作と同様であり、複数回反復することが望ましい。
【0028】
洗浄液の除去を容易になし得るようにするために、固相担体には磁気を持たせてもよい。これにより、磁石に担体を付着させて、洗浄液を容易に除去できる。磁気を帯びた担体を調製するには、担体の形成中に磁気を帯びた微粒子を添加すればよい。磁気粒子としては、フェリコロイド等を利用し得るが、これに限定されない。
【0029】
担体を溶解させる方法は、用いる担体及び測定すべき物質の種類に応じて決定し得る。溶解方法には、pHを変化させること、界面活性剤、有機溶媒等の化学物質の添加、担体を特異的に分解し得る酵素の添加等の化学的方法、検体の温度、浸透圧、イオン強度を変化させること、超音波処理、電磁波の照射等の物理的方法が含まれるが、これらに限定されない。但し、溶解条件は、分離した物質の使用目的に応じて、目的に必要な性質が損なわれないように選択するべきである。例えば、使用目的が臨床検査である場合、核酸については、95℃以下、好ましくは60〜80℃で溶解できる担体を用いるとよく、同様に、抗原や抗体としての蛋白については60℃以下、酵素については50℃以下で溶解できる担体を用いるとよい。
【0030】
必要であれば、本方法で分離した物質は、さらに精製してもよい。
【0031】
また、本発明の方法で物質を分離した後、同じ容器中に各種検出用試薬を添加して所定の反応条件下に置くことによって、該物質を検出する操作、又はPCR等によって増幅する操作等を行ってもよい。
【0032】
本方法によれば、最終的に担体は分解されるため、本方法の終了時には、該担体は吸着能力を喪失する。このため、本方法の操作終了後にそのまま検出操作等を行っても、検出試薬等が担体に吸着されることによる妨害が生じない。従って、本発明の分離操作の後に、さらなる操作を行う場合には、担体を除去するステップを省略し得る。ここで、担体を溶解した分離後の溶液は、そのまま、所要量を分取して別の容器等へ移して検出その他の操作を行うようにしてもよい。また、臨床検査における各種反応条件(温度、pH等)が担体を溶解させる条件に当てはまるように担体又は反応の種類を選択することにより、担体の溶解工程を検査中に行うようにして処理効率を高めることもできる。
【0033】
以下本発明の方法の実施例を詳述する。
【0034】
実施例1
本実施例では、固相担体として、ゼラチンとアラビアゴムを主体とした磁性粒子を用いることにより、試料中のRNAを抽出した。
【0035】
ゼラチン担体の作成方法は、特開平1-25060に詳述されており、基本的に、該記述に基づいて作成した。ただし、本実施例では、担体を容易に分解させるためグルタルアルデヒド、ホルムアルデヒドによる架橋処理、及びフォルマリンによる固定化は行わなかった。
【0036】
また、本実施例では、担体に磁性をもたせるために、粒子形成過程においてフェリコロイド(タイホー工業株式会社、W-40)を加えて磁気反応性を加えた。
【0037】
担体表面の修飾を行う場合には、粒子形成過程における0.2mol/L酢酸の添加中に、表面処理に必要な成分をゆっくり加えた。RNAを選択的に吸着するために、本実施例では、キチン、キトサン、ポリエチレン−イミン、及び種々の濃度のSiO2を添加した。
【0038】
該磁気粒子担体の対照としては、表面にシリカが結合した磁性粒子試薬(東洋紡績株式会社、MagExtractor RNA)を、添付文書に従って使用した。
【0039】
試料には、10μg/mLのヒト血清アルブミン(Sigma No.A-1653)を含有する溶液又は含有しない溶液に、1μg/mLに調整したRNA(Worthington Biochemical, cat# 3452)を懸濁したものを用いた。蒸留水に懸濁した5%(V/V)の前記磁性粒子100μLとRNA懸濁液900μLとを混合して、室温で5分間インキュベートした。
【0040】
磁性粒子を磁石で試験管の壁面に吸着させ、1mLの10mM Tris緩衝液/0.2% Tween 20によって、粒子を3回洗浄した。その後、100μLの10mM Tris緩衝液/0.2% Tween 20溶液を加え、粒子を懸濁した後、90〜95℃で1分間処理して粒子を溶解させた。このように、高温で短時間に溶解する担体を用いれば、核酸分析におけるPCR反応の昇温時に、分離した核酸を担体から外すことができる点で好ましい。溶解前の粒子と溶解後の粒子の写真をそれぞれ図2及び図3に示す。
【0041】
図から明らかなように、溶解前前には球状の担体が存在しているが(図2)、溶解後(図3)にはこれらが完全に消失している。担体中の磁性体は、比重が高いのでまもなく沈積するが、必要ならば、反応中及び/又は測定中に容器の底面又は側面に磁力を作用させて磁性体を集めてもよい。特に、反応のための攪拌時に磁性体を集めるのが好ましい。場合によっては、磁性体のみを容器の外へ磁石等により磁気的に除去してもよい。
【0042】
分光光度計の紫外吸収を測定することにより、溶解液中に含まれるRNA濃度の定量を行い、核酸の回収率を求めた。結果を図4に示す。
【0043】
図4から明らかなように、表面処理が施されていない粒子、及びPEI、SiO2で処理された粒子によって、60〜70%のRNAを回収することができた。該データは、担体に吸着していたRNAが、分離操作によって溶液中に溶出したことを示している。該結果は、加熱処理によって担体が分解されたことを実証するものである。
【0044】
本実施例で用いた担体のうち表面処理が施されていない粒子、及びPEI、SiO2によって表面処理された粒子は、市販のMagExtractorよりも著しく高いRNA回収率を示した。対照(MagExtractor)とは担体の種類が異なるので、断定はできないが、担体を直接分解することによってRNAの回収率が増大したことも寄与していると推測される。
【0045】
PEI及びSiO2処理によって、RNAの吸着能は増大しなかった。アルブミンの存在下では、SiO2処理、表面未処理粒子ともに回収率が減少した。これらの結果は、本実施例の担体が特異的にRNAを吸着し得なかったことを意味する。
【0046】
キチン及びキトサンは、RNA吸着能を有すると報告されていたが、本実施例においては、逆にRNAの吸着を妨げた。しかし、該事実は、担体表面の状態がRNAの吸着に大きな影響を与えることを明確に示している。
【0047】
また、本発明の方法では、検出前の液相分離操作(すなわち、検体中から担体を除去する操作)が一切不要なので、対照(MagExtractor)に比べて、操作時間が3/4程度に短縮されることが明らかとなった。
【0048】
なお、本実施例で用いた固相担体は、4℃で保存した場合、約6ヶ月経過した後でも表面形質、粒子形状ともに大きく変化しなかった。
【0049】
以上のように、本実施例により、被検物質が吸着した担体そのものを分解することによって物質の分離を行い得ることが実証された。
【0050】
【発明の効果】
本発明による固相を用いた物質の分離方法では、固相自体を分解するので、従来法で必要とされた吸着した物質を固相から溶出させる操作が不要である。従って、本発明は、従来法に比べて操作が簡便であるという効果を有する。
【0051】
また、固相自体を分解することによって、固相に吸着された物質を固相から完全に溶出することができる。このため、本発明の方法は、従来法に比べて高い測定感度を有し得る。
【0052】
本発明の分離方法では最終的に担体が分解されるので、分離後さらに検出操作を行う場合に、担体を除去する操作を省略し得る。それ故、本発明の方法は、操作が簡便である。また、担体除去操作での試料の移し替えが不要なので、用いる容器の数を減らすことができる。特に、使い捨て容器を用いる場合には、省資源化を図ることが可能である。試料の移し替えによってもたらされる物質のロスがなくなることにより、さらに感度が上昇するという効果も存する。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明の方法の概略を示す図。
【図2】分解前の担体の写真を表す図。
【図3】分解後の担体の写真を表す図。
【図4】本発明の方法を用いた実施例の結果を示す図。
[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for separating a substance in a specimen using a solid phase carrier.
[0002]
[Prior art]
A method of separating a substance using a solid phase carrier is highly versatile, and is widely used for separating, purifying, and detecting various substances in fields such as clinical examinations.
[0003]
Conventional methods include (1) an operation for adsorbing a desired substance on a carrier, (2) an operation for washing the carrier (B / F separation operation), and (3) an operation for eluting the substance from the carrier, and further if necessary. Accordingly, {circle over (4)} consists of an operation for removing the carrier from the specimen.
[0004]
For example, Japanese Patent Application Laid-Open No. 09-019292 discloses a method for separating nucleic acids using magnetic silica particles. In this method, only magnetic silica particles adsorbed with nucleic acids are collected by a magnet, whereby nucleic acids are collected from a specimen. Isolate. Also in this method, after collecting the particles with a magnet, an operation of washing the particles a plurality of times (B / F separation operation) and an operation of eluting the nucleic acid adsorbed on the particles from the particles are essential.
[0005]
As described above, in the conventional method of separating a substance using a solid phase carrier, the nucleic acid cannot be used while the nucleic acid is adsorbed on the carrier, so the substance adsorbed on the solid phase carrier is eluted to remove the carrier. Operation was necessary. However, since the substance is fixed in the gap between the solid phase carriers, it is difficult to completely elute the substance in the elution operation. Therefore, if the elution operation exists, the measurement sensitivity decreases.
Furthermore, in the conventional method, when a component (such as an enzyme for detection) that is easily adsorbed on the solid phase carrier is added after the elution step, the influence of the component adsorbed on the solid phase carrier is removed. In addition, it was necessary to completely remove the solid phase carrier from the specimen. In such a case, the operation of transferring the specimen to another reaction container after the elution operation is unavoidable, and there is a drawback that many consumables must be used.
[0006]
[Problems to be solved by the invention]
The present invention has been made in order to overcome such disadvantages existing in the prior art, does not require an elution operation, and is simpler in operation and has a higher measurement sensitivity than the prior art. It aims at providing the method of isolate | separating a substance using.
[0007]
[Means for Solving the Problems]
In order to solve the above problems, the present invention provides:
A method for separating a desired substance present in a specimen using a solid phase carrier,
(1) adsorbing a desired substance on a solid phase carrier;
There is provided a method comprising (2) washing the solid phase carrier, and (3) dissolving the solid phase carrier.
[0008]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for separating a desired substance present in a specimen using a solid phase carrier.
[0009]
This method is characterized by using an operation of dissolving the carrier itself in place of the conventional elution operation in order to separate the test substance adsorbed on the carrier from the carrier.
[0010]
The outline of this method is as shown in FIG.
[0011]
First, a specimen containing a component to be separated (in the figure) and a solid phase carrier (◯) are mixed (step 1). The component and the solid phase carrier are specifically bound (step 2). In the subsequent washing operation, unnecessary components (□) that have not been bound to the solid support are removed (step 3). Subsequently, the carrier is dissolved (step 4), and the detection operation is performed as it is (step 5).
[0012]
In the dissolution operation that is a feature of the method of the present invention, a carrier that is stable in a specimen and that can be easily dissolved by selecting appropriate conditions is essential. In particular, when the test substance is a biological component, it is generally easy to denature and deactivate, so it is necessary to use a relatively mild dissolution condition that does not substantially affect the biological component. Gelatin, gum arabic, silica particles, etc. have been used as conventional carriers, but conventional carriers are made of stable materials or stabilized by crosslinking treatment, etc. in order to increase the stability in the specimen. Processing has been applied. For this reason, conventional carriers do not dissolve easily and are not suitable for application to the method of the present invention.
[0013]
On the other hand, the present inventor has found that an uncrosslinked gelatin carrier can exist stably for a long time in an aqueous solution containing a low concentration of a surfactant, and that the non-crosslinked carrier is (95 ° C., 2 minutes) or found to dissolve easily in a solution of pH 10 or higher. The non-crosslinked gelatin carrier is suitable for use in the present invention.
[0014]
This invention is made | formed based on the said knowledge discovered by this inventor. However, it should be noted that the technical idea of the present invention is to use a dissolution operation instead of an elution operation. That is, the type of the carrier to be used and the dissolution conditions can be appropriately selected by those who carry out the present invention, depending on the type of substance to be separated.
[0015]
The methods of the invention can be used to separate any material in any sample. In particular, the method of the present invention is suitable for separating biological components.
[0016]
As used herein, “specimen” means a sample containing a substance to be separated using the method of the present invention. Therefore, the “specimen” may include biological samples such as blood, urine, saliva, digestive tract fluid, biopsy tissue, and living cells, but is not limited to biological samples.
[0017]
In the present specification, the “biological component” is a component that can exist in an organism such as an animal, a plant, a microorganism, or a virus, and (1) a cell such as a tissue, a cell, an organelle, a microorganism, or a virus. And tissues, (2) proteins such as nucleic acids, antibodies and enzymes, peptides, macromolecules such as polysaccharides, (3) small molecules such as monosaccharides, lipids, vitamins, and low molecular hormones. Further, the “biological component” is not limited to natural substances existing in living organisms. Therefore, invading substances such as allergens, viruses, and bacteria, pharmaceuticals administered or absorbed into the body, artificial substances, and the like can also be included in the “biological component” referred to in this specification.
[0018]
In the method of the present invention, any solid phase carrier capable of selectively adsorbing a desired test substance and dissolving it under desired conditions can be used.
[0019]
In order to adsorb the test substance on the carrier, the sample may be added to the solid phase carrier. Usually, the specimen is added to a solution containing a solid phase carrier.
[0020]
In the present specification, the “solid phase carrier” has an ability to adsorb a desired substance, and forms a stable solid phase in the step of adsorbing the substance, and is dissolved by a dissolution method as described later. Refers to a substance that can be dissolved without impairing the required biological action of the above-mentioned biological components.
[0021]
Solid phase carriers used for separating substances are well known to those skilled in the art, and various carriers are commercially available. Suitable carriers for use in the present invention include gelatin, agar, gels such as polyacrylamide, mixtures of gelatin and gum arabic, polysaccharides such as agarose and dextrans.
[0022]
Gelatin is frequently used as the solid phase carrier, but in order to increase stability, commercially available gelatin for carrier is subjected to stabilization treatment such as crosslinking treatment. Accordingly, when used in the method of the present invention, it is preferable to prepare a support without performing a stabilization treatment such as a crosslinking treatment, or to remove the stabilization treatment in a commercially available carrier. A method for preparing a carrier mainly composed of gelatin and gum arabic is disclosed, for example, in JP-A-1-25060.
[0023]
In order to be able to specifically adsorb a desired substance, the support surface can be modified. In the case of modification, components necessary for the surface treatment are slowly added during carrier formation, preferably just before the end of particle formation.
[0024]
For example, if the substance to be adsorbed is a nucleic acid, SiO 2, polyethylene - imine (PEI), it can be used an SiO 2 / Na 2 O or the like. When cells are adsorbed, CAM (cell adhesion molecule), lectin or the like can be used.
[0025]
Further, depending on the properties of the substance to be adsorbed, surface treatment may be performed with a charged substance or a fat-soluble substance.
[0026]
Furthermore, in order to selectively adsorb only a specific substance, an antibody or antibody fragment, an antigen, a receptor, a nucleic acid probe, or the like may be added to the carrier.
[0027]
In this method, a washing operation is performed after a desired substance is adsorbed on the carrier. This operation is the same as the conventional washing operation, and it is desirable to repeat the operation a plurality of times.
[0028]
In order to easily remove the cleaning liquid, the solid phase carrier may be magnetized. As a result, the cleaning liquid can be easily removed by attaching the carrier to the magnet. In order to prepare a magnetic support, magnetic fine particles may be added during the formation of the support. As the magnetic particles, ferricolloid or the like can be used, but is not limited thereto.
[0029]
The method for dissolving the carrier can be determined depending on the carrier used and the type of substance to be measured. Dissolution methods include chemical methods such as changing pH, addition of chemicals such as surfactants and organic solvents, addition of enzymes that can specifically degrade the carrier, temperature of the specimen, osmotic pressure, ionic strength, etc. However, it is not limited to physical methods such as changing the frequency, sonication, and electromagnetic wave irradiation. However, the dissolution conditions should be selected according to the purpose of use of the separated substance so that the properties necessary for the purpose are not impaired. For example, when the purpose of use is a clinical test, for nucleic acids, a carrier that can be dissolved at 95 ° C. or lower, preferably 60-80 ° C. may be used. Similarly, for proteins as antigens and antibodies, As for, it is preferable to use a carrier that can be dissolved at 50 ° C or lower.
[0030]
If necessary, the material separated by this method may be further purified.
[0031]
In addition, after separating the substance by the method of the present invention, by adding various detection reagents in the same container and placing them under predetermined reaction conditions, an operation for detecting the substance, an operation for amplifying by PCR, etc. May be performed.
[0032]
According to this method, the carrier is eventually decomposed, so that at the end of the method, the carrier loses its adsorption capacity. For this reason, even if the detection operation or the like is performed as it is after the operation of the present method is completed, no interference occurs due to the detection reagent or the like adsorbed on the carrier. Therefore, the step of removing the carrier can be omitted when further operations are performed after the separation operation of the present invention. Here, the separated solution in which the carrier is dissolved may be collected as it is and transferred to another container or the like for detection and other operations. In addition, by selecting the carrier or the type of reaction so that various reaction conditions (temperature, pH, etc.) in the clinical test are applicable to the conditions for dissolving the carrier, the dissolution process of the carrier can be performed during the test to improve the processing efficiency. It can also be increased.
[0033]
Examples of the method of the present invention are described in detail below.
[0034]
Example 1
In this example, RNA in a sample was extracted by using magnetic particles mainly composed of gelatin and gum arabic as a solid phase carrier.
[0035]
A method for producing a gelatin carrier is described in detail in JP-A-1-25060, and was basically produced based on the description. However, in this example, in order to easily decompose the carrier, crosslinking treatment with glutaraldehyde and formaldehyde and immobilization with formalin were not performed.
[0036]
In this example, in order to give magnetism to the carrier, ferricolloid (Taiho Industry Co., Ltd., W-40) was added in the particle formation process to add magnetic reactivity.
[0037]
When modifying the support surface, components necessary for the surface treatment were slowly added during the addition of 0.2 mol / L acetic acid during the particle formation process. In this example, chitin, chitosan, polyethylene-imine, and various concentrations of SiO 2 were added to selectively adsorb RNA.
[0038]
As a control for the magnetic particle carrier, a magnetic particle reagent (Toyobo Co., Ltd., MagExtractor RNA) having silica bonded to its surface was used according to the package insert.
[0039]
Samples were prepared by suspending RNA (Worthington Biochemical, cat # 3452) adjusted to 1 μg / mL in a solution containing or not containing 10 μg / mL human serum albumin (Sigma No. A-1653). Using. 100 μL of 5% (V / V) magnetic particles suspended in distilled water and 900 μL of RNA suspension were mixed and incubated at room temperature for 5 minutes.
[0040]
The magnetic particles were adsorbed on the wall of the test tube with a magnet, and the particles were washed 3 times with 1 mL of 10 mM Tris buffer / 0.2% Tween 20. Thereafter, 100 μL of 10 mM Tris buffer / 0.2% Tween 20 solution was added to suspend the particles, and then treated at 90 to 95 ° C. for 1 minute to dissolve the particles. Thus, it is preferable to use a carrier that dissolves at a high temperature in a short time because the separated nucleic acid can be removed from the carrier when the temperature of the PCR reaction in nucleic acid analysis is elevated. Photographs of the particles before dissolution and the particles after dissolution are shown in FIGS. 2 and 3, respectively.
[0041]
As is apparent from the figure, spherical carriers exist before dissolution (FIG. 2), but these completely disappear after dissolution (FIG. 3). The magnetic substance in the carrier is deposited soon because of its high specific gravity. If necessary, the magnetic substance may be collected by applying a magnetic force to the bottom surface or side surface of the container during the reaction and / or measurement. In particular, it is preferable to collect the magnetic substance during stirring for the reaction. In some cases, only the magnetic material may be magnetically removed out of the container with a magnet or the like.
[0042]
By measuring the ultraviolet absorption of the spectrophotometer, the RNA concentration contained in the lysate was quantified to determine the nucleic acid recovery rate. The results are shown in FIG.
[0043]
As is apparent from FIG. 4, 60 to 70% of RNA could be recovered by the particles not subjected to the surface treatment and the particles treated with PEI and SiO 2 . The data shows that the RNA adsorbed on the carrier was eluted in the solution by the separation operation. The results demonstrate that the support was decomposed by heat treatment.
[0044]
Among the carriers used in this example, particles that were not surface-treated and particles that were surface-treated with PEI and SiO 2 showed significantly higher RNA recovery rates than commercially available MagExtractor. Since the type of carrier is different from that of the control (MagExtractor), it cannot be determined, but it is presumed that the increase in the recovery rate of RNA by directly decomposing the carrier also contributed.
[0045]
PEI and SiO 2 treatment did not increase RNA adsorption capacity. In the presence of albumin, the recovery rate decreased for both the SiO 2 -treated and surface untreated particles. These results mean that the carrier of this example could not adsorb RNA specifically.
[0046]
Chitin and chitosan were reported to have RNA adsorbing ability, but in the present example, RNA adsorption was conversely prevented. However, this fact clearly shows that the state of the support surface has a great influence on the adsorption of RNA.
[0047]
In addition, since the liquid phase separation operation before detection (that is, the operation for removing the carrier from the sample) is unnecessary in the method of the present invention, the operation time is reduced to about 3/4 compared to the control (MagExtractor). It became clear.
[0048]
In addition, when the solid support used in this example was stored at 4 ° C., neither the surface character nor the particle shape changed significantly even after about 6 months.
[0049]
As described above, it was demonstrated by the present example that the substance can be separated by decomposing the carrier itself adsorbed by the test substance.
[0050]
【The invention's effect】
In the method for separating a substance using a solid phase according to the present invention, since the solid phase itself is decomposed, an operation for eluting the adsorbed substance required in the conventional method from the solid phase is unnecessary. Therefore, the present invention has an effect that the operation is simpler than the conventional method.
[0051]
Further, by decomposing the solid phase itself, the substance adsorbed on the solid phase can be completely eluted from the solid phase. For this reason, the method of the present invention can have higher measurement sensitivity than the conventional method.
[0052]
Since the carrier is finally decomposed in the separation method of the present invention, the operation for removing the carrier can be omitted when a detection operation is further performed after the separation. Therefore, the method of the present invention is simple to operate. In addition, since it is not necessary to transfer the sample in the carrier removal operation, the number of containers used can be reduced. In particular, when a disposable container is used, it is possible to save resources. There is also an effect that sensitivity is further increased by eliminating the loss of material caused by sample transfer.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a diagram showing an outline of a method of the present invention.
FIG. 2 is a view showing a photograph of a carrier before decomposition.
FIG. 3 is a view showing a photograph of the carrier after decomposition.
FIG. 4 is a graph showing the results of an example using the method of the present invention.

Claims (5)

固相担体を用いて、検体中に存在する所望の物質を分離する方法であって、
(1)固相担体に所望の物質を吸着させるステップ、
(2)前記固相担体を洗浄するステップ、及び
(3)前記固相担体を溶解せしめるステップ
を具備する方法。
A method for separating a desired substance present in a specimen using a solid phase carrier,
(1) adsorbing a desired substance on a solid phase carrier;
(2) A method comprising a step of washing the solid phase carrier, and (3) a step of dissolving the solid phase carrier.
請求項1に記載の方法であって、前記固相担体が、ゼラチン、アラビアゴム、及びそれらの混合物の何れかであることを特徴とする方法。2. The method according to claim 1, wherein the solid phase carrier is any one of gelatin, gum arabic, and a mixture thereof. 請求項1又は2に記載の方法であって、固相担体を溶解せしめる手段が、pHの変化、温度の変化、電磁波の照射、及び超音波処理の中の少なくとも1つから選択されることを特徴とする方法。3. The method according to claim 1, wherein the means for dissolving the solid phase carrier is selected from at least one of pH change, temperature change, electromagnetic wave irradiation, and ultrasonic treatment. Feature method. 請求項1〜3の何れか1項に記載の方法であって、前記物質が核酸であることを特徴とする方法。The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the substance is a nucleic acid. 請求項1〜4の何れか1項に記載の方法であって、前記固相担体の表面が、前記所望の物質を特異的に吸着し得る成分によって処理されていることを特徴とする方法。5. The method according to claim 1, wherein the surface of the solid phase carrier is treated with a component capable of specifically adsorbing the desired substance.
JP08250899A 1999-03-25 1999-03-25 Separation method using solid support Expired - Fee Related JP4067684B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP08250899A JP4067684B2 (en) 1999-03-25 1999-03-25 Separation method using solid support

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP08250899A JP4067684B2 (en) 1999-03-25 1999-03-25 Separation method using solid support

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2000275227A JP2000275227A (en) 2000-10-06
JP4067684B2 true JP4067684B2 (en) 2008-03-26

Family

ID=13776465

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP08250899A Expired - Fee Related JP4067684B2 (en) 1999-03-25 1999-03-25 Separation method using solid support

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP4067684B2 (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4045475B2 (en) * 1999-09-06 2008-02-13 東洋紡績株式会社 Nucleic acid / protein purification equipment

Also Published As

Publication number Publication date
JP2000275227A (en) 2000-10-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2582352B2 (en) High-speed analysis processor
JP4758341B2 (en) Chromatographic detector, inspection method and kit using the same
EP1674571B1 (en) Use of paramagnetic material in the purification and manipulation of nucleic acids
JP3527884B2 (en) Method and apparatus for isolating and purifying nucleic acid
JP2564335B2 (en) Method for isolating and purifying nucleic acids from biological samples
JP4783016B2 (en) Magnetic transfer method, micron transfer device and reactor unit
CN106457196B (en) The operating method and magnetisable material particle manipulation device of magnetisable material particle
JP2005118041A (en) Method for isolating nucleic acid
US6846648B2 (en) Method for the rapid detection of whole microorganisms on retaining membranes by use of chaotropic agents
US10941394B2 (en) Device for manipulating magnetic particles and method for manipulating magnetic particles
RU2239192C2 (en) Method for improved sticking of magnetic particles out of biological liquids to magnetic probe, method for their isolation out of biological liquids due to magnetic probe and method for purification of biological liquids
US6958372B2 (en) Magnetic, silanised polyvinylalcohol-based carrier materials
MXPA06001646A (en) Sample preparation methods and devices.
JPH09327291A (en) Extraction and purification of rna
RU2001123422A (en) CLEANING METHOD USING MAGNETIC PARTICLES
CN103502807B (en) For method and apparatus prepared by sample
JP3812696B2 (en) Ribonucleic acid extraction method
JP7035316B2 (en) Device for manipulating magnetic particles
WO2014144209A1 (en) One-step procedure for the purification of nucleic acids
JP3587052B2 (en) Biological sample pretreatment method and apparatus therefor
WO2015177934A1 (en) Method for operating magnetic body particles and device for operating magnetic body particles
JP4067684B2 (en) Separation method using solid support
Šafarík et al. Overview of magnetic separations used in biochemical and biotechnological applications
JP2007006728A (en) Coated inorganic particle and its utilization
EP0741141A2 (en) Method of purifying ologonucleotide from biological samples

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20060324

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20071219

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20071225

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20080109

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110118

Year of fee payment: 3

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110118

Year of fee payment: 3

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110118

Year of fee payment: 3

R154 Certificate of patent or utility model (reissue)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R154

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120118

Year of fee payment: 4

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130118

Year of fee payment: 5

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees