JP3984402B2

JP3984402B2 - フコイダン様多糖複合体の製造方法及びそれを主成分とする免疫賦活剤

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Publication number: JP3984402B2
Application number: JP2000052396A
Authority: JP
Inventors: 明池見; 信藤井
Original assignee: 株式会社マルイ物産
Priority date: 1999-10-12
Filing date: 2000-02-28
Publication date: 2007-10-03
Anticipated expiration: 2020-02-28
Also published as: JP2001181303A

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明はワカメのメカブから得るフコイダン様多糖複合体の製造方法及びそれを主成分とする免疫賦活剤に関し、更に詳しくは、変異細胞の除去により組織の癌化を防ぐナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性の亢進と、進入異物等を除去し免疫成立の重要な一員であるマクロファージ（Ｍφ）貧食能の亢進活性により、生体防御能賦活活性を向上させるフコイダン様多糖複合体を低原価で量産できる製造方法、及びそれを有効成分とした免疫賦活剤に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
現在、日本は世界でも有数の海藻生産国でもあり、消費国でもある。海藻には栄養上有益であるだけでなく、特殊な生物活性が種々あることが明らかにされている。従って、従来より海藻は食用、あるいは民間薬として用いられており、特に、褐藻類に含まれる硫酸化多糖であるフコイダンは、抗血液凝固作用、脂血清澄作用、抗腫瘍作用、抗エイズウィルス感染作用等の様々な生理活性が報告され、極めて有用な医薬品として注目されている。
【０００３】
一方、海藻のうちワカメは、血液のコレステロールを正常に保ったり、免疫能を賦与して、ある種の腫瘍に抵抗性を示すなど、多様な機能を備えていることが明らかにされており、特に、ワカメの芽株には、ワカメの卵ともいえる遊走子が内在された胞子嚢が密生しており、また、その構成成分はカリウム・カルシウム・リン・鉄等のミネラル類やビタミンＡ・Ｂ１・Ｂ２・ナイアシン・Ｃ等のビタミン類が豊富に含まれており、その他微量ではあるが生命の維持及び栄養素として必要なミネラル、即ち、必須微量元素も含まれており、天然の総合保健薬、あるいは各種食品用素材として注目され、種々の研究開発が行われている。例えば、
ａ．特開平６−８０５８３号公報（以下、ａ号公報という）には、「抗ウィルス剤として用いるための繊維芽細胞成長因子及び硫酸化多糖を含有する共働性組成物」が開示されている。
ｂ．特開昭５８−１７４３２９号公報（以下、ｂ号公報という）には、海藻の水抽出物に第４級アンモニウム塩を作用させて得られる沈殿物を無機塩水溶液に可溶化し、後塩化カルシウム水溶液で分画する海藻由来抗腫瘍性硫酸化多糖体の製造法が開示されている。
ｃ．特開平５−２７１３０６号公報（以下、ｃ号公報という）には、ヒト及びネズミウイルス、特にヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）を含むＤＮＡ及びＲＮＡウイルスに対する広範囲の抗ウイルス活性を与える、紅藻植物網種に属する海生藻類により産生される新規硫酸化多糖類が開示されている。
ｄ．特開平８−９２３０３号公報（以下、ｄ号公報という）には、構成単糖がＡとＢであり、ＡはＬ−ガラクトース−６−硫酸もしくは３，６−アンヒドロ−Ｌ−ガラクトースでＢはＤ−ガラクトースもしくは６−Ｏ−メチル−Ｄ−ガラクトースであり、ＡとＢが交互に配列しており、Ａ→Ｂの結合様式がα１→３であり、Ｂ→Ａの結合様式がβ１→４であり、非還元末端を構成する単糖がＬ−ガラクトース−６−硫酸であり、構成単糖としてＬ−ガラクトース−６−硫酸を１分子中に２以上含有し、構成単糖の数が４〜５００の偶数である酸性糖、その製造方法およびそれを有効成分とする免疫賦活剤が開示されている。
ｅ．特公昭５９−１９５６１号公報（以下、ｅ号公報という）には、海藻由来のポリウロン酸にアシル化剤を作用させて得られるポリアシルウロン酸を還元剤を用いて還元後アシル基をアルカリ加水分解する新規抗腫瘍性物質の製造法が開示されている。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、上記従来の技術では、以下の課題を有していた。
ａ．主としてアガロースを基本骨格に持つ高分子の酸性多糖を主成分とするものであるので、これらの酸性多糖は粘性が高く取扱い性が困難である。
ｂ．時によっては強いゲルを形成するため、食品や飼料に混合した際に、塊りが生じ分散性に欠け混合斑が生じ易い。
ｃ．粘度が高く粉末化が困難なため、これ自体を経口、非経口投与に適するような剤形に製剤することは極めて困難である。
ｄ．粘稠なため製造工程での取扱いも難しく、操作が煩雑となり生産性に欠ける。
【０００５】
【課題を解決するための手段】
本発明は、上記従来の課題を解決するものであって、ウィルス感染や化学薬品等により変異を生じた自己細胞を殺し、組織の癌化を早期に防ぎ、病気の予防・健康維持に重要なナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性を亢進させ、進入異物等を除去し免疫成立の重要な一員であるマクロファージ（Ｍφ）貧食能を亢進させることにより、生体防御能賦活活性を向上させるとともに、肝障害軽減作用を有する生物活性に優れたフコイダン様多糖複合体を高収率でかつ低原価で量産できるワカメのメカブからのフコイダン様多糖複合体の製造方法の提供、及び消化器系での吸収性に優れ副作用のない免疫賦活剤の提供を目的とする。
【０００６】
本発明の請求項１に記載のフコイダン様多糖複合体の製造方法は、ワカメの芽株を海水または塩水で洗浄する洗浄工程と、前記洗浄工程で洗浄された芽株を低温乾燥させる又は凍結乾燥させる乾燥工程と、前記乾燥工程で乾燥された芽株を低温下で粉砕する粉砕工程と、芽株粉体に水を加えて加熱攪拌し抽出する抽出工程と、前記抽出工程で得られた抽出液を濾過した後、抽出液を乾燥して粉末フコイダン様多糖体を得る工程と、を備えた構成を有している。
これにより、以下の作用が得られる。
ａ．海水や塩水で洗浄したワカメの芽株を冷間乾燥後、低温乾式粉砕化されてなる芽株粉体から抽出されるので、ワカメの芽株を変質させることなくフコース及び／又はガラクトースを含有するフコイダン様多糖体を容易に抽出することができ、カリウム・カルシウム・リン・鉄等のミネラル類やビタミンＡ・Ｂ１・Ｂ２・ナイアシン・Ｃ等のビタミン類が豊富に含まれ、また、その他微量ではあるが生命の維持及び栄養素として必要なミネラル、即ち、必須微量元素が含まれるフコイダン様多糖複合体を低原価で量産できる。
ｂ．鉄分やカルシウム、マグネシウム、カリウム等のミネラルの含量が極めて多く、且つストレスの解消性を有し興奮を抑え、抗病性・免疫性を向上させることができる。
ｃ．フコイダン様多糖複合体中のフコース類等がナチュラルキラー細胞活性を有するので、ウィルス感染、化学薬品等により変異を生じた自己細胞を殺し、組織の癌化を早期に防ぐことができ、病気予防・健康維持を可能にすることができる。
ｄ．フコイダン様多糖複合体中のフコース類等が、マクロファージ貧食能亢進活性を有するので、非特異的に進入異物等を除去し、免疫成立、即ち、抗原提示に重要な機能を果たすことができる。
ｅ．フコイダン様多糖複合体中のフコース類等が生体防御能亢進活性を有するので、変異細胞の除去を通じて組織の癌化を防ぐナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性の亢進と、進入異物等を除去し、免疫成立の重要な一員であるマクロファージ（Ｍφ）貧食能の亢進活性を有する生体防御能を亢進させることができる。
ｆ．フコイダン様多糖複合体中のフコース等が、肝障害軽減作用を有するので、多種多様な特異的機能を有する代謝の中枢である肝臓における肝機能を亢進させ、もって、生体の機能を亢進させ、健康を維持することが可能となる作用を有する。
ｇ．芽株を海水等塩水で洗浄しているので、芽株が溶けるのを防止し、エキス分やミネラル分が溶出するのを防ぎ、更にフコイダン様多糖複合体の収率の低下を防止できる。
ｈ．凍結乾燥することにより、鉄分やカルシウム、マグネシウム、カリウム等のミネラルの含量が極めて多く、餌喰いを良くし成長作用に優れ、且つストレスの解消性を有し興奮を抑え、抗病性・免疫性を向上させることが可能となる。
【０００７】
本発明の請求項２に記載のフコイダン様多糖複合体の製造方法は、請求項１において、洗浄した後に乾燥させた前記前記芽株を水に戻す水戻し工程を備え、前記乾燥工程において、前記水戻し工程で得られた芽株を凍結乾燥させ、前記粉砕工程において、乾燥した芽株を低温下で粉砕する構成を有している。
これにより、請求項１で得られる作用に加え、以下のような作用が得られる。
ａ．一旦凍結した後に凍結乾燥すると、組織・細胞内に生じた氷の結晶（氷晶）がそのまま乾燥し、無数の極微小の穴があいた状態となり抽出効率・抽出効果が増大する。
【０００８】
本発明の請求項３に記載のフコイダン様多糖複合体の製造方法は、請求項１又は２において、前記抽出工程に先立ち、前記粉砕工程で得られた芽株粉体の脱脂を行う脱脂工程を備えた構成を有している。
これにより、請求項１又は２で得られる作用に加え、以下のような作用が得られる。
ａ．脱脂を行うので、タンパク質の分解ができ、フコイダン様多糖複合体をタンパク質から分離できるので、フコイダン様多糖複合体の収率を高めることができる。
【０００９】
本発明の請求項４に記載の免疫賦活剤は、請求項１乃至３の内いずれか１項に記載のフコイダン様多糖複合体の製造方法で得られたフコイダン様多糖複合体を有効成分とすることを特徴とする
これにより、変異細胞の除去を通じて組織の癌化を防ぐナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性の亢進と、進入異物等を除去し、免疫成立の重要な一員であるマクロファージ（Ｍφ）貧食能の亢進活性を有する生体防御能を亢進させることが可能な免疫賦活剤、例えば医薬品、機能性食品及び健康食品等を得ることができる。
【００１０】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を詳細に説明する。
ワカメの芽株の洗浄は、エタノール、メタノールの他、ｎ−プロパノール、イソプロパノール等の低級アルコール、アセトン等を使用しても構わない。
フコイダン様多糖複合体の精製法において、抽出時の塩酸の濃度は、０．１〜０．２Ｎあるいは、更に高濃度であっても構わない。
フコイダン様多糖複合体の精製法において、緩衝液中のＮａＣｌ濃度を１Ｍ，２Ｍと２段階に変化させて吸着画分を溶出させる方法、あるいは連続的に変化させて溶出させる方法等を用いても構わない。
【００１１】
フコイダン様多糖複合体を低分子化するのに、β−アガラーゼを用いる他、酸加水分解を行っても構わない。
陰イオン交換クロマトグラフィーにおいて、使用するイオン交換樹脂は特に限定されるものではない。例えば、ダイヤイオンＨＰＡ−７５（三菱化成製）、Ｑセファロース、ＱＡＥセファデックス（ファルアシア製）、ＴＳＫｇｅｌＳｕｐｅｒＱ−トヨパール、ＤＥＡＥ−トヨパール６５０（東ソー製）、ＤＥＡＥ−セルロファイン（生化学工業製）等を用いることができる。
【００１２】
緩衝液はリン酸塩系の他に、トリス系、クエン酸系、ホウ酸系等を使用することができる。
限外濾過膜は、市販のものを用いることができ、例えば、ウルトラフィルターＱ０１００、Ｐ０２００（東洋濾紙製）、ダイアフローメンブレンＹＭ５、ＹＭ１０、ＰＭ１０、ＹＭ３０、ＸＭ５０（アミコン製）、タイプＰＬＧＣ、タイプＰＬＣＣ、タイプＰＬＴＫ（ミリポア製）等を用いることができる。
また、逆浸透膜、イオン交換膜、透析膜等を、適宜使用することができる。
尚、限外濾過における他の条件は、特に限定されるものではない。
【００１３】
本発明で使用されるβ−アガラーゼとしては、例えば、シュードモナス・アトランティカ、サイトファーガ・エスピー、ビブリオ・エスピーＡＰ−２起源のβ−アガラーゼを挙げることができる。
フコイダン様多糖複合体を調製後、低分子化すると、免疫賦活能等の生体防御能亢進性が上昇するので好ましいが、特に限定されるものではない。
本発明に係るフコイダン様多糖複合体性は免疫賦活活性を有し、また、免疫賦活活性としてナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性、マクロファージ（Ｍφ）活性、抗腫瘍活性等が挙げられる。
【００１４】
本発明に係るフコイダン様多糖複合体を免疫賦活剤として用いる場合、経口投与に適用される錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤等は、製剤上一般に使用される結合剤、滑沢剤、賦形剤、崩壊剤、湿潤剤等の添加物を組成物中に含有しても構わない。
また、経口用液体剤として用いる場合は、内用水剤、振盪合剤、懸濁液剤、乳剤、シロップ剤の形態であっても良く、また使用前に再溶解させる乾燥生成物の形態であっても構わない。更に、液体製剤は、添加剤、保存剤等のいずれを含有していても構わない。
注射用の場合には、その組成物には安定剤、緩衝剤、保存剤、等張化剤等の添加物を含有しても良く、通常、単位投与量アンプル、又は多投与量容器の形態で提供される。
尚、上記組成物は、水溶液、懸濁液、溶液、油性又は水性ビヒクル中の乳液のような形態であってもよい。
【００１５】
本発明に係る免疫賦活剤は、人、例えば、免疫力が低下している人、特に高齢や疾病等により免疫機能が低下している人に経口又は非経口的に投与されるのが望ましい。また、動物にも使用される。尚、経口投与には、舌下投与が含まれ、非経口投与には、注射、例えば、皮下、筋肉、静脈注射、点滴等が含まれる。
本発明に係る免疫賦活剤中の有効成分固形物の量は種々変えることができるが、通常５〜１００％（ｗ／ｗ）、特に１０〜６０％（ｗ／ｗ）が適当である。
本発明に係る免疫賦活剤の投与量は、人や動物あるいは年齢、病状、個人差等により異なる。一般に、人の経口投与量は、活性成分固形物量として大人１日体重１ｋｇ当たり０．５〜１０００mg、好ましくは１〜３００mgであり、１回又は２回若しくは３回に分けて投与される。
【００１６】
また、本発明に係る免疫賦活剤の活性成分は、多量に摂取しても生体に悪影響を与えることはないので、そのまま、あるいは種々の栄養分等を加えて食品中に含有させ、免疫賦活活性の機能をもたせた機能性食品、健康食品等として使用しても構わない。
肝障害軽減作用の測定において、血中過酸化物量も、ＣＣｌ_４投与により増加するので測定した。
【００１７】
【実施例】
以下、実施例により本発明を更に詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
（実施例１）
〈芽株粉体の調整〉
ワカメの芽株を採取後海水で洗浄し、次いで、一昼夜天日乾燥し低温乾燥した。水分含量は６．２±０．５ｗｔ％であった。次いで、乾燥された芽株を石臼で低温粉砕を行った。粒径は３５〜１７０メッシュであった。これを試料として用いた。
〈フコイダン様多糖複合体ａの調整〉
芽株粉体試料１０Ｋｇを８０％エタノールで２回洗浄（各１００ｌを用いた）後、濾過した後、水を１７０ｌ加えた後、８５〜９０℃まで加熱し水抽出を行った。次いで４０〜５０℃に冷却した後、プロテアーゼを少量加え４時間攪拌した。次いで、８０〜９０℃に加熱し水抽出と同時にプロテアーゼを失活させた。次いで、フィルターで濾過した後、噴霧乾燥し、粗粉末フコイダン様多糖複合体を得た。収率は４５％であった。
【００１８】
〈フコイダン様多糖複合体ｂの調整〉
芽株粉体試料１０Ｋｇを８０％エタノールで２回洗浄する代わりに、水１５０ｌを加えて攪拌し、水抽出を行った他は、フコイダン様多糖複合体ａの調整と同様に行った。収率は６６％であった。
【００１９】
〈参考例１のフコイダン様多糖複合体ｃの調整〉
芽株粉体試料を９０％エタノール又はメタノールで洗浄して脱色低分子を除去した後、風乾させた。次いで、これに２０倍量の０．１ＮＨＣｌを加え、攪拌しつつ室温で約１０時間抽出した。その後、遠心分離により残渣を集めた。このようにして得られた残渣に１０倍量の０．１ＮＨＣｌを加え、一晩攪拌しつつ再抽出を行った。この塩酸抽出液に酢酸カルシウムあるいは塩化カルシウム溶液を加えてアルギン酸を沈殿させ、生じた沈殿を遠心分離で除去し、次いでＮａＯＨを用いて中和した。これを遠心分離し、得られた上清を濃縮した後、０．０１ＮＨＣｌに対して透析し、ＨＣｌ抽出多糖類とした。
このようにして得られたＨＣｌ抽出多糖類を凍結乾燥又は減圧濃縮により濃縮した後、０．０１ＮＨＣｌで透析し、０．０１ＮＨＣｌで平衡化したＤＥＡＥイオン交換セルロースカラムに供し、吸着画分を緩衝液中のＮａＣｌ濃度を０．２Ｍとしてタンパク部を溶出し、２．０Ｍとして活性画分を集めた。更に、０．５ＭＮａＣｌを流した後、２ＭＮａＣｌを流してフコイダン様多糖複合体を回収した。その後、溶離画分のタンパク量、糖含量を定量した。ここで、タンパク量の定量はＵＶ２８０吸収法により、また、糖の定量はフェノール硫酸法により行った。
続いて、活性を有する画分（２ＭＮａＣｌ活性画分）を集め、限外濾過膜により濃縮した。得られた画分のタンパク量、糖含量、及び活性測定を行い、活性画分を回収し、水透析を行った。
上記の操作で、分子量的に略均一な多糖画分が得られ、この画分を限外濾過膜により濃縮した後、透析し、次いで凍結乾燥を行って参考例１の精製粉末フコイダン様多糖複合体を得た。
【００２０】
〈参考例１のフコイダン様多糖複合体ｄの調整〉
参考例１のフコイダン様多糖複合体ｃをβ−アガラーゼを作用させて低分子化し、分子量が数１００ダルトンのものをセファチックスＧ−２５（ファルマシア製）ゲル濾過により集め、凍結乾燥して粉末状の参考例１のフコイダン様多糖複合体ｄを得た。
【００２１】
（参考例２）
〈フコイダン様多糖複合体ｅの調整〉
実施例１と同様にして、ワカメの芽株を乾燥させ、粉砕した後、脱色し、９０％エタノール又はメタノールで洗浄して低分子を除去した後、風乾させ、更に、実施例１と同様にして抽出を行った。
これに、２０倍量の０．２ＮＨＣｌを加えた後、遠心分離により残渣を集めた。沈殿に再度０．２ＮＨＣｌを加えて攪拌し、参考例１と同様にして抽出液を集めた。得られた抽出液をＮａＯＨで中和し、不溶物を遠心分離で除去した。
このようにして得られた多糖類溶液に３％セチルピリジニウムクロライドを加え、多糖類を不溶性沈殿とした。この沈殿に４Ｍ食塩水を加え、３７℃で可溶化した。これにエタノールを７５〜８０％となるように加え、多糖を沈殿させ、遠心分離により沈殿を集め、再び食塩水で可溶化した。上記の操作を繰り返した後、透析、凍結乾燥した。
【００２２】
〈フコイダン様多糖複合体ｆの調整〉
フコイダン様多糖複合体ｅをβ−アガラーゼを作用させて低分子化し、分子量が数１００ダルトンのものをセファチックスＧ−２５ゲル（ファルマシア製）濾過により集め、凍結乾燥して粉末状のフコイダン様多糖複合体ｆを得た。
【００２３】
（参考例３）
〈フコイダン様多糖複合体ｇの調整〉
芽株粉体試料に水を加えてもどした後に凍結し、凍結乾燥し、その後粉砕を行った。続いて、酸抽出により、フコイダンを抽出した。
多糖類は、アルギン酸が多く可溶化されるので、酢酸カルシウム等のカルシウム塩を加えてアルギン酸をカルシウム塩として除去した。この時、０．２〜０．５Ｎの塩酸で抽出を行うと、アルギン酸の抽出が低く抑えられ、好ましい。尚、かかる場合においても、カルシウム塩の添加は行い、アルギン酸の除去を行った。その後、０．０１Ｎ塩酸で透析し、過剰のカルシウム塩及び高濃度の塩酸を除去した後、０．０１Ｎ塩酸で洗浄しておいたＤＥＡＥ−イオン交換カラムに流し、吸着画分を食塩濃度を０．２Ｍで洗浄後、食塩濃度を２．０Ｍに上昇させて溶出した。
以下、参考例２と同様にして、フコイダン様多糖複合体ｇの調製を行った。
【００２４】
（実施例２）
各種分析値及び構造の推定
実施例１、参考例２及び参考例３で得られたフコイダン様多糖複合体は、水、水性緩衝液（ｐＨ１〜１３）、及び２０％以下の濃度の水溶性アルコールを含有する水性溶剤に可溶性であり、また、ベンゼン、クロロホルム、エチルエーテル、８％以上の濃度のメチルアルコール、エチルアルコールに不溶性であった。
各種分析を行った結果を表１に示す。
分析項目中、フコースは、Ｎｉｃｏｌｅｔ＆Ｓｈｉｎｎの方法（（１９４１）Ｊ．Ａｍｅｒｉ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ，６３，１４５６（４１））、ガラクトースは、Ｄｕｂａｉｃらの方法（（５６）Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．２８，３５０−（１９５６））の方法で測定し、全糖値に対する重量％として算出した。
ここで全糖値はフェノール硫酸法により、グルコースとして算出した。
硫酸基含量は、ＤａｄｇｓｅｎＰｒｉｃｅの方法（（１９６２）Ｂｉｏ．Ｃｈｅｍ．Ｊ．８４，１６６）で測定し、硫酸エステルとして算出した。
フコイダン様多糖複合体については、糖と硫酸組成より、フコイダンとみなすことができる。
【００２５】
【表１】

【００２６】
（実施例３）
ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性
生体防御に関わる細胞群中で、ウィルス感染、腫瘍細胞の除去に重要なナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性について測定した。
飼料は、市販標準飼料（日本農産工業、ＭＲストック）を使用し、これにワカメの芽株２％添加時と成分が同量になるように繊維としてセルロース、タンパク、食塩を添加した。コントロールには、理論値のＮａＣｌ，セルロース，タンパク（ガゼイン）を加えた。次いで、充分量の水を加えて練り、乾燥させた。
ＢＡＬＢ／ｃマウス（６週令、雄）を、３日間の予備飼育後、実験試料を混入した飼料を１０日間投与した。
【００２７】
ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）の調製
ＢＡＬＢ／ｃマウスの実験飼料投与期間終了の翌日に頸椎脱臼し、脾臓を得た。
ハンクス液を入れたデッシュ中で周囲結合組織を除き、その後、はさみで細切し、ＲＰＭＩ培地を加えながら、スチールメッシュを通し、細胞の浮遊液を得た。更に、目の細かいメッシュを通し組織片を除いた。細胞浮遊液を１５０ｘｇにて５分間遠沈して細胞を集め、２ｍｌの０．１４４ＭＮＨ_４Ｃｌ−０．０１７ＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．２）を加えてピペッティングし、赤血球を溶血させた。その後、１５００ｒｐｍにて２分間遠心分離し、リンパ球を集めた。ＲＰＭＩ１６４０培地を１０ｍｌ加えて、洗浄した後遠心分離してリンパ球を集めた。同培地を５ｍｌ加え細胞数を測定した。
このようにして得られた脾細胞をＲＰＭＩ培地で５×１０^６／ｍｌとし、６ｃｍデッシュに４ｍｌずつ分注し、３７℃，５％炭酸ガスで３時間培養した。培養後、細胞浮遊液を回収し、更に３７℃のＲＰＭＩ培地で軽くピペッティングし、浮遊細胞を回収した。これを１５０ｘｇにて５分間遠沈し、得られた細胞を、ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）を含む非接着性脾リンパ球とした。
【００２８】
培地の調製
ＲＰＭＩ１６４０（ＲＰＭＩ：ニッスイ製薬製）を使用した。
作製した培地に、Ｌ−グルタミン０．３ｍｇ／ｍｌ，ペニシリン１００Ｕ／ｍｌ，ストマイ１００ｕｇ／ｍｌを加え、１０％ＮａＨＣＯ_３でｐＨ７．４に調製した。
【００２９】
ＹＡＣ−１細胞（リンパ腫細胞、ターゲット細胞）の調製
ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）（エフェクター細胞）のターゲットとなるＹＡＣ−１細胞（ターゲット細胞）をＲＰＭＩ培地で培養し、細胞数を１×１０^５／ｍｌに調製した。尚、ＹＡＣ−１細胞は対数増殖期にあるものを使用した。
凍結させたＹＡＣ−１細胞を融解し、６ｃｍデッシュに蒔き込み、３日後のＹＡＣ−１細胞を使用した。
【００３０】
ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性の測定
ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性は、障害を受けた細胞の放出する乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）を定量する細胞障害性アッセイシステム（Ｃｙｔｏｔｏｘ９６，Ｐｒｏｍｅｇａ）により、ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性はＹＡＣ−１細胞の障害率で表した。
９６穴プレート（岩城硝子製）各穴にエフェクター細胞として、脾細胞１００μｌ分注し、これに、ＲＰＭＩに浮遊させたターゲット細胞であるＹＡＣ−１細胞（リンパ腫細胞）１×１０^５／ｍｌを１００μｌずつ分注し、３７℃，５％の炭酸ガスインキュペーターで４時間培養した。この時のエフェクター細胞と、ターゲット細胞の細胞数の比を１００：１，５０：１，３０：１，２０：１，１０：１，５：１，２：１，１：１に調製した。マイクロプレート用の遠心機を用いて、２５０ｘｇにて５分間遠沈し、細胞を沈殿させ、各上清５０μｌを別のプレートに取り、発色酵素であるＳｕｂｓｔｒａｔｅＭｉｘを５０μｌずつ添加した後、遮光し、室温にて静置した。３０分経過後、反応停止剤を５０μｌ加え、直ちに４９２ｎｍでＥＬＩＳＡリーダーでＬＤＨ放出量を測定した。
結果を表２に示す。
【００３１】
【表２】

【００３２】
表２から明らかなように、芽株投与によりＮＫ活性は増加し、生体防御能の亢進が顕著にみられた。
図１は、ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性測定におけるＥＴ比の効果を示し、図２は、ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性測定におけるストレスの影響を示す。
図１より、エフェクター細胞が多いほどＮＫ活性が増加することが明らかとなった。
また、図２より、ストレスの影響によりＮＫ活性が減少するが、芽株投与によりＮＫ活性は増加し、ストレスを解消し、生体防御能の低下を抑制する効果がみられた。
【００３３】
（実施例４）
マクロファージ（Ｍφ）貧食能亢進活性
非特異的に侵入異物の除去（貧食能、殺菌能）及び免疫の成立（抗原提示）に重要な機能を果たすマクロファージ（Ｍφ）貧食能について測定した。
実験動物は、白色レグホン雄若ヒナ（２週令）と、ＢＡＬＢ／ｃマウス（５週令、雄）を使用した。
白色レグホン雄若ヒナ（２週令）については、芽株０．５％、２％を含む実験飼料を投与した。ここで、実験飼料は、精製飼料を使用した。
飼育条件は、２４℃、１２時間照明、自由摂取とした。
２週間の飼育後、頸椎脱臼処分し、直ちに脾臓を取り出した。
ＢＡＬＢ／ｃマウス（５週令、雄）については、芽株の水及び酸抽出物を芽株パウダーとして２％相当になるように添加した実験飼料を２０日間、自由摂取させた。
飼育条件は、２３℃、１２時間照明とした。
２０日間の飼育後、頸椎脱臼処分し、直ちに脾臓を取り出した。
【００３４】
マクロファージ（Ｍφ）の調製
取り出したヒナ及びマウスの脾臓をしごいて赤血球を含む脾臓細胞を得た。
含まれる赤血球を低張ｂｕｆｆｅｒでバーストさせて除き、得られた脾細胞をカバーグラスを敷いたデッシュ（６ｃｍ）に蒔き込み、炭酸ガスインキュベーターで４〜６時間培養し、マクロファージをカバーガラスに接着させた。
【００３５】
マクロファージ（Ｍφ）貧食能の測定
マクロファージが接着したカバーグラスを洗浄して、残存赤血球及び浮遊リンパ球を除去し、１０％牛胎児血清を含むＰＲＭＩ１６４０培地で一晩培養した。
これに、２×１０^８個／ｍｌのルミスフェア（東レケクノリサーチ）を加えた後、炭酸ガスインキュベーター中で２時間培養し、マクロファージにスミスフェアを貧食させた。
反応終了後、各３枚のマクロファージ接着カバーグラスをフクシン染色、乾燥、バルサム封入し、標本とした。
貧食率の計算は２００個以上のマクロファージを観察し、１個以上のルミスフェアを取り込んでいるマクロファージ数を％で表示した。
結果を図３及び図４に示す。
図３は、ヒナによるマクロファージ（Ｍφ）貧食能に対する効果を示し、図４は、マウスによるマクロファージ（Ｍφ）貧食能に対する効果を示す。
図３より、ルミスフェアの貧食能は対照区が６％に対して、芽株０．５％投与区では９％となり、更に、２％投与区では３７％と上昇した。
また、図４より、ルミスフェアの貧食能は対照区が１３％であったのに対し、芽株水抽出物投与区では１６．５％となり、芽株酸抽出物投与区では２０．５％と大幅に亢進した。
よって、芽株中にマクロファージの貧食能の亢進、即ち機能亢進作用を示す機能性物質の存在が明らかとなった。
【００３６】
（実施例５）
肝障害軽減作用
肝障害のモデルとして、四塩化炭素（ＣＣｌ_４）投与時に生じる肝障害程度の軽減作用を調べた。
実験動物は、ラット（ウィスター系、７週令、雄）を、市販標準飼料（日本農産工業、ＭＲストック）で２日間予備飼育した後、各群の体重が揃うように群分け（ｎ＝５の３群）を行った。
第１群（Ｃｏｎｔｏｒｏｌ群）には、乾燥芽株２％含有飼料に相当するＮａＣｌ、α−セルロースを含む市販標準飼料（日本農産工業、粉末ラボＭＲストック）を摂取し、第２群には、乾燥芽株０．５％を含む同飼料を摂取し、第３群には、乾燥芽株２％を含む同飼料を摂取した。
各群のラットは個別ゲージに入れ、温度２３℃、１２時間明暗サイクルの条件下でそれぞれの飼料を与え、２週間飼育した。
２週間後、オリーブ油で１：１に希釈したＣＣｌ_４溶液を０．０５ｍｌＣＣｌ_４／１００ｇ体重となるように、全ての群に腹腔投与した。
【００３７】
肝障害軽減作用の測定
投与後、２４時間、３２時間、４０時間、４８時間毎に尾より採血し、血清中のＧＯＴ，ＧＰＴ値と、血清の過酸化物値を測定した。
（１）血清サンプルの調整
採取した血液を３７℃で１時間インキュベートし、１５分間氷冷した後、２０００ｒｐｍ、４℃で１０分間遠心分離した。その上清を再び５０００ｒｐｍ、４℃で１５分間遠心分離して、得られた上清を血清サンプルとして用いた。
【００３８】
（２）血中ＧＯＴ・ＧＰＴの測定
血清中のＧＯＴ（グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ）・ＧＰＴ（グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ）の活性は、トランスナーゼ「ニッスイ」キット（日水製薬製）を使用して測定した。
ＧＯＴ活性の測定結果を図３に、ＧＰＴ活性の測定結果を図４に示す。
図３及び図４より、血清中のＧＯＴ活性、ＧＰＴ活性はともにＣｏｎｔｒｏｌ群に比べて、芽株含有飼料摂取群の方が低い値を示している。これより、芽株にはラット肝障害を軽減する効果があることがわかった。
ＣＣｌ_４投与後２４時間、３２時間でＧＰＴ活性は有意な差があるのに対し、ＧＯＴ活性では有意な差が見られなかったのは、ＧＰＴが肝特異的であるのに対し、ＧＯＴは全臓器に存在していることが関係していると考えられる。
また、０．５％芽株含有飼料摂取群と、２％芽株含有飼料摂取群の間にあまり差がないことから、０．５％芽株で十分効果があることがわかる。
【００３９】
（３）血中過酸化物量の測定
血清中の過酸化物量は、チオバルビツール酸法（ＴＢＡ法）に準じて測定し、チオバルビツール酸反応物質（ＴＢＡ−ＲＳ）として表した。
結果を図５に示す。
血中過酸化物量は、Ｃｏｎｔｒｏｌ群と芽株含有飼料摂取群との間に有意な差は見られなかったが、図５より、芽株を摂取することによって、血中過酸化物量が減少した。
【００４０】
（実施例６）
ニワトリへのフコイダン様多糖複合体投与による罹病率、幣死率の減少などが、報告されており、ニワトリの生体防御能の亢進が考えられる。そこで、ワカメ芽株を投与時の、マイクロファージ（Ｍφ）｛進入微生物などの貪食・殺菌に関わる｝、ナチュラルキラー（ＮＫ）｛ウィルスなどで変異した自己細胞（癌過細胞）を処理する｝活性の変化について検討した。
方法）フコイダン様多糖複合体ａを，白色レグホンヒナ（雄、１０日令）に精製飼育中に０．７５±０．０５％添加し、２０日間給与した。終了後、脾臓より脾臓細胞を集めた。混入する赤血球の除去はリンホプレップを用いた比重遠心分離法で行った。得られた脾細胞をカバーグラスを敷いたデッシュに蒔き込み、４時間培養し、Ｍφをカバーグラスに接着させ、浮遊脾細胞をＮＫ活性測定に用いた。Ｍφの貪食能はルミスフェア（東レテクノリサーチ）を加え、２時間貪食させ、フクシン染色した。これを検鏡し、ルミスフェアを貪食したＭφの％で表示した。同時に取り込まれたルミスフェアの総数も表示した。ＮＫ活性の測定は、ターゲット細胞として、ＬＳＣＣ−ＲＰ９（ニワトリ白血病リンパ種由来、以下ＲＰ９）を別途培養したものを用いた。ＮＫ活性は脾細胞とＲＰ９を適度な混合比で加え、ＮＫにより障害を受けたＲＰ９より遊離するＬＤＨを定量する細胞障害アッセイシステムによった。
フコイダン様多糖複合体を添加した飼料を２０日投与したヒヨコ脾のＮＫ活性はコントロー区に較べ、約２倍の細胞毒性（攻撃性）を示した。またＭφの貪食能もワカメ芽株投与区が約２倍程度の高い活性を示した。以上より、フコイダン様多糖複合体ａにはニワトリの生体防御能亢進機能を持つ物質の存在が推定された。
【００４１】
（実施例７）
フコイダン様多糖複合体ｈの調整
芽株粉体試料に７０エタノール次いで９９％エタノール次いでジエチルエーテルによる脱脂・脱色・脱臭を行い、乾燥脱脂芽株粉末とした。多糖類の抽出はこの脱脂粉末に水を２０倍量加えて８５℃に加熱、攪拌しつつ３時間行った。遠心分離し抽出液を得る。さらに抽出を充分行うために、残査に０．１Ｎの塩酸溶液を加え、攪拌しつつ室温で一晩抽出を行う。遠心分離し、得られた抽出液を水抽出液と合わせ、セロファンチュープに入れて水透析を攪拌しつつ４℃で４日間行う。この間、水は３回／日ずつ取り替える。得られた芽株抽出物を凍結乾燥し、フコイダン様多糖複合体ｈを得た。
１．マウス脾臓ナチュラルキラー活性（ＮＫ）に対する効果。
生体防御で重要なＮＫ活性に対する芽株の効果を検討した。
方法の概要：マウスに芽株抽出粉末を含む精製飼料を２０日間投与し、脾臓中のＮＫのガン細胞に対する細胞毒性（攻撃性）を測定する。
実験飼料の組成を表３に示す。
【００４２】
【表３】

【００４３】
試験方法：
（１）マウス（ＢＡＬＢ／ｃ，雄、６週令）に芽株抽出粉末を１％含む精製飼料を２０日間投与。
（２）マウスより脾臓を摘出し、脾細胞を集める。混入している赤血球を低張液でバーストさせて除き、混在するマクロファージ（Ｍφ）をデッシュに接着させて除去し、ＮＫをふくむ脾浮遊細胞を調整する。
（３）このＮＫ細胞（エフェクター細胞，Ｅ）が作用するターゲットのリンパ腫細胞としてＹＡＣ−１細胞（ターゲット細胞，Ｔ）を別途培養し準備しておく。
（４）ＮＫ活性の測定は、ＮＫとＹＡＣ−１を適度な混合比で培養し、ＮＫにより障害を受けたＹＡＣ−１より遊離される乳酸脱脂水素（ＬＤＨ）を定量する細胞障害アッセイシステムによった。
ＮＫ活性はＹＡＣ−１の障害で表した。
【００４４】
【表４】

【００４５】
フコイダン様多糖複合体粉末投与によりマウスのＮＫ活性は増加し、免疫賦活活性や生体防御能の亢進が認められた。
ここではマウスについて記したが、ラットにおいても同様の結果が得られた。
２．マウスのマクロファージ（Ｍφ）貪食能に対するフコイダン様多糖複合体の
効果
生体防御機能上、重要なＭφ侵入微生物などの除去と、免疫成立に重要である。このＭφに対するフコイダン様多糖複合体の効果を検討した。
飼料は上記と同じ
（１）マウスにフコイダン様多糖複合体抽出粉末を１％含む精製飼料を２０日間投与する。
（２）マウスより脾臓を摘出し、脾細胞を集める。混入している赤血球を低張液でバーストさせて除く。得られた脾細胞をカバーグラスを下に敷いたデッシュ（６ｃｍ）に蒔き込み、４時間培養し、Ｍφをカバーグラスに接着させる。
（３）マクロファージが接着したカバーグラスをＰＢＳで洗浄後、ＰＲＭＩ１６４０倍地を加え、２×１０8 個／ｍｌのルミスフェア（東レテクノリサーチ）を加え、２時間貪食させる。
反応終了後、各２枚のカバーグラスをフクシン染色、乾燥、バルサム封入した。
（４）貪食率の計算は２００個のマクロファージを顕微鏡観察し、１個以上のルミスフェアを取り込んでいるＭφを％で示し、さらに取り込まれたルミスフェア総数も表示した。図６及び図７に示した。
図６はマクロファージ（Ｍφ）貪食能（％）を示す図であり、図７はルミスフェア総数を示す図である。
【００４６】
３．ニワトリ（雄ヒナ）のナチュラルキラー（ＮＫ）に対する効果
白色レグホン（雄ヒナ，２週令）にフコイダン様多糖複合体抽出粉末を１％含む実験飼料を２０日間投与した。２０日間の飼育後、脾臓を取り出し、脾臓よりＮＫ細胞を含む浮遊脾臓細胞を調整する。混在する赤血球の除去はリンホプレップを用いる比重分画法で行った。
ニワトリＮＫのターゲットとなるリンパ腫細胞はＬＳＣＣ−ＲＰ９（ニワトリ白血病リンパ腫由来）を使用した。
その他の測定法の原理および活性表示もマウスの場合と同様である。
【００４７】
【表５】

【００４８】
ニワトリにおいてもフコイダン様多糖複合体投与によりＮＫ活性は増加し、生体防御能の亢進が認められた。
【００４９】
４．ニワトリのマイクロファージ（Ｍφ）貪食能に対するフコイダン様多糖複合体の効果
生体防御機構上、重要なＭφは侵入微生物などの除去と、免疫成立に重要である。このＭφに対するフコイダン様多糖複合体の効果を検討した。
飼料は上記と同一のものを用いた。
（１）ニワトリ（ヒナ）にフコイダン様多糖複合体粉末を０．１％含む精製飼料を２０日間投与する。
（２）ニワトリより脾臓を摘出し、脾細胞を集める。この中に含まれる赤血球をリンホプレップを用いる比重分画法で除く。得られた脾細胞をカバーグラスを下に強いたデッシュに蒔き込み、４時間培養し、Ｍφをカバーグラスに接着させる。
（３）Ｍφが接着したカバーグラスをＰＢＳで洗浄後、ＰＲＭＩ１６４０倍地を加え、２×１０8 個／ｍｌのルミスフェア（東レテクノリサーチ）を加え、２時間貪食させる。
反応終了後、各２枚のカバーグラスはフクシン染色、乾燥、バルサム封入した。
（４）貪食率の計測は２００個のＭφを顕微鏡下で観察し、１個以上のルミスフェアを取り込んでいるＭφを％で示し、さらに取り込まれたルミスフェア総数も表示した。これを図８及び図９に示した。
フコイダン様多糖複合体粉末を経口投与したニワトリの脾臓マクロファージ貧食能は亢進していることが示された。
図８はマクロファージ（Ｍφ）貪食能（％）を示す図であり、図９はルミスフェア総数を示す図である。
以上のデータより、ニワトリにおいてもフコイダン様多糖複合体による免疫賦活活性及び生体防御能の亢進が示された。
【００５０】
５．腫瘍細胞接種時の腫瘍細胞の増殖に対するフコイダン様多糖複合体の効果と、その時のＮＫ、マクロファージ活性の変動。
（１）マウスにフコイダン様多糖複合体粉末を０．１％添加した精製飼料で１０日間前飼育する。
（２）マウス腹腔で継代培養したガン細胞、サルコーマ１８０を腹水と共に集め、赤血球除去した後、サルコーマの細胞数を調製する。
（３）このマウスの背部皮下に腫瘍細胞サルコーマ１８０を接種（１×１０5 ／０．１ｍｌ／マウス）し、２週間飼育した。この間の飼料も前飼育時と同じである。
（４）２週間飼育後、腫瘍の重量の測定と、脾臓中のＮＫ活性およびマクロファージ貧食能の測定を行った。
ＮＫおよびＭφ調製と活性測定は既に述べた方法を用いた。その結果を図１０乃至図１３に示した。
図１０は腫瘍重量を示す図であり、図１１はサルコーマ１８０移植マウスＮＫ活性に対するフコイダン様多糖複合体の効果を示す図であり、図１２、図１３はサルコーマ１８０移植マウスのマクロファージ（Ｍφ）貪食活性に対するフコイダン様多糖複合体の効果を示す図である。
接種したサルコーマ１８０が増殖した腫瘍の大きさはコントロールと較べ、明らかにフコイダン様多糖複合体投与で減少し、腫瘍細胞に対する生体防御能が腫瘍の増殖を抑制していることが明らかになった。
またそれを裏付けるようにフコイダン様多糖複合体投与区の脾臓ＮＫ活性は亢進の傾向が見られ、Ｍφ貧食能は明らかに亢進していた。フコイダン様多糖複合体粉末は生体のＮＫ活性やＭφ活性などの免疫賦活活性や生体防御能を亢進することにより腫瘍細胞の増殖を抑制することが明らかとなった。
通常、担癌動物の生体防御能はガン細胞の分泌する免疫賦活活性や生体防御能抑制効果により低く抑制されることが知られているので、今回の実験で得られたようなフコイダン様多糖複合体投与による、担癌動物の免疫賦活活性や生体防御能の亢進効果は抗癌能として極めて有意義であると考えられる。
【００５１】
６．培養肝臓細胞に対するフコイダン様多糖複合体の効果
ニワトリ肝細胞の初代培養を用い、フコイダン様多糖複合体粉末の培養肝細胞に対する効果を検討した。
方法：
（１）白レグホン雄ヒナ（２週令）の肝臓よりコラゲナーゼ流法で肝細胞を調製する。
（２）得られた肝細胞を培養デッシュに蒔き込み、４時間後に接着しなかった細胞を除く。
（３）培地にフコイダン様多糖複合体の溶液を加えて培養を続け、顕微鏡下で観察し、細胞数の計測と培地中のアルブミンの定量を行う。
アルブミン分泌は肝細胞の特異的機能の１つであり、分化機能のマーカーと見なされるこの定量はＥＬＩＳＡ法で行った。
フコイダン様多糖複合体中にはニワトリ初代培養肝細胞の維持と、肝特異的機能の１つであるアルブミン分泌を亢進することが認められた。粉末はオートクレーブしても活性を失わないことから、フコイダン様多糖複合体が機能していると考えられる。
このように肝細胞への効果が見られたことから、肝細胞および肝機能への効果を持つ機能性食品の可能性が考えられる。
【００５２】
７．肝臓障害に対するフコイダン様多糖複合体粉末の効果
（１）ラット（ウイスター、雄、５週令）をフコイダン様多糖複合体粉末を１％添加飼料で２週間飼育する。
（２）四塩化炭素（オリーブ油で１：１に希釈したもの）を０．０５ｍｌ四塩化炭素／１００ｇ体重となるように腹腔内投する。
（３）投与２４、３２、４０、４８時間後に尾より採血。得られた血清中のＧＯＴ，ＧＰＴを定量し、肝障害の軽減効果を測定した。また血清中の過酸化物量も定量した。
＊ＧＯＴ，ＧＰＴは肝障害時に壊れた肝細胞より血中に遊離され、肝障害のマーカーとして使用される。
ＧＯＴ，ＧＰＴ活性はトランスナーゼ「ニッスイ」キットで測定した。
過酸化物の定量はチオバルビツール酸法（ＴＢＡ法）で行った。
これらの結果から、フコイダン様多糖複合体粉末は四塩化炭素による肝障害を軽減する効果が認められた。また四塩化炭素によって生じる血中過酸化物量はフコイダン様多糖複合体の摂取によって軽減する傾向が見られた。
以上により、ワカメフコイダン様多糖複合体は肝障害と過酸化物生成に対する軽減効果あるいは防御的機能を生体に付与すると考えられる。
【００５３】
【発明の効果】
以上のように、本発明によれば以下の優れた効果を奏することができる。
請求項１に記載の発明によれば、
ａ．ワカメの芽株を変質させることなくフコイダン様多糖体を容易に抽出することができ、カリウム・カルシウム・リン・鉄等のミネラル類やビタミンＡ・Ｂ１・Ｂ２・ナイアシン・Ｃ等のビタミン類が豊富に含まれ、また、その他微量ではあるが生命の維持及び栄養素として必要なミネラル、即ち、必須微量元素が含まれるフコイダン様多糖複合体を低原価で量産できる。
ｂ．鉄分やカルシウム、マグネシウム、カリウム等のミネラルの含量が極めて多く、且つストレスの解消性を有し興奮を抑え、抗病性・免疫性を向上させることができる。
ｃ．フコイダン様多糖複合体中のフコース類等がナチュラルキラー細胞活性を有するので、ウィルス感染、化学薬品等により変異を生じた自己細胞を殺し、組織の癌化を早期に防ぐことができ、病気予防・健康維持を可能にすることができる。
ｄ．フコイダン様多糖複合体中のフコース類等が、マクロファージ貧食能亢進活性を有するので、非特異的に進入異物等を除去し、免疫成立、即ち、抗原提示に重要な機能を果たすことができる。
ｅ．フコイダン様多糖複合体中のフコース類等が生体防御能亢進活性を有するので、変異細胞の除去を通じて組織の癌化を防ぐナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性の亢進と、進入異物等を除去し、免疫成立の重要な一員であるマクロファージ（Ｍφ）貧食能の亢進活性を有する生体防御能を亢進させることができる。
ｆ．フコイダン様多糖複合体中のフコース等が、肝障害軽減作用を有するので、多種多様な特異的機能を有する代謝の中枢である肝臓における肝機能を亢進させ、もって、生体の機能を亢進させ、健康を維持することが可能となる効果を有する。
ｇ．芽株を海水等塩水で洗浄しているので、芽株が溶けるのを防止し、エキス分やミネラル分が溶出するのを防ぎ、更にフコイダン様多糖複合体の収率の低下を防止できる。
ｈ．凍結乾燥することにより、鉄分やカルシウム、マグネシウム、カリウム等のミネラルの含量が極めて多く、餌喰いを良くし成長作用に優れ、且つストレスの解消性を有し興奮を抑え、抗病性・免疫性を向上させることが可能となる。
【００５４】
請求項２に記載の発明によれば、請求項１の効果に加え、
ａ．一旦凍結した後に凍結乾燥すると、組織・細胞内に生じた氷の結晶（氷晶）がそのまま乾燥し、無数の極微小の穴があいた状態となり抽出効率・抽出効果が増大する
【００５５】
請求項３に記載の発明によれば、請求項１又は２の効果に加え、
ａ．脱脂を行うので、タンパク質の分解ができ、フコイダン様多糖複合体をタンパク質から分離できるので、フコイダン様多糖複合体の収率を高めることができる。
【００５６】
請求項４に記載の発明によれば、
ａ．変異細胞の除去を通じて組織の癌化を防ぐナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性の亢進と、進入異物等を除去し、免疫成立の重要な一員であるマクロファージ（Ｍφ）貧食能の亢進活性を有する生体防御能を亢進させることが可能な免疫賦活剤、例えば医薬品、機能性食品及び健康食品等を得ることができるという効果を有する。
【図面の簡単な説明】
【図１】ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性測定におけるＥＴ比の効果を示す。
【図２】ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）活性測定におけるストレスの影響を示す。
【図３】ヒナによるマクロファージ（Ｍφ）貧食能に対する効果を示す。
【図４】マウスによるマクロファージ（Ｍφ）貧食能に対する効果を示す。
【図５】ＧＯＴ活性における肝障害軽減作用の効果を示す。
【図６】マクロファージ（Ｍφ）貪食能（％）を示す。
【図７】貪食されたルミスフェア総数を示す。
【図８】マクロファージ（Ｍφ）貪食能（％）を示す。
【図９】貪食されたルミスフェア総数を示す。
【図１０】腫瘍重量を示す。
【図１１】Ｓ１８０移植マウスを示す。
【図１２】マクロファージ（Ｍφ）貪食能（％）を示す。
【図１３】マクロファージ（Ｍφ）貪食能（％）を示す。
【図１４】生細胞数を示す。
【図１５】アルブミン合成を示す。
【図１６】血清中のＧＯＴ活性を示す。
【図１７】血清中のＧＯＴ活性を示す。
【図１８】血清中のＧＯＴ活性を示す。

Claims

ワカメの芽株を海水または塩水で洗浄する洗浄工程と、前記洗浄工程で洗浄された芽株を低温乾燥させる又は凍結乾燥させる乾燥工程と、前記乾燥工程で乾燥された芽株を低温下で粉砕する粉砕工程と、芽株粉体に水を加えて加熱攪拌し抽出する抽出工程と、前記抽出工程で得られた抽出液を濾過した後、抽出液を乾燥して粉末フコイダン様多糖体を得る工程と、を備えていることを特徴とするフコイダン様多糖複合体の製造方法。
洗浄した後に乾燥させた前記前記芽株を水に戻す水戻し工程を備え、前記乾燥工程において、前記水戻し工程で得られた芽株を凍結乾燥させ、前記粉砕工程において、乾燥した芽株を低温下で粉砕することを特徴とする請求項１に記載のフコイダン様多糖複合体の製造方法。
前記抽出工程に先立ち、前記粉砕工程で得られた芽株粉体の脱脂を行う脱脂工程を備えていることを特徴とする請求項１又は２に記載のフコイダン様多糖複合体の製造方法。
請求項１乃至３の内いずれか１項に記載のフコイダン様多糖複合体の製造方法で得られたフコイダン様多糖複合体を有効成分とすることを特徴とする免疫賦活剤。