JP3927580B2 - Dna鎖伸長方法、dna鎖増幅方法およびdna鎖伸長用マイクロアレイ - Google Patents
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Description
Adessi, Celine et al, "Solid phase DNA amplification: Characterisation of primer attachment and amplification mechanisms", Nucleic Acids Research, 2000, Vol. 20, No. 20, e87 Fixe, F. et al, "Functionalization of poly(methyl methacrylate) (PMMA) as a substrate for DNA microarrays", Nucleic Acids Research, 2004, January 12, Vol. 32, No.1, e9
所望する配列を有する鋳型DNA断片または鋳型RNA断片、DNA鎖伸長用酵素系、およびヌクレオチドモノマーを含む試料が導入された反応系を、DNA鎖を熱変性する温度(以下、「熱変性処理温度」という)まで引き上げ、
前記反応系の温度をアニール処理する温度(以下、「アニール処理温度」という)まで下げ、
前記反応系でDNA鎖の伸長反応を行い、
全処理を同一の液相系で行うことを特徴としている。
前記プライマーは、所定の着目遺伝子の特徴配列を含む塩基配列の一塩基を他の塩基に置き換えたDNA断片であってもよい。
前記プライマーは所定数の塩基配列からなり、各々のプライマーは全組合せのそれぞれの配列を有するDNA断片であってもよい。
前記鋳型DNA断片は、所定のRNAを逆転写酵素で処理して得られるcDNA断片であってもよい。
所望する配列を有する鋳型DNA断片または鋳型RNA断片、DNA鎖伸長用酵素系、およびヌクレオチドモノマーを含む試料が導入された反応系を、DNA鎖を熱変性する温度(以下、「熱変性処理温度」という)まで引き上げ、
前記反応系の温度をアニール処理する温度(以下、「アニール処理温度」という)まで下げ、
前記反応系でDNA鎖の伸長反応を行い、
DNA鎖の熱変性処理を行って、
および必要に応じてDNA鎖のアニール処理、伸長反応および熱変性処理を行い、
全処理を同一の液相系で行うことを特徴としている。
前記基板の最表面に固定化されたDNA増幅用のプライマーとを含むものである。
図1は、第一の実施形態としてのDNA鎖増幅方法の手順を示すフローチャートである。
このDNA鎖増幅方法は、リン脂質の親水部を構成するリン酸エステルより誘導される基を有する第一単位と電子求引性の置換基がカルボニル基に結合してなるカルボン酸誘導基を有する第二単位とを含む高分子物質を最表面に有する基板に、DNA増幅用のプライマー(以下、「プライマー」という)を固定化させ(ステップS10)、所望する配列を有する鋳型DNA断片または鋳型RNA断片、DNA鎖伸長用酵素系、およびヌクレオチドモノマーを含む試料が導入された反応系を、DNA鎖を熱変性する温度(以下、「熱変性処理温度」という)まで引き上げ(ステップS30)、この反応系の温度をアニール処理する温度(以下、「アニール処理温度」という)まで下げ(ステップS40)、当該反応系でDNA鎖の伸長反応を行い(ステップS50)、DNA鎖の熱変性処理を行って(ステップS60)、必要に応じてDNA鎖のアニール処理、伸長反応および熱変性処理を行う(ステップS40〜ステップS60の繰り返し)ものである。さらに、これら各処理を同一の液相系で行う。
2−メタクリロイルオキシエトキシエチルホスホリルコリン基および10−メタクリロイルオキシエトキシノニルホスホリルコリン基等の(メタ)アクリロイルオキシアルコキシアルキルホスホリルコリン基;
アリルホスホリルコリン基、ブテニルホスホリルコリン基、ヘキセニルホスホリルコリン基、オクテニルホスホリルコリン基、およびデセニルホスホリルコリン基等のアルケニルホスホリルコリン基;
等の基を有し、ホスホリルコリン基がこれらの基中に含まれている構成とすることができる。
―Cl、−F等のハロゲン;
等の基を有することができる。
下記式(t)に示される酸ハロゲン化物由来の基;
下記式(u)、式(w)に示される活性エステル由来の基;または
下記式(v)に示される活性化アミド由来の基とすることができる。
過酸化ラウロイル、過酸化ベンゾイル、t−ブチルペルオキシネオデカノエート、t−ブチルペルオキシピバレート等の油溶性の有機過酸化物;
などが用いられる。
環状ポリオレフィン;
含フッ素樹脂;
等を用いることができる。上記樹脂の中でも、飽和環状ポリオレフィンは、耐熱性、耐薬品性、低蛍光性、透明性および成形性に特に優れるため、光学的な分析に好適であり、基板の材料として好ましく用いられる。
例えば、(i)基板上の高分子物質に含まれる複数の活性エステル基のうち、少なくとも一部の活性エステル基とプライマーとを反応させて共有結合を形成させることにより、基板表面でプライマーを固定化し、続いて(ii)プライマーを固定化した以外の基板表面の活性エステル基を不活性化する、すなわち残りの活性エステル基を不活性化することにより、プライマーを基板の表面に固定することができる。以下、それぞれの工程について説明する。
図6は、第二の実施形態としてのDNA鎖伸長方法の手順を示すフローチャートである。図6において、図1と手順が同様な部分については、図1と同様の符号を付して、説明を省略する。
所定の着目遺伝子の特徴配列を含む塩基配列と相補的な配列を完全マッチ配列とするとき、プライマーをこの完全マッチ配列の一塩基を他の塩基に置き換えることで、SNP解析を行うことが可能になる。なお、プライマーは25塩基以内の長さを有するものを用いることが好ましい。
所定数、例えば6〜10mer、好ましくは8merの塩基配列を有するプライマーを、全組合せ、例えば8merのプライマーを用いた場合には、全組合せである48=65536種類のプライマーを用意して、各々のプライマーがマイクロアレイのひとつのスポットに固定化させることにより、塩基配列決定(SBH)解析を行うことが可能になる。
図8は、遺伝子発現プロファイル用サンプルとして、ラベルを導入したサンプルを調整および発現プロファイル解析するための従来の方法を示す。
なお、図8においては、aRNAの合成を示しているが、途中の工程で得られるcDNAが解析に十分な量であれば、このcDNAを直接解析してもよい。
マイクロサテライト解析、染色体異常解析(CGH:Comparative Genomic Hybridization)、機能未知(nc)RNA探索などの遺伝子解析用基本ツールへの適用;
これらツールを使用した臓器・疾患別遺伝子発現解析チップ、変異原性試験キット(環境ホルモン)、遺伝子組換え食品検査キット、ミトコンドリア遺伝子配列解析キット、親子鑑定・犯罪捜査のための解析キット、先天性疾患解析キット、染色体・遺伝子異常解析キット、遺伝子診断(着床前・出生前)キット、薬物反応関連遺伝子多型解析キット、脂質代謝関連遺伝子多型解析キット、耳鼻科・眼科領域遺伝子多型解析キットなどの用途別カスタムチップへの適用;
ガン予後予測チップ、医薬品開発(臨床・創薬)用チップ、健康食品開発用チップなどの診断・臨床用カスタムチップへの適用;
微生物限度試験や食品飲料水中の微生物検査などの薬品・食品製造工程、およびう蝕・歯周病関連菌の検出、日和見感染菌の検出などの歯科領域の臨床検査、および食品工場・厨房施設環境検査、飲料・公衆浴場、井戸水などの水質検査における環境検査、および感染症・食中毒の予防、会社従業員の衛生管理などの保健衛生、および耐性菌を含む一般細菌同定、肝炎ウイルス、ヘリコバクターピロリ、肝炎クラミジア菌、エイズウイルス、SARSウイルス、ウエストナイルウイルス、ノロウイルス(生カキ由来の食中毒)、インフルエンザウイルス、真菌・カビなどの臨床検査などの微生物同定検査キットへの適用
などが挙げられる。
以下の手法にて、プライマーを、本実施形態に対応するプラスチックおよびガラス基板、および従来の基板に対応するアルデヒド基板の各基板の表面に固定化して、各基板上でDNA鎖伸長反応を行って、プライマーのDNA鎖伸長反応を検出した。
飽和環状ポリオレフィン樹脂(5−メチル−2ノルボルネンの開環重合体の水素添加物(MFR(Melt flow rate):21g/10分、水素添加率:実質的に100%、熱変形温度123℃)を用い、射出成形によりスライドガラス形状の基板を得た。基板を2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン−ブチルメタクリレート−p−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート(NPMA)共重合体(各基は、モル%で25:74:1)の0.5重量%エタノール溶液に浸漬することにより、基板表面にホスホリルコリン基と活性エステル基とを有する高分子物質を導入して、プラスチック基板を得た。
通常のガラス基板を、2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン−ブチルメタクリレート−p−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート(NPMA)共重合体(各基は、モル%で25:74:1)の0.5重量%エタノール溶液に浸漬することにより、基板表面にホスホリルコリン基と活性エステル基とを有する高分子物質を導入して、ガラス基板を得た。
飽和環状ポリオレフィン樹脂5−メチル−2−ノルボルネンの開環重合体の水素添加物(MFR:21g/10分、水素添加率:実質的に100%、熱変形温度:123℃)を用い、射出成形によりスライドグラス形状の基板を得た。この成形物に低温酸素プラズマ処理により表面に親水化処理を施した。次に、アミノアルキルシランとしてγ−アミノプロピルトリエトキシシランをメタノール中に5%の濃度で溶解させたものをアミノ基導入処理液として調製し、この溶液の中に2時間浸漬の後、基板を溶液から取り出し、超純水中に浸漬し放置後基板を取り出し乾燥した。グルタルアルデヒドをPBS(−)中に2%の濃度で溶解させてグルタルアルデヒド溶液を調製し、アミノアルキルシラン処理を行なった基板をグルタルアルデヒド溶液中に浸漬し、4時間放置した後、基板を取り出して超純水中に浸漬し、洗浄乾燥した。これにより、表面にアルデヒド基を有するアルデヒド基板が得られた。
5'末端がアミノ基で修飾されたオリゴDNA(20塩基鎖)を0.25M炭酸バッファ(pH9.0)を用いて溶解し、10μMのオリゴDNA溶液を調製した。この溶液をスポッタ(日立ソフトウェアーエンジニアリング製Marks-I)を用い、100μm径クロスカットピンでプラスチック基板およびガラス基板、およびアルデヒド基板の表面上に、それぞれスポットした。オリゴDNAをスポットした各基板を、200μlの0.25Mリン酸バッファ(pH8.5)で内部を湿らせた密閉容器(10cm×15cm×3cm)中で一昼夜浸して、オリゴDNA(プライマー)を固定化させた。
図6のステップS20で導入する鋳型DNA断片として、所定の50merの、予め5'末端をCy5にて標識したDNA断片を用いて、鋳型DNA断片の濃度が100pMとなるような反応系とした。また、DNA鎖伸長用酵素系として、DNAポリメラーゼ(タカラバイオ株式会社製Ex Taq)を用いた。
実験例1でDNA鎖伸長が検出されたプラスチック基板を用いて、20mer、25mer、30merの各プローブについてMPEC法によるDNA鎖伸長を1サイクル、5サイクル、10サイクル、20サイクルで行って、DNA鎖増幅反応を行って、各区切りのサイクル終了後に蛍光強度を測定した。
以下に、結果を表2に示す。
図9に示したように、5'-Cy5-AAGGCGGGAGGGAGCGCAATCCGGGAGTTTACAAATGGACAAACTTCTAT-3'の5'位から21番目の塩基Cを変異部位としたSNPタイピングを行う目的で、計5種類のプローブ(21mer)を設計し、プラスチック基板上に固定化した。このマイクロアレイを用いて、MPEC(multiple primer extension on a chip)反応によるSNPタイピング(伸張反応)を行う。
この伸長反応の結果、上記の50merのDNA断片をターゲットとして、このターゲットと相補的な配列を有する完全マッチ配列プローブのみが伸長し、その結果蛍光発色する。
実験例1のMPEC反応をp53ガン抑制遺伝子の検出に応用する。
このp53遺伝子の異常は大腸がんや肺がんで高頻度に求められており、p53遺伝子に異常(一塩基多型:SNP)があると、抗がん剤が効きにくくなり、ガン細胞の細胞死(アポトーシス)を起こせずガン細胞が増殖することになる。
SBH法による塩基配列決定解析のシミュレーション実験を行う。
図10に示したように、3'末端がCy5でラベルされた50塩基長のターゲットの塩基配列が決定できるように、一塩基ずつ3'末端方向にずらした8塩基(8mer)のプローブ(計50)をプラスチック基板上に固定したマイクロアレイを用いて、MPEC反応によるSBHを行う。各プローブの3'末端の一塩基にミスマッチを設定した8塩基(8mer)の50種類のプローブも加え基板上に固定した。このSBHシュミレーション用アレイを用いた塩基配列決定を行う。
12 基板
14 プライマー
16 鋳型DNA断片
18 一本鎖DNA断片
Claims (24)
- 2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン基を有する第一単量体と、p−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート基を有する第二単量体と、ブチルメタクリレート基を有する第三単量体との共重合体を最表面に有するプラスチック材料からなる基板に、DNA伸長用のプライマーを固定化させ、
所望する配列を有する鋳型DNA断片または鋳型RNA断片、DNA鎖伸長用酵素系、およびヌクレオチドモノマーを含む試料が導入された反応系を、DNA鎖を熱変性する温度(以下、「熱変性処理温度」という)まで引き上げ、
前記反応系の温度をアニール処理する温度(以下、「アニール処理温度」という)まで下げ、
前記反応系でDNA鎖の伸長反応を行い、
全処理を同一の液相系で行うことを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記反応系で、アニール処理してDNA鎖の伸長反応を行うまでに洗浄処理が介在しないことを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記鋳型がDNA断片である場合に、前記DNA鎖伸長用酵素系は、DNAポリメラーゼまたはDNAリガーゼのいずれかであることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記鋳型がRNA断片である場合に、前記DNA鎖伸長用酵素系は、逆転写酵素、またはDNAリガーゼおよび逆転写酵素の組合せのいずれかであることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記DNA鎖伸長反応は、前記反応系の温度を、前記アニール処理温度から前記熱変性処理温度まで徐々に上昇させて行われることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記DNA鎖伸長反応は、前記反応系の温度を、前記アニール処理温度と前記熱変性処理温度との間の所定の温度に変化させて行われることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記プライマーは、所定の着目遺伝子の特徴配列を含む塩基配列の一塩基を他の塩基に置き換えたDNA断片であることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記プライマーは所定数の塩基配列からなり、各々のプライマーは全組合せのそれぞれの配列を有するDNA断片であることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記鋳型DNA断片は、所定のRNAを逆転写酵素で処理して得られるcDNA断片であることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記反応系に導入される試料に含まれるヌクレオチドモノマーの少なくとも一種がラベルされたものであることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記プライマーが、前記基板の前記p−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート基のp−ニトロフェニル基の部位で共有結合して、当該基板の最表面に固定化されることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 請求項1に記載のDNA鎖伸長方法において、
前記基板が、飽和環状ポリオレフィン樹脂からなることを特徴とするDNA鎖伸長方法。 - 2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン基を有する第一単量体と、p−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート基を有する第二単量体と、ブチルメタクリレート基を有する第三単量体との共重合体を最表面に有するプラスチック材料からなる基板に、DNA増幅用のプライマーを固定化させ、
所望する配列を有する鋳型DNA断片または鋳型RNA断片、DNA鎖伸長用酵素系、およびヌクレオチドモノマーを含む試料が導入された反応系を、DNA鎖を熱変性する温度(以下、「熱変性処理温度」という)まで引き上げ、
前記反応系の温度をアニール処理する温度(以下、「アニール処理温度」という)まで下げ、
前記反応系でDNA鎖の伸長反応を行い、
DNA鎖の熱変性処理を行って、
および必要に応じてDNA鎖のアニール処理、伸長反応および熱変性処理を行い、
全処理を同一の液相系で行うことを特徴とするDNA鎖増幅方法。 - 請求項13に記載のDNA鎖増幅方法において、
前記反応系で、アニール処理してDNA鎖の伸長反応を行うまでに洗浄処理が介在しないことを特徴とするDNA鎖増幅方法。 - 請求項13に記載のDNA鎖増幅方法において、
前記鋳型がDNA断片である場合に、前記DNA鎖伸長用酵素系は、DNAポリメラーゼまたはDNAリガーゼのいずれかであることを特徴とするDNA鎖増幅方法。 - 請求項13に記載のDNA鎖増幅方法において、
前記鋳型がRNA断片である場合に、前記DNA鎖伸長用酵素系は、逆転写酵素、またはDNAリガーゼおよび逆転写酵素の組合せのいずれかであることを特徴とするDNA鎖増幅方法。 - 請求項13に記載のDNA鎖増幅方法において、
前記反応系に導入される試料に含まれるヌクレオチドモノマーの少なくとも一種がラベルされたものであることを特徴とするDNA鎖増幅方法。 - 請求項13に記載のDNA鎖増幅方法において、
前記プライマーが、前記基板の前記p−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート基のp−ニトロフェニル基の部位で共有結合して、当該基板の最表面に固定化されることを特徴とするDNA鎖増幅方法。 - 請求項13に記載のDNA鎖増幅方法において、
前記基板が、飽和環状ポリオレフィン樹脂からなることを特徴とするDNA鎖増幅方法。 - 2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン基を有する第一単量体と、p−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート基を有する第二単量体と、ブチルメタクリレート基を有する第三単量体との共重合体を最表面に有するプラスチック材料からなる基板と、
前記基板の最表面に固定化されたDNA増幅用のプライマーとを含むDNA鎖伸長用マイクロアレイ。 - 請求項20に記載のDNA鎖伸長用マイクロアレイにおいて、
前記基板が、飽和環状ポリオレフィン樹脂からなることを特徴とするDNA鎖伸長用マイクロアレイ。 - 請求項20に記載のDNA鎖伸長用マイクロアレイにおいて、
前記プライマーは、5〜50個の塩基配列からなることを特徴とするDNA鎖伸長用マイクロアレイ。 - 請求項20に記載のDNA鎖伸長用マイクロアレイにおいて、
前記プライマーが、前記基板の前記p−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート基のp−ニトロフェニル基の部位で共有結合して、当該基板の表面に固定化されることを特徴とするDNA鎖伸長用マイクロアレイ。 - 請求項20に記載のDNA鎖伸長用マイクロアレイにおいて、
前記基板には一定の区画内に複数のスポットが設けられており、各スポットにプライマーが固定化されていることを特徴とするDNA鎖伸長用マイクロアレイ。
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