JP3865436B2 - 分岐シクロデキストリンの製造方法 - Google Patents
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Description
【発明の属する技術分野】
本発明は、分岐シクロデキストリンの製造方法に関し、詳しくは、酵素反応を利用した、シクロデキストリン(以下、CDと略記することがある。)のCD環を構成するグルコシル基の水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基を結合させたN−アセチルグルコサミニル−CD、CDの水酸基にβ結合でグルコサミニル基を結合させたグルコサミニル−CDおよびその塩、CDのCD環を構成するグルコシル基の水酸基にβ結合でN−アセチルガラクトサミニル基を結合させたN−アセチルガラクトサミニル−CDおよびCDのCD環を構成するグルコシル基の水酸基にβ結合でガラクトサミニル基を結合させたガラクトサミニル−CDおよびその塩の製造方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
CDは、グルコースがα−1,4結合で連なった環状デキストリンで、グルコース6,7,8個より成るそれぞれα−,β−およびγ−CDが良く知られている。最近ではCDの溶解度を改善するため、これらCDにα−1,6結合でグルコシル基やマルトシル基などの置換基を結合させた分岐CDが合成されている。
これらCDおよび分岐CDには分子内部に空洞があり、しかもこの空洞内部が疎水性になっているため、包接作用があり、各種油性物質を取り込む性質を有している。CDおよび分岐CDは、このような性質をもっているため、食品工業,化粧品工業,医薬品工業などの分野で広く使用されている。
特に医薬品工業の分野では、難水溶性薬剤を分岐CDに包接させることにより溶解度を上昇させ、結果として薬剤のバイオアベイラビリティーが増加することが注目されている。
【0003】
また、薬剤の副作用を少なくするため、糖質の細胞認識性に着目して、これをドラッグ・デリバリー・システムの薬剤運搬体の標識細胞へのセンサーとして利用する研究が活発に行われている。特に、ガラクトースは肝臓組織に、マンノースは肝臓実質細胞,肝臓非実質細胞,マクロファージに強い親和性を示すことが良く知られている。
すでに我々は、酵素の糖転移反応または縮合反応を利用してCDのグルコシル基にガラクトシル基またはマンノシル基が結合しているガラクトシル−CD,マンノシル−CDの開発に成功している。また、分岐CDの側鎖のグルコシル基にガラクトシル基またはマンノシル基が結合しているガラクトシル−分岐CD,マンノシル−分岐CDの開発に成功している。
【0004】
一方、N−アセチルグルコサミンおよびその脱アセチル化物であるグルコサミンはカニ,エビの主要な外殻成分であるキチンの構成糖であるが、細胞認識に重要な役割を示す糖鎖の基本的な構成糖でもある。
同様に、N−アセチルグルコサミンのアナログであるN−アセチルガラクトサミンも細胞認識に重要な役割を示す糖鎖の基本的な構成糖である。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】
本発明者らは、CDの有する包接作用とN−アセチルグルコサミンおよびグルコサミンの上記の特質を利用して、ドラッグ・デリバリー・システムに応用すること、難溶性薬剤の可溶化に応用することを目的としてN−アセチルグルコサミニル基をCDに結合させたN−アセチルグルコサミニル−CDの合成を試みた。
以前、本発明者らは、リゾチームをはじめとしたN−アセチルグルコサミニル基転移酵素がN−アセチルキトオリゴ糖化合物から分岐CDの分岐側鎖の水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基を転移結合させたN−アセチルグルコサミニル−分岐CDを効率よく合成することを見出した(特願平7−154102号明細書)。
しかしながら、上記の合成方法は、糖供与体として用いるN−アセチルキトオリゴ糖が高価であるという問題がある。
また、リゾチームをはじめとしたN−アセチルグルコサミニル基転移酵素は分岐CDを受容体とし、分岐側鎖部分にN−アセチルグルコサミニル基を結合することは可能であったが、分岐側鎖を有しないα−、β−およびγ−CDには直接N−アセチルグルコサミニル基を結合させることはできなかった。
【0006】
【課題を解決するための手段】
そこで、本発明者らは鋭意努力を重ねた結果、N−アセチルヘキソサミニダーゼがN−アセチルグルコサミンもしくはN−アセチルガラクトサミンとCDの混合溶液からN−アセチルグルコサミニル−CDもしくはN−アセチルガラクトサミニル−CDを効率よく合成することを見出し、この知見に基づいて本発明を完成したのである。
【0007】
すなわち、本発明はCDとN−アセチルグルコサミンまたはN−アセチルガラクトサミンを含有する溶液に、N−アセチルヘキソサミニダーゼを作用させて縮合反応を行うことを特徴とする、CDのCD環を構成するグルコシル基の水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基,グルコサミニル基,N−アセチルガラクトサミニル基およびガラクトサミニル基のいずれかが結合している分岐CDおよびその塩の製造方法に関する。
【0008】
【発明の実施の形態】
以下に本発明を詳細に説明する。
本発明の分岐CDは、いずれも新規物質であり、その具体例を示すと、例えば6−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−α−CD,6−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−β−CD,6−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−γ−CD,6−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−α−CD,6−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−β−CD,6−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−γ−CD,6−O−β−D−グルコサミニル−α−CD,6−O−β−D−グルコサミニル−β−CD,6−O−β−D−グルコサミニル−γ−CD,6−O−β−D−ガラクトサミニル−α−CD,6−O−β−D−ガラクトサミニル−β−CD,6−O−β−D−ガラクトサミニル−γ−CD,3−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−α−CD,3−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−β−CD,3−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−γ−CD,3−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−α−CD,3−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−β−CD,3−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−γ−CD,3−O−β−D−グルコサミニル−α−CD,3−O−β−D−グルコサミニル−β−CD,3−O−β−D−グルコサミニル−γ−CD,3−O−β−D−ガラクトサミニル−α−CD,3−O−β−D−ガラクトサミニル−β−CD,3−O−β−D−ガラクトサミニル−γ−CD,2−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−α−CD,2−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−β−CD,2−O−β−D−N−アセチルグルコサミニル−γ−CD,2−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−α−CD,2−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−β−CD,2−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−γ−CD,2−O−β−D−グルコサミニル−α−CD,2−O−β−D−グルコサミニル−β−CD,2−O−β−D−グルコサミニル−γ−CD,2−O−β−D−ガラクトサミニル−α−CD,2−O−β−D−ガラクトサミニル−β−CD,2−O−β−D−ガラクトサミニル−γ−CDなどを挙げることができる。
これらのうちの代表的な化合物の構造式(構造式1〜12)を下記に示す。なお、式中のnは5〜7を示す。
【0009】
【化1】
【0010】
【化2】
【0011】
【化3】
【0012】
【化4】
【0013】
【化5】
【0014】
【化6】
【0015】
【化7】
【0016】
【化8】
【0017】
【化9】
【0018】
【化10】
【0019】
【化11】
【0020】
【化12】
【0021】
本発明の分岐CDは、CDとN−アセチルグルコサミンまたはN−アセチルガラクトサミンを含有する溶液に、N−アセチルヘキソサミニダーゼを作用させ、さらに必要に応じて脱アセチル化することによって得られる。
ここで、脱アセチル化方法としては、例えばアルカリ溶液を作用させる方法(Sannan,T., K.Kurita, Y.Iwakura: Makromol. Chem., 177,3589-3600(1976)) 、イオン交換樹脂を使用する方法等の既知の方法を適用することができる。
【0022】
本発明において、CDとしてはα−CD,β−CDおよびγ−CDが主に使用されるが、これらCDの水酸基にα1,6結合でグルコシル−CD,マルトシル−CD,マンノシル−CD,ガラクトシル−CDなどの置換基が結合した分岐側鎖を有するものでもよい。また、これらの混合物であってもよい。
本発明に用いるN−アセチルグルコサミンおよびN−アセチルガラクトサミンは、純度の高いものを用いることが望ましいが、オリゴ糖を含むものでも使用することができる。
【0023】
次に、本発明に用いる酵素としては、N−アセチルヘキソサミニダーゼ,N−アセチルグルコサミニダーゼ,N−アセチルガラクトサミニダーゼをはじめとしてN−アセチルグルコサミンもしくはN−アセチルガラクトサミンとCDを含有する溶液に作用させたときに縮合反応、つまり加水分解反応の逆反応によって、そのN−アセチルグルコサミニル基もしくはN−アセチルガラクトサミニル基をCDにβ結合で結合させ、N−アセチルグルコサミニル−CDもしくはN−アセチルガラクトサミニル−CDを合成するものであれば、いずれの酵素も使用可能である。
本発明に用いる酵素は、自然界に広く分布しているものである。例えばN−アセチルヘキソサミニダーゼは、タチナタマメ等の植物に含まれている植物由来の酵素があり、N−アセチルグルコサミニダーゼとしては、牛腎臓に含まれる動物由来のものやアスペルギルス・ニガーの生産する微生物由来のものなどがある。N−アセチルガラクトサミニダーゼは、ホラ貝に含まれる動物由来、アクレモニウムに含まれる微生物由来のものなどがある。
【0024】
本発明の反応系において、CDとN−アセチルグルコサミンまたはN−アセチルガラクトサミン含む溶液(水溶液または懸濁液)は、CDの濃度が約1〜40%(w/w)、N−アセチルグルコサミンまたはN−アセチルガラクトサミンの濃度が約5〜50%(w/w)であることが望ましく、かつCDに対するN−アセチルグルコサミンまたはN−アセチルガラクトサミンの比率(重量)は、0.1〜50倍の範囲、好ましくは1〜5倍の範囲とするのが適当である。
反応液のpHは3〜10、好ましくは4〜7、温度は20〜70℃、好ましくは40〜60℃に調整して反応させることが適当である。
使用する酵素量は反応時間と密接な関係があるので、通常は反応が5〜200時間、好ましくは10〜50時間で終了するような酵素量とすればよいが、これらに限定されるものではない。
【0025】
本発明において、脱アセチル化反応は前記したように常法により行えばよく、例えば上記方法にて調製したN−アセチルグルコサミニル−CDもしくはN−アセチルガラクトサミニル−CDをアルカリ溶液で処理すればよい。このときの処理条件は、既知の方法に従えばよい。例えば、脱アセチル化の反応系はN−アセチルグルコサミニル−CDもしくはN−アセチルガラクトサミニル−CDの濃度を0.1〜50%(w/v)、好ましくは0.5〜10%(w/v)の範囲とするのが適当である。
脱アセチル化反応の際に用いるアルカリ溶液としては、水酸化ナトリウム溶液が好ましいものではあるが、脱アセチル化反応が進行するものであればこれに限定されるものではない。
また、反応温度,濃度,アルカリ溶液の種類等は相互に密接に影響を受けるので、通常は水酸化ナトリウム溶液濃度0.1〜50%(w/v)、温度10〜100℃、反応時間0.1〜120時間の範囲とするのが適当であるが、これらに限定されるものではない。
脱アセチル化反応終了後は、酸を滴下することによって中和、脱塩した後、必要に応じて、精製し目的物とすればよい。
【0026】
以上のような方法で反応させて得られた液を、カラムクロマトグラフィーおよび高速液体クロマトグラフィーにかけて、生成物を分画・分取した後、FAB−MSによる分子量測定および核磁気共鳴法(NMR)により構造解析を行った結果、前記の構造式1〜12に代表される分岐CDであることを確認した。
【0027】
【実施例】
次に、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
実施例1
(1)縮合反応
N−アセチルグルコサミン1.11g,α−CD1.22gを含む20mMクエン酸緩衝液(pH5.0)5mlに、タチナタ豆由来のN−アセチルヘキソサミニダーゼを50U加え、45℃にて72時間反応させた。
反応液の一部をアミド系カラム(東ソー(株)社製、Amide−80)および逆相カラム(YMC(株)社製、ODS−AQ303)を用いた高速液体クロマトグラフィーにより分析した。結果を図1および2に示す。
反応終了後、酵素を熱失活させた溶液を逆相カラムを用いた高速液体クロマトグラフィーにかけて主生成物Aを100mg、生成物Bを5mg分取した。
(2)構造解析
上記(1)で単離された主生成物Aは、図3に示すように、FAB−MS分析により、分子量は1175であることがわかった。また、13C−NMR解析により、この物質は図4に示すように、α−CDの6位の1級水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基が結合した化合物6−O−β−D−Nアセチルグルコサミニル−αCD(前記構造式1の化合物;n=5)であることが確認された。
【0028】
一方、生成物Bは、FAB−MS分析により分子量が1175であることがわかった。また、少量の生成物Bを20mMクエン酸緩衝液(pH5.0)に溶解してN−アセチルヘキソサミニダーゼ処理を行った後、HPLC分析を行った。
その結果、N−アセチルグルコサミンとα−CD等モルに分解された。このことから、転移生成物Bはα−CDの2級水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基が結合した化合物(前記構造式5もしくは9の化合物;n=5)であることが判明した。
【0029】
実施例2
(1)縮合反応
N−アセチルグルコサミン1.11gとβ−CD0.567gを含む20mMクエン酸緩衝液(pH5.0)5mlに、実施例1で用いたN−アセチルヘキソサミニダーゼを50U加え、45℃にて72時間反応させた。反応液の一部をアミド系カラムを用いた高速液体クロマトグラフィーにより分析した結果を図5に示す。
反応終了後、酵素を熱失活させた溶液を逆相カラムを用いた高速液体クロマトグラフィーにかけて主生成物Cを40mgと生成物Dを3mg分取した。
(2)構造解析
上記(1)で単離された主生成物Cは、FAB−MS分析により、分子量は1337であることがわかった。したがって、実施例1の結果も踏まえて、この生成物Cはβ−CDの6位の1級水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基が結合した化合物(前記構造式1の化合物;n=6)であることが確認された。
【0030】
一方、生成物Dは、FAB−MS分析により分子量が1337であることがわかった。また、少量の生成物Dを20mMクエン酸緩衝液(pH5.0)に溶解し、N−アセチルヘキソサミニダーゼ処理を行った後、HPLC分析を行った。
その結果、N−アセチルグルコサミンとβ−CD等モルに分解された。このことから、実施例1の結果も踏まえて、生成物Dはβ−CDの2級水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基が結合した化合物(構造式5もしくは9の化合物;n=6)であること推察された。
【0031】
実施例3
N−アセチルグルコサミン1.11gとγ−CD1.62gを含む20mMクエン酸緩衝液(pH5.0)5mlに、実施例1で用いたN−アセチルヘキソサミニダーゼを50U加え、45℃にて72時間反応させた。反応液の一部をアミド系カラムを用いた高速液体クロマトグラフィーにより分析した結果を図6に示す。
反応終了後、酵素を熱失活させた溶液を高速液体クロマトグラフィーにかけて主生成物Eを200mg、生成物Fを6mg分取した。
(2)構造解析
上記(1)で単離された主生成物Eは、FAB−MS分析により分子量は1499であることがわかった。したがって、実施例1の結果も踏まえて、この生成物Eはγ−CDの6位の1級水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基が結合した化合物(前記構造式1の化合物;n=7)であることが確認された。
【0032】
一方、生成物Fは、FAB−MS分析により分子量が1499であることがわかった。また、少量の生成物Fを20mMクエン酸緩衝液(pH5.0)に溶解し、N−アセチルヘキソサミニダーゼ処理を行った後、HPLC分析を行った。
その結果、N−アセチルグルコサミンとγ−CD等モルに分解された。このことから、実施例1の結果も踏まえて、生成物Fはγ−CDの2級水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基が結合した化合物(前記構造式5もしくは9の化合物;n=7)であること推察された。
【0033】
実施例4
(1)縮合反応
N−アセチルガラクトサミン1.11gとα−CD1.22gを含む20mMクエン酸緩衝液(pH5.0)5mlに実施例1で用いたN−アセチルヘキソサミニダーゼを50U加え、45℃にて72時間反応させた。反応液の一部をアミド系カラムおよび逆相カラムを用いた高速液体クロマトグラフィーにより分析した結果を図7および8に示す。
反応終了後、酵素を熱失活させた溶液を逆相カラムを用いた高速液体クロマトグラフィーにかけて主生成物Gを83mg、生成物Hを5mg分取した。
(2)構造解析
上記(1)で単離された主生成物Gは、FAB−MS分析により分子量は1175であることがわかった。また、この物質は、13C−NMR解析により、図9に示すように、α−CDの6位の1級水酸基にβ結合でN−アセチルガラクトサミニル基が結合した化合物6−O−β−D−N−アセチルガラクトサミニル−αCD(前記構造式2の化合物;n=5)であることが確認された。
【0034】
一方、生成物Hは、FAB−MS分析により分子量が1175であることがわかった。また、少量の生成物Hを20mMクエン酸緩衝液(pH5.0)に溶解し、N−アセチルヘキソサミニダーゼ処理を行った後、HPLC分析を行った結果、N−アセチルガラクトサミンとα−CD等モルに分解された。このことから、生成物Hはα−CDの2級水酸基にβ結合でN−アセチルガラクトサミニル基が結合した化合物(構造式6もしくは10の化合物;n=5)であることがわかった。
【0035】
実施例5
実施例1で得られたN−アセチルグルコサミニル−αCD(前記構造式1の化合物;n=5)25mgを濃度1%となるように20%水酸化ナトリウム溶液を調製し、80℃で3時間反応を行った。
反応終了後、濃塩酸を滴下してpHを中性まで下げた。脱塩装置(旭化成株式会社製、マイクロアシライザーG1)を用いて反応液から塩を除き、脱アセチル化物、つまりα−CDの6位の水酸基にβ結合でグルコサミニル基が結合した化合物(前記構造式3の化合物;n=5)を20mg得た。
【0036】
実施例6
実施例4で得られたN−アセチルガラクトサミニル−αCD(前記構造式2の化合物;n=5)25mgを濃度1%となるように20%水酸化ナトリウム溶液を調製し、80℃で3時間反応させた。
反応終了後、濃塩酸を滴下してpHを中性まで下げた。脱塩装置(旭化成株式会社製、マイクロアシライザ−G1)を用いて反応液から塩を除き、脱アセチル化物、つまりα−CDの6位の水酸基にβ結合でガラクトサミニル基が結合した化合物(前記構造式4の化合物;n=5)を20mgを得た。
【0037】
【発明の効果】
本発明によれば、酵素の縮合反応を利用して、CD分子中のCD環を構成するグルコシル基の水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基またはN−アセチルガラクトサミニル基が結合している新規分岐CDを効率よく得ることができる。また、これらを脱アセチル化処理することによって、CD分子中のCD環を構成するグルコシル基の水酸基にβ結合でグルコサミニル基またはガラクトサミニル基が結合している新規分岐CDを効率よく得ることができる。
本発明の新規分岐CDは、医薬品分野の他に食品分野,化粧品分野等における幅広い利用が期待される。
【図面の簡単な説明】
【図1】 実施例1の反応液のアミド系カラムを用いた高速液体クロマトグラフである。
【図2】 実施例1の反応液の逆相系カラムを用いた高速液体クロマトグラフである。
【図3】 実施例1の反応生成物AのFAB−MSスペクトルである。
【図4】 実施例1の反応生成物Aの13C−NMRスペクトルである。
【図5】 実施例2の反応液のアミド系カラムを用いた高速液体クロマトグラフである。
【図6】 実施例3の反応液のアミド系カラムを用いた高速液体クロマトグラフである。
【図7】 実施例4の反応液のアミド系カラムを用いた高速液体クロマトグラフである。
【図8】 実施例4の反応液の逆相系カラムを用いた高速液体クロマトグラフである。
【図9】 実施例4の反応生成物Gの13C−NMRスペクトルである。
Claims (2)
- シクロデキストリンとN−アセチルグルコサミンまたはN−アセチルガラクトサミンを含有する溶液に、N−アセチルヘキソサミニダーゼを作用させて縮合反応を行うことを特徴とする、シクロデキストリンのシクロデキストリン環を構成するグルコシル基の水酸基にβ結合でN−アセチルグルコサミニル基,グルコサミニル基,N−アセチルガラクトサミニル基およびガラクトサミニル基のいずれかが結合している分岐シクロデキストリンおよびその塩の製造方法。
- シクロデキストリンがα−,β−およびγ−シクロデキストリンまたはこれらシクロデキストリンの水酸基にβ1,6結合で置換基が結合したもののいずれかである請求項1記載の分岐シクロデキストリンおよびその塩の製造方法。
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