JP3423085B2 - 免疫測定法 - Google Patents
免疫測定法Info
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Description
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、抗原抗体反応の妨害物
質であるリウマチ因子の影響を回避することができる免
疫測定法に関する。 【０００２】 【従来の技術】免疫測定法は、尿、血清、組織片等のヒ
トから採取した生体成分を検体として分析、同定し、そ
の中の微量成分を検出することにより、疾病等の生体の
異常を診断する臨床検査法であり、抗原抗体反応の反応
特異性、結合強度等を利用する方法として、広く用いら
れている。しかし、免疫測定法の測定対象となる検体中
には、個体特性、採取条件等により、生体成分であるリ
ウマチ因子（以下「ＲＦ」という）等が混在しており、
これらが抗原抗体反応を妨害し、誤診を起こすので、こ
れら妨害物質の影響を解消、軽減する種々の手法が検討
されている。 【０００３】生体成分を検体とする免疫測定法では、抗
原抗体反応を起こす条件を生体内の状態に近づける目的
で、試薬系のｐＨを６．０〜８．０の中性付近に調整す
ることが通例であった。しかし、こうした条件下では、
稀に検体中のＲＦが、試薬系に含まれる抗原又は抗体と
反応し、自己凝集を引き起こすことがあった。ＲＦは、
自己抗体であり、変性ヒト抗体分子のＦｃ部分に対して
反応することが知られているが、ＲＦ濃度、純度等が特
定の条件下では異種抗体分子に対して反応するケースも
あり、これが異種抗体を用いた臨床検査で抗原抗体の特
異的反応を妨害する。こうしたＲＦによる測定の妨害を
回避するため、検定の前に血清中の内因性のＲＦを不活
性化するか、又は、除去する等の前処理が通常必要で、
この前処理をしなければ測定の結果は著しい誤差を生じ
る場合がある。 【０００４】特開昭５４−１１９２９２号公報には、こ
の妨害反応を回避する目的で、異種抗体分子のＦｃ部分
を酵素反応で取り除いたＦ（ａｂ′）2 分子を、抗体と
して用いる免疫測定法が開示されている。しかしなが
ら、このような免疫測定法は、酵素反応、精製等の原料
調製のための煩雑な工程が加わるため、コストアップ、
製造ロット間差につながる場合があった。 【０００５】上述のように、従来の免疫測定法では、検
査の煩雑さ、遅延化につながり、試薬製造工程を繁雑に
し、製造ロット間差を引き起こす等の問題があった。そ
こで、これら問題を回避するため、抗体分子を酵素処理
しない試薬を用いて、採取した生体成分を測定する方法
の確立が望まれていた。 【０００６】 【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記に鑑
み、リウマチ因子と異種抗体分子との相互作用を軽減
し、リウマチ因子の測定への影響を回避することができ
る免疫測定法を提供することを目的とする。 【０００７】 【問題を解決するための手段】本発明の要旨は、ヤギ由
来の抗体をラテックス粒子に担持させたラテックス試薬
と検体とを混合し、免疫凝集反応により抗原を測定する
免疫測定法において、検体のｐＨを一旦１〜４に低下さ
せる前処理をすることなく、反応液のｐＨを、４．０〜
６．０に維持するところに存する。 【０００８】上記ラテックス粒子に担持させる抗体は、
ヤギ由来の抗体である。上記ラテックス粒子としては特
に限定されず、例えば、有機高分子粉末等が挙げられ
る。上記有機高分子粉末の素材としては、例えば、ポリ
スチレン、スチレン−スルホン酸塩共重合体、メタクリ
ル酸重合体、アクリル酸重合体、アクリロニトリル−ブ
タジエン−スチレン共重合体、塩化ビニル−アクリル酸
エステル共重合体、ポリ酢酸ビニル−アクリレート共重
合体等の重合体等が挙げられる。特にこれらの重合体の
粒子粉末を均一に懸濁させたラテックス等が好適に用い
られる。 【０００９】上記ラテックス粒子の平均粒径は、検体中
の抗原の検出方法、検出濃度又は検出機器等によって適
宜選択されるが、通常０．０５〜１．０μｍであり、な
かでも０．０５〜０．５μｍが好ましい。 【００１０】上記抗体を上記ラテックス粒子に担持させ
るには、通常の化学結合又は物理吸着が適用でき、上記
ラテックス試薬を得ることができる。上記ラテックス試
薬と検体中の抗原との免疫凝集反応を行う反応液のｐＨ
は、４．０〜６．０である。ｐＨが４．０未満である
と、ラテックスの自己凝集、抗原抗体反応の抑制等がお
こり、検量線が高値で再現性が悪く、目的とする反応性
を得ることができず、ｐＨが６．０を超えると、ＲＦが
ＣＲＰ測定値に影響を与えて本発明の目的を達成できな
いので、上記範囲に限定される。 【００１１】上記反応液を構成する緩衝液としては、測
定条件により適宜選択されるが、例えば、リン酸緩衝
液、リン酸−クエン酸緩衝液、酢酸−酢酸ナトリウム緩
衝液等が挙げられる。 【００１２】上記ラテックス試薬には、保存安定性を向
上させる目的で、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、塩化コ
リン等の第４級アンモニウム塩；糖類等の安定化剤等を
添加することができる。 【００１３】また、上記ラテックス試薬の凝集反応を促
進する目的で、緩衝液中に、ポリエチレングリコール、
デキストラン等の水溶性高分子を添加することも有効で
ある。 【００１４】上記反応を行う場合の反応温度は、４〜５
０℃が好ましく、２０〜４０℃がより好ましい。本発明
の免疫測定法においては、通常の光学的測定法を適用で
き、例えば、散乱光強度、吸光度又は粒子数のいずれを
測定してもよい。測定波長は、一般に３００〜１０００
ｎｍを使用することができる。 【００１５】 【実施例】以下に実施例を掲げて本発明を更に詳しく説
明するが、本発明はこれら実施例のみに限定されるもの
ではない。 【００１６】実施例１〜２及び比較例１〜３ ヒトＣＲＰ測定用ラテックス試薬の反応液のｐＨを調製
し、ＣＲＰ測定値に与えるＲＦの影響を調べた。ラテックス試薬の調製 約０．１５μｍの粒子サイズのポリスチレンラテックス
粒子１ｇに対し、ヤギ由来抗ヒトＣＲＰ抗体を０．１ｇ
の割合で吸着させ、Ｂ／Ｆ分離後、１％牛血清アルブミ
ンを含む３６ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．５）中にラテ
ックス濃度５．０ｇ／ｌとなるよう懸濁させたヒトＣＲ
Ｐ測定用ラテックス試薬を用いた。 【００１７】ラテックス希釈液の調製 上記ヒトＣＲＰ測定用ラテックス試薬を用いて、血清中
のＣＲＰを測定する場合に、反応性、ｐＨ等を調整する
目的でラテックス希釈液を用いることがあり、ｐＨの効
果を調べる目的で、希釈液にｐＨの異なる緩衝液を用
い、反応液のｐＨを変えて測定を行った。上記希釈液に
は、１％牛血清アルブミンを含む２０ｍＭクエン酸−リ
ン酸緩衝液を使用し、クエン酸−リン酸の混合比を変え
ることで最終測定時のｐＨが３．５（比較例１），４．
５（実施例１），５．５（実施例２），６．５（比較例
２），７．５（比較例３）となるようにｐＨを調整し
た。 【００１８】測定方法 測定には、日立７１５０形自動分析装置（日立製作所社
製）を用いて測定波長７００ｎｍで行った。以下にその
手順を示した。先ず、水ブランクの吸光度を測定し、次
いで検体（Ｓ）と第一試薬（Ｒ１）２５０μｌとを添加
し、Ｒ１添加後、測定終了までの１０分間の反応液の吸
光度を２０秒間隔で測定し、水ブランク値を差し引いた
値を吸光度として用いた。第２試薬（Ｒ２）２５０μｌ
の添加は、Ｒ１の添加５分後に行った。即ち、Ｒ１の添
加から５分間以内の吸光度測定は、ＳとＲ１の反応液に
ついて、一方、Ｒ１の添加から５分後以降の吸光度測定
は、ＳとＲ２の反応液について行った。 【００１９】ここでは、０濃度標準品（ｐｏｓｉｔｉｏ
ｎ １）に生理食塩水、ＣＲＰ標準品（ｐｏｓｉｔｉｏ
ｎ ２）に５．０ｍｇ／ｄｌＣＲＰ標準血清（極東製薬
社製）を用いて出力の更正を行った。即ち、５．０ｍｇ
／ｄｌ標準血清による吸光度の上昇分を演算処理により
求め、これを５．０〔ｍｇ／ｄｌ〕と読み替え、更正後
に出力するデータは、検体と標準血清の吸光度上昇分の
比から、濃度換算した値となる。例えば、検体による吸
光度上昇分が、標準血清の１／２であれば、出力データ
は、５．０×１／２＝２．５〔ｍｇ／ｄｌ〕となる。 【００２０】ＲＦの影響確認試験 ＲＦの影響の有無の確認試験は、ＲＦの添加試験により
行った。即ち、既知濃度のＣＲＰ陽性血清（約０．５ｍ
ｇ／ｄｌ）にＲＦを添加し、ＣＲＰ測定値の変化の有無
を確認した。日常の臨床検査でＲＦ陽性検体が測定値に
影響を与えるケースは非常に稀であるが、高度に精製さ
れたＲＦ溶液を用いると、同じような現象を再現するこ
とができるため、今回の試験では、精製ＲＦとして干渉
チェックＲＦ（国際試薬社製）を使用した。精製水によ
り復元した干渉チェックＲＦを、ＣＲＰ陽性血清４容に
対し、ＲＦ溶液（５濃度）１容の割合で添加し、最終的
にＲＦが０、１００、２００、３００、４００ＩＵ／ｍ
ｌ含まれる被験検体を調製し、標準品による更正後測定
した。結果を表１に示した。 【００２１】比較例２及び比較例３（ｐＨ６．５〜７．
５）の測定条件では、ＲＦ添加濃度の上昇に伴い、測定
値の上昇が認められた。即ち、ＲＦがＣＲＰ測定値に影
響を与えていることがわかった。一方、比較例１、実施
例１及び実施例２（ｐＨ３．５〜５．５）では、測定値
はほとんど変わらなかった。 【００２２】 【表１】 【００２３】実施例３〜４及び比較例４〜６ 反応液のｐＨを変えたときの試薬性能を希釈直線性試験
により確認した。実施例１と同様にしてヒトＣＲＰ測定
用ラテックス試薬、ラテックス希釈液を調製し、ｐＨ
３．５のラテックス希釈液を比較例４、ｐＨ４．５のラ
テックス希釈液を実施例３、ｐＨ５．５のラテックス希
釈液を実施例４、ｐＨ６．５のラテックス希釈液を比較
例５、ｐＨ７．５のラテックス希釈液を比較例６として
測定を行い、試薬性能を比較した。 【００２４】約２０ｍｇ／ｄｌのＣＲＰ陽性血清（ＡＴ
ＡＢ社製）を、生理食塩水により希釈し、１／１０〜１
０／１０ＣＲＰ濃度の１０段階ＣＲＰ希釈列を調製し
た。標準品による更正後、０濃度（生理食塩水）及び１
０段階濃度ＣＲＰ希釈列をｎ＝３にて測定し、その平均
値を算出し、グラフにプロットした。結果を図１に示し
た。 【００２５】比較例４（ｐＨ３．５）の反応液ではＣＲ
Ｐ高値における測定値の低下が認められ、通常の反応性
を得ることができなかった。こうした劣化は、ラテック
スの自己凝集、抗原抗体反応の抑制等によるものと考え
られる。一方、実施例３〜４及び比較例５〜６（ｐＨ
４．５〜７．５）の測定条件では、ほぼ同等の希釈直線
性能を示した。 【００２６】 【発明の効果】本発明の免疫測定法は、上述の構成より
なるので、検体の前処理、試薬原料の加工を行うことな
く、目的とする抗原を特異的に精度よく測定することが
できる。
質であるリウマチ因子の影響を回避することができる免
疫測定法に関する。 【０００２】 【従来の技術】免疫測定法は、尿、血清、組織片等のヒ
トから採取した生体成分を検体として分析、同定し、そ
の中の微量成分を検出することにより、疾病等の生体の
異常を診断する臨床検査法であり、抗原抗体反応の反応
特異性、結合強度等を利用する方法として、広く用いら
れている。しかし、免疫測定法の測定対象となる検体中
には、個体特性、採取条件等により、生体成分であるリ
ウマチ因子（以下「ＲＦ」という）等が混在しており、
これらが抗原抗体反応を妨害し、誤診を起こすので、こ
れら妨害物質の影響を解消、軽減する種々の手法が検討
されている。 【０００３】生体成分を検体とする免疫測定法では、抗
原抗体反応を起こす条件を生体内の状態に近づける目的
で、試薬系のｐＨを６．０〜８．０の中性付近に調整す
ることが通例であった。しかし、こうした条件下では、
稀に検体中のＲＦが、試薬系に含まれる抗原又は抗体と
反応し、自己凝集を引き起こすことがあった。ＲＦは、
自己抗体であり、変性ヒト抗体分子のＦｃ部分に対して
反応することが知られているが、ＲＦ濃度、純度等が特
定の条件下では異種抗体分子に対して反応するケースも
あり、これが異種抗体を用いた臨床検査で抗原抗体の特
異的反応を妨害する。こうしたＲＦによる測定の妨害を
回避するため、検定の前に血清中の内因性のＲＦを不活
性化するか、又は、除去する等の前処理が通常必要で、
この前処理をしなければ測定の結果は著しい誤差を生じ
る場合がある。 【０００４】特開昭５４−１１９２９２号公報には、こ
の妨害反応を回避する目的で、異種抗体分子のＦｃ部分
を酵素反応で取り除いたＦ（ａｂ′）2 分子を、抗体と
して用いる免疫測定法が開示されている。しかしなが
ら、このような免疫測定法は、酵素反応、精製等の原料
調製のための煩雑な工程が加わるため、コストアップ、
製造ロット間差につながる場合があった。 【０００５】上述のように、従来の免疫測定法では、検
査の煩雑さ、遅延化につながり、試薬製造工程を繁雑に
し、製造ロット間差を引き起こす等の問題があった。そ
こで、これら問題を回避するため、抗体分子を酵素処理
しない試薬を用いて、採取した生体成分を測定する方法
の確立が望まれていた。 【０００６】 【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記に鑑
み、リウマチ因子と異種抗体分子との相互作用を軽減
し、リウマチ因子の測定への影響を回避することができ
る免疫測定法を提供することを目的とする。 【０００７】 【問題を解決するための手段】本発明の要旨は、ヤギ由
来の抗体をラテックス粒子に担持させたラテックス試薬
と検体とを混合し、免疫凝集反応により抗原を測定する
免疫測定法において、検体のｐＨを一旦１〜４に低下さ
せる前処理をすることなく、反応液のｐＨを、４．０〜
６．０に維持するところに存する。 【０００８】上記ラテックス粒子に担持させる抗体は、
ヤギ由来の抗体である。上記ラテックス粒子としては特
に限定されず、例えば、有機高分子粉末等が挙げられ
る。上記有機高分子粉末の素材としては、例えば、ポリ
スチレン、スチレン−スルホン酸塩共重合体、メタクリ
ル酸重合体、アクリル酸重合体、アクリロニトリル−ブ
タジエン−スチレン共重合体、塩化ビニル−アクリル酸
エステル共重合体、ポリ酢酸ビニル−アクリレート共重
合体等の重合体等が挙げられる。特にこれらの重合体の
粒子粉末を均一に懸濁させたラテックス等が好適に用い
られる。 【０００９】上記ラテックス粒子の平均粒径は、検体中
の抗原の検出方法、検出濃度又は検出機器等によって適
宜選択されるが、通常０．０５〜１．０μｍであり、な
かでも０．０５〜０．５μｍが好ましい。 【００１０】上記抗体を上記ラテックス粒子に担持させ
るには、通常の化学結合又は物理吸着が適用でき、上記
ラテックス試薬を得ることができる。上記ラテックス試
薬と検体中の抗原との免疫凝集反応を行う反応液のｐＨ
は、４．０〜６．０である。ｐＨが４．０未満である
と、ラテックスの自己凝集、抗原抗体反応の抑制等がお
こり、検量線が高値で再現性が悪く、目的とする反応性
を得ることができず、ｐＨが６．０を超えると、ＲＦが
ＣＲＰ測定値に影響を与えて本発明の目的を達成できな
いので、上記範囲に限定される。 【００１１】上記反応液を構成する緩衝液としては、測
定条件により適宜選択されるが、例えば、リン酸緩衝
液、リン酸−クエン酸緩衝液、酢酸−酢酸ナトリウム緩
衝液等が挙げられる。 【００１２】上記ラテックス試薬には、保存安定性を向
上させる目的で、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、塩化コ
リン等の第４級アンモニウム塩；糖類等の安定化剤等を
添加することができる。 【００１３】また、上記ラテックス試薬の凝集反応を促
進する目的で、緩衝液中に、ポリエチレングリコール、
デキストラン等の水溶性高分子を添加することも有効で
ある。 【００１４】上記反応を行う場合の反応温度は、４〜５
０℃が好ましく、２０〜４０℃がより好ましい。本発明
の免疫測定法においては、通常の光学的測定法を適用で
き、例えば、散乱光強度、吸光度又は粒子数のいずれを
測定してもよい。測定波長は、一般に３００〜１０００
ｎｍを使用することができる。 【００１５】 【実施例】以下に実施例を掲げて本発明を更に詳しく説
明するが、本発明はこれら実施例のみに限定されるもの
ではない。 【００１６】実施例１〜２及び比較例１〜３ ヒトＣＲＰ測定用ラテックス試薬の反応液のｐＨを調製
し、ＣＲＰ測定値に与えるＲＦの影響を調べた。ラテックス試薬の調製 約０．１５μｍの粒子サイズのポリスチレンラテックス
粒子１ｇに対し、ヤギ由来抗ヒトＣＲＰ抗体を０．１ｇ
の割合で吸着させ、Ｂ／Ｆ分離後、１％牛血清アルブミ
ンを含む３６ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．５）中にラテ
ックス濃度５．０ｇ／ｌとなるよう懸濁させたヒトＣＲ
Ｐ測定用ラテックス試薬を用いた。 【００１７】ラテックス希釈液の調製 上記ヒトＣＲＰ測定用ラテックス試薬を用いて、血清中
のＣＲＰを測定する場合に、反応性、ｐＨ等を調整する
目的でラテックス希釈液を用いることがあり、ｐＨの効
果を調べる目的で、希釈液にｐＨの異なる緩衝液を用
い、反応液のｐＨを変えて測定を行った。上記希釈液に
は、１％牛血清アルブミンを含む２０ｍＭクエン酸−リ
ン酸緩衝液を使用し、クエン酸−リン酸の混合比を変え
ることで最終測定時のｐＨが３．５（比較例１），４．
５（実施例１），５．５（実施例２），６．５（比較例
２），７．５（比較例３）となるようにｐＨを調整し
た。 【００１８】測定方法 測定には、日立７１５０形自動分析装置（日立製作所社
製）を用いて測定波長７００ｎｍで行った。以下にその
手順を示した。先ず、水ブランクの吸光度を測定し、次
いで検体（Ｓ）と第一試薬（Ｒ１）２５０μｌとを添加
し、Ｒ１添加後、測定終了までの１０分間の反応液の吸
光度を２０秒間隔で測定し、水ブランク値を差し引いた
値を吸光度として用いた。第２試薬（Ｒ２）２５０μｌ
の添加は、Ｒ１の添加５分後に行った。即ち、Ｒ１の添
加から５分間以内の吸光度測定は、ＳとＲ１の反応液に
ついて、一方、Ｒ１の添加から５分後以降の吸光度測定
は、ＳとＲ２の反応液について行った。 【００１９】ここでは、０濃度標準品（ｐｏｓｉｔｉｏ
ｎ １）に生理食塩水、ＣＲＰ標準品（ｐｏｓｉｔｉｏ
ｎ ２）に５．０ｍｇ／ｄｌＣＲＰ標準血清（極東製薬
社製）を用いて出力の更正を行った。即ち、５．０ｍｇ
／ｄｌ標準血清による吸光度の上昇分を演算処理により
求め、これを５．０〔ｍｇ／ｄｌ〕と読み替え、更正後
に出力するデータは、検体と標準血清の吸光度上昇分の
比から、濃度換算した値となる。例えば、検体による吸
光度上昇分が、標準血清の１／２であれば、出力データ
は、５．０×１／２＝２．５〔ｍｇ／ｄｌ〕となる。 【００２０】ＲＦの影響確認試験 ＲＦの影響の有無の確認試験は、ＲＦの添加試験により
行った。即ち、既知濃度のＣＲＰ陽性血清（約０．５ｍ
ｇ／ｄｌ）にＲＦを添加し、ＣＲＰ測定値の変化の有無
を確認した。日常の臨床検査でＲＦ陽性検体が測定値に
影響を与えるケースは非常に稀であるが、高度に精製さ
れたＲＦ溶液を用いると、同じような現象を再現するこ
とができるため、今回の試験では、精製ＲＦとして干渉
チェックＲＦ（国際試薬社製）を使用した。精製水によ
り復元した干渉チェックＲＦを、ＣＲＰ陽性血清４容に
対し、ＲＦ溶液（５濃度）１容の割合で添加し、最終的
にＲＦが０、１００、２００、３００、４００ＩＵ／ｍ
ｌ含まれる被験検体を調製し、標準品による更正後測定
した。結果を表１に示した。 【００２１】比較例２及び比較例３（ｐＨ６．５〜７．
５）の測定条件では、ＲＦ添加濃度の上昇に伴い、測定
値の上昇が認められた。即ち、ＲＦがＣＲＰ測定値に影
響を与えていることがわかった。一方、比較例１、実施
例１及び実施例２（ｐＨ３．５〜５．５）では、測定値
はほとんど変わらなかった。 【００２２】 【表１】 【００２３】実施例３〜４及び比較例４〜６ 反応液のｐＨを変えたときの試薬性能を希釈直線性試験
により確認した。実施例１と同様にしてヒトＣＲＰ測定
用ラテックス試薬、ラテックス希釈液を調製し、ｐＨ
３．５のラテックス希釈液を比較例４、ｐＨ４．５のラ
テックス希釈液を実施例３、ｐＨ５．５のラテックス希
釈液を実施例４、ｐＨ６．５のラテックス希釈液を比較
例５、ｐＨ７．５のラテックス希釈液を比較例６として
測定を行い、試薬性能を比較した。 【００２４】約２０ｍｇ／ｄｌのＣＲＰ陽性血清（ＡＴ
ＡＢ社製）を、生理食塩水により希釈し、１／１０〜１
０／１０ＣＲＰ濃度の１０段階ＣＲＰ希釈列を調製し
た。標準品による更正後、０濃度（生理食塩水）及び１
０段階濃度ＣＲＰ希釈列をｎ＝３にて測定し、その平均
値を算出し、グラフにプロットした。結果を図１に示し
た。 【００２５】比較例４（ｐＨ３．５）の反応液ではＣＲ
Ｐ高値における測定値の低下が認められ、通常の反応性
を得ることができなかった。こうした劣化は、ラテック
スの自己凝集、抗原抗体反応の抑制等によるものと考え
られる。一方、実施例３〜４及び比較例５〜６（ｐＨ
４．５〜７．５）の測定条件では、ほぼ同等の希釈直線
性能を示した。 【００２６】 【発明の効果】本発明の免疫測定法は、上述の構成より
なるので、検体の前処理、試薬原料の加工を行うことな
く、目的とする抗原を特異的に精度よく測定することが
できる。
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例３〜４及び比較例４〜６の検量線。縦軸
は、測定値（ｍｇ／ｄｌ）を、横軸は、濃度（ｍｇ／ｄ
ｌ）を、それぞれ表す。
は、測定値（ｍｇ／ｄｌ）を、横軸は、濃度（ｍｇ／ｄ
ｌ）を、それぞれ表す。
Claims (1)
- (57)【特許請求の範囲】 【請求項１】 ヤギ由来の抗体をラテックス粒子に担持
させたラテックス試薬と検体とを混合し、免疫凝集反応
により抗原を測定する免疫測定法において、検体のｐＨ
を一旦１〜４に低下させる前処理をすることなく、反応
液のｐＨを、４．０〜６．０に維持することを特徴とす
る免疫測定法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP28323394A JP3423085B2 (ja) | 1994-11-17 | 1994-11-17 | 免疫測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP28323394A JP3423085B2 (ja) | 1994-11-17 | 1994-11-17 | 免疫測定法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH08146000A JPH08146000A (ja) | 1996-06-07 |
| JP3423085B2 true JP3423085B2 (ja) | 2003-07-07 |
Family
ID=17662817
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP28323394A Expired - Lifetime JP3423085B2 (ja) | 1994-11-17 | 1994-11-17 | 免疫測定法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP3423085B2 (ja) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR102181485B1 (ko) | 2016-10-19 | 2020-11-23 | 에이껜 가가꾸 가부시끼가이샤 | 면역학적 측정 방법 및 측정 시약 |
| JP6857939B2 (ja) * | 2016-10-19 | 2021-04-14 | 栄研化学株式会社 | 免疫学的測定方法および測定試薬 |
-
1994
- 1994-11-17 JP JP28323394A patent/JP3423085B2/ja not_active Expired - Lifetime
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| Publication number | Publication date |
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| JPH08146000A (ja) | 1996-06-07 |
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