JP2896235B2 - Topical fibrinogen complex - Google Patents

Description

【発明の詳細な説明】 本発明の背景 発明の分野 本発明は、フィブリノーゲン組成物及びその製造方法
に関し、その化合物はトロンビン及びカルシウムと組み
合わせて傷の閉鎖のために使用することができる。Description: BACKGROUND OF THE INVENTION Field of the Invention The present invention relates to fibrinogen compositions and methods for their manufacture, which compounds can be used in combination with thrombin and calcium for wound closure.

関連技術 局所的止血を達成するためのフィブリノーゲンの使用
の試みは、止血のためのフィブリノーゲンパッチが脳外
科において使用された20世紀初期というはるか昔に研究
された。後に、皮膚移植及び結核の治療における空洞内
注射のために、血漿とトロンビンとの混合物が使用され
た。しかしながら、これらの初期の試みは、２つの主な
欠点を有していた。すなわち、フィブリノーゲンの源が
血漿であったことから、フィブリノーゲンの濃度が低く
不十分な強さのフィブリンフィルムしかもたらさず、そ
して、フィブリンフィルムが比較的素早く分解されてし
まうような線溶の正常の生理学的過程を阻害することが
できなかった。Related Art Attempts to use fibrinogen to achieve local hemostasis were studied long before the early 20th century when fibrinogen patches for hemostasis were used in neurosurgery. Later, a mixture of plasma and thrombin was used for intracavitary injection in skin transplantation and treatment of tuberculosis. However, these early attempts had two major disadvantages. That is, since the source of fibrinogen was plasma, a low fibrinogen concentration would result in an insufficiently strong fibrin film, and the normal physiology of fibrinolysis such that the fibrin film would be degraded relatively quickly. Could not inhibit the strategic process.

効果的なフィブリンシール剤を開発しようという従来
の試みはまた、これらの調製物の大半が、フィブリンシ
ールの早期分解を防止するためにはこれらの組成物が更
に抗線溶剤を含有することを必要ならしめる高レベルの
プラスミノーゲンを含有しているという事実によって、
妨害されてきた。抗線溶剤は典型的には非ヒト源から導
かれることから、特にこれらの薬剤に多数回暴露された
とき、患者がそのような外来のタンパク質に対する有害
反応を有する可能性が重要である。Rose,et al.,（米国
特許第4,627,879号）は、必ずしも抗線溶添加剤の存在
を必要としないフィブリン接着剤の製造を報告している
が、この参照文献に開示された組成物は、これら従来の
フィブリンシール組成物のもう一つの主要な欠点、すな
わち血漿中のＢ型肝炎又はHIV等のような感染性因子の
存在の可能性、に対処していない。その結果、Rose文献
は、プールされた血漿に関連付け得る感染性因子の伝染
を避けるために、そこに記述された組成物が単一の提供
者から導かれるべきことを必要とする。Previous attempts to develop effective fibrin sealants also indicate that most of these preparations require that these compositions further contain an anti-fibrinating solvent to prevent premature degradation of the fibrin seal. Due to the fact that it contains high levels of plasminogen,
I have been disturbed. Since anti-radiation solvents are typically derived from non-human sources, it is important that patients may have adverse reactions to such foreign proteins, especially when exposed to these drugs multiple times. Rose, et al., (U.S. Pat. No. 4,627,879) reports the production of a fibrin adhesive that does not necessarily require the presence of an anti-fibrinolytic additive, but the composition disclosed in this reference includes: It does not address another major drawback of these conventional fibrin seal compositions, the possible presence of infectious agents such as hepatitis B or HIV in plasma. As a result, the Rose literature requires that the compositions described therein be derived from a single provider to avoid transmission of infectious agents that can be associated with pooled plasma.

従って、プールされた血漿から導くことのできる、そ
して抗線溶化合物、動物タンパク質、及びウイルス等の
感染性因子を含まないフィブリンシール剤に対する相当
な需要がある。本発明は、そのような組成物を提供する
ことによってこれらの需要に対処する。Accordingly, there is a substantial need for fibrin sealants that can be derived from pooled plasma and that are free of infectious agents such as antifibrinolytic compounds, animal proteins, and viruses. The present invention addresses these needs by providing such compositions.

発明の要約 本発明は、プールした血漿が、第VIII因子が実質的に
枯渇されている場合ですら、トロンビン及びカルシウム
と反応させたとき止血を促進するのに使用できるフィブ
リンシール剤を作り出すものであるフィブリノーゲン調
製物を製造するために処理できる、ということの発見に
基づく。The present invention creates a fibrin sealant that can be used to promote hemostasis when pooled plasma is reacted with thrombin and calcium, even when factor VIII is substantially depleted. Based on the discovery that certain fibrinogen preparations can be processed to produce them.

詳細には、本発明は、本質的に第VIII因子及びプラス
ミノーゲン不含であることに加えて、抗線溶剤の使用を
必要とせず且つ脂質エンベロープウイルスのような感染
性因子の存在を排除するよう処理されたフィブリノーゲ
ン組成物を提供する。該組成物の更なる利点は、組成物
中に存在する本質的に全てのタンパク質がヒト起源のも
のだということである。In particular, the present invention, in addition to being essentially factor VIII and plasminogen free, does not require the use of anti-radiation solvents and eliminates the presence of infectious agents such as lipid enveloped viruses A fibrinogen composition that has been treated to A further advantage of the composition is that essentially all proteins present in the composition are of human origin.

図面の簡単な記述 図１ 局所フィブリノーゲン複合体の製造のための概
念的表現。BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES FIG. 1 Conceptual representation for production of topical fibrinogen complex.

図２ フィブリンポリマー形成に対するカルシウムイ
オン濃度の影響。フィブリノーゲン（90mg総タンパク質
/ml）及びトロンビン（500単位/ml）を混合しそして10
分間インキュベートした。レーンA:分子量マーカー、レ
ーンB:対照フィブリノーゲン、レーンC:0mM Ca⁺⁺、レー
ンD:1mMCa⁺⁺、レーンE:3mMCa⁺⁺、レーンF:6mMCa⁺⁺、レ
ーンG:10mMCa⁺⁺、レーンH:20mMCa⁺⁺、レーンI:30mMC
a⁺⁺、レーンJ:分子量マーカー 図３ フィブリンポリマー形成に対するカルシウムイ
オン濃度の影響。フィブリノーゲン（130mg総タンパク
質/ml）及びトロンビン（500単位/ml）を混合しそして1
0分間インキュベートした。レーンA:分子量マーカー、
レーンB:対照フィブリノーゲン、レーンC:0mMCa⁺⁺、レ
ーンD:1mMCa⁺⁺、レーンE:3mMCa⁺⁺、レーンF:6mMCa⁺⁺、
レーンG:10mMCa⁺⁺、レーンH:20mMCa⁺⁺、レーンI:30mMCa
⁺⁺、レーンJ:分子量マーカー 図４ フィブリン重合の速度。フィブリノーゲン（13
0mg総タンパク質/ml）及びトロンビン（500単位/ml）を
カルシウムイオン（40mM CaCl₂）の存在下に混合した。
レーンA:分子量マーカー、レーンB:0分、レーンC:1分、
レーンD:3分、レーンE:5分、レーンF:10分、レーンG:30
分、レーンH:60分、レーン1:2時間、レーンJ:4時間、レ
ーンK:8時間、レーンL:24時間、レーンM:フィブリノー
ゲン対照、レーンN:分子量マーカー 好ましい具体例の詳細な記述 本発明者は、トロンビンと反応させたときフィブリン
シール剤を作り出すものである、先行技術の組成物に対
して有意な改善を示すものである、この効果を意図した
組成物を考案した。これらの組成物（集合的に「局所フ
ィブリノーゲン複合体（TFC）」という）は、先行技術
の組成物と同様に、ヒト組織において効果的に止血を誘
導するがしかし先行技術の組成物と異なり治療された人
に非ヒトタンパク質に対する免疫学的有害応答を引き起
こすことなく且つウイルス感染の実質的危険を伴うこと
なく、そうすることができることから、有利である。Figure 2 Effect of calcium ion concentration on fibrin polymer formation. Fibrinogen (90mg total protein
/ ml) and thrombin (500 units / ml) and mix
Incubated for minutes. Lane A: molecular weight marker, lane B: control fibrinogen, lane C: 0 mM Ca ⁺⁺ , lane D: 1 mMa ⁺⁺ , lane E: 3 mMa ⁺⁺ , lane F: 6 mMa ⁺⁺ , lane G: 10 mMa ⁺⁺ , lane H : 20mMCa ⁺⁺ , Lane I: 30mMC
a ⁺⁺ , lane J: molecular weight marker Figure 3 Effect of calcium ion concentration on fibrin polymer formation. Mix fibrinogen (130 mg total protein / ml) and thrombin (500 units / ml) and add 1
Incubated for 0 minutes. Lane A: molecular weight marker,
Lane B: control fibrinogen, lane C: 0 mM Ca ⁺⁺ , lane D: 1 mM Ca ⁺⁺ , lane E: 3 mM Ca ⁺⁺ , lane F: 6 mM Ca ⁺⁺ ,
Lane G: 10 mMCA ⁺⁺ , Lane H: 20 mMCA ⁺⁺ , Lane I: 30 mMCA
⁺⁺ , lane J: molecular weight marker Figure 4 Fibrin polymerization rate. Fibrinogen (13
0mg total protein / ml) and thrombin (500 units / ml) were mixed in the presence of calcium ions (40 mM CaCl _2).
Lane A: molecular weight marker, lane B: 0 min, lane C: 1 min,
Lane D: 3 minutes, Lane E: 5 minutes, Lane F: 10 minutes, Lane G: 30
Min, Lane H: 60 minutes, Lane 1: 2 hours, Lane J: 4 hours, Lane K: 8 hours, Lane L: 24 hours, Lane M: Fibrinogen control, Lane N: Molecular weight marker Detailed description of preferred embodiments The present inventors have devised a composition intended for this effect, which represents a significant improvement over prior art compositions, which creates a fibrin sealant when reacted with thrombin. These compositions (collectively referred to as "topical fibrinogen complexes (TFCs)"), like prior art compositions, effectively induce hemostasis in human tissue but, unlike prior art compositions, It is advantageous because it can do so without causing an adverse immunological response to the non-human protein in the affected person and without substantial risk of viral infection.

本発明の組成物を製造するための好ましい血液画分
は、血漿、寒性沈殿物、及び／又は第VIII因子枯渇冷沈
殿物である。出発材料として使用するに好ましい血液画
分はヒト血漿であるからー、出発材料を、以下「血漿」
というであろが、当業者は、フィブリノーゲンを有意に
枯渇させていない如何なるヒト血液由来画分から出発し
ても本発明の組成物が製造できると、いうことを理解す
るであろう。一般に、該方法は、第XIII因子（F XIII）
及びフィブリノーゲンの濃度の高い血漿から寒性沈殿物
を形成することを伴う。このステップに、該寒性沈殿物
からのタンパク質の冷沈殿が続いてよい（そして好まし
くは続く）。該当する場合、この冷沈殿処理からの産生
物（すなわち、冷沈殿物）は、典型的には抗濃度のフィ
ブリノーゲン及び非常に低レベルのF VIIIを含有する。Preferred blood fractions for producing the compositions of the invention are plasma, cold sediment, and / or factor VIII depleted cold sediment. Since the preferred blood fraction to use as a starting material is human plasma, the starting material is referred to below as "plasma".
Nevertheless, those skilled in the art will appreciate that the compositions of the present invention can be prepared starting from any human blood derived fraction that is not significantly depleted of fibrinogen. Generally, the method comprises treating factor XIII (F XIII)
And the formation of cold precipitates from plasma with high concentrations of fibrinogen. This step may be followed (and preferably followed) by cold precipitation of the protein from the cold precipitate. If applicable, the product from this cold precipitation process (ie, the cold precipitate) typically contains anti-concentrations of fibrinogen and very low levels of FVIII.

より具体的には、本発明のTFC組成物を製造するため
の該好ましい方法は、一人又はより多くの提供者からの
凍結したヒト血漿を出発材料として使用する。好ましく
は、使用されるべき血漿は、出発材料として使用するた
め、検出可能なレベルのそのような汚染因子を含有する
材料を排除するために、Ｂ型肝炎及びヒト免疫不全症ウ
イルス（HIV）等のような感染性ウイルス汚染因子の存
在について、慣用のアッセイ技術を用いてスクリーンさ
れたものであろう。More specifically, the preferred method for producing the TFC compositions of the present invention uses frozen human plasma from one or more donors as a starting material. Preferably, the plasma to be used is for use as a starting material, in order to eliminate materials containing detectable levels of such contaminants, such as hepatitis B and human immunodeficiency virus (HIV). Will be screened using conventional assay techniques for the presence of infectious viral contaminants such as

血漿が以前にスクリーンされいてもいなくても、本発
明の組成物において使用する寒性沈殿又は冷沈殿産物
は、その中のウイルス活性を検出不能レベルにまで減少
させるために、下に更に記述されているように処理され
る。この開示の目的のためには、句「検出不能レベル」
は、感染させた組織又は細胞におけるプラーク形成単位
の検出のような、当業者に周知のウイルスアッセイプロ
トコールによって検出できるウイルス活性レベルについ
ていう（例えば、実施例５を参照）。与えられた組成物
中の既知のウイルス活性レベルの減少は、慣用的に、こ
こに「log₁₀減少率」として記述されるであろう。一般
には、タンパク質含有組成物中のウイルス活性を減少さ
せるための、当該分野において既知の及び／又はここに
記述する、利用可能な技術（例えば、実施例５を参照）
を用いて、本発明の組成物は、脂質エンベロープウイル
スについては少なくとも４対数（好ましくは少なくとも
６対数）のlog₁₀減少率及び他のウイルス性病原因子に
ついては一層低い減少率を有するであろうと予測でき
る。The cold precipitate or cold precipitate used in the compositions of the present invention, whether or not the plasma has been previously screened, is described further below to reduce viral activity therein to undetectable levels. Is treated as if it were. For the purposes of this disclosure, the phrase "undetectable level"
Refers to the level of viral activity detectable by viral assay protocols well known to those skilled in the art, such as the detection of plaque forming units in infected tissues or cells (see, eg, Example 5). The reduction in the known level of viral activity in a given composition will be conventionally described herein as the "log ₁₀ reduction." Generally, available techniques known in the art and / or described herein for reducing viral activity in protein-containing compositions (see, eg, Example 5)
Is predicted to have a log ₁₀ reduction of at least 4 logs (preferably at least 6 logs) for lipid enveloped viruses and a lower reduction for other viral pathogens. it can.

実施例１に記述されているように、凍結血漿を寒性沈
殿物へと加工するために、血漿は、制御された環境中に
おいて解凍される。得られた寒性沈殿物は、最初に冷沈
殿物へと変換することなく更にTFCへと加工してもよ
い。しかしながら、フィブリノーゲンに対する本発明の
組成物中の総タンパク質含量、残存量のフィブロネクチ
ン及び如何なる添加されたタンパク質成分（アルブミン
等）をも制限するために、該寒性沈殿物は、好ましくは
冷沈殿物へと更に加工される。As described in Example 1, plasma is thawed in a controlled environment to process frozen plasma into a cold precipitate. The resulting cold precipitate may be further processed to TFC without first converting to a cold precipitate. However, in order to limit the total protein content in the composition of the invention relative to fibrinogen, the residual amount of fibronectin and any added protein components (such as albumin), the cold precipitate is preferably converted to a cold precipitate. And further processed.

その目的にむけて、血液画分（例えば血漿）を凍結し
その後約＋６℃を超えない温度まで加温することによっ
て、寒性沈殿物を製造することができる。この寒性沈殿
物を、約20℃〜35℃において蒸留水に溶解させる。塩化
カルシウムを約１μＭ乃至約1000μＭの濃度に加える。
好ましくは、塩化カルシウムは、このステップにおいて
約40μＭの濃度に加えられ、フィブリノーゲンの沈殿を
促進するためにpHは6.8±0.3に調節される。To that end, a cryoprecipitate can be produced by freezing the blood fraction (eg, plasma) and then warming to no more than about + 6 ° C. This cold precipitate is dissolved in distilled water at about 20-35 ° C. Calcium chloride is added to a concentration of about 1 μM to about 1000 μM.
Preferably, calcium chloride is added in this step to a concentration of about 40 μM, and the pH is adjusted to 6.8 ± 0.3 to promote fibrinogen precipitation.

溶解したこの寒性沈殿物を次いで、攪拌しつつ約10℃
まで冷却し、それにより冷沈殿物が生ずる。この沈殿物
を、例えば5600×ｇ乃至7200×ｇの遠心によって溶液か
ら除去する。この沈殿物は、望むならば、−60℃又はそ
れより下で貯蔵してよい。冷沈殿を用いる場合には、工
程中におけるカルシウムイオン源の添加は、フィブリノ
ーゲン並びにフィブロネクチンの沈殿を促進し、それに
よって冷沈殿物中におけるこれらの物質の濃度を増大さ
せるであろう。フィブリノーゲンはまた、この冷沈殿へ
のポリエチレングリコール（PEG）の添加によって更に
濃縮することもできる。The dissolved cold precipitate was then stirred at about 10 ° C.
Until a cold precipitate forms. The precipitate is removed from the solution, for example, by centrifugation at 5600 × g to 7200 × g. This precipitate may be stored at -60 C or below, if desired. If cold precipitation is used, the addition of a calcium ion source during the process will promote the precipitation of fibrinogen as well as fibronectin, thereby increasing the concentration of these substances in the cold precipitate. Fibrinogen can also be further concentrated by adding polyethylene glycol (PEG) to the cold precipitate.

寒性沈殿物又は冷沈殿物は、通常、緩衝液中に攪拌し
て溶解され、該冷沈殿物のpHは約7.2、好ましくは7.2±
0.1に調節される。寒性沈殿物又は冷沈殿物のフィブリ
ノーゲンと、そこの存在している可能性のある如何なる
トロンビンとの間の相互反応をも阻止するために、この
寒性又は冷沈殿物は、好ましくは、存在しているかも知
れないトロンビンを阻害するために、PPACK（Ｄ−Phe−
Ｌ−Pro−Ｌ−Arg−クロロメチルケトン）、ヘパリン補
因子II、ヒルジン又は抗トロンビンIII（ATIII）等のよ
うなプロテアーゼ阻害剤の存在下に再懸濁される。トロ
ンビン阻害剤として最も好ましいのは、約0.75μＭ乃至
約1.75μＭの濃度のPPACKである。有効量のトロンビン
阻害剤で処理された本発明の組成物よりなる製品は、本
質的に活性トロンビン不含と見なされるであろう。使用
された場合には、このトロンビン阻害剤は、凍結乾燥前
に、好ましくはPEG沈殿により及び所望にDEADカラム段
階をも用いて、本発明の組成物から除去されるであろう
（図１及び実施例１を参照）。当業者は、トロンビンの
ための、本発明の組成物中において使用するのに適した
他のプロテアーゼ阻害剤及びそれらの有効濃度を知るで
あろう。The cold or cold precipitate is usually dissolved in a buffer with stirring, and the pH of the cold precipitate is about 7.2, preferably 7.2 ±.
Adjusted to 0.1. The cold or cold precipitate is preferably present in order to prevent the interaction between the cold or cold precipitate fibrinogen and any thrombin that may be present. PPACK (D-Phe-
(L-Pro-L-Arg-chloromethyl ketone), heparin cofactor II, hirudin or antithrombin III (ATIII) and the like. Most preferred as a thrombin inhibitor is PPACK at a concentration of about 0.75 μM to about 1.75 μM. A product consisting of a composition of the present invention treated with an effective amount of a thrombin inhibitor will be considered essentially free of active thrombin. If used, the thrombin inhibitor will be removed from the composition of the present invention prior to lyophilization, preferably by PEG precipitation and optionally also using a DEAD column step (FIGS. 1 and 2). See Example 1). One skilled in the art will know other suitable protease inhibitors for thrombin for use in the compositions of the present invention and their effective concentrations.

寒性又は冷沈殿物中に存在するかも知れない如何なる
プロトロンビン複合体をも除去するために、沈殿物懸濁
液が、リン酸三カルシウムのような塩を含有する緩衝液
へ移される。この塩含有緩衝液への暴露は、仮に起こっ
たならフィブリノーゲンのフィブリンへの変換をもたら
すことになるプロトロンビンのトロンビンへの変換の可
能性を、最小にするであろう。この状態において、得ら
れる組成物は本質的にプロトロンビン複合体不含と考え
られる。このリン酸カルシウムは、今度は、遠心及び／
又は濾過によって工程から除去される。プロトロンビン
の除去のための更なる技術が、Murano（Prothrombin an
d Other Vitamin K Proteins,Vol.II,Seegers and Wal
z,eds.,CRC Press,Inc.Boca Raton,Fl.,1986）;Heyste
k,et al.,（Vox SAng.,25:113,1973）;Banowcliffe,et
al.,（Vox Sang,25:426,1973）;Chandra,et al.,（Vox
Sang.,41:256,1981）及びChanas,et al.,（米国特許第
4,465,623号）によって記述されており、参照によりこ
こに導入する。こうして、本発明の組成物中のプロトロ
ンビンの除去及びトロンビンの阻害によって、最終の組
成物は、本質的にフィブリン分子不含であろう。すなわ
ち、フィブリンシール剤を作り出すよう別途トロンビン
に（好ましくはin vivoで）暴露されるまでは、その中
に存在するフィブリノーゲンの全ては未反応であろう。The precipitate suspension is transferred to a buffer containing a salt, such as tricalcium phosphate, to remove any prothrombin complexes that may be present in the cold or cold precipitate. Exposure to this salt-containing buffer will minimize the potential for the conversion of prothrombin to thrombin, which would otherwise result in the conversion of fibrinogen to fibrin. In this state, the resulting composition is considered essentially free of the prothrombin complex. This calcium phosphate is then centrifuged and / or
Or it is removed from the process by filtration. Further techniques for removal of prothrombin are described in Murano (Prothrombin an
d Other Vitamin K Proteins, Vol.II, Seegers and Wal
z, eds., CRC Press, Inc. Boca Raton, Fl., 1986); Heyste
k, et al., (Vox SAng., 25 : 113,1973); Banowcliffe, et
al., (Vox Sang, 25 : 426,1973); Chandra, et al., (Vox
Sang., 41 : 256, 1981) and Chanas, et al., (U.S. Pat.
No. 4,465,623), incorporated herein by reference. Thus, by removing prothrombin and inhibiting thrombin in the compositions of the present invention, the final composition will be essentially free of fibrin molecules. That is, all of the fibrinogen present therein will be unreacted until it is separately exposed to thrombin (preferably in vivo) to create a fibrin sealant.

好ましい一具体例においては、溶解した寒性又は冷沈
殿物は、約23〜27℃まで加温されそして、lysine−Seph
arose 4Bの商品名で商業的に販売されているマトリクス
カラム製品等のようなリジン親和性カラムと接触させら
れる。寒性又は冷沈殿物中に存在する残存のプラスミノ
ーゲンは、該マトリクスに吸着されるが、フィブリノー
ゲンは吸着されず、それにより、得られる溶液を本質的
にプラスミノーゲン不含にする。例えば、上述のlysine
−Sepharose材料を用いると、得られる最終のTFC組成物
は、FTCの1ml当たり10μｇを超えるプラスミノーゲン/m
lTFCは含まないであろう。In one preferred embodiment, the dissolved cold or cold precipitate is warmed to about 23-27 ° C and lysine-Seph
It is contacted with a lysine affinity column, such as a matrix column product sold commercially under the trade name arose 4B. Residual plasminogen present in the cold or cold precipitate is adsorbed to the matrix, but not fibrinogen, thereby rendering the resulting solution essentially plasminogen-free. For example, the above lysine
-Using Sepharose material, the final TFC composition obtained will have more than 10 μg plasminogen / m
Will not include lTFC.

プラスミノーゲンの除去は、２つの理由から重要であ
る。第１にプラスミノーゲンは、プラスミンへと変換さ
れると、フィブリノーゲン及びフィブリン分子を分解す
る。フィブリンは、本発明の組成物から作り出されるフ
ィブリンシール剤中においてフィブリノーゲンとトロン
ビンとの間の相互作用によって形成される。第２に、当
該分野において相当に効果のあるプラスミノーゲン阻害
剤が知られてはいるものの、それらの使用は、（存在す
るプラスミノーゲンの濃度及び必要な阻害剤の濃度を決
定するために）更なる製造ステップを必要とする。より
重要なことに、現在商業的に入手可能なプラスミノーゲ
ン阻害剤は、非ヒト起源のものであり、従って、それら
を含有する組成物に、特にそれらの反復適用の時に、免
疫学的に有害な反応の危険性を与える。この危険性は、
本発明の組成物からプラスミノーゲンを除去することに
よって回避される。Plasminogen removal is important for two reasons. First, plasminogen, when converted to plasmin, degrades fibrinogen and fibrin molecules. Fibrin is formed by the interaction between fibrinogen and thrombin in fibrin sealants made from the compositions of the present invention. Second, although plasminogen inhibitors are known to be quite effective in the art, their use is not sufficient to determine the concentration of plasminogen present and the concentration of inhibitor required. ) Requires additional manufacturing steps. More importantly, currently commercially available plasminogen inhibitors are of non-human origin, and are therefore immunologically compatible with compositions containing them, especially at the time of their repeated application. Risk of adverse reactions. This danger is
It is avoided by removing plasminogen from the composition according to the invention.

このリジン・マトリクスから回収された溶液は、例え
ばポリエチレングリコール（PEG）の添加によって、好
ましくは濃縮される。人において使用するためには、溶
出液を濃縮するのに使用されるPEGは、人に毒性のない
範囲の分子量を有し（例えば、3000〜6000）、約３％乃
至約７％、好ましくは約４％（W/W）の最終濃度に加え
られる。最も好ましくは、得られるPEG沈殿物は緩衝液
に溶解され、濾過されそしてpHをアルカリ性レベル、例
えば約8.6、好ましくは8.6±0.1に調節される。本発明
の代わりの具体例においては、リジン・マトリクスによ
る吸着に先立ってPEG沈殿ステップを実施することも可
能である。The solution recovered from the lysine matrix is preferably concentrated, for example, by adding polyethylene glycol (PEG). For use in humans, the PEG used to concentrate the eluate has a molecular weight in a range that is not toxic to humans (eg, 3000-6000), and from about 3% to about 7%, preferably Added to a final concentration of about 4% (W / W). Most preferably, the resulting PEG precipitate is dissolved in a buffer, filtered and the pH is adjusted to an alkaline level, for example about 8.6, preferably 8.6 ± 0.1. In an alternative embodiment of the present invention, a PEG precipitation step can be performed prior to adsorption by the lysine matrix.

全ての具体例において、該組成物（好ましくは濃縮溶
液）は、典型的にはＢ型肝炎ウイルス、HIV及びHTLV等
の様なウイルスの脂質エンベロープを破壊することによ
って作用する界面活性剤等のような有効量のウイルス活
性減少剤で処理される。術語「有効量のウイルス活性減
少」剤は、組成物に加えられるウイルス活性減少剤の濃
度が、本発明の組成物中のウイルス活性を検出不能なレ
ベルまでに減少させるのに十分であることを意味する。
勿論、ウイルス活性減少剤の濃度は、トロンビンの存在
下にフィブリンシール剤を形成する該組成物の能力を有
意に阻害してはならない。すなわち、この使用されるウ
イルス活性減少剤は、フィブリノーゲンを変性させな
い。In all embodiments, the composition (preferably a concentrated solution) typically comprises a surfactant, such as a hepatitis B virus, which acts by disrupting the lipid envelope of viruses such as HIV and HTLV. Treated with an effective amount of a viral activity reducing agent. The term "effective amount of a virus activity reducing" agent refers to a composition in which the concentration of the virus activity reducing agent added to the composition is sufficient to reduce virus activity in the composition of the present invention to undetectable levels. means.
Of course, the concentration of the viral activity reducing agent should not significantly inhibit the ability of the composition to form a fibrin sealant in the presence of thrombin. That is, the used virus activity reducing agent does not denature fibrinogen.

ウイルス汚染因子は、組成物へのウイルス活性減少剤
の添加を伴わない工程ステップによって、本発明の組成
物からある程度までは除去できる。ウイルス活性減少剤
は典型的には（脂質エンベロープの完全性を破壊するこ
とによって）脂質エンベロープウイルスにのみ影響を及
ぼすことから、現在の技術状態に照らせば、この工程ス
テップは、脂質エンベロープを欠いた存在する如何なる
ウイルスをも本発明の組成物から除去するものである主
要な手段であるようである。そのような工程ステップ
は、当業者に知られ又は容易に確認でき、そしてそれら
はウイルス分配及びリン酸カルシウムよる吸着／濾過を
含む。Viral contaminants can be removed to some extent from the compositions of the present invention by process steps that do not involve the addition of a viral activity reducing agent to the composition. In light of the current state of the art, this process step lacked a lipid envelope since viral activity reducers typically only affect lipid envelope viruses (by disrupting the integrity of the lipid envelope). It appears to be the primary means by which any virus present is removed from the compositions of the present invention. Such process steps are known or readily ascertainable to those skilled in the art, and include virus distribution and adsorption / filtration with calcium phosphate.

そのような薬剤として有用である非変性性の界面活性
剤は、当業者により、陰イオン性、陽イオン性、及び非
イオン性界面活性剤のような認識されている群から選ぶ
ことができる。例としては、硫酸化オキシエチル化アル
キルフェノールのような硫酸化アルコール及び酸ナトリ
ウム塩（「Triton W−30」及び「Triton X−100」の商
品名で市販されている）、ドデシルベンゼンスルホン酸
ナトリウム（「Nacconol NR」の商品名で市販されてい
る）、２−スルホエチルオレエートナトリウム（「Igep
on A」の商品名で市販されている）、コール酸ナトリウ
ム、デヒドロコール酸ナトリウム、ドデシル硫酸ナトリ
ウム、塩化ドデシルジメチルベンジルアンモニウム
（「Triton K−60」の商品名で市販されている）、オキ
シエチル化アミン類（「Ethomeen」の商品名で市販され
ている）、Ｎ−ドデシルアミノエタンスルホン酸、エチ
レンオキシド−プロピレンオキシド縮合物（「Pluroni
c」コポリマー類）、エステルのポリオキシエチレン誘
導体（「Tween 80」及び「Polysorbate 80」の商品名で
市販されている）、ポリオキシエチレン脂肪アルコール
エーテル（「Brij 35」の商品名で市販されている）、
ポリエチレングリコールのテトラメチルブチルフェニル
エーテル（「octoxynols」として市販されている）、並
びに「nonidet P−40」及び「Lubrox PX」の商品名で市
販されている界面活性剤が含まれる。当業者は、ウイル
ス活性減少剤の全部又は一部として使用するための他の
適当な非イオン性界面活性剤について知るであろうし、
また例えば米国特許第4,481,189号、第4,540,573号、第
4,591,505号、第4,314,997号及び第4,315,919号を参照
しようと思うであろう。Non-denaturing surfactants useful as such agents can be selected by those skilled in the art from recognized groups such as anionic, cationic, and non-ionic surfactants. Examples include sulfated alcohols and acid sodium salts such as sulfated oxyethylated alkylphenols (commercially available under the trade names "Triton W-30" and "Triton X-100"), sodium dodecylbenzene sulfonate (" Nacconol NR "), sodium 2-sulfoethyl oleate (" Igep
on A "), sodium cholate, sodium dehydrocholate, sodium dodecyl sulfate, dodecyldimethylbenzylammonium chloride (commercially available under the trade name" Triton K-60 "), oxyethylation Amines (commercially available under the trade name "Ethomeen"), N-dodecylaminoethanesulfonic acid, ethylene oxide-propylene oxide condensate ("Pluroni"
c "copolymers), polyoxyethylene derivatives of esters (commercially available under the trade names" Tween 80 "and" Polysorbate 80 "), polyoxyethylene fatty alcohol ethers (commercially available under the trade name" Brij 35 "). Yes),
Includes tetramethylbutyl phenyl ether of polyethylene glycol (commercially available as "octoxynols"), and surfactants marketed under the trade names "nonidet P-40" and "Lubrox PX." One skilled in the art will know of other suitable non-ionic detergents for use as all or part of a viral activity reducing agent,
Also, for example, U.S. Pat.Nos. 4,481,189, 4,540,573,
Reference will be made to 4,591,505, 4,314,997 and 4,315,919.

該好ましい具体例において、ウイルス活性減少剤は、
有機溶媒、好ましくは、非イオン性界面活性剤（好まし
くはポリソルベート80及びオクトキシノール（octoxyno
l））９と混合されたリン酸トリ−ｎ−ブチル（TNBP）
よりなるであろう。実施例１及び５に記述されているよ
うに、ウイルス活性が検出不能のレベルにある本発明の
無変性の組成物は、TNBP（濃度0.03〜0.3％）、ポリソ
ルベート80（濃度0.03〜0.3％）及びオクトキシノール
９（濃度0.1〜1.0％）よりなる好ましいウイルス活性減
少剤を用いて製造することができる。加えて、ウイルス
を不活性化させるためにカオトロピック（chaotropic）
剤も、その薬剤がフィブリノーゲンの変性させない限
り、利用してよい。In the preferred embodiment, the virus activity reducing agent comprises
Organic solvents, preferably non-ionic surfactants (preferably polysorbate 80 and octoxynol)
l)) Tri-n-butyl phosphate mixed with 9 (TNBP)
Will consist of As described in Examples 1 and 5, the non-denatured composition of the present invention having undetectable levels of viral activity comprises TNBP (concentration 0.03-0.3%), polysorbate 80 (concentration 0.03-0.3%). And octoxynol 9 (concentration: 0.1 to 1.0%). In addition, chaotropic to inactivate the virus
Agents may also be used as long as the agent does not alter fibrinogen.

代わりとして、本発明の該好ましい具体例の実施にお
いて使用される有機溶媒及び界面活性剤の濃度は、処理
すべき組成物に応じて及び選んだ溶媒又は界面活性剤に
応じて、変化させることができる。アルキルホスフェー
トは、約0.10mg/ml被処理混合物乃至約1.0mg/ml、好ま
しくは約0.1mg/ml乃至約10mg/mlの範囲の濃度で使用す
ることができる。利用される界面活性剤又は潤滑剤の量
は決定的ではない。その機能は、溶媒とウイルスとの間
の接触を改善することだからである。有用である大半の
非イオン性材料について、湿潤剤は、処理される水性混
合物中の脂肪材料の量に応じて、約0.001％乃至10％、
好ましくは約0.01％乃至約２％の範囲で変化させること
ができる。Alternatively, the concentrations of organic solvents and surfactants used in the practice of the preferred embodiment of the present invention may vary depending on the composition to be treated and on the solvent or surfactant selected. it can. The alkyl phosphate can be used at a concentration ranging from about 0.10 mg / ml treated mixture to about 1.0 mg / ml, preferably from about 0.1 mg / ml to about 10 mg / ml. The amount of surfactant or lubricant utilized is not critical. Its function is to improve the contact between the solvent and the virus. For most non-ionic materials that are useful, wetting agents can be from about 0.001% to 10%, depending on the amount of fatty material in the aqueous mixture being treated.
Preferably, it can be varied in the range of about 0.01% to about 2%.

どのウイルス活性減少剤が使用されても、それは、組
成物中のウイルス活性を検出不能レベルまで減少させる
のに十分な時間（少なくとも１分）本発明の組成物を接
触させた後、除去される。好ましい具体例においては、
DEAEジエチルアミノエチルセルロース（「DE52」の商品
名で市販されている）は、本フィブリノーゲン組成物か
ら溶媒／界面活性剤を除去するのに利用されるマトリク
スである。フィブリノーゲンはジエチルアミノエチルセ
ルロースに結合し、そして未結合の材料及び界面活性剤
の除去のための徹底した洗浄の後に、例えば0.3MのNaCl
で溶出される。溶媒／界面活性剤の除去に利用できる他
のイオン交換材料としては、セルロース及びアガロース
マトリクスを含むがそれらに限定されない商業的に入手
できる陰イオン交換マトリクスの実質的にあらゆるもの
が含まれる。これら種々のイオン交換材料への結合及び
そこからの溶離についての個々のパラメータは、当業者
に既知であるか、又は不相応な実験なしに容易に確認す
ることができる。Whichever viral activity reducing agent is used, it is removed after contacting the composition of the present invention for a time sufficient to reduce viral activity in the composition to undetectable levels (at least 1 minute). . In a preferred embodiment,
DEAE diethylaminoethylcellulose (commercially available under the trade name "DE52") is a matrix utilized to remove solvents / surfactants from the fibrinogen composition. Fibrinogen binds to diethylaminoethylcellulose and after extensive washing to remove unbound material and surfactants, e.g., 0.3 M NaCl
Eluted. Other ion exchange materials that can be used to remove the solvent / surfactant include virtually any commercially available anion exchange matrix, including but not limited to cellulose and agarose matrices. The individual parameters for binding to and elution from these various ion exchange materials are known to those skilled in the art or can be readily ascertained without undue experimentation.

本発明のTFC組成物の安定性は、ヒト血清アルブミン
（HSA）、ヒドロキシエチルデンプン、デキストラン、
又はこれらの組み合わせのような補助薬の使用によっ
て、高めることができる。本組成物の溶解性は、ポリソ
ルベート80等のような非変性性の非イオン性界面活性剤
の添加によって高めることもできる。本発明の組成物中
において使用するためのこれらの化合物の適切な濃度
は、当業者に既知であるか、又は不相応な実験なしに容
易に確認することができる。本発明の組成物は、しかし
ながら、安定化剤の使用なしに貯蔵しそして使用するに
十分安定である。従って、該組成物の非フィブリノーゲ
ンタンパク質含量を最小にするため、本組成物の最も好
ましい具体例は、更なる安定化剤を含まないか、又は非
タンパク質性の安定化剤を含むであろう。The stability of the TFC composition of the present invention includes human serum albumin (HSA), hydroxyethyl starch, dextran,
Or by the use of adjuvants such as combinations thereof. The solubility of the composition can also be increased by the addition of a non-denaturing non-ionic surfactant such as polysorbate 80 or the like. Suitable concentrations of these compounds for use in the compositions of the present invention are known to those skilled in the art or can be readily ascertained without undue experimentation. The compositions of the present invention, however, are sufficiently stable to be stored and used without the use of stabilizers. Thus, to minimize the non-fibrinogen protein content of the composition, the most preferred embodiments of the composition will be free of additional stabilizers or will contain non-proteinaceous stabilizers.

典型的には、調合の後、バルクを、最初の溶出液量の
約20％乃至約50％まで濃縮し、次いで濃縮前溶出液量ま
で希釈する。このバルクを、次いで、無菌処理及び凍結
乾燥の前に、約4g±1g/dl組成物（W/V）の最終の総タン
パク質濃度へと濃縮してよい。上述のように、本発明の
好ましい組成物は、復元したときに本質的にフィブリノ
ーゲンよりなるもの、すなわち、該組成物中のタンパク
質がフィブリノーゲンであり、フィブロネクチンは残存
量以下（すなわち20mg/ml以下、好ましくは10μg/ml以
下）、プラスミノーゲンは残存量以下（10μg/ml以下、
好ましくは５μg/ml以下）、そして第XIII因子は約１乃
至40単位/ml（好ましくはは、10単位/mlより大）であ
る。しかしながら本発明の代わりの具体例においては、
本組成物はまた、タンパク質安定化剤、例えばヒト血清
アルブミンのような成分を含んでもよい。従って、本組
成物のフィブリノーゲン成分は、本発明のTFC組成物中
の総タンパク質のうちの約50％乃至100％（W/V）を構成
してよく、好ましくは本組成物のうちの少なくとも75％
（W/V）を構成するであろう。Typically, after formulation, the bulk is concentrated to about 20% to about 50% of the original eluate volume and then diluted to the pre-concentration eluate volume. This bulk may then be concentrated to a final total protein concentration of about 4 g ± 1 g / dl composition (W / V) before aseptic processing and lyophilization. As noted above, preferred compositions of the present invention are those which, when reconstituted, consist essentially of fibrinogen, i.e., the protein in the composition is fibrinogen and the fibronectin is less than the residual amount (i.e., less than 20 mg / ml, Preferably, plasminogen is not more than the remaining amount (10 μg / ml or less).
Preferably, the factor XIII is about 1 to 40 units / ml (preferably greater than 10 units / ml). However, in an alternative embodiment of the invention,
The composition may also include components such as protein stabilizers, for example, human serum albumin. Thus, the fibrinogen component of the present composition may constitute about 50% to 100% (W / V) of the total protein in the TFC composition of the present invention, preferably at least 75% of the present composition. %
(W / V).

好ましい該具体例において、組成物中のタンパク質濃
度は、NaClを除去するに十分大きいが然しタンパク質分
子を保持するに十分小さいものである分子量排除を有す
る膜を用いた限外濾過によって、達成される。この濾過
は、最も好ましくは30,000分子量排除を有する膜を用い
て行われる。本発明の該TFC組成物が凍結乾燥される場
合、凍結乾燥前液量は、通常、使用時における凍結乾燥
物の復元液量より大きい。In a preferred embodiment, the protein concentration in the composition is achieved by ultrafiltration using a membrane having a molecular weight exclusion that is large enough to remove NaCl but small enough to retain the protein molecules. . This filtration is most preferably performed using a membrane with a 30,000 molecular weight exclusion. When the TFC composition of the present invention is freeze-dried, the amount of the solution before freeze-drying is usually larger than the amount of the reconstituted solution of the freeze-dried product at the time of use.

望むならば、本発明の組成物は、非タンパク質性並び
にタンパク質性の薬物を含むように修正することができ
る。術語「非タンパク質性薬物」は、マイトマイシン
Ｃ、ダウノルビシン、及びビンブラスチンのような古典
的に薬物と呼ばれている化合物並びに抗生物質を包含す
る。If desired, the compositions of the present invention can be modified to include non-proteinaceous as well as proteinaceous drugs. The term "non-proteinaceous drug" includes compounds that are classically called drugs, such as mitomycin C, daunorubicin, and vinblastine, as well as antibiotics.

本発明のフィブリノーゲン組成物を添加することので
きるタンパク質性薬物としては、免疫調節剤及び他の生
物学的応答調節剤が含まれる。術語「生物学的応答調節
剤」は、例えば細菌細胞の細胞溶解又は上皮細胞の増殖
等の特定の所望の治療効果を高める仕方で、免疫応答又
は組織増殖及び修復のような生物学的応答を調節するの
に関わる物質を包含することを意図したものである。応
答調節剤の例としては、リンホカインのような化合物が
含まれる。リンホカインの例としては、腫瘍壊死因子、
インターロイキン類、リンホトキシン、マクロファージ
活性化因子、遊走阻止因子、コロニー刺激因子、及びイ
ンターフェロンが含まれる。加えて、これらのタンパク
質性薬物から誘導された又は独立して作られたペプチド
又は多糖類フラグメントも、本発明のフィブリノーゲン
組成物中に組み込むことができる。当業者は、タンパク
質性又は非タンパク質性薬物として作用する他の物質を
知り、又は容易に確認できるであろう。Proteinaceous drugs to which the fibrinogen composition of the present invention can be added include immunomodulators and other biological response modulators. The term "biological response modifier" refers to a biological response, such as an immune response or tissue growth and repair, in a manner that enhances a particular desired therapeutic effect, such as, for example, cell lysis of bacterial cells or proliferation of epithelial cells. It is intended to include substances involved in regulation. Examples of response modifiers include compounds such as lymphokines. Examples of lymphokines include tumor necrosis factor,
Includes interleukins, lymphotoxins, macrophage activating factors, migration inhibitors, colony stimulating factors, and interferons. In addition, peptides or polysaccharide fragments derived from these proteinaceous drugs or made independently can also be incorporated into the fibrinogen compositions of the present invention. Those skilled in the art will know or can readily ascertain other substances that act as proteinaceous or non-proteinaceous drugs.

本発明の組成物はまた、造影剤のような診断剤を組み
込むよう修正することができる。そのような薬剤の存在
は、肝臓、胆嚢、尿路、気管枝、肺、心臓、血管、及び
脊柱管等のような内部で起こっている傷治癒を医者がモ
ニターすることを可能にする。そのような化合物として
は、硫酸バリウム並びに、ヨウ素を含んだ種々の有機化
合物が含まれる。これら後者の化合物の例としては、イ
オセタミン酸（iocetamic acid）、イオジパミド（iodi
pamide）、メグルミンイオドキサメート（iodoxamate m
eglumine）、イオパノイック酸（iopanoic acid）、並
びにジアトリゾエート・ナトリウムのようなジアトリゾ
エート誘導体が含まれる。本発明の組成物において利用
することのできる他の造影剤は、当業者に容易に確認で
きる。The compositions of the present invention can also be modified to incorporate a diagnostic agent such as a contrast agent. The presence of such agents allows a physician to monitor wound healing that is taking place inside such as the liver, gall bladder, urinary tract, tracheal branches, lungs, heart, blood vessels, spinal canal, and the like. Such compounds include barium sulfate and various organic compounds including iodine. Examples of these latter compounds include iocetamic acid, iodipamide
pamide), meglumine iodoxamate (iodoxamate m)
eglumine), iopanoic acid, and diatrizoate derivatives such as sodium diatrizoate. Other contrast agents that can be utilized in the compositions of the present invention can be readily ascertained by those skilled in the art.

本組成物中の薬物又は診断剤の濃度は、当該化合物の
性質、その生理学的役割、及び所望の治療又は診断効果
に応じて、変わるであろう。術語「治療的有効量」は、
毒性を最小にするがしかし望みの効果を表すに十分な濃
度に治療剤が存在することを意味する。従って、例え
ば、細胞溶解性の治療効果を提供するのに使用される抗
生物質濃度は、治療効果がフィブリノーゲン複合体の適
用部位における免疫細胞の増殖を刺激することである場
合の免疫応答調節剤の濃度とは、おそらく異なるであろ
う。術語「診断的有効量」は、潜在的な毒性を最小にし
つつフィブリン膠をモニターすることを可能にするのに
有効な診断剤の濃度を表す。いずれにしても、特定の化
合物についての特定の場合における望ましい濃度は、当
業者が容易に確認できる。The concentration of the drug or diagnostic agent in the composition will vary depending on the nature of the compound, its physiological role, and the desired therapeutic or diagnostic effect. The term "therapeutically effective amount"
It means that the therapeutic agent is present in a concentration that minimizes toxicity but is sufficient to exhibit the desired effect. Thus, for example, the concentration of antibiotic used to provide a cytolytic therapeutic effect may be dependent on the immune response modulator when the therapeutic effect is to stimulate the proliferation of immune cells at the site of application of the fibrinogen complex. The concentration will probably be different. The term "diagnosically effective amount" refers to a concentration of a diagnostic agent that is effective to enable monitoring of fibrin glue while minimizing potential toxicity. In any event, the desired concentration in a particular case for a particular compound will be readily ascertainable by one skilled in the art.

上記開示は、本発明を一般的に記述している。更なる
理解は、専ら説明のために提示されており特記しない限
り限定を意図していないものである以下の特定の具体例
を参照することによって、得ることができる。The above disclosure generally describes the present invention. A further understanding can be obtained by reference to the following specific examples, which are provided by way of explanation only and are not intended to be limiting unless otherwise noted.

実施例１ 局所フィブリノーゲン複合体の製造 局所フィブリノーゲン複合体（TFC）が、血漿の寒性
沈殿物を最初に調製することによって製造された。その
ような用途のための寒性沈殿物は、血漿の物理的形態に
応じて２つの異なった技術によって調製した。Example 1 Preparation of Topical Fibrinogen Complex Topical fibrinogen complex (TFC) was prepared by first preparing a cold precipitate of plasma. Cryoprecipitates for such applications were prepared by two different techniques, depending on the physical form of the plasma.

一つの技術においては、シールされたプラスチック瓶
の凍結血漿を、空気又は水等のような熱交換媒体と接触
させることによって制御された環境中において解凍し
た。解凍は、血漿の最高温度が＋６℃を超えないよう温
度及び熱交換媒体をプログラミングすることによって制
御した。容器を次いで開き、そして内容物をジャケット
付きステンレス鋼解凍タンク内へプールした。該解凍タ
ンク内において、血漿を（攪拌しつつ）穏やかに加温し
て残りの氷を融解させた。解凍した血漿を、次いで、直
接に遠心機へポンプ移送し又はジャケット付きステンレ
ス鋼保持タンク内へポンプ移送してそこで2.5℃±3.5℃
に維持した。該血漿を遠心して寒性沈殿物を取り出し
た。このようにして調製された寒性沈殿物は、−25℃以
下で貯蔵してもよく又は抗血友病因子へと直ちに加工し
てもよい。寒性貧化血漿は、ジャケット付きステンレス
鋼反応タンクから回収した。In one technique, frozen plasma in a sealed plastic bottle was thawed in a controlled environment by contact with a heat exchange medium such as air or water. Thawing was controlled by programming the temperature and heat exchange medium such that the maximum plasma temperature did not exceed + 6 ° C. The container was then opened and the contents were pooled into a jacketed stainless steel thawing tank. In the thawing tank, the plasma was gently warmed (with stirring) to melt the remaining ice. Thawed plasma is then pumped directly to a centrifuge or into a jacketed stainless steel holding tank where it is 2.5 ° C ± 3.5 ° C.
Maintained. The plasma was centrifuged to remove the cold precipitate. The cryoprecipitate thus prepared may be stored at or below -25 ° C or may be immediately processed into an anti-hemophilic factor. Cold-starved plasma was collected from a jacketed stainless steel reaction tank.

代わりとして、シールしたプラスチックバックの凍結
血漿を液体窒素浴中に数秒間入れることによって、寒性
沈殿物を調製した。バッグを該浴から取り出して、パリ
パリしたひび割れたバッグを血漿から剥いだ。次いで血
漿をジャケット付きステンレス鋼解凍タンク内に入れ
た。代わりとして、凍結血漿のシールされたプラスチッ
クバッグを、凍結血漿が該プラスチックから剥がれるよ
うにバッグを温めるように配列した。次いで容器を開
け、内容物をジャケット付きステンレス鋼解凍タンク内
へプールした。解凍タンク内において、混合しつつ血漿
を穏やかに加温して残りの氷を融解させた。解凍した血
漿を、遠心機に直接ポンプ移送するか又はステンレス鋼
保持タンク内へ移送しそこで2.5℃±3.5℃に維持した。
寒性沈殿物を除去するためにこの血漿を遠心した。こう
して調製された寒性沈殿物は、−25℃以下で貯蔵しても
よく又は抗血友病因子へと直ちに処理してもよい。寒性
貧化血漿は、ジャケット付きステンレス鋼反応タンクに
回収した。Alternatively, the cryoprecipitate was prepared by placing the sealed plastic bag of frozen plasma in a liquid nitrogen bath for a few seconds. The bag was removed from the bath and the crisp, cracked bag was peeled from the plasma. The plasma was then placed in a jacketed stainless steel thawing tank. Alternatively, a sealed plastic bag of frozen plasma was arranged to warm the bag such that the frozen plasma was peeled from the plastic. The container was then opened and the contents were pooled into a jacketed stainless steel thawing tank. The plasma was gently warmed with mixing in the thawing tank to melt the remaining ice. Thawed plasma was pumped directly to a centrifuge or into a stainless steel holding tank where it was maintained at 2.5 ° C ± 3.5 ° C.
The plasma was centrifuged to remove the cryoprecipitate. The cryoprecipitate thus prepared may be stored at -25 ° C or lower or may be immediately processed to an anti-hemophilic factor. The cold-poor plasma was collected in a jacketed stainless steel reaction tank.

寒性沈殿物を調製した後、それを20℃乃至35℃にて蒸
留水に溶解させた。このプロトコールの一部が、図１に
図式的に図解されている。最低約40μＭのカルシウム濃
度を得るに十分な塩化カルシウムを添加し、そしてpHを
6.8±0.3に調節した。この溶液を混合しつつ10℃±２℃
まで冷却した。生じる沈殿物を遠心（5600×ｇ〜7200×
ｇ）によって除去した。この沈殿物は−60℃以下で貯蔵
してもよく又はTFCへと直ちに加工してもよい。この沈
殿物を次いで処理溶液Ｉ中に、沈殿物の1kg当たり4lの
処理溶液Ｉの比率で懸濁させた。処理溶液Ｉは、（ａ）
0.5Mのグリシン、0.5Mの塩化ナトリウム、及び0.1Mのク
エン酸ナトリウムを含み、NaOHでpHを7.2±0.1に調節さ
れており、（ｂ）プロテアーゼ阻害剤:0.75〜1.75μＭ
のPPACK（Ｄ−Phe−Ｌ−Pro−Ｌ−Arg−クロロメチルケ
トン）又は等価物、及び（ｃ）0.6±0.1単位/mlのヘパ
リンを含む。温度を24〜32℃に調節し、該懸濁液を約１
時間攪拌した。After preparing the cold precipitate, it was dissolved in distilled water at 20-35 ° C. A portion of this protocol is schematically illustrated in FIG. Add sufficient calcium chloride to obtain a minimum calcium concentration of about 40 μM, and adjust the pH
Adjusted to 6.8 ± 0.3. 10 ℃ ± 2 ℃ while mixing this solution
Cooled down. The resulting precipitate is centrifuged (5600 × g to 7200 ×
g). This precipitate may be stored below -60 ° C or may be immediately processed to TFC. This precipitate was then suspended in treatment solution I at a ratio of 4 l of treatment solution I per kg of precipitate. The processing solution I comprises (a)
It contains 0.5 M glycine, 0.5 M sodium chloride, and 0.1 M sodium citrate, pH is adjusted to 7.2 ± 0.1 with NaOH, and (b) protease inhibitor: 0.75 to 1.75 μM
PPACK (D-Phe-L-Pro-L-Arg-chloromethyl ketone) or equivalent, and (c) 0.6 ± 0.1 units / ml heparin. The temperature was adjusted to 24-32 ° C. and the suspension was
Stirred for hours.

沈殿を処理溶液Ｉ中に懸濁させた後、懸濁液を、10〜
15℃にて200lの処理溶液IIを収容したタンク内へ移し、
そして少なくとも30分間攪拌した。処理溶液IIは、７±
1mMのリン酸一ナトリウム・１水和物、18±2mMのリン酸
二ナトリウム・７水和物、リン酸三カルシウム0.25％
（W/V）を含む。懸濁液を次いで少なくとも30分間静置
した。この懸濁液は、幾らかの沈殿物を除去するために
このステップで遠心（5600×ｇ〜7200×ｇ）してよい。
次いでこの懸濁液を、先ず0.45μｍのフィルターを通し
次いで少なくとも0.2μｍのポアサイズのフィルターを
通して濾過することによって澄明にした。After suspending the precipitate in treatment solution I, the suspension is
Transfer into a tank containing 200 l of treatment solution II at 15 ° C,
And stirred for at least 30 minutes. Treatment solution II contains 7 ±
1 mM monosodium phosphate monohydrate, 18 ± 2 mM disodium phosphate heptahydrate, tricalcium phosphate 0.25%
(W / V). The suspension was then left for at least 30 minutes. The suspension may be centrifuged (5600 × g to 7200 × g) at this step to remove any precipitate.
The suspension was then clarified by first filtering through a 0.45 μm filter and then through a filter of at least 0.2 μm pore size.

濾液を23〜27℃まで加温し、そしてLysine Sepharose
4Bカラムまたは同等物にかけた。ゲルをクロマトグラ
フィーカラムに充填して５カラム体積の処理溶液III（2
5mMのリン酸緩衝液、７±1mMのリン酸一ナトリウム・１
水和物、18±2mMのリン酸二ナトリウム・７水和物）で
平衡化させた。The filtrate is warmed to 23-27 ° C and Lysine Sepharose
Loaded on a 4B column or equivalent. The gel is packed in a chromatography column and 5 column volumes of treatment solution III (2
5 mM phosphate buffer, 7 ± 1 mM monosodium phosphate · 1
Hydrate, 18 ± 2 mM disodium phosphate heptahydrate).

未結合の材料をタンク内に集めた。カラムを少なくと
もゲル体積の２倍の処理溶液IIIで洗浄した。未結合の
画分をプールした。次いで、プールした未結合の画分を
含んだバルクの温度を、14＋４℃に調節した。ポリエチ
レングリコール3350を、４％（W/W）の最終濃度になる
ように加えた。懸濁液を少なくとも30分間混合し、10〜
18℃において遠心（8700×ｇ）することにより、沈殿物
を除去した。得られたPEG沈殿物を、処理溶液IV（リン
酸でpH8.6±0.1に調節した39mMのトリスリン酸）中に約
15l/kg沈殿物に溶解させた。該懸濁液のタンパク質濃度
を0.6±0.2g％（W/V）に調節し、ついで濾過して澄明に
した。Triton X−100、トリ（Ｎ−ブチル）リン酸（TNB
P）及びポリソルベート80を、最終濃度がそれぞれ1.0％
（V/V）、0.3％（V/V）及び0.3％（V/V）になるよう、
この溶液に加えた。このタンパク質・界面活性剤溶液
を、１時間混合した。Unbound material was collected in the tank. The column was washed with at least twice the gel volume of treatment solution III. Unbound fractions were pooled. The temperature of the bulk containing the pooled unbound fraction was then adjusted to 14 + 4 ° C. Polyethylene glycol 3350 was added to a final concentration of 4% (W / W). Mix the suspension for at least 30 minutes, 10-
The precipitate was removed by centrifugation (8700 × g) at 18 ° C. The obtained PEG precipitate is dissolved in treatment solution IV (39 mM trisphosphate adjusted to pH 8.6 ± 0.1 with phosphoric acid).
Dissolved in 15 l / kg precipitate. The protein concentration of the suspension was adjusted to 0.6 ± 0.2 g% (W / V) and then filtered to clarify. Triton X-100, tri (N-butyl) phosphoric acid (TNB
P) and polysorbate 80 at a final concentration of 1.0% each
(V / V), 0.3% (V / V) and 0.3% (V / V)
Added to this solution. This protein / surfactant solution was mixed for 1 hour.

次いでバルク溶液を、DE52イオン交換セルロース樹脂
または同等物を含んだクロマトグラフィーカラムにかけ
た。樹脂をクロマトグラフィーカラムに詰め、３カラム
体積の1.0M塩化ナトリウム、次いで３カラム体積の0.5M
塩酸、３カラム体積の0.9％食塩水、次いで３カラム体
積の0.5M水酸化ナトリウムで再生し、そして３カラム体
積の0.5Mトリスリン酸緩衝液（pHは8.6に調節）及び３
カラム体積の処理溶液IVで平衡化した。The bulk solution was then applied to a chromatography column containing DE52 ion exchange cellulose resin or equivalent. Pack the resin in a chromatography column, 3 column volumes of 1.0 M sodium chloride, then 3 column volumes of 0.5 M
Regenerate with hydrochloric acid, 3 column volumes of 0.9% saline, then 3 column volumes of 0.5 M sodium hydroxide, and add 3 column volumes of 0.5 M Tris phosphate buffer (pH adjusted to 8.6) and 3
Equilibrated with column volume of treatment solution IV.

このイオン交換カラムを、次いで、最少20カラム体積
の処理溶液Ｖ（0.02Mヒスチジン、0.01M塩化ナトリウ
ム、pHは6N塩酸で7.0±0.1に調節）で洗浄した。フィブ
リノーゲンは、処理溶液VI（0.02ヒスチジン、0.3M塩化
ナトリウム、pHは6N塩酸で7.0±0.1に調節）で溶出させ
た。The ion exchange column was then washed with a minimum of 20 column volumes of treatment solution V (0.02M histidine, 0.01M sodium chloride, pH adjusted to 7.0 ± 0.1 with 6N hydrochloric acid). Fibrinogen was eluted with treatment solution VI (0.02 histidine, 0.3 M sodium chloride, pH adjusted to 7.0 ± 0.1 with 6N hydrochloric acid).

次いでフィブリノーゲンを、ヒト血清アルブミン（治
療用途に提供されている５％又は25％ヒトアルブミン）
を、タンパク質1g当たり約80mg以下の濃度になるよう補
充した。ポリソルベート80を、タンパク質1g当たり最終
濃度15mgになるように加えた。最終に、30,000分子量カ
ット膜を用いた限外濾過によって、フィブリノーゲン
を、最初の液量の約25％にまで濃縮し、次いで処理溶液
VII（0.02Mヒスチジン、pHは7.0±0.1に調節）で濃縮前
液量まで希釈した。最終のタンパク質濃度４±1g％（W/
V）を達成するために、このバルクを再び限外濾過によ
って濃縮した。該バルクを滅菌濾過（0.2μｍ）し、滅
菌最終容器内へと無菌的に充填し、無菌条件下に凍結乾
燥し、そして滅菌蓋で閉鎖した。Fibrinogen is then replaced with human serum albumin (5% or 25% human albumin provided for therapeutic use)
Was supplemented to a concentration of about 80 mg or less per gram of protein. Polysorbate 80 was added to a final concentration of 15 mg / g protein. Finally, the fibrinogen is concentrated to about 25% of the initial volume by ultrafiltration using a 30,000 molecular weight cut membrane,
The solution was diluted with VII (0.02M histidine, pH adjusted to 7.0 ± 0.1) to the volume before concentration. Final protein concentration 4 ± 1g% (W /
To achieve V), the bulk was again concentrated by ultrafiltration. The bulk was sterile filtered (0.2 μm), aseptically filled into sterile final containers, lyophilized under aseptic conditions, and closed with a sterile lid.

実施例２ TFC in vitro試験 A.凝固評価 トロンビンの存在下に急速な凝固を提供するTFC組成
物（すなわち、フィブリンシール剤（FS）を決定するた
めにの形成に関して）試験を行った。急速な凝固は、１
〜２秒と任意に定義した。より短い時間間隔は、一般
に、放出装置内における凝固をもたらし、そして、より
長い時間は、成分の、十分規定されない方向に流れる緩
い混合物をもたらす。Example 2 TFC In Vitro Test A. Coagulation Evaluation A TFC composition that provides rapid coagulation in the presence of thrombin (ie, for formation to determine fibrin sealant (FS)) was tested. Rapid coagulation is 1
Arbitrarily defined as ~ 2 seconds. Shorter time intervals generally result in coagulation within the release device, and longer times result in a loose mixture of the components flowing in a poorly defined direction.

実験を行うに際して、清浄なパイレックスガラス・プ
レートを、水平軸から約30°に配置した、FS適用の領域
を規定するために、２インチの線を下側に書いた。In performing the experiment, a clean Pyrex glass plate was placed about 30 ° from the horizontal axis and a 2 inch line was written below to define the area of FS application.

ヒトフィブリノーゲンを、Ca⁺⁺を含めることなく、10
0〜1000NIH単位/mlの牛トロンビン（Armour Pharmaceut
ical Co.）を含む50〜130mg/mlの総タンパク質で試験し
た。残存量のフィブロネクチンも存在している可能性が
あったが、この試験の目的のためには、TFC組成物中の
フィブリノーゲンの濃度は総タンパク質の濃度に等しい
と見なした。フィブリノーゲンシール剤〔FS、TFC、ト
ロンビン及びカルシウム塩〕への〔Ca⁺⁺〕の添加の効果
を、10、20、40、及び60mMにて試験した。10% human fibrinogen without Ca ⁺⁺
0-1000 NIH units / ml of bovine thrombin (Armour Pharmaceut
ical Co.) was tested at 50-130 mg / ml total protein. Although residual amounts of fibronectin could have been present, for the purposes of this study, the concentration of fibrinogen in the TFC composition was considered equal to the concentration of total protein. The effect of the addition of [Ca ⁺⁺ ] to the fibrinogen sealant [FS, TFC, thrombin and calcium salts] was tested at 10, 20, 40 and 60 mM.

FSを実験用二重シリンジ装置（Fenwal）を用いて、上
述の２インチの線に従って、上端から開始して下方へ移
動させつつ放出した。The FS was released using an experimental double syringe device (Fenwal), starting from the top and moving down, according to the 2-inch line described above.

表１は、カルシウムの不存在下における100〜1000NIH
単位/mlのトロンビンを含んだ50〜130mg/mlのフィブリ
ノーゲンを試験することによってえられたデータであ
る。各データ点は、４つの測定の平均である。Table 1 shows 100-1000 NIH in the absence of calcium.
Data obtained by testing 50-130 mg / ml fibrinogen with units / ml thrombin. Each data point is the average of four measurements.

表１が示しているように、下方のトロンビン濃度（例
えば、100NIH単位/ml）及び低いタンパク質含量（例え
ば、50mg/ml）においては、凝固時間が長かった。該混
合物はまた、「流れやすい」ことが観察された。より高
濃度のトロンビン（例えば、1000NIH単位/ml）は、一般
に放出装置内で凝固し、従って使用不能と考えられた。
CaCl₂の添加は、凝塊の外観を改善し、且つ一般に凝固
時間を短縮した。 As Table 1 shows, at lower thrombin concentrations (eg, 100 NIH units / ml) and lower protein content (eg, 50 mg / ml), clotting times were longer. The mixture was also observed to be "free flowing". Higher concentrations of thrombin (eg, 1000 NIH units / ml) generally clotted in the release device and were therefore considered unusable.
The addition of CaCl ₂ improved the appearance of the coagulum and generally shortened the coagulation time.

表２は、０〜60mMの範囲の〔Ca⁺⁺〕の効果を示してい
る。トロンビンを復元するのにCaCl₂溶液が使用され、
従ってFSの1:1混合物中の最終〔Ca⁺⁺〕は、表に報告さ
れている値の半分である。Table 2 shows the effect of [Ca ⁺⁺ ] in the range of 0-60 mM. CaCl ₂ solution is used to restore thrombin,
Thus, the final [Ca ⁺⁺ ] in a 1: 1 mixture of FS is half the value reported in the table.

上記の結果に基づいて、90〜130mg/mlのタンパク質範
囲及び250〜500NIH単位/mlのトロンビン濃度が、更なる
試験に適していると結論した。凝固を促進させるために
追加のカルシウムイオンが必要であることもまた明らか
である。従って、後の評価においてはCa⁺⁺濃度を変数と
して含めた。 Based on the above results, it was concluded that a protein range of 90-130 mg / ml and a thrombin concentration of 250-500 NIH units / ml were suitable for further testing. It is also clear that additional calcium ions are needed to promote coagulation. Therefore, in subsequent evaluations, Ca ⁺⁺ concentration was included as a variable.

B.架橋速度 これらの試験は、Caイオンの役割を判定すること及び
フィブリンの重合の程度並びにフィブリン重合による経
時的な架橋の速度に対する〔Ca⁺⁺〕の効果に焦点を当て
たものである。B. Crosslinking Rates These tests focus on determining the role of Ca ions and the extent of polymerization of fibrin and the effect of [Ca ⁺⁺ ] on the rate of crosslinking over time by fibrin polymerization.

フィブリンの架橋反応を、SDS/PAGEを利用した還元性
条件下の系において試験した。7.5％の分離ゲル及び3.7
5％の積み重ねゲルを、Schwartz,et al.,（Journal of
Clinical Investigation,50:1506,1971）によって記述
されているようにして注いだ。The fibrin crosslinking reaction was tested in a system under reducing conditions using SDS / PAGE. 7.5% separation gel and 3.7%
5% stacking gel was prepared according to Schwartz, et al., (Journal of
Clinical Investigation, 50: 1506, 1971).

トロンビン（Armour Pharmaceutical）を、望ましい
濃度、すなわち、０、２、６、12、20、40、又は60mM
の、CaCl₂を含んだ又は含まない溶液により復元した。
フィブリノーゲンを水で復元し、12×75mmの試験管中で
トロンビンと素早く混合し、そして適当な時間間隔で試
験のためにサンプリングした。凝塊を0.15MのNaClで濯
ぎ、次いで、凝塊の３倍の体積の9Mの尿素（３％SDS及
び３％のβ−メルカプトエタノールを含有）に、95±５
℃の水浴中で沸騰させることによって溶解させた。溶解
した凝塊を、次いで、ゲル電気泳動を実施するまで５℃
に貯蔵した。Thrombin (Armour Pharmaceutical) is added to the desired concentration, ie, 0, 2, 6, 12, 20, 40, or 60 mM.
With and without CaCl ₂ .
Fibrinogen was reconstituted with water, mixed quickly with thrombin in a 12 x 75 mm tube, and sampled at appropriate time intervals for testing. The coagulum is rinsed with 0.15 M NaCl and then added to three times the volume of the coagulum in 9 M urea (containing 3% SDS and 3% β-mercaptoethanol) at 95 ± 5.
Dissolved by boiling in a water bath at 0 ° C. The dissolved clot is then allowed to run at 5 ° C. until gel electrophoresis is performed.
Stored.

CaCl₂の濃度の効果を、500NIH単位/mlのトロンビン及
び90mg/ml及び130mg/mlのフィブリノーゲンで、10分の
凝固時間の後に試験した。γバンドの消失によるγ−γ
バンドの形成の速度に対するCa⁺⁺濃度の効果は、図２及
び３に示されている。The effect of the concentration of CaCl ₂ was tested with thrombin at 500 NIH units / ml and fibrinogen at 90 and 130 mg / ml after a clotting time of 10 minutes. γ-γ due to disappearance of γ band
The effect of Ca ⁺⁺ concentration on the rate of band formation is shown in FIGS.

図２及び３に図解されているように、Ca⁺⁺の存在は完
全なフィブリン重合のために必要である。20〜60mMの範
囲のカルシウムイオンが同等の結果を与えることから、
中点の濃度である40mMを、至適重合を保証するために選
択した。また、試験した時間点（10分）において測定し
た場合には、２つのフィブリノーゲン濃度（90mg/ml及
び130mg/ml）の間においてフィブリン重合には有意差が
なかった。As illustrated in FIGS. 2 and 3, the presence of Ca ⁺⁺ is required for complete fibrin polymerization. Since calcium ions in the range of 20-60 mM give comparable results,
A midpoint concentration of 40 mM was chosen to ensure optimal polymerization. Also, there was no significant difference in fibrin polymerization between the two fibrinogen concentrations (90 mg / ml and 130 mg / ml) as measured at the time point tested (10 minutes).

成分の濃度を変化させることの効果を研究するため
に、40mMのCaCl₂中トロンビン250NHI単位/ml又は500NIH
単位/ml及びフィブリノーゲン90mg/ml又は130mg/mlとい
う４通りの組み合わせを、試験した。10分の凝固時間の
後、ゲル電気泳動のためにサンプルを採取した。この試
験した時間点（10分）においては、トロンビン（40mMの
CaCl₂中）及びフィブリノーゲンのこれら４通りの組み
合わせのゲル電気泳動は、如何なる有意差も反映しなか
った。To study the effect of varying the concentration of the components, thrombin in 40 mM CaCl ₂ 250 NHI units / ml or 500 NIH
Four combinations were tested: unit / ml and fibrinogen 90 mg / ml or 130 mg / ml. After a clotting time of 10 minutes, samples were taken for gel electrophoresis. At the time point tested (10 minutes), thrombin (40 mM
Gel electrophoresis of these four combinations of CaCl ₂ ) and fibrinogen did not reflect any significant differences.

時間的試験を実施しそして24時間にわたってサンプリ
ングした。図４は、24時間という時間をかけて進行して
いるフィブリン重合反応を示している。図４に示されて
いるように、γ−γ二量体の形成は、Ca⁺⁺の存在下にお
いては非常に迅速に起こる（１分以内）。αポリマー
は、この系では、10分のインキュベーション時間までは
検出できない。インキュベーション時間（24時間まで）
の増大と共にαポリマーが増加するとき、αモノマーの
バンドの強度が対応して減少する。要約すると、この時
間的試験は、重合（γ−γ二量体）は、反応体が混合さ
れると殆ど即時におこり、αポリマーは一層緩やかに形
成されることを示している。この研究から、Caイオンの
存在が重合に必要であると、及び、結果が文献に先に報
告されている（T.Seelich,J.Head ＆ Neck Pathol.,3:6
5−69,1982:M,Schwartz,et al.,J.Clinical Inv.,50:15
06−1513,1971）ものに近いと結論することができる。A temporal test was performed and sampled over a 24 hour period. FIG. 4 shows the fibrin polymerization reaction progressing over a period of 24 hours. As shown in FIG. 4, γ-γ dimer formation occurs very rapidly (within 1 minute) in the presence of Ca ⁺⁺ . α-polymer cannot be detected in this system up to an incubation time of 10 minutes. Incubation time (up to 24 hours)
As the α-polymer increases with increasing α, the intensity of the α-monomer band decreases correspondingly. In summary, this temporal study shows that the polymerization (γ-γ dimer) occurs almost immediately when the reactants are mixed and the α-polymer forms more slowly. From this study, it was previously reported that the presence of Ca ions was required for polymerization and the results were reported in the literature (T. Seelich, J. Head & Neck Pathol., 3: 6
5-69, 1982: M, Schwartz, et al., J. Clinical Inv., 50:15.
06-1513, 1971).

C.引っ張り強さ バルク材料の破断が観察されるまで凝塊に歪みを加
え、必要とした力を引っ張り応力−歪み系において測定
することによって、フィブリンシール剤の引張り強さを
評価した。加えて、シール剤を製造するのに使用した重
合混合物中の諸成分を変化させることの関数としての破
断応力の変化を研究した。C. Tensile Strength The tensile strength of the fibrin sealant was evaluated by straining the agglomerate until breakage of the bulk material was observed and measuring the required force in a tensile stress-strain system. In addition, the change in break stress as a function of changing the components in the polymerization mixture used to make the sealant was studied.

引っ張り強さを検討するために、Nowotny,et al.,（B
iomaterials,2:55,1981）に記述されているのに基づい
て、幾らかの修正を加えて型を設計した。新たに設計し
た型は、凝塊の形成を視覚的に検査し易いように、透明
なプラスチックで製造した。清浄化を容易にするため
に、凝固は、使い捨ての凝塊保持器中において進行させ
た。To consider the tensile strength, see Nowotny, et al., (B
iomaterials, 2:55, 1981) and designed the mold with some modifications. The newly designed mold was made of clear plastic to facilitate visual inspection of clot formation. Coagulation proceeded in a disposable clot holder to facilitate cleaning.

この凝塊保持器は、プラスチックの使い捨ての移し替
えピペット（SAMCO,San Fernando Mfg.,コロラド州）を
切断することによって得た。湿らせたスポンジの小片２
つを、凝固混合物を両端で固定するのに使用した。スポ
ンジを所定位置に備えた使い捨ての凝塊保持器を、末端
保持器を通して型内へ挿入した（末端保持器は型に含ま
れる）。張力計（T10,Monsanto）を、凝塊の最大破断応
力を測定し記録するために使用した。T10把持器のため
のアダプターは、末端保持器を保持するように製造し
た。The clot retainer was obtained by cutting plastic disposable transfer pipettes (SAMCO, San Fernando Mfg., CO). Small piece of moistened sponge 2
One was used to fix the coagulation mixture at both ends. A disposable clot retainer with a sponge in place was inserted into the mold through the end retainer (the end retainer is included in the mold). A tensiometer (T10, Monsanto) was used to measure and record the maximum breaking stress of the coagulum. The adapter for the T10 gripper was manufactured to hold the end retainer.

二重シリンジ投与装置（Fenwal）及び３インチの22ゲ
ージ針を用いて、等量のフィブリノーゲン及びトロンビ
ン（CaCl₂を含む又は含まない）を注入することによっ
て、凝塊を形成させた。保持器内にシリンジを入れるに
先立って、全ての気泡を除去した。針は、一方のスポン
ジの「頂部」を通し、型を通しそして他のスポンジの
「底部」内へ挿入した。型全体の下に置かれたパラフィ
ルム（American Can Co.）が、過剰の混合物の漏出を防
止した。凝固混合物が型を満たしたとき、針を抜き取っ
た。Clots were formed by injecting equal amounts of fibrinogen and thrombin (with or without CaCl ₂ ) using a dual syringe dosing device (Fenwal) and a 3 inch 22 gauge needle. All air bubbles were removed prior to placing the syringe in the retainer. The needle was passed through the "top" of one sponge, through the mold and into the "bottom" of the other sponge. Parafilm (American Can Co.) placed under the entire mold prevented leakage of excess mixture. When the solidification mixture filled the mold, the needle was withdrawn.

試験前の２乃至５分に、凝塊を型から取り出してT10
把持器内に入れた。試験時間に、凝塊を100mm/分の速度
で引っ張った。ゲージ長さは、（幾分任意的に）6.0cm
と設定し、そして凝塊の断面積は0.049cm²であった。T1
0は、応力値をKgf/cm²の単位で報告した。Two to five minutes before the test, the coagulum is removed from the mold and
It was placed in the gripper. At the test time, the coagulum was pulled at a speed of 100 mm / min. The gauge length is (somewhat optional) 6.0cm
And the cross-sectional area of the coagulum was 0.049 cm ² . T1
0 reported stress values in units of Kgf / cm ² .

^＊フィブリノーゲンロットNo.2830R129 引っ張り強さ（ピーク応力）の測定は、凝固混合物の
注入の10分後に行った。表３の結果は、トロンビンが25
0NIH単位/ml又は500NIH単位/mlの場合においてCaCl₂濃
度を変化させることの影響を示している。３濃度のフィ
ブリノーゲン（90,110及び130mg総タンパク質/ml）を試
験した。ピーク応力の各測定値は、Ｎ回の測定の平均で
ある。各点当たり最低８回の読み取りを行った。 ^* Fibrinogen lot No. 2830R129 Tensile strength (peak stress) was measured 10 minutes after injection of the solidification mixture. The results in Table 3 show that thrombin was 25
It shows the effect of changing the CaCl ₂ concentration in the case of 0 NIH units / ml or 500 NIH units / ml. Three concentrations of fibrinogen (90, 110 and 130 mg total protein / ml) were tested. Each measurement of peak stress is the average of N measurements. A minimum of 8 readings were taken per point.

表３に示されているように、Ca⁺⁺の不存在下では、両
方のトロンビン濃度及び全てのフィブリノーゲンレベル
において、凝塊は最低のピーク強度を有していた。10〜
60mMのカルシウムイオンの添加は、全てのトロンビン／
フィブリノーゲン濃度について、引っ張り強度を増大さ
せた。一般的に、比較的高いトロンビン濃度、すなわち
トロンビン500NIH単位/mlにおいて比較的大きな値が観
察され、それはまた〔Ca⁺⁺〕については20〜60mMの範囲
のカルシウムイオンにおいて幾分近似の値を与えた。最
少の標準偏差（SD）値は40mMCaCl₂において観察され
た。As shown in Table 3, in the absence of Ca ⁺⁺ , the clot had the lowest peak intensity at both thrombin concentrations and all fibrinogen levels. Ten~
The addition of 60 mM calcium ion is sufficient for all thrombin /
For fibrinogen concentration, the tensile strength was increased. In general, higher values were observed at higher thrombin concentrations, i.e., 500 NIH units / ml thrombin, which also gave somewhat approximate values for [Ca ⁺⁺ ] in the range of 20-60 mM calcium ions. Was. The lowest standard deviation (SD) value was observed at 40 mM CaCl ₂ .

ヒトフィブリノーゲンの第２のロットを、これらの知
見を確認するために試験し、データを40及び60mMCaCl₂
及び500NIH単位/mlトロンビンにおいて比較した。第２
ロットのフィブリノーゲンを試験した結果は、特に110
及び130mgという比較的高濃度において一般的に近似の
ピーク応力値を与え、そしてまた90mg/mlにおいて一層
高い値を与えた。A second lot of human fibrinogen was tested to confirm these findings and the data were collected at 40 and 60 mM CaCl _2.
And 500 NIH units / ml thrombin. Second
Lots of fibrinogen were tested, especially 110
And relatively high concentrations of 130 mg gave generally near peak stress values, and also gave higher values at 90 mg / ml.

凝塊の引っ張り強さの時間的試験は、フィブリノーゲ
ン90mg/ml及び130mg/みmlを、トロンビン濃度500NIH単
位/ml及びCaCl₂40mMを用いて、24時間かけて行った。24
時間にわたって、引張り強さの値は何ら有意な低下を示
さなかったピーク応力のゆっくりした上昇が、時間と共
に架橋が続くときに起こると予想された。Temporal testing of clot tensile strength was performed over 24 hours using fibrinogen 90 mg / ml and 130 mg / ml with a thrombin concentration of 500 NIH units / ml and CaCl ₂ 40 mM. twenty four
Over time, a slow rise in peak stress, where the tensile strength values did not show any significant decrease, was expected to occur as crosslinking continued over time.

D.凝塊溶解試験 プラスミノーゲン活性化因子と共に又はこれを含まず
に、37℃にて無菌の、湿潤した条件下にインキュベート
したときにフィブリン凝塊が固形のままである時間の長
さを測定した。また、反応混合物へのプロテアーゼ阻害
剤（アプロチニン（Aprotinin））の添加が凝塊の寿命
に与える影響についても試験した。D. Clot dissolution test The length of time the fibrin clot remains solid when incubated under sterile, moist conditions at 37 ° C with or without plasminogen activator is determined. It was measured. The effect of the addition of a protease inhibitor (Aprotinin) to the reaction mixture on coagulation life was also tested.

90、110、又は130mg/mlの総タンパク質という３通り
の濃度のうちの何れかを得るために、次の希釈剤のうち
の一つを用いて滅菌ヒトフィブリノーゲン溶液を調製し
た。Sterile human fibrinogen solutions were prepared using one of the following diluents to obtain any of three concentrations: 90, 110, or 130 mg / ml total protein.

a.滅菌水（すなわち、ゼロKIU/mlのアプロチニン） b.1000KIU/mlのアプロチニン溶液 c.3000KIU/mlのアプロチニン溶液 トロンビンは、250又は500NIH単位/mlとするよう、40
mMのCaCl₂溶液で復元した。こうして、トロンビンとフ
ィブリノーゲンの６通りの組み合わせを試験した。ウロ
キナーゼ（Abbott）は、通常の食塩水中に５単位/mlに
調製した。a. sterile water (ie, zero KIU / ml aprotinin) b. 1000 KIU / ml aprotinin solution c. 3000 KIU / ml aprotinin solution Thrombin should be adjusted to 250 or 500 NIH units / ml.
Reconstituted with mM CaCl ₂ solution. Thus, six combinations of thrombin and fibrinogen were tested. Urokinase (Abbott) was prepared at 5 units / ml in normal saline.

フィブリン凝塊は、円筒状のシリコンチューブ（内径
5mm）中において等しい液量のフィブリノーゲン（水又
はアプロチニン中）及びトロンビン（CaCl₂溶液中）を
混合することによって、調製した。この混合物を、二重
シリンジ投与装置（Fenwal）を用いて放出した。この放
出装置及びシリコンチューブの全ては、オートクレーブ
により滅菌した。Fibrin clot is a cylindrical silicon tube (inner diameter
5 mm) by mixing equal volumes of fibrinogen (in water or aprotinin) and thrombin (in CaCl ₂ solution). The mixture was released using a dual syringe dosing device (Fenwal). All of the release device and the silicone tube were sterilized by an autoclave.

10cmのシリコンチューブを、パラフィルムを用いて一
端においてシールした。ごく僅かにパラフィルムを刺通
して、（22G）の針先でチューブ内に迅速にフィブリノ
ーゲン及びトロンビンを注入するために、チューブを垂
直から約10°に保持し、Fenwal装置を使用した。凝塊を
20分間固化させた後、この10cmのシリコンチューブを3c
mの長さに切断して、590μｌの凝塊体積を得た。各3cm
の部分を半分に切断し、そしてこれら２つの半分を、24
ウェルプレート（Corning）の１つのウェル内に入れ
た。気泡を含んでいることの見出された如何なる部分も
廃棄した。チューブの一端を穏やかに絞ることによって
凝塊をチューブから押出した。それを1mlの滅菌食塩水
で濯ぎ、次いで、ウェル内に1mlのウロキナーゼ又は食
塩水を加え、そしてプレートを無菌の湿った37℃のイン
キュベータに入れた。Fibrin（ogen）Degradation Prdu
cts膠着キット（Baxter Dade）を用いて試験するため
に、24時間毎に、各ウェルから上澄を採取した。A 10 cm silicone tube was sealed at one end with parafilm. The tube was held at about 10 ° from vertical and the Fenwal apparatus was used to inject fibrinogen and thrombin quickly into the tube with a (22G) needle tip with only a slight penetration of parafilm. Coagulum
After solidifying for 20 minutes, 3 cm of this 10 cm silicon tube
Cut to a length of m to give a coagulum volume of 590 μl. 3cm each
Cut in half and cut these two halves into 24
Placed in one well of a well plate (Corning). Any parts found to contain bubbles were discarded. The clot was extruded from the tube by gently squeezing one end of the tube. It was rinsed with 1 ml of sterile saline, then 1 ml of urokinase or saline was added into the wells, and the plates were placed in a sterile moist 37 ° C. incubator. Fibrin (ogen) Degradation Prdu
Supernatants were collected from each well every 24 hours for testing using the cts glue kit (Baxter Dade).

37℃のインキュベータにプレートを戻す前に、ウロキ
ナーゼ及び食塩溶液を新鮮な試薬で毎日置き換えた。全
ての調製及び上澄のサンプル採取は、滅菌条件下に実施
した。凝塊を目で検査し、それらの外観を記録した。14
日後、実験を終了した。試験した条件数は36であり、い
ずれの条件も二重に実施した。Before returning the plate to the 37 ° C. incubator, urokinase and saline solution were replaced daily with fresh reagents. All preparations and sampling of supernatants were performed under sterile conditions. The clots were visually inspected and their appearance recorded. 14
One day later, the experiment was terminated. The number of conditions tested was 36, and each condition was performed in duplicate.

表４は、アプロチニンを含まない場合のウロキナーゼ
の存在下における凝塊溶解時間（凝塊がその円柱形状を
失う時間と定義される）を要約している。観察された範
囲は７〜11日であり、平均は8.66±1.5日であった。Fib
rin（ogen）Degradation Prducts（FDP）の測定は、凝
塊がその十分規定された形状を失ったときに一般に対応
する又は直ぐそれに続く活性ピークを示した。 Table 4 summarizes the clot dissolution time in the presence of urokinase without aprotinin (defined as the time the clot loses its cylindrical shape). The observed range was 7-11 days, with an average of 8.66 ± 1.5 days. Fib
Measurements of rin (ogen) Degradation Prducts (FDP) generally showed a corresponding or immediately following activity peak when the clot lost its well-defined shape.

ウロキナーゼを除去して、アプロチニンの存在下又は
不存在下に凝塊を通常の食塩水中でインキュベートする
のみである場合には、凝塊は、全観察期間（すなわち14
日）の間、その完全な形状を維持した。FDP測定は、凝
結の有意な溶解がないことを確認した。If urokinase is removed and the clot is only incubated in normal saline in the presence or absence of aprotinin, the clot is removed for the entire observation period (ie, 14
During its day). FDP measurements confirmed that there was no significant dissolution of condensation.

この試験は、凝塊が元々在る如何なるプラスミノーゲ
ン活性化因子によっても影響を受けない場合には、それ
は少なくとも14日間は維持されると予想されることを示
している。ウロキナーゼが存在する場合には、凝塊は最
短７日持続する。治癒機構がその天然の役割を演じるの
に、これらの期間は十分であろう。従って、これらの結
果に基づいて、フィブリノーゲン調製物中の痕跡量のプ
ラスミノーゲンは凝塊の寿命に有害な影響を与えないと
いうこと及びアプロチニン等のようなプロテアーゼ阻害
剤の添加は必要ないということが結論できる。This test shows that if the clot is not affected by any native plasminogen activator, it is expected to be maintained for at least 14 days. When urokinase is present, the clot lasts for a minimum of 7 days. These periods will be sufficient for the healing mechanism to play its natural role. Therefore, based on these results, that trace amounts of plasminogen in fibrinogen preparations do not adversely affect the longevity of the clot and that no addition of protease inhibitors such as aprotinin is necessary. Can be concluded.

実施例３ TFC in vivo試験 TFCの至適濃度を推定するために、in vivoモデルを用
いて試験を行った。Swiss Websterマウス（20〜25g）
を、試験のために５匹ずつの10の群に振り分けた。利用
したプロトコールにおいて、各動物を麻酔し、体重測定
し、そして該動物の背中から皮膚の小片を採取した。こ
の皮膚標本を食塩液に浸し、Gottlob装置に取り付け
た。次いで、種々の濃度（表２）の等しい量のTFC及び
トロンビンを傷に同時に加え、皮膚を該動物に置き直
し、その位置に約２分間保持した。Example 3 TFC in vivo test In order to estimate the optimal concentration of TFC, a test was performed using an in vivo model. Swiss Webster mouse (20-25g)
Were divided into ten groups of five for testing. In the protocol utilized, each animal was anesthetized, weighed, and a small piece of skin was removed from the back of the animal. The skin specimen was immersed in a saline solution and attached to a Gottlob apparatus. Then, equal amounts of TFC and thrombin at various concentrations (Table 2) were simultaneously added to the wound and the skin was replaced on the animal and held in place for about 2 minutes.

麻酔した動物を台上にうつ伏せに置き、次いでそれを
張力計（Monsanto Company）上に配置し、Gottlob装置
を把持器に取り付けた。張力計のパラメータを次のよう
に設定した。（１）面積:1.76cm²、（２）速度:10.0mm/
分、（３）ゲージ:1.0cm、（４）応力範囲:500.0％。ピ
ストン（皮膚標本を備えた）を動物の背から分離するの
に要する力をg/cm²の単位で記録した。これらの実験か
らのデータを、RS1/Discoverソフトウェア（BBN Softwa
re Corp.,Cambridge,マサチューセッツ州）を用いて統
計的に評価した。この試験の結果の解析は、120〜130mg
/mlのTFC及び250単位/mlのトロンビンが、最大接着応答
を与えるということを示した。The anesthetized animal was placed prone on a table, which was then placed on a tensiometer (Monsanto Company) and the Gottlob device was attached to a gripper. The parameters of the tensiometer were set as follows. (1) Area: 1.76 cm ² , (2) Speed: 10.0 mm /
Minute, (3) gauge: 1.0 cm, (4) stress range: 500.0%. The force required to separate the piston (with skin specimen) from the back of the animal was recorded in g / cm ² . The data from these experiments was transferred to RS1 / Discover software (BBN Softwa
re Corp., Cambridge, Mass.). Analysis of the results of this test was performed at 120-130 mg
It has been shown that / ml TFC and 250 units / ml thrombin give the maximal adhesion response.

in vivoにおいて組織に接着する凝塊のこの能力は、
止血を維持するのに重要である。この実験において、最
大接着応答は試験した試薬範囲内において起こり、実施
例２のin vitroでの知見が確認された。This ability of the clot to adhere to tissue in vivo
Important to maintain hemostasis. In this experiment, the maximum adhesion response occurred within the reagent range tested, confirming the in vitro findings of Example 2.

実施例４ TFCの特徴 TFC組成物を、実施例１に記述した工程ステップに一
般的に従って製造した。以下に特定したTFCの特徴を解
析し、次の結果を得た。Example 4 TFC Characteristics A TFC composition was prepared generally following the process steps described in Example 1. The following TFC characteristics were analyzed and the following results were obtained.

実施例５ TFC工程中間体中のウイルス活性の検出不能レベルまで
の減少 TFC工程中間体（実施例１を参照）を、５種の脂質エ
ンベロープウイルスの活性についてアッセイした。アッ
セイした脂質エンベロープは、Pseudorabies（「PR
V」、ヘルペスウイルスのモデルとして）、HIVタイプ１
及び２、Sindbis（「SIN」、Ｃ型肝炎ウイルスのモデル
として）、及びVesicular Stomatis Virus（「VSV」、R
NAウイルスについてのモデルとして）である。工程中間
体は、PEG沈殿物のトリスリン酸緩衝液（pH8.6±0.3）
（緩衝剤を含まないなら、ウイルス活性減少剤の殺ウイ
ルス活性が低下し、一層高濃度の薬剤が用いられよう）
への再懸濁の後に得られた。 Example 5 Reduction of Virus Activity in TFC Step Intermediates to Undetectable Levels TFC step intermediates (see Example 1) were assayed for the activity of five lipid envelope viruses. The lipid envelopes assayed were Pseudorabies ("PR
V ", as a model of herpes virus), HIV type 1
And 2, Sindbis ("SIN", as a model of hepatitis C virus), and Vesicular Stomatis Virus ("VSV", R
As a model for NA virus). Process intermediate is PEG precipitate trisphosphate buffer (pH 8.6 ± 0.3)
(If no buffer is included, the viricidal activity of the viral activity reducer will be reduced and a higher concentration of the drug will be used.)
Obtained after resuspension.

アッセイの目的のために、サンプルを、次のウイルス
活性減少剤の存在下に４種のエンベロープウイルスで別
々にスパイクした。すなわち、TNBP、オクトキシノール
９及びポリソルベート80の混合物。それぞれの比率は、
0.3％:1％:0.3％（V/V）。For the purpose of the assay, samples were spiked separately with the four enveloped viruses in the presence of the following viral activity reducing agents. That is, a mixture of TNBP, octoxynol 9, and polysorbate 80. Each ratio is
0.3%: 1%: 0.3% (V / V).

PRV,VSV及びSINは、ウイルス活性減少剤による処理の
前後におけるプラーク形成単位（「pfu」）を測定する
ために、適当な細胞系（それぞれ、ブタ腎臓13（「PK−
13」）、バッファローグリーンモンキー腎臓（「BGM
K」）及びVero）と共にインキュベートすることにより
アッセイした。HIV−１は、ウイルス活性減少剤による
処理の前後におけるウイルスの50％組織培養感染投与量
終点（TCID₅₀）を決定するために、感受性のあるＴ細胞
（H9）とのインキュベーションによってアッセイした。
これらのアッセイの結果は下に表にしてあり、それは、
TFCの製造中におけるウイルス活性減少剤の使用が、そ
こに存在する脂質エンベロープウイルスの活性を減少さ
せるのに非常に有効である、ということを明らかにして
いる。PRV, VSV and SIN were used to measure plaque forming units ("pfu") before and after treatment with the viral activity reducing agent in appropriate cell lines (porcine kidney 13 ("PK-
13 "), Buffalo Green Monkey Kidney (" BGM
K ") and Vero). HIV-1 was assayed by incubation with sensitive T cells (H9) to determine the 50% tissue culture infectious dose endpoint (TCID ₅₀ ) of the virus before and after treatment with the viral activity reducing agent.
The results of these assays are tabulated below and show that
It has been shown that the use of viral activity reducing agents during the manufacture of TFCs is very effective in reducing the activity of the lipid envelope virus present therein.

プラークは検出されなかった。ウイルス回収を計算す
るために、アッセイの理論的検出点を使用した。これら
の計算のためには、溶媒／界面活性剤混合物（すなわ
ち、ウイルス活性減少剤）による試薬の細胞毒性を考慮
した。 No plaque was detected. The theoretical detection points of the assay were used to calculate virus recovery. For these calculations, the cytotoxicity of the reagent due to the solvent / detergent mixture (ie, the viral activity reducing agent) was considered.

実施例６ TFCのパイロージェン性 周知のウサギパイロージェン試験を用いて、実施例４
のTFC組成物のパイロージェン性を試験した。３羽の家
兎に0.5ml/kgの投与量を注射し、注射後３時間にわたっ
てその体温を測定した。この試験の結果を下に表にして
示す。それは、TFCが無パイロージェン性であることを
強く示している。Example 6 Pyrogenicity of TFC Using the well-known rabbit pyrogen test,
Were tested for pyrogenicity. Three rabbits were injected with a dose of 0.5 ml / kg and their body temperature was measured for 3 hours after injection. The results of this test are tabulated below. It strongly indicates that TFC is pyrogen-free.

上記の実施例及び記述は、本発明の理解を助けるため
に提供されたものであり、そして、そのようなものとし
て、模範的であることのみを意図しており、限定的であ
ることを意図したものではない。当業者は、状況に応じ
て他の材料及び方法も使用できること及びそれらがやは
り本発明の精神及び範囲に含まれるということを認識す
るであろう。 The above examples and description are provided to aid the understanding of the present invention, and as such, are intended to be exemplary only, and not limiting. It was not done. Those skilled in the art will recognize that other materials and methods may be used depending on the circumstances and that they are also within the spirit and scope of the present invention.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 リウ，シュ・レン アメリカ合衆国90703カリフォルニア、 セリトス、リールアベニュー 17149 (72)発明者 トーマス，ウィリアム，アール アメリカ合衆国92629―4443カリフォル ニア、モナークビーチ、ブリガンティン ドライブ 33571 (72)発明者 アルパーン，メレーヌ アメリカ合衆国90808カリフォルニア、 ロングビーチ、ジュリアンアベニュー 3270 (72)発明者 エノモト，スタンレー，ティー アメリカ合衆国91324カリフォルニア、 ノースリッジ、ステアストリート 18736 (72)発明者 ガランチョン，キャタリーヌ，エム アメリカ合衆国91324カリフォルニア、 ノースリッジ、パソロブレスアベニュー 9151 (58)調査した分野(Int.Cl.⁶，ＤＢ名) A61K 38/36,38/37 A61K 35/14,35/16 ＣＡ（ＳＴＮ) ＭＥＤＬＩＮＥ（ＳＴＮ) ＢＩＯＴＥＣＨＡＢＳ（ＳＴＮ)────────────────────────────────────────────────── ─── Continuing the front page (72) Inventor Liu, Sh Len USA 90703 California, Cerritos, Lille Avenue 17149 (72) Inventor Thomas, William, Earl United States 92629-4443 California, Monarch Beach, Brigantine Drive 33571 (72) Inventor Alpan, Méline United States 90808 California, Long Beach, Julian Avenue 3270 (72) Inventor Enomoto, Stanley, Tee United States 91324 California, North Ridge, Stair Street 18736 (72) Inventor Garachion, Catherine, M United States 91324 California, Northridge, Paso Robles Avenue 9151 (58)査the art (Int.Cl. ^6, DB name) A61K 38 / 36,38 / 37 A61K 35 / 14,35 / 16 CA (STN) MEDLINE (STN) BIOTECHABS (STN)

Claims (6)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項１】ヒト血漿又は血漿画分から導かれる止血促
進組成物であって、 （ａ）総タンパク質濃度の少なくとも50％の量でフィブ
リノーゲンを有し、 （ｂ）約10〜約40単位/mlの第XIII因子を有し、 （ｃ）検出可能レベルの脂質エンベロープウイルス活性
を含まず、 （ｄ）実質的に無パイロージェン性であり、 （ｅ）５μg/ml以下のプラスミノーゲンを有し、 （ｆ）本質的にプロトロンビン複合体及び活性トロンビ
ンを含まず、そして （ｇ）線溶阻害剤を含まない、 ことを特徴とする、組成物。1. A composition for promoting hemostasis derived from human plasma or a plasma fraction, comprising: (a) fibrinogen in an amount of at least 50% of the total protein concentration; (b) about 10 to about 40 units / ml. (C) without detectable levels of lipid envelope virus activity; (d) substantially pyrogen-free; (e) having plasminogen of 5 μg / ml or less; (F) essentially free of the prothrombin complex and active thrombin, and (g) free of fibrinolytic inhibitors. 【請求項２】前記組成物が凍結乾燥されたものである、
請求項１の組成物。2. The composition according to claim 1, wherein the composition is freeze-dried.
The composition of claim 1. 【請求項３】安定化剤及び／又は可溶剤を更に含むもの
である、請求項１の組成物。3. The composition according to claim 1, further comprising a stabilizer and / or a solvent. 【請求項４】治療上有効量の薬物を更に含む、請求項１
の組成物。4. The method of claim 1, further comprising a therapeutically effective amount of the drug.
Composition. 【請求項５】診断上有効量の診断剤を更に含む、請求項
１の組成物。5. The composition of claim 1, further comprising a diagnostically effective amount of a diagnostic agent. 【請求項６】フィブリンシール剤であって、 i.ヒト血漿又は血漿画分より導かれた止血促進組成物で
あって、 （ａ）総タンパク質の濃度の少なくとも50％の量でフィ
ブリノーゲンを有し、 （ｂ）約10〜約40単位/mlの第XIII因子を有し、 （ｃ）検出可能レベルの脂質エンベロープウイルス活性
を含まず、 （ｄ）実質的に無パイロージェン性であり、 （ｅ）５μg/ml以下のプラスミノーゲンを有し、 （ｆ）実質的にプロトロンビン複合体及び活性トロンビ
ンを含まず、そして （ｇ）線溶阻害剤を含まない ことを特徴とする、組成物と、 ii.触媒有効量のトロンビンと、そして iii.カルシウムイオン との混合物を含む、シール剤。6. A fibrin sealant comprising: i. A hemostatic promoting composition derived from human plasma or plasma fraction, comprising: (a) fibrinogen in an amount of at least 50% of the total protein concentration; (B) has about 10 to about 40 units / ml of factor XIII, (c) does not contain detectable levels of lipid envelope virus activity, (d) is substantially pyrogen-free, (e) A composition comprising 5 μg / ml or less of plasminogen, (f) substantially free of prothrombin complex and active thrombin, and (g) free of fibrinolysis inhibitor; and ii. A sealant comprising a mixture of a catalytically effective amount of thrombin, and iii. Calcium ions.