JP2022127433A - マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地及びその使用 - Google Patents
マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地及びその使用 Download PDFInfo
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Abstract
【課題】マクロファージを神経細胞に直接分化転換するための培地、並びに、前記培地を用いた神経細胞の製造方法及びマクロファージを神経細胞に直接分化転換する方法を提供する。【解決手段】マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地は、グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む。神経細胞の製造方法、及び、マクロファージを神経細胞に直接分化転換する方法は、グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む。【選択図】なし
Description
本発明は、マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地及びその使用に関する。具体的には、本発明は、マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地、並びに、前記培地を用いた神経細胞の製造方法及びマクロファージを神経細胞に直接分化転換する方法に関する。
体細胞を、多能性幹細胞を経ずに特定の分化細胞に直接転換することを「ダイレクトリプログラミング」と呼び、近年、このダイレクトリプログラミングは、基礎研究、創薬及び再生医療における新たな潮流として研究開発が盛んに行われている。
例えば、非特許文献１～３には、アストロサイトや線維芽細胞等の体細胞から神経細胞へ直接分化転換したことが報告されている。
一方、マクロファージは遊走作用を有する。当該作用により、例えば、脳梗塞急性期等において、マクロファージは病巣へと集積する。この集積したマクロファージを生体内で神経細胞へダイレクトリプログラミングすることができれば、新しい神経再生医療の可能性が拡がる。
Hu W et al., "Direct Conversion of Normal and Alzheimer's Disease Human Fibroblasts into Neuronal Cells by Small Molecules.", Cell stem cell, Vol. 17, Issue 2, pp. 204-212, 2015.
Yin JC et al., "Chemical Conversion of Human Fetal Astrocytes into Neurons through Modulation of Multiple Signaling Pathways.", Stem cell reports, Vol. 12, Issue 3, pp. 488-501, 2019.
Mahato B et al., "Pharmacologic fibroblast reprogramming into photoreceptors restores vision.", Nature, Vol. 581, Issue 7806, pp. 83-88, 2020.
しかしながら、マクロファージから神経細胞へ直接分化転換した報告はこれまでにない。
本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであって、マクロファージを神経細胞に直接分化転換するための培地、並びに、前記培地を用いた神経細胞の製造方法及びマクロファージを神経細胞に直接分化転換する方法を提供する。
すなわち、本発明は、以下の態様を含む。
（１） マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地であって、
グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む、培地。
（２） 前記ＰＵ．１阻害剤がＤＢ２３１３である、（１）に記載の培地。
（３） 前記ＰＵ．１阻害剤の含有量が培地の総容積に対して０．１μｍｏｌ／Ｌ超１μｍｏｌ／Ｌ未満である、（１）又は（２）に記載の培地。
（４） 前記神経分化誘導因子がＩＳＸ－９である、（１）～（３）のいずれか一つに記載の培地。
（５） 前記培地は、ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤を更に含む、（１）～（３）のいずれか一つに記載の培地。
（６） グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む、神経細胞の製造方法。
（７） マクロファージを神経細胞に直接分化転換する方法であって、
グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む、方法。
（１） マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地であって、
グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む、培地。
（２） 前記ＰＵ．１阻害剤がＤＢ２３１３である、（１）に記載の培地。
（３） 前記ＰＵ．１阻害剤の含有量が培地の総容積に対して０．１μｍｏｌ／Ｌ超１μｍｏｌ／Ｌ未満である、（１）又は（２）に記載の培地。
（４） 前記神経分化誘導因子がＩＳＸ－９である、（１）～（３）のいずれか一つに記載の培地。
（５） 前記培地は、ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤を更に含む、（１）～（３）のいずれか一つに記載の培地。
（６） グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む、神経細胞の製造方法。
（７） マクロファージを神経細胞に直接分化転換する方法であって、
グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む、方法。
上記態様の培地によれば、マクロファージを神経細胞に直接分化転換するための培地を提供することができる。上記態様の製造方法によれば、マクロファージから直接分化転換した神経細胞を製造することができる。上記態様の方法によれば、マクロファージを神経細胞に直接分化転換することができる。
＜マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地＞
本実施形態のマクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地（以下、単に「本実施形態の培地」と称する）は、グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤（ＧＳＫ３阻害剤）、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤（ＲＯＣＫ阻害剤）、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む。
本実施形態のマクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地（以下、単に「本実施形態の培地」と称する）は、グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤（ＧＳＫ３阻害剤）、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤（ＲＯＣＫ阻害剤）、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む。
本実施形態の培地は、上記構成を有することで、マクロファージを神経細胞に直接分化転換することができる。
なお、本明細書において、「直接分化転換する」とは、体細胞を、多能性幹細胞を経ずに特定の分化細胞に直接転換することを意味し、「ダイレクトリプログラミングする」と同義で用いられる。
なお、本明細書において、「直接分化転換する」とは、体細胞を、多能性幹細胞を経ずに特定の分化細胞に直接転換することを意味し、「ダイレクトリプログラミングする」と同義で用いられる。
これまでの報告から、線維芽細胞やアストロサイトを、特定の組成を有する培地を用いて培養することで、化学的に神経細胞へとダイレクトリプログラミングすることは可能であった。しかしながら、これら細胞で用いられている培地をそのままマクロファージに適用しても、神経細胞へとダイレクトリプログラミングすることはできなかった。これは、化学的にダイレクトリプログラミングするために求められる成分又は因子は、原料となる体細胞の種類によって大きく異なり、マクロファージから神経細胞へとダイレクトリプログラミングするために適切な成分又は因子がこれまで判明していなかったためであると考えられる。
これに対して、発明者らは、マクロファージの数ある特性及びマーカー遺伝子の中から、転写因子であるＰＵ．１に着目し、ＰＵ．１阻害剤を用いることでマクロファージが本来有する特性の発現を抑制でき、当該特性の発現を抑制することが、効率的にマクロファージを神経細胞へと直接分化転換するために有効であることを見出した。さらに、マクロファージが神経細胞へと直接分化転換するために有効な最小限の成分として、ＰＵ．１阻害剤に加えて、グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、及び神経分化誘導因子の組み合わせが有効であることを見出し、本発明を完成するに至った。
以下、本実施形態の培地に含まれる各成分について詳細を説明する。
［ＰＵ．１阻害剤］
ＰＵ．１は、顆粒球、単球及びＢリンパ球において発現しており、これら細胞系列の分化に必須の転写因子であることが知られている。そのため、マクロファージにおけるＰＵ．１の発現又は機能を抑制することで、マクロファージが本来有する特性が発揮されることを抑制することができる。これにより、効率的にマクロファージを神経細胞へと直接分化転換することができる。
ＰＵ．１は、顆粒球、単球及びＢリンパ球において発現しており、これら細胞系列の分化に必須の転写因子であることが知られている。そのため、マクロファージにおけるＰＵ．１の発現又は機能を抑制することで、マクロファージが本来有する特性が発揮されることを抑制することができる。これにより、効率的にマクロファージを神経細胞へと直接分化転換することができる。
すなわち、ＰＵ．１阻害剤としては、ＰＵ．１の発現又は機能を阻害できるものであれば特に限定されない。ＰＵ．１阻害剤として具体的には、例えば、低分子化合物、ＰＵ．１発現阻害剤、ＰＵ．１特異的結合物質等が挙げられる。中でも、ＰＵ．１阻害剤としては、低分子化合物であることが好ましい。
ＰＵ．１阻害剤である低分子化合物としては、例えば、ＤＢ１９７６（ＣＡＳ番号：２３６９６６３－９３－２）、ＤＢ２１１５（ＣＡＳ番号：１３６６２３１－７０－０）、ＤＢ２３１３（ＣＡＳ番号：２１７０６０６－７４－１）が挙げられる。中でも、ＤＢ２３１３が好ましい。
ＰＵ．１発現阻害剤としては、例えば、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、リボザイム、アンチセンス核酸等が挙げられる。これらのＰＵ．１発現阻害剤を投与することにより、ＰＵ．１の発現量を低下させて、マクロファージが本来有する特性が発揮されることを抑制することができる。その結果、効率的にマクロファージを神経細胞へと直接分化転換することができる。
ｓｉＲＮＡ（ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ ＲＮＡ）は、ＲＮＡ干渉による遺伝子サイレンシングのために用いられる２１塩基対以上２３塩基対以下の低分子２本鎖ＲＮＡである。細胞内に導入されたｓｉＲＮＡは、ＲＮＡ誘導サイレンシング複合体（ＲＩＳＣ）と結合する。この複合体はｓｉＲＮＡと相補的な配列を持つｍＲＮＡに結合し切断する。これにより、配列特異的に遺伝子の発現を抑制する。
ｓｉＲＮＡは、センス鎖及びアンチセンス鎖オリゴヌクレオチドをＤＮＡ／ＲＮＡ自動合成機でそれぞれ合成し、例えば、適当なアニーリング緩衝液中、９０℃以上９５℃以下程度で約１分程度変性させた後、３０℃以上７０℃以下程度で約１時間以上８時間以下アニーリングさせることにより調製することができる。
ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、リボザイム及びアンチセンス核酸は、安定性や活性を向上させるために、種々の化学修飾を含んでいてもよい。例えば、ヌクレアーゼ等の加水分解酵素による分解を防ぐために、リン酸残基を、例えば、ホスホロチオエート（ＰＳ）、メチルホスホネート、ホスホロジチオネート等の化学修飾リン酸残基に置換してもよい。また、少なくとも一部をペプチド核酸（ＰＮＡ）等の核酸類似体により構成してもよい。
ＰＵ．１特異的結合物質としては、ＰＵ．１に特異的に結合してＰＵ．１の機能を阻害するものが挙げられ、例えば、抗体、抗体断片、アプタマー等が挙げられる。抗体は、例えば、マウス等の動物に、ＰＵ．１タンパク質又はその断片を抗原として免疫することによって作製することができる。或いは、例えば、ファージライブラリーのスクリーニングにより作製することができる。抗体断片としては、Ｆｖ、Ｆａｂ、ｓｃＦｖ等が挙げられる。上記の抗体は、モノクローナル抗体であることが好ましい。また、市販の抗体であってもよい。
アプタマーとは、標的物質に対する特異的結合能を有する物質である。アプタマーとしては、核酸アプタマー、ペプチドアプタマー等が挙げられる。標的ペプチドに特異的結合能を有する核酸アプタマーは、例えば、ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ｌｉｇａｎｄ ｂｙ ｅｘｐｏｎｅｎｔｉａｌ ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ（ＳＥＬＥＸ）法等により選別することができる。また、標的ペプチドに特異的結合能を有するペプチドアプタマーは、例えば酵母を用いたＴｗｏ－ｈｙｂｒｉｄ法等により選別することができる。
培地中のＰＵ．１阻害剤の濃度は、培地の総容積に対して、０．１μｍｏｌ／Ｌ超１μｍｏｌ／Ｌ（以下、「ｍｏｌ／Ｌ」をＭと略記する）未満であることが好ましく、０．１５μＭ以上０．９５μＭ以下であることがより好ましく、０．２μＭ以上０．９μＭ以下であることがさらに好ましく、０．３μＭ以上０．７μＭ以下であることが特に好ましく、０．３５μＭ以上０．６５μＭ以下であることが最も好ましい。
培地中のＰＵ．１阻害剤の濃度が上記下限値以上であることで、より効果的にＰＵ．１の発現又は機能を抑制することができる。一方で、上記上限値以下であることで、ＰＵ．１阻害剤の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
培地中のＰＵ．１阻害剤の濃度が上記下限値以上であることで、より効果的にＰＵ．１の発現又は機能を抑制することができる。一方で、上記上限値以下であることで、ＰＵ．１阻害剤の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
［ＧＳＫ３阻害剤］
ＧＳＫ３阻害剤を用いることで、Ｗｎｔシグナル伝達を促進することができ、その結果、神経細胞への分化転換を促進することができる。
ＧＳＫ３阻害剤を用いることで、Ｗｎｔシグナル伝達を促進することができ、その結果、神経細胞への分化転換を促進することができる。
ＧＳＫ３阻害剤としては、ＣＨＩＲ９９０２１（ＣＡＳ番号：２５２９１７－０６－９）、Ｋｅｎｐａｕｌｌｏｎｅ（ＣＡＳ番号：１４２２７３－２０－９）、６－Ｂｒｏｍｏｉｎｄｉｒｕｂｉｎ－３’－ｏｘｉｍｅ（ＢＩＯ、ＣＡＳ番号：６６７４６３－６２－９）等が挙げられる。中でも、ＣＨＩＲ９９０２１が好ましい。
培地中のＧＳＫ３阻害剤の濃度は、培地の総容積に対して、通常、０．１μＭ以上１０μＭ以下であり、０．５μＭ以上７μＭ以下であることが好ましく、１μＭ以上５μＭ以下であることがより好ましく、２μＭ以上４μＭ以下であることがさらに好ましい。
培地中のＧＳＫ３阻害剤の濃度が上記下限値以上であることで、ＧＳＫ３阻害剤が奏する効果をより発揮することができる。一方で、上記上限値以下であることで、ＧＳＫ３阻害剤の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
培地中のＧＳＫ３阻害剤の濃度が上記下限値以上であることで、ＧＳＫ３阻害剤が奏する効果をより発揮することができる。一方で、上記上限値以下であることで、ＧＳＫ３阻害剤の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
［アデニル酸シクラーゼ活性化剤］
アデニル酸シクラーゼ活性化剤は、ＭＡＰキナーゼ阻害剤とも呼ばれる。
アデニル酸シクラーゼ活性化剤を用いることで、ＡＭＰの細胞内濃度を高めて、アデニル酸シクラーゼを活性化することができ、その結果、神経細胞への分化転換を促進することができる。
アデニル酸シクラーゼ活性化剤は、ＭＡＰキナーゼ阻害剤とも呼ばれる。
アデニル酸シクラーゼ活性化剤を用いることで、ＡＭＰの細胞内濃度を高めて、アデニル酸シクラーゼを活性化することができ、その結果、神経細胞への分化転換を促進することができる。
アデニル酸シクラーゼ活性化剤としては、例えば、フォルスコリン（ＣＡＳ番号：６６５７５－２９－９）等が挙げられる。
培地中のアデニル酸シクラーゼ活性化剤の濃度は、培地の総容積に対して、通常、０．１μＭ以上１００μＭ以下であり、１μＭ以上５０μＭ以下であることが好ましく、５μＭ以上１５μＭ以下であることがより好ましく、８μＭ以上１２μＭ以下であることがさらに好ましい。
培地中のアデニル酸シクラーゼ活性化剤の濃度が上記下限値以上であることで、アデニル酸シクラーゼ活性化剤が奏する効果をより発揮することができる。一方で、上記上限値以下であることで、アデニル酸シクラーゼ活性化剤の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
培地中のアデニル酸シクラーゼ活性化剤の濃度が上記下限値以上であることで、アデニル酸シクラーゼ活性化剤が奏する効果をより発揮することができる。一方で、上記上限値以下であることで、アデニル酸シクラーゼ活性化剤の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
［ＲＯＣＫ阻害剤］
ＲＯＣＫ阻害剤を用いることで、細胞のアポトーシスを抑制し、細胞生存率を高く保つことができる。
ＲＯＣＫ阻害剤を用いることで、細胞のアポトーシスを抑制し、細胞生存率を高く保つことができる。
ＲＯＣＫ阻害剤としては、例えば、Ｙ－２７６３２（ＣＡＳ番号：１４６９８６－５０－７）、ファスジル（Ｆａｓｕｄｉｌ）（ＣＡＳ番号：１０５６２８－０７－７）、Ｙ３９９８３（ＣＡＳ番号：２０３９１１－２６－６）、Ｗｆ－５３６（ＣＡＳ番号：５３９８５７－６４－２）、ＳＬｘ－２１１９（ＣＡＳ番号：９１１４１７－８７－３）、アザベンゾイミダゾール－アミノフラザン（Ａｚａｂｅｎｚｉｍｉｄａｚｏｌｅ－ａｍｉｎｏｆｕｒａｚａｎｓ）（ＣＡＳ番号：８５０６６４－２１－０）、ＤＥ－１０４、Ｈ－１１５２Ｐ（ＣＡＳ番号：８７２５４３－０７－６）、Ｒｈｏキナーゼα阻害剤（ＲＯＫα ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ）、ＸＤ－４０００、ＨＭＮ－１１５２、４－（１－アミノアルキル）－Ｎ－（４－ピリジル）シクロヘキサンーカルボキシアミド（４－（１－ａｍｉｎｏａｌｋｙｌ）－Ｎ－（４－ｐｙｒｉｄｙｌ）ｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅ－ｃａｒｂｏｘａｍｉｄｅｓ）、Ｒｈｏスタチン（Ｒｈｏｓｔａｉｎ）、ＢＡ－２１０、ＢＡ－２０７、Ｋｉ－２３０９５、ＶＡＳ－０１２等が挙げられる。中でも、Ｙ－２７６３２が好ましい。
培地中のＲＯＣＫ阻害剤の濃度は、培地の総容積に対して、通常、０．１μＭ以上１００μＭ以下であり、１μＭ以上５０μＭ以下であることが好ましく、５μＭ以上１５μＭ以下であることがより好ましく、８μＭ以上１２μＭ以下であることがさらに好ましい。
培地中のＲＯＣＫ阻害剤の濃度が上記下限値以上であることで、ＲＯＣＫ阻害剤が奏する効果をより発揮することができる。一方で、上記上限値以下であることで、ＲＯＣＫ阻害剤の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
培地中のＲＯＣＫ阻害剤の濃度が上記下限値以上であることで、ＲＯＣＫ阻害剤が奏する効果をより発揮することができる。一方で、上記上限値以下であることで、ＲＯＣＫ阻害剤の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
［神経分化誘導因子］
神経分化誘導因子を用いることで、電位依存性カルシウムチャネルやＮＭＤＡ受容体に作用し、カルシウムの流入を促進させ、ｎｅｕｒｏＤ遺伝子の発現を亢進することで、神経分化を促進することができる。
神経分化誘導因子を用いることで、電位依存性カルシウムチャネルやＮＭＤＡ受容体に作用し、カルシウムの流入を促進させ、ｎｅｕｒｏＤ遺伝子の発現を亢進することで、神経分化を促進することができる。
神経分化誘導因子としては、例えば、イソキサゾール９（ＩＳＸ－９）（ＣＡＳ番号：８３２１１５－６２－５）等が挙げられる。
培地中の神経分化誘導因子の濃度は、培地の総容積に対して、通常、０．１μＭ以上１０μＭ未満であり、１μＭ以上９μＭ以下であることが好ましく、２．５μＭ以上７．５μＭ以下であることがより好ましく、２．７μＭ以上５μＭ以下であることがさらに好ましい。
培地中の神経分化誘導因子の濃度が上記下限値以上であることで、神経分化誘導因子が奏する効果をより発揮することができる。一方で、上記上限値以下であることで、神経分化誘導因子の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
培地中の神経分化誘導因子の濃度が上記下限値以上であることで、神経分化誘導因子が奏する効果をより発揮することができる。一方で、上記上限値以下であることで、神経分化誘導因子の細胞に対する毒性をより抑えて、細胞生存率をより向上させることができる。
［ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤］
本実施形態の培地は、上記成分に加えて、ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤を更に含むことが好ましい。本実施形態の培地は、ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤を更に含むことで、より効率的にマクロファージを神経細胞に直接分化転換することができる。
ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤は、ＢＭＰ経路阻害剤とも呼ばれる。
本実施形態の培地は、上記成分に加えて、ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤を更に含むことが好ましい。本実施形態の培地は、ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤を更に含むことで、より効率的にマクロファージを神経細胞に直接分化転換することができる。
ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤は、ＢＭＰ経路阻害剤とも呼ばれる。
ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤としては、例えば、ドルソモルフィン（ＣＡＳ番号：８６６４０５－６４－３）、コーディン（ヒトにおけるＧｅｎｂａｎｋアクセッション番号：ＮＰ＿００１２９１４０１．１、ＮＰ＿００１２９１４０２．１、ＮＰ＿００１２９１４０３．１、ＮＰ＿００３７３２．２等）、ノギン（ヒトにおけるＧｅｎｂａｎｋアクセッション番号：ＮＰ＿００５４４１．１等）、フォリスタチン（ヒトにおけるＧｅｎｂａｎｋアクセッション番号：ＮＰ＿００６３４１．１、ＮＰ＿０３７５４１．１等）、（６－［４－（２－ピペリジン－１－イル－エトキシ）フェニル］－３－ピリジン－４－イル－ピラゾロ［１，５－ａ］ピリミジン）、ＤＭＨ１（４－［６－（４－イソプロポキシフェニル）ピラゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－３－イル］キノリン、４－［６－［４－（１－メチルエトキシ）フェニル］ピラゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－３－イル］－キノリン）、ＬＤＮ１９３１８９、（４－（６－（４－（ピペリジン－１－イル）フェニル）ピラゾロ［１，５－ａ］ピリミジン－３－イル）キノリン）が挙げられる。中でも、ドルソモルフィンが好ましい。
培地中のＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤の濃度は、培地の総容積に対して、通常、０．５μＭ以上１０μＭ以下であり、０．７５μＭ以上５μＭ以下であることが好ましく、１μＭ以上３μＭ以下であることがより好ましい。
［その他成分］
本実施形態の培地は、成長因子、神経生物系サプリメント、培地サプリメント、血清、血清代替物、抗菌剤、並びにインスリン及びアルブミン等の血清由来のタンパク質等をさらに含有することができる。培地中のこれら成分の濃度は、公知の文献等を参酌して、当業者が適宜設定することができる。
本実施形態の培地は、成長因子、神経生物系サプリメント、培地サプリメント、血清、血清代替物、抗菌剤、並びにインスリン及びアルブミン等の血清由来のタンパク質等をさらに含有することができる。培地中のこれら成分の濃度は、公知の文献等を参酌して、当業者が適宜設定することができる。
成長因子としては、例えば、神経成長因子（ＮＧＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、ニューロトロフィン３（ＮＴ３）、ニューロトフィン４／５等のニュートロフィンファミリー；グリア細胞株由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）；酸性線維芽細胞増殖因子（ａＦＧＦ）、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）；インスリン様成長因子（ＩＧＦ）等が挙げられる。
神経生物系サプリメントとしては、ビオチン、コレステロール、リノール酸、リノレン酸、プロゲステロン、プトレシン、レチノール、酢酸レチニル、亜セレン酸ナトリウム、トリヨードチロニン（Ｔ３）、ＤＬ－α－トコフェロール（ビタミンＥ）、アルブミン、インシュリン及びトランスフェリンを含むＢ２７サプリメント（サーモフィッシャー社製品名）；並びにヒトトランスフェリン、ウシインシュリン、プロゲステロン、プトレシン、及び亜セレン酸ナトリウムを含むＮ２サプリメント等が挙げられる。
培地サプリメントとしては、例えば、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－グルタミン酸から得たジペプチドを含有する「ＧｌｕｔａＭａｘシリーズ」（サーモフィッシャー社製品名）等のグルタミン酸含有サプリメント、「ＭＥＭ Ｎｏｎ－Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ａｍｉｎｏ Ａｃｉｄｓ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ」（サーモフィッシャー社製品名）等のアミノ酸水溶液、２－メルカプトエタノール等が挙げられる。
抗菌剤としては、例えば、ペニシリン系抗生物質、セフェム系抗生物質、マクロライド系抗生物質、テトラサイクリン系抗生物質、ホスホマイシン系抗生物質、アミノグリコシド系抗生物質、ニューキノロン系抗生物質等が挙げられる。
なお、本実施形態の培地は、Ｎ－［Ｎ－（３，５－ジフルオロフェニルアセチル－Ｌ―アラニル）］－Ｓ－フェニルグリシン ｔｅｒｔ－ブチルエステル（ＤＡＰＴ）（ＣＡＳ番号：２０８２５５－８０－５）等のγ－セクレターゼ阻害剤、及び、ＲｅｐＳｏｘ（ＣＡＳ番号：４４６８５９－３３－２）等のＴＧＦ－β受容体阻害剤を含まないことが好ましい。
従来、これら成分は、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞等の各種幹細胞の神経細胞への分化誘導を促進するのに有効な成分であると報告されている。しかしながら、本実施形態の培地は、これら成分を含まないことで、より効率的にマクロファージを神経細胞に直接分化転換することができる。
従来、これら成分は、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞等の各種幹細胞の神経細胞への分化誘導を促進するのに有効な成分であると報告されている。しかしながら、本実施形態の培地は、これら成分を含まないことで、より効率的にマクロファージを神経細胞に直接分化転換することができる。
［基礎培地］
本実施形態の培地は、上述した成分を基礎培地に添加して調製することができる。
本実施形態の培地は、上述した成分を基礎培地に添加して調製することができる。
基礎培地としては、例えば、ＢＭＥ培地、ＢＧＪｂ培地、ＣＭＲＬ １０６６培地、Ｇｌａｓｇｏｗ ＭＥＭ（ＧＭＥＭ）培地、Ｉｍｐｒｏｖｅｄ ＭＥＭ Ｚｉｎｃ Ｏｐｔｉｏｎ培地、ＩＭＤＭ培地、Ｍｅｄｉｕｍ １９９培地、Ｅａｇｌｅ ＭＥＭ培地、αＭＥＭ培地、ＤＭＥＭ培地、Ｆ－１２培地、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地、ＩＭＤＭ／Ｆ１２培地、ハム培地、ＲＰＭＩ １６４０培地、Ｆｉｓｃｈｅｒ’ｓ培地、Ｘ－ＶＩＶＯＴＭ １５無血清リンパ球培地（Ｌｏｎｚａ社製）、及びＮｅｕｒｏＢａｓａｌ Ｍｅｄｉｕｍ（Ｇｉｂｃｏ社製）；これらの混合培地の培地；これらの培地から神経分化に関する成分を低減した培地等が挙げられる。
＜神経細胞の製造方法＞
本実施形態の神経細胞の製造方法（以下、単に「本実施形態の製造方法」と称する）は、ＧＲＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む。
本実施形態の神経細胞の製造方法（以下、単に「本実施形態の製造方法」と称する）は、ＧＲＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む。
本実施形態の製造方法によれば、マクロファージから直接分化転換した神経細胞を製造することができる。すなわち、本実施形態の製造方法は、マクロファージを神経細胞に直接分化転換（ダイレクトリプログラミング）する方法ということもできる。
本実施形態の製造方法を構成する工程について以下に詳細を説明する。
［分化転換工程］
分化転換工程では、上述した成分を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する。
分化転換工程では、上述した成分を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する。
培地の組成については、上記「マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地」に記載のとおりである。
培養期間は、通常、１日間以上であり、３日間以上１４日間以下であるが好ましく、５日間以上９日間以下であることがより好ましい。
培養温度は、通常、３０℃以上５０℃以下であり、３２℃以上４５℃以下であることが好ましく、３４℃以上４０℃以下であることがより好ましい。
培養容器内の二酸化炭素の含有割合は、通常、１体積％以上１５体積％以下であり、２体積％以上１０体積％以下であることが好ましく、３体積％以上７体積％以下であることがより好ましい。
培養容器の形態としては、特に限定されないが、例えば、フラスコ、組織培養用フラスコ、培養皿（ディッシュ）、組織培養用ディッシュ、マルチディッシュ、マイクロプレート、マイクロウェルプレート、マルチプレート、マルチウェルプレート、チャンバースライド、シャーレ、チューブ、トレイ、培養バック、マイクロキャリア、スタックプレート、スピナーフラスコ、カバーガラス等の公知のものが挙げられる。
分化転換工程で用いられるマクロファージの由来となる動物種は特に限定されないが、例えば、げっ歯類、有蹄類、ネコ目、霊長類等の哺乳類動物が挙げられる。げっ歯類には、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等が包含される。有蹄類には、ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ等が包含される。ネコ目には、イヌ、ネコ等が包含される。霊長類は、霊長目に属する哺乳動物をいい、霊長類としては、キツネザル、ロリス、ツバイ等の原猿亜目と、サル、類人猿、ヒト等の真猿亜目が挙げられる。中でも、ヒトであることが好ましい。
分化転換工程で用いられるマクロファージは、公知の株化細胞であってもよく、単球から分化誘導させたものとであってもよい。また、マクロファージのフェノタイプは、Ｍ１型であってもよく、Ｍ２型であってもよい。
［その他の工程］
単球由来のマクロファージを用いる場合には、分化転換工程の前に、単球をＧＭ－ＣＳＦ（Ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ－Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ Ｃｏｌｏｎｙ Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ）又はＭ－ＣＳＦ（Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ Ｃｏｌｏｎｙ Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ）を含む培地で培養して、単球をＭ１型又はＭ２型のフェノタイプであるマクロファージに分化誘導する（以下、「分化誘導工程」又は「マクロファージ製造工程」ともいう）。
単球由来のマクロファージを用いる場合には、分化転換工程の前に、単球をＧＭ－ＣＳＦ（Ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ－Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ Ｃｏｌｏｎｙ Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ）又はＭ－ＣＳＦ（Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ Ｃｏｌｏｎｙ Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ）を含む培地で培養して、単球をＭ１型又はＭ２型のフェノタイプであるマクロファージに分化誘導する（以下、「分化誘導工程」又は「マクロファージ製造工程」ともいう）。
なお、発明者らは、上記組成の培地を用いて、単球から神経細胞を直接分化転換することも試みたが、上記組成の内、特にＰＵ．１阻害剤が単球に対して高い毒性を示すことから、上記組成の培地を用いて、単球から神経細胞を直接分化転換することができないことを確認している。そのため、単球をマクロファージに分化誘導させた後に、上記組成の培地を用いて、マクロファージから神経細胞を直接分化転換する。
分化誘導工程における培養期間、培養温度、培養容器内の二酸化炭素の含有割合、及び培養容器の形態は、上記「分化転換工程」におけるそれらと同じである。
単球としては、株化細胞であってもよく、動物の血液等の生体試料から単離されたものであってもよい。
単球の培養に用いられる培地は、ＧＭ－ＣＳＦ又はＭ－ＣＳＦを基礎培地に添加することで調製するができる。基礎培地としては、上記「分化転換工程」において例示されたものと同様のものが挙げられる。
単球の培養に用いられる培地は、ＧＭ－ＣＳＦ又はＭ－ＣＳＦの他に、培地サプリメント、血清、血清代替物、抗菌剤、並びにインスリン及びアルブミン等の血清由来のタンパク質等をさらに含有することができる。培地サプリメント及び抗菌剤としては、上記「分化転換工程」において例示されたものと同様のものが挙げられる。
また、分化転換工程の後に、得られた細胞が神経細胞であるか否かを確認するために、得られた細胞を評価してもよい（以下、「評価工程」ともいう）。
評価方法としては、例えば、細胞の形態観察や、神経細胞のマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現を確認すること、細胞の活動電位を測定すること等が挙げられる。
細胞の形態観察は、肉眼であってもよく、光学顕微鏡等を用いた方法であってもよい。得られた細胞が樹状突起様の構造を有する場合には、神経細胞が得られたと評価することができる。
神経細胞のマーカー遺伝子又はマーカータンパク質としては、例えば、β－Ｔｕｂｕｌｉｎ ３（ＴＵＪ１）、微小管結合タンパク質２（ＭＡＰ２）、ダブルコルチン（ＤＣＸ）、Ｍｙｅｌｉｎ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｆａｃｔｏｒ １－Ｌｉｋｅ（ＭＹＴ１Ｌ）、Ａｃｈａｅｔｅ－ｓｃｕｔｅ ｈｏｍｏｌｏｇ １（ＡＳＣＬ１）、Ｎｅｕｒｏｇｅｎｉｃ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ １（ＮｅｕｒｏＤ１）、神経特異的ＰＯＵ転写調節因子（ＢＲＮ）、Ｎｅｕｒｏｇｅｎｉｎ－２（ＮＧＮ２）、Ｎｅｕｒｏｎａｌ ｎｕｃｌｅｉ（ＮＥＵＮ）等が挙げられる。マーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現は、例えば、ＲＴ－ＰＣＲ法、ウエスタンブロッティング、ＥＬＩＳＡ、免疫染色等により評価することができる。
これら神経細胞のマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現が、マクロファージにおける発現量よりも上昇している、又は、神経細胞における発現量と同程度である場合には、神経細胞が得られたと評価することができる。
これら神経細胞のマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現が、マクロファージにおける発現量よりも上昇している、又は、神経細胞における発現量と同程度である場合には、神経細胞が得られたと評価することができる。
また、マクロファージのマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現をさらに確認してもよい。マクロファージのマーカー遺伝子又はマーカータンパク質としては、例えば、インテグリンαＭ（ＣＤ１１ｂ）、Ｉｏｎｉｚｅｄ ｃａｌｃｉｕｍ ｂｉｎｄｉｎｇ ａｄａｐｔｅｒ ｐｒｏｔｅｉｎ １（Ｉｂａ１）等が挙げられる。これらの発現の評価方法としては、神経細胞のマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の評価方法と同じ方法が適用される。
これらマクロファージのマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現がマクロファージにおける発現量よりも減少している場合に、マクロファージの特性が完全に失われており、上記神経細胞のマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現の結果と合わせることで、マクロファージから神経細胞へ分化転換されたと評価することができる。
これらマクロファージのマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現がマクロファージにおける発現量よりも減少している場合に、マクロファージの特性が完全に失われており、上記神経細胞のマーカー遺伝子又はマーカータンパク質の発現の結果と合わせることで、マクロファージから神経細胞へ分化転換されたと評価することができる。
＜その他実施形態＞
上記実施形態における培地、及び、上記実施形態における神経細胞の製造方法により得られた神経細胞は、例えば、脳梗塞や神経変性疾患等の脳神経疾患の再生医療への応用が期待される。
すなわち、一実施形態において、本発明は、上記実施形態における培地又は上記実施形態における製造方法で得られた神経細胞の有効量を、脳神経疾患の患者又は患畜に投与する、脳神経疾患の治療方法を提供する。
上記実施形態における培地、及び、上記実施形態における神経細胞の製造方法により得られた神経細胞は、例えば、脳梗塞や神経変性疾患等の脳神経疾患の再生医療への応用が期待される。
すなわち、一実施形態において、本発明は、上記実施形態における培地又は上記実施形態における製造方法で得られた神経細胞の有効量を、脳神経疾患の患者又は患畜に投与する、脳神経疾患の治療方法を提供する。
対象となる脳神経疾患としては、例えば、脳梗塞；筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、パーキンソン病、アルツハイマー病等の神経変性疾患等が挙げられる。患者又は患畜としては、上記「培地」において例示された動物種が挙げられる。
神経細胞の有効量としては、対象となる脳神経疾患の治療に有効な量であって、当該疾患の種類や進行具合、患者又は患畜の体重や年齢、患者又は患畜の症状、病変部の大きさ等に応じて適宜設定することができる。
神経細胞の有効量としては、対象となる脳神経疾患の治療に有効な量であって、当該疾患の種類や進行具合、患者又は患畜の体重や年齢、患者又は患畜の症状、病変部の大きさ等に応じて適宜設定することができる。
また、脳神経疾患の病変部に集積した内在性マクロファージに対して、上記実施形態における培地に含まれる成分、具体的には、ＧＳＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤（好ましくは、ＧＳＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、ＰＵ．１阻害剤、及びＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤）を直接脳神経疾患の患者又は患畜に投与することで、生体内でマクロファージから神経細胞への分化転換を誘発させる、新規の再生医療法を提供することができる。
すなわち、一実施形態において、本発明は、ＧＳＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤のそれぞれ有効量を、脳神経疾患の患者又は患畜に投与する、脳神経疾患の治療方法を提供する。
好ましくは、一実施形態において、本発明は、ＧＳＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、ＰＵ．１阻害剤、及びＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤のそれぞれ有効量を、脳神経疾患の患者又は患畜に投与する、脳神経疾患の治療方法を提供する。
より好ましくは、一実施形態において、本発明は、ＣＨＩＲ９９０２１、フォルスコリン、Ｙ－２７６３２、ＩＳＸ－９、ＩＳＸ－９、及びドルソモルフィンのそれぞれ有効量を、脳神経疾患の患者又は患畜に投与する、脳神経疾患の治療方法を提供する。
すなわち、一実施形態において、本発明は、ＧＳＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤のそれぞれ有効量を、脳神経疾患の患者又は患畜に投与する、脳神経疾患の治療方法を提供する。
好ましくは、一実施形態において、本発明は、ＧＳＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、ＰＵ．１阻害剤、及びＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤のそれぞれ有効量を、脳神経疾患の患者又は患畜に投与する、脳神経疾患の治療方法を提供する。
より好ましくは、一実施形態において、本発明は、ＣＨＩＲ９９０２１、フォルスコリン、Ｙ－２７６３２、ＩＳＸ－９、ＩＳＸ－９、及びドルソモルフィンのそれぞれ有効量を、脳神経疾患の患者又は患畜に投与する、脳神経疾患の治療方法を提供する。
上記化合物を組み合わせたセットは、脳神経疾患の治療剤セットということもできる。
或いは、上記５種類の（好ましくは、６種類の）化合物単独又はそれら混合物を含む組成物は、脳神経疾患の治療用医薬組成物ということもできる。以降、上記５種類の（好ましくは、６種類の）化合物単独又はそれら混合物を、総称して、「脳神経疾患の治療剤」と称する場合がある。
或いは、上記５種類の（好ましくは、６種類の）化合物単独又はそれら混合物を含む組成物は、脳神経疾患の治療用医薬組成物ということもできる。以降、上記５種類の（好ましくは、６種類の）化合物単独又はそれら混合物を、総称して、「脳神経疾患の治療剤」と称する場合がある。
上記医薬組成物は、経口的に使用される剤型であってもよく、非経口的に使用される剤型であってもよいが、非経口的に使用される剤型が好ましい。経口的に使用される剤型としては、例えば錠剤、カプセル剤、エリキシル剤、マイクロカプセル剤等が挙げられる。非経口的に使用される剤型としては例えば注射剤、軟膏剤、貼付剤等が挙げられる。
薬学的に許容される担体としては、通常医薬組成物の製剤に用いられるものを特に制限なく用いることができる。より具体的には、例えば、ゼラチン、コーンスターチ、トラガントガム、アラビアゴム等の結合剤；デンプン、結晶性セルロース等の賦形剤；アルギン酸等の膨化剤；水、エタノール、グリセリン等の注射剤用溶剤；ゴム系粘着剤、シリコーン系粘着剤等の粘着剤等が挙げられる。
医薬組成物は添加剤を含んでいてもよい。添加剤としては、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸マグネシウム等の潤滑剤；ショ糖、乳糖、サッカリン、マルチトール等の甘味剤；ペパーミント、アカモノ油等の香味剤；ベンジルアルコール、フェノール等の安定剤；リン酸塩、酢酸ナトリウム等の緩衝剤；安息香酸ベンジル、ベンジルアルコール等の溶解補助剤；酸化防止剤；防腐剤等が挙げられる。
医薬組成物は、上記５種類の（好ましくは、６種類の）化合物をそれぞれ単独又はそれら混合物と、上記薬学的に許容される担体及び添加剤を適宜組み合わせて、一般に認められた製薬実施に要求される単位用量形態で混和することによって製剤化することができる。
医薬組成物は、他の疾患の治療薬と組合せて、使用してもよい。例えば、上記脳神経疾患の治療剤を、その他の脳神経疾患の治療薬等と組み合わせて使用することで、特定の脳神経疾患の症状を改善しながら、当該脳神経疾患を治療することができる。
上記脳神経疾患の治療剤と他の薬剤とは、同一の製剤にしてもよいし、別々の製剤にしてもよい。また、各製剤は、同一の投与経路で投与してもよいし、別々の投与経路で投与してもよい。更に、各製剤は、同時に投与してもよいし、逐次的に投与してもよいし、一定の時間乃至期間を空けて別々に投与してもよい。一実施態様において、上記脳神経疾患の治療剤と他の薬剤とは、これらを包含するセット（脳神経疾患の治療剤セット）としてもよい。
上記脳神経疾患の治療剤と他の薬剤とは、同一の製剤にしてもよいし、別々の製剤にしてもよい。また、各製剤は、同一の投与経路で投与してもよいし、別々の投与経路で投与してもよい。更に、各製剤は、同時に投与してもよいし、逐次的に投与してもよいし、一定の時間乃至期間を空けて別々に投与してもよい。一実施態様において、上記脳神経疾患の治療剤と他の薬剤とは、これらを包含するセット（脳神経疾患の治療剤セット）としてもよい。
患者への投与は、例えば、髄腔内注射、動脈内注射、静脈内注射、皮下注射、鼻腔内的、経気管支的、筋内的、経皮的、又は経口的に当業者に公知の方法により行うことができる。
各化合物の有効量としては、対象となる脳神経疾患の治療に有効な量であって、当該疾患の種類や進行具合、患者又は患畜の体重や年齢、患者又は患畜の症状、投与方法等に応じて適宜設定することができる。
また、一実施形態において、本発明は、上記実施形態における培地又は上記実施形態における製造方法で得られた神経細胞を被験物質と接触させる工程（以下、「工程Ｘ」ともいう）と、被験物質が神経細胞に及ぼす影響を検定する工程（以下、「工程Ｙ」ともいう）と、を有する、被験物質の薬効評価方法を提供する。
工程Ｘにおいて、被験物質としては、例えば、天然化合物ライブラリ、合成化合物ライブラリ、既存薬ライブラリ、代謝物ライブラリ等が挙げられる。被験物質としては、新薬を用いることができる。
工程Ｙにおいて、被験物質が神経細胞に及ぼす影響は、例えば、ウエスタンブロッティング、ＥＬＩＳＡ、免疫染色等により検定することができる。
さらに、工程Ｘの前に、神経細胞を哺乳動物の脳に移植する工程（以下、「工程ｘ」ともいう）を有することができる。神経細胞が、アルツハイマー病様の病態等、特定の疾患様の病態を呈する場合に、工程ｘを有することで、より特定の疾患を罹患した生体に近い環境で被験物質の薬効を評価することができる。
また、一実施形態において、本発明は、上記実施形態における培地に含まれる各成分、すなわち、ＧＳＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤（好ましくは、ＧＳＫ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、ＲＯＣＫ阻害剤、神経分化誘導因子、ＰＵ．１阻害剤、及びＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤）を備える、マクロファージを神経細胞に直接分化転換（ダイレクトリプログラミング）するための培地用サプリメント（又は、神経細胞製造用培地サプリメント）を提供する。
上記サプリメントと、上述した基礎培地と、必要に応じて、上述したその他成分と、を、マクロファージを神経細胞に直接分化転換（ダイレクトリプログラミング）するための培地キット（又は、神経細胞製造用培地キット）とすることもできる。
上記サプリメントと、上述した基礎培地と、必要に応じて、上述したその他成分と、を、マクロファージを神経細胞に直接分化転換（ダイレクトリプログラミング）するための培地キット（又は、神経細胞製造用培地キット）とすることもできる。
以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
［実施例１］
（単球由来マクロファージを神経細胞に直接分化転換する培地成分の検討）
健常ヒトから承諾を得て採取した血液試料から分離したヒト単核球を５．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２以下となるようにカバーガラス（松浪硝子工業社製、丸カバーグラス １８丸、商品コード：Ｃ０１８００１）上に播種し、Ｍｏｎｏｃｙｔｅ Ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ Ｍｅｄｉｕｍ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社製、Ｃ－２８０５１）を用いて、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で１時間培養した。次いで、培地中の浮遊細胞を培地と共に除去した後、カバーガラス上の接着細胞（単球）について、培地の総体積に対して１０ｎｇ／ｍＬのＧＭ－ＣＳＦ（Ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ－Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ Ｃｏｌｏｎｙ Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ）を含む培地（組成：１０ｗ／ｖ％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、Ｘ－ＶＩＶＯＴＭ １５無血清リンパ球培地（Ｌｏｎｚａ社製、０４－４１８Ｑ））で、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養して、Ｍ１型のフェノタイプを有するマクロファージ（以下、「Ｍφ」と略記する場合がある）を得た。Ｍφが得られたことは、定量ＰＣＲ法により、Ｍφのマーカー遺伝子であるＣＤ１１ｂ遺伝子及びＩｂａ１遺伝子の発現亢進を検出することで確かめた。
（単球由来マクロファージを神経細胞に直接分化転換する培地成分の検討）
健常ヒトから承諾を得て採取した血液試料から分離したヒト単核球を５．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２以下となるようにカバーガラス（松浪硝子工業社製、丸カバーグラス １８丸、商品コード：Ｃ０１８００１）上に播種し、Ｍｏｎｏｃｙｔｅ Ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ Ｍｅｄｉｕｍ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社製、Ｃ－２８０５１）を用いて、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で１時間培養した。次いで、培地中の浮遊細胞を培地と共に除去した後、カバーガラス上の接着細胞（単球）について、培地の総体積に対して１０ｎｇ／ｍＬのＧＭ－ＣＳＦ（Ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ－Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ Ｃｏｌｏｎｙ Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ）を含む培地（組成：１０ｗ／ｖ％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、Ｘ－ＶＩＶＯＴＭ １５無血清リンパ球培地（Ｌｏｎｚａ社製、０４－４１８Ｑ））で、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養して、Ｍ１型のフェノタイプを有するマクロファージ（以下、「Ｍφ」と略記する場合がある）を得た。Ｍφが得られたことは、定量ＰＣＲ法により、Ｍφのマーカー遺伝子であるＣＤ１１ｂ遺伝子及びＩｂａ１遺伝子の発現亢進を検出することで確かめた。
次いで、得られたヒト単球由来Ｍ１型Ｍφについて以下に示す組成の培地を用いて、さらに３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養した。
上記Ｎｏ．１～Ｎｏ．３の各培地を用いて、７日間培養した後の細胞を微分干渉顕微鏡（倍率：４００倍（上の画像）及び２００倍（下の画像）、オリンパス社製、ＩＸ８３）で撮像した際の微分干渉顕微鏡像（スケールバーは５０μｍである）を図１に示す。
図１から、培地Ｎｏ．１及びＮｏ．２を用いて培養した細胞は、神経細胞様の樹状突起を有する形態が観察された。一方、培地Ｎｏ．３を用いて培養した細胞では、神経細胞様の細胞への変化は観察されなかった。
これらのことから、Ｍφを神経細胞に直接分化転換するための培地成分としては、マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地であって、グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤が最小必須成分であることが明らかとなった。
これらのことから、Ｍφを神経細胞に直接分化転換するための培地成分としては、マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地であって、グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤が最小必須成分であることが明らかとなった。
次いで、培地Ｎｏ．２を用いて、０、１、及び７日間培養した細胞について、Ｔａｋａｒａ社製のＮｕｃｌｅｏＳｐｉｎ（登録商標） ＲＮＡ Ｐｌｕｓ（７４０９８４－５０）を用いて全ＲＮＡを回収し、多能性マーカー遺伝子であるＰＡＸ６遺伝子及びＳＯＸ２遺伝子の発現をＴａｋａｒａ社製のＴｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ Ｄｉｃｅ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍを用いて、ＲＴ－ＰＣＲ法により確認した。結果を図２に示す。なお、図２において、「ＮＳ」とは“ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ”の略であり、非有意であることを意味する。
図２から、培地Ｎｏ．２を用いて、７日間培養した細胞において、多能性マーカー遺伝子であるＰＡＸ６遺伝子及びＳＯＸ２遺伝子の発現はいずれも陰性であった。すなわち、培地Ｎｏ．２を用いたＭφから神経細胞への分化転換は、多能性幹細胞を経由していないダイレクトリプログラミングであることを確かめられた。
また、培地Ｎｏ．２を用いて、７日間培養した細胞について、神経細胞のマーカーであるβ－Ｔｕｂｕｌｉｎ ３（ＴＵＪ１）に対する特異的抗体（ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ社製、８０１２０１）、並びに、多能性マーカーであるＰＡＸ６に対する特異的抗体（Ｃｏｖａｎｃｅ社製、ＰＲＢ－２７８Ｐ）及びＳＯＸ２に対する特異的抗体（Ｒ＆Ｄ社製、ＡＦ２０１８）を用いて蛍光染色を行った。また、当該細胞について４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール二塩酸塩（ＤＡＰＩ）（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製、Ｈ－２０００－１０）を用いて核染色した。細胞を蛍光顕微鏡（４００倍、Ｃａｒｌ ｚｅｉｓｓ社製、ＬＳＭ７１０）を用いて観察した。結果を図３（上：ＴＵＪ１／ＰＡＸ６／ＤＡＰＩ、下：ＴＵＪ１／ＳＯＸ２／ＤＡＰＩ）に示す。なお、図３において、スケールバーは５０μｍである。また、図３の上下の蛍光染色像において、左側の画像は、抗ＴＵＪ１抗体、抗ＰＡＸ６抗体又は抗ＳＯＸ２抗体、及びＤＡＰＩの３種による検出像をＭｅｒｇｅした画像である。真ん中の画像は、抗ＴＵＪ１抗体による蛍光染色像であり、右側の画像は、抗ＰＡＸ６抗体又は抗ＳＯＸ２抗体による蛍光染色像である。
図３に示すように、培地Ｎｏ．２を用いて、７日間培養した細胞において、神経細胞のマーカーであるＴＵＪ１の発現は確認されたが、多能性マーカーであるＰＡＸ６及びＳＯＸ２の発現は確認されなかった。
このことから、図２の結果と同様に、培地Ｎｏ．２を用いたＭφから神経細胞への分化転換は、多能性幹細胞を経由していないダイレクトリプログラミングであることを確かめられた。
このことから、図２の結果と同様に、培地Ｎｏ．２を用いたＭφから神経細胞への分化転換は、多能性幹細胞を経由していないダイレクトリプログラミングであることを確かめられた。
次に、培地Ｎｏ．２を用いて、０、３、及び７日間培養した細胞について、Ｔａｋａｒａ社製のＮｕｃｌｅｏＳｐｉｎ（登録商標） ＲＮＡ Ｐｌｕｓ（７４０９８４－５０）を用いて全ＲＮＡを回収し、神経細胞のマーカー遺伝子７種（ＴＵＪ１遺伝子、微小管結合タンパク質２（ＭＡＰ２）遺伝子、ダブルコルチン（ＤＣＸ）遺伝子、Ｍｙｅｌｉｎ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｆａｃｔｏｒ １－Ｌｉｋｅ（ＭＹＴ１Ｌ）遺伝子、Ａｃｈａｅｔｅ－ｓｃｕｔｅ ｈｏｍｏｌｏｇ １（ＡＳＣＬ１）遺伝子、Ｎｅｕｒｏｇｅｎｉｃ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ １（ＮｅｕｒｏＤ１）遺伝子、神経特異的ＰＯＵ転写調節因子（ＢＲＮ）遺伝子、及びＮｅｕｒｏｇｅｎｉｎ－２（ＮＧＮ２）遺伝子）、並びに、マクロファージのマーカー遺伝子２種（インテグリンαＭ（ＣＤ１１ｂ）遺伝子及びＩｏｎｉｚｅｄ ｃａｌｃｉｕｍ ｂｉｎｄｉｎｇ ａｄａｐｔｅｒ ｐｒｏｔｅｉｎ １（Ｉｂａ１遺伝子））の発現をＴａｋａｒａ社製のＴｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ Ｄｉｃｅ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍを用いて、ＲＴ－ＰＣＲ法により確認した。結果を図４に示す。図４において、「ＮＳ」とは“ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ”の略であり、非有意であることを意味する。また、「＊」は、Ｐ＜０．０５、「＊＊」は、Ｐ＜０．０１、「＊＊＊」は、Ｐ＜０．００１を意味する。
図４に示すように、培養日数が進むにつれて、神経細胞のマーカー遺伝子の発現が上昇し、一方で、Ｍφのマーカー遺伝子の発現が減少することが確かめられた。
次いで、培地Ｎｏ．２を用いて、７日間培養した細胞について、神経細胞のマーカーであるＴＵＪ１に対する特異的抗体（ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ社製、８０１２０１）及びＮｅｕｒｏｎａｌ ｎｕｃｌｅｉ（ＮＥＵＮ）に対する特異的抗体（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製、ＡＢＮ７８）を用いて蛍光染色を行った。また、当該細胞についてＤＡＰＩを用いて核染色した。細胞を蛍光顕微鏡（４００倍、Ｃａｒｌ ｚｅｉｓｓ社製、ＬＳＭ７１０）を用いて観察した。結果を図５（左：微分干渉顕微鏡像、右：蛍光染色像）に示す。なお、図５において、スケールバーは５０μｍである。また、図５の右側の蛍光染色像において、左上の画像は、抗ＮＥＵＮ抗体、抗ＴＵＪ１抗体、及びＤＡＰＩの３種による検出像をＭｅｒｇｅした画像であり、右上の画像は、抗ＴＵＪ１抗体による蛍光染色像であり、左下の画像は、抗ＮＥＵＮ抗体による蛍光染色像である。
図５に示すように、培地Ｎｏ．２を用いて、７日間培養した細胞において、神経細胞のマーカーであるＴＵＪ１及びＮＥＵＮのタンパク質レベルでの発現が確認された。
［実施例２］
（単球由来Ｍ２型Ｍφを用いた神経細胞へのダイレクトリプログラミングの検討）
次に、培地Ｎｏ．２を用いて、フェノタイプの異なるＭφ（単球由来Ｍ２型Ｍφ）についても同様に神経細胞へのダイレクトリプログラミングが達成できるかどうかについて検討した。
（単球由来Ｍ２型Ｍφを用いた神経細胞へのダイレクトリプログラミングの検討）
次に、培地Ｎｏ．２を用いて、フェノタイプの異なるＭφ（単球由来Ｍ２型Ｍφ）についても同様に神経細胞へのダイレクトリプログラミングが達成できるかどうかについて検討した。
健常ヒトから承諾を得て採取した血液試料から分離したヒト単核球を５．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２以下となるようにカバーガラス（松浪硝子工業社製、丸カバーグラス １８丸、商品コード：Ｃ０１８００１）上に播種し、Ｍｏｎｏｃｙｔｅ Ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ Ｍｅｄｉｕｍ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社製、Ｃ－２８０５１）を用いて、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で１時間培養した。次いで、培地中の浮遊細胞を培地と共に除去した後、カバーガラス上の接着細胞（単球）について、培地の総体積に対して５０ｎｇ／ｍＬのＭ－ＣＳＦ（Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ Ｃｏｌｏｎｙ Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ）を含む培地（組成：１０ｗ／ｖ％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、Ｘ－ＶＩＶＯＴＭ １５無血清リンパ球培地（Ｌｏｎｚａ社製、０４－４１８Ｑ））で、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養して、Ｍ２型のフェノタイプを有するＭφを得た。Ｍφが得られたことは、定量ＰＣＲ法により、Ｍφのマーカー遺伝子であるＣＤ１１ｂ遺伝子及びＩｂａ１遺伝子の発現亢進を検出することで確かめた。
次いで、得られたヒト単球由来Ｍ２型Ｍφについて上記培地Ｎｏ．２（組成は、上記表１参照）を用いて、さらに３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養した。
次いで、培地Ｎｏ．２を用いて、７日間培養した細胞について、神経細胞のマーカーであるＴＵＪ１に対する特異的抗体（ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ社製、８０１２０１）を用いて蛍光染色を行った。細胞を蛍光顕微鏡（４００倍、Ｃａｒｌ ｚｅｉｓｓ社製、ＬＳＭ７１０）を用いて観察した。結果を図６に示す。なお、図６において、スケールバーは５０μｍである。
図６に示すように、培地Ｎｏ．２を用いて、７日間培養した細胞において、神経細胞のマーカーであるＴＵＪ１のタンパク質レベルでの発現が確認された。
以上のことから、単球由来Ｍ２型Ｍφについても、単球由来Ｍ１型Ｍφと同様に、特定の成分を組み合わせて含有する培地を用いることで、神経細胞へのダイレクトリプログラミングが達成できることが確かめられた。
以上のことから、単球由来Ｍ２型Ｍφについても、単球由来Ｍ１型Ｍφと同様に、特定の成分を組み合わせて含有する培地を用いることで、神経細胞へのダイレクトリプログラミングが達成できることが確かめられた。
［実施例３］
（培地中のＰＵ．１阻害剤の至適濃度の検討）
次いで、培地に含まれるＰＵ．１阻害剤の至適濃度を検討した。
（培地中のＰＵ．１阻害剤の至適濃度の検討）
次いで、培地に含まれるＰＵ．１阻害剤の至適濃度を検討した。
健常ヒトから承諾を得て採取した血液試料から分離したヒト単核球を５．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２以下となるようにカバーガラス（松浪硝子工業社製、丸カバーグラス １８丸、商品コード：Ｃ０１８００１）上に播種し、Ｍｏｎｏｃｙｔｅ Ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ Ｍｅｄｉｕｍ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社製、Ｃ－２８０５１）を用いて、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で１時間培養した。次いで、培地中の浮遊細胞を培地と共に除去した後、カバーガラス上の接着細胞（単球）について、培地の総体積に対して１０ｎｇ／ｍＬのＧＭ－ＣＳＦを含む培地（組成：１０ｗ／ｖ％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、Ｘ－ＶＩＶＯＴＭ １５無血清リンパ球培地（Ｌｏｎｚａ社製、０４－４１８Ｑ））で、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養して、Ｍ１型のフェノタイプを有するＭφを得た。Ｍφが得られたことは、定量ＰＣＲ法により、Ｍφのマーカー遺伝子であるＣＤ１１ｂ遺伝子及びＩｂａ１遺伝子の発現亢進を検出することで確かめた。
次いで、得られたヒト単球由来Ｍ１型Ｍφについて、上記表１に示す培地Ｎｏ．２中のＤＢ２３１３の濃度を０．１、０．３、０．５又は０．９μＭにふり、それ以外の成分は培地Ｎｏ．２と同じである培地４種類を調製し、当該４種類の培地を用いて、さらに３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養した。
次いで、各培地を用いて、７日間培養した細胞について、当該培地による培養開始時の細胞数に対する、培養後の細胞数の割合の百分率を細胞生存率として算出した。また、当該培地による培養開始時の細胞数に対する、神経細胞に転換した細胞の割合の百分率を分化転換効率として算出した。なお、神経細胞に転換したことは、目視での形態変化（樹状突起様構造の発現）及び免疫蛍光染色で神経マーカーであるＴＵＪ１陽性であることによって確認した。図７は、培地中のＤＢ２３１３濃度と、細胞生存率及び分化転換効率との関係を示すグラフである。
図７に示すように、培地中のＤＢ２３１３濃度が上昇するほど、分化転換効率がより上昇する傾向がみられ、一方で、培地中のＤＢ２３１３濃度が減少するほど、細胞生存率がより上昇する傾向がみられた。
培地中のＤＢ２３１３濃度が０．３μＭ以上０．７μＭ以下である場合に、細胞生存率及び分化転換効率がいずれも５０％を超えて、特に良好であることが明らかとなった。
培地中のＤＢ２３１３濃度が０．３μＭ以上０．７μＭ以下である場合に、細胞生存率及び分化転換効率がいずれも５０％を超えて、特に良好であることが明らかとなった。
［実施例４］
（培地中の神経分化誘導因子の至適濃度の検討）
次いで、培地に含まれる神経分化誘導因子の至適濃度を検討した。
（培地中の神経分化誘導因子の至適濃度の検討）
次いで、培地に含まれる神経分化誘導因子の至適濃度を検討した。
健常ヒトから承諾を得て採取した血液試料から分離したヒト単核球を５．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２以下となるようにカバーガラス（松浪硝子工業社製、丸カバーグラス １８丸、商品コード：Ｃ０１８００１）上に播種し、Ｍｏｎｏｃｙｔｅ Ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ Ｍｅｄｉｕｍ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社製、Ｃ－２８０５１）を用いて、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で１時間培養した。次いで、培地中の浮遊細胞を培地と共に除去した後、カバーガラス上の接着細胞（単球）について、培地の総体積に対して１０ｎｇ／ｍＬのＧＭ－ＣＳＦを含む培地（組成：１０ｗ／ｖ％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、Ｘ－ＶＩＶＯＴＭ １５無血清リンパ球培地（Ｌｏｎｚａ社製、０４－４１８Ｑ）で、３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養して、Ｍ１型のフェノタイプを有するＭφを得た。Ｍφが得られたことは、定量ＰＣＲ法により、Ｍφのマーカー遺伝子であるＣＤ１１ｂ遺伝子及びＩｂａ１遺伝子の発現亢進を検出することで確かめた。
次いで、得られたヒト単球由来Ｍ１型Ｍφについて、上記表１に示す培地Ｎｏ．２中のＩＳＸ－９の濃度を１、３、５又は１０μＭにふり、それ以外の成分は培地Ｎｏ．２と同じである培地４種類を調製し、当該４種類の培地を用いて、さらに３７℃、５体積％ＣＯ２環境下で７日間培養した。
次いで、各培地を用いて、７日間培養した細胞について、当該培地による培養開始時の細胞数に対する、培養後の細胞数の割合の百分率を細胞生存率として算出した。また、当該培地による培養開始時の細胞数に対する、神経細胞に転換した細胞の割合の百分率を分化転換効率として算出した。なお、神経細胞に転換したことは、目視での形態変化（樹状突起様構造の発現）及び免疫蛍光染色で神経マーカーであるＴＵＪ１陽性であることによって確認した。図８は、培地中のＩＳＸ－９濃度と、細胞生存率及び分化転換効率との関係を示すグラフである。
図７に示すように、培地中のＩＳＸ－９濃度が上昇するほど、分化転換効率がより上昇する傾向がみられ、一方で、培地中のＩＳＸ－９濃度が減少するほど、細胞生存率がより上昇する傾向がみられた。
培地中のＩＳＸ－９濃度が２．５μＭ以上７．５μＭ以下である場合に、細胞生存率及び分化転換効率がいずれも５０％を超えて、特に良好であることが明らかとなった。
培地中のＩＳＸ－９濃度が２．５μＭ以上７．５μＭ以下である場合に、細胞生存率及び分化転換効率がいずれも５０％を超えて、特に良好であることが明らかとなった。
以上のことから、特定の成分を組み合わせて含有する培地を用いることで、マクロファージを神経細胞へと化学的にダイレクトリプログラミングできることが明らかとなった。
本実施形態の培地によれば、マクロファージを神経細胞に直接分化転換するための培地を提供することができる。本実施形態の製造方法によれば、マクロファージから直接分化転換した神経細胞を製造することができる。本実施形態の方法によれば、マクロファージを神経細胞に直接分化転換することができる。
Claims (7)
- マクロファージを神経細胞に直接分化転換するために用いられる培地であって、
グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む、培地。 - 前記ＰＵ．１阻害剤がＤＢ２３１３である、請求項１に記載の培地。
- 前記ＰＵ．１阻害剤の含有量が培地の総容積に対して０．１μｍｏｌ／Ｌ超１μｍｏｌ／Ｌ未満である、請求項１又は２に記載の培地。
- 前記神経分化誘導因子がＩＳＸ－９である、請求項１～３のいずれか一項に記載の培地。
- 前記培地は、ＡＭＰ活性化プロテインキナーゼ阻害剤を更に含む、請求項１～４のいずれか一項に記載の培地。
- グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む、神経細胞の製造方法。
- マクロファージを神経細胞に直接分化転換する方法であって、
グリコーゲン合成酵素キナーゼ３阻害剤、アデニル酸シクラーゼ活性化剤、Ｒｈｏキナーゼ阻害剤、神経分化誘導因子、及びＰＵ．１阻害剤を含む培地を用いて、マクロファージを培養して神経細胞に直接分化転換する分化転換工程を含む、方法。
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