JP2022017977A

JP2022017977A - 細胞、組成物及び治療用組成物

Info

Publication number: JP2022017977A
Application number: JP2020120876A
Authority: JP
Inventors: 里佳田中; Rika Tanaka; 裕明吉田; Hiroaki Yoshida; 知也長田; Tomoya Osada; 三奈子古賀; Minako Koga
Original assignee: Reeir Inc; Juntendo University
Current assignee: Reeir Inc; Juntendo University
Priority date: 2020-07-14
Filing date: 2020-07-14
Publication date: 2022-01-26

Abstract

【課題】本発明は、細胞、組成物、治療用組成物に関する。【解決手段】本発明の細胞は、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である。本発明の細胞群は、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を４０％以上含む。本発明の治療用組成物は、上記細胞または細胞群を含む、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療用組成物である。【選択図】なし

Description

本発明は、細胞、組成物に関する。
本発明の細胞は、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）であることを特徴とする。本発明の細胞群は、本発明の細胞を４０％以上含む細胞群である。本発明はまた、本発明の細胞または細胞群を含む、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療用組成物に関する。

近年、虚血性疾患を対象として、骨髄単核球移植治療や末梢血幹細胞採取による血管内皮前駆細胞（Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌ；ＥＰＣ）を用いた細胞移植治療法がおこなわれるようになった。それゆえ、ＥＰＣを大量に培養する技術が特に求められていた。ＣＤ３４及び／又はＣＤ１３３陽性細胞からの血管内皮前駆細胞の生体外増幅方法は、効率的なＥＰＣの培養技術を提供することを可能にした（特許文献１）。さらに血管内皮細胞分化動態解析方法によって内皮細胞様大コロニー（分化型ＥＰＣコロニー）形成細胞と内皮細胞様小コロニー（未分化型ＥＰＣコロニー）形成細胞が存在することが明らかになり細胞移植による治療効果を予測、把握することを可能にした（特許文献２）。また骨髄単核球からＣＤ３４及び／又はＣＤ１３３陽性細胞を効率的に増幅させる方法を示した（特許文献３）。

国際公開ＷＯ２０１４／０５１１５４に示されるように、骨髄、臍帯血又は末梢血由来の単核球画分から血管内皮前駆細胞又は抗炎症・免疫寛容誘導細胞が富化した細胞群を増幅させる方法（以下、本明細書において、「ＱＱ－ＭＮＣ法」）と呼称する場合がある）を記載している。当該方法は、（１）幹細胞因子（Ｓｔｅｍｃｅｌｌｆａｃｔｏｒ；ＳＣＦ），（２）インターロイキン６（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ－６；ＩＬ－６），（３）ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３リガンド（ＦＭＳ－ｌｉｋｅｔｙｒｏｓｉｎｅｋｉｎａｓｅ３ｌｉｇａｎｄ；ＦＬ），（４）トロンボポエチン（Ｔｈｒｏｍｂｏｐｏｉｅｔｉｎ；ＴＰＯ）及び（５）血管内皮細胞増殖因子（Ｖａｓｃｕｌａｒｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ；ＶＥＧＦ）の５つの因子を含む無血清培地で、単核球を培養することにより、ＥＰＣを含む細胞群を生体外で増幅する、というものである。
本発明者らは、さらに、特願２０１９－２３１６０６（非公開）に示されるように、鋭意研究に努めた結果、骨髄、臍帯血又は末梢血由来の単核球を、幹細胞因子、インタ一ロイキン６、ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３リガンド、トロンボポエチン及び血管内皮細胞増殖因子からなる群から選択される４以下の因子、並びに、血清、を含む培地中で、培養することにより、血管再生能及び創傷治癒能を有し、かつ、国際公開ＷＯ２０１４／０５１１５４に示した細胞群とは異なる新たな細胞群の取得に成功した。

国際公開ＷＯ２００６／０９０８８２国際公開ＷＯ２００６／０９０８８６国際公開ＷＯ２００６／０９３１７２国際公開ＷＯ２０１４／０５１１５４

本発明者らは、特願２０１９－２３１６０６（非公開）で示す細胞群の研究を進めた結果、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞、及び当該細胞を多く含む細胞群を発見し、当該細胞および当該細胞を多く含む細胞群がさらに優れた血管再生能及び創傷治癒能を有することを見出して本願発明を想到した。

本発明は、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を提供する。
本発明はまた、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を４０％以上含む細胞群を提供する。

本発明はまた、本発明の細胞または細胞群を含む、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療用組成物を提供する。

限定されるわけではないが、本発明は以下の態様を含む。
［態様１］
ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞。
［態様２］
態様１の細胞を４０％以上含む細胞群。
［態様３］
ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（－）の細胞が２０％以下である、態様２に記載の細胞群。
［態様４］
態様１に記載の細胞、あるいは、態様２又は３に記載の細胞群を含む、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療用組成物。
［態様５］
虚血性疾患が、四肢虚血である、態様４に記載の治療用組成物、
［態様６］
虚血性疾患が、潰瘍を伴う四肢虚血である、態様４又は５に記載の治療用組成物。
［態様７］
血管新生及び／又は創傷治癒を促進する、態様４－６のいずれか１項に記載の治療用組成物。

図１は、健常人の末梢血より調製したＲｅｍａ細胞を含む領域の細胞集団をゲーティングするのに使用したフローサイトメトリー（ＦＡＣＳ）スキャタープロットの例を示す。図２は、管腔形成能を持つヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）に対し、Ｒｅｍａ細胞共培養、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞共培養した場合の顕微鏡写真図である。図３は、管腔形成能を持つヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）に対し、Ｒｅｍａ細胞共培養、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞共培養した場合の効果を示す。図３Ａは、形成した管腔数、図３Ｂは管腔構造中に取り込まれている蛍光標識されたＲｅｍａ細胞、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞の細胞数である。図４は、創傷治癒能力を調べる実験の概要を示した模式図である。図５は、Ｒｅｍａ細胞、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞と線維芽細胞と共培養した場合の、線維芽細胞の遊走、即ち、創傷縮小に与える効果を調べた結果である。細胞共培養０、６、１２、２４時間後の写真を、全自動ハイスループット生細胞解析システムＩｎｃｕＣｙｔｅ（登録商標）Ｓ３により撮影した。図６は、図５の写真よりＩｎｃｕＣｙｔｅ（登録商標）細胞遊走ソフトウェアを用いて創傷面積を算出し、６、１２、２４時間後の創傷の縮小率を示したものである。図７は、管腔形成能を持つヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）に対し、Ｒｅｍａ細胞群共培養した場合の顕微鏡写真図である。図８は、管腔形成能を持つヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）に対し、Ｒｅｍａ細胞群共培養した場合の効果を形成した管腔数で示す。

１．細胞
本発明は、一態様において、細胞に関する。本発明の細胞は、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）であることを特徴とする。

ＣＤ１４は、ヒト、マウス等で観察される自然免疫系の構成要素の１つである。ＣＤ１４は共受容体として（ＴＬＲ４又はＭＤ－２と共に）働き、細菌に由来するリポ多糖（ＬＰＳ）を認識する。

ＣＤ２０６（別名：ＭＭＲ、ＣＬＥＣ１３Ｄ、ＭＲＣ１）は、マルチレクチンレセプタ構造を有するＩ型膜受容体である。ＣＤ２０６は、糖鎖を含むタンパク質のマクロファージによる細胞内取り込み、エンドサイトーシスを媒介する。ＣＤ２０６は、潜在的な病原性ウイルスおよび細菌、真菌の表面上の高マンノース構造に結合することが示されており、それらは貪食により排除される。

ＣＸＣＲ４（別名：ＣＤ１８４）は、細胞膜を７回貫通するＧタンパク質共役受容体（ＧＰＣＲ）である。ＣＸＣＲ４の生理的リガンドは、ＣＸＣケモカインの１種である、ｓｔｏｒｏｍａｌｃｅｌｌ－ｄｅｒｉｖｅｄｆａｃｔｏｒ－１（ＳＤＦ－１）である。
ＣＸＣＲ４は生体において比較的広範な分布を示し、免疫系や中枢神経系において、様々なＣＤ４（＋）細胞に発現している。血液中ではＣＤ１８４細胞は、好中球、単球、樹状細胞、ＮＫ細胞、Ｂ細胞、Ｔ細胞そして血小板に強く発現している。

ＣＤ１４、ＣＤ２０６、ＣＸＣＲ４のタンパク質及び遺伝子の配列、構造は公知であり、各々が共陽性であること、即ち、ＣＤ１４（＋）、ＣＤ２０６（＋）、ＣＸＣＲ４（＋）は公知方法によって調べることができる。非限定的に、ＣＤ１４、ＣＤ２０６、ＣＸＣＲ４のタンパク質の存在は、例えば、これらのタンパク質に特異的に結合する物質、例えば、抗体、リガンド等によって、確認することができる。例えば、各々に特定的な抗体として以下のものが知られている。

ＣＤ１４特異的な抗体：ＡＰＣ－Ｃｙ７－抗ヒトＣＤ１４抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）
ＣＤ２０６特異的な抗体：ＰＥ－ｃｙ７－抗ヒトＣＤ２０６抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）
ＣＸＣＲ４特異的な抗体：ＡＰＣ－抗ヒトＣＸＣＲ４抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）
これらの抗体を用いて例えば、蛍光抗体法等によりこれらのタンパク質の存否を確認し、例えば、フローサイトメトリー、マイクロビーズ標識による磁気回収等によりＣＤ１４（＋）、ＣＤ２０６（＋）、ＣＸＣＲ４（＋）の細胞をソートすることができる。
あるいは、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）、ＲＮＡシーケンス（ＲＮＡ－Ｓｅｑ）等の方法を用いて、ＣＤ１４、ＣＤ２０６、ＣＸＣＲ４の核酸の存否を確認してもよい。

２．細胞群
本発明は、一態様において、細胞群に関する。

上記細胞群は、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を含む。一態様において（即ち、非限定的に）上記細胞群は、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を４０％以上、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上含む。

細胞群中に含まれるＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞の割合は、公知の方法によって調べることができる。例えば、フローサイトメトリーにより細胞群がＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を４０％以上含む、と判断できる。

一態様において（即ち、非限定的に）ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（－）の細胞は４０％以下、３０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下である。ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（－）の細胞の割合は、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞の割合に関して上述したのと同様の方法によって行うことができる。

３．細胞又は細胞群の取得方法
上記ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を含む細胞群の取得方法は特に限定されない。

一態様において、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を含む細胞群は、骨髄、臍帯血又は末梢血由来の単核球を培養することによって得られる。上記細胞群の取得のために用いられる「単核球」とは、末梢血、骨髄又は臍帯血等に含まれる円形核を持つ細胞の総称で、リンパ球、単球、マクロファージ、血管内皮前駆細胞、造血幹細胞等が含まれる。例えば、動物から骨髄、臍帯血又は末梢血を採取し、それを例えば単核球分離用採血管を用いることにより、又は密度勾配遠心法に付して該分画を抽出することにより単核球が得られる。密度勾配遠心法としては、単核球分画が形成されれば特に限定されない。例えば、Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ－１０７７（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）を用いてもよい。

骨髄、臍帯血又は末梢血が由来する動物種は、特に限定されない。動物種には、虚血性疾患、炎症性疾患、又は難治性創傷等の疾患に対する細胞移植療法が適用されるヒトを含む哺乳動物一般が含まれる。臨床応用という目的に鑑みれば、好ましくはヒトである。

一態様において、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞は、（ｉ）骨髄、臍帯血又は末梢血由来の単核球を、幹細胞因子、インタ一ロイキン６、ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３リガンド、トロンボポエチン及び血管内皮細胞増殖因子の５種類の因子もしくはこの５種類の因子から選択される３因子又は４因子、並びに、血清を含む培地もしくは血清を含まない培地中で培養し、そして（ｉｉ）ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）選択的に回収することにより得られる。

また、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を含む細胞群は、骨髄、臍帯血又は末梢血由来の単核球を、幹細胞因子、インタ一ロイキン６、ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３リガンド、トロンボポエチン及び血管内皮細胞増殖因子の５種類の因子もしくはこの５種類の因子から選択される３因子又は４因子、並びに、血清を含む培地もしくは血清を含まない培地中で培養することで得られる。

幹細胞因子（ＳＣＦ）は、２４８個のアミノ酸からなる分子量約３０，０００の糖タンパク質である。選択的スプライシングにより可溶型と膜結合型が存在するが、上記細胞群の取得のためにＳＣＦは単核球の培養に有用である限りいずれのタイプのＳＣＦでもよい。好ましくは可溶型である。ＳＣＦの由来等は特に限定されない。非限定的に、安定した供給が見込まれる組換え体が好ましく、特に好ましくはヒト組換え体である。商業的に入手可能なものが知られている。培養培地中のＳＣＦの濃度は、用いるＳＣＦの種類によっても異なり、単核球の培養に有用である限り特に限定されない。ヒト組換えＳＣＦの場合であれば、非限定的に、例えば１０～１０００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは５０～５００ｎｇ／ｍＬ、より好ましくは約１００ｎｇ／ｍＬである。

インターロイキン６（ＩＬ－６）は、Ｂ細胞の抗体産生細胞への最終分化を誘導する因子として単離された分子量２１万の糖タンパク質である。ＩＬ－６は、一般に、免疫応答、造血系や神経系細胞の増殖分化、急性期反応等に関与することが知られている。上記細胞群の取得のために用いるＩＬ－６は、特に限定されず、適宜選択される。ヒトの単核球の培養に用いる場合には、ヒトＩＬ－６が好ましく、安定した供給が見込まれる組換え体が特に好ましい。商業的に入手可能なものが知られている。培養培地中のＩＬ－６の濃度は、用いるＩＬ－６の種類によっても異なり、単核球の培養に有用である限り特に限定されない。ヒト組換えＩＬ－６の場合であれば、非限定的に、例えば１～５００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは５～１００ｎｇ／ｍＬ、より好ましくは約２０ｎｇ／ｍＬである。

ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３リガンド（ＦＬ）は、初期造血制御において重要な役目を担う受容体型チロシンキナーゼのリガンドとして知られている。いくつかの選択的スプライシングによる産物が知られているが、造血系幹細胞の増殖を刺激するという報告がある。上記細胞群の取得のために用いるＦＬは、単核球の培養に有用である限り、いずれのタイプのＦＬであってもよい。商業的に入手可能なものが知られている。培養培地中のＦＬの濃度は、用いるＦＬの種類によっても異なり、単核球の培養に有用である限り特に限定されない。ヒト組換えＦｌｔ－３リガンドの場合であれば、非限定的に、例えば１０～１０００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは５０～５００ｎｇ／ｍＬ、より好ましくは約１００ｎｇ／ｍＬである。

トロンボポエチン（ＴＰＯ）は、造血系サイトカインの一種であり、造血幹細胞から巨核球が作られる過程に特異的に作用し、巨核球の産生を促進することが知られている。上記細胞群の取得のために用いるＴＰＯの由来等は特に限定されない。安定した供給が見込まれる組換え体が好ましく、特に好ましくはヒト組換え体である。商業的に入手可能なものが知られている。培養培地中のＴＰＯの濃度は、用いるＴＰＯの種類によっても異なり、単核球の培養に有用である限り特に限定されないが、ヒト組換えＴＰＯの場合であれば、非限定的に、例えば１～５００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは５～１００ｎｇ／ｍＬ、より好ましくは約２０ｎｇ／ｍＬである。

血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）は、血管内皮前駆細胞（ＥＰＣ）に特異的に作用する増殖因子であり、主に血管周囲の細胞で産生されることが知られている。選択的スプライシングによってサイズの異なる数種のＶＥＧＦタンパク質が産生されるが、上記細胞群の取得のために用いるＶＥＧＦはＥＰＣのコロニー形成を可能にする限りいずれのタイプのＶＥＧＦでもよい。好ましくはＶＥＧＦ１６５である。ＶＥＧＦの由来等は特に限定されない。安定した供給が見込まれる組換え体が好ましく、特に好ましくはヒト組換え体である。商業的に入手可能なものが知られている。培養培地中のＶＥＧＦの濃度は、用いるＶＥＧＦの種類によっても異なり、単核球の培養に有用である限り特に限定されな。ヒト組換えＶＥＧＦ１６５の場合であれば、非限定的に、例えば約５～５００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは約２０～１００ｎｇ／ｍＬ、より好ましくは約５０ｎｇ／ｍＬである。

単核球の培養に用いる培養培地に添加される各種因子はまた、非限定的に、単核球が由来する動物と同種の動物に由来する因子で統一してもよい。このように単核球及び各種因子の由来を統一することで、同種異系移植等の同種移植に好適な細胞培養物が得られる。また、細胞移植が意図される個体由来の単核球を用いることで、同種同系移植に好適な細胞培養物を得ることも可能である。

上記した各成分は培養培地で所定の濃度に溶解するか、あるいはあらかじめ各成分の濃縮液（ストック溶液）を調製し、培養培地で所定の濃度に希釈することによって、単核球を培養するための培養培地を調製することができる。例えば市販の培養培地に必要な成分を所定の濃度となるよう溶解した後、濾過滅菌等により滅菌するか、あるいは濾過滅菌等により滅菌したストック溶液を無菌的に市販の培養培地に添加、希釈することによって培養培地を調製することができる。濾過滅菌は当分野で通常実施されている方法に準じて行うことができ、例えば０．２２μｍや０．４５μｍのミリポアフィルター等を用いて行う。

本発明で用いられる「培養培地」は、当分野で通常用いられている培地を利用することができ、例えば造血幹細胞の増殖用培地として知られている培養地を用いることができる。培養培地として用いられる基礎培地としては、例えば、ＳｔｅｍｌｉｎｅＩＩ、ＤＭＥＭ、ＭＥＭ、ＩＭＤＭ、ＲＰＭＩ、ＳＣＧＭ、ＥＢＭ等が挙げられる。

上記細胞、細胞群を取得するために、単核球を培養するための培地は、幹細胞因子、インタ一ロイキン６、ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３リガンド、トロンボポエチン及び血管内皮細胞増殖因子の５種類の因子、もしくはこの５種類の因子から選択される３因子又は４因子の他に、血清を含む培地もしくは含まない培地、を含む。

血清の種類は特に限定されない。非限定的に、一態様において、血清は、ウシ又はヒトの血清である。一態様において、血清は、ウシとヒトの血清両方を含んでもよい。一態様において、血清は、ウシ胎児血清である。培地中における血清の濃度も特に限定されない。一態様において、血清は培地中に、０．１容量％以上、０．３容量％以上、０．５容量％以上含まれる。培地中の血清の濃度の上限は特にない。一態様において、３０容量％以内、２０容量％以内、１０容量％以内、５容量％以内である。非限定的に、血清は、培地中に０．１容量％以上２０容量％の濃度、培地中に０．５容量％以上１０容量％の濃度で含まれる。

単核球培養は、単核球を含有する細胞懸濁液を、上述した因子及び血清を含む培地もしくは血清を含まない培地に添加することにより行われる。細胞懸濁液としてはまた、単核球を含有する体液自体（例えば、骨髄液、臍帯血、末梢血）を用いることもできる。単核球の培養条件は特に限定されず、通常当分野で実施される条件で実施することができる。非限定的に、例えば、５％ＣＯ_２雰囲気下、約３７℃で培養される。培養期間は、非限定的に例えば、３日間以上であり、５日間以内、６日間以内、７日間以内、１０日間以内である。例えば、３日間－１０日間、３日間－６日間である。単核球の培地中の濃度は、単核球の培養を可能とする限り特に限定されないが、例えば約０．１～１０×１０^６細胞／ｍｌ、より好ましくは約０．５～５×１０^６細胞／ｍｌである。

「ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）選択的に回収する」ことは、例えば「１．細胞」で説明したＣＤ１４、ＣＤ２０６、ＣＸＣＲ４の存在確認するための方法を適宜利用することにより、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）細胞、即ち、ＣＤ１４、ＣＤ２０６、ＣＸＣＲ４が存在する細胞を選択的に回収（ソート）することにより行うことができる。例えば、これらのタンパク質に特異的に結合する物質、例えば、抗体、リガンド等を利用したフローサイトメトリー、マイクロビーズ標識による磁気回収等が利用できる。
上述した方法は、上記細胞、細胞群を得るための一例である。

４．治療用組成物
本発明は、一態様において、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療用組成物に関する。本発明の治療用組成物は、「１．細胞」「２．細胞群」で説明した細胞、細胞群を含む。細胞、細胞群は、治療用組成物を使用する対象に由来しても（自家）、治療用組成物を使用する対象以外に由来しても（他家）よい。

「虚血性疾患」は、血量の減少によって組織内の血流が下がり、細胞の変性、萎縮、線維化などの組織障害が生じることによって起こる疾患である。虚血はその原因により、閉塞性虚血、圧迫性虚血、痙攣性虚血、代償性虚血に大別される。虚血が持続すると細胞の変性、萎縮、線維化が生じる。「虚血性疾患」には、四肢虚血、虚血性潰瘍、虚血性心疾患、脳梗塞、虚血性腸炎、虚血性肝炎、虚血性腎障害等が含まれる。「脳梗塞」（又は脳軟化症）は、脳を栄養する動脈の閉塞、又は狭窄のため、脳虚血を来たし、脳組織が酸素、又は栄養の不足のため壊死、又は壊死に近い状態になる事をいう、脳血栓及び脳塞栓に分類される。「四肢虚血」は、手足に血液を供給する動脈が狭窄又は閉塞する疾患であり、この閉塞性動脈硬化症が重症化したり、膠原病により、重症の四肢虚血となり、疼痛などの症状及び難治性の潰瘍が生じ、最悪の場合、切断が必要になる場合もある。非限定的に、四肢は一態様において下肢である。

非限定的に、一態様において、虚血性疾患は、四肢虚血である。虚血性疾患は、潰瘍を伴う四肢虚血である。
「炎症性疾患」は、なんらかの原因により組織損傷などの異常が生じることで症状を起こす疾患の総称である。炎症性疾患には、クローン病、肝硬変、肝炎、潰瘍性大腸炎、炎症性腸疾患等が含まれる。

上記治療用組成物は、血管新生及び／又は創傷治癒を促進する。よって、血管新生及び／又は創傷治癒により治療できる疾患に適用することができる。「血管新生及び／又は創傷治癒により治療できる疾患」としては、例えば、虚血性疾患（例えば、心筋梗塞、狭心症等の虚血性心疾患、下肢虚血性動脈硬化症等の下肢虚血、バージャー（Ｂｕｒｇｅｒ）病）、血管損傷が挙げられる。また、皮膚潰瘍等の創傷を治癒するため、あるいは人工血管の作製に使用できる。治療用組成物の適用の効果は、自体公知の方法により確認できる。例えば血管新生により治療できる疾患が下肢虚血性疾患である場合には、移植後の治療効果を例えば下肢血流量及び壊死改善率を調べることによって評価することができる。血流量の増加の測定はレーザドップラーイメージング解析の値を測定することによって行うことができる。また壊死改善率はリムサルベージスコアとして目視により測定することができる。

上記治療用組成物の使用態様は特に限定されない。有効成分たる細胞群又は細胞群そのものであってもよいし、細胞又は細胞群を液状媒体に懸濁したものであってもよい。液体媒体はヒトに注入可能な液体であればいずれであってもよく、例えば、等張電解質輸液やリン酸緩衝液や生理食塩水あるいは無血清培地であるＤＭＥＭなども利用可能である。また液体媒体にはアルブミンなど細胞の生存に好ましい化合物が含まれてもよい。また凍結保存する場合には凍結細胞保存液などで懸濁したものであってもよい。

上記治療用組成物の適用対象は、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療が必要である対象であれば、特に限定されない。非限定的に、ヒト、サル、チンパンジー、イヌ、ネコ、ウシ、ウマ、ネズミ、モルモット等が含まれる。

４．治療方法等
本発明は、一態様において、「１．細胞」「２．細胞群」で説明した細胞、細胞群を、必要のある対象に適用することを含む、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療方法に関する。

本発明は、一態様において、「１．細胞」「２．細胞群」で説明した細胞、細胞群の、必要のある対象に適用することを含む、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療方法への使用、あるいは、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療用組成物への使用、に関する。

本発明は、一態様において、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療方法へ使用するための、「１．細胞」「２．細胞群」で説明した細胞、細胞群に関する。
「虚血性疾患」、「炎症性疾患」又は「難治療性創傷」、「細胞群の適用態様」、「適用対象」等については、「３．治療用組成物」に記載した通りである。

以下、実施例に基づいて本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。当業者は本明細書の記載に基づいて容易に本発明に修飾・変更を加えることができ、それらは本発明の技術的範囲に含まれる。

実施例１Ｒｅｍａ細胞の単離
（１）単核球の単離
健常人のボランティアから、ＢＤバキュテイナ（登録商標）ＣＰＴ（商標）ＢＤ社製）単核球分離用採血管を用いて１００ｍＬの末梢血を採取した。採血後、そのまま採血管を遠心した後、輸送、到着後培養開始までは冷蔵で保管した。単核球及び血漿を含むＣＰＴ（商標）採血管内のゲルバリアより上を遠心管へ回収し、少量のＥＤＴＡ－ＰＢＳでゲルバリア上など採血管内を洗いこみ、同じ遠心管へ回収した。細胞を回収した遠心管をＥＤＴＡ－ＰＢＳでメスアップしたのち、遠心分離（３００ｘｇ、室温、１５分間）し、沈査として細胞を回収した。回収された細胞は、混入する赤血球を除くためＡＣＫ溶血緩衝液（１５ｍＬ／管）（Ｇｉｂｃｏ、Ｔｈｅｒｍｏ－Ｆｉｓｈｅｒ社製）中、室温で５分間インキュベートした。ＡＣＫ溶血緩衝液の組成は、ＮＨ_４Ｃｌ８，２９０ｍｇ／ｌ；ＫＨＣＯ_３１，０００ｍｇ／ｌ；ＥＤＴＡ．Ｎａ_２・２Ｈ_２Ｏ３７ｍｇ／ｌである。その後、ＥＤＴＡ－ＰＢＳでメスアップし、遠心分離（２００ｘｇ、室温、１０分間）又は（１００ｘｇ、室温、１５分間）で細胞を回収する操作を２回繰り返した。

（２）無血清培地での培養
回収した単核球細胞を、１ｍＬの増殖培地に懸濁し、その一部を使用してトリパンブルーを用いた細胞数計数を行った。下記に示すいくつかの増殖培地で培養した。培地１は、５０ｎｇ／ｍｌＶＥＧＦ、１００ｎｇ／ｍｌＳＣＦ、１００ｎｇ／ｍｌＦｌｔ－３リガンド、２０ｎｇ／ｍｌＴＰＯ、２０ｎｇ／ｍｌ及びＩＬ－６、１００単位／ｍＬの５種類の因子、並びに、ペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシンを添加したｓｔｅｍｌｉｎｅ（登録商標）ＩＩＨｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃＳｔｅｍＣｅｌｌＥｘｐａｎｓｉｏｎＭｅｄｉｕｍ（シグマ－アルドリッチ社製、ＣａｔＮｏ．Ｓ０１９２を用いた。

得られた細胞増殖培地中で、細胞濃度を１ｘ１０^６／ｍＬに調製し、６穴培養プレートの各ウェルに２ｍＬずつ播種した。通常の培養条件（３７℃、５％ＣＯ_２）で５日間培養した。５日間の培養終了後、遠心管に回収し、２５０ｘｇ（～１０００ｒｐｍ）で７－１０分間、遠心洗浄を３回実施した。遠心後、細胞数計測、生存率測定、ＱＣ（確認）試験用のサンプルを除き、残りの細胞はＰｌａｓｍａＬｙｔｅＡ、２．５％ヒトアルブミン血清に懸濁し、８ｘ１０^５細胞／ｍＬの濃度になるように調整した。

（３）フローサイトメトリー解析
本実施例では、上記の培養によって得られた細胞群について、その中のＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）細胞およびＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（―）細胞の含有量を明らかにするため、フローサイトメトリー解析を行った。

ＦＡＣＳ緩衝液（組成：２％ＦＢＳを添加した２ｍＭＥＤＴＡ－ＰＢＳ）中に懸濁した細胞（１．５×１０^６細胞／３００μＬ－ＦＡＣＳ緩衝液）にＦＣブロッキング試薬（ミルテニィ社製）を１０μＬ添加し、４℃で３０分間インキュベートした。インキュベート後の細胞群を、染色反応用チューブに等量ずつ分注した（１００μＬ／チューブ×３チューブ）。各アリコートに各一次抗体を２μＬ添加し、４℃で２０分間培養した。その後１ｍＬのＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄し、染色された細胞をＦＡＣＳ緩衝液中に懸濁した（５×１０^５細胞／２００～３００μＬ－ＦＡＣＳ緩衝液）。フローサイトメトリー計測は、ＢＤＦＡＣＳＡｒｉａ（商標）ＩＩＩセルソーター（ＢＤ社製）を用いて行った。

具体的には、得られた細胞群における各細胞表面マーカーに対する抗体を用いて各細胞表面マーカーの発現を調べた。なお、各細胞表面マーカーに対する抗体は、いずれも下記の市販のものを使用した。

抗ＣＤ２０６抗体：ＰＥ／Ｃｙ７標識抗ヒトＣＤ２０６（ＭＭＲ）抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）；
抗ＣＸＣＲ４抗体：ＡＰＣ標識抗ヒトＣＤ１８４（ＣＸＣＲ４）抗体（ＢＤ社製）、
抗ＣＤ１４抗体：ＡＰＣ－Ｃｙ７－抗ヒトＣＤ１４抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）。
ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞を、「Ｒｅｍａ細胞」、ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（－）である細胞を、「Ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞」、と呼称する場合がある。
本細胞群にはＲｅｍａ細胞が３３．３４％、Ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞が２８．１７％含まれてた。

（４）Ｒｅｍａ細胞、Ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞の単離
本実施例において、上記の方法において取得した単核球より培養した培養物よりＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）であるＲｅｍａ細胞とＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（－）であるＮｏｎ－Ｒｅｍａ細胞を分離した。

細胞数計測後、５０ｍＬ遠心管に１×１０^７細胞／３００μＬとなるようＦＡＣＳ緩衝液（組成：２％ＦＢＳを添加した２ｍＭＥＤＴＡ－ＰＢＳ）で懸濁調製した。ついで、１×１０^７細胞／２０μＬＦｃＲブロッキング試薬（ミルテニィバイオテク社製）を添加し、４℃下で１０分間インキュベートした。

ＰＥｃｙ７－抗ヒトＣＤ２０６抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）とＡＰＣ－抗ヒトＣＸＣＲ４抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）を各々１×１０^７細胞／４００μＬ量添加した。ここにおいて、上記２種の抗体による染色前に、Ｓｏｒｔｉｎｇ設定調整用にアイソタイプ対照、ＣＤ２０６単染色、ＣＸＣＲ４単染色分を各々２～５×１０^５細胞ずつ１．５ｍＬチューブに取り分け染色した。

抗体添加後、４℃下で３０分インキュベートした。ＦＡＣＳ緩衝液を足して５０ｍＬとし、遠心した（２５０Ｇ×１０分、４℃）。上清を吸引後、ＦＡＣＳ緩衝液で１×１０^７細胞／３ｍＬに懸濁し、セルストレーナー付き５ｍＬチューブ（フローサイトメーター用、Ｃｏｒｎｉｎｇ社製，米国、ＮＹ）へ移し、調整した。フローサイトメトリー計測は、ＢＤＦＡＣＳＡｒｉａ（商標）ＩＩＩセルソーター（ＢＤ社製）を用いて行った。

ＣＤ２０６陽性かつＣＸＣＲ４陽性の分画をＲｅｍａ細胞とし、ＣＤ２０６陽性かつＣＸＣＲ４陰性の分画をＮｏｎ－Ｒｅｍａ細胞としてそれぞれ同時にソートした。ソートの初期設定として、ＤＡＰＩ染色にて死細胞を除去し、目的細胞を含む領域の細胞集団（図１）をゲーティングした。ゲートされた領域の下層をダブレット除去し、アイソタイプ対照と単染色サンプルを用いて蛍光色素の漏れ込み調整を実施した。

実施例２Ｒｅｍａ細胞の効果
（１）Ｒｅｍａ細胞の血管形成能
本実施例では、実施例１で単離したＲｅｍａ細胞の血管形成能を調べた。

管腔形成能を持つヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）（Ｌｏｎｚａ社、スイス、バーゼルより入手）を、８～１０継代で使用し、各群の細胞とＨＵＶＥＣと共培養した。９６ウェルのプレートに基底膜マトリックス（Ｃｏｒｎｉｎｇ（登録商標）Ｍａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（Ｃｏｒｎｉｎｇ社製，米国、ＮＹ））５０μｌ／ウェルを分注し、３７℃、３０分コーティングした。一方、実施例２で単離したＲｅＭａ細胞を、ＤｉＩ－Ａｃ－ＬＤＬで標識するために、ＩＭＤＭ５００μｌ＋ＤｉＩ－Ａｃ－ＬＤＬ５μｌに懸濁し、３７℃、１時間インキュベートした。比較例として、実施例１で調製したｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞を用いた。

標識後、Ｒｅｍａ細胞又はｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞を１ｘ１０^３／２５μｌ、及び、ＨＵＶＥＣを５ｘ１０^３／２５μｌになるよう、各々ＰＢＳに再懸濁した。細胞数を調整した懸濁液を、Ｒｅｍａ細胞群とＨＵＶＥＣが１：１になるよう混和し、Ｍａｔｒｉｇｅｌ上に５０μｌずつ添加した。、３７℃、５％ＣＯ_２下で、３～５時間培養した。培養後、ＩＸ８３蛍光顕微鏡（オリンパス社製）を用い、倍率１００倍で、形成した管腔数、並びに、管腔構造中に取り込まれている蛍光標識された細胞数（Ｒｅｍａ細胞又はｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞）を目視でカウントした。

図２及び図３に結果を示す。図２は、ＨＵＶＥＣのみ（コントロール群）、Ｒｅｍａ細胞共培養、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞共培養の顕微鏡写真図である。図３Ａは、形成した管腔数、図３Ｂは管腔構造中に取り込まれている蛍光標識されたＲｅｍａ細胞およびｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞の細胞数の結果を示す。図３に示されるように、Ｒｅｍａ細胞は、コントロール群、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞と比較してＩｎｖｉｔｒｏ血管形成能が高いことが明らかになった。また、Ｒｅｍａ細胞は、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞よりも管腔構造中に取り込まれていることが明らかになった。

（２）Ｒｅｍａ細胞の創傷治癒能
本実施例では、実施例１で取得されたＲｅｍａ細胞による創傷治癒能力を調べた。比較例として、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞（ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（－））、を用いた。実験の概要を図４示す。

ヒト皮膚由来線維芽細胞を、培養培地（１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ）中で６～１０継代で使用したものを準備した。準備した線維芽細胞を、９６ウェルのＩｎｃｕＣｙｔｅ（登録商標）ＩｍａｇｅＬｏｃｋＰｌａｔｅｓ（ＥｓｓｅｎＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅ社製、ａｎｎＡｒｂｏｒ，ＭＩ，米国）に０．８ｘ１０^４細胞／ウェルの密度で播種した。ここに、Ｒｅｍａ細胞、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞又を、各々、０．８ｘ１０^４細胞／ウェルの密度で、カルチャーインサートを用いて、線維芽細胞と接触しないように添加した。０．５％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中で、３７℃、２４時間共培養した。

ＩｎｃｕＣｙｔｅ（登録商標）のスクラッチアッセイの９６ウェルのＷｏｕｎｄＭａｋｅｒツールを用い、スクラッチ創傷を形成した。死細胞を除去するために、ＰＢＳで細胞を洗浄した。細胞共培養０、６、１２、２４時間後の写真を、全自動ハイスループット生細胞解析システムＩｎｃｕＣｙｔｅ（登録商標）Ｓ３により撮影した。結果を、図５に示す。さらに、ＩｎｃｕＣｙｔｅ（登録商標）細胞遊走ソフトウェアにより創傷面積を算出した。０時間時を０とした場合の、６、１２、２４時間後の創傷の縮小率を図６に示す。
図６から明らかなようにＲｅｍａ細胞は、６、１２、２４時間後いずれにおいても、ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞と比較して、高い創傷治癒能力を示した。

実施例３Ｒｅｍａ細胞を多く含む細胞群の培養
本実施例において、末梢血より単核球を単離し、Ｒｅｍａ細胞を多く含む細胞群の培養を行った。

（１）単核球の単離
糖尿病患者のボランティアから、ＢＤバキュテイナ（登録商標）ＣＰＴ（商標）ＢＤ社製）単核球分離用採血管を用いて１００ｍＬの末梢血を採取した。採決方法、単核球の単離方法は実施例１（１）と同様である。

（２）血清培地での培養
回収した単核球細胞を、１ｍＬの増殖培地に懸濁し、その一部を使用してトリパンブルーを用いた細胞数計数を行った。下記に示すいくつかの増殖培地で培養した。培地１は、５０ｎｇ／ｍｌＶＥＧＦ、１００ｎｇ／ｍｌＳＣＦ、１００ｎｇ／ｍｌＦｌｔ－３リガンド、２０ｎｇ／ｍｌＴＰＯ、２０ｎｇ／ｍｌ及びＩＬ－６、１００単位／ｍＬの５種類の因子、並びに、ペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン、０．５％ＦＢＳを添加したｓｔｅｍｌｉｎｅ（登録商標）ＩＩＨｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃＳｔｅｍＣｅｌｌＥｘｐａｎｓｉｏｎＭｅｄｉｕｍ（シグマ－アルドリッチ社製、ＣａｔＮｏ．Ｓ０１９２を用いた。培地２は、５０ｎｇ／ｍｌＶＥＧＦ、１００ｎｇ／ｍｌＦｌｔ－３リガンド、２０ｎｇ／ｍｌＴＰＯ、２０ｎｇ／の３種類の因子、並びに、ペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン、０．５％ＦＢＳを添加したｓｔｅｍｌｉｎｅ（登録商標）ＩＩＨｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃＳｔｅｍＣｅｌｌＥｘｐａｎｓｉｏｎＭｅｄｉｕｍ（シグマ－アルドリッチ社製、ＣａｔＮｏ．Ｓ０１９２を用いた。培地３は、５０ｎｇ／ｍｌＶＥＧＦ、１００ｎｇ／ｍｌＦｌｔ－３リガンド、２０ｎｇ／ｍｌＴＰＯ、２０ｎｇ／の３種類の因子、並びに、ペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン、０．５％ＦＢＳ及び０．５％ヒトアルブミン血清を添加したＩｓｃｏｖｅ’ｓＭｏｄｉｆｉｅｄＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＭｅｄｉｕｍ（ＩＭＤＭ）を用いた。

（３）フローサイトメトリー解析
本実施例では、上記の培養によって得られた細胞群について、その中のＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）細胞の含有量を明らかにするため、フローサイトメトリー解析を行った。

方法は実施例１と同様である。
それぞれの培地で培養した細胞群に含まれるＲｅｍａ細胞、Ｎｏｎ－Ｒｅｍａ細胞の割合を表１に示す。

実施例４Ｒｅｍａ細胞を多く含む細胞群の効果
（１）Ｒｅｍａ細胞を多く含む細胞群の血管形成能
本実施例では、上記の培地２で取得されたＲｅｍａ細胞を多く含む細胞集団（Ｒｅｍａ細胞群）の血管形成能を調べた。血管形成能の試験方法は実施例２と同様である。

図７及び図８に結果を示す。図７は、ＨＵＶＥＣ、Ｒｅｍａ細胞群共培養の顕微鏡写真図である。図８は、形成した管腔数の結果を示す。図８に示されるように、Ｒｅｍａ細胞群はコントロール群（ＨＵＶＥＣのみ）と比較してＩｎｖｉｔｒｏ血管形成能が高いことが明らかになった。

（２）マウス下肢虚血モデルに対するＲｅｍａ細胞群の効果
本実施例では、実施例３で取得されたＲｅｍａ細胞を多く含む細胞集団（Ｒｅｍａ細胞群）のマウス下肢虚血モデルに対する効果を調べた。

免疫不全マウスであるＢＡＬＢ／ｃＡＪｃｌ－ｎｕ／ｎｕヌードマウス（日本クレアより入手）用いて全身吸入麻酔下にて下肢虚血モデルを作製した。具体的には、全身吸入麻酔をした免疫不全マウスの鼡径部皮膚を切開し、鼠径部脂肪組織を除去した。切除部位直下の大腿動脈を６－０絹糸で結紮し、下流の伏在動脈をバイポーラーにて焼灼・切断した。

実施例３の培地２で取得したＲｅｍａ細胞群を２，５００細胞／部位の濃度で虚血部位４ヶ所に筋肉内移植した。比較例として、生理食塩水を投与したグループを用いた。移植後に肉眼所見観察及びレーザードップラーによる血流測定を経時的に行った。観察終了後は組織免疫染色にて血管数、抗炎症マクロファージ数を計測し、細胞移植による組織再生効果を確認した。

本発明により、高い血管再生能及び創傷治癒能を有する新たな細胞もしくは細胞群が提供される。本発明の細胞もしくは細胞群は、例えば、難病の下肢虚血疾患の患者の治療薬としての使用できる。これにより、例えば、下肢切断の回避が可能になるなど、患者ＱＯＬの向上、介護負担の軽減などライフイノベーションをもたらすことが可能であり、社会的意義が大きい。また、新規な細胞もしくは細胞群の提供は、新たな治療戦略の構築につながるとともに、血管病変全般へに対する知見をもたしうる。

Claims

ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（＋）である細胞。
請求項１の細胞を４０％以上含む細胞群。
ＣＤ１４（＋）ＣＤ２０６（＋）ＣＸＣＲ４（－）の細胞が２０％以下である、請求項２に記載の細胞群。
請求項１に記載の細胞、あるいは、請求項２又は３に記載の細胞群を含む、虚血性疾患、炎症性疾患又は難治療性創傷の治療用組成物。
虚血性疾患が、四肢虚血である、請求項４に記載の治療用組成物、
虚血性疾患が、潰瘍を伴う四肢虚血である、請求項４又は５に記載の治療用組成物。
血管新生及び／又は創傷治癒を促進する、請求項４－６のいずれか１項に記載の治療用組成物。