JP2020191802A - 微生物、油分分解剤、及び油分分解方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】本発明は、産業廃棄物としての処分が必要な汚泥等の発生を伴わずに、効果的で、かつ経済的に油分を分解する微生物、油分分解剤及び油分分解方法を提供する。【解決手段】キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属に属し、２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列が、配列番号１で示される塩基配列、又は配列番号１で示される塩基配列と９０％以上の相同性を有する塩基配列であり、塩分０〜５％（Ｗ／Ｖ）を含む環境下で油分分解活性を有することを特徴とする微生物、前記微生物を含有する油分分解剤、及び前記油分分解剤を用いる油分分解方法。【選択図】なし
Description
本発明は、微生物、油分分解剤、及び油分分解方法に関する。
食品加工工場や厨房等の調理施設から排出される廃水には、油脂が含まれることが多い。油脂は、廃水の上層を覆い、悪臭を放つだけでなく、その酸化分解には多量の酸素を必要とする。さらに、それらが溶解すると、極めて高いＢＯＤ値を示すことから、重大な汚染源となりうる。これら廃水中の油脂は、水環境保護のため適切な処理が要請されている。例えば、一日当たり平均排出水量が５０ｍ３以上の工場又は事業場の廃水については、ノルマルヘキサン抽出物質含有量として３０ｍｇ／Ｌを限度とする一律廃水基準が定められている。
また、原油より分離精製して得られる各種鉱物油は、主として、化石燃料として現代社会の主要なるエネルギー源として利用されており、その過程で廃水に混入し、それを汚染する場合も多い。また、機械加工業、メッキ業および製鉄業や、石油精製、石油化学および廃油再生などの石油関連工業の工場では、使用済みの潤滑油、切削油、油圧作動油および熱媒体油の他、各種精製工程および化学反応工程で副生する廃油などの鉱物油が廃水中に混入する場合がある。鉱物油を含有する廃水も、油脂の場合と同様の理由により、そのまま下水道を放流することはできず、例えば、一日当たり平均排出水量が５０ｍ３以上の工場又は事業場の廃水については、ノルマルヘキサン抽出物質含有量として５ｍｇ／Ｌを限度とする一律廃水基準が定められている。
油脂、鉱物油等の油分を含有する廃水は、それらを排出する業務（工場等）が盛業中であれば、ますます多量に排出することとなる。したがって、それらの廃水は、限られたスペースで、２次公害を伴わずに、効率よく、速やかに分解処理して、廃水水質基準に合格しうる水質にしなければならない。
油脂、鉱物油等の油分を含有する廃水の処理のためには、従来から加圧浮上分離法が一般的に使用されている。この方法では、廃水を加圧装置に入れて十分に加圧した後、常圧のタンクに移すことにより、もともと比重の異なる油分と水分とが２層分離してくるので、油分を分離除去することができる。加圧浮上分離法の運転管理は比較的容易であるが、処理水の油分を十分に低位に保持することが困難である場合が多い。さらに、それを実施するためには、比較的大きな装置と、多量の水を加圧するための多量のエネルギーが必要となる。また、この方法では、分離された油分を産業廃棄物として処分する必要がある。
油脂、鉱物油等の油分を含有する廃水の処理のためには、従来から加圧浮上分離法が一般的に使用されている。この方法では、廃水を加圧装置に入れて十分に加圧した後、常圧のタンクに移すことにより、もともと比重の異なる油分と水分とが２層分離してくるので、油分を分離除去することができる。加圧浮上分離法の運転管理は比較的容易であるが、処理水の油分を十分に低位に保持することが困難である場合が多い。さらに、それを実施するためには、比較的大きな装置と、多量の水を加圧するための多量のエネルギーが必要となる。また、この方法では、分離された油分を産業廃棄物として処分する必要がある。
油脂、鉱物油等の油分を含有する廃水のもう一つの処理方法として、硫酸アルミニウム、鉄塩などを含む無機凝集剤または架橋性の高分子を含む有機凝集剤を廃水に添加するとともにｐＨ値を調整することによって、油分を固液分離する方法を採用することがあるが、この場合は固相として多量の含油汚泥が生成し、その脱水分離が比較的困難であり、分離できてもやはりその含油汚泥を産業廃棄物として処分しなければならない。
以上のような物理化学的処理方法は、廃水条件や処理条件の設定によっては、十分には油分が除去されず、水質汚濁防止法における基準値まで低減されず、さらに液相を濾過し、活性炭などの吸着剤により吸着処理するなどの高度処理を必要とする場合がある。また、従来の物理化学的処理方法では、設備費や、凝集剤および吸着剤等の使用および汚泥処分費用などのランニングコストが多大であるという欠点もあった。
一方で、油脂、鉱物油等の油分を含有する廃水を、そのまま直接的に活性汚泥法、または生物膜にて処理する方法も試みられているが、これらの生物処理方法は、油分の分解能力および分解速度が極めて小さく、優れた処理効果が得られず、処理設備が長大になる問題がある。
そこで、油分を含む廃水を高度に処理する方法として、油分を分解するように馴致された活性汚泥を用いた生物学的処理方法が提案されている。たとえば、特許文献１には、油分を分解するように馴致された活性汚泥によって油分を分解する処理方法および装置が開示されている。特許文献１に開示されている装置は、油分を分解するように活性汚泥を馴致する馴致槽、この馴致槽から供給される活性汚泥と希釈された廃水とを収容し、廃水に含まれる油分を活性汚泥により曝気しながら分解させる生物処理槽、および該生物処理槽から移送された処理水から活性汚泥を分離するための沈殿槽を備えている。
しかしながら、この処理方法では、生物処理に際して、馴致活性汚泥を適宜添加しているため、生物処理操作と平行して活性汚泥の馴致操作を別途行う必要があり、その管理が面倒である他、生物処理槽、馴致槽および沈殿槽からなる三種の槽を必要とするため装置構成が複雑となるという問題があった。さらに、このように馴致された活性汚泥を用いた場合でも、油分の分解能力および分解速度は小さく、油分を十分に低減するのには長期間を要するという問題もあった。
これに対し、油分を分解する活性を指標にスクリーニングして得られた微生物を利用して油分を分解する方法が提案されている。例えば、ロドコッカス属（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）の微生物を利用する汚染土壌や汚染水の浄化方法（特許文献２〜４）、アゾアーカス属（Ａｚｏａｒｃｕｓ）の微生物を利用する汚染された土壌、海洋、地下水、または廃水等の浄化方法（特許文献５）、ゴルドニア属（Ｇｏｒｄｏｎｉａ）に属する微生物を利用する環状炭化水素分解方法（特許文献６）、アシネトバクター属（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ）の微生物を利用する油脂分解処理方法（特許文献７）等の各種の微生物を利用する油分の処理方法が知られているが、やはりこのような方法にあっても、油分の分解能力および分解速度を充分に向上させることができないという問題があった。
油脂、鉱物油等の油分を含有する廃水等の油分含有物質を、その排出基準値にまで低減することを目的として、産業廃棄物としての処分が必要な汚泥等の発生を伴わずに、効果的で、かつ経済的に、油分含有物質中の油分を分解することができる油分分解剤、及び油分分解方法が求められている。
本発明は、このような問題点を解決するためになされたものであり、油分含有物質に含まれる油分を迅速かつ充分に分解でき、短期間で油分を分解することが可能な油分分解剤及び油分分解方法を提供することを目的とする。
本発明者らは、鋭意検討の結果、油分分解能力の高い微生物を用いて、さらにこの目的に好適な油分分解方法を採用することが重要であるとの結論に達し、上記の目的に合致した微生物を求めて、多様な土壌および水域の微生物を収集し、長期間の探索の末、油分含有物質に含まれる油分を積極的に資化し、分解しうる微生物を得、得られた微生物を用いて、油分含有物質に含まれる油分を分解することができることを見出し、本発明を完成した。
本発明者らは、鋭意検討の結果、油分分解能力の高い微生物を用いて、さらにこの目的に好適な油分分解方法を採用することが重要であるとの結論に達し、上記の目的に合致した微生物を求めて、多様な土壌および水域の微生物を収集し、長期間の探索の末、油分含有物質に含まれる油分を積極的に資化し、分解しうる微生物を得、得られた微生物を用いて、油分含有物質に含まれる油分を分解することができることを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は以下の態様を有する。
［１］ キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属に属し、２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列が、配列番号１で示される塩基配列、又は配列番号１で示される塩基配列と９０％以上の相同性を有する塩基配列であり、下記の菌学的性質を示し、塩分０〜５％（Ｗ／Ｖ）を含む環境下で油分分解活性を有することを特徴とする微生物。
（１）コロニー形態（ＹＭ寒天培地、２７℃、１週間培養）
色調：白色〜クリーム色
形：円形
***状態：周辺部は扁平で、中央部はクッション形
周縁：全縁
表面の形状：平滑
光沢及び性状：鈍光性、湿性
（２）生育温度：１２〜３７℃
（３）生育塩濃度：０〜５％（Ｗ／Ｖ）
（４）細胞形態観察
栄養細胞は楕円形〜卵形
増殖は出芽による
培養４週間で有性生殖器官の形成なし
［２］ 生理・生化学的性状試験において、下記の生理・生化学的性質を示す、［１］に記載の微生物。
（１）糖類発酵性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
マルトース −
スクロース ＋
トレハロース −
ラフィノース ＋
（２）炭素源資化性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
Ｌ−ソルボース −
Ｄ−グルコサミン −
Ｄ−リボース −
Ｄ−キシロース ＋
Ｌ−アラビノース −
Ｄ−アラビノース −
Ｌ−ラムノース −
スクロース ＋
マルトース ＋
トレハロース ＋
α−メチル−Ｄ−グルコシド ＋
セロビオース ＋
サリシン Ｌ
アルブチン Ｄ
メリビオース −
ラフィノース ＋
メレチトース ＋
イヌリン ＋
可溶性デンプン −
グリセロール ＋
エリスリトール −
リビトール（アドニトール） −
キシリトール −
Ｄ−グルシトール（ソルビトール） Ｌ
Ｄ−マンニトール Ｄ
ガラクチトール（ダルシトール） −
イノシトール −
スクシネート −
シトレート Ｄ
エタノール ＋
（３）窒素源資化性
硝酸塩 ＋
亜硝酸塩 ＋
Ｌ−リジン ＋
（４）耐性試験
２５℃での生育 ＋
３５℃での生育 ＋
４５℃での生育 −
０．０１％シクロヘキシミド −
５０％（Ｗ／Ｖ）Ｄ−グルコース −
１０％塩化ナトリウム／５％グルコース −
（５）ビタミン要求性試験
ビタミン非含有培地 ＋
（上記において、「＋」は陽性、「−」は陰性、「Ｌ（ｌａｔｅｎｔ）」は試験開始２週間以降に急速に陽性反応が認められたこと、「Ｄ（ｄｅｌａｙ）」は試験開始後１週間以上の時間をかけて徐々に陽性反応が認められたこと、をそれぞれ示す）
［３］ キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）に属する、［１］又は［２］に記載の微生物。
［４］ キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）ＭＣ７株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２８９４）。
［５］ ［１］〜［４］のいずれか一項に記載の微生物を含有する油分分解剤。
［６］ ［５］に記載の油分分解剤と油分含有物質とを接触させ、前記油分含有物質中の油分を分解することを特徴とする油分分解方法。
［７］ 前記油分含有物質が、油分含有廃水である［６］に記載の油分分解方法。
［１］ キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属に属し、２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列が、配列番号１で示される塩基配列、又は配列番号１で示される塩基配列と９０％以上の相同性を有する塩基配列であり、下記の菌学的性質を示し、塩分０〜５％（Ｗ／Ｖ）を含む環境下で油分分解活性を有することを特徴とする微生物。
（１）コロニー形態（ＹＭ寒天培地、２７℃、１週間培養）
色調：白色〜クリーム色
形：円形
***状態：周辺部は扁平で、中央部はクッション形
周縁：全縁
表面の形状：平滑
光沢及び性状：鈍光性、湿性
（２）生育温度：１２〜３７℃
（３）生育塩濃度：０〜５％（Ｗ／Ｖ）
（４）細胞形態観察
栄養細胞は楕円形〜卵形
増殖は出芽による
培養４週間で有性生殖器官の形成なし
［２］ 生理・生化学的性状試験において、下記の生理・生化学的性質を示す、［１］に記載の微生物。
（１）糖類発酵性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
マルトース −
スクロース ＋
トレハロース −
ラフィノース ＋
（２）炭素源資化性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
Ｌ−ソルボース −
Ｄ−グルコサミン −
Ｄ−リボース −
Ｄ−キシロース ＋
Ｌ−アラビノース −
Ｄ−アラビノース −
Ｌ−ラムノース −
スクロース ＋
マルトース ＋
トレハロース ＋
α−メチル−Ｄ−グルコシド ＋
セロビオース ＋
サリシン Ｌ
アルブチン Ｄ
メリビオース −
ラフィノース ＋
メレチトース ＋
イヌリン ＋
可溶性デンプン −
グリセロール ＋
エリスリトール −
リビトール（アドニトール） −
キシリトール −
Ｄ−グルシトール（ソルビトール） Ｌ
Ｄ−マンニトール Ｄ
ガラクチトール（ダルシトール） −
イノシトール −
スクシネート −
シトレート Ｄ
エタノール ＋
（３）窒素源資化性
硝酸塩 ＋
亜硝酸塩 ＋
Ｌ−リジン ＋
（４）耐性試験
２５℃での生育 ＋
３５℃での生育 ＋
４５℃での生育 −
０．０１％シクロヘキシミド −
５０％（Ｗ／Ｖ）Ｄ−グルコース −
１０％塩化ナトリウム／５％グルコース −
（５）ビタミン要求性試験
ビタミン非含有培地 ＋
（上記において、「＋」は陽性、「−」は陰性、「Ｌ（ｌａｔｅｎｔ）」は試験開始２週間以降に急速に陽性反応が認められたこと、「Ｄ（ｄｅｌａｙ）」は試験開始後１週間以上の時間をかけて徐々に陽性反応が認められたこと、をそれぞれ示す）
［３］ キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）に属する、［１］又は［２］に記載の微生物。
［４］ キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）ＭＣ７株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２８９４）。
［５］ ［１］〜［４］のいずれか一項に記載の微生物を含有する油分分解剤。
［６］ ［５］に記載の油分分解剤と油分含有物質とを接触させ、前記油分含有物質中の油分を分解することを特徴とする油分分解方法。
［７］ 前記油分含有物質が、油分含有廃水である［６］に記載の油分分解方法。
本発明によれば、油脂または鉱物油等の油分を含有する廃水等の油分含有物質を低コストかつ効率的に処理することができ、特に、塩含有廃水中の油分を低コストかつ効率的に処理することができる微生物、前記微生物を含む、油分によって汚染された河川、海洋、地下水又は土壌等の油分含有物質中の油分を分解できる油分分解剤、及び前記油分分解剤を用いる油分分解方法が提供される。
以下、本発明の実施形態を説明する。以下の実施形態は、本発明を説明するための単なる例示であって、本発明をこの実施の形態にのみ限定することは意図されない。本発明は、その趣旨を逸脱しない限り、様々な態様で実施することが可能である。
本明細書において、「油分」とは、有機性油状物質を意味し、油脂及び鉱物油を含む。
前記油脂とは、グリセリンと、１〜３個の脂肪酸とがエステル結合したグリセリドを含む物質を意味し、油脂の主要成分であるトリグリセリド（トリアシルグリセロール）のほか、ジグリセリド（ジアシルグリセロール）及びモノグリセリド（モノアシルグリセロール）を含んでいてもよい。また、前記油脂には、動植物性の油脂（動物油、植物油、魚油）のほか、動植物油由来のグリセリド以外の成分（例えば、植物ステロール、レシチン、抗酸化成分、色素成分等）が含まれてもよい。
前記油脂とは、グリセリンと、１〜３個の脂肪酸とがエステル結合したグリセリドを含む物質を意味し、油脂の主要成分であるトリグリセリド（トリアシルグリセロール）のほか、ジグリセリド（ジアシルグリセロール）及びモノグリセリド（モノアシルグリセロール）を含んでいてもよい。また、前記油脂には、動植物性の油脂（動物油、植物油、魚油）のほか、動植物油由来のグリセリド以外の成分（例えば、植物ステロール、レシチン、抗酸化成分、色素成分等）が含まれてもよい。
本発明の微生物は、特に、油脂を構成する成分のうち９５質量％以上はグリセリドである油脂を効率よく分解することができる。
また、前記鉱物油とは、原油を精製して得られる炭化水素類のことをいい、例えば、炭素数４〜１０の炭化水素類（例えば、ガソリン）、炭素数９〜１５の炭化水素類（例えば、灯油）、炭素数１０〜２０の炭化水素類（例えば、軽油）、炭素数１７以上の炭化水素類（例えば、重油）、及び、炭素数１５〜５０の炭化水素類（例えば、潤滑油（例えば、シェラテラスオイル、エンジンオイル））等が挙げられる。
ガソリンは、芳香族炭化水素類を多く含んでおり、灯油、軽油及び重油は、脂肪族炭化水素類を多く含んでいる。本発明の微生物は、特に、炭素数が２２〜３６の脂肪族炭化水素類が多く含まれている鉱物油を効率よく分解することができる。
ガソリンは、芳香族炭化水素類を多く含んでおり、灯油、軽油及び重油は、脂肪族炭化水素類を多く含んでいる。本発明の微生物は、特に、炭素数が２２〜３６の脂肪族炭化水素類が多く含まれている鉱物油を効率よく分解することができる。
（微生物）
本発明の微生物は、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属に属し、２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列が、配列番号１で示される塩基配列、又は配列番号１で示される塩基配列と９０％以上、好ましくは９５％以上、より好ましくは９８％以上、さらに好ましくは９９％以上の相同性を有する塩基配列であり、下記の菌学的性質を示し、塩分０〜５％（Ｗ／Ｖ）を含む環境下で油分分解活性を有することを特徴とする。
（１）コロニー形態（ＹＭ寒天培地、２７℃、１週間培養）
色調：白色〜クリーム色
形：円形
***状態：周辺部は扁平で、中央部はクッション形
周縁：全縁
表面の形状：平滑
光沢及び性状：鈍光性、湿性
（２）生育温度：１２〜３７℃
（３）生育ｐＨ：４．０〜９．０
（４）生育塩濃度：０〜５％（Ｗ／Ｖ）
（５）細胞形態観察
栄養細胞は楕円形〜卵形
増殖は出芽による
培養４週間で有性生殖器官の形成なし
本発明の微生物は、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属に属し、２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列が、配列番号１で示される塩基配列、又は配列番号１で示される塩基配列と９０％以上、好ましくは９５％以上、より好ましくは９８％以上、さらに好ましくは９９％以上の相同性を有する塩基配列であり、下記の菌学的性質を示し、塩分０〜５％（Ｗ／Ｖ）を含む環境下で油分分解活性を有することを特徴とする。
（１）コロニー形態（ＹＭ寒天培地、２７℃、１週間培養）
色調：白色〜クリーム色
形：円形
***状態：周辺部は扁平で、中央部はクッション形
周縁：全縁
表面の形状：平滑
光沢及び性状：鈍光性、湿性
（２）生育温度：１２〜３７℃
（３）生育ｐＨ：４．０〜９．０
（４）生育塩濃度：０〜５％（Ｗ／Ｖ）
（５）細胞形態観察
栄養細胞は楕円形〜卵形
増殖は出芽による
培養４週間で有性生殖器官の形成なし
塩基配列の相同性は、ＧｅｎＢａｎｋ／ＥＭＢＬ／ＤＤＢＪのデータベースを用いてＢＬＡＳＴ検索により求めることができる。
本発明の微生物は、ｐＨ４．０〜９．０の幅広いｐＨ域及び１２℃〜３７℃の幅広い温度域、塩濃度０〜５％（Ｗ／Ｖ）においても生育能力を示し、塩分０〜５％（Ｗ／Ｖ）を含む環境下で優れた油分分解活性を有する。
本発明の微生物としては、例えば、キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）属に属する微生物が挙げられる。
本発明の微生物としては、例えば、生理・生化学的性状試験において、下記の生理・生化学的性質を示す微生物が挙げられる。
尚、本発明において、生理・生化学的性状試験は、Kurtzman C. P., Fell J. W., Boekhout T. & Robert V. (2011). Methods for isolation, phenotypic characterization and maintenance of yeasts. In: Kurtzman C. P., Fell J. W. & Boekhout T. (eds.) The Yeasts, a taxonomic study, 5th edition. pp. 87-110, Elsevier, Amsterdam.に記載の方法を用いた。
＜生理・生化学的性状試験結果＞
（１）糖類発酵性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
マルトース −
スクロース ＋
トレハロース −
ラフィノース ＋
（２）炭素源資化性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
Ｌ−ソルボース −
Ｄ−グルコサミン −
Ｄ−リボース −
Ｄ−キシロース ＋
Ｌ−アラビノース −
Ｄ−アラビノース −
Ｌ−ラムノース −
スクロース ＋
マルトース ＋
トレハロース ＋
α−メチル−Ｄ−グルコシド ＋
セロビオース ＋
サリシン Ｌ
アルブチン Ｄ
メリビオース −
ラフィノース ＋
メレチトース ＋
イヌリン ＋
可溶性デンプン −
グリセロール ＋
エリスリトール −
リビトール（アドニトール） −
キシリトール −
Ｄ−グルシトール（ソルビトール） Ｌ
Ｄ−マンニトール Ｄ
ガラクチトール（ダルシトール） −
イノシトール −
スクシネート −
シトレート Ｄ
エタノール ＋
（３）窒素源資化性
硝酸塩 ＋
亜硝酸塩 ＋
Ｌ−リジン ＋
（４）耐性試験
２５℃での生育 ＋
３５℃での生育 ＋
４５℃での生育 −
０．０１％シクロヘキシミド −
５０％（Ｗ／Ｖ）Ｄ−グルコース −
１０％塩化ナトリウム／５％グルコース −
（５）ビタミン要求性試験
ビタミン非含有培地 ＋
（上記において、「＋」は陽性、「−」は陰性、「Ｌ（ｌａｔｅｎｔ）」は試験開始２週間以降に急速に陽性反応が認められたこと、「Ｄ（ｄｅｌａｙ）」は試験開始後１週間以上の時間をかけて徐々に陽性反応が認められたこと、をそれぞれ示す）
尚、本発明において、生理・生化学的性状試験は、Kurtzman C. P., Fell J. W., Boekhout T. & Robert V. (2011). Methods for isolation, phenotypic characterization and maintenance of yeasts. In: Kurtzman C. P., Fell J. W. & Boekhout T. (eds.) The Yeasts, a taxonomic study, 5th edition. pp. 87-110, Elsevier, Amsterdam.に記載の方法を用いた。
＜生理・生化学的性状試験結果＞
（１）糖類発酵性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
マルトース −
スクロース ＋
トレハロース −
ラフィノース ＋
（２）炭素源資化性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
Ｌ−ソルボース −
Ｄ−グルコサミン −
Ｄ−リボース −
Ｄ−キシロース ＋
Ｌ−アラビノース −
Ｄ−アラビノース −
Ｌ−ラムノース −
スクロース ＋
マルトース ＋
トレハロース ＋
α−メチル−Ｄ−グルコシド ＋
セロビオース ＋
サリシン Ｌ
アルブチン Ｄ
メリビオース −
ラフィノース ＋
メレチトース ＋
イヌリン ＋
可溶性デンプン −
グリセロール ＋
エリスリトール −
リビトール（アドニトール） −
キシリトール −
Ｄ−グルシトール（ソルビトール） Ｌ
Ｄ−マンニトール Ｄ
ガラクチトール（ダルシトール） −
イノシトール −
スクシネート −
シトレート Ｄ
エタノール ＋
（３）窒素源資化性
硝酸塩 ＋
亜硝酸塩 ＋
Ｌ−リジン ＋
（４）耐性試験
２５℃での生育 ＋
３５℃での生育 ＋
４５℃での生育 −
０．０１％シクロヘキシミド −
５０％（Ｗ／Ｖ）Ｄ−グルコース −
１０％塩化ナトリウム／５％グルコース −
（５）ビタミン要求性試験
ビタミン非含有培地 ＋
（上記において、「＋」は陽性、「−」は陰性、「Ｌ（ｌａｔｅｎｔ）」は試験開始２週間以降に急速に陽性反応が認められたこと、「Ｄ（ｄｅｌａｙ）」は試験開始後１週間以上の時間をかけて徐々に陽性反応が認められたこと、をそれぞれ示す）
本発明のキャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）属に属する微生物としては、例えば、キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）ＭＣ７株が挙げられる。キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）ＭＣ７株は、２０１９年２年２６日付で、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）（千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８）に受託番号ＮＩＴＥ Ｐ−０２８９４として国内寄託されている。
本発明の微生物は塩分を含む環境下でも油分分解活性を有し、例えば、塩濃度０〜５％（Ｗ／Ｖ）の環境下で油分分解活性を有する。
ここで、「油分分解活性を有する」とは、下記手順で測定した油分分解率が５％以上であることを言う。
手順１：ＳＣＤ培地（１５ｇ／Ｌカゼインペプトン、５ｇ／Ｌ大豆ペプトン、５ｇ／Ｌ塩化ナトリウム）５０ｍＬに、寒天プレート上の菌株を１白金耳またはグリセロールストック菌株を１００μＬ加え、３０℃で一晩、振とうし、前培養を行う。
手順２：塩分０％（Ｗ／Ｖ）の分解試験用培地（１０ｇ／Ｌ 鉱物油または油脂、１ｇ／Ｌコーンスティープリカー、０．５ｇ／Ｌ尿素）１５０ｍＬに、前培養液を１００μＬ加え、ｐＨ７、３０℃で２４時間振とうし、油分分解反応を行う。
手順３：ノルマルヘキサン抽出物質−重量法（ＪＩＳ Ｋ１０２）により、反応前後のノルマルヘキサン抽出物質濃度を測定し、反応前のノルマルヘキサン抽出物質濃度から、反応後のノルマルヘキサン抽出物質濃度を差し引き、反応前のノルマルヘキサン抽出物質濃度で除することにより、油分分解率を求める。
ここで、「油分分解活性を有する」とは、下記手順で測定した油分分解率が５％以上であることを言う。
手順１：ＳＣＤ培地（１５ｇ／Ｌカゼインペプトン、５ｇ／Ｌ大豆ペプトン、５ｇ／Ｌ塩化ナトリウム）５０ｍＬに、寒天プレート上の菌株を１白金耳またはグリセロールストック菌株を１００μＬ加え、３０℃で一晩、振とうし、前培養を行う。
手順２：塩分０％（Ｗ／Ｖ）の分解試験用培地（１０ｇ／Ｌ 鉱物油または油脂、１ｇ／Ｌコーンスティープリカー、０．５ｇ／Ｌ尿素）１５０ｍＬに、前培養液を１００μＬ加え、ｐＨ７、３０℃で２４時間振とうし、油分分解反応を行う。
手順３：ノルマルヘキサン抽出物質−重量法（ＪＩＳ Ｋ１０２）により、反応前後のノルマルヘキサン抽出物質濃度を測定し、反応前のノルマルヘキサン抽出物質濃度から、反応後のノルマルヘキサン抽出物質濃度を差し引き、反応前のノルマルヘキサン抽出物質濃度で除することにより、油分分解率を求める。
前記ノルマルヘキサン抽出物質−重量法によるノルマルヘキサン抽出物質濃度の測定は、具体的には、試料を微酸性とし、ノルマルヘキサンで抽出し、８０℃でノルマルヘキサンを揮発させて残留するノルマルヘキサン抽出物質の重量を求めることにより行うことができる。
本発明の微生物の油分分解率は、最大の油分分解率を示す温度条件下で、鉱物油に対する分解率として１０％以上が好ましく、１５％以上がより好ましく、２０％以上がさらに好ましい。
また、本発明の微生物の油分分解率は、最大の油分分解率を示す温度条件下で、油脂に対する分解率として２０％以上が好ましく、３０％以上がより好ましく、４０％以上がさらに好ましい。
また、本発明の微生物の油分分解率は、最大の油分分解率を示す温度条件下で、油脂に対する分解率として２０％以上が好ましく、３０％以上がより好ましく、４０％以上がさらに好ましい。
（油分分解剤）
本発明の油分分解剤は、本発明の微生物、又は本発明の微生物の処理物を含む。前記微生物の処理物としては、本発明の微生物の培養液を遠心分離等により集菌したものを、生理食塩水、培地等の媒体に懸濁し、凍結乾燥したもの等が例示される。
本発明の油分分解剤は、液体の形状でも固体の形状でもよい。液体形状のものとしては、微生物の培養液そのもの、微生物を遠心分離等により集菌したものを生理食塩水や培地等の媒体に再度分散させたもの等が例示される。固体形状のものは、例えば微生物の培養菌体を凍結乾燥したもの等が例示される。固形形状のものは、例えば、「産業用酵素、上島孝之著、丸善、１９９５年」等に記載の方法により、微生物を顆粒状にしたものであってもよい。また、微生物を各種担体に固定化したものであってもよい。
本発明の油分分解剤は、本発明の微生物、又は本発明の微生物の処理物を含む。前記微生物の処理物としては、本発明の微生物の培養液を遠心分離等により集菌したものを、生理食塩水、培地等の媒体に懸濁し、凍結乾燥したもの等が例示される。
本発明の油分分解剤は、液体の形状でも固体の形状でもよい。液体形状のものとしては、微生物の培養液そのもの、微生物を遠心分離等により集菌したものを生理食塩水や培地等の媒体に再度分散させたもの等が例示される。固体形状のものは、例えば微生物の培養菌体を凍結乾燥したもの等が例示される。固形形状のものは、例えば、「産業用酵素、上島孝之著、丸善、１９９５年」等に記載の方法により、微生物を顆粒状にしたものであってもよい。また、微生物を各種担体に固定化したものであってもよい。
本発明の油分分解剤は、油分含有物質を分解することができる。前記油分含有物質としては、油分を含有し、本発明の微生物で油分が分解することができる限り、特に制限はなく、例えば、油分含有水（廃水、河川水、地下水、海水等）、油分含有土壌、油分を含有する産業廃棄物等が挙げられるが、油分含有廃水が好ましい。
（油分分解方法）
本発明の油分分解方法は、本発明の油分分解剤と前記油分含有物質とを接触させ、前記油分含有物質中の油分を分解する方法である。前記油分含有物質に、本発明の油分分解剤を接触させる方法としては、本発明の油分分解剤と前記油分含有物質とを直接接触させる方法、本発明の油分分解剤を、前記油分含有物質に添加して、前記油分分解剤中の微生物を培養する方法、本発明の油分分解剤中の微生物を前培養し、得られた培養液を、前記油分含有物質に添加する方法、本発明の油分分解剤中の微生物を前培養し、得られた培養液を、前記油分含有物質に添加して、前記微生物を培養する方法等が挙げられる。
本発明の油分分解剤と前記油分含有物質との接触は、好気的条件下で行うことが好ましい。
本発明の油分分解方法は、本発明の油分分解剤と前記油分含有物質とを接触させ、前記油分含有物質中の油分を分解する方法である。前記油分含有物質に、本発明の油分分解剤を接触させる方法としては、本発明の油分分解剤と前記油分含有物質とを直接接触させる方法、本発明の油分分解剤を、前記油分含有物質に添加して、前記油分分解剤中の微生物を培養する方法、本発明の油分分解剤中の微生物を前培養し、得られた培養液を、前記油分含有物質に添加する方法、本発明の油分分解剤中の微生物を前培養し、得られた培養液を、前記油分含有物質に添加して、前記微生物を培養する方法等が挙げられる。
本発明の油分分解剤と前記油分含有物質との接触は、好気的条件下で行うことが好ましい。
本発明の油分分解剤と油分含有物質とを接触させる際のｐＨは、特に制限はないが、ｐＨ４．０〜９．０が好ましく、ｐＨ４．０〜８．０がより好ましく、ｐＨ４．０〜６．０がさらに好ましく、ｐＨ５．０が特に好ましい。
本発明の油分分解剤と油分分解物質とを接触させる際の温度は、特に制限はないが、１２〜３７℃が好ましく、１５〜３５℃がより好ましく、２５〜３５℃がさらに好ましく、３０℃が特に好ましい。
本発明の油分分解剤と油分含有物質とを接触させる際の、油分分解剤の量は、特に制限はないが、例えば、微生物の生菌数として、１０７〜１０９個／ｍL程度となる量である。
本発明の油分分解剤と油分含有物質とを接触させる時間は、特に制限はないが、１時間〜１６８時間が好ましく、２４時間〜９６時間がより好ましく、４８時間〜７２時間がさらに好ましい。
本発明の油分分解剤と油分分解物質とを接触させる際の温度は、特に制限はないが、１２〜３７℃が好ましく、１５〜３５℃がより好ましく、２５〜３５℃がさらに好ましく、３０℃が特に好ましい。
本発明の油分分解剤と油分含有物質とを接触させる際の、油分分解剤の量は、特に制限はないが、例えば、微生物の生菌数として、１０７〜１０９個／ｍL程度となる量である。
本発明の油分分解剤と油分含有物質とを接触させる時間は、特に制限はないが、１時間〜１６８時間が好ましく、２４時間〜９６時間がより好ましく、４８時間〜７２時間がさらに好ましい。
以下、実施例及び比較例を示して、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定されるものではない。
（実施例１）
＜ＭＣ７株の分離＞
Ｌ字型試験管に無機培地［（ＮＨ４）２ＳＯ４、ＮａＮＯ３、及びＫ２ＨＰＯ４を任意の割合で混合後、１０μｍのフィルターで沈殿物を濾過したもの］１０ｍＬ、油脂として菜種油１０μＬ、及び汚泥１ｇを加え、懸濁するまで３０℃で斜方振とう培養した。得られた懸濁液を１００μＬ分取して、同様に無機培地１０ｍＬと、菜種油１０μＬとを加えたＬ字試験管に添加し、無機培地が懸濁するまで振とう培養した。この操作を６回繰り返した後、寒天平板培地へ段階的に希釈した懸濁液１００μＬを滴下し、コンラージ棒で塗沫して３０℃で２４時間培養した。なお、寒天培地は菜種油を塗布した無機寒天培地を用い、これらの培地上にコロニーが適度に形成された培養シャーレを選び、形状の整ったコロニーを新たなＬＢ寒天培地に取り分けて菌体を分離した。このような方法を用いて油脂分解活性を有する菌株を５０株取得した。
＜ＭＣ７株の分離＞
Ｌ字型試験管に無機培地［（ＮＨ４）２ＳＯ４、ＮａＮＯ３、及びＫ２ＨＰＯ４を任意の割合で混合後、１０μｍのフィルターで沈殿物を濾過したもの］１０ｍＬ、油脂として菜種油１０μＬ、及び汚泥１ｇを加え、懸濁するまで３０℃で斜方振とう培養した。得られた懸濁液を１００μＬ分取して、同様に無機培地１０ｍＬと、菜種油１０μＬとを加えたＬ字試験管に添加し、無機培地が懸濁するまで振とう培養した。この操作を６回繰り返した後、寒天平板培地へ段階的に希釈した懸濁液１００μＬを滴下し、コンラージ棒で塗沫して３０℃で２４時間培養した。なお、寒天培地は菜種油を塗布した無機寒天培地を用い、これらの培地上にコロニーが適度に形成された培養シャーレを選び、形状の整ったコロニーを新たなＬＢ寒天培地に取り分けて菌体を分離した。このような方法を用いて油脂分解活性を有する菌株を５０株取得した。
続いて、Ｌ字型試験管に無機培地１０ｍＬ、鉱物油としてシェルテラスオイルＣ（昭和シェル石油社製）を１０μＬ、前記５０株のコロニーをそれぞれ加え、３０℃で斜方振とう培養した。シェルテラスオイルＣは、９７質量％以上の基油と３質量％以下の添加剤で構成されている工業用潤滑油である。５０株のうち、懸濁がみられた１株について、懸濁液を１００μＬ分取して、同様に無機培地１０ｍＬ、シェルテラスオイルＣを１０μＬ加えたＬ字試験管に添加し、無機培地が懸濁するまで振とう培養した。この操作を６回繰り返した後、寒天平板培地へ段階的に希釈した懸濁液１００μＬを滴下し、コンラージ棒で塗沫して３０℃で２４時間培養した。なお、寒天培地はシェルテラスオイルＣを塗布した無機寒天培地を用い、これらの培地上にコロニーが適度に形成された培養シャーレを選び、形状の整ったコロニーを新たなＬＢ寒天培地に取り分けて菌体を分離した。このようにして分離された菌株をＭＣ７株と命名した。
＜ＭＣ７株の同定＞
上記で得られたＭＣ７株について、２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列解析を行った。なお、ＰＣＲ増幅はＩＴＳ５及びＮＬ４プライマーを用いてターゲット領域のＤＮＡを増幅した後、シークエンスはＮＬ１、ＮＬ４プライマーを用いて増幅し、塩基配列を決定した。決定されたＭＣ７株の２６Ｓ ｒＤＮＡは、配列番号１で示される塩基配列からなることが確認された。
得られた塩基配列を、国際塩基配列データベース（ＤＤＢＪ／ＥＭＢＬ／ＧｅｎＢａｎｋ）に対するＢＬＡＳＴ相同検索を行った結果、ＭＣ７株の２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列は、子嚢菌系酵母の一種であるＣａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ ＣＢＳ １０８４５Ｔに対し、相同率１００％の相同性を示した。相同性検索で得られた塩基配列を基に解析した分子系統樹を図１に示す。この分子系統樹において、ＭＣ７株は、Ｃａｎｄｉｄａ属及びＣｙｂｅｒｌｎｄｎｅｒａ属で構成される系統群に含まれ、キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ） ＣＢＳ １０８４５Ｔ（アクセッション番号ＥＵ０４３１５８）と同一の分子系統学的位置を示した。以上のことから、ＭＣ７株は、キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）に帰属すると推定された。
上記で得られたＭＣ７株について、２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列解析を行った。なお、ＰＣＲ増幅はＩＴＳ５及びＮＬ４プライマーを用いてターゲット領域のＤＮＡを増幅した後、シークエンスはＮＬ１、ＮＬ４プライマーを用いて増幅し、塩基配列を決定した。決定されたＭＣ７株の２６Ｓ ｒＤＮＡは、配列番号１で示される塩基配列からなることが確認された。
得られた塩基配列を、国際塩基配列データベース（ＤＤＢＪ／ＥＭＢＬ／ＧｅｎＢａｎｋ）に対するＢＬＡＳＴ相同検索を行った結果、ＭＣ７株の２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列は、子嚢菌系酵母の一種であるＣａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ ＣＢＳ １０８４５Ｔに対し、相同率１００％の相同性を示した。相同性検索で得られた塩基配列を基に解析した分子系統樹を図１に示す。この分子系統樹において、ＭＣ７株は、Ｃａｎｄｉｄａ属及びＣｙｂｅｒｌｎｄｎｅｒａ属で構成される系統群に含まれ、キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ） ＣＢＳ １０８４５Ｔ（アクセッション番号ＥＵ０４３１５８）と同一の分子系統学的位置を示した。以上のことから、ＭＣ７株は、キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）に帰属すると推定された。
以下に、ＭＣ７株の菌学的性質を示す。
（１）コロニー形態（ＹＭ寒天培地、２７℃、１週間培養）
色調：白色〜クリーム色
形：円形
***状態：周辺部は扁平で、中央部はクッション形
周縁：全縁
表面の形状：平滑
光沢及び性状：鈍光性、湿性
（２）生育温度：１２〜３７℃（至適温度：３０℃）
（３）生育ｐＨ：４．０〜９．０（至適ｐＨ：５．０）
（４）生育塩濃度：０〜５％（Ｗ／Ｖ）
（５）細胞形態観察
栄養細胞は楕円形〜卵形
増殖は出芽による
培養４週間で有性生殖器官の形成なし
（１）コロニー形態（ＹＭ寒天培地、２７℃、１週間培養）
色調：白色〜クリーム色
形：円形
***状態：周辺部は扁平で、中央部はクッション形
周縁：全縁
表面の形状：平滑
光沢及び性状：鈍光性、湿性
（２）生育温度：１２〜３７℃（至適温度：３０℃）
（３）生育ｐＨ：４．０〜９．０（至適ｐＨ：５．０）
（４）生育塩濃度：０〜５％（Ｗ／Ｖ）
（５）細胞形態観察
栄養細胞は楕円形〜卵形
増殖は出芽による
培養４週間で有性生殖器官の形成なし
ＭＣ７株は、生理・生化学的性状試験において、以下の生理・生化学的性質を示す。
＜生理・生化学的性状試験結果＞
（１）糖類発酵性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
マルトース −
スクロース ＋
トレハロース −
ラフィノース ＋
（２）炭素源資化性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
Ｌ−ソルボース −
Ｄ−グルコサミン −
Ｄ−リボース −
Ｄ−キシロース ＋
Ｌ−アラビノース −
Ｄ−アラビノース −
Ｌ−ラムノース −
スクロース ＋
マルトース ＋
トレハロース ＋
α−メチル−Ｄ−グルコシド ＋
セロビオース ＋
サリシン Ｌ
アルブチン Ｄ
メリビオース −
ラフィノース ＋
メレチトース ＋
イヌリン ＋
可溶性デンプン −
グリセロール ＋
エリスリトール −
リビトール（アドニトール） −
キシリトール −
Ｄ−グルシトール（ソルビトール） Ｌ
Ｄ−マンニトール Ｄ
ガラクチトール（ダルシトール） −
イノシトール −
スクシネート −
シトレート Ｄ
エタノール ＋
（３）窒素源資化性
硝酸塩 ＋
亜硝酸塩 ＋
Ｌ−リジン ＋
（４）耐性試験
２５℃での生育 ＋
３５℃での生育 ＋
４５℃での生育 −
０．０１％シクロヘキシミド −
５０％（Ｗ／Ｖ）Ｄ−グルコース −
１０％塩化ナトリウム／５％グルコース −
（５）ビタミン要求性試験
ビタミン非含有培地 ＋
（上記において、「＋」は陽性、「−」は陰性、「Ｌ（ｌａｔｅｎｔ）」は試験開始２週間以降に急速に陽性反応が認められたこと、「Ｄ（ｄｅｌａｙ）」は試験開始後１週間以上の時間をかけて徐々に陽性反応が認められたこと、をそれぞれ示す）
＜生理・生化学的性状試験結果＞
（１）糖類発酵性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
マルトース −
スクロース ＋
トレハロース −
ラフィノース ＋
（２）炭素源資化性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
Ｌ−ソルボース −
Ｄ−グルコサミン −
Ｄ−リボース −
Ｄ−キシロース ＋
Ｌ−アラビノース −
Ｄ−アラビノース −
Ｌ−ラムノース −
スクロース ＋
マルトース ＋
トレハロース ＋
α−メチル−Ｄ−グルコシド ＋
セロビオース ＋
サリシン Ｌ
アルブチン Ｄ
メリビオース −
ラフィノース ＋
メレチトース ＋
イヌリン ＋
可溶性デンプン −
グリセロール ＋
エリスリトール −
リビトール（アドニトール） −
キシリトール −
Ｄ−グルシトール（ソルビトール） Ｌ
Ｄ−マンニトール Ｄ
ガラクチトール（ダルシトール） −
イノシトール −
スクシネート −
シトレート Ｄ
エタノール ＋
（３）窒素源資化性
硝酸塩 ＋
亜硝酸塩 ＋
Ｌ−リジン ＋
（４）耐性試験
２５℃での生育 ＋
３５℃での生育 ＋
４５℃での生育 −
０．０１％シクロヘキシミド −
５０％（Ｗ／Ｖ）Ｄ−グルコース −
１０％塩化ナトリウム／５％グルコース −
（５）ビタミン要求性試験
ビタミン非含有培地 ＋
（上記において、「＋」は陽性、「−」は陰性、「Ｌ（ｌａｔｅｎｔ）」は試験開始２週間以降に急速に陽性反応が認められたこと、「Ｄ（ｄｅｌａｙ）」は試験開始後１週間以上の時間をかけて徐々に陽性反応が認められたこと、をそれぞれ示す）
ＭＣ７株の菌学的性質は、キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）の特徴にほぼ一致していた。ＭＣ７株の生理・生化学的性質と、公知のキャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）の生理・生化学的性質（Chen B., HuangX., Zheng J.-W., Li S.-P. & He J. (2009). Candida mengyuniae sp. nov., a metsulfuronmethyl-resistant yeast. Int J Syst Envol Microbiol 59, 1237-1241.）とを比較した結果、ガラクトース、マルトース、セロビオース、サリシン、アルブチン、メリビオース、及びメレチトースの資化性、４５℃での耐性試験、及び１０％塩化ナトリウム／５％グルコースでの生育性に相違が認められたが、その他の項目については、公知のキャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）と類似した生理・生化学的性質を示した。
上記の２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列解析、菌学的性質及び生理・生化学的性質から、ＭＣ７株は、キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）と同定されたが、ＭＣ７株は、下記実施例２、３及び比較例１に示すように、従来のキャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属に属する微生物と比較して、優れた油分分解活性を有することから、新規微生物と判断された。
（実施例２）
＜ＭＣ７株を用いた鉱物油の分解＞
３００ｍＬ三角フラスコにＳＣＤ培地（１５ｇ／Ｌカゼインペプトン、５ｇ／Ｌ大豆ペプトン、５ｇ／Ｌ塩化ナトリウム）５０ｍＬと寒天プレート上のＭＣ７株を１白金耳加え、３０℃で一晩、振とうし、前培養を行った。油分分解試験は、５００ｍＬ三角フラスコに分解試験用培地（１０ｇ／Ｌ シェルテラスオイルＣ、１ｇ／Ｌ コーンスティープリカー、０．５ｇ／Ｌ 尿素）１５０ｍＬ、及び前培養液１００μＬ加え、所定のｐＨ、温度で振とうした。ｐＨ７にて１５℃〜３５℃で２４時間分解を行った結果を図２に示す。ＭＣ７株は、３０℃にて最大の分解率２３％を示した。また、３０℃にてｐＨ４〜８で２４時間分解を行った結果を図３に示す。ＭＣ７株は、ｐＨ５において最大の分解率２９％を示した。
＜ＭＣ７株を用いた鉱物油の分解＞
３００ｍＬ三角フラスコにＳＣＤ培地（１５ｇ／Ｌカゼインペプトン、５ｇ／Ｌ大豆ペプトン、５ｇ／Ｌ塩化ナトリウム）５０ｍＬと寒天プレート上のＭＣ７株を１白金耳加え、３０℃で一晩、振とうし、前培養を行った。油分分解試験は、５００ｍＬ三角フラスコに分解試験用培地（１０ｇ／Ｌ シェルテラスオイルＣ、１ｇ／Ｌ コーンスティープリカー、０．５ｇ／Ｌ 尿素）１５０ｍＬ、及び前培養液１００μＬ加え、所定のｐＨ、温度で振とうした。ｐＨ７にて１５℃〜３５℃で２４時間分解を行った結果を図２に示す。ＭＣ７株は、３０℃にて最大の分解率２３％を示した。また、３０℃にてｐＨ４〜８で２４時間分解を行った結果を図３に示す。ＭＣ７株は、ｐＨ５において最大の分解率２９％を示した。
（実施例３）
＜ＭＣ７株を用いた油脂の分解＞
３００ｍＬ三角フラスコにＳＣＤ培地（１５ｇ／Ｌカゼインペプトン、５ｇ／Ｌ大豆ペプトン、５ｇ／Ｌ塩化ナトリウム）５０ｍＬと寒天プレート上のＭＣ７株を１白金耳加え、３０℃で一晩、振とうし、前培養を行った。油分分解試験は、５００ｍＬ三角フラスコに分解試験用培地（１０ｇ／Ｌ 菜種油、１ｇ／Ｌコーンスティープリカー、０．５ｇ／Ｌ尿素）１５０ｍＬ、及び前培養液１００μＬ加え、所定のｐＨ、温度で振とうした。ｐＨ７にて１５℃〜３５℃で２４時間分解を行った結果を図４に示す。ＭＣ７株は、３０℃にて最大の分解率５４％を示した。また、３０℃にてｐＨ４〜８で２４時間分解を行った結果を図５に示す。ＭＣ７株は、ｐＨ５において最大の分解率６７％を示した。
＜ＭＣ７株を用いた油脂の分解＞
３００ｍＬ三角フラスコにＳＣＤ培地（１５ｇ／Ｌカゼインペプトン、５ｇ／Ｌ大豆ペプトン、５ｇ／Ｌ塩化ナトリウム）５０ｍＬと寒天プレート上のＭＣ７株を１白金耳加え、３０℃で一晩、振とうし、前培養を行った。油分分解試験は、５００ｍＬ三角フラスコに分解試験用培地（１０ｇ／Ｌ 菜種油、１ｇ／Ｌコーンスティープリカー、０．５ｇ／Ｌ尿素）１５０ｍＬ、及び前培養液１００μＬ加え、所定のｐＨ、温度で振とうした。ｐＨ７にて１５℃〜３５℃で２４時間分解を行った結果を図４に示す。ＭＣ７株は、３０℃にて最大の分解率５４％を示した。また、３０℃にてｐＨ４〜８で２４時間分解を行った結果を図５に示す。ＭＣ７株は、ｐＨ５において最大の分解率６７％を示した。
（比較例１）
３００ｍＬ三角フラスコにＳＣＤ培地（１５ｇ／Ｌカゼインペプトン、５ｇ／Ｌ大豆ペプトン、５ｇ／Ｌ塩化ナトリウム）５０ｍＬと寒天プレート上のキャンディダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ）ＡＴＣＣ９００２９株を１白金耳加え、３０℃で一晩、振とうし、前培養を行った。鉱物油分解試験は実施例２と同様の方法により行い、油脂分解試験は、実施例３と同様の方法により行った。油脂に対してｐＨ７にて１５℃〜３５℃で２４時間分解を行った結果を図６に示す。また、鉱物油に対して、３０℃にてｐＨ４〜８で２４時間分解を行った結果を図７に示す。いずれの油分に対しても、キャンディダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ）ＡＴＣＣ９００２９株の分解率は、ＭＣ７株の分解率よりも劣っていた。
３００ｍＬ三角フラスコにＳＣＤ培地（１５ｇ／Ｌカゼインペプトン、５ｇ／Ｌ大豆ペプトン、５ｇ／Ｌ塩化ナトリウム）５０ｍＬと寒天プレート上のキャンディダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ）ＡＴＣＣ９００２９株を１白金耳加え、３０℃で一晩、振とうし、前培養を行った。鉱物油分解試験は実施例２と同様の方法により行い、油脂分解試験は、実施例３と同様の方法により行った。油脂に対してｐＨ７にて１５℃〜３５℃で２４時間分解を行った結果を図６に示す。また、鉱物油に対して、３０℃にてｐＨ４〜８で２４時間分解を行った結果を図７に示す。いずれの油分に対しても、キャンディダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ）ＡＴＣＣ９００２９株の分解率は、ＭＣ７株の分解率よりも劣っていた。
本発明の微生物は、油分に対して高い分解能を有する。また、本発明の微生物は、幅広い温度域、ｐＨ域、高塩濃度において増殖可能である。したがって、本発明の微生物及び本発明の微生物を含有する油分分解剤によれば、油分含有廃水等の油分含有物質中の油分を効率的に分解することができる。
Claims (7)
- キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属に属し、２６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列が、配列番号１で示される塩基配列、又は配列番号１で示される塩基配列と９０％以上の相同性を有する塩基配列であり、下記の菌学的性質を示し、塩分０〜５％（Ｗ／Ｖ）を含む環境下で油分分解活性を有することを特徴とする微生物。
（１）コロニー形態（ＹＭ寒天培地、２７℃、１週間培養）
色調：白色〜クリーム色
形：円形
***状態：周辺部は扁平で、中央部はクッション形
周縁：全縁
表面の形状：平滑
光沢及び性状：鈍光性、湿性
（２）生育温度：１２〜３７℃
（３）生育ｐＨ：４．０〜９．０
（４）生育塩濃度：０〜５％（Ｗ／Ｖ）
（５）細胞形態観察
栄養細胞は楕円形〜卵形
増殖は出芽による
培養４週間で有性生殖器官の形成なし - 生理・生化学的性状試験において、下記の生理・生化学的性質を示す、請求項１に記載の微生物。
（１）糖類発酵性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
マルトース −
スクロース ＋
トレハロース −
ラフィノース ＋
（２）炭素源資化性試験
グルコース ＋
ガラクトース −
Ｌ−ソルボース −
Ｄ−グルコサミン −
Ｄ−リボース −
Ｄ−キシロース ＋
Ｌ−アラビノース −
Ｄ−アラビノース −
Ｌ−ラムノース −
スクロース ＋
マルトース ＋
トレハロース ＋
α−メチル−Ｄ−グルコシド ＋
セロビオース ＋
サリシン Ｌ
アルブチン Ｄ
メリビオース −
ラフィノース ＋
メレチトース ＋
イヌリン ＋
可溶性デンプン −
グリセロール ＋
エリスリトール −
リビトール（アドニトール） −
キシリトール −
Ｄ−グルシトール（ソルビトール） Ｌ
Ｄ−マンニトール Ｄ
ガラクチトール（ダルシトール） −
イノシトール −
スクシネート −
シトレート Ｄ
エタノール ＋
（３）窒素源資化性
硝酸塩 ＋
亜硝酸塩 ＋
Ｌ−リジン ＋
（４）耐性試験
２５℃での生育 ＋
３５℃での生育 ＋
４５℃での生育 −
０．０１％シクロヘキシミド −
５０％（Ｗ／Ｖ）Ｄ−グルコース −
１０％塩化ナトリウム／５％グルコース −
（５）ビタミン要求性試験
ビタミン非含有培地 ＋
（上記において、「＋」は陽性、「−」は陰性、「Ｌ」は試験開始２週間以降に急速に陽性反応が認められたこと、「Ｄ」は試験開始後１週間以上の時間をかけて徐々に陽性反応が認められたこと、をそれぞれ示す） - キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）に属する、請求項１又は２に記載の微生物。
- キャンディダ・メンギュニエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍｅｎｇｙｕｎｉａｅ）ＭＣ７株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２８９４）。
- 請求項１〜４のいずれか一項に記載の微生物を含有する油分分解剤。
- 請求項５に記載の油分分解剤と油分含有物質とを接触させ、前記油分含有物質中の油分を分解することを特徴とする油分分解方法。
- 前記油分含有物質が、油分含有廃水である請求項６に記載の油分分解方法。
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