JP2019062904A - 未成熟な単球性樹状細胞の活性化を誘導するための組成物および方法 - Google Patents

Abstract

【課題】未成熟樹状細胞（ＤＣ）の成熟を誘導する方法、および樹状細胞成熟因子を使用しないで、未成熟樹状細胞を活性化する方法の提供。【解決手段】組織培養基質と未成熟樹状細胞の付着、および該活性化された樹状細胞の成熟に十分な時間での該樹状細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏ培養に適した条件下で、未成熟樹状細胞の富化された集団を含む細胞集団を、組織培養基質および樹状細胞分化因子を有する培地と接触させる工程を含む方法で、所定の抗原が、前記組織培養基質と接触される前に、接触すると同時に、または接触後に前記細胞集団と接触される、活性化された樹状細胞の富化された集団を含む細胞集団を産生するための方法。本方法は、インターフェロンガンマなどの指向性成熟因子の添加を含むこともできる。同様に、活性化された抗原特異的Ｔ細胞集団の作製方法。【選択図】なし

Description

（関連出願）
この出願は、米国仮出願第６０／７４８，８８５号（この全体が、参考として本明細書に援用される）に対する優先権を主張する。

（発明の背景）
抗原提示細胞（ＡＰＣ）は、有効な免疫応答を誘発するのに重要である。これらの細胞は、抗原特異的Ｔ細胞受容体を有するＴ細胞に抗原を提示するだけでなく、Ｔ細胞の活性化に必要なシグナルも提示する。これらのシグナルはまだ完全には解明されていないが、種々の細胞表面分子ならびにサイトカインまたは成長因子が関与している。ナイーブＴ細胞の活性化および分極化に必要な因子は、記憶Ｔ細胞の再活性化に必要とされる因子と異なる可能性がある。抗原提示およびＴ細胞活性化シグナル伝達の両方を行うＡＰＣの機能は、一般にアクセサリー細胞機能と呼ばれる。単球およびＢ細胞がコンピテントなＡＰＣであることが示されたにもかかわらず、ｉｎ ｖｉｔｒｏでのこれらの細胞の抗原提示能力は、既に感作されたＴ細胞の再活性化に限定されるようである。したがって、単球およびＢ細胞は機能的にナイーブであるかまたは未感作のＴ細胞集団を直接に活性化することができない。またこれらの細胞は、誘導された免疫応答または誘導される免疫応答を分極化できるシグナルを伝達できない。

樹状細胞（ＤＣ）は、ナイーブＴ細胞および記憶Ｔ細胞の両方を活性化できると考えられている免疫系の専門的な抗原提示細胞である。樹状細胞は免疫療法で、特に癌の免疫療法で使用するために、ｅｘ ｖｉｖｏで次第に調製されるようになってきている。最適な免疫賦活性特性を有する樹状細胞の調製には、ｅｘ ｖｉｖｏでの培養に関するこれらの細胞の生物学の知識と活用が必要である。それぞれのプロトコルに基づく、種々の利点を有するこれらの細胞培養に関する種々のプロトコルが記載されている。最新のプロトコルには、無血清培地の使用および所望の免疫賦活性特性を培養細胞に与える成熟条件の使用が含まれる。

樹状細胞の活性化は、皮膚ランゲルハンス細胞に表現型が類似する未成熟ＤＣを、リンパ節に遊走できる成熟した抗原提示細胞に転換する過程を開始する。この過程は、未成熟樹状細胞を特徴づける強力な抗原取り込み能力の徐々で進行性の喪失、ならびに共刺激細胞表面分子および種々のサイトカイン発現のアップレギュレーションを生じる。種々の刺激はＤＣの成熟を開始することができる。この過程は複雑で完成まで少なくともｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて４８時間もかかることがある。もう１つの他の成熟の結果は、ｉｎ ｖｉｖｏにおける細胞の遊走特性の変化である。たとえば成熟は流入領域リンパ節のＴ細胞領域に細胞を導くＣＣＲ７を含むいくつかのケモカイン受容体を誘導し、ここで成熟ＤＣはクラスＩおよびクラスＩＩ ＭＨＣ分子に関連してＤＣ表面上に提示された抗原に対してＴ細胞を活性化する。用語「活性化」および「成熟」、ならびに「活性化された」および「成熟している」とは、未成熟ＤＣ（抗原を取り込む能力により部分的に特徴づけられる）から、成熟ＤＣ（新規のＴ細胞応答を効果的に刺激する能力により、部分的に特徴づけられる）への移行を誘導して完了する過程を記載する。この用語は典型的には、当該技術分野で相互に交換可能に使用される。

既知の成熟化プロトコル（ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ ｐｒｏｔｏｃｏｌ）は、抗原に曝露中または曝露後にＤＣが遭遇すると考えられているｉｎ ｖｉｖｏの環境に基づいている。この方法の最も良い例は、細胞培養培地として単球馴化培地（ＭＣＭ）を用いることである。ＭＣＭは単球を培養することによりｉｎ ｖｉｔｒｏで作成され、成熟因子の供給源として使用される。（たとえば、特許文献１を参照のこと、これは参考として本明細書に援用される。）成熟に関与するＭＣＭの主要な成分は、（プロ）炎症性サイトカインインターロイキン１ベータ（ＩＬ−１β）、インターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）であることが報告されている。

したがってＤＣの成熟は、多数のシグナル伝達経路を介して作用する多数の異なる因子により誘発される。したがって単一の成熟経路または単一の結果は存在しないが、それぞれそれ自体が異なった機能的特徴を有する多数の成熟ＤＣ段階が実際に存在する。概念的には、免疫系が応答しなければならない身体に対する種々の脅威は多種多様であり、種々の攻撃戦略を必要とするのでこれは道理にかなっている。一例として、細菌感染は特異的抗体で補充された活性化されたマクロファージにより良好に除去されるが、ウイルス感染症は事実上ウイルス感染細胞を殺傷する細胞障害性Ｔ細胞により良好に攻撃される。癌細胞の殺傷には典型的には細胞障害性Ｔ細胞、ナチュラルキラー細胞および抗体の組合せが含まれる。

したがって、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるＤＣの成熟は、免疫系を誘導して別のタイプの免疫応答よりも１つのタイプの免疫応答を好むように、すなわち免疫応答を分極化させるように設計できる。ＤＣの指向性の成熟とは、成熟過程の結果が成熟したＤＣを用いた処置によって生ずる後に続く免疫応答のタイプを指令する概念を説明する。その最も単純な形態では、指向性の成熟はＴｈ１−タイプまたはＴｈ２−タイプの応答のいずれかに分極化したＴ細胞応答を指示するサイトカインを産生するＤＣ集団を生じる。ＤＣは９つまでの異なるＴｏｌｌ様受容体（ＴＬＲ１〜ＴＬＲ９）を発現し、これらの各々は成熟を誘発するために用いることができる。意外ではないがＴＬＲ２およびＴＬＲ４と細菌産物との相互作用は、ＤＣの指向性成熟を生じ、細菌感染に対処するのに最も適切な分極化した応答を生じる。これとは反対にＴＬＲ７またはＴＬＲ９により誘発された成熟は、さらに抗ウイルスタイプの応答を生じるようである。さらに別の例として、インターフェロンガンマ（ＩＦＮ−γ）を大部分の成熟化プロトコルへ添加することにより、成熟ＤＣによるインターロイキン１２の産生を引き起こし、これはＴｈ１−タイプの応答を指令する。これとは反対に、プロスタグランジンＥ２の含有は逆の効果を有する。

したがって活性化されたＤＣの指向性成熟に用いることができる因子は、たとえばインターロイキン１ベータ（ＩＬ−１β）、インターロイキン６（ＩＬ−６）、および腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）を含むことができる。他の成熟因子には、プロスタグランジンＥ２（ＰＧＥ２）、ポリｄＩｄＣ、血管作働性腸管ペプチド（ＶＩＰ）、細菌性リポ多糖（ＬＰＳ）、ならびにマイコバクテリアまたは特異的な細胞壁構成要素などのマイコバクテリア成分が含まれる。別の成熟因子には、たとえばイミダゾキノリン化合物、たとえばイミダゾキノリン−４−アミン化合物、たとえば４−アミノ−２−エトキシメチルα、α−ジメチル−１Ｈ−イミダゾール［４，５−ｃ］キノリン−１−エタノール（Ｒ８４８と呼ばれる）または１−（２−メチルプロピル）−１Ｈ−イミダゾ［４，５−ｃ］キノリン−４−アミン、およびこれらの誘導体（特許文献２、その開示全体が参考として本明細書中に援用される）、合成二重鎖ポリリボヌクレオチド、たとえば、ｐｏｌｙ［Ｉ］：ｐｏｌｙ［Ｃ（１２）Ｕ］などＴｏｌｌ様受容体（ＴＬＲ）のアゴニスト、たとえばＴＬＲ３、ＴＬＲ４、ＴＬＲ７および／またはＴＬＲ９、ＤＣの成熟を誘導することが知られているメチル化されていないＣｐＧのモティーフを含む核酸の配列などが含まれる。さらに上記のいずれかの因子の組合せを樹状前駆細胞の成熟の誘導に使用できる。

完全に成熟した樹状細胞は、定性的にも定量的にも未成熟ＤＣとは異なっている。一旦完全には成熟すると、ＤＣはＭＨＣクラスＩおよびクラスＩＩ抗原ならびにＴ細胞共刺激分子、すなわちＣＤ８０およびＣＤ８６をより高いレベルで発現する。これらの変化は細胞表面上で抗原密度ならびにＴ細胞上の共刺激分子の対応物、たとえばＣＤ２８などを介するＴ細胞活性化シグナルの強度を増加させるので、Ｔ細胞を活性化する樹状細胞の能力を増強させる。さらに成熟ＤＣはＴ細胞応答を刺激して分極化させる多量のサイトカインを産生する。

一般にｅｘ ｖｉｖｏでＤＣを産生する方法は、患者由来のＤＣ前駆細胞に関して富化された細胞集団を得た後、患者に再導入する前にｉｎ ｖｉｔｒｏでＤＣ前駆細胞を成熟ＤＣに分化させることを含む。ＤＣは最終分化状態にしなければならず、そうでなければＤＣは再び単球／マクロファージに脱分化し、その免疫増強能の多くを失うだろうと考える人達もいる。単球から産生されたＤＣのＥｘ ｖｉｖｏでの成熟は、上記の方法および因子を用いて首尾良く達成された。

典型的には、未成熟樹状細胞（ＤＣ）を産生するために、最初に他の混入細胞タイプから単球前駆体を精製または富化しなければならない。単球は、たとえばリンパ球およびナチュラルキラー（ＮＫ）細胞などの末梢血に認められる他の細胞よりもプラスチックに固着する傾向がより大きいので、これはプラスチック（ポリスチレン）表面へ単球前駆体を付着させることによって一般的に行われる。強く洗浄して混入している細胞を十分に除去した後、単球前駆体を未成熟ＤＣに変換するかまたは直接成熟ＤＣに変換するサイトカインと共に培養する。単球前駆細胞を未成熟ＤＣに分化させる方法は、未成熟ＤＣへ単球の分化を誘導するためにサイトカインＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４を使用したＳａｌｌｕｓｔｏとＬａｎｚａｖｅｃｃｈｉａにより最初に記載された（Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．、１７９巻：１１０９〜１１１８頁、１９９４年、参考として本明細書中に援用される）。最も典型的にはサイトカインのこの組合せが使用されるが、種々の他の組合せ、たとえばＩＬ−４をＩＬ−１３またはＩＬ−１５で置換する組合せが同じ目的を達成するために記載されている。この過程の最終結果は、Ｔ細胞共刺激分子および高いレベルの主要組織適合複合体（ＭＨＣ）分子を発現するが樹状細胞成熟マーカーＣＤ８３を発現しない「ベール」細胞である。これらの細胞は皮膚のランゲルハンス細胞に類似しており、その主要な生理機能は侵入してくる微生物を捕捉することである。

この方法の変形には、たとえばタンジェンシャルフロー濾過（ＴＦＦ）またはビーズに付着させた抗体を単球上の表面分子に結合することにより単球を精製する異なる方法が含まれる。混入している細胞を洗浄して除去した後、単球をビーズから溶出できるように結合した細胞を有するビーズをカラムまたは磁石表面上で濃縮する。樹状細胞前駆体を得るさらに別の方法では、血液（特許文献３、参考として本明細書中に援用される）または骨髄いずれかからの幹細胞マーカーＣＤ３４を発現している細胞が精製される。これらの細胞は、必須のサイトカインＧＭ−ＣＳＦと共に培養して未成熟ＤＣに分化させることができる。これらのＤＣは、単球から産生された未成熟ＤＣと非常に類似した特徴および機能的特性を明らかに有している。

未成熟ＤＣは抗原取り込みおよびプロセシングする高い能力を有するが、免疫応答を開始する能力は限られている。免疫応答を開始する能力は未成熟ＤＣの成熟により獲得される。この成熟はＤＣを活性にするまたはＤＣの活性化とも呼ばれる。成熟過程は上述のように、成熟誘導サイトカイン、細菌産生物またはウイルス成分などとの接触によって開始される。
これらの方法で成熟ＤＣを産生することができるが、ＤＣの成熟に組換え分子および細胞上清を用いることには不利な点がある。これらは、これらの試剤のロット毎にむらのある品質および収量を含み、プロセシングのために単球性樹状細胞前駆体への輸送に関して所望の抗原と競合する可能性のある大量の外来性のタンパク質の導入を含んでいる。外来性のタンパク質は患者に投与した場合、毒性であるかまたは自己免疫を生じる可能性もある。またそのような試剤は、産生するには高くつき、免疫療法の費用を極めて高価にする可能性がある。

米国特許出願公開第２００２／０１６０４３０号明細書 国際公開第００／４７７１９号 米国特許第５，９９４，１２６号明細補

（要旨）
前に記載された方法および組成物が、未成熟樹状細胞（ＤＣ）の活性化の誘導および抗原特異的免疫応答に対してこれらの細胞を準備刺激のために提供される。１つの態様において、組織培養基質（ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ）と樹状細胞の付着、および活性化された樹状細胞に関して富化された細胞集団を形成するのに十分な時間での未成熟樹状細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏ培養に適した培養条件下で、未成熟樹状細胞を組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子を有する培地と接触させることにより、活性化された樹状細胞に関して富化された細胞集団を産生する方法が提供される。記載された方法では、樹状細胞集団の活性化を誘導するために樹状細胞成熟因子を添加する必要がない。組織培養表面と未成熟樹状細胞を接触させるその前に、その間にまたはその後に、未成熟樹状細胞は所定の抗原と接触できる。この所定の抗原は、たとえば腫瘍特異的抗原、腫瘍関連抗原、ウイルス抗原、細菌抗原、腫瘍細胞、細菌細胞、抗原を発現する組換え細胞、細胞溶解物、膜調製物、組換え産生された抗原、ペプチド抗原（たとえば、合成ペプチド抗原）、または単離した抗原であってもよい。さらにこの抗原は可溶性抗原または粒子状抗原であってもよい。特定の実施形態では、抗原は患者腫瘍または腫瘍細胞系から抽出した細胞溶解物または膜調製物であってもよい。

ある実施形態では、この方法はさらに単球性樹状細胞前駆体に関して富化された細胞集団を得ること、および未成熟樹状細胞の集団を形成するために単球性樹状細胞前駆体細胞の分化を誘導できる因子の存在下で、前駆体を培養することを任意に含んでもよい。適切な樹状細胞分化因子には、たとえばＧＭ−ＣＳＦ、インターロイキン４、ＧＭ−ＣＳＦとインターロイキン４の組合せ、またはＧＭ−ＣＳＦならびにインターロイキン１３もしくはインターロイキン１５が含まれる。単球性樹状細胞前駆体は、ヒト被験体から単離された細胞として得ることができる。

他の態様では、活性化された樹状細胞に関して富化された細胞集団を産生する方法が提供される。この方法は一般に、未成熟樹状細胞に関して富化された細胞集団を提供すること、および組織培養基質と樹状細胞の付着および未成熟樹状細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏ培養に適した培養条件下で、未成熟樹状細胞を組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子を有する培養培地と接触させることを含む。活性化された成熟樹状細胞に関して富化された細胞集団を形成させるのに十分な時間、細胞を培養する。この得られた活性化された成熟樹状細胞集団を哺乳動物に投与した場合、その哺乳動物に抗原特異的免疫応答をもたらすことができる。この未成熟樹状細胞集団を、付着に適した条件下で組織培養基質と接触させる前に、その間にまたはその後に所定の抗原と接触させることができる。この所定の抗原は、たとえば腫瘍特異的抗原、腫瘍関連抗原、ウイルス抗原、細菌抗原、腫瘍細胞、細菌細胞、抗原を発現する組換え細胞、細胞溶解物、膜調製物、組換え産生された抗原、ペプチド抗原（たとえば、合成ペプチド）、または単離した抗原であってもよい。この抗原は可溶性抗原または粒子状抗原であってもよい。特定の実施形態では、抗原は患者腫瘍または腫瘍細胞系から抽出した細胞溶解物または膜調製物である。ＤＣの成熟を導いてＴｈ１および／またはＴｈ２応答に対する応答にバイアスをかけることができる因子、たとえばインターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）を添加することもできる。

ある実施形態では、この方法は場合によっては、さらに単球性樹状細胞前駆体を得ること、および未成熟樹状細胞を形成するために分化因子の存在下でｉｎ ｖｉｔｒｏで前駆体を培養することを含むことができる。適切な分化因子には、たとえばＧＭ−ＣＳＦ、インターロイキン４、インターロイキン１３、インターロイキン１５、またはこれらの組合せが含まれる。単球性樹状細胞前駆体は、治療を必要とするヒト被験体または組織適合性が整合した個体から単離することができる。

さらに別の態様では、Ｔ細胞を活性化するための組成物が提供される。この組成物は、組織培養基質に対する樹状細胞の付着および活性化に適した条件下で、組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子との接触により活性化されて成熟した樹状細胞集団、ならびに所定の抗原を含むことができる。この樹状細胞集団は、従来の方法により産生された成熟樹状細胞集団により誘導された抗原特異的免疫応答に類似した抗原特異的免疫応答をもたらすことができる。樹状細胞集団は、事前の培養培地から未成熟樹状細胞を単離し、サイトカインを添加し、樹状細胞成熟因子の添加を伴わない組織培養基質へのＤＣの付着に適した条件下で組織培養基質と単離した未成熟樹状細胞とを接触させることにより産生する。組織培養基質への樹状細胞の付着に適した条件下で組織培養基質と接触後、樹状細胞は誘発されて活性化および成熟を経て活性成熟樹状細胞への過程をたどる。未成熟樹状細胞と共に同時に組織培養基質に添加したか、もしくは成熟過程の間、すなわち活性化後だが成熟完了前に添加した所定の可溶性または粒子状抗原は、取り込まれ、樹状細胞によりプロセシングされ、抗原特異的免疫応答を誘導するためにＴ細胞と接触したときに利用できる適切な細胞表面受容体に関連して提示することができる。

他の態様では、単離して活性化された樹状細胞集団が提供される。この細胞集団は、組織培養基質と樹状細胞の付着を誘導する条件下で、既に組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と接触して成熟し活性化された単球性樹状細胞を含み、これらの細胞に関して富化されている。得られた活性化された樹状細胞は、抗原を取り込みプロセシングすることができ、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの連続培養後、成熟樹状細胞の細胞表面表現型を獲得することができる。細胞集団は、場合によっては所定の抗原および／または単離したＴ細胞、たとえばナイーブＴ細胞を含むことができる。Ｔ細胞は、場合によっては単離したリンパ球調製物中に存在することができる。

また活性化されたＴ細胞を産生する方法も提供される。この方法は一般に、単離した未成熟樹状細胞に関して富化された細胞集団を提供すること、未成熟樹状細胞を所定の抗原と接触させること、および組織培養基質に対する未成熟樹状細胞の付着を誘導する条件下で、未成熟樹状細胞を組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と接触させることを含む。未成熟樹状細胞の活性化を誘導して活性化された樹状細胞を形成するのに十分な時間、細胞を培養する。活性化された樹状細胞はナイーブＴ細胞と接触して、活性化された抗原特異的Ｔ細胞を形成することができる。適切な抗原には、たとえば腫瘍特異的抗原、腫瘍関連抗原、ウイルス抗原、細菌抗原、腫瘍細胞、細菌細胞、抗原を発現する組換え細胞、細胞溶解物（腫瘍細胞溶解物を含む）、膜調製物、組換え産生された抗原、ペプチド抗原（たとえば、合成ペプチド抗原）、または単離した抗原を含むことができる。所定の抗原は可溶性抗原または粒子状抗原のいずれであってもよい。ＤＣの成熟を導いてＴｈ１および／またはＴｈ２応答に対する応答にバイアスをかけることができる因子、たとえばインターフェロンガンマを添加することもできる。

未成熟樹状細胞に関して富化された細胞集団は、所定の抗原および組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と同時に接触することができるか、またはこの細胞は組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と接触させる前に、その間にもしくは同時に、もしくはその後に、所定の抗原と接触されることができる。ある実施形態では、この方法はさらに、単球性樹状細胞前駆体に関して富化された細胞集団を得ること、および未成熟樹状細胞の形成を誘導するために、樹状細胞分化誘導因子の存在下でｉｎ ｖｉｔｒｏで前駆体を培養することを含むことができる。適切な分化誘導因子には、たとえばＧＭ−ＣＳＦ、インターロイキン４、インターロイキン１３またはインターロイキン１５、またはこれらの組合せが含まれる。単球性樹状細胞前駆体は、場合によってはヒト被験体から得ることができる。特定の実施形態では、単球樹状前駆細胞、未成熟樹状細胞、および／またはＴ細胞は互いに自己由来である。

活性化された抗原特異的Ｔ細胞は、抗原特異的免疫応答の刺激を必要とする動物、特に哺乳動物に投与することができる。適切な抗原には、たとえば腫瘍特異的抗原、腫瘍関連抗原、ウイルス抗原、細菌抗原、腫瘍細胞、細菌細胞、抗原を発現する組換え細胞、細胞溶解物、膜調製物、組換え産生された抗原、ペプチド抗原（たとえば、合成ペプチド抗原）、または単離した抗原が含まれる。特定の実施形態では、細胞溶解物および／または膜調製物は、患者の腫瘍または腫瘍細胞系に由来する。未成熟樹状細胞は、場合によっては、所定の抗原および組織培養基質、樹状細胞分化誘導因子と同時に接触することができるか、または未成熟樹状細胞を新しい未使用の汚染されていない組織培養基質に接触する前に、所定の抗原と接触させることができる。

ある実施形態では、この方法はさらに単球性樹状細胞前駆体を動物から分離すること、および未成熟樹状細胞を形成するために、分化因子の存在下でｉｎ ｖｉｔｒｏで前駆体を培養することを含むことができる。分化因子は、たとえばＧＭ−ＣＳＦ、インターロイキン４、インターロイキン１３、インターロイキン１５、またはこれらの組合せであってもよい。

単球性樹状細胞前駆体未成熟樹状細胞集団および／またはＴ細胞は、動物に対して自己由来、または動物に対して同種異系であり得る。あるいは単球性樹状細胞前駆体、未成熟樹状細胞および／またはＴ細胞は、動物と同じＭＨＣハプロタイプを有し得るか、またはＭＨＣマーカーを共有し得る。ある実施形態では、動物はヒトであり得るか、またはヒト以外の動物であり得る。
例えば、本発明は、以下の項目を提供する。
（項目１）
活性化された樹状細胞の富化された集団を含む細胞集団を産生するための方法であって、組織培養基質と未成熟樹状細胞の付着、および該活性化された樹状細胞の成熟に十分な時間での該樹状細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏ培養に適した条件下で、未成熟樹状細胞の富化された集団を含む細胞集団を、組織培養基質および樹状細胞分化因子を有する培地と接触させる工程を含む方法。
（項目２）
所定の抗原が、前記組織培養基質と接触される前に、接触すると同時に、または接触後に前記細胞集団と接触される項目１に記載の方法。
（項目３）
前記所定の抗原が、腫瘍特異的抗原、腫瘍関連抗原、ウイルス抗原、細菌抗原、腫瘍細胞、細菌細胞、抗原を発現する組換え細胞、細胞溶解物、膜調製物、組換え産生された抗原、ペプチド、または単離した抗原である項目２に記載の方法。
（項目４）
前記細胞溶解物または膜調製物が、脳腫瘍、前立腺腫瘍、前立腺組織、卵巣腫瘍、***腫瘤、胸部組織、白血病細胞集団、肺腫瘍、黒色腫、膀胱腫瘍、または腫瘍細胞系から得られる項目３に記載の方法。
（項目５）
前記脳腫瘍が多形性神経膠芽細胞腫または乏突起星細胞腫である項目４に記載の方法。
（項目６）
前記樹状細胞分化因子がＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−４、ＩＬ−１３、ＩＬ−１５またはこれらの組合せである項目１から５までのいずれかに記載の方法。
（項目７）
前記未成熟樹状細胞が、単球性樹状細胞前駆体に関して富化された細胞集団に由来する項目１から６までのいずれかに記載の方法。
（項目８）
単球性樹状細胞前駆体に関して富化された前記細胞集団が、樹状細胞分化誘導因子と接触される項目７に記載の方法。
（項目９）
前記樹状細胞分化誘導因子が、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−４、ＩＬ−１３、またはＩＬ−１５、およびこれらの組合せである項目８に記載の方法。
（項目１０）
前記単球性樹状細胞前駆体が、患者に由来するかまたはＨＬＡ適合個体に由来する項目７から９までに記載の方法。
（項目１１）
前記腫瘍細胞および前記樹状細胞が患者に由来する項目３から９までのいずれかに記載の方法。
（項目１２）
前記未成熟樹状細胞が、指向性成熟因子とさらに接触する項目１から１１までのいずれかに記載の方法。
（項目１３）
前記指向性成熟因子がインターフェロンガンマである項目１２に記載の方法。
（項目１４）
未成熟樹状細胞を活性化するための方法であって、未成熟樹状細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏ培養、および組織培養基質に対する該未成熟樹状細胞の付着に適した条件下で、該未成熟樹状細胞を該組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と接触させる工程を含む方法。
（項目１５）
前記未成熟樹状細胞を前記組織培養基質と接触させる前に、接触すると同時に、または接触後に所定の抗原と該未成熟樹状細胞を接触させることをさらに含む項目１４に記載の方法。
（項目１６）
前記所定の抗原が、腫瘍特異的抗原、腫瘍関連抗原、ウイルス抗原、細菌抗原、腫瘍細胞、細菌細胞、抗原を発現する組換え細胞、細胞溶解物、膜調製物、組換え産生された抗原、ペプチド、または単離した抗原である項目１５に記載の方法。
（項目１７）
前記細胞溶解物または膜調製物が腫瘍組織または腫瘍細胞系に由来する項目１６に記載の方法。
（項目１８）
前記腫瘍組織または腫瘍細胞系が、脳腫瘍、前立腺腫瘍、卵巣腫瘍、***腫瘤、肺腫瘍、黒色腫、膀胱腫瘍、または白血病細胞集団から得られる項目１７に記載の方法。
（項目１９）
前記脳腫瘍が、多形性神経膠芽細胞腫または乏突起星細胞腫である項目１８に記載の方法。
（項目２０）
前記樹状細胞分化誘導因子が、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−４、ＩＬ−１３、ＩＬ−１５、またはこれらの組合せである項目１４から１９までのいずれかに記載の方法。
（項目２１）
前記未成熟樹状細胞が指向性成熟因子とさらに接触する項目１４から２０までのいずれかに記載の方法。
（項目２２）
前記指向性成熟因子がインターフェロンガンマである項目２１に記載の方法。
（項目２３）
Ｔ細胞を活性化するための方法であって、
Ｔ細胞と、組織培養基質に対する未成熟樹状細胞の付着を誘導する条件下で、該組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子との接触により成熟した樹状細胞集団および所定の抗原とを接触させる工程を含む、方法。
（項目２４）
活性化された抗原特異的Ｔ細胞を産生するための方法であって、
単離した未成熟樹状細胞を所定の抗原と接触させる工程；
組織培養基質に対する該未成熟樹状細胞の付着を誘導する条件下で、該単離した未成熟樹状細胞を、該組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と接触させて該未成熟樹状細胞を活性化する工程；ならびに
該活性化された樹状細胞をナイーブＴ細胞と接触させて活性化された抗原特異的Ｔ細胞を形成する工程を含む、方法。
（項目２５）
前記所定の抗原が、腫瘍特異的抗原、腫瘍関連抗原、ウイルス抗原、細菌抗原、腫瘍細胞、細菌細胞、抗原を発現する組換え細胞、細胞溶解物、膜調製物、組換え産生された抗原、ペプチド抗原、または単離した抗原である項目２４に記載の方法。
（項目２６）
前記細胞溶解物または膜調製物が、脳腫瘍、前立腺腫瘍、前立腺組織、卵巣腫瘍、白血病細胞集団、肺腫瘍、***腫瘤または膀胱腫瘍から得られる項目２５に記載の方法。
（項目２７）
前記脳腫瘍が、多形性神経膠芽細胞腫または乏突起星細胞腫である項目２６に記載の方法。
（項目２８）
最初の工程として、前記未成熟樹状細胞を形成するために分化誘導因子の存在下で、単球性樹状細胞前駆体を培養する工程をさらに含む項目２４から２７までのいずれかに記載の方法。
（項目２９）
前記分化誘導因子が、ＧＭ−ＣＳＦ、インターロイキン４、ＧＭ−ＣＳＦおよびインターロイキン４の組合せ、またはインターロイキン１３である項目２８に記載の方法。
（項目３０）
前記単球性樹状細胞前駆体がヒト被験体から分離される項目２８および２９に記載の方法。
（項目３１）
前記未成熟樹状細胞およびＴ細胞が互いに自己由来である項目３０に記載の方法。

（詳細な説明）
本発明は、未成熟樹状細胞（ＤＣ）集団の活性化および成熟を誘導するかまたは誘発する方法ならびに抗原特異的免疫応答に対してこれらの細胞集団を準備刺激する方法を提供する。未成熟樹状細胞集団は、たとえば分離培地、培養培地などを含む調製培地から得ることができ、未成熟単球性樹状細胞に関して富化された細胞集団は、樹状細胞成熟因子の添加を伴わない組織培養基質へのＤＣの付着に適した条件下で、組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と接触される。ＤＣによる取り込みプロセシングおよび提示に適切なｉｎ ｖｉｔｒｏでの細胞培養条件下で、未成熟樹状細胞は所定の抗原と接触できる。所望の抗原との接触は、活性化開始の間、その前またはその後であり得る。あるいは既に抗原に露出された（たとえば、ｉｎ ｖｉｖｏで）未成熟単球性樹状細胞を得て、同様に適切な細胞培養条件下で組織培養基質と接触されることができる。得られた活性化された成熟樹状細胞は、所望の抗原を提示し、抗原特異的応答へとＴ細胞の活性化を刺激する。応答の方向、すなわちＴｈ−１またはＴｈ−２応答を優勢にする応答のバイアスは、たとえばインターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）などの指向性成熟因子（ｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ ａｇｅｎｔ）の添加により影響を受け得る。

他の態様では、単球性樹状細胞前駆体に関して富化された細胞集団を、被験体またはドナーから得ることができる。この細胞集団は未成熟樹状細胞を得るために、樹状細胞分化誘導因子、たとえば１つまたは複数のサイトカイン（たとえば、限定するものではないが、ＧＭ−ＣＦＳ、ならびにＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４、ＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−１３、ＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−１５の組合せなど）と接触されることができる。次いで未成熟樹状細胞を、樹状細胞を活性化および／または部分的に成熟させるために、組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子またはサイトカインもしくは他の指向性成熟因子と組み合わせて所定の抗原と接触されることができる。成熟した樹状細胞を、被験体において抗原特異的免疫応答を誘導するために、直接使用することができるか、または細胞をＴ細胞における抗原特異的免疫応答を誘導するために使用することができる。ある実施形態では、ＭＨＣクラスＩ抗原プロセシングが刺激され、これは所定の抗原を表示する細胞に対するＣＴＬ応答を誘発するのに有用である。誘導された応答の方向は、インターフェロンガンマなどの指向性成熟因子の添加により影響を受け得る。本明細書で用いる指向性成熟因子とは、成熟ＤＣの最終的な状態に影響を及ぼすことができるが、単独で用いた場合ＤＣの成熟を誘導しない因子である。たとえば指向性成熟因子は、Ｔｈ−１応答の方をＴｈ−２応答より好むようにまたはその逆にＤＣ集団の成熟を分極化することができる。

樹状細胞は、種々のリンパ系および非リンパ系組織に認められる抗原提示細胞の多様な集団である。（Ｌｉｕ、Ｃｅｌｌ １０６巻：２５９〜２６２頁（２００１年）；Ｓｔｅｉｎｍａｎ、Ａｎｎ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．９巻：２７１〜２９６頁（１９９１年））。樹状細胞は、脾臓、表皮のランゲルハンス細胞、および循環血液中のベール細胞のリンパ系樹状細胞を含む。集合的に、樹状細胞は細胞の形態、高いレベルの表面ＭＨＣ−クラスＩＩ発現、ならびにＴ細胞、Ｂ細胞、単球、およびナチュラルキラー細胞上で発現される特定の他の表面マーカーの欠如に基づきグループとして分類される。特に、単球由来樹状細胞（単球性樹状細胞とも呼ばれる）は、通常ＣＤ１１ｃ、ＣＤ８０、ＣＤ８３、ＣＤ８６を発現し、ＨＬＡ−ＤＲ^＋であるが、必ずしもではないが典型的にはＣＤ１４⁻である。

対照的に、単球性樹状細胞前駆体（典型的には単球）は通常ＣＤ１４^＋であり、全く存在しないかまたは低いレベルのＨＬＡ−ＤＲ、ＣＤ８３、およびＣＤ８６を発現する。単球性樹状細胞前駆体は、それらが存在する任意の組織から、特に脾臓、骨髄、リンパ節および胸腺などのリンパ系組織から得ることができる。単球性樹状細胞前駆体は、循環系からも得ることができる。末梢血液は、単球性樹状細胞前駆体のアクセスしやすい供給源である。臍帯血は、単球性樹状細胞前駆体のもう１つの供給源である。単球性樹状細胞前駆体は、免疫応答を誘発し得る様々な生物から得ることができる。そのような生物は、ヒトならびにヒト以外の動物、たとえば霊長類、他の哺乳動物（イヌ、ネコ、マウスおよびラットを含むがこれに限定されない）、トリ（ニワトリを含む）、ならびにこれらのトランスジェニック種などの動物を含む。

ある実施形態では、単球性樹状細胞前駆体および／または未成熟樹状細胞に関して富化された細胞集団は健常な被験体、または別法では免疫刺激を必要とする被験体、たとえば癌患者（たとえば、脳、***、卵巣、肺、前立腺、結腸、その他の癌）または細胞免疫刺激が有益であり得るかもしくは望まれる別の被験体（すなわち、細菌またはウイルス感染症など有する被験体）から得ることができる。樹状細胞前駆体および／または未成熟樹状細胞はまた、免疫刺激を必要とするＨＬＡ適合被験体への投与のために、ＨＬＡが適合した健常者から得ることができる。

樹状細胞前駆体および未成熟樹状細胞
血液および骨髄を含む種々の供給源から樹状細胞前駆体および未成熟樹状細胞に関して富化された細胞集団を分離する方法は当分野で公知である。たとえば、樹状細胞前駆体および未成熟樹状細胞に関して富化された細胞集団は、ヘパリン添加血液の採取によって、除去療法または白血球搬出法によって、バフィーコートの調製、ロゼット形成、遠心分離、密度勾配遠心分離（たとえば（ＦＩＣＯＬＬを使用する）（たとえばＦＩＣＯＬＬ−ＰＡＱＵＥ（登録商標））、ＰＥＲＣＯＬＬ（登録商標）（透析可能でないポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）で被覆したコロイドシリカ粒子（直径１５〜３０ｍｍ））、シュークロースなど）、細胞の差次的溶解、濾過などによって得ることができる。ある実施形態では、白血球集団は、たとえば被験体から血液を採取し、血小板除去のために繊維素を除き、赤血球を溶解させることにより調製することができる。樹状細胞前駆体および未成熟樹状細胞は、たとえばＰＥＲＣＯＬＬ（登録商標）勾配などの密度勾配物質中での遠心分離によって、場合によっては単球性樹状細胞前駆体に関して富化することができる。

樹状細胞前駆体および未成熟樹状細胞に関して富化された全ての集団は、場合によっては、たとえば密閉した無菌システム中で調製することができる。本明細書で用いる用語「密閉した、無菌システム」または「密閉したシステム」とは、非滅菌の周囲または循環する空気または他の非滅菌状況に対する曝露が最小限にされるかまたは排除されるシステムを意味する。樹状細胞前駆体および未成熟樹状細胞を得るための密閉したシステムは、一般に上部開口チューブ中での密度勾配遠心分離、外気中での細胞の移動、組織培養プレートでの細胞培養または密閉されてないフラスコなどを除外する。典型的な実施形態では、密閉したシステムは滅菌されていない空気に曝すことなく、最初の採集容器から密封可能な組織培養容器への樹状細胞前駆体および未成熟樹状細胞の無菌的移動を可能にする。

ある実施形態では、単球性樹状細胞前駆体は、ＷＯ０３／０１０２９２で開示されるように単球結合基質への単球の付着によって得られ、その開示を参考として本明細書中に援用される。たとえば、白血球の集団（たとえば、白血球搬出法によって単離した）を、単球性樹状細胞前駆体付着基質と接触されることができる。白血球の集団がこの基質と接触される場合、白血球集団中の単球性樹状細胞前駆体が選択的にこの基質に付着する。他の白血球（他の潜在的な樹状細胞前駆体を含む）は、基質に対する低下した結合親和性を示し、これにより単球性樹状細胞前駆体を基質表面上で選択的に富化できるようにする。

適切な基質は、たとえば容積に対して大きな表面領域比率を有する基質を含む。そのような基質は、たとえば粒子または線維基質であってもよい。適切な粒状基質には、たとえばガラス粒子、プラスチック粒子、ガラスで被覆したプラスチック粒子、ガラスで被覆したポリスチレン粒子、およびタンパク質吸収に適切な他のビーズが含まれる。適切な線維基質には、ミクロキャピラリーチューブおよび微じゅう毛膜が含まれる。粒子または線維基質は、通常、付着した細胞の生存率を実質的に低下させることなく、付着した単球性樹状細胞前駆体の溶出を可能にする。粒子または線維基質は、単球性樹状細胞前駆体または基質から樹状細胞の溶出を容易にするために、実質的に無孔であり得る。「実質的に無孔である」基質とは、基質中の封入細胞を最小限にするために、基質中に存在する少なくとも大多数の小孔は細胞より小さい基質である。

基質への単球性樹状細胞前駆体の付着は、場合によっては結合培地の添加により促進することができる。適切な結合培地には、たとえば、サイトカイン（たとえば、顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、インターロイキン４（ＩＬ−４）、もしくはインターロイキン１３（ＩＬ−１３））、血漿、血清（たとえば、自己由来もしくは同種異系血清などのヒト血清）、血清アルブミンなどの精製したタンパク質、二価陽イオン（たとえば、カルシウムおよび／もしくはマグネシウムイオン）ならびに基質への単球性樹状細胞前駆体の特異的付着において助けになるか、または基質への非単球性樹状細胞前駆体の付着を妨げる他の分子を、個々にあるいは任意に組み合わせて補充した単球性樹状細胞前駆体培養培地（たとえば、ＡＩＭ−Ｖ（登録商標）、ＲＰＭＩ １６４０、ＤＭＥＭ、Ｘ−ＶＩＶＯ １５（登録商標）など）が含まれる。ある実施形態では、血漿または血清は熱不活性化できる。この熱不活性化血漿は、白血球に対して自己由来であってもまたは異種性であってもよい。

基質へ単球性樹状細胞前駆体が付着後、付着していない白血球を単球性樹状細胞前駆体／基質複合体から分離する。任意の適切な方法を、複合体から付着していない細胞の分離に用いることができる。たとえば、付着していない白血球の混合物および複合体を沈殿することができ、付着していない白血球および培地をデカントするかまたは排出できる。あるいは混合物を遠心分離して、ペレット化された複合体から付着していない白血球を含む上清をデカントするかまたは排出できる。

別の方法では、単球性樹状細胞前駆体に関して富化された全ての集団を、タンジェンシャルフロー濾過装置を用いて調製した白血球に関して富化された細胞集団から得ることができる。単球性樹状細胞前駆体に関して富化された細胞集団を得るために有用なタンジェンシャルフロー濾過装置は、クロスフローチャンバ、濾液チャンバおよびこの２つの間に配置したフィルターを有するリムーバーユニットを含み得る。（ＷＯ２００４−０００４４４を参照のこと、開示全体が参考として本明細書中に援用される。）フィルターは、クロスフローチャンバを有する１つの側面である保留物表面、および他の側面である濾液チャンバを有する濾液表面で液体により連絡している。クロスフローチャンバは、クロスフローチャンバに白血球を含む血液構成成分のサンプルを導入するために適合し、フィルターの保留物表面と平行である入口を有する。出口もまたフィルターの保留物表面の反対側のチャンバ部分の中央に配置したクロスフローチャンバ中に提供される。タンジェンシャルフロー濾過装置に用いるのに適したフィルターは、典型的には約１〜約１０ミクロンの範囲の平均細孔サイズを有する。フィルターは約３〜約７ミクロンの平均細孔サイズを有し得る。クロスフローチャンバの入口でサンプルの所定の投入速度を提供する方法およびフィルターを介する濾液チャンバ中に濾液の濾過速度を制御する方法も含まれ得る。濾過速度制御手段が濾過の速度を、フィルターに対し抵抗のない濾過速度よりも低く制限する。血液構成成分を含むサンプルは、白血球搬出装置または白血球搬出装置から採取されたサンプルを含む容器などの供給源装置により提供することができる。

樹状細胞前駆体は、分化、成熟および／または増殖のためにｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏ培養できる。本明細書中で用いられる単離した未成熟樹状細胞、樹状細胞前駆体、Ｔ細胞、および他の細胞は、人為的にそれらの本来の生きた環境から離れて存在する、したがって自然の産物でない細胞を意味する。単離した細胞は、精製した形態で、半精製した形態（たとえば、富化された細胞集団）で、または自然でない環境で存在できる。簡単に述べると、ｅｘ ｖｉｖｏでの分化は、典型的には１つまたは複数の樹状細胞分化因子の存在下で樹状細胞前駆体または樹状細胞前駆体を有する細胞集団を培養することを含む。適切な分化誘導因子は、たとえば限定するものではないが、細胞成長因子（たとえば、（ＧＭ−ＣＳＦ）、インターロイキン４（ＩＬ−４）、インターロイキン１３（ＩＬ−１３）、インターロイキン１５（ＩＬ−１５）、および／またはこれらの組合せなどのサイトカイン）であり得る。ある実施形態では、単球性樹状細胞前駆体は、単球由来の未成熟樹状細胞から分化するように誘導される。

樹状細胞前駆体は、適切な培養条件下で培養して分化するように誘導することができる。適切な組織培養培地には、たとえばＡＩＭ−Ｖ（登録商標）、ＲＰＭＩ １６４０、ＤＭＥＭ、Ｘ−ＶＩＶＯ １５（登録商標）などが含まれる。組織培養培地は、未成熟樹状細胞に細胞分化を促進するために、血清、アミノ酸、ビタミン、サイトカイン、たとえばＧＭ−ＣＳＦおよび／またはＩＬ−４、ＩＬ−１３もしくはＩＬ−１５、二価陽イオンなどを補充され得る。ある実施形態では、樹状細胞前駆体はｉｎ ｖｉｔｒｏで無血清培地で培養され得る。そのような培養条件では、場合によっては任意の動物由来の製品を取り除くことができる。典型的な樹状細胞培地における一般的なサイトカインの組合せは、それぞれ約５００単位／ｍｌのＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４を含む。樹状細胞前駆体は未成熟樹状細胞を形成するように分化したとき、皮膚ランゲルハンス細胞に表現型は類似している。未成熟樹状細胞は、典型的にはＣＤ１４⁻およびＣＤ１１ｃ^＋であり、低いレベルのＣＤ８６およびＣＤ８３を発現し、特殊なエンドサイトーシスを介して可溶性抗原を獲得することができる。

典型的には従来の方法では、未成熟樹状細胞は患者に投与の前にまたはＴ細胞と接触される前に、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで成熟して成熟樹状細胞を形成する。これらの方法では、樹状細胞成熟因子が、所定の抗原に先立ちまたは所定の抗原と共に未成熟樹状細胞を含むｉｎ ｖｉｔｒｏ培養に添加される。成熟後、ＤＣは少しずつ次第に抗原を取り込む能力を失い、典型的には共刺激細胞表面分子および種々のサイトカインのアップレギュレーションされた発現を示す。詳細には、成熟ＤＣは未成熟樹状細胞より高いレベルのＭＨＣクラスＩおよびＩＩ抗原を発現し、成熟樹状細胞は一般にＣＤ８０^＋、ＣＤ８３^＋、ＣＤ８６^＋、およびＣＤ１４⁻であると同定される。ＭＨＣ発現が高くなるとＤＣ表面上の抗原密度の増加を導くが、共刺激分子ＣＤ８０およびＣＤ８６のアップレギュレーションは、共刺激分子の対応物、たとえばＴ細胞上のＣＤ２８を介してＴ細胞活性化シグナルを強化する。

従来の方法と異なり、本発明の方法における未成熟樹状細胞の活性化は、組織培養表面への樹状細胞の付着に適した条件下で、組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と単離した未成熟樹状細胞を接触させることにより開始または誘発される。本発明の典型的な方法では、成熟因子の添加を伴わないで活性化が達成される。未成熟樹状細胞は、事前の培養基質または精製培地から除去され、事前の培養培地から単離される。次いで単離した未成熟樹状細胞を計数して、残りのプロセスのために樹状細胞成熟因子の添加を伴わない新鮮な培養培地と組み合わせてその後に使用するために凍結する。別の方法では、樹状細胞がＴ細胞応答をＴｈ−１またはＴｈ−２応答に分極化させ得るようにバイアスをかけるために、活性化の間に指向性成熟因子を添加し得る。たとえば使用し得る因子を制限するものではないが、Ｔｈ−１応答の方へＴ細胞応答にバイアスをかけるためにインターフェロンガンマを添加し得る。単球性樹状細胞前駆体または未成熟ＤＣに添加されたインターフェロンガンマは、ＤＣ分化および／または成熟をそれ自体で誘導しない。

本発明の方法において有用な組織培養基質には、組織培養ウェル、フラスコ、ボトル、バッグまたはバイオリアクターで使用される任意のマトリックス、たとえば繊維、ビーズ、プレートなどを含むことができる。典型的には組織培養基質は、プラスチック、たとえばポリスチレン、テフロン（登録商標）（ポリテトラフルオロエチレン、ＰＴＦＥ）などを含む。免疫療法用の樹状細胞のｅｘ ｖｉｖｏ培養に最も頻繁に用いられるこれらの組織培養基質には、組織培養フラスコ、組織培養バッグ、またはプラスチックなどの多重積層が含まれるセル画分が含まれる。

単離した未成熟樹状細胞は、適切な成熟培養条件において培養して成熟させ得る。適切な組織培養培地には、ＡＩＭ−Ｖ（登録商標）、ＲＰＭＩ １６４０、ＤＭＥＭ、Ｘ−ＶＩＶＯ １５（登録商標）などが含まれる。組織培養培地には、細胞の成熟を促進するためにアミノ酸、ビタミン、サイトカイン、ヒト血清、たとえば約１％〜約１０％のヒトＡＢ血清、二価陽イオンなどを補充し得る。

樹状細胞の成熟または活性化は、当分野で周知の方法によりモニターされ得る。細胞表面マーカーは、当該技術分野でよく知られているアッセイ、たとえばフローサイトメトリー、免疫組織化学などで検出され得る。また細胞もサイトカイン産生に関してモニターされ得る（たとえばＥＬＩＳＡ、ＦＡＣＳ、または他の免疫のアッセイにより）。本発明による活性化されるＤＣ集団において、また細胞は典型的な細胞表面マーカーＣＤ８３、ＣＤ８６およびＨＬＡ−ＤＲの出現に関してアッセイし得る。ＣＤ８３の様ないくつかのこれらの抗原は、成熟ＤＣ上でのみ発現されるが、他のものの発現は成熟後に著しくアップレギュレーションされる。また成熟ＤＣはピノサイトーシスによる抗原取り込み能力を喪失し、これは当業者によく知られている取り込みアッセイにより分析し得る。抗原で感作したかまたは未感作の樹状細胞前駆体、未成熟樹状細胞、および成熟樹状細胞は、その後の使用のために低温保存され得る。低温保存する方法は、当分野においてよく知られている。たとえば米国特許５，７８８，９６３を参照のこと、その開示全体が参考として本明細書中に援用される。

抗原
本発明による成熟し活性化された樹状細胞は、Ｔ細胞に抗原を提示することができる。成熟し活性化された樹状細胞は、活性化の間にまたはその後のどちらかで所定の抗原と未成熟樹状細胞を接触させることにより形成することができる。あるいは、既に抗原と（たとえば、単離前にｉｎ ｖｉｖｏで）接触した未成熟樹状細胞は、組織培養基質および樹状細胞分化誘導因子と接触して細胞障害性Ｔ細胞応答の誘導に対して活性化された成熟樹状細胞を産生し得る。

適切な所定の抗原には、Ｔ細胞の活性化が望まれる任意の抗原を含むことができる。そのような抗原には、たとえば細菌抗原、腫瘍特異的または腫瘍関連抗原（たとえば、全細胞、腫瘍細胞溶解物、たとえばグリア芽細胞腫、前立腺、もしくは卵巣、***、結腸、脳、黒色腫、もしくは肺腫瘍細胞などから由来する溶解物）、腫瘍からの単離された抗原、融合タンパク質、リポソームなど、ウイルス抗原、およびその他の抗原もしくは抗原フラグメント、たとえばペプチドもしくはポリペチド抗原が含まれ得る。ある実施形態では、抗原は、たとえば限定するものではないが前立腺特異的細胞膜抗原（ＰＳＭＡ）、前立腺酸性ホスファターゼ（ＰＡＰ）、または前立腺特異抗原（ＰＳＡ）であり得る。（たとえば、Ｐｅｐｓｉｄｅｒｏら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ４０巻：２４２８〜３２頁（１９８０年）； ＭｃＣｏｒｍａｃｋら、Ｕｒｏｌｏｇｙ ４５巻：７２９〜４４頁（１９９５年）を参照のこと）。抗原はまた、細菌細胞、細菌溶解物、細胞溶解物由来の細胞膜フラグメント、または当分野で知られているその他の供給源であり得る。抗原は発現され得るかまたは組換えにより産生され得るか、またはさらに化学的に合成され得る。組換え体抗原はまた、宿主細胞（たとえば、細菌、酵母菌、昆虫、脊椎動物または哺乳動物細胞）の表面上で発現し得て、溶解物中に存在し得るか、または溶解物から精製され得る。抗原は、可溶性抗原かまたは粒子状抗原のいずれかであり得る。

抗原はまた、被験体由来のサンプル中に存在し得る。たとえば被験体における高増殖性または他の状態からの組織サンプルが抗原供給源として使用し得る。そのようなサンプルは、たとえばバイオプシーまたは外科的切除によって得られ得る。そのような抗原は、たとえば溶解物としてまたは単離した調製物として使用し得る。あるいは被験体（たとえば、癌患者）の細胞の膜調製物、または樹立された細胞系もまた抗原または抗原の供給源として使用され得る。

例示的な実施形態では、外科的標本から回収したグリア芽細胞腫腫瘍細胞溶解物が、抗原の供給源として使用され得る。たとえば、バイオプシーまたは外科的切除で得た癌患者自身の腫瘍のサンプルを、樹状細胞へ抗原を提示するためにまたは抗原提示のための細胞溶解物を提供するために直接使用され得る。あるいは癌患者の腫瘍細胞の膜調製物が使用され得る。腫瘍細胞は、グリア芽細胞腫、前立腺、肺、卵巣、***、結腸、脳、黒色腫、またはその他のタイプの腫瘍細胞であり得る。溶解物および膜調製物は、当分野では周知である方法によって単離した腫瘍細胞から調製され得る。

１つの実施形態では、単球性樹状細胞前駆体を基質上で分離し、基質から溶出してバイオリアクターまたは他の密閉したシステム、たとえば組織培養バッグへ移し得る。適切な組織培養バッグには、たとえばＳＴＥＲＩＣＥＬＬ培養容器（Ｎｅｘｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ Ｉｎｃ．）またはＴＥＦＬＯＮ培養バッグ（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｆｌｕｏｒｏｓｅａｌ Ｃｏｒｐ．）などが含まれる。密閉したシステムは、当業者により理解されるように、任意の適切なサイズまたは容量を有することができる。適切な容量は、大きな容量および小さな容量が可能であり本発明の範囲内であるが、たとえば約０．０１リットル〜約５リットルまたは約０．０１リットル〜約０．０５リットルが含まれる。

単球性樹状細胞前駆体はまた、基質上で培養され得る。たとえば基質上の単球性樹状細胞前駆体は、バイオリアクター（発酵槽を含む）または組織培養容器、たとえば組織培養フラスコ、バッグまたはプレートで培養され得る。組織培養フラスコ、組織培養バッグまたはプレートは、当業者により理解されるように、任意の適切なサイズまたは容量を有することができる。バイオリアクターは典型的には、大きな容量および小さな容量が可能であり、本発明の範囲内であるが、約０．０１〜約５リットル、または約０．０１〜約０．０５リットルの容量を有する。典型的には、単球性樹状細胞前駆体の培養のために使用されるバイオリアクターは、約０．０１〜約０．１リットルの容量を有する。バイオリアクターには、単球性樹状細胞前駆体の任意の適切な量を、たとえば基質のミリリットル当たり約１０^５細胞〜約５×１０^６細胞を接種し得る。基質上の単球性樹状細胞前駆体はまた、密閉された無菌システムで培養し得る。

未成熟樹状細胞を得るために、単球性樹状細胞前駆体を培養して分化させる。適切な組織培養培地には、ＡＩＭ−Ｖ、ＲＰＭＩ １６４０、ＤＭＥＭ、Ｘ−ＶＩＶＯ１５などが含まれる。組織培養培地には未成熟樹状細胞へ単球性樹状細胞前駆体の分化を促進するために、アミノ酸、ビタミン、サイトカイン、たとえば顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）および／またはインターロイキン４（ＩＬ−４）、インターロイキン７（ＩＬ−７）またはインターロイキン１３（ＩＬ−１３）、二価陽イオンなどを補充し得る。典型的なサイトカインの組合せは、それぞれ約５００単位／ｍｌのＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４である。典型的には、基質上で単球性樹状細胞前駆体が培養される場合、基質表面から未付着細胞として回収される成熟樹状細胞の数が、主としての成熟樹状細胞である。単球性樹状細胞前駆体は、任意の適切な時間の間培養され得る。

ある実施形態では、未成熟樹状細胞への前駆体の分化のために適切な培養時間は、約４〜約７日であり得る。前駆体から未成熟樹状細胞の分化は、たとえば標識したモノクロナール抗体を用いて細胞表面マーカー、たとえばＣＤ１４、ＣＤ１１ｃ、ＣＤ８３、ＣＤ８６、ＨＬＡ−ＤＲの有無をモニターすることによって、当業者には周知の方法によりモニターし得る。また樹状細胞の表現型を、当分野では周知である方法によって遺伝子形質発現パターンの分析により決定し得る。未成熟樹状細胞に対する典型的な細胞表面表現型は、ＣＤ１４⁻、ＣＤ１１ｃ^＋、ＣＤ８３⁻、ＣＤ８６⁻、およびＨＬＡ−ＤＲ^＋であろう。また未成熟樹状細胞は、細胞集団を増殖するためにおよび／またはさらに分化した状態に、すなわち抗原の取り込み、プロセシングおよび提示する状態に未成熟樹状細胞を維持するために適切な組織培養培地で培養され得る。たとえば、未成熟樹状細胞は、ＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４の存在下で維持および／または増殖され得る。

未成熟樹状細胞は新規の抗原をプロセシングする能力を保持するので、これらの細胞がいくつかの応用において好ましい場合がある。（たとえば、Ｋｏｃｈら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １５５巻：９３〜１００頁（１９９５年）を参照のこと）。対照的に、成熟樹状細胞（たとえば、ＣＤ１４⁻、ＣＤ１１ｃ^＋、ＣＤ８３^＋、ＣＤ８６^＋、ＨＬＡ−ＤＲ^＋）、抗原に暴露しプロセシングし、適切な成熟条件に暴露された成熟樹状細胞は、新規の抗原を有効にプロセシングする能力を典型的に喪失した。成熟樹状細胞は、細胞表面上で提示のためにＭＨＣクラスＩおよび／またはＭＨＣクラスＩＩ分子に結合できるペプチドと接触し得る。

培養の間、未成熟樹状細胞を場合によっては所定の抗原に暴露することができる。適切な所定の抗原には、Ｔ細胞の活性化が望まれる上記のような任意の抗原を含むことができる。１つの実施形態では、未成熟樹状細胞は癌免疫療法および／または腫瘍増殖阻害のために、腫瘍細胞溶解物、たとえばグリア芽細胞腫、前立腺、肺、卵巣、***、結腸、脳、黒色腫、腫瘍細胞溶解物などの存在下で培養される。他の抗原には、たとえば細菌およびウイルス抗原、腫瘍細胞、精製された腫瘍細胞膜、腫瘍特異的または腫瘍関連抗原（たとえば、腫瘍からの単離した抗原、融合タンパク質、リポソームなど）、細菌細胞、細菌抗原、ウイルス粒子、ウイルス抗原、ならびにその他の抗原が含まれ得る。さらに抗原を発現する形質転換したまたはトランスフェクトした宿主細胞の表面上で、または所望の抗原を発現するトランスフェクトしたもしくは形質転換した細胞の精製された細胞膜もしくは細胞溶解物で抗原は発現され得る。

腫瘍細胞溶解物などの抗原と接触後、抗原特異的樹状細胞などの集団を増殖するために、細胞を任意の適切な時間培養して抗原の取り込みおよびプロセシングを行わせることができる。また未成熟樹状細胞を、ＭＨＣクラスＩまたはＭＨＣクラスＩＩ分子に関して抗原を提示する活性化された樹状細胞に成熟することができる。このような成熟は、たとえば他の既知の成熟因子の非存在下で組織培養基質への樹状細胞の付着を誘導する条件下で、組織培養基質上における培養により、樹状細胞分化誘導因子を用いて達成できる。典型的には、樹状細胞分化誘導因子はＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４、ＩＬ−１３またはＩＬ−１５などである。

別の態様によれば、樹状細胞は、所定の抗原および指向性成熟因子に暴露することができる。指向性成熟因子は単独で使用された場合、単球樹状前駆細胞の分化の誘導または未成熟樹状細胞の成熟を誘導しないが、典型的には活性化プロセスと組み合わせた場合、ＤＣの成熟をＴｈ−１またはＴｈ−２応答を誘導できる細胞へと導く。インターフェロンガンマは、Ｔｈ−１応答の方へ誘導されたＴ細胞応答バイアスを誘導できる因子の例である。

本発明の別の実施形態では、所定の抗原に暴露された未成熟樹状細胞を、ｉｎ ｖｉｔｒｏで抗原に対してＴ細胞を活性化するために用いることができる。樹状細胞は、抗原曝露の直後にＴ細胞を刺激するために使用することができる。あるいは樹状細胞は、抗原およびＴ細胞に曝露する前に、サイトカインの組合せ（たとえば、ＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４）の存在下で維持することができるか、または樹状細胞は、その後に使用のために当分野では周知である方法によって低温保存することができる。特定の実施形態では、ヒト樹状細胞がヒトＴ細胞を刺激するために使用される。

Ｔ細胞またはＴ細胞のサブセットを、反応細胞として用いるために種々のリンパ系組織から得ることができる。そのような組織は、脾臓、リンパ節、および末梢血液を含むがこれらに限定はされない。単離したまたは精製されたＴ細胞は、混合したＴ細胞集団としてまたは精製されたＴ細胞サブセットとして、所定の抗原に暴露された樹状細胞と共培養できる。

たとえば、精製されたＣＤ８^＋Ｔ細胞を、抗原特異的ＣＴＬ応答を誘発するために抗原に暴露された樹状細胞と共培養することができる。さらにＣＤ８^＋およびＣＤ４^＋Ｔ細胞の両方の混合培養において、ＣＤ４^＋Ｔ細胞を早期に除去することにより、ＣＤ４^＋細胞の過成長を阻止することができる。Ｔ細胞の精製は、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ６および／またはＣＤ８に対して誘導された抗体の使用を含むがこれに限定されない、ポジティブまたはネガティブ選択によって達成することができる。

あるいは、ＣＤ４^＋およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の混合集団を、細胞障害性およびＴヘルパー免疫応答の両方を含むある抗原に対して特異的な応答を誘発するために、樹状細胞と共培養することができる。ある実施形態では、活性化されたＣＤ８^＋またはＣＤ４^＋Ｔ細胞は、本発明の方法に従って産生することができる。典型的には、抗原反応性で分極化したＴ細胞を産生するために使用された成熟し感作された樹状細胞は、この樹状細胞を投与しようとする被験体と同系である（たとえば、被験体から得られる）。あるいは、予定されたレシピエント被験体と同じＨＬＡハプロタイプを有する樹状細胞を、ＨＬＡ適合ドナー由来の非癌性細胞（たとえば、正常細胞）を用いてｉｎ ｖｉｔｒｏで調製することができる。特定の実施形態では、ＣＴＬおよびＴｈ−１ヘルパー細胞を含む抗原反応性Ｔ細胞は、免疫刺激のための細胞の供給源としてｉｎ ｖｉｔｒｏで増殖される。

細胞集団のｉｎ ｖｉｖｏにおける投与
本発明の別の態様では、免疫刺激を必要とする被験体に、成熟し感作された樹状細胞または活性化され、たとえば分極化したＴ細胞、またはそのような細胞を含む細胞集団を投与する方法を提供する。このような細胞集団は、成熟して活性化された樹状細胞の集団および／または活性化された、たとえば分極化されたＴ細胞集団の両方を含むことができる。ある実施形態では、このような方法は、抗原特異的Ｔ細胞応答を誘導するよう感作された成熟し活性化された樹状細胞集団を形成するために、樹状細胞前駆体または未成熟樹状細胞を得て、組織培養基質、樹状細胞分化誘導因子、および所定の抗原との接触によってそれらの細胞を分化させて成熟させることにより実施される。未成熟樹状細胞は、活性化する前に、活性化の間にまたは活性化後に抗原と接触されることができる。成熟したまたは活性化された樹状細胞は、免疫刺激を必要とする被験体に直接投与することができる。

関連する実施形態では、リンパ球集団内のＴ細胞を刺激するために、活性化されたまたは成熟した樹状細胞は被験体由来のリンパ球と接触できる。抗原反応性ＣＤ４^＋および／またはＣＤ８^＋Ｔ細胞の細胞培養でのクローン増殖に引き続き、場合によっては活性化され分極化されたリンパ球を、免疫刺激を必要とする被験体に投与することができる。ある実施形態では、活性化されて分極化されたＴ細胞は被験体に対して自己由来である。

別の実施形態においては、樹状細胞、Ｔ細胞、およびレシピエント被験体は、同じＭＨＣ（ＨＬＡ）ハプロタイプを有する。被験体のＨＬＡハプロタイプを決定する方法は当分野で公知である。関連する実施形態では、樹状細胞および／またはＴ細胞はレシピエント被験体に対して同種異系である。たとえば樹状細胞は、同じＭＨＣ（ＨＬＡ）ハプロタイプを有するＴ細胞およびレシピエントに対して同種異系であり得る。同種異系細胞は、典型的には少なくとも１つのＭＨＣ対立遺伝子に一致する（たとえば、全てのＭＨＣ対立遺伝子ではないが、少なくとも１つを共有する）。より典型的でない実施形態では、樹状細胞、Ｔ細胞およびレシピエント被験体は互いに関して全て同種異系であるが、全てが共通して少なくとも１つの共通のＭＨＣ対立遺伝子を有している。

１つの実施形態によれば、Ｔ細胞は、未成熟樹状細胞を得た同じ被験体から得られる。ｉｎ ｖｉｔｒｏでの成熟と分極化の後、自己由来のＴ細胞を被験体に投与して、既存の免疫応答を誘発および／または増大させる。たとえば、Ｔ細胞を約１０^８〜約１０^９細胞／ｍ^２の体表面積の用量で静脈内注入により投与することができる（たとえば、Ｒｉｄｅｌｌら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５７巻：２３８〜２４１頁（１９９２年）を参照のこと、参考として本明細書中に援用される）。注入は所望の間隔で、たとえば毎月繰り返し得る。レシピエントをＴ細胞注入の間および注入後に、副作用の何らかの徴候についてモニターし得る。

別の実施形態によれば、本発明による新規の、未使用の汚染されていない組織培養基質との接触により成熟した樹状細胞は、直接腫瘍または標的抗原を含む他の組織に注射し得る。このような部分的に成熟した細胞は、抗原を取り込みｉｎ ｖｉｖｏでＴ細胞にその抗原を提示できる。

以下の実施例は、単に本発明の種々の局面の例示として提供され、如何なる意味でも本発明を限定するものではないと解釈するべきである。

（実施例１：組織培養基質との接触による単球性樹状細胞前駆体の成熟）
この実施例において、前駆体に関して富化された細胞集団における単球性樹状細胞前駆体は、ＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４の存在下で分化して未成熟樹状細胞を形成する。未成熟樹状細胞を組織培養系から採取し、洗浄し計数して新規の汚染されていない組織培養容器中で所定の抗原と組み合わせる。所定の可溶性または粒子状抗原の存在下で、樹状細胞維持のために典型的な条件で、ＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４を補充した典型的な樹状細胞培養培地で細胞を培養する。樹状細胞成熟因子を培地に添加しない。樹状細胞は、成熟樹状細胞に特徴的な細胞表面マーカーの存在を判定することにより、樹状細胞成熟因子の添加を伴わないで成熟したと判定される。

簡単に述べると、未成熟ＤＣは１％ヒト血漿を補充したＯｐｔｉＭＥＭ（登録商標）培地（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ）の存在下で、プラスチックと末梢血単球を接触させることによって調製される。結合していない単球は洗浄により除去され得る。結合した単球は、１ミリリットル当たり５００単位のＧＭ−ＣＳＦおよび５００の単位のＩＬ−４の存在下で約６〜７日間、Ｘ−ＶＩＶＯ １５（登録商標）培地中で培養され得る。

未成熟ＤＣをリンスして採取し、この細胞を培養培地で洗浄する。細胞を計数し、洗浄したＤＣを、たとえば治療を受けるために患者から外科的に摘出されたグリア芽細胞腫由来の腫瘍細胞溶解物と組み合わせる。上記のようなＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４を有する培養培地中のＤＣならびに溶解物を、新規の汚染されていない未使用の組織培養ディッシュに添加し、約１２〜約２０時間培養する。代わりの実施形態では、応答の促進されたＴｈ−１を誘導するために、インターフェロンガンマを添加し得る。

活性化されたＤＣを採取し、洗浄して患者に投与するために調製する。活性化されたＤＣのサンプルを、ＣＤ１４、ＣＤ８３、ＣＤ８６およびＨＬＡ−ＤＲの各々に特異的な抗体で標識して細胞の表現型を調べるために使用する。標識した細胞をフローサイトメトリーで分析して、細胞の表現型を決定する。活性化されたＤＣは、ほとんどまたは全くＣＤ１４を示さないで、ＣＤ８３に関しては陽性であり、成熟した樹状細胞に対して予想されるような高いレベルのＣＤ８６およびＨＬＡ−ＤＲ発現する。

活性化されたＤＣの残りの部分を、１回の注射につき１×１０^６細胞〜１×１０^１０細胞の量で患者に投与する。抗原特異的免疫応答の誘導は、ＭＨＣテトラマー解析および／またはＥＬＩＳＡによる抗原に対する抗体反応よりＴ細胞応答を測定することによって評価する。

（実施例２：成熟因子を伴わないで活性化された単球性樹状細胞前駆体細胞の細胞表面表現型の測定）
この実施例では、単球をプラスチック組織培養容器への付着によって精製し、採取して洗浄し、新たな培養期間の間、新規の組織培養容器に再懸濁した。成熟樹状細胞マーカーであるＣＤ８３の細胞表面発現を測定した。

未成熟ＤＣを産生するために、単球をプラスチックへの付着によって精製し、ＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４ならびに１％ヒトＡＢ血清を有する樹状細胞培地で約７日間培養した。約７日後に、培地中でほとんど全て遊離して浮遊している細胞を採取し、ＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４ならびに１％ヒトＡＢ血清入りの樹状細胞培地を有する未使用の汚染されていないポリスチレン組織培養フラスコに植え継ぎを行った。倒立顕微鏡下で植え継いだ細胞を目視観測して、大部分の細胞が組織培養表面にしっかりと付着していることを認めた。植え継ぎの２０時間後に、細胞はＤＣマーカーＣＤ８３の誘導を示した。以下の表は、単離した単球の種々のサンプルでのＣＤ８３の染色を示す。

（実施例３：成熟因子を伴わずに活性化された樹状細胞の臨床的使用）
この実施例では、樹状細胞分化因子を伴わずに活性化され、患者から調製した腫瘍溶解物と接触した多形性神経膠芽細胞腫患者から得た樹状細胞組成物の安全性および有効性を調べた。

腫瘍溶解物は外科的に摘出した腫瘍組織から調製した。単離した腫瘍組織を細かく切り刻み、組織を解離させるコラゲナーゼを含む緩衝液を有する容器に入れた。この混合物を室温度で一夜放置した。組織消化物を確保する濾過の後、遊離された腫瘍細胞を遠心分離してペレットにした。細胞ペレットを小量のＲＰＭＩ １６４０に懸濁し、３サイクルの凍結融解に付した。凍結融解の後、腫瘍溶解物を遠心分離して清澄化し、滅菌のためにタンパク質を含む上清を０．２２ミクロンフィルターで濾過した。

白血球搬出法の産物をＦＩＣＯＬＬ勾配に引き続くプラスチックへの付着により精製して、単球性樹状細胞前駆体に関して富化された細胞集団を調製した。付着細胞は、標準的な樹状細胞培養条件下で、ｈＧＭ−ＣＳＦおよびｈＩＬ−４の各々５００Ｕ／ｍｌならびに１０％ＡＢヒト血清で補充されたＲＰＭＩ １６４０中で７日間培養した単球性樹状細胞前駆体であった。

７日後に分化した未成熟樹状細胞を採取して洗浄し、その後に使用するため凍結するかまたは患者の腫瘍溶解物と混合し、１％〜１０％のヒトＡＢ血清ならびにｈＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４の各々５００Ｕ／ｍｌが存在する新鮮な組織培養フラスコに植え継いだ。ＤＣの最終濃度は５０万〜２００万細胞／ｍｌ（典型的には１×１０^６細胞／ｍｌ）であり、腫瘍溶解物の最終濃度は、１０〜１０００μｍ／ｍｌ（典型的に１００μｇ／ｍｌ）であった。

最初治験で記載された患者は、自己の培養した腫瘍細胞由来の腫瘍溶解物と接触した樹状細胞を投与された。試験は段階的用量増加試験であり、３つの被験体に１×１０^６ＤＣを投与し、３つの被験体に５×１０^６ＤＣを投与し、６つの被験体に１０×１０^６ＤＣを投与した。免疫応答は、遅延型過敏症（ＤＴＨ応答）、細胞障害性Ｔ細胞応答（ＣＴＬ）を測定することにより、および再発疾患の場合には再手術の間に浸潤性リンパ球の存在を測定することにより評価した。それぞれのアッセイは、誘導された免疫応答の異なる側面を測定する。ＤＴＨ応答は典型的にはヘルパーＴ細胞（Ｔｈ）活性の証拠であるが、ＣＴＬ応答は、誘導された応答が腫瘍細胞を殺傷する能力を有するＴ細胞を誘導したかどうかを測定する。反応後腫瘍で検出される浸潤性Ｔ細胞は、活性化されたＴ細胞が腫瘍部位に遊走してｉｎ ｓｉｔｕで腫瘍細胞を殺傷する能力を有するかどうかを測定する。

^ａ浸潤性リンパ球の数を半主観的な評価により記録した
ｎ．ａ．、手術が実施されなかったため、適用不可能。

第ＩＩの治験もまた、１回の注射につき１×１０^６のＤＣが投与される４つの被験体、１回の注射につき５×１０^６ＤＣが投与される６つの被験体および１回の注射につき１０×１０^６ＤＣが投与される６つの被験体を用いる段階的用量増加試験であった。この治験では、腫瘍溶解物はそれぞれ特定の患者から摘出された腫瘍に由来し、この溶解物はその患者に由来するＤＣと接触した。免疫応答は、ワクチン接種後に抗原特異的ＣＤ８^＋Ｔ細胞に対するテトラマー染色によりおよび可能である場合には再手術時に、浸潤性腫瘍内Ｔ細胞の存在を測定することにより評価した。典型的には、再手術は疾患の再発後にのみ実施した。患者のうちの１３例は、新たに多形性神経膠芽細胞腫（ＧＢＭ）と診断され、２例は再発ＧＢＭを有し、一例は再発グレードＩＩＩ乏突起星細胞腫（ｏｌｉｇｏａｓｔｒｏｃｙｔｏｍａ）を有していた。

抗原特異的Ｔ細胞に対するテトラマー染色によって免疫応答を評価することにより、所定の抗原に対して特異的Ｔ細胞受容体を発現する循環血中のＴ細胞の存在を測定することおよびこの細胞の量の定量化が可能になる。このようなＴ細胞は、ＣＤ８も発現する場合、これらの抗原に対しするＣＴＬ集団を代表するものと推定される。この治験に選択された抗原は、最初に摘出された腫瘍に存在することが組織学的方法により示された既知の腫瘍抗原であった。反応性を標準的分析法を使用して、Ｇｐ１００（黒色腫関連の腫瘍抗原、ＧＢＭでも認められる）、Ｔｒｐ−２（チロシナーゼ関連タンパク質２）、Ｈｅｒ−２（上皮成長因子受容体関連受容体チロシンキナーゼ）、およびＣＭＶ（サイトメガロウィルス）を含む腫瘍関連抗原に関して調べた。

抗原特異的ＣＤ８^＋Ｔ細胞に対するテトラマー染色を、７例の患者で試み、陽性反応が５例で検出された。５例の反応性の患者のうち、２例は１×１０^６のＤＣで免疫し、３例は１０×１０^６ＤＣで免疫した。これらの結果は、本発明の方法により成熟したＤＣは、大多数の患者で免疫応答を誘導できることを示している。ほとんどの場合、その応答は抗原特異的細胞障害性Ｔ細胞応答を含んでいた。

先の実施例は、例示するために提供されているのであって、本発明の請求の範囲を限定するものではない。本発明の他の変更は当業者には直ちに明白であり、添付の請求の範囲によって限定される。本明細書に引用された全ての刊行物、特許、特許出願、その他の参考文献は、また本明細書中で参考としてその全体が援用される。

Claims (1)

1. 明細書に記載の発明。