JP2014520121A - 癌の処置における治療抗体の標的としてのFrizzled2 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、35 U.S.C.§119(e)の下で、その内容の全体が参照により本明細書に組み入れられる、2011年6月17日に提出された米国特許仮出願第61/498,353号の恩典を主張する。
本発明は、米国国立衛生研究所によって授与されたGM072872によって政府の支援を受けて行われた。米国政府は、本発明において一定の権利を有する。
本発明は、癌治療の分野に関する。
肝臓癌は、癌による死因の第3位であり、世界中で年間の死者はおよそ500,000人から100万人に及ぶ[1]。アメリカ癌学会は、2010年にアメリカで発症した肝臓癌の新規症例は約24,000例であり、これらの80%より多くが肝細胞癌(HCC)であると推定した。2010年にアメリカにおける推定で19,000人の死亡が肝臓癌に起因した。肝臓癌の発生率および死亡率は1980年代初期以降増加し続けている。
に特異的に結合する。
本発明の局面は、肝細胞癌細胞上のFrizzled 2受容体(Fzd2)が抗体に特異的結合すると、細胞の様々な腫瘍形成特性を低減させるという知見に関する。抗体が結合すると、細胞の遊走、細胞の浸潤ならびに細胞の増殖を低減させる。そのため、本発明の1つの局面は、腫瘍細胞の1つまたは複数の腫瘍形成特性(たとえば、増殖、遊走、および/または浸潤)を阻害する方法に関する。方法は、細胞におけるFzd2をダウンモジュレートする剤(たとえば、抗体またはその抗原結合断片)の有効量を腫瘍細胞に接触させて、それによって細胞においてFzd2をダウンモジュレートする段階を含む。1つの態様において、剤は、細胞においてFzd2を特異的にダウンモジュレートし、すなわち剤は、他の近縁のタンパク質(たとえば、本明細書において記述される他のFzdタンパク質)をダウンモジュレートしない。1つの態様において、剤は、Fzd2受容体の癌細胞による十分なインターナリゼーションを促進して、細胞の1つまたは複数の腫瘍形成特性を阻害する。1つの態様において、剤は、Fzd2に対するリガンド(Wnt5a)の結合を防止する。
本明細書において記述される方法は、多様な腫瘍細胞タイプにおいて用いるために適している。腫瘍は、原発腫瘍でありうるか、または二次腫瘍でありうる。腫瘍は、対象における任意の細胞または臓器を起源としうる。1つの態様において、腫瘍は上皮腫瘍である。1つの態様において、腫瘍は、対象の消化管、前立腺、卵巣、乳腺、頚部、中枢神経系、末梢神経系、肺、腎臓、網膜、血液、皮膚、肝臓、膵臓、または尿生殖器系(たとえば、精巣、膀胱)において発生する。
「frizzledタンパク質」または「frizzled受容体」という用語は、哺乳動物タンパク質ファミリーを意味する。Frizzledファミリーは、少なくとも10個の哺乳動物遺伝子を含む。ヒトFrizzled受容体は、Fzdl、Fzd2、Fzd3、Fzd4、Fzd5、Fzd6、Fzd7、Fzd8、Fzd9、およびFzd10を含む。異なるヒトFrizzled受容体の配列が公開されて入手可能である。哺乳動物Frizzledタンパク質は、多数の共通の構造モチーフを共有する。細胞外膜表面に位置するN末端の後に、シグナル配列、システイン残基10個の不変パターンを有するアミノ酸120個のドメイン、および高度に可変の親水性アミノ酸40〜100個の高度に多様な領域が続く。推定の疎水性セグメントは、親水性ループによって連結された7回膜貫通ヘリックスを形成して、膜の細胞内表面に位置するC末端で終わる。システインリッチドメイン(CRD)および膜貫通セグメントは強く保存され、細胞外CRDが可変のリンカー領域によって7回膜貫通らせんの束に繋がれるという作業モデルを示唆する。それゆえ、Frizzledタンパク質受容体は、アミノ末端リガンド結合ドメインを有するGタンパク質共役受容体と類似の動的な膜貫通シグナル伝達モデルに関係している。
Wnt5a(wingless-related MMTV integration site 5a)は、大きいシステインリッチ増殖因子ファミリーメンバーである。このファミリーのタンパク質は、高度に保存されて、自然に分泌される。Wnt5aタンパク質は、Fzd2を含む、細胞表面上の7回膜貫通ドメイン受容体のFrizzled(Fzd)ファミリーメンバーに結合して、これは、最終的に遺伝子の転写を調節する一連の細胞内事象を誘発する。これらの細胞内事象は、公知の2つのシグナル伝達経路、すなわち正規のWnt/β-カテニン経路(He et al, Science 275:652-654, 1997; Toyofuku et al, J. Cell Biol. 150:225-41, 2000; Kawakami et al, Cell 104:891-900, 2001)、およびWnt/Ca++経路(Slusarski et al, Dev. Biol. 182: 114-120, 1997; Kuhl et al, J. Biol. Chem. 275: 12701-12711, 2000; and Kuhl et al, Mech. Dev. 106:61-76, 2001)に従って分けられる。WNT5aの遺伝子発現のアップレギュレーションが様々なヒト癌において観察されており(Lejeune et al., Clin. Cancer Res. 1 :215-222, 1995; Tozzo et al., Cancer Res. 55:3495-3499, 1995)、WNT5aは、最近、ヒト転移性黒色腫において細胞の浸潤を促進することが報告されている(Weeraratna et al., Cancer Cell 1 :279-88, 2002)。細胞、組織、または特異的癌におけるWnt5aの発現レベルの決定は、米国特許第7,723,055号において詳細に記述されている。
1つの態様において、ダウンモジュレーション剤は、Fzd2に対して特異的である。本明細書においてFzd2のダウンモジュレーションに関連して用いられる特異的という用語は、他のFrizzledタンパク質または受容体(たとえば、Fzd1またはFzd3-Fzd10)などの他の関連タンパク質の有意なダウンモジュレーションが存在しないことを意味する。Fzd2を特異的にダウンモジュレートするが、他のFzd2タンパク質を有意にダウンモジュレートしない剤は、ルーチンの方法によって生成することができる。
Fzd2の細胞外領域に結合する抗体は、本明細書において記述される方法において用いるために特に適している。1つの態様において、抗体はFzd2に特異的に結合するが、関連するF***には認識可能に結合しない。Fzd2(たとえば、細胞外領域)に特異的に結合するが、他のFzdタンパク質に有意に結合しない抗体は、ルーチンの方法によって生成されるかまたはそうでなければ同定することができる。例として、Fzd2に対して特異的であるエピトープを用いて、本明細書において記述される方法によって、抗体またはその抗原結合断片を生成または同定することができる。そのようなエピトープの位置は、たとえばFzd2タンパク質のアミノ酸配列を、関連するFzdファミリーメンバーのアミノ酸配列と比較して、それによって非類似性領域を同定することによって決定することができる。1つの態様において、抗体は、Fzd2タンパク質の細胞外部分に結合する。Fzd2タンパク質の有用な細胞外部分は、24〜247番目のアミノ酸、125〜163番目のアミノ酸、134〜163番目のアミノ酸、および144〜163番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域を含むがこれらに限定されるわけではない。1つの態様において、抗体または抗原結合断片は、アミノ酸配列
を含むFzd2の断片に結合する。1つの態様において、抗体または抗原結合断片は、
アミノ酸配列
内のエピトープに結合する。1つの態様において、抗体または抗原結合断片は、Fzd2タンパク質(たとえば、図7に示されるアミノ酸配列を有する)の状況において存在する場合、アミノ酸配列
内のアミノ酸のサブセットに結合する。1つの態様において、抗体または抗原結合断片は、野生型Fzd2タンパク質の状況において
の19個またはそれ未満の連続アミノ酸に結合する。1つの態様において、抗体または抗原結合断片は、野生型Fzd2タンパク質の状況において、
の18個もしくはそれ未満、17個もしくはそれ未満、16個もしくはそれ未満、15個もしくはそれ未満、14個もしくはそれ未満、13個もしくはそれ未満、12個もしくはそれ未満、11個もしくはそれ未満、10個もしくはそれ未満、9個もしくはそれ未満、8個もしくはそれ未満、7個もしくはそれ未満、6個もしくはそれ未満、5個もしくはそれ未満、4個もしくはそれ未満、3個もしくはそれ未満、または2個もしくはそれ未満の連続アミノ酸に結合する。
剤を、細胞に対してその意図される効果を発揮することができるように、細胞に接触させる。1つの態様において、剤は、細胞の外部と単に相互作用させることによって(たとえば、抗体または抗原結合断片などによって受容体に結合することによって)細胞に対してその効果を発揮する。細胞の内部に作用する剤(たとえば、RNAi)は、細胞に接触させた場合に細胞によって容易に取り込まれる形(たとえば、細胞の取り込みおよび適切な細胞下位置への送達を容易にする製剤で)で送達されうる。1つの態様において、剤は、それがその効果を発揮することができるように、細胞によって容易に取り込まれる製剤に存在する。
1つの態様において、本明細書において記述される剤は、薬学的に許容可能な担体を含む組成物中の活性成分である(本明細書において薬学的組成物と呼ばれる)。そのような組成物は、本明細書において薬学的組成物と呼ばれる。「薬学的に許容可能な担体」は、標的化送達組成物を混合および/または対象に送達するための薬学的に許容可能な任意の手段を意味する。本明細書において用いられる「薬学的に許容可能な担体」という用語は、1つの臓器または体の部分からの対象剤の、もう1つの臓器または体の部分への運搬または輸送に関係する、液体または固体増量剤、希釈剤、賦形剤、溶媒、または封入材料などの薬学的に許容可能な材料、組成物、または媒体を意味する。各担体は、組成物の他の成分と適合性であるという意味において「許容可能」でなければならず、対象、たとえばヒトへの投与に適合する。そのような組成物は、本明細書において記述される投与経路などの多数の経路の1つまたは複数によって投与するために具体的に調合することができる。補助活性成分も同様に、組成物に組み入れることができる。本明細書において記述される剤、製剤、または薬学的組成物を対象に投与する場合、好ましくは治療的有効量が投与される。本明細書において用いられる「治療的有効量」という用語は、状態の改善または治癒が起こる量を意味する。
薬学的組成物の投与は、その中に含まれる剤が標的細胞または組織(たとえば、腫瘍または癌)に接触する手段によって行われる。そのような経路の例は、局所または全身であり、これには非経口、腸管内、および表面投与が含まれるがこれらに限定されるわけではない。非経口投与は通常、注射によって行われ、これには、静脈内、筋肉内、動脈内、髄腔内、脳室内、嚢内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、経気管、皮下、表皮下、関節内、嚢下、クモ膜下、脊髄内、脳脊髄内、腫瘍内および胸骨内注射および注入が含まれるがこれらに限定されるわけではない。投与は、当業者によって必要であると決定される全身投与または局所でありうる。局所投与は、標的組織の位置に向けて行うことができる。本明細書において記述される明記された投与様式のための薬学的組成物および製剤もまた、本発明によって包含される。本発明の化合物は、注射によって、または経時的に徐々に注入することによって非経口投与することができ、蠕動ポンプ手段によって送達することができる。
ダウンモジュレーションは、タンパク質(Fzd2)の1つまたは複数の機能(たとえば、リガンド結合、シグナル伝達等)を低減させることを意味する。これは、細胞における機能的Fzd2そのものの産生を直接阻害することによって(たとえば、遺伝子発現またはタンパク質合成を低減させることによって)および/またはFzd2機能/活性を低減させることによって行うことができる。Fzd2機能/活性は、たとえばFzd2タンパク質そのものを直接阻害することによって(たとえば、リガンド結合を阻害することによって)、またはそうでなければそのタンパク質を分解の標的とすることによって、低減させることができる。そのため、本発明において有用な剤は、Fzd2遺伝子発現もしくはタンパク質合成を阻害する、または1つもしくは複数のFzd2機能もしくは活性を阻害する剤である。ダウンモジュレーションは、細胞表面上の受容体の量の低減によって(たとえば、受容体のインターナリゼーションの促進によって)行われうる。本発明の1つの局面において、細胞表面上に発現されるFzd2レベルは、細胞においてFzd2をダウンモジュレートする剤を細胞に接触させることによって低減される。1つの態様において、剤は、細胞のFzd2に特異的に結合して、細胞によるFzd2のインターナリゼーションを促進する。そのような剤は、本明細書において記述される。有意な量のダウンモジュレーションは、本明細書において記述される方法において有用な結果を生じると予想される。1つの態様において、ダウンモジュレーションによって、処置を行わない場合に典型的に観察されるまたは予想されるレベルと比較して、本明細書において記述される方法によって細胞におけるFzd2タンパク質またはmRNAレベルの少なくとも5%、少なくとも10%、少なくとも20%、少なくとも30%、少なくとも40%、または少なくとも50%、または少なくとも60%、または少なくとも70%、または少なくとも80%、または少なくとも90%、または少なくとも99%低減が起こる。
1.Fzd2をダウンモジュレートする抗体またはその抗原結合断片の治療的有効量を対象に投与する段階を含み、その結果、該抗体またはその抗原結合断片が、該対象の癌細胞に送達されて、それによって癌を処置する、対象における癌を処置する方法。
2.Fzd2をダウンモジュレートする抗体またはその抗原結合断片の治療的有効量を対象に投与する段階を含み、その結果、該抗体またはその抗原結合断片が癌細胞に送達されて、それによって癌を処置する、対象における癌細胞の増殖、遊走、および/または浸潤を阻害する方法。
3.抗体が、Fzd2に特異的に結合する、段落1または2のいずれかに記載の方法。
4.抗体がFzd2に結合し、かつ癌細胞によるFzd2受容体のインターナリゼーションを促進する、段落3に記載の方法。
5.Fzd2に対する抗体がFzd2に対するリガンドの結合を防止する、段落3〜4のいずれかに記載の方法。
6.抗体がFzd2タンパク質の細胞外部分に特異的に結合する、段落3〜5のいずれか1つに記載の方法。
7.抗体が、Fzd2の24〜247番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域内でFzd2に特異的に結合する、段落3〜6のいずれか1つに記載の方法。
8.抗体が、Fzd2の125〜163番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域内でFzd2に特異的に結合する、段落3〜7のいずれか1つに記載の方法。
9.抗体が、Fzd2の134〜163番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域内でFzd2に特異的に結合する、段落3〜7のいずれか1つに記載の方法。
10.抗体が、Fzd2の144〜163番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域内でFzd2に特異的に結合する、段落3〜7のいずれか1つに記載の方法。
11.抗体が、エピトープ
に特異的に結合する、段落3〜10のいずれか1つに記載の方法。
12.抗体がモノクローナル抗体である、段落3〜11のいずれか1つに記載の方法。
13.抗体がポリクローナル抗体である、段落3〜11のいずれか1つに記載の方法。
14.抗体がヒト化抗体である、段落3〜12のいずれか1つに記載の方法。
15.癌が、消化管癌、前立腺癌、卵巣癌、乳癌、頭頚部癌、肺癌、非小細胞肺癌、神経系の癌、腎臓癌、網膜癌、皮膚癌、肝臓癌、膵臓癌、尿生殖器癌、および膀胱癌からなる群より選択される、段落1〜14のいずれか1つに記載の方法。
16.癌が肝臓癌である、段落1〜15のいずれか1つに記載の方法。
17.癌が後期肝細胞癌である、段落1〜16のいずれか1つに記載の方法。
18.癌がFzd2の過剰発現を示す、段落1〜17のいずれか1つに記載の方法。
19.癌がWnt5aの過剰発現を示す、段落1〜18のいずれか1つに記載の方法。
Fzd2は後期および分化が不良なHCCにおいて過剰発現される
肝細胞癌におけるWnt受容体発現に関する最初の研究により、後期および分化の不良なHCCにおいてFrizzled 2(Fzd2)が顕著に過剰発現されることが明らかとなった(図1)。Fzd2遺伝子の転写物レベルを、組織病理学的に確認されたHCC(ステージI、n=7;ステージII、n=8、ステージIII、n=8、ステージIV、n=3;腫瘍の病変、n=14)を有する患者から得た組織試料48個と共に正常な肝臓試料(n=8)において測定した。Fzd2は、正常組織と比較して後期HCC(ステージIIIおよびIV)において有意に過剰発現されることが見いだされた(P<0.05)。さらに、Fzd2発現レベルは、組織分化の程度と反比例した。分化が中等度から不良である腫瘍は、良好に分化した腫瘍タイプと比較してより高いレベルのFzd2を示した。さらに、本発明者らは、より上皮様のHepG2 HCC細胞株と比較して、間葉様で転移性のHCC細胞株(FOCUS)においてFzd2が高度に過剰発現されることを見いだした(図2)。
Wntタンパク質は、増殖、遊走、および浸潤において極めて重要な役割を果たすことが示されている増殖因子である。Wntタンパク質は、Fzdファミリー受容体に結合して活性化することによって、その効果を媒介する。Fzd2のsiRNA媒介ノックダウンまたは抗Fzd2抗体による処置は、インビトロでFOCUS細胞のWnt媒介細胞遊走および浸潤を阻害することが見いだされ、Fzd2によって媒介される非標準Wntシグナル伝達がこれらのプロセスにとって極めて重要であることを示唆している(図3)。
細胞表面ビオチニル化アッセイを用いて、抗Fzd2抗体によるFOCUS細胞の処置が、Fzd2のインターナリゼーションおよび分解を引き起こすことが示された。具体的に、Fzd2は、その同系のリガンドであるWnt5aの非存在下で細胞膜に発現されることが見いだされた。細胞表面でのFzd2のタンパク質レベルは、Wnt5a刺激によってまたは抗Fzd2抗体による処置によって顕著に減少した(図4)。
HCCの病因におけるFzd2変化の程度を理解するために、FOCUS細胞を無胸腺マウスに皮下注射して、細胞の腫瘍増殖物形成能をモニターした。FOCUS細胞はこのモデルにおいて急速に増殖して、4日までに測定可能な腫瘍を生じた。増殖物がおよそ200 mm3に達すると、マウスを無作為に2群に分けた(対照および処置)。処置群には、1日おきにFzd2-siRNAの注射を2週間行った(MWF)が、対照群にはインビボトランスフェクション試薬のみを皮下注射した。Fzd2に対するsiRNAの存在下で、腫瘍の増殖は、指数増殖期において顕著な遅延を示し、有意に遅かった(図5)。興味深いことに、処置群の腫瘍は、Fzd2-siRNA注射を中止すると、急速に増殖し始めた。これらのデータは、FOCUS細胞の高い腫瘍形成能が部分的にFzd2を通して媒介されることを示唆している。
抗Fzd2抗体((R & D Systems; MAB 1307)のエピトープをマッピングするために、Fzd2のN末端領域における26〜172番目の残基に及ぶ3つの重なり合う構築物を設計した(図6A)。HEK293細胞において過剰発現させると、断片1(完全長、26〜172番目のアミノ酸)および断片3(C末端領域、100〜172番目のアミノ酸)のみが抗Fzd2抗体によって認識され、このことは、抗Fzd2抗体のエピトープが断片3領域内に存在することを示唆している(図6A)。抗Fzd2抗体のエピトープをさらにマッピングするために、断片3に及ぶ3つの重なり合うペプチドを合成した。ペプチドアレイを用いて、ペプチド2(134〜163番目のアミノ酸)のみが抗Fzd2抗体によって認識されることが認められた(図6B)。抗Fzd2抗体はペプチド1(100〜132番目のアミノ酸)または重なり合うペプチド2(125〜143番目のアミノ酸)を認識しなかったことから、抗Fzd2抗体のエピトープは、Fzd2のN末端領域の残基134 -
内に存在すると決定された。このエピトープは、Fzd2に対して非常に特異的である領域に存在し、他のFzdファミリーメンバーと相同性を共有せず、抗Fzd2抗体の高い特異性を示唆する。これらの配列は、NCBI参照番号NP_001457としてヒトfzd-2に関して示される配列に対応する。
細胞株および試薬
肝臓癌細胞株HepG2およびHEK293T細胞をAmerican Type Culture Collection(ATCC, Rockville, MD)から得た。FOCUS細胞は、J. Wands(Brown University)から得たが、これらは既に記述されている[5]。細胞株は全て、10%(v/v)ウシ胎児血清(FBS)、2 mMグルタミン、100 IU/mLペニシリンおよび100μg/mLストレプトマイシンを添加したダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)において維持した。
HepG2およびFOCUS細胞から血清を24時間枯渇させて、総細胞RNAをRNeasy Mini Kit(QIAGEN, Santa Clara, CA)を用いて単離した。Wnt関連遺伝子84個のmRNAレベルをRT2 profiler(商標)qPCRアレイ(SA Biosciences Corporation, Frederick, MD)を用いて決定した。簡単に説明すると、総RNA 1μgをRT2 First Strand Kit(SA Bioscience)を用いて第一鎖cDNAに逆転写した。得られたcDNAを、84個のWnt関連遺伝子および5個のハウスキーピング遺伝子(B2M、HPRT1、RPL13A、GAPDH、およびACTB)を含む96個の異なる遺伝子に関するヒト遺伝子特異的プライマーを用いてqPCRに供した。qPCR反応を、Mx3000P(商標)QPCRシステム(Stratagene, La Jolla, CA)を用いて、95℃で10分間の初回変性段階の後に、95℃で15秒間および60℃で60秒間の40サイクルによって行った。
X=2-Ct(GOI)/2-Ct(CTL) (1)
式中Ctは、閾値サイクル(ベースラインシグナルより上のレポーター蛍光の増加が検出されるサイクル数)である。GOIは、関心対象遺伝子を意味し、CTLは、対照のハウスキーピング遺伝子を意味する。この方法は、CtがmRNAの初回濃度と反比例すること、および産物量がサイクルごとに倍加することを仮定している。
腫瘍生検に由来する一連のcDNA試料48個をOriGene Technologies Inc.(Rockville, MD)から得た。試料は、肝臓癌の4つ全てのステージを表すと共に正常組織を表した。遺伝子発現を上記のようにqPCRによって評価した。癌のデータを、正常組織試料から収集したデータに対して標準化して、有意水準0.05でクラスカル-ウォリス検定を用いて分析した。
細胞の遊走は、QCM(商標)化学走性96-ウェル細胞遊走アッセイキット(Chemicon, Temecula, CA)を用いて評価した。簡単に説明すると、Fzd2-siRNAまたは対照siRNAを一過性に48時間トランスフェクトしたFOCUS細胞をDMEM中に浮遊させて、上室に入れた。Wnt5a(200 ng/mL)を含むDMEMを下室に2時間添加した。下室に遊走した細胞を、メンブレンから解離させて溶解し、CyQuant GR色素を添加することによって定量した。測定を3つ組みで行って、対照細胞に対して標準化した。
細胞浸潤アッセイは、CytoSelect(商標)細胞浸潤アッセイ(Cell Biolabs)を用いて、製造元の説明書に従って測定した。簡単に説明すると、Fzd2-siRNAまたは対照siRNAを一過性に48時間トランスフェクトしたFOCUS細胞を播種して、Wnt5a(200 ng/mL)に向かって2時間浸潤させた。浸潤メンブレンの底部の浸潤細胞を染色した後、CyQuant GR色素を添加することによって定量した。測定は3つ組みで行い、対照細胞に対して標準化した。
表面タンパク質のビオチニル化を、記述のように行った[6]。簡単に説明すると、PBS(対照)Wnt5a(100 ng/mL)または抗Fzd2抗体(10μg/ml最終濃度)のいずれかによって1時間処置したFOCUS細胞を、1 mM MgCl2および0.1 mM CaCl2を含むPBSによって2回洗浄した後、ビオチニル化緩衝液(154 mM NaCl、10 mM Hepes[pH 7.6]、3 mM KCl、1 mM MgCl2、0.1 mM CaCl2、10 mMグルコース、0.5 mg/mL EZ Link Sulfo HNS-SS-ビオチン(Thermo Scientific, Rockford, IL)中で4℃で40分間インキュベートした。次に、細胞を100 mMグリシンを含むPBS中で4℃で5分間インキュベートした後、1 mM MgCl2および0.1 mM CaCl2を含むPBS中で1回洗浄した。細胞を溶解して、総タンパク質濃度をBCAタンパク質アッセイ(Pierce, Rockford, IL)を用いて決定した。ビオチニル化タンパク質をストレプトアビジンビーズによって免疫沈降させて、総表面Fzd2を、以下に記述されるように、SDS-PAGEおよびウェスタンブロッティングによって決定した。
インビボ実験は全て、6週齢から8週齢の無胸腺ヌードマウス(NIH)において行った。マウスを一定温度および湿度のクリーンルームで維持した。FOCUS細胞をマウスの各脇腹に皮下接種した。細胞(2×106個、浮遊液)を0日目に注射して、腫瘍の増殖を、2から3日毎にノギスを用いて腫瘍の直径を測定することによって追跡した。腫瘍の体積(V)を式:V=AB2/2(A、軸の直径;B、回転方向の直径)を用いて計算した。増殖物がおよそ200 mm3に達すると、マウスを無作為に2群(対照および処置)に分けた。処置群にはFzd2-siRNA注射を1日おきに(MWF)2週間行ったが、対照群にはインビボトランスフェクション試薬のみを皮下注射した。Fzd2に対するsiRNAの存在下では、腫瘍の増殖は、指数増殖期の顕著な遅延を示し、有意に遅かった。
細胞をリン酸緩衝生理食塩液(PBS)中ですすいで、溶解緩衝液(1 mMオルトバナジン酸ナトリウム、1 mMフッ化フェニルメチルスルホニル(PMSF)、10μg/mLアプロチニン、および10μg/mLロイペプチンを添加した、20 mM Tris-HCl、150 mM NaCl、1%Triton X-100(v/v)、2 mM EDTA、pH 7.8)中で溶解した。BCAタンパク質アッセイ(Pierce, Rockford, IL)を用いてタンパク質濃度を決定して、標準的な技法を用いてイムノブロット実験を行った。定量的イムノブロットに関して、一次抗体を、1:5000倍希釈のIRDye 680標識ヤギ抗ウサギIgGまたはIRDye 800標識ヤギ抗マウスIgG(LI-COR Biosciences, Lincoln, NE)によって検出した。バンドを可視化して、Odyssey近赤外イメージングシステム(LI-COR Biosciences)を用いて定量した。
抗Fzd2抗体のエピトープをマッピングするために、26〜172番目の残基に及ぶ3つの重なり合う断片を、pcDNA3.1哺乳動物発現ベクターにおいて構築した。これらの構築物をHEK293細胞において一過性にトランスフェクトさせて、48時間後に収集した全細胞溶解物を、上記のように抗Fzd2抗体によるウェスタンブロッティングに供した。断片3(100〜172番目のアミノ酸)の領域をさらにマッピングするために、3つの重なり合うペプチドを民間企業が合成した(LifeTein, NJ)。Fzd2完全長遺伝子または空のベクター(陰性)を発現するHEK293細胞からのこれらのペプチドおよび溶解物を、Aushon 2470アレイヤーを用いてニトロセルロースコーティングスライドガラス上にプリントした。ペプチドアレイスライドを3%(v/v)BSAによってブロックして、抗Fzd2抗体によってプロービングした。スポットをOdyssey近赤外イメージングシステム(LI-COR Biosciences)を用いて可視化および定量した。
Fzd2ノックダウンまたは抗Fzd2抗体による処置は、インビトロで細胞の遊走および浸潤を低減させる
RNAiによるFzd2のノックダウン、または細胞の抗Fzd2抗体への曝露により、HCC細胞の細胞の運動性および浸潤性が低減することが示され、腫瘍形成表現型は正常な上皮様状態へと復帰する(図8)。細胞表面ビオチニル化アッセイを用いて、抗Fzd2抗体によってFOCUS HCC細胞を処置すると、Fzd2のインターナリゼーションおよび分解を引き起こすことが見いだされた(図8)。Wnt5aによって刺激すると、Fzd2の細胞表面レベルは顕著に減少したが、このダウンレギュレーションはまた、抗Fzd2抗体によって処置した細胞においても観察される。しかし、抗体は、下流のシグナル伝達を活性化しない。
HCCの病因におけるFzd2変化の程度を理解するために、FOCUS細胞を無胸腺マウスに皮下注射して、細胞の腫瘍増殖物形成能をモニターした。FOCUS細胞はこの異種移植片腫瘍モデルにおいて急速に増殖して、4日までに測定可能な腫瘍を産生した。腫瘍が約200 mm3に達すると、マウスを無作為に2群(対照および処置)に分けた。処置群には1日おきに(MWF)Fzd2-siRNA注射を2週間行ったが、対照群にはインビボトランスフェクション試薬のみを皮下注射した。Fzd2に対するsiRNAの存在下で、腫瘍の増殖は指数増殖期の顕著な遅延を示し、有意に遅かった(図8E)。処置群における腫瘍は、Fzd2-siRNA注射を中断すると、急速な増殖を再開した。これらのデータは、FOCUS細胞の高い腫瘍形成能が、部分的にFzd2によって媒介されること、およびFzd2-siRNAが細胞死よりむしろ細胞抑制を誘導することを示唆している。同様に、Fzd2に対するshRNAを用いるFzd2の安定なノックダウンもまた、ヌードマウスにおける腫瘍の増殖を低減させた(図8F)。
カプランマイヤー生存データは、転移性HCC患者が高いFzd2受容体発現を有し、低いFzd2発現を有する無転移患者より実質的に短い生存(p=0.0053)に相関したことを示している(図9)。
エピトープマッピングしたfrizzled-2抗体(実施例1において考察)およびfrizzled-2に関して結合分析を行った。分析の結果を以下の表1および図10に示す。抗体は、Fzd2に対して高い親和性の結合を有すると決定された(<20 nM)。
細胞株および試薬
肝臓癌細胞株SNU449、SNU475、およびHepG2細胞をAmerican Type Culture Collection(ATCC, Rockville, MD)から得た。FOCUS細胞は、J. Wands(Brown University)から得て、既に記述されている[1]。細胞株は全て、10%(v/v)ウシ胎児血清(FBS)、2 mMグルタミン、100 IU/mLペニシリン、および100μg/mLストレプトマイシンを添加したダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)において維持した。
細胞株にFzd2-shRNA構築物(Open Biosystems)をトランスフェクトして、トランスフェクションの48時間後、4μg/mLピューラマイシン(puramycin)(Invitrogen)中で選択した。クローンをFACSによってソーティングして、ウェスタンブロットによってFzd2ノックダウンに関してスクリーニングした。安定な細胞株を、10%FBS、および2μg/mLピューラマイシンを添加したDMEMにおいて維持した。
HepG2およびFOCUS細胞から血清を24時間枯渇させて、総細胞RNAをRNeasy Mini Kit(QIAGEN, Santa Clara, CA)を用いて単離した。84個のWnt関連遺伝子のmRNAレベルを、RT2 profiler(商標)qPCRアレイ(SA Biosciences Corporation, Frederick, MD)を用いて決定した。簡単に説明すると、総RNA 1μgをRT2 First Strand Kit(SA Biosciences)を用いて第一鎖cDNAに逆転写した。得られたcDNAを、84個のWnt関連遺伝子および5個のハウスキーピング遺伝子(B2M、HPRT1、RPL13A、GAPDH、およびACTB)を含む96個の異なる遺伝子に関するヒト遺伝子特異的プライマーを用いてqPCRに供した。qPCR反応を、Mx3000P(商標)QPCRシステム(Stratagene, La Jolla, CA)を用いて、95℃で10分間の初回変性段階の後に、95℃で15秒間および60℃で60秒間の40サイクルによって行った。
X=2-Ct(GOI)/2-Ct(CTL) (1)
式中Ctは閾値サイクル(ベースラインシグナルより上のレポーター蛍光の増加が検出されるサイクル数)である。GOIは、関心対象遺伝子を意味し、CTLは、対照のハウスキーピング遺伝子を意味する。この方法は、CtがmRNAの初回濃度と反比例すること、および産物量がサイクルごとに倍加することを仮定している。
細胞の遊走は、QCM(商標)化学走性96-ウェル細胞遊走アッセイキット(Chemicon, Temecula, CA)を用いて評価した。簡単に説明すると、Fzd2-siRNAまたは対照siRNAを一過性に48時間トランスフェクトしたFOCUS細胞をDMEM中に浮遊させて、上室に入れた。Wnt5a(200 ng/mL)を含むDMEMを下室に2時間添加した。下室に遊走した細胞を、メンブレンから解離させて溶解し、CyQuant GR色素を添加することによって定量した。測定を3つ組で行って、対照細胞に対して標準化した。
FOCUS細胞の遊走に及ぼすFzd2ノックダウンの効果を、創傷治癒アッセイを用いて調べた。FOCUS細胞を96ウェルプレート(Essen ImageLock, Essen Instruments, MI, US)において平板培養して、創傷スクラッチャー(Essen Instruments)によって引っ掻き傷を作製した。異なる用量の低分子阻害剤を創傷作製後直ちに添加して、創傷のコンフルエンスをIncucyte Live-Cellイメージングシステムおよびソフトウェア(Essen Instruments)を用いてモニターした。各実験において少なくとも4つの生物学的複製物の平均相対的創傷密度を比較することによって、創傷の閉鎖を48〜72時間のあいだ毎時間観察した。
細胞浸潤アッセイは、CytoSelect(商標)細胞浸潤アッセイ(Cell Biolabs)を用いて製造元の説明書に従って測定した。簡単に説明すると、Fzd2-siRNAまたは対照siRNAを一過性に48時間トランスフェクトしたFOCUS細胞を播種して、Wnt5a(200 ng/mL)に向かって2時間浸潤させた。浸潤メンブレンの底部の浸潤細胞を染色した後、CyQuant GR色素を添加することによって定量した。測定を3つ組で行い、対照細胞に対して標準化した。
表面タンパク質のビオチニル化を、記述されるように行った[2]。簡単に説明すると、PBS(対照)、Wnt5a(100 ng/ml)または抗Fzd2抗体のいずれかによって1時間処置したFOCUS細胞を1 mM MgCl2および0.1 mM CaCl2を含むPBSによって2回洗浄した後、ビオチニル化緩衝液(154 mM NaCl、10 mM Hepes[pH 7.6]、3 mM KCl、1 mM MgCl2、0.1 mM CaCl2、10 mMグルコース、0.5 mg/ml EZ Link Sulfo HNS-SS-ビオチン(Thermo Scientific, Rockford, IL)中で4℃で40分間インキュベートした。細胞を、100 mMグリシンを含むPBS中で4℃で5分間インキュベートした後、1 mM MgCl2および0.1 mM CaCl2を含むPBS中で1回洗浄した。細胞を溶解して、総タンパク質濃度をBCAタンパク質アッセイ(Pierce, Rockford, IL)を用いて決定した。ビオチニル化タンパク質をストレプトアビジンビーズによって免疫沈降させて、総表面Fzd2を以下に記述されるように、SDS-PAGEおよびウェスタンブロッティングによって決定した。
インビボ実験は全て、6週齢から8週齢の無胸腺ヌードマウス(NIH)を用いて行った。マウスを一定温度および湿度のクリーンルームで維持した。FOCUS細胞をマウスの各脇腹に皮下接種した。細胞(2×106個、浮遊液)を0日目に注射して、腫瘍の増殖を、2から3日毎にノギスを用いて腫瘍の直径を測定することによって追跡した。腫瘍の体積(V)を式:V=AB2/2(A、軸の直径;B、回転方向の直径)を用いて計算した。増殖物がおよそ200 mm3に達すると、マウスを無作為に2群(対照および処置)に分けた。処置群にはFzd2-siRNA注射を1日おきに(MWF)2週間行ったが、対照群にはインビボトランスフェクション試薬のみを皮下注射した。Fzd2に対するsiRNAの存在下では、腫瘍の増殖は、指数増殖期の顕著な遅延を示し、有意に遅かった。
細胞をリン酸緩衝生理食塩液(PBS)中ですすいで、溶解緩衝液(1 mMオルトバナジン酸ナトリウム、1 mMフッ化フェニルメチルスルホニル(PMSF)、10μg/mLアプロチニン、および10μg/mLロイペプチンを添加した、20 mM Tris-HCl、150 mM NaCl、1%Triton X-100(v/v)、2 mM EDTA、pH 7.8)中で溶解した。BCAタンパク質アッセイ(Pierce, Rockford, IL)を用いてタンパク質濃度を決定して、標準的な技法を用いてイムノブロット実験を行った。定量的イムノブロットに関して、一次抗体を、1:5000倍希釈のIRDye 680標識ヤギ抗ウサギIgGまたはIRDye 800標識ヤギ抗マウスIgG(LI-COR Biosciences, Lincoln, NE)によって検出した。バンドを可視化して、Odyssey近赤外イメージングシステム(LI-COR Biosciences)を用いて定量した。
抗Fzd2抗体のエピトープをマッピングするために、26〜172番目の残基に及ぶ3つの重なり合う断片を、pcDNA3.1哺乳動物発現ベクターにおいて構築した。これらの構築物をHEK293細胞に一過性にトランスフェクトして、48時間後に収集した全細胞溶解物を上記のように抗Fzd2抗体によるウェスタンブロッティングに供した。断片3(100〜172番目のアミノ酸)の領域をさらにマッピングするために、3つの重なり合うペプチドを民間企業が合成した(LifeTein, NJ)。Fzd2完全長遺伝子または空のベクター(陰性)を発現するHEK293細胞からのこれらのペプチドおよび溶解物を、Aushon 2470アレイヤーを用いてニトロセルロースコーティングスライドガラス上にプリントした。ペプチドアレイスライドを3%(v/v)BSAによってブロックして、抗Fzd2抗体によってプロービングした。スポットをOdyssey近赤外イメージングシステム(LI-COR Biosciences)を用いて可視化および定量した。
HCC患者40人のカプランマイヤー生存曲線を、既に公表されたデータセット[3]を用いて作製した。
Cignal(商標)45-パスウェイレポーターアレイ(SABiosciences, Frederick, MD)を用いて、GFPまたはFzd2-shRNAを発現するFOCUS細胞において、製造元の説明書に従って45個の異なるシグナル伝達経路を同時に評価した。簡単に説明すると、Cignal Finder 96ウェルプレートの各プレートウェル中のレポーターDNA構築物を、Opti-MEM 50μlに浮遊させた後、希釈したLipofectamineトランスフェクション試薬50μlと混合した。細胞をOpti-MEM中で浮遊させて、リバーストランスフェクションにより細胞にパスウェイレポーターを導入するためにウェル(細胞10,000個/ウェル)に播種した。細胞を5%CO2で37℃で48時間インキュベートした。次に細胞を溶解して、ホタルおよびウミシイタケ(内部トランスフェクション対照)ルシフェラーゼ活性を定量的発光アッセイ(Dual Glo, Promega)によって測定した。
Cignal Lenti STAT3レポーターキット(SABiosciences)を用いて、STAT3経路の活性化を評価するために、製造元のプロトコールに従ってレンチレポーターを細胞に形質導入した。簡単に説明すると、FOCUS細胞を6ウェルプレートのウェル(細胞200,000個/ウェル)に播種して、湿潤5%CO2インキュベータ中で37℃で24時間増殖させた。次に、細胞に、レンチCMVレポーターまたはレンチSTAT3レポーター(レンチウイルス粒子100μl/ウェル)を形質導入して、10μg/ml SureEntry形質導入試薬を含む抗生物質を含まない増殖培地2 mlと共に24時間インキュベートした後、新鮮な増殖培地中で37℃および5%CO2でさらに24時間インキュベートした。その後、細胞を、形質導入細胞を選択するための増殖培地中で4.0μg/mlピューロマイシンによって処置した。ピューロマイシン抵抗性細胞コロニーを100 mm細胞培養皿において増殖させて、10%FBSおよび2μg/mLピューラマイシンを添加したDMEMにおいて維持した。
GFP-shRNAまたはFzd2-shRNAを発現するFOCUS細胞を、無血清DMEM中で48時間培養した後、培養上清中のサイトカインレベルをヒトサイトカインアレイキット(R&D Systems, Minneapolis, MN)を用いて製造元のプロトコールに従って検出した。簡単に説明すると、上清を、36個のサイトカインに対する抗体をアレイにしたメンブレンと共に4Cで終夜インキュベートした。2回洗浄後、メンブレンをビオチン結合一次抗サイトカイン抗体と共に2時間インキュベートした後、2回洗浄した。次にメンブレンをIRDye 800CWストレプトアビジン(LI-COR)と共に室温で1時間インキュベートした後、2回洗浄した。シグナルを、Odyssey近赤外イメージングシステム(LI-COR Biosciences)を用いて検出および定量した。
Fzd2媒介遊走および浸潤が、少なくとも部分的にプラスミノーゲン/プラスミノーゲン活性化因子系(PAI-1)のセリンプロテアーゼおよびマトリクスメタロプロテナーゼ(MMP2、MMP3、およびMMP9)ファミリーからのいくつかのプロテアーゼの放出が原因であることは決定されている。これらのプロテアーゼの発現および放出は、後期HCC細胞株におけるFzd2受容体の発現と高度に相関している(p<0.01)。さらに、Stat3およびsrcファミリーキナーゼを含むFzd2の下流の新規シグナル伝達経路が解明されている。具体的に、srcファミリーキナーゼおよびStat3のリン酸化状態の減少ならびにその転写活性の減少は、低分子干渉によるFzd-2のノックダウンまたは抗体処置に関連している。このように、stat3およびsrcファミリーキナーゼのリン酸化状態は、Fzd2治療物質の近位の薬力学バイオマーカーとして用いることができる。
MMP、特にMMP9、2および3は、40年より長く、癌に関連付けられている。ECM分解におけるその役割のほかに、多数の証拠が、癌細胞の浸潤および転移にとって極めて重要である血管新生、リンパ管新生、および脈管新生におけるその役割を示唆している。たとえば、MMP9は、結腸および膵臓癌などのいくつかの癌において、隔離されたVEGFのその受容体に対する結合の生物学的利用率を増加させる。MMP9はまた、HCCにおける重要な増殖因子であるTGF-βのタンパク質分解による活性化を媒介する。
プラスミノーゲンは、ECM分解におけるもう1つの重要な系である。しかし、低いのではなくてむしろ驚くほど高いレベルのプラスミノーゲン活性化因子阻害剤(PAI-1)が、多様な異なる癌に罹患している患者の不良な生存予後を予測する。PAI-1の明らかな逆説的役割は、インビトロおよびインビボの両方において腫瘍の増殖および血管新生を促進することを証明している。PAI-1によるタンパク質分解切断の厳密な制御が新しい血管の形成にとって必須であることが示されている。さらに、ビトロネクチン、uPAR、およびインテグリンとの相互作用を遮断することによって、PAI-1は、細胞外マトリクスからの細胞の剥離を誘導して、それによって細胞の遊走および腫瘍の浸潤を促進する可能性がある。
細胞内接着分子-1(ICAM-1)の発現は、固形腫瘍の予後不良と相関することが確立されている。転移性癌の浸潤におけるICAM-1の原因的役割は、乳腺および肺などの癌において示されている。細胞表面でのICAM-1の発現は、一連のマクロファージおよび好中球の動員および活性化による腫瘍の転移能を必然的に決定して、血管内およびリンパ管内障壁の破壊ならびに内皮を超えての腫瘍細胞遊走を可能にする。循環中に存在するICAM-1の可溶性型(sICAM-1)は、臨床的に評価することが難しいICAM-1の直接のマーカーである。
Stat3、シグナル伝達分子および転写因子の発現の脱調節は、癌の約80%に関係しており、それによって癌細胞の増殖および浸潤が起こる。
Stat3をリン酸化することができるSrcファミリーキナーゼの脱調節は、多くのタイプの癌に関係している。これらの分泌型タンパク質およびFzd2の下流のシグナル伝達分子の発見は、Fzd2がどのように腫瘍細胞の遊走および浸潤を促進するかに関する機序の詳細の一助となるのみならず、Fzd2経路を標的とする治療物質に関する薬力学マーカーとして用いることができる。
ヒトサイトカインアレイを作製して、これを用いてタンパク質発現を分析した。アレイは、ニトロセルロースメンブレン上に2つ組みでスポットした抗体からなり、条件培地中での36個のサイトカイン、ケモカイン、および急性期タンパク質のハイスループット多検体プロファイリングを可能にする。FOCUS-WTまたはFOCUS-shFzd2細胞からの条件培地をビオチニル化検出抗体のカクテルと混合した後、ヒトサイトカインアレイと共にインキュベートした。次に、アレイを、赤外線-800標識ストレプトアビジンと共にインキュベートした後LiCor odysseysイメージングシステムを用いて赤外線検出を行った。分析結果を図11に示す。ヒトサイトカインアレイの画像をFOCUS-WT(図11A上)およびFOCUS-shFzd2(図11A下)からの条件培地によってプロービングした。検出後、アレイデータを定量してタンパク質プロファイルを作製した。このアッセイを用いて測定した36個のサイトカインの量を、図11Bに示す。放出されたSerpinE1およびsiCAM1の量は、FOCUS-shFzd2細胞からの条件培地において有意に低かった。
初期の非侵襲性(HepG2およびHuh7)および後期の侵襲性(SNU475およびFOCUS)細胞株における様々なMMPおよびSerpinE1の相対的mRNA発現を調べるために分析を行った。結果を図12に示す。
FOCUS-CTLまたはFOCUS-shFzd2細胞における様々なMMPおよびSerpinE1の相対的mRNA発現を調べるために分析を行った。結果を図13に示す。
野生型FOCUS細胞およびFzd2をノックダウンしたFOCUS細胞におけるSTAT3、ERK1/2およびMEK1/2細胞のリン酸化を調べるための分析を行った。類似の分析を他の後期細胞株および抗Fzd2抗体による処置を行った細胞において行った。結果を図14Aに示す。野生型FOCUSおよびSNU449細胞ならびにFzd2またはSTAT3をノックダウンした細胞におけるレポーター/ルシフェラーゼに基づくアッセイを用いたStat3転写活性を図14Aに示す。類似の結果が、他の後期細胞株および抗Fzd2抗体による処置において証明された(図14C)。後期HCC細胞株(FOCUS)の細胞遊走に及ぼすStat3に対する低分子阻害剤の効果を図14Cに示す。
Srcファミリーキナーゼのリン酸化を野生型FOCUS細胞、およびFzd2をノックダウンしたFOCUS細胞、ならびに他の後期細胞株において分析した(図15A)。低分子阻害剤(ダサチニブ)によってSrcファミリーキナーゼを阻害する効果も同様に調べた。阻害剤は、FOCUS細胞においてstat3リン酸化を消失させた(図15B)。後期HCC細胞株(FOCUS)の細胞遊走に及ぼす阻害剤の効果も同様に調べた。用量反応曲線を図15Cに示す。
Claims (19)
- Fzd2をダウンモジュレートする抗体またはその抗原結合断片の治療的有効量を対象に投与する段階を含み、その結果、該抗体またはその抗原結合断片が、該対象の癌細胞に送達されて、それによって癌を処置する、対象における癌を処置する方法。
- Fzd2をダウンモジュレートする抗体またはその抗原結合断片の治療的有効量を対象に投与する段階を含み、その結果、該抗体またはその抗原結合断片が癌細胞に送達されて、それによって癌を処置する、対象における癌細胞の増殖、遊走、および/または浸潤を阻害する方法。
- 抗体が、Fzd2に特異的に結合する、請求項1または2のいずれかに記載の方法。
- 抗体がFzd2に結合し、かつ癌細胞によるFzd2受容体のインターナリゼーションを促進する、請求項3記載の方法。
- Fzd2に対する抗体がFzd2に対するリガンドの結合を防止する、請求項3〜4のいずれかに記載の方法。
- 抗体がFzd2タンパク質の細胞外部分に特異的に結合する、請求項3〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 抗体が、Fzd2の24〜247番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域内でFzd2に特異的に結合する、請求項3〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 抗体が、Fzd2の125〜163番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域内でFzd2に特異的に結合する、請求項3〜7のいずれか1項に記載の方法。
- 抗体が、Fzd2の134〜163番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域内でFzd2に特異的に結合する、請求項3〜7のいずれか1項に記載の方法。
- 抗体が、Fzd2の144〜163番目のアミノ酸に対応するFzd2の領域内でFzd2に特異的に結合する、請求項3〜7のいずれか1項に記載の方法。
- 抗体がモノクローナル抗体である、請求項3〜11のいずれか1項に記載の方法。
- 抗体がポリクローナル抗体である、請求項3〜11のいずれか1項に記載の方法。
- 抗体がヒト化抗体である、請求項3〜12のいずれか1項に記載の方法。
- 癌が、消化管癌、前立腺癌、卵巣癌、乳癌、頭頚部癌、肺癌、非小細胞肺癌、神経系の癌、腎臓癌、網膜癌、皮膚癌、肝臓癌、膵臓癌、尿生殖器癌、および膀胱癌からなる群より選択される、請求項1〜14のいずれか1項に記載の方法。
- 癌が肝臓癌である、請求項1〜15のいずれか1項に記載の方法。
- 癌が後期肝細胞癌である、請求項1〜16のいずれか1項に記載の方法。
- 癌がFzd2の過剰発現を示す、請求項1〜17のいずれか1項に記載の方法。
- 癌がWnt5aの過剰発現を示す、請求項1〜18のいずれか1項に記載の方法。
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