JP2013227348A - 蛋白キナーゼの阻害剤として有用なアミノピリミジン - Google Patents

Abstract

【課題】蛋白キナーゼの阻害剤として有用なアミノピリミジンの提供。
【解決手段】本発明は蛋白キナーゼの阻害剤として有用な化合物（Ｉ）に関する。本発明は又そのような化合物を含む製薬上許容しうる組成物、及び種々の疾患、状態、及び障害の治療における化合物及び組成物の使用の方法を提供する。本発明は又本発明の化合物を製造するためのプロセスを提供する。本発明の化合物は又修復、再生、及び細胞分化の化学モジュレーターとしても有効である。本発明は又これらの化合物、組成物、医薬組成物を製造するためのプロセス、及び蛋白キナーゼを阻害するためのこのような化合物及び組成物の使用方法を提供する。

【選択図】なし

Description

（発明の技術分野）
本発明は蛋白キナーゼの阻害剤として有用な化合物に関する。本発明は又本発明の化合物を含む製薬上許容しうる組成物及び種々の障害の治療における組成物の使用方法を提供する。本発明は又本発明の化合物を製造するためのプロセスを提供する。

（発明の背景）
グリコーゲンシンターゼキナーゼ−３（ＧＳＫ−３）は異なる遺伝子により各々コードされるα及びβアイソフォームを含むセリン／スレオニン蛋白キナーゼである［Ｃｏｇｈｌａｎ等、Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ＆ Ｂｉｏｌｏｇｙ ２０００，７，７９３−８０３；及びＫｉｍ ａｎｄ Ｋｉｍｍｅｌ，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎｉｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｄｅｖ．，２０００ １０，５０８−５１４］。蛋白キナーゼ、特にＧＳＫ−３は種々の疾患、障害及び状態、例えば糖尿病、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、パーキンソン病、双極性障害、統合失調症、脳卒中、及び心肥大に関与することが示唆されている。［ＰＣＴ出願ＷＯ９９／６５８９７及びＷＯ００／３８６７５；Ｈａｑ等、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．２０００，１５１，１１７−１３０；Ｈｉｒｏｔａｎｉ等、Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ １０１，２００７，ｐｐ．１１６４−１１７４］。

これらの疾患、障害及び状態を治療するためにはＧＳＫ−３を阻害することが望ましい手順である。心肥大においては、活性なＧＳＫ−３は肥大を抑制するために重要である場合がある。しかしながら、肥大した心筋細胞においてアポトーシスに対抗して保護するためには、ＧＳＫ−３をブロックすることが重要であると考えられる。［Ｈａｑ等、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．２０００，１５１，１１７−１３０；Ｈｉｒｏｔａｎｉ等、Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ １０１，２００７，ｐｐ．１１６４−１１７４］。

ＧＳＫ−３は種々のシグナリング経路に関連する複数の下流のエフェクターを調節する。これらの蛋白にはグリコーゲン合成のために必要な律速酵素であるグリコーゲンシンターゼ、微小管関連蛋白Ｔａｕ、遺伝子転写因子β−カテニン、翻訳開始因子ｅ１Ｆ２Ｂ、並びにＡＴＰシトレートリアーゼ、アキシン、熱ショック因子−１、ｃ−Ｊｕｎ、ｃ−ｍｙｃ、ｃ−ｍｙｂ、ＣＲＥＢ、及びＣＥＰＢαが包含される。これらの多様な蛋白標的は細胞の代謝、増殖、分化、及び発生の多くの特徴にＧＳＫ−３を関連付けている。

ＩＩ型糖尿病の治療に関連するＧＳＫ−３媒介経路において、インスリン誘導シグナリングは細胞のグルコース取り込み及びグリコーゲンの合成をもたらす。この経路においてはＧＳＫ−３はインスリン誘導シグナルの負の調節物質である。通常は、インスリンの存在はＧＳＫ−３媒介リン酸化の抑制及びグリコーゲンシンターゼの脱活性をもたらす。ＧＳＫ−３の阻害は増大したグリコーゲン合成及びグルコース取り込みをもたらす［Ｋｌｅｉｎ等、ＰＮＡＳ １９９６，９３，８４５５−８４５９；Ｃｒｏｓｓ等、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．１９９４，３０３，２１−２６）；Ｃｏｈｅｎ，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｔｒａｎｓ．１９９３，２１，５５５−５６７；及びＭａｓｓｉｌｌｏｎ等、Ｂｉｏｃｈｅｍ
Ｊ．１９９４，２９９，１２３−１２８］。しかしながら、インスリン応答が損なわれている糖尿病患者においては、グリコーゲン合成及びグルコースの取り込みは比較的高い血中インスリンレベルの存在にも関わらず増大することができない。これは最終的には心臓血管疾患、腎不全及び盲目をもたらす場合がある急性及び長期の作用を伴った異常に高値の血中グルコースレベルをもたらす。そのような患者においては、ＧＳＫ−３の正常なインスリン誘導の阻害が起こらない。又、ＩＩ型糖尿病を有する患者においてはＧＳＫ−３が過剰発現されていることも報告されている［ＰＣＴ出願ＷＯ００／３８６７５参照］。従ってＧＳＫ−３の治療用阻害剤は、インスリンへの応答障害に罹患した糖尿病患者を治療するために潜在的に有用である。

ＧＳＫ−３活性はアルツハイマー病に関連している。この疾患の特徴は凝集したβ−アミロイドペプチドにより形成される細胞外プラーク及びｔａｕ蛋白を介した細胞内神経細線維もつれの形成である。

ＧＳＫ−３阻害はアルツハイマー病の動物モデルにおいてアミロイド−βペプチドを低減することが分かっている。Ｐｈｉｅｌ等のＮａｔｕｒｅ ４２３、４３５〜４３９（２００３）の４３５、４３８ページを参照できる。３週間の期間にわたってリチウム（ＧＳＫ−３α阻害剤）を投与されたアミロイド前駆体蛋白（ＡＰＰ）を過剰発現するマウスはアミロイド−βペプチドの組織中レベルの５０％超低下を示している。

神経細線維もつれは過剰リン酸化されたＴａｕ蛋白を含有し、ここでＴａｕは異常な部位上でリン酸化される。ＧＳＫ−３は細胞及び動物モデルにおいてこれらの異常な部位をリン酸化することが分かっている。ＧＳＫ−３を過剰発現する条件的トランスジェニックマウスはＡＤの特徴、例えばｔａｕ過剰リン酸化、ニューロンアポトーシス及び空間的学習障害を発症する。これらのマウスにおいてＧＳＫ−３を除くことにより正常な挙動が回復され、Ｔａｕ過剰リン酸化、ニューロンアポトーシスが低減される。（Ｅｎｇｅｌ Ｔ等、Ｊ Ｎｅｕｒｏ Ｓｃｉ，２００６，２６，５０８３−５０９０ ａｎｄ Ｌｕｃａｓ等、ＥＭＢＯ Ｊ，２００１，２０，２７−３９）。ＧＳＫ−３の阻害剤は又、細胞におけるＴａｕの過剰リン酸化を防止することが示されている［Ｌｏｖｅｓｔｏｎｅ等、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ １９９４，４，１０７７−８６；及びＢｒｏｗｎｌｅｅｓ等、Ｎｅｕｒｏｒｅｐｏｒｔ １９９７，８，３２５１−５５］。

精神病及び気分障害、例えば統合失調症及び双極性障害に関する標的としてのＧＳＫ−３は文献においてそれぞれ報告されている。ＡＫＴハプロタイプ不全は増大したＧＳＫ−３活性に相関する統合失調症患者のサブセットにおいて発見されている。ＧＳＫ−３βの単対立遺伝子ノックアウトは躁病の挙動モデルにおいてアンフェタミンに応答した減衰した活動亢進をもたらしている。

統合失調症及び双極性障害の患者の両方を治療するために使用されている幾つかの抗精神病薬及び気分安定化剤はＧＳＫ−３を阻害することがわかっている（Ｅｍａｍｉａｎ等、Ｎａｔ Ｇｅｎｅｔ，２００４，３６，１３１−１３７；Ｏｂｒｉｅｎ等、Ｊ Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，２００４，２４，６７９１−６７９８；Ｂｅａｕｌｉｅｕ等、ＰＮＡＳ，２００４，１０１，５０９９−５１０４；Ｌｉ等 Ｉｎｔ Ｊ Ｎｅｕｒｏｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌ，２００６，ｐｐ １−１３；Ｇｏｕｌｄ ＴＤ，Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎ Ｔｈｅｒ Ｔａｒｇｅｔｓ，２００６，１０，３７７−３９２）。更に又、最近の特許である米国特許２００４／００３９００７は関連するマウス挙動モデルにおいて抗統合失調作用及び不安緩解作用を示すＧＳＫ−３阻害剤を記載している。

ＧＳＫ−３活性は卒中と関連している。Ｗａｎｇ等は、ＧＳＫ−３阻害剤として知られているＩＧＦ−１（インスリン成長因子−１）が、ラットにおける卒中のモデルである一過性の中大脳動脈閉塞（ＭＣＡＯ）の後のラット脳において梗塞の大きさを低減していることを示している。［非特許文献１；非特許文献２］。特許文献１はラットにおける卒中モデルであるＭＣＡＯにおけるＧＳＫ−３阻害剤の作用を報告している。これらのＧＳＫ−３阻害剤はラットにおいて線条体の虚血損傷を有意に低減し、そして浮腫形成を低減している。更に又、ラットは「実験の期間を通して神経学的機能における顕著な向上を示していた」。

米国特許出願公開第２００４／００３９００７号明細書

Ｗａｎｇ等、Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ ２０００，８５９，３８１−５；Ｓａｓａｋｉ等、Ｎｅｕｒｏｌ Ｒｅｓ ２００１，２３，５８８−９２ Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ等、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ ２００２，２７７，３２９８５−３２９９１

上記した理由の全てにより、蛋白キナーゼの阻害剤として有用な化合物を開発する多大な必要性が存在している。特に、ＧＳＫ−３の活性化に関与する障害の大多数に対して現在使用できる治療法が不十分であるため、その阻害剤として有用な化合物を開発することが望まれている。

本発明はＧＳＫ−３蛋白キナーゼの阻害剤として有用な化合物及び製薬上許容しうるその組成物を提供する。

これらの化合物は下記式Ｉ：

又は製薬上許容しうるその塩により表され、式中の変数は本明細書において定義する通りである。

これらの化合物はＧＳＫ−３酵素のチロシン自己リン酸化形態をセリン／スレオニンキナーゼ形態よりも優勢にブロックすることにおける意外な選択性を有している。これらの化合物は又ニューロン細胞における軸索及び樹状突起の分枝化を増大させる場合においても意外な有効性を有し、これは、神経変性状態、例えば卒中、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、多発性硬化症（ＭＳ）、脊髄傷害、外傷性脳傷害、シャルコー−マリー−ツース病、白血球減少症、糖尿病、糖尿病性神経障害、及び骨粗鬆症の治療において有用である。

これらの化合物は又修復、再生、及び細胞分化の化学モジュレーターとしても有効である。

本発明は又これらの化合物、組成物、医薬組成物を製造するためのプロセス、及び蛋白キナーゼを阻害するためのこのような化合物及び組成物の使用方法を提供する。これらの化合物は特にＧＳＫ−３阻害剤として有用である。

これらの化合物及びその製薬上許容しうる組成物は又、種々の疾患、障害又は状態、例えば限定しないが、自己免疫性、炎症性、増殖性、又は増殖亢進性の疾患、神経変性性の疾患、又は免疫学的に媒介された疾患を治療又は予防するために有用である。

本発明により提供される化合物はインビトロ、インビボ、及びエクスビボにおいてキナーゼを阻害するために有用である。これらの化合物は生物学的及び病理学的な現象におけるキナーゼの研究；そのようなキナーゼにより媒介される細胞内シグナルトランスダクション経路の研究；及び新しいキナーゼ阻害剤の比較評価のために有用である。
本発明は、例えば以下の項目を提供する。
（項目１）
下記式Ｉ：

［式中、Ｒ^ＸはＣ_１−３アルキルであり、そしてＲ^ＹはＣ_１−３アルキルである］の化合物又は製薬上許容しうるその塩。
（項目２）
Ｒ^Ｘがメチル又はエチルである項目１記載の化合物。
（項目３）
Ｒ^Ｘがメチルである項目２記載の化合物。
（項目４）
Ｒ^Ｙがメチルである項目１〜３のいずれか１項に記載の化合物。
（項目５）
下記：

から選択される項目１記載の化合物。
（項目６）
下記：

から選択される項目１記載の化合物。
（項目７）
項目１〜６項のいずれか１項に記載の化合物、および製薬上許容しうる担体、アジュバント、又はビヒクルを含む組成物。
（項目８）
化学療法剤又は抗増殖剤、抗炎症剤、免疫調節剤又は免疫抑制剤、神経栄養因子、心臓血管疾患を治療するための薬剤、糖尿病を治療するための薬剤、又は免疫不全障害を治療するための薬剤から選択される治療薬を更に含む項目７記載の組成物。
（項目９）
項目１〜６のいずれか１項に記載の化合物でエクスビボ又はインビトロの生物学的試料中のＧＳＫ−３活性を阻害する方法。
（項目１０）
項目１〜６のいずれか１項に記載の化合物を患者に投与する工程を含む、糖尿病、骨粗鬆症、アルツハイマー病、ハンチントン病、パーキンソン病、エイズ関連痴呆、双極性障害、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ、ルーゲーリック病）、多発性硬化症（ＭＳ）、統合失調症、白血球減少症、卒中、及び慢性関節リューマチから選択される疾患又は状態を治療又はその重症度を低下させる方法。
（項目１１）
前記疾患が卒中である項目１０記載の方法。
（項目１２）
前記疾患が糖尿病である項目１０記載の方法。
（項目１３）
前記疾患が統合失調症である項目１０記載の方法。
（項目１４）
前記疾患が双極性障害である項目１０記載の方法。
（項目１５）
前記疾患が白血球減少症である項目１０記載の方法。
（項目１６）
項目１〜６のいずれか１項に記載の化合物を患者に投与する工程を含む、卒中、脊髄傷害、外傷性脳傷害、シャルコー−マリー−ツース病、及び糖尿病性神経障害から選択される疾患又は状態を治療又はその重症度を低下させる方法。
（項目１７）
前記疾患又は状態が卒中である項目１６記載の方法。
（項目１８）
虚血が生じた後に化合物が投与される項目１７記載の方法。
（項目１９）
卒中後の回復のために化合物が使用される項目１７記載の方法。
（項目２０）
糖尿病を治療するための薬剤、骨粗鬆症を治療するための薬剤、アルツハイマー病を治療するための薬剤、ハンチントン病を治療するための薬剤、パーキンソン病を治療するための薬剤、エイズ関連痴呆を治療するための薬剤、双極性障害を治療するための薬剤、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ、ルーゲーリック病）を治療するための薬剤、多発性硬化症（ＭＳ）を治療するための薬剤、統合失調症を治療するための薬剤、白血球減少症を治療するための薬剤、卒中を治療するための薬剤、慢性関節リューマチを治療するための薬剤から選択される追加的治療薬を前記患者に投与する追加的工程を含む項目１０記載の方法であって、ここで：
ａ）前記追加的治療薬が治療される疾患に対して適切であり；そして、
ｂ）前記追加的治療薬が単一の剤型として前記組成物と共に、又は多剤型の一部として前記組成物とは別個に投与される上記方法。
（項目２１）
卒中を治療するための薬剤、脊髄傷害を治療するための薬剤、外傷性脳傷害を治療するための薬剤、シャルコー−マリー−ツース病を治療するための薬剤、又は糖尿病性神経障害を治療するための薬剤から選択される追加的治療薬を前記患者に投与する追加的工程を含む項目１６記載の方法。
（項目２２）
物理療法と組み合わせた項目１６〜１９のいずれか１項に記載の方法。
（項目２３）
項目１〜６のいずれか１項に記載の化合物にニューロン細胞を接触させる工程を含む前記細胞における軸索及び樹状突起の分枝化を増大させる方法。
（項目２４）
項目１〜６のいずれか１項に記載の化合物にニューロン細胞を接触させる工程を含む前記細胞における神経発生を増大させる方法。
（項目２５）
項目１〜６のいずれか１項に記載の化合物にニューロン細胞を接触させる工程を含む前記細胞における血管形成を増大させる方法。
（項目２６）
項目１〜６のいずれか１項に記載の化合物にニューロン細胞を接触させる工程を含む前記細胞の形成性を増大させる方法。

（発明の詳細な説明）
本発明は下記式Ｉ：

［式中、Ｒ^ＸはＣ_１−３アルキルであり、そして、
Ｒ^ＹはＣ_１−３アルキルである］の化合物又は製薬上許容しうるその塩を提供する。

一部の実施形態においては、Ｒ^Ｘはメチル又はエチルである。一部の実施形態においては、Ｒ^Ｘはメチルである。一部の実施形態においては、Ｒ^Ｙはメチルである。一部の実施形態においては、Ｒ^Ｘ及びＲ^Ｙは両方ともメチルである。一部の実施形態においては、Ｒ^Ｘはエチルであり、そしてＲ^Ｙはメチルである。

１つの実施形態は下記の表１の化合物を提供する。

本発明の化合物は一般的に上記した、そして本明細書に開示するクラス、サブクラス、及び種により更に説明されるものを包含する。本明細書においては、以下の定義を特段の記載が無い限り適用する。本発明の説明のために、化学元素はＣＡＳ版のＨａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｐｈｙｓｉｃｓの第７５版の元素周期律表に従って識別される。更に又、有機化学の一般的原則は「Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ」、Ｔｈｏｍａｓ Ｓｏｒｒｅｌｌ，Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｏｏｋｓ，Ｓａｕｓａｌｉｔｏ： １９９９、及び「Ｍａｒｃｈ’ｓ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ」、第５版、Ｓｍｉｔｈ，Ｍ．Ｂ．ａｎｄ Ｍａｒｃｈ，Ｊ．編、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ：２００１に記載されており、これらの内容は参照により全体が本明細書に組み込まれる。

本明細書に記載する通り、原子の特定された数の範囲はそのいずれかの整数を包含する。例えば１〜４原子を有する基は１、２、３、又は４原子を有することができる。

本明細書に記載する通り、本発明の化合物は任意に、上記において一般的に説明されたような、又は本発明の特定のクラス、サブクラス、及び種により例示される通り、置換基１個以上により置換されていてよい。当然ながら、「任意に置換された」という表現は「置換された、又は未置換の」という表現と互換的に使用される。一般的に、「置換された」という用語は、「任意に」という用語に先行されているか否かに関わらず、特定の置換基のラジカルによる所定の構造における水素ラジカルの置き換えを指す。特段の記載が無い限り、任意に置換された基は基の置換可能な位置の各々において置換基を有してよく、そしていずれかの所定の構造において１つより多い位置が特定の群から選択される１つより多くの置換基で置換されてよい場合は、その置換基は各位置において同じかまたは異なっていてよい。本発明が想定する置換基の組み合わせは、好ましくは、安定であるか、又は化学的に実現可能な化合物の形成をもたらすようなものである。

「安定な」という用語は本明細書においては、本明細書に開示した目的物の１つ以上のための化合物の製造、検出、回収、精製、及び使用を可能にする条件に付された場合に実質的に改変されないものを指す。一部の実施形態においては、安定な化合物又は化学的に可能な化合物は、少なくとも１週間、水分又は他の化学的反応性の条件の非存在下において、４０℃以下の温度において保持された場合に実質的に改変されないものである。

「脂肪族」又は「脂肪族基」という用語は本明細書においては、分子の残余への結合の単一の点を有する、完全飽和であるか、又は不飽和の単位１つ以上を含有する、直鎖（即ち未分枝鎖）分枝鎖又は未分枝鎖の、置換又は未置換の炭化水素鎖を意味する。特段の記載が無い限り、脂肪族基は脂肪族炭素原子１〜２０個を含有する。一部の実施形態においては、脂肪族基は脂肪族炭素原子１〜１０個を含有する。他の実施形態においては、脂肪族基は脂肪族炭素原子１〜８個を含有する。又他の実施形態においては、脂肪族基は脂肪族炭素原子１〜６個を含有し、そして更に他の実施形態においては、脂肪族基は脂肪族炭素原子１〜４個を含有する。適当な脂肪族基は、例えば限定しないが、直鎖又は分枝鎖の、置換又は未置換のアルキル、アルケニル、又はアルキニル基を包含する。特定の例は限定しないが、メチル、エチル、イソプロピル、ｎ−プロピル、ｓ−ブチル、ビニル、ｎ−ブテニル、エチニル、及びｔ−ブチルを包含する。

「アルキル」という用語は本明細書においては、完全に飽和しており、そして分子の残余への結合の単一の点を有する、直鎖（即ち未分枝鎖）、分枝鎖又は未分枝鎖の、置換又は未置換の炭化水素鎖を意味する。特段の記載が無い限り、アルキル基はアルキル炭素原子１〜６個を含有する。一部の実施形態においては、アルキル基はアルキル炭素原子１〜４個を含有する。他の実施形態においては、アルキル基はアルキル炭素原子１〜３個を含有する。例は限定しないが、メチル、エチル、イソプロピル、ｎ−プロピル、ｓ−ブチル、ｎ−ブチル、及びｎ−ペンチルを包含する。

「脂環式」（又は「炭素環」又は「カルボサイクリル」又は「シクロアルキル」）という用語は、分子の残余への結合の単一の点を有する、完全に飽和しているか、又は不飽和の単位１つ以上を含有するが、芳香族ではない単環のＣ_３−Ｃ_８炭化水素又は二環のＣ_８−Ｃ_１２炭化水素を指し、ここで前記二環系におけるいずれかの個々の環は３〜７員を有する。適当な脂環式基は例えば限定しないが、シクロアルキル及びシクロアルケニル基を包含する。特定の例は、限定しないが、シクロヘキシル、シクロプロペニル、及びシクロブチルを包含する。

「複素環」、「ヘテロサイクリル」、又は「ヘテロ環の」という用語は本明細書においては、非芳香族の、単環、二環、又は三環の系を意味し、ここで、環員１つ以上は独立してヘテロ原子から選択される。一部の実施形態においては、「複素環」、「ヘテロサイクリル」、又は「ヘテロ環の」基は３〜１４の環員を有し、ここで、環員１つ以上は酸素、硫黄、窒素、又はリンから独立して選択されたヘテロ原子であり、そして系における各環は３〜７環員を含有する。

適当な複素環は例えば限定しないが、３−１Ｈ−ベンズイミダゾール−２−オン、３−（１−アルキル）−ベンズイミダゾール−２−オン、２−テトラヒドロフラニル、３−テトラヒドロフラニル、２−テトラヒドロチオフェニル、３−テトラヒドロチオフェニル、２−モルホリノ、３−モルホリノ、４−モルホリノ、２−チオモルホリノ、３−チオモルホリノ、４−チオモルホリノ、１−ピロリジニル、２−ピロリジニル、３−ピロリジニル、１−テトラヒドロピペラジニル、２−テトラヒドロピペラジニル、３−テトラヒドロピペラジニル、１−ピペリジニル、２−ピペリジニル、３−ピペリジニル、１−ピラゾリニル、３−ピラゾリニル、４−ピラゾリニル、５−ピラゾリニル、１−ピペリジニル、２−ピペリジニル、３−ピペリジニル、４−ピペリジニル、２−チアゾリジニル、３−チアゾリジニル、４−チアゾリジニル、１−イミダゾリジニル、２−イミダゾリジニル、４−イミダゾリジニル、５−イミダゾリジニル、インドリニル、テトラヒドロキノリニル、テトラヒドロイソキノリニル、ベンゾチオラン、ベンゾジチアン、及び１，３−ジヒドロ−イミダゾール−２−オンを包含する。

環状の基（例えば脂環式又は複素環）は直線状縮合、架橋、又はスピロ環状となっていることができる。

「ヘテロ原子」という用語は酸素、硫黄、窒素、又はリン、（例えばいずれかの酸化された形態の窒素、硫黄、又はリン；四級化形態の塩基性窒素、又は複素環の置換可能な窒素、例えばＮ（３，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピロリルの場合等）、ＮＨ（例えばピロリジニルの場合等）又はＮＲ^＋（Ｎ−置換ピロリジニルの場合等））の一つ以上を意味する。

「不飽和の」という用語は本明細書においては、不飽和の単位１つ以上を有する部分ことを意味する。

「アルコキシ、又は「チオアルキル」という用語は本明細書においては、酸素（「アルコキシ」の場合）又は硫黄（「チオアルキル」の場合）原子を介して主要な炭素鎖に結合した、上記定義したアルキル基を指す。

「ハロアルキル」、「ハロアルケニル」、「ハロ脂肪族」、及び「ハロアルコキシ」という用語は適宜ハロゲン原子１つ以上で置換された、アルキル、アルケニル又はアルコキシを意味する。「ハロゲン」、「ハロ」、及び「ｈａｌ」という用語はＦ、Ｃｌ、Ｂｒ、又はＩを意味する。

「アリール」という用語は、単独で、又は「アラルキル」、「アラルコキシ」、又は「アリールオキシアルキル」のようなより大きい部分の一部として使用される場合、合計で５〜１４環員を有する単環、二環、及び三環の系を指し、ここで、系における環の少なくとも１つは芳香族であり、そして系における各環は３〜７環員を含有する。「アリール」という用語は「アリール環」という用語と互換的に使用してよい。「アリール」という用語は又、後に定義する通り、ヘテロアリール環系も指す。

「ヘテロアリール」という用語は、単独で、又は「ヘテロアラルキル」又は「ヘテロアリールアルコキシ」のようなより大きい部分の一部として使用される場合、合計で５〜１４環員を有する単環、二環、及び三環の系を指し、ここで、系における環少なくとも１つは芳香族であり、系における環少なくとも１つはヘテロ原子１つ以上を含有し、そして系における各環は３〜７環員を含有する。「ヘテロアリール」という用語は「ヘテロアリール環」という用語又は「複素芳香族」という用語と互換的に使用してよい。適当なヘテロアリール環は例えば限定しないが、２−フラニル、３−フラニル、Ｎ−イミダゾリル、２−イミダゾリル、４−イミダゾリル、５−イミダゾリル、ベンズイミダゾリル、３−イソキサゾリル、４−イソキサゾリル、５−イソキサゾリル、２−オキサゾリル、４−オキサゾリル、５−オキサゾリル、Ｎ−ピロリル、２−ピロリル、３−ピロリル、２−ピリジル、３−ピリジル、４−ピリジル、２−ピリミジニル、４−ピリミジニル、５−ピリミジニル、ピリダジニル（例えば、３−ピリダジニル）、２−チアゾリル、４−チアゾリル、５−チアゾリル、テトラゾリル（例えば、５−テトラゾリル）、トリアゾリル（例えば、２−トリアゾリル及び５−トリアゾリル）、２−チエニル、３−チエニル、ベンゾフリル、ベンゾチオフェニル、インドリル（例えば、２−インドリル）、ピラゾリル（例えば、２−ピラゾリル）、イソチアゾリル、１，２，３−オキサジアゾリル、１，２，５−オキサジアゾリル、１，２，４−オキサジアゾリル、１，２，３−トリアゾリル、１，２，３−チアジアゾリル、１，３，４−チアジアゾリル、１，２，５−チアジアゾリル、プリニル、ピラジニル、１，３，５−トリアジニル、キノリニル（例えば、２−キノリニル、３−キノリニル、４−キノリニル）、及びイソキノリニル（例えば、１−イソキノリニル、３−イソキノリニル、又は４−イソキノリニル）を包含する。

「保護基」及び「保護性の基」という用語は本明細書においては互換的に使用され、そして多官能性の化合物における所望の反応性の部位１つ以上を一時的にブロックするために使用される薬剤を指す。特定の実施形態においては、保護基は以下の特性、即ち：ａ）良好な収率で官能基に選択的に付加させることにより保護された基質が得られること、ｂ）他の反応部位の１つ以上において生じる反応に対して安定であること；そしてｃ）再生され保護された官能基を攻撃しない試薬により良好な収率で選択的に除去されること、の１つ以上、又は好ましくは全てを有する。例示される保護基は参照により全体が本明細書に組み込まれるＴ．Ｗ．，Ｗｕｔｓ，Ｐ．Ｇ、「Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ」，第３版、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ：１９９９（及び書籍の他の版）に詳述されている。「窒素保護基」という用語は本明細書においては、多官能性の化合物における１つ以上の所望の窒素反応部位を一時的にブロックするために使用される薬剤を指す。好ましい窒素保護基は又上記例示した特性を保有しており、そして特定の例示される窒素保護基は又、参照により全体が本明細書に組み込まれるＧｒｅｅｎｅ，Ｔ．Ｗ．，Ｗｕｔｓ，Ｐ．Ｇ、「Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ」、第３版、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ：１９９９の第７章に詳述されている。

一部の実施形態においては、アルキル又は脂肪族鎖は任意に別の原子又は基により置き換えられることができる。そのような原子又は基の例は限定しないが、−ＮＲ−、−Ｏ−、−Ｓ−、−ＣＯ_２−、−ＯＣ（Ｏ）−、−Ｃ（Ｏ）ＣＯ−、−Ｃ（Ｏ）−、−Ｃ（Ｏ）ＮＲ−、−Ｃ（＝Ｎ−ＣＮ）、−ＮＲＣＯ−、−ＮＲＣ（Ｏ）Ｏ−、−ＳＯ_２ＮＲ−、−ＮＲＳＯ_２−、−ＮＲＣ（Ｏ）ＮＲ−、−ＯＣ（Ｏ）ＮＲ−、−ＮＲＳＯ_２ＮＲ−、−ＳＯ−、又は−ＳＯ_２−を包含し、式中、Ｒは本明細書に定義する通りである。特段の記載が無い限り、任意の置き換えにより化学的に安定な化合物が形成される。任意の置き換えは鎖内部及び鎖のいずれかの末端の両方において；即ち結合点において、及び／又は末端においても同様に生じることができる。２つの任意の置き換えは又、それにより化学的に安定な化合物が生じる限り、鎖内部で相互に隣接することができる。任意の置き換えは又、鎖中の炭素原子の全てを完全に置き換えることもできる。例えばＣ_３脂肪族は任意に−ＮＲ−、−Ｃ（Ｏ）−、及び−ＮＲ−で中断されるか置き換えられることにより、−ＮＲＣ（Ｏ）ＮＲ−（尿素）を形成することができる。

特段の記載が無い限り、置き換えが末端で起こる場合、置き換え原子は末端においてＨに結合する。例えば−ＣＨ_２ＣＨ_２ＣＨ_３が任意に−Ｏ−で置き換えられる場合、生じる化合物は−ＯＣＨ_２ＣＨ_３、−ＣＨ_２ＯＣＨ_３、又は−ＣＨ_２ＣＨ_２ＯＨとなる。

特段の記載が無い限り、本明細書に記載する構造は又、構造の全ての異性体（例えばエナンチオマー、ジアステレオマー、及び幾何（又はコンホーメーション）の）型；例えば各不斉中心に対するＲ及びＳ配置、（Ｚ）及び（Ｅ）２重結合異性体、及び（Ｚ）及び（Ｅ）コンホーメーション異性体を包含することを意味している。従って、本化合物の単独の立体化学異性体並びにエナンチオマー、ジアステレオマー、及び幾何（又はコンホーメーション）混合物が本発明の範囲に包含される。

特段の記載が無い限り、本発明の化合物の全ての互変異体が本発明の範囲に包含される。

特段の記載が無い限り、置換基はいずれかの回転可能な結合の周囲を自由に回転できる。例えば、下記：

の通り描画された置換基は又、下記：

を表している。

更に又、特段の記載が無い限り、本明細書に記載した構造は又、同位体的に富化された原子１つ以上の存在においてのみ異なる化合物を包含することを意味している。例えば重水素又はトリチウムによる水素の置き換え、又は^１３Ｃ−又は^１４Ｃ−富化炭素による炭素原子の置き換えを除いて本発明の構造を有する化合物は、本発明の範囲に包含される。そのような化合物は、例えば生物学的試験における分析ツール又はプローブとして有用である。

やはり当然ながら、本発明の化合物は治療のための遊離の形態において、或いは適宜、製薬上許容しうる塩、塩、又はその混合物として存在できる。

本明細書においては、「製薬上許容しうる塩」という用語は、確かな医学的判断の範囲内において、予定外の毒性、刺激、アレルギー応答等を伴うことなくヒト及びより下等な動物の組織との接触における使用に適しており、そして合理的な利益／危険性の比に相応する化合物の塩を指す。

製薬上許容しうる塩は当該分野で良く知られている。例えばＳ．Ｍ．Ｂｅｒｇｅ等は参照により本明細書に組み込まれるＪ．Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，１９７７，６６，１−１９において詳細に製薬上許容しうる塩を説明している。本発明の化合物の製薬上許容しうる塩は適当な無機及び有機の酸及び塩基から誘導されたものを包含する。これらの塩は化合物の最終単離及び精製の間にインサイチュで製造できる。酸付加塩は１）遊離塩基形態の精製された化合物を適当な有機又は無機の酸と反応させること、及び２）このようにして形成された塩を単離することにより製造できる。

製薬上許容しうる非毒性の酸付加塩の例は、無機酸、例えば塩酸、臭化水素酸、リン酸、硫酸及び過塩素酸と共に、又は有機酸、例えば酢酸、シュウ酸、マレイン酸、酒石酸、クエン酸、コハク酸又はマロン酸と共に、又はイオン交換のような当該分野で使用されている他の方法を用いながら形成されたアミノ基の塩である。他の製薬上許容しうる塩はアジピン酸塩、アルギン酸塩、アスコルビン酸塩、アスパラギン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、安息香酸塩、重硫酸塩、ホウ酸塩、酪酸塩、カンファー酸塩、カンファースルホン酸塩、クエン酸塩、シクロペンタンプロピオン酸塩、ジグルコン酸塩、ドデシル硫酸塩、エタンスルホン酸塩、ギ酸塩、フマル酸塩、グルコヘプトン酸塩、グリセロリン酸塩、グリコール酸塩、グルコン酸塩、ヘミ硫酸塩、ヘプタン酸塩、ヘキサン酸塩、ヨウ化水素酸塩、２−ヒドロキシ−エタンスルホン酸塩、ラクトビオン酸塩、乳酸塩、ラウリン酸塩、ラウリル硫酸塩、リンゴ酸塩、マレイン酸塩、マロン酸塩、メタンスルホン酸塩、２−ナフタレンスルホン酸塩、ニコチン酸塩、硝酸塩、オレイン酸塩、シュウ酸塩、パルミチン酸塩、パルモ酸塩、ペクチン酸塩、過硫酸塩、３−フェニルプロピオン酸塩、リン酸塩、ピクリン酸塩、ピバル酸塩、プロピオン酸塩、サリチル酸塩、ステアリン酸塩、コハク酸塩、硫酸塩、酒石酸塩、チオシアン酸塩、ｐ−トルエンスルホン酸塩、ウンデカン酸塩、吉草酸塩等を包含する。適切な塩基から誘導された塩はアルカリ金属、アルカリ土類金属、アンモニウム及びＮ^＋（Ｃ_１−Ｃ_４アルキル）_４塩を包含する。本発明は又本明細書に開示した化合物のいずれかの塩基性窒素含有基の四級化を包含する。水溶性又は油溶性又は分散性の生成物はそのような四級化により得てよい。

塩基付加塩は１）酸形態の精製された化合物を適当な有機又は無機の塩基と反応させること、及び２）このようにして形成された塩を単離することにより製造できる。塩基付加塩はアルカリ又はアルカリ土類金属塩を包含する。代表的なアルカリ又はアルカリ土類金属塩はナトリウム、リチウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム等を包含する。別の製薬上許容しうる塩は、適宜、対イオン、例えばハライド、ヒドロキシド、カルボキシレート、スルフェート、ホスフェート、ニトレート、低級アルキルスルホネート及びアリールスルホネートを用いて形成された非毒性のアンモニウム、第四級アンモニウム、及びアミンカチオンを包含する。他の酸及び塩基は、それ自体は製薬上許容しうるものではなくとも、本発明の化合物及びその製薬上許容しうる酸又は塩基付加塩を得る場合の中間体として有用な塩の製造において使用してよい。

以下の略記法を使用する。
ＤＣＭ ジクロロメタン
ＥｔＯＡｃ 酢酸エチル
ＤＭＳＯ ジメチルスルホキシド
ＡＴＰ アデノシントリホスフェート
ＤＴＴ ジチオスレイトール
ＮＭＲ 核磁気共鳴
ＨＰＬＣ 高速液体クロマトグラフィー
ＬＣＭＳ 液体クロマトグラフィー−質量スペクトル分析
ＴＬＣ 薄層クロマトグラフィー
Ｒｔ 保持時間
ＨＥＰＥＳ ４−（２−ヒドロキシエチル）−１−ピペラジンエタン−スルホン酸
ＦＢＳ ウシ胎児血清
ＰＶＤＦ ポリフッ化ビニリデン
ＰＢＳＴ リン酸緩衝液＋Ｔｗｅｅｎ２０
ＴＣＦ／ＬＥＦ Ｔ細胞因子／リンパ様エンハンサー因子
ＤＩＰＥＡ ジイソプロピルエチルアミン。

本発明は蛋白キナーゼの阻害剤として有用な化合物及び組成物を提供する。一部の実施形態においては、蛋白キナーゼはＧＳＫ−３キナーゼである。

蛋白キナーゼの阻害剤として、本発明の化合物及び組成物は、蛋白キナーゼが疾患、状態又は障害に関与するとされている疾患、状態又は障害を治療するかその重症度を低下させるためにとくに有用である。１つの態様において、本発明は蛋白キナーゼが疾患状態に関与するとされている疾患、状態又は障害を治療するかその重症度を低下させるための方法を提供する。別の態様において、本発明は酵素活性の阻害が疾患の治療に関与するとされる疾患、状態又は障害を治療するかその重症度を低下させるための方法を提供する。別の態様において、本発明は蛋白キナーゼへの結合により酵素活性を阻害する化合物を用いた疾患、状態又は障害を治療するかその重症度を低下させるための方法を提供する。別の態様は蛋白キナーゼ阻害剤でキナーゼの酵素活性を阻害することによりキナーゼ疾患、状態又は障害を治療するかその重症度を低下させるための方法を提供する。

一部の実施形態においては、前記蛋白キナーゼ阻害剤はＧＳＫ−３阻害剤である。

蛋白キナーゼ阻害剤として、本発明の化合物及び組成物は又、生物学的試料中でも有用である。本発明の１つの態様は生物学的試料中の蛋白キナーゼ活性を阻害することに関し、その方法は式Ｉの化合物又は前記化合物を含む組成物に前記生物学的試料を接触させることを含む。「生物学的試料」という用語は本明細書においては、インビトロ又はインビボの試料を意味し、例えば限定しないが、細胞培養物又はその抽出液；哺乳類から得られた生検材料又はその抽出液；及び血液、唾液、尿、糞便、***、涙液、又は他の体液又はその抽出液を包含する。「生物学的試料」という用語はインビボの試料を指さない。

生物学的試料中の蛋白キナーゼ活性の阻害は当該分野で知られた種々の目的のために有用である。そのような目的の例は限定しないが、輸血、臓器移植、及び生物学的標本の保存を包含する。

本発明の別の態様は生物学的及び病理学的な現象における蛋白キナーゼの研究；そのような蛋白キナーゼにより媒介される細胞内シグナルトランスダクション経路の研究；及び新しい蛋白キナーゼ阻害剤の比較評価に関する。そのような用途の例は限定しないが、酵素試験及び細胞系試験のような生物学的試験を包含する。

蛋白キナーゼ阻害剤としての化合物の活性はインビトロ、インビボ又は細胞系統において試験してよい。インビトロ試験はキナーゼ活性又は活性化されたキナーゼのＡＴＰａｓｅ活性のいずれかの阻害を測定する試験を包含する。別のインビトロの試験は蛋白キナーゼに結合する阻害剤の能力を定量し、そして結合前に阻害剤を放射標識すること、阻害剤／キナーゼ複合体を単離すること及び結合した放射標識の量を測定することによるか、又は、既知放射配位子（ｒａｄｉｏｌｉｇａｎｄ）に結合したキナーゼと共に新しい阻害剤をインキュベートする競合試験を実施することによるかのいずれかにより、計測してよい。

ＧＳＫ−３活性の阻害は幹細胞の増殖、分化及びニューロン形成性、及び血管形成に関連付けられている。これらの種々の機能は修復及び再生に関与するとされている。ＧＳＫ−３の阻害剤は胚性幹細胞の自己更新を持続させ、ニューロン、ベータ細胞、骨髄様及び骨芽細胞の分化を促進することが分かっている（Ｓａｔｏ等、Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ １０，５５−６３，２００４；Ｄｉｎｇ等、ＰＮＡＳ １００，７６３２−３７，２００３；Ｂｒａｎｃｏ等、Ｊ Ｃｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ １１７，５７３１−３７，２００４；Ｔｒｏｗｂｒｉｄｇｅ等、Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ １２，８９−９８，２００６；Ｍｕｓｓｍａｎｎ等、ＪＢＣ（Ｅｐｕｂ ａｈｅａｄ ｏｆ ｐｒｉｎｔ）２００７；Ｋｕｌｋａｒｎｉ等、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｎｅ ａｎｄ Ｍｉｎｅｒａｌ Ｒｅｓ．２１，９１０−９２０，２００６）。ニューロンの形成性に関しては、ＧＳＫ−３の阻害は、極性、長期相乗作用（ＬＴＰ）及びニューライト／軸索成長を調節するために重要であることが分かっている（Ｈｏｏｐｅｒ等、Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ ２５，８１−８６，２００７；Ｋｉｍ等、Ｎｅｕｒｏｎ ５２，９８１−９９６，２００６；Ｊｉａｎｇ等、Ｃｅｌｌ １２０，１２３−１３５，２００５）。ＧＳＫ−３の阻害は又内皮細胞における血管形成を誘導することも分かっている（Ｓｋｕｒｋ等、Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ９６，３０８−３１８，２００５）。

従って本発明の１つの態様は細胞の修復および再生において有用な化合物を提供することである。一部の実施形態においては、前記化合物は細胞の増殖、細胞の分化、ニューロン形成、又は血管形成を促進するために使用される。一部の実施形態においては、前記化合物は細胞の分化の化学モジュレーターである。別の実施形態においては、前記化合物は修復及び再生の化学モジュレーターである。

一部の実施形態においては、化合物はニューロン細胞において軸索及び樹状突起の分枝化を増大させる場合に使用される。一部の実施形態においては、化合物は神経形成性を促進するために使用される。他の実施形態においては、化合物は血管形成を促進するために使用される。又他の実施形態においては、化合物は神経発生を促進するために使用される。又他の実施形態においては、化合物は躁病及び抑鬱のような神経精神障害を治療するために使用される。

別の実施形態はベータ細胞の再生を促進することにより糖尿病を治療するために使用される化合物を提供する。

また別の実施形態は骨芽細胞発生により骨粗鬆症を治療するために使用される化合物を提供する。

ＧＳＫ−３はＤＹＲＫキナーゼファミリーと同様、チロシン及びセリン／スレオニンキナーゼの両方として機能する。ＤＹＲＫキナーゼファミリーと同様、ＧＳＫ−３は重要なチロシン残基をそのキナーゼドメイン（ＧＳＫ−３ａ、Ｔｙｒ２７９及びＧＳＫ−３ｂ、Ｔｙｒ２１６）において自己リン酸化する。このチロシンリン酸化はキナーゼ活性を正の方向にモジュレートするために重要であることがわかっている。Ｌｏｃｈｅｅｄ等はこの自己リン酸化が成熟化の前の翻訳後中間工程において分子内で生じ、そしてシャペロン依存性であることを明らかにしている（Ｌｏｃｈｈｅａｄ等、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｅｌｌ ２４，（２００６），ｐｐ．６２７−６３３）。成熟化の後、ＧＳＫ−３はそのチロシンキナーゼ活性を失い、そして外因性基質に対するセリン及びスレオニンキナーゼとしてのみ作用する。

β−カテニンはＧＳＫ−３がリン酸化する外因性セリン／スレオニン基質の１つである。β−カテニンリン酸化の阻害はβ−カテニンレベルの上昇をもたらし、次にこれが核に転座し、そして細胞の応答及び機能に関与する多くの遺伝子を転写的に制御する。ＧＳＫ−３阻害剤に関する１つの潜在的な安全性の問題は阻害剤の使用がβ−カテニン誘導を介した増殖亢進をもたらすことである。本来、セリン／スレオニンキナーゼＧＳＫ−３は増殖、分化及び代謝のような多数の細胞の活動を制御する多くのシグナリング経路にとって中心的である。

従って、本発明の１つの態様は、酵素を完全にブロックすることなく、或いは、β−カテニンのような多重基質に影響することなく、ＧＳＫ−３活性を部分的に減衰することができる化合物を提供する。１つの実施形態はセリン／スレオニンキナーゼ型よりも優先して酵素のチロシン自己リン酸化型を選択的に阻害する化合物を提供する。

一部の実施形態においては、前記酵素はＧＳＫ−３αであり；他の実施形態においてはＧＳＫ−３βである。一部の実施形態においては、前記化合物は少なくとも２５倍〜１００倍のβ−カテニン：ＧＳＫ−３βウインドウを有する。一部の実施形態においては、化合物は少なくとも３０倍のβ−カテニン：ＧＳＫ−３βウインドウを有する。他の実施形態においては、前記化合物は少なくとも４００倍〜５００倍のβ−カテニン：ＧＳＫ−３αウインドウを有する。

意外にも、セリン／スレオニンキナーゼ型と相対比較してＧＳＫ−３酵素のチロシン型の自己リン酸化を選択的に阻害する化合物は、例えばニューロン細胞における軸索及び樹状突起の分枝化を増大させることにより、ニューロンの生育及び樹状突起の形成を促進する。ニューロンの生育及び樹状突起の形成を増大させることは多くの型の変性状態、例えば卒中、卒中後、脊髄傷害、外傷性脳傷害、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン病、多発性硬化症、筋萎縮性側索硬化症、糖尿病性神経障害、シャルコー−マリー−ツース病、白血球減少症、糖尿病及び骨粗鬆症を治療する場合に好都合であり、そして予測できなかった改善した治療効果を与える。

セリン／スレオニンキナーゼ型と相対比較してＧＳＫ−３酵素のチロシン型の自己リン酸化を選択的に阻害する化合物は又、血管形成を促進し、これは本明細書に記載したもののような変性状態の多くの型を治療する場合に好都合であり、そして予測できなかった改善した治療効果を与える。

本発明の別の態様は、例えば限定しないが、自己免疫疾患、炎症性疾患、増殖性及び増殖亢進性の疾患、免疫学的に媒介された疾患、免疫不全障害、免疫調節又は免疫抑制性の障害、骨疾患、代謝性疾患、神経学的及び神経変性疾患、神経栄養因子、心臓血管疾患、ホルモン関連疾患、糖尿病、アレルギー、喘息、及びアルツハイマー病を包含する疾患、障害及び状態の治療のために有用な化合物を提供する。本発明の別の態様は蛋白キナーゼの阻害剤であり、そしてこのため本明細書に記載する他の用途と共に疾患、障害及び状態の治療のために有用である化合物を提供する。

別の態様は本明細書に記載した化合物のいずれかを含み、そして任意に製薬上許容しうる担体、アジュバント又はビヒクルを含む製薬上許容しうる組成物を提供する。特定の実施形態においては、これらの組成物は任意に更に追加的治療薬１つ以上を含む。

本発明の１つの態様は、自己免疫疾患、炎症性疾患、増殖性及び増殖亢進性の疾患、例えば癌、免疫学的に媒介された疾患、免疫不全障害、骨疾患、代謝性疾患、神経学的及び神経変性疾患、心臓血管疾患、アレルギー、糖尿病、喘息、アルツハイマー病、又はホルモン関連疾患から選択される疾患、障害又は状態を治療するか、又はその重症度を低下させるための方法を提供し、これは、化合物、又は化合物を含む製薬上許容しうる組成物の有効量を、それを必要とする対象に投与することを含む。

「癌」という用語は限定しないが、以下の癌、即ち：類表皮口腔：口腔、***、舌、口内、咽頭；心臓：肉腫（血管肉腫、腺維肉腫、横紋筋肉腫、脂肪肉腫）、粘液腫、横紋筋腫、腺維腫、脂肪腫及び奇形腫；肺：気管支原生癌腫（扁平上皮細胞又は類表皮、未分化小細胞、未分化大細胞、腺癌）、肺胞（細気管支）癌、気管支腺腫、肉腫、リンパ腫、軟骨腫様の過誤腫、中皮腫；胃腸：食道（扁平上皮細胞癌、喉頭、腺癌、平滑筋肉腫、リンパ腫）、胃（癌、リンパ腫、平滑筋肉腫）、膵臓（管腺癌、インスリノーマ、グルカゴノーマ、ガストリノーマ、類癌腫、ビポーマ）、小腸類又は小腸（腺癌、リンパ腫、類癌腫、カポジ肉腫、平滑筋腫、血管腫、脂肪腫、神経線維腫、腺維腫）、大腸類又は大腸（腺癌、管状腺腫、絨毛腺癌、過誤腫、平滑筋腫）、結腸、結腸−直腸、結腸直腸；直腸、泌尿器管：腎臓（腺癌、ウイルムス腫瘍［腎芽細胞腫］、リンパ腫、白血病）、膀胱及び尿道（扁平上皮細胞癌、移行上皮癌、腺癌）、前立腺（腺癌、肉腫）、精巣（セミノーマ、奇形腫、胚性癌腫、奇形癌腫、絨毛癌、肉腫、腸細胞癌腫、腺維腫、腺維腺癌、腺癌様腫瘍、脂肪腫）；肝臓：ヘパトーマ（肝細胞癌腫）、胆管癌腫、肝細胞芽腫、血管肉腫、肝細胞腺癌、血管腫、胆道；骨：骨原生肉腫（骨肉腫）、腺維肉腫、悪性腺維性組織球腫、軟骨肉腫、ユーイング肉腫、悪性リンパ腫（細網細胞肉腫）、多発性骨髄腫、悪性巨細胞腫脊索腫、骨軟骨腫（骨軟骨外骨腫症）、良性軟骨腫、軟骨芽腫、軟骨粘液腺維腫、骨様骨腫及び巨細胞腫；神経系：頭蓋（骨腫、血管腫、肉芽腫、キサントーマ、変形性骨炎）、髄膜（髄膜腫、髄膜肉腫、神経膠腫症）、脳（星状細胞腫瘍、髄芽細胞腫、神経膠腫、脳室上衣細胞腫、胚細胞腫［松果体腫］、多形グリア芽細胞腫、稀突起神経膠細胞、神経鞘腫、網膜芽細胞腫、先天性腫瘍）、脊髄神経線維腫、髄膜腫、神経膠腫、肉腫）；婦人科：子宮（子宮内膜癌）、子宮頚部（子宮頸癌、前腫瘍子宮頚部形成不全）、卵巣（卵巣癌［漿液性嚢胞腺腫、粘液性嚢胞腺腫、未分類癌腫］、顆粒包膜細胞腫、セルトーリ−ライディッヒ細胞腫、未分化胚細胞腫、悪性奇形腫）、外陰部（扁平上皮細胞癌、上皮内癌腫、腺癌、腺維肉腫、黒色腫）、膣部（明細胞癌腫、扁平上皮細胞癌、ブドウ状肉腫（胚性横紋筋肉腫）、ファローピウス管（癌腫）、***；血液学的：血液（骨髄性白血病［急性及び慢性］、急性リンパ芽球性白血病、慢性リンパ性白血病、骨髄増殖性疾患、多発性骨髄腫、骨髄形成異常症候群）、ホジキン病、非ホジキンリンパ腫［悪性リンパ腫］ヘアリーセル；リンパ様障害；皮膚：悪性黒色腫、基底細胞癌腫、扁平上皮細胞癌、カポジ肉腫、角化棘細胞腫、異形成性母斑（ｍｏｌｅｓ ｄｙｓｐｌａｓｔｉｃ ｎｅｖｉ）、脂肪腫、血管腫、皮膚腺維腫、ケロイド、乾癬、甲状腺：乳頭上甲状腺癌腫、濾胞性甲状腺癌腫；髄様甲状腺癌腫、未分化甲状腺癌、多発性内分泌新形成２Ａ型、多発性内分泌新形成２Ｂ型、家族性髄様甲状腺癌、褐色細胞腫、パラガン神経膠腫；及び副腎：神経芽腫を包含する。即ち、「癌細胞」という用語は本明細書においては、上記状態のいずれか１つを被っている細胞を包含する。一部の実施形態においては、癌は結腸直腸癌、甲状腺癌、又は乳癌から選択される。

特定の実施形態においては、化合物又は製薬上許容しうる組成物の「有効量」は前記疾患を治療するために有効な量である。本発明の方法による化合物及び組成物は前記疾患を治療するかその重症度を低下させるために有効ないずれかの量及びいずれかの投与経路を用いながら投与してよい。一部の実施形態においては、前記疾患はアレルギー又はＩ型過敏反応、喘息、糖尿病、アルツハイマー病、ハンチントン病、パーキンソン病、エイズ関連痴呆、双極性障害、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ、ルーゲーリック病）、多発性硬化症（ＭＳ）、統合失調症、白血球減少症、心筋細胞肥大、再灌流／虚血、卒中、禿頭症、移植片拒絶、対宿主性移植片病、慢性関節リューマチ、及び固形性及び血液学的な悪性疾患から選択される。一部の実施形態においては、前記疾患は糖尿病、双極性障害、統合失調症、卒中、ハンチントン病、白血球減少症及び心筋細胞肥大から選択される。本発明の一部の実施形態においては、前記疾患は蛋白キナーゼ媒介状態である。一部の実施形態においては、前記蛋白キナーゼはＧＳＫ−３である。

「蛋白キナーゼ媒介状態」という用語は本明細書においては、蛋白キナーゼが役割を果たしているいずれかの疾患又は他の有害な状態を意味する。そのような状態は限定しないが、自己免疫疾患、炎症性疾患、増殖性及び増殖亢進性の疾患、免疫学的に媒介された疾患、免疫不全障害、免疫調節又は免疫抑制性の障害、骨疾患、代謝性疾患、神経学的及び神経変性疾患、心臓血管疾患、ホルモン関連疾患、糖尿病、アレルギー、喘息、及びアルツハイマー病を包含する。

「ＧＳＫ−３媒介状態」という用語は本明細書においては、ＧＳＫ−３が役割を果たしているいずれかの疾患又は他の有害な状態を意味する。そのような状態は限定しないが、糖尿病、糖尿病性神経障害、骨粗鬆症、アルツハイマー病、ハンチントン病、パーキンソン病、エイズ関連痴呆、双極性障害、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ、ルーゲーリック病）、多発性硬化症（ＭＳ）、統合失調症、白血球減少症、心筋細胞肥大、卒中、脊髄傷害、外傷性脳傷害、シャルコー−マリー−ツース病、及び慢性関節リューマチを包含する。

一部の実施形態においては、前記疾患は変性状態である。一部の実施形態においては、前記変性状態は卒中、卒中後回復、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、多発性硬化症（ＭＳ）、脊髄傷害、外傷性脳傷害、シャルコー−マリー−ツース病、白血球減少症、糖尿病、糖尿病性神経障害、及び骨粗鬆症から選択される。

一部の実施形態においては、前記疾患は神経変性状態である。別の実施形態においては、前記神経変性状態は、卒中、卒中後回復、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、多発性硬化症（ＭＳ）、脊髄傷害、外傷性脳傷害、及びシャルコー−マリー−ツース病から選択される。

１つの実施形態は本明細書に記載した化合物にニューロン細胞を接触させる工程を含む前記細胞における軸索及び樹状突起の分枝化を増大させる方法を提供する。別の実施形態は本明細書に記載した化合物に前記細胞を接触させる工程を含む神経形成性を促進する方法を提供する。別の実施形態は本明細書に記載した化合物に該細胞を接触させる工程を含む血管形成を促進する方法を提供する。又別の実施形態は、本明細書に記載した化合物を患者に投与することを含む、躁病及び抑鬱のような神経精神障害を治療する方法を提供する。

本発明の１つの態様によれば、前記神経変性疾患は卒中である。一部の実施形態においては、化合物は卒中の回復の間に卒中患者を治療するために使用される。一部の場合においては、化合物は卒中後投与において使用される。治療期間の長さは１か月〜１年の範囲である。一部の実施形態においては、化合物は卒中を発症した後に投与する。一部の実施形態においては、前記投与は虚血直後に行う。他の実施形態においては、前記投与は虚血後４８時間〜虚血後６カ月に行う。一部の実施形態においては、化合物は物理療法のような卒中回復治療の他の形態と組み合わせて使用する。

別の実施形態は本明細書に記載した化合物にベータ細胞を接触させる工程を含む糖尿病の治療方法を提供する。一部の実施形態においては、化合物はベータ細胞再生を促進する。

別の実施形態は本明細書に記載した化合物に骨細胞を接触する工程を含む骨粗鬆症の治療方法を提供する。一部の実施形態においては、前記化合物は細胞における骨芽細胞形成を促進する。

当然ながら、本発明の化合物の特定のものは治療のための遊離形態において、或いは、適宜、その製薬上許容しうる塩又は製薬上許容しうる誘導体として存在できる。

本発明は種々の製薬上許容しうる塩の混合物／複合物、そして更には、遊離形態の化合物及び製薬上許容しうる塩の混合物／複合物を包含する。

本明細書に記載した通り、本発明の製薬上許容しうる組成物は更に、製薬上許容しうる担体、アジュバント、又はビヒクルを含み、これらは、本明細書においては、所望の特定の剤型に適する如何なる溶媒、希釈剤、又は他の液体ビヒクル、分散又は懸濁補助剤、界面活性剤、等張性付与剤、増粘剤又は乳化剤、保存料、固体結合剤、滑沢剤等を包含する。Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、第１６版、Ｅ．Ｗ．Ｍａｒｔｉｎ（Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，Ｐａ．，１９８０）は製薬上許容しうる組成物を製剤する場合に使用される種々の担体及びその製造のための既知の手法を開示している。何れの従来の担体媒体も、例えばいずれかの望ましくない生物学的作用をもたらすか、又は別様に、製薬上許容しうる組成物のいずれかの他の成分と有害な態様において相互作用すること等により本発明の化合物に対して不適合となる場合を除き、その使用は本発明の範囲内に包含されることを意図している。

製薬上許容しうる担体として機能できる物質の一部の例は、限定しないが、イオン交換物質、アルミナ、ステアリン酸アルミニウム、レシチン、血清蛋白、例えばヒト血清アルブミン、緩衝物質、例えばリン酸塩、グリシン、ソルビン酸、又はソルビン酸カリウム、飽和植物性脂肪酸の部分グリセリド混合物、水、塩又は電解質、例えば硫酸プロタミン、リン酸水素二ナトリウム、リン酸水素カリウム、塩化ナトリウム、亜鉛の塩、コロイド状シリカ、三ケイ酸マグネシウム、ポリビニルピロリドン、ポリアクリレート、ワックス、ポリエチレン−ポリオキシプロピレンブロック重合体、羊毛脂、糖類、例えば乳糖、グルコース及びスクロース；澱粉、例えばコーンスターチ及びバレイショ澱粉；セルロース及びその誘導体、例えばカルボキシメチルセルロースナトリウム、エチルセルロース及びセルロースアセテート；粉末トラガカント；麦芽；ゼラチン；タルク；賦形剤、例えばカカオ脂及び座薬用のワックス；油脂類、例えばピーナツ油、綿実油；サフラワー油；ゴマ油；オリーブ油；コーン油及びダイズ油；グリコール類；例えばプロピレングリコール又はポリエチレングリコール；エステル類、例えばオレイン酸エチル及びラウリン酸エチル；寒天；緩衝剤、例えば水酸化マグネシウム及び水酸化アルミニウム；アルギン酸；発熱物質非含有の水；等張性食塩水；リンゲル溶液；エチルアルコール、及びリン酸緩衝液が包含され、並びに、他の非毒性の適合する滑沢剤、例えばラウリル硫酸ナトリウム及びステアリン酸マグネシウム、並びに着色剤、離型剤、コーティング剤、甘味料、香味料及び芳香剤、保存料及び抗酸化剤もまた製剤担当者の判断に従って組成物中に存在できる。

蛋白キナーゼ阻害剤又はその薬学的塩は動物又はヒトへの投与のための医薬組成物に製剤してよい。蛋白キナーゼ媒介状態を治療又は予防するために有効な蛋白阻害剤の量及び製薬上許容しうる担体を含むこれらの医薬組成物は、本発明の別の実施形態である。一部の実施形態においては、前記蛋白キナーゼ媒介状態はＧＳＫ−３媒介状態である。一部の実施形態においては、ＧＳＫ−３媒介状態である。

治療に必要な化合物の厳密な量は、対象の種、年齢、及び全身状態、感染の重症度、特定の薬剤、その投与様式等に応じて対象毎に変動することになる。本発明の化合物は好ましくは投与の容易さ及び用量の均一性のために単位剤型において製剤される。「単位剤型」という表現は、本明細書においては、治療すべき患者に対して適切な薬剤の物理的に個別の単位を指す。しかしながら、本発明の化合物及び組成物の総一日当たり使用量は確かな医学的判断の範囲内において担当医師により決定されることになる。いずれかの特定の患者又は生物に対する特定の有効用量のレベルは、治療すべき障害及び障害の重症度；使用する特定の化合物の活性；使用する特定の組成物；患者の年齢、体重、全身健康状態、性別及び食餌状態；使用する特定の化合物の投与時期、投与経路、及び排出速度；治療期間；使用する特定の化合物と組み合わせて、又は同時に使用される薬剤、及び医学分野で良く知られている同様の要因を包含する種々の要因に応じたものとなる。「患者」という用語は本明細書においては、動物、好ましくは哺乳類、そして最も好ましくはヒトを意味する。

本発明の製薬上許容しうる組成物は、治療すべき感染症の重症度に応じて、経口、直腸、非経口、槽内、膣内、腹腔内、局所（粉末、軟膏、又はドロップとして）、口内、口腔又は鼻内スプレー等としてヒト及び他の動物に投与できる。特定の実施形態においては、本発明の化合物は所望の治療効果を得るためには、一日に１回以上、一日当たり、
約０．０１ｍｇ／ｋｇ〜約５０ｍｇ／ｋｇ、そして好ましくは約１ｍｇ／ｋｇ〜約２５ｍｇ／ｋｇ対象体重の用量レベルにおいて経口又は非経口投与してよい。

経口投与用の液体剤型は限定しないが、製薬上許容しうる乳液、マイクロエマルジョン、溶液、懸濁液、シロップ及びエリキシルを包含する。活性化合物のほかに、液体剤型は当該分野で一般的に使用されている不活性希釈剤、例えば水又は他の溶媒、可溶化剤及び乳化剤、例えばエチルアルコール、イソプロピルアルコール、炭酸エチル、酢酸エチル、ベンジルアルコール、安息香酸ベンジル、プロピレングリコール、１，３−ブチレングリコール、ジメチルホルムアミド、油脂類（特に綿実油、ピーナツ油、コーン油、胚芽油、オリーブ油、ヒマシ油、及びゴマ油）、グリセロール、テトラヒドロフリルアルコール、ポリエチレングリコール及びソルビタンの脂肪酸エステル、及びこれらの混合物を含有してよい。不活性希釈剤のほかに、経口組成物は又、アジュバント、例えば水和剤、乳化剤及び懸濁剤、甘味料、香味料、及び芳香剤を包含できる。

注射用の調製品、例えば滅菌注射用水性又は油性懸濁液は適当な分散剤又は水和剤及び懸濁剤を用いながら当該分野で知られる通り製剤してよい。滅菌注射用調製品は又、非毒性の非経口的に許容される希釈剤又は溶媒中の滅菌注射用溶液、懸濁液又はエマルジョン、例えば１，３−ブタノール中の溶液であることができる。使用してよい許容されるビヒクル及び溶媒に属するものは、水、リンゲル溶液、Ｕ．Ｓ．Ｐ．及び等張性の塩化ナトリウム溶液である。更に又、滅菌された固定油も溶媒又は懸濁媒体として従来より使用されている。この目的のためにはいずれかの銘柄の固定油、例えば合成のモノ又はジグリセリドを使用できる。更に又、オレイン酸のような脂肪酸も注射用製剤の製造において使用される。

注射用製剤は例えば細菌保持フィルターを通した濾過によるか、又は使用前に滅菌された水又は他の滅菌された注射用媒体中に溶解又は分散できる滅菌固体組成物の形態に滅菌剤を配合することにより、滅菌できる。

本発明の化合物の作用を延長するためには、皮下又は筋肉内注射からの化合物の吸収を緩徐化することが望ましい場合が多い。これは水溶性に乏しい結晶性又は不定形の物質の液体懸濁物の使用により達成してよい。ここで化合物の吸収の速度は、その溶解速度に依存しており、そしてこれは結晶の大きさ及び結晶の形態に依存する場合がある。或いは、非経口投与された化合物の形態の遅延された吸収は、油脂ビヒクル中に化合物を溶解又は懸濁することにより達成される。蓄積注射形態はポリラクチド−ポリグリコリドのような生体分解性の重合体中の化合物のマイクロカプセルを形成することにより作成する。重合体に対する化合物の比及び使用する特定の重合体の性質に応じて、化合物放出速度を制御できる。他の生体分解性重合体の例はポリ（オルトエステル）及びポリ（無水物）を包含する。蓄積注射製剤は又身体組織に対して適合性であるリポソーム又はマイクロエマルジョン中に化合物を捕獲することにより製造される。

直腸又は膣内投与用の組成物は、好ましくは、周囲温度では固体であるが体温では液体となることにより直腸又は膣腔部において溶融し、そして活性化合物を放出するカカオ脂、ポリエチレングリコール又は座薬用ワックスのような適当な非刺激性の賦形剤又は担体に本発明の化合物を混合することにより製造できる座薬である。

経口投与用の固体剤型はカプセル、錠剤、丸薬、粉末、及び顆粒を包含する。そのような固体剤型においては、活性化合物は少なくとも１つの不活性の製薬上許容しうる賦形剤又は担体、例えばクエン酸ナトリウム又はリン酸二カルシウム及び／又はａ）充填剤又は増量剤、例えば澱粉、乳糖、スクロース、グルコース、マンニトール、及びケイ酸、ｂ）結合剤、例えばカルボキシメチルセルロース、アルギネート、ゼラチン、ポリビニルピロリドン、スクロース、及びアカシア、ｃ）湿潤剤、例えばグリセロール、ｄ）錠剤崩壊剤、例えば寒天、炭酸カルシウム、バレイショ又はタピオカ澱粉、アルギン酸、特定のケイ酸塩、及び炭酸ナトリウム、ｅ）溶解遅延剤、例えばパラフィン、ｆ）吸収加速剤、例えば第四級アンモニウム化合物、ｇ）水和剤、例えばセチルアルコール及びグリセロールモノステアレート、ｈ）吸収剤、例えばカオリン及びベントナイト粘土、及びｉ）滑沢剤、例えばタルク、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸マグネシウム、固体ポリエチレングリコール、ラウリル硫酸ナトリウム、及びこれらの混合物と混合される。カプセル、錠剤及び丸薬の場合は、剤型は又緩衝剤を含んでよい。

同様の型の固体組成物は又、乳糖又はミルクシュガーのような錠剤賦形剤並びに高分子量ポリエチレングリコール等を用いたソフト及びハード充填ゼラチンカプセルにおける充填剤としても使用してよい。錠剤、糖衣錠、カプセル、丸薬、及び顆粒の固体剤型はコーティング及びシェル、例えば腸溶性コーティング及び他の製薬技術の当該分野で良く知られているコーティングを用いて製造できる。それらは任意に不透明化剤を含有してよく、そして、任意に遅延した態様において、腸管の特定の部分においてのみ、或いは優先的に、活性成分を放出する組成物のものであることができる。使用できる包埋組成物の例は重合体物質及びワックスを包含する。同様の型の固体組成物は又、乳糖又はミルクシュガーのような錠剤賦形剤並びに高分子量ポリエチレングリコール等を用いたソフト及びハード充填ゼラチンカプセルにおける充填剤としても使用してよい。

活性化合物は又、上記した賦形剤１つ以上と共にマイクロカプセル型とすることもできる。錠剤、糖衣錠、カプセル、丸薬及び顆粒の固体剤型はコーティング及びシェル、例えば腸溶性コーティング、放出制御コーティング及び他の製薬技術の当該分野で良く知られているコーティングを用いて製造できる。そのような固体剤型においては、活性化合物はスクロース、乳糖又は澱粉のような不活性希釈剤少なくとも１つと添加混合してよい。そのような剤型は又、通常の慣行に従って、不活性希釈剤とは別の追加的な物質、例えば錠剤成型用滑沢剤及び他の錠剤化補助剤、例えばステアリン酸マグネシウム及び微結晶セルロースを含んで良い。カプセル、錠剤及び丸薬の場合は、剤型は又、緩衝物質を含んでよい。それらは任意に不透明化剤を含有してよく、そして、任意に遅延した態様において、腸管の特定の部分においてのみ、或いは優先的に、活性成分を放出する組成物のものであることができる。使用できる包埋組成物の例は重合体物質及びワックスを包含する。

本発明の化合物の局所又は経皮投与のための剤型は軟膏、ペースト、クリーム、ローション、ゲル、粉末、溶液、スプレー、吸入剤又はパッチを包含する。活性成分は滅菌条件下、製薬上許容しうる担体及びいずれかの必要な保存料又は緩衝物質と、必要に応じて添加混合する。眼科用製剤、点耳薬、及び点眼薬もまた本発明の範囲に包含されるものとして意図される。更に又、本発明は身体への化合物の制御された送達をもたらす追加的な利点を有する経皮パッチの使用を意図している。そのような剤型は、適切な培地中に化合物を溶解又は分散することにより製造できる。吸収増強剤も又、皮膚を通過する化合物のフラックスを増大させるために使用できる。速度は、速度制御膜を設けることによるか、又は重合体マトリックス又はゲル中に化合物を分散させることのいずれかにより、制御することができる。

本発明の化合物に加えて、本発明の化合物の製薬上許容しうる誘導体又はプロドラッグも又、上記した障害を治療又は防止するための組成物中で使用してよい。

「製薬上許容しうる誘導体又はプロドラッグ」とは、レシピエントに投与された場合に本発明の化合物又はその抑制活性を有する代謝産物又は残基を直接的又は間接的のいずれかにより与えることができる本発明の化合物のいずれかの製薬上許容しうるエステル、エステルの塩又は他の誘導体を意味する。特に良好な誘導体又はプロドラッグは、本発明の化合物を患者に投与した場合に（例えば経口投与された化合物をより容易に血中に吸収され得るようにすることにより）その化合物の生態利用性を増大させるか、又は親の種と相対比較して生物学的コンパートメント（例えば脳又はリンパ系）への親化合物の送達を増強するものである。

本発明の化合物の製薬上許容しうるプロドラッグは、限定しないが、エステル、アミノ酸エステル、ホスフェートエステル、金属塩及びスルホネートエステルを包含する。

これらの医薬組成物中で使用してよい製薬上許容しうる担体は、限定しないが、イオン交換物質、アルミナ、ステアリン酸アルミニウム、レシチン、血清蛋白、例えばヒト血清アルブミン、緩衝物質、例えばホスフェート、グリシン、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、飽和植物性脂肪酸の部分グリセリド混合物、水、塩又は電解質、例えば硫酸プロタミン、リン酸水素二ナトリウム、リン酸水素カリウム、塩化ナトリウム、亜鉛塩、コロイド状シリカ、三ケイ酸マグネシウム、ポリビニルピロリドン、セルロース系物質、ポリエチレングリコール、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリアクリレート、ワックス、ポリエチレン−ポリオキシプロピレンブロック重合体、ポリエチレングリコール及び羊毛脂を包含する。

本発明の組成物は経口、非経口、吸引スプレーにより、局所、直腸内、経鼻、口内、膣内、又は移植されたリザーバを介して投与してよい。「非経口」という用語は本明細書においては、限定しないが、皮下、静脈内、筋肉内、関節内、滑液包内、胸骨内、髄腔内、肝臓内、患部内及び頭蓋内の注射又は注入の手法を包含する。好ましくは、組成物は経口、腹腔内又は静脈内投与する。

本発明の組成物の滅菌された注射可能な形態は水性又は油性の懸濁液であってよい。これらの懸濁液は適当な分散剤又は水和剤及び懸濁剤を用いながら当該分野で知られた手法に従って製剤してよい。滅菌された注射可能な調製品は又、非毒性の非経口的に許容される希釈剤又は溶媒中の滅菌された注射可能な溶液又は懸濁液、例えば１，３−ブタンジオール中の溶液であってよい。使用してよい許容できるビヒクル及び溶媒に属するものは水、リンゲル溶液及び等張性の塩化ナトリウム溶液である。更に又、滅菌された固定油も溶媒又は懸濁媒体として従来より使用されている。この目的のためにはいずれかの銘柄の固定油、例えば合成のモノ又はジグリセリドを使用してよい。脂肪酸、例えばオレイン酸及びそのグリセリド誘導体が、天然の製薬上許容しうる油脂類、例えばオリーブ油又はヒマシ油、特にそのポリオキシエチル化型と同様、注射用調製品において有用である。これらの油脂の溶液又は懸濁液は又、長鎖アルコール希釈剤又は分散剤、例えばカルボキシメチルセルロース又は乳液及び懸濁液を包含する製薬上許容しうる剤形の製剤において一般的に使用されている同様の分散剤を含有してよい。他の一般的に使用されている界面活性剤、例えばＴｗｅｅｎ、Ｓｐａｎ及び他の乳化剤又は製薬上許容しうる固体、液体、又は他の剤型の製造において一般的に使用されている生体利用性増強剤も又、製剤目的のために使用してよい。

本発明の医薬組成物は例えば限定しないがカプセル、錠剤、水性の懸濁液又は溶液を包含するいずれかの経口的に許容される剤型において経口投与してよい。経口用の錠剤の場合は、一般的に使用されている担体は限定しないが乳糖及びコーンスターチを包含する。滑沢剤、例えばステアリン酸マグネシウムもまた典型的に添加される。カプセル形態における経口投与のためには、有用な希釈剤は乳糖及び乾燥コーンスターチを包含する。水性懸濁液を経口用途のために必要とする場合、活性成分は乳化剤及び懸濁剤と混合する。所望により、特定の甘味料、香味料又は着色剤も添加してよい。

或いは、本発明の医薬組成物は直腸投与のための座薬の形態で投与してよい。これらは、室温では固体であるが直腸の温度では液体であるため、直腸内で溶融して薬剤を放出することになる適当な非刺激性の賦形剤に薬剤を混合することにより製造できる。そのような物質は、限定しないが、カカオ脂、蜜蝋及びポリエチレングリコールを包含する。

本発明の医薬組成物は又、特に治療標的が局所適用により容易に接触可能な領域又は臓器を包含する場合、例えば眼、皮膚、又は下部腸管の疾患の場合、局所投与してよい。適当な局所用製剤はこれらの領域又は臓器の各々に対して容易に製造される。

下部腸管に対する局所適用は直腸用の座薬の製剤（上記参照）において、又は適当な浣腸製剤において行うことができる。局所経皮パッチも使用してよい。

局所適用のためには、医薬組成物は担体１つ以上中に懸濁又は溶解した活性成分を含有する適当な軟膏に製剤してよい。本発明の化合物の局所投与用の担体は、限定しないが、鉱物油、白色鉱油、白色ワセリン、プロピレングリコール、ポリオキシエチレン、ポリオキシプロピレン化合物、乳化ワックス及び水を包含する。或いは、医薬組成物は製薬上許容しうる担体１つ以上中に懸濁又は溶解した活性成分を含有する適当なローション又はクリームに製剤できる。適当な担体は限定しないが、鉱物油、ソルビタンモノステアレート、ポリソルベート６０、セチルエステルワックス、セテアリールアルコール、２−オクチルドデカノール、ベンジルアルコール及び水を包含する。

眼科用の場合、医薬組成物は等張性のｐＨ調節された滅菌食塩水中のミクロ化懸濁液として、又は、好ましくは等張性のｐＨ調節された滅菌食塩水中の溶液として、塩化ベンザルコニウムのような保存料を含有するか含有することなく、製剤してよい。或いは、眼科用の場合、医薬組成物はワセリンのような軟膏中に製剤してよい。

本発明の医薬組成物は又、鼻用のエアロゾル又は吸入により投与してよい。そのような組成物は医薬品製剤の分野においてよく知られた手法に従って製造され、そしてベンジルアルコール又は他の適当な保存料、生体利用性を増大させるための吸収促進剤、フルオロカーボン、及び／又は他の従来の可溶化剤又は分散剤を用いながら、食塩水中の溶液として製造してよい。

単一の剤型を製造するために担体物質と組み合わせてよい蛋白キナーゼ阻害剤の量は、治療すべき宿主、投与の特定の様式に応じて変動することになる。好ましくは組成物は、これらの組成物を投与される患者に対して阻害剤０．０１〜１００ｍｇ／ｋｇ体重／日の用量が投与できるように製剤しなければならない。

いずれかの特定の患者に対する特定の用量及び治療用法は、種々の要因、例えば使用する特定の化合物の活性、年齢、体重、全身状態、性別、食餌状態、投与時間、排出速度、薬剤の組み合わせ、及び担当医師の判断及び治療すべき特定の疾患の重症度に応じたものとなる。阻害剤の量は又、組成物中の特定の化合物に応じたものとなる。

別の実施形態によれば、本発明は、上記した医薬組成物の１つを患者に投与する工程を含む蛋白キナーゼ媒介状態（一部の実施形態においてはＧＳＫ−３媒介状態）を治療又は予防するための方法を提供する。「患者」という用語は本明細書においては、動物、好ましくはヒトを意味する。

好ましくはその方法は、乳腺、結腸、前立腺、皮膚、膵臓、脳、尿生殖器管、リンパ系、胃、喉頭及び肺の癌、例えば肺の腺癌及び小細胞肺癌のような癌；卒中、糖尿病、骨髄腫、肝臓肥大、心臓肥大、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、多発性硬化症（ＭＳ）、脊髄傷害、外傷性脳傷害、シャルコー−マリー−ツース病、白血球減少症、糖尿病性神経障害、骨粗鬆症、嚢胞性線維症、及びウィルス疾患、又は上記したいずれかの特定の疾患から選択される状態を治療又は予防するために使用される。

本発明の他の態様は、患者における蛋白キナーゼ活性を阻害することに関し、その方法は式Ｉの化合物又は該化合物を含む組成物を患者に投与することを含む。

治療又は予防すべき特定の蛋白キナーゼ媒介状態に応じて、その状態を治療又は予防するために通常投与される追加的薬剤を本発明の阻害剤と共に投与してよい。例えば化学療法剤又は他の抗増殖剤を本発明の蛋白キナーゼ阻害剤と組み合わせることにより、増殖性疾患を治療してよい。

これらの追加的な薬剤は蛋白キナーゼ阻害剤含有化合物又は組成物とは別個に、多投薬用法の部分として投与してよい。或いはこれらの薬剤は単一の組成物中で蛋白キナーゼ阻害剤と共に混合された単一の財形の部分であってよい。

一部の実施形態においては、前記蛋白キナーゼ阻害剤はＧＳＫ−３キナーゼ阻害剤である。

本発明は又、患者への投与を行うもの以外の方法において使用してよい。

本発明の化合物は当該分野で知られた方法により一般的に製造してよい。これらの化合物は知られた方法、例えば限定しないが、ＬＣＭＳ（液体クロマトグラフィー質量スペクトル分析）及びＮＭＲ（核磁気共鳴）により分析してよい。本発明の化合物は又、これらの実施例に従って試験してよい。以下に示す特定の条件は例示に過ぎず、そして本発明の化合物を製造、分析、又は試験するために使用できる条件の範囲を限定する意味はない。むしろ、本発明は又、本発明の化合物を製造、分析、及び試験するための当業者の知る条件を包含する。

本明細書においては、「Ｒｔ（分）」という用語は化合物に関連する分表示によるＨＰＬＣ又はＬＣＭＳの保持時間のいずれかを指す。

特段の記載が無い限り、報告された保持時間を得るために利用したＨＰＬＣ法は以下の通りである。
カラム：ＡＣＥ Ｃ８カラム、４．６×１５０ｍｍ
勾配：０〜１００％ アセトニトリル＋メタノール ６０：４０（２０ｍＭ Ｔｒｉｓホスフェート）
流量：１．５ｍＬ／分
検出：２２５ｎｍ。

ＬＣＭＳ（液体クロマトグラフィー質量スペクトル分析）試料は、ＭｉｃｒｏＭａｓｓ
Ｑｕａｔｔｒｏ Ｍｉｃｒｏ質量スペクトル分析器上、シングルＭＳモードで作動させながら電子スプレーイオン化により分析した。試料はクロマトグラフィーを用いながら質量スペクトル分析器に導入した。全質量スペクトル分析用の移動相はアセトニトリル−水混合物に０．２％のギ酸又は０．１％のＴＦＡを変性剤として添加したものを使用した。カラム勾配条件は３分間の勾配時間に渡り１０％〜９０％アセトニトリル、そして５分間の泳動時間をＷａｔｅｒｓ ＹＭＣ Ｐｒｏ−Ｃ１８，４．６×５０ｍｍカラム上に設定する。流量は１．５ｍｌ／分とする。

^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルはＢｒｕｋｅｒ ＤＰＸ４００機を使用しながら４００ＭＨｚにおいて記録した。以下の式Ｉの化合物を後述する通り製造して分析した。

中間体１

２−クロロベンズイミドアミド
２−クロロベンゾニトリル（２６．８４ｇ、１９５ミリモル）を窒素下に氷浴で冷却しながらエーテル（４００ｍｌ）中のＬＨＭＤＳ（ＴＨＦ中１Ｍ、４００ｍＬ、４００ミリモル）の攪拌溶液に２５分間に渡り６回に分けて添加した。５分後、冷却バスを取り外し、そして攪拌を一夜継続した。反応が終了（ＬＣＭＳでモニタリング）したことが示された後、氷浴で冷却しながら水性ＨＣｌ（３Ｍ、４００ｍＬ）を慎重に添加し、その後エーテル（６００ｍＬ）及び水（６００ｍＬ）を添加した。次に抽出を行った。有機層を水性ＨＣｌ（４００ｍＬ）で再度抽出した。合わせた水層を固体のＮａＯＨで慎重にｐＨ１４まで塩基性化し、次にＤＣＭで抽出した（×３）。次に有機層を乾燥（Ｋ２ＣＯ３）し、濾過し、真空下に濃縮し、白色固体としてアミジンを得た（２６．９３ｇ、８９．３％）。
１Ｈ ＮＭＲ（ＤＭＳＯ）６．３４（３Ｈ，ｓ），７．３２−７．４０（３Ｈ，ｍ），７．４６（１Ｈ，ｄｄ）。

中間体２

２−（２−クロロフェニル）−５，６−ジメチルピリミジン−４−オール
エタノール（７５０ｍＬ）中の２−クロロベンズイミドアミド（３４．０７ｇ、２２０ミリモル）及びトリエチルアミン（４４．５０ｇ、４４０ミリモル）に、エチル２−メチル−３−オキソブタノエート（３８．１３ｇ、２６４ミリモル）を添加した。反応混合物を４時間９０℃で加熱した。更にエステル（６．３６ｇ）を添加し、反応混合物を３時間攪拌した。反応混合物を約５００ｍＬに濃縮し、そして一夜放置した。所望のピリミジノール（２２．７ｇ）が沈殿した。母液を濃縮し、ＤＣＭ及び１Ｍ ＨＣｌを添加した。水層をＤＣＭで７回抽出することにより、白色固体として濃縮時に所望の生成物の追加的収量を得た（合計：２８．９ｇ、５６％）。
１Ｈ ＮＭＲ（ＤＭＳＯ）１．９７（３Ｈ，ｓ），２．２６（３Ｈ，ｓ），７．４４−７．４７（１Ｈ，ｍ），７．５１−７．５９（３Ｈ，ｍ），１２．７０（１Ｈ，ｂｒ ｓ）。

中間体３

４−クロロ−２−（２−クロロフェニル）−５，６−ジメチルピリミジン
以下の反応は２つに分割し、そして２つの同一の反応容器内で同時に実施した。

ＰＯＣｌ_３（５０ｍＬ）をピリミジノール（１４．４５ｇ、６１．６ミリモル）に慎重に添加し、反応混合物を５分間攪拌した。次に追加分のＰＯＣｌ_３（１００ｍＬ）を添加し、反応混合物を１０５℃に加熱した。この温度で１時間の後、反応混合物を濃縮した。氷を添加し、そして２連で操作した反応混合物をＤＣＭを用いて合わせた。有機層を食塩水及び水で洗浄し、乾燥（ＭｇＳＯ４）し、濾過し、そして真空下に濃縮して無色の油状物としてクロロピリミジン（３１．１４ｇ、９９．８％）を得た。
１Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３）２．４５（３Ｈ，ｓ），２．６５（３Ｈ，ｓ），７．３６−７．３９（２Ｈ，ｍ），７．４９−７．５１（１Ｈ，ｍ），７．７１−７．７３（１Ｈ，ｍ）。

中間体４

５−フルオロ−１Ｈ−ピラゾロ［３，４−ｂ］ピリジン−３−アミン５の合成に関する全体的な合成スキームを以下に示す。

試薬及び条件：ｉ．Ｐｄ（ＯＡｃ）_２、ＰＰｈ_３、Ｅｔ_３Ｎ、Ｈ_２ＣＯ_２；ｉｉ．１）（ＣＯＣｌ）_２、ＣＨ_２Ｃｌ_２、触媒ＤＭＦ；２）ＮＨ_３（ｇ）、ジオキサン、ｉｉｉ．ＴＦＡＡ、Ｅｔ_３Ｎ、ＣＨ_２Ｃｌ_２、０℃；ｉｖ．Ｈ_２ＮＮＨ_２・Ｈ_２Ｏ、ｎ−ブタノール、還流。

２−クロロ−５−フルオロニコチン酸（６）
窒素雰囲気下、丸底フラスコに脱気したＤＭＦ（２７０ｍＬ）、Ｐｄ（ＯＡｃ）_２（０．０５等量、２．７ｇ、１１．９ミリモル）、ＰＰｈ_３（０．１等量、６．２ｇ、２３．８ミリモル）、及び脱気したＥｔ_３Ｎ（６等量、２００ｍＬ、１４２８．６ミリモル）を添加した。混合物を２０分間攪拌し、次にＨＣＯＯＨ（３等量、２８ｍＬ、７１４．３ミリモル）を添加した。５分後、２，６−ジクロロ−５−フルオロニコチン酸（５０ｇ、２３８．１ミリモル）を添加した。混合物を５０℃で攪拌した。反応は後処理したアリコートの分析（１ＨＮＭＲ）により追跡した。全ての出発物質が消費された時点（２４時間）で混合物を０℃に冷却し、そして水（５００ｍＬ）を添加した。２０分後、混合物をセライトパッドで濾過し、これを水で濯いだ。混合物を３０％水性ＮａＯＨでｐＨ９まで塩基性化し、そしてＥｔＯＡｃで洗浄した（２×）。ＨＣｌ（１２Ｎ）をｐＨ１となるまでゆっくり添加し、そして溶液をＮａＣｌで飽和させた。混合物をＥｔＯＡｃで抽出した（３×）。合わせた有機抽出液を食塩水で洗浄し、乾燥（Ｎａ_２ＳＯ_４）し、そして減圧下に濃縮して得られたベージュ色の固体３７ｇ（８８％）は更に精製することなく次の工程に使用した。
^１Ｈ ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ_６，３００ ＭＨｚ）：δ ８．１６（ｄｄ，１Ｈ）；８．５８（ｄ，１Ｈ）。

２−クロロ−５−フルオロニコチンアミド（３）
０℃のＤＣＭ（４００ｍＬ）中の２−クロロ−５−フルオロニコチン酸６（５０ｇ、２８５ミリモル）及びＤＭＦ（２ｍＬ、２８ミリモル）の溶液に、オキサリルクロリド（６４ｍＬ、７４１ミリモル）を滴下した。反応混合物を室温で一夜攪拌し、そして真空下に濃縮した。得られた黄色の液体を１，４−ジオキサン（６００ｍＬ）に溶解し、０℃で冷却し、そしてＮＨ_３（ｇ）を３０分間溶液にバブリングした。混合物を一夜室温で攪拌した。得られた混合物を濾過し、濾液を濃縮してベージュ色の固体として化合物３（４４ｇ、８９％）を得た。
^１Ｈ ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ_６，３００ ＭＨｚ）：δ７．８４（ｓ，１Ｈ），７．９６（ｄｄ，１Ｈ），８．０９（ｓ，１Ｈ），８．４９（ｄ，１Ｈ）。

２−クロロ−５−フルオロニコチノニトリル（４）
ＤＣＭ（７００ｍＬ）中の粗製の化合物３（６５ｇ、３７２．４ミリモル）及びＥｔ３Ｎ（１１４ｍＬ、８１９．２ミリモル）の懸濁液を０℃に冷却し、そしてＴＦＡＡ（５７ｍＬ、４０９．６ミリモル）を滴下した。得られた黄色の溶液を０℃で９０分間攪拌し、ＤＣＭで希釈し、飽和水性ＮａＨＣＯ_３及び食塩水で洗浄し、そして乾燥（Ｎａ_２ＳＯ_４）した。混合物を濾過し、濃縮した。残留物をＫｕｇｅｌ Ｒｏｈｒ蒸留（〜７０℃／１ｍｂａｒ）に付し、ベージュ色の固体として５０ｇ（８６％）の化合物４を得た。化合物４は又カラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ_２、８：１ヘプタン：ＥｔＯＡｃ）で精製することもできる。^１Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，３００ ＭＨｚ）：δ７．７８（ｄｄ，１Ｈ）；８．４９（ｄ，１Ｈ）。

５−フルオロ−１Ｈ−ピラゾロ［３，４−ｂ］ピリジン−３−アミン（５）
１−ブタノール（１Ｌ）中の化合物４（５０ｇ、３２１．７ミリモル）の溶液に、ヒドラジン１水和物（１５０ｍＬ、３．２モル）を添加し、そして混合物を４時間還流した。混合物を室温に冷却し、濃縮した。沈殿を順次フィルター上で、水（２×）及びＥｔ_２Ｏ（２×）で洗浄し、そして一夜真空下に乾燥し、黄色固体として化合物５（４４ｇ、８８％）を得た。^１Ｈ ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ_６，３００ ＭＨｚ）：δ５．５３（ｓ，２Ｈ）；７．９４（ｄｄ，１Ｈ）；８．３５（ｄｄ，１Ｈ）；１２．０２（ｓ，１Ｈ）。

実施例１（Ｉ−１）

Ｎ−（２−（２−クロロフェニル）−５，６−ジメチルピリミジン−４−イル）−５−フルオロ−１Ｈ−ピラゾロ［３，４−ｂ］ピリジン−３−アミン
ＮＭＰ（２００ｍＬ）中の４−クロロ−２−（２−クロロフェニル）−５，６−ジメチルピリミジン（３１．１４ｇ、１２３ミリモル）及び５−フルオロ−１Ｈ−ピラゾロ［３，４−ｂ］ピリジン−３−アミン（１９．６５ｇ、１２９ミリモル）の混合物を３時間３０分１３５℃で加熱した。次に混合物を真空下に濃縮し、約１００ｍＬとした。次に飽和水性ＮａＨＣＯ_３、水及びＥｔＯＡｃを添加したところ有機層に沈殿が生じた。この全混合物を濾過し、残留物を飽和水性ＮａＨＣＯ_３、水、及びＥｔＯＡｃ及びエーテルで洗浄した。沸騰エタノールを残留物に攪拌しながら添加し、純粋な標的化合物を濾過した。液体を濃縮し、この磨砕操作を４回反復することにより白色固体として標的（２５ｇ、５５％）を得た。
１Ｈ ＮＭＲ（ＤＭＳＯ）２．２８（３Ｈ，ｓ），２．４３（３Ｈ，ｓ），７．２８−７．３７（２Ｈ，ｍ），７．４０−７．４６（２Ｈ，ｍ），７．９３（１Ｈ，ｄｄ），８．４９（１Ｈ，ｓ），９．２８（１Ｈ，ｂｒ ｓ），１３．３９（１Ｈ，ｂｒ ｓ）。

化合物Ｉ−２は化合物Ｉ−１の製造に関して記載した方法と同様の様式において製造した。以下の表２は表１に示した化合物に関連する分析データを示している。

実施例２：ＧＳＫ−３阻害試験：
本発明の化合物を、ＧＳＫ−３β（ＡＡ１−４２０）活性を阻害するそれらの能力の有無に関して、標準的なカップリング酵素系を用いながらスクリーニングした（Ｆｏｘ等、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉ．１９９８，７，２２４９）。反応は１００ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．５）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ_２、２５ｍＭ ＮａＣｌ、３００μＭ ＮＡＤＨ、１ｍＭ ＤＴＴ及び１．５％ＤＭＳＯを含有する溶液中で実施した。試験における最終基質濃度は２０μＭ ＡＴＰ（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ、Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）及び３００μＭペプチド（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｐｅｐｔｉｄｅ、Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ、ＣＡ）であった。反応は３０℃及び２０ｎＭのＧＳＫ−３βにおいて実施した。カップリング酵素系の成分の最終濃度は２．５ｍＭホスホエノールピルベート、３００μＭ ＮＡＤＨ、３０μｇ／ｍｌピルベートキナーゼ及び１０μｇ／ｍｌラクテートデヒドロゲナーゼであった。

試験の保存緩衝溶液はＡＴＰ及び本発明の被験化合物を除き、上記した試薬の全てを含有するように製造した。試験保存緩衝溶液（１７５μｌ）を１０分間３０℃において０．００２μＭ〜３０μＭの範囲の終濃度における本発明の被験化合物５μｌと共に９６穴プレート中でインキュベートした。典型的には、ドータープレート中本発明の被験化合物のＤＭＳＯによる連続希釈物（１０ｍＭの化合物保存液から調製）を製造することにより１２点滴定を実施した。ＡＴＰ（終濃度２０μＭ）２０μｌを添加することにより反応を開始した。反応の速度は３０℃において１０分間に渡り、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ Ｓｐｅｃｔｒａｍａｘプレートリーダー（Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ，ＣＡ）を用いながら求めた。Ｋｉ値は阻害剤濃度の関数として速度のデータから求めた。本発明の化合物はＧＳＫ−３を阻害することがわかった。

化合物Ｉ−１及びＩ−２は＜５ｎＭのＫｉ値でＧＳＫ−３を阻害することがわかった。

実施例３：ＧＳＫ−３α及びＧＳＫ−３βのｐ−ＴＹＲ阻害試験
化合物と投与したＪｕｒｋａｔ細胞のウエスタンブロッティングを用いることによりチロシン（ＴＹＲ）残基のリン酸化を阻害する化合物の能力の有無についてこれらをスクリーニングした。試験した特定のＴＹＲ残基のリン酸化物はＧＳＫ３α ＴＹＲ２７９及びＧＳＫ３β ＴＹＲ２１６である。

細胞及び溶解物の調製
Ｊｕｒｋａｔ細胞を飢餓培地（ＲＰＭＩ＋１％ＦＢＳ＋Ｐ／Ｓ）中１２穴ディッシュ中２×１０^５個／ウェルの細胞密度において播種する。１６時間飢餓状態とした後、化合物を０．３％の最終ＤＭＳＯ濃度において各ウェルに投与し、そして細胞を３７℃、５％ＣＯ_２において一夜インキュベートする。翌日、細胞を１５００ｒｐｍで遠心分離し、ＰＢＳで洗浄し、そしてβ−メルカプトエタノールを用いて１００ｕＬのＬａｅｍｌｉ試料緩衝液中で溶解する。

ウエスタンブロットプロトコル
１５マイクロリットル（μＬ）の細胞溶解物を１０％トリス−グリシンゲルに負荷し、そして２時間、又は染料前線がゲルから流出するまで、１２０ｖにおいて泳動させる。次に蛋白を６０分間１００ｖでＰＶＤＦ膜上に移行させる。次にＰＢＳＴ（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳ、例えばＰＢＳ １Ｌ当たり１ｍｌのＴｗｅｅｎ）を作成し、そして全ての洗浄及び抗体インキュベーションのために使用する。ブロットは１時間５％無脂肪乳ＰＢＳＴ中でブロックする。

次に一次抗体（ＧＳＫ−３α／β ｐＴＹＲ ２７９／２１６、１：１０００希釈度、Ｕｐｓｔａｔｅカタログ番号０５−４１３）を穏やかに振とうさせながら４℃において一夜５％無脂肪乳ＰＢＳＴ中に添加する。次にブロットを５分間ＰＢＳＴ中で洗浄する。次にこれを４回反復する。二次抗マウスＨＲＰコンジュゲート抗体（１：５０００希釈度）を５％乳ＰＢＳＴ中６０分間添加する。次にブロットを５分間ＰＢＳＴ中で洗浄する。これも又４回反復する。現像溶液（ＥＣＬ ｐｌｕｓ Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ
Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ、入手元Ａｍｅｒｓｈａｍ／ＧＥ、カタログ番号ＲＰＮ２１３２）３．０ｍＬを作成し、次に添加する。溶液を約３０秒間ブロット上で攪拌する。次にブロットをＣＬ−ＸｐｏｓｕｒｅクリアブルーＸ線フィルムを用いて現像する。ＧＡＰＤＨの発現レベルを負荷対照（ＧＡＰＤＨ抗体：ｓａｎｔａ ｃｒｕｚ２５−７７８）として１：１００００希釈度で使用する。

ＧＳＫ−３α及びＧＳＫ−３β ｐＴＹＲ ＩＣ５０の測定のために、特定の化合物濃度における各蛋白に関する対応するバンドの密度を各曝露において存在する無化合物ＤＭＳＯ投与対照細胞試料と比較する。ＩＣ５０の数はＧＳＫ−３α及びＧＳＫ−３βのバンドの密度が無化合物対照の５０％となる化合物の濃度として定義される。

実施例４：β−カテニン安定化プロトコル
β−カテニンのＧＳＫ−３リン酸化は分解のためにプロテオソームにそれを標的化する。ＧＳＫ−３の阻害は細胞のサイトゾルにおけるβ−カテニンの蓄積をもたらし、これは転写因子ＴＣＦ／ＬＥＦとの相互作用を介して核に転座し、そしてＷｎｔ依存性の遺伝子の転写を駆動する。試験は化合物を投与したＪｕｒｋａｔ細胞におけるβ−ラクタマーゼレポーター試験の使用を介して定量的な態様においてβ−カテニン依存性ＴＣＦ／ＬＥＦ転写活性のレベルを測定するように設計されている。

Ｊｕｒｋａｔβ−カテニン細胞をフラスコ中試験培地（１％ＦＢＳ、１ｘＰｅｎｓｔｒｅｐ、ＲＰＭＩ）中で一夜飢餓状態とする。翌日、Ｊｕｒｋａｔβ−カテニン細胞を１００μｌの容量の試験培地中、５０，０００個／ウェルの細胞密度において９６穴平底プレート中に播種する。化合物は０．７５％の最終ＤＭＳＯ濃度においてウェルに添加し、そして一夜３７℃においてインキュベートする。翌日、２０μＬの６ｘＣＣＦ４染料をウェルに添加し、そして１〜２時間室温でインキュベートする。プレートをＣｙｔｏｆｌｕｏｒ４０００シリーズマルチウェルプレートリーダー上で読み取り、そして４６０／５３０比を測定する。β−カテニンの誘導に関するＧＳＫ−３ ＩＣ５０は、化合物の濃度に対して４６０／５３０比をプロット（Ｌｏｇ目盛）し、そして傾きの式を用いて比が最大作用の５０％となる点を計算することにより求める。

β−カテニン：ＧＳＫ−３のウインドウは実施例３において得られたＧＳＫ−３α又はＧＳＫ−３βのｐ−ＴＹＲ ＩＣ５０値で実施例４において得られたβ−カテニン ＩＣ５０値を割ることにより計算した。

化合物Ｉ−１及びＩ−２の両方とも４００〜５００倍のβ−カテニン：ＧＳＫ−３αウインドウを有することがわかった。化合物Ｉ−１は７５〜１００倍のβ−カテニン：ＧＳＫ−３βウインドウを有することがわかり、そして化合物２は２５〜５０倍のβ−カテニン：ＧＳＫ−３βウインドウを有することがわかった。

表３は表１の選択化合物に関するＧＳＫ−３α ｐＴＹＲ、ＧＳＫ−３β ｐＴＹＲ、及びβ−カテニンＩＣ５０データを示す。

実施例５：組織からの細胞質画分の収集
低張性の溶解緩衝液は１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、１０ｍＭ ＫＣＬ、１．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、１．０ｍＭ ＥＤＴＡ、１．０ｍＭ ＤＴＴ、１ｘＲｏｃｈｅプロテアーゼ阻害剤カクテル、及び１．０ｍＭのＡＥＢＳＦ Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍプロテアーゼ阻害剤カクテル（カタログ番号５３９１３４）よりなるものとする。全ての濃度は終濃度であり、そして水中に希釈する。

先ず、低張性の溶解緩衝液を５倍重量で組織に添加する。次に組織をシリンジのプランジャーの末端を用いながら氷上で破壊する。次に試料を５回凍結／解凍する。次に溶解物を超遠沈管に移し、４℃で３５分間１００，０００ｇで遠心分離する。次に上澄みを収集し、アリコートを採取し、ＢＳＡ標準曲線を用いながらＰｉｅｒｃｅＢＣＡ蛋白試験キット（カタログ番号２３２２５）で蛋白を計測する。残存する蛋白溶解物をβ−メルカプトエタノールを含有するＬａｅｍｍｌｉ試料緩衝液で１：１希釈する。次に蛋白濃度を規格化する。試料を９５℃で５分間煮沸し、その後１分間ミニ遠心分離機で１４，０００ｒｐｍで遠心分離する。次に試料をドライアイスで瞬間凍結し、そして−２０℃で保存する。

ウエスタンプロトコル
試料を先ず１０％Ｔｒｉｓグリシンゲル（１０μＬ／ウェル）上に負荷する。次にゲルを１２０Ｖで染料マーカーがゲルから流出するまで泳動させる。ＰＶＤＦ膜を切り出し、５分間メタノールに浸積した後に使用する。次に蛋白を７５分間１００ＶでＰＶＤＦ膜に移行させる（移行器具は氷上に保持する）。次に膜をＲＴ（室温）で１時間ＰＢＳ０．１％Ｔｗｅｅｎ２０中に溶解した５％無脂肪乾燥乳でブロッキングする。一次抗体（ＳＣ−７１９９、Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚウサギポリクローナル抗ヒトβ−カテニン）をブロック緩衝液中に１：２０００希釈度において添加する。任意に同じブロット上で１：２０００においてベータチューブリン負荷対照（ＳＣ−９１０４）を泳動できる。次にこれを４℃で一夜インキュベートする。

膜をＰＢＳ０．１％Ｔｗｅｅｎで各々５分間４回洗浄する。次に抗ウサギ二次ＨＲＰコンジュゲート抗体（ブロック緩衝液中１：５０００希釈度）を添加する。膜をＰＢＳ０．１％Ｔｗｅｅｎで各々５分間４回洗浄する。次にＥＣＬ試薬（Ｐｉｅｒｃｅ）を添加する。最後にフィルムを露光する。β−カテニンの誘導は化合物投与動物から得られた試料中の蛋白バンドの密度のビヒクル投与動物のものとの比較により調べる。

実施例６：ｐＴＹＲウエスタンブロットのための組織からの蛋白の単離
ＲＩＰＡの組成は０．５ｍｌの１０％ＳＤＳ、２．５ｍｌの１０％デオキシコール酸ナトリウム、０．５ｍｌのＮＰ４０、及び４６．５ｍｌのＰＢＳとする。溶解緩衝液の組成は８．３ｍｌのＲＩＰＡ、１．０ｍｌのβ−グリセロールホスフェート（５００ｍＭ）、０．１ｍｌのＮａＦ（５００ｍＭ）、０．１ｍｌのバナジン酸ナトリウム（２００ ｍＭ）、０．４ｍｌのプロテアーゼ阻害剤（Ｒｏｃｈｅプロテアーゼ阻害剤カクテル錠剤：１錠を水２ｍｌに溶解することにより２５ｘ保存液とする。カタログ番号１１８７３５８０００１）、及び０．１ｍｌのＰＢＳとする。

溶解緩衝液１０ｍＬ（変性ＲＩＰＡ）を組織に添加（１ｍｌ／１／２脳）し、そして氷上で均質化する。次に溶解物を４℃で１０分間１００００ｒｐｍで遠心分離する。次に上澄みを新しい試験管に移し、そして氷上に保持する。上澄み試料を４℃で１０分間１００００ｒｐｍで再度遠心分離する。次に上澄みを新しい試験管に移し、そして氷上に保持する。上澄みのアリコートを採取し、ＢＳＡ標準曲線（ＰＢＳ中１：２５希釈とする）を用いながらＰｉｅｒｃｅＢＣＡ蛋白試験キット（カタログ番号２３２２５）で蛋白を計測する。

残存する上澄みをβ−メルカプトエタノールを添加したＢｉｏｒａｄ Ｌａｅｍｍｌｉ試料緩衝液（カタログ番号１６１−０７３７）で１μｇ／μｌに希釈する。試料を９５℃で５分間煮沸し、そして１分間マイクロ遠心分離機で遠心分離する。試料をドライアイス上で瞬間凍結し、そして−２０℃で保存する。次に１０μｇ蛋白／レーン（１０μＬ）を負荷し、そして実施例３に従ってウエスタンブロットを泳動させる。ＧＳＫ−３α／βｐＴＹＲの阻害は、化合物投与動物から得られた試料中の蛋白バンドの密度をビヒクル投与動物由来の試料と比較することにより調べる。

実施例７：軸索分枝化試験
Ｅ１６ラット海馬又は皮質ニューロンにおける軸索分枝化を増強する能力について化合物を試験する。

第１日：
細胞プレートの製造
１ｍｇ／ｍｌのＰＤＬ保存液をＤＩ水で１００μｇ／ｍｌに希釈する。カバーガラスを少なくとも１時間３７℃でコーティングした後に切開する。ＰＤＬを吸引し、プレートをＰＢＳで濯ぎ、そしてフード中で風乾する。

Ｅ−１６ラット皮質細胞の解離
皮質又は海馬葉を基礎培地（神経基礎＋Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）９ｍＬと混合し、そして氷上におく。１０ｘトリプシン溶液１ｍＬを添加し、混合物を穏やかに攪拌する。次に組織を２０分間３７℃のウォーターバス中でインキュベートすることにより消化する。２０分後、１０μｇ／ｍｌのＤＮａｓｅ（１００μＬのＤＮａｓｅ）を添加し、混合物をさらに５分間インキュベートする。

細胞を１分間１０００ｒｐｍで遠心分離する。次に酵素溶液を除去するが、その際底面に沈殿している如何なる脳のフラグメントも除去されないようにする。固体を洗浄培地（神経基礎＋１０％及びＰｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）で３回洗浄する。３回目の洗浄の後、細胞を培養培地（神経基礎＋Ｂ２７、Ｌ−グルタミン及びＰｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）５ｍｌ中に再懸濁する。気泡が形成されないように注意しながら炎光狭小化ガラスピペットを通して数回穏やかにピペッティングすることにより機械的な解離を行う。次に細胞を７０μｍの細胞ストレーナーを通して濾過する。細胞を血球計で計数し、そしてＰＤＬでコーティングされたカバーガラスインサートを用いながら２４穴プレート中に５０００〜１００００個／ウェルの細胞密度で播種する。細胞は一夜３７℃でインキュベートする。

第２日：細胞維持
翌日、培地の半量をレチン酸（ＲＡ）を含有する新しい培養培地と交換する。０．３％の最終ＤＭＳＯ濃度となるように化合物を所望の濃度まで添加する。培地の半量を交換し、そして新しい化合物を３日毎に添加する。細胞は培地中６日間化合物と共にインキュベートする。

第７日：固定及び染色
材料：
１．リン酸緩衝液（ＰＢＳ）−Ｇｉｂｃｏ１４１９０−１４４
２．洗浄緩衝液−ＰＢＳ−Ｔ：
●ＰＢＳ
●０．１％Ｔｗｅｅｎ−２０（Ｂｉｏ Ｒａｄ，１７０−６５３１）
３．ブロッキング緩衝液−ＰＢＳ−Ｔ＋５％正常ロバ血清又はＨＢＳＳ−Ｔ＋５％正常ロバ血清
●ＰＢＳ１０ｍｌ
●０．１％Ｔｗｅｅｎ−２０（Ｂｉｏ Ｒａｄ，１７０−６５３１）
●正常ロバ血清０．５ｍｌ（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏカタログ番号０１７−０００−１２１）
４．ゲルマウントＣｉｔｉ−Ｆｌｕｏｒ^ＴＭ（Ｔｅｄ Ｐｅｌｌａ ＡＦ−１）
５．神経フィラメント抗体１：２５０Ａｂｃａｍ，ＭＡＰ２抗体１：２５０Ａｂｃａｍ
６．二次抗体１：５００、抗ウサギＡｌｅｘａ４８８（神経フィラメント）及び抗マウスＡｌｅｘａ５６８（ＭＡＰ２）
方法
培地が血清を含有している場合は細胞をＰＢＳで２回洗浄する。細胞が無血清培地中で生育している場合は洗浄は必要ない。

固定
培地又はＰＢＳを先ず除去する。次にＨｉｓｔｏＣｈｏｉｃｅ５００μＬを添加することにより細胞を被覆する。細胞を１０分間室温でインキュベートする。次にこれらをＰＢＳで２回洗浄し、その際、各洗浄後に５分間インキュベートする。量は以下に示す通りである。

●９６穴フォーマット中ウェル当たりＰＢＳ１００μＬ
●４８穴フォーマット中ウェル当たりＰＢＳ２００μＬ
●２４穴フォーマット中ウェル当たりＰＢＳ４００μＬ
細胞を室温で３０分間ブロッキング緩衝液と共にインキュベートする。次に組織を室温で１時間ブロッキング緩衝液と共にインキュベートする。一次抗体をＰＢＳ＋０．１％Ｔｗｅｅｎ＋５％ロバ血清中に希釈する。ブロッキング溶液を除去し、そして十分な容量のブロッキング緩衝液中一次抗体を添加することにより細胞を被覆する。一次抗体を一夜４℃でインキュベートする。翌日、一次抗体を除去し、カバーガラスをＰＢＳ−Ｔで２回洗浄し、その際、各洗浄の間に５分間のインキュベーションを設ける。ＰＢＳ−Ｔを除去しブロッキング緩衝液を添加する。細胞を３０分間インキュベートする。

２次抗体をＰＢＳ＋０．１％Ｔｗｅｅｎ＋５％ロバ血清中に希釈する。混合物を室温で３０分間インキュベートする。スライドをＰＢＳ−Ｔで３回、そしてＰＢＳで１回洗浄する。封入剤を添加することにより蛍光団の消光を低減する。カバーガラスを除去し、可視化のためにスライド上に置く。

分析
画像はアップライト顕微鏡上で１０ｘ及び２０ｘでキャプチャーし、そして細胞当たり神経フィラメントＡｌｅｘａ４８８の閾値蛍光下の面積の定量により軸索の分枝化を測定する。樹状突起の分枝化は、細胞当たりＭＡＰ２ Ａｌｅｘａ５６８の閾値蛍光下の面積の定量により測定する。或いは、分枝化は細胞当たりの分枝点を手作業で計数することにより測定することもできる。化合物の作用は化合物投与培養物における閾値蛍光下の面積を同じ時点におけるＤＭＳＯ対照のものと比較することにより評価される。Ｅ１６海馬ニューロンに７日間１０ｎＭの化合物Ｉ−１を投与した場合、軸索及び樹状突起の分枝化が増大した。Ｅ１６海馬ニューロンにβ−カテニンを誘導したことがわかっている濃度で投与した場合、軸索の生育は抑制され、ＧＳＫ−３α／βｐＴＹＲ及びβ−カテニンの間のウインドウに関する治療上の役割が更に裏付けられた。

実施例８：ＣＲＭＰ２リン酸化試験
ＧＳＫ−３リン酸化は軸索の派生及び分枝化の制御に関与しているＣＲＭＰ２を調節する（Ｙｏｓｈｉｍｕｒａ等、２００５Ｃｅｌｌ，Ｋｉｍ等、２００６Ｎｅｕｒｏｎ）。ＧＳＫ−３によるＣＲＭＰ２のリン酸化は微小管へのＣＲＭＰ２の結合を低減し、そしてこれにより軸索の伸長及び分枝化を低減する。逆に、ＧＳＫ−３の阻害は、特にＴＹＲ残基自己リン酸化に選択的に影響するレベルにおいては、これらの表現型を増強する。軸索分枝化のレベルを上昇させる能力を測定するためにＥ１６ラット海馬又は皮質ニューロンにおいて化合物を試験する。

第１日：
細胞プレートの製造
１ｍｇ／ｍｌのＰＤＬ保存液をＤＩ水で１００μｇ／ｍｌに希釈する。カバーガラスを少なくとも１時間３７℃でコーティングした後に切開する。ＰＤＬを吸引し、プレートをＰＢＳで濯ぎ、そしてフード中で風乾する。

Ｅ−１６ラット皮質細胞の解離
皮質又は海馬葉を基礎培地（神経基礎＋Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）９ｍＬと混合し、そして氷上におく。１０ｘトリプシン溶液１ｍＬを添加し、混合物を穏やかに攪拌する。次に組織を２０分間３７℃のウォーターバス中でインキュベートすることにより消化する。２０分後、１０μｌ／ｍｌのＤＮａｓｅ（１００μＬのＤＮａｓｅ）を添加し、混合物をさらに５分間インキュベートする。

細胞を１分間１０００ｒｐｍで遠心分離する。次に酵素溶液を除去するが、その際底面に沈殿している如何なる脳のフラグメントも除去されないようにする。固体を洗浄培地（神経基礎＋１０％及びＰｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）で３回洗浄する。３回目の洗浄の後、細胞を培養培地（神経基礎＋Ｂ２７、Ｌ−グルタミン及びＰｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）５ｍｌ中に再懸濁する。気泡が形成されないように注意しながら炎光狭小化ガラスピペットを通して数回穏やかにピペッティングすることにより機械的な解離を行う。次に細胞を７０μｍの細胞ストレーナーを通して濾過する。細胞を血球計で計数し、そして１２穴プレート中に５０，０００個／ウェルの細胞密度で播種する。細胞は一夜３７℃でインキュベートする。

第２日：細胞維持
翌日、培地の半量をレチン酸（ＲＡ）を含有する新しい培養培地と交換する。０．３％の最終ＤＭＳＯ濃度となるように化合物を所望の濃度まで添加する。培地の半量を交換し、そして新しい化合物を３日毎に添加する。細胞は培地中６日間化合物と共にインキュベートする。

第７日：溶解物の収集及びウエスタンブロット
培養物をＰＢＳで洗浄し、そしてβ−メルカプトエタノールを添加しながら１００ｕＬのＬａｅｍｌｉ試料緩衝液中で直接溶解する。

ウエスタンブロットプロトコル
７マイクロリットル（μＬ）の細胞溶解物を１０％トリス−グリシンゲルに負荷し、そして２時間、又は染料前線がゲルから流出するまで、１２０ｖにおいて泳動させる。次に蛋白を６０分間１００ｖでＰＶＤＦ膜上に移行させる。次にＰＢＳＴ（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳ、例えばＰＢＳ１Ｌ当たり１ｍｌＴｗｅｅｎ）を作成し、そして全ての洗浄及び抗体インキュベーションのために使用する。ブロットは１時間５％無脂肪乳ＰＢＳＴ中でブロックする。

次に一次抗体（１：１０，０００ＣＲＭＰ２ウサギポリクローナルＡｂｃａｍカタログ番号ａｂ３６２０１）を穏やかに振とうさせながら４℃において一夜５％無脂肪乳ＰＢＳＴ中に添加する。次にブロットを５分間ＰＢＳＴ中で洗浄する。次にこれを４回反復する。二次抗マウスＨＲＰコンジュゲート抗体（１：５０００希釈度）を５％乳ＰＢＳＴ中６０分間添加する。次にブロットを５分間ＰＢＳＴ中で洗浄する。これも又４回反復する。

現像液（ＥＣＬ ｐｌｕｓ Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ
Ｓｙｓｔｅｍ、入手元Ａｍｅｒｓｈａｍ／ＧＥ、カタログ番号ＲＰＮ２１３２）３．０ｍＬを作成し、次に添加する。溶液を約３０秒間ブロット上で攪拌する。次にブロットをＣＬ−ＸｐｏｓｕｒｅクリアブルーＸ線フィルムを用いて現像する。ＧＡＰＤＨの発現レベルを負荷対照（ＧＡＰＤＨ抗体：ｓａｎｔａ ｃｒｕｚ２５−７７８）として１：１００００希釈度で使用する。ＣＲＭＰ２抗体はＣＲＭＰ２の未リン酸化形態及びＧＳＫ−３によりリン酸化された残基であるＣＲＭＰ２のリン酸化形態（Ｔ５１４）の両方を検出する（Ｋｉｍ等、２００６Ｎｅｕｒｏｎ）。ｐＣＲＭＰ２に対する化合物のＩＣ５０はスーパーシフトしたｐＣＲＭＰ２バンドの密度が無化合物対照の５０％となる化合物の濃度として定義される。

結果
基質ＣＲＭＰ−２のＧＳＫ−３リン酸化の阻害は、化合物Ｉ−１を７日間投与したＥ１６海馬ニューロンにおいてＧＳＫ−３ｐＴＹＲの阻害に相関していた。ＣＲＭＰ−２は成長中の軸索においては富化され、そして未リン酸化ＣＲＭＰ−２は微小管に結合し、そして軸索の分枝化を促進する。

実施例９：ＨＵＶＥＣ及び皮膚線維芽細胞を用いた血管形成のインビトロモデル
化合物はヒト臍静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）における血管形成を増強する能力の有無についてスクリーニングする。Ｎａｋａｔｓｕ等、Ｍｉｃｒｏｖａｓ．Ｒｅｓ．２００３から採用したこの方法は、新しい血管の成長にとって必須である主要な事象、即ち：出芽、細胞遊走、細胞増殖、管腔形成、分枝化、及び吻合を発生反復するプロトコルを記載している。

プロトコル：
ＨＵＶＥＣはＰ３及びＰ４の間において使用する。ＨＵＶＥＣをＥＧＭ−２（２％ＦＢＳ）培地（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）１ｍｌ中ビーズ当たり４００ＨＵＶＥＣの濃度においてデキストランコーティングｃｙｔｏｄｅｘ３ミクロ担体（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ）と混合する。次に細胞を有するビーズを３７℃及び５％ＣＯ_２において４時間、２０分毎に穏やかに振とうする。インキュベーションの後、細胞を有するビーズをＴ−２５組織培養フラスコに移し、３７℃５％ＣＯ_２において５ｍｌのＥＧＭ−２中１２〜１６時間放置する。

翌日、細胞を有するビーズをＥＧＭ−２で３回洗浄し、そしてｐＨ７．４においてアプロチニン（Ｓｉｇｍａ）０．１５Ｕ／ｍｌの存在下２．５ｍｇ／ｍｌのフィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ）中、２００細胞コーティングビーズ／ｍｌの濃度において再懸濁する。

次に５００μＬのフィブリノーゲン／ビーズ溶液を２４穴組織培養プレートの１つのウェル中トロンビン（Ｓｉｇｍａ）０．６２５Ｕに添加する。フィブリノーゲン／ビーズ溶液を室温で５分間、そして次に３７℃５％ＣＯ_２において２０分間凝固させる。次に０．１５Ｕ／ｍｌのアプロチニンを含有する１ｍｌのＥＧＭ−２を各ウェルに添加し、そして３７℃及び５％ＣＯ_２において３０分間フィブリン凝固と平衡化させる。

次に培地をウェルから除去し、そして新しい培地１ｍｌと交換する。２０，０００皮膚線維芽細胞（ＳＦ ＡＴＣＣ Ｄｅｔｒｏｉｔ ５５１）を凝固部の上面にプレーティングし、そして培地を１日置きに交換する。

化合物阻害試験のために、化合物を平衡化後に凝固部に添加する６点用量応答を実施する（１μＭ最高濃度１：３希釈度）。

血管形成はＮＩＨイメージＪソフトウエアを用いながら血管長、ビーズ当たりの血管及び分枝の数に関して、１０ｘ及び２０ｘの倍率における倒立顕微鏡上でキャプチャーした画像の定量により採点する。任意に、試験前に構成的に活性な最小ＴＫプロモーターの制御下に黄色蛍光蛋白（ＹＦＰ）を発現するレトロウィルスベクターでＨＵＶＥＣをスピン形質導入し、そして可視化を増強するためにＹＦＰ発現に関してソーティングすることができる。次にＹＦＰ陽性ＨＵＶＥＣを上記した通り培養し、そして血管形成の定量は、ＮＩＨイメージＪソフトウエアを用いながら閾値蛍光下の面積を計算することにより求める。両方の場合において、化合物投与培養物をＤＭＳＯ対照培養物と同時点で比較することにより、増強された血管形成を調べる。

７日間化合物Ｉ−１（１０ｎＭ）をＨＵＶＥＣ培養物に投与した場合、血管及びネットワークの形成の増大がもたらされた。ＨＵＶＥＣ培養物にβ−カテニン誘導したことがわかっている濃度で投与した場合、血管形成は阻害され、そして細胞増殖の増大が観察され、ＧＳＫ−３α／βｐＴＹＲ及びβ−カテニンの間のウインドウに関する治療上の役割が更に裏付けられた。

実施例１０：卒中後の回復のＭＣＡＯモデル
Ｉ．一般的方法
成熟雄性Ｗｉｓｔａｒラットにトレー到達、グリッド歩行、前肢非対称（シリンダーブレーシング）、後肢抑制（遊泳試験）を包含する一連の挙動試験において予備訓練させる（試験の詳細な説明は下記参照）。卒中前挙動評価の後、ラットに卒中を誘導する手術を行う。ラットを疑似無作為的に５つの等しい群（ｎ＝１２）に分割し、その際各投与群内で右及び左の卒中の数が等しくなるようにする。第１の群には治療として偽牲のビヒクル使用手術を行う。被験化合物及びビヒクルの投与（用量、経路、時期）は試験依頼者が決定する。コア体温は３７℃（±１℃）に維持する。

手術の後、全動物を卒中後第１、７及び１４日に挙動評価する。挙動評価の終了時に、全ラットをＭＲＩに付すことにより梗塞容量を測定する。群の挙動遂行能力及び卒中容量を一元配置分散分析を用いて群間で比較することにより、ＭＣＡＯ卒中後の機能回復の速度および範囲における化合物の治療上の利点を調べる。

ＩＩ．中大脳動脈閉塞
各動物を計量（平均体重は３４０ｇであった）し、そして次にイソフルランで麻酔する（手術平面を誘導するために２Ｌ／分の医療用等級酸素上に担持された４％イソフルラン、そして次に手術平面を維持するために２Ｌ／分酸素で２％）。麻酔誘導の後、各ラットを個体別に耳パンチでマークし、そして皮下投与によりブプレノルフィン（０．０２５ｍｇ／ｋｇ）を投与する。直腸温度をモニタリングし、そして手術中及びラットが覚醒して運動可能となるまで（約３時間）、３７℃±１℃に維持する。

次にラットを定位装置内に頭部の側面が上を向くように設置する。左眼と耳との間の皮膚を剃毛し、手術用殺菌スクラブで洗浄する。右眼窩及び外耳管の間、垂直に正中切開する。伏在する側頭筋を切開し、頭蓋から脱着させ、顔面神経を温存するように注意しながら引き出す。２縫合により頭蓋の側面から側頭筋を離して保持する。頭蓋切開を後頬骨から開始し、そして頭蓋の下側頭線に沿って腹側に伸長させ、中大脳動脈（ＭＣＡ）及び嗅索を曝露する。硬膜を開放し、ＭＣＡの基底部及び第１分枝の前方部分を嗅索に対して垂直に電気凝固させ、右側背大脳皮質の梗塞をもたらす。

卒中が生じた時間をＭＣＡの電気凝固の終了時に記録する。出血が制御された後、側頭筋を戻し、そして皮膚を縫合する。次にラットを定位装置から取り出し、回復室に移動させる。ブプレノルフィンの２回目の皮下投薬分（０．０２５ｍｇ／ｋｇ）を２ｃｃのリンゲル溶液と共に投与する。水、湿潤ラット飼料、及びケージ１／２下の加温用毛布を回復室所在時には使用可能とする。ラットが覚醒し、摂食及び飲料水摂取が観察された後、動物コロニー内のそのケージ内に戻す。

ＩＩＩ．挙動試験の方法
トレー到達
前足底の使用はＷｈｉｓｈａｗ，Ｏ’Ｃｏｎｎｏｒ，ａｎｄ Ｄｕｎｎｅｔｔ（１９８６）により考案された方法から採用した操作法により計測する。毎日試験後に給餌時間が生じるように各動物に食事制限を行う。動物を被験ケージ（１０×１８×１０ｃｍ高さ）内に入れ、床と前面を２ｍｍのバーで構築し、端部から端部までは９ｍｍ間隔とする。ニワトリ用飼料ペレットを入れた４ｃｍ幅及び５ｃｍ深さのトレーを各ボックスの外部に搭載する。ラットはバーの隙間を通過して前肢を伸長させ、飼料をつかみ収得することが必要になる。

動物を最低１０日間、又は５０％ヒットの基準が到達されるまで（注：これは両手を組み合わせた場合の５０％である）１日当たり２０〜３０分間訓練する。大部分のラットは到達するために利き手のみを使用する傾向がある。ラットが訓練１４日間以内に５０％ヒットの基準に達さない場合は、試験から除外する。更に又、両手利きと思われる如何なるラットも試験から除外する。両手利きのラットは到達のために何れの手も使用するか、又は各手により頻繁には等しく成功しながら等しく到達する。

「ヒット」は飼料ペレットを良好につかみ収得し、その結果としてペレットが消費されることとして定義される。「ミス」は飼料ペレットを収得できなかったこととして定義される（ペレットを適切につかめないか、収得中にペレットを失なったため、ペレットが消費されなかった）。ヒットのパーセントは、到達総数でセッション中のヒット総数を割ったものとして計算される。これは左及び右の手（又は卒中後の罹患及び未罹患）について別個に計算する。５０％成功（両方の手からの到達を包含する）の基準に達すれば、各ラットを５分の到達セッションの間、ビデオ収録する。

このセッションの結果は手術前のベースラインとして使用される。手術前試験セッションは又、各ラットの利き手を調べるためにも使用される。卒中の損傷は到達のために使用される利き手とは対側性である脳半球内で行う。手術後試験は動物を試験する各週の５分間の到達試験よりなる。

各セッションは各到達のフレーム毎の分析を用いながらモニター上で観察する。各セッションは２人の異なる採点者により採点される。各採点者につきパーセントヒットの最終計算は相互に５％の範囲内とする。最終評点の間により大きい不一致がある場合は、セッションは両方の観察者により再評点される。

各群に関する罹患及び非罹患の手に関するヒットのパーセントは、一元配置分散分析により群間で比較する。

化合物Ｉ−１を上記モデルにおいて試験した。卒中は手術後７日及び１４日において到達遂行能力の欠損を信頼性よくもたらしていた。化合物Ｉ−１の添加はビヒクル投与と比較して卒中後７日及び１４日におけるこの欠損を有意に改善していた。

グリッド歩行
前肢及び後肢の協調は、一方の長辺に沿って１ｃｍ間隔で切削した孔部を有する長さ１ｍ幅２５ｃｍ（厚み５ｍｍ）の２枚のプレクシガラスパネルよりなる装置を用いて計測する。パネルは２．５ｃｍ間隔で配置し、そして孔部を通過する数個の金属バー（直径３ｍｍ）により連結する。バーは１、２、又は３ｃｍ間隔で無作為に配置する。装置は懸垂し、そして狭小な通路（幅２．５ｃｍ）が長さ１ｍ、壁高２５ｃｍで形成されるように方向付ける。バーは床を形成する。

後の試行になるほどゴール箱からより長距離となるようにラットを配置する３試行を用いながら装置に各動物を導入する。即ち、初回試行においては、ラットをゴール箱の近傍であり、それに直面するようにグリッドの端部にラットを配置する。ラットがゴール箱に進入した後、それをグリッド上の中間地点に、再度ゴール箱に直面するように置く。第３回及び最終試行においては、ラットを入り口に置き、ゴール箱に到達するために全グリッドを横断させる。

この訓練操作法は手術前に各ラットに対し僅か一回のみ実施する。全てのその後の試験の試行においては、動物は個体別に装置の入り口に配置し、そしてゴール箱に向かって全てのグリッドを横断することを要求される。

３試行の１試験セッションを卒中前に実施する。卒中後の各試験セッションは３試行を包含する。各試行は水平面から接写範囲で録画する。ビデオテープはフレーム毎の分析を用いて２人の観察者により採点する。グリッドの途中８０％までの右及び左（罹患及び未罹患）の前肢及び後肢の接地失敗の数を計数する。グリッドの途中８０％はマスキングテープを用いて装置の外面にマークする。肢部（部分的又は全て、即ち足底のみ又は脚全体）がバーの水平面を通過して伸長する場合に失敗とする。前肢及び後肢の失敗を３試行全体に渡って同側性及び対側性の四肢に関して別個に合計し、そして独立して分析する。評点は一元配置分散分析を用いて群間で比較する。

化合物Ｉ−１を上記モデルにおいて試験した。卒中は手術後７及び１４日において、高い信頼性で到達遂行能力の欠損をもたらした。化合物Ｉ−１は卒中後７及び１４日において、この欠損を有意に改善した。

前足底非対称（シリンダー試験）
動物の前足底非対称は直径２５ｃｍの透明アクリルシリンダー内にラットを入れることにより計測する。動物が下方から撮影できるように設置された鏡を有する透明なテーブル上にシリンダーを置く。この視点は動物の前足底がシリンダーを探索する場合にその明確な写真を与える。

探索中、ラットは後ろ足で立ち上がり挙動しようとする傾向を多大に示す。各立ち上がり挙動の際に、ラットはその前足底をシリンダーの側面に押し当てることによりシリンダーを捜索する間のバランスと支えを得る。捜索では身体の左及び右の両方に向かう伸長（後ろ足立ち上がり挙動を伴う）並びに直立を行う。正常なラットは左及び右の前足底の両方を等しく使用することにより壁面で支える。壁面に直立して捜索する場合、ラットは両方の足底を使用して支える。最初の２０回の後ろ脚による立ち上がり挙動の間、支えとなっている足底を記録する。後ろ脚による立ち上がり挙動の間にシリンダー壁面に接触した最初の足底を計数する。試験は２０回の後ろ脚による立ち上がり挙動が記録されるまで継続する。撮影記録は２人の観察者により採点する。左及び右の足底の壁面接触を計数する。即ち、各々の支え挙動に関して、採点結果はＬ又はＲ又はＬ＆Ｒとなる。

１回の試験セッションを手術前に、そして次にその後の所定の手術後の試験期日に行う。手術前試験はラットが既存の足底の偏位（即ち片方により１５／２０を超えた壁面接触を行う）を有さないことを調べるために用いる。それらが片方への偏位を示した場合には試験から除外する。手術後の採点は罹患した（卒中攻撃と対側性の）足底を用いた接触のパーセンテージとして表示する。この評点に基づいて一元配置分散分析により群を比較する。

化合物Ｉ−１を上記モデルにおいて試験した。卒中は手術後７及び１４日において、高い信頼性で到達遂行能力の欠損をもたらした。化合物Ｉ−１は低用量において卒中後１４日において、この欠損を有意に改善した。

前肢抑制（遊泳試験）
正常ラットにおいて、遊泳は後肢の前方突進性往復運動により達成される。前肢は通常は如何なる往復運動も抑制されており、そして動物の顎部下方に共に不動状態で保持されている。前肢の抑制は遊泳中の動物を撮影することにより評価される。動物を室温の水（〜２５℃）で２５ｃｍの深さまで満たされた水槽（３０Ｗ×９０Ｌ×４３Ｈｃｍ）の一端に導入し、そして反対側末端に設置されている水面上２ｃｍに突出している９．５ｃｍ平方の目視可能なプラットホームまでそれらが遊泳する状態を録画する。抑制の評点は水槽内への３回の投入の間の左及び右の前肢の往復運動の回数を計数することにより行う。長さの途中８０％のみを採点する。途中８０％はマスキングテープを用いて水槽の外側にマークする。

遊泳は遊泳試行の間に水槽の側面に動物が接触しなかった場合のみ採点可能とみなす。群は左及び右（卒中後罹患及び未罹患）の前肢の往復運動の総数に関して一元配置分散分析により比較する。

化合物Ｉ−１を上記モデルにおいて試験した。卒中は手術後７及び１４日において、高い信頼性で到達遂行能力の欠損をもたらした。化合物Ｉ−１は卒中後７及び１４日において、この欠損を有意に改善した。

ｐＴＹＲバイオマーカー分析
ＭＣＡＯに付したラットのＣＮＳにおける化合物Ｉ−１の活性を追跡するために、試験終了時のビヒクル投与及び化合物投与動物の両方から脳を摘出し、蛋白の溶解物を得た（本明細書における実施例６に記載する通り）。溶解物はウエスタンブロット（実施例３参照）により分析し、そしてＧＳＫ−３α／βｐＴＹＲレベルに関してプローブした。化合物Ｉ−１はβ−カテニンの誘導を伴うことなく、ビヒクル投与ラットと比較して、脳におけるすべての用量においてｐＴＹＲシグナルの有意な低減をもたらした。

接着剤除去試験
接着剤除去試験を用いて前肢体性感覚欠損に関してラットを試験した（Ｓｃｈａｌｌｅｒｔ Ｔ等、１９８４＃３）。各試験日において梱包用テープ（直径約１．２ｃｍ）の丸型小片を接着することにより３試行を各動物に対して実施し、そして左前肢から刺激要因を除去するために必要な平均時間（秒）を記録する。

ＩＶ．分子及び組織学的分析のための方法
分子分析
蛋白溶解物をビヒクル及び化合物投与動物全ての脳から調製し、そしてウエスタンブロット試験によるＧＳＫ−３α／βｐＴＹＲ及びβ−カテニンのバイオマーカー分析のために処理することにより標的上の化合物の活性を確認する。

脳脊髄液をビヒクル及び化合物投与動物全てから調製し、そしてニューロン形成性に関する代理マーカーとしてＥＬＩＳＡによるＢＤＮＦレベルに関して分析する。

組織学的分析
パラフィン包埋脳試料をＮｅｕｒｏｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓから入手し、そしてスライドガラス上に６μｍ切片を切り出し、そして卒中後回復における以下に示す有益な帰結と相関するマーカー／表現型に関して、免疫組織化学又は免疫蛍光により分析する。幹細胞可動化／増幅：ＢｒｄＵの染色及び脳室下区域（ＳＶＺ）におけるＢｒｄＵ陽性細胞の定量のためのＡｐｅｒｉｏシステムを用いた分析。
神経発生：定量のための手作業による係数を用いたＳＶＺにおけるＢｒｄＵと複合化したダブルコルチン（ＤＣＸ）に関する免疫蛍光染色。
血管形成：フォン・ビルブラント第ＶＩＩＩ因子（ｖＷＦ）に関する染色及び梗塞周囲におけるｖＷＦ陽性細胞の定量のためのＡｐｅｒｉｏシステムを用いた分析。

本発明者等は本発明の実施形態の多くを説明してきたが、本発明者等の基本的な例を改変することにより本発明の化合物、方法、及びプロセスを利用又は包含する他の実施形態を得てよいことは自明である。従って、当然ながら、本発明の範囲は添付の特許請求の範囲により定義されるべきである。

Claims (1)

1. 本願明細書に記載された発明。