JP2012510468A - 安定な抗体組成物およびこれを安定させるための方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2008年11月28日に出願した米国仮出願第61/118,528号の優先権を主張するものであり、その内容は参照により本明細書に組み込まれている。
インターロイキン12(IL−12)および関連するサイトカインIL−23は、共通のp40サブユニットを共有するサイトカインのIL−12スーパーファミリーのメンバーである(Andersonら(2006)Springer Semin.Immunopathol.27:425−42)。IL−12は、Th1細胞の分化および後続のインターフェロンガンマの分泌を主に刺激するのに対して、IL−23は、ナイーブT細胞からIL−17(炎症誘発性媒介物質)を分泌するエフェクターヘルパーT細胞(Th17)への分化を優先的に刺激する(RosmarinおよびStrober(2005)J.Drugs Dermatol.4:318−25、Harringtonら(2005)Nature Immunol.6:1123−32、Parkら(2005)Nature Immunol.6:1132−41)。
第1の態様において、本発明は、ラムダ鎖を含む抗体、例えば有害なIL−12および/またはIL−23活性を阻害し、またはそれに拮抗するための治療的使用に適切な抗体またはこの抗原結合部分を含み、当技術分野において認識されている製剤と比較して改善した性質を有する水性製剤を提供する。例えば、本発明の製剤は、例えば液体状態または固体状態において、少なくとも24ヵ月間の貯蔵寿命を有する。別の一実施形態において、本発明の製剤は、少なくとも5回の製剤の凍結融解サイクルの後で安定性を維持する。
I.定義
「抗体」という用語は、広く、4本のポリペプチド鎖(ジスルフィド結合によって相互接続された2本の重(H)鎖および2本の軽(L)鎖)から構成されるあらゆる免疫グロブリン(Ig)分子または(Ig分子の本質的なエピトープ結合特性を保持する)そのあらゆる機能的断片、突然変異体、変異体もしくは派生体を指す。かかる突然変異体、変異体または派生体の抗体フォーマットは当技術分野において公知であり、その非限定的な実施形態は本明細書において考察される。
断片化をモニターするためにサイズ排除クロマトグラフィー(SEC)、質量分析(MS)およびキャピラリー電気泳動(CE)を使用して、ヒスチジンおよび金属(鉄または銅のいずれか)の両方が一緒に作用してラムダ軽鎖含有分子を断片化する分解経路を見出した。鉄およびヒスチジンの両方は、40℃において抗体分子のヒンジ領域における断片化の動態を増進するために必要である。鉄またはヒスチジンは、単独で、IgG分子の断片化の動態の増進に対してほとんどまたは全く影響を及ぼさなかった。多くの異なる金属によって行われた金属スパイク研究は、抗体製剤中の鉄または銅の存在が用量依存的な様式における抗体の切断をもたらすことを示した。デスフェリオキサミン(鉄特異的キレーター)による鉄のキレート化は、この断片化を抑止した。ラムダ鎖またはカッパ鎖のいずれかを有するIgG分子の検討は、この断片化機構がラムダ鎖を含有する分子に対して特異的であることを示す。カッパおよびラムダ軽鎖は、これらのC末端領域が異なり、ラムダ軽鎖は、システイン残基の後に余分のセリン残基を有する。
本発明は、約5から約7の間にpHを有し、例えば2−8℃の温度で、または−20から−180℃の間の温度で好ましくは少なくとも約24ヵ月の増強した安定性を有するヒスチジン緩衝溶液中に抗体を含む製剤を提供する。本発明の別の一実施形態において、主張された製剤は、少なくとも5回の凍結融解サイクルの後で安定なままである。好ましい一実施形態において、製剤中の金属の量は、抗体の切断、例えば抗体のラムダ軽鎖の切断を防止するように十分に低い。好ましくは、主張された製剤は、金属を含まない。別の好ましい一実施形態において、製剤は、金属の存在下で、例えばラムダ軽鎖のヒンジ領域内において、抗体が切断されないまたはより低い程度で切断される金属キレーターを含む。なお別の一実施形態において、本発明の医薬製剤は、単回sc注射に適切である。
本発明は、当技術分野において認識されている製剤と比較して改善された性質を有する製剤(例えば、タンパク質製剤および/または抗体製剤)を特徴とする。例えば、本発明の製剤は、当技術分野において認識されている製剤と比較して改善された貯蔵寿命および/または安定性を有する。一実施形態において、本発明の製剤は、例えば液体状態または固体状態において、少なくとも18ヵ月の貯蔵寿命を有する。別の一実施形態において、本発明の製剤は、例えば液体状態または固体状態において少なくとも24ヵ月の貯蔵寿命を有する。好ましい一実施形態において、本発明の製剤は、2−8℃の温度で少なくとも24ヵ月の貯蔵寿命を有する。好ましい一実施形態において、本発明の製剤は、約−20から−80℃の間の温度で少なくとも18ヵ月または少なくとも24ヵ月の貯蔵寿命を有する。別の一実施形態において、本発明の製剤は、製剤の少なくとも5回の凍結融解サイクルの後で安定性を維持する。好ましい一態様において、本発明の製剤は、(製剤が、当技術分野において認識されている製剤と比較して、ラムダ軽鎖の断片化に対する増強された耐性、例えばラムダ軽鎖の減少した切断を提供する)分子、例えば、ラムダ軽鎖の少なくとも一部を含む抗体を含む。
本発明の製剤は、その全体の内容が参照により本明細書に組み込まれている米国特許第6,914,128号に記載されているものと類似の適応症において使用され得、それらの適応症は、以下において更に詳述される。
インターロイキン−12およびインターロイキン−23は、関節リウマチ等の炎症性疾患の役割を果たすことに関連づけられている。関節リウマチ患者に由来する滑液中で誘導性IL−12p40メッセージが検出されており、関節リウマチを有する患者に由来する滑液中にIL−12が存在することが示されている(例えば、Moritaら(1998)Arthritis and Rheumatism 41:306−314参照)。関節リウマチ滑膜の下内層中にIL−12陽性細胞が存在することが見出されている。関節リウマチに対するコラーゲン誘導関節炎(CIA)マウスモデルにおいて、関節炎の前における抗IL−12mAb(ラット抗マウスIL−12モノクローナル抗体、C17.15)によるマウスの処置は、発症を非常に抑制し、疾患の発現率および重症度を低下させた。関節炎の発症後における早期の抗IL−12mAbによる処置は重症度を低下させたが、疾患の発症後における抗IL−12mAbによるマウスの遅い処置は、疾患重症度に対して最小限の影響を及ぼした。IL−23のp19サブユニットまたはIL−12/23のp40サブユニットを欠失している遺伝子標的マウスを使用して、コラーゲン誘導関節炎の発生にIL−23が重要であることが示された(Murphyら(2003)J.Exp.Med.198(12):1951−1957)。
インターロイキン−12およびインターロイキン−23は、炎症性腸疾患(例えば、クローン病および潰瘍性大腸炎)においても役割を果たす。IFN−γおよびIL−12の増加した発現が、クローン病を有する患者の腸粘膜中で起こる(例えば、Faisら(1994)J.Interferon Res.14:235−238、Parronchiら(1997)Amer.J.Pathol.150:823−832、Monteleoneら(1997)Gastroenterology 112:1169−1178、Berrebiら(1998)Amer.J.Pathol.152:667−672参照)。抗IL−12抗体は、大腸炎のマウスモデル(例えば、TNBS誘導性大腸炎IL−2ノックアウトマウスおよび最近ではIL−10ノックアウトマウス)において、疾患を抑制することが示されている。IL−23の増加した発現もまた、クローン病を有する患者において観察されており、炎症性腸疾患(例えば、TNBS誘導性大腸炎)のマウスモデルおよびRAG1ノックアウトマウスにおいて観察されている。Il−23は、T細胞媒介性大腸炎に対して本質的であることが示され、大腸炎のマウスモデルにおいて、例えば、IL−10ノックアウトマウスにおいて、IL−17およびIL−6依存性機構を通じて炎症を促進することが示されている(例えば、Zhangらによる総説(2007)Intern.Immunopharmacology 7:409−416参照)。従って、本発明の抗体および抗体部分は、炎症性腸疾患の処置において使用され得る。
インターロイキン−12およびインターロイキン−23は、多発性硬化症の主要な媒介物質として関連づけられている。誘導性IL−12p40メッセージまたはIL−12自体の発現は、多発性硬化症を有する患者の病変において実証され得る(Windhagenら(1995)J.Exp.Med.182:1985−1996、Drulovicら(1997)J.Neurol.Sci.147:145−150)。多発性硬化症を有する慢性の進行性患者は、IL−12の上昇した循環レベルを有する。多発性硬化症を有する患者に由来するT細胞および抗原提示細胞(APC)による検討は、Th1型免疫応答につながる進行性多発性硬化症の基礎として自己永続的な一連の免疫相互作用を明らかにした。T細胞からのIFN−γの増加した分泌は、APCによる増加したIL−12産生につながり、増加したIL−12産生は、Th1型免疫活性化および疾患の慢性状態につながるサイクルを永続させた(Balashovら(1997)Proc.Natl.Acad.Sci.94:599−603)。多発性硬化症におけるIL−12およびIL−23の役割は、多発性硬化症のマウスおよびラット実験的アレルギー性脳脊髄炎(EAE)モデルを使用して検討されてきた。マウスにおける多発性硬化症の再発寛解型EAEモデルにおいて、抗IL−12mAbによる前処置は、麻痺を遅延させ、臨床スコアを低下させ、麻痺のピーク時または後続の寛解期の間における抗IL−12mAbによる処置は、臨床スコアを低下させた。また、EAEマウスモデルにおいて、IL−23のp19サブユニットに対する抗体による処置は、EAEの誘導を予防し、確立された疾患を逆転させた(Chenら 2006 J.Clinical Investigation 116(5):1317−1326)。IL−23を欠失している遺伝子標的マウスを使用して、脳の自己免疫性炎症に対してIL−23が重要であることが示された(Cuaら(2003)Nature 421:7440748)。IL−12/IL−23のp40サブユニットに対する抗体は、多発性硬化症の非ヒト霊長類モデル(例えば、コモンマーモセットにおけるEAE)において有益な活性を有することが示された(Hartら 2008 Neurodegenerative Dis.5:38−52)。(また、Granらによる総説、2004 Crit.Rev.Immunol.24:111−128、McKenzieら 2006 Trends Immunol 27:17−23も参照されたい。)。従って、本発明の抗体またはこの抗原結合部分は、ヒトにおける多発性硬化症に伴う症状を緩和させる役目をすることができる。
インターロイキン−12は、インスリン依存性糖尿病(IDDM)の重要な媒介物質として関連づけられた。IL−12の投与によって、NODマウスにおいてIDDMが誘導され、抗IL−12抗体は、IDDMの養子移入モデルにおいて保護的であった。早期発症型IDDM患者は、多少の残存する膵島細胞機能が維持されているいわゆる「ハネムーン期間」を経験する場合が多い。これらの残存する膵島細胞は、インスリンを産生し、投与されたインスリンよりも良好に血中グルコースレベルを調節する。これらの早期発症型患者の抗IL−12抗体による処置は、膵島細胞の更なる破壊を予防することができ、これによってインスリンの内生源を維持することができる。ストレプトゾトシンの分割した糖尿病誘発性の多回低用量と共に同時投与した場合にIL−23がマウスにおける糖尿病を誘導したという観察に基づいて、IL−23は、糖尿病を悪化させることに関連づけられてきた(例えば、Cookeによる総説 2006 Rev.Diabet.Stud.3(2):72−75参照)。従って、本発明の抗体またはこの抗原結合部分は、糖尿病に伴う症状を緩和させる役目をすることができる。
インターロイキン−12およびインターロイキン−23は、乾癬の主要な媒介物質として関連づけられている。乾癬は、TH1型サイトカイン発現プロファイルを伴う急性および慢性の皮膚病変を伴う(Hamidら(1996)J.Allergy Clin.Immunol.1:225−231、Turkaら(1995)Mol.Med.1:690−699)。マウスにおいて、IL−12/IL−23のp40サブユニットの過剰発現および組換えIL−23の注射の両方は、炎症性皮膚疾患をもたらし、マウス乾癬モデルへの抗IL−12p40抗体の投与は、乾癬病変を消失させた。罹病したヒト皮膚試料中で、IL−12p35およびp40mRNAが検出された。他の研究において、IL−12/IL−23のp40サブユニットおよびIL−23のp19サブユニットの両方の増加した発現がヒト乾癬病変において観察され、IL−12およびIL−23の減少した発現が乾癬治療後に観察された。IL−12のp40サブユニットにおける遺伝子多型は、乾癬に対する増加した感受性に結びつけられている(例えば、Tortiらによる総説(2007)J.Am.Acad.Dermatol.57(6):1059−1068、Fitchら(2007)Current Rheumatology Reports 9:461−467参照)。IL−12およびIL−23は、乾癬性関節炎における重要な因子としても同定されている(例えば、Hueberらによる総説 2007 Immunology Letters 114:59−65参照)。従って、本発明の抗体またはこの抗原結合部分は、乾癬等の慢性的皮膚障害ならびに乾癬性関節炎を緩和させる役目をすることができる。
インターロイキン12および/またはインターロイキン23は、免疫および炎症性の要素を含む様々な疾患に伴う病状において重要な役割を果たす。これらの疾患としては、関節リウマチ、骨関節炎、若年性慢性関節炎、ライム関節炎、乾癬性関節炎、反応性関節炎、脊椎関節症、全身性エリテマトーデス、クローン病、潰瘍性大腸炎、炎症性腸疾患、インスリン依存性糖尿病、甲状腺炎、喘息、アレルギー疾患、乾癬、皮膚炎強皮症、アトピー性皮膚炎、移植片対宿主疾患、臓器移植拒絶反応、臓器移植に伴う急性または慢性免疫疾患、サルコイドーシス、アテローム硬化症、播種性血管内凝固、川崎病、グレーヴス病、ネフローゼ症候群、慢性疲労症候群、ヴェゲナー肉芽腫症、ヘノッホ−シェーンライン紫斑(Henoch−Schoenlein purpurea)、腎臓の顕微鏡的血管炎、慢性活動性肝炎、ブドウ膜炎、敗血症性ショック、毒素ショック症候群、敗血症症候群、悪液質、感染症、寄生虫症、後天性免疫不全症候群、急性横断性脊髄炎、ハンチントン舞踏病、パーキンソン病、アルツハイマー病、卒中、原発性胆汁性肝硬変、溶血性貧血、悪性腫瘍、心不全、心筋梗塞、アジソン病(散発性)、多内分泌腺機能低下症候群I型および多内分泌腺機能低下症候群II型、シュミット症候群、成人(急性)呼吸促迫症候群、脱毛症、円形脱毛症、血清反応陰性関節症(seronegative arthopathy)、関節症、ライター病、乾癬性関節症、潰瘍性大腸炎性関節症、腸疾患性滑膜炎、クラミジア、エルシニアおよびサルモネラ関連関節症、脊椎関節症(spondyloarthopathy)、アテローム性疾患/動脈硬化症、アトピー性アレルギー、自己免疫性水疱性疾患、尋常性天疱瘡、落葉状天疱瘡、類天疱瘡、リニアIgA病、自己免疫性溶血性貧血、クームス試験陽性溶血性貧血、後天性悪性貧血、若年性悪性貧血、筋痛性脳炎/ローヤルフリー病、慢性皮膚粘膜カンジダ症、巨細胞性動脈炎、原発性硬化性肝炎、原因不明の自己免疫性肝炎、後天性免疫不全症症候群、後天性免疫不全関連疾患、C型肝炎、分類不能型免疫不全(分類不能型低γグロブリン血症)、拡張型心筋症、女性不妊症、卵巣機能不全、早期卵巣機能不全、線維性肺疾患、原因不明の線維性肺胞炎、炎症後間質性肺疾患、間質性肺炎、結合組織病関連間質性肺疾患、混合性結合組織病関連肺疾患、全身性硬化症関連間質性肺疾患、関節リウマチ関連間質性肺疾患、全身性エリテマトーデス関連肺疾患、皮膚筋炎/多発性筋炎関連肺疾患、シェーグレン病関連肺疾患、強直性脊椎炎関連肺疾患、血管炎性びまん性肺疾患、ヘモジデリン沈着症関連肺疾患、薬剤誘発性間質性肺疾患、放射線性線維症、閉塞性細気管支炎、慢性好酸球性肺炎、リンパ球性浸潤性肺疾患、感染後間質性肺疾患、痛風性関節炎、自己免疫性肝炎、1型自己免疫性肝炎(古典的自己免疫性またはルポイド肝炎)、2型自己免疫性肝炎(抗LKM抗体肝炎)、自己免疫性媒介低血糖、黒色表皮腫を伴うB型インスリン抵抗性、副甲状腺機能低下症、臓器移植に伴う急性免疫疾患、臓器移植に伴う慢性免疫疾患、骨関節症、原発性硬化性胆管炎、特発性白血球減少症、自己免疫性好中球減少症、腎疾患NOS、糸球体疾患、腎臓の顕微鏡的血管炎(vasulitis)、ライム病、円板状エリテマトーデス、男性不妊症(特発性またはNOS)、***自己免疫、多発性硬化症(全亜型)、インスリン依存性糖尿病、交感性眼炎、結合組織病に続発する肺高血圧症、グッドパスチャー症候群、結節性多発動脈炎の肺病変、急性リウマチ熱、リウマチ性脊椎炎、スチル病、全身性硬化症、高安病/動脈炎、自己免疫性血小板減少症、特発性血小板減少症、自己免疫性甲状腺疾患、甲状腺機能亢進症、甲状腺腫性自己免疫性甲状腺機能低下症(橋本病)、萎縮性自己免疫性甲状腺機能低下症、原発性粘液水腫、水晶体起因性ブドウ膜炎、原発性血管炎および尋常性白斑が挙げられるが、これらに限定されるものではない。本発明のヒト抗体および抗体部分は、自己免疫疾患、特に、リウマチ性脊椎炎、アレルギー、自己免疫性糖尿病、自己免疫性ブドウ膜炎等の炎症を伴う自己免疫疾患を処置するために使用され得る。
実施例1は、例えば実施例2−6において使用されるように、本発明の実施において使用される方法および材料を提供する。実施例2は、例示的な液体J695抗体製剤の調製を記載する。実施例3は、−80℃から25℃の間で繰り返された凍結融解サイクルの間における液体J695製剤の安定性を実証する実験を提供する。実施例4は、凍結状態における様々な温度における長期保存の間における液体J695製剤の安定性を実証する実験を提供する。実施例5は、−80℃から37℃の間で繰り返された凍結融解サイクルの間における液体J695製剤の安定性を実証する実験を提供する。実施例6は、様々な温度における加速および長期保存の間における液体J695製剤の安定性を実証する実験を提供する。実施例7は、例えば実施例8−9において使用されるように、本発明の実施において使用される方法および材料を提供する。実施例8は、ヒスチジンおよび金属(例えば、銅または鉄)の存在下におけるラムダ軽鎖を含有する抗体の切断の実証を提供する。実施例9は、抗体製剤および溶液成分の様々なパラメータに関する抗体の断片化およびその防止を実証する。これらのパラメータとしては、溶液pH、抗体濃度、製剤のイオン強度、製剤緩衝液の型および濃度、界面活性剤ならびに安定化賦形剤が挙げられるが、これらに限定されるものではない。実施例10は、鉄の様々なレベルおよび異なる温度におけるJ695(100および2mg/mL)の断片化を示す。
実施例1.1:カチオン交換HPLC
弱カチオン交換高速液体クロマトグラフィーを使用してJ695薬物物質の同一性および純度を決定するためにカチオン交換HPLCを使用した(SPD UV/VIS Detectorまたは同等物を有するShimadzu 10AD HPLC)。電荷に基づいて弱カチオン交換静止相(Dionex ProPac WCX−10、4mm×250mm、Dionex Corporation、Sunnyvale、CA)上において種を解像した。1mg/mLの濃度で100マイクロリットルを注入し、1.0mL/分の流速において、リン酸緩衝液系中で増加する塩(塩化ナトリウム)および減少するpHの勾配を利用して試料成分を解像した(移動相A:10mMリン酸二ナトリウム、pH7.5、移動相B:20mMリン酸二ナトリウム、20mM酢酸ナトリウム、400mM塩化ナトリウム、pH5.0)。カラム温度を分析にわたって25℃において維持し、注入前に試料を2−8℃において維持した。参照標準材料に対して試料についての(280ナノメートルにおける吸光度(absorbanse)を介して検出した)対象となるメインピークの相対保持時間を比較することによってピークの同一性を決定した。試験試料クロマトグラムについての異質性プロファイルを参照標準クロマトグラフィープロファイルと比較した。試料の主要なアイソフォーム領域、酸性領域および塩基性領域におけるピーク面積の合計を各々報告した。特に異なって述べない限り、全ての試薬は、JT Baker(Phillipsburg NJ)から購入した。
結合ELISAを用いて、IL−12に対する抗IL−12抗体J695試料の相対結合能力を参照標準の相対結合能力と比較して測定した。このアッセイにおいて、2−8℃における終夜の恒温放置を通じてrhIL−12タンパク質(ABC)を96ウェルマイクロタイタープレート(VWR International、West Chester、PA)に結合させた。標準物質および試料をPBS中の50%のSuperblockブロッキング緩衝液(Pierce Biotechnology Inc、Rockford、IL)および0.05%のSurfactamp−20(Pierce Biotechnology Inc、Rockford、IL)により50%の1×PBS中で160ng/mLから0.625ng/mLに連続的に希釈し、96ウェルマイクロタイタープレートのrhIL−12被覆ウェル中にロードした。次いで、捕獲したJ695を、ヤギ抗ヒトIgG−HRP(Pierce Biotechnology Inc、Rockford、IL)によって認識した。比色読み出しのための基質としてTMB Substrateキット(Pierce Biotechnology Inc、Rockford、IL)を使用した。相対結合能力のパーセントを、標準物質および試料に対する4パラメータ曲線適合からの「C」値の比として計算した。
サイズ排除HPLCを用いてJ695の純度を決定した(SPD UV/VIS Detectorまたは同等物を有するShimadzu 10AD HPLC)。10マイクロリットルの(2−8℃において維持した)2.0mg/mLタンパク質溶液をカラム上に注入し、分析のための十分なシグナルを得た。Superdexゲル濾過カラム(GE Healthcare Bio−Sciences Corp、Piscataway、NJ)または同等の静止相および移動相に対する211mMNa2SO4/92mMNa2HPO4、pH7.0を使用して、種を毎分0.75mLの流速において無勾配に分離した。分析の間、カラム温度を周囲温度で維持した。試験試料を繰り返して注入し、モノマーJ695および他の種を214nmにおける吸光度によって検出した。J695抗体の面積を、緩衝液関連ピークを除外した214nmの吸光度の試料中の成分の全面積と比較することによって純度を決定した。その方法は、高分子量凝集物および完全J695由来の抗体断片を解像することができた。
コロイド青色染色還元および非還元SDS PAGEゲルを用いてJ695の純度を決定した。還元および非還元条件下で、それぞれ、加えたメルカプトエタノールを有するまたは有さない試料緩衝液(2×トリス−グリシンSDS、Invitrogen Corp.Carlsbad、CA)を使用することによって試料を調製した。最初に、試料および標準物質を、それぞれ還元または非還元ゲルに対して0.4mg/mLおよび0.1mg/mLに、MilliQ水中で希釈した。試料を試料緩衝液によって1:1に希釈し、タンパク質に結合し、変性させるSDSと共に約60℃において約30分間加熱した。タンパク質に結合するSDSの量は、その分子サイズに正比例した。分子量マーカ(Mark12、非染色MW Markers、Invitrogen Corp.Carlsbad、CA)、試験試料および標準物質(還元および非還元)を12%(還元)および8−16%(非還元)のトリス−グリシン商業的ゲル(Invitrogen Corp.Carlsbad、CA)の別々のレーン上にロードした。タンパク質種の分離を、1×トリス−グリシンランニング緩衝液中で、最初の30分間は60Vの定常電圧を用いて完了し、次いで染料前部がゲルの底部に達するまで125Vとした。タンパク質をコロイド青色染色(Invitrogen Corp.Carlsbad、CA)によって検出した。非還元ゲル中の純度プロファイルをJ695参照標準に対する試験試料の純度プロファイルと比較することによって純度の質的評価を達成した。走査デンシトメトリー(Phoretix 1Dデンシトメトリーソフトウェアまたは同等物を有するUMAXスキャナ)を使用して、還元条件下におけるゲル走行上において検出した重鎖および軽鎖の合計から試料の純度パーセントを決定した。
分光光度測定によりJ695薬物物質のタンパク質濃度を測定した。試料を3通りにおいて希釈して、0.3から1.5AUの間のA280におけるOD値を得た。水中の希釈物を、重量測定的に(重量によって)Mettler Toledo Analytical天秤を使用して調製した。分光光度計(Beckman DU800または同等物)は、280nmにおいて無効になった。各試料および対照の吸光度を280nmにおいて読み取り、得られた値を希釈について補正し、タンパク質濃度に達する吸光係数によって分割した。J695について、AU/mg/mLにおける吸光係数の値は、1.42であった。
J695細胞に基づくバイオアッセイによって、参照標準と比較したJ695試料の相対活性を測定した。NK−92細胞を定義濃度のIL−12によって刺激し、可変濃度の抗IL−12抗体J695と混合した。恒温放置期間の間、NK−92細胞は、溶液中のIL−12の量に比例してインターフェロンガンマ(IFN−γ)を分泌した。商業的に入手可能なELISAキットを使用してIFN−γの量を定量した。非線形回帰を用いて、試料および参照標準のIC50値を計算した。個々の試料の活性を参照標準の活性(平均IC50値)の割合として表した。
以下のプロトコールに従って医薬製剤を製造した。
成分を以下のように秤量した(400.00gのマンニトール、15.50gのヒスチジン、14.90gのメチオニン、1.00gのポリソルベート80および9.701gの注射用水)。
融解し、場合によってプールした抗体濃縮物に、実施例2.1において調製した緩衝溶液を以下の方法において加えた。J695抗体濃縮物を、医薬製剤の調製前に水浴中で融解した。約125mgタンパク質/mLタンパク質濃縮物を有する約1.0kgのタンパク質と同等である約8.37kgの抗体濃縮物を使用した。濃縮物の密度は、約1.0467g/mLであった。バルク溶液の最終重量に達するまで撹拌しながら緩衝液を加えた。
J695抗体に対する製剤緩衝液を選択した後、薬物物質を最終製品と同じマトリックスにおいて製剤化した。タンパク質製剤の第1の目標は、医薬的タンパク質薬物の許容し得る貯蔵寿命を保証するように長期間にわたってそのネイティブで医薬的に活性な形態における所定のタンパク質の安定性を維持することである。典型的には、長い貯蔵寿命は、凍結形態(例えば、−80℃)におけるタンパク質を保存することによって、またはタンパク質を凍結乾燥プロセスに供することによって、すなわち、凍結乾燥形態におけるタンパク質を保存し、使用の直前にそれを再構成することによって達成される。しかし、凍結融解プロセスがタンパク質の安定性に影響を及ぼす場合が多く、このことは、凍結形態における医薬的タンパク質の保存でさえ、凍結融解段階による安定性の喪失を伴う可能性があることを意味することは、当業者に周知である。また、凍結乾燥の第1のプロセス段階は、タンパク質の安定性に負に影響を及ぼし得る凍結をも含む。タンパク質の不安定性の現象に直面するリスクがタンパク質濃度の増加と共に増加することは周知であるので、高タンパク質濃度におけるタンパク質の安定性を維持する製剤化条件を達成することは、困難な課題である。
最終医療品の貯蔵寿命ならびに医療品製造戦略、ロジスティックスおよび最終医療品の出荷を満たすために、バルクタンパク質(すなわち、薬物物質、活性医薬成分、API)を、より長い期間、凍結状態において医薬タンパク質の安定性を維持する製剤において製剤化する。理想的には、タンパク質製剤は、バルクタンパク質製造および医療品充填/仕上げの間におけるバルクタンパク質の保存場所の柔軟性を満たすために、凍結状態において様々な温度で、例えば−80℃、−40℃および−20℃で安定性を維持する。当業者は、これが非常に困難な課題であることを認める。
J695抗体に対する製剤緩衝液を選択した後、薬物物質を最終製品と同じマトリックスにおいて製剤化した。
100mg/mLのタンパク質濃度におけるJ695抗体の保存安定性を、J695医療品を制御温度条件において保存した場合に様々な温度で長期間評価した。定義された保存期間の後、試料を取り出し、J695の安定性に対する保存時間および保存温度の影響を評価した。
実施例7.1:材料
メチオニン、ヒスチジン、アルギニン、マンニトール、ポリソルベート80、ポロキサマー188、塩化ナトリウム、リン酸塩、酢酸塩、デスフェリオキサミン、EDTA、クエン酸ナトリウム、トリス−塩酸塩、デスフェリチオシン、スーパーオキシドジスムターゼおよび最高グレードのブチルヒドロキシトルエンをSigma−Aldrich(St.Louis、MO、USA)から購入した。N−グリカナーゼをProzyme(San Leandro、CA)から購入した。硫酸鉄(II)−7H2O、硫酸マグネシウム、硫酸ニッケル(II)、硫酸コバルト(II)および硫酸マンガン(II)をSigma−Aldrich(St.Louis、MO、USA)から購入した。塩化第二鉄−6H2OをMallinckrodt(Phillipsburg、NJ、USA)から購入した。硫酸第二銅−5H2OをEMD Chemicals(Gibbstown、NJ、USA)から購入した。硫酸亜鉛−7H2OをJT Baker(Phillipsburg、NJ、USA)から購入した。C18トラップをMichrom BioResources(Auburn、CA、USA)から購入し、キャピラリー(裸の非被覆キャピラリー(50μm id、全長30cm))およびSDS MW試料緩衝液をBeckman Coulter(Fullerton、CA、USA)から購入した。
実施例7.2.1:抗体の脱グリコシル化
質量スペクトルを単純化するためにN−グリカナーゼを使用して酵素的に試料を脱グリコシル化した。約30μlの各試料(濃度約1mg/mL)を2μlの10%w/w n−オクチルグルコシドに加え、2μlのN−グリカナーゼおよび試料を37℃において19時間恒温放置した。
以下に記載する2つの方法のいずれかを用いてSECを実施した。(a)抗体断片および凝集物をモノマーから分離するためにPharmacia Superdex200(10/300GL)カラム(GE Healthcare、Piscataway、NJ)を使用した。211mMのNa2SO4を92mMのNa2HPO4(pH7.0)と共に使用してアイソクラチック条件下において分離を行った。214nmおよび0.5mL/分において維持した流速において検出を実施した。典型的には、約100μlの1mg/ml溶液(100μgロード)をカラム上に注入した。10kD Amicon Ultra−15 Centrifugal Filter Device(Millipore、USA)を使用して、カラムから分画した材料を50mMの重炭酸アンモニウム中に濃縮および交換した。典型的には、より小さい注入体積(20μlの1mg/ml、20μgロード)を用いること以外は同じ方法を用いて、分画した材料をSECカラム上に再注入した。(b)抗体の凝集物および断片をモニターするために、代わりにTSK Gel G3000 SWXL(Tosoh Bioscience)を使用した。211mMのNa2SO4を92mMのNa2HPO4(pH7.0)と共に使用してアイソクラチック条件下において分離を行った。214nmおよび0.25mL/分において維持した流速において検出を実施した。典型的には、約10μlの2mg/ml溶液(20μgロード)をカラム上に注入した。
Agilent1100キャピラリーHPLCシステム(Agilent Technologies、Santa Clara、CA、USA)に連結したAPI QSTARパルサーQTOF質量分析計(Applied Biosystems、Foster City、CA、USA)上において試料を分析した。試料を質量分析計内に導入し、Michrom BioResources(Auburn、CA、USA)からのC18マイクロトラップを使用して脱塩した。試料を最初の5分間は水性条件(0.02%TFA、水中の0.08%ギ酸)下でロードして塩を除去し、次いで有機条件(0.02%TFA、アセトニトリル中の0.08%ギ酸)下で溶出させた。1mg/mL(10μgのロードに対して10μlの注入)のおよその濃度で試料を走行させた。質量スペクトルを単純化するのを助けるために、試料を室温において50mMのジチオトレイトール(DTT)によって30分間処置し、ジスルフィド結合を減少させ、軽鎖および重鎖成分を放出させた。別の場合、試料を非還元において走行させ、脱グリコシル化して質量スペクトルを単純化した。30μl(およその濃度=1mg/mL)の各試料に2μlの10%w/w n−オクチルグルコシドおよび2μlのN−グリカナーゼ(Prozyme)を加え、37℃において19時間恒温放置した。4500のキャピラリー電圧、非還元試料に対して1500−3500、還元試料に対して500から2500のm/z走査範囲によって正イオンモードにおいて走行するように質量分析計を設定した。レニン基質ペプチド(Sigma Catalog No.R−8129)を用いて計器をチューンし、キャリブレートした。BioAnalystソフトウェアバージョン1.1を使用してESI質量スペクトルのデコンボリューションを実施した。
全ての研究をProteomelab PA800 CEシステムまたはP/ACE MDQシステム(Beckman Coulter,Inc、Fullerton、CA)上において実施し、検出を214nmにおいて実施した。0.2ミクロンの検出器窓を有する50μm id×全長30cmの寸法(Beckman Coulter部品番号338451)による分離のために裸の非被覆キャピラリーを使用した。非還元条件下で試料調製を実施した。約100μgの試料を0.5mLバイアルに加え、適切な体積のMilli−Q水を加えて100μlの最終体積を得た。次いで5μlの500mMヨードアセトアミドを加え、その後50μlの50mM酢酸(pH4)1%SDS緩衝液を加えて1mg/mLの終濃度とした。試料を十分に混合し、60℃において10分間恒温放置した。最後に試料をオートサンプラバイアルに移し、分析を待つ10℃のオートサンプラ内に置いた。キャピラリーの走行前調整のための方法パラメータは、70psiにおいて3分間の(逆流を使用する)塩基性洗浄処理(0.1N水酸化ナトリウム)、その後の70psiにおいて3分間の酸性洗浄処理(0.1N塩化水素酸)、その後の70psiにおいて1分間の水洗浄処理(Milli−Q水)、その後の70psiにおいて10分間のSDS−Gel充填(SDS MW Gel Buffer、Beckman Catalog No.391163)、その後のMilli−Q水浸漬を行ってキャピラリーを洗浄することであった。試料を15kVにおいて10秒間動電学的に注入し、その後Milli−Q水浸漬を行ってキャピラリーを洗浄した。電圧分離は、15kVにおいて35分間だった。キャピラリー温度は20−25℃であり、試料保存温度は10℃であった。
試料を、低解像度ICP−MSのためにQTI−Intertek(Whitehouse、NJ、USA)に、高解像度ICP−MSのためにAQura GmbH(Rodenbacher Chaussee4、D−63457 Hanau、Germany)に提出した。低解像度ICP−MSのために、Perkin Elmer Elan ICP−MS分光計を使用したが、一方で高解像度のために、HR−ICP−MS Thermo Element XRを使用した。
実施例7.2.6.1:限外濾過(UF)は、静水圧によって半透膜に対して液体を押しやる一種の膜濾過である。抗体が保持されるが、一方で水および鉄塩等の低分子量の溶質が膜を通過する。Milliporeの指示書に従って、Millipore 30K Pellicon2再生セルロース膜を設置した。製造業者のトルク仕様を維持し、適切な圧力計、管およびポンプと共にUFシステムをセットアップした。次いで、適切にバルブを開いて限外濾過を開始した。入口(フィード)圧および出口圧を規定の範囲内に維持し、透過流量および圧力を厳密にモニターした。15−30分間毎にデータを記録した。限外濾過が完了した後、最終重量を記録し、濃度をA280によって決定した。
実施例8.1:ヒンジ領域におけるIgG分子(J695)の断片化
SECは、クロマトグラムにおけるモノマーのピークの低下および更なるピークの出現をモニターするために一般的に用いられる。図2は、40℃における約6ヵ月間の保存後のモノクローナル抗体の典型的なSECプロファイルを示す。4つの画分(画分1−4)を回収し、続いてSDS−PAGE、MSおよびCE−SDSによって分析した。画分1および2は、それぞれ凝集物およびモノマー抗体を表す。画分3は、Fabアーム(Fab+Fcまたは断片2)の喪失によって形成された100kDaの種ならびに重鎖(HC)と軽鎖(LC)の間のチオエーテル結合から構成された低い割合の非還元性(NR)種を含有する(Tous,G.I.ら(2005)Anal.Chem.77(9):2675−82)。画分4は、Fabアームを含有する(Cordoba,A.J.ら(2005)J.Chromatogr.B Analyt.Technol.Biomed.Life Sci.818(2):115−21)。
一実施形態において、鉄およびヒスチジンが製剤中に存在する場合、40℃におけるラムダ軽鎖含有抗IL−12抗体J695ロット1の恒温放置は、ヒンジ領域における抗体の断片化を増進する(表11)。
J695ロット1を1mMのデスフェリオキサミン(鉄特異的キレーター)を用いて恒温放置した。40℃において1ヵ月の恒温放置後、正常レベルの断片化を観察した(図10)。鉄(500ppb)によって正常抗体ロットをスパイクすることによって断片レベルの上昇が示され、これはデスフェリオキサミンによる前保温によって正常レベルに回復した(図10)。
ヒスチジンからの金属誘導断片化に対する寄与を検討した(図11)。モノクローナル抗体の正常ロットを水に対して透析した。鉄単独(50ppm)またはヒスチジン単独(10mM)を加え、または6.0の一定のpHにおける異なる濃度のヒスチジン(2、5および10mM)と共に鉄(50ppm)をモノクローナル抗体に加え、40℃において1週間恒温放置した。図11に示すように、ヒスチジンの存在も鉄単独も、対照レベルを超えた抗体断片化の有意な増加をもたらさなかった。しかし、鉄およびヒスチジンによって一緒に抗体を恒温放置した場合、断片化の用量依存的増加が観察され、このことは、製剤に加えたヒスチジンのレベルが鉄誘導断片化において有意な役割を果たす可能性があることを示した。
図12は、断片2(Fab+Fc)の脱グリコシル化の後のMSスペクトルの比較を示す。ヒンジ領域配列SCDKTHTC中におけるCys−218とAsp−219(C/D)の間の切断はJ695ロット1において有意に上昇したが、一方で分子上の他の切断部位における切断は増加しなかった。しかし、Fab種の分析(図13)は、J695ロット1中におけるこの切断部位(残基1−218)における対応するFab断片のレベルがストレスをかけた正常ロットと同等であるが、一方でSer−217とCys−218(S/C)の間で切断された遊離HC断片が有意に上昇して残基1−217からHC断片が得られた(図14)ことを示した。Cohenら((2007)J.Am.Chem.Soc.129(22)6976−7)は、S/C結合間の切断がβ−除去機構を介して起きることを最近実証した。この機構はより高いpH(pH8)において優勢であり、この機構の前にLC−HCジスルフィド結合の破壊およびデヒドロアラニン残基の後続の加水分解が起こり、これらは、セリンアミドによって終止するFab断片(1Da質量の付加)およびピルボイル基を有するC末端Fc断片(アスパラギン酸残基への70Da質量の付加)をもたらす。結果は、残基C/D間の切断部位の増加およびアスパラギン酸残基への27Daの付加(表14におけるピークC)を示し、加水分解の異なる機構を示唆した。J695ロット1中におけるE/C(残基1−215)間で切断された遊離軽鎖の上昇したレベル(図14)が観察された。表15は、異なるMSスペクトルの比較のために得たデータをまとめたものである。
カッパまたはラムダ軽鎖を有する抗体分子の加水分解を触媒する鉄およびヒスチジンの能力を検討した。ラムダLCを有する2個のIgG分子は鉄およびヒスチジンによって切断されたが、カッパLCを有するIgG分子は切断されなかった(図15)。図16は、その周りにおいてIgG分子の加水分解が観察される残基の配列を示す。
一実施形態において、鉄およびヒスチジンが製剤中に存在する場合、40℃におけるラムダ軽鎖含有抗IL−12抗体J695の恒温放置は、ヒンジ領域における抗体の断片化を増進する。従って、これらの研究のための40℃の恒温放置温度を選択した。温度それ自体によって誘導された抗体の断片化と鉄およびヒスチジンの存在によって誘導された断片化との間を明らかに区別するために、陽性対照(すなわち、鉄およびヒスチジンを含有する抗体製剤)が参照製剤(すなわち、ヒスチジンを含有するが鉄を欠いたそれぞれの製剤)によって消去されるように全ての加速安定性研究を設計し、実施した。
以下の組成において2mg/mL、pH5.0において抗体J695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、ならびに
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄。
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、ならびに
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0において抗体J695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄、ならびに
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および2.5ppmの鉄。
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、
e)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄、ならびに
f)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、2.5ppmの鉄。
以下の組成において2mg/mL、pH7.0において抗体J695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、ならびに
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄。
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、および
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0において抗体J695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄、
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および150mMのNaCl、ならびに
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄および150mMのNaCl。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0において抗体J695を製剤化した。
a)30mMのアルギニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、ならびに
b)30mMのアルギニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄。
c)30mMのアルギニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、および
d)30mMのアルギニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0濃度で抗体J695を製剤化した。
a)30mMのリン酸塩、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、ならびに
b)30mMのリン酸塩、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄。
c)30mMのリン酸塩、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、および
d)30mMのリン酸塩、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0において抗体J695を製剤化した。
a)30mMの酢酸塩、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、ならびに
b)30mMの酢酸塩、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄。
c)30mMの酢酸塩、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、および
d)30mMの酢酸塩、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄。
以下の組成において2mg/mL、pH6においてJ695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトールおよび0.5ppmの鉄
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄
更に、上記で列挙した組成(a)から(d)において100mg/mL、pH6.0においてJ695を製剤化した。この実験の結果を表15.9において提供し、以下において実施例9.9において考察する。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0においてJ695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトールおよび0.5ppmの鉄、
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.1%(m/v)のポロキサマー188、ならびに
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.1%(m/v)のポロキサマー188および0.5ppmの鉄。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0においてJ695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、0.01%(m/v)のポリソルベート80、
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄、
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、150mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、ならびに
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、150mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0においてJ695を製剤化した。
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80ならびに0.5および2.5ppmの鉄、
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および1mMのデスフェリオキサミン、ならびに
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5および2.5ppmの鉄ならびに1mMのデスフェリオキサミン。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0においてJ695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄、
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および30mMのクエン酸塩、ならびに
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄および30mMのクエン酸塩。
以下の組成において2mg/mL、pH6.0においてJ695を製剤化する。
a)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄、
c)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.1mMのデスフェリチオシン、ならびに
d)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、0.5ppmの鉄および0.1mMのデスフェリチオシン。
以下の組成において2mg/mL、pH6においてヒンジ領域において突然変異した特異的残基を有するJ695を製剤化する。
a)10Mmのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80、ならびに
b)10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および0.5ppmの鉄。
以下の組成において17mg/mL、pH6.0においてJ695を製剤化した。
a)10mMのメチオニン、10mMのイミダゾール、40mg/mLのマンニトール、ならびに
b)10mMのメチオニン、10mMのイミダゾール、40mg/mLのマンニトールおよび100ppmの硫酸鉄(II)。
鉄を含有するJ695(500ppm)および対照としての鉄を有さないJ695(60ppm)を、製剤緩衝液(10mMのヒスチジン、10mMのメチオニン、4%のマンニトール、pH6.0)またはクエン酸/リン酸緩衝液(10mMのリン酸水素ナトリウム、10mMのクエン酸、pH=6.0)のいずれかの中に透析した。次いで、試料を40℃において1ヵ月間恒温放置した。存在する断片の量を決定するために恒温放置の後の非還元CE−SDSによって試料を分析した。
SECによる分析によって、鉄レベルの増加と共に25℃および40℃におけるJ695における増強された断片化が示された。最高10,000ppbまでスパイクされた鉄の影響が、5℃における6ヵ月の保存後に観察されなかった。
J695抗体に対する製剤緩衝液を選択した後、最終製品と同じマトリックスにおいて薬物物質を製剤化した。タンパク質製剤の主要な目標は、医薬的タンパク質薬物の許容し得る貯蔵寿命を保証するように長期間にわたってそのネイティブで医薬的に活性な形態における所定のタンパク質の安定性を維持することである。J695プレフィルドシリンジ(PFS)のための推奨された保存温度は2−8℃であり、J695の様々なロットにおいて測定した正常鉄レベルは約60ppbであった(表16)。最高6ヵ月間5℃の推奨保存温度ならびに25℃および40℃の上昇した温度でPFSを保存した後における断片化に対する異なるレベルの鉄をスパイクする影響を評価した。
1.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80
2.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および硫酸鉄(II)としての10ppbの鉄
3.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および硫酸鉄(II)としての50ppbの鉄
4.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および硫酸鉄(II)としての100ppbの鉄
5.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および硫酸鉄(II)としての250ppbの鉄
6.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および硫酸鉄(II)としての500ppbの鉄
7.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および硫酸鉄(II)としての1ppmの鉄
8.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および硫酸鉄(II)としての5ppmの鉄
9.10mMのメチオニン、10mMのヒスチジン、40mg/mLのマンニトール、0.01%(m/v)のポリソルベート80および硫酸鉄(II)としての10ppmの鉄
得られた製剤をプレフィルドシリンジ(PFS)中に充填し、5、25および40℃において最高6ヵ月間恒温放置した。所定の時点において、全ての製剤の試料を取り出し、様々な製剤中における抗体の断片化の程度をSECによって決定した。表16に示すように、推奨保存条件において6ヵ月後に観察した断片化に対する(最高10,000ppbまでスパイクした)鉄の影響はなかった。これらの研究は、推奨保存条件において、J695製剤が、医薬的タンパク質薬物の許容し得る貯蔵寿命を提供するように長期間にわたってそのネイティブで医薬的に活性な形態における所定のタンパク質の安定性を維持したことを示す。
更に、上記で列挙した通りの公称組成(1)から(9)において2mg/mL、pH6.0においてJ695を製剤化する。得られた9個の製剤を滅菌非発熱性ポリプロピレン低温貯蔵バイアル中に充填し、5℃、25℃および40℃において最高6ヵ月間恒温放置する。更に、9個の全ての製剤を2−8℃の推奨保存温度で最高12ヵ月間保存する。所定の時点において、全ての製剤の試料を取り出し、様々な製剤中における抗体の断片化の程度をSECによって決定する。
本出願にわたって引用され得る全ての引用文献(参考文献、特許、特許出願およびウェブサイト等)の内容は、そこで引用された参考文献であるように、それらの全体において参照により本明細書に明示的に組み込まれる。本発明の実施は、特に明記しない限り、当技術分野において周知のタンパク質製剤の慣用の技術を用いる。
本発明は、この精神または本質的特徴から逸脱することなく、他の特定の形態において実施され得る。従って、前述の実施形態は、本明細書において記載される本発明を限定するものではなく、全ての点において例示的であると考えられるべきである。従って、本発明の範囲は、前述の記載によってではなく、添付の特許請求の範囲によって示され、従って、請求項の均等物の意味および範囲の中にある全ての変化は、本明細書において包含されることが意図される。
Claims (144)
- ヒスチジン含有製剤におけるラムダ軽鎖の少なくとも部分を含む分子の切断を阻害または防止するための方法であって、前記分子を切断する金属の能力を阻害または防止する段階を含む、方法。
- 阻害または防止が、製剤中に少なくとも1種の金属キレーターを含めることを含む、請求項1の方法。
- 阻害または防止が、濾過、緩衝液交換、クロマトグラフィーおよび樹脂交換から成る群から選択される少なくとも1つの手法に製剤を供することを含む、請求項1の方法。
- 濾過が、限外濾過および透析濾過から成る群から選択される、請求項3の方法。
- 緩衝液交換が、ヒスチジンを含む緩衝液、クエン酸塩およびリン酸塩を含む緩衝液ならびにイミダゾールを含む緩衝液から成る群から選択される緩衝液による透析を含む、請求項3の方法。
- 阻害または防止が、製剤中にクエン酸緩衝液またはリン酸緩衝液を含めることを含む、請求項1の方法。
- 阻害または防止が、ラムダ軽鎖における少なくとも1つのアミノ酸を改変することによって切断を阻害または防止することを含む、請求項1の方法。
- 阻害または防止が、アミノ酸配列グルタミン酸−システイン−セリンが変化するようにラムダ鎖においてアミノ酸配列を改変することによって切断を阻害または防止することを含む、請求項1の方法。
- 製剤が、約10mMのヒスチジンを含む、請求項1の方法。
- 製剤が、約1−100mMのヒスチジンを含む、請求項1の方法。
- 切断が、ラムダ鎖のヒンジ領域において起きる、請求項1の方法。
- ラムダ軽鎖の少なくとも部分が、グルタミン酸−システイン−セリンのアミノ酸配列または抗体結合を阻害しない少なくとも1つの修飾を含む、請求項1の方法。
- 切断が、グルタミン酸とシステインの間で起きる、請求項12の方法。
- 分子が、重鎖の少なくとも部分を含む、請求項1の方法。
- 重鎖の部分が、アミノ酸配列SCDKまたは抗体結合を阻害しない少なくとも1つの修飾を含む、請求項1の方法。
- 切断が、セリンとシステインの間で起きる、請求項10の方法。
- 切断が、システインとアスパラギン酸の間で起きる、請求項10の方法。
- 金属がFe2+である、請求項1の方法。
- 金属がFe3+である、請求項1の方法。
- 金属がCu2+である、請求項1の方法。
- 金属がCu1+である、請求項1の方法。
- 分子が、約1mg/mlから約300mg/mlの濃度範囲内で存在する、請求項1の方法。
- 分子が、約2mg/mlの濃度で存在する、請求項1の方法。
- 分子が、約7mg/mlの濃度で存在する、請求項1の方法。
- 分子が、約100mg/mlの濃度で存在する、請求項1の方法。
- 分子が免疫グロブリンである、請求項1の方法。
- 分子がモノクローナル抗体である、請求項1の方法。
- 分子が、DVD−Ig(商標)、Fab断片、F(ab’)2断片、キメラ抗体、CDRグラフト抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、ジスルフィド連結Fv、単一ドメイン抗体、多重特異性抗体、二重特異性抗体および双特異性抗体から成る群から選択される、請求項1の方法。
- 分子が抗IL−12/23抗体である、請求項1の方法。
- 分子がJ695である、請求項1の方法。
- 分子が、抗CD80または抗IGF1、2抗体である、請求項1の方法。
- 切断が、約2℃から約25℃の温度で起きる、請求項1の方法。
- 切断が、約2℃から約8℃の温度で起きる、請求項1の方法。
- 切断が、約4から約8のpHで起きる、請求項1の方法。
- 切断が、約5から約6のpHで起きる、請求項1の方法。
- 阻害または防止が、pHを約5以下に低下させることを含む、請求項1の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、クエン酸塩、シデロホア、カリクセレン、アミノポリカルボン酸、ヒドロキシアミノカルボン酸、N−置換グリシン、2−(2−アミノ−2−オキソエチル)アミノエタンスルホン酸(BES)、二座、三座または六座鉄キレーター、ならびにこれらの誘導体、類似体および組み合わせから成る群から選択される、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、アエロバクチン、アグロバクチン、アゾトバクチン、バシリバクチン、N−(5−C3−L(5アミノペンチル)ヒドロキシカルバモイル)−プロピオンアミド)ペンチル)−3(5−(N−ヒドロキシアセトアミド)−ペンチル)カルバモイル)−プロプリオンヒドロキサム酸(デフェロキサミン、デスフェリオキサミンまたはDFOもしくはDEF)、デスフェリチオシン、エンテロバクチン、エリスロバクチン、フェリクローム、フェリオキサミンB、フェリオキサミンE、フルビアバクチン、フサリニンC、ミコバクチン、パラバクチン、シュードバクチン、ビブリオバクチン、ブルニバクチン、イェルシニアバクチン、オルニバクチンならびにこれらの誘導体、類似体および組み合わせから成る群から選択されるシデロホアである、請求項2の方法。
- 金属キレーターがデスフェリオキサミンである、請求項38の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、クエン酸塩である、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、エチレンジアミン四酢酸(EDTA)、ニトリロ三酢酸(NTA)、トランス−ジアミノシクロヘキサン四酢酸(DCTA)、ジエチレントリアミン五酢酸(DTPA)、N−2−アセトアミド−2−イミノ二酢酸(ADA)、アスパラギン酸、ビス(アミノエチル)グリコールエーテルN,N,N’N’−四酢酸(EGTA)、グルタミン酸およびN,N’−ビス(2−ヒドロキシベンジル)エチレンジアミン−N,N’−二酢酸(HBED)ならびにこれらの誘導体、類似体および組み合わせから成る群から選択されるアミノポリカルボン酸である、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、N−ヒドロキシエチルイミノ二酢酸(HIMDA)、N,N−ビスヒドロキシエチルグリシン(ビシン)およびN−(トリスヒドロキシメチルメチル)グリシン(トリシン)ならびにこれらの誘導体、類似体および組み合わせから成る群から選択されるヒドロキシアミノカルボン酸である、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、N−置換グリシンまたはこの誘導体、類似体もしくは組み合わせである、請求項2の方法。
- N−置換グリシンが、グリシルグリシンならびにこの誘導体、類似体および組み合わせから成る群から選択される、請求項43の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、2−(2−アミノ−2−オキソエチル)アミノエタンスルホン酸(BES)ならびにこの誘導体、類似体および組み合わせである、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、DTPAおよびDEFの組み合わせを含む、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、EDTA、EGTAおよびDEFの組み合わせを含む、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、フェノールおよびアルデヒドのヒドロキシアルキル化生成物に基づく大環状または環状オリゴマー、ならびにこの誘導体、類似体および組み合わせから成る群から選択されるカリックスアレーンである、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、ヒドロキシピリジン誘導体、ヒドラゾン誘導体およびヒドロキシフェニル誘導体またはニコチニル誘導体、例えば、1,2−ジメチル−3−ヒドロキシピリジン−4−オン(Deferiprone、DFPまたはFerriprox)、2−デオキシ−2−(N−カルバモイルメチル−[N’−2’−メチル−3’−ヒドロキシピリジン−4’−オン])−D−グルコピラノース(Feralex−G)、ピリドキサールイソニコチニルヒドラゾン(PIH)、4,5−ジヒドロ−2−(2,4−ジヒドロキシフェニル)−4−メチルチアゾール−4−カルボン酸(GT56−252)、4−[3,5−ビス(2−ヒドロキシフェニル)−[1,2,4]トリアゾール−1−イル]安息香酸(ICL−670)、N,N’−ビス(o−ヒドロキシベンジル)エチレンジアミン−N,N’−二酢酸(HBED)、5−クロロ−7−ヨード−キノリン−8−オール(クリオキノール)ならびにこれらの誘導体、類似体および組み合わせである、請求項2の方法。
- 少なくとも1種の金属キレーターが、トリエチレンテトラミン(トリエンチン)、テトラエチレンペンタミン、D−ペニシラミン、エチレンジアミン、ビスピリジン、フェナントロリン、バソフェナントロリン、ネオクプロイン、バトクプロインスルフォネート、クプリゾン、シス,シス−1,3,5,−トリアミノシクロヘキサン(TACH)、Tachpyrならびにこれらの誘導体、類似体および組み合わせから成る群から選択される銅キレーターである、請求項2の方法。
- 製剤が、アミノ酸、糖、糖アルコール、緩衝液、塩および界面活性剤から成る群から選択される少なくとも1種の更なる賦形剤を含む、請求項1の方法。
- 製剤が、約1から約60mg/mlのマンニトール、約1から約50mMのメチオニン、約0.001%から約0.5%(w/v)のポリソルベート80、約0.001%から約1%(w/v)のポリオキサマー188、約1から約150mMの塩化ナトリウム、約1から約30mMの酢酸塩、約1から約30mMのクエン酸塩、約1から約30mMのリン酸塩および約1から約30mMのアルギニンから成る群から選択される少なくとも1種の更なる賦形剤を含む、請求項1の方法。
- 製剤中に少なくとも1種の金属キレーターを含める段階および切断について分子の少なくとも部分を分析する段階を含む、ヒスチジン含有製剤においてラムダ軽鎖の少なくとも部分を含む分子の切断を検出するための方法。
- ラムダ軽鎖の少なくとも部分を含む分子と、ヒスチジンを含む緩衝液系とを含み、実質的に金属を含まない安定な製剤。
- 金属がFe2+またはFe3+である、請求項54の製剤。
- 金属がCu2+またはCu1+である、請求項54の製剤。
- 製剤が、濾過、緩衝液交換、クロマトグラフィーおよび樹脂交換から成る群から選択される少なくとも1つの手法に供した後で金属を実質的に含まない、請求項54の製剤。
- 緩衝液交換が、ヒスチジンを含む緩衝液、クエン酸塩およびリン酸塩を含む緩衝液ならびにイミダゾールを含む緩衝液から成る群から選択される緩衝液による透析を含む、請求項57の製剤。
- 金属が、約5,060ppb未満、約1,060ppb未満、約560ppb未満、約310ppb未満、約160ppb未満、約110ppb未満および約70ppb未満から成る群から選択される濃度で存在する、請求項54の製剤。
- 金属が、約160ppb未満の濃度で存在する、請求項59の製剤。
- 金属が、約70ppb未満の濃度で存在する、請求項59の製剤。
- ポリオールおよび界面活性剤から成る群から選択される少なくとも1種の更なる賦形剤を更に含む、請求項54の製剤。
- 安定剤を更に含む、請求項62の製剤。
- マンニトール、ポリソルベート80およびメチオニンを更に含む、請求項54の製剤。
- 緩衝液系が、クエン酸塩またはリン酸塩を更に含む、請求項54の製剤。
- pHが約5以下である、請求項54の製剤。
- (a)1−10%のマンニトール、
(b)0.001%−0.1%のポリソルベート80、
(c)5から7のpHを有する1−100mMのヒスチジンおよび1−50mMのメチオニンを含む緩衝液系
を含む、請求項64の製剤。 - (a)2−6%のマンニトール、
(b)0.005−0.05%のポリソルベート80、
(c)5から7のpHを有する5−50mMのヒスチジンおよび5−20mMのメチオニンを含む緩衝液系
を含む、請求項64の製剤。 - (a)約4%のマンニトール、
(b)約0.01%のポリソルベート80、
(c)約6のpHを有する約10mMのヒスチジンおよび約10mMのメチオニンを含む緩衝液系
を含む、請求項64の製剤。 - 分子が、モノクローナル抗体またはこの抗原結合部分である、請求項54から69のいずれか一項の製剤。
- 抗体またはこの抗原結合部分の濃度が、約1から約250mg/mlの間である、請求項70の製剤。
- 抗体またはこの抗原結合部分の濃度が、約40から約200mg/mlの間である、請求項70の製剤。
- 抗体またはこの抗原結合部分の濃度が、約100mg/mlである、請求項70の製剤。
- 抗体が、IL−12/IL−23のp40サブユニットのエピトープに結合し得るヒト抗体またはこの抗原結合部分である、請求項70の製剤。
- ヒト抗体が、抗体J695またはこの抗原結合部分である、請求項74の製剤。
- 少なくとも24ヵ月間の貯蔵寿命を有する、請求項74または75の製剤。
- 少なくとも5回の製剤の凍結融解サイクルの後で安定性を維持する、請求項74または75の製剤。
- 更なる薬剤を更に含む、請求項74または75の製剤。
- 更なる薬剤が治療剤である、請求項78の製剤。
- 治療剤が、ブデノシド、上皮成長因子、コルチコステロイド、サイクロスポリン、スルファサラジン、アミノサリチレート、6−メルカプトプリン、アザチオプリン、メトロニダゾール、リポキシゲナーゼ阻害剤、メサラミン、オルサラジン、バルサラジド、抗酸化剤、トロンボキサン阻害剤、IL−1受容体アンタゴニスト、抗IL−1βモノクローナル抗体、抗IL−6モノクローナル抗体、成長因子、エラスターゼ阻害剤、ピリジニル−イミダゾール化合物、TNF、LT、IL−1、IL−2、IL−6、IL−7、IL−8、IL−15、IL−16、IL−18、EMAP−II、GM−CSF、FGFおよびPDGFの抗体またはアゴニスト、CD2、CD3、CD4、CD8、CD25、CD28、CD30、CD40、CD45、CD69、CD90またはこれらのリガンドに対する抗体、メトトレキサート、FK506、ラパマイシン、ミコフェノール酸モフェチル、レフルノミド、NSAID、イブプロフェン、プレドニゾロン、ホスホジエステラーゼ阻害剤、アデノシンアゴニスト、抗血栓剤、補体阻害剤、アドレナリン作動剤、IRAK、NIK、IKK、p38、MAPキナーゼ阻害剤、IL−1β変換酵素阻害剤、TNFα変換酵素阻害剤、T細胞シグナル伝達阻害剤、メタロプロテイナーゼ阻害剤、アンギオテンシン変換酵素阻害剤、可溶性サイトカイン受容体、可溶性p55 TNF受容体、可溶性p75 TNF受容体、sIL−1RI、sIL−1RII、sIL−6R、抗炎症性サイトカイン、IL−4、IL−10、IL−11、IL−13およびTGFβから成る群から選択される、請求項79の製剤。
- 治療剤が、抗TNF抗体およびこの抗体断片、TNFR−Ig構築物、TACE阻害剤、PDE4阻害剤、コルチコステロイド、ブデノシド、デキサメタゾン、スルファサラジン、5−アミノサリチル酸、オルサラジン、IL−1β変換酵素阻害剤、IL−1ra、チロシンキナーゼ阻害剤、6‐メルカプトプリンおよびIL−11から成る群から選択される、請求項79の製剤。
- 治療剤が、メチルプレドニゾロン、シクロホスファミド、4−アミノピリジン、チザニジン、インターフェロン−β1a、インターフェロン−β1b、コポリマー1、高圧酸素、静脈内免疫グロブリン、クラブリビン、TACE阻害剤、キナーゼ阻害剤、sIL−13R、抗P7およびp−セレクチン糖タンパク質リガンド(PSGL)から成る群から選択される、請求項79の製剤。
- 金属の存在下でヒンジ領域内において切断されない、ラムダ軽鎖の少なくとも部分を含む分子と、イミダゾールを含む緩衝液系と、金属とを含む安定な製剤。
- ヒンジ領域内において切断されない、または金属キレーターの非存在下で観察された切断のレベル未満のレベルでヒンジ領域内において切断される、ラムダ軽鎖の少なくとも部分を含む分子と、ヒスチジンを含む緩衝液系と、金属キレーターとを含む安定な製剤。
- 金属が、Fe2+またはFe3+である、請求項83または84の製剤。
- 金属が、Cu2+またはCu1+である、請求項83または84の製剤。
- 金属キレーターが、シデロホア、カリクセレン、アミノポリカルボン酸、ヒドロキシアミノカルボン酸、N−置換グリシン、2−(2−アミノ−2−オキソエチル)アミノエタンスルホン酸(BES)、二座、三座または六座鉄キレーター、銅キレーター、クエン酸塩、ならびにこれらの誘導体、類似体および組み合わせから成る群から選択される、請求項84の製剤。
- 金属キレーターがデスフェリオキサミンである、請求項87の製剤。
- ポリオールおよび界面活性剤から成る群から選択される少なくとも1種の更なる賦形剤を更に含む、請求項83または84の製剤。
- 安定剤を更に含む、請求項89の製剤。
- マンニトール、ポリソルベート80およびメチオニンを更に含む、請求項84の製剤。
- 緩衝液系が、クエン酸塩またはリン酸塩を更に含む、請求項84の製剤。
- 製剤のpHが約5以下である、請求項83または84の製剤。
- (a)1−10%のマンニトール、
(b)0.001%−0.1%のポリソルベート80、
(c)5から7のpHを有する1−100mMのヒスチジンおよび1−50mMのメチオニンを含む緩衝液系
を含む、請求項91の製剤。 - (a)2−6%のマンニトール、
(b)0.005−0.05%のポリソルベート80、
(c)5から7のpHを有する5−50mMのヒスチジンおよび5−20mMのメチオニンを含む緩衝液系
を含む、請求項91の製剤。 - (a)約4%のマンニトール、
(b)約0.01%のポリソルベート80、
(c)約6のpHを有する約10mMのヒスチジンおよび約10mMのメチオニンを含む緩衝液系
を含む、請求項91の製剤。 - 分子が、モノクローナル抗体またはこの抗原結合部分である、請求項84から96のいずれか一項の製剤。
- 抗体またはこの抗原結合部分の濃度が、約1から約250mg/mlの間である、請求項97の製剤。
- 抗体またはこの抗原結合部分の濃度が、約40から約200mg/mlの間である、請求項97の製剤。
- 抗体またはこの抗原結合部分の濃度が、約100mg/mlである、請求項97の製剤。
- 抗体が、IL−12/IL−23のp40サブユニットのエピトープに結合し得るヒト抗体またはこの抗原結合部分である、請求項97の製剤。
- ヒト抗体が、抗体J695またはこの抗原結合部分である、請求項101の製剤。
- 少なくとも24ヵ月間の貯蔵寿命を有する、請求項101または102の製剤。
- 少なくとも5回の製剤の凍結融解サイクルの後で安定性を維持する、請求項101または102の製剤。
- 更なる薬剤を更に含む、請求項101または102の製剤。
- 更なる薬剤が治療剤である、請求項105の製剤。
- 治療剤が、ブデノシド、上皮成長因子、コルチコステロイド、サイクロスポリン、スルファサラジン、アミノサリチレート、6−メルカプトプリン、アザチオプリン、メトロニダゾール、リポキシゲナーゼ阻害剤、メサラミン、オルサラジン、バルサラジド、抗酸化剤、トロンボキサン阻害剤、IL−1受容体アンタゴニスト、抗IL−1βモノクローナル抗体、IL−1受容体抗体、抗IL−6モノクローナル抗体、IL−6受容体抗体、成長因子、エラスターゼ阻害剤、ピリジニル−イミダゾール化合物、TNF、LT、IL−1、IL−2、IL−6、IL−7、IL−8、IL−15、IL−16、IL−17、IL−18、EMAP−II、GM−CSF、FGFおよびPDGFの抗体またはアゴニスト、CD2、CD3、CD4、CD8、CD20、CD25、CD28、CD30、CD40、CD45、CD69、CD90またはこれらのリガンドに対する抗体、メトトレキサート、FK506、ラパマイシン、ミコフェノール酸モフェチル、レフルノミド、NSAID、イブプロフェン、プレドニゾロン、ホスホジエステラーゼ阻害剤、アデノシンアゴニスト、抗血栓剤、S1P1アゴニスト、bcl−2阻害剤、補体阻害剤、アドレナリン作動剤、IRAK、NIK、IKK、p38、MAPキナーゼ阻害剤、IL−1β変換酵素阻害剤、TNFα変換酵素阻害剤、T細胞シグナル伝達阻害剤、メタロプロテイナーゼ阻害剤、アンギオテンシン変換酵素阻害剤、可溶性サイトカイン受容体、可溶性p55 TNF受容体、可溶性p75 TNF受容体、sIL−1RI、sIL−1RII、sIL−6R、抗炎症性サイトカイン、IL−4、IL−10、IL−11、IL−13およびTGFβから成る群から選択される、請求項106の製剤。
- 治療剤が、抗TNF抗体およびこの抗体断片、TNFR−Ig構築物、TACE阻害剤、PDE4阻害剤、コルチコステロイド、ブデノシド、デキサメタゾン、スルファサラジン、5−アミノサリチル酸、オルサラジン、IL−1β変換酵素阻害剤、IL−1ra、チロシンキナーゼ阻害剤、6‐メルカプトプリンおよびIL−11から成る群から選択される、請求項106の製剤。
- 治療剤が、メチルプレドニゾロン、シクロホスファミド、4−アミノピリジン、チザニジン、インターフェロン−β1a、インターフェロン−β1b、コポリマー1、高圧酸素、静脈内免疫グロブリン、クラブリビン、TACE阻害剤、キナーゼ阻害剤、sIL−13R、抗P7およびp−セレクチン糖タンパク質リガンド(PSGL)から成る群から選択される、請求項106の製剤。
- 金属がヒスチジンの存在下でラムダ軽鎖の切断をもたらさない濃度で存在する、約5から約7のpHを有するヒスチジンを含む緩衝溶液中にラムダ軽鎖を含む治療上有効量の抗体を含む、安定な製剤。
- 切断が、ラムダ鎖のヒンジ領域において起こる、請求項110の製剤。
- 金属が、Fe2+またはFe3+である、請求項110の製剤。
- 金属が、Cu2+またはCu1+である、請求項110の製剤。
- 金属が、約5,060ppb未満、約1,060ppb未満、約560ppb未満、約310ppb未満、約160ppb未満、約110ppb未満および約70ppb未満から成る群から選択される濃度で存在する、請求項110の製剤。
- 金属が、約160ppb未満の濃度で存在する、請求項110の製剤。
- 金属が、約70ppb未満の濃度で存在する、請求項110の製剤。
- ポリオールおよび界面活性剤から成る群から選択される少なくとも1種の更なる賦形剤を含む、請求項110の製剤。
- 安定剤を更に含む、請求項117の製剤。
- マンニトール、ポリソルベート80およびメチオニンを更に含む、請求項110の製剤。
- 緩衝溶液が、リン酸塩またはクエン酸塩を更に含む、請求項110の製剤。
- pHが約5以下である、請求項110の製剤。
- 抗体が、IL−12/IL−23のp40サブユニットのエピトープに結合し得るヒト抗体またはこの抗原結合部分である、請求項110の製剤。
- ヒト抗体またはこの抗原結合部分が、Y61およびJ695から成る群から選択される抗体が結合するIL−12/IL−23のp40サブユニットのエピトープに結合する、請求項122の製剤。
- ヒト抗体が、抗体J695またはこの抗原結合部分である、請求項123の製剤。
- 少なくとも24ヵ月間の貯蔵寿命を有する、請求項110から124のいずれか一項の製剤。
- 少なくとも5回の製剤の凍結融解サイクルの後で安定性を維持する、請求項110から124のいずれか一項の製剤。
- (a)IL−12/IL−23のp40サブユニットのエピトープに結合する1−250mg/mlのヒト抗体、
(b)1−10%のマンニトール、
(c)0.001%−0.1%のポリソルベート80、
(d)1−50mMのメチオニン、および
(e)5から7のpHを有する1−100mMのヒスチジン
を含み、金属を実質的に含まない水性医薬製剤。 - 金属が、約5,060ppb未満、約1,060ppb未満、約560ppb未満、約310ppb未満、約160ppb未満、約110ppb未満および約70ppb未満から成る群から選択される濃度で存在する、請求項127の製剤。
- 金属が、約160ppb未満の濃度で存在する、請求項128の製剤。
- 金属が、約70ppb未満の濃度で存在する、請求項128の製剤。
- ヒト抗体またはこの抗原結合部分が、Y61およびJ695から成る群から選択される抗体が結合するIL−12/IL−23のp40サブユニットのエピトープに結合する、請求項127の製剤。
- ヒト抗体が、抗体J695またはこの抗原結合部分である、請求項131の製剤。
- 少なくとも24ヵ月間の貯蔵寿命を有する、請求項127から132のいずれか一項の製剤。
- 少なくとも5回の製剤の凍結融解サイクルの後で安定性を維持する、請求項127から132のいずれか一項の製剤。
- (a)IL−12/IL−23のp40サブユニットのエピトープに結合する約100mg/mlのヒト抗体、
(b)約4%のマンニトール、
(b)約0.01%のポリソルベート80、
(c)約10mMのメチオニン、および
(d)約6のpHを有する10mMのヒスチジン
を含む、水性医薬製剤。 - ヒト抗体またはこの抗原結合部分が、Y61およびJ695から成る群から選択される抗体が結合するIL−12/IL−23のp40サブユニットのエピトープに結合する、請求項135の製剤。
- ヒト抗体が、抗体J695またはこの抗原結合部分である、請求項136の製剤。
- 金属を実質的に含まない、請求項135から137のいずれか一項の製剤。
- 金属キレーターを更に含む、請求項135から137のいずれか一項の製剤。
- 金属が、約5,060ppb未満、約1,060ppb未満、約560ppb未満、約310ppb未満、約160ppb未満、約110ppb未満および約70ppb未満から成る群から選択される濃度で存在する、請求項135の製剤。
- 金属が、約160ppb未満の濃度で存在する、請求項140の製剤。
- 金属が、約70ppb未満の濃度で存在する、請求項140の製剤。
- 少なくとも24ヵ月間の貯蔵寿命を有する、請求項135から137のいずれか一項の製剤。
- 少なくとも5回の製剤の凍結融解サイクルの後で安定性を維持する、請求項135から137のいずれか一項の製剤。
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