JP2008220298A - Method and device for introducing material into cell, and cell obtained by the same - Google Patents

Method and device for introducing material into cell, and cell obtained by the same Download PDF

Info

Publication number
JP2008220298A
JP2008220298A JP2007065011A JP2007065011A JP2008220298A JP 2008220298 A JP2008220298 A JP 2008220298A JP 2007065011 A JP2007065011 A JP 2007065011A JP 2007065011 A JP2007065011 A JP 2007065011A JP 2008220298 A JP2008220298 A JP 2008220298A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cells
cell
intracellularly
liquid
substance
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2007065011A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Kazuto Ikemoto
一人 池本
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Mitsubishi Gas Chemical Co Inc
Original Assignee
Mitsubishi Gas Chemical Co Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mitsubishi Gas Chemical Co Inc filed Critical Mitsubishi Gas Chemical Co Inc
Priority to JP2007065011A priority Critical patent/JP2008220298A/en
Publication of JP2008220298A publication Critical patent/JP2008220298A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M35/00Means for application of stress for stimulating the growth of microorganisms or the generation of fermentation or metabolic products; Means for electroporation or cell fusion

Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method and a device for successively and readily introducing two or more kinds of intracellularly introduceable materials into a plurality of cells in high efficiency, and to provide the cell obtained by the same. <P>SOLUTION: The method for introducing the materials into the cells includes soaking the cells in an aqueous solvent having osmotic pressure lower than that of the intracellular fluid and having ≥50 mOsm/kg absolute value of the difference, and electrospraying a liquid free from the intracellularly introduceable materials in the cells under the contact with the intracellularly introduceable material. A spray device housing a tank for storing the liquid, a spray tube, a voltage-rising device for applying a high voltage, or the like in a housing is used. By using the method and the device, a plurality of the cells to which two or more kinds of intracellularly introduceable materials are introduced can be obtained efficiently. <P>COPYRIGHT: (C)2008,JPO&INPIT

Description

本発明は、細胞内導入物質を効率よくかつ簡便に細胞内に導入できる方法および装置、並びにそれらによって得られた細胞に関する。更に、詳しくは、細胞内導入物質を高い導入効率でしかも短時間に導入できる方法およびその方法を用いた小型で安全な装置、並びにそれらの方法で細胞内導入物質を導入した細胞に関する。
細胞内に、DNAやRNA等の遺伝子、酵素や抗体等の蛋白または医薬品等の化学物質を効率的に導入できる方法および装置、並びにそれらによって得られる細胞は、医学、薬学、農学等のバイオ関連分野において大変有用な研究、生産手段となる。
The present invention relates to a method and apparatus capable of efficiently and simply introducing intracellularly introduced substances into cells, and cells obtained thereby. More specifically, the present invention relates to a method capable of introducing an intracellularly introduced substance with high introduction efficiency and in a short time, a small and safe apparatus using the method, and a cell into which the intracellularly introduced substance is introduced by these methods.
A method and apparatus capable of efficiently introducing genes such as DNA and RNA, proteins such as enzymes and antibodies, or chemicals such as pharmaceuticals into cells, and cells obtained by these are bio-related in medicine, pharmacy, agriculture, etc. It will be a very useful research and production tool in the field.

細胞内導入物質を細胞内に取り込ませる方法としてよく知られているものに、エレクトロポレーション法がある(例えば、非特許文献1参照)。この方法は遺伝子と細胞を懸濁した溶液に高電圧をパルス状にかけ、溶液中に含まれる遺伝子を細胞内に取り込ませる方法である。この方法は適用範囲が広く遺伝子導入効率が高い方法ではあるが、細胞の致死率が高い欠点を有する。   An electroporation method is well known as a method for incorporating intracellularly introduced substances into cells (for example, see Non-Patent Document 1). In this method, a high voltage is applied in a pulsed manner to a solution in which a gene and cells are suspended, and the gene contained in the solution is taken into the cell. Although this method is a method with a wide range of application and high gene transfer efficiency, it has a drawback of high cell lethality.

また、細胞内へ物質を入れる方法としてパーティクルガンがある(例えば、特許文献1参照)。この方法は遺伝子を付着させた金、タングステンのような微粒子を細胞に打ち込む方法である。この方法は微粒子が当たった細胞に対しては高い導入効率を示すが、対象物が多数の細胞からなる場合、微粒子の当たらないものが生じるため、全体として導入効率が上がりにくい欠点がある。また、細胞内に微粒子が蓄積するため細胞への影響が避けられない欠点も有する。   Further, there is a particle gun as a method for putting a substance into a cell (for example, see Patent Document 1). This method is a method of implanting fine particles such as gold or tungsten with a gene attached thereto into cells. This method shows high introduction efficiency for cells that have been exposed to fine particles. However, when the target consists of a large number of cells, there is a drawback that the introduction efficiency is difficult to increase as a whole because some of the cells are not exposed to fine particles. Moreover, since fine particles accumulate in the cells, there is a disadvantage that the influence on the cells is unavoidable.

液体を高速でスプレーする方法にエレクトロスプレー法がある。このエレクトロスプレー法は、スプレー用のチューブに高電圧を印加することでチューブ先端に電荷を集め、その電荷が集まったチューブ先端部分に液体を通すことにより、液体を帯電した微細な液滴となし、標的細胞に対して高速でスプレーする方法である。なお、この方法は、質量分析のイオン化法等として使用されている方法である(例えば、非特許文献2,3参照)。   There is an electrospray method as a method of spraying a liquid at a high speed. In this electrospray method, a high voltage is applied to the spray tube to collect charges at the tip of the tube, and the liquid is passed through the tube tip where the charge is collected to form fine droplets that charge the liquid. This is a method of spraying the target cells at high speed. This method is a method used as an ionization method for mass spectrometry (see, for example, Non-Patent Documents 2 and 3).

このエレクトロスプレーを利用した遺伝子導入法の一つとして、パーティクルガンと称されるものがある。この方法は、キャピラリーの先端を通過させる際にパーティクルを含む懸濁液に高電圧を印加し、細胞にスプレーする方法である。(例えば、特許文献2参照)。この方法は、細胞内導入物質を付着させたパーティクル、または細胞内導入物質とパーティクルを含む混合液をエレクトロスプレーで加速する方法である。しかしながら、細胞内導入物質を変更しようとした場合、懸濁液の通液系をその都度洗浄置換する必要があり、煩雑かつ長い操作時間を要するという問題を抱える。また、細胞内導入物質を含んだ懸濁液をスプレーするため、装置内部が汚染される危険性もある。   One of gene transfer methods using this electrospray is called particle gun. In this method, a high voltage is applied to a suspension containing particles when passing through the tip of a capillary, and the cells are sprayed. (For example, refer to Patent Document 2). This method is a method of accelerating, by electrospray, particles to which an intracellular introduction substance is adhered or a mixed liquid containing the intracellular introduction substance and particles. However, when changing the substance to be introduced into the cell, it is necessary to wash and replace the liquid flow system of the suspension each time, and there is a problem that a complicated and long operation time is required. Moreover, since the suspension containing the intracellular introduction substance is sprayed, there is a risk that the inside of the apparatus is contaminated.

これら従来法の欠点である煩雑な処理を必要としない方法として、エレクトロスプレーする液体に細胞内導入物質を含まない液体を用いる方法を我々は報告している。この方法は、細胞内導入物質との接触下、細胞に細胞内導入物質を含まない液体をエレクトロスプレーするか、細胞に細胞内導入物質を含まない液体をエレクトロスプレーした後、該細胞と細胞内導入物質と接触させることにより、細胞内導入物質を細胞内に取り込ませる方法である。
この方法は、細胞内導入物質を含む液体をエレクトロスプレーする場合のように、細胞内導入物質の種類を替えるたびに送液ラインを洗浄置換する必要がなくなるので、細胞内導入物質の導入操作を大幅に簡略化でき、しかも多種類の細胞内導入物質を連続的に細胞に導入できる特徴を有する。しかしながら、標的細胞の細胞膜性状やエレクトロスプレーされた液滴量の違いによって細胞間で導入むらが生じる問題があり、導入効率をより高めるためにはさらなる改良の余地を残す。
As a method that does not require complicated processing, which is a disadvantage of these conventional methods, we have reported a method using a liquid that does not contain an intracellular introduction substance as the liquid to be electrosprayed. In this method, the cell is electrosprayed with a liquid that does not contain the intracellular introduction substance in contact with the intracellular introduction substance, or the cell is electrosprayed with a liquid that does not contain the intracellular introduction substance. In this method, the intracellularly introduced substance is taken into the cell by contacting with the introduced substance.
This method eliminates the need to wash and replace the liquid supply line each time the type of intracellular introduction material is changed, as in the case of electrospraying a liquid containing an intracellular introduction material. It has the feature that it can be greatly simplified and many types of intracellular introduction substances can be continuously introduced into cells. However, there is a problem that uneven introduction occurs between cells depending on the cell membrane properties of the target cells and the amount of electrosprayed droplets, and there is room for further improvement in order to further increase the introduction efficiency.

また、従来の、細胞内導入物質の細胞内導入方法や装置は、煩雑な操作や大型の装置を要するものであり、操作の簡略化や装置の小型化が進んでおらず、その点でも改良が期待されている。   In addition, conventional methods and devices for introducing intracellularly introduced substances into the cell require complicated operations and large-scale devices, and the simplification of operations and miniaturization of the devices have not progressed. Is expected.

米国特許第4945050号明細書US Pat. No. 4,945,050 米国特許第6093557号明細書US Pat. No. 6,093,557 E. Neumann, M.Schaefer-Ridder, Y. Wang P.H. Hofschneider, EMBO J.1982, vol.1, p841-845.E. Neumann, M. Schaefer-Ridder, Y. Wang P.H.Hofschneider, EMBO J. 1982, vol.1, p841-845. J. B. Fenn, M. Mann, C. K. Meng, S. F. Wong, C. M. Whitehouse, Science, 1989, vol.246, p64-71.J. B. Fenn, M. Mann, C. K. Meng, S. F. Wong, C. M. Whitehouse, Science, 1989, vol.246, p64-71. Z. Takats, J. M. Wiseman, B. Gologan, R. G. Cooks, Science, 2004, vol.306, p471-473.Z. Takats, J. M. Wiseman, B. Gologan, R. G. Cooks, Science, 2004, vol. 306, p471-473.

本発明の課題は、エレクトロスプレーを用いて細胞に細胞内導入物質を高効率かつ簡便に導入できる方法および装置、並びにそれらによって得られた細胞を提供することにある。さらには、多数の細胞に均一に導入できる方法を提供することである。また、さらには、小型で安全性の高い使いやすいエレクトロスプレー装置を提供することにある。   The subject of this invention is providing the method and apparatus which can introduce | transduce an intracellular introduction | transduction substance into a cell using electrospray highly efficiently and simply, and the cell obtained by them. Furthermore, it is providing the method which can be uniformly introduce | transduced into many cells. Furthermore, it is providing the electrospray apparatus which is small and highly safe and is easy to use.

本発明者は、細胞内導入物質を細胞に高効率かつ簡便に導入できるエレクトロスプレーを用いた方法および装置について鋭意検討した結果、細胞内導入物質との接触下で細胞に、細胞内導入物質を含まない液体をエレクトロスプレーする方法、細胞に対して細胞内液との浸透圧の差の絶対値が50mOsm/kg以上ある低張性の水系溶媒に0.5〜120分間侵漬する前処理方法、およびこれらの方法を容易に実施できるように工夫した装置を用いることによって、細胞内導入物質を細胞内に効率的に導入できる事を見出し、本発明を完成させるに至った。
すなわち、本発明は以下の(1)〜(6)に示す細胞内導入物質の細胞内への導入方法およびその方法を用いた装置、並びにそれらによって細胞内導入物質を導入した細胞に関する。
(1)細胞を、細胞内液よりも浸透圧が低くかつその差の絶対値が50mOsm/kg以上ある水系溶媒に0.5〜120分間浸漬した後、細胞内導入物質との接触下で細胞に、細胞内導入物質を含まない液体をエレクトロスプレーすることを特徴とする、細胞内導入物質の細胞内導入方法。
(2)細胞内導入物質が遺伝子である、(1)に記載の細胞内導入物質の細胞内導入方法。
(3)筐体内部に収納された電気的制御機構を有する昇圧回路を用いて、エレクトロスプレーする液体に電圧を印加する、(1)に記載の細胞内導入物質の細胞内導入方法。
(4)筐体内部に収納された液体用タンクに貯蔵した液体を定量的に採取し、細胞にエレクトロスプレーする、(1)に記載の細胞内導入物質の細胞内導入方法。
(5)(1)〜(4)の何れか一項に記載の方法を用いた細胞内導入物質の細胞内導入装置。
(6)(1)〜(4)の何れか一項に記載の方法で細胞内導入物質を導入した細胞。
As a result of intensive studies on a method and an apparatus using an electrospray that can introduce an intracellularly introduced substance into cells with high efficiency and ease, the inventor introduced an intracellularly introduced substance into a cell in contact with the intracellularly introduced substance. A method of electrospraying a liquid that does not contain, a pretreatment method of immersing in a hypotonic aqueous solvent having an absolute value of a difference in osmotic pressure from the intracellular fluid of 50 mOsm / kg or more for 0.5 to 120 minutes. And by using an apparatus devised so that these methods can be easily carried out, it has been found that an intracellularly introduced substance can be efficiently introduced into cells, and the present invention has been completed.
That is, the present invention relates to a method for introducing an intracellularly introduced substance into cells shown in the following (1) to (6), a device using the method, and a cell into which the intracellularly introduced substance is introduced.
(1) Cells are immersed in an aqueous solvent having an osmotic pressure lower than that of the intracellular fluid and an absolute value of 50 mOsm / kg or more for 0.5 to 120 minutes, and then the cells are brought into contact with the intracellularly introduced substance. And a method of introducing an intracellularly introduced substance into a cell, comprising electrospraying a liquid that does not contain the intracellularly introduced substance.
(2) The method for intracellularly introducing an intracellularly introduced substance according to (1), wherein the intracellularly introduced substance is a gene.
(3) The method for intracellularly introducing an intracellularly introduced substance according to (1), wherein a voltage is applied to the liquid to be electrosprayed using a booster circuit having an electrical control mechanism housed in the housing.
(4) The method for intracellularly introducing an intracellularly introduced substance according to (1), wherein the liquid stored in a liquid tank housed inside the housing is quantitatively collected and electrosprayed onto the cells.
(5) An intracellular introduction device for an intracellular introduction substance using the method according to any one of (1) to (4).
(6) A cell into which an intracellularly introduced substance is introduced by the method according to any one of (1) to (4).

本発明により、細胞内導入物質を細胞内に取り込ませる際、高効率で細胞内導入物質を細胞内に導入することが可能になる。さらに、操作が簡単になるとともに安全で使用しやすい小型装置が可能になる。また、小型化することで、これまで不均一になりやすかったスプレー上の問題も克服される。すなわち、本発明により、細胞内導入物質、例えば遺伝子のような高分子量の生体物質を、高い導入効率でしかも安全かつ簡便に細胞内に導入することが可能になる。また、本発明はこれまでのエレクトロスプレーを利用する細胞内への物質導入法の利点も同時に有し、高価な金属微粒子や破裂板が必要でなく、1回あたりの処理費用が下がる。さらにはスプレーする液体の交換等が必要でなくなるため、多種類の遺伝子を多種類の細胞に連続的に短時間で導入することが可能となる。   According to the present invention, when an intracellularly introduced substance is taken into a cell, the intracellularly introduced substance can be introduced into the cell with high efficiency. Furthermore, it is possible to realize a small device that is easy to operate and safe and easy to use. In addition, the miniaturization overcomes the spraying problems that were previously likely to be non-uniform. That is, according to the present invention, it is possible to introduce an intracellular introduction substance, for example, a high molecular weight biological substance such as a gene into the cell with high introduction efficiency and safely and simply. In addition, the present invention has the advantages of the conventional method for introducing a substance into a cell using electrospray, and does not require expensive metal fine particles or a rupturable plate, and the processing cost per time is reduced. Furthermore, since it is not necessary to exchange the liquid to be sprayed, it becomes possible to continuously introduce many kinds of genes into many kinds of cells in a short time.

以下本発明の実施形態について詳細に説明する。
本発明は、特定条件下で細胞を処理した後、細胞内導入物質との接触下、細胞に対して細胞内導入物質を含まない液体をエレクトロスプレーすることを特徴とする、細胞内導入物質の細胞内導入方法およびその方法を用いた装置、並びにそれらによって得られた細胞に関するものである。また、本発明で使用するエレクトロスプレーは、例えば、高電圧を印加したチューブの先端部分より液体を放出させることによって液体を帯電させ、その表面電荷の反発によって、液体が微細な液滴となり噴霧される現象を利用したものである。
Hereinafter, embodiments of the present invention will be described in detail.
The present invention relates to an intracellularly introduced substance characterized by electrospraying a cell free of an intracellularly introduced substance on a cell in contact with the intracellularly introduced substance after treating the cell under specific conditions. The present invention relates to an intracellular introduction method, a device using the method, and cells obtained by the method. The electrospray used in the present invention, for example, charges the liquid by discharging the liquid from the tip of the tube to which a high voltage is applied, and the liquid is sprayed as fine droplets by repulsion of the surface charge. This phenomenon is used.

細胞内導入物質の共存下、細胞に液体をエレクトロスプレーする場合の実施形態を模式図1に示す。細胞(Cell)と細胞内導入物質(Material A)が共存している。ここに液体(Material B)をエレクトロスプレーする。この時、細胞内浸透圧αと周りの液体の浸透圧βとの差が50mOsm/kg以上ある低張性の水系溶媒(低張液)に細胞を0.5〜120分間浸漬する処理を行う。次いで、細胞内導入物質との接触下、例えば、細胞内導入物質を含む溶液との接触下で細胞に細胞内導入物質を含まない液体をエレクトロスプレーする。これにより細胞内導入物質が導入された細胞(Material A in Cell)が得られる。このように細胞をあらかじめ浸透圧差のある低張液に浸漬することで高い効率で物質を細胞内に導入することが可能になる。
すなわち、細胞内との浸透圧差に基づいて細胞外から水分が流れ込み、これによって細胞が膨張して細胞膜にストレスが掛かり、この状態でエレクトロスプレーされた液体が細胞にあたることで、浸透圧差に基づく前処理を行っていない場合に比べて細胞に一過性の穴が開きやすくなり、細胞内導入物質の細胞内への導入効率が大幅に向上するものと予想される。
FIG. 1 shows an embodiment in which a liquid is electrosprayed on cells in the presence of a substance introduced into the cell. Cells (Cell) and intracellularly introduced substances (Material A) coexist. Electrospray liquid (Material B) here. At this time, the cells are immersed for 0.5 to 120 minutes in a hypotonic aqueous solvent (hypotonic solution) in which the difference between the intracellular osmotic pressure α and the osmotic pressure β of the surrounding liquid is 50 mOsm / kg or more. . Next, the cell is electrosprayed with a liquid not containing the intracellular introduction substance in contact with the intracellular introduction substance, for example, in contact with a solution containing the intracellular introduction substance. As a result, cells (Material A in Cell) into which the intracellular introduction substance has been introduced are obtained. Thus, by immersing the cells in a hypotonic solution having a difference in osmotic pressure in advance, the substance can be introduced into the cells with high efficiency.
That is, moisture flows from outside the cell based on the osmotic pressure difference with the inside of the cell, which causes the cell to expand and stress the cell membrane, and the electrosprayed liquid hits the cell in this state. Compared to the case where the treatment is not performed, a transient hole is easily opened in the cell, and the introduction efficiency of the intracellular introduction substance into the cell is expected to be greatly improved.

細胞浸漬用に使用する低張液は、細胞内液との浸透圧差が50mOsm/kg以上ある低張液、より好ましくは100〜300mOsm/kgの範囲にある低張液に浸漬すればよい。浸漬時間は0.5〜120分間、より好ましくは1〜30分間である。なお、処理時間は細胞の種類および状態、または低張液に含まれる溶質の種類および濃度等の条件に基づいて選択すればよいが、浸透圧差が大きい溶液を用いて短時間処理するよりも、100〜300mOsm/kgの範囲にある溶液に、1〜30分間浸積し細胞を穏やかに膨潤させる方法をとることが、物質導入後の細胞生残率を高める上で特に好ましい。なお、処理時間が0.5分間を下回ると細胞内導入物質の導入促進効果が期待できず、120分を超えると浸透圧差によって死滅する細胞数が増えるので処理効率が下がる。   The hypotonic solution used for cell immersion may be immersed in a hypotonic solution having an osmotic pressure difference with the intracellular solution of 50 mOsm / kg or more, more preferably in the range of 100 to 300 mOsm / kg. The immersion time is 0.5 to 120 minutes, more preferably 1 to 30 minutes. The treatment time may be selected based on conditions such as the type and state of the cells, or the type and concentration of the solute contained in the hypotonic solution, but rather than treating for a short time using a solution with a large osmotic pressure difference, In order to increase the cell survival rate after substance introduction, it is particularly preferable to immerse the cells in a solution in the range of 100 to 300 mOsm / kg for 1 to 30 minutes to gently swell the cells. If the treatment time is less than 0.5 minutes, the effect of promoting the introduction of the intracellularly introduced substance cannot be expected. If the treatment time exceeds 120 minutes, the number of cells that die due to the osmotic pressure difference increases, and the treatment efficiency is lowered.

本発明において細胞内に導入する物質は特に限定されるものではないが、特に有用性が高い例を示すとすれば遺伝子が挙げられる。具体的にはDNA若しくはRNA、またはこれらの類似化合物、誘導体が挙げられる。これらはプラスミド、ファージ、ウイルス、ウイロイド、オリゴDNA、オリゴRNA、マイクロRNA等の形態で提供される。塩基配列の大きさは特に断りがない。塩基は二本鎖、一本鎖どちらでもかまわない。
また、本発明において遺伝子より小さな物質は一般的により容易に取り込ませることができる。その様な例としては蛋白、ペプチド、糖、脂質、農薬、抗菌剤、金属イオン、蛍光標識試薬、同位体標識試薬等が挙げられる。これらの物質を所定の濃度になるように水やバッファーで希釈し使用すれば良い。
In the present invention, the substance to be introduced into the cell is not particularly limited, and a gene is mentioned as an example having particularly high utility. Specific examples thereof include DNA or RNA, and similar compounds and derivatives thereof. These are provided in the form of a plasmid, phage, virus, viroid, oligo DNA, oligo RNA, micro RNA and the like. The size of the base sequence is not particularly noted. The base may be either double-stranded or single-stranded.
In the present invention, a substance smaller than a gene can generally be more easily incorporated. Examples thereof include proteins, peptides, sugars, lipids, agricultural chemicals, antibacterial agents, metal ions, fluorescent labeling reagents, isotope labeling reagents and the like. These substances may be used by diluting with water or a buffer so as to have a predetermined concentration.

エレクトロスプレーする液体は、細胞内導入物質を含んでおらず、細胞に悪影響を与えない取り扱いやすい液体であれば何れでもよい。その意味で水または水溶液が好ましい。水はイオン交換水、蒸留水、滅菌水の形で使用できる。また、水溶液は金属イオン水溶液、有機溶媒水溶液、高分子水溶液、培地、平衡緩衝液であることが好ましい。
本発明では印加する電圧が高いため、一般にイオン交換水、蒸留水、滅菌水のような電解質を含まない導電性が低い液体でも電気抵抗による電位低下の影響が小さいので、電解質を含む導電性の高い液体と同様に使用できる。また、細胞内導入物質を含まない液体を使用するので、タンクに液体を貯蔵し、そこから液体を必要量採取しながら連続的にエレクトロスプレーすることが可能となる。
The liquid to be electrosprayed may be any liquid that does not contain an intracellularly introduced substance and is easy to handle without adversely affecting the cells. In that sense, water or an aqueous solution is preferable. Water can be used in the form of ion exchange water, distilled water, or sterilized water. The aqueous solution is preferably a metal ion aqueous solution, an organic solvent aqueous solution, a polymer aqueous solution, a medium, or an equilibrium buffer.
In the present invention, since the voltage to be applied is high, even in the case of a low-conductivity liquid that does not contain an electrolyte, such as ion-exchanged water, distilled water, or sterilized water, the effect of potential drop due to electrical resistance is small, so that the conductivity containing the electrolyte Can be used as well as expensive liquids. In addition, since a liquid that does not contain an intracellular introduction substance is used, it is possible to store the liquid in a tank and continuously perform electrospray while collecting a necessary amount of liquid from the tank.

細胞に満遍なく細胞内導入物質を取り込ませるようにするためにはエレクトロスプレーするチューブを可動式にし、装置全体を小型化することが望ましい。しかしながら、高電圧ケーブルを用いてチューブとの接続を図ろうとする場合、耐電性を有する厚く被覆されたケーブルを用いる必要性があるため、ケーブル自身の重量が大きくなり操作性を損なう。また、劣化に伴う感電、火災の危険性もある。
この問題の解決法として、高電圧を印加する昇圧部とチューブをケーブルで接続するような構造ではなく、高電圧を印加する昇圧部をスプレー装置内部に内蔵する構造を採用する。つまり、エレクトロスプレー用のチューブや高電圧印加のための昇圧機構を筐体内部に一体的に収納した装置を用いる。このように高電圧を印加する昇圧部を筐体内部に収納させた構造にすることでケーブルの長さを大幅に短縮でき、スプレー装置が軽量化され、使用者がケーブルに直接触れることもなくなる。これにより極めて簡便にかつ安全に多数の細胞に対して満遍なくエレクトロスプレーすることが可能となる。
一方、電源の供給は低電圧のケーブルを用いて行うこともできるが、筐体内部に電源用の電池を収納させることによって、安全性と操作性をさらに高めることができる。電池の種類は特にこだわらない。また、ケーブルはエレクトロスプレーするチューブ部分のみならず、流露配管やタンクに接続することもできる。流路配管やタンクにケーブルをつないだ構造で使用すると、タンク部分も高電圧になり危険性を帯びることになるが、非導電性のプラスチック等でできた絶縁性の筐体を使用することなどでその問題を回避できる。
In order to allow the cells to uniformly take up the substance introduced into the cell, it is desirable to make the electrospray tube movable and to reduce the size of the entire apparatus. However, when attempting to connect to the tube using a high-voltage cable, it is necessary to use a thickly coated cable having electric resistance, which increases the weight of the cable itself and impairs operability. There is also a risk of electric shock and fire due to deterioration.
As a solution to this problem, a structure in which a boosting unit for applying a high voltage is built in the spray device is employed instead of a structure in which a boosting unit for applying a high voltage and a tube are connected by a cable. That is, an apparatus in which an electrospray tube and a booster mechanism for applying a high voltage are integrally housed in a housing is used. In this way, the structure in which the booster that applies a high voltage is housed in the housing can greatly reduce the length of the cable, the weight of the spray device is reduced, and the user does not directly touch the cable. . Thereby, it becomes possible to perform electrospray uniformly on a large number of cells very simply and safely.
On the other hand, power can be supplied using a low-voltage cable, but safety and operability can be further improved by storing a battery for power in the housing. The type of battery is not particular. In addition, the cable can be connected not only to a tube portion to be electrosprayed but also to a dew pipe or a tank. If the cable is connected to the flow path piping or tank, the tank part will be at high voltage and may be dangerous, but use an insulating housing made of non-conductive plastic, etc. Can avoid the problem.

図2に本発明で使用する装置の模式図を示す。エレクトロスプレー装置の筐体内部に高電圧を発生させる昇圧回路1を有している。また、エレクトロスプレーする液体が入ったタンク2も内部にあり、昇圧回路と接続している。昇圧回路の電源は電池3より供給されている。すべて筐体4の内部にあり、筐体内部の高電圧部は絶縁材料で絶縁されている。本発明で使用する絶縁材料は特に制限はないが、耐衝撃性を有しているプラスチックが好ましい。筐体にはフェノール樹脂、メラミン樹脂、ユリア樹脂、アクリル樹脂、エポキシ樹脂、ポリオレフィン樹脂、スチレン系樹脂、塩化ビニル樹脂、ナイロン樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリアセタール樹脂、フッ素系樹脂等が使用出来る。この筐体を絶縁物で保護するのはスプレー装置を手に持って使用する場合に、使用者を感電から保護するためで、金属で筐体を作成する場合、内部の高電圧部と絶縁して作成し、好ましくは筐体をグランド電位にすることである。
タンク2はジョイント5を通してチューブ6に液体を供給できるようになっている。高電圧はチューブ6先端に印加されればよいため、昇圧回路からの高電圧の印加場所はジョイント5、チューブ6でもかまわない。
内部の液体を介し高電圧が懸かっているチューブ6、タンク2、ジョイント5の筐体との接続は必ず絶縁されていなければならない。そのためには、高電圧を印加する場所以外は絶縁材料で形成されていることが好ましく、ガラス、フェノール樹脂、メラミン樹脂、ユリア樹脂、アクリル樹脂、エポキシ樹脂、ポリオレフィン樹脂、スチレン系樹脂、塩化ビニル樹脂、ナイロン樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリアセタール樹脂、フッ素系樹脂、ゴム、シリコンゴム等が使用出来る。
FIG. 2 shows a schematic diagram of an apparatus used in the present invention. A booster circuit 1 for generating a high voltage is provided inside the housing of the electrospray apparatus. There is also a tank 2 containing a liquid to be electrosprayed, which is connected to a booster circuit. The power for the booster circuit is supplied from the battery 3. All are inside the housing 4 and the high voltage portion inside the housing is insulated with an insulating material. The insulating material used in the present invention is not particularly limited, but a plastic having impact resistance is preferable. For the casing, phenol resin, melamine resin, urea resin, acrylic resin, epoxy resin, polyolefin resin, styrene resin, vinyl chloride resin, nylon resin, polycarbonate resin, polyacetal resin, fluorine resin, or the like can be used. The case is protected with an insulator to protect the user from electric shock when the spray device is held in hand. When the case is made of metal, it must be insulated from the internal high voltage part. Preferably, the casing is set to the ground potential.
The tank 2 can supply liquid to the tube 6 through the joint 5. Since the high voltage only needs to be applied to the tip of the tube 6, the joint 5 or the tube 6 may be applied to the high voltage from the booster circuit.
The connection of the tube 6, the tank 2 and the joint 5 to which the high voltage is applied via the internal liquid must be insulated. For this purpose, it is preferably formed of an insulating material except where high voltage is applied. Glass, phenol resin, melamine resin, urea resin, acrylic resin, epoxy resin, polyolefin resin, styrene resin, vinyl chloride resin Nylon resin, polycarbonate resin, polyacetal resin, fluorine resin, rubber, silicon rubber, etc. can be used.

昇圧回路1を用いて作る電圧は細胞との距離、チューブの大きさ、エレクトロスプレーする液体の流量や性状等から最適値を求めて決めれば良く、チューブ先端の液体と細胞との電位差で0.1kV〜100kVが好ましく、1kV〜20kVの範囲がより好ましい。チューブに印加する電圧の極性は正負どちらでも良い。
昇圧回路が供給する電流は250μA以下であることが好ましく、100μA以下であることがより好ましい。250μAを超えると、昇圧回路を大きくしなければならず、装置の小型化がしにくくなる。また、使用者の感電事故の危険性も高まることになるので好ましくない。
The voltage generated by using the booster circuit 1 may be determined by obtaining an optimum value from the distance from the cell, the size of the tube, the flow rate and properties of the liquid to be electrosprayed, and the potential difference between the liquid at the tip of the tube and the cell is 0. 1 kV to 100 kV is preferable, and a range of 1 kV to 20 kV is more preferable. The polarity of the voltage applied to the tube may be positive or negative.
The current supplied by the booster circuit is preferably 250 μA or less, and more preferably 100 μA or less. If it exceeds 250 μA, the booster circuit must be enlarged, and it is difficult to reduce the size of the device. Moreover, since the danger of an electric shock accident of a user will also increase, it is not preferable.

内部のタンク2の容量は特に限定されない。使用しやすいのは1〜300mLである。タンクの材料は特に指定はないが、タンクを通して液体に電圧を印加しようとする場合、タンク材料は導電体であり、かつ、コンタミネーション防止の為に加熱滅菌できる材料であることが望ましい。
そのような目的に合致する材質としてはカーボン混合導電得製樹脂、金属が使用しやすい。タンクとチューブのジョイント5は材料、形状に特に制限がない。ルアーロック型、スウェージロック型、ワンタッチジョイント型など適宜選択すればよい。
チューブ6の材料は特に制限はないが、昇圧回路との接続を行う場合は金属のような導電材料が好ましく、タンクと同様に加熱滅菌できる耐熱材料がより好ましい。チューブ先端の内径は1μm〜10mmが好ましく、0.1mm〜5mmがより好ましい。チューブ先端が小さい場合には流路が狭くなり過ぎるため通液に過大な圧力を要することとなり好ましくない。一方、内径が大きい場合には、液体が微細化しない場合がある。タンク2からチューブ6への送液は、毛細管現象、シリンダ、ポンプ等を使用して送液すれば良い。送液する液体は定量的にタンクから採取しチューブに送液することが好ましい。流量調節にはバルブや配管の太さのような機械的な構造、または可変抵抗のような電気的な構造で調節すればよい。
The capacity of the internal tank 2 is not particularly limited. 1-300 mL is easy to use. The material of the tank is not particularly specified, but when applying a voltage to the liquid through the tank, the tank material is preferably a conductor and a material that can be heat sterilized to prevent contamination.
Carbon mixed conductive resin and metal are easy to use as materials meeting such purposes. There are no particular limitations on the material and shape of the tank / tube joint 5. A luer lock type, a swage lock type, a one-touch joint type, etc. may be selected as appropriate.
The material of the tube 6 is not particularly limited, but when connecting to the booster circuit, a conductive material such as metal is preferable, and a heat-resistant material that can be sterilized by heating as in the tank is more preferable. The inner diameter of the tube tip is preferably 1 μm to 10 mm, more preferably 0.1 mm to 5 mm. When the tube tip is small, the flow path becomes too narrow, and an excessive pressure is required for liquid passage. On the other hand, when the inner diameter is large, the liquid may not be refined. Liquid feeding from the tank 2 to the tube 6 may be carried out using a capillary phenomenon, a cylinder, a pump or the like. The liquid to be fed is preferably collected quantitatively from the tank and sent to the tube. The flow rate may be adjusted by a mechanical structure such as the thickness of a valve or pipe, or an electric structure such as a variable resistance.

図3にシリンダ型の送液構造を示す。タンク2の内部に液を押し出すシリンダ7がある。このシリンダは、ねじ付シャフト8により移動してタンク内の液を押し出す。このシャフトはモーター9により駆動する。モーター9は電源3から電力を供給されるが、この電源は同時に昇圧回路1に電力を供給する。この電力の供給は筐体4に付いたスイッチ10により、ON、OFF制御される。このスイッチによりタンク内の液体の供給と昇圧が同時に行える。また、スイッチをグランド電位の端子として兼用することも可能である。
スイッチの位置はスプレー部に接続しなくても問題なく、フットスイッチのようにして手操作が必要ないようにもできる。筐体4にスイッチを有する場合もその位置は自由に選択できる。高電圧がかかる部分はチューブ6であり、それ以外は電圧がかからず、手に持つことが可能である。チューブ先端と細胞との距離は適宜選択すればよい。使用しやすいのは5mm〜2000mmである。
FIG. 3 shows a cylinder type liquid feeding structure. Inside the tank 2 is a cylinder 7 for pushing out the liquid. This cylinder is moved by the threaded shaft 8 to push out the liquid in the tank. This shaft is driven by a motor 9. The motor 9 is supplied with power from the power source 3, and this power source simultaneously supplies power to the booster circuit 1. This power supply is ON / OFF controlled by a switch 10 attached to the housing 4. With this switch, the liquid in the tank can be supplied and boosted at the same time. It is also possible to use the switch as a ground potential terminal.
There is no problem with the position of the switch even if it is not connected to the spray section, and it is possible to eliminate the need for manual operation like a foot switch. Even when the housing 4 has a switch, its position can be freely selected. The portion to which the high voltage is applied is the tube 6, and no voltage is applied to the other portion, and it can be held in the hand. What is necessary is just to select the distance of a tube front-end | tip and a cell suitably. It is 5 mm to 2000 mm that is easy to use.

図4に本発明の装置の外観図を示す。細胞にエレクトロスプレーする液体の量は細胞の量、形状、種類に応じて変えればよい。またこれに伴い、エレクトロスプレーする時間も変化する。流量は特に制限がないが10〜1000μL/minの範囲が使用しやすい。   FIG. 4 shows an external view of the apparatus of the present invention. The amount of the liquid electrosprayed on the cells may be changed according to the amount, shape, and type of the cells. Along with this, the time for electrospraying also changes. The flow rate is not particularly limited, but a range of 10 to 1000 μL / min is easy to use.

本発明で使用する細胞は特に制限がなく、動物、植物、または微生物の細胞何れでもよい。また、細胞だけでなく組織、臓器、生体であってもかまわない。また、卵、***、花粉、胞子、種子のような生殖細胞類を対象にすることも当然可能である。エレクトロスプレーされる細胞は電位差を維持できるようにグランド電位になるようにした方が良い。   The cell used in the present invention is not particularly limited, and may be any animal, plant, or microbial cell. Further, not only cells but also tissues, organs, and living bodies may be used. Naturally, germ cells such as eggs, sperm, pollen, spores, and seeds can be targeted. The cells to be electrosprayed should have a ground potential so that the potential difference can be maintained.

次に具体的な細胞内導入物質の細胞内への導入操作について説明する。
細胞は細胞内と等圧である培地を除き、細胞を露出する。そこに培地と異なる低浸透圧の水系溶媒(低張液)を加え細胞を浸漬する。所定時間浸漬後、低張液を除き、細胞内導入物質を含んだ水溶液を入れ細胞と接触させる。次いで昇圧回路とタンクを内部に有するエレクトロスプレー装置を使用して、エレクトロスプレーされた液体が全体の細胞に当たるようにチューブを動かす。これで細胞内導入物質の細胞内への導入作業が終了する。
なお、細胞と細胞内導入物質との接触のさせ方については、例えば、細胞内導入物質を含ませた低張液に細胞を所定時間浸漬し、必要に応じ浸透圧を復元した後、細胞に液体をエレクトロスプレーする方法、または、細胞を低張液に所定時間浸漬した後、これに細胞内導入物質を加え、必要に応じ浸透圧を復元した後、液体をエレクトロスプレーする方法等を用いてもよい。これによって、溶媒置換に伴う煩雑な操作を減らすことも可能である。すなわち、付着性の培養動物細胞にDNAを入れる場合、容器の底に付着した細胞以外の成分等を除くためピペットで培地を除去し、その後、容器に細胞内と浸透圧差のあるDNAの水溶液を加え、所定時間経過後、エレクトロスプレー装置により水のエレクトロスプレーを行う。終了後、細胞培養用の培地を加えることで操作は完了する。
Next, a specific operation for introducing a substance to be introduced into a cell will be described.
The cells are exposed except for the medium that is isobaric with the cells. A low osmotic aqueous solvent (hypotonic solution) different from the medium is added to immerse the cells. After soaking for a predetermined time, the hypotonic solution is removed, and an aqueous solution containing an intracellular introduction substance is added and brought into contact with the cells. The tube is then moved using an electrospray device with a booster circuit and tank inside so that the electrosprayed liquid hits the whole cell. This completes the introduction of the intracellularly introduced substance into the cell.
As for how to contact the cells with the intracellular introduction substance, for example, after immersing the cells in a hypotonic solution containing the intracellular introduction substance for a predetermined time and restoring the osmotic pressure as necessary, Using a method of electrospraying a liquid, or a method of electrospraying a liquid after immersing cells in a hypotonic solution for a predetermined time, adding an intracellular introduction substance to this, and restoring osmotic pressure as necessary Also good. As a result, it is possible to reduce complicated operations associated with solvent replacement. That is, when DNA is put into adherent cultured animal cells, the medium is removed with a pipette to remove components other than cells attached to the bottom of the container, and then an aqueous solution of DNA having an osmotic pressure difference between the cell and the container is removed. In addition, after a predetermined time has elapsed, water is electrosprayed by an electrospray apparatus. After completion, the operation is completed by adding a medium for cell culture.

本発明は細胞の種類、導入する物質を変更する場合、エレクトロスプレーする液体を変更する必要がなく、同一の液体で行うことができる。
本発明により高い導入効率で細胞内導入物質、特に遺伝子を細胞内に導入することが可能になる。また、装置内部に昇圧回路とタンクを有することで安全に作業できる。また、作業性も改善する。
In the present invention, when the type of cells and the substance to be introduced are changed, it is not necessary to change the liquid to be electrosprayed, and the same liquid can be used.
The present invention makes it possible to introduce intracellularly introduced substances, particularly genes, into cells with high introduction efficiency. Moreover, it can work safely by having a booster circuit and a tank inside the apparatus. Workability is also improved.

以下、実施例および比較例を以て本発明の内容を詳しく示すが、これらの例のみに本発明は限定されない。
実施例1
Hereinafter, the contents of the present invention will be described in detail with reference to examples and comparative examples, but the present invention is not limited to these examples.
Example 1

1.実験装置
実験に使用した装置を図5に示す。
実験に使用した電源3は乾電池を使用し、3Vを供給する。この3Vを昇圧回路1で+10kVにしてタンク2に接続する。タンク2は導電性プラスチックでできているが高電圧と接触する部分以外は絶縁性のプラスチックで覆われている。タンクの容量は約10mLである。シリンダ7が内部にあり、シャフト8がモーター9により回転することでタンク内の液体はルアーロック型ジョイント5に接続するルアーロックを持つ内径0.1mmのステンレス製チューブ6へ導入される。チューブからの液体のスプレー供給速度は120μL/minである。
2.細胞内導入物質の導入実験
実験装置は上記1の装置を使用した。
細胞内導入物質は緑色蛍光蛋白(GEP)遺伝子組み込みプラスミド(4.7kbp)を使用した。細胞はチャイニーズハムスターの卵巣から生検樹立された繊維芽細胞(CHO細胞)を使用した。35mmデッシュにCHO細胞をα−MEM培地+10%FBSの培地で、COインキュベーター中37℃で培養したものを使用した。
本発明で記載する浸透圧はすべて氷点降下法で測定した結果である。細胞内の浸透圧はその細胞を培養してきた培地の浸透圧と同じとした。使用する上記プラスミッド水溶液の浸透圧と培地の浸透圧との差を細胞の内外の浸透圧差とした。
シャーレ内の培地をピペットで吸出し、シャーレの底に付着する細胞だけをシャーレに残した。そこにプラスミドを水に溶解させた濃度100μg/mLの溶液を100μLシャーレに加えた。この時、細胞内と浸漬するプラスミド溶液の浸透圧差は200mOsm/kg以上あった。浸漬は5分間行った。
浸漬操作を行った後、上記1の装置を使用して滅菌水を+10kV印加した状態で120μL/minの流量でシャーレ内の細胞にエレクトロスプレーを高さ4cmから行った。この時、シャーレ内に均等にスプレーされるように目視で確認しながらスプレー装置を手で移動させながら1分間行った。
その後、シャーレに培地を加え、一晩培養した。蛍光顕微鏡観察により、緑色の蛍光を示す細胞が確認でき、遺伝子導入が確認できた。細胞内への細胞内導入効率である遺伝子の発現した蛍光を示す細胞は4%であった。
蛍光顕微鏡による写真を図6に示す。
1. FIG. 5 shows an apparatus used for the experimental apparatus experiment.
The power source 3 used in the experiment uses a dry cell and supplies 3V. This 3V is raised to +10 kV by the booster circuit 1 and connected to the tank 2. The tank 2 is made of a conductive plastic, but is covered with an insulating plastic except for a portion in contact with a high voltage. The capacity of the tank is about 10 mL. The cylinder 7 is inside, and the shaft 8 is rotated by the motor 9 so that the liquid in the tank is introduced into the stainless steel tube 6 having an inner diameter of 0.1 mm having a luer lock connected to the luer lock joint 5. The liquid spray supply rate from the tube is 120 μL / min.
2. The above-described apparatus 1 was used as an experimental apparatus for introducing an intracellularly introduced substance .
A green fluorescent protein (GEP) gene integration plasmid (4.7 kbp) was used as the intracellular introduction substance. The cells used were fibroblasts (CHO cells) biopsied from Chinese hamster ovaries. A CHO cell cultured in an α-MEM medium + 10% FBS medium at 37 ° C. in a CO 2 incubator was used in a 35 mm dish.
All the osmotic pressures described in the present invention are the results of measurement by the freezing point depression method. The osmotic pressure in the cells was the same as the osmotic pressure of the medium in which the cells were cultured. The difference between the osmotic pressure of the plasmid aqueous solution used and the osmotic pressure of the medium was defined as the osmotic pressure difference inside and outside the cells.
The medium in the petri dish was sucked out with a pipette, and only the cells adhering to the bottom of the petri dish were left in the petri dish. A 100 μg / mL solution in which the plasmid was dissolved in water was added to a 100 μL petri dish. At this time, the difference in osmotic pressure between the intracellular solution and the plasmid solution to be immersed was 200 mOsm / kg or more. Immersion was performed for 5 minutes.
After performing the dipping operation, electrospraying was performed on the cells in the petri dish from a height of 4 cm at a flow rate of 120 μL / min with +10 kV of sterilized water applied using the above device 1. At this time, it was performed for 1 minute while moving the spray device by hand while visually confirming that it was sprayed evenly in the petri dish.
Thereafter, a medium was added to the petri dish and cultured overnight. By observation with a fluorescence microscope, cells showing green fluorescence were confirmed, and gene introduction was confirmed. 4% of the cells showed fluorescence in which the gene, which is the efficiency of introduction into the cell, was expressed.
A photograph taken with a fluorescence microscope is shown in FIG.

実施例2
前記の実施例1と同じ装置を使用して実験を行った。また、エレクトロスプレー操作も同様に行った。ただし、タンクに入っている液体はリン酸緩衝液であるPBSを使用した。本発明で使用するPBSはNaCl8g/L,KCl0.2g/L,NaHPO・12HO2.9g/L,KHPO0.2g/Lの組成からかなる水溶液でpH7.2から7.4の物を使用した。
PBSをエレクトロスプレー後の操作も実施例1と同様に行った。その結果、遺伝子の導入効率は6.5%であった。
Example 2
Experiments were performed using the same apparatus as in Example 1 above. The electrospray operation was performed in the same manner. However, the liquid contained in the tank was PBS, which is a phosphate buffer. The PBS used in the present invention is an aqueous solution having a composition of NaCl 8 g / L, KCl 0.2 g / L, NaHPO 4 · 12H 2 O 2.9 g / L, KH 2 PO 4 0.2 g / L, and pH 7.2 to 7. The thing of 4 was used.
The operation after electrospraying PBS was performed in the same manner as in Example 1. As a result, the gene introduction efficiency was 6.5%.

比較例1
浸透圧の影響
実施例1で使用した細胞、および装置を用いて実験を行った。使用するプラスミドは、リン酸緩衝液PBSに溶かしたものを用いた。培地除去後、このプラスミド溶液を加え、細胞の浸漬を実施例1と同様に行った。この時、細胞内とプラスミド溶液の浸透圧差はなかった。5分浸漬後、実施例1と同様の操作を行った。蛍光顕微鏡観察の結果、蛍光を発する細胞はなく、プラスミドは細胞に導入されていなかった。
Comparative Example 1
Effect of osmotic pressure Experiments were performed using the cells and apparatus used in Example 1. The plasmid used was dissolved in phosphate buffer PBS. After removing the medium, this plasmid solution was added, and the cells were immersed in the same manner as in Example 1. At this time, there was no difference in osmotic pressure between the intracellular and the plasmid solution. After immersion for 5 minutes, the same operation as in Example 1 was performed. As a result of observation with a fluorescence microscope, no cells emitted fluorescence, and no plasmid was introduced into the cells.

比較例2
浸漬時間の影響
実施例1と同じ装置を使用し、同様の操作を行った。ただし、プラスミド溶液を浸漬する時間は10秒にして非常に短時間処理後、エレクトロスプレーを行った。その結果、遺伝子の導入効率は0.7%であった。
Comparative Example 2
Influence of immersion time The same operation was performed using the same apparatus as Example 1. However, the time for dipping the plasmid solution was 10 seconds, and the electrospray was performed after a very short treatment. As a result, the gene introduction efficiency was 0.7%.

比較例3
装置構造の影響
実験装置
実験に使用した装置の構造を図7に示す。
装置はブース11内にスプレー用のチューブ6が固定されている。チューブはブースの外にある昇圧回路1とポンプ12に接続している。昇圧回路の電源はAC100Vから導入される。エレクトロスプレー用のチューブ6は内径0.1mmのステンレス製である。このチューブと昇圧回路は高電圧ケーブルで接続されている。ポンプ12とチューブ6はシリコン製のチューブでつながり、スプレーされる液体が供給される。ジャッキ13によりチューブと細胞の距離を変えることができる。
細胞は実施例1と同様の細胞を使用した。水をエレクトロスプレーする液体として使用し、実施例1と同様の条件で実験操作を行った。その結果、蛍光を発生する細胞は少なく、導入効率は0.4%であった。蛍光顕微鏡写真を図8に示す。
同一面積を観察した蛍光顕微鏡写真においても、本発明の装置を使用するほうが効率よく導入されていることが容易にわかる。
Comparative Example 3
Influence of equipment structure
FIG. 7 shows the structure of the apparatus used in the experimental apparatus experiment.
In the apparatus, a spray tube 6 is fixed in a booth 11. The tube is connected to a booster circuit 1 and a pump 12 outside the booth. The power supply of the booster circuit is introduced from AC100V. The tube 6 for electrospray is made of stainless steel having an inner diameter of 0.1 mm. The tube and the booster circuit are connected by a high voltage cable. The pump 12 and the tube 6 are connected by a silicon tube, and the liquid to be sprayed is supplied. The distance between the tube and the cell can be changed by the jack 13.
The same cells as in Example 1 were used. Using water as a liquid for electrospraying, the experimental operation was performed under the same conditions as in Example 1. As a result, few cells generated fluorescence, and the introduction efficiency was 0.4%. A fluorescence micrograph is shown in FIG.
It can be easily seen from the fluorescence micrographs of the same area that the apparatus of the present invention is introduced more efficiently.

細胞内と浸透圧差のある溶液に浸漬した状態で細胞に液体をエレクトロスプレーする場合の模式図。The schematic diagram in the case of electrospraying a liquid to a cell in the state immersed in the solution with a osmotic pressure difference in the cell. 昇圧回路とタンクを内部に有するエレクトロスプレー装置。An electrospray device having a booster circuit and a tank inside. タンク構造がシリンダ構造であるエレクトロスプレー装置Electrospray device with tank structure of cylinder structure エレクトロスプレー装置外観Electrospray device appearance 装置内部構造と外観Equipment internal structure and appearance 蛍光顕微鏡写真(小型装置によるGFP遺伝子発現)Fluorescence micrograph (GFP gene expression using a small device) 固定式導入装置Fixed introduction device 蛍光顕微鏡写真(固定式装置によるGFP遺伝子発現)Fluorescence micrograph (GFP gene expression by fixed device)

符号の説明Explanation of symbols

1は昇圧回路、2はタンク2、3は電池、4は筐体、5はジョイント、6はチューブ、7はタンク内部のシリンダ、8はねじ付シャフト、9はモーター、10はスイッチ、11はブース、12はポンプ、13はジャッキを示す。   1 is a booster circuit, 2 is a tank 2, 3 is a battery, 4 is a housing, 5 is a joint, 6 is a tube, 7 is a cylinder inside the tank, 8 is a threaded shaft, 9 is a motor, 10 is a switch, 11 is A booth, 12 is a pump, and 13 is a jack.

Claims (6)

細胞を、細胞内液よりも浸透圧が低くかつその差の絶対値が50mOsm/kg以上ある水系溶媒に0.5〜120分間浸漬した後、細胞内導入物質との接触下で細胞に、細胞内導入物質を含まない液体をエレクトロスプレーすることを特徴とする、細胞内導入物質の細胞内導入方法。   The cells are immersed in an aqueous solvent having an osmotic pressure lower than that of the intracellular fluid and an absolute value of 50 mOsm / kg or more for 0.5 to 120 minutes, and then the cells are brought into contact with the intracellular introduction substance. A method for introducing an intracellularly introduced substance into a cell, comprising electrospraying a liquid that does not contain the introduced substance. 細胞内導入物質が遺伝子である、請求項1に記載の細胞内導入物質の細胞内導入方法。   The method for intracellularly introducing an intracellularly introduced substance according to claim 1, wherein the intracellularly introduced substance is a gene. 筐体内部に収納された電気的制御機構を有する昇圧回路を用いて、エレクトロスプレーする液体に電圧を印加する、請求項1に記載の細胞内導入物質の細胞内導入方法。   The method for intracellularly introducing an intracellularly introduced substance according to claim 1, wherein a voltage is applied to the liquid to be electrosprayed using a booster circuit having an electrical control mechanism housed in the housing. 筐体内部に収納された液体用タンクに貯蔵した液体を定量的に採取し、細胞にエレクトロスプレーする、請求項1に記載の細胞内導入物質の細胞内導入方法。   The method for intracellularly introducing an intracellularly introduced substance according to claim 1, wherein the liquid stored in a liquid tank housed inside the housing is quantitatively collected and electrosprayed onto the cells. 請求項1〜4の何れか一項に記載の方法を用いた細胞内導入物質の細胞内導入装置。   The intracellular introduction apparatus of the intracellular introduction substance using the method as described in any one of Claims 1-4. 請求項1〜4の何れか一項に記載の方法で細胞内導入物質を導入した細胞。   The cell which introduce | transduced the intracellular introduction | transduction substance by the method as described in any one of Claims 1-4.
JP2007065011A 2007-03-14 2007-03-14 Method and device for introducing material into cell, and cell obtained by the same Pending JP2008220298A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2007065011A JP2008220298A (en) 2007-03-14 2007-03-14 Method and device for introducing material into cell, and cell obtained by the same

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2007065011A JP2008220298A (en) 2007-03-14 2007-03-14 Method and device for introducing material into cell, and cell obtained by the same

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2008220298A true JP2008220298A (en) 2008-09-25

Family

ID=39839631

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2007065011A Pending JP2008220298A (en) 2007-03-14 2007-03-14 Method and device for introducing material into cell, and cell obtained by the same

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2008220298A (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2010044395A1 (en) * 2008-10-15 2010-04-22 三菱瓦斯化学株式会社 Method for introducing gene into cell, and composition for use in the method
JP2014193141A (en) * 2013-03-29 2014-10-09 Univ Of Tokyo Puncturing device and method
JP2018134008A (en) * 2017-02-20 2018-08-30 日本電信電話株式会社 Lipid bimolecular membrane substrate and manufacturing method thereof
CN115595250A (en) * 2022-04-29 2023-01-13 北京宪胜医疗科技有限公司(Cn) System and method for automatically finishing organoid processing and analysis

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2010044395A1 (en) * 2008-10-15 2010-04-22 三菱瓦斯化学株式会社 Method for introducing gene into cell, and composition for use in the method
US8399256B2 (en) 2008-10-15 2013-03-19 Mitsubishi Gas Chemical Company, Inc. Method for introducing gene into cell, and composition for use in the method
JP5510333B2 (en) * 2008-10-15 2014-06-04 三菱瓦斯化学株式会社 Method for introducing gene into cell and composition used therefor
JP2014193141A (en) * 2013-03-29 2014-10-09 Univ Of Tokyo Puncturing device and method
JP2018134008A (en) * 2017-02-20 2018-08-30 日本電信電話株式会社 Lipid bimolecular membrane substrate and manufacturing method thereof
CN115595250A (en) * 2022-04-29 2023-01-13 北京宪胜医疗科技有限公司(Cn) System and method for automatically finishing organoid processing and analysis

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN1826408B (en) Large volume ex vivo electroporation method
Ozyigit Gene transfer to plants by electroporation: methods and applications
US7927874B2 (en) Method of transferring substance into cell
JP2008220298A (en) Method and device for introducing material into cell, and cell obtained by the same
CN109679844B (en) Flow electroporation device
US11426728B2 (en) Apparatus for high throughput continuous droplet electroporation for delivery of a material, and a method for droplet electroporation using the same
JP6660057B2 (en) Electroporation electrode and foreign substance introduction device
WO2020022198A1 (en) Bubble jetting method, power supply device, and device for jetting bubbles
JP2009136151A (en) Method for transferring substance into cell
WO2009119559A1 (en) Method of gene transfer into cells using electrospray and apparatus therefor
US8673623B2 (en) Apparatus for performing magnetic electroporation
JP6189019B2 (en) Method for introducing selected molecule, apparatus for introducing selected molecule, and cell fusion method
JP2011067176A (en) Introduction of material into animal cell by utilizing pressure change
Marjanovič et al. An experimental system for controlled exposure of biological samples to electrostatic discharges
JP5471003B2 (en) Intracellular introduction method of intracellular introduction substance
JP2010172284A (en) Method for introducing intracellularly introduceable material into cell by electrospraying and device therefor
CN106191123A (en) Use external source single stranded RNA method of marking protein in trichoderma reesei resting spore
JPWO2007132891A1 (en) Intracellular introduction of substances
CN117980476A (en) System and method for applying voltage within a droplet-based system
CN106148411A (en) Use external source single stranded RNA method of marking protein in aspergillus nidulans resting spore
WO2018045617A1 (en) Method for expressing protein in aspergillus niger hypnospores using exogenous single stranded rna
CN112368372A (en) Method for producing transformed cell
Pudasaini Microfluidics based electroporation for inactivation of microorganisms
Antoniu et al. Safety Evaluation of Non—Thermal Atmospheric Pressure Plasma Liquid Treatment
Luthfiyah et al. The quality of Ornamental Japanese Carp (Cyprinus carpio var. Koi) after electroporation as a gene material transfer method