JP2007523601A - サバイビン発現を調整するためのオリゴマー化合物 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明はサバイビン(survivin)の発現を調整するための組成物および方法を提供する。特に本発明はオリゴマー化合物に関し、好ましいオリゴマー化合物はサバイビンをコードする核酸と特異的にハイブリダイズすることができるオリゴヌクレオチドである。本オリゴヌクレオチド化合物はサバイビンの発現を調整することが示されており、本オリゴヌクレオチド化合物の医薬製剤、および癌疾患の治療剤としてのそれらの使用を開示する。
世界中で主要な死亡原因である癌は、ゲノムの不安定化に起因する遺伝子障害によって引き起こされる一群の疾患を含む。全ての癌細胞は、正常な細胞増殖およびホメオスタシスを支配するいくつかの調節経路に欠陥を持つと考えられている。これらの欠陥は、癌細胞に特異的な種々の特徴的能力の獲得をもたらす(HanahanおよびWeinberg,2000,Cell 100,57-70)。癌のこれらの特徴の一つは、進化的に保存された細胞自殺のプログラムであるアポトーシスまたはプログラム細胞死の回避である(Hengartner,2000,Nature 407,770-776)。アポトーシスは、もはや必要でなくなった細胞を除去することにより、胎児発生には不可欠であると共に、細胞産生と細胞除去とを釣り合わせることにより、成人組織のホメオスタシスの維持にも不可欠である。また、感染因子または薬物によって誘発される突然変異またはゲノム損傷などの異常な特質を示す細胞も、この方法によって除去される。悪性細胞では、アポトーシスの阻害により、この細胞監視機構が失われており、それが細胞生存能力の延長をもたらし、細胞形質転換、疾患進行の加速および治療抵抗性の危険を増大させる(EvanおよびVousden,2001,Nature 411,342-348)。したがって、癌を処置するための新しい治療戦略としてアポトーシスの操作が浮上している(Nicholson DW,2000,Nature 407,810-816)。
サバイビンは細胞増殖にとって不可欠であり、有糸***の複数の段階に関与する。サバイビンは、有糸***を細胞***およびアポトーシスと結びつけるいくつかのチェックポイントに関与する。サバイビンは、プログラム細胞死(アポトーシス)を抑制するアポトーシス阻害因子(IAP)遺伝子ファミリーの一員である(図6参照)。サバイビン発現の増加は、結腸直腸癌、膀胱癌、肺癌、乳癌、悪性神経膠腫および血液癌を含むほとんどの一般的ヒト新生物に観察される。サバイビンの発現は、いくつかの癌で、進行した悪性度および侵襲性と相関する。正常な分化組織では検出不能であるか、極めて低レベルにしか存在しないことから、サバイビンはいくつかのヒト癌で好ましい標的になる。
本発明では、サバイビンをコードする核酸分子の機能を調整するためのオリゴマー化合物、特にアンチセンスオリゴヌクレオチドを使用する。前記調整は、最終的には、産生されるサバイビンの量の変化である。ある実施形態では、サバイビンをコードする核酸と特異的にハイブリダイズするアンチセンス化合物を提供することによって、これが達成される。前記調整は、好ましくは、産生される機能的タンパク質数の減少につながるサバイビン発現の阻害である。
のロックト核酸(LNA)である。結合は連結基への接続を表す。典型的には、XはOであり、YはO、SおよびNR(式中、Rは水素またはC1-4-アルキルである)からなる群より独立して選択される。より典型的には、XはOであり、YはO、SおよびNHからなる群より選択される。最も典型的には、XはOであり、YはOである。LNAヌクレオチドの少なくとも1つが3'末端にある実施形態の場合、その位置では、Zは末端基であり、Z*はヌクレオシド間連結部である。LNAヌクレオチドの少なくとも1つが5'末端にある実施形態の場合、その位置では、Zは存在せず、Z*は末端基である。ヌクレオチド配列内部では、Zは存在せず、Z*はヌクレオシド間連結部である。
LNAヌクレオチドの少なくとも1つが3'末端にある実施形態の場合、その位置では、Zは末端基であり、Z*はヌクレオシド間連結部である。LNAヌクレオチドの少なくとも1つが5'末端にある実施形態の場合、その位置では、Zは存在せず、Z*は末端基である。ヌクレオチド配列内部では、Zは存在せず、Z*はヌクレオシド間連結部である。
本発明の一実施形態には、結果として生成するオリゴマー化合物の生物学的液体における安定性を、例えばヌクレアーゼ(エンドヌクレアーゼおよびエキソヌクレアーゼ)に対する耐性の増加などによって増加させるために、標準的DNAまたはRNAオリゴヌクレオチドにLNAモノマーを組み込むことが含まれる。安定性の程度は、使用するLNAモノマーの数、オリゴヌクレオチドにおけるそれらの位置、そして使用するLNAモノマーのタイプに依存するだろう。DNAおよびホスホロチオエートと比較すると、ヌクレオチド分解に対してオリゴヌクレオチドを安定化する能力について、以下の順序を確立することができる:DNA<<ホスホロチオエート〜オキシ-LNA<α-L-LNA<アミノ-LNA<チオ-LNA。
本発明のアンチセンス化合物は、様々な機序によってその治療効果を引き出すことができ、同じ化合物中にこれらの機序のいくつかを合わせ持つ場合もある。あるシナリオでは、標的(プレmRNAまたはmRNA)へのオリゴヌクレオチドの結合が、その標的の適正な機能にとって必要な他の因子(タンパク質、他の核酸など)の結合を妨げる働きをする(すなわち立体障害によって作動する)。例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、スプライシング、ポリアデニル化、細胞内輸送、RNA中のヌクレオシドの転写後修飾、5'末端のキャッピング、翻訳などに関与するトランス作用性因子の認識および結合にとって重要な、プレmRNAまたはmRNA中の配列モチーフに結合し得る。プレmRNAスプラシングの場合、オリゴヌクレオチドとその標的との相互作用の帰結は、望ましくないタンパク質の発現の抑制、望ましいタンパク質をコードする選択的スプライシングを受けたmRNAの生成、またはその両方であり得る。
モノマー合成
LNAモノマー構成単位およびその誘導体を以下の公表された方法およびそこに引用されている文献に従って製造した。
WO 03/095467 A1
D. S. Pedersen,C. Rosenbohm,T. Koch(2002)「Preparation of LNA Phosphoramidites(LNAホスホロアミダイトの製造)」Synthesis 6,802-808.
M. D. Soerensen,L. Kvarnoe,T. Bryld,A. E. Hakansson,B. Verbeure,G. Gaubert,P. Herdewijn,J. Wengel(2002)「α-L-ribo-configured Locked Nucleic Acid (α-l-LNA): Synthesis and Properties(α-L-ribo型ロックト核酸(α-l-LNA):合成および性質)」J. Am. Chem. Soc.,124,2164-2176.
S. K. Singh,R. Kumar,J. Wengel(1998)「Synthesis of Novel Bicyclo[2.2.1] Ribonucleosides: 2'-Amino- and 2'-Thio-LNA Monomeric Nucleosides(新規ビシクロ[2.2.1]リボヌクレオシドの合成:2'-アミノ-および2'-チオ-LNAモノマー型ヌクレオシド)」J. Org. Chem. 1998,63,6078-6079.
C. Rosenbohm,S. M. Christensen,M. D. Srensen,D. S. Pedersen,L. E. Larsen,J. Wengel,T. Koch(2003)「Synthesis of 2'-amino-LNA: a new strategy(2'-アミノ-LNAの合成:新しい戦略)」Org. Biomol. Chem. 1,655-663.
を参照されたい。
無水ヌクレオシド4(C. Rosenbohm,S. M. Christensen,M. D. Soerensen,D. S. Pedersen,L. E. Larsen,J. Wengel,T. Koch(2003)「Synthesis of 2'-amino-LNA: a new strategy(2'-アミノ-LNAの合成:新しい戦略)」Org. Biomol. Chem. 1,655-663)(30.0g,58.1mmol)を、メタノール(1000cm3)とアセトン(1000cm3)の混合液中で、透明な溶液が得られるまで70℃に加熱し、その溶液を室温にした。反応フラスコをアルゴンでフラッシュし、Pd/C(10重量%Pd/炭素、6.2g、5.8mmol)を加えた。その混合物を水素ガス雰囲気(風船)下で激しく撹拌した。23時間後に、そのスラリーをセライトのパッド越しに濾過した。触媒をセライトから除去し、DMF(1000cm3)中で1時間還流した。その熱DMFスラリーをセライトのパット越しに濾過し、有機層を合わせ、減圧下でエバポレートすることにより、ヌクレオチド5を黄色粉末として得た。残留溶媒を高真空ポンプで一晩除去した。
Rf=0.54(5%MeOH/EtOAc,v/v);
ESI-MS m/z 実測値549.0([MH]+,計算値549.1);
1H NMR(DMSO-d6)δ11.39(br s,1H,NH),8.10-8.08(m,2H,Ph),7.74-7.70(m,1H,Ph),7.60-7.56(m,2H,Ph),7.51(d,J=1.1Hz,1H,H6),6.35(d,J=4.9Hz,1H,H1'),6.32(d,J=5.3Hz,1H,2'-OH),5.61(d,J=4.0Hz,1H,H3'),4.69(d,J=10.8Hz,1H),4.59(m,1H,H2'),4.55(d,J=10.8Hz,1H),4.52(d,J=10.8Hz,1H),4.46(d,J=10.6Hz,1H)(H5'およびH1''),3.28(s,3H,Ms),3.23(s,3H,Ms),1.81(s,3H,CH3);
13C NMR(DMSO-d6)δ164.5,163.6(C4,PhC(O)),150.3(C2),137.7(C6),133.8,129.6,128.7,128.6(Ph),108.1(C5),84.8(C1'),81.1(C4'),78.0(C3'),73.2(C2'),68.0,67.1(C5',C1''),36.7,36.6(Ms×2),11.9(CH3);
元素分析計算値(C20H24N2O12S2・0.33H2Oとして、%):C,44.34;H,4.65;N,4.85.実測値:C,44.32;H,4.58;N,4.77。
1-(3-O-ベンゾイル-5-O-メタンスルホニル-4-C-メタンスルホニルオキシメチル-β-D-トレオ-ペントフラノシル)チミン(7)(10.00g、18.23 mmol)をジクロロメタン(500cm3)に溶解し、0℃に冷却した。ピリジン(15cm3)およびDMAP(8.91g、72.9mmol)を加えた後、トリフルオロメタンスルホン酸無水物(10.30g、36.5mmol、6.0cm3)を滴下した。1時間後に、飽和NaHCO3水溶液(500cm3)で反応をクエンチし、分液漏斗に移した。有機層を1.0M HCl水溶液(500cm3)、飽和NaHCO3水溶液(500cm3)および食塩水(500cm3)で洗浄した。有機層をトルエン(100cm3)と共に減圧下でエバポレートすることにより、1-(3-O-ベンゾイル-5-O-メタンスルホニル-4-C-メタンスルホニルオキシメチル-2-O-トリフルオロメタンスルホニル-β-D-トレオ-ペントフラノシル)チミン(8)を黄色粉末として得た。粗製ヌクレオシド(8)をDMF(250cm3)に溶解し、Na2S(1.57g、20.1mmol)を加えたところ、暗緑色スラリーを得た。3時間後に反応を半飽和NaHCl3水溶液(500cm3)でクエンチし、ジクロロメタン(500+250cm3×2)で抽出した。合わせた有機層を食塩水(500cm3)で洗浄し、乾燥(Na2SO4)し、濾過し、減圧下で濃縮することにより、黄色液体を得た。残留溶媒を高真空ポンプで一晩除去することにより黄色ゴム質を得て、これを乾燥カラム減圧クロマトグラフィー(内径6cm:分画サイズ50cm3;50〜100%EtOAc/n-ヘプタン(v/v)-増加幅(increment)10%;2〜20%MeOH/EtOAc−増加幅2%)で精製することにより、ヌクレオシド9(6.15g、72%)を黄色泡状物として得た。
Rf=0.27(20%n-ヘプタン/EtOAc,v/v);
ESI-MS m/z 実測値469.0([MH]+,計算値469.1);
1H NMR(CDCl3)δ8.70(br s,1H,NH),8.01-7.99(m,2H,Ph),7.67(d,J=1.1Hz,1H,H6),7.65-7.61(m,1H,Ph),7.50-7.46(m,2H,Ph),5.98(s,1H,H1'),5.34(d,J=2.4Hz,1H,H3'),4.66(d,J=11.7Hz,1H,H5'a),4.53(d,J=11.5Hz,1H,H5'b),4.12(m(残留EtOAcとオーバーラップ),1H,H2'),3.15-3.13(m,4H,H1''aおよびMs),3.06(d,J=10.6Hz,1H,H1''b),1.98(d,J=1.1Hz,3H,CH3);
13C NMR(CDCl3)δ165.2,163.5(C4,PhC(O)),149.9(C2),134.1,133.9,129.8,128.7,128.3(C6,Ph),110.7(C5),91.1(C1'),86.8(C4'),72.6(C3'),65.8(C5'),50.5(C2'),37.9(Ms),35.1(C1''),12.5(CH3);
元素分析計算値(C19H20N2O8S2・0.33EtOAcとして、%):C,49.21;H,4.72;N,5.47.実測値:C,49.25;H,4.64;N,5.48。
ヌクレオシド9(1.92g、4.1mmol)をDMF(110cm3)に溶解した。安息香酸ナトリウム(1.2g、8.2mmol)を加え、その混合物を24時間100℃に加熱した。反応混合物を半飽和食塩水(200cm3)と共に分液漏斗に移し、酢酸エチル(100cm3×3)で抽出した。合わせた有機層を乾燥(Na2SO4)し、濾過し、減圧下でエバポレートすることにより、褐色の液体を得た。生成物を高真空ポンプにかけて、残留溶媒を除去した。得られた褐色ゴム質を乾燥カラム減圧クロマトグラフィー(内径4cm;分画サイズ50cm3;0〜100%EtOAc/n-ヘプタン(v/v)−増加幅10%;2〜10%MeOH/EtOAc(v/v)−増加幅2%)で精製することにより、ヌクレオシド10(1.64g、81%)をわずかに黄色い泡状物として得た。
Rf=0.57(20%n-ヘプタン/EtOAc,v/v);
ESI-MS m/z 実測値 495.1([MH]+,計算値495.1);
1H NMR(CDCl3)δ9.02(br s,1H,NH),8.07-7.99(m,4H,Ph),7.62-7.58(m,2H,Ph),7.47-7.42(m,5H,PhおよびH6),5.95(s,1H,H1'),5.46(d,J=2.2Hz,1H,H3'),4.93(d,J=12.8Hz,1H,H5'a),4.60(d,J=12.8Hz,1H,H5'b),4.17(d,J=2.2Hz,1H,H2'),3.27(d,J=10.6Hz,1H,H1''a),3.16(d,J=10.6Hz,1H,H1''b),1.55(d,J=1.1Hz,3H,CH3);
13C NMR(CDCl3)δ165.8,165.1,163.7(C4,PhC(O)×2),150.0(C2),133.9,133.7,133.6,129.8,129.6,129.0,128.8,128.6,128.5(C6,2×Ph),110.3(C5),91.3(C1'),87.5(C4'),72.9(C3'),61.3(C5'),50.6(C2'),35.6(C1''),12.3(CH3);
元素分析計算値(C25H22N2O7Sとして、%):C,60.72;H,4.48;N,5.66.実測値:C,60.34;H,4.49;N,5.35。
アンモニアを飽和させたメタノール(50cm3)にヌクレオシド10(1.50g、3.0mmol)を溶解した。反応フラスコを密封し、周囲温度で20時間撹拌した。反応混合物を減圧下で濃縮することにより黄色ゴム質を得て、これを乾燥カラム減圧クロマトグラフィー(内径4cm;分画サイズ50cm3;0〜16%MeOH/EtOAc(v/v)−増加幅1%)で精製することにより、ヌクレオシド11(0.65g、76%)を透明な針状物として得た。
Rf=0.31(10% MeOH/EtOAc,v/v);
ESI-MS m/z 実測値287.1([MH]+,計算値287.1);
1H NMR(DMSO-d6)δ11.32(br s,1H,NH),7.96(d,J=1.1Hz,1H,H6),5.95(s,1H,H6),5.70(d,J=4.2Hz,1H,3'-OH),5.62(s,1H,H1'),4.49(t,J=5.3Hz,1H,5'-OH),4.20(dd,J=4.1および2.1Hz,1H,H3'),3.77-3.67(m,2H,H5'),3.42(d,J=2.0Hz,1H,H2'),2.83(d,J=10.1Hz,1H,H1''a),2.64(d,J=10.1Hz,1H,H1''b),1.75(d,J=1.1Hz,3H,CH3);
13C NMR(DMSO-d6)δ 163.8(C4),150.0(C2),135.3(C6),107.5(C5),90.2,89.6(C1'およびC4'),69.4(C3'),58.0(C5'),52.1(C2'),34.6(C1''),12.4(CH3);
元素分析計算値(C11H14N2O5Sとして、%):C,46.15;H,4.93;N,9.78.実測値C,46.35;H,4.91;N,9.54。
ヌクレオシド11(0.60g、2.1mmol)をピリジン(10cm3)に溶解した。塩化4,4'-ジメトキシトリチル(0.88g、2.6mmol)を加え、反応を周囲温度で3時間撹拌した。反応混合物を水(100cm3)と共に分液漏斗に移し、酢酸エチル(100+50cm3×2)で抽出した。合わせた有機層を飽和NaHCO3(100cm3)、食塩水(100cm3)で洗浄し、減圧下で蒸発乾固することにより、粘性黄色液体を得た。生成物をトルエン(50cm3)に再溶解し、減圧下で濃縮することにより、黄色泡状物を得た。その泡状物を高真空ポンプで一晩乾燥し、乾燥カラム減圧クロマトグラフィー(内径4cm;分画サイズ50cm3;10〜100%EtOAc/n-ヘプタン(v/v)−増加幅10%)で精製することにより、ヌクレオシド12(1.08g、88%)を白色泡状物として得た。
Rf=0.24(20%n-ヘプタン/EtOAc,v/v);
ESI-MS m/z 実測値587.1([M-H]+,計算値587.2);
1H NMR(CDCl3)δ8.96(br s,1H,NH),7.74(d,J=1.1Hz,1H,H6),7.46-7.44(m,2H,Ph),7.35-7.22(m,9H,Ph),7.19-7.15(m,2H,Ph),6.86-6.80(m,2H,Ph),5.82(s,1H,H1'),4.55(dd,J=9.3および2.1Hz,1H,H3'),3.79(s,6H,OCH3),3.71(d,J=2.0Hz,1H,H2'),3.50(s,2H,H5'),2.81(d,J=10.8Hz,1H,H1''a),2.77(d,J=10.8Hz,1H,H1''b),2.69(d,J=9.2Hz,1H,3'-OH),1.42(s,3H,CH3);
13C NMR(CDCl3)δ158.7(C4),150.1(C2),144.1,135.2,135.1,130.1,129.1,128.1,128.0,127.1,127.0,113.3(C6,2×Ph),110.0(C5),90.2(C(Ph)3),89.6(C1'),87.0(C4'),71.7(C3'),60.9(C5'),55.2(C2'),34.7(C1''),12.2(CH3);
元素分析計算値(C32H32N2O7S・0.5H2Oとして、%):C,64.31;H,5.57;N,4.69.実測値:C,64.22;H,5.67;N,4.47。
公表された方法(D. S. Pedersen,C. Rosenbohm,T. Koch(2002)「Preparation of LNA Phosphoramidites(LNAホスホロアミダイトの製造)」Synthesis,6,802-808)に従って、ヌクレオシド12(0.78g,1.33mmol)をジクロロメタン(5cm3)に溶解し、4,5-ジシアノイミダゾールの1.0Mアセトニトリル溶液(0.93cm3、0.93mmol)を加え、次に、2-シアノエチル-N,N,N',N'-テトライソプロピルホスホロジアミダイト(0.44cm3、1.33mmol)を滴下した。2時間後に反応液をジクロロメタン(40cm3)と共に分液漏斗に移し、飽和NaHCO3水溶液(25cm3×2)および食塩水(25cm3)で洗浄した。有機層を乾燥(Na2SO4)し、濾過し、減圧下でエバポレートすることにより、ヌクレオシド13(1.04g、99%)を白色泡状物として得た。Rf=0.29および0.37−2つのジアステレオ異性体(20%n-ヘプタン/EtOAc,v/v);ESI-MS m/z 実測値789.3([MH]+,計算値789.3);31P NMR(DMSO-d6)δ150.39,150.26。
オリゴヌクレオチド合成
Expedite 8900/MOSS合成装置(Multiple Oligonucleotide Synthesis System)でホスホロアミダイト法を使用して、1μmolまたは15μmol量のオリゴヌクレオチドを合成した。合成(DMT-オン)が終了したら、アンモニア水を使って室温で1時間かけてオリゴヌクレオチドを固体支持体から切り離し、さらに65℃で3時間脱保護した。オリゴヌクレオチドを逆相HPLC(RP-HPLC)で精製した。DMT基の除去後に、オリゴヌクレオチドをIE-HPLCまたはRP-HPLCによって特徴づけた。オリゴヌクレオチドの正体はESI-MSによって確認した。詳細は下記参照。
5'-O-Dmt-3'-ヒドロキシ-LNAモノマー(500mg)、無水コハク酸(1.2当量)およびDMAP(1.2当量)をDCM(35mL)に溶解した。反応液を室温で一晩撹拌した。NaH2PO4 0.1M pH5.5(2回)および食塩水(1回)で抽出した後、さらに無水Na2SO4で有機層を乾燥し、濾過し、エバポレートした。ヘミエステル誘導体を95%の収率で得て、これをさらに精製することなく使用した。
上で製造したヘミエステル誘導体(90μmol)を最少量のDMFに溶解し、DIEAおよびpyBOP(90μmol)を加え、1分間混合した。このプレ活性化混合物を手動合成装置でLCAA-CPG(500Å、80〜120メッシュサイズ、300mg)と混合し、撹拌した。室温で1.5時間後に、支持体を濾去し、DMF、DCMおよびMeOHで洗浄した。乾燥後に負荷量は57μmol/gと決定された(F. Eckstein編「Oligonucleotides and Analogues A Practical Approach」(Oxford:IRL Press,1991)の13〜14頁、Tom Brown,Dorcas J. S. Brown著「Modern machine-aided methods of oligodeoxyribonucleotide synthesis(最新のオリゴデオキシリボヌクレオチド機械合成法)」参照)。
ホスホロアミダイト(A(bz)、G(ibu)、5-メチル-C(bz)またはT-β-シアノエチル-ホスホロアミダイト)のカップリングは、5'-O-DMT保護アミダイトの0.1Mアセトニトリル溶液と、活性化剤としてアセトニトリル中のDCI(4.5-ジシアノイミダゾール)(0.25M)とを使って行う。チオール化は、塩化キサンタン(xanthan chloride)(アセトニトリル:ピリジン10%中0.01M)を使って行う。残りの試薬はオリゴヌクレオチド合成に典型的に使用されるものである。RP-HPLCによる精製:
カラム:XTerra,RP18,5μm,7.8×50mmカラム
溶離液:
溶離液A:0.1M NH40Ac,pH:10
溶離液B:アセトニトリル
流速:5ml/分
勾配:
カラム:Dionex,DNAPac PA-100,2×250mmカラム
溶離液:
溶離液A:20mMトリス-HCl,pH7.6;1mM EDTA;10mM NaClO4
溶離液B:20mMトリス-HCl,pH7.6;1mM EDTA;1M NaClO4
流速:0.25ml/分
勾配:
DMT:ジメトキシトリチル
DCI:4,5-ジシアノイミダゾール
DMAP:4-ジメチルアミノピリジン
DCM:ジクロロメタン
DMF:ジメチルホルムアミド
THF:テトラヒドロフラン
DIEA:N,N-ジイソプロピルエチルアミン
PyBOP:ベンゾトリアゾール-1-イル-オキシ-トリス-ピロリジノ-ホスホニウム-ヘキサフルオロホスフェート
Bz:ベンゾイル
Ibu:イソブチリル。
オリゴマー化合物のデザインの試験
我々の関心は、サバイビンを標的とするオリゴヌクレオチドの最適なデザインを選択することの重要性を明らかにするために、様々なデザインを持つオリゴヌクレオチドのアンチセンス活性を評価することにあった。そのために我々は、アンチセンスオリゴヌクレオチドによるダウンレギュレーション後にホタル(Photinus pyralis)ルシフェラーゼの活性を測定することによって数多くの異なるオリゴヌクレオチドデザインのスクリーニングが可能になるようなインビトロアッセイを設定した。図1には本文で述べるデザインの大半が図解されている。最初のスクリーニングでは、β-D-オキシ-LNA含有デザインであって、いずれもmRNAの同じモチーフを標的にしているものを評価した。異なるギャップサイズと、異なるホスホロチオエートヌクレオシド間連結部負荷と、異なるLNA負荷とを持つギャップマーからなるデザインを試験した。異なるβ-D-オキシ-LNA負荷と、異なるホスホロチオエートヌクレオシド間連結部負荷と、異なるDNA負荷とを持つヘッドマーおよびテイルマーを製造した。様々な組成を持つミックスマー(これは交互に現われる数単位のβ-D-オキシ-LNA、α-L-LNAおよびDNAを持つことを意味する)もインビトロアッセイで解析した。さらに、LNA誘導体も様々なデザインに含めて、それらのアンチセンス活性を評価した。良いデザインの重要性は、ルシフェラーゼ活性で得ることができるデータに反映される。ルシフェラーゼ発現レベルは%として測定され、β-D-オキシ-LNAおよびLNA誘導体を含有する様々なデザインのアンチセンス活性の指標になる。一部のデザインが強力なアンチセンスオリゴヌクレオチドであるのに対して、他のデザインではダウンレギュレーションレベルが中ぐらい〜低いことは、容易に分かる。したがって、良いアンチセンス活性と最適なオリゴヌクレオチドデザインとの密接な相関関係は極めて明白である。我々は、様々なデザインで良好なダウンレギュレーションレベルを認めた。7〜10nt DNAのギャップを持ち、主鎖全体がチオール化されているか、ギャップ内に限ってチオール化されていて隣接部分にはPOを持つギャップマーは、良い結果を示した。これらのデザインはβ-D-オキシ-LNAまたはLNA誘導体を含有する。6ntおよび8ntβ-D-オキシ-LNAのヘッドマーも、ホスホロチオエートヌクレオシド間連結部が主鎖全体にわたるか、DNAセグメント部分だけにある場合は、良好なダウンレギュレーションレベルを示した。ルシフェラーゼアッセイでは様々なミックスマーが良好なアンチセンス活性を与えた。交互に現われる各α-L-オキシ-LNA、β-D-オキシ-LNAまたはDNA組成の単位数がミックスマーを定義する。図1参照。3'末端にデオキシヌクレオチド残基を持つミックスマー3-9-3-1は、かなりのダウンレギュレーションレベルを示した。ミックスマー4-1-1-5-1-1-3では、ギャップを中断する2つのα-L-オキシ-LNA残基を置き、隣接部分はβ-D-オキシ-LNAとした。さらにまた、2つのα-L-オキシ-LNA残基でギャップを中断し、両隣接部分をα-L-オキシ-LNAで置換した。どちらのデザインもかなりのダウンレギュレーションレベルを示した。α-L-オキシ-LNAの存在は、デオキシリボヌクレオチド残基中のスパイキングにより、ノース(North)型固定隣接部分(オキシ-LNA)とα-L-オキシ-LNAの間の柔軟な移行をもたらすのかもしれない。α-L-オキシ-LNA残基がDNAストレッチを中断しているデザイン4-3-1-3-5を調べることも興味深い。我々は、ギャップ中のα-L-オキシ-LNAに加えて、隣接部分の縁部にある2つのオキシ-LNAも2つのα-L-オキシ-LNA残基で置換した。ギャップ中のDNAストレッチを中断するβ-D-オキシ-LNA残基が一つだけ存在すると(デザイン4-3-1-3-5)、劇的なダウンレギュレーションの喪失が起こる。α-L-オキシ-LNAを代わりに使用するだけで、このデザインは50nMのオリゴヌクレオチド濃度で、著しいダウンレギュレーションを示す。接合部分にα-L-オキシ-LNAを置き、ギャップの中央に1つのα-L-オキシ-LNAを置いた場合も、ダウンレギュレーションを示した。α-L-オキシ-LNAは、高レベルのアンチセンス活性を示すことができる様々なミックスマーの構築を可能にする強力なツールであることがわかる。他のミックスマー、例えば4-1-5-1-5および3-3-3-3-3-1なども製造することができる。一部のデザインが強力なアンチセンスオリゴヌクレオチドであるのに対して、他のデザインではダウンレギュレーションレベルが中ぐらい〜低いことは、容易に分かる。したがって、ここでも、良いアンチセンス活性と最適なオリゴヌクレオチドデザインとの密接な相関関係は極めて明白である。他の好ましいデザインは、DNA残基がギャップの両側にある3つのβ-D-オキシ-LNAモノマーと共に隣接部分に位置している(1-3-8-3-1)である。さらにもう一つの好ましいデザインは、D-オキシ-LNA隣接部分と9ギャップとを持つと共に3'末端にDNAを持つ(4-9-3-1)である。
「tet-off」ルシフェラーゼ系が安定にトランスフェクトされたX1/5Hela細胞株(ECACC整理番号95051229)を使用した。テトラサイクリンの不在下ではルシフェラーゼ遺伝子が構成的に発現する。ルシフェラーゼ基質ルシフェリンを添加すると、発現を照度計で光として測定することができる。X1/5Hela細胞株は、1×非必須アミノ酸(Sigma M7145)、1×グルタマックス(Glutamax)I(Invitrogen 35050-038)、10%FBS仔ウシ血清、25μg/mlゲンタマイシン(Sigma G1397)、500μg/ml G418(Invitrogen 10131-027)および300μg/mlハイグロマイシンB(Invitrogen 10687-010)を補足した必須培地イーグル(Sigma M2279)で生育させた。トランスフェクションの前日に、X1/5Hela細胞を1ウェルあたり8000細胞の密度で白色96穴プレート(Nunc 136101)に播種した。トランスフェクションの前に、細胞をOptiMEM(Invitrogen)で1回洗浄し、次に2μg/mlのリポフェクトアミン2000(Invitrogen)を含むOptiMEM 40μlを加えた。細胞を7分間インキュベートしてからオリゴヌクレオチドを添加した。10μlのオリゴヌクレオチド溶液を加え、細胞を37℃および5%CO2で4時間インキュベートした。この4時間のインキュベーション後に、細胞をOptiMEMで1回洗浄し、成長培地を加えた(100μl)。翌日、ルシフェラーゼ発現を測定した。ルシフェラーゼ発現は、PromegaのSteady-Gloルシフェラーゼアッセイシステムを使って測定した。100μlのSteady-Glo試薬を各ウェルに加え、プレートを700rpmで30秒間浸透した。細胞の全溶解を完了させるために8分間インキュベートしてから、ThermoLabsystemsのLuminoskan Ascent装置でプレートを読み取った。ルシフェラーゼ発現は、1秒あたりの相対発光強度(Relative Light Units per seconds:RLU/s)として測定される。Ascentソフトウェア(v2.6)でデータを処理し、SigmaPlot2001でグラフを描いた。
インビトロモデル:細胞培養
標的核酸発現に対するアンチセンス化合物の影響は、標的核酸が測定可能なレベルで存在するのであれば、様々な細胞タイプのいずれでも試験することができる。標的は内因性に発現するものであってもよいし、前記核酸をコードする核酸の一過性トランスフェクションもしくは安定トランスフェクションによって発現させることもできる。標的核酸の発現レベルは、常法により、例えばノーザンブロット解析、リアルタイムPCR、リボヌクレアーゼ保護アッセイなどを使って決定することができる。例示のために以下の細胞タイプを挙げるが、選択した細胞タイプ中で標的が発現するのであれば、他の細胞タイプも型どおりに使用することができる。
15PC3:ヒト前立腺癌細胞株15PC3はオランダAMC Neurozintuigen LaboratoryのF.Baas博士の厚意により提供され、DMEM(Sigma)+10%ウシ胎仔血清(FBS)+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
A549:ヒト非小細胞肺癌細胞株A549はATCC(マナッサス)から購入し、DMEM(Sigma)+10%FBS+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
MCF7:ヒト乳癌細胞株MCF7はATCCから購入し、イーグルMEM(Sigma)+10%FBS+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
SW480:ヒト結腸癌細胞株SW480はATCCから購入し、L-15リーボビッツ(Sigma)+10%FBS+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
SW620:ヒト結腸癌細胞株SW620はATCCから購入し、L-15リーボビッツ(Sigma)+10%FBS+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
HT29:ヒト前立腺癌細胞株HT29はATCCから購入し、マッコイの5aMM(Sigma)+10%FBS+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
NCI H23:このヒト非小細胞肺癌細胞株はATCCから購入し、GlutamaxIを含むRPMI1640(Gibco)+10%FBS+HEPES+ゲンタマイシンで培養した。
HCT-116:ヒト結腸癌細胞株HCT-116はATCCから購入し、マッコイの5aMM+10%FBS+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
MDA-MB-231:ヒト乳癌細胞株MDA-MB-231はATCCから購入し、L-15リーボビッツ+10%FBS+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
MDA-MB-435s:ヒト乳癌細胞株MDA-MB-435sはATCCから購入し、L-15リーボビッツ+10%FBS+グルタマックスI+ゲンタマイシンで培養した。
DMS273:ヒト小細胞肺癌細胞株DMS273はATCCから購入し、+10%FBS+グルタマックス+ゲンタマイシンで培養した。
PC3:ヒト前立腺癌細胞株PC3はATCCから購入し、グルタミンを含むF12クーン(Coon's)培地(Gibco)+10%FBS+ゲンタマイシンで培養した。
U373:ヒト膠芽腫星状細胞腫癌細胞株U373をECACCから購入し、EMEM+10%FBS+グルタマックス+NEAA+ピルビン酸ナトリウム+ゲンタマイシンで培養した。
HeLa Sur-GFP:Wheately,S.P.ら,Curr. Biol. 11 446-490,2001。
HUVEC-C ヒト臍静脈内皮細胞はATCCから購入し、製造者の指示に従って増殖させた。
HMVEC-d(DMVEC−皮膚ヒト微小血管内皮細胞)はCloneticsから購入し、製造者の指示どおりに培養した。
HMVEC ヒト微小血管内皮細胞をCloneticsから購入し、製造者が述べるとおりに培養した。
ヒト胎児肺線維芽細胞はATCCから購入し、製造者の指示どおりに培養した。
HMEC-1 ヒト***上皮細胞はCloneticsから購入し、製造者の推奨どおりに維持した。
インビトロモデル:アンチセンスオリゴヌクレオチドによる処理
陽イオンリポソーム製剤リポフェクトアミン(LipofectAMINE)2000(Gibco)を使って細胞をオリゴヌクレオチドで処理した。細胞を12穴細胞培養プレート(NUNC)に播種し、80〜90%コンフルエントに達した時に処理を行った。使用したオリゴ濃度は最終濃度125nM〜0.2nNの範囲だった。オリゴ-脂質複合体の形成は、500μlの総体積中、無血清OptiMEM(Gibco)と10μg/mlのリポフェクトアミン2000の最終脂質濃度とを使って、基本的にDeanら(Journal of Biological Chemistry 1994,269,16416-16424)に記載されているように行った。細胞を37℃で4時間インキュベートし、オリゴ含有培養培地の除去によって処理を停止した。細胞を洗浄し、血清含有培地を加えた。オリゴ処理の後、細胞を18時間回復させてから、RNA解析またはタンパク質解析のために収集した。
インビトロモデル:RNAの抽出およびcDNA合成
全RNA単離
全RNAは、RNeasyミニキット(Qiagenカタログ番号74104)またはトリゾール(Trizol)試薬(Life technologiesカタログ番号15596)を使って単離した。細胞株からのRNA単離には、RNeasyが好ましい方法であり、組織試料からのRNA単離には、トリゾールが好ましい方法である。
第1鎖合成はOmniScript逆転写酵素キット(カタログ番号205113、Qiagen)を使用し、製造者の指示に従って行った。各試料につき0.5μgの全RNAをそれぞれ12μlになるようにRNaseフリーH2Oを使って調節し、ポリ(dT)12-18(2.5μg/ml)(Life Technologies,GibcoBRL,デンマーク・ロスキレ)2μl、dNTPミックス(5mMの各dNTP)2μl、10×バッファーRT 2μl、RNAguard(商標)Rnaseインヒビター(33.3U/ml)(カタログ番号27-0816-01、Amersham Pharmacia Biotech、デンマーク・ホシュロム)1μlおよびOmniScript逆転写酵素(4U/μl)1μlと混合した後、37℃で60分間インキュベートし、酵素の熱不活化を93℃で5分間行った。
インビトロモデル:リアルタイムPCRによるサバイビン発現のオリゴヌクレオチド阻害の解析
サバイビン発現のアンチセンス調整は、当技術分野で知られる様々な方法でアッセイすることができる。例えばサバイビンmRNAレベルは、ノーザンブロット解析、競合ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)またはリアルタイムPCRなどによって定量することができる。現時点ではリアルタイム定量PCRが好ましい。RNA解析は全細胞RNAまたはmRNAで行うことができる。
iQマルチカラーリアルタイムPCR検出システム(BioRAD)を使用し、製造者の指示に従って、リアルタイム定量PCRにより、mRNAレベルを定量した。リアルタイム定量PCRは当技術分野では周知の技術であり、例えばHeidら「Real time quantitative PCR(リアルタイム定量PCR)」Genome Research(1996),6:986-994などに教示されている。
フォワードプライマー:5'caggtccccgctttctttg 3'(アッセイにおける最終濃度;0.6μM)、
リバースプライマー:5'ggaggagggcgaatcaaa 3'(アッセイにおける最終濃度;0.6μM)とし、PCRプローブは5'FAM-ccatcatcttacgccagacttcagcc-TAMRA 3'(アッセイにおける最終濃度;0.1μM)とした。
アッセイ2では、
フォワードプライマー:5'aaggaccaccgcatctctaca 3'(アッセイにおける最終濃度;0.9μM)、
リバースプライマー:5'ccaagtctggctcgttctcagt 3'(アッセイにおける最終濃度;0.6μM)とし、PCRプローブは5'FAM-cgaggctggcttcatccactgcc-TAMRA 3'(アッセイにおける最終濃度;0.1μM)とした。
実施例6で述べたように行われる第1鎖合成から得たcDNAを2〜20倍希釈し、リアルタイム定量PCRによって解析した。プライマーおよびプローブを2×プラチナ定量PCRスーパーミックスUDG(カタログ番号11730、Invitrogen)と混合し、3.3μlのcDNAに加えて、最終体積が25μlになるようにした。各試料を三重に分析した。興味あるRNAを発現させる細胞株から精製された材料で調製しておいたcDNAの2倍希釈液をアッセイすることにより、アッセイ用の標準曲線を作成した。テンプレートなしの対照にはcDNAの代わりに滅菌H2Oを使用した。PCRプログラム:50℃で2分、95℃で10分の後、95℃で15秒、60℃で1分を40サイクル。iCycler iQリアルタイム検出システムソフトウェアを使って、計算された閾値サイクルから標的mRNA配列の相対量を決定した。
インビトロ解析:サバイビンmRNAレベルのノーザンブロット解析
ノーザンブロット解析は、当技術分野で周知の手法により、基本的に「Current Protocols in Molecular Biology」(John Wiley & Sons)に記載されているとおりに行った。ハイブリダイゼーションプローブは、逆転写PCRによって得たcDNA 1μlから373bp断片をPCR増幅することによって得た。この反応は、プライマー5'agcacaaagccattctaagtcattg 3'(フォワード)および5'tccatcatcttacgccagacttc 3'(リバース)(それぞれ最終濃度0.5μM)、200nMの各dNTP、1.5mM MgCl2およびプラチナTaq DNAポリメラーゼ(Invitrogenカタログ番号10966-018)を使って行った。DNAは、Perkin Elmer 9700サーマルサイクラーで、以下のプログラムを使用して、40サイクル増幅した:94℃で2分の後、94℃で30秒および72℃で30秒(1サイクルごとに0.5℃下げる)を40サイクルし、次に72℃で7分。
インビトロ解析:サバイビンタンパク質レベルのウェスタンブロット解析
サバイビンのタンパク質レベルは、例えば免疫沈降、ウェスタンブロット解析(免疫ブロット法)、ELISA、RIA(ラジオイムノアッセイ)または蛍光細胞分析分離法(FACS)など、当技術分野で周知の様々な方法で定量することができる。サバイビンに対する抗体を同定し、例えばUpstate Biotechnologies(米国レークプラシッド)、Novus Biologicals(コロラド州リトルトン)、Santa Cruz Biotechnology(カリフォルニア州サンタクルーズ)などの様々な供給源から入手するか、通常の抗体作製方法によって製造することができる。
サバイビンタンパク質レベルに対するサバイビンオリゴのインビトロ作用を、ウェスタンブロット法で決定した。細胞を実施例5で述べたようにトランスフェクトした。トランスフェクションの約24時間後に細胞を収集し、プロテアーゼインヒビターカクテル錠(Roche)を添加した2.5%SDS、5mM DTTおよび6M尿素で溶解した。総タンパク質濃度はブラッドフォード試薬を使って測定した。150μgの総タンパク質量を、12%ビス-トリスゲルに負荷し、MOPSバッファーで泳動し、PVDF膜に製造者(Invitorogen)の推奨に従ってブロットした。ブロッキングバッファー(Invitrogen)中で終夜インキュベートした後、膜をウサギ抗サバイビン抗体(R&DのAF886またはAbcamのNovus500-201)と共に2時間インキュベートし、次に二次抗体中で1時間インキュベートした。発色免疫検出キット(Invitorogen)を使ってサバイビンを可視化した。あるいは、HRPコンジュゲートウサギ免疫グロブリン(DAKO)と共にインキュベートした後、ECL+ Plus試薬(Amersham)と共にインキュベートし、VersaDocケミルミネセンス検出システムを使って可視化した(図13参照。試験したオリゴマー化合物を実施例10に示す)。
インビトロ解析:オリゴマー化合物によるヒトサバイビン発現のアンチセンス阻害
本発明に従い、公表された配列(配列番号1として本明細書に組み込まれるGenBankアクセッション番号NM_001168)を使って、ヒトサバイビンRNAの様々な領域を標的とするように、一連のオリゴヌクレオチドを設計した。16ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドを表1および表2に示す。「標的部位」は、そのオリゴヌクレオチドが結合する特定標的配列上の第1ヌクレオチド番号を示す。好ましい化合物はLNA含有化合物である。表3に、4つの化合物の低いIC50を示す。
オリゴマー化合物を、15PC3細胞中でサバイビンmRNAをノックダウンするその能力について評価した。データをモックトランスフェクト細胞と比較したダウンレギュレーション百分率として表す。転写物定常状態をリアルタイムPCRによってモニターし、GAPDH転写物定常状態に対して規格化した。LNA Cはいずれも5'-メチル-シトシンであることに留意されたい。
オリゴマー化合物を、15PC3細胞中でサバイビンmRNAをノックダウンするその能力について評価した。データをモックトランスフェクト細胞と比較したダウンレギュレーション百分率として表す。転写物定常状態をリアルタイムPCRによってモニターし、GAPDH転写物定常状態に対して規格化した。LNA Cはいずれも5'-メチル-シトシンであることに留意されたい。
オリゴマー化合物を、15PC3細胞およびMCF7細胞中でサバイビンmRNAをノックダウンするその能力について評価した。転写物定常状態をリアルタイムPCRによってモニターし、GAPDH転写物定常状態に対して規格化した。
LNAアンチセンスオリゴマー化合物の使用による、ホスホロチオエートおよびMOEと比較した、インビトロでのサバイビン発現阻害の改善
ホスホロチオエートおよびMOE(Calbiochem)含有アンチセンスオリゴヌクレオチドと、LNA含有アンチセンスオリゴヌクレオチドとを使って、15PC3細胞におけるmRNA阻害の比較を行った。LNA型のISIS23722を、18マー4MOE/PS+10PS+4MOE/PSであるMOE含有化合物と比較し、また、等配列ホスホロチオエートと比較した。15PC3のトランスフェクションは、オリゴヌクレオチドまたは培地(モック)を使って行った(実施例5参照)。サバイビンmRNAをリアルタイムPCRでモニターし、GAPDHに対して規格化した。サバイビンmRNAをモック発現との比較で表した(表4参照)。
LNAアンチセンスオリゴマー化合物によるアポトーシス誘導
トランスフェクションの前日に、細胞を、DMEM中、白色96穴プレート(Nunc136101)の1ウェルにつき12000細胞の密度で播種した。翌日、予め温めておいたOptiMEMで細胞を1回洗浄した後、5μg/mlのリポフェクトアミン2000(Invitrogen)を含有するOptiMEM 72μlを添加した。細胞を7分間インキュベートした後、OptiMEMで希釈したオリゴヌクレオチド18μlを加えた。最終オリゴヌクレオチド濃度は5nM〜25nMにわたった。処理の4時間後に、細胞をOptiMEMで洗浄し、血清含有DMEM 100μlを加えた。オリゴ処理に続いて、細胞を表示の期間回復させてから、CO2培養器から取り出し、15分間室温に平衡化した。高感度カスパーゼ3/7-Glo(商標)試薬(Promega)を92穴プレート中の細胞に直接加え、プレートを20分間インキュベートし、さらに1分間の遅延時間の後、Thermo LabsystemsのLuminoskan Ascent装置で、ルミネセンス(ルシフェラーゼ活性)を記録した。ルシフェラーゼ活性は、1秒あたりの相対光強度(RLU/s)として測定される。データをAscentソフトウェア2.4.2で処理し、エクセル(excel)でグラフを描いた(図8参照)。
LNAアンチセンスオリゴマー化合物の使用による、ホスホロチオエートおよびMOEと比較した、インビトロでのアポトーシス誘導の改善
BD(商標)サイトメトリックビーズアレイ(CBA)(カタログ557816)を使ったアポトーシスの測定。上述のようにリポフェクトアミン2000を使って細胞をトランスフェクトした(実施例5参照)。トランスフェクションの24時間後に、上清から細胞を遠沈し、付着細胞をトリプシン処理し、遠沈した。細胞ペレットをPBSに再懸濁/洗浄し、プロテアーゼインヒビターを含有する溶解バッファー1mlにつき細胞濃度が2×106細胞になるように、細胞数を数えた。以下の変更を加えた他は製造者が記述しているとおりの手順を踏んだ。細胞を溶解する際に、細胞を40分間溶解し、10分間隔でボルテックスした。1×105細胞をカスパーゼ3、Bcl-2およびPARPビーズと共にインキュベートし、手短に混和し、室温で1時間インキュベートした。オリゴ処置細胞におけるカスパーゼ3活性、Bcl2発現およびPARPの誘導を、BD(商標)CBAソフトウェアを使って解析した。データをエクセルに転送し、グラフを描いた。データは全てモック(これを1に設定)と比較した値である。図9は、LNA含有化合物(145Aおよび145C)が、等配列MOE化合物ISIS27322(ここでは145F)および等配列ホスホロチオエート化合物(145D)と比較して、アポトーシスの誘導を改善することを示している。LNA化合物のミスマッチ対照(146C)およびMOE化合物のミスマッチ対照(146F)ならびにLNA化合物15Aも、この試験に含めた。さらに、化合物15Aのカスパーゼ3活性化を、LNAオリゴマー化合物処理細胞の免疫組織化学的解析によって検出した(図10)。
増殖する癌細胞におけるアンチセンスオリゴヌクレオチドによるサバイビンの阻害
トランスフェクションの前日に、細胞を、DMEM中、白色96穴プレート(Nunc136101)の1ウェルにつき12000細胞の密度で播種した。翌日、予め温めておいたOptiMEMで細胞を1回洗浄した後、5μg/mlのリポフェクトアミン2000(Invitrogen)を含有するOptiMEM 72μlを添加した。細胞を7分間インキュベートした後、OptiMEMで希釈したオリゴヌクレオチド18μlを加えた。最終オリゴヌクレオチド濃度は5nM〜100nMにわたった。処理の4時間後に、細胞をOptiMEMで洗浄し、血清含有DMEM 100μlを加えた。オリゴ処理に続いて、細胞を表示の期間回復させてから、20μlのテトラゾリウム化合物[3-(4,5-ジメチル-2-イル)-5-(3-カルボキシメトキシフェニル)-2-(4-スルホフェニル)-2H-テトラゾリウム分子内塩;MTS]および電子カップリング試薬(エト硫酸フェナジン;PES)を加えることにより、生細胞を測定した(CellTiter 96(登録商標)AQueous One Solution細胞増殖アッセイ,Promega)。生細胞はPowerwave(BiotekInstruments)を使って490nmで測定した。成長速度(ΔOD/時間)をオリゴ濃度に対してプロットした(図11参照)。
サバイビンを標的とするオリゴマー化合物による処理後の細胞の倍数性(細胞周期)およびDNA分解(アポトーシス)の測定
アポトーシスカスケードの後期段階は多数の小さなDNA断片をもたらすが、これは細胞のヨウ化プロピジウム染色によって解析することができる。さらにヨウ化プロジウム染色は、処理細胞における倍数性を評価するために使用することもできる。サバイビンに対するオリゴマー化合物で処理した細胞の倍数性/アポトーシスを評価するために、細胞をPBA中で洗浄し、4℃の70%EtOH中で1時間固定した。50μg/ml RNAse(Sigma)により室温で20分間処理した後、細胞をPBSで洗浄し、40μg/mlヨウ化プロピジウム(SigmaまたはBD)と共に30分間インキュベートした。試料は全て、蛍光細胞分析分離装置(FACSCalibur,Becton Dickinson)とCell Questソフトウェアを使って解析した。DNAヒストグラムでは、低二倍体またはサブG1ピーク(sub-G1 peak)がアポトーシス細胞を表す。
サバイビンを標的とするオリゴマー化合物による処理後の細胞のミトコンドリア膜電位変化の測定
ミトコンドリア膜電位の変化を測定するために、MitoSensor(商標)試薬法(Becton Dickinson、カタログ番号K2017-1)を使用した。MitoSensor(商標)試薬は健常細胞によって取り込まれ、その細胞中で赤色蛍光を放射する凝集体を形成する。アポトーシスが起こるとミトコンドリア膜電位が変化して、この試薬はミトコンドリア内で凝集することができなくなるので、そのモノマー型で細胞質中に留まり、緑色の蛍光を放射する。サバイビンに対するオリゴマー化合物で処理した細胞を洗浄し、製造者が記述しているとおりに、インキュベーションバッファーに希釈したMitoSensor試薬中でインキュベートした。オリゴ処理後の膜電位の変化は、蛍光細胞分析分離装置(FACSCalibur、Becton Dickinson)により、Cell Questソフトウェアを使って検出した。
アンチセンスオリゴ処理後の内皮細胞の毛管形成の阻害
内皮単層細胞(例えばHUVEC)を、サバイビンに対するアンチセンスオリゴと共にインキュベートした。以下の2つの方法のどちらかによって、管形成を解析した。第1の方法はBD BioCoat血管新生管形成システムである。上述(実施例5)のように細胞にオリゴをトランスフェクトした。トランスフェクト細胞を、マトリゲル重合BD Biocoat血管新生プレート上に、2×104細胞/96ウェブの密度で播種した。プレートを、PMA(5〜50nM)、VEGF(20〜200ng/ml)、スラミンまたは賦形剤と共に、またはそれを伴わずに、表記の時間/日数にわたってインキュベートした。プレートをカルセイン-AMで製造者が述べているとおりに染色し、撮像した。MetaMorphを使って総管長を測定した。あるいは、10×DMEM 0.1体積中のラット尾I型コラーゲン(3mg/ml、Becton Dickinson)に細胞を播種し、滅菌1MNaOHで中和し、氷上またはマトリゲル中に保った。細胞をコラーゲン懸濁液に1×106細胞/mlコラーゲンの最終濃度で加えた。細胞-コラーゲン混合物を6穴または35穴プレートに加え、37℃の湿潤培養器に入れた。ゲル化したら、培養培地3mlと追加の10%FBSを加え、細胞に、PMA(16nM)、VEGF(50ng/ml)の存在下または不在下で、表示した期間にわたって、毛管様導管を形成させた。ゲルのクライオスタット切片化と位相差顕微鏡による切片の検査後に、管形成を定量した。
サバイビンを標的とするオリゴマー化合物による処理後のインビトロ細胞毒性の測定
細胞を播種し(0.3〜1.2×104)、上述のように(MTSアッセイ実施例12の例)、アンチセンスオリゴで処理した。表示した時間で、培地へのLDHの放出を測定するために、アンチセンス処理細胞から得た20〜50μlの培地を96穴プレートに移した。等体積のLDH基質を製造者の説明どおりに加えた。放出されたLDHを、テトラゾリウム塩(INT)を赤いホルマザン生成物に変換させる30分間共役酵素アッセイを使って測定した。生成した色の量は溶解された細胞の数に比例する。可視波長吸光度データ(490nmで測定)を標準的96穴プレートリーダー(Powerwave、Bio-Tek Instruments)を使って収集した。陽性対照細胞は、0.9%トリトンX-100で約45分間処理した(=100%溶解)。細胞毒性をモックおよびトリトン-X100処理細胞に対してプロットした(100%溶解=100%細胞毒性)。
インビボモデル:アンチセンスオリゴヌクレオチドを使った全身処置による、インビボで成長するヒト腫瘍細胞の腫瘍成長阻害
6週齢の雌NMRI無胸腺ヌードマウスをM&B(デンマーク)から購入し、実験に入る前に少なくとも1週間は馴化させた。ヒト癌細胞(典型的には106細胞をマトリゲル(BD Bioscience)300μlに懸濁したもの)を、7〜8週齢NMRI無胸腺雌ヌードマウスの脇腹に皮下注射した。腫瘍成長が確立されたら(通例、腫瘍細胞注射の7〜12日後)、皮下に植え込んだALZET浸透圧ポンプを使って、様々なアンチセンスオリゴヌクレオチドを、5mg/kg/日で最長28日まで投与した。背側への埋植に先立って、ポンプを開始させるために滅菌PBS中、室温で、ポンプを一晩インキュベートした。対照動物には同じ期間にわたって食塩水のみを投与した。各実験群は少なくとも5匹のマウスを含んだ。抗腫瘍活性は腫瘍体積の抑制によって見積った。直角に交わる2つの直径を測定することにより、腫瘍成長を定期的に追跡した。腫瘍体積は式(π×L×D2/6)に従って計算した(式中、Lは最大直径を表し、DはLと直角を成す腫瘍直径を表す)。処置の終了時に動物を屠殺し、腫瘍重量を測定した。各群の平均腫瘍体積および平均腫瘍重量をマン-ホイットニーの検定を使って比較した。解析は全てウインドウズ用SPSSバージョン11.0で行った。最適には、そのアンチセンスオリゴヌクレオチドがタンパク質レベルに対する抑制作用を持つかどうかを測定するために、ウェスタンブロット解析も行うことができる。したがって、処置期間の終了時に動物を麻酔し、腫瘍を切除し、直ちに液体窒素中で凍結した。モーター駆動ホモジナイザーを使って、腫瘍を、溶解バッファー(すなわち20mMトリス-Cl[pH7.5];2%トリトンX-100;1/100体積のプロテアーゼインヒビターカクテルセットIII(Calbiochem);1/100体積のプロテアーゼインヒビターカクテルセットII(Calbiochem))中、4℃でホモジナイズした。腫瘍組織100mgにつき500μlの溶解バッファーを適用した。各マウス群から得た腫瘍溶解液をプールし、組織片を除去するために、13,000g、4℃で5分間遠心分離した。腫瘍抽出物のタンパク質濃度は、BCAタンパク質アッセイ試薬キット(Pierce、ロックフォード)を使って決定した。タンパク質抽出物(50〜100μg)を4〜20%にわたる勾配SDS-PAGEゲルで分画し、PVDF膜に移し、アミノブラック染色によって可視化した。サバイビンの発現は、抗ヒトサバイビン抗体を加え、次にセイヨウワサビペルオキシダーゼ結合抗ヤギIgG(DAKO)を加えることによって検出した。免疫反応性は、ECL Plus(Amersham biotech)によって検出し、Versadoc 5000 liteシステム(Bio-Rad)によって定量した。
インビボモデル:LNAアンチセンスオリゴによる腹腔内処置後の、ヌードマウスに移植されたヒト腫瘍断片の腫瘍成長阻害
LNAアンチセンスオリゴヌクレオチドの腫瘍成長阻害活性を、異種移植を受けた無胸腺ヌードマウスNMRI nu/nu(Oncotest(ドイツ・フライブルク)の繁殖コロニーから入手したもの)で調べた。乳腫瘍(MDA MB231)、前立腺腫瘍(PC3)または肺腫瘍(LXFE397、Oncotest)由来のヒト腫瘍断片を、ヌードマウスで連続継代中の異種移植片から得た。ドナーマウスから腫瘍を取り出した後、それらを断片(直径1〜2mm)に切断し、皮下移植までRPMI1640培養培地に入れておいた。受容マウスをイソフルランの吸入によって麻酔した。背中の皮膚に小さな切開を施した。腫瘍断片(マウス1匹につき断片2個)を鉗子で移植した。MDA MB231腫瘍およびLXFE397腫瘍は雌マウスに移植し、PC3腫瘍は雄マウスに移植した。平均腫瘍直径が4〜6mmに達したら動物を無作為化し、3週間にわたり週末を除いて毎日1回、20mg/kgのオリゴヌクレオチドで腹腔内処置した。全ての実験に賦形剤対照群(食塩水)および陽性対照群(タキソール、20mg/kg/日)を含めた。全ての群は6匹のマウスからなった。腫瘍体積は、無作為化の日(0日目)とその後の毎週2回、カリパスで二次元測定することによって決定した。腫瘍体積は式:(a×b2)×0.5に従って計算した(式中、aは最大直径を表し、bはそれと直角に交わる腫瘍直径を表す)。無作為化後、腫瘍体積が倍加するまで28日間、マウスを毎日観察した。腫瘍直径が1.6cmを超えた時にマウスを屠殺した。腫瘍阻害の統計的有意性を評価するために、マン-ホイットニー-ウィルコクソンによるU検定を行った。慣例により、p値<0.05は腫瘍阻害の有意性を示す。
マウスにおけるオリゴヌクレオチドの体内分布
6週齢の雌NMRI無胸腺ヌードマウスをM&B(デンマーク)から購入し、実験に入る前に少なくとも1週間は馴化させた。ヒト癌細胞(典型的には106細胞をマトリゲル(BD Bioscience)300μlに懸濁したもの)を、7〜8週齢NMRI無胸腺雌ヌードマウスの脇腹に皮下注射した。腫瘍成長が明確になったら、皮下に植え込んだALZET浸透圧ポンプを使って、トリチウム標識オリゴヌクレオチドを、5mg/kg/日の用量で14日間投与した。オリゴヌクレオチドはGraham MJら(J Pharmacol Exp Ther 1998;286(1):447-458)が述べているようにトリチウム標識した。全ての主要器官(肝臓、腎臓、脾臓、心臓、胃、肺、小腸、大腸、リンパ節、皮膚、筋、脂肪、骨、骨髄)および皮下移植ヒト腫瘍組織について組織抽出物のシンチレーション計数を行うことによって、オリゴヌクレオチドを定量した。
ヒト腫瘍異種移植片におけるLNAオリゴマー化合物の取り込み
実施例13のヒト15PC3異種移植腫瘍を10体積の0.5%Igepal CA-630、25mMトリス(pH8.0)、25mM EDTA、100mM NaCl、1mg/mlプロテイナーゼK1中でホモジナイズし、摂氏37度で一晩インキュベートした後、フェノール-クロロホルム抽出を行った。合わせた水相中のアンチセンスオリゴヌクレオチド2650の濃度を、配列特異的ELISAアッセイを使って決定した。アンチセンスオリゴヌクレオチドに相補的な配列を持つ2つのプローブ(1つはビオチンで標識したもの、1つはジゴキシゲニン(DIG)で標識したもの)をアンチセンスオリゴにハイブリダイズさせる。その複合体を固定化ストレプトアビジンで捕捉し、セイヨウワサビペルオキシダーゼ結合ヤギ抗ジゴキシゲニンと標準的ELISA法とを使って定量した。簡単に述べると、PBS中の1%ブロッキング試薬(Rocheカタログ番号1 096 176)中で、10nM DNA捕捉プローブ(5'-aactgtgc-ビオチン-3')および10nM LNA検出プローブ(5'-DIG-GATGTTTCgatgtttc-3')を試料または標品と混合した。その混合物を摂氏70度に加熱し、摂氏20度まで徐冷することにより、プローブをオリゴにアニールさせた。この混合物をストレプトアビジン被覆ウェルに移した。捕捉されたDIGプローブの量は、HRP結合ヤギ抗DIG抗体断片(Roche)と標準的ELISA法とを使って定量される。少なくとも1.3μg/g-腫瘍組織のオリゴマー化合物15Aが検出された(回収率について調整していないデータ)。
Claims (152)
- 合計8〜50個のヌクレオチドおよび/またはヌクレオチド類似体からなる化合物であって、前記化合物は少なくとも8ヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体の部分配列を含み、前記部分配列が、配列番号2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、101、102、103、104、105、106、107、108、109、101、102、103、104、105、106、107、108、109、110、111、112、113、114、115、116、117、118、119、120、121、122、123、124、125、126、127、128、129、130、131、132、133、134、135、136、137、138、139、140、141、142、143および144からなる群より選択される配列内に位置する化合物。
- 前記配列が、配列番号2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、117、118、119、120、121、122、123、124、125、126、127、128、129、130、131、132および133からなる群より選択される配列内に位置する、請求項1に記載の化合物。
- 8〜40個のヌクレオチドを含む、請求項1または2に記載の化合物。
- 8〜20個のヌクレオチドを含む、請求項3に記載の化合物。
- 12〜20個のヌクレオチドを含む、請求項4に記載の化合物。
- 12、13、14、15、16、17、18、19または20個のヌクレオチドを含む、請求項5に記載の化合物。
- 14、15、16、17または18個のヌクレオチドを含む、請求項6に記載の化合物。
- 15〜17個のヌクレオチドを含む、請求項5に記載の化合物。
- 15、16または17個のヌクレオチドを含む、請求項8に記載の化合物。
- 15個のヌクレオチドを含む、請求項8に記載の化合物。
- 16個のヌクレオチドを含む、請求項9に記載の化合物。
- 17個のヌクレオチドを含む、請求項9に記載の化合物。
- 少なくとも10ヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体の部分配列を含む、上記請求項のいずれか一項に記載の化合物。
- 少なくとも12ヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体の部分配列を含む、上記請求項のいずれか一項に記載の化合物。
- 少なくとも14ヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体の部分配列を含む、上記請求項のいずれか一項に記載の化合物。
- 10、11、12、13、14、15または16ヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体の部分配列を含む、請求項1〜13のいずれか一項に記載の化合物。
- 前記ヌクレオチドがホスフェート基、ホスホロチオエート基およびボラノホスフェート基からなる群より選択される連結基を含み、ヌクレオシド間連結部が-O-P(O)2-O-、-O-P(O,S)-O-、-O-P(S)2-O-、-S-P(O)2-O-、-S-P(O,S)-O-、-S-P(S)2-O-、-O-P(O)2-S-、-O-P(O,S)-S-、-S-P(O)2-S-、-O-PO(RH)-O-、O-PO(OCH3)-O-、-O-PO(NRH)-O-、-O-PO(OCH2CH2S-R)-O-、-O-PO(BH3)-O-、-O-PO(NHRH)-O-、-O-P(O)2-NRH-、-NRH-P(O)2-O-、-NRH-CO-O-、-NRH-CO-NRH-、-O-CO-O-、-O-CO-NRH-、-NRH-CO-CH2-、-O-CH2-CO-NRH-、-O-CH2-CH2-NRH-、-CO-NRH-CH2-、-CH2-NRH-CO-、-O-CH2-CH2-S-、-S-CH2-CH2-O-、-S-CH2-CH2-S-、-CH2-SO2-CH2-、-CH2-CO-NRH-、-O-CH2-CH2-NRH-CO-、CH2-NCH3-O-CH2-(式中、RHは水素およびC1-4-アルキルから選択される)でありうる、請求項1〜16のいずれか一項に記載の化合物。
- 前記ヌクレオチドが、ホスフェート基、ホスホロチオエート基およびボラノホスフェート基からなる群より選択される連結基を含む、請求項1〜17のいずれか一項に記載の化合物。
- 前記連結部がホスフェート基である、請求項18に記載の化合物。
- 前記連結部がホスホロチオエート基である、請求項17に記載の化合物。
- 全てのヌクレオチドがホスホロチオエート基を含む、請求項20に記載の化合物。
- 少なくとも1つのヌクレオチドが対応するヌクレオチド類似体で置き換えられている、上記請求項のいずれか一項に記載の化合物。
- 1〜50個のヌクレオチド類似体を含む、請求項22に記載の化合物。
- 2〜45個のヌクレオチド類似体を含む、請求項23に記載の化合物。
- 3〜40個のヌクレオチド類似体を含む、請求項24に記載の化合物。
- 4〜35個のヌクレオチド類似体を含む、請求項25に記載の化合物。
- 5〜30個のヌクレオチド類似体を含む、請求項26に記載の化合物。
- 6〜25個のヌクレオチド類似体を含む、請求項27に記載の化合物。
- 6〜20個のヌクレオチド類似体を含む、請求項28に記載の化合物。
- 6〜12個のヌクレオチド類似体を含む、請求項29に記載の化合物。
- 8〜12個のヌクレオチド類似体を含む、請求項30に記載の化合物。
- 6、7、8、9、10、11または12個のヌクレオチド類似体を含む、請求項30に記載の化合物。
- 6〜10個のヌクレオチド類似体を含む、請求項31に記載の化合物。
- 6、7、8、9または10個のヌクレオチド類似体を含む、請求項33に記載の化合物。
- 7、8または9個のヌクレオチド類似体を含む、請求項34に記載の化合物。
- 8個のヌクレオチド類似体を含む、請求項35に記載の化合物。
- 全てのヌクレオチドが対応するヌクレオチド類似体で置き換えられている、請求項22〜36のいずれか一項に記載の化合物。
- 3'末端に位置するヌクレオシドを含む、請求項22〜36のいずれか一項に記載の化合物。
- XはOであり、YはO、SおよびNR(式中、Rは水素またはC1-4-アルキルである)からなる群より選択される、請求項40に記載の化合物。
- XはOであり、YはO、SおよびNHからなる群より選択される、請求項41に記載の化合物。
- XはOであり、YはOである、請求項42に記載の化合物。
- 前記LNAがベータ-D型またはアルファ-L型である、請求項40〜46のいずれか一項に記載の化合物。
- 前記ヌクレオチド類似体が、-O-P(O)2-O-、-O-P(O,S)-O-、-O-P(S)2-O-、-S-P(O)2-O-、-S-P(O,S)-O-、-S-P(S)2-O-、-O-P(O)2-S-、-O-P(O,S)-S-、-S-P(O)2-S-、-O-PO(RH)-O-、O-PO(OCH3)-O-、-O-PO(NRH)-O-、-O-PO(OCH2CH2S-R)-O-、-O-PO(BH3)-O-、-O-PO(NHRH)-O-、-O-P(O)2-NRH-、-NRH-P(O)2-O-、-NRH-CO-O-、-NRH-CO-NRH-、-O-CO-O-、-O-CO-NRH-、-NRH-CO-CH2-、-O-CH2-CO-NRH-、-O-CH2-CH2-NRH-、-CO-NRH-CH2-、-CH2-NRH-CO-、-O-CH2-CH2-S-、-S-CH2-CH2-O-、-S-CH2-CH2-S-、-CH2-SO2-CH2-、-CH2-CO-NRH-、-O-CH2-CH2-NRH-CO-、CH2-NCH3-O-CH2-(式中、RHは水素およびC1-4-アルキルから選択される)からなる群より選択される連結基を含む、請求項40〜44のいずれか一項に記載の化合物。
- 前記ヌクレオチドおよび/またはヌクレオチド類似体がホスフェート基によって互いに連結されている、請求項45に記載の化合物。
- 前記ヌクレオチドおよび/またはヌクレオチド類似体がホスホロチオエート基によって互いに連結されている、請求項45に記載の化合物。
- 前記ヌクレオチドおよび/またはヌクレオチド類似体がホスフェート基によって互いに連結されており、XはOであり、YはOであり、前記LNAがβ-D型である、請求項47に記載の化合物。
- 前記部分配列が、2〜6LNA(請求項40〜44のいずれか一項に定義するもの)のストレッチと、それに続く4〜12ヌクレオチドのストレッチと、それに続く2〜6LNA(請求項40〜44のいずれか一項に定義するもの)のストレッチとを含む、請求項45〜48のいずれか一項に記載の化合物。
- 前記部分配列が、4LNA(請求項40〜44のいずれか一項に定義するもの)のストレッチと、それに続く8ヌクレオチドのストレッチと、それに続く4LNA(請求項40〜44のいずれか一項に定義するもの)のストレッチとを含む、請求項49に記載の化合物。
- 前記部分配列が、2〜6LNA(請求項40〜44のいずれか一項に定義するもの)のストレッチと、それに続く4〜12ヌクレオチドのストレッチと、それに続く2〜5LNA(請求項40〜44のいずれか一項に定義するもの)のストレッチと、それに続く1ヌクレオチドとを含む、請求項48に記載の化合物。
- 前記部分配列が、4LNA(請求項40〜44のいずれか一項に定義するもの)のストレッチと、それに続く8ヌクレオチドのストレッチと、それに続く3LNA(請求項40〜44のいずれか一項に定義するもの)のストレッチと、それに続く1ヌクレオチドとを含む、請求項51に記載の化合物。
- 前記1ヌクレオチドが3'末端に位置する、請求項51または52のいずれかに記載の化合物。
- 前記ヌクレオシドおよび/またはLNAが、ホスフェート基、ホスホロチオエート基およびボラノホスフェート基からなる群より選択される連結基によって互いに連結されている、請求項49〜53のいずれか一項に記載の化合物。
- 前記ヌクレオシドおよび/または前記LNAがホスフェート基によって互いに連結されている、請求項54に記載の化合物。
- 前記ヌクレオシドおよび/または前記LNAがホスホロチオエート基によって互いに連結されている、請求項54に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号2aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号3aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号4aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号5aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号6aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号7aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号8aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号9aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号10aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号11aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号12aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号13aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号14aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号15aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号117aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号118aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号119aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号120aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号121aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号122aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号123aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号124aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号125aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号126aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号127aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号128aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号129aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号130aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号131aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号132aである、請求項56に記載の化合物。
- 部分配列が配列番号133aである、請求項56に記載の化合物。
- 3'末端LNAが対応する天然ヌクレオシドで置き換えられている、請求項57〜72のいずれか一項に記載の化合物。
- 配列番号2aを含む化合物。
- 配列番号3aを含む化合物。
- 配列番号4aを含む化合物。
- 配列番号5aを含む化合物。
- 配列番号6aを含む化合物。
- 配列番号7aを含む化合物。
- 配列番号8aを含む化合物。
- 配列番号9aを含む化合物。
- 配列番号10aを含む化合物。
- 配列番号11aを含む化合物。
- 配列番号12aを含む化合物。
- 配列番号13aを含む化合物。
- 配列番号14aを含む化合物。
- 配列番号15aを含む化合物。
- 配列番号117aを含む化合物。
- 配列番号118aを含む化合物。
- 配列番号119aを含む化合物。
- 配列番号120aを含む化合物。
- 配列番号121aを含む化合物。
- 配列番号122aを含む化合物。
- 配列番号123aを含む化合物。
- 配列番号124aを含む化合物。
- 配列番号125aを含む化合物。
- 配列番号126aを含む化合物。
- 配列番号127aを含む化合物。
- 配列番号128aを含む化合物。
- 配列番号129aを含む化合物。
- 配列番号130aを含む化合物。
- 配列番号131aを含む化合物。
- 配列番号132aを含む化合物。
- 配列番号133aを含む化合物。
- 3'末端LNAが対応するヌクレオチドで置き換えられている、請求項74〜104のいずれか一項に記載の化合物。
- 請求項1〜73のいずれか一項に記載の化合物と、前記化合物に共有結合された少なくとも1つの非ヌクレオチドまたは非ポリヌクレオチド部分とを含むコンジュゲート。
- 請求項1〜105のいずれか一項に記載の化合物または請求項106に記載のコンジュゲートと、医薬的に許容できる希釈剤、担体または佐剤とを含む医薬組成物。
- 少なくとも1つの化学療法剤を更に含み、ここで、該アンチセンスオリゴおよび化学療法剤の1個以上の同じ医薬組成物を併用処置とする、請求項107に記載の医薬組成物。
- 前記化学療法剤が、副腎皮質ステロイド(プレドニゾン、デキサメタゾンまたはデカドロンなど)、アルトレタミン(ヘキサレン、ヘキサメチルメラミン(HMM))、アミフォスチン(エチオール)、アミノグルテチミド(シタドレン)、アムサクリン(M-AMSA)、アナストロゾール(アリミデクス)、アンドロゲン(テストステロンなど)、アスパラギナーゼ(エルスパー)、カルメットゲラン桿菌、ビカルタミド(カソデックス)、ブレオマイシン(ブレノキサン)、ブスルファン(ミレラン)、カルボプラチン(パラプラチン)、カルムスチン(BCNU、BiCNU)、クロラムブシル(リューケラン)、クロロデオキシアデノシン(2-CDA、クラドリビン、ロイスタチン)、シスプラチン(プラチノール)、シトシンアラビノシド(シタラビン)、ダカルバジン(DTIC)、ダクチノマイシン(アクチノマイシンD、コスメゲン)、ダウノルビシン(セルビジン)、ドセタキセル(タキソテール)、ドキソルビシン(アドリアマイシン)、エピルビシン、エストラムスチン(emcyt)、エストロゲン(ジエチルスチルベストロール(DES)など)、エトポシド(VP-16、ベプシド、エトポフォス)、フルダラビン(フルダラ)、フルタミド(ユーレキシン))、5-FUDR(フロクスウリジン)、5-フルオロウラシル(5-FU)、ゲムシタビン(ゲムザール)、ゴセレリン(ゾダレックス)、ハーセプチン(トラスツズマブ)、ヒドロキシ尿素(ハイドレア)、イダルビシン(イダマイシン)、イホスファミド、IL-2(プロロイキン、アルデスロイキン)、インターフェロン・アルファ(イントロンA、ロフェロンA)、イリノテカン(カンプトサール)、ロイプロリド(ルプロン)、レバミソール(エルガミソール)、ロムスチン(CCNU)、メクロルエタミン(マスターゲン、ナイトロジェンマスタード)、メルファラン(アルケラン)、メルカプトプリン(プリネトール、6-MP)、メトトレキセート(メキセート)、マイトマイシンC(ムタムチン)、ミトキサントロン(ノバントロン)、オクトレオチド(サンドスタチン)、ペントスタチン(2-デオキシコホルマイシン、ニペント)、プリカマイシン(ミトラマイシン、ミトラシン)、プロカルバジン(マチュラン)、ストレプトゾシン、タモキシフェン(ノルバデックス)、タキソール(パクリタキセル)、テニポシド(ビュウモン、VM-26)、チオテパ、トポテカン(ハイカムチン)、トレチノイン(ベサノイド、全トランス型レチノイン酸)、ビンブラスチン(バルバン)、ビンクリスチン(オンコビン)およびビノレルビン(ナベルビン)からなる群より選択される、請求項108の医薬組成物。
- 医薬として使用するための、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物または請求項106に定義したコンジュゲート。
- 癌を処置するための医薬の製造を目的とする、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物または請求項106に定義したコンジュゲートの使用。
- 前記癌が固形腫瘍の形態をしている、請求項111に記載の使用。
- 前記癌が癌腫である、請求項111または112に記載の使用。
- 前記癌腫が、悪性黒色腫、基底細胞癌、卵巣癌、乳癌、非小細胞肺癌、腎細胞癌、膀胱癌、再発性表在性膀胱癌、胃癌、前立腺癌、膵癌、肺癌、子宮頸癌、子宮頚部形成異常、咽頭乳頭腫症、結腸癌、結腸直腸癌および類癌腫からなる群より選択される、請求項113に記載の使用。
- 前記癌腫が、悪性黒色腫、非小細胞肺癌、乳癌、結腸癌および腎細胞癌からなる群より選択される、請求項114に記載の使用。
- 前記悪性黒色腫が、表在拡大型黒色腫、結節型黒色腫、悪性黒子型黒色腫、先端黒色腫、メラニン欠乏症黒色腫および線維硬化性黒色腫からなる群より選択される、請求項115に記載の使用。
- 前記癌が肉腫である、請求項111または112のいずれかに記載の使用。
- 前記肉腫が、骨肉腫、ユーイング肉腫、軟骨肉腫、悪性線維性組織球腫、線維肉腫およびカポジ肉腫からなる群より選択される、請求項117に記載の使用。
- 前記癌が神経膠腫である、請求項111または112のいずれかに記載の使用。
- 癌を処置する方法であって、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物、請求項106に定義したコンジュゲート、または請求項107〜109のいずれか一項に定義した医薬組成物を、その必要がある患者に投与することを含む方法。
- 前記癌が固形腫瘍の形態をしている、請求項120に記載の方法。
- 前記癌が癌腫である、請求項120に記載の方法。
- 前記癌腫が、悪性黒色腫、基底細胞癌、卵巣癌、乳癌、非小細胞肺癌、腎細胞癌、膀胱癌、再発性表在性膀胱癌、胃癌、前立腺癌、膵癌、肺癌、子宮頸癌、子宮頚部形成異常、咽頭乳頭腫症、結腸癌、結腸直腸癌癌腫および類癌腫からなる群より選択される、請求項122に記載の方法。
- 前記癌腫が、悪性黒色腫、非小細胞肺癌、乳癌、結腸癌および腎細胞癌からなる群より選択される、請求項123に記載の方法。
- 前記悪性黒色腫が、表在拡大型黒色腫、結節型黒色腫、悪性黒子型黒色腫、先端黒色腫、メラニン欠乏症黒色腫および線維硬化性黒色腫からなる群より選択される、請求項124に記載の方法。
- 前記癌が肉腫である、請求項120に記載の方法。
- 前記肉腫が、骨肉腫、ユーイング肉腫、軟骨肉腫、悪性線維性組織球腫、線維肉腫およびカポジ肉腫からなる群より選択される、請求項126に記載の方法。
- 前記癌が神経膠腫である、請求項120または121に記載の方法。
- アテローム性動脈硬化症、乾癬、糖尿病性網膜症、慢性関節リウマチ、喘息、疣贅およびアレルギー性皮膚炎を処置するための医薬の製造を目的とする、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物または請求項106に定義したコンジュゲートの使用。
- 癌を処置するための医薬の製造を目的とする、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物または請求項106に定義したコンジュゲートの使用であって、前記医薬が、副腎皮質ステロイド(プレドニゾン、デキサメタゾンまたはデカドロンなど)、アルトレタミン(ヘキサレン、ヘキサメチルメラミン(HMM))、アミフォスチン(エチオール)、アミノグルテチミド(シタドレン)、アムサクリン(M-AMSA)、アナストロゾール(アリミデクス)、アンドロゲン(テストステロンなど)、アスパラギナーゼ(エルスパー)、カルメットゲラン桿菌、ビカルタミド(カソデックス)、ブレオマイシン(ブレノキサン)、ブスルファン(ミレラン)、カルボプラチン(パラプラチン)、カルムスチン(BCNU、BiCNU)、クロラムブシル(リューケラン)、クロロデオキシアデノシン(2-CDA、クラドリビン、ロイスタチン)、シスプラチン(プラチノール)、シトシンアラビノシド(シタラビン)、ダカルバジン(DTIC)、ダクチノマイシン(アクチノマイシンD、コスメゲン)、ダウノルビシン(セルビジン)、ドセタキセル(タキソテール)、ドキソルビシン(アドリアマイシン)、エピルビシン、エストラムスチン(emcyt)、エストロゲン(ジエチルスチルベストロール(DES)など)、エトポシド(VP-16、ベプシド、エトポフォス)、フルダラビン(フルダラ)、フルタミド(ユーレキシン)、5-FUDR(フロクスウリジン)、5-フルオロウラシル(5-FU)、ゲムシタビン(ゲムザール)、ゴセレリン(ゾダレックス)、ハーセプチン(トラスツズマブ)、ヒドロキシ尿素(ハイドレア)、イダルビシン(イダマイシン)、イホスファミド、IL-2(プロロイキン、アルデスロイキン)、インターフェロン・アルファ(イントロンA、ロフェロンA)、イリノテカン(カンプトサール)、ロイプロリド(ルプロン)、レバミソール(エルガミソール)、ロムスチン(CCNU)、メクロルエタミン(マスターゲン、ナイトロジェンマスタード)、メルファラン(アルケラン)、メルカプトプリン(プリネトール、6-MP)、メトトレキセート(メキセート)、マイトマイシンC(ムタムチン)、ミトキサントロン(ノバントロン)、オクトレオチド(サンドスタチン)、ペントスタチン(2-デオキシコホルマイシン、ニペント)、プリカマイシン(ミトラマイシン、ミトラシン)、プロカルバジン(マチュラン)、ストレプトゾシン、タモキシフェン(ノルバデックス)、タキソール(パクリタキセル)、テニポシド(ビュウモン、VM-26)、チオテパ、トポテカン(ハイカムチン)、トレチノイン(ベサノイド、全トランス型レチノイン酸)、ビンブラスチン(バルバン)、ビンクリスチン(オンコビン)およびビノレルビン(ナベルビン)からなる群より選択される化学療法剤をさらに含む使用。
- 化学療法剤が、タキソール、パクリタキセルまたはドセタキセルなどのタキサン類から選択される、請求項130に記載の使用。
- 癌を処置するための医薬の製造を目的とする、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物または請求項106に定義したコンジュゲートの使用であって、前記処置が、副腎皮質ステロイド(プレドニゾン、デキサメタゾンまたはデカドロンなど)、アルトレタミン(ヘキサレン、ヘキサメチルメラミン(HMM))、アミフォスチン(エチオール)、アミノグルテチミド(シタドレン)、アムサクリン(M-AMSA)、アナストロゾール(アリミデクス)、アンドロゲン(テストステロンなど)、アスパラギナーゼ(エルスパー)、カルメットゲラン桿菌、ビカルタミド(カソデックス)、ブレオマイシン(ブレノキサン)、ブスルファン(ミレラン)、カルボプラチン(パラプラチン)、カルムスチン(BCNU、BiCNU)、クロラムブシル(リューケラン)、クロロデオキシアデノシン(2-CDA、クラドリビン、ロイスタチン)、シスプラチン(プラチノール)、シトシンアラビノシド(シタラビン)、ダカルバジン(DTIC)、ダクチノマイシン(アクチノマイシンD、コスメゲン)、ダウノルビシン(セルビジン)、ドセタキセル(タキソテール)、ドキソルビシン(アドリアマイシン)、エピルビシン、エストラムスチン(emcyt)、エストロゲン(ジエチルスチルベストロール(DES)など)、エトポシド(VP-16、ベプシド、エトポフォス)、フルダラビン(フルダラ)、フルタミド(ユーレキシン)、5-FUDR(フロクスウリジン)、5-フルオロウラシル(5-FU)、ゲムシタビン(ゲムザール)、ゴセレリン(ゾダレックス)、ハーセプチン(トラスツズマブ)、ヒドロキシ尿素(ハイドレア)、イダルビシン(イダマイシン)、イホスファミド、IL-2(プロロイキン、アルデスロイキン)、インターフェロン・アルファ(イントロンA、ロフェロンA)、イリノテカン(カンプトサール)、ロイプロリド(ルプロン)、レバミソール(エルガミソール)、ロムスチン(CCNU)、メクロルエタミン(マスターゲン、ナイトロジェンマスタード)、メルファラン(アルケラン)、メルカプトプリン(プリネトール、6-MP)、メトトレキセート(メキセート)、マイトマイシンC(ムタムチン)、ミトキサントロン(ノバントロン)、オクトレオチド(サンドスタチン)、ペントスタチン(2-デオキシコホルマイシン、ニペント)、プリカマイシン(ミトラマイシン、ミトラシン)、プロカルバジン(マチュラン)、ストレプトゾシン、タモキシフェン(ノルバデックス)、タキソール(パクリタキセル)、テニポシド(ビュウモン、VM-26)、チオテパ、トポテカン(ハイカムチン)、トレチノイン(ベサノイド、全トランス型レチノイン酸)、ビンブラスチン(バルバン)、ビンクリスチン(オンコビン)およびビノレルビン(ナベルビン)からなる群より選択されるさらなる化学療法剤の投与をさらに含む使用。
- 前記処置が、タキソール、パクリタキセルまたはドセタキセルなどのタキサン類から選択されるさらなる化学療法剤の投与をさらに含む、請求項132に記載の使用。
- 癌を処置する方法であって、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物、請求項106に定義したコンジュゲート、または請求項107〜109のいずれか一項に定義した医薬組成物を、その必要がある患者に投与することを含み、さらに、副腎皮質ステロイド(プレドニゾン、デキサメタゾンまたはデカドロンなど)、アルトレタミン(ヘキサレン、ヘキサメチルメラミン(HMM))、アミフォスチン(エチオール)、アミノグルテチミド(シタドレン)、アムサクリン(M-AMSA)、アナストロゾール(アリミデクス)、アンドロゲン(テストステロンなど)、アスパラギナーゼ(エルスパー)、カルメットゲラン桿菌、ビカルタミド(カソデックス)、ブレオマイシン(ブレノキサン)、ブスルファン(ミレラン)、カルボプラチン(パラプラチン)、カルムスチン(BCNU、BiCNU)、クロラムブシル(リューケラン)、クロロデオキシアデノシン(2-CDA、クラドリビン、ロイスタチン)、シスプラチン(プラチノール)、シトシンアラビノシド(シタラビン)、ダカルバジン(DTIC)、ダクチノマイシン(アクチノマイシンD、コスメゲン)、ダウノルビシン(セルビジン)、ドセタキセル(タキソテール)、ドキソルビシン(アドリアマイシン)、エピルビシン、エストラムスチン(emcyt)、エストロゲン(ジエチルスチルベストロール(DES)など)、エトポシド(VP-16、ベプシド、エトポフォス)、フルダラビン(フルダラ)、フルタミド(ユーレキシン)、5-FUDR(フロクスウリジン)、5-フルオロウラシル(5-FU)、ゲムシタビン(ゲムザール)、ゴセレリン(ゾダレックス)、ハーセプチン(トラスツズマブ)、ヒドロキシ尿素(ハイドレア)、イダルビシン(イダマイシン)、イホスファミド、IL-2(プロロイキン、アルデスロイキン)、インターフェロン・アルファ(イントロンA、ロフェロンA)、イリノテカン(カンプトサール)、ロイプロリド(ルプロン)、レバミソール(エルガミソール)、ロムスチン(CCNU)、メクロルエタミン(マスターゲン、ナイトロジェンマスタード)、メルファラン(アルケラン)、メルカプトプリン(プリネトール、6-MP)、メトトレキセート(メキセート)、マイトマイシンC(ムタムチン)、ミトキサントロン(ノバントロン)、オクトレオチド(サンドスタチン)、ペントスタチン(2-デオキシコホルマイシン、ニペント)、プリカマイシン(ミトラマイシン、ミトラシン)、プロカルバジン(マチュラン)、ストレプトゾシン、タモキシフェン(ノルバデックス)、タキソール(パクリタキセル)、テニポシド(ビュウモン、VM-26)、チオテパ、トポテカン(ハイカムチン)、トレチノイン(ベサノイド、全トランス型レチノイン酸)、ビンブラスチン(バルバン)、ビンクリスチン(オンコビン)およびビノレルビン(ナベルビン)からなる群より選択されるさらなる化学療法剤を投与することを含む方法。
- 癌を処置する方法であって、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物、請求項106に定義したコンジュゲート、または請求項107〜109のいずれか一項に定義した医薬組成物を、その必要がある患者に投与することを含み、さらに、タキサン類、特にタキソール、パクリタキセルまたはドセタキセルからなる群より選択されるさらなる化学療法剤を投与することを含む方法。
- 異常な血管新生によって起こる疾患を患っている哺乳動物またはそのような疾患に罹りやすい哺乳動物を処置する方法であって、サバイビンを標的とするオリゴヌクレオチドであって1以上のLNA単位を含むオリゴヌクレオチドの治療有効量を、その哺乳動物に投与することを含む方法。
- アポトーシスを防止または制限する方法であって、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物、請求項106に定義したコンジュゲート、または請求項107〜109のいずれか一項に定義した医薬組成物を投与することを含む方法。
- 細胞増殖を防止する方法であって、請求項1〜105のいずれか一項に定義した化合物、請求項106に定義したコンジュゲート、または請求項107〜109のいずれか一項に定義した医薬組成物を投与することを含む方法。
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