JP2004537604A - ホップ抽出物、それらの製法、およびそれらの使用 - Google Patents

ホップ抽出物、それらの製法、およびそれらの使用 Download PDF

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Abstract

プレニル化カルコンおよびプレニル化フラボンの含有率が従来よりも高い新規なホップ抽出物、前記抽出物の製法、そのようなホップ抽出物を含んでなる薬学的調整品、並びにエストロゲンの欠乏によって、または、性ホルモンに関連する代謝の異常によって生じる病的状態を予防および治療するためのこれらのホップ抽出物の使用が提供される。

Description

【技術分野】
【0001】
本発明は、ホップ抽出物、前記抽出物の製法、およびエストロゲンの欠乏によって、または、性ホルモンに関連する代謝、特にエストロゲン代謝の異常によって生じる病的状態を予防および治療するための前記抽出物の使用に関する。
【背景技術】
【0002】
ホップの最も重要な使い途は、未だ、ビールの製造におけるその使用である。その苦味剤および調味剤のため、ホップはビールの味の決め手となる。さらに、これらの剤は、その抗微生物的な性質によって、ビールの保存と特定の関連があることも分かっている。
【0003】
80年代初頭、連邦健康機関のE局が、その時代のホップ分野における科学知識から肯定的な論文を発表した(1985年12月5日および1990年3月13日付けのBundesanzeiger)。このように、睡眠障害、興奮および不安の処置にホップを用いることは、基本的に容認されている。
【0004】
すでに長い間、ホップは、市販薬中の緩和な鎮静薬として、薬剤と関連があった。この作用を及ぼしているのは酸化に敏感なα−およびβ−苦味酸であると考えられる。近代において、これらの成分はラジカルトラップ性および脂質過酸化抑制性も示すことが示された(M.Tagashira et al., Biosci. Biotech. Biochem. 59, 740−742(1995))。さらに、欧州特許出願0677289A2には、α−苦味酸およびα−イソ−苦味酸からなる群から選択される化合物を含有する骨粗鬆症の治療するための薬学的組成物が記載されている。
【0005】
また、ここ数年、α−およびβ−苦味酸に加えて、ホップのフェノール成分がますます詳しく調査されており(J.Holzl, Zeitschrift fur Phytotherapie 13, 155−161(1992))、また従来公知のキサントフモール(xanthohumol)1に加えて、さらに、フラボン型化合物もホップの苗から見つかっている(J.F.Stevens et al., Phytochemistry 44, 1575−1585(1997), J.F.Stevens et al., J.Chromat. A 832(1−2), 97−107(1999))。これらは、主に、例えば6−または8−プレニルナリンゲニン2および3、並びにイソキサントフモール(isoxanthohumol)4のごときイソプレニル化フラボノイドであった。さらにStevens et al.(Phytochemistry 53, 759−775(2000))は、ホップ種およびホップ分類群の化学分類を調査した。
【0006】
【化1】
Figure 2004537604
【0007】
ホップを摂取した女性達に生理不順が起こることが何度も確認された。この症状はホップ中のエストロゲン物質に由来するものであるが、いずれの成分とも明確に関連付けることができなかった。しばらくして、ホップのこのエストロゲン作用を確認することができた。すなわち、特に8−プレニルナリンゲニン3がこの症状を引き起こしていることが証明された(S.R.Milligan et al., J. Clin. Endocrinol. Metab. 84, 2249−2252(1999)).この化合物の生体外でのエストロゲン作用は、エストロゲン受容体に対するその相対結合親和性から現れるものであり、特に、Ishikawa−Var−I−cells中のアルカリ性ホスファターゼを刺激することによって検知された。その結果、8−プレニルナリンゲニンは、クメストロール、ゲニステインまたはダイドゼインのごとき従来公知のフィトエストロゲンよりも著しく活性であり、かつ、17β−エストラジオールよりもわずかに弱い効果を生み出すことが証明された。さらにMilligan et al.(J. Endocrin. Metabol. 85, 4912−4915(2000))は、酵母細胞内に発現させた人間のエストロゲン受容体に対するホップの異なるフェノール成分の結合についても報告している。その結果、ここでも8−プレニルナリンゲニンが最も強いエストロゲン作用を示した。6−プレニルナリンゲニン、6,8−ジプレニルナリンゲニンおよび8−ゲラニルナリンゲニンは、8−プレニルナリンゲニンよりも弱いエストロゲン作用を示した。Miyamoto et al. (Planta Med. 64. 516−519(1998))によって、8−プレニルナリンゲニンが卵巣を切除されたラットの子宮の重量および骨密度を正常化することが証明された。さらに、8−プレニルナリンゲニンを初めとする一連の8−プレニル化フラボン誘導体のエストロゲン拮抗作用はJP 08 165238(ref. CA 125:158632)に記載されている。
【0008】
最近の研究によって、ホップの一部のフラボノイド、特にキサントフモール1、が細胞の代謝に影響を与え得ることが証明された。それらのフラボノイドは、腫瘍細胞の成長において重要な役割を果たす酵素反応によい影響を与えることができる。従って、これらの化合物は癌予防剤であると考えられる(conference of the German Society of Hop Research, present German Society of Hop Research, present knowledge concerning the hop ingredient xanthohumol, March 24, 1998, Aschheim)。Miranda et al.(Food Chem. Tox. 37(4), 271−285 (1999))によって、人間の乳癌細胞MCF−7、大腸癌細胞系HAT−29および卵巣癌細胞系A−2780におけるキサントフモール1およびイソキサントフモール4の強い増殖抑制作用が報告されている。
【0009】
さらに、キサントフモール1には骨溶解を抑制する作用があることが証明されている。骨粗鬆症に対する治療薬としてのその使用は、欧州特許EP0679393B1に記載されている。発明者らはキサントフモールのエストロゲン作用を主張しているが、前記作用は証明されていない。これに反して、S. R. Milligan et al.(Pharm. Pharmacol. Lett. 7, 83−86(1997))は、キサントフモールの骨粗鬆症抑制作用は人間の子宮内膜癌細胞系イシカワにもイーストレポータージーンアッセイにも認められないので、前記作用がエストロゲン作用に基づくということをはっきりと除外している(S. R. Milligan et al., J. Clin. Endocrinol. Metabol. 84, 2249−2252(1999))。これらの考察に反して、本発明は、同等の作用を有するキサントフモール1およびイソキサントフモール4がエストロゲン受容体αおよびβに結合することを証明している。
【0010】
KumaiおよびOkamoto(Toxicology Letters 21, 203−207(1984))によって、ホップの単なる水性抽出物から得られる高分子量炭水化物分画が、PMSゴナドトロピンによって前処理された若いラットの卵巣の重量を減少させることが報告されている。OkamotoおよびKumai(Acta Endocrinologica 127, 371−377(1992))は、前記ホップの単なる水性抽出物の投与による17βエストラジオールおよびLHの血中濃度の減少の観察に基づいて、これらの結果を支持している。
【0011】
キサントフモールの含有率が高められたホップ抽出物がドイツ特許出願DE19939350A1に記載されている。この抽出物は、ビールおよび果汁の入った清涼飲料に添加される。この抽出物中にプレニル化ナリンゲニンが存在するかどうかは全く知られていない。ある実施態様によれば、キサントフモールは、50重量%のエタノールを用いて、ホップから抽出される。しかしながら、これは理想的なキサントフモールの抽出方法ではない。その理由は、高い含有量(>80重量%)のエタノールが用いられるまでは、抽出物へ移行する割合が高くならないためである。
【0012】
エストロゲン活性化合物をホップから単離させる方法がWO83/00701A1において特許請求されている。前記方法では、同調因子としてまず水を添加することによってホップからの二酸化炭素抽出物を得た後、エーテルを用いた抽出またはクロマトグラフ法によって前記抽出物からエストロゲン活性化合物を得る。さらに、動物の飼料や化粧品のための添加剤または入浴添加剤としてのこれらの化合物の使用も特許請求されている。これらのエストロゲン活性化合物の種類についての詳細は何も記載されていない。
【0013】
ビールを醸造するための安定した添加剤を単離するための方法がWO01/30961A1において特許請求されている。前記方法では、二酸化炭素抽出からのホップかすの残留物を極性溶媒、好ましくは熱湯で抽出した後、得られた抽出物を酸性化し、非極性溶媒、好ましくはヘキサンで洗浄し、任意に乾燥した後、醸造添加物として用いる。残ったかすは廃棄する。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【0014】
本発明の第1の目的は、エストロゲンの欠乏によって、または、性ホルモンに関連する代謝、特にエストロゲン代謝の異常によって生じる病的状態を予防および治療するための薬剤を製造するのに好適な植物抽出物を提供することである。
【0015】
本発明のさらなる目的は、そのような抽出物の製法、および、前記病的状態を治療するのに好適な前記抽出物を含んでなる薬学的調整品を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【0016】
本発明によれば、これらの目的は、請求項1および2に記載のホップ抽出物、請求項3〜12に記載の方法、請求項13に記載の薬学的調整品、および請求項14〜16に記載の前記抽出物または前記薬学的調整品の使用によって達成される。
【発明を実施するための最良の形態】
【0017】
本発明は、とりわけ、以下の驚くべき観察結果、すなわち、親油性繊維および親水性繊維を取り除いた後に、ホップのフロログルシノール型苦味酸を未だ含有すると同時に、キサントフモール、イソキサントフモールおよび6−および8−プレニルナリンゲニンのごとき遊離および/または結合カルコンおよびフラボンも豊富に含有するホップドラッグから抽出物が得られるということに基づいている。6−および8−プレニルナリンゲニンの含有率が水による予備抽出の温度に依存する事実(実施例3を参照)およびそれは最大約2倍に増えることがあるという事実は、特に驚くべきことである。
【0018】
図1は、水による予備抽出の温度に対する分析成分の濃度の依存を示している。
【0019】
そのような抽出物は、C5〜C7アルカンまたは超臨界CO2を用いて1回以上抽出を行い(脂肪を除去する工程)、その後、残ったドラッグ残留物を水で抽出した後、まだ残っているドラッグ残留物をアルコール、水性アルコール、ケトン、水性ケトンおよびエステルからなる群から選択される極性が中位の溶媒を用いて抽出し、そして任意に液−液分散を行うことによって得ることができる。驚くべきことに、ホップの苦味酸の親油性抽出物への移行は完全にではなく部分的にのみ起こる。一方、カルコンおよびフラボンは、水を用いた抽出を行っている間、ドラッグ残留物中にほぼ完全に残ったままである。これにより、薬学的に関連のある成分(苦味酸、カルコン、フラボン)のすべてをバランスのとれた割合で含有するホップ抽出物を得ることができる。いくつかの治療原理を用いたこの有利な組成により、この抽出物は、エストロゲンの欠乏によって、または、他のホルモンに関連する異常によって生じる病的状態に理想的に適用することができる。
【0020】
本発明によるホップ抽出物は、女性の更年期障害または閉経後の障害を予防および治療するのに好適である。その症状としては、特に、顔面紅潮、鬱病、不安症、精神錯乱、不眠症、並びに、骨粗鬆症、循環系の病気、脳梗塞(脳卒中)、痴呆症および腫瘍のごとき閉経後の深刻な健康上の問題が挙げられる。性ホルモンに関連する代謝の異常が原因であり、かつ、本発明の抽出物を用いて治療することのできる他の病気の例としては、無月経、無***性周期、機能性子宮出血、月経前障害および産後抑うつ症が挙げられる。同様に、これらの抽出物は、男性の性ホルモン依存性の病気、例えば良性前立腺肥大または前立腺の癌種の治療に用いることもできる。
【0021】
本発明のホップ抽出物の驚くほど高いエストロゲン活性は、人間のエストロゲン受容体αおよびβのための競合受容体結合分析法および17βエストラジオールの活性と比較した組み換え酵母分析法の両方で検出された。これに反して、同量の慣用の標準的なホップ抽出物は、それよりも本質的に低い活性を示すか、まったく活性を示さない。図2は、イーストレポータージーンアッセイにおける比較対象抽出物の活性と、本発明による2種類のホップ抽出物の活性を示している。
【0022】
本発明によれば、慣用の、特に水性アルコール抽出物と比べて遊離および/または結合カルコンおよびフラボン、特に6−および8−プレニルナリンゲニン、キサントフモールおよびイソキサントフモールの含有率が高いホップ抽出物が提供される。さらに前記ホップ抽出物は、α苦味酸およびおそらくはβ苦味酸(それぞれ、フムロンおよびルポロンおよびそれらの誘導体)も含有する。
【0023】
さらに、本発明によれば、これらのホップ抽出物の調製法が提供される。前記調製法は、
(a)C5〜C7アルカンまたは超臨界CO2を用いてホップドラッグを1回以上抽出し、抽出溶液から残留ドラッグを分離する工程と、
(b)工程(a)で得られた残留ドラッグを水を用いて1回以上抽出し、前記残留ドラッグを分離する工程と、
(c)工程(b)で得られた残留ドラッグをアルコール、水性アルコール、ケトン、水性ケトンおよびエステルからなる群から選択される溶媒を用いて1回以上抽出し、得られた抽出溶液を濾過する工程と、
(d)工程(c)で得られた合体した抽出溶液から溶媒を除去し、得られた残留物を乾燥させる工程と、
を含んでなる。
【0024】
各抽出工程におけるドラッグ対溶媒比は、約1:7〜約1:12である。
【0025】
工程(a)におけるC5〜C7アルカンまたは超臨界CO2を用いた抽出は、1回、2回または3回行うのが好ましく、3回行うのが特に好ましい。
【0026】
超臨界CO2を用いた抽出が特に好ましい。
【0027】
工程(a)で用いたC5〜C7アルカンは、n−ペンタン、n−ヘキサンおよびn−ヘプタンからなる群から選択されるC5〜C7n−アルカンであることが好ましく、n−ヘプタンであることが特に好ましい。
【0028】
工程(b)における抽出は、60〜95℃の温度、好ましくは90℃で行われることが好ましい。前記抽出は1時間以上の時間を掛けてもよい。
【0029】
工程(c)で用いられる溶媒は、エタノール、水性エタノール、メタノール、水性メタノール、アセトン、水性アセトンおよびエチルアセテートからなる群から選択されることが好ましい。80〜96%(w/w)エタノール、74〜99%(w/w)メタノールおよび60〜99%(w/w)アセトンが好ましく、92%(w/w)エタノールが特に好ましい。
【0030】
本発明による(乾燥)ホップ抽出物は、α苦味酸の含有率が少なくとも0.5%、好ましくは少なくとも0.8%、特に好ましくは1%であり、キサントフモールの含有率が少なくとも2%、好ましくは少なくとも3%、特に好ましくは4%であり、そしてプレニル化フラボンの含有率が少なくとも0.5%、好ましくは少なくとも0.7%である。前記プレニル化フラボンは、6−プレニルナリンゲニン、8−プレニルナリンゲニンおよびイソキサントフモールからなることが好ましい。本発明において、キサントフモールは前記プレニル化フラボンに包含されない。%表示は、前記乾燥ホップ抽出物の重量に基づいている。
【0031】
得られた抽出物は、慣用の薬学的に許容できる添加剤と共に、カプセル、フィルム錠またはコーティング錠のごとき薬学的調整品へと加工することができる。フィルム錠およびコーティング錠用の充填剤、結合剤、錠剤分解物質、滑剤および被覆剤、並びに、ゼラチンカプセル用の充填剤としての油脂を薬学的添加物として用いることができる。
【0032】
本発明による抽出物は、エストロゲンの欠乏によって、または、他のホルモンに関連する異常によって生じる病的状態、例えば特に更年期障害、性ホルモン依存性癌、良性前立腺肥大症、骨粗鬆症、アルツハイマー病および循環系の病気を予防および治療するために用いることができる。性ホルモン依存性癌の場合、本発明による抽出物は、特に乳癌、子宮癌および前立腺癌を予防および治療するために用いることができる。
【0033】
本発明による抽出物の投与量としては、1日当たり0.005〜2gの抽出物を1〜4回、好ましくは1日当たり0.02〜1gの抽出物を1〜2回投与する。個々の場合、前記投与量は臨床像および各患者の状態に依存し、主治医がそれぞれの必要条件に合わせて調節することができる。
【実施例】
【0034】
下記実施例によって本発明をさらに詳しく説明するが、それらは本発明を限定するものであると解釈されるべきではない。特に断らない限り、すべての%表示は重量に基づくものである。
【0035】
比較例: 予備脱脂処理を行わない96%(W/W)エタノールを用いた抽出物の製造
50gのホップドラッグ(種類:Hallertauer Magnum)を500gの96%(W/W)エタノールと混ぜ合わせて、ultraturraxを用いて細かくした。60℃で1時間抽出を行った。そして、得られた抽出物をSeitz1500型フィルターを用いて濾過した。ドラッグを同じ方法でさらに2回抽出した。抽出溶液を合体したものを回転式蒸発器でエタノールから分離させ、真空乾燥キャビネット内で50℃で一晩乾燥させた。下記HPLC法を用いて乾燥物から特性成分の含有率を求めた。このHPLC法は、他の実施例における成分の測定にも用いられる。
【0036】
【表1】
Figure 2004537604
【0037】
収率(96%(w/w)エタノール抽出物): 18.38g⇒36.8%
ホップのα苦味酸のHPLC含有率: 19.8%
ホップのβ苦味酸のHPLC含有率: 4.2%
キサントフモールのHPLC含有率: 1.3%
6−および8−プレニルナリンゲニンおよびイソキサントフモールのHPLC含有率: 検出限界値未満(<0.01%)
【0038】
実施例1a:(CO 2 を用いた抽出の後に水を用いた予備抽出を90℃で行う)ホップ抽 出物の製造
超臨界CO2、水および92%(w/w)エタノールを用いた連続抽出:
超臨界CO2を用いて予備抽出(条件:10mmの粒径まで粉砕した後、250バール/50℃でCO2を用いて抽出を行い、得られた抽出物を30%の収率で分離)した80.6gのホップドラッグ(種類:Hallertauer Magnum)を、まず960gの水を用いてultraturraxで5分間抽出した後、攪拌しながら90℃で1時間抽出した。その後、得られた水抽出物をSeitz Supra Filter1500で濾過した。その後、まだ幾分湿っている残留ドラッグに対して、800gの92%(w/w)エタノールを用いた60℃における1時間の抽出を2回行った。その後、それをSeitz Supra1500で濾過し、得られた抽出溶液を水浴の温度が55〜65℃である回転式蒸発器でエタノールから分離させ、乾燥キャビネット内で60℃で乾燥させた。
【0039】
収率:
水による抽出からの残留物: 18.96g(23.5%)
92%(w/w)EtOHを用いた抽出からの残留物: 9.83g(12.2%)
(92%(w/w)EtOHを用いた抽出物に基づく)HPLC含有率:
ホップのα苦味酸のHPLC含有率: 2%
ホップのβ苦味酸のHPLC含有率: 0.5%
キサントフモールのHPLC含有率: 5.83%
6−プレニルナリンゲニンのHPLC含有率: 0.63%
8−プレニルナリンゲニンのHPLC含有率: 0.21%
イソキサントフモールのHPLC含有率: 0.42%
【0040】
実施例1b:(CO 2 を用いた抽出の後に水を用いた予備抽出を90℃で行う)ホップ抽出物の製造
超臨界CO2、水および92%(w/w)エタノールを用いた連続抽出:
まず超臨界CO2を用いて予備抽出(条件:10mmの粒径まで粉砕した後、250バール/50℃でCO2を用いて抽出を行い、得られた抽出物を30%の収率で分離)した504.26gのホップドラッグ(種類:Hallertauer Magnum)を、6kgの水を用いてultraturraxでまず5分間抽出した後、攪拌しながら90℃で1時間抽出した。その後、得られた水抽出物をSeitz Supra Filter1500で濾過した。その後、まだ幾分湿っている残留ドラッグに対して、5kgの92%(w/w)エタノールを用いた60℃における1時間の抽出を2回行った。その後、それをSeitz Supra1500で濾過し、得られた抽出溶液を水浴の温度が55〜65℃である回転式蒸発器でエタノールから分離させ、乾燥キャビネット内で60℃で乾燥させた。
【0041】
収率:
水を用いた抽出からの残留物: 105.9g(21%)
92%(w/w)EtOHを用いた抽出からの残留物: 69.37g(13.8%)
(92%(w/w)EtOHを用いた抽出物に基づく)HPLC含有率:
ホップのα苦味酸のHPLC含有率: 1%
ホップのβ苦味酸のHPLC含有率: 0.5%
キサントフモールのHPLC含有率: 4.41%
6−プレニルナリンゲニンのHPLC含有率: 0.49%
8−プレニルナリンゲニンのHPLC含有率: 0.15%
イソキサントフモールのHPLC含有率: 0.6%
【0042】
実施例2:(CO 2 を用いた抽出の後に水を用いた予備抽出を60℃で行う)ホップ抽出 物の製造
超臨界CO2、水および92%(w/w)エタノールを用いた連続抽出
超臨界CO2を用いて予備抽出(条件:10mmの粒径まで粉砕した後、250バール/50℃でCO2を用いて抽出を行い、得られた抽出物を30%の収率で分離)した80.36gのホップドラッグ(種類:Hallertauer Mgnum)を、まず964gの水を用いてultraturraxで5分間抽出した後、攪拌しながら60℃で1時間抽出した。その後、得られた水抽出物をSeitz Supra Filter1500で濾過した。その後、まだ幾分湿っている残留ドラッグに対して、800gの92%(w/w)エタノールを用いてultraturraxでまず5分間抽出を行った後に攪拌しながら60℃で1時間抽出を行うという工程を2回行った。その後、それをSeitz Supra1500で濾過し、得られた抽出溶液を水浴の温度が55〜65℃である回転式蒸発器でエタノールから分離させ、乾燥キャビネット内で60℃で乾燥させた。
【0043】
収率:
水を用いた抽出からの残留物: 17.91g(22%)
92%(w/w)EtOHを用いた抽出からの残留物: 9.95g(12.4%)
(92%(w/w)EtOHを用いた抽出物に基づく)HPLC含有率:
ホップのα苦味酸のHPLC含有率: 1.58%
ホップのβ苦味酸のHPLC含有率: 0%
キサントフモールのHPLC含有率: 6.1%
6−プレニルナリンゲニンのHPLC含有率: 0.4%
8−プレニルナリンゲニンのHPLC含有率: 0.09%
イソキサントフモールのHPLC含有率: 0.21%
【0044】
実施例3:(n−ヘプタンを用いた抽出の後に水を用いて90℃で抽出を行う)ホップ抽出物の製造
247.6gのホップドラッグ(種類:Hallertauer Magnum)を、その重量の7倍のn−ヘプタンを用いてultraturraxでまず5分間抽出した後、攪拌しながら1時間抽出した。得られたヘプタン抽出溶液をSeitz Supra1500で濾過した後、同じ方法でそれを再び抽出した。その後、得られた残留ドラッグを真空乾燥キャビネット内でヘプタンから分離させた。そして、乾燥した残留ドラッグ(205g)をその重量の12倍の水と混ぜ合わせた後、90℃で1時間保持した。その後、それを再び濾過し、そしてまだ幾分湿っている残留ドラッグを、その重量の10倍の92%(w/w)エタノールを用いて、攪拌しながら60℃で2回抽出した。その後、それをSeitz Supra1500で濾過し、得られた抽出溶液を水浴の温度が55〜65℃である回転式蒸発器でエタノールから分離させ、乾燥キャビネット内で60℃で乾燥させた。
【0045】
収率:
ヘプタンを用いた抽出物: 26.4g(10.7%)
水を用いた抽出物: 41.1g(16.6%)
92%(w/w)エタノールを用いた抽出物: 52.0g(21.0%)
(92%(w/w)エタノールを用いた抽出物に基づく)HPLC含有率:
α苦味酸: 0.86%
β苦味酸: 0.05%
キサントフモール: 3.3%
6−プレニルナリンゲニン: 0.45%
8−プレニルナリンゲニン: 0.13%
イソキサントフモール: 0.25%
【0046】
実施例4: 6−プレニルナリンゲニン、8−プレニルナリンゲニンおよびイソキサントフモールの含有率の、水を用いた予備抽出の温度への依存
抽出: CO2を用いて予備抽出された約80gのホップドラッグを、その重量の12倍の水を用いてultraturraxでまず5分間抽出した後、攪拌しながら60、70、80、90および95℃で1時間抽出した。そして、水を用いて得られた抽出物をSeitz Supra1500で濾過した。その後、まだ幾分湿っている残留ドラッグに対して、800gの92%(w/w)エタノールを用いてultraturraxでまず5分間抽出を行った後に攪拌しながら60℃で1時間抽出を行うという工程を2回行った。その後、それをSeitz Supra1500で濾過し、得られた抽出溶液を水浴の温度が55〜65℃である回転式蒸発器でエタノールから分離させ、乾燥キャビネット内で60℃で乾燥させた。
【0047】
図1にグラフで表されている結果は、分析されたプレニル化成分の濃度が、水を用いた予備抽出の温度に大きく依存していることを示している。
【0048】
実施例5: エストロゲン活性についてのホップ抽出物の検査
人間のエストロゲン受容体α(ER−α)およびβ(ER−β)との相互作用について、抽出物、比較対象の抽出物および本発明による抽出物の各成分を検査するために、競合受容体結合分析法を実施した。これにより、放射性標識エストラジオールがまず人間のエストロゲン受容体と結合し、そして検査対象の試験物質で処理された。これにより、サンプルのエストロゲン能に対応する標識エストラジオールの一部が置換された。錯体がヒドロキシルアパタイトに結合した後に、余分なエストラジオールを洗い流した。エストロゲン受容体ER−αおよびER−βは、組み換えヒト受容体として市販されている。試験調製物は、それぞれ、1,000μlのTEDG緩衝液(10mMトリス、1.5mM EDTA、10%グリセロール、pH:7.5)、5μlの受容体(200nM)、10μlの3H−エストラジオールおよび10μlのエタノール(コントロール値)、10μlのジエチルスチロエストロール(100mM、ポジティブコントロール)または10μlの抽出物または前記抽出物の成分で構成されていた。前記調製物を慎重に混合し、室温で約16時間暗所で保温した。保温後、250μlのヒドロキシルアパタイト(HAP)を添加してたんぱく質を吸収させた。15分間の保温の間、前記調製物は、それぞれを5分間ずつずらしながら、手で混合した。10,000rpmで数秒間遠心分離を行うことによって沈殿物を分離し、上澄みをピペットで採取した。得られたペレットを1,000μlのTEDG緩衝液で3回洗浄し、測定のために1,000μlのエタノールを添加し、混合物を懸濁化させ、シンチレーション瓶に移した。9mlの液体シンチレータ(Ready Safe, Beckmann)を添加した後、Beckmannベータカウンタを用いて、完全な3Hウィンドウの測定を行った。
【0049】
試験物質の結合能の特徴付けは、エストラジオールの置換の量−効果プロットからED50値を求めることによって行われた。その結果は表1に示されており、検査されたすべての成分について両方のエストロゲン受容体との強い相互作用を示している。驚くべきことに、本発明による抽出物は、単体成分の活性のおかげで、予想よりも基本的に効果的であることが証明された。一方、比較用の抽出物は、本発明による抽出物の活性よりも少なくとも10倍弱い活性を両方の受容体に対して示した。
【0050】
【表2】
Figure 2004537604
【0051】
さらに、酵母細胞(サッカロミケス)を用いたレポータージーンアッセイによって、エストロゲン特性について抽出物を試験した。前記細胞を人間のα−エストロゲン受容体およびエストロゲン応答配列とβ−ガラクトシダーゼ酵素のための遺伝子とを含有する発現プラスミドで安定してトランスフェクトした。すべてのサンプルを20mg/mlの濃度でDMSOに溶かし、希釈せずに、または、1/10、1/100または1/1000の割合でDMSOで希釈した後に、1〜100μlの培地の入った96ウェル平底マイクロタイターディッシュに入れた。次に、100μlの酵母懸濁液および発色基質クロロフェノールレッド−β−D−ガラクトピラノシドを添加した。培地もしくは溶媒のいずれかのみで満たされているかまたは標準的な濃度の17βエストラジオールの入ったコントロールウェルを各ディッシュに与えた。酵母細胞を32℃で72時間培養した後、培地の吸収をマイクロタイターディッシュ光度計で540nmで測定した。サンプルは、2回、部分的にチェックした。
【0052】
【表3】
Figure 2004537604
【0053】
分析の結果を図2に示す。これにより、17β−エストラジオールの標準的なプロットと比較して活性が(最大刺激の約10%に相当する)バックグラウンド値よりもはるかに高いそれらの抽出物は「活性である」と分類される。
【図面の簡単な説明】
【0054】
【図1】水による予備抽出の温度に対する分析成分の濃度の依存を示す。
【図2】実施例で得られたホップ抽出物のエストロゲン活性の結果を示す。

Claims (16)

  1. α苦味酸の含有率が少なくとも0.5%であり、キサントフモールの含有率が少なくとも2%であり、そして6−プレニルナリンゲニン、8−プレニルナリンゲニンおよびイソキサントフモールからなる群から選択されるプレニル化フラボンの含有率が少なくとも0.5%であることを特徴とするホップ抽出物。
  2. α苦味酸の含有率が少なくとも0.8%であり、キサントフモールの含有率が少なくとも3%であり、そして6−プレニルナリンゲニン、8−プレニルナリンゲニンおよびイソキサントフモールからなる群から選択されるプレニル化フラボンの含有率が少なくとも0.7%であることを特徴とする、請求項1に記載のホップ抽出物。
  3. ホップ抽出物を得るための方法であって、
    (a)C5〜C7アルカンまたは超臨界CO2でホップからドラッグを1回以上抽出し、抽出溶液から残留ドラッグを分離する工程と、
    (b)工程(a)で得られた残留ドラッグを水で1回以上抽出し、前記残留ドラッグを分離する工程と、
    (c)工程(b)で得られた残留ドラッグを、アルコール、水性アルコール、ケトン、水性ケトンおよびエステルからなる群から選択される溶媒で1回以上抽出し、得られた抽出溶液を濾過する工程と、
    (d)工程(c)で得られた合体した抽出溶液から溶媒を除去し、得られた残留物を乾燥させる工程と、
    を含んでなる前記方法。
  4. 工程(a)における抽出が1回、2回または3回行われる、請求項3に記載の方法。
  5. 工程(a)における溶媒が、n−ペンタン、n−ヘキサンおよびn−ヘプタンからなる群から選択される、請求項3または4のいずれか1つに記載の方法。
  6. 工程(a)における溶媒がn−ヘプタンである、請求項5に記載の方法。
  7. 工程(b)における抽出が、60〜95℃の温度、好ましくは約90℃で行われる、請求項3〜6のいずれか1つに記載の方法。
  8. 工程(c)における溶媒が、メタノール、水性メタノール、エタノール、水性エタノール、アセトン、水性アセトンおよびエチルアセテートからなる群から選択される、請求項3〜7のいずれか1つに記載の方法。
  9. 工程(c)における溶媒が、80〜96%(w/w)エタノール、74〜99%(w/w)メタノールおよび60〜99%(w/w)アセトンからなる群から選択される、請求項8に記載の方法。
  10. 工程(c)における溶媒が92%(w/w)エタノールである、請求項8または9に記載の方法。
  11. 工程(a)における溶媒がn−ヘプタンであり、そして工程(c)における溶媒が92%(w/w)エタノールである、請求項1に記載の方法。
  12. 工程(a)における溶媒が超臨界CO2であり、そして工程(c)における溶媒が92%(w/w)エタノールである、請求項1に記載の方法。
  13. 請求項1または2に記載の抽出物と、慣用の薬学的に許容できる添加剤とを含んでなる薬学的調整品。
  14. エストロゲンの欠乏によって、または、性ホルモンに関連する代謝、特にエストロゲン代謝の異常によって生じる病的状態を予防および治療するための、請求項1または2に記載の抽出物または請求項13に記載の薬学的調整品の使用。
  15. 前記病的状態が、更年期障害、性ホルモン依存性癌、良性前立腺肥大症、骨粗鬆症、アルツハイマー病および循環系の病気からなる群から選択される、請求項14に記載の使用。
  16. 前記性ホルモン依存性癌は、乳癌、前立腺癌および子宮癌からなる群から選択される、請求項15に記載の使用。
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