JP2004180637A - 核酸の分離精製装置 - Google Patents

Abstract

【課題】検体中の核酸を固相表面に吸着させた後、洗浄等を経て脱着させて核酸を分離精製する方法を実現し、且つ分離性能に優れ、洗浄効率が良く、加工が容易であり、実質的に同一の分離性能を有するものを大量に生産可能である固相を使用した核酸分離精製装置を提供すること
【解決手段】プランジャ３１及びプランジャの先端の周囲に設けられるＯ−リング３３を備えているピストン部材５と、先端側に流通孔が形成された固相保持部材７とを備えており、固相保持部材の内部には、表面に水酸基を有する有機高分子から成る、試料溶液中の核酸を吸着及び脱着可能な固相が収納されている。ピストン部材には、ピストン部材５を先端部側へ移行させたときに閉状態となり、基端部側へ移行させたときには開状態となる逆止弁５１が設けられている。
【選択図】 図１

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、核酸の分離精製装置、及び該装置を使用する核酸の分離精製方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
核酸は、様々な分野で種々の形態で使用されている。例えば、組換え核酸技術の領域においては、核酸をプローブ、ゲノム核酸、およびプラスミド核酸の形状で用いることを要求する。
診断分野においても、核酸は種々の方法で用いられている。例えば、核酸プローブは、ヒトの病原体の検出および診断に日常的に用いられている。同様に核酸は遺伝障害の検出に用いられている。核酸はまた食品汚染物質の検出にも用いられている。さらに、核酸は遺伝地図の作製からクローニングおよび組換え発現におよぶ種々の理由により、興味ある核酸の位置確認、同定および単離において日常的に用いられている。
【０００３】
多くの場合、核酸は極めて少量でしか入手できず、そして単離および精製操作が煩雑で時間を要する。このしばしば時間を消費する煩雑な操作は核酸の損失に結びつきやすい。血清、尿およびバクテリアのカルチャーから得られた試料の核酸の精製においては、コンタミネーションおよび疑陽性の結果が生じるという危険性も加わる。
【０００４】
広く知られた精製方法の一つに、核酸を二酸化珪素、シリカポリマー、珪酸マグネシウム等の表面に吸着させ、引き続く洗浄、脱着等の操作によって精製する方法がある（例えば、特公平７−５１０６５号公報）。この方法は、分離性能としては優れているが、同一性能の吸着媒体の工業的大量生産が困難であり、かつ取扱いが不便で、種々の形状に加工しがたい、さらに遠心分離を使用する方法では自動化が難しい等の問題点がある。
【０００５】
【特許文献１】
特公平７−５１０６５号公報
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、検体中の核酸を固相表面に吸着させた後、洗浄等を経て脱着させて核酸を分離精製する方法を実現し、且つ分離性能に優れ、洗浄効率が良く、加工が容易であり、実質的に同一の分離性能を有するものを大量に生産可能である固相を使用し、遠心分離が不要で自動化しやすい核酸分離精製装置を提供することである。本発明のさらに別の目的は、上記した核酸分離精製装置を使用した核酸分離精製方法を提供することである。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、核酸を固相に吸着及び脱着させる過程を含む核酸の分離精製方法において、前記固相として表面に水酸基を有する有機高分子を使用し、二個の開口を有する容器内に上記固相を収容した核酸分離精製装置を使用することによって、核酸を含む試料溶液から純度の高い核酸を分離することができることを見出した。本発明はこれらの知見に基づいて完成した核酸の分離精製方法を実現するための分離精製装置である。
【０００８】
即ち、本発明によれば、第１開口部が形成される先端部と、第２開口部が形成される基端部とを有し、前記第１開口部と第２開口部との間の収納部内に液体を保持可能な円筒形のシリンジと、前記第２開口部側から前記収納部内へ延びるプランジャと、該プランジャの先端に設けられ、前記収納部の内面に密接可能で且つ前記収納部内でスライド可能な液密部材とを備えているピストン部材と、前記先端部に接続され、先端側に流通孔が形成された固相保持部材とを備えており、前記固相保持部材の内部には、表面に水酸基を有する有機高分子から成る、試料溶液中の核酸を吸着及び脱着可能な固相が収納されており、前記ピストン部材には、前記ピストン部材を先端部側へ移行させたときには閉状態となるが、前記ピストン部材を基端部側へ移行させたときには開状態となる逆止弁が設けられている、核酸の分離精製装置が提供される。
【０００９】
好ましくは、前記固相保持部材は、前記シリンジの先端部に着脱可能に装着されている。
好ましくは、前記シリンジの先端部の外周面には先端方向へ縮径するテーパが形成されており、前記固相保持部材の基端側内面には前記シリンジ先端部のテーパに対応して先端方向へ縮径するテーパが形成されている。
好ましくは、前記シリンジの先端部の外周面には雄ねじが形成されており、前記固相保持部材の基端側内面には前記シリンジ先端部の雄ねじに対応する雌ねじが形成されている。
【００１０】
好ましくは、前記固相保持部材の先端側内面には前記シリンジの長手方向軸線にほぼ垂直な円形の固相支持面が形成されており、円形に形成された前記固相が前記固相支持面と平行に配置され、円形に形成された前記シリンジの先端部の先端が前記固相の円形外周縁のすぐ内側に当接して、固相を前記固相支持面側へ押圧している。
好ましくは、前記固相と固相支持面との間にクッション作用を有するフィルター部材が設けられている。
【００１１】
好ましくは、表面に水酸基を有する有機高分子がアセチルセルロースの表面鹸化物であり、さらに好ましくは、表面に水酸基を有する有機高分子がトリアセチルセルロースの表面鹸化物である。
好ましくは、アセチルセルロースの表面鹸化率が５％以上であり、さらに好ましくは１０％以上である。
アセチルセルロースは多孔膜でもよいし、非孔性膜でもよい。
【００１２】
本発明のさらに別の側面によれば、上記した本発明の核酸の分離精製装置を使用し、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に、試料溶液中の核酸を吸着及び脱着させることを含む、核酸の分離精製方法が提供される。
好ましくは、試料溶液は、細胞又はウイルスを含む検体を核酸可溶化試薬で処理して得られた溶液に水溶性有機溶媒を添加した溶液である。
好ましくは、核酸可溶化試薬は、グアニジン塩、界面活性剤およびタンパク質分解酵素である。
【００１３】
好ましくは、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に核酸を吸着させた後、核酸洗浄バッファを用いて固相を洗浄し、次いで固相に吸着した核酸を脱着せしめうる液を用いて固相に吸着した核酸を脱着させることにより核酸の分離精製を行うことができる。
好ましくは、核酸洗浄バッファは、メタノール、エタノール、イソプロパノール又はｎ−プロパノールを２０〜１００重量％含む溶液である。
好ましくは、固相に吸着した核酸を脱着せしめうる液は、塩濃度が０．５Ｍ以下の溶液である。
【００１４】
本発明では、下記の工程により核酸の分離精製を行うことができる。
（ａ） 検体を用いて核酸を含む試料溶液を調製し、前記ピストン部材を核酸分離精製装置の第２開口部から取り去った状態で、第２開口部から上記の核酸を含む試料溶液を収納部内に注入する工程、
（ｂ） 核酸分離精製装置の第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸を含む試料溶液を、流通孔より排出することによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に接触させる工程、
（ｃ） 前記ピストン部材を前記第２開口部から取り去る工程、
（ｄ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部から核酸洗浄バッファを注入する工程、
（ｅ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸洗浄バッファを上記流通孔より排出することによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に接触させる工程、
（ｆ） 前記ピストン部材を前記第２開口部から取り去る工程、
（ｇ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部から表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に吸着された核酸を脱着せしめうる液を注入する工程、
（ｈ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸を脱着せしめうる液を上記流通孔より排出させることによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に吸着された核酸を脱着させ、核酸分離精製装置外に排出する工程。
【００１５】
【発明の実施の形態】
以下、本発明の核酸の分離精製装置の構成要素について具体的に説明する。
（１）核酸の分離精製装置
本発明の核酸の分離精製装置１は、図１に示すように円筒形のシリンジ３と、シリンジ３の内部に挿入されるピストン部材５と、シリンジ３の先端部に接続される固相保持部材７とを備えて成る。尚、本発明においては、シリンジ３内の液体が押し出される側を「先端」側とし、その反対方向を「基端」側とする。
シリンジ３は、固相保持部材７が接続される先端部９を有し、該先端部９には第１開口部１１が形成されている。またシリンジ３の基端側にはフランジ部１３が形成される基端部１５を有し、基端部１５には第２開口部１７が形成されるとともに、核酸の分離精製装置１を適宜の固定装置に固定するための固定機構１８がフランジ部１３に対して設けられている。シリンジ３の内部には収納部１９が形成されており、該収納部１９には、第１開口部１１または第２開口部１７から入った液体を後述するＯ−リングの液密作用により保持可能である。
【００１６】
図２に示すように、シリンジ３の先端部９には、固相保持部材７が外嵌め可能であるように外周面が先端方向へ縮径するテーパ２１が形成されている。尚、このようなテーパ２１の代わりに、図３に示すようにシリンジ３の先端部９の外周面に雄ねじ２３を形成し、固相保持部材７の基端側内面に雄ねじ２３に対応する雌ねじ２５を形成して、固相保持部材７がシリンジ３の先端部９に対して螺合式に着脱自在な構成とすることも可能である。
【００１７】
またシリンジ３の先端部９の内側には、図５に最も良く示されているように、任意の縦断面が先端側から基端側へ向かって２次曲線的にカーブするような形状を有し、全体としてほぼすり鉢形状を有する液体案内面２７が形成されている。このような形状の液体案内面２７の作用については後述する。またシリンジ３の先端部９の任意の縦断面では、先端部９の先端２９が鋭角的に尖っており、後述する表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相の表面に圧接することで固相を保持する作用を発揮する。この点については後で詳述する。
【００１８】
ピストン部材５は、第２開口部１７側から収納部１９内へ延びるプランジャ３１と、プランジャ３１の先端の周囲に設けられ、収納部１９の内面に密接可能で液密部材として機能するＯ―リング３３と、プランジャ３１を操作しやすくするための操作部３４とを備えている。Ｏ−リング３３はプランジャ３１の先端に固定されており、従ってプランジャ３１を押したり引いたりすることにより、Ｏ−リング３３が収納部１９内で往復動できるようになっている。
【００１９】
次に固相保持部材７は図４に示すように、ほぼ円筒形乃至若干の先細り形状をした本体部３５を主体とし、その基端側が開放状態となっており、先端側は端板３７によって塞がっている。端板３７の中央からは先端側にノズル３９が突出形成されており、ノズル３９の内部には本体部３５内へ通じる流通孔４１が形成されている。端板３７の基端側の内面には、シリンジ３の長手方向軸線にほぼ垂直な円形の固相支持面４３が形成されており、該固相支持面４３には、表面に水酸基を有する有機高分子から成る円形平板状の固相４５が支持されている。この固相４５は後で詳述するように試料溶液中の核酸を吸着及び脱着可能な材質で構成されている。
【００２０】
また固相４５の先端側には、クッション作用をなすポリプロピレン焼結フィルター４６が設けられている。ポリプロピレン焼結フィルター４６は、固相４５同様、円形平板状の形態をしており、固相４５と固相支持面４３との間に設けられることにより、固相４５がシリンジ３の先端部９によって押圧されるときに、固相４５をその基端側から支持してクッション作用を提供する。これにより、固相４５が過度に押し潰されて変形したり、固相４５内に形成されている液体が流通する間隙が潰れて液体の流通性が悪くなることを防止することができる。
【００２１】
固相保持部材７の本体部３５の内側は、上記シリンジ３の先端部９に形成されたテーパ２１に対応して先端方向へ縮径するようにテーパ４７が形成されている。この固相保持部材７のテーパ４７がシリンジ３の先端部９に形成されたテーパ２１の外側に丁度嵌合することにより、シリンジ３と固相保持部材７との間を液密状態として一体化することができる。
【００２２】
固相保持部材７がシリンジ３の先端部９に取り付けられているとき、前述したようにシリンジ先端部９の断面が鋭角的に形成された先端２９が、固相４５の円形外周縁のすぐ内側に圧接する。これによりポリプロピレン焼結フィルター４６が多少押し潰された状態となるため、クッション作用を有するポリプロピレン焼結フィルター４６の反作用により、固相４５はシリンジ３の先端部９とポリプロピレン焼結フィルター４６との間に挟持されるようになる。この結果、固相４５はポリプロピレン焼結フィルター４６を介して固相支持面４３にしっかり支持されるようになる。上述したようにシリンジ先端部９の断面が鋭角的に形成された先端２９が、固相４５の円形外周縁のすぐ内側に圧接する構成を採用することにより、プランジャ３１が往復動するときに、収納部１９内から外側へ押し出される液体または流通孔４１を介して収納部１９内へ流入する液体が、必ず固相支持面４３内を通過するようになり、固相４５の円形外周縁の外側を回って液体が流通することを防止できる。
【００２３】
図６は、２次曲線的にカーブするような形状を有する液体案内面２７が形成されているシリンジ３の先端部９内において、収納部１９内から外側へ押し出される液体が流れ出す様子を示す説明図である。図６に示すように、先端部９内の最も縮径された縮径部４９から２次曲線的にカーブするような形状を有する液体案内面２７は、シリンジ３の長手軸線の先端側へ移行するに従って、単位長さ当たりの液体案内面２７の断面の直径の拡張する率、即ち拡径率が小さくなっている。従って縮径部４９近くでは急に拡径していくが、先端側へいくに従って拡径の度合いが徐々に緩やかになっていく。このような構成により、収納部１９内から外側へ流れ出す液体の断面での流速分布は、縮径部４９から固相４５に至るまでの間でほぼ一定となり、従って固相４５の全面に亘ってほぼ一定の流体圧が掛かるようになる。この結果、後述するシリンジ３の収納部１９と外部との間での液体の流通時には、その核酸分離機能や洗浄機能等が固相４５の全面に亘って有効に発揮されるため、効率的な核酸の分離精製を行うことができる。
【００２４】
以上説明した核酸の分離精製装置では、固相保持部材７がシリンジ３と別部材となっており、固相保持部材７がシリンジ３から脱着自在となっているが、固相保持部材７をシリンジ３に対して脱着不可能な状態で固定してもよいし、あるいは固相保持部材７とシリンジ３とを一体部材として最初から形成するようにしてもよい。
【００２５】
次に本発明の特徴的構成について説明する。本発明の核酸の分離精製装置１には、図１中符号５１で示される逆止弁５１が設けられている。逆止弁５１は、プランジャ３１の先端からプランジャ３１内を貫通してプランジャ３１の基端側まで延びる連通路５３の基端側に設けられており、弁座５５と、弁座５５に対して液密状態で接触可能な弁体５７とを備えている。弁体５７はプランジャ３１の長手方向に移動自在であり、従ってピストン部材５を先端部９側へ移行させるときには、弁体５７が矢印Ａの方向に移行して弁座５５に着座することで逆止弁５１は閉状態となるが、ピストン部材５を基端部１５側へ移行させるときには、弁体５７は矢印Ｂの方向へ移行して弁座５５から離れるので、逆止弁５１は開状態となる。
【００２６】
従って図１に示す核酸の分離精製装置１はピストン部材５の押圧時には、収納部１９内の液体を外側へ押し出すことができるが、ピストン部材５の引っ張り時には上記逆止弁５１の作用により流通孔４１から液体を吸引することはできない。その代わり、ピストン部材５の引っ張り時に、流通孔４１及び固相４５を通って強制的に空気を吸引することがないため、ピストン部材５を容易に基端部１５方向に引くことができるようになる。このことにより後述する核酸の分離精製工程で、複数回のピストン部材５の引っ張り動作が容易になるという効果を生じる。また後述する核酸の分離精製工程において、ピストン部材５の引っ張り時に、流通孔４１から空気を吸入することがないので、収納部１９側に引圧が作用しない。そのため、シリンジ３の内壁およびピストン部材に、核酸を含む試料溶液および核酸洗浄バッファーの残留液が飛散し汚染することを防止することができる。
【００２７】
図７は逆止弁５１の具体的構造の例を示す。図７（ａ）に示す例では弁座５５に対してボール状の弁体５７が臨んでおり、ピストン部材５の押圧時には、ボール状の弁体５７が弁座５５を閉鎖するが、ピストン部材５の引っ張り時にはボール状の弁体５７が弁座５５から離れて逆止弁５１が開放するようになっている。また図７（ｂ）に示す例はいわゆるグラフトホールタイプの逆止弁５１を適用したものであり、弁座５５に対して揺動可能な弁体５７が設けられている。本例でも、ピストン部材５の押圧時には、弁体５７が図７（ｂ）中、実線で示す位置に位置決めされることにより弁座５５を閉鎖するが、ピストン部材５の引っ張り時には弁体５７が図７（ｂ）中、破線で示す位置に揺動して弁座５５から離れることにより逆止弁５１が開放するようになっている。
【００２８】
（２）核酸の分離精製方法
本発明の核酸の分離精製方法は、上記核酸分離装置を使用して、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に核酸を吸着及び脱着させる工程である。
「核酸」は一本鎖、二本鎖のいずれでもよく、また、分子量の制限も無い。
表面に水酸基を有する有機高分子としては、アセチルセルロースの表面鹸化物が好ましい。アセチルセルロースしては、モノアセチルセルロース、ジアセチルセルロース、トリアセチルセルロースの何れでもよいが、特にはトリアセチルセルロースが好ましい。本発明では、表面鹸化したアセチルセルロースを固相として使用することが好ましい。ここで表面鹸化とは、鹸化処理液（例えば、ＮａＯＨ）が接触する表面だけが鹸化されることを言う。本発明では、固相の構造体はアセチルセルロースのままで、固相の表面だけが鹸化されていることが好ましい。これにより、表面鹸化処理の程度（表面鹸化度）で固相表面の水酸基の量（密度）をコントロールすることができる。
【００２９】
表面に水酸基を有する有機高分子の表面積を大きくするためには、表面に水酸基を有する有機高分子を膜化することが好ましい。また、アセチルセルロースは多孔膜でも非孔性膜でもよいが、膜を多孔性とすることが更に好ましい。固相が多孔性膜の場合、膜の構造体はアセチルセルロースのままで、構造体の表面だけを鹸化することが好ましい。これにより、表面鹸化処理の程度（表面鹸化度）×孔径により空間的な水酸基の量（密度）をコントロールすることができる。また、膜の構造体はアセチルセルロースから構成されているため、堅固な固相を得ることができる。ここで、アセチルセルロースを表面鹸化して表面ににのみ水酸基を導入するということは、構造体はアセチルセルロースのままで、表面をセルロース化するということを意味する。なお、セルロースを原材料として用いると、液体にできないため、工業的に多孔膜や平膜を製造することはできない。
【００３０】
例えば、トリアセチルセルロースの膜は、商品名ＴＡＣベースとして富士写真フイルムから市販されており、トリアセチルセルロースの多孔膜としては、ミクロフィルターＦＭ５００（富士写真フイルム（株）製）がある。
また、例えばポリエチレン製のビーズの表面にトリアセチルセルロースの膜を形成し、これを表面鹸化して表面に水酸基を持たせることも好ましい。この場合、トリアセチルセルロースはビーズにコーティングされることになる。ビーズの素材は、核酸を汚染等しなければよく、ポリエチレンには限定されない。
【００３１】
核酸の分離効率を挙げるためには、水酸基の数が多い方が好ましい。例えば、トリアセチルセルロースなどのアセチルセルロースの場合には、表面鹸化率が約５％以上であることが好ましく、１０％以上であることが更に好ましい。
アセチルセルロースを表面鹸化するには、水酸化ナトリウム水溶液中に、表面鹸化したい対象を浸漬する。表面鹸化率を変えるには、水酸化ナトリウムの濃度を変えればよい。表面鹸化率は、ＮＭＲにより、残存アセチル基を定量して定められる。
【００３２】
本発明の核酸の分離精製方法は、以下の工程を含むことができる。
（ａ） 検体を用いて核酸を含む試料溶液を調製し、前記ピストン部材を核酸分離精製装置の第２開口部から取り去った状態で、第２開口部から上記の核酸を含む試料溶液を収納部内に注入する工程、
（ｂ） 核酸分離精製装置の第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸を含む試料溶液を、流通孔より排出することによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に接触させる工程、
（ｃ） 前記ピストン部材を前記第２開口部から取り去る工程、
（ｄ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部から核酸洗浄バッファを注入する工程、
（ｅ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸洗浄バッファを上記流通孔より排出することによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に接触させる工程、
（ｆ） 前記ピストン部材を前記第２開口部から取り去る工程、
（ｇ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部から表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に吸着された核酸を脱着せしめうる液を注入する工程、
（ｈ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸を脱着せしめうる液を上記流通孔より排出させることによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に吸着された核酸を脱着させ、核酸分離精製装置外に排出する工程。
【００３３】
表面に水酸基を有する有機高分子を用いた核酸の分離精製方法についてさらに具体的に説明する。本発明では、好ましくは、核酸を含む試料溶液を表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に接触させることにより試料溶液中の核酸を固相に吸着させ、次いで、固相に吸着させた核酸を、以下に説明する好適な溶液を用いて固相から脱着させる。さらに好ましくは、核酸を含む試料溶液は、細胞又はウイルスを含む検体を細胞膜及び核膜を溶解する溶液で処理することにより核酸を液中に分散させた溶液に水溶性有機溶媒を添加した溶液である。
【００３４】
本発明において使用できる核酸を含む試料溶液に制限はないが、例えば診断分野においては、検体として採取された全血、血漿、血清、尿、便、***、唾液等の体液、あるいは植物（又はその一部）、動物（またはその一部）など、あるいはそれらの溶解物およびホモジネートなどの生物材料から調製された溶液が対象となる。
【００３５】
最初にこれらの検体を、細胞膜を溶解して核酸を可溶化する試薬を含む水溶液で処理する。これにより細胞膜および核膜が溶解されて、核酸が水溶液内に分散する。
【００３６】
細胞膜の溶解および核酸の可溶化のためには、例えば、対象となる試料が全血の場合、▲１▼赤血球の除去、▲２▼各種タンパク質の除去、及び▲３▼白血球の溶解及び核膜の溶解が必要となる。▲１▼赤血球の除去および▲２▼各種タンパク質の除去は、固相への非特異吸着および多孔膜の目詰まりを防ぐために、▲３▼白血球の溶解及び核膜の溶解は、抽出の対象である核酸を可溶化させるためにそれぞれ必要となる。特に、▲３▼白血球の溶解及び核膜の溶解は重要な工程であり、本発明の方法では、この工程で核酸を可溶化することが必要である。本明細書中以下に記載の実施例では、塩酸グアニジン、Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００、プロテアーゼＫ（ＳＩＧＭＡ製）を添加した状態で６０℃で１０分インキュベートすることによって上記の▲１▼、▲２▼及び▲３▼を同時に達成している。
【００３７】
本発明で用いる核酸可溶化試薬としては、グアニジン塩、界面活性剤およびタンパク質分解酵素を含む溶液が挙げられる。
グアニジン塩としては、塩酸グアニジンが好ましいが、他のグアニジン塩（イソチオシアン酸グアニジン、チオシアン酸グアニジン）を使用することもできる。グアニジン塩の溶液中の濃度は、０．５Ｍ以上６Ｍ以下 好ましくは １Ｍ以上５Ｍ以下である。
【００３８】
界面活性剤としてはＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００を使用することができるが、この他にも、ＳＤＳ、コール酸ナトリウム又はサルコシンナトリウム等の陰イオン性界面活性剤、Ｔｗｅｅｎ２０又はメガファック等のノニオン性界面活性剤、その他各種両性界面活性剤を使用することもできる。本発明では、ポリオキシエチレンオキチルフェニルエーテル（Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００）等のノニオン性界面活性剤を使用することが好ましい。界面活性剤の溶液中の濃度は、通常０．０５重量％〜１０重量％ 特に好ましくは０．１重量％〜５重量％である。
【００３９】
タンパク質分解酵素としては、プロテアーゼＫを使用することはできるが、他のプロテアーゼでも同様の効果を得ることができる。プロテアーゼは酵素であるため加温するのが好ましく、３７℃〜７０℃で使用することが好ましく、特に５０℃〜６５℃で使用することが好ましい。
【００４０】
このように核酸が分散した水溶液中に、水溶性有機溶媒を添加して、表面に水酸基を有する有機高分子と接触させる。この操作により、試料溶液中の核酸が表面に水酸基を有する有機高分子に吸着される。本明細書中上記した操作で可溶化された核酸を、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に吸着させるためには、可溶化した核酸混合液に水溶性有機溶媒を混合することと、得られた核酸混合液中に塩が存在することが必要である。
【００４１】
即ち、核酸の周りに存在する水分子の水和構造を破壊することにより、核酸は不安定な状態で可溶化することになる。この状態の核酸を、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相と接触させると、核酸表面上の極性基と固相表面の極性基間で相互作用し、核酸は固相表面上に吸着するものと考えられる。本発明の方法では、可溶化した核酸混合液に水溶性有機溶媒を混合することと、得られた核酸混合液中に塩が存在することによって、核酸を不安定な状態にさせることができる。
【００４２】
ここで用いる水溶性有機溶媒としては、エタノール、イソプロパノール又はプロパノールなどが挙げられ、中でもエタノールが好ましい。水溶性有機溶媒の濃度は、好ましくは５重量％〜９０重量％であり、さらに好ましくは２０重量％〜６０重量％である。エタノールの添加濃度は、擬集物を生じない程度でできるだけ高くすることが特に好ましい。
【００４３】
得られた核酸混合液中に存在する塩としては、各種カオトロピック物質（グアニジウム塩、ヨウ化ナトリウム、過塩素酸ナトリウム）や塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化アンモニウム、臭化ナトリウム、臭化カリウム、臭化カルシウム、臭化アンモニウム等が好ましい。特にグアニジウム塩は、細胞膜の溶解および核酸の可溶化の効果を併有するので特に好ましい。
【００４４】
次いで、この核酸が吸着した表面に水酸基を有する有機高分子を核酸洗浄バッファ溶液に接触させる。この溶液は核酸と一緒に表面に水酸基を有する有機高分子に吸着した試料溶液中の不純物を洗い流す機能を有する。従って、表面に水酸基を有する有機高分子から核酸は脱着させないが不純物は脱着させる組成を有する必要がある。核酸洗浄バッファ溶液は主剤と緩衝剤、及び必要に応じて界面活性剤を含む水溶液からなる。主剤としてはメタノール、エタノール、イソプロパノール、ｎ−イソプロパノール、ブタノール、アセトン等の約１０〜１００重量％（好ましくは約２０〜１００重量％、さらに好ましくは約４０〜８０重量％）の水溶液が、緩衝剤及び界面活性剤としては、既述の緩衝剤及び界面活性剤が挙げられる。これらの内では、エタノール、Ｔｒｉｓ及びＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００を含む溶液が好ましい。Ｔｒｉｓ及びＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００の好ましい濃度は、それぞれ１０〜１００ｍＭ、及び０．１〜１０重量％である。
【００４５】
次に、表面に水酸基を有する有機高分子に吸着した核酸を脱着せしめうる溶液に、上記洗浄後の表面に水酸基を有する有機高分子を接触させる。この溶液には目的とする核酸が含まれているので、これを回収し、後に続く操作、例えばＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）による核酸の増幅に提供する。核酸を脱着せしめうる溶液としては、塩濃度が低いことが好ましく、特に好ましくは０．５Ｍ以下の塩濃度の溶液を使用する。この溶液としては、精製蒸留水、ＴＥバッファ等が使用できる。
【００４６】
（３）核酸分離精製装置の使用による核酸の分離精製方法
次に、上記した核酸分離精製装置を使用した、核酸の精製方法について説明する。先ず、ピストン部材５を第２開口部１７から取り去った状態で、第２開口部１７からピペット等を使用して核酸を含む試料溶液を収納部１９内に注入する。次いで第２開口部１７にピストン部材５を挿入して収納部１９内を加圧状態にし、注入した試料溶液を、流通孔４１より排出する。この排出過程で、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相４５に、試料溶液中にある核酸が吸着する。
【００４７】
次に再度、ピストン部材５を第２開口部１７から取り去り、第２開口部１７から核酸洗浄バッファを注入する。そして第２開口部１７にピストン部材５を再度挿入して収納部１９内を加圧状態にし、注入した核酸洗浄バッファを流通孔４１より排出することにより収納部１９内部を洗浄する。
【００４８】
この核酸洗浄バッファは収納部内に残留する試料溶液を洗い流すと共に、核酸と一緒に固相に吸着した試料溶液中の不純物も洗い流す機能を有する。従って、固相４５から核酸は脱着させないが不純物は脱着させる組成を有する必要がある。核酸洗浄バッファ溶液は主剤と緩衝剤、及び必要に応じて界面活性剤を含む水溶液からなり、主剤としてはメチルアルコール、エチルアルコール、ブチルアルコール、アセトン等の約１０〜９０％（好ましくは約５０〜９０％）の水溶液が、緩衝剤及び界面活性剤としては、既述の緩衝剤及び界面活性剤が挙げられる。これらの内では、エチルアルコール、Ｔｒｉｓ及びＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００を含む溶液が好ましい。Ｔｒｉｓ及びＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００の好ましい濃度は、それぞれ１０〜１００ｍＭ、及び０．１〜１０％である。
【００４９】
次に再度、ピストン部材５を第２開口部１７から取り去り、第２開口部１７から固相４５に吸着された核酸を脱着せしめうる液を注入する。そして第２開口部１７にピストン部材５を挿入して収納部１９内を加圧状態にし、注入した核酸を脱着せしめうる液を流通孔４１より排出させる。この排出液には目的とする核酸が含まれているので、これを回収し、後に続く操作、例えばＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）による核酸の増幅に提供することができる。
【００５０】
（４）本発明の装置を利用した核酸の分析方法
本発明によれば、（１）上記した核酸分離精製方法によりターゲット核酸断片を含む核酸断片を分離精製する工程；
（２）前記ターゲット核酸断片、前記ターゲット核酸断片の一部と相補的な少なくとも一種のプライマー、少なくとも一種のデオキシヌクレオシド３リン酸、及び少なくとも一種のポリメラーゼを反応させ、前記ターゲット核酸断片を鋳型にした前記プライマーの３’末端を起点とするポリメラーゼ伸長反応を行う工程；及び、
（３）ポリメラーゼ伸長反応の進行の有無を検出するか、又はポリメラーゼ伸長反応産物と他の核酸とのハイブリダイゼーションの有無を検出する工程：
により、核酸を分析することができる。
【００５１】
本発明の好ましい態様によれば、ポリメラーゼ伸長反応に伴って生成するピロ燐酸を検出することによりポリメラーゼ伸長反応の進行の有無を検出することができる。
さらに好ましい態様は、ピロ燐酸の分析を比色法を用いて行う方法であり、より好ましくは、ピロ燐酸の検出を乾式分析素子を用いて行う方法である。本発明による核酸の分析方法では、ターゲット核酸断片の存在または存在量を検出したり、あるいはターゲット核酸断片の塩基配列を検出することができる。なお、ここで言う存在量の検出とは、ターゲット核酸断片の定量を含む概念である。ターゲット核酸断片の塩基配列の検出の具体例としては、ターゲット核酸断片の変異または多型の検出などが挙げられる。図８に、本発明の実施形態を説明する概念図を示す。
【００５２】
本発明に係るターゲット核酸断片の分析方法の第一の好ましい形態を以下に列記する。
（イ） ピロ燐酸の検出を、キサントシンまたはイノシン、ピロホスファターゼ、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ、キサンチンオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ及び発色剤を含有する試薬層を備えることを特徴とするピロ燐酸定量用乾式分析素子を用いて行う。
（ロ） ポリメラーゼが、ＤＮＡポリメラーゼＩ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノー断片、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、及び逆転写酵素（リバーストランスクリプターゼ）からなるグループから選択されるポリメラーゼを用いる。
【００５３】
さらに、本発明の別の態様では、ポリメラーゼ伸長反応の進行の有無の検出を前記ポリメラーゼ伸長反応に伴って生成するピロ燐酸を検出することにより行う際に、ピロ燐酸の検出を、ピロ燐酸を酵素的に無機燐に変換した後、次いでキサントシンまたはイノシン、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ、キサンチンオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ及び発色剤を含有する試薬層を備える無機燐定量用乾式分析素子を用いて行うことができる。この場合の好ましい形態を以下に列記する。
（イ） ピロ燐酸を変換する酵素として、ピロホスファターゼを用いる。
（ロ） ポリメラーゼが、ＤＮＡポリメラーゼＩ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノー断片、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、及び逆転写酵素（リバーストランスクリプターゼ）からなるグループから選択されるポリメラーゼを用いる。
【００５４】
以下、本発明の核酸の分析方法について更に詳細に説明する。
（Ａ）ターゲット核酸断片：本発明において分析の対象となるターゲット核酸断片とは、少なくとも一部の塩基配列が既知であるポリヌクレオチドであり、動物、微生物、細菌、植物などすべての生物から単離されるゲノミックＤＮＡ断片が対象となり得る。またウイルスから単離可能なＲＮＡ断片またはＤＮＡ断片、およびｍＲＮＡを鋳型として合成されたｃＤＮＡ断片も対象とすることが可能である。ターゲット核酸断片はできる限り精製され、核酸断片以外の余分な成分が取り除かれていることが望ましい。例えば、動物（例えば人間）の血液から単離したゲノミックＤＮＡ断片を対象とする場合または血液中に存在する感染細菌やウイルスの核酸（ＤＮＡまたはＲＮＡ）断片を対象とする場合、単離の過程で破壊された白血球細胞膜、赤血球中から溶出したヘモグロビン、および血液中存在するその他の一般化学物質は、十分に取り除いておく必要がある。特にヘモグロンビンは、続いておこなうポリメラーゼ伸長反応を阻害する。また血液中に一般生化学物質として存在するピロ燐酸や燐酸は、ポリメラーゼ伸長反応により生成するピロ燐酸の正確な検出の妨害要因になる。
【００５５】
（Ｂ）ターゲット核酸断片と相補的なプライマー：本発明において使用するターゲット核酸断片と相補的なプライマーは、ターゲット核酸断片の塩基配列が既知である目的の部位に対して相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドである。このターゲット核酸断片と相補的なプライマーがターゲット核酸断片の目的の部位にハイブリダイゼーションすることで、プライマーの３’末端を起点に、ターゲット核酸を鋳型としポリメラーゼ伸長反応が進行する。即ち、本発明においてはプライマーがターゲット核酸断片の目的の部位を認識して特異的にハイブリダイゼーションするか否かがポイントとなる。本発明で使用するプライマーの好ましい塩基数は５〜６０塩基である。特に好ましくは１５〜４０塩基である。プライマーの塩基数は少なすぎると、ターゲット核酸断片の目的の部位との特異的性が低下するだけでなく、ターゲット核酸断片とのハイブリッド自体が安定に形成できない。また、プライマーの塩基数は多すぎると、プライマー間またはプライマー内で塩基間の水素結合により２本鎖を形成してしまい、やはり特異性が低下する。
【００５６】
本発明の方法を用いてターゲット核酸断片の存在を検出する場合、ターゲット核酸断片の異なる部位に対して、それぞれの部位に相補的なプライマーを複数使用することも可能である。このようにターゲット核酸断片を複数の部位で認識することで、ターゲット核酸断片の存在の検出において、特異性が向上する。また、ターゲット核酸断片の一部を増幅（例えばＰＣＲ法）する場合には、その増幅法に応じて複数のプライマーを設計することも可能である。
【００５７】
本発明の方法を用いてターゲット核酸断片の塩基配列を検出する場合、特に変異または多型の有無を検出する場合は、目的の変異または多型の部分を含むように、変異または多型に対応する塩基の種類でプライマーを設計する。そうすることで、ターゲット核酸断片の変異または多型の有無により、ターゲット核酸断片へのプライマーのハイブリダイゼーションの有無に差異が生じ、結果的にポリメラーゼ伸長反応の差異として検出することが可能になる。また、変異または多型に対応する部分をプライマーの３’末端付近に設定することでポリメラーゼの反応部位の認識に差異が生じ、結果的にポリメラーゼ伸長反応の差異として検出することも可能である。
【００５８】
（Ｃ） ポリメラーゼ：本発明において使用するポリメラーゼは、ターゲット核酸がＤＮＡの場合は、ターゲット核酸断片の一本鎖に変性された部分にプライマーがハイブリダイゼーションすることで形成された２本鎖の部分を起点として、５’→３’の方向に、デオキシヌクレオシド３リン酸（ｄＮＴＰ）を材料として、ターゲット核酸断片を鋳型にして相補的な伸長反応を触媒するＤＮＡポリメーラーゼである。具体的に使用されるＤＮＡポリメラーゼとしては、ＤＮＡポリメラーゼＩ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノー断片、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ等がある。ＤＮＡポリメラーゼは目的に応じて選択または組み合わせることが可能である。例えば、ターゲット核酸断片の一部を増幅（例えばＰＣＲ法）する場合には、耐熱性に優れたＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼを用いることが有効である。また、「ＢＩＯ ＩＮＤＵＳＴＲＹ，Ｖｏｌ．１８，Ｎｏ．２，２００１」に記載されている増幅法（ＬＡＭＰ法：Ｌｏｏｐ−ｍｅｄｉａｔｅｄ Ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ＤＮＡ）を用いてターゲット核酸断片の一部を増幅する場合には、５’→３’方向へのヌクレアーゼ活性がなく、かつ鋳型上の２本鎖ＤＮＡを１本鎖ＤＮＡとして遊離させながら伸長反応を触媒する鎖置換型のＤＮＡポリメラーゼとして、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼを使用することが有効である。その他、目的に応じて、３’→５’方向へのヘキソキナーゼ活性を持つ、ＤＮＡポリメラーゼα、Ｔ４ ＤＮＡポリメラーゼ、及びＴ７ ＤＮＡポリメラーゼを併用することも可能である。
【００５９】
また、ＲＮＡウイルスのゲノミック核酸またはｍＲＮＡがターゲット核酸断片である場合には、逆転写活性を有するリバーストランスクリプターゼを使用することが可能である。さらにリバーストランスクリプターゼとＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼを併用することも可能である。
【００６０】
（Ｄ） ポリメラーゼ伸長反応：本発明において対象となるポリメラーゼ伸長反応には、前記（Ａ）に記載されているようなターゲット核酸断片の１本鎖に変性された部分の一部に特異的にハイブリダイゼーションした、前記（Ｂ）に記載されているようなターゲット核酸断片と相補的なプライマーの３’末端を起点として、デオキシヌクレオシド３リン酸（ｄＮＴＰ）を材料として、前記（Ｃ）に記載されているようなポリメラーゼを触媒として、ターゲット核酸断片を鋳型にして進行する相補的な核酸の伸長反応の全てが含まれる。この相補的な核酸の伸長反応とは、少なくとも２回（２塩基分）、連続しての伸長反応が起こることをさしている。
【００６１】
以下に、例として代表的なポリメラーゼ伸長反応、およびポリメラーゼ伸長反応を伴うターゲット核酸断片の目的部位の増幅反応の例を示す。ターゲット核酸断片を鋳型にして、５’→３’の方向へのポリメラーゼ伸長反応を一度だけ行う場合が最も単純である。このポリメラーゼ伸長反応は等温の条件で実施することができる。この場合には、ポリメラーゼ伸長反応の結果として生成するピロ燐酸の量は、最初のターゲット核酸断片の量に比例する。即ち定量的にターゲット核酸断片の存在を検出するのに適した方法である。
【００６２】
ターゲット核酸の量が少ない場合は、ポリメラーゼ伸長反応を利用した何らかの手段でターゲット核酸の目的部分を増幅することが好ましい。ターゲット核酸の増幅には、これまで開発、発明されてきた各種の方法を使用することができる。ターゲット核酸の増幅法で最も一般的で普及している方法はＰＣＲ（ポリメラーゼチェーンリアクション）法である。ＰＣＲ法では、反応液の温度の上げ下げを周期的にコントロールすることにより、変性（核酸断片を２本鎖から１本鎖に変性する工程）→アニーリング（１本鎖に変性した核酸断片にプライマーをハイブイリダイズさせる工程）→ポリメラーゼ（ＴａｑＤＮＡポリメラーゼ）伸長反応→ディネイチャーの周期的な工程を繰り返すことで、ターゲット核酸断片の目的部分を増幅する方法である。最終的に、ターゲット核酸断片の目的部位は初期量の１００万倍にも増幅し得る。そのためＰＣＲ法の増幅過程でのポリメラーゼ伸長反応で生成するピロ燐酸の蓄積量も多くなり、検出が容易になる。
【００６３】
特開平５−１３０８７０号公報に記載されている、エクソヌクレアーゼを用いたサイクリングアッセイ法もポリメラーゼ伸長反応を利用した、ターゲット核酸断片の目的部位の増幅法の一つである。この方法はターゲット核酸断片の目的部位に特異的にハイブリダイゼーションしたプライマーを起点とした、ポリメラーゼ伸長反応とともに、５’→３’エクソヌクレアーゼを作用させて、プライマーを逆方向から分解する方法である。分解したプライマーの代わりに新たなプライマーがハイブリダイゼーションし、再度ＤＮＡポリメラーゼによる伸長反応が進行する。このポリメラーゼによる伸長反応と、この先に伸長した鎖を外すエクソヌクレーアゼによる分解反応が順次、周期的に繰り返される。ここで、ポリメラーゼによる伸長反応とエクソヌクレーアゼによる分解反応は等温条件で実施することが可能である。このサイクリングアッセイ法においても繰り返されるポリメラーゼ伸長反応で生成するピロ燐酸の蓄積量も多くなり、検出が容易になる。
【００６４】
近年開発されたターゲット核酸断片の目的部位の増幅法として、前記ＬＡＭＰ法がある。この方法は、ターゲット核酸断片の少なくとも６個所の特定部位を相補的に認識する少なくとも４種のプライマーと、５’→３’方向へのヌクレアーゼ活性がなく、かつ鋳型上の２本鎖ＤＮＡを１本鎖ＤＮＡとして遊離させながら伸長反応を触媒する鎖置換型のＢｓｔ ＤＮＡポリメラーゼを使用することで、等温条件でターゲット核酸断片の目的部位を、特別な構造として増幅する方法である。このＬＡＭＰ法の増幅効率は高く、ポリメラーゼ伸長反応で生成するピロ燐酸の蓄積量も非常に多くなり、検出が容易になる。
【００６５】
ターゲット核酸断片がＲＮＡ断片の場合は、逆転写活性を有するリバーストランスクリプターゼを使用し、ＲＮＡ鎖を鋳型にして伸長反応を行うことが可能である。さらにリバーストランスクリプターゼとＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼを併用し、ＲＴ（リバーストランスクリプション）反応に引き続いてＰＣＲ反応を行う、ＲＴ−ＰＣＲ法を用いることができる。このＲＴ反応またはＲＴ−ＰＣＲ反応で生成するピロ燐酸を検出することで、ターゲット核酸断片のＲＮＡ断片の存在を検出することができる。この方法は、ＲＮＡウイルスの存在を検出する場合に有効である。
【００６６】
（Ｅ） ピロ燐酸（ＰＰｉ）の検出：従来からピロ燐酸（ＰＰｉ）の検出法としては、式１に示された方法が知られている。この方法では、ピロ燐酸（ＰＰｉ）をスルフリラーゼによりアデノシン３燐酸（ＡＴＰ）に変換し、アデノシン３燐酸がルシフェラーゼによりルシフェリンに作用して生じる発光を検出する。そのため、この方法でピロ燐酸（ＰＰｉ）を検出するには発光を測定できる装置が必要である。
【００６７】
【化１】

【００６８】
本発明に適したピロ燐酸の検出方法は式２または式３に示した方法である。式２または式３に示した方法は、ピロ燐酸（ＰＰｉ）をピロホスファターゼで無機燐（Ｐｉ）に変換し、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（ＰＮＰ）により無機燐（Ｐｉ）をキサントシンまたはイノシンと反応させ、生じたキサンチンまたはヒポキサンチンをキサンチンオキシダーゼ（ＸＯＤ）により酸化して尿酸を生成させ、この酸化過程で生じる過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）を用いてペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）により発色剤（色素前駆体）を発色させ、これを比色するものである。これら式２または式３に示した方法では結果を比色で検出できるため、目視または簡単な比色測定装置を用いてピロ燐酸（ＰＰｉ）の検出が可能である。
【００６９】
【化２】

【００７０】
【化３】

【００７１】
ピロホスファターゼ（ＥＣ３，６，１，１）プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（ＰＮＰ，ＥＣ２．４．２．１）、キサンチンオキシダーゼ（ＸＯＤ，ＥＣ１．２．３．２）及びペルオキシダーゼ（ＰＯＤ，ＥＣ１．１１．１．７）は市販のものを使用することができる。発色剤（すなわち色素前駆体）は、過酸化水素とペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）により色素を生成させるものであればよく、例えば、ロイコ色素の酸化によって色素を生成する組成物（例、米国特許４，０８９，７４７等に記載のトリアリールイミダゾールロイコ色素、特開昭５９−１９３３５２号公報（ＥＰ ０１２２６４１Ａ）等に記載のジアリールイミダゾーロイコ色素）；酸化されたときに他の化合物とカップリングにより色素を生成する化合物を含む組成物（例えば４−アミノアンチピリン類とフェノール類又はナフトール類）などを使用することができる。
【００７２】
（Ｆ） 乾式分析素子：本発明において使用することのできる乾式分析素子とは、一層または複数層の機能層からなる分析素子であって、その少なくとも一層（または複数の層に渡って）に検出試薬を含有させ、層内での反応により生じた生成色素を、分析素子の外から反射光あるいは透過光により比色定量するものである。
このような乾式分析素子を用いて定量分析するには、液体試料を展開層の表面に一定量点着する。展開層で展開された液体試料は試薬層に達し、ここで試薬と反応し、発色する。点着後、乾式分析素子を適当な時間、一定温度に保って（インクベーション）発色反応を充分に進行させた後、例えば透明支持体側から照明光を試薬層に照射し、特定波長域で反射光量を測定して反射光学濃度を求め、予め求めておいた検量線に基づいて定量分析を行う。
【００７３】
乾式分析素子においては、検出を行うまでは乾燥状態で貯蔵・保管されるため、試薬を用時調製する必要がなく、また一般に乾燥状態の方が試薬の安定性が高いことから、試薬溶液を用時調製しなければならないいわゆる湿式法より簡便性、迅速性に優れている。また、微量の液体試料で、精度の高い検査を迅速に行うことができる検査方法としても優れている。
【００７４】
（Ｇ） ピロ燐酸定量用乾式分析素子：本発明で使用することのできるピロ燐酸定量用乾式分析素子は、公知の多種の乾式分析素子と同様の層構成とすることができる。乾式分析素子は、前記（Ｅ）項（ピロ燐酸（ＰＰｉ）の検出）における、式２または式３の反応を行うための試薬の他、支持体、展開層、検出層、光遮蔽層、接着層、吸水層、下塗り層その他の層を含む多重層としてもよい。このような乾式分析素子として、例えば特開昭４９−５３８８８号公報（対応米国特許３，９９２，１５８）、特開昭５１−４０１９１号公報（対応米国特許４，０４２，３３５）、及び特開昭５５−１６４３５６号公報（対応米国特許４，２９２，２７２）、特開昭６１−４９５９号公報（対応ＥＰＣ公開特許０１６６３６５Ａ）の各明細書に開示されたものがある。
【００７５】
本発明で用いることができる乾式分析素子としては、ピロ燐酸を無機燐に変換する試薬、および無機燐の量に応じた発色反応を行う試薬群を含有する試薬層を備えるピロ燐酸定量用乾式分析素子が挙げられる。
【００７６】
このピロ燐酸定量用乾式分析素子においては、ピロホスファターゼを用いて酵素的にピロ燐酸（ＰＰｉ）を無機燐（Ｐｉ）に変換するまでは本明細書中上記した通り行うことができ、それ以降は、生化学検査分野で既知の以下に述べる「無機燐の定量法」（及びそれらに用いられる各反応の組み合わせ）を用いることにより、無機燐（Ｐｉ）の量に応じた発色反応を行うことができる。
【００７７】
なお、「無機燐」を表記する場合、燐酸（燐酸イオン）として、「Ｐｉ」と表記する場合と「ＨＰＯ_４ ^２−、Ｈ_２ＰＯ_４ ^１−」と表記する両方の場合がある。以下に示す反応の例では、「Ｐｉ」として表記するが、同じ反応式に対して「ＨＰＯ_４ ^２−」と表記する場合もある。
【００７８】
無機燐の定量法としては酵素法と燐モリブテン酸塩法が知られている。以下、無機燐の定量法としての酵素法と燐モリブテン酸塩法について説明する。
Ａ．酵素法
Ｐｉを定量検出するための一連の反応における最後の「呈色反応」に用いる酵素に応じて、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）を用いる方法とグルコース−６−燐酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）を用いる方法がある。以下、これらの方法の具体例を説明する。
【００７９】
（１）ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）を用いる方法の例
（１−１）
無機燐（Ｐｉ）を、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（ＰＮＰ）により、イノシンと反応させ、生じたヒポキサンチンをキサンチンオキシダーゼ（ＸＯＤ）により酸化して尿酸を生成する。この酸化過程で生じる過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）を用いて、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）により、４−アミノアンチピリン（４−ＡＡ）とフェノールとを酸化縮合させてキノンイミン色素を形成し、これを比色する。
（１−２）
無機燐（Ｐｉ）、コカルボキシラーゼ（ＴＰＰ）、フラビンアデニンジヌクレオチド（ＦＡＤ）、Ｍｇ^２＋の存在下で、ピルビン酸をピルビン酸オキシダーゼ（ＰＯＰ）により酸化してアセチル酢酸を生成する。この酸化過程で生じる過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）を用いて、上記（１−１）の場合と同様に、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）により、４−アミノアンチピリン（４−ＡＡ）とフェノールとを酸化縮合させてキノンイミン色素を形成し、これを比色する。
【００８０】
なお、上記の（１−１）および（１−２）における最後の呈色反応は、過酸化水素の検出試薬として既知の「Ｔｒｉｎｄｅｒ試薬」を使用して行うことができる。この反応で、フェノールは「水素供与体」として働く。「水素供与体」として用いるフェノールは古典的で、現在は改良された様々な「水素供与体」が使用されている。このような水素供与体の具体例としては、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−アニリジン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−スルホプロピル−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３，５−ジメチルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−アニリジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメチルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−トルイジン、及びＮ−スルホプロピルアニリンなどが挙げられる。
【００８１】
（２）グルコース−６−燐酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）を用いる方法
（２−１）
無機燐（Ｐｉ）とグリコーゲンとをホスホリラーゼを用いて反応させ、グルコース−１−燐酸（Ｇ−１−Ｐ）を生成させる。生じたグルコース−１−燐酸をホスホグルコムターゼ（ＰＧＭ）により、グルコース−６−燐酸（Ｇ−６−Ｐ）にする。グルコース−６−燐酸とニコチアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ）との存在下、グルコース−６−燐酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）により、ＮＡＤを還元してＮＡＤＨにし、これを比色する。
（２−２）
無機燐（Ｐｉ）とマルトースとをマルトースホスホリラーゼ（ＭＰ）を用いて反応させ、グルコース−１−燐酸（Ｇ−１−Ｐ）を反応させる。以下、上記（２−１）と同様に、生じたグルコース−１−燐酸をホスホグルコムターゼ（ＰＧＭ）により、グルコース−６−燐酸（Ｇ−６−Ｐ）にする。グルコース−６−燐酸とニコチアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ）との存在下、グルコース−６−燐酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）により、ＮＡＤを還元してＮＡＤＨにし、これを比色する。
【００８２】
Ｂ．燐モリブテン酸塩法
酸性下で無機燐（燐酸塩）と水溶性モリブテン酸イオンとを錯化させた「燐モリブテン酸塩（Ｈ_３［ＰＯ_４Ｍｏ_１２Ｏ_３６］）を直接定量する「直接法」と、上記直接法の反応に続いて、還元剤により、Ｍｏ（ＩＶ）からＭｏ（ＩＩＩ）として、モリブテン青（Ｍｏ（ＩＩＩ））を定量する「還元法」とがある。水溶性モリブテン酸イオンの例としては、モリブテン酸アルミニウム、モリブテン酸カドミウム、モリブテン酸カルシウム、モリブテン酸バリウム、モリブテン酸リチウム、モリブテン酸カリウム、モリブテン酸ナトリウム、モリブテン酸アンモニウムなどが挙げられる。還元法で使用される代表的な還元剤の例としては、１，２，４アミノナフトールスルホン酸、硫酸第一鉄アンモニウム、塩化第一鉄、塩化第一スズ−ヒドラジン、硫酸−ｐ−メチルアミノフェノール、Ｎ，Ｎ−ジメチル−フェニレンジアミン、アスコルピン酸、マラカイトグリーンなどが挙げられる。
【００８３】
光透過性水不透過性支持体を用いる場合の乾式分析素子は、実用的に次のような構成を取り得る。ただし、本発明の内容はこれに限定されない。
（１） 支持体上に試薬層を有するもの。
（２） 支持体上に検出層、試薬層をこの順に有するもの。
（３） 支持体上に検出層、光反射層、試薬層をこの順に有するもの。
（４） 支持体上に第２試薬層、光反射層、第１試薬層をこの順に有するもの。
（５） 支持体上に検出層、第２試薬層、光反射層、第１試薬層をこの順に有するもの。
【００８４】
上記（１）ないし（３）において試薬層は異なる複数の層から成ってもよい。例えば第１試薬層には、式２または式３に示すピロホスファターゼ反応に必要な酵素ピロホスファターゼ、ＰＮＰ反応に必要な基質キサントシンまたは基質イノシンと酵素ＰＮＰを、第２試薬層には、式２または式３に示すＸＯＤ反応に必要な酵素ＸＯＤを、そして第３試薬層には、式２または式３に示すＰＯＤ反応に必要な酵素ＰＯＤと発色色素（色素前駆体）を、それぞれ含有させてもよい。あるいは試薬層を２層として、第１試薬層ではピロホスファターゼ反応とＰＮＰ反応を、第２試薬層ではＸＯＤ反応とＰＯＤ反応を進行させてもよい。又は、第１試薬層ではピロホスファターゼ反応とＰＮＰ反応とＸＯＤ反応を、第２試薬層でＰＯＤ反応を進行させてもよい。
【００８５】
なお支持体と試薬層又は検出層との間には吸水層を設けてもよい。また各層の間には濾過層を設けてもよい。また試薬層の上には展開層を設けてもよく、その間に接着層を設けてもよい。
支持体は光不透過性（不透明）、光半透過性（半透明）、光透過性（透明）のいずれのものも用いることができるが、一般的には光透過性で水不透過性の支持体が好ましい。光透過性水不透過性支持体の材料として好ましいものはポリエチレンテレフタレート、ポリスチレンである。親水性層を強固に接着させるため通常、下塗り層を設けるか、親水化処理を施す。
【００８６】
試薬層として多孔性層を用いる場合、その多孔性媒体は繊維質であってもよいし、非繊維質であってもよい。繊維質材料としては、例えば濾紙、不織布、織物布地（例えば平織り布地）、編物布地（例えばトリコット編物布地）、ガラス繊維濾紙等を用いることができる。非繊維質材料としては特開昭４９−５３８８８号公報等に記載の酢酸セルロースなどからなるメンブランフイルター、特開昭４９−５３８８８号公報、特開昭５５−９０８５９号公報（対応米国特許４，２５８，００１）特開昭５８−７０１６３号公報（対応米国特許４，４８６，５３７）等に記載の無機物又は有機物微粒子からなる連続空隙含有粒状構造物層等のいずれでもよい。特開昭６１−４９５９号公報（対応欧州公開ＥＰ ０１６６３６５Ａ）、特開昭６２−１１６２５８号公報、特開昭６２−１３８７５６号公報（対応欧州公開ＥＰ ０２２６４６５Ａ）、特開昭６２−１３８７５７号公報（対応欧州公開ＥＰ ０２２６４６５Ａ）、特開昭６２−１３８７５８号公報（対応欧州公開ＥＰ ０２２６４６５Ａ）等に記載の部分接着された複数の多孔性層の積層物も好適である。
【００８７】
多孔性層は、供給される液体の量にほぼ比例した面積に液体を展開する、いわゆる計量作用を有する展開層であってもよい。展開層としては、これらのうち織物布地、編物布地などが好ましい。織物布地などは特開昭５７−６６３５９号公報に記載されたようなグロー放電処理をしてもよい。展開層には、展開面積、展開速度等を調節するため特開昭６０−２２２７７０号公報（対応：ＥＰ ０１６２３０１Ａ）、特開昭６３−２１９３９７号公報（対応***特許公開ＤＥ ３７１７９１３Ａ）、特開昭６３−１１２９９９号公報（対応：ＤＥ ３７１７９１３Ａ）、特開昭６２−１８２６５２号公報（対応：ＤＥ ３７１７９１３Ａ）に記載したような親水性高分子あるいは界面活性剤を含有させてもよい。
【００８８】
例えば紙、布、高分子からなる多孔質膜等に本発明の試薬を予め含浸又は塗布した後、支持体上に設けた他の水浸透性層、例えば検出層の上に、特開昭５５−１６４５３５６号公報のような方法で接着させるのも有用な方法である。
こうして作られる試薬層の厚さは特に制限されないが、塗布層として設ける場合には、１μｍ〜５０μｍ程度、好ましくは２μｍ〜３０μｍの範囲が適当である。ラミネートによる積層など、塗布以外の方法による場合、厚さは数十μｍから数百μｍの範囲で大きく変化し得る。
【００８９】
親水性ポリマーバインダーからなる水浸透性層で試薬層を構成する場合、使用できる親水性ポリマーとしては、例えば、以下のものがある。ゼラチン及びこれらの誘導体（例えばフタル化ゼラチン）、セルロース誘導体（例えばヒドロキシエチルセルロース）、アガロース、アルギン酸ナトリウム、アクリルアミド共重合体やメタアクリルアミド共重合体（例えば、アクリルアミド又はメタアクリルアミドと各種ビニル性モニマーとの共重合体）、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリアクリル酸ナトリウム、アクリル酸と各種ビニル性モノマーとの共重合体などである。
【００９０】
親水性ポリマーバインダーで構成される試薬層は、特公昭５３−２１６７７号公報（対応米国特許３，９９２，１５８）、特開昭５５−１６４３５６号公報（対応米国特許４，２９２，２７２）、特開昭５４−１０１３９８号公報（対応米国特許４，１３２，５２８）等の明細書に記載の方法に従って本発明の試薬組成物と親水性ポリマーを含む水溶液又は水分散液を支持体又は検出層等の他の層の上に塗布し乾燥することにより設けることができる。親水性ポリマーをバインダーとする試薬層の乾燥時の厚さは約２μｍ〜約５０μｍ、好ましくは約４μｍ〜約３０μｍの範囲、被覆量では約２ｇ／ｍ^２〜約５０ｇ／ｍ^２、好ましくは約４ｇ／ｍ^２〜約３０ｇ／ｍ^２の範囲である。
【００９１】
試薬層には式２または式３の試薬組成物の他に、塗布特性、拡散性化合物の拡散性、反応性、保存性等の諸性能の向上を目的として、酵素の活性化剤、補酵素、界面活性剤、ｐＨ緩衝剤組成物、微粉末、酸化防止剤、その他、有機物あるいは無機物からなる各種添加剤を加える事ができる。試薬層に含有させることができる緩衝剤はの例としては、日本化学学会編「化学便覧 基礎」（丸善（株）、１９６６年発行）１３１２−１３２０頁、Ｒ．Ｍ．Ｃ．Ｄａｗｓｏｎ ｅｔ ａｌ編、「Ｄａｔａ ｆｏｒ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ」第２版（Ｏｘｆｏｒｄ ａｔ ｔｈｅ Ｃｌａｒｅｎｄｏｎ Ｐｒｅｓｓ，１９６９年発行）４７６−５０８頁、「Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ」５，４６７−４７７頁（１９６６年）、「Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ」１０４，３００−３１０頁（１９８０年）に記載のｐＨ緩衝剤系がある。ｐＨ緩衝剤系の具体例として硼酸塩を含む緩衝剤；クエン酸又はクエン酸塩を含む緩衝剤；グリシンを含む緩衝剤；ビシン（Ｂｉｃｉｎｅ）を含む緩衝剤；ＨＥＰＥＳを含む緩衝剤；ＭＥＳを含む緩衝剤などのグッド緩衝剤等がある。なお燐酸塩を含む緩衝剤は、ピロ燐酸検出用乾式分析素子に使用することはできない。
【００９２】
本発明で使用することのできる、ピロ燐酸定量用乾式分析素子は前述の諸特許明細書に記載の公知の方法により調製することができる。ピロ燐酸定量用乾式分析素子は一辺約５ｍｍから約３０ｍｍの正方形またはほぼ同サイズの円形等の小片に裁断し、特公昭５７−２８３３３１号公報（対応米国特許４，１６９，７５１）、実開昭５６−１４２４５４号公報（対応米国特許４，３８７，９９０）、特開昭５７−６３４５２号公報、実開昭５８−３２３５０号公報、特表昭５８−５０１１４４号公報（対応国際公：ＷＯ０８３／００３９１）等に記載のスライド枠に収めて化学分析スライドとして用いることが製造，包装，輸送，保存，測定操作等の観点で好ましい。使用目的によっては、長いテープ状でカセットまたはマガジンに収めて用いたり、又は小片を開口のある容器内に収めて用いたり、又は小片を開口カードに貼付または収めて用いたり、あるいは裁断した小片をそのまま用いることなどもできる。
【００９３】
本発明で使用することのできるピロ燐酸定量用乾式分析素子は前述の諸特許明細書等に記載の操作と同様の操作により液体試料中の被検物であるピロ燐酸の定量検出ができる。例えば約２μＬ〜約３０μＬ、好ましくは４μＬ〜１５μＬの範囲の水性液体試料液を試薬層に点着する。点着した分析素子を約２０℃〜約４５℃の範囲の一定温度で、好ましくは約３０℃〜約４０℃の範囲内の一定温度で１〜１０分間インキュベーションする。分析素子内の発色又は変色を光透過性支持体側から反射測光し、予め作成した検量線を用いて比色測定法の原理により検体中のピロ燐酸の量を求めることができる。点着する液体試料の量、インキュベーション時間及び温度を一定にすることにより定量分析を高精度に実施できる。
【００９４】
測定操作は特開昭６０−１２５５４３号公報、特開昭６０−２２０８６２号公報、特開昭６１−２９４３６７号公報、特開昭５８−１６１８６７号公報（対応米国特許４，４２４，１９１）などに記載の化学分析装置により極めて容易な操作で高精度の定量分析を実施できる。なお、目的や必要精度によっては目視により発色の度合いを判定して、半定量的な測定を行ってもよい。
【００９５】
本発明で使用することのできる、ピロ燐酸定量乾式分析素子においては、分析を行うまでは乾燥状態で貯蔵・保管されるため、試薬を用時調製する必要がなく、また一般に乾燥状態の方が試薬の安定性が高いことから、試薬溶液を用時調製しなければならないいわゆる湿式法より簡便性、迅速性に優れている。また、微量の液体試料で、精度の高い検査を迅速に行うことができる検査方法としても優れている。
【００９６】
本発明の第二の形態において使用することのできる無機燐定量用乾式分析素子は、前記のピロ燐酸定量乾式分析素子における試薬層からピロホスファターゼを除くことで調製することができる。また、特開平７−１９７号公報に記載の乾式分析素子を使用することも可能である。無機燐定量用乾式分析素子は、試薬層にピロホスファターゼを含有しない以外は、その層構成、製造方法、使用方法において、前記ピロ燐酸定量乾式分析素子と同様である。
以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
【００９７】
【実施例】
（１）材料及び試薬
図１〜図６に構造を示す核酸精製用カートリッジを使用し、第２開口部側より試料、洗浄液、蒸留水を順次注入し、そのたびにピストン部材（ブランジャ）を挿入し、押した。また、核酸吸着固相としては、富士ミクロフィルターＦＲ２５０（富士写真フイルム製）を使用した。核酸精製用吸着バッファー溶液及び洗浄バッファー溶液は以下の通り調製した。
【００９８】

【００９９】
（２）核酸精製操作
人全血検体２００μｌに、吸着バッファー２００μｌとプロテアーゼＫ２００μｌを添加して、６０℃で１０分間インキュベートした。インキュベート後、エタノール２００μｌを加え、攪拌した。攪拌後、図１〜図６に構造を示す核酸精製用カートリッジにこの液を注入した。注入後、ピストンにて液を押し出した。さらに、洗浄バッファー５００μｌを注入し、ピストンにて液を押し出すことにより、カートリッジおよび吸着固相上の不純物を洗浄した。最後に、蒸留水２００μｌを注入し、ピストンにて液を押し出して、この液を回収した。
【０１００】
（３）核酸の回収量の定量
（２）の操作により精製されたＤＮＡの収量を以下に示す（実験は全部で５回行った）。
【０１０１】
【表１】

【０１０２】
（４）ＰＣＲ反応
Ａ型、Ｏ型、Ｂ型、ＡＢ型の全血検体を本発明および比較法（ＱＩＡＧＥＮ）にて精製し、Ｏ型特異的プライマーを使用し、ＰＣＲを実施した。Ｏ型特異的プライマーとしては、フォワードプライマー：ｇｔｇｃａｇｔａｇｇａａｇｇａｔｇｔｃｃｔｃｇｔｇｇａａｃ（配列番号１）を使用し、リバースプライマーとしてｔａａｇｇｔｇｔｃａｃｔｃｇｃｃａｃｔｇｃｃｔｇｇｇｔｃｔｃ（配列番号２）を使用した。ＰＣＲは、ＭｇＣｌ_２（１．５ｍＭ）、ｄＮＴＰ（２００μＭ）、ＨＳＴａｑ（２．４５Ｕ／５０μｌ）、フォワードプライマー及びリバースプライマー（各０．４μＭ）、及び鋳型２３μｌを含む全量５０μｌの系で行い、反応混合物を９４℃で１５分加熱した後、９４℃で１分、６１℃で１分及び７２℃で１分のサイクルを３０サイクル行い、最後に７２℃で５分インキュベートした後、４℃で保存した。ＰＣＲ産物を電気泳動した結果を図９に示す。図９の結果から、Ｏ型のみに特異的に増幅していることが分かる。
【０１０３】
【発明の効果】
本発明の核酸の分離精製装置によれば、逆止弁の作用により、ピストン部材の押圧時には、収納部内の試料を外側へ押し出すことができるが、ピストン部材の引っ張り時には流通孔から試料を吸引することはできない。その代わり、ピストン部材の引っ張り時に、流通孔及び固相を通って強制的に空気を吸引することがないため、ピストン部材を容易に基端部方向に引くことができるようになる。これにより核酸の分離精製工程で、ピストン部材の複数回の引っ張り動作が容易になるという効果を生じる。また核酸の分離精製工程において、ピストン部材の引っ張り時に固相に一旦吸着された核酸に対して収納部側からの引圧が作用しないから、固相での核酸の吸着状態を維持することができる。
【０１０４】
核酸の分離精製装置及び核酸の分離精製方法によれば、分離性能に優れ、洗浄効率が良く、加工が容易であり、実質的に同一の分離性能を有する物を大量に生産可能である固相を用いて、核酸を含む試料溶液から純度の高い核酸を効率良く分離することができる。
【０１０５】
特に固相保持部材をシリンジの先端に取り付けることにより、プランジャの操作で試料の排出を効率良く行うことができる。また固相保持部材をシリンジの先端部に着脱可能に装着すれば、固相保持部材をシリンジから脱着することで使用後の固相を外し、新たな固相を装着することができるため、頻回使用の核酸の分離精製装置を提供することができる。
【０１０６】
更にまた、シリンジの先端部の外周面を先端方向へ縮径するテーパとし、固相保持部材の基端側内面にも対応テーパを形成することにより、固相保持部材のシリンジへの装着が極めて容易になる。シリンジの先端部の外周面に雄ねじを形成し、固相保持部材の基端側内面に対応する雌ねじを形成することにより、固相保持部材をシリンジに対して確実に固定することができる。
【０１０７】
更にまた、固相保持部材の先端側内面にシリンジの長手方向軸線にほぼ垂直な円形の固相支持面を形成し、円形に形成された固相を固相支持面と平行に配置し、円形に形成されたシリンジの先端部の先端が固相の円形外周縁のすぐ内側に当接して、固相を固相支持面に押圧するようにすれば、固相が固相支持面にしっかりと支持されると共に、試料、核酸洗浄バッファ及び核酸を固相から脱着させる液が必ず固相を通過するようになるため、核酸の分離精製機能の効率が高まる。
【０１０８】
【配列表】

【図面の簡単な説明】
【図１】本発明の核酸分離精製装置を示す側断面図及び逆止弁付きのピストン部材の一部拡大図である。
【図２】本発明の核酸分離精製装置の分解斜視図である。
【図３】シリンジと固相保持部材の接合方法の他の実施の形態を示す側断面図である。
【図４】固相保持部材の拡大断面図である。
【図５】シリンジの先端部の縦断面図である。
【図６】シリンジの先端部内において、収納部内から外側へ押し出される液体が流れる様子を示す説明図である。
【図７】ピストン部材における逆止弁の他の実施の形態を示す説明図である。
【図８】本発明の核酸の分析を説明する概念図である。
【図９】本発明の方法で分離精製した核酸を用いたＰＣＲの反応産物を電気泳動した結果である。
【符号の説明】
１ 核酸の分離精製装置
３ シリンジ
５ ピストン部材
７ 固相保持部材
９ シリンジの先端部
１１ 第１開口部
１３ フランジ部
１５ シリンジの基端部
１７ 第２開口部
１８ 固定機構
１９ 収納部
２１ テーパ
２３ 雄ねじ
２５ 雌ねじ
２７ 液体案内面
２９ 先端部の先端
３１ プランジャ
３３ Ｏ−リング
３４ 操作部
３５ 本体部
３７ 端板
３９ ノズル
４１ 流通孔
４３ 固相支持面
４５ 固相
４６ ポリプロピレン焼結フィルター
４７ テーパ
４９ 縮径部
５１ 逆止弁
５３ 連通路
５５ 弁座
５７ 弁体
５９ バネ支持体
６１ コイルバネ

Claims (19)

1. 第１開口部が形成される先端部と、第２開口部が形成される基端部とを有し、前記第１開口部と第２開口部との間の収納部内に液体を保持可能な円筒形のシリンジと、
   前記第２開口部側から前記収納部内へ延びるプランジャと、該プランジャの先端に設けられ、前記収納部の内面に密接可能で且つ前記収納部内でスライド可能な液密部材とを備えているピストン部材と、
   前記先端部に接続され、先端側に流通孔が形成された固相保持部材とを備えており、
   前記固相保持部材の内部には、表面に水酸基を有する有機高分子から成る、試料溶液中の核酸を吸着及び脱着可能な固相が収納されており、
   前記ピストン部材には、前記ピストン部材を先端部側へ移行させたときには閉状態となるが、前記ピストン部材を基端部側へ移行させたときには開状態となる逆止弁が設けられていることを特徴とする核酸の分離精製装置。
2. 前記固相保持部材は、前記シリンジの先端部に着脱可能に装着されていることを特徴とする請求項１に記載の核酸の分離精製装置。
3. 前記シリンジの先端部の外周面には先端方向へ縮径するテーパが形成されており、前記固相保持部材の基端側内面には前記シリンジ先端部のテーパに対応して先端方向へ縮径するテーパが形成されていることを特徴とする請求項２に記載の核酸の分離精製装置。
4. 前記シリンジの先端部の外周面には雄ねじが形成されており、前記固相保持部材の基端側内面には前記シリンジ先端部の雄ねじに対応する雌ねじが形成されていることを特徴とする請求項２に記載の核酸の分離精製装置。
5. 前記固相保持部材の先端側内面には前記シリンジの長手方向軸線にほぼ垂直な円形の固相支持面が形成されており、円形に形成された前記固相が前記固相支持面と平行に配置され、円形に形成された前記シリンジの先端部の先端が前記固相の円形外周縁のすぐ内側に当接して、固相を前記固相支持面側へ押圧していることを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の核酸の分離精製装置。
6. 前記固相と固相支持面との間にクッション作用を有するフィルター部材が設けられていることを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載の核酸の分離精製装置。
7. 表面に水酸基を有する有機高分子がアセチルセルロースの表面鹸化物である、請求項１〜６のいずれかに記載の核酸の分離精製装置。
8. 表面に水酸基を有する有機高分子がトリアセチルセルロースの表面鹸化物である、請求項１〜７のいずれかに記載の核酸の分離精製装置。
9. アセチルセルロースの表面鹸化率が５％以上である、請求項７または８に記載の核酸の分離精製装置。
10. アセチルセルロースの表面鹸化率が１０％以上である、請求項７または８に記載の核酸の分離精製装置。
11. アセチルセルロースが多孔膜である、請求項７〜１０のいずれかに記載の核酸の分離精製装置。
12. アセチルセルロースが非孔性膜である、請求項７〜１０のいずれかに記載の核酸の分離精製装置。
13. 請求項１から１２の何れかに記載の核酸の分離精製装置を使用し、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に、試料溶液中の核酸を吸着及び脱着させることを含む、核酸の分離精製方法。
14. 試料溶液が、細胞又はウイルスを含む検体を核酸可溶化試薬で処理して得られた溶液に水溶性有機溶媒を添加した溶液である、請求項１３に記載の核酸の分離精製方法。
15. 核酸可溶化試薬が、グアニジン塩、界面活性剤およびタンパク質分解酵素である、請求項１３又は１４に記載の核酸の分離精製方法。
16. 表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に核酸を吸着させた後、核酸洗浄バッファを用いて固相を洗浄し、次いで固相に吸着した核酸を脱着せしめうる液を用いて固相に吸着した核酸を脱着させる工程を含む、請求項１３から１５の何れかに記載の核酸の分離精製方法。
17. 核酸洗浄バッファが、メタノール、エタノール、イソプロパノール又はｎ−プロパノールを２０〜１００重量％含む溶液である、請求項１６に記載の核酸の分離精製方法。
18. 固相に吸着した核酸を脱着せしめうる液が、塩濃度が０．５Ｍ以下の溶液である、請求項１６または１７に記載の核酸の分離精製方法。
19. 下記の工程により核酸の分離精製を行う、請求項１３から１８の何れかに記載の核酸の分離精製方法。
    （ａ） 検体を用いて核酸を含む試料溶液を調製し、前記ピストン部材を核酸分離精製装置の第２開口部から取り去った状態で、第２開口部から上記の核酸を含む試料溶液を収納部内に注入する工程、
    （ｂ） 核酸分離精製装置の第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸を含む試料溶液を、流通孔より排出することによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に接触させる工程、
    （ｃ） 前記ピストン部材を前記第２開口部から取り去る工程、
    （ｄ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部から核酸洗浄バッファを注入する工程、
    （ｅ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸洗浄バッファを上記流通孔より排出することによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に接触させる工程、
    （ｆ） 前記ピストン部材を前記第２開口部から取り去る工程、
    （ｇ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部から表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に吸着された核酸を脱着せしめうる液を注入する工程、
    （ｈ） 核酸分離精製装置の上記第２開口部にピストン部材を挿入して前記収納部内を加圧状態にし、注入した核酸を脱着せしめうる液を上記流通孔より排出させることによって、表面に水酸基を有する有機高分子から成る固相に吸着された核酸を脱着させ、核酸分離精製装置外に排出する工程。

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