JP2001502055A - Homogeneous luminescence energy transfer assay - Google Patents

Homogeneous luminescence energy transfer assay

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ユハニ フルスカイネン，ペルティ
ルナー ボロムベルグ，カイ
ムッカラ，ベリ―マティ
ユハ タカロ，ハルリ
アンネリ コバネン，サトゥ
アラン ベーブ，ストゥアート
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ワラック オサケユイチア
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Abstract

(57)【要約】 本発明は、検出に時間分割蛍光測定法を用いるエネルギー転移ベースのホモジニアスアッセイの改良に関する。その特定の改良は、特定の型のエネルギー供与体として用いられるランタニドキレートラベル、所定のアッセイのための最適化されたエネルギー受容体に関する。ここで、エネルギーが転移する道は最適化されたフィルター及び時間窓を用いて測定され、サンプル由来の全てのおこり得る干渉を正す方法は、多成分分析のためのアッセイ及び単純化したアッセイプロトコルの開発を用いる。   (57) [Summary] The present invention relates to an improvement in an energy transfer-based homogeneous assay using time-resolved fluorometry for detection. The particular improvement relates to lanthanide chelate labels used as specific types of energy donors, optimized energy acceptors for a given assay. Here, the path of energy transfer is measured using an optimized filter and time window, and methods to correct for any possible interference from the sample are available in assays for multi-component analysis and simplified assay protocols. Use development.

Description

【発明の詳細な説明】 ホモジニアスルミネセンスエネルギー転移アッセイ 発明の分野 本発明は、検出に時間分割蛍光測定法を用いるエネルギー転移ベースのホモジ ニアスアッセイの改良に関する。その特定の改良は、特定の型のエネルギー供与 体として用いられるランタニドキレートラベル、所定のアッセイのための最適化 されたエネルギー受容体に関する。ここで、エネルギーが転移する道は最適化さ れたフィルター及び時間窓を用いて測定され、サンプル由来の全てのおこり得る 干渉を正す方法は、多成分分析のためのアッセイ及び単純化したアッセイプロト コルの開発を用いる。 発明の背景 本発明の背景を明らかにするために本明細書に用いられる出版物及び他の材料 、特にその実施に関する更なる詳細を供するものは引用により組み込まれる。 バイオアフィニティー又は酵素触媒反応に基づく極めて多種のアッセイが、種 々の生物サンプル（例えば血清、血液、血漿、唾液、尿、便、精漿、汗、分泌液 、羊水、組織ホモジネート、腹水等）、環境の研究（廃水、土壌サンプル）、工 業的工程（工程の溶液、生成物）及び化合物ライブラリー（有機化合物、無機化 合物、天然の産物、生物源の抽出物、生物タンパク質、ペプチド、又はヌクレオ チド等）におけるサンプルから生物学的に重要な化合物を分析するために開発さ れている。これらのアッセイのいくつかは特定のバイオアフィニティー認識反応 に依存し、ここでは、（生物学的に結合 する構成物、例えば抗体、天然のホルモン結合タンパク質、レクチン、酵素、レ セプター、DNA，RNA又はPNAとの）特異的結合アッセイ、又は遺伝的にもしくは 化学的に工作された抗体のような人工的に作られた結合性化合物、モールディド プラスチックインプリント（分子インプリンティング）等を形成するために一般 に天然の生物結合性構成物が用いられる。これらのアッセイは、一般に、認識、 結合反応及び適切な分離（沈殿及び遠心、ろ過、例えばプラスチック表面、例え ばコートしたアッセイチューブへのアフィニティー収集、マイクロビーズのスラ イド、溶媒抽出、ゲルろ過又は他のクロマトグラフィーシステム等のような分離 ）後に形成された複合体を定量するためのラベルに依存する。遊離した又は結合 した画分におけるラベルの定量は、一般に未知のサンプルを比較する一セットの 標準を用いて、直接的又は間接的なサンプル中の被検体の計算を可能にする。 これらのアッセイのほとんどにおいて必要とされる分離及び洗浄は、労力を増 やし、遅くし、そして自動化を難しくする。更に、終点測定は速度論的情報（会 合／解離速度）の採取を許容しない。低アフィニティー結合の場合そのアフィニ ティーが低すぎて、その結合を破壊することなく物理的分離を適用することがで きない（低アフィニティーレセプター）。特に、スクリーニング（高スループッ トスクリーニング）のような領域において、自動化をより簡単にし、かつスルー プットを増加させるであろうより簡単なアッセイ、単純化されたプロトコルにつ いての一定の要求がある。それは、ホモジニアス又は非分離アッセイで達成する ことができる。ホモジニアスバイオメディカルアッセイは、一つの均一な相にお いて行われるアッセイとして定義される。それは、分離した相（例えば試薬を捕 獲する固相）、及び分離を測定前に用いないことを意味する。それ は、その直接的な監視を可能にする方法において結合アッセイに応答するシグナ ル生産システムを要求する。先行技術で知られているシステムは、例えば小分子 化合物に適用される蛍光分極アッセイ、酵素モニターイムノアッセイ（Syvaによ り市販）、種々の蛍光消滅 of Fluorescence in Immunoassays，Wiley，NY，1991を参照のこと）である。単 純化したアッセイ技術の他のカテゴリーは、ホモジニアスアッセイに似て、分離 及び洗浄ステップを避ける非分離アッセイである。この技術の優れた例は、アッ セイ媒体中の放射性粒子の短距離浸透及び捕獲性試薬でコートされた固体シンチ レーターに基づくAmershamにより市販されるシンチレーション近接原理である(U denfriendら（1985）Proc Natl Acad Sci，82，8672及びAnal Biochem，（1987 ）161，494)。 今日までに出版されている多数のホモジニアスアッセイデザインにもかかわら ず、融通性及び感度が優れた分離アッセイのものに適合するであろうアッセイは ない。その理由は、例えばアッセイが最適化されるホモジニアス対ヘテロジニア スの異なる方法、低アフィニティー非特異的結合の制御、及びほとんどの存在す るホモジニアスアッセイ技術の適用性の制限に何倍も関係している。更に、慣用 的なホモジニアス蛍光測定アッセイは、サンプル中の種々の構成物由来のバック グラウンド干渉に極めて影響を受けやすい。蛍光分極アッセイは、低アフィニテ ィー非特異的結合（例えばアルブミンに結合するプローブ）及びサンプルの自己 蛍光により妨害される。 時間分割蛍光測定（マイクロ−又はミリ秒範囲での時間域における時間分割） は、ホモジニアスアッセイのための完全に測定する様式である。なぜならそれは 長い十分な遅延時間（パルス化された励起と放射の記録の開始との間の時間）を 用いる時に有機化合物由来 のバックグラウンド蛍光を全体的に識別することができるからである（報告につ いて、例えばHemmila(1991);Gudgin Dickinsonら、（1995）J Photochem Photob iol 27，3)。分離ベースのアッセイに加えて、いくつかのホモジニアス時間分割 蛍光測定アッセイも開示され、特許されている(Mathis（1995）Clin Chem，41， 1391;Selvinら（1994）Proc Natl Acad Sci，USA，91，10024)が、それらには制 限及び欠点がある。本発明の目的は、一般に、長寿命キレートベースの供与体プ ローブと短寿命（又は非放射性）受容体分子との間の特定のエネルギー転移に基 づく時間分割ホモジニアスアッセイ原理における改良を供することである。 共鳴エネルギー転移 ー（受容体の吸収を伴う供与体の放射）がオーバーラップする条件において２つ の分子間でおこり、それらは20nm未満の距離である。そのエネルギー転移は、そ の分子の振動の正確な配向を要求する。 エネルギー転移効率（ΦET)は次式： ΦET＝１／〔１＋(ｒ／Ｒ0)6〕 （式中、ｒは供与体分子と受容体分子との距離であり、そしてＲ0は供与体−受 容体対及びそれらの間の媒体を特徴づける距離パラメータである） で供される。 蛍光共鳴エネルギー転移（FRET）は、例えば、高分子中の距離を測定するため に構造研究における顕微鏡ルーラーとして適用されている（Stryer及びHaugland （1967）Proc Natl Acad Sci，USA，58:719）。共鳴エネルギー転移に加えて、 他のエネルギー転移反応、例えば単純な放射性（供与体により放射される光を受 容体が吸収す る場合）、衝突エネルギー転移、変換(Dexter（1953）J Chem Physics，21，836 )及び励起子マイグレーション（結晶内）もある。更に、供与体放射は、いくつ かの供与体のエネルギーレベルへの不活性化効果を有するいくつかの非関連の化 合物で、多数の方法により消光することができる。 Ullmanは、Syva Co.によりFETIA(蛍光エネルギー転移イムノアッセイ)として 市販される抗体認識反応に基づく生物分析アッセイにおけるフォースター型非放 射性エネルギー転移（Ullman，Scharzberg及びRubenstein（1967）J Biol Chem ，251:4172）の適用を最初に開示した（US 3,996,345）。適切なエネルギー供与 体−受容体対の開発はそれらの種々の調査（Ullman及びKhanna(1981)Methods En zymol，74:28;Khanna及びUllman（1980）Anal Biochem，108，156）に十分に記 載されている。FETIAは、主に、供与体としてキサンテン色素及びフルオレセイ ンの誘導体を適用する。多数の他のプローブ対もこれまで開発されており、イム ノアッセイにおいて適用 ）。このアッセイには、フルオレセインの実用的な非蛍光誘導体、長寿命遅延蛍 光放射性エオシン(Thakrar及びMiller（1982）Anal Proc，19，329)、長寿命蛍 光ピレン（Morrison（1988）Anal Biochem，174，101）及び非放射性チャコール がある。FRETはこれまで、基本的な調査及びDNAハイブリダイゼーション（例え ばMorrisonら（1989）Anal Biochem，183，231；Parkhurstら(1995)Biochemistr y，34，285）において広範囲に適用されており、他のアッセイは、会合、解離又 は距離を測定することである。 受容体分子の直接の励起の効果を避けるための一時的識別（時間分割）の使用 が、長く励起された状態の供与体としてのピレン、励起のためのパルスレーザー 及び短い減衰時間の受容体を用いて、異 なる減衰時間の有機供与体−受容体対で、Morrison（Morrison（1988）Anal Bio chem，174，101）により記載される（US 4,822,733）。イムノアッセイに加えて 、時間分割エネルギー転移原理は、受容体としてフルオレセインを用いるホモジ ニアス溶液ハイブリダイゼーションのために適用される（Morrisonら（1989）II Ird International Symposium on Quantitative Luminescence Spectrometry in Biomedical Sciences，Ghent Belgium）。長く励起された状態は、直接励起さ れたアクセプターの放射が減衰する時間である遅延時間を用いて特定のエネルギ ー転移を行うことができるという利点を供する。時間分割蛍光測定法において利 用される異なる減衰時間の組合せは、慣用的な短い減衰プローブを用いるFRET技 術に優る明らかな利点を供するであろう。 ルミネセンス（蛍光）のランタニドは、DNA及びタンパク質構造研究のための 道具として長く用いられており（例えばBrittain（1985）Bioinorganic Lumines cence Spectroscopy，Schulman(ed)，Mo pin(1989)Lanthanide Probes in Life，Chemical and Earth Sciences，Theory and Practice，Elsevier Science Publisher，Amsterdamを参照のこと）、例え ばRNA、リボソーム、DNA及びクロマチン、テルモリシン及びトランスフェリン、 カルモジュリン、ATPase、神経膜、赤血球膜タンパク質、リン脂質及びリポソー ム並びにそ 照のこと）。カルシウム結合タンパク質又はDNAの異なる部位に結合したランタ ニド間のエネルギー転移は、例えばEuとNdとの間のエネルギー転移を用いてカル モジュリンとの、イオン結合部位の位置を測定するために微視的ルーラーとして 用いられている(Horrocks及びTingey（1988）Biochemistry，27，413)。TbからE uへのエネル ギー転移を測定することによるキレート研究において類似するFRETが用いられて いる（Brittain（1978）Inorg Chem，17，2762）。 ランタニド及びそれらのキレートは時間分割FRET実験のための優れた候補であ る。第１に、それらは例外的な長く励起される状態の寿命を有する(Weissman（1 942）Chem.Phys，10，214;Whan及びCrosby（1962）Mol Spectrosc，8，315)。そ のエネルギー転移は、電気的双極子である遷移間でのみおこる。612〜620nmにお ける高い蛍光のEuキレートにおける主な遷移(遷移5D0−7F2)は電気的双極 d Choppin（ed）Elsevier Science，Publisher，Amsterdam)、エネルギーを与え ることができる。しかしながら、590〜595nmにおける放射を作り出す遷移5D0−7 F1は磁気的双極子であり、エネルギーを転移することができない(Dexter，J Che m Phys 21;836，1953)。更に、ランタニド放射は等方性双極子モーメントを有す るので、その配向率は不明瞭さが少なくなる(Andoら（1992）Biochem Biophys A cta，1102，186)。 蛍光ランタニドキレートは、既に1978年から、Stryer，Thomas及びMearesによ りエネルギー供与体として用いられている。例えば、Tbジピコリネートキレート は、ロダミンについて6.57nm、エオシンについて4.46nm及びNBDについて4.46nm の臨界距離(Ｒ0)を有すると報告されている。典型的には有効なエネルギー転移 において全体の減衰は上述のシステムにおいて示されるように、2.22msから0.12 msに短くなる。Mearesら（1981，1992）は、エネルギー供与体としてTb−フェニ ル−EDTAを用いて、酵素が結合したリファマイシンを測定した(Biochemistry 20 ;610;Biochemistry 22;6247)。蛍光化合物に加えて、Co（III）及びCo（II）の ような非ルミネセンス受 容体も報告されている(Cronce及びHorrocks（1992）Biochemistry 31，7963)。E u及びTbキレートも、クマリン誘導体についてEu及びサリチル酸誘導体についてT bがエネルギー受容体としてテストされた(Clarkら（1993）Anal Biochem 210，1 )。多数の利用できる非ルミネセンスエネルギー受容体（消光体）はランタニド キレートについて更なる利点である。それらは、金属イオン、亜硝酸塩(Tanaka ら（1993）J Photochem Photobiol A:Chem，74，15)、他の常磁性金属イオン及 びそれらのキレート、フリーラジカル(Matkoら（1992）Biochemistry 31，703) 等により消光することができる。 種々の形態のバイオアフィニティーアッセイにおける蛍光ラベルとしてのラン タニドの使用は多数の報告及び特許（例えば、Hemmi いる。‘機能し得る’キレートラベルについての初期の考えの例は、例えば次の 特許(US 4,374,120;4,432,907;4,965,211;4,341,957;4,058,732及び4,283,382) に見い出すことができる。非ルミネセンス標識化キレート（US 4,808,541）及び 解離蛍光エンハンスメント（US 4,565,790）に基づくヘテロジニアスアッセイシ ステムは最も広い適用を得ている。このシステム及び蛍光形成リガンド及びアッ セイ後カチオン飽和に基づくシステム(EP-A 354847及びUS 4,772,563)はホモジ ニアスアッセイに適していない。しかしながら、以下の米国特許：4,761,481;5, 032,677;5,055,578;5,106,957;5,116,989;4,761,481;4,801,722;4,794,191;4,63 7,988;4,670,572;4,837,169及び4,859,777に記載されるような、時間分割FRETア ッセイに用いることができる特許及び論文に記載される多数の安全な蛍光キレー トがある。好ましいキレートは、第９歯状（nona-dentate）キレート化リガンド 、例えばテルピリジン(EP-A 403593;US 5,324,825;US 5,202,423;US 5,316,909) 、１又は２の５員 環を有するテルピリジンアナログ(例えばピラゾール、チアゾール、トリアジン) (米国出願08／548,174及びPCT／FI91／00373)から構成される。極めてよく適し たキレートは、以下の論文（Takaloら（1994）Bioconjugate Chem，5，278;Mukk alaら(1993)Helv Chim Acta，76，1361;Remuinnanら(1993)J Chem Soc Perkin T rans，2，1099;Mukkalaら(1996)Helv Chim Acta，79，295;Takaloら（1996）Hel v Chim Acta，79）にも言及される。本発明に適した他の長期減衰時間ラベルの 例は、Pd及びptとのホルフィリン誘導体のリン光性複合体である(WO 94／10568) 。 種々の型のホモジニアス結合アッセイにおける長期減衰時間ランタニドの使用 は、例えば混合したリガンドキレート（US 4,587,223）、環境センシティブキレ ート(EP 324323)及び酵素基質としてのキレート(EP 374221)に基づいても記載さ れる。 1976年における蛍光共鳴エネルギー転移に基づくホモジニアスアッセイの開発 から、それらはSyvaコーポレーションにより市販される診断において広範囲の適 用を得ている（US 3,996,345）。時間分割蛍光測定システムにおける特定のラベ ルとしてのランタニドキレートの使用は、最初、1970年代にLeif（Leifら（1976 ）Automation of Uterine Cancer Cytology 1，GL Weid，GF Bahar and PH Bart els(ed)Tutorial of Cytology，Chicago IL）及びWieder（Wieder（1978）Proc ．6th Int.Conf．On Immunofluorescence and related staining techniques，W Knapp，K Holubar and G Wick(eds),North-Holland，Amsterdam，US 4,058,732 ，DE2,628,158）により開示され、後に1980年代に機能する診断システム（US 4, 565,790）が開発されている。他方、蛍光ランタニドは、Stryerらにより1978年 に既に蛍光共鳴エネルギー転移実験のために用いた(Thomasら（1978）Proc Natl Acad Sci，75，5746;Stryerら、Annual Review of Biophysics及びBioengineering;Mullins LJ（ed）Annual Reviews，Inc;Palo Alto，CA，1982，vol 11，p203)。従って、それらのFRETイムノアッセイのため の長く励起された状態のプローブとしての使用は明らかであるが、なお、特許出 願の対象である。Wieder及びHaleは、Clq及びFRETの使用に基づくアッセイにお けるエネルギー転移及び消光(EP-A-272320及びWO 87／07955)並びにStavrianopo ulos（EP-A 242527，1987）を含む種々の技術に基づくホモジニアス時間分割イ ムノアッセイで特許を得ている。Hoffman La Rocheは、核酸間の相互作用のため の供与体としてのルマジン型の発色団と受容体としてのルテニウムキレートとを 用いる特定の出願について特許を受けており（EP 439036）、Cis Bio Internati onalは、フィコビリプロテインのための供与体としてのEu又はTbクリプタートに 基づくアッセイについて出願している。 長い寿命の供与体及び短い寿命の放射性受容体分子の間の特定のエネルギー転 移に基づく時間分割ホモジニアスアッセイの原理は以下の通り要約することがで きる：エネルギー転移のメカニズムを通して長い減衰時間の供与体の励起された 寿命の間に励起された短時間励起される状態の受容体の放射持続時間は直接励起 された受容体の減衰時間より長い。この事実は、直接励起された受容体からの蛍 光を避けるための一時的な識別（時間分割）の使用を許容する。エネルギー転移 に基づくホモジニアスアッセイにおいて、長寿命の供与体は光パルスで励起され る(Ａ)(図１)。直接励起された受容体からの干渉を避けるために（Ｂ）、適切な 減衰（Ｃ）の後、エネルギー転移で励起された受容体の蛍光放射が測定される（ Ｄ）。供与体からの長寿命の放射（DE）は、供与体放射がないかごくわずかであ る波長においてエネルギー転移で励起された受容体（AE）の放射を測定すること により避けられる（図２）。従って、ホモジニアス バイオアフィニティーアッセイ（レセプター−リガンド結合、ハイブリダイゼー ション反応、イムノバインディング、酵素基質結合等）において、供与体−受容 体対の会合又は解離は、エネルギー転移で励起されたアクセプターからのシグナ ルにおいて各々増加又は減少を測定することにより追跡することができる。 発明の目的及び概要 本発明の目的は、エネルギー供与体で標識された第１の基及びエネルギー受容 体で標識された第２の基を含むルミネセンスエネルギー転移アッセイであって、 該受容体が、短時間の励起状態の寿命のルミネセンス標識又は非ルミネセンス標 識のいずれかであることを特徴とするアッセイを提供することである。前記標識 間の距離の、短くすること又は長くすることの各々から生ずる供与体標識からの 受容体標識へのエネルギー転移における増加又は減少の各々が測定される。本発 明によれば、供与体はルミネセンスランタニドキレートである。 本発明の一態様によれば、そのアッセイは、標識された供与体及び受容体基間 の距離を長くさせる反応に基づく。本発明によれば、供与体ランタニドキレート は長い励起状態の寿命を有する。 本発明の他の態様によれば、そのアッセイは、標識された供与体及び受容体基 の間の距離を短くし又は長くさせる反応に基づき、前記供与体は、長い励起状態 の寿命を有するルミネセンスランタニドキレートである。本発明のこの態様によ れば、長い励起状態の寿命のルミネセンスランタニドキレートは、１又は複数の 次の特性： −高いルミネセンス収率 −１ms又はそれ超の励起状態の寿命、及び −エネルギー転移のために最適化された放射線分散 を有する。 本発明の更に他の態様によれば、２又はそれ超の被検体が同時に測定され、こ こで各々の被検体は特定の供与体−受容体対により測定される。 本発明の更に他の態様によれば、受容体のルミネセンス又は非ルミネセンス標 識は、前記第２の群が適切な共有又は非共有結合により結合し又は結合すること ができる大きな表面を供する固体担体に結合する。 本発明の更に他の態様によれば、受容体は、細胞膜もしくは細胞膜フラグメン トに固定された親油性化合物であるか、又は受容体は長鎖炭化水素例えば脂肪酸 とコンジュゲートすることにより親油性にされる。 本発明の更に他の態様によれば、エネルギー転移を測定するのに用いられる装 置は、サンプルマトリックスが励起、エネルギー転移又は放射せざるおえないい ずれかの干渉をモニターしそれらを正すために、励起又は放射の波長における吸 収、異なる持続時間のルミネセンス、散乱及びルミネセンス減衰時間のような多 重のパラメータを同時に又は連続的に追跡することができる。 図面の簡単な記載 図１は、直接励起された受容体（Ｂ）の光パルス（Ａ）及び適切な減衰（Ｃ） 後のエネルギー転移で励起された受容体（Ｄ）での、供与体励起後のルミネセン ス対時間を示す。 図２は、ルミネセンス強度対供与体（DE）及び受容体（AE）の放射波長を示す 。 図３は、βhCG(ヒト絨毛膜性生殖腺剌激ホルモンのβ−サブユニット)のホモ ジニアスエネルギー転移アッセイについての標準曲線 を示す。 図４は、PSA(前立腺特異的抗体)のホモジニアスエネルギー転移アッセイにつ いての標準曲線を示す。 図５は、間接的標識化を用いたβhCGのホモジニアスエネルギー転移アッセイ についての標準曲線を示す。 図６は、間接的標識化及び図５と異なる受容体を用いたβhCGのホモジニアス エネルギー転移アッセイについての標準曲線を示す。 好ましい実施形態の詳細な記載 本発明は、検出において時間分割蛍光測定法を用いるエネルギー転移に基づく ホモジニアスアッセイの改良に関する。その特定の改良は、エネルギー供与体と して用いられる特定の型のランタニドキレート標識、所定のアッセイのために最 適化されたエネルギー受容体に関し、そのエネルギーが転移する道は、最適化さ れたフィルター及び時間窓を用いて測定され、サンプル由来の全ての可能性ある 干渉を正す方法は、多成分分析のためのアッセイ及び単純化したアッセイプロト コルの開発を用いる。 用語“第１の基”及び“第２の基”は（これらの群の間の距離が減少する反応 、例えばバイオアフィニティー反応における）バイオアフィニティー認識成分の ようないずれかの成分、又は分子もしくは基質の一部（例えばその開裂が互いか ら２つの標識された基を分離させるであろうペプチド分子の遠端）を含むと理解 される。 用語“ルミネセンス”は、蛍光、リン光、化学ルミネセンス、生物ルミネセン ス及び電気により作られたルミネセンス、光ルミネセンス、放射線ルミネセンス 、音ルミネセンス、熱ルミネセンス及び摩擦ルミネセンスを含む。 解離を測定するアッセイにおける好ましい取合わせは、ルミネセ ンスの短い減衰時間の受容体及び長い減衰時間のランタニドキレートに基づく供 与体を用い、（受容体の直接の励起から放射される）受容体の直接のルミネセン スの干渉を避けるために、時間分割蛍光測定法における遅延時間を用いる受容体 分子の放射を追跡することである。受容体分子が過剰であり（時間分割モードで 、それらの干渉はごくわずかである）、結合する試薬の会合がシグナルを増加さ せる方法でアッセイを作り出すことが要求される。 このようなシステムのために、好ましいキレート標識は高ルミネセンス収率（ εｘΦ＞2000）、長い励起状態寿命（好ましくは１ms超）及びエネルギー転移の ために最適化された放射分散を有さなければならない。キレート化されたイオン の周囲のリガンドフィールドは、例えばEuキレートで、放射の70％超が(610〜62 0nmの範囲で)5D0−7F2においてであり、590nm域ではないようにしなければなら ない（例えばEuグリプタートの放射(WO 92／01225)並びにテルピリジンのビス− イミノアセテート誘導体のもの（US 5,324,825;US 5,202,423及びUS 5,316,909 ）と比較のこと）。好ましいキレートにおいて、無用な590nmにおける磁気的双 極子遷移及び700nm周辺の放射は抑制される(Li及びSelvin，J Amer Chem Soc 11 7;8132,1995)。本適用のために特に優れたキレートは、高い分子吸収係数（ε） 、極めて長い励起状態寿命及び優れた量子収率（Φ）を有する多重色原性のポリ カルボキシレートで形成されたEuキレートである（Takaloら、Helv Chim Acta 7 9:789，1996）。Euに加えてTbは、その高いルミネセンスのキレートを用いる場 合、特に有望なエネルギー供与体である。好ましいTbキレートはイミノジアセテ ート基における結合部位(Mukkalaら、J Alloys Compounds 225;507，1995)又は 光吸収性芳香族構造から十分に単離された結合アームを含むテルピリジンから構 成される。それらの適用のための特に優れたキ レートは、１又は２のピリジン環がピラゾール(US 08／548,174)又はトリアゾー ル及びチアゾール環(PCT／FI91／00373)で置換されているテルピリジン誘導体で ある。Eu及びTbに加えて、Smの作用は、二重又は三重標識ホモジニアスエネルギ ー転移アッセイを行う可能性を供するだろう。Smは、より高い波長でエネルギー を与えるという利点を有し、ここで高いルミネセンスキレートの主な放射は643n mであり、波長スケールを近IRまで続ける機会を与える（近IR放射性蛍光の優れ たコレクションは異なるソースから市販されるようになっている）。Smの好まし い安定なキレートは、Savitsky（Savitskyら、SPIE 2388;429，1995）により記 載されるような１，３−ジケトンの多重形態から構成される。かわりの第３の選 択（第３の標識）は、650〜660nmにおいて長い寿命のリン光を放射するリン光性 pt又はPdコプロポルフィリンである(WO 94／10568)。 長い励起状態寿命のランタニドキレートの特に好ましい群は、それらの構造が スキーム１〜５に開示される化合物１〜12である。そのスキームにおいて、λex c は励起波長を、τは減衰時間を、そしてεｘΦはルミネセンス収量を意味する 。そのスキームに示される値は、タンパク質に結合した化合物から測定される。 スキーム１スキーム２スキーム３スキーム４スキーム５ 会合アッセイのための好ましいアクセプター分子は高い分子吸収係数（好まし くは100,000超）を有する（出来るだけユニティー（１）に近い量子収量で）高 いルミネセンスである。受容体の吸収は、例えばEuについて611〜620nm、Tbにつ いて545nm、Smについて643nmにおいて、供与体のエネルギー寄与放射とオーバー ラップしなければならない。受容体の好ましい特徴は、供与体がいずれの放射を 有さない波長（例えばTbについて574〜575nm、Euについて660〜670nm及びSmにつ いて675nm周辺）におけるその鋭い放射である。受容体の減衰時間は１μｓ未満 であるべきである。更に、受容 体は直接的又は間接的に（例えば抗バインダー抗体、レクチン、アビジン等を通 して）、共有結合又は非共有結合で結合パートナーに結合されなければならない 。共有結合でコンジュゲートするプローブとしては、例えばキサンテン色素(ロ ダミン、テトラメチルロダ of Fluorescent Probes and Research Chemicals，Molecular Probes 1992-1994 ，Mayer及びNeuenhofer，Angew Chem Int Ed Engl 33;1044，1994を参照のこと) 、特定のカルボシアニン(Cy3.18)(Mujumbarら、Bioconjugate Chem 4;105，1993 ，Southwickら、Cytometry 11;418，1990)及び特定のポルフィリン（Camman，DE 4,216,696）のものさえ用いることができる。Ｂ−フィコエリトリンは、その極 めて高い分子吸収係数(546nmにおいて2,410,00)及び量子収量（0.98）のため、 その大きなサイズ（MW 240,000）にかかわらず、エネルギー転移アッセイに極め て適する。 Euのための優れた受容体は、611〜620nm域において最大吸収を有するべきであ る。その波長域のための優れた受容体は、特にIR放射性色素の群から見い出すこ とができる（報告について、Haugland Molecular Probes，Miller，Spectroscop y Europe 5;34，1993，Patonay及びAntoine，Anal Chem 63;332A，1991，Southw ickら、Cytometry 11;418，1990，Mujumbarら、Cytometry 10;11，1989並びにMu jumbarら、Bioconjugate Chem 4;105，1993，Papkovsky，Appl Fluorescence Te chnol III；16，1991，Schindele及びRenzoni，J Clin Immunoassay 13;182，19 93を参照のこと）。これらの型の化合物は、フタロシアニン、ホルフィリン、シ アニン色素(Cy-5，Cy5,18，Cy5,29)(Selvinら、J Amer Chen Soc 116;6029，199 4，Mujumbarら、Bioconjugate Chem 4;105，1993)、コンジュゲートしたキサン テン(ロダミン800)(Imasakaら、Anal Chem 61; 2285，1989)、スクアラーテ(Chang，EP 176,252)、メチレンブルー、ナイルブル ー及びオキサジン(Imasakaら、Anal Chem 61;2285，1989)、インドシアニングリ ーン(Imasakaら、Anal Chem 62;363A，1990)を含む。フィコビリプロテインのう ちのいくつかは、Eu受容体、特にA-PC，C-PC及びR-PCのための優れた候補である 。Sm又はコプロポルフィリンのための好ましいエネルギー受容体は、IR放射性色 素（上述の報告を参照のこと）。 供与体プローブで標識されたリガンド又は結合試薬と受容体プローブで標識さ れた結合試薬との間の短い距離を確認するための好ましい方法は、結合性試薬と 直接カップリングさせた活性化プローブ（例えば、受容体で標識したレセプター タンパク質、抗体又は他の結合タンパク質）を用いることである。他の方法は、 例えば受容体で標識した抗バインダー（例えば抗レセプター）抗体並びにビオチ ニル化バインダー及び受容体標識（ストレプト）アビジンを用いて、間接的ラベ リングを用いること、又は供与体標識成分が直接又は間接的に結合するであろう 実際の結合部位の近傍に受容体分子を運ぶために他のバイオアフィニティー反応 を用いることである。 純粋でない膜結合レセプターでの好ましい方法は、親油性膜プローブを用い、 そして受容体分子でそのレセプターの近く又は周囲の膜全てを染色することであ る。長鎖脂肪族炭化水素鎖に結合した適切なプローブ、例えばオキサカルボシア ニン（Molecular Probes）がその染色に適している。 各々の特定のアッセイのための結合成分の別個の標識化を避けるであろう更に 他の方法は、固体担体（ポリマー、セラミックス又はガラス等）、例えば高濃度 の受容体分子を含む万能捕獲表面を用いることである。適切な固体担体は、例え ば1500μｍまでの直径を有するビーズもしくは粒子又はいずれかの固体表面であ り得る。広範 囲の種々のルミネセンスプローブで標識したマイクロビーズは異なるソースから 利用できる。担体に用いる好ましいプローブは、漏出を避けるために水にほとん ど溶けない疎水性化合物である。これらの標識化に適した種々のプローブは、シ ンチレーター及びレーザー色素の中から見い出すことができる。高いルミネセン スのビーズでは、多数の受容体分子が、ビーズコーティングの後に長い距離を補 うことができ、そして蛍光ビーズは実際、エネルギーを受容する表面を供する。 ビーズが、供与体が放射した光のほとんどを吸収することができる場合、単純な 放射性エネルギー転移を適用することができ、ここでそのエネルギー転移は、空 間角の関数であり、10μｍビーズでの臨界距離はマイクロメーターの範囲内であ る。しかしながら、FRETベースのアッセイについて、プラスチックを膜レセプタ ーを固定するために結合性タンパク質（例えばアグルチニン）で最初にコートす る場合、長い距離のため無効なエネルギー転移を生じ得る。好ましい取合せは、 これにより、表面活性化ビーズを用いること及び受容体分子とのカップリングの ための反応性基の部分を用いること、又は（ロダミン標識化アグルチニンのよう な）受容体で標識した結合表面を用いることもしくは後で受容体で、コートされ たタンパク質を標識することである。 会合反応のホモジニアスアッセイ（イムノバインディング、レセプターリガン ド結合、ハイブリダイゼーション反応、酵素−基質結合等）において、結合を測 定するための好ましい方法は、受容体シグナルの増加を追跡することである。受 容体シグナルは、受容体の波長において優れた透過度を有するが、より重要なの は、供与体の各々の放射ラインのために絶体的に十分にブロックされる、用いる 供与体のために最適化されたフィルターを用いて測定される。そのフィルターは 、（Tbの545又は490nm及びEuの613〜615nmのよう な）供与体の主な放射ラインから放射するいずれの放射線ももらすべきでない。 更に、エネルギー転移フィルターは、用いる供与体でマイナーな放射ラインのな い波長領域に位置しなければならない。適切な遅延の使用は受容体の直接的励起 由来の干渉を避ける（最適な遅延は用いる励起パルスの長さに依存するが、少く とも10倍長いべきである。 エネルギー転移で励起された受容体の減衰は、供与体の減衰及びエネルギー転 移効率の関数である。これにより、（競合的結合アッセイ又は非競合的アッセイ のような）アッセイの間、全体の減衰は一定でないが、被検体の関数である。特 異的結合が低く、エネルギー転移効率が１％未満である場合の会合アッセイにお いて、受容体のエネルギー転移放射の減衰時間はほぼ一定であり、供与体の減衰 時間に等しい。このような測定のための遅延及びカウンティング時間は重大では ない。より高い効率のアッセイのために、その減衰時間は結合により減少し、そ して短い遅延時間及び合理的な短い計数時間を維持しながら、より急激な応答を 得ることができる。他方、供与体放射を追跡するなら、長い遅延時間を用いてよ り急激な応答が得られる。なぜならエネルギー転移がおこる時、全体の供与体放 射は減少し、その減衰時間は短くなる。いずれのアッセイにおいても最適な結果 を得るために、アッセイの型、特異的結合の割合及びエネルギー転移効率に従っ て、計数窓を最適化することが賢明である。 種々の化合物又はサンプルのスクリーニングにおいて、サンプルは、シグナル 減少効果を有し得る。サンプルは、例えば励起光、放射光を吸収し、又は他の型 の消光を引きおこし得る。多重標識カウンター、例えばWallac 1420 VICTORにお いて、干渉は種々の方法、例えば（１）減衰分析、（２）励起及び放射の波長に おけるサンプ ル吸収の同時の光度測定でのモニター、（３）シグナル、供与体及び受容体の同 時の測定、それらの相関関係の計算、及び結合反応のない等量の供与体及び受容 体の対照との比較、又は（４）エネルギー転移又はシグナルの変化に従う結合の 間の速度測定により制御することができる。高効率の結合アッセイでは、減衰時 間の分析は、励起も放射もない色の消滅により影響を受けない独立したパラメー タである。その減衰の変化は、供与体について又は受容体について追跡すること ができる（エネルギー転移が増加する時、減衰か減少）。全てのサンプルでの乱 れのない分析を保証するための好ましい方法は、上述の全ての補正法の適当な組 合せを用いることである。 好ましい実施形態によれば、エネルギー転移は、エネルギー転移がない時に受 容体放射測定のために用いられるチャンネルへのクロストーク又は供与体放射を 避ける所定の装置セッティングを用いて時間分割フルオロメーターにより記録さ れる。 好ましくは、その装置は、励起のいずれもの減衰も自動的に捕正し、そのサン プルは、アッセイ混合物に希釈されたサンプルの吸光度を同時に追跡され、サン プル吸収による励起又は放射減衰に従って放射の読み取りを補正され得る。 測定された受容体シグナルは、ゼロキャリブレーターと比較することができる 供与体放射も記録することにより標準化することができ、ここで受容体ルミネセ ンスに伴う増加のないシグナルの低下が記録され、補正される。 供与体又は受容体の減衰時間を記録して、パラメータを測定する時に用いるこ とができる。 供与体又は受容体の減衰時間は、サンプル干渉の補正に利用することができる 。 改良されたエネルギー転移アッセイを適用することができるアッ セイの第２の型は、会合でなく解離を追跡するアッセイである。このようなアッ セイは、例えば、抗体−抗原複合体が形成され、被検体の添加が新しい平衡形態 を引きおこす（リガンド置換アッセイ）競合的イムノアッセイ（又は他の特異的 結合アッセイ）であり得る。このようなアッセイの他の群は、酵素、例えばペプ チダーゼ（例えばHIVペプチダーゼ）、プロテアーゼ及び他の酵素（例えばヌク レオチド加水分解酵素、ヘリカーゼ等）を開裂するアッセイである。解離のホモ ジニアス測定において、好ましい技術は、供与体の増加した放射を追跡すること である。 解離に基づくアッセイのための好ましいキレートは、会合ベースのアッセイの ための上述とかなりの程度、同じである。しかしながら、テルビウムは、しばし ばより優れた選択である。なぜならそれは、種々の化合物、例えば金属イオン、 窒素化合物、例えばアジド、ニトリド（Tanakaら、J Photochem Photobiol 74;1 5，1993）又はラジカル（スピンラベル、例えばDoxyl，Proxyl又はTempo及び他 の不対電子を含むＮ−Ｏ化合物）で消光することができる。本発明に適した優れ たTbキレートは上述のものである。 解離測定アッセイのための好ましい受容体は、有効な供与体として可能な限り 消光する優れたエネルギー受容体である。受容体は、ルミネセンスのものであり 得るが、それである必要はない。好ましいFRET受容体は優れた受容体特性（５nm を超えるＲ0）を有するが、高いルミネセンスを有する必要はない。上述のルミ ネセンス化合物に加えて、優れた受容体は、（エリトロシンのような）重原子コ ンジュゲーションで非ルミネセンスで作られた各々の化合物又は適切な他の置換 基であり得る（例えばKhanna及びUllman，Anal Biochem 108:156，1980，Ullman 及びKhanna，Methods Enzynol 74;28，1981）。立体障害（例えば供与体及び受 容体の両方で標識されたH IVペプチドでのもの）を避けるために、受容体は小さくなければならず、小さな 分子消光物質(quenchers)、例えばスピンラベルが好ましい。より大きなアクセ プターの使用は、おそらく、間接的なアプローチ、例えば小さなアフィニティー ラベル（小さなハプテン、ビオチン）及び実際の解離反応後に行わざるをえない 消光のための別個のステップ(アビジンの受容体標識化抗ハプテンの添加)(終点 検出)の使用を要求する。例えばペプチダーゼのための好ましいアッセイデザイ ンは、一端が蛍光テリビウムキレートで標識され他端がフリーラジカルで標識さ れたペプチド基質を用いることである。スピン消光化及びFRET双極子−双極子エ ネルギー転移の間の選択は、加水分解されていないペプチド内の標識間の実際の 距離による。小さな距離（２nm未満）では、フリーラジカル（スピン）が好まし い。２つのプローブの距離が５nmを超えるであろうなら、双極子−双極子エネル ギー転移が好ましい。 会合した形態において消光するようデザインする場合（例えば消光された基質 ）、供与体ルミネセンス、及びその減衰時間は解離により増加する。測定におけ る好ましい遅延時間は長いので、消光した供与体の可能性ある残存ルミネセンス の検出を避ける。これらのアッセイは、会合アッセイと同様に、時々サンプル干 渉を生ずる傾向があり（例えば色の消滅）、その問題は、上述と同様に解決する ことができる。 実施例 本発明は、以下の非限定的例により更に詳述される。 実施例１ 抗βhCG(ヒト絨毛膜性生殖腺刺激ホルモン)抗体（コードF19-9C1）の蛍光Tbキ レート化合物６での標識化 エネルギー供与体化合物６を、次の方法で抗βhCG抗体（コードF19-9C1、Wall ac Oy，Turku，Finland）にコンジュゲートした：抗βhCG抗体（５mg／ml）を４ ℃で一晩、50mM炭酸緩衝液pH9.5中30倍モル過剰な化合物６と共にインキュベー トした。その標識化した抗体を、溶離液としてTris(0.9％ NaClを含む50mM Tris -HCl、pH８)でのゲルろ過（Sephadex G50を重ねたSepharose 6B，0.5×70cm，Ph armacia，Uppsala，Sweden）により未反応の化合物６から分離した。その標識し た抗体を分析し、抗体当り4.7分子の化合物６を含むことを見い出した。標識し た抗体を、0.1％ウシ血清アルブミンを含むTris緩衝液pH7.4中に維持した。 実施例２ 抗βhCG(コードM15294)抗体のテトラメチルロダミンイソチオシアネート(TRIT C)での標識化 エネルギー受容体TRITC（Molecular Probe Inc，Eugene，OR）を以下の方法で 抗βhCG抗体（コードM15294、Wallac Oy）にコンジュゲートした：抗βhCG抗体 （５mg／ml）を、＋４℃で一晩、50mM炭酸緩衝液pH9.5中15倍モル過剰なTRITCと 共にインキュベートした。その標識した抗体を、溶離液としてTris(0.9％ NaCl を含む50mM Tris-HCl、pH８)を用いてゲルろ過(Sephadex G50を重ねたSepharose 6B，0.5×70cm，Pharmacia)により未反応のTRITCから分離した。その標識した 抗体を分析し、抗体当り1.7のテトラメチルロダミンを含むことが見い出された 。標識した抗体を0.1％ウシ血清アルブミンを含むTris緩衝液pH7.4中に維持した 。 実施例３ βhCGのホモジニアスエネルギー転移アッセイ この２部位イムノアッセイにおいて、96ウェルプレートのウェル内の50μｌの βhCG標準を、200μｌのTris緩衝液(0.9％ NaClを 含む50mM Tris-HCl、pH7.4)中の100ngの化合物６標識化抗体（供与体）及び100n gのテトラメチルロダミン標識化抗体（受容体）とインキュベートした。用いる ２つの抗βhCG抗体は、βhCGサブユニット上の異なる特定の抗原部位に対して生 ずる。βhCG標準は、血清中の遊離βhCGの測定のための市販のキットからのもの であった(Wallac Oy)。その反応混合物を、96ウェルプレートシェーカー上で室 温で30分、インキュベートした。その形成された複合体からのテトラメチルロダ ミン蛍光を、時間分割フルオロメーター(340nmで励起、572nm±３nm、遅延時間5 0μｓ、窓時間100μｓ、サイクル時間１ms)、モデル1420 VICTOR（Wallac Oy） において測定した。βhCGのエネルギー転移アッセイのための標準曲線を図３に 示す。 実施例４ PSA(前立腺特異的抗原)のホモジニアスエネルギー転移アッセイ PSA上の異なるエピトープを認識する２つの抗体(Wallac Oy)を各々化合物１及 びTRITCで標識した。抗体標識化を、実施例１及び２に記載される通り行った。 この２部位アッセイにおいて、(市販のPSAアッセイキットDELFIA PSAからの)PSA 標準50μｌを、200μｌのTris緩衝液pH7.4中の100ngの化合物１（供与体）標識 化抗体及び100ngのテトラメチルロダミン標識化抗体（受容体）と一緒にインキ ュベートした。そのアッセイ混合物を、連続的な振とう下で室温で30分、インキ ュベートした。その形成された複合体（サンドイッチ）からのテトラメチルロダ ミン蛍光を、Wallac 1420 VICTOR時間分割フルオロメーターで測定した(340nmで 励起、572nm±３nmで放射、遅延時間100μｓ、サイクル時間１ms)。ホモジニア スエネルギー転移アッセイのための標準曲線を図４に示す。 実施例５ 受容体としてのテトラメチルロダミン−アビジンでのβhCGのホモジニアスエ ネルギー転移アッセイ この２部位イムノアッセイを、実施例３に記載される通り行った。テトラメチ ルロダミン標識化抗体（受容体）を用いるかわりに、ビオチニル化抗体及びテト ラメチルロダミン−アビジン（受容体）を用いた。テトラメチルロダミン−アビ ジン（Molecular Probes）は反応して、ビオチニル化抗体と安定な複合体を形成 した。抗βhCG抗体（コードM15294）をビオチン試薬供給元（Biotinylating Rea gene 732494，Boehringer Mannheim，Mannheim，Germany）からの説明に従って ビオチニル化した。形成された複合体（サンドイッチ）からのテトラメチルロダ ミン蛍光を、Wallac 1420 VICTOR時間分割フルオロメーター(340nmで励起、572n m±３nmで放射、遅延時間50μｓ、窓時間100μｓ、サイクル時間１ms)で測定し た。ホモジニアスエネルギー転移アッセイについての標準曲線を図５に示す。 実施例６ 受容体としてのＲ−フィコエリトリン−アビジンでのβhCGのホモジニアスエ ネルギー転移アッセイ 本実験において、テトラメチルロダミン−アビジンのかわりにＲ−フィコエリ トリン−アビジン(Molecular Probes，Eugene，OR，USA)を用い、他は、実施例 ５の通り行った。形成された複合体（サンドイッチ）からのＲ−フィコエリトリ ン蛍光を、Wallac 1240 VICTOR時間分割フルオロメーターで測定した(340nmで励 起、572nm±３nmで放射、遅延時間50μｓ、窓時間100μｓ、サイクル時間１ms) 。ホモジニアスエネルギー転移アッセイについての標準曲線を図６に示す。 実施例７ プロゲステロンのホモジニアスエネルギー転移アッセイ モノクローナル抗プロゲステロン抗体(Wallac Oy)を実施例１に従って化合物 ２で標識した。プロゲステロン−ビオチン誘導体(Wallac Oy)を、５／Ｋaff（Ｋaff ＝用いたプロゲステロン抗体のアフィニティー定数）の濃度で用い、約２倍 超のテトラメチルロダミン−アビジン(Molecular Probes，Inc，OR)を用いた。T ris緩衝液をインキュベーションに用いた。この競合イムノアッセイにおいて、5 0μｌの標準又はサンプルを、100μｌの化合物２標識化抗体（１／50000希釈） 及び100μｌのプロゲステロン−ビオチン誘導体及びテトラメチルロダミン−ア ビジン（受容体）とインキュベートした。ビオチニル化プロゲステロンは、標識 された抗プロゲステロン抗体上の結合部位について標準又はサンプルからのプロ ゲステロンと競合する。その反応混合物を室温で１時間、インキュベートした。 インキュベーションの後、時間分割フルオロメーター（Wallac 1420 VICTOR、34 0nmで励起、572nm±３nmで放射、遅延時間50μｓ、窓時間100μｓ、サイクル時 間１ms）で、抗プロゲステロン−抗体−プロゲステロン−ビオチン複合体に結合 したテトラメチルロダミン−アビジンから測定した。その測定されたシグナルは 、サンプル中のプロゲステロン濃度と逆相関している。 実施例８ IL-2のホモジニアスエネルギー転移レセプターアッセイ 純粋な担体のないIL-2(R & D Systems，Minneapolis，MN)(１mg／ml)を、＋４ ℃において一晩、50mM炭酸緩衝液pH9.2中10倍モル過剰量の化合物２とインキュ ベートした。その標識したIL-2を、溶離液としてTrisでのゲルろ過(Sephadex G5 0，0.7×48cm，Pharmacia)により未反応のキレートから分離した。その標識した IL-2を分析し、IL-2分子当り1.4分子の化合物２を含むことが見い出された。IL- 2αレセプターに対する非中和性抗体を、実施例２に従ってテト ラメチルロダミンイソチオシアネートで標識した。そのホモジニアスレアプター アッセイにおいて、増加する濃度の非標識化IL-2を、一定量の化合物２標識化IL -2（供与体）、IL-2αレセプター及びテトラメチルロダミン標識化抗体（受容体 ）と同時インキュベートした。Tris緩衝液をこのインキュベーションに用いた。 時間分割フルオロメーター（Wallac 1420 VICTOR、340nmで励起、572nm±３nmで 放射、遅延時間50μｓ、窓時間100μｓ、サイクル時間１ms）において、形成さ れた抗体−レセプターIL-2複合体からの蛍光シグナルを測定することにより、置 換曲線を作成した。 実施例９ 化合物６及びテトラメチルロダミンでのカゼインの二重標識化 ５ミリグラムのカゼインを0.5mLの0.1Ｍ炭酸ナトリウムpH9.2に溶かした。水 中の5.5mMの蛍光化合物６の50マイクロリッターをカゼイン溶液に加え、４℃で 一晩、反応させた。その標識化したタンパク質を、溶離液として水溶液中0.9％ の塩化ナトリウムを用いて、Sephadex G-50カラムを通して精製した。その標識 したカゼインを分析し、カゼイン分子当り１の化合物６分子を含むことを見い出 した。１mL中２ミリグラムの化合物６標識化カゼインを、ジメチルホルムアミド に溶かした20mMのテトラメチルロダミンイソチオシアネート（TRITC）100μｌと 混合した。120μｌの１Ｍ炭酸ナトリウムpH9.5を加えてpHを調節した後、反応混 合物を４℃で一晩、インキュベートした。その標識したタンパク質を、0.9％ Na Clを含む50mM Tris-HCl pH８で平衡化して流したSephadex G-50カラムを用いて 未反応のTRITCから精製した。化合物６−標識化カゼインについてと同じプロト コルを用いて、非標識化カゼインもTRITCで標識した。 実施例10 スピンラベルでの化合物６標識化カゼインの標識化 １mLの0.9％ NaCl中の２ミリグラムの化合物６標識化カゼイン（実施例９）を 、110μｌの１Ｍ炭酸ナトリウムpH9.5と混合し、13μｌの160mM ３−（２−（２ −イソチオシアナトエトキシ）−エチルカルバモイル）−PROXYL(Aldrich)を加 えた。４℃での一晩の反応の後、二重に標識したタンパク質を、Sephadex G-50 カラムを用いて精製した。 実施例11 二重標識化カゼインの蛍光測定特性 実施例９及び10からの二重標識化タンパク質を化合物６カゼイン（実施例９） と一緒に多重標識リーダー(VICTOR，Wallac Oy)で分析した。標識化したカゼイ ンを0.2μｇ／mLの濃度まで50mM Tris-HCl pH7.8で希釈した。テルビウム測定の ためのプロトコル（励起340nm、放射545nm、遅延時間0.5ms、窓時間1.4ms、サイ クル時間２ms、を用いて、化合物６標識化カゼインは743,000の秒当りのカウン ト(cps)を供した。化合物６及びTRITCで標識したカゼインは28,000cpsを供し、 化合物６及びPROXYLで標識したカゼインは54,000cpsを供し、そしてTRITCで標識 したカゼインは869cpsを供した。上述のタンパク質を340nmの励起、(TRITCに適 した)572nm±３nmの放射、遅延時間50μｓ、窓時間100μｓ及びサイクル時間１m sを用いて測定した場合、化合物６標識化カゼインは3952cpsを供し、化合物６及 びTRITC標識化カゼインは382,000cpsを供し、化合物６及びPROXYL標識化カゼイ ンは4097cpsを供し、そしてTRITC標識化カゼインは747cpsを供した。これらの結 果は、TRITC又はPROXYLと共に化合物６で標識化されたカゼインの標識化は、化 合物６の蛍光を有効に消した。化合物６及びTRITC標識化カゼインの場合、化合 物６−蛍光の消光は、ロダミンに適した放射フィルター及び時間 分割モードを用いて蛍光シグナルにおいて見ることができる化合物６−キレート 及びロダミンの間のエネルギー転移による。 実施例12 二重標識化カゼインを用いるプロテアーゼアッセイ 化合物６標識化カゼイン、化合物６及びTRITC標識化カゼイン並びに化合物６ 及びPROXYL標識化カゼインを、50ng／mLの濃度まで10mM Tris-HCl pH7.6で希釈 した。180μｌの各々の希釈したタンパク質を透明なマイクロタイトレーション ウェル(NUNC Maxisorp)中にピペットでとった。蛍光を、テルビウム測定につい てのプロトコルを用いて測定した。以下の結果を得た：化合物６−カゼイン179, 000cps、化合物６−TRITC−カゼイン7860cps及び化合物６−PROXYL−カゼイン14 680cpso次に各々のウェルに20μｌの10mMのTris-HCl pH7.6中100ngのトリプシン を加えた。室温で１時間、インキュベートした後、化合物６−蛍光を測定した： 化合物６−カゼイン163,000cps、化合物６−TRITC−カゼイン137,000cps及び化 合物６−PROXYL−カゼイン67400cps。二重標識化カゼインの場合、プロテアーゼ での分解により化合物６−蛍光の17倍までの増加があった。 実施例13 プロテインキナーゼ活性の測定のためのホモジニアスエネルギー転移アッセイ リン酸化チロシンに対する抗体（クローンPY20）を化合物４で標識化した。抗 体分子当り３のキレートの組み込みが得られた。ロダミン−アビジン(Rh-Av)及 びフィコエリトリン−アビジン(PE-Av)を、Vector Laboratoriesから購入した。 基質として、我々は以下のアミノ酸配列： ビオチン−Glu-Ala-Ile-Tyr-Ala-Ala-Pro-Phe-Ala-Lys-Lys-Lysのペプチドを 用いた。そのビオチン成分をペプチドのアミノ末端に 結合させた。このペプチドは、New England Biolabsから購入したAblプロテイン チロシンキナーゼのための基質である。そのアッセイは、100nMのペプチド溶液 を、標識したアビジン（濃度10μｇ／mL）とインキュベートすることにより開始 した。20マイクロリッターのぺプチド−アビジン溶液を透明なマイクロタイトレ ーションウェルにピペットでとった。次に25μＭのATP及び250μｇ／mLの化合物 ３標識化抗ホスホチロシンを含む75μｌのAblプロテインチロシンキナーゼアッ セイ緩衝液(New England Biolabs;50mM Tris-HCl pH7.5、10mM MgCl2、0.1mM Na2 EDTA、１mMジチオトレイトール、0.015％ Brij35)を各々のウェルに加えた。次 に、アッセイ緩衝液で希釈した５μＬのキナーゼアッセイ緩衝液（ブランク）又 は５μＬのAblプロテインチロシンキナーゼ（１ユニット）のいずれかを加えた 。化合物４からのエネルギー転移により励起されたロダミン又はフィコエリトリ ンからのシグナルを測定するために、時間分割モード(340nmで励起、572nm±３n mで放射、遅延時間50μｓ、窓時間100μｓ、サイクル１ms)を用いてVICTORリー ダーで測定を行った。30分後、以下の結果を得た： 標識したアビジン ブランク 酵素でのシグナル ロダミン−アビジン 2649cps 702,000cps フィコエリトリン−アビジン 2460cps 974,000cps これらの結果は、キナーゼ活性は、化合物４とロダミン又はフィコエリトリン との間のエネルギー転移に基づく記載されるアッセイ形態を用いて検出すること ができることを示す。 実施例14 ホモジニアスエネルギー転移DNAハイブリダイゼーションアッセイ 以下のオリゴヌクレオチドを、Applied Biosystems DNA／RNAシ ンセサイザーを用いて合成した： 標的オリゴヌクレオチド 5’-ACG GTT CTA GCG TTG CAC TAC GGC TGC AAC TA G CAG TCC-3’ 化合物６標識化オリゴヌクレオチド 5’-化合物3-X-GTG CAA CGC TAG AAC-3 ’ テトラメチルロダミン標識化オリゴヌクレオチド 5’-TGC TAG TTG CAG CCG- X-TRITC-3’ 化合物６及びTRITC標識化オリゴヌクレオチドは、先に出版された化学及びプ ロトコル(P.Dahlenら（1994）Bioconjugate Chem．5，268-272)を用いて合成し 、標識した。Ｘは、例えばイソチオシアネート基を含む試薬で標識化するのに適 した脂肪族第１級アミノ基を有する改良されたデオキシシチジン残基をいう。こ の例に用いる化合物６は蛍光性である。その標識したプローブは、標的オリゴヌ クレオチドとハイブリダイズすることができ、ハイブリダイゼーションにより、 その蛍光化合物６及びテトラメチルロダミンは、標的オリゴヌクレオチド内の２ つのヌクレオチドによってのみ分離される。そのアッセイにおいて、次のハイブ リダイゼーション溶液：0.6Ｍ塩化ナトリウム、50mM Tris-HCl、pH8、0.1mM EDT A、0.1％ドデシル硫酸ナトリウムを用いた。そのプローブをハイブリダイゼーシ ョン溶液に希釈して各々最終濃度10nMを供した。その標的オリゴヌクレオチドも ハイブリダイゼーション緩衝液で希釈して次の濃度：１nM(アッセイにおいて0.1 nM)、５nM(アッセイにおいて0.5nM)及び10nM（アッセイにおいて１nM）を供した 。ハイブリダイゼーション溶液のみをブランクのための標的として用いた。20マ イクロリッターの標的オリゴヌクレオチド希釈液及びブランクを透明なマイクロ タイトレーションウェルにピペットでとった。そのアッセイは２回重複で行った 。次に、標識したプローブを含むハイブリダイ ゼーション溶液180μｌを各々のウェルに加えた。次に、そのプレートを粘着テ ープでおおい、37℃にセットしたインキュベーターに入れた。30分のインキュベ ーションの後、そのプレートを、時間分割モード(340nmで励起、572nm±３nmで 放射、遅延時間50μｓ、窓時間100μｓ、サイクル時間１ms)を用いて測定した。 以下の結果を得た。 ブランク 2331cps 0.1nM標的 7170cps 0.5nM標的 26980cps 1nM標的 46300cps これらの結果は、このホモジニアスアッセイが十分に機能し、そして化合物６ とロダミンとの間のエネルギー転移は、２つのプローブが同じ標的分子にハイブ リダイズする場合に有効であることを示す。 実施例15 受容体分子を含むビーズを用いるエネルギー転移アッセイ 抗βhCG抗体（コードM15294）を実施例１に記載されるように化合物６で標識 した。50マイクロリッターのオレンジ蛍光ビーズ(1.8×106ビーズ／ml)(FluoroS pheresR，F-8857，Molecular Probes Inc.)を、Tris緩衝液(0.9％ NaClを含む50 mM Tris-HCl、pH7.4)中の化合物６標識化抗体（60μｇ／ml）50μｌと、２時間 、インキュベートした。その反応混合物中では、化合物６標識化抗体は、ビーズ の表面に受動的に吸着される。そのバックグラウンドを、50μｌのビーズを50μ ｌの緩衝液と、そして50μｌの抗体溶液を50μｌの緩衝液とインキュベートする ことにより決定した。化合物６から移されたエネルギーにより励起されたビーズ 中の受容体分子からの蛍光を、Wallac 1240 VICTOR時間分割フルオロメーターで 測定し た。用いたフルオロメーターの設定は、340nmで励起、572nm±３nmで放射、遅延 時間50μｓ、窓時間100μｓ、サイクル時間１msであった。結果： 蛍光 1000×cps 50μｌビーズ＋50μｌ化合物６−標識化抗体 5543 50μｌビーズ＋50μｌ緩衝液 161 50μｌ化合物６−標識化抗体＋50μｌ緩衝液 158 実施例16 受容体分子を含むビーズを用いるエネルギー転移アッセイ 抗βhCG抗体（コードM15294）を実施例１に記載されるように化合物９で標識 した。50マイクロリッターのクリムゾン蛍光ビーズ(1.8×106ビーズ／ml)(Fluor oSpheresR，F-8855，Molecular Probes Inc.)を、Tris緩衝液(0.9％ NaClを含む 50mM Tris-HCl、pH7.4)中の化合物９標識化抗体（60μｇ／ml）50μｌと、２時 間、インキュベートした。その反応混合物中では、化合物９標識化抗体は、ビー ズの表面に受動的に吸着される。そのバックグラウンドを、50μｌのビーズを50 μｌの緩衝液と、そして50μｌの抗体溶液を50μｌの緩衝液とインキュベートす ることにより決定した。化合物９から移されたエネルギーにより励起されたビー ズ中の受容体分子からの蛍光を、Wallac 1240 VICTOR時間分割フルオロメーター で測定した。用いたフルオロメータ−の設定は、340nmで励起、660nm±１nmで放 射、遅延時間100μｓ、窓時間100μｓ、サイクル時間１msであった。結果： 蛍光 1000×cps 50μｌビーズ＋50μｌ化合物９−標識化抗体 1398 50μｌビーズ＋50μｌ緩衝液 ８ 50μｌ化合物９−標識化抗体＋50μｌ緩衝液 102 本発明の方法は、それらのいくつかだけが本明細書に開示される種々の実施形 態において組み込まれ得ることが認められよう。他の実施形態が存在し、本発明 の精神から離れないことが当業者に明らかであろう。これにより、記載される実 施形態は詳述するためであり、限定するとして解釈されるべきでない。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Homogeneous luminescence energy transfer assay Field of the invention   The present invention relates to an energy transfer based homogen using time-resolved fluorometry for detection. Regarding the improvement of the near assay. The particular improvement is a specific type of energy donation Lanthanide chelate label used as a body, optimized for a given assay Energy receiver. Here, the path of energy transfer is optimized Measured with a filtered filter and time window, all possible from the sample Methods for correcting interference are available in assays for multi-component analysis and simplified assay protocols. Use col development. Background of the Invention   Publications and other materials used herein to elucidate the background of the invention Those which provide further details regarding the implementation thereof, in particular, are incorporated by reference.   A wide variety of assays based on bioaffinity or enzyme catalysis Various biological samples (eg, serum, blood, plasma, saliva, urine, stool, seminal plasma, sweat, secretions) , Amniotic fluid, tissue homogenate, ascites, etc.), environmental research (wastewater, soil samples), engineering Industrial processes (process solutions, products) and compound libraries (organic compounds, mineralization) Compound, natural product, biological source extract, biological protein, peptide, or nucleoside Developed for analyzing biologically important compounds from samples Have been. Some of these assays have specific bioaffinity recognition reactions Here depends on (biologically bound Components, such as antibodies, natural hormone binding proteins, lectins, enzymes, Specific binding assays (with sceptors, DNA, RNA or PNA), or genetically or Molded, artificially created binding compounds such as chemically engineered antibodies General for forming plastic imprints (molecular imprinting) The natural biobinding construct is used for These assays generally involve recognition, Binding reaction and appropriate separation (precipitation and centrifugation, filtration, eg plastic surfaces, eg Affinity collection into coated assay tubes, microbead slurry Separation, such as id, solvent extraction, gel filtration or other chromatography systems, etc. 2.) Relies on labels to quantify the complexes formed later. Free or bound Quantitation of labels in isolated fractions is generally a set of comparisons for unknown samples. Standards are used to allow for direct or indirect calculation of analytes in a sample.   The separation and washing required in most of these assays adds to the effort. Palms, slows down, and makes automation difficult. In addition, endpoint measurements are based on kinetic information Collection / dissociation rate) is not allowed. In the case of low affinity binding, the affinity The tee is too low to apply physical separation without breaking the bond No (low affinity receptor). In particular, screening (high throughput) Automation in areas such as screening) Simpler assays that will increase puts, simplified protocols There are certain demands. It achieves a homogeneous or non-separable assay be able to. Homogeneous biomedical assays combine in one homogeneous phase. Defined as an assay performed. It consists of separate phases (eg, capturing reagents). Solid phase), and that no separation is used prior to measurement. It Responds to binding assays in a way that allows its direct monitoring Requires a production system. Systems known in the prior art include, for example, small molecules Fluorescence polarization assays applied to compounds, enzyme monitor immunoassays (Syva Commercially available), various fluorescence extinction of Fluorescence in Immunoassays, Wiley, NY, 1991). single Other categories of purified assay technologies are similar to homogeneous assays, And a non-separable assay that avoids washing steps. A good example of this technology is Solid-state scintillation coated with short-range penetration and capture reagents of radioactive particles in a say medium. Is the scintillation proximity principle marketed by Amersham based on (1985) Proc Natl Acad Sci, 82, 8672 and Anal Biochem, (1987 161), 494).   Despite the numerous homogeneous assay designs published to date Assays that would be compatible with those of separation assays with excellent versatility and sensitivity Absent. The reason is, for example, that homogenous versus heterogeneous Different methods, control of low-affinity non-specific binding, and Many times related to the limitations of the applicability of homogeneous assay techniques. Furthermore, customary A homogeneous homogeneous fluorometric assay can be used to determine the background of various components in a sample. Extremely susceptible to ground interference. Fluorescence polarization assays require low affinity Non-specific binding (eg, a probe that binds albumin) and sample self Disturbed by fluorescence.   Time-resolved fluorescence measurement (time-division in the time domain in the micro- or millisecond range) Is a complete measuring format for a homogeneous assay. Because it Long enough delay time (time between pulsed excitation and start of emission recording) Derived from organic compounds when used Background fluorescence can be totally discriminated (as reported For example, Hemmila (1991); Gudgin Dickinson et al. (1995) J Photochem Photob iol 27, 3). Some homogeneous time-sharing in addition to separation-based assays Fluorometric assays have also been disclosed and patented (Mathis (1995) Clin Chem, 41, 1391; Selvin et al. (1994) Proc Natl Acad Sci, USA, 91, 10024). There are limitations and disadvantages. The purpose of the present invention is generally to provide a long-lived chelate-based donor Based on a specific energy transfer between the lobe and the short-lived (or non-radioactive) receptor molecule To provide an improvement in the time-resolved homogeneous assay principle.   Resonance energy transfer -(Donor emission with absorption of the acceptor) And they are at a distance of less than 20 nm. The energy transfer Requires precise orientation of the molecular vibrations. Energy transfer efficiency (ΦET) Is the following formula:         ΦET= 1 / [1+ (r / R0)6] Where r is the distance between the donor and acceptor molecules and R0Is the donor-recipient A distance parameter characterizing the container pair and the medium between them)   Served in.   Fluorescence resonance energy transfer (FRET), for example, for measuring distances in macromolecules Has been applied as a microscope ruler in structural research (Stryer and Haugland) (1967) Proc Natl Acad Sci, USA, 58: 719). In addition to resonance energy transfer, Other energy transfer reactions, such as simple radioactivity (receiving light emitted by the donor) Absorb by the body Energy transfer), collision energy transfer, conversion (Dexter (1953) J Chem Physics, 21, 836 ) And exciton migration (in the crystal). In addition, the donor radiation Some unrelated effects with inactivating effects on the energy levels of some donors Compounds can be quenched by a number of methods.   Ullman has been certified by Syva Co. as a FETIA (Fluorescent Energy Transfer Immunoassay). Forster-type non-release in a commercially available bioanalytical assay based on antibody recognition reactions Radiative energy transfer (Ullman, Scharzberg and Rubenstein (1967) J Biol Chem , 251: 4172) was first disclosed (US 3,996,345). Proper energy donation The development of body-receptor pairs has been investigated in various studies (Ullman and Khanna (1981) Methods En zymol, 74:28; Khanna and Ullman (1980) Anal Biochem, 108, 156). It is listed. FETIA mainly uses xanthene dyes and fluorescein as donors. Apply a derivative of Numerous other probe pairs have also been developed and Applied in immunoassay ). This assay includes a practical non-fluorescent derivative of fluorescein, a long-lived delayed fluorescent Light-emitting eosin (Thakrar and Miller (1982) Anal Proc, 19, 329), long-life fluorescent Optical pyrene (Morrison (1988) Anal Biochem, 174, 101) and non-radioactive charcoal There is. FRET has been used for basic research and DNA hybridization (eg, (Morrison et al. (1989) Anal Biochem, 183, 231; Parkhurst et al. (1995) Biochemistr y, 34, 285), and other assays include association, dissociation or Is to measure distance.   Use of temporal discrimination (time division) to avoid the effects of direct excitation of receptor molecules But pyrene as a long-excited donor, pulsed laser for excitation And with short decay time receptors Organic donor-acceptor pairs with different decay times, as described by Morrison (Morrison (1988) Anal Bio Chem., 174, 101) (US Pat. No. 4,822,733). In addition to immunoassays The time-resolved energy transfer principle is based on homogenization using fluorescein as the receptor. Applied for near solution hybridization (Morrison et al. (1989) II Ird International Symposium on Quantitative Luminescence Spectrometry in  Biomedical Sciences, Ghent Belgium). Long excited states are directly excited Specific energy using a delay time, which is the time that the emitted acceptor radiation decays. -Offers the advantage of being able to carry out a transfer. Useful for time-resolved fluorometry The combination of different decay times used is dependent on the FRET technique using a conventional short decay probe. It will offer obvious advantages over surgery.   Luminescent (fluorescent) lanthanides are used to study DNA and protein structures. It has long been used as a tool (eg, Brittain (1985) Bioinorganic Lumines cence Spectroscopy, Schulman (ed), Mo pin (1989) Lanthanide Probes in Life, Chemical and Earth Sciences, Theory and Practice, Elsevier Science Publisher, Amsterdam) RNA, ribosomes, DNA and chromatin, thermolysin and transferrin, Calmodulin, ATPase, neural membrane, erythrocyte membrane protein, phospholipids and liposomes And that See). Lanta bound to different sites of calcium binding protein or DNA The energy transfer between the nides is calculated using, for example, the energy transfer between Eu and Nd. As a microscopic ruler to measure the location of the ion binding site with modulin (Horrocks and Tingey (1988) Biochemistry, 27, 413). Tb to E Enel to u Similar FRET used in chelation studies by measuring energy transition (Brittain (1978) Inorg Chem, 17, 2762).   Lanthanides and their chelates are excellent candidates for time-resolved FRET experiments. You. First, they have an exceptionally long excited state lifetime (Weissman (1). 942) Chem.Phys, 10, 214; Whan and Crosby (1962) Mol Spectrosc, 8, 315). So Energy transfer occurs only between transitions that are electrical dipoles. 612-620nm Transition in high-fluorescence Eu chelatesFiveD0−7FTwo) Is electric bipolar d Choppin (ed) Elsevier Science, Publisher, Amsterdam), giving energy Can be However, transitions producing radiation at 590-595 nmFiveD0−7 F1Are magnetic dipoles and cannot transfer energy (Dexter, J Che m Phys 21; 836, 1953). In addition, lanthanide radiation has an isotropic dipole moment Therefore, the orientation ratio is less obscure (Ando et al. (1992) Biochem Biophys A cta, 1102, 186).   Fluorescent lanthanide chelates have been described by Stryer, Thomas and Meares since 1978. It is used as an energy donor. For example, Tb dipicolinate chelate Is 6.57 nm for Lodamin, 4.46 nm for Eosin and 4.46 nm for NBD Critical distance (R0). Typically effective energy transfer At 2.22 ms to 0.12 as shown in the system above. Shortened to ms. Meares et al. (1981, 1992) reported that Tb-phenyl The enzyme-linked rifamycin was measured using Ru-EDTA (Biochemistry 20). ; 610; Biochemistry 22; 6247). In addition to fluorescent compounds, Co (III) and Co (II) Like non-luminescent The condition has also been reported (Cronce and Horrocks (1992) Biochemistry 31, 7963). E The u and Tb chelates are also T for Eu and salicylic acid derivatives for coumarin derivatives. b has been tested as an energy receptor (Clark et al. (1993) Anal Biochem 210, 1). ). Many available non-luminescent energy receptors (quenchers) are lanthanides This is a further advantage for chelates. They consist of metal ions, nitrites (Tanaka (1993) J Photochem Photobiol A: Chem, 74, 15), other paramagnetic metal ions and And their chelates and free radicals (Matko et al. (1992) Biochemistry 31, 703) The light can be extinguished by the above method.   Runs as fluorescent labels in various forms of bioaffinity assays The use of tanides has been reported in numerous reports and patents (eg, Hemmi I have. Examples of early thoughts about 'functional' chelating labels are, for example, Patents (US 4,374,120; 4,432,907; 4,965,211; 4,341,957; 4,058,732 and 4,283,382) Can be found in Non-luminescent labeled chelates (US 4,808,541) and Heterogeneous assay system based on dissociation fluorescence enhancement (US 4,565,790) The stem has gained the widest application. The system and the fluorescent forming ligand and Systems based on post-saturation cation saturation (EP-A 354847 and US 4,772,563) are homogenous. Not suitable for near assay. However, the following U.S. Patents: 4,761,481; 5, 032,677; 5,055,578; 5,106,957; 5,116,989; 4,761,481; 4,801,722; 4,794,191; 4,63 7,988; 4,670,572; 4,837,169 and 4,859,777. Numerous safe fluorescent chemists described in patents and articles that can be used in assays There is a Preferred chelates are ninth nona-dentate chelating ligands For example, terpyridine (EP-A 403593; US 5,324,825; US 5,202,423; US 5,316,909) 5 members of 1 or 2 Terpyridine analogs having a ring (e.g., pyrazole, thiazole, triazine) (US Application 08 / 548,174 and PCT / FI91 / 00373). Very well suited Chelate is described in the following paper (Takalo et al. (1994) Bioconjugate Chem, 5, 278; Mukk ala et al. (1993) Helv Chim Acta, 76, 1361; Remuinnan et al. (1993) J Chem Soc Perkin T rans, 2, 1099; Mukkala et al. (1996) Helv Chim Acta, 79, 295; Takalo et al. (1996) Hel. v Chim Acta, 79). Other long-term decay time labels suitable for the present invention An example is the phosphorescent complex of a porphyrin derivative with Pd and pt (WO 94/10568) .   Use of long-term decay time lanthanides in various types of homogeneous binding assays Include, for example, mixed ligand chelates (US 4,587,223), environmentally sensitive Also described on the basis of chelate (EP 324323) and chelate as enzyme substrate (EP 374221). It is.   Development of a homogeneous assay based on fluorescence resonance energy transfer in 1976 From their widespread applicability in diagnostics marketed by Syva Corporation. (US 3,996,345). Specific label in time-resolved fluorescence measurement system The use of lanthanide chelates as le was first described in the 1970s by Leif (Leif et al. (1976 ) Automation of Uterine Cancer Cytology 1, GL Weid, GF Bahar and PH Bart els (ed) Tutorial of Cytology, Chicago IL) and Wieder (Wieder (1978) Proc . 6th Int. Conf. On Immunofluorescence and related staining techniques, W  Knapp, K Holubar and G Wick (eds), North-Holland, Amsterdam, US 4,058,732 , DE 2,628,158), which later functioned in the 1980s (US 4, 565,790). On the other hand, fluorescent lanthanides were developed by Stryer et al. In 1978. Previously used for fluorescence resonance energy transfer experiments (Thomas et al. (1978) Proc Natl  Acad Sci, 75, 5746; Stryer et al., Annual Review of Biophysics and Bioengineering; Mullins LJ (ed) Annual Reviews, Inc; Palo  Alto, CA, 1982, vol 11, p203). Therefore, for those FRET immunoassays Is clearly used as a probe in a long excited state, but patent It is the object of the request. Wieder and Hale have described an assay based on the use of Clq and FRET. Transfer and quenching in EP-A-272320 and WO 87/07955 and Stavrianopo ulos (EP-A 242527, 1987) Patented for Muno assay. Hoffman La Roche, for the interaction between nucleic acids Lumophore-type chromophores as donors and ruthenium chelates as acceptors The specific application used has been patented (EP 439036) and Cis Bio Internati onal is a candidate for Eu or Tb cryptate as a donor for phycobiliprotein An application has been filed for a based assay.   Specific energy transfer between long-lived donor and short-lived radioacceptor molecules. The principle of the transfer-based time-resolved homogeneous assay can be summarized as follows: Can: Excited donor with long decay time through the mechanism of energy transfer The radiation duration of a short-excited state excited during its lifetime is directly excited Longer than the decay time of the given receptor. This fact indicates that the fluorescence from the directly excited receptor Allows the use of temporary identification (time division) to avoid light. Energy transfer Long-lived donors are excited by a light pulse in a homogeneous assay based on (A) (FIG. 1). To avoid interference from directly excited receptors (B) After decay (C), the fluorescence emission of the receptor excited by the energy transfer is measured ( D). The long-lived emission (DE) from the donor is negligible with no donor emission Measuring the emission of the receptor (AE) excited by energy transfer at different wavelengths (FIG. 2). Therefore, homogeneous Bioaffinity assay (receptor-ligand binding, hybridization Reaction, immunobinding, enzyme substrate binding, etc.) The association or dissociation of a body pair is caused by a signal from the acceptor excited by energy transfer. Can be tracked by measuring the increase or decrease in each. Object and Summary of the Invention   It is an object of the present invention to provide a first group labeled with an energy donor and an energy acceptor. A luminescence energy transfer assay comprising a second group labeled with a body, The receptor is a short-lived excited state luminescent or non-luminescent label. To provide an assay characterized by any of the following: The sign Distance from the donor label resulting from each of the shortening or lengthening Each increase or decrease in energy transfer to the receptor label is measured. Departure Clearly, the donor is a luminescent lanthanide chelate.   According to one aspect of the invention, the assay is performed between labeled donor and acceptor groups. Is based on a reaction that increases the distance of According to the present invention, a donor lanthanide chelate Have a long excited state lifetime.   According to another aspect of the present invention, the assay comprises labeled donor and acceptor groups. Based on the reaction that shortens or lengthens the distance between Is a luminescent lanthanide chelate having a lifetime of According to this aspect of the invention, A long excited state lifetime luminescent lanthanide chelate can The following characteristics:   -High luminescence yield   -1 ms or more excited state lifetime, and   -Radiation dispersion optimized for energy transfer Having.   According to yet another aspect of the invention, two or more analytes are measured simultaneously, Here, each analyte is measured by a specific donor-acceptor pair.   According to yet another aspect of the invention, a luminescent or non-luminescent indicator of the receptor Knowledge is that the second group is bound or bound by a suitable covalent or non-covalent bond Bound to a solid support that provides a large surface.   According to yet another aspect of the invention, the receptor is a cell membrane or a cell membrane fragment. The receptor is a lipophilic compound immobilized on To make it lipophilic.   According to yet another aspect of the invention, a device used to measure energy transfer. The placement of the sample matrix requires the excitation, energy transfer, or emission of the sample matrix. To monitor and correct for any interference, absorb at the wavelength of the excitation or emission. Collection, luminescence of different duration, scattering and luminescence decay times. Heavy parameters can be tracked simultaneously or continuously. Brief description of drawings   FIG. 1 shows the light pulse (A) and the appropriate attenuation (C) of the directly excited receptor (B). Luminecene after donor excitation at acceptor (D) excited by subsequent energy transfer Show time vs. time.   FIG. 2 shows the luminescence intensity versus the emission wavelength of the donor (DE) and acceptor (AE) .   FIG. 3 shows the homology of βhCG (β-subunit of human chorionic gonad stimulating hormone). Standard curve for genius energy transfer assay Is shown.   FIG. 4 shows a homogeneous energy transfer assay of PSA (prostate specific antibody). 2 shows the standard curve for the respective cases.   FIG. 5 shows a homogeneous energy transfer assay of βhCG using indirect labeling. 2 shows the standard curve for.   FIG. 6 shows indirect labeling and homogenous βhCG using a receptor different from FIG. 4 shows a standard curve for an energy transfer assay. Detailed description of preferred embodiments   The present invention is based on energy transfer using time-resolved fluorometry in detection It relates to improvement of a homogeneous assay. The particular improvement is the energy donor and Specific type of lanthanide chelate label used for For an optimized energy acceptor, the path of energy transfer is optimized. Measured using the specified filter and time window, all possible from the sample Methods for correcting interference are available in assays for multi-component analysis and simplified assay protocols. Use col development.   The terms "first group" and "second group" (reactions in which the distance between these groups decreases) Of a bioaffinity recognition component (eg, in a bioaffinity reaction) Any component, or part of a molecule or substrate (eg, whose cleavage is (The far end of the peptide molecule), which would separate the two labeled groups. Is done.   The term "luminescence" refers to fluorescent, phosphorescent, chemiluminescent, bioluminescent Luminescence, photoluminescence, radiation luminescence made by light and electricity , Sonoluminescence, thermoluminescence and triboluminescence.   A preferred arrangement for assays that measure dissociation is luminescence Short decay time receptors and long decay time lanthanide chelates Using the donor, the direct luminescence of the receptor (emitted from the direct excitation of the receptor) Receptor using time delay in time-resolved fluorometry to avoid interference Tracking the emission of molecules. Excess receptor molecules (in time division mode , Their interference is negligible), the association of binding reagents increases the signal It is required to create assays in a manner that allows   For such systems, preferred chelating labels are those that have high luminescence yields ( εxΦ> 2000), long excited state lifetime (preferably greater than 1 ms) and energy transfer Have to have an optimized radiation dispersion for Chelated ions The ligand field around is, for example, a Eu chelate, with more than 70% of the emission (610-62 (In the range of 0 nm)FiveD0−7FTwoAnd must not be in the 590nm range (E.g. emission of Eu glyptate (WO 92/01225) and the bis- Of iminoacetate derivatives (US 5,324,825; US 5,202,423 and US 5,316,909 )). In preferred chelates, useless magnetic Polar transitions and emission around 700 nm are suppressed (Li and Selvin, J Amer Chem Soc 11 7; 8132, 1995). Chelates that are particularly good for this application have high molecular absorption coefficients (ε) , Multichromogenic poly with extremely long excited state lifetime and excellent quantum yield (Φ) Eu chelates formed with carboxylate (Takalo et al., Helv Chim Acta 7 9: 789, 1996). In addition to Eu, Tb can be used for its high luminescence chelates. Is a particularly promising energy donor. Preferred Tb chelates are imino diacete A binding site at the base group (Mukkala et al., J Alloys Compounds 225; 507, 1995) or Constructed from terpyridine containing a binding arm well isolated from the light absorbing aromatic structure Is done. A particularly good key for their application The rate may be such that one or two pyridine rings are pyrazole (US 08 / 548,174) or triazole And terpyridine derivatives substituted with a thiazole ring (PCT / FI91 / 00373) is there. In addition to Eu and Tb, the action of Sm is double or triple labeled homogeneous energy. -Will offer the possibility of performing a transfer assay. Sm is energy at higher wavelengths Where the main emission of a high luminescence chelate is 643n m, giving the opportunity to continue the wavelength scale to the near IR (excellent near IR radiation fluorescence) Collections are being marketed from different sources). Sm preferred A stable chelate is described by Savitsky (Savitsky et al., SPIE 2388; 429, 1995). It consists of multiple forms of 1,3-diketones as listed. The third alternative The alternative (third label) is phosphorescence, which emits long-lived phosphorescence at 650-660 nm. It is pt or Pd coproporphyrin (WO 94/10568).   A particularly preferred group of lanthanide chelates with long excited state lifetimes is that their structures are Compounds 1 to 12 disclosed in Schemes 1 to 5. In that scheme, λex c Is the excitation wavelength, τ is the decay time, and εxΦ is the luminescence yield . The values shown in the scheme are measured from the compound bound to the protein. Scheme 1Scheme 2Scheme 3Scheme 4Scheme 5   Preferred acceptor molecules for association assays have high molecular absorption coefficients (preferred (More than 100,000) with a quantum yield as close to unity (1) as possible Luminescence. The absorption of the receptor is, for example, 611-620 nm for Eu and about Tb. At 545 nm and 643 nm for Sm. I have to wrap. A preferred feature of the acceptor is that the donor emits any radiation. Wavelengths (eg, 574-575 nm for Tb, 660-670 nm for Eu, and Sm At around 675 nm). Receptor decay time less than 1 μs Should be. Furthermore, acceptance The body can be directly or indirectly (eg, through anti-binder antibodies, lectins, avidin, etc.). Must) be covalently or non-covalently attached to the binding partner . Covalently conjugated probes include, for example, xanthene dyes Damin, Tetramethylroda of Fluorescent Probes and Research Chemicals, Molecular Probes 1992-1994 , Mayer and Neuenhofer, Angew Chem Int Ed Engl 33; 1044, 1994). , A specific carbocyanine (Cy3.18) (Mujumbar et al., Bioconjugate Chem 4; 105, 1993). , Southwick et al., Cytometry 11; 418, 1990) and certain porphyrins (Camman, DE  4,216,696) can be used. B-phycoerythrin is at its extreme High molecular absorption coefficient (2,410,00 at 546 nm) and quantum yield (0.98) Despite its large size (MW 240,000), it's perfect for energy transfer assays Suitable.   A good receptor for Eu should have a maximum absorption in the 611-620 nm region You. Excellent receptors for that wavelength range, especially those found in the group of IR radioactive dyes (For reports, see Haugland Molecular Probes, Miller, Spectroscop y Europe 5; 34, 1993, Patonay and Antoine, Anal Chem 63; 332A, 1991, Southw ick et al., Cytometry 11; 418, 1990; Mujumbar et al., Cytometry 10; 11, 1989 and Mu. jumbar et al., Bioconjugate Chem 4; 105, 1993, Papkovsky, Appl Fluorescence Te. chnol III; 16, 1991, Schindele and Renzoni, J Clin Immunoassay 13; 182, 19 93). These types of compounds include phthalocyanines, porphyrins, Anine dyes (Cy-5, Cy5,18, Cy5,29) (Selvin et al., J Amer Chen Soc 116; 6029,199 4, Mujumbar et al., Bioconjugate Chem 4; 105, 1993), conjugated xane Ten (Rhodamine 800) (Imasaka et al., Anal Chem 61; 2285, 1989), squarate (Chang, EP 176,252), methylene blue, Nile bull And oxazine (Imasaka et al., Anal Chem 61; 2285, 1989), indocyanine (Imasaka et al., Anal Chem 62; 363A, 1990). Phycobiliprotein Some of them are good candidates for Eu receptors, especially A-PC, C-PC and R-PC . Preferred energy acceptors for Sm or coproporphyrin are IR radioactive Elementary (see report above).   Ligand or binding reagent labeled with a donor probe and labeled with an acceptor probe A preferred method for ascertaining the short distance between the attached binding reagent and the binding reagent is Directly coupled activating probes (eg, receptors labeled with receptors) Protein, antibody or other binding protein). Another way is For example, receptor-labeled anti-binder (eg, anti-receptor) antibodies and biotin Indirect labeling using a nylated binder and receptor-labeled (strept) avidin Use of a ring, or the donor labeling component would be directly or indirectly attached Other bioaffinity reactions to bring receptor molecules near the actual binding site Is used.   A preferred method with impure membrane bound receptors uses a lipophilic membrane probe, And staining all membranes near or around the receptor with the receptor molecule. You. Suitable probes attached to long aliphatic hydrocarbon chains, such as oxacarbasia Nin (Molecular Probes) is suitable for the staining.   Will further avoid separate labeling of the binding component for each particular assay Other methods include solid supports (such as polymers, ceramics or glass), such as high concentration Using a universal capture surface containing the receptor molecule. Suitable solid carriers are, for example, Beads or particles with a diameter of up to 1500 μm, for example, or any solid surface. Can get. Extensive Microbeads labeled with various luminescence probes from different sources Available. The preferred probe for the carrier is almost always in water to avoid leakage. It is an insoluble hydrophobic compound. Various probes suitable for these labels are available from It can be found amongst the scintillators and laser dyes. High luminescence In beads, multiple receptor molecules compensate for long distances after bead coating. And the fluorescent beads actually provide an energy-receiving surface. If the beads can absorb most of the light emitted by the donor, a simple A radiative energy transfer can be applied, where the energy transfer is The critical distance for 10 μm beads is a function of You. However, for FRET-based assays, plastic is First coated with a binding protein (eg, agglutinin) to immobilize In some cases, long distances can cause invalid energy transfer. The preferred arrangement is This allows the use of surface activated beads and the coupling of receptor molecules. Using a reactive group moiety for (or, like rhodamine-labeled agglutinin A) using a receptor-labeled binding surface or later coated with a receptor Labeling the protein.   Homogeneous assays for association reactions (immunobinding, receptor ligands) Bond, hybridization reaction, enzyme-substrate bond, etc.) A preferred method to determine is to follow the increase in receptor signal. Receiving The receptor signal has excellent transmission at the wavelength of the receptor, but more importantly. Is absolutely blocked for each radiation line of the donor, used Measured using a filter optimized for the donor. The filter is (Like 545 or 490 nm for Tb and 613-615 nm for Eu) Note: any radiation emitted from the main radiation line of the donor should not be received. In addition, energy transfer filters provide a minor radiation line for the donor used. Wavelength region. Use of an appropriate delay directly excites the receptor Avoid interference from the source (optimal delay depends on the length of the excitation pulse used, but less Both should be 10 times longer.   The decay of the acceptor excited by the energy transfer depends on the decay of the donor and the energy transfer. It is a function of transfer efficiency. This allows (competitive binding assays or non-competitive assays) During the assay (as in), the overall decay is not constant, but is a function of the analyte. Special Low specific binding and energy transfer efficiency less than 1% The decay time of the energy transfer radiation of the acceptor is almost constant and the decay time of the donor Equal to time. Delays and counting times for such measurements are not significant. Absent. For higher efficiency assays, the decay time is reduced by binding and To provide a more abrupt response while maintaining a short delay and a reasonably short counting time. Obtainable. On the other hand, if tracking donor radiation, use a longer delay time. A more rapid response is obtained. Because when the energy transfer occurs, the whole donor release The fire decreases and its decay time decreases. Optimal results in any assay According to the type of assay, the percentage of specific binding and the energy transfer efficiency It is advisable to optimize the counting window.   In screening various compounds or samples, the sample Can have a reducing effect. The sample can absorb, for example, excitation light, emission light, or other types of light. Quenching can occur. Multi-label counters, such as the Wallac 1420 VICTOR And interference can be affected by various methods, such as (1) attenuation analysis, (2) excitation and emission wavelengths. Sump in Monitoring of the simultaneous photometry of the absorption of the signal, (3) identification of the signal, donor and acceptor. Measurement of time, calculation of their correlation, and equal amounts of donor and acceptor without binding reaction Comparison with a body control, or (4) binding of energy following an energy transfer or a change in signal. It can be controlled by measuring the speed during. For highly efficient binding assays, Analysis during the run is independent of parameters that are not affected by the disappearance of color without excitation or emission. It is. Changes in the decay should be tracked for the donor or the acceptor (Decrease or decrease when energy transfer increases). Turbulence in all samples A preferred method to ensure unassisted analysis is a suitable set of all correction methods described above. It is to use matching.   According to a preferred embodiment, the energy transfer is received when there is no energy transfer. Crosstalk or donor radiation into the channel used for container radiation measurements Avoid recording with a time-resolved fluorometer using certain instrument settings to avoid It is.   Preferably, the device automatically captures any attenuation of the excitation, and The pull is simultaneously tracked for the absorbance of the sample diluted in the assay mixture, Emission readings can be corrected according to excitation or emission attenuation due to pull absorption.   Measured receptor signal can be compared to zero calibrator Donor emission can also be normalized by recording, where the acceptor luminescence The signal drop without increase with the resistance is recorded and corrected.   Record the decay time of the donor or acceptor and use this when measuring parameters. Can be.   Donor or acceptor decay times can be used to correct for sample interference .   Upgradable energy transfer assay The second type of assay is an assay that tracks dissociation rather than association. Such an app Say, for example, that an antibody-antigen complex is formed, (Ligand displacement assays) competitive immunoassays (or other specific Binding assay). Another group of such assays include enzymes, such as Tidases (eg, HIV peptidases), proteases and other enzymes (eg, Reotide hydrolase, helicase, etc.). Homozygous for dissociation In genius measurements, the preferred technique is to track the increased emission of the donor It is.   Preferred chelates for dissociation-based assays are those of the association-based assays. To a large extent the same as above. However, terbium has often It is a better choice. Because it consists of various compounds, such as metal ions, Nitrogen compounds such as azides, nitrides (Tanaka et al., J Photochem Photobiol 74; 1 5, 1993) or radicals (spin labels such as Doxyl, Proxyl or Tempo and others) Quenched by an N—O compound containing an unpaired electron. Excellent for the present invention The Tb chelates are as described above.   Preferred acceptors for dissociation assays are as efficient donors as possible It is an excellent energy receptor to quench. The receptor is of luminescence You get, but you don't have to be. Preferred FRET receptors have excellent receptor properties (5 nm R over0) But need not have high luminescence. Lumi mentioned above In addition to nesens compounds, excellent receptors are also available for heavy atom cores (such as erythrosine). Each compound made non-luminescent with conjugation or other suitable substitution (Khanna and Ullman, Anal Biochem 108: 156, 1980, Ullman And Khanna, Methods Enzynol 74; 28, 1981). Steric hindrance (eg donor and recipient H labeled on both sides Receptors must be small and small Molecular quenchers, such as spin labels, are preferred. Larger access The use of putters is probably an indirect approach, such as small affinity Label (small hapten, biotin) and must be performed after the actual dissociation reaction Separate step for quenching (addition of receptor-labeled anti-hapten of avidin) (endpoint Detect). Preferred assay designs for e.g. peptidases One end is labeled with a fluorescent terbium chelate and the other end is labeled with a free radical. The use of a modified peptide substrate. Spin quenching and FRET dipole-dipole energy The choice during the energy transfer depends on the actual difference between the labels in the unhydrolyzed peptide. Depends on distance. At small distances (less than 2 nm), free radicals (spins) are preferred No. If the distance between the two probes would be greater than 5 nm, the dipole-dipole energy Energy transfer is preferred.   When designed to quench in associated form (eg, quenched substrate ), Donor luminescence, and its decay time increase with dissociation. In measurement Since the preferred lag time is long, possible residual luminescence of the quenched donor Avoid detection. These assays, like the association assays, are sometimes sample dry. Prone to interference (eg, loss of color), and the problem is solved in the same way as described above. be able to. Example   The present invention is further described by the following non-limiting examples.   Example 1   Anti-βhCG (human chorionic gonadotropin) antibody (code F19-9C1) Labeling with rate compound 6   The energy donor compound 6 was reacted with an anti-βhCG antibody (code F19-9C1, Wall ac Oy, Turku, Finland): Anti-βhCG antibody (5 mg / ml) Incubate overnight at 50 ° C with 30-fold molar excess of compound 6 in 50 mM carbonate buffer pH 9.5. I did it. The labeled antibody was used as an eluent in Tris (50 mM Tris containing 0.9% NaCl). -HCl, pH 8) by gel filtration (Sepharose 6B on which Sephadex G50 is stacked, 0.5 × 70 cm, Ph armacia, Uppsala, Sweden). The sign The antibodies were analyzed and found to contain 4.7 molecules of compound 6 per antibody. Sign The antibodies were maintained in Tris buffer pH 7.4 containing 0.1% bovine serum albumin.   Example 2   Anti-βhCG (code M15294) antibody tetramethylrhodamine isothiocyanate (TRIT Labeling in (C)   Energy receptor TRITC (Molecular Probe Inc, Eugene, OR) Conjugate to anti-βhCG antibody (code M15294, Wallac Oy): anti-βhCG antibody (5 mg / ml) at + 4 ° C. overnight with a 15-fold molar excess of TRITC in 50 mM carbonate buffer pH 9.5. Incubated together. The labeled antibody was used as an eluent in Tris (0.9% NaCl). Filtration (Sepharose with Sephadex G50) using 50 mM Tris-HCl (pH 8) containing  6B, 0.5 × 70 cm, Pharmacia) to separate from unreacted TRITC. Its labeled Antibodies were analyzed and found to contain 1.7 tetramethylrhodamine per antibody . Labeled antibody was maintained in Tris buffer pH 7.4 containing 0.1% bovine serum albumin .   Example 3   βhCG homogeneous energy transfer assay   In this two-site immunoassay, 50 μl in a well of a 96-well plate was used. βhCG standard was added to 200 μl of Tris buffer (0.9% NaCl 100 ng of compound 6 labeled antibody (donor) and 50OnM in 50 mM Tris-HCl, pH 7.4) g of tetramethylrhodamine-labeled antibody (receptor). Use Two anti-βhCG antibodies are raised against different specific antigenic sites on the βhCG subunit. Cheating. βhCG standard is from a commercial kit for measuring free βhCG in serum (Wallac Oy). Place the reaction mixture on a 96-well plate shaker Incubated for 30 minutes at warm. Tetramethylrhoda from its formed complex Min fluorescence was measured using a time-resolved fluorometer (excitation at 340 nm, 572 nm ± 3 nm, delay time 5 0 μs, window time 100 μs, cycle time 1 ms), model 1420 VICTOR (Wallac Oy) Was measured. Figure 3 shows the standard curve for the βhCG energy transfer assay. Show.   Example 4   Homogeneous energy transfer assay for PSA (prostate specific antigen)   Two antibodies (Wallac Oy) recognizing different epitopes on PSA were compound 1 and compound 2, respectively. And TRITC. Antibody labeling was performed as described in Examples 1 and 2. In this two-site assay, PSA (from the commercial PSA assay kit DELFIA PSA) 50 μl of standard is labeled with 100 ng of compound 1 (donor) in 200 μl of Tris buffer pH 7.4 Together with 100 ng of tetramethylrhodamine-labeled antibody (receptor) Was added. Incubate the assay mixture under continuous shaking at room temperature for 30 minutes. Was added. Tetramethyl rhoda from the formed complex (sandwich) Min fluorescence was measured on a Wallac 1420 VICTOR time-resolved fluorometer (at 340 nm). (Excitation, emission at 572 nm ± 3 nm, delay time 100 μs, cycle time 1 ms). Homogenia The standard curve for the energy transfer assay is shown in FIG.   Example 5   Homogeneous expression of βhCG with tetramethylrhodamine-avidin as receptor Energy transfer assay   This two-site immunoassay was performed as described in Example 3. Tetramethi Instead of using lurodamine-labeled antibody (receptor), biotinylated antibody and Lamethylrhodamine-avidin (receptor) was used. Tetramethylrhodamine-avi Gin (Molecular Probes) reacts to form a stable complex with biotinylated antibody did. Anti-βhCG antibody (code M15294) was purchased from a biotin reagent supplier (Biotinylating Rea gene 732494, Boehringer Mannheim, Mannheim, Germany) Biotinylated. Tetramethyl rhoda from the formed complex (sandwich) Min fluorescence was measured using a Wallac 1420 VICTOR time-resolved fluorometer (excitation at 340 nm, 572 n m ± 3nm, delay time 50μs, window time 100μs, cycle time 1ms) Was. The standard curve for the homogeneous energy transfer assay is shown in FIG.   Example 6   Homogeneous expression of βhCG with R-phycoerythrin-avidin as receptor Energy transfer assay   In this experiment, instead of tetramethylrhodamine-avidin, R-phycoery Trin-avidin (Molecular Probes, Eugene, OR, USA) was used. Performed as in No. 5. R-phycoerythri from formed complex (sandwich) Fluorescence was measured on a Wallac 1240 VICTOR time-resolved fluorometer (excitation at 340 nm). (Emission, emission at 572nm ± 3nm, delay time 50μs, window time 100μs, cycle time 1ms) . The standard curve for the homogeneous energy transfer assay is shown in FIG.   Example 7   A homogeneous energy transfer assay for progesterone   Monoclonal anti-progesterone antibody (Wallac Oy) was compounded according to Example 1. Labeled with 2. Progesterone-biotin derivative (Wallac Oy)aff(Kaff = Affinity constant of the used progesterone antibody) Greater tetramethylrhodamine-avidin (Molecular Probes, Inc, OR) was used. T ris buffer was used for the incubation. In this competitive immunoassay, 5 0 μl of the standard or sample is added to 100 μl of the compound 2 labeled antibody (1 / 50,000 dilution) And 100 μl of progesterone-biotin derivative and tetramethylrhodamine-a Incubated with vidin (receptor). Biotinylated progesterone is labeled For the binding site on the anti-progesterone antibody Compete with gesterone. The reaction mixture was incubated at room temperature for 1 hour. After incubation, a time-resolved fluorometer (Wallac 1420 VICTOR, 34 Excitation at 0nm, emission at 572nm ± 3nm, delay time 50μs, window time 100μs, cycle time Binds to anti-progesterone-antibody-progesterone-biotin complex in 1 ms) It was measured from tetramethylrhodamine-avidin. The measured signal is Inversely correlated with progesterone concentration in the sample.   Example 8   Homogeneous energy transfer receptor assay for IL-2   Pure carrier-free IL-2 (R & D Systems, Minneapolis, MN) (1 mg / ml) was added to +4 Incubate overnight with a 10-fold molar excess of Compound 2 in 50 mM carbonate buffer pH 9.2 at 50 ° C. I was vate. The labeled IL-2 was subjected to gel filtration through Tris (Sephadex G5 0, 0.7 × 48 cm, Pharmacia) to separate from unreacted chelates. Its labeled IL-2 was analyzed and found to contain 1.4 molecules of compound 2 per IL-2 molecule. IL- Non-neutralizing antibodies against the 2α receptor were tested according to Example 2. Labeled with lamethylrhodamine isothiocyanate. That homogenous slepter In the assay, increasing concentrations of unlabeled IL-2 were replaced with a fixed amount of Compound 2 labeled IL. -2 (donor), IL-2α receptor and tetramethylrhodamine-labeled antibody (acceptor ). Tris buffer was used for this incubation. Time-resolved fluorometer (Wallac 1420 VICTOR, excited at 340 nm, at 572 nm ± 3 nm Emission, delay time 50μs, window time 100μs, cycle time 1ms). By measuring the fluorescent signal from the antibody-receptor IL-2 complex A permutation curve was created.   Example 9   Double labeling of casein with compound 6 and tetramethylrhodamine   Five milligrams of casein was dissolved in 0.5 mL of 0.1 M sodium carbonate pH 9.2. water 50 μl of 5.5 mM fluorescent compound 6 in the casein solution at 4 ° C. Allowed to react overnight. 0.9% of the labeled protein in aqueous solution as eluent And purified through a Sephadex G-50 column. The sign Analyzed casein and found to contain 6 molecules of compound per casein molecule did. Two milligrams of Compound 6 labeled casein in 1 mL was converted to dimethylformamide 100 μl of 20 mM tetramethylrhodamine isothiocyanate (TRITC) dissolved in Mixed. After adjusting the pH by adding 120 μl of 1 M sodium carbonate pH 9.5, the reaction mixture was mixed. The mixture was incubated overnight at 4 ° C. The labeled protein is replaced with 0.9% Na Using a Sephadex G-50 column equilibrated and washed with 50 mM Tris-HCl pH 8 containing Cl Purified from unreacted TRITC. Compound 6-Same protocol as for labeled casein Unlabeled casein was also labeled with TRITC using Col.   Example 10   Labeling of casein labeled with compound 6 by spin labeling   Two milligrams of compound 6 labeled casein (Example 9) in 1 mL of 0.9% NaCl , 110 μl of 1M sodium carbonate pH 9.5 and 13 μl of 160 mM 3- (2- (2 -Isothiocyanatoethoxy) -ethylcarbamoyl) -PROXYL (Aldrich) I got it. After overnight reaction at 4 ° C., the double-labeled protein was separated by Sephadex G-50 Purification was performed using a column.   Example 11   Fluorescence measurement properties of double-labeled casein   Compound 6 casein (Example 9) with the double labeled protein from Examples 9 and 10 Together with a multilabel reader (VICTOR, Wallac Oy). Labeled casei The solution was diluted with 50 mM Tris-HCl pH 7.8 to a concentration of 0.2 μg / mL. Terbium measurement Protocol (excitation 340 nm, emission 545 nm, delay time 0.5 ms, window time 1.4 ms, size Using a 2 ms cycle time, compound 6 labeled casein was counted at 743,000 counts per second. (Cps). Casein labeled with compound 6 and TRITC provides 28,000 cps, Casein labeled with compound 6 and PROXYL provided 54,000 cps and labeled with TRITC The resulting casein provided 869 cps. Excitation of the above proteins at 340 nm, (suitable for TRITC Emission of 572 nm ± 3 nm, delay time 50 μs, window time 100 μs and cycle time 1 m s, the compound 6 labeled casein provided 3952 cps and compound 6 and And TRITC-labeled casein provide 382,000 cps, compound 6 and PROXYL-labeled casein. Provided 4097 cps and TRITC-labeled casein provided 747 cps. These conclusions The result shows that casein labeled with compound 6 together with TRITC or PROXYL The fluorescence of Compound 6 was effectively turned off. In the case of compound 6 and casein labeled with TRITC, Article 6-Quenching of Fluorescence, Emission Filter Suitable for Lodamine and Time Compound 6-chelate visible in fluorescent signal using split mode And the energy transfer between Lodamin.   Example 12   Protease assay using double-labeled casein   Compound 6 labeled casein, compound 6 and TRITC labeled casein and compound 6 And PROXYL-labeled casein diluted with 10 mM Tris-HCl pH7.6 to a concentration of 50 ng / mL did. Clear microtitration of 180 μl of each diluted protein Pipette into wells (NUNC Maxisorp). Fluorescence was measured for terbium measurement. Measured using all protocols. The following results were obtained: compound 6-casein 179, 000 cps, compound 6-TRITC-casein 7860 cps and compound 6-PROXYL-casein 14 680cpso then add 100 ng of trypsin in 20 μl of 10 mM Tris-HCl pH 7.6 to each well Was added. After incubation for 1 hour at room temperature, compound 6-fluorescence was measured: Compound 6-casein 163,000 cps, compound 6-TRITC-casein 137,000 cps Compound 6-PROXYL-casein 67400 cps. For double-labeled casein, protease Resulted in a 17-fold increase in compound 6 fluorescence.   Example 13   A homogeneous energy transfer assay for measuring protein kinase activity   An antibody against phosphorylated tyrosine (clone PY20) was labeled with compound 4. Anti Incorporation of 3 chelates per body molecule was obtained. Lodamine-avidin (Rh-Av) and And phycoerythrin-avidin (PE-Av) were purchased from Vector Laboratories. As substrates, we have the following amino acid sequence:   Biotin-Glu-Ala-Ile-Tyr-Ala-Ala-Pro-Phe-Ala-Lys-Lys-Lys peptide Using. Add the biotin component to the amino terminus of the peptide Combined. This peptide is an Abl protein purchased from New England Biolabs It is a substrate for tyrosine kinases. The assay uses a 100 nM peptide solution Is initiated by incubation with labeled avidin (10 μg / mL concentration) did. Transfer 20 microliters of the peptide-avidin solution to a clear microtiter plate. Pipetted into the well. Next, 25 μM ATP and 250 μg / mL compound 75 μl of Abl protein tyrosine kinase containing 3 labeled anti-phosphotyrosine Say buffer (New England Biolabs; 50 mM Tris-HCl pH7.5, 10 mM MgClTwo, 0.1 mM NaTwo EDTA, 1 mM dithiothreitol, 0.015% Brij35) was added to each well. Next Next, 5 μL of kinase assay buffer (blank) diluted in assay buffer or Added 5 μL of either Abl protein tyrosine kinase (1 unit) . Lodamin or phycoerythrium excited by energy transfer from compound 4 In order to measure the signal from the probe, time-division mode (excitation at 340 nm, 572 nm ± 3n m, emission time, delay time 50μs, window time 100μs, cycle 1ms) The measurements were taken with a hopper. After 30 minutes, the following results were obtained:     Labeled Avidin Blank Enzyme Signal   Lodamin-avidin 2649cps 702,000cps   Phycoerythrin-avidin 2460cps 974,000cps   These results indicate that the kinase activity was compound 4 with rhodamine or phycoerythrin. Detection using the described assay format based on energy transfer between That you can do it.   Example 14   Homogeneous energy transfer DNA hybridization assay   The following oligonucleotides were used for Applied Biosystems DNA / RNA Synthesized using a synthesizer:   Target oligonucleotide 5'-ACG GTT CTA GCG TTG CAC TAC GGC TGC AAC TA G CAG TCC-3 ’   Compound 6 labeled oligonucleotide 5'-Compound 3-X-GTG CAA CGC TAG AAC-3 ’   Tetramethylrhodamine labeled oligonucleotide 5'-TGC TAG TTG CAG CCG- X-TRITC-3 ’   Compound 6 and TRITC-labeled oligonucleotides are based on previously published chemistry and Synthesized using a protocol (P. Dahlen et al. (1994) Bioconjugate Chem. 5, 268-272). , Labeled. X is, for example, suitable for labeling with a reagent containing an isothiocyanate group. Deoxycytidine residues having a modified aliphatic primary amino group. This Compound 6 used in the example is fluorescent. The labeled probe is Can hybridize with nucleotides, and by hybridization, The fluorescent compound 6 and tetramethylrhodamine bind to 2 in the target oligonucleotide. Separated by only one nucleotide. The next hive in the assay Redidation solution: 0.6 M sodium chloride, 50 mM Tris-HCl, pH 8, 0.1 mM EDT A, 0.1% sodium dodecyl sulfate was used. Hybridize the probe Solution to give a final concentration of 10 nM each. Its target oligonucleotide Dilute with hybridization buffer to the following concentration: 1 nM (0.1 in assay) nM), 5 nM (0.5 nM in the assay) and 10 nM (1 nM in the assay) . Only the hybridization solution was used as a target for the blank. 20 ma Transfer the ichloliter target oligonucleotide dilution and blank to a clear micro Pipette into titration wells. The assay was performed in duplicate . Next, the hybridization containing the labeled probe is performed. 180 μl of the lysis solution was added to each well. Then, place the plate on the adhesive And placed in an incubator set at 37 ° C. 30 minutes incube After plating, the plate was placed in time-division mode (excitation at 340 nm, at 572 nm ± 3 nm). Emission, delay time 50 μs, window time 100 μs, cycle time 1 ms). The following results were obtained.       Blank 2331cps       0.1nM target 7170cps       0.5nM target 26980cps       1nM target 46300cps   These results indicate that this homogeneous assay works well and that compound 6 The energy transfer between the two and the rhodamines occurs when the two probes hybridize to the same target molecule. Indicates that it is effective when redistributing.   Example 15   Energy transfer assay using beads containing receptor molecules   Label anti-βhCG antibody (code M15294) with compound 6 as described in Example 1. did. 50 microliter orange fluorescent beads (1.8 x 106Beads / ml) (FluoroS pheresR, F-8857, Molecular Probes Inc.) in Tris buffer (50% with 0.9% NaCl). 50 μl of compound 6 labeled antibody (60 μg / ml) in 2 mM Tris-HCl, pH 7.4) for 2 hours And incubated. In the reaction mixture, the compound 6-labeled antibody was Adsorbed passively on the surface of The background was reduced to 50 μl beads by 50 μl. Incubate 1 μl of buffer and 50 μl of antibody solution with 50 μl of buffer It was decided by that. Beads excited by energy transferred from compound 6 Fluorescence from a receptor molecule in a Wallac 1240 VICTOR time-resolved fluorometer Measure Was. The fluorometer settings used were: excitation at 340 nm, emission at 572 nm ± 3 nm, delay The time was 50 μs, the window time was 100 μs, and the cycle time was 1 ms. result:                                                               fluorescence                                                             1000 × cps     50 μl beads + 50 μl compound 6-labeled antibody 5543     50 μl beads + 50 μl buffer 161     50 μl compound 6-labeled antibody + 50 μl buffer 158   Example 16   Energy transfer assay using beads containing receptor molecules   Label anti-βhCG antibody (code M15294) with compound 9 as described in Example 1. did. 50 microliter crimson fluorescent beads (1.8 x 106Beads / ml) (Fluor oSpheresR, F-8855, Molecular Probes Inc.) with Tris buffer (containing 0.9% NaCl) 50 μl of compound 9-labeled antibody (60 μg / ml) in 50 mM Tris-HCl, pH 7.4) For a while. In the reaction mixture, the compound 9-labeled antibody was Passively adsorbed on the surface of the noise. The background is reduced by 50 μl of beads Incubate μl buffer and 50 μl antibody solution with 50 μl buffer It was decided by doing. Bee excited by energy transferred from compound 9 Fluorescence from receptor molecules in the wall is measured using the Wallac 1240 VICTOR time-resolved fluorometer. Was measured. The fluorometer settings used were excitation at 340 nm and emission at 660 nm ± 1 nm. Emission, delay time 100 μs, window time 100 μs, cycle time 1 ms. result:                                                               fluorescence                                                            1000 × cps     50 μl beads + 50 μl compound 9-labeled antibody 1398     50 μl beads + 50 μl buffer 8     50 μl Compound 9-labeled antibody + 50 μl buffer 102   The method of the present invention may be implemented in various embodiments, only some of which are disclosed herein. It will be appreciated that they can be incorporated in a state. Other embodiments exist and the present invention It will be clear to those skilled in the art that the spirit of As a result, the actual The embodiments are for illustrative purposes only and should not be construed as limiting.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ボロムベルグ，カイ ルナー フィンランド国，エフイーエン―20750 トゥルク，ヒルベンカトゥ ９ アー ４ (72)発明者 ムッカラ，ベリ―マティ フィンランド国，エフイーエン―20780 カーリナ，スオビランカトゥ １ アス ６ (72)発明者 タカロ，ハルリ ユハ フィンランド国，エフイーエン―20360 トゥルク，プノモンティエ 22 (72)発明者 コバネン，サトゥ アンネリ フィンランド国，エフイーエン―20610 トゥルク，ティヘンカトゥ 21 エフ 108 (72)発明者 ベーブ，ストゥアート アラン フィンランド国，エフイーエン―20880 トゥルク，リクメンティンティエ 41 ア ー ６────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page    (72) Inventor Boromberg, Kairuner             Finland, Finland-20750             Turku, Hilbencatu 9 are 4 (72) Inventor Mukkala, Berry Matti             Finland, FFIEN-20780             Karina, Suobilankatu 1 Ass             6 (72) Inventor Takaro, Haruri Yuha             Finland, Finland-20360             Turku, Punomontier 22 (72) Inventor Kovanen, Satu Annelli             Finland, FFI-20610             Turku, Tichencatu 21 F             108 (72) Inventor Babe, Stuart Alan             Finland, Finland-20880             Turku, Licumententier 41 a             ー 6

Claims (1)

【特許請求の範囲】 １．エネルギー供与体で標識された第１の基と、エネルギー受容体で標識され た第２の基と、を含むルミネセンスエネルギー転移アッセイであって、 前記供与体は長い励起状態寿命のルミネセンスランタニドキレートであり、前 記受容体は短い励起状態寿命のルミネセンス標識又は非ルミネセンス標識であり 、 前記標識間の距離が短くなること又は長くなることの各々から生ずる前記供与 体標識からの前記受容体標識へのエネルギー転移の増加又は減少の各々が測定さ れ、 前記長い励起状態寿命のルミネセンスランタニドキレートは、次の特性： −高いルミネセンス収量、 −１ms又はそれ超の励起状態寿命、及び −エネルギー転移のために最適化された放射分布のうちの１つ又はそれ超を有 することを特徴とするルミネセンスエネルギー転移アッセイ。 ２．エネルギー供与体で標識された第１の基と、エネルギー受容体で標識され た第２の基と、を含むルミネセンスエネルギー転移アッセイであって、 前記受容体は短い励起状態寿命のルミネセンス標識又は非ルミネセンス標識の いずれかであり、 前記標識間の距離が長くなることから生ずる前記供与体標識からの前記受容体 標識へのエネルギー転移の減少が測定され、 前記供与体が長い励起状態寿命のルミネセンスランタニドキレートであること を特徴とするルミネセンスエネルギー転移アッセイ。 ３．エネルギー供与体で標識された第１の基と、エネルギー受容体で標識され た第２の基と、を含むルミネセンスエネルギー転移アッセイであって、 前記受容体は短い励起状態寿命のルミネセンス標識又は非ルミネセンス標識の いずれかであり、 前記標識間の距離が短くなること又は長くなることの各々から生ずる前記供与 体標識からの前記受容体標識へのエネルギー転移の増加又は減少の各々が測定さ れ、 前記供与体が長い励起状態寿命のルミネセンスランタニドキレートであり、そ して ２又はそれ超の被検体が同時に測定され、ここで各々の被検体は特異的供与体 −受容体対により測定され、該供与体及び受容体は先に記載されるものから選択 されることを特徴とするルミネセンスエネルギー転移アッセイ。 ４．エネルギー供与体で標識された第１の基と、エネルギー受容体で標識され た第２の基と、を含むルミネセンスエネルギー転移アッセイであって、 前記受容体は短い励起状態寿命のルミネセンス標識又は非ルミネセンス標識の いずれかであり、 前記標識間の距離が短くなること又は長くなることのいずれかから生ずる前記 供与体標識からの前記受容体標識へのエネルギー転移の増加又は減少の各々が測 定され、 前記供与体が長い励起状態寿命のルミネセンスランタニドキレートであり、そ して 前記受容体のルミネセンス又は非ルミネセンス標識は、前記第２の基が適切な 共有結合又は非共有結合により結合し又は結合することができる大きな表面を供 する固体担体に付着されることも特徴と するルミネセンスエネルギー転移アッセイ。 ５．前記ルミネセンス又は非ルミネセンス標識分子が固体担体内にあることを 特徴とする請求項４に記載のアッセイ。 ６．前記固体担体が、前記第２の基と及び複数の受容体分子と共有結合した表 面活性化マイクロビーズであることを特徴とする請求項４に記載のアッセイ。 ７．前記表面が、接着性高分子、例えばポリリシン、アグルチニン、レクチン 、抗体でマイクロビーズをコーティングすることにより作られており、該コーテ ィングステップの前又は後のいずれかに高分子が前記受容体分子にコンジュゲー トされることを特徴とする請求項４に記載のアッセイ。 ８．エネルギー供与体で標識された第１の基と、エネルギー受容体で標識され た第２の基と、を含むルミネセンスエネルギー転移アッセイであって、 前記受容体は短い励起状態寿命のルミネセンス標識又は非ルミネセンス標識の いずれかであり、 前記標識間の距離が短くなること又は長くなることの各々から生ずる前記供与 体標識からの前記受容体標識へのエネルギー転移の増加又は減少の各々が測定さ れ、 前記供与体がルミネセンスランタニドキレートであり、そして 前記受容体は、細胞膜もしくは細胞膜フラグメントに固定された親油性化合物 であるか、又は前記受容体は、長鎖炭化水素、例えば脂肪酸とコンジュゲートす ることにより親油性にされることを特徴とするルミネセンスエネルギー転移アッ セイ。 ９．前記ルミネセンスランタニドキレートが長い励起状態寿命を有し、次の特 性： −高いルミネセンス収量、 −１ms又はそれ超の励起状態寿命、及び −エネルギー転移のために最適化された放射分布のうちの１又はそれ超を有す ることを特徴とする請求項２〜８のいずれかに記載のアッセイ。 10．前記アッセイが、バイオアフィニティー結合反応に基づくことを特徴とす る請求項１又は３〜９のいずれかに記載のアッセイ。 11．前記アッセイが、酵素触媒反応に基づくことを特徴とする請求項１〜10の いずれかに記載のアッセイ。 12．前記反応が開裂反応であることを特徴とする請求項11に記載のアッセイ。 13．前記供与体キレートのランタニドが、ユーロピウム、テルビウム又はサマ リウムであることを特徴とする先の請求項のいずれかに記載のアッセイ。 14．前記エネルギー転移が、エネルギー転移がない場合に受容体放射測定のた めに用いられるチャンネルへのクロストーク又は供与体放射を避ける所定の装置 セッティングを用いて、時間分割フルオロメーターにより記載されることを特徴 とする請求項13に記載のアッセイ。 15．前記装置の計数時間窓が、エネルギー転移のない受容体の励起パルスの長 さ及び放射寿命と比べて長い遅延時間を有するようにアッセイのために最適化さ れ、そして前記計数時間窓が、短くなった距離を測定するアッセイにおいて供与 体の減衰より短いことを特徴とする請求項14に記載のアッセイ。 16．前記受容体分子が、適切な第２のアフィニティー反応、例えば抗レセプタ ー抗体、ビオチニル化結合性試薬及び受容体標識化アビジン、レクチン等を用い て、特異的結合反応の近くに運ばれることを特徴とする先の請求項のいずれかに 記載のアッセイ。 17．前記受容体がスピンラベルであることを特徴とする請求項１〜９又は11〜 16のいずれかに記載のアッセイ。 18．エネルギー供与体で標識された第１の基と、エネルギー受容体で標識され た第２の基と、を含むルミネセンスエネルギー転移アッセイであって、 前記受容体は短い励起状態寿命のルミネセンス標識又は非ルミネセンス標識の いずれかであり、 前記標識間の距離が短くなること又は長くなることの各々から生ずる前記供与 体標識からの前記受容体標識へのエネルギー転移の増加又は減少の各々が測定さ れ、 前記供与体がルミネセンスランタニドキレートであり、エネルギー転移を測定 するのに用いられる装置が、サンプルマトリックスが励起、エネルギー転移又は 放射せざるおえないいずれかの干渉をモニターし、それを補正するために、多重 のパラメータ、例えば励起又は放射の波長における吸光度、異なる持続時間のル ミネセンス、散乱及び蛍光減衰時間を同時に又は連続的に追跡することができる ことを特徴とするルミネセンスエネルギー転移アッセイ。 19．前記装置が、アッセイ混合物中に希釈されたサンプルの吸光度を同時に追 跡し、そしてサンプル吸収による励起又は放射に従って放射の読取りを補正する ことにより、サンプルが引きおこし得る励起のいずれかの減衰を自動的に補正す ることを特徴とする請求項18に記載のアッセイ。 20．前記測定された受容体シグナルが、ゼロキャリブレーターと比較すること ができる供与体放射も記録することにより標準化され、ここで受容体ルミネセン スの相伴う増加のないシグナルの低下が記録され、補正されることを特徴とする 請求項18に記載のアッセイ。 21．供与体又は受容体の減衰時間が記録され、測定パラメータとして用いられ ることを特徴とする請求項18に記載のアッセイ。 22．前記供与体又は受容体の減衰時間が、サンプル干渉の補正に利用されるこ とを特徴とする請求項18に記載のアッセイ。 23．請求項19，20，21又は22に記載の測定の適切な組合せであることを特徴と する請求項18に記載のアッセイ。[Claims]   1. A first group labeled with an energy donor and a first group labeled with an energy acceptor; A luminescence energy transfer assay comprising:   The donor is a long excited state lifetime luminescent lanthanide chelate, The receptor is a short excited state lifetime luminescent or non-luminescent label. ,   The provision resulting from each of the shortening or increasing of the distance between the signs Each increase or decrease in energy transfer from the body label to the receptor label is measured. And   The long excited state lifetime luminescent lanthanide chelate has the following properties:   High luminescence yield,   -1 ms or more excited state lifetime, and   -Having one or more of the radiation distributions optimized for energy transfer A luminescence energy transfer assay.   2. A first group labeled with an energy donor and a first group labeled with an energy acceptor; A luminescence energy transfer assay comprising:   The receptor may be a short excited state lifetime luminescent or non-luminescent label. One of   The acceptor from the donor label resulting from the increased distance between the labels The decrease in energy transfer to the label is measured,   The donor is a long excited state lifetime luminescent lanthanide chelate A luminescence energy transfer assay.   3. A first group labeled with an energy donor and a first group labeled with an energy acceptor; A luminescence energy transfer assay comprising:   The receptor may be a short excited state lifetime luminescent or non-luminescent label. One of   The provision resulting from each of the shortening or increasing of the distance between the signs Each increase or decrease in energy transfer from the body label to the receptor label is measured. And   The donor is a luminescent lanthanide chelate with a long excited state lifetime; do it   Two or more analytes are measured simultaneously, where each analyte is a specific donor -Measured by an acceptor pair, said donor and acceptor being selected from those described above A luminescence energy transfer assay.   4. A first group labeled with an energy donor and a first group labeled with an energy acceptor; A luminescence energy transfer assay comprising:   The receptor may be a short excited state lifetime luminescent or non-luminescent label. One of   The distance resulting from either the shortening or the increasing distance between the signs Each increase or decrease in energy transfer from the donor label to the acceptor label is measured. Defined,   The donor is a luminescent lanthanide chelate with a long excited state lifetime; do it   The luminescent or non-luminescent label of the receptor may be such that the second group is suitable Provide large surfaces that can be bound or bound by covalent or non-covalent bonds. It is also characterized by being attached to a solid carrier Luminescence energy transfer assay.   5. That the luminescent or non-luminescent labeled molecule is in a solid support. The assay according to claim 4, characterized in that:   6. A table wherein the solid support is covalently bonded to the second group and to a plurality of receptor molecules. The assay according to claim 4, which is a surface activated microbead.   7. The surface is made of an adhesive polymer such as polylysine, agglutinin, lectin Is made by coating microbeads with an antibody. The macromolecule is conjugated to the receptor molecule either before or after the 5. The assay according to claim 4, wherein the assay is performed.   8. A first group labeled with an energy donor and a first group labeled with an energy acceptor; A luminescence energy transfer assay comprising:   The receptor may be a short excited state lifetime luminescent or non-luminescent label. One of   The provision resulting from each of the shortening or increasing of the distance between the signs Each increase or decrease in energy transfer from the body label to the receptor label is measured. And   The donor is a luminescent lanthanide chelate; and   The receptor is a lipophilic compound immobilized on a cell membrane or cell membrane fragment Or the receptor is conjugated to a long chain hydrocarbon, for example, a fatty acid. Luminescence energy transfer characteristic of being made lipophilic by Surname.   9. The luminescent lanthanide chelate has a long excited state lifetime and has the following features: sex:   High luminescence yield,   -1 ms or more excited state lifetime, and   Having one or more of the radiation distributions optimized for energy transfer The assay according to any one of claims 2 to 8, wherein the assay is performed.   Ten. Wherein said assay is based on a bioaffinity binding reaction. The assay according to any one of claims 1 or 3 to 9.   11． The method of claim 1, wherein the assay is based on an enzyme-catalyzed reaction. Assay according to any of the above.   12． 12. The assay according to claim 11, wherein said reaction is a cleavage reaction.   13. The lanthanide of the donor chelate is europium, terbium or samarium; An assay according to any of the preceding claims, characterized in that it is lium.   14. If the energy transfer is no energy transfer, the Certain devices that avoid crosstalk or donor radiation into channels used for It is characterized by being written by a time-resolved fluorometer using settings 14. The assay according to claim 13, wherein   15． The counting time window of the device determines the length of the excitation pulse of the receptor without energy transfer. Optimized for assays to have a long lag time compared to radiance and lifetime And the counting time window is provided in assays measuring reduced distances. 15. The assay of claim 14, wherein the assay is shorter than body decay.   16． The receptor molecule is a suitable second affinity reaction, such as an anti-receptor -Using antibodies, biotinylated binding reagents and receptor-labeled avidin, lectin, etc. Any of the preceding claims characterized in that it is brought close to the specific binding reaction. Assay described.   17． 10. The method according to claim 1, wherein the receptor is a spin label. Assay according to any one of 16 above.   18． A first group labeled with an energy donor and a first group labeled with an energy acceptor; A luminescence energy transfer assay comprising:   The receptor may be a short excited state lifetime luminescent or non-luminescent label. One of   The provision resulting from each of the shortening or increasing of the distance between the signs Each increase or decrease in energy transfer from the body label to the receptor label is measured. And   The donor is a luminescent lanthanide chelate and the energy transfer is measured The device used to perform the excitation, energy transfer or Monitor for any unavoidable interference that might be radiating and multiplex Parameters such as absorbance at the wavelength of the excitation or emission, Simultaneous or continuous tracking of luminescence, scatter and fluorescence decay times A luminescence energy transfer assay, comprising:   19. The device simultaneously tracks the absorbance of the diluted sample in the assay mixture. Trace and correct emission readings according to excitation or emission due to sample absorption Automatically compensates for any attenuation of the excitation that the sample may cause. 19. The assay according to claim 18, wherein the assay is performed.   20. The measured receptor signal is compared to a zero calibrator Is also standardized by recording the donor emission, where the acceptor luminescence Characterized by the fact that the signal drop without a concomitant increase in the signal is recorded and corrected 19. The assay according to claim 18.   twenty one. The decay time of the donor or acceptor is recorded and used as a measurement parameter. 19. The assay according to claim 18, wherein the assay is performed.   twenty two. The decay time of the donor or acceptor may be used to correct for sample interference. 19. The assay according to claim 18, wherein:   twenty three. A suitable combination of measurements according to claim 19, 20, 21 or 22. 19. The assay according to claim 18, wherein
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