JP2000507225A - mab 3E10 ならびにその突然変異体および/または機能性フラグメントを使用する送達システム - Google Patents

mab 3E10 ならびにその突然変異体および/または機能性フラグメントを使用する送達システム

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Abstract

(57)【要約】 本発明によれば,あるクラスの抗-dsDNA抗体,たとえばmAb 3E10が固定されたヒト腎尿細管細胞の膜に結合し,インビボにおいて生体マウス腎尿細管細胞を透過し,細胞の核に局在することが発見された.mAb 3E10はdsDNAおよび丈の高い内皮細胞に発現された細胞外マトリックスタンパク質(すなわちHP8/HEVIN)の両者に結合する.以前の研究では,両者がmAb 3E10の可変重鎖領域に,DNAおよびHP8/HEVINに対する別個の結合決定基を共有することが示された.細胞の透過におけるHP8/HEVINおよびDNAの必要性を独立に評価するために,mAb 3E10 VHおよびVkの部位特異的突然変異体について腎細胞系の透過能を検討した.結果は,DNAの結合に要求されるがHP8/HEVINの結合には要求されない残基が抗体の透過に必要であることを示し,細胞の透過にはDNAの存在またはDNAに正確に類似する膜決定基に対する抗体の結合を要求することが指示された.抗体Fabが細胞を透過し,Fcまたは多価抗体の結合のいずれも細胞の透過に必要ではないことが指示された.重鎖および軽鎖シグナルペプチドの欠失の結果として細胞質内で合成された抗体は核に移動しないことから,膜によって仲介される経路または抗体の翻訳後修飾の必要性が指示された.本発明は,自己抗体の透過および核局在の細胞性経路の研究における分子突然変異体および/またはその機能性フラグメントの使用の有用性を証明する.

Description

【発明の詳細な説明】 mab 3E10ならびに その突然変異体および/または機能性フラグメントを使用する送達システム 発明の分野 本発明は,生物学的活性材料を細胞中に送達する方法およびそのために有用な 組成物に関する. 発明の背景 二重鎖テオキシリボース核酸(dsDNA)に対する自己抗体は全身性エリテマ トーデス(SLE)に比較的特異的であり,この疾患の病因に関連づけられてい る.ある種の抗-DNA自己抗体は細胞に透過し,細胞の核に局在することが明 らかにされている.抗-DNA自己抗体による細胞の透過は最初末梢血T-リンパ 球において証明され(たとえば,Okudairaら,Arthritis Rheum30:669,1987 およびAlarcon-Segoviaら,Clin.Exp.Immunol35:364,1977参照),ついでそ れらの機能に影響することが示された(たとえばOkudairaら,前出,Alarcon -Segoviaら,J.Immunol122:1855,1979,Alarcon-Segoviaら,Clin.Immunol.Immunopath23:22,1982,Alarcon-Segovia & Llorente,Clin.Exp.Immunol.52 :365,1963およびAlarcon-Segoviaら,Clinics in Immunology and Allergy 1 :117,1981参照). 一部の研究では,抗体の透過はFc受容体により仲介されると考えられていた (たとえばLlerenaら,Immunology 43:249,1081およびAlarcon-Segoviaら,Nature 271:67,1978参照).他の抗-DNA抗体では,細胞透過および細胞核へ の移動にDNAの存在を要すると考えられた(たとえばOkudairaら,前出).さ らに最近になって,抗-DNA抗体の透過が糸球体間質細胞において証明された (Vlahakosら,T.Am.Soc.Nephrol2(8):1345,1992).抗-DNA抗体は培養糸 球体間質細胞および肝癌細胞の核に時間および温度依存性様式で侵入することが 示されている(Yanaseら,Lab.Invest71:52,1994). 抗-DNA抗体が細胞を透過すると考えられる機構には多重な機構がある.実 際,抗体によって様々な経路を使用することができる.一部の抗-DNA抗体は DNAと交差反応性の膜タンパク質に結合することが明らかにされていることか ら,これらのタンパク質が細胞の透過に役立っている可能性がある(たとえば, Brentjens & Andres,Kidhey kidney International 35:954,1989,Razら,J. Immunol142:3076,1989,Madaioら,J.Immunol138:2883,1987,Faaberら,J.Clin.Invest77:1824,1986,Ben-Chetritら,Clin.Exp.Immunol60:159, 1985,Jacobら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 81:3843,1984,Jacobら,Proc.Natl. Acad.Sci .USA 86:4669,1989,Razら,Eur.J.Immunol23:383.383,1993およ びJacobら,J.Clin.Invest75:315,1985参照).他の場合には,通常細胞内タ ンバク質と考えられているDNA結合タンパク質が一部の細胞の膜と会合すると 報告されている(たとえばBennettら,J.Clin.Invest76:2182,1985 およびRefeneiderら,Clin.Immunol.Immunopath63:245,1992参照).抗-DN A抗体はこれらのタンパク質とそれらのDNAに対する相互結合性によって複合 体を形成することができるものと思われる. さらに他の背景情報については,米国特許第4,812,397号および"DNA Mimics a Self-Protein That May Be a Target for Some Anrti−DNA Antibodies in Systemic Lupus Erythematosus",Journal of Immunology,1987-1994頁(1995 年2月15日)を参照されたい.これらの内容はそれぞれ引用によりそれらの全体 が本明細書に導入される. 細胞を透過できる抗体の利用性の点からみて,生物学的材料の意図的な操作の ためにはこのような細胞透過性を選択的に利用することが望ましい. 発明の簡単な説明 本発明によれば,本発明者らは,インビボにおいて腎尿細管細胞を透過して細 胞の核に局在する抗-dsDNA自己抗体(すなわち,ループス腎炎を有するMRL/m pj/lprマウスから得られたmAb 3E10)を同定した.DNAへの結合に加えて, mAb 3E10は,HP8,すなわち丈の高い内皮細胞性小静脈に見出された細胞外 マトリックスタンパク質HEVINと同一の新たに認識されたタンパク質に結合 することを発見した(Girard & Springer,Immunity 2:113,1994参照).mAb 3E10の可変重鎖(VH)領域の突然変異誘発試験により,DNAとHP8は一部 の抗体結合部位をともに有するが,しかしながら,他の結合部位は分離し ていて,DNAとHP8では別個であることが明らかにされた.mAb 3E10の異 なる突然変異体がDNAとHP8を区別して認識することから,これらの突然変 異体はいずれの結合特異性がmAb 3E10の細胞透過性および核局在性に関連する のかを決定するために利用することができる.mAb 3E10の細胞透過性および核 局在性に対する細胞質タンパク質の役割における抗体の定常フラグメント(Fc )の要求を評価するために,さらに分子構築体が製造された. 発明の詳細な説明 本発明によれば,生物学的に活性な化合物を標的細胞に輸送するための方法が 提供される.本発明の方法は,生物学的に活性な化合物をmAb 3E10もしくは突 然変異体またはそれらの機能性フラグメントと組合せ,得られた組合せを上記細 胞に投与することからなる. 本発明の他の実施態様によれば,上記方法は生物学的に活性な化合物を標的細 胞に輸送する方法において,生物学的に活性な化合物を,上記細胞への輸送をエ ネルギー非依存性様式で促進し,抗-RNPではない非病原性モノクローナル抗 体と組合せ,得られた組合せを上記細胞に投与することからなる. 本発明の実施に有用なモノクローナル抗体(mAb)たとえば細胞への輸送をエ ネルギー非依存性様式で促進し,抗-RNP抗体ではない非病原性モノクローナ ル抗体は,インビボにおいて腎尿細管細胞を,また一次培養ニューロンを透過す ることができる.透過すると,本発明のmAb(たとえば3E10ならびにそれらの 突然変異体および/または機能性フラグメント)は細胞の核に局在する. 本発明によれば,広範囲の生物学的に重要な化合物を,標的細胞たとえば腎臓 細胞,脳細胞,卵巣細胞.骨細胞等に輸送するために利用できるモノクローナル 抗体(たとえば,mAb 3E10ならびにそれらの突然変異体および/または機能性 フラグメント)のクラスの存在が見出された.本発明の抗体(たとえば,mAb 3 E10ならびにそれらの突然変異体および/または機能性フラグメント)は興味あ る生物学的化合物に接合して,細胞への輸送が可能な抗体接合体を形成させるこ とができる.細胞に侵入すると,抗体接合体は細胞の核内およびその周辺に局在 する.本発明の抗体接合体は,抗体または他の標的化ビヒクルが興味ある生物学 的化合物に接合された他の接合送達システムと同じ様式で,インビボまたはイ ンビトロ環境における所望の細胞への送達を達成するために使用できる. 本発明の抗体(たとえば,mAb 3E10ならびにそれらの突然変異体および/ま たは機能性フラグメント)は,広範囲の生物学的に活性な材料,たとえば核転写 因子,酵素,酵素阻害剤,遺伝子等を,様々な治療効果を期待して細胞の核に輸 送するために利用できる.無機および有機化合物,医薬,薬物,ペプチド,タン パク質,遺伝子材料等を含む薬理学的に活性な化合物を,それらの送達のために 本発明の抗体(たとえば,mAb 3E10ならびにそれらの突然変異体および/また は機能性フラグメント)に接合させることができる. 天然に存在する抗体は一般に,2個の軽鎖と2個の重鎖を含有するテトラマー である.実験的に抗体は蛋白分解酵素のパパインで切断することが可能で,それ ぞれの重鎖の切断を生じ,3個の分離したサブユニットが生成する.軽鎖および 軽鎖と質量のほぼ等しい重鎖のフラグメントから構成される2個のユニットは, Fabフラグメント(すなわち「抗原結合」フラグメント)と呼ばれる.第三のユ ニットは重鎖の2個の等しいセグメントから構成され,Fcフラグメントと呼ば れる.Fcフラグメントは通常,抗原-抗体結合には関与しないが,抗原の本体 の除去を包含する以後の過程に重要である. 本明細書で用いられるmAb 3E10の突然変異体の語には,mAb 3E10と同一の 細胞透過特性を維持する3E10の変異体ならびに突然変異によりその有用性が改 善された(たとえば,特異的な細胞種を標的化する能力の改善,細胞膜の透過能 の改善,細胞性DNAに局在する能力の改善等)変異体を包含する.このような 突然変異体には,抗体の重鎖,軽鎖および/または定常領域(単数または複数) に1個または2個以上の保存的置換が導入された変異体が包含される. 本明細書で用いられるmAb 3E10の機能性フラグメントの語は,mAb 3E10と 同一の細胞透過特性を維持する3E10の部分を包含する.このような機能性フラ グメントには少なくともmAb 3E10の抗原結合部位を含有するフラグメントが包 含される. 本技術分野の熟練者には既に自明のように,改変された抗体[たとえば,キメ ラ,人化,CDR-接木.二官能性,抗体ポリペプチドダイマー(すなわち抗体 の2つのポリペプチド鎖成分の会合,たとえば重鎖および軽鎖,またはVL,VH , CLおよびCH1抗体ドメインからなるFabフラグメント,またはVLドメインおよ びVHドメインからなるFvフラグメント)からなる抗体の1つのアーム],単一 鎖抗体[たとえば,リンカーによってVドHメインに連結されたVLドメインから なるScFv(すなわち,単一鎖Fv)フラグメントもまた本技術分野においてよ く知られた方法により製造することができる.このような抗体はまたたとえば, Sambrookら,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,2版(Cold Spring Har bor Laboratory,1989;引用によって本明細書に導入される)およびHarlow &L ane,Antibodies:A Laboratory Manual(Cold Spring Harbor Laboratory,1988 ;引用により本明細書に導入される)に記載されているハイブリドーマ法,化学 的合成法,または組換え法によって製造することができる.抗-ペプチドおよび 抗-融合タンパク質抗体の両者が使用できる(たとえば,Bahouthら,Trends Pha rmacol.Sci .12:338,1991;Ausubelら,Current Protocols in Molecular Biology ,John Wiley and Sons,NY,1989参照.これらは引用により本明細書に 導入される). 本発明の実施に際して使用が意図される現時点で好ましい突然変異体は,位置 31(3E10-31)におけるアスパラギン酸残基のアスパラギンへの単一の変化を包 含するmAb 3E10VH突然変異体である.この突然変異体の調製およびその細胞透 過能の証明は実施例5に掲げる.この特定のmAb 3E10突然変異体は生物学的化 合物を腎臓および脳細胞に送達させるのにとくに適している.他の3E10突然変 異体および/またはそれらの機能性フラグメントは生物学的化合物の標的化を提 供するために使用される.広範囲の突然変異体および/またはそれらの機能性フ ラグメントが,送達のために選択された生物学的物質に接合させたのち,mAb 3 E10および3E10-31と実質的に同一の細胞透過特性を発揮することが可能である . mAb 3E10重鎖または軽鎖は,様々な生物学的活性材料,たとえば,核転写因 子,酵素,酵素阻害剤等との融合タンパク質として製造することが可能で,それ により上述のタンパク質の,標的細胞の細胞核への輸送が可能になる.さらにm Ab 3E10はDNAに結合する他のタンパク質(たとえばポリL-リジンのような )との融合タンパク質の形態で製造することができる.mAb 3E10とポリL- リジンの融合タンパク質はDNA(たとえば興味ある遺伝子を含有するプラスミ ド)と結合し,そのDNAを標的細胞の核に輸送する. 融合タンパク質は,抗体の重鎖または軽鎖のいずれかのアミノまたはカルボキ シ末端に興味あるタンパク質が配置されるように設計される.mAb 3E10の抗原 結合フラグメント(Fab)は細胞に侵入して核に局在することが示されているの で,重鎖の全体が必要ではない.したがって,可能な相対的配置には,結合する タンパク質の機能的統合性を維持するために必要に応じてスペーサー配列を用い てまたは用いないで,重鎖および軽鎖の切断部分の使用が包含される. 上述の融合タンパク質を製造するための別法として,普遍的な担体システムを 創案することができる.たとえば,様々なタンパク質またはDNAを共通の担体 たとえばプロテインA,ポリL-リジン,hex-ヒスチジン等に接合させることが できる.接合した担体で,ついで本発明の抗体との複合体を形成させることにな る.担体分子の免疫グロブリンの結合に関与する小部分を担体として使用するこ とができる.抗体の重鎖または軽鎖中に操作されるタンパク質と相互作用する担 体の設計には,他の類似の相対的配置が包含される. 本発明による抗体接合体の患者または動物への投与に選択される送達様式は, 大部分,その接合体中に存在する特定の生物学的化合物および標的細胞に依存す る.一般的には,生物学的化合物の単独を投与するために用いられるのと同一の 投与量および投与経路が,抗体接合体についてもその出発点として用いられる. しかしながら,最初は,生物学的化合物の細胞透過性の増大が期待されることか ら,小用量を使用するのが好ましい.与えられた投与経路での現実の最終投与量 はルーチンの実験により容易に決定される.一般的に,抗体ベースの他の標的化 接合体に以前に用いられたのと同一の操作およびプロトコール(たとえば,静脈 内,気管内等)がまた,本発明の抗体接合体に適している. 多くの抗-DNA抗体が数種の細胞に侵入し,細胞の核に局在することができ る.最近の研究では,細胞の透過には抗体とDNAの複合体が要求されることを 指示している.MAb 3E10は組織培養において,多くの異なる細胞種に透過でき る.これに反して,mAb 3E10では,インビボで結合し透過できる細胞に制限が あり,この場合,その透過を促進する遊離のDNAは存在しない.インビボ におけるmAb 3E10の腎臓細胞への透過は,ある種の細胞が細胞を透過し,細胞 の核に局在する機構とは異なる機構によって起こるものと思われる.腎臓細胞お よび脳細胞を透過するmAb 3E10の使用にはDNAまたは抗体Fc結合の存在を 要求する他の抗-DNA抗体とは共通しない機構が関与する. 多くの異なる自己抗体がRNP(たとえばAlarcon-Segoviaら,前出,1978; Maら,Clin.Exp.Immunol.93:396,1993,Galoppinら,J.Invest.Dermatol76: 264,1981参照),RNA(たとえば,Varesioら,Cancer Res35:3558,1975 参照),Ro(たとえば,Leeら,Arthritis Rheum29:782,1986参照),プロ テイナーゼ3(たとえばCsernokら,Adv.Exp.Med.Biol336:45,1993参照). リボソームタンパク質P(たとえばReichlinら,J.Clin.Invest93:443,1994 ならびにKorenら,J.Immunol154:4857,1995参照),リンパ球(たとえば, Okudairaら,J.Clin.Invest69:1026,1982参照),シナプトソーム(たとえば ,Fabianら,Neurology 38:1775,1988参照)およびニューロン(たとえば, Dalmauら,Neurology 41:1757,1991およびHormigo & Lieberman,J.Neuroimmun ol55:205,1994参照)に対する抗体を含め細胞を透過することが示され,その 一部は細胞の核に局在することが示されている.リボソームタンパク質Pはブタ 腎臓細胞を透過し,核に局在し,細胞傷害を誘発する(たとえば,Reichlinら, 前出およびKorenら,前出)が,DNAの存在を要しないことが明らかにされて いる. 遊離DNAの要求および細胞性透過に対するFc結合の役割は抗体によって異 なるように思われるが,検討した抗体は,抗原の結合に他とは異なる特異性を有 し,異なる細胞種を標的とするように思われる.したがって,細胞の透過および 核局在には多重の機構が働いている可能性がある.mAb 3E10の細胞の透過およ び核局在の機構を決定するための予備的研究では,DNアーゼ処理およびFc遮 断実験の再現が困難であったことから,これらの操作には複雑性と人為結果の可 能性が指示される.したがって,抗原緋合特異性と細胞透過性の間の関係が決定 的に確立されたmAb 3E10可変重鎖(VH)領域および可変軽鎖(「可変性κ」 についてのVk)の突然変異体を製造することを決定した.Fc結合のための要 求および細胞透過性のための多価結合は,酵素消化によって調製されたFab 中に存在する非消化抗体およびFcフラグメントの夾雑が全くない分子Fabを製 造することによって近似させた. モノクローナル抗体3E10は最近,新たに同定された細胞外マトリックスタン パク質,HP8/HEVINと交差反応することが明らかにされた(たとえば,Za ckら,Journal of Immunology 154:1987-1994,1995年2月15日参照).しかしな がら,本研究では,HP8/HEVINはCOS-7または3T3細胞へのmAb 3E10 の透過には関与しないことが指示される.実際,mAb 3E10による細胞の透過は ,DNA結合と相関するが,Fc結合とは独立であることが最終的に明らかにさ れた.しかも多価結合は必要ではない.これらの結果はmAb 3E10の細胞透過は 抗体およびDNAを含有する複合体の形成を介して起こることを示唆するが,m Ab 3E10がDNAに正確に類似する膜決定基に結合する可能性も排除できない .さらに検討した細胞系は他の(ただしすべてではない)抗-DNA自己抗体に よっても透過され,mAb 3E10のインビボにおける腎尿細管細胞に対する結合特 異性およびインターナリゼーションを反映しない透過のDNA依存性機構が示唆 される. 抗-DNA抗体による細胞透過に加えて,抗ニューロン抗体がニューロンを透 過することが示され,細胞内標的への結合が疾患の病因の機構として提案されて いる(たとえば,Fabianら,Neurology 40:419,1990参照).さらに非免疫グロ ブリンタンパク質がニューロンを透過し,核に移動することが示されている.シ ョウジョウバエタンパク質,アンテナペディアのホモドメインに相当する60アミ ノ酸ポリペプチドは最近,神経細胞を透過し,細胞核に移動し,DNAに結合し ,神経形態発生を調節することが示された(たとえば,Joliotら,Proc.Natl.Ac ad.Sci.USA 88:1864,1991;La Rouxら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90:9120, 1993;Bloch-Gallegoら,The Journal of Cell Biology 120:485,1993および Derossiら,J.Biol.Chem269:10444,1994参照).無傷のペプチドの回収は標 的化がライソソーム小胞へではないことを示唆する.アンテナペディアのホモド メインペブチドとmAb 3E10 VHまたはVkの間の配列ホモロジーは明らかで はない. 抗-DNA抗体の核への輸送の機構は未だ不明であるが,抗-DNA抗体は,核 転写因子および他のタンパク質に関連する核輸送シグナルに類似するアルギニン に富む配列の結果として,細胞の核に輸送されることが示唆されている(たとえ ば,Hanover,The FASEB Journal 6:2288,1992参照).mAb 3E10 VHおよび Vkのアミノ酸配列は既知核輸送シグナルに類似する線状配列を示さないが,こ れらのシグナルはきわめて多様で,容易に認識されない.ある種の抗-DNA抗 体によってのみ共有され,FR1およびFR3中の保存されたアミノ酸配列から 構成されるmAb 3E10 VHの新規な結合ドメインが報告されている(たとえば ,Zackら,Immunology and Cellular Biology 72:513,1994参照).これらの領 域はそれらの三次元構造の近似性により核輸送シグナルを形成できる多くのアル ギニンおよびリジン残基を有する.したがって,mAb 3E10は核輸送シグナルと して働くことができる可能性のある数種の決定基を有する.これらが,ある種の 核局在配列の機能性受容体として作用し,核膜を横切る輸送を助ける他のタンパ ク質(たとえば,最近報告されたhSRP1α)に結合する可能性がある(たと えば,Weisら,Science 268:1049,1995参照).また,ある場合には,炭水化物 が核への輸送のシグナルとしても用いられる(たとえば,Duvergerら,Exp.Cell Res207:197,1993参照).重鎖または軽鎖の可変領域のグリコシル化が核輸 送シグナルとして働く可能性がある. mAb 3E10の核への輸送の機構を評価するために,シグナルペプチド配列を欠 く重鎖および軽鎖cDNAをCOS-7細胞にトランスフェクトした.操作された 抗体は細胞質中で発現し,細胞の核は移動した(たとえばBioccaら,EMBO9(1):1 01,1990参照).これに反し,mAb 3E10は細胞質から核へ移動しなかった.し たがって,一次配列単独では抗体の核への輸送を誘発しないかまたは核への輸送 は細胞膜への結合によって開始される経路を利用しないかのいずれかである.い ずれの場合も,mAb 3E10の核における局在の機構は,細胞質タンパク質たとえ ば核転写因子に使用される機構とは異なっている.mAb 3E10は抗体を産生し分 泌するCOS-7細胞の核にはみいだされなかったことから,抗体の分泌および核 の輸送経路も別個のものであるに違いない. 本発明は生物活性化合物の細胞への導入のための特異的抗体の有用性ならびに 自己抗体透過および核の局在の細胞性経路の研究におけるこのような自己抗体の 分子突然変異体および/または機能性フラグメントの製造の有用性を証明する. 抗体の細胞透過および核局在の機構および経路を解明する研究は,このような種 の健康および疾患における役割の更なる理解を助け,このような材料の様々な治 療的適用への使用を可能にするものである. 次に,本発明を以下の非限定的実施例を参照しながらさらに詳細に説明する. 実施例1 モノクローナル抗体 mAb 3E10,5C6,および4H2は,MRL-mpj/lprマウスの脾臓細胞を,FOX-NY 細胞系からの細胞と既報のように(Weisbartら,J.Immunol.144:2653,1990参 照)融合させて産生されたIgG2a抗-dsDNA抗体である.DNAに結合しない マウスIgG2a抗体,mAb PP102(Chemicon International,Temucula,CA)を 非抗-DNA抗体アイソタイプにマッチした対照として用いた. 実施例2 モノクローナル抗-DNA抗体の インビトロにおけるヒト臓器の組織への結合 モノクローナル抗体はプロテインA-Sepharoseを用いてアフィニティークロマ トグラフィーにより腹水から精製し,腎臓への結合について試験した.mAb 3E 10については,血管,神経幹,肝臓,結合組織,肺臓,膵臓,消化管,心筋,横 紋筋,脾臓,卵巣,睾丸,甲状腺,皮膚,眼,副腎,脳,下垂体,および骨を含 む19の他のヒト臓器からの組織への結合能も試験した.モノクローナル抗体の結 合は,既報(Taylor & Lote,Immunomicroscopy:A diagnostic tool for the su rgical pathologist .Saunders,W.B.,Philadelphia,1994)のようにペルオキ シダーゼ接合アフィニティー精製したマウスIgGに特異的なウサギ抗体で検出し た. m Ab 3E10はインビトロでヒト腎尿細管細胞に結合する 3種の抗-dsDNA抗体,すなわちmAb 3E10,5C6,および4H2について固 定正常ヒト腎臓からの組織への結合をインビトロで検討した.すべての抗体が細 胞の核に結合し,それら抗-DNA反応性と一致した.すなわち,mAb 3E10と インキュベートした腎尿細管細胞の低倍率では腎尿細管細胞膜および核との反 応性が見られる.さらに高い倍率では,腎尿細管細胞の膜へのmAb3E10の線状 結合が強調される.mAb 3E10のみが腎尿細管細胞の細胞表面に結合することか 観察される. 細胞表面への結合は細胞膜への結合と一致するように見えた.mAb 3E10は試 験した5例の正常ヒト腎臓中5例で尿細管細胞に結合したが,染色の強度にはあ る程度の変動が認められた.他の抗-DNA抗体,mAb 5C6を正常ヒト腎尿細管 とインキュベートした結果は核への結合を示すが,尿細管細胞膜への結合は認め られなかった.mAb 5C6の抗-DNA反応性は核染色により証明される.しかし ながら,mAb 3E10とは異なり,mAb 5C6は腎尿細管膜には結合しなかった. 同様に,mAb 4H2は腎尿細管膜には結合しなかった.モノクローナル抗-dsD NA抗体のいずれにも腎糸球体における抗原への結合は観察されなかった. mAb 3E10の腎尿細管への結合の特異性は,他のヒト臓器からの組織に対する その結合を試験することによって評価した.mAb 3E10は.血管.神経幹,肝臓 ,結合組織,肺臓,膵臓,消化管,心筋,横紋筋,脾臓,睾丸,甲状腺,皮膚, 眼,副腎,下垂体および骨を含む19の多くの他の臓器からの組織における膜また は細胞質抗原には結合しなかった.しかしながら,卵巣および脳への結合の結果 は確定しなかった. 実施例3 モノクローナル抗-DNA抗体の インビボにおける正常BALB/cマウスの組織への結合 正常BALB/cマウスをプリスタンによって感作し,2×107ハイブリドーマ 細胞を腹腔内に注射した.2週後,動物には抗-dsDNA反応性を有する抗体を 含む腹水が発生した.心臓,肝臓および腎臓組織を採取し.組織の組織学的検討 まで液体窒素中に保存した.抗-DNA抗体の組織への結合は,既報(Taylor & Lote,Immunomicroscopy:A diagnostic tool for the surgical pathologist. Saunders,W.B.,Philadelphia,1994)のようにペルオキシダーゼ接合アフィニ ティー精製したマウスIgGに特異的なウサギ抗体で検出した. m Ab 3E10はインビボでマウス腎尿細管細胞に結合する すなわち,mAb 3E10がインビボでマウス腎尿細管細胞と反応するかどうかを 決定するために,正常BALB/cマウスに3E10細胞を腹腔内注射して2週後, 高濃度のmAb 3E10を含む腹水が確立したマウスからの腎臓を試験した.mAb 3 E10は肝臓,心筋または腎糸球体の膜,細胞質または核のいずれにも局在しなか った.しかしながら,腎尿細管細胞の検査では核の染色を示し,インビボにおい てmAb 3E10が腎尿細管細胞に選択的にインターナライズされ,核に輸送される ことが指示された.3E10からの腹水を有するBALB/cマウス3例中3例でも ,同じ結果が観察された.インビトロでmAb 3E10とインキュベートした屠殺, 固定組織切片で核を抗体に暴露した場合とは異なり,BALB/cマウスの生体 の無傷の腎臓では,抗体が細胞膜に結合して細胞内に侵入しないと細胞内に抗体 を含有することは期待できない.mAb 3E10が生体の腎尿細管細胞を透過した事 実からみて,固定された死細胞で認められた細胞表面の染色は細胞膜への結合に よるものと考えられる. 3E10腹水を有するBALB/cマウスからの腎尿細管細胞をヘマトキシリン/ エオシンまたは過ヨード酸シッフ試薬のいずれかで染色した顕微鏡切片で検査し た.有意な異常は認められなかった. 無傷の腎尿細管細胞へのmAb 3E10の選択的な透過はインターナリゼーション が特異的抗体の結合の結果であったことを示唆する.さらに,mAb 3E10は生体 の腎尿細管細胞において核膜を横切って輸送され,核に局在しものと思われる. これに反し,mAb 4H2抗-dsDNA抗体を含む腹水を有するBALB/cマウス 3例中いずれでも肝臓,心筋または腎臓へのmAb 4H2の結合は見られなかった .3回の実験に用いた腹水中には匹敵する量のmAb 3E10(0.8mg/ml)およびm Ab 4H2(1.0mg/ml)が存在した.mAb 4H2と異なり,mAb 3E10は尿細管細 胞に侵入し,細胞の核に結合する. これらの結果はインビボにおいて,mAb 3E10がマウスならびにヒト腎臓にお いて腎尿細管細胞上の膜抗原と反応性を示し,抗-腎臓抗体は腎尿細管細胞に結 合してインターナライズされ,核に輸送されることを示唆する. 実施例4 細胞系 MDCKイヌ腎細胞はMostov博士(California大学,San Francisco,CA)か ら恵与された(Apodacaら,The Journal of Cell Biology 125:67,1994参照) .293ヒト胎児腎細胞,COS-7サル腎細胞,NIH 3T3細胞,HT-29結腸癌 細胞およびLS 174T結腸癌細胞はAmerican Type Culture Collection(ATC C,Rockville,MA)から入手した.細胞は96または48ウエル組織培養プレート においてダルベッコ改良イーグル培地(DMEM,Gibco BRL Life Technologie s,Inc.,Gaithersburg,MD)中,10%ウマ血清(293細胞)または胎児ウシ血清 (残りの細胞系)の存在下,37℃,5%CO2,湿潤雰囲気内で一夜増殖させた . 1日後,すべての培地を吸引し,モノクローナル抗体を含有する新鮮培地で置 換した.予備試験において,細胞への結合を証明するためには精製モノクローナ ル抗体濃度10μg/mlを要することが決定された.これに対し,0.5μg/mlを含む ハイブリドーマ上清(新鮮培地で1:1に希釈)は精製抗体と同様に有効であり, したがって以後の試験は精製抗体(10μg/ml)またはハイブリドーマ上清を用い て実施した. 細胞は抗体と1〜2時間インキュベートし,ハンクス平衡塩溶液およびリン酸 緩衝食塩液(PBS)で3回洗浄した.細胞をついで70%エタノールで10〜20分 間固定し,再びPBSで何回も洗浄した.ついで細胞をIgG2aに特異的に結合 するアルカリホスファターゼ接合ヤギ抗-マウス抗体と1時間インキュベートし た.細胞をPBS中で3回洗浄し,レバミゾール含有発色溶液中ニトロブルーテ トラゾリウム/5-ブロモ-4-クロロ-3-インドールリン酸p-トルイジン塩(NBT /BCIP)によって染色した. m Ab 3E10は組織培養生存腎細胞を透過し核に移動する 数種の細胞系についてmAb 3E10の結合を調べた.ヒト(293細胞),サル( COS-7細胞)およびイヌ(MDCK細胞)からの細胞系はすべて,インキュベ ーションからわずか1時間後に,mAb 3E10をインターナライズし,その抗体を 核に輸送することが観察された.これに反し,mAb 3E10はLS 174TおよびH T-29細胞系からのヒト結腸癌細胞を透過しなかった.さらに,DNA結合反応 性をもたないマッチしたアイソタイブ対照抗体,PP102はいずれの腎 臓細胞系も透過しなかった.抗体の透過および核への局在は,わずか15分後では 認められなかったが.それは30分くらいから観察され始め,60〜90分後に最大に なった. 実施例5 m Ab 3E10 Vkの突然変異誘発 mAb 3E10重鎖および軽鎖cDNAのクローニングは既報(たとえば,Zackら ,1994,前出,およびZackら,J.Immunol154:1987,1995).mAb 3E10 VH およびVkの部位特異的突然変異誘発はEcksteinらの方法によって実施した(オ リゴヌクレオチド−特異的インビトロ突然変異誘発系,Amersham Corp.,Arlingt on,IL).これらの研究に用いたVH31突然変異体は既に報告されている(Zack ら,1995,前出参照).突然変異重鎖および軽鎖cDNAはpSG5発現べクタ ーにライゲートした(Stratagene,La Jolla,CA).形質転換したコンピーテン ト細菌細胞から個々のコロニーを選択し,Wizard DNA精製システム(Promega Corp.,Madison,WI)を用いてプラスミドを調製した.突然変異はジデオキシ ヌクレオチド配列決定によって確認した.mAb 3E10 Vkの突然変異誘発に用 いたオリゴヌクレオチドを以下に掲げる. m Ab 3E10による細胞透過に対するVH突然変異の影響 モノクローナル抗体mAb 3E10重鎖および軽鎖cDNAをCOS-7細胞にトラ ンスフェクトしCOS-7細胞によるmAb 3E10の分泌を証明した(たとえば,Za ckら,Journal of Immunology 154:1987-1994,1995年2月15日参照).mAb 3E 10はCOS-7細胞に侵入できるので,分泌された抗体が培養細胞に再びインター ナライズできるかどうかを決定することに興味がもたれた.小分画のCOS-7細 胞のみが抗体を産生するので,COS-7細胞の上清中の抗体の濃度はわずか30〜 50ng/mlの範囲である.これは以前の実験で抗体のインターナリゼーションの証 明に要する精製抗体の濃度10〜50μg/mlおよびハイブリドーマ上清の500ng/mlに 対し著しく対照的である.期待されたように,ネイティブなmAb 3E10はトラン スフェクション後のCOS-7細胞の約1%の細胞質に検出された.しかしながら ,核への移動の証拠はなく,抗体が分泌された経路は核移動の経路を迂回してい ることが指示されている.さらにCOS-7細胞上清における抗体濃度は隣接細胞 への抗体の再侵入の検出には不十分であった. CDR1の残基31にアスパラギン酸からアスパラギンへの変化を含むmAb 3E 10 VHの突然変異体が以前に調製されている.この突然変異は抗体のDNAへ の結合能を上昇させる(Zackら,1995,前出参照).COS-7細胞をこのネィテ ィブな3E10軽鎖のcDNAおよびVH31突然変異体のcDNAでトランスフェ クトすると,隣接COS-7細胞への侵入および核への局在が容易に観察される抗 体が生じた.突然変異体とネイティブな重鎖cDNAについてトランスフェクシ ョン効率は同じであり,COS-7細胞上清中の突然変異体mAb 3E10の濃度はネ イティブな抗体と同じであった. 結合特異性および細胞透過に対するmAb 3E10 Vkの影響 以前の研究において,新しく認識された細胞外マトリックスタンパク質HP8 のcDNA発現ライブラリー中での同定にmAb 3E10を用いた(Zackら,1995, 前出参照).さらに,DNAおよびHP8はmAb 3E10 VH上に多重結合決定基 を共有することを示した.本研究では,mAb 3E10 Vk軽鎖のCDRにおける 突然変異は,dsDNAおよびHP8の両者,dsDNA単独ならびにHP8単独への 結合を消失させることが観察された(表I).表I 結合特異性および細胞透過に対する m Ab 3E10 VHおよびVk突然変異の影響 これらの結果は,dsDNAとHP8がmAb 3E10 VHの結合決定基のすべてで はないが,一部を共有するとの以前の観察と一致する.3T3細胞もHP8を発現 することがノーザンハイブリダイゼーションによって示された. これらの差をさらに評価するために,dsDNAおよびHP8への抗体の結合と COS-7細胞および3T3細胞への抗体透過の間の関係を検討した.COS-7細胞 および3T3細胞を3E10重鎖31突然変異体に相当するcDNAおよび様々なκ鎖 突然変異体に相当するcDNAでコトランスフェクトした.dsDNAに対する結 合が消失または減弱したmAb 3E10 Vk中に4つの突然変異それぞれを含有す る抗体(表1参照)では,細胞の透過は証明できなかった.これらの突然変異は CDR1中の残基27-Dおよび32ならびにCDR3中の残基92および94を包含す る.2つの突然変異,CDR1における27A-Dの欠失およびCDR3における 残基94の変化はdsDNAおよびHP8両者への抗体の結合を消失させた.CDR 1の残基32およびCDR3の残基92の2つの突然変異はdsDNAとの反応性を消 失させたが,HP8への結合には影響しなかった.残基27Cまたは残基53の突然 変異のようにHP8単独との反応性が除去されても, dsDNAとの結合に必須の決定基が無傷に維持されている限り,突然変異抗体で も,細胞の透過能は維持された.これらの結果は,これらの細胞系のいずれにお いてもHP8は抗体のインターナリゼーションには関与しないことを示唆する.m Ab 3E10による細胞の透過は,抗体-DNA複合体の形成によるか,あるいはm Ab 3E10がDNAに正確に類似する膜決定基に結合することによる可能性が考 えられる. 実施例6 m Ab 3E10重鎖および軽鎖cDNAの分子構成体 リーダー配列のないmAb 3E10重鎖および軽鎖cDNAを,FR1に始まりヌ クレオチド配列ATGを付加したセンスプライマーを用いてPCRにより増幅し た.用いたプライマーは, 重鎖センスプライマー: 重鎖アンチセンスプライマー: 軽鎖センスプライマー: 軽鎖アンチセンスプライマー: であった. mAb 3E10のFabの調製にはCH1から停止コドンに終結する重鎖リーダー配 列を含む重鎖構成体をPCRで増幅した.用いたプライマーは, 重鎖センスプライマー: 重鎖アンチセンスプライマー: であった. PCRに用いた条件は95℃で変性1分間,55℃でアニーリング1分間,および 72℃で伸長1.5分間38サイクル,各サイクルあたり2秒の付加的伸長とした. シグナルペプチドを欠くmAb 3E10の局在 mAb 3E10が細胞質タンパク質との結合の結果として核に輸送されるか否かを 決定するために,mAb 3E10を,小胞体への局在ついで細胞からの分泌を防止す るためにシグナルペプチドなしでCOS-7細胞に発現させた.mAb 3E10の産生 およびその細胞質への局在はマウスκ鎖に対する抗体を用いる組織学的染色によ って証明した.ELISAで測定し,COS-7上清における抗体の不存在は抗体 分泌を生じないことを示した.mAb 3E10は細胞質内に局在したが,核には移動 しなかった.偽トランスフェクトしたCOS-7細胞を対照とし,マウスκ鎖に対 する抗体を用いて同様に染色した. m Ab 3E10 Fabによる細胞透過 細胞透過における抗体Fcならびに多価抗体結合の必要性を検討するために,m Ab 3E10 Fabの細胞透過を検討した.リーダー配列を包含するmAb 3E10重鎖 cDNA,VHおよびCH1をmAb 3E10 VH31突然変異体のcDNAから, PCRによって増幅した.増幅フラグメントをpSG5にライゲートし,mAb 3 E10軽鎖のcDNAとともにCOS-7細胞にコトランスフェクトした.COS-7 細胞にによる抗体Fabの分泌を,マウスγ鎖(CH1)に対するヤギ抗体でコー トしたプレートを用い,マウスκ鎖に対するヤギ抗体により検出する捕獲ELI SAによって確認した.Fabは隣接細胞中に再びインターナライズされ,核に局 在することが,マウスγ鎖に対する抗体による検出で見出された.偽トランスフ ェクトしたCOS-7細胞を対照とし,マウスγ鎖に対する抗体を用いて同様に染 色した.これらの結果から,mAb 3E10による細胞透過におけるFcおよび多価 抗体結合の必要性は除外される. 実施例7 抗体の発現 重鎖および軽鎖遺伝子挿入体を含有する精製pGS5プラスミドをCOS-7哺 乳動物細胞で発現させた.重鎖cDNAおよび軽鎖cDNAを含有するプラスミ ドDNAそれぞれ2μgを,DEAE-デキストランを用い,DMEMならびに1 0%胎児ウシ血清中で増殖させた105COS-7細胞にトランスフェクトした. 3日間培養したのち,上清を収穫し,軽鎖および重鎖の存在についてELISA により試験した.細胞を70%エタノールで1〜2分間固定し,再度PBS中で何 回も洗浄した.細胞をついでIgG2aに特異的に結合するアルカリホスファター ゼ接合ヤギ抗-マウス抗体とインキュベートした.細胞をPBS中で3時間洗浄 し,レバミゾール含有発色溶液中NBT/BCIPで染色した. 以上,本発明をそのある種の好ましい実施態様を参照しながら詳細に説明した が,記載し請求された本発明の精神および範囲内において修飾および改変が可能 であることを理解すべきである.
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Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.生物学的に活性な化合物を標的細胞に輸送する方法において上記生物学的 に活性な化合物をmAb 3E10もしくは突然変異体またはそれらの機能性フラグメ ントと組合せ,得られた組合せを上記細胞に投与することからなる方法. 2.生物学的に活性な化合物は核転写因子,酵素,酵素阻害剤,遺伝子材料, 無機および有機化合物,医薬,薬物,ペプチドまたはタンパク質である「請求項 1」記載の方法. 3.標的細胞は腎臓細胞,脳細胞,卵巣細胞または骨細胞である「請求項1」 記載の方法. 4.mAb 3E10またはその突然変異体はmAb 3E10またはmAb 3E10-31であ る「請求項1」記載の方法. 5.生物学的に活性な化合物およびmAb 3E10もしくは突然変異体またはそれ らの機能性フラグメントはペプチド結合により共有結合で連結させる「請求項1 」記載の方法. 6.生物学的に活性な化合物およびmAb 3E10もしくは突然変異体またはそれ らの機能性フラグメントはそれらの普遍的担体と共投与する「請求項1」記載の 方法. 7.普遍的担体はプロテインA,ポリ-L-リジンまたはhex-ヒスチジンである 「請求項6」記載の方法. 8.生物学的に活性な化合物を標的細胞に輸送する方法において,上記生物学 的に活性な化合物とmAb 3E10もしくは突然変異体またはそれらの機能性フラグ メントの組合せを上記細胞に投与することからなる方法. 9.生物学的に活性な化合物は核転写因子,酵素,酵素阻害剤,遺伝子材料, 無機および有機化合物,医薬,薬物,ペプチドまたはタンパク質である「請求項 8」記載の方法. 10.標的細胞は腎臓細胞,脳細胞,卵巣細胞または骨細胞である「請求項8」 記載の方法. 11.mAb 3E10またはその突然変異体はmAb 3E10またはmAb 3E10-31 である「請求項8」記載の方法. 12.生物学的に活性な化合物およびmAb 3E10もしくは突然変異体またはそれ らの機能性フラグメントはペプチド結合により共有結合で連結させる「請求項8 」記載の方法. 13.生物学的に活性な化合物およびmAb 3E10もしくは突然変異体またはそれ らの機能性フラグメントはそれらの普遍的担体と共投与する「請求項8」記載の 方法. 14.普遍的担体はプロテインA,ポリ-L-リジンまたはhex-ヒスチジンである 「請求項13」記載の方法. 15.mAb 3E10,その機能性フラグメントまたはその突然変異体を生物学的に 活性な化合物と組合せてなる接合体. 16.生物学的に活性な化合物は核転写因子,酵素,酵素阻害剤,遺伝子材料, 無機および有機化合物,医薬,薬物,ペプチドまたはタンパク質である「請求項 15」記載の接合体. 17.mAb 3E10またはその突然変異体はmAb 3E10またはmAb 3E10-31であ る「請求項15」記載の接合体. 18.生物学的に活性な化合物およびmAb 3E10もしくは突然変異体またはそれ らの機能性フラグメントはペプチド結合により共有結合で連結させる「請求項15 」記載の接合体. 19.mAb 3E10,それらの機能性フラグメントまたは突然変異体,生物学的に 活性な化合物およびそれらの担体からなる複合体. 20.担体はプロテインA,ポリ-L-リジンまたはhex-ヒスチジンである「請求 項19」記載の複合体. 21.生物学的に活性な化合物を標的細胞に輸送する方法において,上記生物学 的に活性な化合物を,エネルギー非依存的様式で上記細胞への輸送を促進し,抗 -RNPではない非病原性のモノクローナル抗体と配合し,得られた組合せを上 記細胞に投与することからなる方法.
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