JP2000350577A - Separation of nucleic acid fragment, pretreatment of nucleic acid sequence and apparatus therefor - Google Patents

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method for separating a nucleic acid fragment by which the nucleic acid fragment synthesized in the presence of a polymerase can be collected with a high efficiency and a mixed nucleotide can be removed. SOLUTION: This method for separating a nucleic acid fragment comprises adding a primer and a nucleotide to an aqueous solution containing a template nucleic acid, then carrying out a chain extending reaction from the primer in the presence of a polymerase and removing the unreacted nucleotide from the synthesized nucleic acid fragment. A phenol reagent 3 is initially fed to a container 1 storing a reactional liquid 2 after completing the chain extending reaction and the phenol reagent 3 and reactional liquid 2 are mixed and stirred. After the stirring, an aqueous phase 5 and a phenol layer 6 are separated to recover the aqueous phase 5 thereof. The synthesized nucleic acid fragment is contained in the aqueous phase 5 and, on the other hand, the unnecessary unreacted nucleotide migrates to an interlayer 7 and is removed. Thereby, only the aqueous phase 5 can be collected to thereby separate the nucleic acid fragment from the unreacted nucleotide.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【０００１】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、合成核酸断片の精
製方法に関し、特に、プライマーにヌクレオチドを付加
させて伸長させて合成された核酸断片から不要な未反応
のヌクレオチドを除去する方法に関する。また、本発明
は、この精製方法を利用した核酸シークエンス前処理方
法並びに装置に関する。TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for purifying a synthetic nucleic acid fragment, and more particularly to a method for removing unnecessary unreacted nucleotides from a synthesized nucleic acid fragment by adding nucleotides to a primer and extending the primer. In addition, the present invention relates to a nucleic acid sequence pretreatment method and apparatus using the purification method.

【０００２】[0002]

【従来の技術】近年、遺伝子等の特性を解析するため
に、その遺伝子の塩基配列を決定することは不可欠にな
ってきている。この遺伝子等の塩基配列を決定する方法
の一つにサンガ（sanger)法（または、ジデオキシ法と
も言われている）がある。2. Description of the Related Art In recent years, it has become essential to determine the base sequence of a gene in order to analyze the characteristics of the gene or the like. One of the methods for determining the nucleotide sequence of this gene or the like is the sanger method (also called the dideoxy method).

【０００３】このサンガ法では、鋳型ＤＮＡと相補する
プライマーとを含む反応液にデオキシリボヌクレオチド
（ｄＮＴＰ；ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴ
Ｐ）を添加したものを４つ準備し、この４つにｄＮＴＰ
とは別にそれぞれ一種類のジデオキシリボヌクレオチド
（ｄｄＮＴＰ）すなわちｄｄＡＴＰ、ｄｄＣＴＰ、ｄｄ
ＧＴＰ又はｄｄＴＴＰを添加して、ポリメラーゼ存在下
で伸長反応を行なわせる。In this Sanga method, deoxyribonucleotides (dNTPs; dATP, dCTP, dGTP, dTT) are added to a reaction solution containing a template DNA and a primer complementary thereto.
4) to which P) was added, and dNTPs were added to these four.
Apart from each one of the dideoxyribonucleotides (ddNTPs), ddATP, ddCTP, dd
GTP or ddTTP is added, and an extension reaction is performed in the presence of a polymerase.

【０００４】この伸長反応では、鋳型ＤＮＡの塩基配列
と相補する塩基がプライマーの３’末端に次々付加され
鎖が伸長するが、この伸長過程でジデオキシリボヌクレ
オチドが付加されると、次の塩基が結合できず鎖伸長が
停止する。従って、このジデオキシリボヌクレオチドが
付加された位置の相違から、各反応液中には鋳型ＤＮＡ
に相補する種々の長さの一本鎖の核酸断片が生成され
る。そして、最終的に各反応液中の各核酸断片を並行に
電気泳動で分画することにより、この分画パターン（シ
ークエンスラダー）から鋳型ＤＮＡの塩基配列が決定さ
れる。In this extension reaction, bases complementary to the base sequence of the template DNA are added one after another to the 3 ′ end of the primer to elongate the chain. When a dideoxyribonucleotide is added in the extension process, the next base is added. Unable to bind, chain elongation stops. Therefore, due to the difference in the position where the dideoxyribonucleotide was added, the template DNA was contained in each reaction solution.
A single-stranded nucleic acid fragment of various lengths complementary to is generated. Then, finally, each nucleic acid fragment in each reaction solution is fractionated by electrophoresis in parallel, whereby the base sequence of the template DNA is determined from this fractionation pattern (sequence ladder).

【０００５】このサンガ法は、操作の簡便さ、解析精度
の高さなどの点から広く用いられ、近年では、このサン
ガ法に基づいたシークエンス決定器などが種々開発され
ている。[0005] The Sanga method is widely used in terms of simplicity of operation and high analysis accuracy. In recent years, various sequence determiners and the like based on the Sanga method have been developed.

【０００６】[0006]

【発明が解決しようとする課題】しかし、上記サンガ法
において、未反応のヌクレオチド（デキオキシヌクレト
チド、ジデオキシリボヌクレオチド）が、最終的な電気
泳動のパターンを読み取る際に障害となる場合があっ
た。特に、この問題は内部標識法やターミネータ標識法
において顕著であった。However, in the above-mentioned Sanga method, unreacted nucleotides (dexoxynucleotides, dideoxyribonucleotides) sometimes hinder the reading of the final electrophoresis pattern. Was. In particular, this problem was remarkable in the internal labeling method and the terminator labeling method.

【０００７】すなわち、サンガ法において、最終的に電
気泳動を行い、その電気泳動パターンを読み取るために
は、各断片を視覚化する必要がある。この視覚化を行う
ために断片の標識が行われる。この断片の標識法には、
大きく分けて内部標識法とターミネータ標識法とプライ
マー標識法という３つの方法がある。プライマー標識法
では、シークエンス用断片を合成する際に用いられるプ
ライマーをあらかじめ蛍光等で標識し、この標識された
プライマーを用いてシークエンス用断片の合成が行われ
る。That is, in the Sanga method, it is necessary to visualize each fragment in order to finally perform electrophoresis and read the electrophoresis pattern. Fragment labeling is performed to perform this visualization. Labeling methods for this fragment include:
Broadly, there are three methods: internal labeling, terminator labeling, and primer labeling. In the primer labeling method, a primer used for synthesizing a fragment for sequencing is previously labeled with fluorescence or the like, and the fragment for sequencing is synthesized using the labeled primer.

【０００８】一方、内部標識法及びターミネータ標識法
では、プライマーは特に標識されている必要はなく、合
成の際の基質であるヌクレオチドとして蛍光等の標識が
されたものが用いられる。このように標識されたヌクレ
オチドを用いて断片の合成を行うことにより、合成され
たシークエンス用断片が結果として標識されることにな
る。この内部標識方法及びターミネータ標識法では、プ
ライマー標識法のように、あらかじめプライマーなどを
標識する必要がないため簡便であり、任意のプライマー
を用いることができるため、決定したい核酸領域に合わ
せたプライマーを用いて自在に核酸シークエンスの決定
を行うことが可能となる。[0008] On the other hand, in the internal labeling method and the terminator labeling method, the primer does not need to be particularly labeled, and a labeled nucleotide such as fluorescence is used as a nucleotide at the time of synthesis. By synthesizing a fragment using such labeled nucleotides, the synthesized sequencing fragments will be labeled as a result. In the internal labeling method and the terminator labeling method, unlike the primer labeling method, there is no need to label a primer or the like in advance, which is simple and any primer can be used. It is possible to freely determine a nucleic acid sequence using the method.

【０００９】しかし、この内部標識法及びターミネータ
標識法では、最終的に電気泳動で核酸断片を分画し読み
取る際に、核酸断片と共に多量に存在する未反応の標識
ヌクレオチドがバックグランドに出現し、その周辺の伸
長断片の電気泳動パターン（シークエンスラダー）の読
み取りを阻害することがあった。However, in the internal labeling method and the terminator labeling method, when a nucleic acid fragment is finally fractionated and read by electrophoresis, a large amount of unreacted labeled nucleotides present together with the nucleic acid fragment appear in the background, In some cases, the reading of the electrophoresis pattern (sequence ladder) of the extended fragment in the vicinity was inhibited.

【００１０】そのため、このような問題を解決し、より
広範囲に精度の高い塩基配列の決定を行うために、伸長
反応後に未反応のヌクレオチドを除去することが行われ
ている。このヌクレオチドの除去法としては、エタノー
ル沈殿、精製用カラムを用いた方法等がある。[0010] Therefore, in order to solve such a problem and to determine a base sequence with higher precision over a wider range, unreacted nucleotides have been removed after the extension reaction. Methods for removing the nucleotide include ethanol precipitation, a method using a purification column, and the like.

【００１１】しかし、エタノール沈殿では、反応液の量
が微量であること、またその中に含まれる核酸量自体も
微量であることから、エタノール沈殿後の回収率が低
く、さらに回収率にばらつきが生じ易いという問題があ
る。特に、上記シークエンス決定においては、４つの塩
基（Ａ、Ｇ、Ｃ、Ｔ）を同時に決定することが必要にな
るため、これら塩基のうちいずれか一つでも、その処理
過程で著しい試料の減少が生じると、全体としてシーク
エンス決定が行えないことにもなる。However, in ethanol precipitation, since the amount of the reaction solution is very small and the amount of nucleic acid contained therein is also very small, the recovery rate after ethanol precipitation is low and the recovery rate varies. There is a problem that it easily occurs. In particular, in the above sequence determination, it is necessary to determine four bases (A, G, C, T) at the same time. If this occurs, the sequence determination cannot be performed as a whole.

【００１２】また、エタノール沈殿に代えて精製用カラ
ムを用いる方法もあるが、この方法の場合には、担体に
吸着させた核酸を溶出させる際に、核酸が溶出バッファ
により希釈されることとなる。また、この希釈された核
酸液を濃縮するためには、上記エタノール沈殿を行わざ
るを得ず、上記と同様の問題が生じることとなる。There is also a method using a purification column instead of ethanol precipitation. In this method, when eluting the nucleic acid adsorbed on the carrier, the nucleic acid is diluted by an elution buffer. . In addition, in order to concentrate the diluted nucleic acid solution, the ethanol precipitation must be performed, and the same problem as described above occurs.

【００１３】そこで、本発明は上記課題に鑑みてなされ
たものであり、その目的は、上記核酸断片を高効率で回
収でき、且つ、混在するヌクレオチドを除去することが
できる核酸精製方法を提供することである。また、この
精製方法によりシークエンスの前処理方法及び装置を提
供することである。Accordingly, the present invention has been made in view of the above problems, and an object of the present invention is to provide a nucleic acid purification method capable of recovering the nucleic acid fragment with high efficiency and removing mixed nucleotides. That is. Another object of the present invention is to provide a method and an apparatus for pretreating a sequence by this purification method.

【００１４】[0014]

【課題を解決するための手段】上記目的を達成するため
に、本発明の核酸断片の分離方法は、鋳型核酸を含む水
溶液にプライマー及びヌクレオチドを添加しポリメラー
ゼ存在下で前記プライマーから鎖伸長反応を行わせて合
成された核酸断片を未反応のヌクレオチドから分離する
方法であって、前記鎖伸長反応終了後の反応液をフェノ
ール試薬と混合攪拌し、水相とフェノール層とを分離さ
せ、前記水相を回収することにより、前記未反応のヌク
レオチドから前記核酸断片が分離されることを特徴とす
る。In order to achieve the above object, a method for separating a nucleic acid fragment of the present invention comprises adding a primer and a nucleotide to an aqueous solution containing a template nucleic acid, and performing a chain extension reaction from the primer in the presence of a polymerase. A method of separating a synthesized nucleic acid fragment from unreacted nucleotides, wherein the reaction solution after the completion of the chain elongation reaction is mixed and stirred with a phenol reagent to separate an aqueous phase and a phenol layer, and By collecting the phase, the nucleic acid fragment is separated from the unreacted nucleotide.

【００１５】すなわち、本発明は、合成反応後の反応液
にフェノール試薬を添加し攪拌することによりヌクレオ
チドを水相とフェノール層との中間層に移行させること
ができることを発見したことに基づいている。従って、
上記本発明によれば、反応後の液にフェノール試薬を添
加し攪拌することにより、未反応のヌクレオチド、例え
ば、デオキシヌクレオチド等を水相から中間層に移行さ
せることが可能となる。一方、合成された核酸断片は水
相に残留するため、この水相を回収することにより、核
酸断片をヌクレオチドから分離することが可能となる。That is, the present invention is based on the discovery that nucleotides can be transferred to an intermediate layer between an aqueous phase and a phenol layer by adding a phenol reagent to a reaction solution after the synthesis reaction and stirring the mixture. . Therefore,
According to the present invention, an unreacted nucleotide, for example, a deoxynucleotide or the like can be transferred from the aqueous phase to the intermediate layer by adding the phenol reagent to the liquid after the reaction and stirring. On the other hand, since the synthesized nucleic acid fragment remains in the aqueous phase, the nucleic acid fragment can be separated from the nucleotide by collecting the aqueous phase.

【００１６】本発明は、鋳型核酸を含む水溶液にプライ
マー、デオキシリボヌクレオチド及びジデオキシリボヌ
クレオチドを添加し、ポリメラーゼ存在下で前記プライ
マーから鎖伸長反応を行わせて生成されたシークエンス
用断片を精製する核酸シークエンス前処理方法であっ
て、前記鎖伸長反応終了後の反応液をフェノール試薬と
混合攪拌し、水相とフェノール層とを分離させ、前記水
相を回収することにより、未反応のデオキシリボヌクレ
オチド及びジデオキシリボヌクレオチドが除去されるこ
とを特徴とする。The present invention relates to a nucleic acid sequence for purifying a fragment for sequencing generated by adding a primer, deoxyribonucleotide and dideoxyribonucleotide to an aqueous solution containing a template nucleic acid and performing a chain extension reaction from the primer in the presence of a polymerase. In the pretreatment method, the reaction solution after the completion of the chain elongation reaction is mixed and stirred with a phenol reagent, an aqueous phase and a phenol layer are separated, and the aqueous phase is recovered. It is characterized in that deoxyribonucleotides are removed.

【００１７】本発明によれば、反応液中の未反応のデオ
キシリボヌクレオチド及びジデオキシリボヌクレオチド
を水相からの中間層に移行させることができ、一方、シ
ークエンス用断片は水相に留まるため、この水相を回収
することにより、シークエンス用断片から混在する未反
応のデオキシリボヌクレオチド及びジデオキシリボヌク
レオチドを効率的に除去することが可能となる。その結
果、広範囲において精度の高いシークエンスラダーの読
み取りを行うことができ、また、特に従来の方法では読
み取りが困難であったプライマー配列近傍のシークエン
スの読み取りも容易になる。According to the present invention, unreacted deoxyribonucleotides and dideoxyribonucleotides in the reaction solution can be transferred from the aqueous phase to the intermediate layer, while the fragments for sequencing remain in the aqueous phase. By recovering the phase, unreacted unreacted deoxyribonucleotides and dideoxyribonucleotides can be efficiently removed from the sequencing fragments. As a result, highly accurate reading of the sequence ladder can be performed over a wide range, and reading of a sequence in the vicinity of the primer sequence, which has been particularly difficult to read by the conventional method, is also facilitated.

【００１８】本発明において、前記デオキシリボヌクレ
オチド又はジデオキシリボヌクレオチドが標識されてい
ることを特徴とする。The present invention is characterized in that the deoxyribonucleotide or dideoxyribonucleotide is labeled.

【００１９】このように標識されたデオキシリボヌクレ
オチド又はジデオキシリボヌクレオチドを用いる標識法
では、特に、未反応の標識デオキシリボヌクレオチド等
がシークエンスラダーの読み取りを妨げることとなる。
そのため、本発明により核酸断片を精製することによ
り、電気泳動パターンの読み取りを阻害する未反応の標
識デオキシリボヌクレオチド等が除去され、この結果、
バックグラウンドを低減させ、シークエンスラダーの読
み取りを容易にする。In the labeling method using such labeled deoxyribonucleotides or dideoxyribonucleotides, unreacted labeled deoxyribonucleotides and the like particularly hinder reading of the sequence ladder.
Therefore, by purifying the nucleic acid fragment according to the present invention, unreacted labeled deoxyribonucleotides and the like that inhibit reading of the electrophoresis pattern are removed, and as a result,
Reduces background and facilitates reading of the sequence ladder.

【００２０】本発明の核酸シークエンス前処理装置は、
鋳型核酸を含む水溶液にプライマー、デオキシリボヌク
レオチド及びジデオキシリボヌクレオチドを添加し、ポ
リメラーゼ存在下で前記プライマーから鎖伸長反応を行
わせて生成されたシークエンス用断片を精製する核酸シ
ークエンス前処理装置であって、前記鎖伸長反応終了後
の反応液を含む反応容器にフェノール試薬を供給するフ
ェノール試薬供給手段と、前記フェノール試薬供給後、
前記反応容器内の反応液を攪拌する攪拌手段と、前記攪
拌後に水相とフェノール層とを分離させ、前記水相を回
収する回収手段とを含み、前記反応液から未反応のデオ
キシリボヌクレオチド及びジデオキシリボヌクレオチド
が除去されることを特徴とする。The nucleic acid sequence pretreatment device of the present invention comprises:
A nucleic acid sequence pretreatment device for adding a primer, deoxyribonucleotides, and dideoxyribonucleotides to an aqueous solution containing a template nucleic acid, and purifying a sequence fragment generated by performing a chain extension reaction from the primers in the presence of a polymerase, A phenol reagent supply unit for supplying a phenol reagent to a reaction vessel containing the reaction solution after the completion of the chain extension reaction, and after supplying the phenol reagent,
A stirring means for stirring the reaction solution in the reaction vessel; and a recovery means for separating the aqueous phase and the phenol layer after the stirring and recovering the aqueous phase, wherein unreacted deoxyribonucleotides and diamines are recovered from the reaction solution. It is characterized in that deoxyribonucleotides are removed.

【００２１】本発明によれば、反応容器内で、反応液と
添加されたフェノール試薬とが攪拌され、この攪拌の結
果、反応液中の未反応のデオキシリボヌクレオチド及び
ジデオキシリボヌクレオチドが水相以外に移行する。そ
のため、水相を回収することにより、シークエンスラダ
ーの分画、読み取りを阻害し得る未反応のデオキシリボ
ヌクレオチド等が取り除かれているため、精度が高く、
また、広範囲なシークエンスラダーの読み取りが可能と
なる。According to the present invention, the reaction solution and the added phenol reagent are stirred in the reaction vessel, and as a result of this stirring, unreacted deoxyribonucleotides and dideoxyribonucleotides in the reaction solution are removed from the aqueous phase. Transition. Therefore, by collecting the aqueous phase, fractionation of the sequence ladder, unreacted deoxyribonucleotides and the like that can inhibit reading are removed, so the accuracy is high,
In addition, it is possible to read a wide range of sequence ladders.

【００２２】[0022]

【発明の実施の形態】以下、本発明の好適な実施形態を
図面を用いて説明する。DETAILED DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS Preferred embodiments of the present invention will be described below with reference to the drawings.

【００２３】[第一の実施形態]本実施形態の核酸の分離
方法は、鋳型核酸を含む水溶液にプライマー及びヌクレ
オチドを添加し、ポリメラーゼ存在下で前記プライマー
から鎖伸長反応を行わせて生成された核酸断片を未反応
のヌクレオチドから分離する際に使用される。[First Embodiment] The nucleic acid separation method of the present embodiment is produced by adding a primer and a nucleotide to an aqueous solution containing a template nucleic acid and performing a chain extension reaction from the primer in the presence of a polymerase. Used to separate nucleic acid fragments from unreacted nucleotides.

【００２４】すなわち、試験管内などで人工的にＤＮＡ
合成を行う際に、過剰に添加されたヌクレオチド（ｄＮ
ＴＰ）が核酸断片の合成終了後に残存し、生成された核
酸断片と混在することとなる。本分離方法は、この混在
する未反応のヌクレオチドを除去するために使用され
る。そのため、このように合成後に核酸断片と未反応の
ヌクレオチドが混在するものであれば、分離対象となる
核酸断片の合成法や核酸断片合成後の使用目的等には限
定はされない。That is, DNA is artificially produced in a test tube or the like.
When performing the synthesis, the nucleotides (dN
TP) remains after the synthesis of the nucleic acid fragment, and is mixed with the generated nucleic acid fragment. The present separation method is used to remove this mixed unreacted nucleotide. Therefore, the method for synthesizing the nucleic acid fragment to be separated and the purpose of use after the synthesis of the nucleic acid fragment are not limited as long as the nucleic acid fragment and the unreacted nucleotide are mixed after the synthesis.

【００２５】例えば、上記「核酸断片」としては、サン
ガ法によりシークエンス決定を行うために鋳型ＤＮＡか
ら合成された核酸断片（以下、シークエンス用断片とい
う）や、ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）により生成さ
れた増幅核酸断片等が含まれ、このようにポリメラー
ゼ、ヌクレオチド存在下で人工的に合成された核酸断片
であれば、一本鎖、二本鎖の別は問わない。For example, the “nucleic acid fragment” is a nucleic acid fragment synthesized from a template DNA for sequence determination by the Sanga method (hereinafter, referred to as a sequence fragment) or generated by PCR (polymerase chain reaction). A single-stranded or double-stranded nucleic acid fragment may be used as long as it is a nucleic acid fragment artificially synthesized in the presence of a polymerase and nucleotides.

【００２６】また、取り除かれることとなる「ヌクレオ
チド」としては、核酸断片合成時に添加されるものであ
れば、デオキシリボヌクレオチド（ｄＮＴＰ）に限られ
ず、ジデオキシリボヌクレオチド（ｄｄＮＴＰ）も含ま
れる。また、この「ヌクレオチド」には、放射線や蛍光
で標識されたヌクレオチド等も含まれる。The "nucleotide" to be removed is not limited to deoxyribonucleotide (dNTP) but may be dideoxyribonucleotide (ddNTP) as long as it is added at the time of nucleic acid fragment synthesis. The “nucleotide” also includes nucleotides and the like labeled with radiation or fluorescence.

【００２７】以下、本実施形態の分離方法を図１を用い
て説明する。Hereinafter, the separation method of this embodiment will be described with reference to FIG.

【００２８】先ず、核酸合成後の反応液２を収容した容
器１に、フェノール試薬３が添加される。このフェノー
ル試薬３は、純粋なフェノールを用いてもよいが、好ま
しくは、中性フェノール、フェノール−クロロホルムな
どを用いることができる。First, a phenol reagent 3 is added to a container 1 containing a reaction solution 2 after nucleic acid synthesis. As the phenol reagent 3, pure phenol may be used, but preferably, neutral phenol, phenol-chloroform or the like can be used.

【００２９】この中性フェノールは、融解したフェノー
ルに緩衝液（例えば、トリスＥＤＴＡ緩衝液など）を注
入してｐＨを調整するとともにフェノールを緩衝液で飽
和させることにより生成される。このような中性フェノ
ールを用いることにより、合成終了後の反応液のｐＨを
変動させることなく、また反応液の液量を変化させるこ
となくヌクレオチドの除去を行うことができる。The neutral phenol is produced by injecting a buffer (eg, Tris EDTA buffer) into the molten phenol to adjust the pH and saturate the phenol with the buffer. By using such a neutral phenol, nucleotides can be removed without changing the pH of the reaction solution after completion of synthesis and without changing the amount of the reaction solution.

【００３０】また、フェノール−クロロホルムは、上記
中性フェノールにクロロホルムを混合することにより調
製される。このようにクロロホルムを添加することによ
り、反応液である水溶液との比重差が大きくなり、水相
とフェノール層との分離能を向上させることができ、水
相中にフェノールの残留を防止することができる。Phenol-chloroform is prepared by mixing chloroform with the above neutral phenol. By adding chloroform in this manner, the difference in specific gravity between the aqueous solution as the reaction solution and the aqueous solution is increased, the separation ability between the aqueous phase and the phenol layer can be improved, and the phenol can be prevented from remaining in the aqueous phase. Can be.

【００３１】また、これら中性フェノール、フェノール
−クロロホルム以外に、ヌクレオチドを除去することが
できるものであれば、例えば、置換フェノール、フェノ
ール樹脂などを用いてもよい。フェノールは揮発性が高
く、また刺激臭を有するため、フェノールに代えて、フ
ェノールに置換基が挿入された置換フェノールや樹脂と
して加工されているフェノール樹脂などを用いることに
より環境面、取扱いの容易さの面から有利となる。In addition to neutral phenol and phenol-chloroform, substituted phenols and phenol resins may be used as long as they can remove nucleotides. Phenol is highly volatile and has an irritating odor, so using phenol resin instead of phenol instead of phenol with a substituted phenol or a phenol resin processed as a resin makes it environmentally friendly and easy to handle. This is advantageous in terms of.

【００３２】次に、上記フェノール試薬添加後、容器に
振動を加え、反応液２とフェノール試薬３とを攪拌し、
懸濁液４とする。水溶液である反応液２とフェノール試
薬３とは容易には混合されないため、攪拌により強制的
に反応液２とフェノール試薬３とを混合させる。Next, after the addition of the phenol reagent, the container is vibrated to stir the reaction solution 2 and the phenol reagent 3,
Let it be suspension 4. Since the reaction solution 2 which is an aqueous solution and the phenol reagent 3 are not easily mixed, the reaction solution 2 and the phenol reagent 3 are forcibly mixed by stirring.

【００３３】上記攪拌後、ヌクレオチドを反応液２から
除去するために上記混合液を遠心分離し、水相５とフェ
ノール層６とに分離させる。この分離の結果、水相５と
フェノール層６との間に蛋白等を含む中間層７が形成さ
れ、ヌクレオチドはこの中間層７に移行する。なお、こ
の遠心分離の回転数、時間等は、使用するフェノール試
薬の種類により適宜決めることができる。例えば、中性
フェノールを用いる場合には、１５０００ｒｐｍ程度で
５分程度、またフェノール−クロロホルムの場合には、
２〜３分程度とすることができる。またフェノール−ク
ロロホルム等の分離能の高いものの場合には、遠心分離
を行うことなく、攪拌後、静置させて分離させてもよ
い。After the agitation, the mixture is centrifuged to remove nucleotides from the reaction solution 2 and separated into an aqueous phase 5 and a phenol layer 6. As a result of this separation, an intermediate layer 7 containing proteins and the like is formed between the aqueous phase 5 and the phenol layer 6, and nucleotides migrate to the intermediate layer 7. The number of revolutions, time, and the like of the centrifugation can be appropriately determined depending on the type of the phenol reagent used. For example, when using neutral phenol, about 15000 rpm for about 5 minutes, and when using phenol-chloroform,
It can be about 2 to 3 minutes. In the case of phenol-chloroform or the like having a high resolving power, separation may be performed by allowing the mixture to stand after stirring without performing centrifugation.

【００３４】最終的に、上記において分離された水相５
とフェノール層６とのうち、水相５を回収する。この水
相５には、合成された核酸断片が含まれ、一方、不要な
未反応のヌクレオチドは中間層７に移行し除去されてい
る。このように、この回収した水相５には、合成ＤＮＡ
を電気泳動等により解析する際に泳動像の読み取りを困
難にさせることがある未反応のヌクレオチドが除去され
ているため、この水相５を核酸断片の解析に用いること
により、解析精度の向上等を図ることが可能となる。Finally, the aqueous phase 5 separated above
The aqueous phase 5 is recovered from the phenol layer 6. The aqueous phase 5 contains the synthesized nucleic acid fragments, while unnecessary unreacted nucleotides migrate to the intermediate layer 7 and are removed. Thus, the recovered aqueous phase 5 contains synthetic DNA
Since unreacted nucleotides that may make it difficult to read an electrophoretic image when analyzing the DNA by electrophoresis or the like are removed, the analysis accuracy can be improved by using this aqueous phase 5 for analysis of nucleic acid fragments. Can be achieved.

【００３５】[第二の実施形態]本実施形態では、上記第
一の実施形態の核酸断片の分離方法を核酸シークエンス
の前処理に利用した場合を説明する。なお、図２には、
核酸シークエンスを決定するためのＤＮＡ断片の合成か
らシークエンス決定までの一連の工程を模式的に示す。[Second Embodiment] In this embodiment, a case will be described in which the method for separating nucleic acid fragments of the first embodiment is used for pretreatment of a nucleic acid sequence. In FIG. 2,
1 schematically shows a series of steps from synthesis of a DNA fragment for determining a nucleic acid sequence to sequence determination.

【００３６】先ず、核酸シークエンスを決定するため
に、図２（Ａ）に示すジデオキシ法などによりシークエ
ンス用断片が生成される。First, in order to determine a nucleic acid sequence, a fragment for sequencing is generated by the dideoxy method shown in FIG. 2A.

【００３７】出発材料として、鋳型ＤＮＡ、この鋳型Ｄ
ＮＡと相補するプライマー、ｄＮＴＰ（デオキシヌクレ
オチド；ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰの混
合物）、さらにポリメラーゼとバッファーが混合され、
この混合液は、例えば９６穴プレート１０の中の４つの
穴１２にそれぞれ添加される。そして、この４つの穴１
２に、さらに異なる一種類のジデオキシヌクレオチド
（ｄｄＡＴＰ、ｄｄＣＴＰ、ｄｄＧＴＰ、ｄｄＴＴＰの
いずれか）がそれぞれ添加される。As starting materials, a template DNA, this template D
A primer complementary to NA, dNTP (deoxynucleotide; a mixture of dATP, dCTP, dGTP, dTTP), a polymerase and a buffer are mixed,
This mixed solution is added to, for example, four holes 12 in a 96-well plate 10, respectively. And these four holes 1
2, a different kind of dideoxynucleotide (any one of ddATP, ddCTP, ddGTP and ddTTP) is added.

【００３８】なお、ここでは内部標識法と末端標識法の
いずれを用いてもよい。例えば、内部標識法では、上記
ｄＮＴＰのうち少なくとも一種類の塩基が放射線や蛍光
で標識されたものが用いられる。また、末端標識法で
は、上記プライマーもしくはターミネータがあらかじめ
放射線又は蛍光で標識されたものが用いられる。Here, either the internal labeling method or the terminal labeling method may be used. For example, in the internal labeling method, at least one type of base among the above-mentioned dNTPs is labeled with radiation or fluorescence. In the end labeling method, a primer or a terminator in which the above-mentioned primer or terminator is previously labeled with radiation or fluorescence is used.

【００３９】上記において反応液が反応プレート１０上
で調製された後、ポリメラーゼによるＤＮＡ合成反応が
行われる。このＤＮＡ合成反応では、プライマーの３’
末端に鋳型ＤＮＡと相補するヌクレオチドが次々組み込
まれ、鎖が伸長する。しかし、この鎖伸長過程で３’末
端に水酸基のないジデオキシヌクレオチドが組み込まれ
ると、次のヌクレオチドが結合できず鎖伸長が特異的に
停止する。このようにジデオキシヌクレオチドが組み込
まれた位置の相違から、図２（Ｂ）に示すように各穴１
２内では、種々の長さの核酸断片が生成される。After the reaction solution is prepared on the reaction plate 10 as described above, a DNA synthesis reaction is performed by a polymerase. In this DNA synthesis reaction, 3 ′ of the primer
Nucleotides complementary to the template DNA are successively incorporated into the ends, and the chain is extended. However, if a dideoxynucleotide without a hydroxyl group is incorporated at the 3 ′ end during the chain extension process, the next nucleotide cannot be bound and the chain extension is specifically stopped. Due to the difference in the position where the dideoxynucleotide was incorporated, as shown in FIG.
Within 2, nucleic acid fragments of various lengths are generated.

【００４０】次に、ここで生成された核酸断片から混在
するヌクレオチドを除去するために前処理が行われる。Next, a pretreatment is performed to remove nucleotides mixed in from the nucleic acid fragments generated here.

【００４１】このヌクレオチドを除去するための前処理
は、上記第一の実施形態に示したフェノール試薬を用い
た核酸分離方法に基づいて行うことができる。ここで
は、この前処理を核酸シークエンス前処理装置により自
動化して行う場合を示す。先ず、核酸シークエンス前処
理装置の構成について図３〜６を用いて説明する。The pretreatment for removing nucleotides can be performed based on the nucleic acid separation method using a phenol reagent described in the first embodiment. Here, a case is shown in which this pretreatment is performed automatically by a nucleic acid sequence pretreatment device. First, the configuration of the nucleic acid sequence pretreatment device will be described with reference to FIGS.

【００４２】装置内の基板１３上には、準備ブロック１
４が備えられ、この準備ブロック１４には、チップラッ
ク１６、フェノール試薬を収容した試薬ラック１８及
び、上記シークエンス反応後の反応液を収容したプレー
ト１０が載置される。なお、この試薬ラック１８に収容
されるフェノール試薬は、上記第一の実施形態と同様に
中性フェノール、フェノール−クロロホルム等を用いる
ことができる。The preparation block 1 is placed on the substrate 13 in the apparatus.
The preparation block 14 includes a chip rack 16, a reagent rack 18 containing a phenol reagent, and a plate 10 containing a reaction solution after the above-described sequence reaction. As the phenol reagent contained in the reagent rack 18, neutral phenol, phenol-chloroform, or the like can be used as in the first embodiment.

【００４３】上記準備ブロック１４に隣接して、基板１
３上には、前記フェノール試薬と反応液とを攪拌するた
めのミキサーラック２０が備えられている。このミキサ
ーラック２０は、図５に示すように、上部に攪拌用プレ
ート２１を保持する保持部２０ａが備えられ、この保持
部２０ａの下方には、攪拌軸２０ｂが設けられている。
この攪拌軸２０ｂは、回動幅を規定する固定筒２０ｃの
内壁面に沿って回動可能に基板１３に固定されている。
従って、この攪拌軸２０ｂが回転筒２０ｃ内を回動する
ことにより、保持部２０ａに保持された攪拌用プレート
２１を水平に保持した状態でプレート内に分注された液
を攪拌することができる。Next to the preparation block 14, the substrate 1
On 3 is provided a mixer rack 20 for stirring the phenol reagent and the reaction solution. As shown in FIG. 5, the mixer rack 20 is provided with a holding portion 20a for holding the stirring plate 21 at an upper portion, and a stirring shaft 20b is provided below the holding portion 20a.
The stirring shaft 20b is rotatably fixed to the substrate 13 along the inner wall surface of the fixed cylinder 20c that defines the rotation width.
Therefore, by rotating the stirring shaft 20b inside the rotary cylinder 20c, the liquid dispensed into the plate can be stirred while the stirring plate 21 held by the holder 20a is held horizontally. .

【００４４】また、基板１３上には前記ミキサーラック
２０に隣接して遠心ラック２２が設けられている。この
遠心ラック２２は、例えば、図６に示すように攪拌用プ
レート２１を直接設置することができるスイング式のロ
ーターを備えることができる。A centrifugal rack 22 is provided on the substrate 13 adjacent to the mixer rack 20. The centrifugal rack 22 may include, for example, a swing-type rotor to which the stirring plate 21 can be directly installed as shown in FIG.

【００４５】一方、前記基板に対向して、装置内の上部
には、分注器２４が備えられている。この分注器２４
は、ガイドレール２６に沿って左右方向に移動可能に固
定され、また、このガイドレール２６自体も両端が固定
部２８に前後方向にスライド可能に固定されている。こ
れにより分注器２４は、装置の内部を前後左右自在に移
動可能に構成され、前記準備ブロック１４からミキサー
ラック２０への試薬、反応液の運搬、分注及び前処理終
了後の水相の回収を実行する。On the other hand, a dispenser 24 is provided at an upper part in the apparatus so as to face the substrate. This dispenser 24
Are fixed movably in the left-right direction along the guide rail 26, and both ends of the guide rail 26 itself are also fixed to the fixing portion 28 so as to be slidable in the front-rear direction. Thus, the dispenser 24 is configured to be able to freely move back and forth and left and right inside the apparatus, and to transport the reagent and the reaction solution from the preparation block 14 to the mixer rack 20, dispensing, and disposing of the aqueous phase after the completion of the pretreatment. Perform collection.

【００４６】上記の通り構成された核酸シークエンス前
処理装置による処理動作について図７を用いて説明す
る。The processing operation of the nucleic acid sequence pretreatment device configured as described above will be described with reference to FIG.

【００４７】前処理を行うに当たり、準備ブロック１４
に、チップラック１６及び試薬ラック１８が載置され、
さらにシークエンス用断片の合成反応後の反応液を収容
した反応プレート１０が載置される（Ｓ０１）。一方、
ミキサーラック２０上にも、処理プレート２１が載置さ
れる。これらの準備が完了すると、分注器２４はチップ
ラック１６の上部に移動し、チップラック１６内のチッ
プを分注器２４の先端２４ａに取り付ける。分注器２４
の先端２４ａにチップが取り付けられると、分注器２４
は、試薬ラック１８の上部に移動し、試薬ラックからフ
ェノール試薬を吸引する。試薬吸引後、分注器２４は、
ミキサーラック２０上に移動し、ミキサーラック２０に
保持されている処理プレート２１にフェノール試薬を分
注する（Ｓ０２）。In performing the pre-processing, the preparation block 14
The chip rack 16 and the reagent rack 18 are placed on the
Further, the reaction plate 10 containing the reaction solution after the synthesis reaction of the sequence fragment is placed (S01). on the other hand,
The processing plate 21 is also placed on the mixer rack 20. When these preparations are completed, the dispenser 24 moves to the upper part of the tip rack 16 and attaches the chips in the tip rack 16 to the tip 24a of the dispenser 24. Dispenser 24
When the tip is attached to the tip 24a of the dispenser,
Moves to the upper part of the reagent rack 18 and aspirates the phenol reagent from the reagent rack. After aspirating the reagent, the dispenser 24
The phenol reagent is moved onto the mixer rack 20, and the phenol reagent is dispensed to the processing plate 21 held by the mixer rack 20 (S02).

【００４８】フェノール試薬の分注が完了すると、次に
分注器２４により反応プレート１０内の反応液の吸引及
び処理プレート２１への分注が同様に行われる（Ｓ０
３）。フェノール試薬及び反応液が処理プレート２１に
分注されると、ミキサーラック２０の動作が開始され、
処理プレート内の試薬と反応液とが攪拌され、混合され
る（Ｓ０４）。When the dispensing of the phenol reagent is completed, the aspirating of the reaction solution in the reaction plate 10 and the dispensing to the processing plate 21 are similarly performed by the dispenser 24 (S0).
3). When the phenol reagent and the reaction solution are dispensed to the processing plate 21, the operation of the mixer rack 20 is started,
The reagent and the reaction solution in the processing plate are stirred and mixed (S04).

【００４９】ミキサーラック２０による攪拌が終了する
と、ミキサーラック２０上の処理プレート２１は、遠心
ラック２２に移送され（Ｓ０５）、遠心分離が行われる
（Ｓ０６）。この遠心分離により処理プレート２１の各
穴内では、水相とフェノール層とに分離されて水相から
ヌクレオチドが除去される。When the stirring by the mixer rack 20 is completed, the processing plate 21 on the mixer rack 20 is transferred to the centrifugal rack 22 (S05) and centrifuged (S06). By this centrifugation, in each hole of the treatment plate 21, the aqueous phase and the phenol layer are separated, and nucleotides are removed from the aqueous phase.

【００５０】上記遠心分離後、核酸シークエンスを行う
ために、処理プレート２１の各穴から水相の回収が行わ
れる。この水相の回収は、遠心ラック上で又はミキサー
ラック２０に戻された後で分注器２４により行われる。
すなわち、分注器２４は、チップラック１６においてチ
ップを取り付た後、処理プレート２１の上部に移動し、
処理プレート２１の各穴から水相が吸引、回収される
（Ｓ０７）。After the centrifugation, the aqueous phase is collected from each hole of the processing plate 21 for nucleic acid sequencing. This recovery of the aqueous phase is performed by the dispenser 24 on a centrifuge rack or after being returned to the mixer rack 20.
That is, the dispenser 24 moves to the upper part of the processing plate 21 after attaching the chips in the chip rack 16,
The aqueous phase is sucked and collected from each hole of the processing plate 21 (S07).

【００５１】なお、上記において攪拌方法として、ミキ
サーラックを用いる場合を示したが、このミキサーラッ
クによる攪拌に代えて、図８に示すような分注器２４に
よるピペッティングにより攪拌を行うこともできる。す
なわち、分注器２４によりフェノール試薬を供給した際
に、この分注器２４により吐出、吸引を繰り返してピペ
ッティングを行うことにより反応液及びフェノール試薬
を攪拌することができる。このように攪拌手段としてピ
ペッティングを用いた場合には、上記ミキサーラック２
０のような構成を備える必要はなく、単に、プレートを
保持する構成のみを備えればよい。In the above, a case where a mixer rack is used as the stirring method has been described, but instead of stirring with this mixer rack, stirring may be performed by pipetting with a dispenser 24 as shown in FIG. . That is, when the phenol reagent is supplied by the dispenser 24, the reaction solution and the phenol reagent can be agitated by repeatedly performing discharge and suction by this dispenser 24 and performing pipetting. When pipetting is used as the stirring means, the mixer rack 2
It is not necessary to provide a configuration such as 0, and only a configuration for holding the plate may be provided.

【００５２】また、上記においては遠心ラック２２によ
り遠心分離を行ったが、フェノール試薬として、例え
ば、分離能の高いフェノール−クロロホルムなどを用い
た場合には、攪拌後、静置させることにより水相をフェ
ノール層とを分離させてもよい。このように遠心ラック
等を省略させることにより低コストで装置を構成するこ
とができる。In the above, centrifugation was performed by the centrifugal rack 22. However, when phenol reagent such as phenol-chloroform having a high resolving power was used, the aqueous phase was allowed to stand after stirring. May be separated from the phenol layer. By omitting the centrifugal rack and the like, the apparatus can be configured at low cost.

【００５３】上記前処理が終了し、回収された水相は、
最終的に、エタノール沈殿などにより精製工程を経るこ
となく、直接、次のシークエンス決定工程（図２
（Ｄ））に利用することができる。シークエンス決定工
程では、上記回収された水相が、電気泳動用ゲル、例え
ば、アクリルアミドゲルなどにより泳動され、そのラダ
ー状の泳動パターンからシークエンスが決定される。特
に、上記水相からは、ヌクレオチドや蛋白質が取り除か
れているため、鮮明な泳動パターンを得ることができ、
そのため、広範囲な泳動パターンを読み取り、シークエ
ンスを決定することが可能となる。After the above pretreatment is completed, the recovered aqueous phase is
Finally, the next sequence determination step (FIG. 2) is performed directly without going through a purification step by ethanol precipitation or the like.
(D)). In the sequence determination step, the recovered aqueous phase is electrophoresed on an electrophoresis gel, for example, an acrylamide gel, and the sequence is determined from the ladder-like migration pattern. In particular, since the nucleotides and proteins have been removed from the aqueous phase, a clear migration pattern can be obtained,
Therefore, it is possible to read a wide range of electrophoresis patterns and determine a sequence.

【００５４】[0054]

【実施例】本発明の核酸分離方法を実施例を用いてより
詳細に説明する。ここでは、本方法を核酸シークエンス
前処理方法に用いた場合を示す。EXAMPLES The nucleic acid separation method of the present invention will be described in more detail with reference to Examples. Here, a case where the present method is used for a nucleic acid sequence pretreatment method is shown.

【００５５】１．シークエンス用断片の合成 鋳型ＤＮＡ、プライマー、蛍光標識されたｄＮＴＰ、ポ
リメラーゼ、バッファーを混合した混合液を４つ準備
し、これらに異なる１種類のｄｄＮＴＰを添加した。こ
のセットを複数準備し、それぞれポリメラーゼ反応を行
わせてシークエンス用断片を生成した。1. Synthesis of Fragment for Sequencing Four mixed solutions in which a template DNA, a primer, a fluorescently labeled dNTP, a polymerase, and a buffer were mixed were prepared, and one different type of ddNTP was added thereto. A plurality of this set was prepared, and a polymerase reaction was performed on each of the sets to generate a fragment for sequencing.

【００５６】２．前処理 上記において生成されたシークエンス用断片のセットに
ついて前処理を行い、ヌクレオチドの除去を行った。こ
の前処理方法としては、本実施例によるフェノール試薬
による前処理を行った。また同時に、比較対照として従
来のエタノール処理、カラムによる精製処理を行ったも
の、さらに、未処理のものを準備した。2. Pretreatment Pretreatment was performed on the set of sequencing fragments generated above to remove nucleotides. As the pretreatment method, the pretreatment with the phenol reagent according to the present example was performed. At the same time, a sample that had been subjected to conventional ethanol treatment and a column purification treatment and a sample that had not been subjected to treatment were prepared as comparative controls.

【００５７】フェノール試薬による前処理では、上記合
成反応後の反応液に、同量の中性フェノールを添加し、
攪拌後、遠心分離を行い、水相とフェノール層とを分離
させた。このうち、水相を回収して、以下のシークエン
ス決定に用いた。In the pretreatment with the phenol reagent, the same amount of neutral phenol is added to the reaction solution after the above synthesis reaction.
After stirring, centrifugation was performed to separate an aqueous phase and a phenol layer. The aqueous phase was collected and used for the following sequence determination.

【００５８】また、比較対照としてのエタノール沈殿に
よる前処理は、通常のエタノール沈殿法を利用した。す
なわち、上記反応液に１００％エタノールを添加し、氷
上放置し、その後、遠心分離を行い沈さを回収し、その
沈さを緩衝液により懸濁させた。For the pretreatment by ethanol precipitation as a control, a normal ethanol precipitation method was used. That is, 100% ethanol was added to the above reaction solution, left on ice, and then centrifuged to collect the sediment, and the sediment was suspended in a buffer.

【００５９】同様に他の比較対照であるカラムを用いた
処理では、上記反応液を５０μｌ程度に希釈し、QIA qu
ick カラム(QIAGEN Nucleotide Removal Kit)に添加し
て、一定の時間経過後の溶出液を回収し、この回収液を
濃縮するために上記エタノール沈殿処理を行った。Similarly, in the treatment using a column as another comparative control, the above reaction solution was diluted to about 50 μl, and the QIA qu
The eluate was added to an ick column (QIAGEN Nucleotide Removal Kit), and after a certain period of time, the eluate was collected. The ethanol precipitation was performed to concentrate the eluate.

【００６０】３．シークエンス決定工程 シークエンス決定は、自動シークエンサー（LICOR Mode
l 4200 DNAシークエンサー）を用いて行った。上記にお
いて種々の方法で前処理を行ったサンプル液を、シーク
エンサーの電気泳動ゲルのウェルにそれぞれ注入し、電
気泳動を開始して、泳動パターン（シークエンスラダ
ー）を記録した。なお、図９には、プライマーから１〜
３００ｂｐ付近の泳動パターンを示す。3. Sequence determination process The sequence determination is performed using an automatic sequencer (LICOR Mode
l 4200 DNA sequencer). The sample solutions pretreated by the various methods described above were respectively injected into wells of an electrophoresis gel of a sequencer, electrophoresis was started, and an electrophoresis pattern (sequence ladder) was recorded. In FIG. 9, 1 to 1
The migration pattern around 300 bp is shown.

【００６１】図９において、図面に向かって左端に示す
未処理の泳動パターン（サンプル１）では、１〜３００
ｂｐ付近において、未反応のヌクレオチドによる団子状
のシグナルが複数出現し、周辺のバンドの読み取りが極
めて困難であることが示されている。また、図９には示
されていないが３００ｂｐ以上の部分では、未処理のヌ
クレオチドによるシグナルは出現しないものの、各バン
ドが尾を引いた像となりバンド間が接近した部分では重
なり合って読み取りが困難であった。In FIG. 9, the untreated electrophoresis pattern (sample 1) shown at the left end as viewed in the drawing is 1 to 300
In the vicinity of bp, a plurality of dump-like signals due to unreacted nucleotides appeared, indicating that it was extremely difficult to read surrounding bands. Although not shown in FIG. 9, in the portion of 300 bp or more, although no signal due to untreated nucleotides does not appear, each band becomes an image with a tail, and in portions where the bands are close to each other, it is difficult to read due to overlapping. there were.

【００６２】また、エタノール処理による前処理（サン
プル４、５）では、未反応のヌクレオチドによるシグナ
ルは減少したが、完全に消失するには至らなかった。ま
た、全体的にラダーバンドのシグナル強度も低下し、各
ヌクレオチド（レーン）においてシグナル強度が不均一
なためシークエンス決定可能な範囲を狭める結果となっ
た。また、カラムを用いた前処理（サンプル６、７）で
は、エタノール処理による前処理にも増して、処理後の
断片の回収率が低下し各バンドのシグナル強度が著しく
減少した。また、各ヌクレオチド（レーン）においてシ
グナル強度が不均一なためシークエンス決定が困難であ
る。In the pretreatment by the ethanol treatment (samples 4 and 5), the signal due to unreacted nucleotides decreased, but did not completely disappear. In addition, the signal intensity of the ladder band also decreased as a whole, and the signal intensity was uneven in each nucleotide (lane), resulting in a narrower range in which the sequence could be determined. Further, in the pretreatment using the column (samples 6 and 7), the recovery rate of the fragment after the treatment decreased and the signal intensity of each band decreased remarkably as compared with the pretreatment by the ethanol treatment. In addition, it is difficult to determine the sequence because the signal intensity is uneven in each nucleotide (lane).

【００６３】これに対し、本実施例のフェノール試薬を
用いた処理（サンプル２、３）では、１〜３００ｂｐ付
近における未反応のヌクレオチドによるシグナルは完全
に消失し、かつ、各バンドの分離能が向上し鮮明なラダ
ーバンドが得られた。また、各バンドのシグナル強度が
均一で、その低下率もバンドの読み取りに支障のない範
囲の低下であり、非常に良好な前処理であることが示さ
れた。On the other hand, in the treatment using the phenol reagent of this example (samples 2 and 3), the signal due to unreacted nucleotides in the vicinity of 1 to 300 bp completely disappears, and the resolution of each band is reduced. An improved and clear ladder band was obtained. In addition, the signal intensity of each band was uniform, and the rate of decrease was within a range that would not interfere with band reading, indicating that the pretreatment was very good.

【００６４】なお、上記未処理の泳動パターンでは、通
常未反応のヌクレオチドは泳動の先端部分に出現するこ
ととなるが、図９に示す結果では、２００ｂｐ付近に団
子状に出現した。このことは未反応のヌクレオチドとポ
リメラーゼなどの蛋白質が塊となっていることが予想さ
れる。従って、本実施例のフェノール処理では、一つの
操作で、ヌクレオチドと蛋白質とを同時の除去すること
ができることをも示している。Incidentally, in the untreated electrophoresis pattern, unreacted nucleotides usually appear at the tip of electrophoresis, but in the results shown in FIG. 9, they appeared in a cluster at around 200 bp. This suggests that unreacted nucleotides and proteins such as polymerases are clustered. Therefore, it is also shown that the phenol treatment of the present example can simultaneously remove nucleotides and proteins by one operation.

【００６５】[0065]

【発明の効果】以上の通り、本発明によれば、簡便な操
作により合成後の核酸断片を失うことなく、未反応のヌ
クレオチドを取り除くことが可能となる。その結果、そ
の後のシークエンス決定操作において、鮮明なシークエ
ンスラダーバンドが得られ、より広い領域のシークエン
スの決定を行うことが可能となる。As described above, according to the present invention, unreacted nucleotides can be removed by a simple operation without losing the synthesized nucleic acid fragments. As a result, in the subsequent sequence determination operation, a clear sequence ladder band is obtained, and it is possible to determine a sequence in a wider area.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図１】 第一の実施形態の核酸断片分離方法の概略を
示す図である。FIG. 1 is a diagram schematically illustrating a nucleic acid fragment separation method according to a first embodiment.

【図２】 第二の実施形態の核酸シークエンス前処理方
法を含むシークエンス決定操作の一連の工程を示す図で
ある。FIG. 2 is a diagram showing a series of steps of a sequence determination operation including a nucleic acid sequence pretreatment method according to a second embodiment.

【図３】 第二の実施形態における核酸シークエンス前
処理装置の正面図である。FIG. 3 is a front view of a nucleic acid sequence pretreatment device according to a second embodiment.

【図４】 第二の実施形態における核酸シークエンス前
処理装置の平面図である。FIG. 4 is a plan view of a nucleic acid sequence pretreatment device according to a second embodiment.

【図５】 第二の実施形態における核酸シークエンス前
処理装置に設けられたミキサーラックの斜視図である。FIG. 5 is a perspective view of a mixer rack provided in a nucleic acid sequence pretreatment device according to a second embodiment.

【図６】 第二の実施形態における核酸シークエンス前
処理装置に設けられた遠心ラックの平面図である。FIG. 6 is a plan view of a centrifugal rack provided in the nucleic acid sequence pretreatment device according to the second embodiment.

【図７】 第二の実施形態における核酸シークエンス前
処理装置による前処理の工程図である。FIG. 7 is a process chart of pretreatment by a nucleic acid sequence pretreatment device in a second embodiment.

【図８】 第二の実施形態における核酸シークエンス前
処理装置に設けられたミキサーラックに代わる攪拌方法
を示す図である。FIG. 8 is a diagram illustrating a stirring method in place of a mixer rack provided in a nucleic acid sequence pretreatment device according to the second embodiment.

【図９】 実施例における各前処理操作を行った後のサ
ンプルを電気泳動を行った際の１〜３００ｂｐ付近のラ
ダーバンドを示す図である。FIG. 9 is a view showing a ladder band around 1 to 300 bp when a sample after performing each pretreatment operation in the example is subjected to electrophoresis.

【符号の説明】[Explanation of symbols]

２ 反応液、３ フェノール試薬、５ 水相、６ フェ
ノール層、１０ 反応プレート、１４ 準備ブロック、
１６ チップラック、１８ 試薬ラック、２０ミキサー
ラック、２２ 遠心ラック、２４ 分注器。2 reaction solution, 3 phenol reagent, 5 aqueous phase, 6 phenol layer, 10 reaction plate, 14 preparation block,
16 chip racks, 18 reagent racks, 20 mixer racks, 22 centrifuge racks, 24 dispensers.

Claims (4)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項１】 鋳型核酸を含む水溶液にプライマー及び
ヌクレオチドを添加しポリメラーゼ存在下で前記プライ
マーから鎖伸長反応を行わせて合成された核酸断片を未
反応のヌクレオチドから分離する方法であって、 前記鎖伸長反応終了後の反応液をフェノール試薬と混合
攪拌し、水相とフェノール層とを分離させ、前記水相を
回収することにより、前記未反応のヌクレオチドから前
記核酸断片が分離されることを特徴とする核酸断片の分
離方法。1. A method for separating a synthesized nucleic acid fragment from unreacted nucleotides by adding a primer and a nucleotide to an aqueous solution containing a template nucleic acid and performing a chain extension reaction from the primer in the presence of a polymerase, After the completion of the chain extension reaction, the reaction solution is mixed and stirred with a phenol reagent, an aqueous phase and a phenol layer are separated, and the nucleic acid fragment is separated from the unreacted nucleotide by collecting the aqueous phase. A method for separating a nucleic acid fragment. 【請求項２】 鋳型核酸を含む水溶液にプライマー、デ
オキシリボヌクレオチド及びジデオキシリボヌクレオチ
ドを添加し、ポリメラーゼ存在下で前記プライマーから
鎖伸長反応を行わせて合成されたシークエンス用断片を
精製する核酸シークエンス前処理方法であって、 前記鎖伸長反応終了後の反応液をフェノール試薬と混合
攪拌し、水相とフェノール層とを分離させ、前記水相を
回収することにより、混在する未反応のデオキシリボヌ
クレオチド及びジデオキシリボヌクレオチドが除去され
ることを特徴とする核酸シークエンス前処理方法。2. A nucleic acid sequence pretreatment in which a primer, deoxyribonucleotide and dideoxyribonucleotide are added to an aqueous solution containing a template nucleic acid, and a chain extension reaction is performed from the primer in the presence of a polymerase to purify a synthesized sequence fragment. The reaction solution after the completion of the chain extension reaction is mixed and stirred with a phenol reagent, an aqueous phase and a phenol layer are separated, and the unreacted deoxyribonucleotide and diamine are mixed by collecting the aqueous phase. A pretreatment method for nucleic acid sequence, wherein deoxyribonucleotides are removed. 【請求項３】 前記デオキシリボヌクレオチド又はジデ
オキシリボヌクレオチドが標識されていることを特徴と
する請求項２記載の核酸シークエンス前処理方法。3. The method according to claim 2, wherein the deoxyribonucleotide or dideoxyribonucleotide is labeled. 【請求項４】 鋳型核酸を含む水溶液にプライマー、デ
オキシリボヌクレオチド及びジデオキシリボヌクレオチ
ドを添加し、ポリメラーゼ存在下で前記プライマーから
鎖伸長反応を行わせて生成されたシークエンス用断片を
精製する核酸シークエンス前処理装置であって、 前記鎖伸長反応終了後の反応液を含む反応容器にフェノ
ール試薬を供給するフェノール試薬供給手段と、 前記フェノール試薬供給後、前記反応容器内の反応液を
攪拌する攪拌手段と、 前記攪拌後に水相とフェノール層とを分離させ、前記水
相を回収する回収手段とを含み、 前記反応液から未反応のデオキシリボヌクレオチド及び
ジデオキシリボヌクレオチドが除去されることを特徴と
する核酸シークエンス前処理装置。4. A nucleic acid sequence pretreatment in which a primer, deoxyribonucleotide and dideoxyribonucleotide are added to an aqueous solution containing a template nucleic acid, and a chain elongation reaction is carried out from the primer in the presence of a polymerase to purify a generated fragment for sequencing. An apparatus, comprising: a phenol reagent supply unit that supplies a phenol reagent to a reaction vessel containing the reaction solution after the completion of the chain extension reaction; and a stirring unit that agitates the reaction solution in the reaction container after the phenol reagent is supplied. A collecting means for separating the aqueous phase and the phenol layer after the stirring and recovering the aqueous phase, wherein unreacted deoxyribonucleotides and dideoxyribonucleotides are removed from the reaction solution before nucleic acid sequencing. Processing equipment.