JP2000050873A - ペチュニアの転写因子PetSPL2の遺伝子の導入によって花序の節間を短縮させる方法 - Google Patents
ペチュニアの転写因子PetSPL2の遺伝子の導入によって花序の節間を短縮させる方法Info
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Abstract
を変化させ得る転写因子をコードする遺伝子、当該遺伝
子の導入により植物の形質が変化した植物を作出する方
法、および当該方法により作出された植物を提供する。 【解決手段】以下の(a)または(b)のDNAを含む遺
伝子: (a)配列番号1によって示される塩基配列の第190
位から第807位までの塩基配列を有するDNA;または
(b)(a)の塩基配列を有するDNAとストリンジェン
トな条件下でハイブリダイズし、かつ植物の形質を変化
させ得る転写因子をコードするDNA。
Description
させ得る転写因子をコードする遺伝子およびその利用に
関する。本発明は、特に、ペチュニア由来の新規遺伝子
であるPetSPL2遺伝子、およびその関連遺伝子、ならび
にそれらの利用に関する。
御機構を解明するため、シロイヌナズナ(Arabidopsis t
haliana)、キンギョソウ(Antirrhinum majus)、および
ペチュニア(Petunia hybrida)などを用いて、分子生物
学的および分子遺伝学的に研究が行われている。特に、
ペチュニアは、研究材料として好んで使用されている。
その理由として、ペチュニアは、園芸植物として価値が
高く多種多様な品種が存在すること、形質転換し易いこ
と、花が大きくて見やすいこと、および遺伝学的な知見
の蓄積が豊富であることが挙げられる(高辻博志、「植
物の形を決める分子機構」、細胞工学、植物細胞工学シ
リーズ(秀潤社)、96〜106頁)。
体から、その変異の原因となる遺伝子が単離されてい
る。その結果、花の分化および形態形成の制御には、転
写因子が重要な役割を果たしていることが明らかになっ
てきた。例えば、シロイヌナズナのSUPERMANは、DNA結
合ドメインとしてジンクフィンガーモチーフを有する転
写因子である。その遺伝子に変異が生じているSUPERMAN
変異体では、雄しべの数が著しく増加し、雌しべが退化
することが知られている(遺伝、1997年4月号(51巻4
号)、34〜38頁)。
子を同定することは、その制御の機構を理解するために
重要である。遺伝子工学的手法を用いれば、花の形態形
成などを制御する転写因子の遺伝子を植物に導入するこ
とができる。遺伝子導入により、従来の交配による手法
では得られないか、または得ることが困難である新規な
形質を花を有する植物に付与できる可能性がある。この
ような新規な形質を有する植物は、園芸上の価値が高い
と考えられる。
解決を意図するものである。本発明の目的は、植物の形
質、特に植物の高さおよび節間の長さを変化させ得る転
写因子をコードする遺伝子を提供することにある。本発
明の他の目的は、遺伝子の導入により植物の形質が変化
した植物を作出する方法を提供することにある。本発明
のさらなる目的は、植物の形質が変化した植物を提供す
ることにある。
または(b)のDNAを含む遺伝子に関する: (a)配列番号1によって示される塩基配列の第190
位から第807位までの塩基配列を有するDNA;または
(b)(a)の塩基配列を有するDNAとストリンジェン
トな条件下でハイブリダイズし、かつ植物の形質を変化
させ得る転写因子をコードするDNA。
の転写因子をコードする遺伝子に関する: (i)配列番号2によって示されるアミノ酸配列の第1
位から第206位までのアミノ酸配列を含む転写因子;
または(ii)アミノ酸配列(i)において、1またはそ
れ以上のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミ
ノ酸配列を有し、かつ植物の形質を変化させ得る転写因
子。
形質は、植物の高さおよび節間の長さからなる群より選
択される。
を植物細胞に導入する工程、およびこの遺伝子が導入さ
れた植物細胞を植物体に再生する工程を含む、植物の形
質が変化した植物を作出する方法に関する。
双子葉植物である。好ましくは、双子葉植物はナス科植
物であり、より好ましくは、ペチュニア属植物である。
は植物発現ベクターに組み込まれている。
つに記載の方法により作出された、植物の形質が変化し
た植物に関する。
に結合してmRNAの合成を制御するタンパク質をいう。あ
る種の転写因子は、そのDNA結合ドメインにジンクフィ
ンガーモチーフと呼ばれる保存性の高いアミノ酸配列を
有することが知られている。
得る転写因子をコードする遺伝子である。この遺伝子
は、以下のDNAのいずれかを含み得る: (a)配列番号1によって示される塩基配列の第190
位から第807位までの塩基配列を有するDNA;および
(b)(a)の塩基配列を有するDNAとストリンジェン
トな条件下でハイブリダイズし、かつ植物の形質を変化
させ得る転写因子をコードするDNA。
Aを含み得る。
いずれかをコードし得る: (i)配列番号2によって示されるアミノ酸配列の第1
位から第206位までのアミノ酸配列を含む転写因子;
および(ii)アミノ酸配列(i)において、1またはそ
れ以上のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミ
ノ酸配列を有し、かつ植物の形質を変化させ得る転写因
子。
因子をコードし得る。
tSPL2遺伝子である。この遺伝子のcDNA配列(配列番号
1)および推定アミノ酸配列(配列番号2)を図1に示
す。
少なくとも1つについての任意の変化をいう。植物の形
態は、好ましくは植物の高さおよび節間の長さの少なく
とも一方であるが、これらに限定はされない。この変化
は、本発明の遺伝子を導入して得られた植物の形質を、
遺伝子導入前の植物(野生種または園芸品種)の形質と
比較することにより評価される。
半矮性などが挙げられるが、これらに限定はされない。
矮性は、好ましくは、遺伝子導入前の植物の標準的な高
さの約1/2以下、より好ましくは約1/3以下の高さをい
う。
が挙げられるが、これに限定はされない。節間の短縮に
は、生殖枝の節間(すなわち花序)および栄養枝の節間
(すなわち葉序)のいずれの短縮も含まれる。花序の短
縮は、特に好ましい変化の例である。節間の長さの変化
は、好ましくは、遺伝子導入前の植物の標準的な節間と
比較して約1/2以下、より好ましくは約1/5以下、さらに
より好ましくは約1/10以下の短縮である。
性と節間の短縮との組合せであり、さらに好ましくは矮
性と花序の短縮との組合せである。
子の遺伝子によりコードされるアミノ酸配列の保存領域
に対応するデジェネレートプライマー対を用いて、植物
のゲノミックDNAを鋳型としてPCRを行い、その後、得ら
れた増幅DNA断片をプローブとして用いて同じ植物のゲ
ノミックライブラリーをスクリーニングすることにより
単離され得る。そのようなプライマー対の例として、5'
-CARGCNYTNGGNGGNCAY-3'(配列番号3)または5'-YTNGG
NGGNCAYATGAAY-3'(配列番号4)と5'-ARNCKNARYTCNARR
TC-3'(配列番号5)との組合せが挙げられる。ここ
で、Nはイノシンであり、RはGまたはAであり、YはCまた
はTであり、そしてKはTまたはGである。
の指針に基づいて行うか、当業者に周知の手法で行い得
る。遺伝子ライブラリーの作製法、プローブとのハイブ
リダイゼーションに使用するストリンジェントな条件、
および遺伝子のクローニング法も当業者に周知である。
例えば、マニアティスらのMolecular Cloning, A Labor
atory Manual、第2版、Cold Spring Harbor Laborator
y Press, Cold SpringHarbor, New York(1989)を参照
のこと。
公知のヌクレオチド配列解析法または市販されている自
動シーケンサーにより決定し得る。
のに限定されず、合成ポリヌクレオチドも含み得る。合
成ポリヌクレオチドは、例えば、上記のようにして配列
決定された遺伝子を、当業者に周知の手法によって改変
することにより入手し得る。
用いて、適切な植物発現ベクターに連結され、公知の遺
伝子組換え技術により、植物細胞に導入され得る。導入
された遺伝子は、植物細胞中のDNAに組み込まれて存在
する。なお、植物細胞中のDNAとは、染色体のみなら
ず、植物細胞中に含まれる各種オルガネラ(例えば、ミ
トコンドリア、葉緑体など)に含まれるDNAを含む。
のいずれも含む。好ましい植物は、双子葉植物である。
双子葉植物は、離弁花亜綱および合弁花亜綱のいずれも
含む。好ましい亜綱は、合弁花亜綱である。合弁花亜綱
は、リンドウ目、ナス目、シソ目、アワゴケ目、オオバ
コ目、キキョウ目、ゴマノハグサ目、アカネ目、マツム
シソウ目、およびキク目のいずれも含む。好ましい目
は、ナス目である。ナス目は、ナス科、ハゼリソウ科、
ハナシノブ科、ネナシカズラ科、およびヒルガオ科のい
ずれも含む。好ましい科は、ナス科である。ナス科は、
ペチュニア属、チョウセンアサガオ属、タバコ属、ナス
属、トマト属、トウガラシ属、ホオズキ属、およびクコ
属などを含む。好ましい属は、ペチュニア属、チョウセ
ンアサガオ属、およびタバコ属であり、より好ましく
は、ペチュニア属である。ペチュニア属は、P.hybrida
種、P.axillaris種、P.inflata種、およびP.violacea種
などを含む。好ましい種は、P.hybrida種である。「植
物」は、特に他で示さない限り、花および/または果実
を有する植物体および植物体から得られる種子を意味す
る。「植物細胞」の例としては、葉および根などの植物
器官の細胞、カルスならびに懸濁培養細胞が挙げられ
る。
の発現を調節するプロモーターなどの種々の調節エレメ
ントが宿主植物の細胞中で作動し得る状態で連結されて
いる核酸配列をいう。好適には、植物遺伝子プロモータ
ー、ターミネーター、薬剤耐性遺伝子、およびエンハン
サーを含み得る。発現ベクターのタイプおよび使用され
る調節エレメントの種類が、宿主細胞に応じて変わり得
ることは、当業者に周知の事項である。本発明に用いる
植物発現ベクターは、さらにT-DNA領域を有し得る。T-D
NA領域は、特にアグロバクテリウムを用いて植物を形質
転換する場合に遺伝子の導入の効率を高める。
現するプロモーターを意味する。構成的プロモーター、
および花を含む植物体の一部において選択的に発現する
プロモーターが好ましい。プロモーターの例としては、
カリフラワーモザイクウイルス(CaMV)の35Sプロモータ
ー、およびノパリン合成酵素のプロモーターが挙げられ
るが、これらに限定されない。
質をコードする領域の下流に位置し、DNAがmRNAに転写
される際の転写の終結、およびポリA配列の付加に関与
する配列である。ターミネーターは、mRNAの安定性に寄
与し、そして遺伝子の発現量に影響を及ぼすことが知ら
れている。ターミネーターの例としては、CaMV35Sター
ミネーター、およびノパリン合成酵素遺伝子のターミネ
ーター(Tnos)が挙げられるが、これらに限定されな
い。
抜を容易にするものであることが望ましい。カナマイシ
ン耐性を付与するためのネオマイシンフォスフォトラン
スフェラーゼII(NPTII)遺伝子、およびハイグロマイシ
ン耐性を付与するためのハイグロマイシンフォスフォト
ランスフェラーゼ遺伝子などが好適に用いられ得るが、
これらに限定されない。
率を高めるために用いられ得る。エンハンサーとして
は、CaMV35Sプロモーター内の上流側の配列を含むエン
ハンサー領域が好適である。エンハンサーは、1つの植
物発現ベクターあたり複数個用いられ得る。
者に周知の遺伝子組換え技術を用いて作製され得る。植
物発現ベクターの構築には、例えば、pBI系のベクター
またはpUC系のベクターが好適に用いられるが、これら
に限定されない。
は、当業者に周知の方法、例えば、アグロバクテリウム
を介する方法、および直接細胞に導入する方法が用いら
れ得る。アグロバクテリウムを介する方法としては、例
えば、Nagelらの方法(Microbiol. Lett., 67, 325(199
0))が用いられ得る。この方法は、まず、植物発現ベク
ターで(例えば、エレクトロポレーションによって)ア
グロバクテリウムを形質転換し、次いで、形質転換され
たアグロバクテリウムをリーフディスク法等の周知の方
法により植物細胞に導入する方法である。植物発現ベク
ターを直接細胞に導入する方法としては、エレクトロポ
レーション法、パーティクルガン、リン酸カルシウム
法、およびポリエチレングリコール法などがある。これ
らの方法は、当該分野において周知であり、形質転換す
る植物に適した方法が、当業者により適宜選択され得
る。
えば、カナマイシン耐性などの薬剤耐性を基準として選
択される。選択された細胞は、常法により植物体に再生
され得る。
の手法を用いて、導入された本発明の遺伝子の発現を確
認し得る。この確認は、例えば、ノーザンブロット解析
を用いて行い得る。具体的には、植物の葉から全RNAを
抽出し、変性アガロースでの電気泳動の後、適切なメン
ブランにブロットする。このブロットに、導入遺伝子の
一部分と相補的な標識したRNAプローブをハイブリダイ
ズさせることにより、本発明の遺伝子のmRNAを検出し得
る。
された、植物の形質が変化した形質転換植物である。変
化した植物の形質(すなわち、植物の高さおよび/また
は節間の長さ)は、公知の野生種または園芸品種には存
在しない形質であることが好ましい。また、変化した植
物の形質は、園芸上価値の高い形質であることが好まし
い。さらに、変化した植物の形質は、得られた植物の子
孫にわたって、安定に保持されることが好ましい。
明する。この実施例で使用した制限酵素、プラスミドな
どは、商業的な供給源から入手可能である。
イヌナズナのSUPERMAN遺伝子にコードされるタンパク質
と、大豆の根粒に特異的に発現するGmN479遺伝子(河内
ら、私信)にコードされるタンパク質とを比較した。両
タンパク質に共通に存在するアミノ酸配列に基づいてPC
Rに用いるデジェネレート・プライマーを3種類作成し
た。遺伝子の5’側から3’側に向かう二つのプライマ
ーの塩基配列は、それぞれ5'-CARGCNYTNGGNGGNCAY-3'
(プライマー1、アミノ酸配列QALGGHに対応する;配列
番号3)および5'-YTNGGNGGNCAYATGAAY-3'(プライマー
2、アミノ酸配列LGGHMNに対応する;配列番号4)であ
り、3’側から5’側に向かうプライマーの塩基配列は
5'-ARNCKNARYTCNARRTC-3'(プライマー3、アミノ酸配
列DLELRLに対応する;配列番号5)である。ここで、N
はイノシンであり、YはCまたはTであり、RはGまたはAで
あり、そしてKはTまたはGである。
4,2159-2165に記載の方法に従って抽出したペチュニア
(Petunia hybrida var.Mitchell)のゲノミックDNAを
鋳型とし、プライマー1およびプライマー3を用いて、
94℃/10分の後、94℃/30秒、50℃/30秒、72℃/60秒
を30サイクルした後、72℃/7分の条件で第一のPCRを
行った。さらに第一のPCR産物の一部を鋳型にし、プラ
イマー2およびプライマー3を用いて第2のPCRを行っ
た(反応条件は第一のPCRと同じ)。増幅されたDNA断片
をTAクローニングベクター(Invitrogen製)に挿入し、
常法に従って大腸菌に導入した。形質転換された大腸菌
からプラスミドを抽出し、DNA塩基配列を決定した。そ
の結果、得られたDNA断片においては、SUPERMANおよびG
mN479に共通に含まれるジンクフィンガーモチーフの一
部がコードされていることがわかった。このDNA断片が
由来した遺伝子を、PetSPL2遺伝子と名付けた。なお、
この実験において、PetSPL2と類似の塩基配列を含む3
つの他のDNA(PetSPL1、3および4遺伝子)の存在が示さ
れた。PetSPL3遺伝子については、同一出願人による特
願平10-65921を参照。
ために、上記のDNA断片およびGENETRAP cDNA selection
kit(BRL社製)を用いて、pSPORTプラスミドベクター(B
RL社製)中に作製されたペチュニア(Petunia hybrida
var.Mitchell)の花のつぼみのcDNAライブラリー(BRL
社製キットによる)をスクリーニングし、数個のクロー
ンを得た。このようにして、ペチュニア由来のPetSPL2
遺伝子のcDNAを単離した。
よびアミノ酸配列の解析)実施例1で得られたクローン
のうち最長のクローンに含まれる約1.0kbのPetSPL2遺伝
子cDNA断片のDNA塩基配列を決定した(配列番号1)。
得られたDNA塩基配列に含まれるオープンリーディング
フレームから、タンパク質アミノ酸配列を推定した(配
列番号2)。
は、SUPERMAN遺伝子、PetSPL1遺伝子、およびPetSPL4遺
伝子に対して、それぞれ、58%、67%、および51%の塩
基配列相同性を示した。PetSPL2遺伝子とPetSPL3遺伝子
とは、25%の塩基配列相同性を示した。なお、塩基配列
の解析は、各遺伝子のコード領域のみで行った。
ERMANと類似のTFIIIAタイプのジンクフィンガーモチー
フを1個含んでいた。このことから、PetSPL2は転写因
子であることが推定された。PetSPL2は、SUPERMANおよ
びPetSPL3に対して、全アミノ酸配列レベルで、それぞ
れ37%および23%の相同性を示した。
フインガーモチーフにおけるアミノ酸配列を比較する。
ジンクフィンガーモチーフにおける、PetSPL2のSUPERMA
Nに対するアミノ酸配列相同性(約100%)は、PetSPL1
のSUPERMANに対する対応する相同性(約100%)と同じ
であり、PetSPL3のSUPERMANに対する対応する相同性
(約76%)と比較して高いことが示された(ここで、ジ
ンクフィンガーモチーフを表1の4番目のCから24番目
のHまでとして、アミノ酸配列相同性を計算した)。表
1はまた、SUPERMANおよび各PetSPLのC末端疎水性領域
の比較を示す。
属し、よりSUPERMANに類縁性の高い新規な転写因子であ
ることが推定される。
クレオチドを含む植物発現ベクターの構築)プラスミド
pBI221(Clontechから購入)中のCaMV 35Sプロモーター
を含むDNA断片(HindIII-XbaI断片)およびNOSターミネ
ーターを含むDNA断片(SacI-EcoRI断片)を順次プラス
ミドpUCAP(van Engelen,F.A.ら、Transgenic Res.4:28
8-290(1995))のマルチクローニングサイトに挿入し、p
UCAP35Sを作製した。一方、PetSPL2を含むpSPORT/PetSP
L2プラスミドをKpnIサイトおよびSacIサイト(ベクター
中のサイト)で切断し、pUCAP35SのKpnIおよびSacIサイ
トの間に挿入した。さらにこの組換えプラスミドをAscI
およびPacIで切断し、PetSPL2をコードするDNA断片を、
バイナリーベクターpBINPLUS(van Engelen,F.A.ら、(1
995),前出)のAscIおよびPacIサイトに導入した。
(pBIN-35S-PetSPL2)は、図2に示されるように、CaMV 3
5Sプロモーター領域(P35S;0.9kb)、本発明のPetSPL2
をコードするポリヌクレオチド(PetSPL2;1.0kb)、お
よびノパリン合成酵素のターミネーター領域(Tnos;0.
3kb)を含んで構成されている。図2のPnosは、ノパリ
ン合成酵素のプロモーター領域、NPTIIはネオマイシン
ホスホトランスフェラーゼII遺伝子を示す。LBおよびRB
は、それぞれT-DNA left borderおよびT-DNA right bor
derを示す。
細胞への導入) (1)(アグロバクテリウム・チュメファシエンスの形
質転換) アグロバクテリウム・チュメファシエンスLBA4404株(C
lontechから購入)を250μg/mlのストレプトマイシンと
50μg/mlのリファンピシンを含むL培地中、28℃で培養
した。Nagelら(1990)(前出)の方法に従って、この
菌株の細胞懸濁液を調製した。実施例3で構築したPetS
PL2遺伝子高発現ベクターを、エレクトロポレーション
により、上記菌株に導入した。
オチドのペチュニア細胞への導入) 上記(1)で得られたアグロバクテリウム・チュメファ
シエンスLBA4404株を、YEB培地(D.M.Glover編、DNA Cl
oning,IPL PRESS,第2巻、78頁)で振とう培養(28℃,2
00rpm)した後、滅菌水で20倍に希釈した。この希釈液
中で、ペチュニア(Petunia hybrida var.Mitchell)の
葉片と共存培養した。2〜3日後、カルベニシリンを含
む培地で上記細菌を除去し、その後、この葉片を2週間
ごとに選択培地で継代培養した。上記PetSPL2遺伝子と
共に導入されたpBINPLUS由未のNPTII遺伝子発現による
カナマイシン抵抗性を指標として、形質転換されたペチ
ュニア細胞を選抜した。常法により、形質転換細胞から
カルスを誘導した後、植物体に再分化した。
るPetSPL2遺伝子の発現)実施例4で得られたPetSPL2形
質転換ペチュニア13個体の葉から、全RNAを抽出した。
抽出物10μgずつを変性アガロース電気泳動によって展
開し、常法に従ってGenescreen plusフィルター(Dupon
t製)にブロッティングした。DIG RNAラベリングキット
(Boeringer Mannheim製)を用いて標識したPetSPL2アン
チセンスRNAを用い、キットの指示に従ってハイブリダ
イゼーションおよびフィルターの洗浄を行った。洗浄
後、フィルターをXARフィルム(Kodak製)に常温で1時
間露光した。図3は、13個体からのPetSPL2遺伝子mRNA
を検出した変性アガロースゲル電気泳動像のフルオログ
ラムを示す。独立の形質転換ペチュニア13個体のうち、
4個体が高発現プロモーターによる制御によってPetSPL
2mRNAを高レベルに発現していることが示された。
発現する形質転換ペチュニアの表現型)PetSPL2遺伝子
を高レベルに発現する4個体の独立の形質転換ペチュニ
アのうち、比較的発現レベルが低い1個体を除く3個体
において、以下のような共通した表現型が観察された。
植物体に見られる最も顕著な変化は、花序の節間の短縮
(節間伸長の抑制)およびそれに伴う矮化である(図
4、左はPetSPL2形質転換ペチュニア、右は野生型ペチ
ュニアを示す)。この変化は、栄養成長期よりも生殖成
長期(花序)においてより顕著に表れた。花序の節間の
長さは、野生型の十分の一以下になることが示された
(図5、左は野生型ペチュニアの節間、右はPetSPL2形
質転換ペチュニアの節間を示す)。その他、葉が丸みを
帯び、花が少し小さいなどの変化が見られた(図4)。
してはシロイヌナズナのERECTA遺伝子が報告されている
(Toriiら、1996、Plant Cell,8:735)。しかし、EREC
TA遺伝子と本発明のPetSPL2遺伝子との間には、塩基配
列レベルでもアミノ酸配列レベルでも有意な相同性は認
められない。植物ホルモンの合成やその制御に関与する
遺伝子の中にも節間を短縮させる遺伝子(rolAなど)が
知られている。しかし、これらの植物ホルモン関連遺伝
子は、節間伸長の制御以外に多面的効果を示すことが知
られている(Dehioら、1993、Plant Mol.Bio.23:119
9)。
ニアは節間の短縮により矮性となる結果、野生型と比較
して花姿が大幅に変化することが示された。従って、Pe
tSPL2遺伝子の導入は、特に節間が伸長する傾向のある
花卉または園芸品種について有用であることが理解され
る。花姿の大幅な変化は、植物に新たな鑑賞価値をもた
らし得る。また、草丈の抑制は、植物に耐倒伏性を与え
る点で、大きな園芸上の価値を有し得る。さらに、PetS
PL2遺伝子を導入した果樹は、樹形がコンパクトになる
ことが期待される。これは、果実の収穫作業を効率化し
得る点で有意義である。
得る転写因子をコードする遺伝子が提供される。この遺
伝子を利用することにより、植物の形質が変化した植物
を作出し得る。作出された植物には、野生種および園芸
品種には存在しないか極めてまれである形質が付与され
るため、園芸上有用である。
配列を示す。
L2)の概略を示す。
伝子のmRNAを検出した変性アガロースゲル電気泳動像の
フルオログラムを示す。
(右)野生型ペチュニアの植物体とを撮影した生物の形
態を示す写真を示す。
2形質転換ペチュニアの節間を撮影した生物の形態を示
す写真を示す。
5)
遺伝子を植物細胞に導入する工程、および該遺伝子が導
入された植物細胞を植物体に再生する工程を包含する、
植物の形質が変化した植物を作出する方法。
に記載の方法。
に記載の方法。
求項7に記載の方法。
まれている、請求項5に記載の方法。
の方法により作出された、植物の形質が変化した植物。
Claims (9)
- 【請求項1】 以下の(a)または(b)のDNAを含む
遺伝子: (a)配列番号1によって示される塩基配列の第190
位から第807位までの塩基配列を有するDNA;または
(b)(a)の塩基配列を有するDNAとストリンジェン
トな条件下でハイブリダイズし、かつ植物の形質を変化
させ得る転写因子をコードするDNA。 - 【請求項2】 以下の(i)または(ii)の転写因子を
コードする遺伝子: (i)配列番号2によって示されるアミノ酸配列の第1
位から第206位までのアミノ酸配列を含む転写因子;
または(ii)アミノ酸配列(i)において、1またはそ
れ以上のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミ
ノ酸配列を有し、かつ植物の形質を変化させ得る転写因
子。 - 【請求項3】 前記植物の形質が、植物の高さおよび節
間の長さからなる群より選択される、請求項1または2
に記載の遺伝子。 - 【請求項4】 請求項1から3のいずれか1つに記載の
遺伝子を植物細胞に導入する工程、および該遺伝子が導
入された植物細胞を植物体に再生する工程を包含する、
植物の形質が変化した植物を作出する方法。 - 【請求項5】 前記植物が双子葉植物である、請求項4
に記載の方法。 - 【請求項6】 前記植物がナス科植物である、請求項5
に記載の方法。 - 【請求項7】 前記植物がペチュニア属植物である、請
求項6に記載の方法。 - 【請求項8】 前記遺伝子が植物発現ベクターに組み込
まれている、請求項4に記載の方法。 - 【請求項9】 請求項4から8のいずれか1つに記載の
方法により作出された、植物の形質が変化した植物。
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