HUT51332A - Process for expressing p.falciparum cirkumsporozoita protein by yeast - Google Patents

Process for expressing p.falciparum cirkumsporozoita protein by yeast Download PDF

Info

Publication number
HUT51332A
HUT51332A HU885096A HU509688A HUT51332A HU T51332 A HUT51332 A HU T51332A HU 885096 A HU885096 A HU 885096A HU 509688 A HU509688 A HU 509688A HU T51332 A HUT51332 A HU T51332A
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
protein
vector
fragment
host
falciparum
Prior art date
Application number
HU885096A
Other languages
English (en)
Inventor
Michel Dewilde
Anne-Marie Gathoye
Original Assignee
Smithkline Biolog
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Smithkline Biolog filed Critical Smithkline Biolog
Publication of HUT51332A publication Critical patent/HUT51332A/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/44Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from protozoa
    • C07K14/445Plasmodium
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/80Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • C12N15/81Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

A jelen találmány P.falciparum cirkumsporozoita fehérje kifejezésével foglalkozik élesztőkkel, valamint olyan vakcinával, amely ilyen fehérje immunprotektív mennyiségét tartalmazza.
Számos, nem régi tanulmány azt sugallja, hogy a védő (protektív) immunitást valamely érzékeny gazdaszervezetben Plazmodium adott fajtáinak sporozoita stádiumaival történő fertőzésére olyan antitestek közvetíthetik, amelyeket az adott sporozoita cirkumsporozoita fehérjéjére (CS fehérje) az ilyen gazdaszervezetek termelnek. A jelen találmány lehetővé teszi a P. falciparum humán malária parazita vagy immunogén származéka CS fehérjéjének termelését élesztővel, rekombináns DNS technika segítségével.
Kívánatos az élesztők alkalmazása ilyen P.falciparum CS fehérjék termeléséhez többféle okból, beleértve az endotoxin jól ismert és megbízható fermentációs jellemzőit, amikor az ilyen CS fehérjét élesztőben állítják elő a gram-negatív baktérium-sejtek, mint p. E.coli helyett.
Nussenzweig és munkatársai (4,466,917 lajstromszámú amerikai egyesült államok-beli szabadalmi leírás) egy sporozoita polipeptidet alkottak meg Plasmodium falciparumból, amelyet Pf-44 fehérjének azonosítottak, és leírták ennek klónozását, valamint E.coliban való kifejezését.
Sharma és munkatársai /Science, 228, 279-282 (1985)/ Plasmodium knowlesi cirkumsporozoita fehérje (CS) egy részének kifejezését ismertetik élesztőkkel, egy, az élesztő ··*· ·· ·««· ·· ·· • · · · · · • · ····♦·· a • · · · »···
- 3 alkohol dehidrogenázl gén 5' szabályozó területet tartalmazó kifejező vektort alkalmazva a P.knowlesi CS gén szekvencia 5' felfele területe helyett.
A New York University (WO 84-02922-A számú PCT közzétételi irat, közzétéve 1984. augusztus 2-án) a P.knowlesi CS fehérje ismétlődő egységét kódoló terület egy részének klónozását, és béta-laktamáz és béta-galaktozidáz fúziós termékeik kifejeződését ismerteti E.coliban.
Kemp és munkatársai (W084-02917-t) a P. falciparum vérstádiumából származó CS fehérjét kódoló szekvencia klónozását és E.coliban való kifejezését ismertetik.
Dame és munkatársai /Science 225 , 593 (1984)/ beszámolnak a P. falciparum CS fehérjéje klónozásáról és kifejezéséről E.coliban. A fehérjéről azt írják le, hogy mintegy 412 aminosavat tartalmaz, mintegy 44000 molekulatömeggel. Ez egy tetrapeptid 41 egymás utáni ismétlődését tartalmazza. A CS fehérje ellen képződött monoklonális antitestekhez kötött ismétlődő területből szintetikus 7-, 11- és 15-gyökös peptidek származnak.
Ellis és munkatársai /Natúré 302, 536 (1983)/ beszámolnak béta-laktamáz - P.knowlesi CS fehérje fúziós termék kifejeződéséről E.coliban.
Weber és munkatársai /Molecular and Bacterial Parasitology, 15 , 305-306 81985)/ ismertetik P. falciparum egy brazil törzse E.coliban klónozott CS fehérje génjének alkalmazását vizsgáló mintaként 17 másik P. falciparum törzs szerkezetének elemzésére nukleinsav hibridizálással, és arra a következtetésre jutnak, hogy a CS fehérje gén nagy ·♦»· ·· ·«·« ·« ·· • · · · · · · • · ···· ··· · • · · · · ·· ν· ··· ·· ···· mértékben megőrződött P. falciparumban, vakcina kifejlesztése a CS fehérjével komplikálódik a törzsvariációkkal.
Arnot és ismertetik CS génből célból, könyvtárából és hogy a malária valószínűleg nem munkatársai /Science, 230, P.vivax CS fehérjéjének klónozását, származó hogy
815-818 (1985)/
P. cynomolgi vizsgáló mintákat alkalmazva, abból a klónozott P.vivax genom DNS bakteriofág homológ gént izoláljanak és meghatározzák teljes kódoló szekvenciáját; arra a következtetésre jutottak, hogy a P.vivax CS fehérjének kódoló szekvenciája homológ a P. knowlesi CS génjének szekvenciájával, de nem azonos a P. falciparuméval.
Young és munkatársai /Science, 228, 958-962 (1985)/ ismertetik P. falciparum CS fehérje kifejeződését, amelyet esetleg humán malária vakcinában lehet alkalmazni.
A Walter and Eliza Hall Institute of Medical Research /W0 84/02917 számú PCT közzétételi irat, nyilvánosságra került 1984. augusztus 2-án) ismertet olyan mesterségesen megalkotott polinukleotid szekvenciákat, amelyek lényegében megfelelnek a P. falciparum mRNS vagy genom DNS részének vagy egészének; ismertetik továbbá az ilyen szekvenciának megfelelő peptideket és az ezek előállításához alkalmas módszereket, valamint egy ilyen peptidet tartalmazó kompozíciót P. falciparum antigén elleni immunválaszok stimulálására emlősökben.
Mazier és munkatársai /Science, 231, 156-159 (1986)/ ismertetik, hogy P. falciparum cirkumsporozoita fehérjék számos rekombináns és szintetikus peptidjével immunizált egerekben keletkező antitesteket értékeltek védő aktivitásra humán hepatocita tenyészet rendszerben.
· »· V
Barr és munkatársai /Modern Approaches to New Vaccines and
AIDS 22. oldal, Cold Spring Harbor, New York, 1986 szeptember 3-14.) ismertetik a P.vivax CS fehérje kódoló szekvencia egy részének kifejeződését S. cerevisiae-val, ahol a nevezett 2/glice raldehid-3 van fuzionálva.
szekvencia élesztő alkohol dehidrogenázfoszfát dehidrogenáz hibrid promotorral Barr és munkatársai bemutatják egy szabályozott hibrid promotor alkalmazását P. vivax CS fehérje kifejeződéséhez. Ennek a promotornak az exakt szerkezete azonban nincs megállapítva. A promotorhoz való fúzióhoz alkalmazott CS gén szekvenciából hiányzik a Cterminális terület, amely egy horgony terület a beiktatáshoz a sejtmembránban. Az exakt határok nincsenek megnevezve. Az sincsen feltárva, vájjon a konstrukcióban alkalmazott génszekvencia tartalmazza-e a szignálszekvenciát, vagy sem.
Az alábbiakban röviden összefoglaljuk a találmányt.
Ez a találmány rekombináns DNS vektorra vonatkozik, amely egy DNS szekvenciát tartalmaz operatívan hozzákapcsolva egy kifejező kontroll szekvenciához és kívánt esetben tartalmaz továbbá egy az élesztőben működőképes replikont, ahol a fenti DNS szekvencia Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéjének kódoló szekvenciáját tartalmazza.
A jelen találmány egy rekombináns DNS vektorral transzformált élesztő gazdasejtre is vonatkozik, ahol az említett vektor egy DNS szekvenciát tartalmaz operatívan hozzákapcsolva egy kifejező kontroll szekvenciához, és ·**· · · ··*· * · • · · · · • · · ♦ · · · « • · · · · ♦ · »· · · ··· · · • ♦ ♦ · kívánt esetben tartalmaz továbbá egy, az említett gazdasejtben. működőképes replikont, ahol a fenti DNS szekvencia Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéinek kódoló szekvenciáját tartalmazza. Ez a találmány ilyen transzformált gazdasejtek előállítási eljárására is vonatkozik, amely eljárás egy élesztő gazdasejt transzformálásából áll ilyen rekombináns vektorral.
A jelen találmány foglalkozik Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéje előállítási eljárásával is, amely eljárás magában foglalja egy rekombináns DNS vektorral transzformált élesztő gazdasejt tenyésztését megfelelő tenyésztő tápközegben és az ilyen fehérje izolálását egy ilyen gazdaszervezet tenyészet-lizátumából, ahol az említett vektor egy DNS szekvenciát tartalmaz operatívan hozzákapcsolva egy kifejező kontroll szekvenciához és kívánt esetben tartalmaz továbbá egy, az említett gazdasejtben működőképes replikont, ahol a fenti DNS szekvencia Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéinek kódoló szekvenciáját tartalmazza. Ez a találmány vonatkozik az így előállított fehérjére is, valamint olyan vakcinára, amely egy ilyen fehérje immunprotektív mennyiségét tartalmazza.
Az alábbiakban röviden ismertetjük az ábrákat.
Az 1. ábra a pRIT10162 előállítását bemutató folyamatábra.
A 2. ábra a pRIT10172, pRIT12570 és pRIT12569 plazmidok restrikciós endonukleázos térképe.
A 3. ábra a pRIT12290 restrikciós endonukleázos térképe.
A 4. ábra a pRIT12570 előállítását bemutató folyamatábra.
·· ·«·· ·· ··»· ·· • · · · · • · · ·♦· ··· ···· · ♦ · · ·· ·· ·· · · · · · ·
Az 5. ábra a pMC200 restrikciós endonukleázos térképe.
Az 1A. ábra vázlatos restrikciós térkép, amely a /(_mPfl klón szekvenciaelemzési stratégiáját mutatja be.
A 2A. ábra a P.falciparumból származó CS fehérje gén nukleotid szekvenciáját mutatja be.
Az alábbiakban részletesen ismertetjük a találmányt.
A Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéje kifejezés az immun-domináns felületi antigént jelenti a Plasmodium falciparum sporozoitán (CS fehérje).
A Plasmodium falciparum CS fehérje kódoló szekvenciát ismertetik Dame és munkatársai /Science 225, 593-599 (1984)/.
Ahogyan itt használjuk, a cirkumsporozoita fehérje, CS vagy CS fehérje magában foglalja mind a teljes hosszúságú Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjét, mind bármely cirkumsporozoita következőket cirkumsporozoita hosszúságú CS fragmentuma által fragmentumainak megőrzi védő származékát. A immunogén (a) a bármely kódoló
Plasmodium származéka Plasmodium származékát szekvencia falciparum kifejezés a falciparum , pl. a teljes valamely alimmunogén fehérje jelenti: fehérje fehérje kódolt származék, vagy egymás melletti alsorozata által kódolt származék, amely immunogén aktivitását, vagy (b) a Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérje módosított kódoló szekvenciájából származó bármely fehérje, amely megőrzi védő immunogén aktivitását. Az ilyen immunogén származékokat «··· ·· ···· ·· ·· • · · · · · · • · · ··· ··· · ··*· ·♦·· · ·· ·· · ·* «··· hagyományos technikákkal lehet előállítani, pl. Botstein és munkatársai módszerével /Science 229, 1193 (1985)/. A
P.falciparum CS fehérje kódoló szekvenciáinak': néhány immunogén szintetikus származékát ismertetik Ballou és munkatársai /Science 228, 996-999 (1985)/.
A jelen találmány szerinti rekombináns vektor magában foglal egy DNS molekulát operatívan összekapcsolva egy kifejezés szabályozó szekvenciával, és kívánt esetben magában foglal még egy olyan replikont, amely működőképes élesztőkben; a fentebb nevezett DNS molekula a Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéjének kódoló szekvenciáját tartalmazza. A replikon kifejezés a DNS-nek azt a minimális területét jelenti, amely úgy működik, hogy az ilyen rekombináns vektort megtartsa a vele transzformált élesztő gazda-mikroorganizmusban. Az ilyen replikonok jól ismertek a szakterületen. A kifejezés szabályozó szekvencia kifejezés bármely olyan területet jelent, amely szabályozza egy strukturgén kódoló szekvenciájának az átírását. Az ilyen kifejezés szabályozó szekvenciák jól ismertek a szakterületen. Az előnyös kifejezés szabályozó szekvenciák között találjuk az élesztő gliceraldehid-3Pdehidrogenáz gén (TDH3) promotort és az élesztő ornitin karbamoil transzferáz gén (ARG3) átírás terminációs területet. További hasznos kifejezés szabályozó szekvenciák vagy területek lehetnek azok, amelyek a glikolitikus út élesztő-génjéből származnak, pl. az enolázt, aldolázt, és foszfoglicerát kinázt kódoló gének; az élesztő alkohol dehidrogenáz gén; és általában azok a gének, amelyek a katabolizmusban részt vesznek, pl. az argináz gén. Az ilyen ·»·· ♦·»· ·· • 9 • · ·· ···
Λ • 99 • · · ··· ♦ • · · • · ·«· ·
Plasmodium beiktatásával már tartalmaz vektorokat hagyományos technikákkal lehet előállítani, falciparum CS kódoló szekvenciájának megfelelő fázisban egy olyan vektorba, amely egy replikont és egy kifejezés szabályozó szekvenciát olyan módon, hogy a DNS molekula hozzákapcsolva az ilyen kifejezés szabályozó Egy alkalmas vektor, lehet iktatni, lehet replikálódni és cerevisiae-ben, és Számos más élesztő transzformálás olyan replikációs szekvencia normálisan a jelen találmány szerinti DNS molekula extrakromoszomális fenntartását eredményezi plazmidként. Az ilyen replikonok olyan plazmid élesztőben a CS
YEpl3 mind operatívan van szekvenciához.
kódoló plazmid, E.coliban, mint ingázó szekvenciát be amely képes mind S. vektor.
amelybe pl. az fennmaradni ezért úgy ismert, vektor is ismeretes és hozzáférhető. A vektorokkal, amelyek autonóm (replikon) funkciót tartalmaznak, jól ismertek a szakterületeken. A transzformálás nem tartalmaznak a DNS molekula vektorokkal, működőképes eredményezheti a előnyösen olyan beépülését molekulát
Saccharomyces nemzetség cerevisiae-ben kifejezésre amelyek replikonokat, kromoszomális DNS-be. A DNS vektorba ligáljuk, amely a élesztőiben, elsősorban S. képes.
A DNS hasítását alkalmazott fragmentumok találmányban állítsuk elő, molekuláknak a beiktatását abból a fragmentumokat abból a célból rekombináns ezeknek a
DNS ligálását alkalmazott valamint célból, hogy a jelen találmányban állítsuk elő, az ilyen , hogy a jelen DNS molekulákat rekombináns DNS mikroorganizmusokba ismert pl. olyan technikákkal, technikákkal hajtjuk végre, • ·· amelyeket a jelen bejelentésben korábban idézett és később idézendő referenciák tartalmaznak. A körülményeket úgy választjuk meg, hogy elkerüljük a DNS és az enzimek denaturálódását. így pl. a pH-t olyan módon pufferoljuk, hogy mintegy 7,0 és 11,0 között maradjon, és a hőmérsékletet is 60 °C alatt tartjuk. A hasítást előnyösen 30-40 °C közti hőmérséklettartományban végezzük és a ligálást 0-10 °C közti hőmérséklettartományban hajtjuk végre. A jelen találmány kivitelezésében alkalmazott restrikciós enzimek és ligázok kereskedelmi forgalomban hozzáférhetők és az ezekkel együtt kapott instrukciókkal összhangban alkalmazzuk ezeket. Ligázként a T4 ligáz az előnyös.
A különböző fragmentumokat és végső konstrukciókat hagyományos módokon lehet egyesíteni. Sok esetben a géneket izoláljuk, restrikciós térképezésüket és szekvenciaelemzéseket elvégezzük. Eddig a mértékig ki lehet választani a szóban forgó szekvenciát, pl. a CS fehérje kódoló szekvenciát a gén hasításával, szükség esetén további manipulációt is alkalmazva, pl. levágást Bal31-gyel, in vitro mutagenezist, primer helyreállítást, stb., hogy kívánt méretű fragmentumot kapjunk, amely tartalmazza a kívánt szekvenciát és megfelelő végekkel rendelkezik. Kapcsolókat (linkereket) és adaptereket alkalmazhatunk a szekvenciák egyesítésénél, valamint az elveszett szekvenciák helyettesítésénél, ahol a restrikciós hely a szóban forgó területen belül van. A különböző fragmentumokat, amelyeket izolálunk, elektroforézissel és elektroelucióval tisztíthatjuk, ligálhatjuk más szekvenciákhoz, klónozhatjuk, újra izolálhatjuk és tovább manipulálhatjuk.
···· ·· ···· ·· ·· • · · · · · · • · · ··· ··· · ···· · · · · ·· ·· ··· ·· ····
- 11 A kifejezés szabályozó szekvenciák alkalmazása a CS fehérje kódoló szekvencia átírásának szabályozására lehetővé teszi a gazdasejtek növesztését nagy sűrűséggel a CS fehérje kódoló szekvencia kifejezése nélkül vagy csak alacsony szintű kifejezésével, majd a kifejezés indukálását a környezeti körülmények megváltoztatásával, pl. tápközeg, hőmérséklet, stb. megváltoztatásával.
így pl. a GAL4 szabályozó területtel rendelkező élesztősejteket tápanyagban dús tápközegben lehet növeszteni, glicerin/íe jsav kombinációjú tápközegben nagy sűrűségig, pl. középső vagy késői lóg fázisig, majd ezt a szénforrás átváltása követi galaktózra. A PH05 szabályozásnál a sejteket nagy foszfátkoncentrációnál (0,ΙΟ,5 mmól/1) lehet növeszteni. A hőmérséklet-érzékenységnél a sejteket 25 °C és 37 °C közti hőmérséklettartományban lehet növeszteni, majd a hőmérsékletet megfelelően változtatni kell 5-20 °C közti hőmérséklettartományba. A gazdaszervezetnek rendelkeznie kell a szabályozó rendszerrel az alkalmazott szabályozó területtel társulva.
A CS fehérje kódoló szekvencia fuzionálását a kifejezésszabályozóval intermedier vektorok alkalmazásával hajthatjuk végre, vagy egy másik módszer szerint a kódoló szekvenciát közvetlenül be lehet iktatni egy olyan vektorba, amely a kifejezés szabályozó szekvenciát tartalmazza. A CS fehérje kódoló szekvencia előnyösen úgy van elhelyezve a kifejezés szabályozó szekvenciához viszonyítva, hogy a CS fehérje kódoló szekvencia kifejezése révén szintetizált fehérje • · · · · · · • · · ··· ··· · ···· ···· ·· ·· ··· ·· ···· mentes legyen a fölösleges aminosavgyököktől.
- 12 A jelen találmány foglalkozik az ilyen rekombináns vektorral transzformált élesztő gazdasejtekkel és az ilyen gazdasejtek előállításának módszerével is. Az ilyen transzformálást hagyományos technikákkal hajtjuk végre, pl. Ito és munkatársai módszerével /J. Bacter. 153, 163-168 (1983)/. Az előnyös élesztő gazdasejtek között találjuk azokat, amelyek a Saccharomyces nemzetségbe tartoznak, és különösen azokat, amelyek a Saccharomyces cerevisiae fajba tartoznak.
A jelen találmány foglalkozik a Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérje előállításának eljárásával is; az eljárás abban áll, hogy a jelen találmány szerinti transzformált élesztő sejteket megfelelő tenyésztő tápközegben tenyésztjük, és a fehérjét az ilyen gazdasejtek tenyészetének lizátumából kinyerjük. A megfelelő tenyésztő tápközeg olyan tápközeget jelent, amely képessé teszi a transzformált gazdaszervezetet a túlélésre és amely képessé teszi az ilyen ^gazdaszervezetet arra is, hogy a CS fehérjét kinyerhető mennyiségben szakterületen felhasználandó jártasak, tenyésztő kifejezze. Azok, akik a méltányolni tudják, hogy a tápközeg függ a alkalmazott gazdasejttől.
CS fehérje izolálását az ilyen gazdaszervezet tenyészetének lizátumából hagyományos fehérje-izolálási technikákkal hajthatjuk végre.
A jelen találmány foglalkozik olyan vakcinával is, amely a jelen találmány eljárásával előállított P. falciparum CS fehérje immunprotektív mennyiségét tartalmazza. Az • · · ·
- 13 immunprotektív kifejezés azt jelenti, hogy a jelen találmány szerinti CS fehérjéből elegendő mennyiséget adunk be ahhoz egy fertőzött emberi gazdaszervezetbe, hogy megfelelő védő antitest válasz keletkezzék az ez utáni P.falciparum parazita fertőzések ellen. A jelen találmány szerinti vakcinában a jelen találmány szerinti polipeptid vizes oldatát, vagyis a jelen találmány szerinti transzformált élesztő gazdasejtek által kifejezett P.falciparum CS fehérje vizes oldatát, előnyösen fiziológiás pH-η pufferolva, közvetlenül alkalmazhatjuk. Egy másik módszer szerint a polipeptidet, előzetes liofilezéssel vagy a nélkül, összeverhetjük bármilyen ismert adjuvánssal, vagy abszorbeálhatjuk ezekre. Az ilyen adjuvánsok között találjuk többek között az alumínium-hidroxidot, a muramil-dipeptidet és a szaponinokat, pl. a Quil A-t. Példaként felhozott további változat lehet az, hogy a polipeptidet mikrorészecskékbe burkoljuk, pl. liposzómákba. Egy példaként felhozott még további változat szerint a polipeptidet immunstimuláló makromolekulához konjugáljuk, pl. elölt Bordatella vagy tetanusz toxoidhoz.
Vakcina-készítményekről általában írnak az alábbi kiadványban: New Trends and Developments in Vaccines, szerkesztők: Voller és munkatársai, kiadó: University Park Press, Baltimore, Maryland, USA (1978). A liposzómákkal való beburkolásról ír pl. Fullerton a 4,235,877 lajstromszámú amerikai egyesült államok-beli szabadalmi leírásban. Fehérjék konjugálását makromolekulákhoz ismertetik pl. Likhite (4,372,945 lajstromszámú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás), valamint Armor és munkatársai • · · · • · • ·
- 14 (4,474,757 lajstromszámú amerikai egyesült államok-beli szabadalmi bejelentés). A Quil A alkalmazását ismertetik pl. Dalsgaard és munkatársai /Acta Vet. Scand. 18. kötet, 349. oldal (1977)/.
Az élesztő-eredetű P.falciparum CS fehérje mennyiségét, amely az egyes vakcina-adagokban jelen van, úgy választjuk meg, mint azt a mennyiséget, amely immunprotektív választ indukál a nélkül, hogy jelentős káros mellékhatásokat indukálna. Az ilyen mennyiség változhat attól függően, hogy milyen adott polipeptidet alkalmazunk és a vakcina van-e adjuválva vagy nincs. Általában az várható, hogy az egyes dózisok 1-1000 ^g, előnyösen 10-200 ^tg polipeptidet tartalmaznak. Egy adott vakcina optimális mennyiségét standard tanulmányokkal lehet megállapítani, beleértve az antitest titerek és más válaszok megfigyelését a betegben. Az induló vakcinálást követően a betegek előnyösen emlékeztető oltást is kapnak mintegy 4 hét múlva, ezt követik ismételt emlékeztető oltások minden hat hónapban mindaddig, amig a fertőzés kockázata fennáll.
PÉLDÁK
Az alábbi példák csupán a találmány bemutatásának célját szolgálják, és nem korlátozó jellegűek. Az összes hőmérséklet Celsius fokban van megadva. A DNS manipulációkban alkalmazott enzimeket a Bethesda Research Laboratories-től, a New England Biolabs-tól és/vagy a Boehringertől szerezzük be, és a szállító útmutatásai szerint alkalmazzuk ezeket.
- 15 A példákban az alábbi rövidítéseket alkalmazhatjuk:
YNB: élesztő nitrogén bázis aminosavak nélkül (Difco Láb), 0,675%, amely 2% glükózt tartalmaz
PBS: foszfáttal pufferolt fiziológiás konyhasóoldat (pH 7,4) 8,0 gramm NaCl
0,2 gramm KC1
1,15 gramm Na2HP04
0,2 gramm KH2PO4
0,1 gramm CaC12
0,1 gramm MgCl2 . 6Η20 (literenként)
BSA: szarvasmarha szérum albumin (A 4378, Sigma)
L-tápközeg 10 gramm tripton gramm NaCl gramm élesztőkivonat ml 0,1 mól/literes MgSO^.
Ehhez autoklávozás után tiamid (1 mg/ml) aszeptikus oldatának 5 ml-ét adjuk. A szilárd tápközeghez 15 g agart adunk literenként
X-gal: 5-bróm-4-klór-indolil-/3 -D-galaktopiranozid.
A példa. A pRIT10167 plazmid megalkotása
A kiindulási anyag a p6y plazmid, amely a TDH3 kódoló élesztő gén DNS 2,1 kb-s HindlII fragmentumát tartalmazza pBR322-be klónozva. A pBR322-t Bolivár és munkatársai írták le /Gene, 2_, 95-113 (1977)/. A p6y plazmidot Musti és munkatársai alkották meg és jellemezték /Gene, 25 , 133 (1983)/, ezt mi Dr.Rosenberg M.-től (National Institute of
- 16 Health) kaptuk. A HindlII fragmentumot újra klónozzuk egy olyan pBR322 származékba, amelyben az EcoRI hely el van roncsolva, hogy a pRIT10164 plazmidot kapjuk meg (nem feltétlenül szükségszerű művelet^. Az alábbi manipulációkat hajtjuk végre, hogy egy BamHI helyet alkossunk meg a TDH3 kódoló szekvencia ATG kodonjának G gyökénél elhelyezve, és egy olyan HindlII BamHI DNS fragmentumot kapjunk TDH3 promotor aktivitással, amelyben a TDH3 szekvenciák épek és változatlanok a manipuláció során. A pRIT10164 DNS-t, amelyet a fentiek szerint állítunk elő, CsCl-etídium-bromid sűrűséggradiens centrifugálás két ciklusával tisztítjuk, lényegében úgy, ahogyan ezt Kahn és munkatársai leírták /Methods in Enzimology 68 , 268 (1979)/. 150^g pRIT 10164 DNS-t emésztünk teljességig 75 egység Xbal endonukleázzal, extraháljuk fenollal és éterrel, etanollal kicsapjuk, és a DNS-t újra szuszpendáljuk 0,01 mól/1 trometamin, HCl pufferban 1 vK9//l· 1 koncentrációban. Ennek az Xbal-gyel kezelt DNS-nek 20 ^cg-ját Bal31 nukleázzal kezeljük, hogy levágjuk a DNS 61 bázispárját az ATG kodon és az Xbal hely között. A Bal31-gyel végzett emésztéseket 30 °C hőmérsékleten hajtjuk végre, 1-3 percen át, olyan pufferban, amely 60 mmól/1 NaCl-t, 12 mmól/1 CaC^-t, 12 mmól/1 Mg CI2t, 1 mmól/1 EDTA-t, 20 mmól/1 trometamin. HCl-t tartalmaz (pH3,l); az eljárásban 1 egység Bal31 nukleázt alkalmazunk
20^tg DNS-re, 200 végső reakciótérfogatban.
Az enzimreakciót etilén-bisz (oxi-etilén-nitrilo) tetraecetsav (EGTA) hozzáadásával állítjuk le, hogy ennek végső koncentrációja 20 mmól/1 legyen, és a mintákat azonos • ·
- 17 térfogatnyi fenollal, majd éterrel extraháljuk, és etanollal kicsapjuk. Az egyes DNS mintákat újra szuszpendáljuk 20/11 10 mmól/l-es trometamin-HCl pufferban (pH 7,5). A Bal31 emésztés mértékét úgy mérjük, hogy az egyes DNS mintákból mintegy 2,5 /Lg-ot emésztünk Hpal endonukleázzal és a HpalXbal fragmentumok méretét összehasonlítjuk a pRIT10164-ből származó 335 bp-s Hpal-Xbal fragmentummal. A Bal31-gyel végzett 2 perces emésztésről úgy találjuk, hogy mintegy 4188 nukleotidot távolít el a pRIT10164 Xbal-Hpal fragmentumáról.
Ez az eredmény távolítódott el felé. 5/t g, 2 emésztünk BamHI azt jelzi, hogy hasonló számú bázispár a másik Xbal túlnyúlásról is az ATG kodon perces Bal31 emésztésből kinyert DNS-t endonukleázzal, extraháljuk fenollal, és etanolos kicsapással kinyerjük. Ebből a DNS-ből 2,3 g-ot kezelünk 5 egység T4 DNS ligázzal, és a ligálási keverék felét alkalmazzuk E.coli K12 MM294 törzs kompetens sejtjeinek transzformálására, Cohen és munkatársai módszere szerint /Proc. Natl. Acad. Sci. 69., 2110 (1972)/. A transzformált E.coli populáció 1 ml-ét hígítjuk 350 ml-re 200i/vtg/ml ampicillint is tartalmazó L-tápközeggel, és az így létrejött tenyészetből a teljes plazmid DNS-t tisztítjuk.
Ezt a plazmid DNS-t , amely Bal31-gyel indukált mintegy 40-80 bázispár-hiányban szenvedő plazmid-molekulák populációját tartalmazza, egymás után emésztjük 75 egység HindlII endonukleázzal és 96 egység BamHI endonukleázzal, hogy DNS fragmentumokat bocsássunk ki azokból a plazmidokból, amelyekben előzőleg egy BamHI helyet alkottunk • · ···· ··· · • · · · · · · meg a fentebb leírt kezelések utánt vagyis ahol Bal31 emésztés egy G gyöknél fejeződött be. Ezt a DNS emésztményt 1%-os preparatív agaróz gélen futtatjuk, és az 110-1000 bp közti méretnek megfelelő kívánt HindiII-BamHI fragmentumokat a gélből két szeletben kivágjuk, az egyik mintegy 1070 bp-s, a másik mintegy 1030 bp-s DNS-nek felel meg. A DNS-t a két agaróz gél szeletből kinyerjük, a kinyerést olyan módon végezve, hogy fagyasztás-felengedtetés két ciklusát végezzük és ezt nagy sebességű centrifugálás követi, hogy az agarózt üledékbe vigyük. A felülúszó folyadékot Millipore GV Millex szűrőn át leszűrjük, és a DNS-t etanolos kicsapás két menetével kinyerjük, majd 20^tl 0,01 mól/l-es trometamin-HCl pufferban (pH 7,5) újra szuszpendáljuk.
Az agaróz gél elektroforézis elemzése és az összehasonlítás a pRIT10164 DNS HindlII+Xbal emésztményével és a fág DNS HindlII+EcoRI emésztményéből kapott fragmentumokkal azt mutatja, hogy HindlII-BamHI fragmentumok két elkülönült populációját kapjuk, egyet mintegy 1070 bp becsült mérettel, és egyet mintegy 1030 bp mérettel, míg a pRIT 10164-ből származó szülő HindlII-Xbal fragmentum mérete 1120 bp. Az 1030 bp-s HindlII-BamHI fragmentum populációból mintegy 100 ng-ot ligálunk 200 ng pUC9 plazmiddal, amelyet előzőleg HindlII és BamHI endonukleázokkal emésztettünk és alkálikus foszfatázzal kezeltünk (lásd: Shine: 4,264,731 lajstromszámú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás), és a ligálási keveréket alkalmazzuk E.coli JM103 törzs kompetens sejtjeinek transzformálására, ahol a szelekciót ampicillin rezisztenciával végezzük. Az E.coli JM103 törzs transzformálását Cohen és munkatársai módszerével (fentebb • · idézett munka) hajtjuk végre.
Mind a pUC9 vektor plazmidot, mind a befogadó E.coli 3M103 törzset leírták Vieira és Messing /Gene, 19 , 259 (1982)/, ezeket Messing 3.-tői kaptuk meg (University of Minnesota). A pUC9 vektor kereskedelmi forgalomban beszerezhető az Amersham-tól (Buckinghamshire, Egyesült Királyság) és a Pharmacia-tól (Uppsala, Svédország). Az E.coli JM1O3 törzs általában beszerezhető Messing 3.-tői (University of Minnesota). Egy másik E.coli törzset lehet beszerezni az E.coli 3M103 törzs jellemzőivel, vagyis a 3M101-et, az American Type Culture Collectiontól (ATCC, Rockville, Maryland), ATCC 33876 letéti számon, és ezt is lehet alkalmazni gazdaszervezetként. Milliliterenként 400 ampicillin-rezisztens telepet kapunk és ebből 98-at vizsgálunk meg X-gal-t tartalmazó tápközegen. Ezek közül 95 fehér, jelezve az idegen DNS fragmentum sikeres beiktatását a HindlII és BamHI helyek közé a vektorban.
Az egyes transzformáns telepekből plazmidokat készítünk kis léptékű eljárással /Bimbóim és Doly ; Nucl.Acid Rés. 7_, 1513 (1979)/ a plazmid sokszorozása után spektinomicin (150 vM.g/ml) hozzáadása révén a növekedő tenyészethez.
A rekombináns plazmidokat 7,5%-os akrilamid gélen elemezzük
Avall és BamHI endonukleázokkal végzett kettős emésztéssel és összehasonlítjuk kódoló területét fragmentumokkal. Egy megfelelő AvalI-BamHI a pRIT10164 promotor-N-terminálist tartalmazó 450 bp-s Avall-Xbal20-90 bázispárok közti kiiktatásnak fragmentum vanxjelen a megvizsgált 36 ···· · · ···· · · ·· • · · · · · · • · ···· ··· · ···· a · · • · · · ··· · · «·»·
- 20 plazmidból 35-ben, amikor összehasonlítjuk pRIT10164-gyel. Három plazmidot választunk ki további tanulmányozásra: egyet mintegy 80 bázispáros kiiktatással (pRIT10166), egyet 50 bázispáros kiiktatással (pRIT10167, I. ábra), és egyet 45 bázispáros kiiktatással (pRIT10165). Plazmid DNS-t készítünk CsCl-etidium-bromid sűrűség-gradiens centrifugálással és mindegyikből 25 ^g-ot emésztünk EcoRI-gyel. Az EcoRI túlnyúlásokat ^-^P-ATP-vel jelezzük kinázos cserével és az egyes plazmidokból nukleotidszekvenciáját módszerével /Methods a HindlII-EcoRI fragmentumok
Maxam és Gilbert kémiai módosítási in Enzimology, 65 , 499 (1980)/ határozzuk meg. Az egyes rekombináns plazmidok pUC9 vektor részében jelen lévő EcoRI hely jelzése és az ebből a helyből végzett szekvenciaelemzés a kényelmes módja a szomszédos
BamHI hely körüli szekvencia meghatározásának, amely a kiiktatás végét jelzi a TDH3 DNS fragmentumban. Ez a szekvenciaelemzés azt mutatja, hogy a pRIT10166 plazmidban a BamHI hely újra kialakult az ATG kodontól 25 bázispárral fölfelé levő 5' nem-transzlatált területben elhelyezkedő G gyöknél; a pRIT10165-ben a BamHI hely a harmadik kodon második bázisánál helyezkedik el; és a pRIT10167-ben a BamHI hely az ATG kodon G gyökénél helyezkedik el.
A pRIT10167-ben így megalkotott TDH3 DNS HindiII-BamHI fragmentuma változatlan formában tartalmazza az összes olyan szekvenciát, amely szükséges a TDH3 promotor aktivitáshoz.
B példa. pRIT10172 vektor megalkotása.
A pRIT10167 1050 bp-s HindlII-BamHI TDH3 DNS beiktatást, • ·· · • · · · • ·
- 21 amelyet az A. példában leírtak szerint állítottunk elő, újra klónozzuk YEpl3 ingázó vektorba /amelyet Broach és munkatársai írtak le: Gene, 8_, 121 (1979)/ a vektor 2 mikronos DNS részében levő HindlII hely és a BamHI hely közé, hogy megkapjuk a pRIT 12159 rekombináns plazmidot. A pRIT12159 DNS-t azután Xbal és BamHI endonukleázokkal emésztjük és az így létrejött 1650 bp-s fragmentumot ligáljuk az ARG3 promotort tartalmazó hasonló Xbal-BamHI fragmentum helyébe a pRIT10774-en. A pRIT10774 plazmidot az alábbi irodalmi helyeken ismertetik: Cabezon és munkatársai: 575,122 számú amerikai egyesült államok-beli szabadalmi bejelentés/ bejelentve 1984. január 30-án; ez a plazmid tartalmazza az YEpl3 replikont, amelyből a természetes vektor BamHI és Xhol helyei in vitro manipulációval ki lettek iktatva, valamint egy 1470 bp-s HindlII-BamHI beiktatást, amely az ARG3 promotor területet tartalmazza, és egy 1150 bp-s BamHI-HindlII fragmentumot, amely az ARG3 átírás terminációs területet tartalmazza.
Az ARG3 promotor beiktatás helyettesítése TDH3 promotorral a pRIT10774-ben alakítja ki a pRIT10172 plazmidot, amely ennek megfelelően egy egyedi BamHI helyet tartalmaz a TDH3 promotor beiktatás ATG kodonjánál elhelyezve, és az 1150 Ορε BamHI-HindlII ARG3 DNS fragmentumon levő, átírásbefejezésre szolgáló funkcionális szignált megelőzve. Az idegen gént ennél fogva ennél a helynél lehet klónozni. Ezen kívül a két DNS beiktatás HindlII helyekkel van kötve, amely lehetővé teszi a kifejező egység modul (kazetta) eltávolítását 2200 bp-s HindlII fragmentumként más vektorokba való beiktatáshoz. A 2. ábra a pRIT10172 ···· ·· • · · · ·· • · • · · · · · · • · ···· ··· · ♦ · · · · · · ·· ·· ··· ·· ···«
- 22 restrikciós endonukleázos térképe.
I. PÉLDA
A FELTÉTELEZETT SZIGNÁL SZEKVENCIÁJA NÉLKÜLI P.FALCIPARUM CIRKUMSPOROZOITA FEHÉRJE KÚDOLÚ SZEKVENCIA KIFEJEZŐDÉSE ÉLESZTŐBEN
A. pRIT12570 és pRIT12569 plazmidok megalkotása
A WR201 plazmidot a Walter Reed Army Institute of Researchtól kapjuk, ez a ^mPfl-ből származó 2,3 kilobázisos (kb) EcoRI fragmentum beiktatásának /lásd Dame és munkatársai: Science 225 , 593-599 (1984)/ eredménye pUC8 vektorba, a fenti fragmentum tartalmazza a teljes Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérje gént. Az 1A. ábra mutatja aiXmPfl klón vázlatos restrikciós térképét és szekvenciaelemzési statisztikáját. Az ábrában bemutatott restrikciós enzimes hasítási helyek pozícióit a szekvenciából határozzuk meg és emésztéssel igazoljuk az alábbi enzimekkel: A, Avall; Ac, AccI; B, BstnI; D, Dral; Dd, Ddel; F, Foki; N, Ndel; R, Rsaí; S, Stul; T, TthlII, Tq, Taql; X, XhoII. Nyilak jelzik a meghatározott szekvenciák origóját, irányát és kiterjedését. A CS fehérje kódoló területet vastag vonal mutatja.
A 2A. ábra a P.falciparumból származó CS fehérje gén szekvenciáját mutatja be. A CS fehérje gén nukleotid szekvenciáját ^mPfl-ben mutatjuk be. A pUC8-at Vieira és munkatársai mutatják be /Gene, 19 , 259 (1982)/. A pUC8 vektor kereskedelmi forgalomban kapható az Amershamtól ···· · · ···· ·· · · • · · · · · · • · ···· ··· · • · · · · · · · • · ·· ··· ·· · · · ·
- 23 (Buckenghamshire, Egyesült Királyság) és a Pharmaciától (Piscataway, New Yersey, USA, és Uppsala, Svédország). A WR201 plazmid egy 1215 bázispáros (bp) Stul-Rsal fragmentumát, amely a P.falciparum CS fehérje kódoló szekvenciát tartalmazza a CS fehérje kódoló szekvencia első 52 bp-ja nélkül, elektroelucióval tisztítjuk 7,5%-os poliakrilamid elektroforézis gélről. Az Stul restrikciós endonukleáz a CS fehérje gént aszekvencia 18. kodonjánál hasítja. Mivel a CS fehérje első 16 aminosavának szekvenciája jellemző egy hasított szignál peptidre /Dame és munkatársai: Science, 225, 593-599 (1984)/, ezek az aminosavak vélhetően nincsenek jelen a sporozoitában lévő érett CS fehérjéken.
így a WR201 plazmid 1215 bp-s Stul-Rsal fragmentumának kódolnia kell a szekvenciából előre várt érett CS fehérje egészét az első két aminosav kivételével. Ezt a tompa végű Stul-Rsal fragmentumot fuzionáljuk, fázisban, a pRIT10172 élesztő kifejező vektor DNS polimerázzal helyreállított BamHI helyével szomszédos transzlációs iniciációs kodonhoz, amelyet úgy készítünk, ahogyan a 8. példában leírjuk (a betöltött BamHI hely ligálása az Stul helyhez átalakítja a
BamHI helyet). A pRIT10172 plazmid
DNS-ét BamHI endonukleázzal emésztjük, E.coli DNS (Klenow-fragmentum) kezeljük, fenollal polimerázl-gyel extraháljuk és etanolos kicsapással kinyerjük* 0,4ui<g-ot ebből a DNS-ből összekeverünk 0,2^g, fentebb leírt, WR201-ből származó 1215 bp-s Stul-Rsal fragmentummal, kezeljük T4 DNS ligázzal, és a ligálási keveréket alkalmazzuk E.coli K12 MM294 törzs kompetens sejtjeinek transzformálására, ahol a sejteket ·· • · · · · · · • · ······· · ···· ···· ·· ·· ··· · · ····
- 24 Cohen és munkatársai módszere szerint készítjük elő /Proc.Natl.Acad.Sci. USA 69., 2110 (1972)/. 1200 telepet vizsgálunk át telephibridizációs módszerrel /Grunstein és Hogness, Proc.Natl.Acad.Sci. USA, 72 , 3961 (1975)/ Whatman 541 szűrőkön, vizsgáló mintaként hézag (nick) transzlációval ^2p rádió-jelzett Stul-Rsal fragmentumot alkalmazva. A kiónok 20%-a pozitív jelet ad a vizsgáló mintával. A pozitív telepekből 28 plazmidot állítunk elő kisléptékű eljárással /Bimbóim és munkatársai: Nucleic Acids Research, 7_, 1513 (1979)/. A Stul-Rsal fragmentum orientációját BamHI és Sáli endonukleázokkal végzett kettős emésztéssel vizsgáljuk. A plazmidok közül 7 plazmid rendelkezik a korrekt orientációban lévő fragmentummal (az egyik az, amelyet pRIT12570-nek nevezünk, lásd a 2. ábrát) és 12 plazmid rendelkezik a rossz orientációban lévő fragmentummal (az egyik az, amelyet pRIT 12569-nek nevezünk, lásd a 2. ábrát). A 4. ábra olyan folyamatábra, amely a pRIT12570 készítését mutatja be.
A pRIT12570, pRIT12569 és pRIT10172 plazmidokat az alábbi élesztősejtekbe vezetjük be: Saccharomyces cerevisiae DC5 (leu2-3, leu2-112, his 3, can 1-11) és Saccharomyces cerevisiae 10S44C (leu2-3, leu2-112, pep4-3) (ezeket Crabeel M.-től kapjuk, Ceria Institute, Anderlecht, Belgium), a bevezetést lítium-acetáttal kezelt sejtek transzformálásával /Ito és munkatársai: J.Bacterial. 153, 163-168 (1983)/ és leucin függetlenségre végzett szelekcióval hajtjuk végre. Az ezzel a konstrukcióval várt fehérje az érett P.falciparum CS fehérje 394 ' aminosavát tartalmazza három aminosavhoz (MetAsp-Pro-) fuzionálva Nh^-terminálisánál, ezek a vektor (pRIT ·*·· ·· *··· ·· ·· • · · · » · · • · ···· ··· · ···· ···· ·· ·· ··· «· ····
- 25 10172) szekvenciájából cerevisiae 10S44C törzset Culture Collection-nál
Szerződés
18-án, ATCC DC5 törzset Collection-nál szabályaival
Budapesti augusztus cerevisiae Culture Szerződés számon.
származnak. A Saccharomyces deponáltuk az American Type (ATCC, Rockville, Maryland, USA) a szabályaival összhangban, 1986. 20819 letéti számon. A Saccharomyces is deponáltuk 1982. június összhangban, az American Type
2-án, a Budapesti
ATCC 20630 letéti
B. P.falciparum cirkumsporozoita fehérje szintézise élesztőben.
Saccharomyces pRIT12570, tartalmaznak, állítottunk tápközegben, hisztidin, vagy immunfolt-képzési Anal. Anal.
cerevisiae DC5 vagy 10S44C törzseket, amelyek pRIT12569 vagy pRIT10172 plazmidokat és amelyeket a korábbiakban leírtak szerint elő, külön-külön növesztünk folyékony amelyből hiányzik a leucin (YNB + 80 ^víg/ml YNB). A CS fehérje szekvenciákat fehérje technikával azonosítjuk /lásd Burnette: 195-203 (1981); Gershoni és Palade:
1-15 (1983); Towbin és Gordon: 3.
Biochem. 112,
Biochem. 131,
Immunoi. Methods 72 , 313-340 (1984)/, öt olyan monoklonális a.ntitest keverékét alkalmazva, amelyek CS fehérje ellen irányulnak /Dame xés munkatársai: Science, 225, 593 599 (1984)/. A fehérjék elektro-foltképzése után nitro^cellulóz szűrőn (Schleicher and Schüll, 0,45 ,/4) /Towbin és munkatársai: Proc . Natl. Acad . Sci . USA, 76 , 4350-4354 (1979)/ a szűrőt előinkubáljuk egy órán át 37 °C hőmérsékleten 3% • · · · • · • · · · · · · • · ···· «·· · *«·« · · · · • · · · ··· · · ···· zselatinnal PBS-ben. Ezt követően a szűrőt ötször mossuk 5-5 percig 0,1% Tween 20-at (polioxietilén szorbitán monolaurát) tartalmazó PBS-sel ., és a lemezt egy órán át kezeljük szobahőmérsékleten öt monoklonális antitest keverékével, amelyek CS fehérje ellen irányulnak /Dame és munkatársai: Science, 225, 593-599 (1984)/, a keverék 1% zselatint tartalmazó PBS-ben van. A szűrőlemezeket ötször mossuk 5-5 percig 0,1% Tween 20-at tartalmazó PBS-sel, és egy második biotinilezett birka anti-egér antitestet (Amersham) adunk hozzá 1% zselatint tartalmazó PBS-ben, és egy órán át tartjuk szobahőmérsékleten. A lemezeket ismét ötször mossuk
5-5 percig 0,1% Tween 20-at tartalmazó PBS-sel, és 30 percen át inkubáljuk szobahőmérsékleten sztreptavidin-biotinilezett torma-peroxidáz (HRP) komplex-szel. A lemezeket ismét mossuk háromszor 5-5 percig 0,1% Tween 20-at tartalmazó PBS-sel, és végül 30 (,<1 H202~vel és HRP Color Development reagenssel /amely 4-klór-l-naftolt tartalmaz (BioRad)z 30 mg 10 ml metanolban/ 50 ml PBS-ben inkubáljuk. Az antigének molekulatömegét az alábbi előfestett fehérje markerekből becsüljük meg: ovalbumin, alfa-kimotripszinogén, bétalaktoglobin, lizozim, citokróm-c XBRL).
A pRIT12570-et tartalmazó sejtekből származó fehérjékre fajlagos immunreakció olyan fehérje-fajtát mutat, amelynek molekulatömege a 30000 és 50000 dalton közti tartományban van. Ez azt /mutatja, hogy az élesztő által kifejezett, P.falciparum CS-sel rokon termék heterogén. Ezekből a heterogén anyagokból többet találunk a 10S44C-vel transzformált sejtekből származó fehérjék között, mint a DC5-tel transzformált sejtekből származó fehérjék között.
»··· ·· ···« ·· • · · · · • · ···· ··· • · · · · · · ·· · · ··· ·· • ·· ·
- 27 II. PÉLDA
Antitest-válasz - ELISA; P.falciparum CS fehérjét termelő élesztők elleni antiszérumok CS reaktivitása; Hepatocita blokkolás
A jelen találmány módszere szerint élesztővel készített
P.falciparum CS polipeptidet immunogenicitása alapján értékelhetjük azzal a módszerrel, amelyet Ballou és munkatársai körvonalaztak (699,116 bejelentési számú amerikai egyesült teljes leírását bejelentésbe).
államokbeli szabadalmi bejelentés; ennek referenciaként építjük be a jelen
III. PÉLDA
Élesztő által kifejezett P.falciparum CS fehérjét tartalmazó vakcina
Egy, a jelen találmány bemutatását szolgáló vakcinát állíthatunk elő a következőképpen: 3%-os aluminium-hidroxid pufferolt, vizes oldatához (10 mmól/1 nátrium-foszfát, 150 mmól/1 NaCl, pH6,8, szűréssel sterilizálva) a jelen találmány szerinti élesztő eredetű P.falciparum CS polipeptidet hozzáadjuk hasonló pufferban keverés közben, lOO^g/ml polipeptid .és 0,5 mg/ml alumínium (Al^ + ) végső koncentrációig. A pH-t 6,8 értéken tartjuk fenn. A keveréket egy éjszakán 0 °C hőmérsékleten tartjuk. Timerozált adunk hozzá 0,0005% végső koncentrációig. A pH-t ellenőrizzük, és ha szükséges, 6,8 értékre beállítjuk.
···· ·· ···· ·· ·· • · · · · · · • · ···· ··· · «··· ···· ·· ·· ··· ·· ····
IV. PÉLDA
Vektorok megalkotása a P. falciparum CS fehérje tetrapeptid ismétlődés____terület immunogén részek kifejeződéséhez élesztőben
A. pRIT12290 megalkotása
A pRIT10167-ből származó, 1050 bp-s HindiII-EcoRI fragmentumot (I.ábra), amelyet az A példában leírtak szerint készítünk el, és amely tartalmazza a HindlII-BamHI TDH3 promotor fragmentumot a pUC9 polilinker BamHI-Smal-EcoRI részével együtt, újra klónozzuk egy pBR322 származék plazmid HindlII és EcoRI helyei között, ahol plazmidból előzőleg kiiktattuk a BamHI helyet T4 DNS polimerázzal végzett betöltéssel és újra ligálással. Az így létrejött rekombináns plazmidot pRIT12176-nak nevezzük.
A pRIT10158 plazmid DNS-t (I.ábra), amelyet az alábbi V. példában leírtak szerint állítunk elő, EcoRI endonukleázzal emésztjük, és T4 DNS polimerázzal kezeljük, hogy betöltsük az EcoRI egyedi szál túlnyúlásokat. Ezt a készítményt tovább emésztjük Clal endonukleázzal. A pRIT10158 DNS további mintáját Clal és HaelII endonukleázokkal emésztjük, és egy 1150 bp-s Clal-HaelII fragmentumot nyerünk ki preparatív gélelektroforézissel ég elektroelucióval, ez a fragmentum hordozza az ARG3 gén transzkripciós terminációs kodonját. Ezt a fragmentumot ligáljuk EcoRI-gyel, T4 DNS polimerázzal és Clal-gyel kezelt pRIT10158 DNS-sel, és a ligálási keveréket alkalmazzuk E.coli MM294 törzs kompetens sejtjeinek transzformálására, ahol sejteket Cohen és ···· ·· ···· ·· ·· • · · · · · » • · · ··· ··· · ···· · · · · ·« ·· 999 99 9999
- 29 munkatársai (fentebb idézett munka) szerint készítjük elő; a szelekciót ampicillin rezisztenciára végezzük. A transzformált telepekből egy pRIT10162-nek nevezett plazmidot izolálunk, amelyben a Clal-HaelII ARG3 átírás terminációs fragmentum van beiktatva a pRIT10158-ban a Clal és a betöltött EcoRI helyek közé, ,és amelyben az EcoRI hely újra ki van alakítva. Az 1. ábra olyan folyamatábra, amely bemutatja a pRIT10162 előállítását. A pRIT10162 plazmid DNSt EcoRI és PstI endonukleázokkal emésztjük, összekeverjük a fentiekben leírtak szerint előállított (és szintén EcoRI és PstI endonukleázokkal emésztett) pRIT12176 plazmid DNS-sel, és a keveréket ligáljuk, majd E.coli K12 MM294 törzs transzformálására használjuk fel, ampicillin rezisztenciát alkalmazva, Cohen és munkatársai korábban idézett módszerei szerint. Egy plazmidot, a pRIT12208-at nyerjük ki ennek a transzformációnak egy telepéből, amelyben a pRIT12176-ból származó nagy, 4630 bp-s EcoRI-PstI fragmentum ligáivá van a pRIT10162-ből származó kis, 1930 bp-s EcoRI-PstI fragmentumhoz, és amelyben az ARG3 átírás terminális terület most a TDH3 promotor mellett helyezkedik el. Az ARG3 és TDH3 DNS területeket ki lehet metszeni a pRIT12208-ból egyedi 2200 bp-s fragmentumként HindlII endonukleázzal végzett emésztéssel. Abból a célból, hogy ennek a fragmentumnak a másik orientációját kapjuk meg a vektor szekvenciák szempontjából, a pRIT12208-ból származó 2200 bp-s HindlII fragmentumot újra klónozzuk egy pBR322 származék plazmid HindlII helyébe, amely plazmidban a természetes EcoRI és BamHl helyek ki lettek iktatva T4 DNS polimerázzal végzett betöltéssel és újra ligálással. Az így létrejött plazmidot, amelyben a 2200 bp-s HindlII fragmentum az ellenkező • ·· ···· ·· ·· • · · · · · · • · · ♦ · · ··· · • t · · · · · ♦ • · ·· ··· ·· · · · · orientációban van beiktatva a vektor szekvenciák szempontjából a pRIT12208-hoz hasonlítva, pRIT12290-nek nevezzük. A 3. ábra a pRIT12290 restrikciós endonukleázos hasítási térképe. Mind a p.RIT12208, mind a pRIT12290 vektorokban terminációs a TDH3 promotor fragmentum és az ARG3 átírásfragmentum egyedi , BamHI, Smal és EcoRI restrikciós helyekkel van elkülönítve, amely helyek alkalmasak kódoló szekvenciákat hordozó DNS fragmentumok klónozására; a promotor és átírás-terminációs területeket egy 2200 bp-s HindlII fragmentummal együtt ki lehet metszeni modul-ként vagy kazetta-ként más vektorokba való átvitelhez.
A BamHI hely különösen hasznos, mivel ez a TDH3 gén ATG kodonjánál helyezkedik el és így lehet alkalmazni más gének fúziójához a TDH3 promotorhoz abból a célból, hogy ezek élesztőben kifejeződjenek, amint alább példákkal is bemutatjuk. Az ilyen fúziós termékeket pRIT12208 vagy pRIT12290 származékokból lehet kinyerni kazetták vagy modulok formájában HindlII endonukleázzal végzett emésztéssel vagy más olyan restrikciós enzimek hasításával, amelyek hasítanak a szegélyező restrikciós helyeken.
B. Szintetikus kapcsolót (linkért) tartalmazó plazmid megalkotása P. falciparum CS fehérje tetrapeptid ismétlődő terület egy részének bevezetésével
A pRIT12290 plazmidot, amelyet a fenti A részben leírtak szerint állítottunk elő, emésztjük BamHI és EcoRI endonukleázokkal és összekeverjük egy szintetikus DNS • · • ·
fragmentummal, amelynek összetétele az alábbi:
5' GATCCTTAAG 3'
GAATTCTTA
A fragmentumok keverékét összeforrasztjuk és T4 DNS ligázzal ligáljuk, és E.coli MM294 törzs kompetens sejtjeinek transzformálására alkalmazzuk, ampicillin-rezisztenciát alkalmazva, hagyományos technikák szerint. Egyedi telepekből készített plazmidokat vizsgálunk egyedi EcoRI és BamHI endonukleáz restrikciós helyek jelenléte és egy Smal hely távollétére, amely eredetileg jelen van az eredeti pRIT1229O vektorban, de nincs jelen a kívánt rekombinánsban. A kiválasztott plazmid korrekt voltát DNS szekvenciaelemzéssel igazolhatjuk. A szintetikus DNS fragmentum beiktatása helyreállít egy BamHI helyet a TDH3 ATG kodont követően és egy stop kodont (TAA) szolgáltat az ATG kodonnal fázisban. Egy ilyen plazmid megalkotásának az a célja, hogy megfelelő vektort alkossunk meg a P.falciparum CS fehérje tetrapeptid ismétlődő egység terület 192 bázispáros részének fúziójához a TDH3 promotor területhez és egy stop kodont szolgáltassunk közvetlenül 3' felé egy ilyen kódoló területtől.
C. A P.falciparum CS fehérje tetrapeptid ismétlődő terület 192 bázispáros részét tartalmazó plazmid megalkotása
A WR201 plazmid 1215 bp-s Stul-Rsal fragmentumát, amelyet az
I. példában leírtak szerint tisztítottunk, és amely tartalmazza a CS fehérje kódoló szekvenciát az első 52 bp
nélkül, emésztjük Sau3A-val, hogy olyan kisebb fragmentumokat alakítsunk ki, amelyek magukban foglalnak, többek között, egy olyan 192 bp-s Sau3A fragmentumot, amely a CS fehérje 16 tetrapeptides ismétlődéseit kódolja . A fenti B rész szerinti módosított pRIT12290 vektor BamHI helye, amely az ATG iniciációs kodonnál helyezkedik el, fázisban van a P.falciparum CS fehérje ismétlődő epitópjának Sau3A helyével.
Ennek a plazmidnak a DNS-ét BamHI endonukleázzal emésztjük, fenollal extraháljuk és etanolos kicsapással kinyerjük. Ebből a DNS-ből 0,2,/vg-ot összekeverünk a fentebb leírtak szerint készített Stul-Rsal fragmentum Sau3A emésztményének
0,1-0,2 M_g-jával, kezeljük T4 u keveréket alkalmazzuk E.coli
DNS ligázzal és a ligálási
MM294 törzs kompetens sejtjeinek transzformálására, ampicillin rezisztenciát hasznosítva, hagyományos technikák szerint. Az egyes transzformánsokból plazmidokat készítünk és elemezzük 7,5V os akrilamid-gélen BamHI és EcoRI endonukleázokkal végzett kettős emésztés után, és összehasonlítjuk a szülő vektorral, az Stul-Rsal CS gén fragmentum Sau3A emésztményével és megfelelő molekulatömegű markerekkel, pl. Xxl74 DNS HaelII emésztményével.
A 200 bp-s BamHI-EcoRI beiktatott fragmentumot tartalmazó plazmidok megfelelnek a 192 bp-s Sau3A fragmentum beiktatásának a kívánt orientációban a CS kódoló szekvencia fúziójához az ATG iniciációs kodonhoz. A 192 bp-s Sau3A fragmentum beiktatása a kívánt orientációban helyreállítja a BamHI helyet az ATG kodonnál.
• · · ·
- 33 Ezen kívül egy ilyen plazmid emésztése Sau3A-val felszabadít egy ugyanolyan méretű, 192 bp-s fragmentumot, mint amelyet a Stul-Rsa fragmentum emésztéséből kapunk, amely tartalmazza a CS fehérje ismétlődő epitopot. Ez a konstrukció tartalmaz egy 67 aminosavas nyitott leolvasó keretet, amely a TDH3 promotor határvonalánál lévő ATG kodonnál indul, és a CS ismétlődő epitop beiktatásán keresztül a bevezetett szintetikus DNS fragmentumban lévő TAA kodonig terjed, amely közvetlenül 3' felé van a Sau3A helytől és 5' felé van az EcoRI helytől. A konstrukció korrekt voltát DNS szekvenciaelemzéssel lehet igazolni, és a plazmid emésztése HindlII endonukleázzal egy 2390 bp-s HindlII fragmentumot szabadít fel, amely tartalmazza a TDH3 promotort, a CS ismétlődő epitópot és az ARG3 terminációs területet. Ezt a HindlII fragmentumot lehet újra klónozni bármilyen alkalmas élesztő vektorral, pl. YEpl3-mal, és be lehet vezetni élesztőbe hagyományos technikák szerint.
A plazmidot emészthetjük BamHI endonukleázzal és összekeverhetjük és ligálhatjuk ismét a Stul-Rsal CS ismétlődő epitóp fragmentum Sau3A emésztményével, hogy bevezessük az epitóp egy olyan sorba kapcsolt (tandem) kópiáját, amely fázisban van az első kópiával, és mint korábban, helyreállít egy BamHI helyet az ATG kodonnál, feltéve, hogy a beiktatás orientációja korrekt. Ezt a folyamatot lehet ismételni, hogy felépítsük a 192 bp-s epitóp fragmentum ismétlődéseinek olyan sorozatát, amely két, három, négy, stb. egymást követő (tandem) kópiát tartalmaz. Ez a folyamat növeli a nyitott leolvasó keret hosszát, és fokozatosan nagyobb fehérjéket eredményez, • · ···· ··· · ··*· ♦ · · · • · · · ··· ·» ····
- 34 amelyek 131, 195, és 259 aminosavat tartalmaznak.
Ezeknek a konstrukcióknak az emésztése HindlII endonukleázzal fokozatosan nagyobb fragmentumokat szabadít fel, amelyek a kifejező kazettákat tartalmazzák, amelyeket újra lehet klónozni megfelelő élesztő vektorokba transzformáláshoz és élesztőbe való bevezetéshez ismert módszerekkel, pl. olyanokkal, amelyeket az I. példában leírtunk.
V. PÉLDA
PRIT1O158 plazmid megalkotása
A pMC2300 plazmidból (amely korlátozás nélkül rendelkezésre áll az American Type Culture Collection-nál, Rockville, Maryland, Amerikai Egyesült Államok, ATCC 39131 letéti számon) kapott 3300 bp-s HindlII fragmentumot, amelyet Crabeel M. és munkatársai írnak le /EMBO 3. 2_, 205-212 (1983)/, újra klónozzuk egy pBR322 származék plazmidba, amelyből előzőleg a természetes EcoRI hely ki lett iktatva T4 DNS polimerázzal végzett betöltéssel és újra ligálással. Az így létrejött rekombináns plazmidot, a pRIT10158-at (I.ábra) kiválasztjuk, amelyben a HindlII ARG3 gén beiktatás az ARG3 gén 3' területével rendelkezik a Clal hely közvetlen közelében a módosított pBR322 vektorban. Az 5. ábra a pMC200 restrikciós endonukleázos hasítási térképe.
Bár a fentiekben teljes mértékben leírtuk a találmányt és összes előnyös kiviteli módját, fel kell hívnunk a figyelmet, hogy a találmány nem korlátozódik kizárólag az itt leírt példákra, hanem magában foglal minden olyan módosítást is, amelyek belül vannak az ezután következő igénypontok oltalmi körén.

Claims (41)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Rekombináns DNS vektor, amely egy DNS szekvenciát tartalmaz operatívan hozzákapcsolva egy kifejezés szabályozó szekvenciához, azzal jellemezve, hogy a DNS szekvencia a Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéjét kódoló szekvenciáját tartalmazza.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti vektor azzal jellemezve, hogy tartalmaz még egy replikont is, amely működőképes élesztőben.
  3. 3. Az 1. igénypont szerinti vektor azzal jellemezve, hogy a kifejezés szabályozó szekvencia az élesztő gliceraldehid-3Pdehidrogenáz (TDH3) promotort tartalmazza.
  4. 4. A 3. igénypont szerinti vektor azzal jellemezve, hogy a kifejezés szabályozó szekvencia tartalmazza még az ARG3 átírás terminációs területét is.
  5. 5. A 4. igénypont szerinti vektor azzal jellemezve, hogy a WR201-nek 1215 bp-s Stul-Rsal fragmentumát tartalmazza, amelyben benne van a P.falciparum CS fehérje kódoló szekvencia, mintegy 50 első bp-ja nélkül.
  6. 6. Az 5. igénypont szerinti vektor azzal jellemezve, hogy ez a pRIT1257O vektor.
  7. 7. A 4. igénypont szerinti vektor azzal jellemezve, hogy
    - tartalmazza a P.falciparum CS fehérje 16 tetrapeptides is···· · · ···· ·· · · • · · · · · · • · ···· ··· · ···« ···· • « · · ··· · · · · · ·
    - 37 métlődéseit kódoló 192 bp-s Sau3A fragmentumot, amely a
    WR201 1215 bp-s Stul-Rsal fragmentumának Sau3A emésztéséből származik, ahol a nevezett Stul-Rsal fragmentum tartalmazza a P.falciparum CS fehérje kódoló szekvenciát, mintegy 50 első bp-ja nélkül,
    - vagy tartalmazza az ilyen 192 bp-s Sau3A fragmentum két, három, négy, vagy több egymás melletti kópiáját.
  8. 8. Élesztő gazdasejt rekombináns DNS vektorral transzformálva, ahol az említett vektor egy DNS szekvenciát tartalmaz operatívan hozzákapcsolva egy kifejezés szabályozó szekvenciához, azzal jellemezve, hogy a DNS szekvencia a Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéjének kódoló szekvenciáját tartalmazza.
  9. 9. A 8. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy a vektor tartalmaz még egy replikont is, amely működőképes élesztőben.
  10. 10. A 8. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy a kifejezés szabályozó szekvencia az élesztő gliceraldehid-3P-dehidrogenáz (TDH3) promotort tartalmazza.
  11. 11. A 10. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy a kifejezés szabályozó szekvencia tartalmazza még az ARG3 átírás terminációs területét is.
  12. 12. A 11. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy a vektor tartalmazza a WR201-nek 1215 bp-s
    - 38 Stul-Rsal fragmentumát, amelyben benne van a P.falciparum CS fehérje kódoló szekvencia, mintegy 50 első bp-ja nélkül.
  13. 13. A 12. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy a vektor a pRIT12570 vektor.
  14. 14. A 11. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy a vektor
    - tartalmazza a P.falciparum CS fehérje 16 tetrapeptides ismétlődéseit kódoló 192 bp Sau3A fragmentumot, amely a WR201 1215 bp-s Stul-Rsal fragmentumának Sau3A emésztéséből származik, ahol a nevezett Stul-Rsal fragmentum tartalmazza a P.falciparum CS fehérje kódoló szekvenciát mintegy 50 első bp-ja nélkül,
    - vagy tartalmazza az ilyen 192 bp-s Sau3A fragmentum két, három, vagy négy, vagy több egymás melletti kópiáját.
  15. 15. A 8. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy a Saccharomyces nemzetségbe tartozik.
  16. 16. A 15. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy a S.cerevisiae fajhoz tartozik.
  17. 17. A 16. igénypont szerinti gazdaszervezet azzal jellemezve, hogy ez a S.cerevisiae DC5 vagy 10S44C törzs.
  18. 18. Eljárás rekombináns DNS vektorral transzformált élesztő gazdaszervezet előállítására, ahol az említett vektor egy DNS szekvenciát tartalmaz operatívan hozzákapcsolva egy • · • ·· ···· ·· • · · · · • · ··· ··· • · · · · • · · · · ♦ ·
    - 39 kifejezés szabályozó szekvenciához, azzal jellemezve, hogy DNS fehérjéjét szekvencia a Plasmodium kódoló szekvenciáját tartalmazza
  19. 19. A 18. a vektor élesztőben igénypont tartalmaz falciparum szerinti eljárás azzal még egy replikont is, a
    cirkumsporozoita jellemezve, hogy amely működőképes szerinti eljárás azzal a kifejezés szabályozó szekvencia az élesztő gliceraldehid3P-dehidrogenáz (TDH32) promotort tartalmazza.
  20. 20.
    A 18.
    igénypont jellemezve, hogy
  21. 21. A 20. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, a kifejezés szabályozó szekvencia tartalmazza még az átírás szabályozó terminációs területét hogy
    ARG3
    21.
  22. 22. A a vektor tartalmazza, kódoló igénypont szerinti a
    1215 benne szekvencia, mintegy 5Q
    22.
  23. 23. A a vektor a
    WR201-nek amelyben igénypont pRIT12570 szerinti vektor.
    igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, bp-s Stul-Rsal fragmentumát van a P.falciparum CS fehérje első bp-ja nélkül.
    hogy eljárás azzal jellemezve, hogy
  24. 24. A 21.
    a vektor
    - tartalmazza a P.falciparum CS fehérje 16 tetrapeptides ismétlődéseit kódoló 192 bp-s Sau3A fragmentumot, amely a WR201 1215 bp-s emésztéséből származik, eljárás azzal jellemezve, hogy
    Stul-Rsal fragmentumának Sau3A ahol a nevezett Stul-Rsal fragmentum *··· ·· ···· ·· ·· • · · · · · * • · ···· · ·♦ · ···· *··· • « ·· ··· 9· · · · ·
    - 40 tartalmazza a P.falciparum CS fehérje kódoló szekvenciát mintegy 50 első bp-ja nélkül,
    - vagy tartalmazza az ilyen 192 bp-s Sau3A fragmentum két, három, négy, vagy több egymás melletti kópiáját.
  25. 25. A 18. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a gazdaszervezet a Saccharomyces nemzetséghez tartozik.
  26. 26. A 25. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a gazdaszervezet a S.cerevisiae fajhoz tartozik.
  27. 27. A 26. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a gazdaszervezet S.cerevisiae DC5 vagy 10S44C.
  28. 28. Eljárás Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéjének előállítására, amely eljárás magában foglalja egy rekombináns DNS vektorral transzformált élesztő gazdasejt tenyésztését megfelelő tenyésztő tápközegben és az ilyen fehérje kinyerését egy ilyen gazdaszervezet tenyészetének lizátumából, ahol az említett vektor egy DNS szekvenciát tartalmaz operatívan hozzákapcsolva egy kifejezés szabályozó szekvenciához, azzal jellemezve, hogy a DNS szekvencia a Plasmodium falciparum cirkumsporozoita fehérjéjét kódoló szekvenciáját tartalmazza.
  29. 29. A 28. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a vektor tartalmaz még egy replikont is, amely működőképes élesztőben.
    • ·
  30. 30. A 28. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a kifejezés szabályozó szekvencia az élesztő gliceraldehid3P-dehidrogenáz (TDH3) promotort tartalmazza.
  31. 31. A 30. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a kifejezés szabályozó szekvencia tartalmazza még az ARG3 átírás-terminációs területét is.
  32. 32. A 31. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a vektor tartalmazza a WR201-nek 1215 bp-s Stul-Rsal fragmentumát, amelyben benne van a P.falciparum CS fehérjekódoló szekvencia, mintegy 50 első bp-ja nélkül.
  33. 33. A 32. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a vektor a pRIT12750 vektor.
  34. 34. A 32. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a vektor tartalmaz egy 192 bp-s Sau3A fragmentumot, amely a P.falciparum CS fehérje 16 tetrapeptid ismétlődését kódolja, ahol a fenti fragmentum a WR201 1215 bp-s Stul-Rsal fragmentumának Sau3A emésztéséből származik, amely Stul-Rsal fragmentum tartalmazza a P.falciparum CS fehérje kódoló szekvenciáját az első mintegy 50 bp-ja nélkül.
  35. 35. A 28. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a gazdaszervezet a Saccharomyces nemzetségbe tartozik.
  36. 36. A 35. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a gazdaszervezet a S.cerevisiae fajba tartozik.
    * « • · ·
  37. 37. A 36. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy * a gazdaszervezet S.cerevisiae DC5 vagy 10S44C törzs.
    «
  38. 38. Fehérje azzal jellemezve, hogy a 26-33. igénypontok bármelyike szerint állítjuk elő.
  39. 39. Vakcina azzal jellemezve, hogy a 38. igénypont szerinti fehérje immunprotektív mennyiségét tartalmazza.
  40. 40. A 39. igénypont szerinti vakcina azzal jellemezve, hogy 1-lOOOjfg fehérjét tartalmaz.
  41. 41. A 40. igénypont szerinti fehérje azzal jellemezve, hogy 10-200(/4.9 fehérjét tartalmaz.
    KÖZZÉTÉTELI
    PÉLDÁNY pUC9-en klonozott TDH 3 • · ·· promotor fragmentum.
    BamHI hely az ATG (ATGGATCC)-nél
    ACC I .BamH l ,CU I
    E....EcoR I
    III
    Ηρ,.Ηρ» I
    S..
    X...
    xn,
    Restrikciós enzimek jelei A.
    a c ve-ktor szekvenciák klónozott fragmentumok pMC200-ból származó , 3300bp-s ARG 3 gén fragmentum üjraklónozása olyan pBR322-ben, amelyből az EcoRI hely ki van iktatva.
    Sál I Xba I xno I pRIT10158
    B
    1150 bp-s Clal-Hae fragmentum klónozása EcoR l-gyel, T4 DNS polimerázzal és Clal-gyel kezelt plazmidon
HU885096A 1987-01-30 1988-01-25 Process for expressing p.falciparum cirkumsporozoita protein by yeast HUT51332A (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US879187A 1987-01-30 1987-01-30
PCT/BE1988/000002 WO1988005817A1 (en) 1987-01-30 1988-01-25 Expression of the p. falciparum circumsporozoite protein by yeast

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HUT51332A true HUT51332A (en) 1990-04-28

Family

ID=21733689

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU885096A HUT51332A (en) 1987-01-30 1988-01-25 Process for expressing p.falciparum cirkumsporozoita protein by yeast

Country Status (8)

Country Link
EP (1) EP0278941A1 (hu)
KR (1) KR890700661A (hu)
AU (1) AU1092588A (hu)
DK (1) DK36988A (hu)
FI (1) FI884485A0 (hu)
HU (1) HUT51332A (hu)
PT (1) PT86639A (hu)
WO (1) WO1988005817A1 (hu)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU625713B2 (en) * 1988-02-19 1992-07-16 Microgenesys, Inc. Method for producing recombinant protein derived from the circumsporozoite gene of plasmodium falciparum
WO1990007006A1 (en) * 1988-12-21 1990-06-28 Smithkline Biologicals Expression of the plasmodium circumsporozoite protein in insect cells
CA2031468A1 (en) * 1989-12-08 1991-06-09 Mitchell S. Gross Malaria vaccine
CA2037151A1 (en) * 1990-03-23 1991-09-24 F. Hoffmann-La Roche Ag Plasmodium sporozoite antigen
US5736358A (en) * 1991-05-17 1998-04-07 Rmf Dictagene S.A. Dictyostelid expression vector and method for expressing a desired protein
NL9100869A (nl) * 1991-05-17 1992-12-16 Univ Lausanne Dictyostelide expressievector en werkwijze voor het tot expressie brengen van een gewenst eiwit.
GB9724531D0 (en) 1997-11-19 1998-01-21 Smithkline Biolog Novel compounds
WO2005063805A1 (en) * 2003-12-23 2005-07-14 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Antibodies against the amino terminus region of circumsporozoite protein prevent the onset of malaria infection
US9169304B2 (en) 2012-05-01 2015-10-27 Pfenex Inc. Process for purifying recombinant Plasmodium falciparum circumsporozoite protein

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ZA8410063B (en) * 1984-01-30 1985-10-30 Smith Kline Rit Expression of human alpha-1-antitrypsin in yeast
EP0175261B1 (en) * 1984-09-12 1991-12-11 Chiron Corporation Hybrid particle immunogens
NZ215023A (en) * 1985-02-07 1989-07-27 Smithkline Beckman Corp Vaccine against plasmodium falciparum and antigenic peptides

Also Published As

Publication number Publication date
KR890700661A (ko) 1989-04-26
DK36988A (da) 1988-07-31
WO1988005817A1 (en) 1988-08-11
FI884485A (fi) 1988-09-29
AU1092588A (en) 1988-08-04
EP0278941A1 (en) 1988-08-17
FI884485A0 (fi) 1988-09-29
DK36988D0 (da) 1988-01-26
PT86639A (pt) 1989-01-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5112749A (en) Vaccines for the malaria circumsporozoite protein
AU653387B2 (en) Antigen-presenting chimaeric protein
EP0267204B1 (en) Immunopotentiation
Sugiyama et al. Production of recombinant SERA proteins of Plasmodium falciparum in Escherichia coli by using synthetic genes
US5403581A (en) Coccidiosis vaccines
HUT51332A (en) Process for expressing p.falciparum cirkumsporozoita protein by yeast
JP3023997B2 (ja) 組み換えコクシジウム症ワクチン−5−7アイメリア表面抗原
EP0223711B1 (en) Protective synthetic peptide against malaria and encoding gene
EP0357208A1 (en) Salmonella transformant capable of expression of heterologous genes and useful as a recombinant vaccine
EP1357128B1 (en) The preparation and usage of plasmodium fusion antigen
IE904412A1 (en) Malaria vaccine
US5395614A (en) Protective Plasmodium falciparum hybrid proteins which contain part-sequences of the malaria antigens HRPII and SERP, the preparation and use thereof
EP0474891A1 (en) Vectors for expression of malarial antigens on the surface of Salmonella vaccine strains
AU635737B2 (en) Malaria vaccine
EP0250261A1 (en) Vaccines containing epitopes of both the CSP and a blood stage antigen of a plasmodium parasite
AU619443B2 (en) Immunopotentiation
US5976839A (en) Immunopotentiation through covalent linkage between immunogen and immunopotentiating molecules
JPS63283586A (ja) 酵母によるピー・ファルシパルム・サーカムスポロゾイトタンパク質の発現
AU617402B2 (en) Vaccines for malaria
NO884304L (no) Ekspresjon av plasmodium falciparum circumsporozoitt-protein hos gjaer.
Sandhu et al. Expression of the merozoite surface protein gp195 in vaccinia virus

Legal Events

Date Code Title Description
DFC9 Refusal of application