FR2766660A1 - Procede d'extermination des parasites des plantes - Google Patents

Procede d'extermination des parasites des plantes Download PDF

Info

Publication number
FR2766660A1
FR2766660A1 FR9809037A FR9809037A FR2766660A1 FR 2766660 A1 FR2766660 A1 FR 2766660A1 FR 9809037 A FR9809037 A FR 9809037A FR 9809037 A FR9809037 A FR 9809037A FR 2766660 A1 FR2766660 A1 FR 2766660A1
Authority
FR
France
Prior art keywords
plants
concentration
parasites
aqueous solution
culture solution
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
FR9809037A
Other languages
English (en)
Other versions
FR2766660B1 (fr
Inventor
Yoshitami Yanohara
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
SEIBUTU KINO KOGARU KENKYUSHO
Original Assignee
SEIBUTU KINO KOGARU KENKYUSHO
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by SEIBUTU KINO KOGARU KENKYUSHO filed Critical SEIBUTU KINO KOGARU KENKYUSHO
Publication of FR2766660A1 publication Critical patent/FR2766660A1/fr
Application granted granted Critical
Publication of FR2766660B1 publication Critical patent/FR2766660B1/fr
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N25/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Catching Or Destruction (AREA)
  • Hydroponics (AREA)
  • Cultivation Of Plants (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

Dans ce procédé pour exterminer les parasites, on trempe les plantes dans une solution aqueuse ayant une concentration supérieure d'au plus 0, 4 mole par litre à la concentration de la sève des plantes pendant une certaine durée, puis on les en retire.

Description

] 2766660
PROCEDE D EXTERMINATION DES PARASITES DES PLANTES
La présente invention est relative aux procédés d'extermination des parasites munis d'organes de respiration par la trachée, tels que les pucerons, les chenilles, les noctuelles, etc.... se rassemblant sur divers types de plantes, telles que les herbes comestibles ou les légumes verts, les légumes-racines, etc. La culture hydroponique classique met en oeuvre l'utilisation d'un récipient hydroponique placé dans un bâtiment spacieux de culture. La io solution de culture est mise dans le récipient hydroponique. Les racines des plantes sont immergées directement dans la même solution de culture et y absorbent ainsi des agents nutritifs. Il n'est ainsi plus nécessaire d'utiliser des herbicides, des agents de mise en condition du sol, etc. que l'on utilise pour la culture dans le sol. Mais de nombreux bâtiments utilisés pour la culture hydroponique sont ouverts et donc des parasites tels des pucerons, des chenilles et autres tendent à parasiter les plantes. En outre, même si le bâtiment de culture est fermé, des parasites y sont apportés de l'extérieur en
même temps que des porte-graines.
C'est pourquoi, on a utilisé jusqu'ici un insecticide ou un insectifuge pour exterminer ces parasites. Il s'ensuit que les produits chimiques pour l'agriculture, qui sont utilisés, restent sous la forme de résidus même dans la récolte produite par la culture hydroponique. Il y a donc un problème à résoudre. Les insectes tels que les pucerons, les chenilles, etc. ont des ouvertures dénommées stigmates à la surface de leur corps. De ces
stigmates, des trachées finement ramifiées s'étendent dans le tissu corporel.
De l'oxygène s'introduit dans le tissu de l'extérieur par le biais de ces trachées en passant par les stigmates. Du dioxyde de carbone est évacué à
l'extérieur par les stigmates. C'est ce que l'on appelle la respiration trachéale.
2 2766660
C'est pourquoi, lorsque des insectes sont maintenus dans la solution pendant la durée requise, les insectes mourront, puisque l'échange gazeux par leurs stigmates devient impossible. C'est ainsi, par exemple, que la durée nécessaire pour faire que des pucerons meurent est de 3 à 4 heures. Pour des noctuelles, elle est de 30 minutes à deux heures. Ceci montre que si le seul but est de faire en sorte que les parasites meurent, il suffit de tremper des plantes infestées de parasites pendant une longue durée. Mais il y a le danger que les plantes elles-mêmes puissent être sérieusement endommagées, si elles sont maintenues sans précaution dans la solution
o pendant une longue durée.
Du point de vue de la physiologie végétale, on se référera désormais au danger mentionné ci-dessus qui est couru par les plantes. Quand on trempe des plantes dans la solution aqueuse, l'échange gazeux des plantes par les stomates de leur feuille devient impossible et met un terme à leur photosynthèse. Mais même si les plantes cessent leur photosynthèse, elles peuvent la reprendre, pourvu que des cellules végétales puissent continuer à vivre lorsqu'elles sont sorties de la solution aqueuse après une immersion de
longue durée. Elles peuvent ainsi continuer à croître de manière normale.
Cela est bien connu. Dans ce cas, la vie ou la mort de cellules végétales immergées dans la solution aqueuse est régie par la pression osmotique de la solution aqueuse. Et cette pression osmotique est déterminée par la concentration de cette solution. Cela est également connu. D'une manière générale, la pression osmotique de la sève d'une cellule végétale varie en fonction de la nature de la plante. Mais elle est normalement de 5 à 10 atmosphère à la température ambiante et la concentration de la sève de la cellule végétale est comprise entre 0,2 et 0,8 mole par litre. Il est donc important de déterminer l'une par rapport à l'autre la pression osmotique et la
concentration de la solution aqueuse.
Compte tenu de ce qui précède, quand on trempe des plantes dans la solution aqueuse d'une concentration égale à celle de la sève de la cellule végétale, à savoir ayant une pression osmotique égale à celle de la sève de la cellule végétale, il ne se produit pas de diffusion d'eau entre la solution
aqueuse et les cellules végétales. Ainsi, les cellules végétales continuent-
elles à vivre en conservant leur forme.
3 2766660
Le fait est donc que, lorsque l'on trempe des plantes dans une solution aqueuse dont la concentration est inférieure à celle de la sève de la cellule végétale, à savoir en ayant une pression osmotique inférieure à celle des cellules végétales, les cellules végétales absorbent l'eau par leurs membranes cellulaires semi-perméables à partir de la solution aqueuse qui se trouve à l'extérieur et leur protoplasme gonfle au sein des cellules. En l'occurrence, les cellules végétales sont munies de parois cellulaires en tissu élastique perméable à l'extérieur des membranes cellulaires. En raison de cela, le protoplasme gonflé mentionné ci-dessus tend à exercer une pression d'écartement sur les parois de cellules mentionnées ci-dessus. En raison, de cette action du protoplasme, les parois cellulaires augmentent leur pression sur le protoplasme en vue de restaurer leur état initial. Au fur et à mesure que les cellules gonflent, la concentration en leur sein s'abaisse. Leur pression osmotique s'abaisse alors. Cet abaissement de leur pression osmotique fait que la pression de gonflement a tendance à augmenter. Quand la pression de la paroi, qui est égale à la pression de gonflement vient à être égale à la pression osmotique au sein de la cellule, les cellules tendent à cesser automatiquement d'absorber de l'eau de l'extérieur. Elles continuent alors à vivre dans un état gonflé et tendu. Ce phénomène s'applique également lorsque les plantes sont immergées dans la solution aqueuse de
concentration 0, c'est-à-dire dans de l'eau.
En outre, dans le cas o l'on immerge des plantes dans la solution aqueuse ayant une concentration plus grande que celle de la sève de la cellule végétale ou ayant une pression osmotique plus grande que celle de la sève de la cellule végétale, I'eau au sein des cellules tend à s'exsuder et le protoplasme à se rétrécir. On induit finalement une plasmolyse. Lorsque la plasmolyse est encore à un état précoce, les cellules plasmolysées reprendront leurs formes initiales o se déplasmolyseront lorsqu'elles seront immergées à nouveau dans de l'eau. C'est ce que l'on appelle la déplasmolyse. Mais si cette plasmolyse se manifeste davantage, de
nombreuses plantes ne peuvent plus être déplasmolysées et périssent.
Le but de l'invention est donc, afin d'assurer la déplasmolyse de déterminer dans quelle mesure la concentration de la solution aqueuse pourrait être plus grande que la concentration de la sève de la cellule végétale. De nombreuses expériences ont été faites sur ce sujet. On a trouvé
4 2766660
que la concentration limite supérieure admissible de la solution aqueuse est plus grande, de 0,4 mole par litre que la concentration de la sève de la cellule végétale, bien qu'elle puisse varier suivant la nature des plantes mises en oeuvre. La présente invention vise donc un procédé d'extermination à fond des parasites qui se rassemblent sur des plantes, sans utiliser de produits
chimiques pour l'agriculture.
L'invention vise également un procédé d'extermination à fond des parasites se rassemblant sur les plantes, sans avoir un effet néfaste sur ces
plantes.
L'invention vise enfin un procédé d'extermination des parasites des
plantes dans la culture hydroponique par le procédé déjà mentionné.
On peut y parvenir par le procédé suivant l'invention qui consiste à faire en sorte que la solution aqueuse d'extermination des parasites ait une concentration comprise entre la limite supérieure, plus grande de 0, 4 mole par litre que la concentration de la sève des cellules des plantes qui doivent être débarrassées des parasites, et la limite inférieure d'une concentration de 0, puis à tremper et à maintenir les plantes infestées des parasites dans la solution aqueuse réglée à la concentration ci-dessus pendant la durée requise pour exterminer les parasites, puis à sortir les plantes de la solution aqueuse. Dans le procédé susmentionné, les parasites se rassemblant sur les plantes peuvent être tués par asphyxie, tout en maintenant des cellules des plantes en vie, en immergeant les plantes dans la solution aqueuse dont la concentration est réglée dans la plage mentionnée ci-dessus. Ainsi, des parasites néfastes se rassemblant sur des plantes peuvent être exterminés sans utiliser quelque pesticide que ce soit et sans provoquer quelque
dommage que ce soit aux plantes.
En outre, le procédé suivant l'invention peut consister à tremper les plantes destinées à la culture hydroponique dans la solution de culture et à faire en sorte que leurs racines en absorbent des agents nutritifs, à faire en sorte que la solution ci-dessus de culture ait une concentration comprise entre la limite supérieure, plus grande de 0,4 mole par litre que la concentration de la sève de cellule des plantes, et la limite inférieure d'une concentration de 0, puis à tremper et à maintenir les plantes infestées par les
2766660
parasites dans la solution de culture pendant une durée requise pour exterminer les parasites et à sortir les plantes de la solution de culture et à remettre les mêmes plantes dans les milieux d'origine de culture hydroponique. Suivant le procédé mentionné ci-dessus, la solution de culture pour la culture hydroponique est utilisée en tant que solution aqueuse pour exterminer des parasites. Comme les plantes en culture hydroponique sont immergées dans cette solution de culture, le travail d'immersion des plantes est simplifié et on a moins de travail à effectuer. En outre, le travail de retour o0 des plantes à la culture hydroponique préalable se simplifie de la même
façon après l'extermination des parasites.
En plus de la solution de culture utilisée pour la culture hydroponique, on utilise de l'eau, une solution de sel, de l'eau additionnée de sucre de canne, etc. spécialement préparée en tant que solution aqueuse à utiliser
pour exterminer des parasites suivant l'invention.
Au dessin annexé, donné uniquement à titre d'exemple: La figure 1 est une vue en coupe des plantes en culture hydroponique, la figure 2 est une vue en coupe des plantes alors qu'elles sont traitées en vue d'en exterminer les parasites, et
la figure 3 est une vue en perspective du cadre de poussée.
EXEMPLE 1
Comme le montre la figure 1, la solution 2 de culture, comprenant de l'eau et divers agents nutritifs, est placée dans la cuve 1 de culture hydrophonique en forme de boîte dont le haut est ouvert. Le panneau 3 de plantation rectangulaire, flottant, en styrène mousse, flotte à la surface de la solution 2 de culture. Les racines des plantes P (par exemple des épinards)
sont maintenues dans des trous traversants ménagés dans le panneau 3.
Ces racines sont immergées dans la solution 2 de culture en dessous du
panneau 3.
La concentration de la sève des cellules d'épinard est de 0,3 mole par litre. Mais la concentration de la solution 2 de culture à utiliser pour exterminer les parasites est réglée à 0,6 mole par litre, ce qui est supérieure
de 0,3 mole par litre à la concentration de la sève des cellules.
Dans le procédé de culture dans la cuve 1 de culture hydrophonique des pucerons et des chenilles qui se trouvent sur les plantes P sont
6 2766660
exterminés de la manière mentionnée ci-dessous. Comme le montre, la figure 2, tout le panneau 3 de plantation est poussé vers le bas en utilisant un cadre 4 de poussée et toutes les plantes P sont trempées dans la solution 2 de culture. On décrit maintenant le cadre 4 de poussée. Comme représenté à la
figure 3, le cadre 5 rectangulaire est légèrement plus petit que le panneau 3.
Des bras 6 font saillie respectivement à angle droit du cadre 5 rectangulaire aux quatre coins de ce cadre 5. En outre, les parties d'extrémités des bras 6 sont conformées en dispositif d'arrêt en forme de crochet. Une vis 8 de 1o réglage est fixée sur chacun des dispositifs d'arrêt. Le filet 9 en fil métallique, en fil ou analogue est supporté par chacun des bras 6 dans sa partie intermédiaire. En fonctionnement, le cadre 5 est placé sur les quatre côtés du panneau 3. Ensuite, chacun des bras 6 est poussé vers le bas, ce qui fait que i les plantes sont immergées dans la solution 2 de culture en même temps que le panneau 3. Le filet 9 empêche alors les plantes d'atteindre la surface de la solution. Alors que les plantes P sont immergées dans la solution 2 de culture, les vis 8 des dispositifs 7 d'arrêt, qui sont en contact avec les parois latérales de la cuve 1 de culture sont vissées sur ces parois. Ainsi, le cadre 4
de poussée est bien maintenu en place.
On effectue l'immersion des plantes, qui est mentionnée ci-dessus, pendant 4 heures et 10 minutes, alors que la température de la solution 2 de
culture est de 20 C.
En raison de l'immersion mentionnée ci-dessus, I'eau au sein des cellules végétales diffuse peu à peu dans la solution 2 de culture. Il s'ensuit que leur protoplasme tend à se rétrécir et qu'il est induit finalement une plasmolyse. Mais la plasmolyse qui a lieu au sein des cellules végétales s'arrête à un stade précoce et il ne se produit pas davantage de plasmolyse notable qui 3o provoquerait la mort des cellules parce que la concentration de la solution 2 de culture est fixée à une valeur, supérieure de 0,3 mole par litre seulement à la concentration de la sève de la cellule végétale, de manière à assurer la déplasmolyse. Au début de l'immersion, une partie des parasites, qui se rassemblent sur les plantes, viennent en restant toujours vivants à la surface de la
7 2766660
solution. Après avoir flotté sur la solution pendant un certain temps, ils sont asphyxiés jusqu'à mourir et tombent au fond de la solution. D'autre part, les parasites restants, qui ne peuvent presque plus respirer par leur trachée, sont accrochés aux plantes de la solution de culture. Une heure après environ, les chenilles meurent par asphyxie, se séparent, et tombent au fond. Quatre heures après environ, les pucerons sont asphyxiés et suivent le même trajet. Après le traitement d'extermination, le cadre 4 de poussée est relevé et on fait en sorte que les plantes P viennent à la surface de la solution 2 de o culture en même temps que le panneau 3. Les plantes reviennent alors à
l'état d'origine de culture hydroponique, tel que représenté à la figure 1.
Les plantes absorbent de l'eau par leurs racines en provenance de la solution de culture destinée à la culture hydroponique et fournissent cette même eau à chacune de leur cellule qui sont plasmolysées et restent à un stade précoce de plasmolyse. C'est pourquoi chacune de ces cellules est
déplasmolysée et continu à croître d'une manière normale ensuite.
Exemple 2
De la même façon que représentée à la figure 1, cet exemple se rapporte à la culture hydroponique de laitues, dans la même cuve 1 de culture et avec le même panneau 3. Cet exemple illustre l'extermination des pucerons qui infectent les laitues. La solution de culture dans la cuve 1 est transférée dans une autre cuve. A la place de cette solution, on verse de l'eau dans la cuve 1 sous la forme d'une solution aqueuse à une concentration de 0% pour exterminer les parasites. De la même manière que dans l'autre exemple, le cadre 4 de poussée est utilisé en même temps que le panneau 3 pour immerger les plantes dans l'eau. L'immersion est effectuée pendant 4 heures à une température de l'eau de 18 C. A la suite de cette immersion les cellules végétales absorbent de l'eau exterminant les parasites et leur protoplasme gonfle peu à peu. Au fur et à mesure que les cellules gonflent, la concentration et la pression osmotique s'abaissent au sein des cellules. En même temps leur pression, de gonflement augmente. Quand la pression de la paroi, qui est égale à la pression de gonflement, vient à être égale à la pression osmotique au sein de la cellule, elle cesse d'absorber de l'eau de l'extérieur et ne gonfle plus. D'autre part, après une immersion de 4
8 2766660
heures, tout les moucherons se rassemblant sur la plante meurent et tombent au fond. L'immersion terminée, on enlève l'eau de la cuve 1. Puis, on retourne la solution de culture conservée dans l'autre cuve à la cuve 1. La culture hydroponique peut alors reprendre. Chaque cellule végétale gonflée par l'eau absorbée pendant l'immersion revient peu à peu à son état normal.
9 2766660

Claims (2)

REVENDICATIONS
1.- Procédé d'extermination des parasites des plantes caractérisé en ce qu'il consiste à faire en sorte que la solution aqueuse d'extermination des parasites ait une concentration comprise entre la limite supérieure, plus grande de 0,4 mole par litre que la concentration de la sève des cellules des plantes qui doivent être débarrassées des parasites, et la limite inférieure d'une concentration de 0, puis à tremper et à maintenir les plantes infestées des parasites dans la solution aqueuse réglée à la concentration ci-dessus pendant la durée requise pour exterminer les parasites, puis à sortir les
plantes de la solution aqueuse.
2.- Procédé d'extermination des parasites des plantes caractérisé en ce qu'il consiste à tremper les plantes destinées-à la culture hydroponique dans la solution de culture et à faire en sorte que leurs racines en absorbent des agents nutritifs, à faire en sorte que la solution cidessus de culture ait une concentration comprise entre la limite supérieure, plus grande de 0,4 mole par litre que la concentration de la sève de cellule des plantes, et la limite inférieure d'une concentration de 0, puis à tremper et à maintenir les plantes infestées par les parasites dans la solution de culture pendant une durée requise pour exterminer les parasites et à sortir les plantes de la solution de culture et à remettre les mêmes plantes dans les milieux d'origine
de culture hydroponique.
FR9809037A 1997-07-29 1998-07-15 Procede d'extermination des parasites des plantes Expired - Fee Related FR2766660B1 (fr)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP9216945A JP3000446B2 (ja) 1997-07-29 1997-07-29 植物の害虫駆除方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
FR2766660A1 true FR2766660A1 (fr) 1999-02-05
FR2766660B1 FR2766660B1 (fr) 2002-06-28

Family

ID=16696400

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FR9809037A Expired - Fee Related FR2766660B1 (fr) 1997-07-29 1998-07-15 Procede d'extermination des parasites des plantes

Country Status (6)

Country Link
US (1) US6023884A (fr)
JP (1) JP3000446B2 (fr)
DE (1) DE19833770A1 (fr)
FR (1) FR2766660B1 (fr)
GB (1) GB2327612B (fr)
NL (1) NL1009744C2 (fr)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ITVR20120010A1 (it) * 2012-01-18 2013-07-19 Depaoli Claudio Dispositivo di immersione temporanea per immergere temporaneamente coltivazioni in un substrato liquido e relativo procedimento.

Families Citing this family (24)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SG87009A1 (en) * 1998-10-27 2002-03-19 Johns Hopkins Singapore Pte Lt Informatics system weaves
US6651378B2 (en) * 2000-05-16 2003-11-25 Stanley Z. Baker Bait station for insects
US6708443B2 (en) * 2000-11-15 2004-03-23 Donald R. Hall Mosquito breeding convenience with bio-cycle interrupt and with mid-cycle flush
US6618984B1 (en) * 2002-11-04 2003-09-16 Guining Li Mosquito attraction and killing system with operation solely based on utilization of sunlight and water
US6665979B1 (en) * 2003-02-11 2003-12-23 Gene C. Hsu Water container with floating electrocution device equipped trap for killing gravid mosquitoes
JP3924753B2 (ja) 2003-12-19 2007-06-06 株式会社生物機能工学研究所 植物の害虫離脱駆除方法
DE602004030129D1 (de) * 2003-07-31 2010-12-30 Basf Se Insektenfalle sowie verfahren zum fangen und aufbewahren von schadinsekten
US20050044791A1 (en) * 2003-08-29 2005-03-03 Oekag Wassertechnik (Schweiz) Ag Plant carriers for sealed flat roofs
US7448160B2 (en) * 2004-10-21 2008-11-11 Roberts Donald R Mosquito harvest trap
US7434351B2 (en) * 2005-01-11 2008-10-14 James Robert Bette No maintenance lethal mosquito breeding trap
WO2006099879A1 (fr) * 2005-03-21 2006-09-28 Hamid El-Sebaly Dispositif flottant pour la germination des graines et la culture des semis et des coupes de plantes
US7918186B2 (en) * 2005-04-18 2011-04-05 Veterinary Ventures, Inc. Grass-growing devices for pet fountains
US20070074447A1 (en) * 2005-10-05 2007-04-05 Kalogroulis Alexander J Mosquito water trap
US7694455B1 (en) * 2005-12-27 2010-04-13 Wake Forest University Health Sciences Apparatus and method of mosquito control
US8109035B2 (en) * 2005-12-27 2012-02-07 Wake Forest University Health Sciences Apparatus and method of mosquito control
US20070214711A1 (en) * 2006-02-27 2007-09-20 Mignot Guy F Mosquito eradicator
US7946077B2 (en) * 2006-09-21 2011-05-24 Daiji Fukuhara Container for capturing mosquito larvae
US8109235B2 (en) * 2007-02-02 2012-02-07 Pioneer Pets Products, LLC Pet food holder, pet food containing module and method
US20090277076A1 (en) * 2008-05-09 2009-11-12 Thomas William Boston Device For Elimination Of Mosquitoes And Flying Pests
JP5800648B2 (ja) * 2011-09-07 2015-10-28 アース製薬株式会社 害虫防除用液体容器及び害虫防除装置
US10388183B2 (en) 2015-02-27 2019-08-20 Icon Health & Fitness, Inc. Encouraging achievement of health goals
US20170027118A1 (en) * 2015-07-28 2017-02-02 Kathryn Ora Mahler Avocado Seed Planter
KR200494765Y1 (ko) * 2018-12-13 2021-12-22 대한민국 고추총채벌레 방제기구
KR200492573Y1 (ko) * 2018-12-13 2020-11-05 대한민국 간이형 고추총채벌레 방제기구

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4328641A (en) * 1979-12-15 1982-05-11 Breveteam S.A. Method and receptacle for growing plants
EP0594158A1 (fr) * 1992-10-22 1994-04-27 Yoshitami Yanohara Appareil hydroponique

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2855726A (en) * 1958-10-14 Process for extending flower life
US2720727A (en) * 1952-05-15 1955-10-18 American Cyanamid Co Control of plant diseases
US4223477A (en) * 1978-06-16 1980-09-23 Abernathy James A House plant sprayer shroud

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4328641A (en) * 1979-12-15 1982-05-11 Breveteam S.A. Method and receptacle for growing plants
EP0594158A1 (fr) * 1992-10-22 1994-04-27 Yoshitami Yanohara Appareil hydroponique

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HARA ARNOLD; HATA TRENTY ET AL: "Hot-Water Immersion of Cape Jasmine Cuttings for Disinfestation of Green Scale (Homoptera : Coccidae)", J. ECON. ENTOMOL, vol. 87, no. 6, 1994, Univ. Hawaii at Manoa, pages 1569 - 1573, XP002161263 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ITVR20120010A1 (it) * 2012-01-18 2013-07-19 Depaoli Claudio Dispositivo di immersione temporanea per immergere temporaneamente coltivazioni in un substrato liquido e relativo procedimento.
EP2617282A1 (fr) * 2012-01-18 2013-07-24 Claudio Depaoli Dispositif et méthode pour submerger des plantes dans un substrat liquide

Also Published As

Publication number Publication date
DE19833770A1 (de) 1999-02-04
GB9816433D0 (en) 1998-09-23
JPH1142038A (ja) 1999-02-16
FR2766660B1 (fr) 2002-06-28
GB2327612B (en) 2001-06-27
NL1009744C2 (nl) 1999-02-08
GB2327612A (en) 1999-02-03
US6023884A (en) 2000-02-15
JP3000446B2 (ja) 2000-01-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FR2766660A1 (fr) Procede d'extermination des parasites des plantes
Van De Veire et al. Sequential testing scheme for the assessment of the side-effects of plant protection products on the predatory bug Orius laevigatus
US3902273A (en) Treatments of vegetable matter
FR2822022A1 (fr) Traitement pesticide des sols agricoles avec des composes soufres
Andersen Temperate nut species
WO2020014380A1 (fr) Composition d'attraction et de destruction non pesticide pour lutter contre les insectes
FR2474819A1 (fr) Composition a base de mono-aza-amides et -amines et son application a l'inhibition de l'ethylene en biologie vegetale
EP1886550B1 (fr) Procédé de production de plants greffés de végétaux
Hide et al. Effects of delaying fungicide treatment and of curing and chlorpropham on the incidence of skin spot on stored potato tubers
US3645041A (en) Method of growing pear trees from slips
Beal et al. Cutflower characteristics of terminal flowering tropical Grevillea: a brief review
De Stigter Water-balance aspects of cut and intact'Sonia'rose plants, and effects of glucose, 8-hydroxyquinoline sulfate and aluminium sulfate
Tinus Production of container-grown hardwoods
AU688717B2 (en) Method for exterminating pests injurious to plants
KR101986493B1 (ko) 응애류, 깍지벌레류, 사과면충 살충용 천연조성물 제조방법 및 그로써 제조된 천연조성물
Bhuyan et al. Vegetative propagation of two important Garcinia species of Assam, NE India
Vera-Castillo The influence of antidesiccants on field performance and physiology of 2+ 0 Ponderosa Pine (Pinus ponderosa Dougl.) seedlings
RU2805328C1 (ru) Способ выращивания привитых саженцев винограда
JP2000157050A (ja) 切枝に着生したままの葉を溶液中につけることによる切枝の長期管理育成とその発根、接木への応用。
CN114451198A (zh) 一种核桃病虫害综合防控技术
Rakha et al. Effect of Some Regulating Substances on the Vegetative Parameters of Flame Seedless Grapes Cleft Grafted on Three Nematode Resistant Rootstocks
Kadow et al. Tomato diseases and insect pests: identification and control
JP3924753B2 (ja) 植物の害虫離脱駆除方法
Cordley Insecticides and fungicides
Miles Control of the Apple Blossom Weevil

Legal Events

Date Code Title Description
ST Notification of lapse

Effective date: 20090331