FR2587120A1 - Procede et appareil pour analyser un echantillon de fluide - Google Patents

Procede et appareil pour analyser un echantillon de fluide Download PDF

Info

Publication number
FR2587120A1
FR2587120A1 FR8612551A FR8612551A FR2587120A1 FR 2587120 A1 FR2587120 A1 FR 2587120A1 FR 8612551 A FR8612551 A FR 8612551A FR 8612551 A FR8612551 A FR 8612551A FR 2587120 A1 FR2587120 A1 FR 2587120A1
Authority
FR
France
Prior art keywords
sample
fiber
enclosure
fluorescence
surface element
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
FR8612551A
Other languages
English (en)
Other versions
FR2587120B1 (fr
Inventor
Myron J Block
Tomas B Hirschfeld
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Ord Inc
Original Assignee
Ord Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ord Inc filed Critical Ord Inc
Publication of FR2587120A1 publication Critical patent/FR2587120A1/fr
Application granted granted Critical
Publication of FR2587120B1 publication Critical patent/FR2587120B1/fr
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/645Specially adapted constructive features of fluorimeters
    • G01N21/648Specially adapted constructive features of fluorimeters using evanescent coupling or surface plasmon coupling for the excitation of fluorescence
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/75Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
    • G01N21/77Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator
    • G01N21/7703Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator using reagent-clad optical fibres or optical waveguides
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/645Specially adapted constructive features of fluorimeters
    • G01N2021/6484Optical fibres

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Plasma & Fusion (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By Optical Means (AREA)
  • Optical Measuring Cells (AREA)

Abstract

CE PROCEDE D'ANALYSE IMPLIQUANT LA MESURE D'UNE FLUORESCENCE DECLENCHEE DANS UN ECHANTILLON DE FLUIDE PAR UNE ONDE EVANESCENTE AU NIVEAU D'UN ELEMENT DE SURFACE 36 D'UN SUBSTRAT 12 EN FORME DE FIBRE REALISANT UNE REFLEXION INTERNE TOTALE CONSISTE A DECLENCHER LA FLUORESCENCE DANS LEDIT ECHANTILLON TOUT EN LE FAISANT CIRCULER DANS UN ESPACE ENSERRE ENTRE UNE ENCEINTE 14 POSSEDANT DES DIMENSIONS FIXES ET DELIMITEE EN PARTIE PAR LEDIT ELEMENT DE SURFACE, UN VOLUME SUFFISANT DE L'ECHANTILLON ETANT PREVU AFIN DE MAINTENIR L'ENCEINTE REMPLIE ALORS QUE L'ECHANTILLON CIRCULE. APPLICATION NOTAMMENT AUX APPAREILS D'ANALYSE IMMUNOLOGIQUE.

Description

i Procédé et appareil pour analyser un échantillon de fluide
La présente invention concerne l'analyse immuno-
logique et plus particulièrement l'analyse immunologique
basée sur la fluorescence et selon laquelle l'onde évanes-
cente produite par une réflexion totale interne est utili- sée pour limiter le volume observé à une lamelle, ce qui
permet d'éviter une phase opératoire de séparation ou de la-
vage, tout en réduisant également les effets de substances de fond perturbatrice ne réagissant pas du point de vue
immunologique et qui sont présentes dans l'échantillon.
L'utilisation de techniques de réflexion totale interne en vue de réduire les effets de substances non réactives du point de vue immunologique lors d'analyses
immunologiques a fait l'objet d'un certain nombre de recher-
ches. Par exemple dans le brevet US N 3 939 350, l'onde évanescente produite par la réflexion totale interne au niveau de l'interface entre un substrat fournissant une réflexion totale interne, comme par exemple une plaque, et l'échantillon est utilisée pour provoquer la fluorescence
dans une partie marquée d'une manière fluorescente de l'é-
chantillon lié de façon immunologique à la plaque, la par-
tie de l'échantillon située au-delà de la zone d'évanes-
cence n'étant pas excitée. De cette manière, on peut réa-
liser une analyse sans qu'il soit nécessaire de retirer l'échantillon n'ayant pas réagi et le réactif. En réalité
l'onde évanescente agit à la manière d'un mécanisme de sé-
paration.
Comme cela est indiqué dans la demande de bre-
vet US N 406 324 déposée en date du 9 Août 1982 et attri-
buée au détenteur de la présente demande, on peut obtenir un rendement optique supérieur en observant la fluorescence, déchenchée par l'onde évanescente, qui pénètre en retour (retourne par effet de tunnel) dans le milieu plus dense du point de vue optique et se propage dans ce dernier sous
l'effet d'une réflexion totale interne. Un appareil perfec-
tionné de ce type et le procédé correspondant d'analyse immunologique sont indiqués dans le brevet US N 4 447 546,
dans lequel il est indiqué qu'à la fois la quantité de l'é-
chantillon et la fin de la réaction peuvent être commandées de façon automatique, en entourant une zone contrôlée de
l'élément activé du point de vue immunologique et fournis-
sant une réflexion totale (par exemple une longueur connue
d'une fibre optique de diamètre connu) avec un tube capillai-
re possédant des dimensions connues. De cette manière on peut réaliser des analyses non balistiques rapides, simples
et précises.
La durée de la mesure nécessaire pour l'incuba-
tion dans l'appareil à fibre entourée par un capillaire est
proportionneie au --carré de la distance moyenne de diffu-
sion. Cette dernière correspond approximativement à la dis-
tance entre la fibre et la paroi du capillaire. En rédui-
sant cette distance, on peut réduire fortement l'intervalle de temps requis pour que la réaction se termine et on peut par conséquent améliorer fortement la vitesse de l'analyse
non balistique. Cependant une telle réduction entraîne éga-
lement une réduction du volume échantillonné et par conséquent le signal total obtenu par unité de longueur de la fibre, ce qui affecte de façon nuisible la sensibilité. Une telle perte de sensibilité ne peut être partiellement regagnée qu'en augmentant la longueur de la fibre, en raison de l'atténuation du signal dans une fibre sans gaine, comme
cela est requis par la présente invention.
C'est pourquoi un but de la présente invention
est de fournir un appareil et un procédé permettant de réa-
liser une analyse immunologique plus rapide basée sur la fluorescence et utilisant une fibre enveloppée, et avec lesquels la sensibilité de l'analyse n'est pas affectée de
façon nuisible par la vitesse accrue.
Un autre but de la présente invention est de fournir un appareil et un procédé permettant de réaliser une analyse immunologique de sensibilité accrue, basée sur
la fluorescence.
Ces objectifs ainsi que d'autres objectifs sont atteints conformément à la présente invention au moyen d'une analyse immunologique utilisant une réflexion totale interne
et basée sur la fluorescence et lors de laquelle l'échan-
tillon est amené à circuler sur la longueur d'un substrat
réalisant une réflexion totale interne et possédant un élé-
ment de surface actif entouré par et distant d'une encein-
te de manière à former un volume fixe, le débit de l'échan-
tillon étant réglé de manière que le temps de séjour de l'échantillon en vis-à-vis de l'élément de surface actif soit analogue à l'intervalle de temps nécessaire pour évacuer le volume entre le substrat et l'enceinte. Dans une forme de réalisation préférée, le substrat est une fibre optique et l'enceinte est un tube dimensionné et disposé de telle sorte que la distance entre la paroi interne du tube et la surface
de la fibre ait la dimension d'un capillaire.
Avec cette structure on peut échantillonner un
volume d'échantillons relativement important en un bref in-
tervalle de temps, mais avec à tout moment, l'éclairement
d'une faible partie de l'échantillon par l'onde évanescente.
La liaison avec la partie activée de la fibre est cumulati-
ve, en fonction du titre de l'élément inconnu dans l'échan-
tillon, et du volume évacué.
D'autres buts de l'invention apparaîtront en
partie d'une manière évidente et ressortiront en partie ci-
après. De façon correspondante, l'invention porte sur un ap-
pareil possédant la constitution, la combinaison d'éléments et l'agencement de pièces, et un procédé comprenant les différentes phases opératoires et la relation d'une ou de plusieurs telles phases opératoires en rapport les unes avec les autres, qui sont indiqués à titre d'exemple dans la
description détaillée qui va suivre.
D'autres caractéristiques et avantages de la pré-
sente invention ressortiront de la description donnée ci-
après en référence aux dessins annexés, sur lesquels: la figure 1 est une représentation schématique de l'appareil conforme à l'invention tel qu'il est raccordé à un appareil connu pour l'objectif conforme à la présente invention;
la figure 2 est une vue en coupe transversale lon-
gitudinale d'un kit d'analyse immunologique, qui constitue une forme de réalisation préférée d'une partie de l'appareil de la présente invention; et la figure 3 est une vue schématique d'une partie
de l'appareil de la figure 2, illustrant une réaction immu-
no-chimique typique, conformément à la mise en oeuvre de la
présente invention.
Sur les figures, les chiffres de référence identi-
ques se rapportent à des éléments identiques. On notera éga-
lement que la représentation sur les figures est schématique et que l'on n'a pas recherché à indiquer des échelles ou
rapports réels.
Du point de vue de la terminologie, on notera que
dans la description détaillée de l'appareil conforme à la
présente invention, les parties de l'appareil sont désignées comme étant des parties "supérieures et inférieures ". Ces termes sont utilisés entièrement à titre de commodité et
pour associer la description aux représentations schémati-
ques des dessins. On notera que l'appareil peut fonctionner dans n'importe quelle position ou dans n'importe quelle
orientation, ceci entrant dans le cadre de la présente in-
vention. La présente invention fonctionne sur la base d'une fluorescence à réflexion totale en association avec un guidage en tunnel du rayonnement, comme cela est décrit dans la demande de brevet US 1 N 406 324
déposée le 9 Août 1982 et attribuée au détenteur de la pré-
sente demande et qui est incorporée ici en référence en ce
qui concerne des détails complémentaires concernant notam-
ment le mode optique de fonctionnement de l'appareil.
La figure 1 représente un appareil indiqué à
titre d'exemple et utile pour la mise en oeuvre de la pré-
sente invention, lequel appareil comprend un kit 6, un fluorimètre 7, une seringue 8,une pompe 9 de seringue
et un conteneur 10.
En se référant à la figure 2, on peut voir une vue en coupe transversale longitudinale d'un kit d'analyse
immunologique d'analyse 6, réalisé conformément aux princi-
pes de la présente invention. Le kit 6 comporte une fibre
optique 12, un tube capillaire 14 et un bouchon 16.
La fibre 12 est un corps allongé,optiquement trans-
parent et essentiellement cylindrique, permettant la propa-
gation, sur sa longueur et moyennant des réflexions totales internes multiples, d'un rayonnement optique pénétrant par une extrémité de la fibre, sous un angle solide déterminé,
présentant essentiellement une symétrie de révolution au-
tour de l'axe de la fibre. Comme cela est bien connu dans
la technique des fibres optiques, l'angle d'incidence ma-
ximum, par rapport à l'axe B de la fibre, pour le rayonnement pénétrant dans la fibre et se propageant à l'intérieur de cette dernière est réglé au moyen des indices de réfraction de la fibre et du milieu environnant. Pour un rayonnement se propageant initialement à travers un milieu possédant
un indice de réfraction n0 et tombant sur une fibre possé-
dant un indice de réfraction n1 et entourée par ailleurs par un matériau possédant un indice de réfraction n2, l'angle d'incidence maximum peut être déterminé à partir de la relation (1) N.A. = no sinB = (n2 - n2) 1/2
dans laquelle N.A. est ce qu'on appelle l'ouverture numéri-
que de la fibre. A titre d'exemple, sans aucun caractère li-
mitatif, la fibre 12 peut être constituée par un matériau faisant partie d'un certain nombre de matériaux transparents du point de vue optique, comme par exemple le verre, le quartz, le polypropylène, une polyoléfine, le produit connu dans le commerce sous la marque Nylon ou analogue, choisi de
manière à posséder un indice de réfraction supérieur à ce-
lui de l'échantillon de fluide que l'on analyse. De fa- çon typique ce dernier est une solution aqueuse possédant un indice de réfraction proche de 1,33 ou un échantillon de sérum possédant un indice de réfraction proche de 1,35. On
choisit en outre pour la fibre un matériau qui est relati-
vement insoluble dans l'échantillon de fluide et ne réagit pas avec ce dernier. Il s'est avéré qu'un diamètre de 200 microns est satisfaisant pour la fibre, bien que l'on puisse utiliser d'autres diamètres de la fibre. Pour la plupart des
analyses, une fibre d'une longueur de 25 mm s'avère appro-
pirée; cependant on comprendra que la longueur de la fibre peut être adaptée à l'analyse devant être effectuée. En fait
la sensibilité augmente lorsque la longueur de la fibre aug-
mente, jusqu'à ce que l'atténuation du signal sur la longueur
de la fibre dépasse 1/e.
Comme cela sera décrit de façon détaillée ci-
après, la fibre 12 est munie d'un revêtement superficiel comprenant des moyens pour fixer des fragments sélectionnés d'un complexe antigèneanticorps. Tel qu'il est utilisé ici le terme "complexe antigèneanticorps" inclut des complexes non seulement d'anticorps et d'antigènes complets, mais des complexes comprenant des fragments, réactifs du point de vue immunologique de l'un ou l'autre de ces éléments ou de
ces deux éléments.
Le tube capillaire 14 est de préférence un tube transparent du point de vue optique, le matériau qui le
constitue étant également choisi de manière à être relative-
ment insoluble dans l'échantillon de fluide qui est analysé et non réactif avec ce dernier. C'est pourquoi le tube capillaire 14 est constitué de préférence avec des matériaux
tels que le verre, le quartz, le polypropylène, une polyolé-
fine ou analogue.
Dans une forme de réalisation préférée, le tube capillaire est un perçage en forme de cylindre circulaire droit, possédant un diamètre intérieur légèrement supérieur au diamètre de la fibre 12 (par exemple pour une fibre d'un
diamètre de 200 microns, le tube capillaire 14 peut possé-
der un diamètre intérieur égal à environ 240 microns). Ce-
pendant, comme cela sera décrit, l'invention peut être mise en oeuvre en utilisant des tubes capillaires possédant un
diamètre inférieur nettement supérieur à celui de la fibre.
Le bouchon 16 est conformé et dimensionné de ma-
nière à s'adapter dans une extrémité du tube capillaire 14 et supporte une partie d'extrémité 18 de la fibre 12, de sorte
qu'elle est essentiellement coaxiale par rapport au tube capil-
laire 12, tout en étant distant de ce dernier. En outre le
bouchon 16 comporte une surface dure de positionnement uti-
lisée pour positionner le kit 6 dans un fluorimètre, comme cela sera décrit ci-après. A cet effet le bouchon 16 est
muni de préférence d'une bride 20 possédant un diamètre hors-
tout égal approximativement au diamètre extérieur du tube
capillaire 14 et un prolongement central 21 en forme de man-
chon, coaxial du perçage central 22. Le perçage 22 pénètre dans le bouchon 16 et est dimensionné de manière à fixer la partie d'extrémité 18 de la fibre 12. Dans une forme de réalisation préférée, le bouchon 16 est moulé en
place autour de la fibre 12, ledit bouchon étant de préfé-
rence réalisé en un matériau possédant un faible indice de
réfraction, comme par exemple du siloxane. La fibre 12 tra-
verse le bouchon 16 et est supportée par ce dernier de ma-
nière à exposer essentiellement l'ensemble de la fibre,
hormis la partie d'extrémité 18, à l'intérieur du tube ca-
pillaire 14, en laissant la face d'extrémité 24 de la par-
tie d'extrémité 18 non masquée et située de niveau avec
l'extrémité du perçage 22 à l'extérieur du tube capillaire.
La face d'extrémité 24 est de préférence plane et perpendiculaire à l'axe de la fibre 12. De préférence la face d'extrémité 24 est également extrêmement transparente et exempte de défauts tendant à diffuser la lumière tombant sur la face d'extrémité. A cet effet la face d'extrémité 24 peut être polie optiquement, bien qu'il se soit avéré que l'on peut cliver une fibre de quartz fondue pour former une
surface optique appropriée.
D'une manière optionnelle, la face d'extrémité
26 de la partie de la fibre éloignée de la face d'extrémi-
té comporte également un poli plat ou est clivée et est en outre munie d'un revêtement réfléchissant 28 (ou un miroir séparé) disposé essentiellement perpendiculairement à l'axe de la fibre, ce qui a pour effet que le rayonnement piégé
dans la fibre circule deux fois dans cette dernière.
On choisit les dimensions hors-tout de la fibre 12, du tube capillaire 14 et du bouchon 16 de préférence de manière à garantir que la face d'extrémité 26 de la fibre se
situe à l'intérieur du tube capillaire.
On notera que le kit 10, tel qu'il est décrit, est essentiellement le même que celui indiqué dans le brevet
US No 4 447 546. Ce qui est important cependant dans la pré-
sente invention, c'est que le tube 14 est muni d'un orifice qui est en communication fluidique avec l'intérieur du tube 14,distant de l'extrémité ouverte du tube. Dans une forme de réalisation préférée, l'orifice 30 se présente sous la forme d'un conduit tubulaire 32 muni d'une cloison 34. Le conduit tubulaire 32 est situé à proximité du bouchon 16 et s'étend radialement à partir du tube 14. Comme cela est bien connu dans la technique, la cloison 34 est apte à être pénétrée par une seringue hypodermique (non représentée), et l'intérieur du conduit 32 est dimensionné de manière à
recevoir l'aiguille destinée à être utilisée avec le sys-
tème. On comprendra que l'orifice 30 peut être tout aussi bien l'organe d'accouplement approprié pour la fixation à une seringue équipée d'un système de verrouillage Luer ou
un appareil équivalent.
Avant son montage dans le kit 10, on appose sur
la fibre 12 un revêtement qui active, comme cela sera dé-
crit une zone 36 de la surface cylindrique de la fibre pour l'analyse devant être effectuée. Dans une forme de réalisa- tion préférée, la zone activée 36 est limitée à une longueur prédéterminée de la fibre 12 au moyen d'un revêtement 38 inerte du point de vue chimique et optique et constitué par
exemple par du silicone possédant un faible indice de réfrac-
tion et s'étendant sur les deux extrémités de la fibre. Mais
on comprendra que les dimensions de la zone activée 36 peu-
vent être réglées à l'aide d'autres moyens, (par exemple par masquage de la fibre pendant l'opération de revêtement) ou, sinon, on peut activer toute la longueur de la fibre 12 et
on peut régler soigneusement la longueur de la fibre dis-
posée à l'intérieur du tube capillaire.
En se référant maintenant à la figure 3, on peut
y voir une représentation extrêmement schématique d'une par-
tie d'une coupe transversale longitudinale du kit 2 dans
la zone activée 36 de la fibre 12, remplie par un échantil-
lon 43 devant être analysé. La surface de la fibre 12 dans
la zone 34 est munie d'une pluralité de sites 44 de coupla-
ge, à un certain nombre desquels se trouve liée un fragment
46 du complexe anticorps-antigène. Telle qu'elle est utili-
sée ici, l'expression "1fragment d'un complexe anticorps-anti-
gène" se réfère à une partie, réactive du point de vue immu-
nologique, d'un tel complexe et inclut des haptènes ainsi que des antigènes complets et des fragments d'anticorps réoetifs à
l'égard des antigènes [Fab] ainsi que des anticorps complets.
Les sites de couplage 44 sont choisis de manière à immobi-
lise des moitié 46 sans affecter de façon notable la réac-
tivité (par exemple l'affinité et l'avidité)du fragment correspondant à la partie complémentaire du complexe. Dans une forme de réalisation préférée, la fibre 12 est en verre
ou en quartz, les sites de couplage 44 sont des groupes réac-
tifs d'un composé silyle tel que du 3-aminopropyltrimé-
thoxysilane, et les fragments46 sont formés par un anticorps
tel que l'immunoglobuline G (IgG). Cette combinaison par-
ticulière d'une phase solide, d'un site de couplage 44 et d'un fragment 46 peut être lié par les terminaisons car- boxyle de l'anticorps, ce quilaisse libres les terminaisons
amino, réactives à l'égard de l'antigène de l'anticorps.
Les procédés de préparation de la surface du ver-
re de la fibre 12 ou de fixation du composé silyle à cette dernière et de la liaison covalente d'un anticorps au verre au moyen du couplage avec le composé silyle sont décrits par Weetall (brevet US N 3 652 761) dans lequel on peut également
trouver une description d'autres composés silyle et les
procédés à l'aide desquels on peut lier de manière covalente les groupes
carboxyle, amino et d'autres groupes réactifs d'un anti-
corps ou d'un antigène (ou de leurs fragments) à différentes substances minérales. Il faut noter qu'il existe également une technique répandue
pour immobiliser des antigènes ou des anticorps sur des po-
lymères, et les spécialistes de la technique comprendront que les sites de couplage 44 pour l'antigène ou l'anticorps
peuvent être également ménagés sur des fibres polymères.
C'est pourquoi par exemple si la fibre 12 est réalisée au moyen du produit désigné sous l'appellation Nylon (polyamide) le couplage peut prendre la forme de la substitution d'un radical approprié, à l'hydrogène lié aux groupes amino du polymère. On notera que les sites de couplage 44 peuvent également comporter des groupes séparateurs, comme cela est bien connu dans la technique, pour garantir une séparation
suffisante entre la fibre 12 et lesfragments 46 afin de ré-
duire au minimum l'empêchement stérique du processus de
liaison anticorps-antigène. Par exemple les sites de cou-
plage 44 peuvent comporter une chaîne de polyéthylène com-
me par exemple dans le cas du 1,6-diaminohexane ou de
l'acide 6aminohexanoique lié à la fibre 12 par l'intermé-
diaire d'une liaison peptidiqueet fournissant respectivement un groupe amino primaire libre et un groupe carboxyle libre pour une liaison covalente avec la terminaison carboxyle ou la terminaison amino d'un fragment 46 de protéines. L'un ou l'autre de ces matériaux de couplage fournit une chaîne à 6 atomes de carbone entre les terminaisons, ce qui sépare le
fragment 46 de la fibre 12 par une distance correspondante.
Un couplage approprié similaire et des matériaux de sépara-
tion similaires sont bien connus dans les techniques à la fois de l'analyse immunologique et de la chromatographie d'affinité.
Dans une forme de réalisation préférée, la fi-
bre 12 est munie d'une moitié 46 dont certains sites de
liaison sont occupés, conme cela est repéré par des réfé-
rences indicées 46C, les fragments étant en partie munis du
complément marqué et associé 50 pour les analyses immunolo-
giques compétitives. C'est pourquoi, dans une forme de réalisation, le fragment46 est un anticorps et uoeprécharge formée de l'antigène ou du haptène marqué est incoporée dans le revêtement de la fibre 12. Chacun des composants marqués est muni d'une quantité prédéterminée d'un fluorogène 52, ce qui fournit une marque. Le composé flucresent particulier, qui est intéressant pour le marquage, inclut la fluorescéine, la tétraméthylrhodamine, deschélates des terres rares et analogues. Les procédés permettant de fixer des marques fluorescentes à des protéines sont bien connus dans la technique et bon nombre des composés fluorescents
disponibles dans le commerce possèdent des groupes permet-
tant la fixation à des protéines. De préférence, pour l'ana-
lyse concurrente une partie fixe des sites de couplage 44
sont munies d'une protéine 56 inerte du point de vue immuno-
logique, comme par exemple l'albumine. Le revêtement peut
être agencé de manière à posséder une composition superfi-
cielle fixéegrâce à l'utilisation de phénomènes d'absorp-
tion, comme indiqué ci-après.
Pour une solution d'enduction préparée avec une concentration appropriée des réactifs, la simple immersion
d'une fibre activée avec des groupes 44 de liaison superfi-
ciels corrects fournit une couche superficielle unique for-
mée d'une protéine liée chimiquement. La proportion de
l'immunoglobuline par rapport à la protéine inerte dans cet-
te couche est fournie (mais n'y est pas identique) par leur proportion dans la solution. Tout remplissage partiel des sites actifs pour l'immunoglobuline avec un antigène marqué
sera naturellement maintenu au niveau présent dans la solu-
tion. Apres immersion, on retire la fibre de la solution d'enduction. Afin d'empêcher que la couche de liquide, qui adhère à la fibre, n'entraîne une quantité supplémentaire
de réactif,on lave rapidement la fibre avant qu'une éva-
poration supplémentaire puisse se produire. La couche de
protéine, qui est liée de façon covalente, n'est pas éli-
minée lors de cette opération. Afin d'empêcher la liaison
de plus d'une couche de protéine, le réactif à double fonc-
tion ne doit pas modifier la charge totale de la protéine (ceci peut être fixé au moyen d'un réglage du pH de la solution
d'enduction) et ne doit pas présenter une distance de sé-
paration trop grande.
Le kit 6 est destiné à être utilisé avec un fluorimètre 7 (figure 4) qui est choisi de manière à exciter la fluorescence et la recevoir en provenance du composant marqué du réactif. Un fluorimètre approprié est décrit dans le brevet US N 4 447 546 mentionné précédemment, dans lequel
on peut également trouver une description de son fonctionne-
ment. Ce qui est important, comme cela est décrit dans ce
* brevet, le fluorimètre lit de préférence l'émission fluo-
rescente se propageant en retour en direction de l'extré-
mité de la fibre, au niveau de laquelle le rayonnement
d'excitation a été introduit.
Le guide 6 conforme à la présente invention est utilisé également dans l'une ou l'autre des demandes de brevet mentionnées précédemment. Cependant, et cela est
important, dans la présente invention, le voume de l'é-
chantillon utilisé lors d'une détermination n'est pas né-
cessairement limité au volume correspondant à l'espace situé entre la fibre 12 et le tube 14. En cours d'utilisation, la forme de réalisation préférée de l'appareil conforme à l'invention requiert tout
d'abord que l'on prélève un échantillon au moyen de la se-
ringue 8 que l'on raccorde alors comme dans le cas du dis-
positif de verrouillage Luer, au kit 10 comme indiqué sur la figure 1, c'est-à-dire que l'on place la seringue 8 dans
la pompe à seringue 9 et qu'on raccorde le kit 6 au fluori-
mètre 7. On active alors la pompe à seringue 9 en repoussant
l'échantillon dans la seringue 8 à travers le kit 6 confor-
mément à un certain débit, comme cela va être décrit. La pompe 9 constitue par conséquent des moyens de réglage du débit de sorte que le temps de séjour de l'échantillon 43
à l'opposé de la zone activée 46 est analogue à la durée re-
quise pour vider complètement le volume présent entre la fi-
bre 12 et le tube 14. Le débit plus rapide entraîne un
accroissement de la sensibilité du système mais tend à ré-
duire le rendement d'utilisation de l'échantillon en rai-
son d'un refoulement incomplet. L'écoulement de l'échan-
tillon dans l'espace intercalaire compris entre la fibre 12 et le tube 14 doit remplir complètement cet espace et
doit le remplir de préférence pendant l'ensemble de l'ana-
lyse. Comme cela est indiqué dans le brevet US N 4 447 546
le fluorimètre 7 est conformé de manière à éclairer la fa-
ce d'extrémité 24 de la fibre 12 dans les limites de l'angle conique défini par l'ouverture numérique de la fibre. Ce rayonnement se propage par conséquent à l'intérieur de la fibre 12 avec l'angle critique ou audessus de cet angle (comme indiqué par le rayon 54 sur la figure 3) et subit des
réflexions internes totales multiples sur l'étendue en lon-
gueur de la fibre. Il en résulte qu'une onde évanescente est produite dans le fluide 43 au voisinage de la fibre pendant l'écoulement de l'échantillon le long de la zone
activée 36.
Une liaison concurrentielle des composants marqués 50 et des composants non marqués 54 à des fragments 46 fixées à la fibre aboutit à la formation de complexes 46C marqués de façon fluorescente, proportionnelle à la concentration relative des composants marqués par rapport aux composants non marqués. Les complexes marqués 46C, qui sont excités par l'onde évanescente, émettent une fluo-
rescence. Une partie de l'émission fluorescente pénètre selon un mode en tunnel dans la fibre en se propageant à l'intérieur de cette dernière le long de trajets dépassant l'angle critique, comme indiqué par exemple par le rayon 56 sur la figure 3. Une moitié ou plus de cette émission de fluorescence soumise à une réflexion totale sort de la
fibre au niveau de la face d'extrémité 24 o elle est col-
lectée par le fluorimètre 7.
Si l'espace intercalaire entre la fibre et le tube-est -empli complètement par le fluide de l'échantillon, au moins au voisinage de la zone activée 36, le volume de l'échantillon qui est à l'instant considéré, en face de la zone active 34 de la fibre est fourni par: (2) V = L pi (D2 - d2)/4 o L est la longueur de la zone active 36 de la fibre 12,
D est le diamètre intérieur du capillaire et d est le dia-
mètre de la fibre. Le volume observé est fourni par une re-
lation similaire, la quantité (D-d) étant remplacée par l'épaisseur effective de la zone observée. La durée d'incubation, nécessaire pour évacuer le volume statique tel que fournit par la relation (2) est: (3) t = k [(D - d)/(2s)] 2 o k est une constante de réaction chimique sans dimensions (qui dépend par exemple de la densité des sites de liaison sur 1-' fibre, de la probabilité qu'une espèce réactive dans l'échantillon rencontre un site de liaison, etc) et s est lediament brownien. Si D et d sont exprimés en cm et s en cm.s 1/2, alors t est exprimé en secondes. La valeur de k est comprise entre environ 1 et 10 pour tous les buts d'utilisation pratique. Si 1échantillon peut circuler le long de la zone active de manière à se déplacer sur la longueur de la zone
active pendant un intervalle de temps égal d la durée d'in-
cubation statique, alors, à partir de la relation (3), on obtient: (4) v = L/t = 4Ls2/k(D - d)2
o v est la vitesse d'écoulement.
En combinant les relations (2) et (3), on trouve que le volume évacué par unité de temps d'incubation, V/t, est: (5) V/t = pi L s2 (D + d)/k (D -d) La relation 5 définit le volume d'écoulement réel efficace
d'échantillons par une unité de temps. Un débit plus impor-
tant ne permet pas une évacuation complète de l'échantil-
lon, tandis qu'un débit volumique plus faible a pour effet que l'échantillon est situé en vis-à-vis de la zone active
pendant un intervalle de temps plus long que le temps né-
cessaire. On peut voir, à partir de la relation (5), que
la valeur de V/t peut être rendue maximale grâce à un ac-
croissement de la longueur de la zone active et grâce à un réglage approprié de la différence entre D et d, rendant cette différence aussi faible que possible. Cependant il
faut noter qu'il n'est pas nécessaire de limiter physique-
ment le diamètre du capillaire. Le volume entratné par un diamètre supérieur ne sera pas échantillonné, mais la perte d'une partie de l'échantillon est habituellement admissible
et il est préférable de construire l'appareil avec des exi-
gences de tolérances extrêmement petites.
On peut utiliser un volume capillaire important avec une vitesse d'écoulement de l'échantillon supérieure à celle fournie par la relation (4) de manière à obtenir un diamètre efficace du capillaire, Deff, fourni par (6) Dff = d + s (L/kv)1 2 Dans un tel agencement, k est plus faible et par conséquent le rapport optimal du volume au tempsV/t sera supérieur en
raison de l'évacuation de l'échantillon en dehors de l'es-
pace de diamètre efficace Deff ainsi qu'en raison de l'abs-
cence de toute nécessité d'attendre l'évacuation complète
de l'échantillon.
A titre d'exemple, pour D = 4d, on a=(D +d)/ (D -) = 1,66 tandis que pour D = 1,1d, on a (D + d)/
(D - d) = 21. Ce dernier cas fournit une amélioration cor-
respondant à un facteur de 12,6.
On comprendra également que la fibre 12 et le tube 14 pourraient avoir une forme autre que celle d'un cylindre circulaire droit et que par exemple ces éléments pourraient
être constitués par un couple de plaques parallèles enser-
rant entre elles un espace capillaire.
Etant donné que ces modifications et certaines autres modifications peuvent être apportées à l'appareil et au procédé indiqués précédemment sans sortir du cadre de
l'invention, il ressort que l'ensemble des indications conte-
nucs dans la -présentî-edescription ou représentées sur les
dessins annexés doivent être interprétées comme étant de
nature illustrative et non dans un sens limitatif.

Claims (8)

REVENDICATIONS
1. Procédé pour effectuer des analyses impliquant la mesure d'une fluorescence excitée dans un échantillon de fluide par une onde évanescente au niveau d'un élément de surface (36) d'un substrat (12) réalisant des réflexions
internes totales, caractérisé en ce qu'il consiste à dé-
clencher ladite fluorescence dans ledit échantillon en fai-
sant circuler ce dernier dans une enceinte (14) possédant
des dimensions fixes et délimitées en partie par ledit élé-
ment de surface, un volume suffisant dudit échantillon étant
prévu pour maintenir ladite enceinte remplie par l'échantil-
lon en circulation.
2. Procédé selon la revendication 1, selon lequel
ledit élément de surface (36) est recouvert par un revête-
ment (38) comportant une pluralité de sites, en chacun des-
quels il est possible de fixer un. fragment sélectionné d'un
complexe chimique, apte à fournir une fluorescence lors-
qu'il est excité par ladite onde évanescente, caractérisé
en ce qu'il inclut la phase opératoire consistant à mainte-
nir la vitesse (v) d'écoulement dudit volume de l'échantil-
lon au moins à la valeur L/t, L étant la longueur dudit
élément de surface, mesurée suivant la direction de l'âcou-
lement dudit échantillon au niveau de cet élément de sur-
face et t étant l'intervalle de temps requis pour que ledit
revêtement évacue un volume statique dudit échantillon rem-
plissant ladite enceinte.
3. Procédé selon la revendication 1, caractéris6
en ce qu'au moins une dimension minimale en coupe transver-
sale de ladite enceinte (14) correspond à celle d'un capil-
laire, en rapport avec ledit échanillon de fluide.
4. Appareil pour analyser un échantillon de fluide, du type comportant un substrat (12) fournissant une
réflexion totale interne et apte à transmettre un rayonne-
ment apte à déclencher une fluorescence dans un matériau fluorescent disposé au moins sur un élément de surface (36) dudit substrat, qui est également apte à transmettre ladite fluorescence, et des moyens (14) espacés au moins dudit élément de surface dudit substrat de manière à définir une enceinte délimitée en partie par ledit élément de surface, caractérisé en ce qu'il comporte des moyens (9) pour faire
circuler d'une manière essentiellement continue ledit échan-
tillon sur au moins ledit élément de surface et en un volume suffisant pour remplir Iadite enceinte, tout en déclenchant
ladite fluorescence.
5. Appareil selon la revendication 4, caractérisé
en ce que ledit substrat (12) est une fibre optique.
Appareil selon la revendication 5, caractérisé
en ce que ladite enceinte (14) est un tube disposé coaxiale-
ment par rapport à ladite fibre et l'entourant tout en en
étant espacé.
7. Appareil selon la revendication 6, caractérisé en ce que l'espace intercalaire entre ledit tube (14) et la
fibre (12) possède les dimensions d'un capillaire.
8. Appareil selon la revendication 4, caractérisé en ce qu'il comporte un fluorimètre (7) installé de manière
à mesurer la fluorescence déclenchée par ladite onde évanes-
cente. 9. Appareil selon la revendication 4, caractérisé en ce qu'il comporte des moyens (9) pour récler au moins la
vitesse d'écoulement dudit échantillon.
10. Appareil selon la revendication 9, caractérs6---
en ce que lesdits moyens (9) servant à commander ladite vi-
tesse d'écoulement comprennent des moyens de pompage du fluide. 11. Appareil selon la revendication 9, caractérisé en ce que ledit élément de surface (36) est recouvert par un revêtement possédant une pluralité de sites à chacun desquels
peut être fixée un-fragment sélectionné d'un complexe chimi-
que apte à fournir une fluorescence lorsqu'il est excité par ledit rayonnement, et que lesdits moyens permettant de régler
25871Z0
ladite vitesse d'écoulement règlent une vitesse (v) d'écoulement dudit volume essentiellement à la valeur L/t, L étant la longueur, mesurée suivant la direction d'écoulement dudit échantillon, dudit élément de surface (36) et t étant l'intervalle de temps requis par ledit
revêtement pour évacuer un volume statique dudit échantil-
lon remplissant ladite enceinte (14).
FR868612551A 1985-09-09 1986-09-08 Procede et appareil pour analyser un echantillon de fluide Expired - Lifetime FR2587120B1 (fr)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US06/773,940 US4716121A (en) 1985-09-09 1985-09-09 Fluorescent assays, including immunoassays, with feature of flowing sample

Publications (2)

Publication Number Publication Date
FR2587120A1 true FR2587120A1 (fr) 1987-03-13
FR2587120B1 FR2587120B1 (fr) 1992-06-19

Family

ID=25099777

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FR868612551A Expired - Lifetime FR2587120B1 (fr) 1985-09-09 1986-09-08 Procede et appareil pour analyser un echantillon de fluide

Country Status (6)

Country Link
US (1) US4716121A (fr)
JP (1) JP2568517B2 (fr)
CA (1) CA1277506C (fr)
DE (1) DE3630352C2 (fr)
FR (1) FR2587120B1 (fr)
GB (1) GB2180338B (fr)

Families Citing this family (70)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8723359D0 (en) * 1987-10-05 1987-11-11 Atomic Energy Authority Uk Sensor
EP0327786A1 (fr) * 1988-02-11 1989-08-16 IntraCel Corporation Méthode et appareil pour l'exécution de réactions chimiques ou biochimiques en phases porteuses poreuses
US5389523A (en) * 1988-05-31 1995-02-14 The United States Of Americas, As Represented By The Secretary Of Commerce Liposome immunoanalysis by flow injection assay
US5057279A (en) * 1988-10-13 1991-10-15 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Pressurized membrane chemical sensor
US5401469A (en) * 1989-04-19 1995-03-28 Ibiden Co., Ltd. Plastic optical biomaterials assay device
WO1990013029A1 (fr) * 1989-04-19 1990-11-01 Ibiden Co., Ltd. Reactif de dosage de substances biologiquement actives, son procede de production, procede et appareil de dosage
US6010867A (en) * 1989-04-19 2000-01-04 Ibiden Co., Ltd. Reagent for biomaterials assay, preparation method thereof, and assay method
US5061857A (en) * 1990-11-09 1991-10-29 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Waveguide-binding sensor for use with assays
US5192510A (en) * 1991-01-30 1993-03-09 E. I. Du Pont De Nemours And Company Apparatus for performing fluorescent assays which separates bulk and evanescent fluorescence
US5340715A (en) * 1991-06-07 1994-08-23 Ciba Corning Diagnostics Corp. Multiple surface evanescent wave sensor with a reference
US5156976A (en) * 1991-06-07 1992-10-20 Ciba Corning Diagnostics Corp. Evanescent wave sensor shell and apparatus
DE4121426A1 (de) * 1991-06-28 1993-01-14 Basf Ag Chemischer sensor
JP3107649B2 (ja) * 1991-12-20 2000-11-13 イビデン株式会社 蛍光免疫測定装置
EP0717779B1 (fr) * 1992-04-06 2001-10-31 Abbott Laboratories Procede et dispositif de detection d'acide nucleique ou d'analyte au moyen d'une technique de reflexion interne totale
US5354574A (en) * 1992-06-23 1994-10-11 Ibiden Co., Ltd. Method for producing optical fiber having formyl groups on core surface thereof
US5976896A (en) * 1994-06-06 1999-11-02 Idexx Laboratories, Inc. Immunoassays in capillary tubes
US5599668A (en) * 1994-09-22 1997-02-04 Abbott Laboratories Light scattering optical waveguide method for detecting specific binding events
US5606170A (en) * 1995-02-03 1997-02-25 Research International, Inc. Multifunctional sensor system
US5492674A (en) * 1995-03-17 1996-02-20 Boehringer Mannheim Corporation Evanescent wave immunoassay system
US5745231A (en) * 1995-06-12 1998-04-28 American Research Corporation Of Virginia Method of fluorescence analysis comprising evanescent wave excitation and out-of-plane photodetection
DE19524207A1 (de) * 1995-07-03 1996-06-13 Kurt Schwabe Inst Fuer Mes Und Dämpfungsarme faseroptische Sonde für Extinktionsmessungen
US5854863A (en) * 1996-03-15 1998-12-29 Erb; Judith Surface treatment and light injection method and apparatus
DE19621312A1 (de) * 1996-05-28 1997-12-04 Bayer Ag Maskierung der Hintergrundfluoreszenz und Signalverstärkung bei der optischen Analyse biologisch medizinischer Assays
US6082185A (en) * 1997-07-25 2000-07-04 Research International, Inc. Disposable fluidic circuit cards
US6136611A (en) * 1997-07-31 2000-10-24 Research International, Inc. Assay methods and apparatus
DE19735144C2 (de) 1997-08-13 2000-02-24 Wolfram Bohnenkamp Reflexionsfluorimeter
US6300638B1 (en) 1998-11-12 2001-10-09 Calspan Srl Corporation Modular probe for total internal reflection fluorescence spectroscopy
DE19856041A1 (de) * 1998-12-04 2000-07-13 Inst Chemo Biosensorik Verfahren und Vorrichtung zur Durchführung von quantitativen Fluoreszenz markierten Affinitätstests
US7167615B1 (en) 1999-11-05 2007-01-23 Board Of Regents, The University Of Texas System Resonant waveguide-grating filters and sensors and methods for making and using same
JP3429282B2 (ja) * 2001-02-02 2003-07-22 リサーチ・インターナショナル・インコーポレーテッド 自動化されたシステム、及びサンプルの分析方法
US6850657B2 (en) * 2002-02-08 2005-02-01 The Research Foundation Of State University Of New York Capillary waveguide fluorescence sensor
US7399643B2 (en) 2002-09-12 2008-07-15 Cyvera Corporation Method and apparatus for aligning microbeads in order to interrogate the same
US7872804B2 (en) 2002-08-20 2011-01-18 Illumina, Inc. Encoded particle having a grating with variations in the refractive index
US7923260B2 (en) 2002-08-20 2011-04-12 Illumina, Inc. Method of reading encoded particles
US7619819B2 (en) * 2002-08-20 2009-11-17 Illumina, Inc. Method and apparatus for drug product tracking using encoded optical identification elements
US7508608B2 (en) 2004-11-17 2009-03-24 Illumina, Inc. Lithographically fabricated holographic optical identification element
US7900836B2 (en) 2002-08-20 2011-03-08 Illumina, Inc. Optical reader system for substrates having an optically readable code
US7441703B2 (en) 2002-08-20 2008-10-28 Illumina, Inc. Optical reader for diffraction grating-based encoded optical identification elements
US7901630B2 (en) 2002-08-20 2011-03-08 Illumina, Inc. Diffraction grating-based encoded microparticle assay stick
US7164533B2 (en) 2003-01-22 2007-01-16 Cyvera Corporation Hybrid random bead/chip based microarray
AU2003270726A1 (en) 2002-09-12 2004-04-30 Cidra Corporation Diffraction grating-based encoded micro-particles for multiplexed experiments
US20100255603A9 (en) 2002-09-12 2010-10-07 Putnam Martin A Method and apparatus for aligning microbeads in order to interrogate the same
US7092160B2 (en) 2002-09-12 2006-08-15 Illumina, Inc. Method of manufacturing of diffraction grating-based optical identification element
US7289207B2 (en) * 2003-10-28 2007-10-30 Los Alamos National Security, Llc Integrated optical biosensor system (IOBS)
US20050112587A1 (en) * 2003-11-25 2005-05-26 Sherrill James V. Analyzing biological probes
US7433123B2 (en) 2004-02-19 2008-10-07 Illumina, Inc. Optical identification element having non-waveguide photosensitive substrate with diffraction grating therein
JP5042820B2 (ja) * 2004-05-14 2012-10-03 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー 生物活性表面を有する物品およびそれらの無溶媒調製法
US7496245B2 (en) * 2004-08-20 2009-02-24 Research International, Inc. Misalignment compensating optical sensor and method
US7604173B2 (en) 2004-11-16 2009-10-20 Illumina, Inc. Holographically encoded elements for microarray and other tagging labeling applications, and method and apparatus for making and reading the same
US7602952B2 (en) 2004-11-16 2009-10-13 Illumina, Inc. Scanner having spatial light modulator
AU2005307746B2 (en) 2004-11-16 2011-05-12 Illumina, Inc. And methods and apparatus for reading coded microbeads
US7623624B2 (en) 2005-11-22 2009-11-24 Illumina, Inc. Method and apparatus for labeling using optical identification elements characterized by X-ray diffraction
WO2007127512A2 (fr) * 2006-01-31 2007-11-08 Drexel University biodétecteur à fibre optique effilée ultrasensible pour agents pathogènes, protéines et ADN
US20070196863A1 (en) * 2006-02-17 2007-08-23 Hanson Technologies, Inc. Prion protein detection
US7651869B2 (en) 2006-03-14 2010-01-26 Research International, Inc. Optical assay apparatus and methods
US7830575B2 (en) 2006-04-10 2010-11-09 Illumina, Inc. Optical scanner with improved scan time
US20110143378A1 (en) * 2009-11-12 2011-06-16 CyVek LLC. Microfluidic method and apparatus for high performance biological assays
US10065403B2 (en) 2009-11-23 2018-09-04 Cyvek, Inc. Microfluidic assay assemblies and methods of manufacture
US9700889B2 (en) 2009-11-23 2017-07-11 Cyvek, Inc. Methods and systems for manufacture of microarray assay systems, conducting microfluidic assays, and monitoring and scanning to obtain microfluidic assay results
US9500645B2 (en) 2009-11-23 2016-11-22 Cyvek, Inc. Micro-tube particles for microfluidic assays and methods of manufacture
US9855735B2 (en) 2009-11-23 2018-01-02 Cyvek, Inc. Portable microfluidic assay devices and methods of manufacture and use
WO2013134739A1 (fr) 2012-03-08 2013-09-12 Cyvek, Inc. Système d'exploitation de dosage microfluidique et procédé d'utilisation
US9759718B2 (en) 2009-11-23 2017-09-12 Cyvek, Inc. PDMS membrane-confined nucleic acid and antibody/antigen-functionalized microlength tube capture elements, and systems employing them, and methods of their use
US9651568B2 (en) 2009-11-23 2017-05-16 Cyvek, Inc. Methods and systems for epi-fluorescent monitoring and scanning for microfluidic assays
WO2011063408A1 (fr) 2009-11-23 2011-05-26 Cyvek, Inc. Procédé et appareil destiné à réaliser des dosages
GB201005191D0 (en) 2010-03-26 2010-05-12 Cambridge Entpr Ltd Immunoassays,methods for carrying out immunoassays,immunoassay kits and method for manufacturing immunoassay kits
JP5978287B2 (ja) 2011-03-22 2016-08-24 サイヴェク・インコーポレイテッド マイクロ流体装置並びに製造及び使用の方法
DE102012105253A1 (de) * 2012-06-15 2013-12-19 Hamilton Bonaduz Ag Sensor
US10228367B2 (en) 2015-12-01 2019-03-12 ProteinSimple Segmented multi-use automated assay cartridge
DE102021133357A1 (de) 2021-12-15 2023-06-15 Endress+Hauser Conducta Gmbh+Co. Kg Sensorelement, Sensorsystem und Verfahren zum Herstellen des Sensorelements

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4293310A (en) * 1980-03-14 1981-10-06 University Of Pittsburgh Photoelectrochemical immunoassay
EP0061884A1 (fr) * 1981-03-30 1982-10-06 Imperial Chemical Industries Plc Capteur en fibre optique
EP0128723A2 (fr) * 1983-06-13 1984-12-19 Myron J. Block Appareil et méthodes d'essai

Family Cites Families (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US447546A (en) * 1891-03-03 Tobacco-wagon
US3939350A (en) * 1974-04-29 1976-02-17 Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Fluorescent immunoassay employing total reflection for activation
US4036946A (en) * 1975-10-20 1977-07-19 Marcos Kleinerman Immunofluorometric method for measuring minute quantities of antigens, antibodies and other substances
US4297273A (en) * 1978-07-24 1981-10-27 Miles Laboratories, Inc. Chemiluminescent phthalhydrazide-labeled protein and polypeptide conjugates
JPS576338A (en) * 1980-06-12 1982-01-13 Kyoto Daiichi Kagaku:Kk Method and device for measuring degree of flocculation of finely divided particles quantitatively
JPS5821141A (ja) * 1981-07-30 1983-02-07 Olympus Optical Co Ltd 粒子凝集反応判定方法および判定容器
AU557816B2 (en) * 1981-09-18 1987-01-08 Prutec Ltd. Method for the determination of species in solution with an optical wave-guide
JPS58184540A (ja) * 1982-04-21 1983-10-28 Mitsubishi Electric Corp 生化学センサ及び生化学センサを用いた化合物濃度の測定方法
US4582809A (en) * 1982-06-14 1986-04-15 Myron J. Block Apparatus including optical fiber for fluorescence immunoassay
US4447546A (en) * 1982-08-23 1984-05-08 Myron J. Block Fluorescent immunoassay employing optical fiber in capillary tube
US4553034A (en) * 1983-12-02 1985-11-12 Westinghouse Electric Corp. Ion exchange resin intrusion monitor
DE3344019C2 (de) * 1983-12-06 1995-05-04 Max Planck Gesellschaft Vorrichtung zur optischen Messung der Konzentration einer in einer Probe enthaltenen Komponente
DE3481644D1 (de) * 1984-12-10 1990-04-19 Prutec Ltd Verfahren zum optischen nachweis von parametern von substanzen in einem fluessigen analyt.
US4671938A (en) * 1985-09-09 1987-06-09 Ciba-Corning Diagnostics, Corp. Immunoassay apparatus

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4293310A (en) * 1980-03-14 1981-10-06 University Of Pittsburgh Photoelectrochemical immunoassay
EP0061884A1 (fr) * 1981-03-30 1982-10-06 Imperial Chemical Industries Plc Capteur en fibre optique
EP0128723A2 (fr) * 1983-06-13 1984-12-19 Myron J. Block Appareil et méthodes d'essai

Also Published As

Publication number Publication date
GB2180338A (en) 1987-03-25
DE3630352A1 (de) 1987-03-19
JPS6279334A (ja) 1987-04-11
GB2180338B (en) 1990-01-04
FR2587120B1 (fr) 1992-06-19
GB8620794D0 (en) 1986-10-08
US4716121A (en) 1987-12-29
DE3630352C2 (de) 1996-07-18
JP2568517B2 (ja) 1997-01-08
CA1277506C (fr) 1990-12-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FR2587120A1 (fr) Procede et appareil pour analyser un echantillon de fluide
FR2587119A1 (fr) Appareil optique servant a effectuer des analyses
EP0519623B1 (fr) Système de palpeur avec surfaces multiples pour ondes amorties
FR2587118A1 (fr) Appareil optique pour la realisation d'analyses immunologiques
US6340598B1 (en) Apparatus for multichannel fluorescent immunoassays
US5156976A (en) Evanescent wave sensor shell and apparatus
Axelrod et al. Total internal reflection fluorescence
JP2603611B2 (ja) 液状分析物中の種のパラメーターを光学的に確認する方法および装置
EP0429612B1 (fr) Procede d'analyse optique
EP2810042B1 (fr) Dispositif et procede pour effectuer des mesures hematologiques et biochimiques a partir d'un echantillon biologique
Nadeau et al. High-Q whispering-gallery mode sensor in liquids
JPS6036963A (ja) 検定の方法及び装置
FR2484652A1 (fr) Procede et appareil de determination quantitative du degre d'agglutination de particules
FR2549224A1 (fr) Mesure par des moyens optiques de parametres d'un fluide
CA2308248A1 (fr) Methode et dispositif de dosage immunologique fluorometrique
EP1410000B1 (fr) Dispositif d'analyse par fluorescence induite par laser et appareil de separation avec un tel dispositif
EP0097577A1 (fr) Appareil de filtration rapide, notamment pour liquides biologiques
CH660633A5 (fr) Appareil d'analyse pour la determination optique de substances en solution.
EP1409999B1 (fr) Appareil de separation par electrophorese sur microcanaux et de detection par fluorescence induite par laser
Plunkett et al. Vibrational spectra of individual millimeter-size membrane patches using miniature infrared waveguides
Plowman et al. Surface sensitivity of SiON integrated optical waveguides (IOWs) examined by IOW-attenuated total reflection spectrometry and IOW-Raman spectroscopy
FR2634886A1 (fr) Procede et appareil pour realiser et evaluer automatiquement des reactions d'agglutination, en particulier pour detecter les faibles agglutinations
WO2004040269A2 (fr) Dispositif de lecture de luminescence integre
FR2595825A1 (fr) Appareil de mesure de l'indice de refraction d'un milieu homogene et son application entre autres en agriculture pour la determination du degre de maturite d'un fruit ou d'un legume
FR2737571A1 (fr) Sonde optique pour spectroscopie par reflexion totale attenuee