ES2913233T3 - Péptido de unión a trombospondina 1 - Google Patents

Péptido de unión a trombospondina 1 Download PDF

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Abstract

Un polipéptido macrocíclico representado por la fórmula (I) **(Ver fórmula)** o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo, en donde Xaa1 es un resto de Arg, Lys, His, Gly, Ala, Asn, Thr, Ser, Met, Leu, Ile, Val, Gln, Phe, Tyr, Trp o Cys, o está ausente; Xaa2 es un resto de Phe, Tyr, Trp, 2Nal, 4CF o DCF; Xaa3 es un resto de Ile, Leu, Nle, Tle, Trp, 2Nal, 4CF o Arg; Xaa4 es un resto de Ser; Xaa5 es un resto de Gly; Xaa6 es un resto de Arg, Lys, His, Ser, Cit o MO2; Xaa7 es un resto de Asn o Asp; Xaa8 es un resto de Trp, 2Nal o 6CW; Xaa9 es un resto de Val, Nle, Ahp o Met; Xaa10 es un resto de Arg, Lys, His, AMF, Phg o Val; Xaa11 es un resto de Trp o 2Nal; Xaa12 es un resto de Val, Tle o Phe; en donde **(Ver fórmula)** 2Nal representa, 4CF representa **(Ver fórmula)** DCF representa **(Ver fórmula)** Nle representa **(Ver fórmula)** Tle representa **(Ver fórmula)** Cit representa **(Ver fórmula)** MO2 representa **(Ver fórmula)** 6CW representa **(Ver fórmula)** Ahp representa **(Ver fórmula)** AMF representa **(Ver fórmula)** Phg representa **(Ver fórmula)** A es un grupo de unión de fórmula: **(Ver fórmula)** en donde **(Ver fórmula)** representa un punto de unión al grupo amino N-terminal de Xaa1, o en ausencia de Xaa1, representa un punto de unión al grupo amino N-terminal de Xaa2, **(Ver fórmula)** representa un punto de unión al grupo carbonilo C-terminal de Xaa12.

Description

DESCRIPCIÓN
Péptido de unión a trombospondina 1
Campo técnico
La presente invención se refiere a polipéptidos macrocíclicos o sales farmacológicamente aceptables de los mismos, que pueden estimular la angiogénesis al inhibir la función de un inhibidor de la angiogénesis (trombospondina 1/TSP1) y son útiles para el tratamiento o la profilaxis de enfermedades tales como la isquemia crítica de las extremidades.
Técnica anterior
La isquemia crítica de las extremidades (ICE) es una afección en la que se produce dolor en reposo debido a la obstrucción de la circulación sanguínea en las extremidades inferiores y se produce una úlcera o necrosis en la periferia de las extremidades inferiores. La ICE se clasifica en estadios III a IV y estadios 4 a 6, respectivamente, de acuerdo las clasificaciones de Fontaine y Rutherford (BNP 1).
La ICE se ha considerado problemática debido al mal pronóstico y la alta mortalidad, y se han realizado estudios sobre una terapia en pacientes con ICE, en los que se suprime el progreso de la úlcera o necrosis de las extremidades mediante el remodelado del sistema vascular a través de la revascularización de los tejidos isquémicos y el suministro de oxígeno y nutrientes a los tejidos isquémicos (BNP 2). Hasta ahora se han hecho diversos intentos para aplicar una terapia génica utilizando factores de crecimiento proangiogénicos para la ICE, pero a diferencia de los estudios con animales, no se ha demostrado que tal terapia muestre eficacia en ensayos clínicos. A la luz de tales resultados de ensayos clínicos, otro enfoque se ha puesto en los factores angiostáticos, proponiendo una hipótesis sobre la importancia del equilibrio entre los factores proangiogénicos y angiostáticos (BNP 3 y 4).
La trombospondina 1 (TSP1), una glicoproteína de la que se ha informado que actúa de manera inhibitoria sobre la angiogénesis, se libera de los trombocitos activados y que la sintetizan y secretan numerosos tipos celulares, incluidas las células endoteliales, miocitos lisos, células mesangiales renales, células tubulares y podocitos (BNP 5 a 7). La expresión de la TSP1 aumenta en la sangre de los pacientes con enfermedad vascular periférica y en los músculos esqueléticos de las extremidades inferiores de los pacientes con ICE, y este hallazgo sugiere la participación de la TSP1 en el progreso de úlceras o necrosis en las extremidades inferiores de los pacientes con ICE (BNP 8 y 9). ). Dado que la TSP1 limita la recuperación de la circulación sanguínea después de la isquemiareperfusión de las patas traseras en ratas, y los ratones deficientes en TSP1 muestran una angiogénesis potenciada después de la isquemia de las patas traseras, se considera que la TSP1 tiene un efecto inhibidor sobre la recuperación de la circulación sanguínea después de la isquemia de las patas traseras (BNP 10 y 11). Además, dado que los ratones deficientes en TSP1 muestran un aumento de la circulación sanguínea en las áreas heridas y una reducción aumentada del tamaño de las heridas, puede esperarse que la inhibición de la función de la TSP1 tenga un efecto curativo sobre las heridas en pacientes con ICE (BNP 12).
La TSP1 no solo tiene actividad angioestática sino también otras actividades farmacológicas, y se considera que está implicada en muchas enfermedades. La TSP1, secretada por los trombocitos, potencia los niveles de PAI-1 en el sistema fibrinolítico y estimula la trombogénesis (BNP 13). Los pacientes obesos y resistentes a la insulina muestran un aumento de los niveles de TSP1, lo que sugiere que la TSP1 actúa sobre los macrófagos estimulando las respuestas inflamatorias inducidas por la obesidad y empeorar la resistencia a la insulina (BNP 14 y 15). La TSP1 estimula la apoptosis de los podocitos renales e induce la disfunción de los podocitos (BNP 16). La TSP1 se une a la proteína reguladora de señales a en células no fagocíticas, activa la NADPH oxidasa, limita la vasodilatación e induce daño por isquemia reperfusión renal (BNP 17). Estos resultados sugieren la posibilidad de que la inhibición de la TSP1 pueda mejorar el infarto de miocardio, y la inflamación y la resistencia a la insulina en pacientes obesos, así como trastornos renales, incluida la lesión por isquemia-reperfusión. Además, las micropartículas procedentes de trombocitos liberadas por la TSP1 inducen crisis vasooclusivas en pacientes con anemia drepanocítica (BNP 18 y 19). Adicionalmente, se informa que la TSP1 estimula la migración y adhesión de los monocitos, contribuyendo a una inflamación vascular potenciada durante el desarrollo del aneurisma aórtico (BNP 20). Se informa que la TSP1 puede estar implicada tanto en la supresión como en el estímulo de cánceres al actuar sobre el crecimiento, la adhesión y la invasión de células cancerosas (BNP 21).
Por otra parte, existen algunos anticuerpos (PTL 1) y polipéptidos (PTL 2) conocidos como antagonistas de la unión de TSP1 al receptor CD47. Sin embargo, no se conoce la unión de polipéptidos macrocíclicos a la TSP1.
Listado de citas
Bibliografía de patente
BP 1: Documento WO 2008/060785
BP 2: Documento US 2014/296477
Bibliografía no de patente
BNP 1: Kinlay S. Circ Cardiovasc Interv. 2016; 9: e001946.
BNP 2: Davies MG. Methodist Debakey Cardiovasc J. 2012; 8: 20-27.
BNP 3: Hellsten Y, Hoier B. Biochem. Soc. Trans. 2014; 42: 1616-1622.
BNP 4: Olfert IM. Microcirculation 2016; 23: 146-156.
BNP 5: Jimenez B, Volpert OV, Crawford SE, et al. Nat Med. 2000; 6: 41-48.
BNP 6: Henkin J, Volpert OV. Expert Opin Ther Targets. 2011; 15(12): 1369-1386.
BNP 7: Murphy-Ullrich JE, lozzo RV. Matrix Biol. 2012; 31(3): 152-154.
BNP 8: Smadja DM, d'Audigier C, Bieche I, et al. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2011; 31: 551-559.
BNP 9: Favier J, Germain S, Emmerich J, et al. J Pathol 2005; 207: 358-366.
BNP 10: Isenberg JS, Romeo MJ, Abu-Asab M, et al. Circ Res. 2007; 100(5): 712-720.
BNP 11: Csanyi G, Yao M, Rodriguez Al, et al. Arterioscler Thromb Vase Biol. 2012; 32: 2966-2973.
BNP 12: Soto-Pantoja DR, Shih HB, Maxhimer JB, et al. Matrix Biol. 2014; 37: 25-34.
BNP 13: Prakash P, Kulkarni PP, Chauhan AK. Blood 2015; 125(2): 399-406.
BNP 14: Varma V, Yao-Borengasser A, Bodies AM, et al. Diabetes. 2008; 57(2): 432-439.
BNP 15: Li Y, Tong X, Rumala C, et al. PLoS One. 2011; 6(10): e26656.
BNP 16: Cui W, Maimaitiyiming H, Zhou Q, et al. Biochim Biophys Acta. 2015; 1852(7): 1323-1333.
BNP 17: Yao M, Rogers NM, Csanyi G, et al. J Am Soc Nephrol. 2014; 25(6): 1171-1186.
BNP 18: Hagag AA, Elmashad G, Abd El-Lateef AE. Mediterr J Hematol Infect Dis. 2014; 6(1): e2014044.
BNP 19: Camus SM, Gausseres B, Bonnin P, et al. Blood. 2012; 120(25): 5050-5058.
BNP 20: Liu Z, Morgan S, Ren J, et al. Circ Res. 2015; 117(2): 129-141.
BNP 21: Esemuede N, Lee T, Pierre-Paul D. et al., The role of thrombospondin-1 in human disease. J Surg Res.
2004;122(1): 135-42.
Sumario de la invención
Problema técnico
Un objeto de la presente invención es proporcionar compuestos que puedan estimular la angiogénesis mediante la inhibición de la función de la TSP1 y que sean útiles para el tratamiento o la profilaxis de enfermedades tales como la isquemia crítica de las extremidades.
Solución al problema
Los presentes inventores han realizado intensos estudios para lograr el mencionado objeto, y como resultado, descubrieron que los polipéptidos macrocíclicos que tienen secuencias de aminoácidos particulares se unen a la TSP1 para bloquear la adhesión celular a la TSP1, inhibiendo de este modo la función de la TSP1; y, así, los inventores completaron la presente invención.
Más específicamente, la presente invención proporciona [1] a [6] como sigue.
[1] Un polipéptido macrocíclico representado por la fórmula (I)
Figure imgf000003_0001
o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo,
en donde Xaa1 es un resto de Arg, Lys, His, Gly, Ala, Asn, Thr, Ser, Met, Leu, Ile, Val, Gln, Phe, Tyr, Trp o Cys, o está ausente;
Xaa2 es un resto de Phe, Tyr, Trp, 2Nal, 4CF o DCF;
Xaa3 es un resto de Ile, Leu, Nle, Tie, Trp, 2Nal, 4CF o Arg;
Xaa4 es un resto de Ser;
Xaa5 es un resto de Gly;
Xaa6 es un resto de Arg, Lys, His, Ser, Cit o MO2;
Xaa7 es un resto de Asn o Asp;
Xaa8 es un resto de Trp, 2Nal o 6CW;
Xaag es un resto de Val, Nle, Ahp o Met;
Xaa10 es un resto de Arg, Lys, His, AMF, Phg o Val;
Xaaii es un resto de Trp o 2Nal;
Xaa12 es un resto de Val, Tie o Phe;
en donde
2Nal representa
Figure imgf000004_0001
4CF representa
Figure imgf000004_0002
DCF representa
Figure imgf000004_0003
Nle representa
Figure imgf000004_0004
Tie representa
Cit representa
Figure imgf000005_0001
MO2 representa
Figure imgf000005_0002
6CW representa
Figure imgf000005_0003
Ahp representa
Figure imgf000005_0004
AMF representa
Figure imgf000005_0005
Phg representa
Figure imgf000006_0001
A es un grupo de unión de fórmula
Figure imgf000006_0004
en donde
Figure imgf000006_0002
representa un punto de unión al grupo amino N-terminal de Xaa1, o en ausencia de Xaa1, representa un punto de unión al grupo amino N-terminal de Xaa2,
Figure imgf000006_0003
representa un punto de unión al grupo carbonilo C-terminal de Xaa12.
[2] El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo como se expone en [1], en donde Xaa1 es un resto de Arg, Lys o Gly, o está ausente;
Xaa2 es un resto de 2Nal;
Xaa3 es un resto de Ile o Arg;
Xaa4 es un resto de Ser;
Xaa5 es un resto de Gly;
Xaa6 es un resto de Arg, Lys, His o Ser;
Xaa7 es un resto de Asn o Asp;
Xaa8 es un resto de Trp;
Xaa9 es un resto de Val, Nle o Ahp;
Xaa1o es un resto de Arg, Lys, His, Phg o Val;
Xaa11 es un resto de Trp;
Xaa12 es un resto de Val;
A es
Figure imgf000007_0001
[3] El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo como se expone en [2], en donde el polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo se selecciona del grupo que consiste en los compuestos representados por las fórmulas:
Figure imgf000008_0001
Figure imgf000009_0001
Figure imgf000010_0001
Figure imgf000011_0001
Figure imgf000012_0001
Figure imgf000013_0001
Figure imgf000014_0001
Figure imgf000015_0001
[4] El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo como se expone en uno cualquiera de [1] a [3]], para su uso en el tratamiento o la profilaxis de una enfermedad o síntoma.
[5]. El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo para su uso como se expone en [4], en donde la enfermedad o síntoma es isquemia crítica de las extremidades o enfermedad arterial periférica.
[6]. El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo como se expone en uno cualquiera de [1] a [3]], para su uso en el estímulo de la angiogénesis.
Efectos ventajosos de la invención
Los polipéptidos macrocíclicos o sales farmacológicamente aceptables de los mismos de la presente invención pueden unirse a la TSP1 para bloquear la adhesión de células, tales como células endoteliales vasculares, a TSP1. Por lo tanto, los polipéptidos macrocíclicos o sales farmacológicamente aceptables de los mismos de la presente invención son útiles para el tratamiento o la profilaxis de enfermedades o síntomas inducidos por la expresión aumentada de la TSP1. Además, los polipéptidos macrocíclicos o sales farmacológicamente aceptables de los mismos de la presente invención son útiles como promotores de la angiogénesis.
Descripción de las realizaciones
(Definiciones)
Como se hace referencia en el presente documento, aminoácidos naturales se refiere a aminoácidos no modificados que se encuentran comúnmente en proteínas de origen natural, y más particularmente se refiere a alanina, arginina, asparagina, ácido aspártico, cisteína, ácido glutámico, glutamina, glicina, histidina, isoleucina, leucina, lisina, metionina, fenilalanina, prolina, serina, treonina, triptófano, tirosina y valina. En el presente documento, los aminoácidos naturales pueden indicarse mediante códigos de tres letras o códigos de una letra (es decir, alanina: Ala o A; arginina: Arg o R; asparagina: Asn o N; ácido aspártico: Asp o D; cisteína: Cys o C; ácido glutámico: Glu o E; glutamina: Gln o Q; glicina: Gly o G; histidina: His o H; isoleucina: Ile o I; leucina: Leu o L; lisina: Lys o K; metionina: Met o M; fenilalanina: Phe o F; prolina: Pro o P; serina: Ser o S; treonina: Thr o T; triptófano: Trp o W; tirosina: Tyr o Y; valina: Val o V).
Como se hace referencia en el presente documento, aminoácidos no naturales se refiere a otros aminoácidos distintos de los aminoácidos naturales y también incluye versiones modificadas de aminoácidos naturales. Las abreviaturas de los aminoácidos no naturales a los que se hace referencia en el presente documento se enumeran a continuación.
Figure imgf000016_0001
Cuando el término "aminoácido (o aminoácidos)" se usa en el presente documento para describir un aminoácido (o aminoácidos) constitucional (o constitucionales) de un polipéptido, este término se refiere a uno o más restos de aminoácidos. A menos que se especifique otra cosa, los aminoácidos a los que se hace referencia en el presente documento son L-aminoácidos.
Como se hace referencia en el presente documento, el aminoácido alifático es un aminoácido representado por la fórmula (IIa):
Figure imgf000017_0001
(en donde R3 es alquilo C1-6, alquenilo C2-6 o cicloalquilo C3-6).
Los ejemplos de aminoácidos alifáticos naturales incluyen Ala, Val, Leu e Ile. Los ejemplos de aminoácidos alifáticos no naturales incluyen, pero sin limitación, Nle, Tie, Ahp, Aoc, Alg y Btg.
Como se hace referencia en el presente documento, el aminoácido aromático es un aminoácido representado por la fórmula (IIb)
Figure imgf000017_0002
(en donde R4 es un grupo aromático seleccionado de fenilo, tienilo, naftilo, indolilo, benzofuranilo y benzotienilo, en donde el grupo aromático puede estar sustituido por uno o más sustituyentes seleccionados independientemente del grupo que consiste en alquilo C1-3, átomos de halógeno, hidroxi y alcoxi C1-3; y p es un número entero de 0 a 3). Los ejemplos de aminoácidos aromáticos naturales incluyen Phe, Tyr y Trp. Los ejemplos de aminoácidos aromáticos no naturales incluyen, pero sin limitación, 2Nal, 4Cf , DCF, 6CW, HF y Phg.
Como se hace referencia en el presente documento, el aminoácido básico es un aminoácido representado por la fórmula (IIc)
Figure imgf000017_0003
[en donde
la fórmula -(CH2)qaNH2 (en donde qa es un número entero de 1 a 6),
la formula
Figure imgf000017_0004
(en donde R6 es un átomo de hidrógeno o alquilo C1-3, y qb es un número entero de 1 a 6), la fórmula (CH2)qcNHC(=NH)NH2 (en donde qc es un número entero de 1 a 6 ), o la fórmula
[Quím. 49]
Figure imgf000018_0001
(en donde qd y qe son cada uno independientemente un número entero de 1 a 3)].
Los ejemplos de aminoácidos básicos naturales incluyen Lys, His y Arg. Los ejemplos de aminoácidos básicos no naturales incluyen, pero sin limitación, 3MH y AMF.
Como se hace referencia en el presente documento, el aminoácido neutro es un aminoácido representado por la fórmula (IId)
Figure imgf000018_0002
[en donde R7 es un grupo representado por la fórmula -(CH2)raNHCONH2 (en donde ra es un número entero de 1 a 6 (por ejemplo, 1, 2, 3, 4, 5 o 6)), o la fórmula -(CH2)rbSH (en donde rb es un número entero de 1 a 3 (por ejemplo, 1, 2, or 3))], Gly, Met, La MO1, La MO2, Pro, 3HyP, Asn, Gln, Ser, mS, MS, Thr, C(O), C(O2) o Pen.
Los ejemplos de aminoácidos neutros naturales incluyen Gly, Ser, Thr, Cys, Met, Pro, Asn y Gln. Los ejemplos de aminoácidos neutros no naturales incluyen, pero sin limitación, La MO1, MO2, 3HyP, mS, MS, Alb, Cit, Hct, Hcy, C(O), C(O2) y Pen.
Como se hace referencia en el presente documento, el aminoácido ácido es un aminoácido representado por la fórmula (II e)
Figure imgf000018_0003
[en donde R8 es un grupo representado por la fórmula -(CH2)sCOOH (en donde s es un número entero de 1 a 6 )]. Los ejemplos de aminoácidos ácidos naturales incluyen Asp y Glu.
Como se hace referencia en el presente documento, alquilo C1-3 se refiere a un alquilo de cadena lineal o ramificada que tiene de 1 a 3 átomos de carbono, tal como metilo, etilo, 1 -propilo o 2-propilo.
Como se hace referencia en el presente documento, alquilo C1-6 se refiere a un alquilo de cadena lineal o ramificada que tiene de 1 a 6 átomos de carbono, tal como metilo, etilo, 1 -propilo, 2-propilo, 1-butilo, 2-butilo, 2-metil-1-propilo, 2-metil-2-propilo, 1 -pentilo, 2-pentilo, 3-pentilo, 2-metil-2-butilo, 3-metil-2-butilo, 1-hexilo, 2-hexilo, 3-hexilo, 2-metil-1-pentilo, 3-metil-1-pentilo, 2-etil-1-butilo, 2,2-dimetil-1-butilo o 2,3-dimetil-1-butilo.
Como se hace referencia en el presente documento, alquenilo C2-6 se refiere a un alquenilo de cadena lineal o ramificada que tiene de 2 a 6 átomos de carbono y que contiene uno o más dobles enlaces, tales como vinilo, 1-propenilo, 2-propenilo (alilo), 1-butenilo, 2-butenilo, 3-butenilo, 1-metil-2-propenilo, 2-metil-2-propenilo, 1-pentenilo, 2-pentenilo, 3-pentenilo, 4-pentenilo, 1-metil-2-butenilo, 2-metil-2-butenilo, 1-hexenilo, 2-hexenilo, 3-hexenilo, 4-hexenilo, 5-hexenilo o 3-metil-2-pentenilo, con vinilo, 2-propenilo (alilo), 3-butenilo, 4-pentenilo o 5-hexenilo siendo preferidos.
Como se hace referencia en el presente documento, cicloalquilo C3-6 se refiere a un grupo alquilo cíclico que tiene de 3 a 6 átomos de carbono, tal como el grupo ciclopropilo, grupo ciclobutilo, grupo ciclopentilo o grupo ciclohexilo. Como se hace referencia en el presente documento, los átomos de halógeno son F, Cl, Br o I.
Como se hace referencia en el presente documento, alcoxi C1-3 se refiere a un grupo hidroxilo sustituido por un grupo alquilo C1-3 como se define anteriormente, tal como metoxi, etoxi, 1 -propoxi o 2 -propoxi.
Como se hace referencia en el presente documento, actividad inhibitoria de la TSP1 se refiere a la actividad de inhibir uno o más efectos de la TSP1, incluido el efecto angiostático. La actividad inhibidora de la TSP1 se mide mediante un ensayo de inhibición de la adhesión celular utilizando TSP1 humana y células endoteliales vasculares como se describe a continuación en el presente documento en la sección de Ejemplos. En este ensayo, cuando la concentración inhibitoria del 50 % (CI50) de una sustancia de prueba es 200 nM o menos, se determina que la sustancia de prueba tiene actividad inhibidora de TSP1.
(Polipéptido (o polipéptidos) macrocíclico (o macrocíclicos) de la presente invención)
La presente invención se refiere a polipéptidos macrocíclicos novedosos que tienen actividad inhibidora de la TSP1. En un modo, el compuesto de la presente invención es un polipéptido macrocíclico representado por la fórmula (I)
Figure imgf000019_0001
(en lo sucesivo denominado en el presente documento "el polipéptido macrocíclico de la presente (esta) invención"). El polipéptido macrocíclico de la presente invención tiene formada en él una estructura macrocíclica en la que los aminoácidos Xaa1 a Xaa12, o si Xaa1 está ausente, los aminoácidos Xaa2 a Xaa12, están unidos entre sí mediante enlaces amida para formar una cadena polipeptídica, y el aminoácido N-terminal (Xaa1 o Xaa2) y el aminoácido C-terminal (Xaa12) de la cadena polipeptídica están unidos mediante un grupo de unión A.
En la fórmula (I), A se selecciona de los siguientes grupos de unión A1 a A6 que tienen una estructura de aminoácido:
Figure imgf000020_0001
Como se encuentra en cualquiera de los extremos de A,
[Quím. 54]
Figure imgf000020_0002
representa un punto de unión al grupo amino N-terminal de Xaai, o en ausencia de Xaai, representa un punto de unión al grupo amino N-terminal de Xaa2,
[Quím. 55]
Figure imgf000020_0003
representa un punto de unión al grupo carbonilo C-terminal de Xaa12, y
[Quím. 56]
Figure imgf000020_0004
representa un punto de unión al carbono a de Xaai, o en ausencia de Xaai, representa un punto de unión al carbono a de Xaa2. Los centros asimétricos en las estructuras de aminoácidos contenidas en los grupos de enlace mencionados anteriormente pueden tener la configuración R o S.
En un modo, A es
Figure imgf000020_0005
(en lo sucesivo denominado en el presente documento "Ai"). En el grupo de unión Ai, n es un numero entero de 0 a 3 (por ejemplo, 0, i, 2 o 3), Ri y R2 son cada uno independientemente un átomo de hidrógeno o alquilo Ci-3 y Ri0 es amino o hidroxi. Alquilo Ci-3 es preferentemente metilo.
Un modo preferido de Ai es un grupo de unión de fórmula:
Figure imgf000020_0006
en donde R1 y R2 son cada uno un átomo de hidrógeno, Ri0 es amino, y n es 0 (en lo sucesivo en el presente documento denominado "Aia"). Aia puede obtenerse, por ejemplo, permitiendo que el grupo -SH de Cys (siempre que el grupo carboxi se convierta en amida) que está enlazado por amida al extremo C-terminal de Xaai 2 reaccione con -COCH2X (en donde X es un grupo saliente tal como Cl) que está enlazado al grupo amino N-terminal de Xaai o Xaa2. En tal grupo de unión, la Cys puede ser un L-aminoácido o un D-aminoácido. En particular, esa versión del grupo de unión A1a, en que la Cys (siempre que el grupo carboxi se convierta en amida) que está enlazada por amida al extremo C de Xaa12 es un L-aminoácido, se denomina "A1a1".
Otro modo preferido de A1 es un grupo de unión de fórmula:
Figure imgf000021_0001
en donde R1 y R2 son cada uno un átomo de hidrógeno, R10 es amino, y n es 1 (en lo sucesivo en el presente documento denominado "A1b"). A1b puede obtenerse, por ejemplo, permitiendo que el grupo -SH de Hcy (siempre que el grupo carboxi se convierta en amida) que está enlazado por amida al extremo C-terminal de Xaa12 reaccione con -COCH2X (en donde X es un grupo saliente tal como Cl) que está enlazado al grupo amino N-terminal de Xaa1 o Xaa2. En tal grupo de unión, la Hcy puede ser un L-aminoácido o un D-aminoácido. En particular, esa versión del grupo de unión A1b, en que la Hcy (siempre que el grupo carboxi se convierta en amida) que está enlazada por amida al extremo C de Xaa12 es un L-aminoácido, se denomina "A1b1".
Otro modo preferido del grupo de unión A1 es un grupo de unión de fórmula:
Figure imgf000021_0002
en donde R1 y R2 son cada uno metilo, R10 es amino, y n es 0 (en lo sucesivo en el presente documento denominado "A1c"). A1c puede obtenerse, por ejemplo, permitiendo que el grupo -SH de Pen (siempre que el grupo carboxi se convierta en amida) que está enlazado por amida al extremo C-terminal de Xaa12 reaccione con -COCH2X (en donde X es un grupo saliente tal como Cl) que está enlazado al grupo amino N-terminal de Xaa1 o Xaa2. En tal grupo de unión, el Pen puede ser un L-aminoácido o un D-aminoácido. En particular, esa versión del grupo de unión A1c, en que el Pen (siempre que el grupo carboxi se convierta en amida) que está enlazada por amida al extremo C de Xaa12 es un L-aminoácido, se denomina "A1c1".
En otro modo, el grupo de unión A es
Figure imgf000021_0003
(en lo sucesivo denominado en el presente documento "A2"). En el grupo de unión A2, n es un número entero de 0 a 3 (por ejemplo, 0, 1, 2 o 3), R1 y R2 son cada uno independientemente un átomo de hidrógeno o alquilo C1-3 y R10 es amino o hidroxi.
Un modo preferido de A2 es esa versión de dicho grupo de unión, en que R1 y R2 son cada uno un átomo de hidrógeno, R10 es amino, y n es 0 (en lo sucesivo en el presente documento denominado "A2a"). A2a puede obtenerse, por ejemplo, oxidando el grupo sulfuro del grupo de unión A1a como se muestra anteriormente a sulfóxido. En particular, el grupo de unión obtenido al oxidar el grupo sulfuro de A ia1 a sulfóxido se denominada "A2a1".
En otro modo, A es
Figure imgf000022_0001
(en lo sucesivo denominado en el presente documento "A3"). En el grupo de unión A3, n es un número entero de 0 a 3 (por ejemplo, 0, 1, 2 o 3), R1 y R2 son cada uno independientemente un átomo de hidrógeno o alquilo C1-3 y R10 es amino o hidroxi.
Un modo preferido de A3 es esa versión de dicho grupo de unión, en que R1 y R2 son cada uno un átomo de hidrógeno, R10 es amino, y n es 0 (en lo sucesivo en el presente documento denominado "A3a"). A3a puede obtenerse, por ejemplo, oxidando el grupo sulfuro del grupo de unión A1a como se muestra anteriormente a sulfona. En particular, el grupo de unión obtenido al oxidar el grupo sulfuro de A1a1 a sulfona se denominada "A3a1".
En otro modo, A es
Figure imgf000022_0002
(en lo sucesivo denominado en el presente documento "A4"). En el grupo de unión A4, i y j son cada uno independientemente un número entero de 1 a 3 (por ejemplo, 1, 2 o 3), y R™ es amino o hidroxi.
Cuando A es A4, Xaa1 o Xaa2 es un resto de un aminoácido representado por
Figure imgf000022_0003
[en donde R9 es un grupo representado por la fórmula -(CH2)tSH (en donde t es un número entero de 1 a 3 (por ejemplo, 1, 2 o 3))].
En un modo preferido de A4, i y j son cada uno 1, y R10 es amino (en lo sucesivo en el presente documento, esta versión del grupo de unión se denomina "A4a"). A4a puede obtenerse, por ejemplo, permitiendo que el grupo -SH de Cys (siempre que el grupo carboxi se convierta en amida) que está enlazado por amida al extremo C-terminal de Xaa12 reaccione con el grupo -SH de Xaa1 o Xaa2. En tal grupo de unión, la Cys puede ser un L-aminoácido o un D-aminoácido. En particular, esa versión del grupo de unión A4a, en que la Cys (siempre que el grupo carboxi se convierta en amida) que está enlazada por amida al extremo C de Xaa12 es un L-aminoácido, se denomina "A4a1".
En otro modo, A es
Figure imgf000023_0001
(en lo sucesivo denominado en el presente documento "As"). En el grupo de unión A5, k y 1 son cada uno independientemente un número entero de 0 a 3 (por ejemplo, 0, 1, 2 o 3), y R10 es amino o hidroxi. El grupo de unión As puede obtenerse mediante, por ejemplo, metátesis de olefinas del aminoácido (siempre que el grupo carboxi pueda convertirse en amida) que tiene el grupo -(CH2)1CH=CH2 en su cadena lateral y está enlazado por amida al extremo C-terminal de Xaa12, y el grupo -CO(CH2)kCH=CH2 que está enlazado al grupo amino N-terminal de Xaa1 o Xaa2. En tal grupo de unión, el aminoácido que está enlazado por amida al extremo C-terminal de Xaa12 puede ser un L-aminoácido o un D-aminoácido.
En otro modo, A es
Figure imgf000023_0002
(en lo sucesivo denominado en el presente documento "Aa"). En el grupo de unión Aa, m es un número entero de 1 a 7 (por ejemplo, 1, 2, 3, 4, 5, 6 o 7), y R10 es amino o hidroxi. A6 puede obtenerse, por ejemplo, reduciendo el doble enlace carbono-carbono de A5.
En la fórmula (I), Xaa1 es un resto de un aminoácido alifático, un aminoácido aromático, un aminoácido básico, un aminoácido neutro, o un aminoácido ácido, o está ausente. En un modo preferido, Xaa1 es Arg, Lys, His, Gly, Ala, Asn, Thr, Ser, Met, Leu, Ile, Val, Gln, Phe, Tyr, Trp, o Cys, o está ausente, y más preferentemente es Arg, Lys o Gly, o está ausente.
En la fórmula (I), Xaa2 es un resto de un aminoácido aromático o un aminoácido neutro. En un modo preferido, Xaa2 es un resto de un aminoácido aromático, más preferentemente Phe, Tyr, Trp, 2Nal, 4CF o DCF, aún más preferentemente 2Nal.
En la fórmula (I), Xaa3 es un resto de un aminoácido alifático, un aminoácido aromático o un aminoácido básico. En un modo preferido, Xaa3 es Ile, Leu, Nle, Tle, Trp, 2Nal, 4CF o Arg, más preferentemente Ile o Arg.
En la fórmula (I), Xaa4 es Ser, Thr, Ala o mS. En un modo preferido, Xaa4 es Ser.
En la fórmula (I), Xaas es Gly o Ser. En un modo preferido, Xaas es Gly.
En la fórmula (I), Xaa6 es un resto de un aminoácido básico o un aminoácido neutro. En un modo preferido, Xaa6 es Arg, Lys, His, Cit, Ser o MO2, más preferentemente Arg, Lys, His o Ser.
En la fórmula (I), Xaa7 es un resto de un aminoácido neutro o un aminoácido ácido. En un modo preferido, Xaa7 es Asn o Asp.
En la fórmula (I), Xaa8 es un resto de un aminoácido aromático. En un modo preferido, Xaa8 es Trp, 2Nal o 6CW, más preferentemente Trp.
En la fórmula (I), Xaa9 es un resto de un aminoácido alifático, un aminoácido neutro o un aminoácido aromático. En un modo preferido, Xaa9 es Val, Nle, Ahp o Met, más preferentemente Val, Nle o Ahp.
En la fórmula (I), Xaa10 es un resto de un aminoácido básico, un aminoácido alifático, un aminoácido aromático o un aminoácido neutro. En un modo preferido, Xaaio es Arg, Lys, His, AMF, Phg o Val, más preferentemente Arg, Lys, His, Phg o Val.
En la fórmula (I), Xaa11 es un resto de un aminoácido aromático. En un modo preferido, Xaa11 es Trp o 2Nal, más preferentemente Trp.
En la fórmula (I), Xaa12 es un resto de un aminoácido alifático, un aminoácido aromático o un aminoácido básico. En un modo preferido, Xaa12 es Val, Tie o Phe, más preferentemente Val.
Un modo preferido del polipéptido macrocíclico de la presente invención es un polipéptido macrocíclico representado por la fórmula (I), en donde
A es el grupo de unión A1a, A1b o A1c;
Xaa1 es Arg, Lys, His, Gly, Ala, Asn, Thr, Ser, Met, Leu, Ile, Val, Gln, Phe, Tyr, Trp o Cys, o está ausente;
Xaa2 es Phe, Tyr, Trp, 2Nal, 4CF o DCF;
Xaa3 es Ile, Leu, Nle, Tie, Trp, 2Nal, 4CF o Arg;
Xaa4 es Ser;
Xaa5 es Gly;
Xaa6 es Arg, Lys, His, Ser, Cit o MO2;
Xaa7 es Asn o Asp;
Xaa8 es T rp, 2Nal o 6CW;
Xaa9 es Val, Nle, Ahp o Met;
Xaa10 es Arg, Lys, His, AMF, Phg o Val;
Xaa11 es Trp o 2Nal; y
Xaa12 es Val, Tie o Phe.
Un modo más preferido del polipéptido macrocíclico de la presente invención es un polipéptido macrocíclico representado por la fórmula (I), en donde
A es el grupo de unión A1a;
Xaa1 es Arg, Lys o Gly, o está ausente;
Xaa2 es 2Nal;
Xaa3 es Ile o Arg;
Xaa4 es Ser;
Xaa5 es Gly;
Xaa6 es Arg, Lys, His o Ser;
Xaa7 es Asn o Asp;
Xaa8 es Trp;
Xaa9 es Val, Nle o Ahp;
Xaa10 es Arg, Lys, His, Phg o Val;
Xaa11 es Trp; y
Xaa12 es Val.
Un modo aún más preferido del polipéptido macrocíclico de la presente invención es un polipéptido macrocíclico seleccionado de los grupos de compuestos representados por las siguientes fórmulas:
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Figure imgf000031_0001
Ċ
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y
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Los polipéptidos mostrados anteriormente son los compuestos de los Ejemplos 24, 40, 41,42, 43, 44, 45, 58, 60, 75, 76, 95, 96, y 98 a 101 como se muestra a continuación en el presente documento. En todos estos polipéptidos, A es el grupo de unión A1a1.
Cuando el polipéptido macrocíclico de la presente invención contiene un grupo básico, el polipéptido macrocíclico puede combinarse con un ácido para formar una sal del mismo, y tal sal está incluida en la presente invención. Los ejemplos de tal sal incluyen una sal de ácido inorgánico, una sal de ácido orgánico, una sal de aminoácido y sulfonato. Los ejemplos de la sal de ácido inorgánico incluyen clorhidrato, bromhidrato, sulfato, nitrato y fosfato. Los ejemplos de sal de ácido orgánico incluyen acetato, oxalato, malonato, fumarato, maleato, ftalato y trifluoroacetato. Los ejemplos de la sal de aminoácido incluyen glutamato y aspartato. Los ejemplos del sulfonato incluyen metanosulfonato, bencenosulfonato, p-toluenosulfonato, 2,4-dimetil-bencenosulfonato, 2,4,6-trimetilbencenosulfonato, 4-etilbencenosulfonato y naftalenosulfonato. Un modo preferido de la sal farmacológicamente aceptable del polipéptido macrocíclico de la presente invención es un acetato, un clorhidrato, o un trifluoroacetato, más preferentemente un acetato.
Cuando el polipéptido macrocíclico de la presente invención contiene un grupo ácido, el polipéptido macrocíclico puede combinarse con una base para formar una sal del mismo, y tal sal también está incluida en la presente invención. Los ejemplos de tal sal incluyen una sal de metal, una sal de amina inorgánica, una sal de amina orgánica y una sal de aminoácido. Los ejemplos de la sal de metal incluyen: sales metales alcalinos tales como sal de sodio, sal de potasio y sal de litio; sales de metales alcalinotérreos tales como sal de calcio y sal de magnesio; así como sal de aluminio, sal de hierro, sal de zinc, sal de cobre, sal de níquel y sal de cobalto. Los ejemplos de sal de amina inorgánica incluyen sal de amonio. Los ejemplos de sal de amina orgánica incluyen sal morfolina, sal de glucosamina, sal de etilendiamina, sal de guanidina, sal de dietilamina, sal de trietilamina, sal de diciclohexilamina, sal de dietanolamina, sal de piperazina y sal de tetrametilamonio. Los ejemplos de sal de aminoácido incluyen sal de lisina y sal de arginina.
El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención puede utilizarse en forma cristalina. Dicho cristal puede estar formado exclusivamente por el polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención, o el polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo puede estar formado como un cocristal o un solvato (por ejemplo, hidrato). Un tipo del polipéptido macrocíclico o la sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención puede usarse solo, o dos o más tipos del mismo pueden usarse en combinación según sea apropiado.
El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención puede formar un compuesto isotópico en el que uno o más átomos constitucionales están sustituidos por un átomo isotópico en una relación no natural. El átomo isotópico puede ser radioactivo o no radioactivo, y los ejemplos del mismo incluyen deuterio (2H; D), tritio (3H; T), carbono 14 (14C) y yodo 125 (125I). Los compuestos marcados con un átomo isotópico radioactivo pueden utilizarse como agentes terapéuticos o profilácticos para diversas enfermedades, reactivos de investigación (por ejemplo, reactivo de ensayo), agentes de diagnóstico (por ejemplo, agente de diagnóstico por imagen), o similares. La presente invención también incluye tal compuesto isotópico radioactivo o no radioactivo. El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención puede prepararse mediante un método conocido en la técnica, tal como síntesis química o un sistema de traducción sin células. Por ejemplo, la síntesis química del polipéptido macrocíclico de la presente invención puede llevarse a cabo de acuerdo con un método de síntesis en fase sólida común utilizando un grupo 9-fluorenilmetoxicarbonilo (grupo Fmoc) como grupo protector de grupo a-amino. La síntesis en fase sólida puede realizarse utilizando un sintetizador automático disponible en el mercado (por ejemplo, Syro II (producido por Biotage Japón), Liberty Blue (producido por CEM)).
Para citar algunos ejemplos, el polipéptido macrocíclico de la presente invención que contiene el grupo de unión A1 puede obtenerse siguiendo, por ejemplo, el procedimiento descrito a continuación.
Con el uso de un sintetizador de péptidos automático, los aminoácidos protegidos con un grupo protector de grupo amino (por ejemplo, un grupo Fmoc) se acoplan a un soporte sólido (por ejemplo, resina Rink Amide Resin AM (producida por Novaviochem), resina de cloruro de 2-clorotritilo (producida por Novaviochem)) de manera escalonada comenzando con el aminoácido C-terminal (el aminoácido C-terminal es un aminoácido que contiene tiol). La desprotección de los grupos amino se realiza mediante un método conocido por los expertos en la materia (por ejemplo, utilizando piperidina al 20 %/1 -metil-2 -pirrolidinona para eliminar los grupos Fmoc). Después de acoplar el aminoácido N-terminal y de desproteger el grupo amino de este aminoácido, se introduce un grupo formador de grupos de unión (por ejemplo, un grupo clorometilcarbonilo) (por ejemplo, para permitir que el ácido cloroacético reaccione con el grupo amino N-terminal) para formar un péptido macrocíclico. A continuación, el péptido resultante se escinde de la resina peptídica mediante un procedimiento convencional (por ejemplo, utilizando ácido trifluoroacético/etanoditiol/triisopropilsilano/agua para escindir de la resina Rink Amide Resin AM). Después de recuperar un péptido en bruto por precipitación con éter, el péptido de interés se purifica mediante un procedimiento convencional (por ejemplo, cromatografía líquida de alto rendimiento en fase inversa). El péptido de interés resultante puede convertirse en una sal deseada mediante un procedimiento convencional.
El polipéptido macrocíclico de la presente invención que contiene el grupo de unión A4 puede prepararse, por ejemplo, acoplando un aminoácido que contiene -SH que actúa como un aminoácido N-terminal al final del procedimiento mencionado anteriormente, y formar de este modo un péptido macrocíclico sin necesidad de introducir un grupo formador de grupo de unión adicional.
El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención que contiene el grupo de unión A2 o A3 puede obtenerse, por ejemplo, oxidando el polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención que contiene el grupo de unión A1 con un agente oxidante (por ejemplo, ácido m-cloroperoxibenzoico, peróxido de hidrógeno o dimetildioxirano).
Por ejemplo, el polipéptido macrocíclico de la presente invención que contiene el grupo de unión A5 o A6 puede obtenerse siguiendo el procedimiento que se describe a continuación.
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Puede prepararse un polipéptido que contenga los grupos terminales B1 y B2 utilizando un sintetizador de péptidos automático siguiendo las etapas de acoplar aminoácidos protegidos con un grupo protector de grupo amino (por ejemplo, un grupo Fmoc) a un soporte sólido de manera escalonada, comenzando con el aminoácido C-terminal (el grupo C-aminoácido terminal es un aminoácido que contiene olefina), desprotegiendo el grupo amino del aminoácido N-terminal e introduciendo un grupo formador de grupo de unión (por ejemplo, grupo 2-propenilo).
Después de que el polipéptido que contiene los grupos terminales B1 y B2 esté preparado, dicho polipéptido se somete a una reacción de metátesis de olefinas en presencia de un catalizador apropiado (por ejemplo, catalizador de Grubbs de segunda generación), mediante lo cual el polipéptido macrocíclico que contiene el grupo de unión A5 puede prepararse. Cuando el polipéptido macrocíclico que contiene el grupo de unión A5 se somete a una reacción de reducción en condiciones apropiadas (por ejemplo, en presencia de hidrógeno y un catalizador de Wilkinson), puede obtenerse el polipéptido macrocíclico que contiene el grupo de unión A6.
Los polipéptidos macrocíclicos o sales farmacológicamente aceptables de los mismos de la presente invención tienen actividad inhibidora de la TSP1 y la capacidad de bloquear la adhesión de células endoteliales vasculares a la TSP1 y, sí, son útiles como inhibidores de la angiogénesis.
(Composición farmacéutica)
La presente invención proporciona además una composición farmacéutica que comprende, como componente activo, el polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención. La composición farmacéutica de la presente invención tiene una excelente actividad inhibidora de TSP1 y es útil para el tratamiento o la profilaxis de enfermedades o síntomas inducidos por la expresión aumentada de la TSP1 (por ejemplo, diversas enfermedades, incluyendo enfermedades provocadas por la inhibición de la angiogénesis, enfermedades provocadas por una trombogénesis aumentada, enfermedades inflamatorias, enfermedades provocadas por el deterioro de la función celular renal, enfermedades provocadas por la supresión de la vasorrelajación, enfermedades isquémicas y enfermedades cancerosas; y diversos síntomas, incluida la crisis vasooclusiva asociada con la anemia drepanocítica, la inhibición de la angiogénesis, la necrosis tisular, la resistencia a la insulina y heridas comunes). Los ejemplos de las enfermedades provocadas por la inhibición de la angiogénesis incluyen isquemia crítica de las extremidades y trastorno vascular periférico. Los ejemplos de las enfermedades provocadas por el aumento de la trombogénesis incluyen infarto de miocardio y trastorno vascular periférico (TVP). Los ejemplos de enfermedades inflamatorias incluyen la inflamación inducida por la obesidad y la inflamación durante el desarrollo del aneurisma aórtico. Los ejemplos de enfermedades provocadas por el deterioro de la función celular renal incluyen la nefropatía diabética, la nefropatía de lgA, la insuficiencia renal crónica y la insuficiencia renal aguda. Los ejemplos de enfermedades provocadas por la supresión de la vasorrelajación incluyen lesión renal y lesión por isquemia-reperfusión. Los ejemplos de enfermedades isquémicas incluyen infarto de miocardio y angina. Los ejemplos de enfermedades cancerosas incluyen cáncer escamoso, cáncer de mama y cáncer de páncreas. Se informa que la TSP1 estimula el progreso del cáncer escamoso, el cáncer de mama y el cáncer de páncreas (consúltese, por ejemplo,, BNP 21, pág. 39 col. izquierda, línea 14, desde abajo a la col. derecha, línea 3 y la Tabla 4). En un modo preferido, la composición farmacéutica de la presente invención es útil para el tratamiento o la profilaxis de la isquemia crítica de las extremidades o la enfermedad arterial periférica, y es, por ejemplo, útil para acelerar la cicatrización de heridas en pacientes con isquemia crítica de extremidades y para mejorar el pronóstico después del tratamiento endovascular para la isquemia crítica de extremidades.
Se sabe que la expresión de TSP1 aumenta en los músculos esqueléticos de las extremidades inferiores de los pacientes con isquemia crítica de las extremidades. Aunque no se desea quedar ligados a ninguna teoría, se cree que la composición farmacéutica de la presente invención bloquea la adhesión de las células endoteliales vasculares a la TSP1 y, de este modo, puede estimular la angiogénesis inhibida por TSP1. En virtud de esta función, la composición farmacéutica de la presente invención puede acelerar la cicatrización de heridas en pacientes con isquemia crítica de extremidades y mejorar el pronóstico (por ejemplo, prevenir la reestenosis) cuando se combina con un tratamiento endovascular con un catéter o similar.
En la presente invención, el tratamiento o la profilaxis de enfermedades o síntomas incluyen la prevención de la aparición de enfermedades o la supresión o inhibición del empeoramiento o el progreso de tales enfermedades, el alivio de uno o más síntomas encontrados en individuos que padecen enfermedades o la supresión del empeoramiento o el progreso de tales síntomas, y el tratamiento o la profilaxis de enfermedades secundarias.
La composición farmacéutica de la presente invención puede formularse en una preparación farmacéutica mezclando el polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención con cualquier aditivo farmacológicamente aceptable apropiado. Por ejemplo, la composición farmacéutica de la presente invención puede administrarse como preparaciones orales tales como comprimidos, cápsulas y granulados, o como preparaciones parenterales tales como agentes inyectables y de absorción percutánea.
Dichas preparaciones farmacéuticas se preparan mediante un método muy conocido utilizando distintos aditivos, incluyendo un excipiente, aglutinante, disgregante, lubricante, emulsionante, estabilizante, diluyente, disolvente inyectable, solubilizante, agente de suspensión, agente de isotonicidad, tampón, analgésico, antiséptico y antioxidante.
Los ejemplos del excipiente incluyen excipientes orgánicos o excipientes inorgánicos. Los ejemplos de excipientes orgánicos incluyen derivados de azucares tales como lactosa y sacarosa; derivados de almidón tales como almidón de maíz y almidón de patata; derivados de celulosa tales como celulosa cristalina; y goma arábiga. Los ejemplos de excipientes inorgánicos incluyen sulfatos tales como sulfato de calcio.
Los ejemplos del aglutinante incluyen los excipientes mencionados anteriormente; gelatina; polivinilpirrolidona; y polietilenglicol.
Los ejemplos del disgregante incluyen los excipientes mencionados anteriormente; almidón modificado químicamente o derivados de celulosa tales como croscarmelosa de sodio y carboximetil almidón de sodio; y polivinilpirrolidona reticulada.
Los ejemplos del lubricante incluyen talco; ácido esteárico; sílice coloidal; ceras tales como cera de abejas y cera de esperma de ballena; sulfatos tales como sulfato de sodio; laurilsulfatos tales como laurilsulfato de sodio; y derivados de almidón tales como los mencionados anteriormente como excipientes.
Los ejemplos del emulsionante incluyen arcillas coloidales tales como bentonita y veegum; detergentes aniónicos tales como laurilsulfato de sodio; detergentes catiónicos tales como cloruro de benzalconio; y detergentes no iónicos tales como polioxietilen alquil éter.
Los ejemplos del estabilizante incluyen ésteres de p-hidroxibenzoico tales como metilparabeno y propilparabeno; alcoholes tales como clorobutanol; y compuestos fenólicos tales como fenol y cresol.
Los ejemplos del diluyente incluyen agua, etanol y propilenglicol.
Los ejemplos de disolvente inyectables incluyen agua, etanol y glicerina.
Los ejemplos del solubilizante incluyen polietilenglicol, propilenglicol, D-manitol, benzoato de bencilo, etanol, trisaminometano, colesterol, trietanolamina, carbonato de sodio y citrato de sodio.
Los ejemplos del agente de suspensión incluyen diversos detergentes tales como estearil trietanolamina, laurilsulfato de sodio, ácido lauril aminopropiónico, lecitina, cloruro de benzalconio, cloruro de bencetonio y gliceril monoestearato; y polímeros hidrófilos tales como alcohol polivinílico, polivinilpirrolidona, carboximetilcelulosa de sodio, metilcelulosa, hidroximetilcelulosa, hidroxietilcelulosa e hidroxipropilcelulosa.
Los ejemplos del agente de isotonicidad incluyen cloruro de sodio, glicerina y D-manitol.
Los ejemplos del tampón incluyen fosfato, acetato, carbonato, citrato y otros tampones.
Los ejemplos del analgésico incluyen alcohol bencílico.
Los ejemplos del antiséptico incluyen ésteres de p-hidroxibenzoico, clorobutanol, alcohol bencílico, alcohol fenetílico, ácido dehidroacético y ácido sórbico.
Los ejemplos del antioxidante incluyen sulfitos y ácido ascórbico.
El sujeto a administrar la composición farmacéutica de la presente invención es, por ejemplo, un animal mamífero, preferentemente un ser humano.
La vía de administración de la composición farmacéutica de la presente invención puede ser oral o parenteral, y puede seleccionarse una vía adecuada dependiendo de la enfermedad a tratar. Además, la vía de administración de dicha composición farmacéutica de la invención puede ser tanto sistémica como tópica. Los ejemplos de administraciones parenterales incluyen administración intravenosa, administración intraarterial, administración intramuscular, administración intracutánea, administración subcutánea, administración intraperitoneal, administración percutánea, administración intraósea y administración intraarticular. Un modo preferido de la vía de administración de dicha composición farmacéutica de la invención es la administración intravenosa, la administración subcutánea o la administración percutánea.
El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención se administra a un sujeto en una cantidad terapéutica o profilácticamente eficaz. La expresión "cantidad terapéutica o profilácticamente efectiva" significa una cantidad necesaria para que un agente activo presente un efecto terapéutico o profiláctico en consideración de una enfermedad particular, forma farmacéutica y vía de administración, y se determina, según sea apropiado, dependiendo de la especie de un sujeto, el tipo de enfermedad, el síntoma, el sexo, la edad, una afección preexistente, y otros elementos.
Se determina la dosis del polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención, según sea apropiado, dependiendo de la especie de un sujeto, el tipo de enfermedad, el síntoma, el sexo, la edad, una afección preexistente, y otros elementos. Los adultos humanos pueden tomar medicación con dicho polipéptido macrocíclico de la invención o una sal farmacológicamente aceptable del mismo en una dosis generalmente de 0,1 a 1000 mg/kg, preferentemente de 0,1 a 10 mg/kg, una vez cada 1 a 7 días, o dos o tres o más veces al día.
La composición farmacéutica de la presente invención puede combinarse con al menos un agente terapéutico o terapia conocida. Por ejemplo, durante el tratamiento de la isquemia crítica de extremidades, la composición farmacéutica de la presente invención puede administrarse antes, después o simultáneamente con el tratamiento endovascular con un catéter o similar.
El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención puede administrarse mediante de una endoprótesis vascular liberadora de fármacos (DES, forma siglada de drug-eluting stent). Endoprótesis vascular liberadora de fármacos se refiere a una endoprótesis vascular que transporta un fármaco activo en su superficie de manera que, después de colocarlo en un vaso sanguíneo, pueda eluir gradualmente el fármaco activo.
Adicionalmente, la presente invención está dirigida a un método para el tratamiento o la profilaxis de una enfermedad o síntoma, comprendiendo el método administrar una cantidad terapéutica o profilácticamente eficaz del polipéptido macrocíclico o una sal farmacológicamente aceptable del mismo de la presente invención a un sujeto que lo necesite.
Como se hace referencia en la presente invención, la expresión "cantidad terapéutica o profilácticamente efectiva" significa una cantidad necesaria para que un agente activo presente un efecto terapéutico o profiláctico considerando una enfermedad o síntoma particular, forma farmacéutica y vía de administración, y se determina, según sea apropiado, dependiendo de la especie de un sujeto, tipo de enfermedad o síntoma, el síntoma, el sexo, la edad, una afección preexistente, y otros elementos.
Como se hace referencia en la presente invención, el "sujeto" es, por ejemplo, un animal mamífero, preferentemente un ser humano.
Como se hace referencia en la presente invención, el término "administración" incluye administraciones orales y parenterales, y puede ser administraciones tanto sistémicas como tópicas. Los ejemplos de administraciones parenterales incluyen administración intravenosa, administración intraarterial, administración intramuscular, administración intracutánea, administración subcutánea, administración intraperitoneal, administración percutánea, administración intraósea y administración intraarticular. Un modo preferido de la "administración" a la que se hace referencia en la presente invención es la administración intravenosa, la administración subcutánea o la administración percutánea.
Los ejemplos de la "enfermedad (o enfermedades) o el síntoma (o síntomas)" a los que se hace referencia en la presente invención incluyen enfermedades o síntomas inducidos por la expresión aumentada de la TSP1. De acuerdo con la presente invención, puede lograrse el tratamiento o la profilaxis de la isquemia crítica de las extremidades o de la enfermedad arterial periférica.
En lo sucesivo, la presente invención se describirá en mayor detalle con referencia a los ejemplos de trabajo y de prueba, si bien el alcance de la presente invención no se limita a estos ejemplos.
Ejemplos
(Ejemplos 1 a 104)
A continuación se muestran las fórmulas estructurales de los polipéptidos macrocíclicos de los Ejemplos 1 a 104.
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Los restos de aminoácidos que constituyen los polipéptidos macrocíclicos de los Ejemplos 1 a 104 se muestran en las Tablas 1 a 4. Cada uno de los 13 aminoácidos que se muestran en estas tablas es un aminoácido que constituye un grupo de unión y cuyo extremo C se convierte en un grupo amido.
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T l 21
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T l 1
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continuación
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T l 41
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Como se muestra en las Tablas 5 a 7, los polipéptidos macrocíclicos de los Ejemplos 1 a 104 se sintetizaron de acuerdo con cualquiera de los Procedimientos de síntesis 1 a 5 como se describe a continuación, y los acetatos de algunos de dichos polipéptidos macrocíclicos se sintetizaron de acuerdo con el Procedimiento de síntesis 6. Adicionalmente, cabe señalar que la notación "Compuesto XXXa" se refiere al acetato del Compuesto XXX.
T l
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(continuación)
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(continuación)
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T l 1
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(continuación)
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(continuación)
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T l 71
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continuación
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Procedimiento de síntesis 1
Este procedimiento se llevó a cabo utilizando el sintetizador automático Syro II (producido por Biotage Japón) de acuerdo con un método de síntesis en fase sólida común utilizando un grupo 9-fluorenilmetoxicarbonilo (grupo Fmoc) como grupo protector del grupo a-amino.
Se añadió el equivalente a 88 pmol de la resina Rink Amide Resin AM (producida por Novaviochem) a un recipiente de reacción y los aminoácidos se acoplaron en 1 -metil-2-pirrolidinona de manera escalonada siguiendo 1) y 2) descritos a continuación.
1) Cys e His: se añadieron 3 equivalentes de cada uno de N,N-diisopropilcarbodiimida, 1 -hidroxi-7-azabenzotriazol (HOAt) y un aminoácido protegido con grupo Fmoc y se hicieron reaccionar.
2) Otros aminoácidos: se añadieron 3 equivalentes de cada uno de hexafluorofosfato de O-(7-azabenzotriazol-1-il)-N,N,N',N'-tetrametiluronio (HATU), N,N-diisopropilamina y un aminoácido protegido con grupo Fmoc y se hicieron reaccionar.
La eliminación de los grupos Fmoc se llevó a cabo utilizando piperidina al 20 %/1-metil-2-pirrolidinona.
Después de acoplar el aminoácido N-terminal y eliminar el grupo Fmoc de este aminoácido, se añadieron 3 equivalentes de cada uno de N,N-diisopropilcarbodiimida, 1-hidroxi-7-azabenzotriazol (HOAt) y ácido cloroacético y se hicieron reaccionar en 1-metil-2-pirrolidinona.
Una resina peptídica producida se lavó tres veces con 1-metil-2-pirrolidinona y tres veces con diclorometano, seguido de secado. Se añadieron 2 ml de ácido trifluoroacético/etanoditiol/triisopropilsilano/agua (92,5:2,5:2,5:2,5 en volumen) y la mezcla se agitó a temperatura ambiente durante 3 horas.
Se recuperó un péptido en bruto por precipitación con éter, se lavó dos veces con ferf-butil metil éter, se secó y a continuación se disolvió en dimetilsulfóxido (8 ml). Después de la adición de n-propilamina (80 pl), la mezcla se dejó reposar durante una noche. Además, después de la adición de ácido acético (8o pl), la solución de reacción se concentró utilizando V10 (producido por Biotage Japón) y se purificó mediante cromatografía líquida de alto rendimiento de fase inversa utilizando Kinetex 5u XB-C18 (150 x 21,2 mm, producido por Phenomenex) para obtener el producto de interés. La fase móvil utilizada fue agua/acetonitrilo con un contenido de ácido trifluoroacético al 0,1 %. Se liofilizó una fracción del producto de interés para producir el producto de interés como una sal de ácido trifluoroacético.
Procedimiento de síntesis 2
Después de liofilizar una fracción del producto de interés siguiendo el Procedimiento de Síntesis 1, la fracción liofilizada se disolvió en ácido clorhídrico 0,1 N/acetonitrilo y se liofilizó de nuevo para producir el producto de interés como una sal de ácido clorhídrico.
Procedimiento de síntesis 3
Este procedimiento se llevó a cabo utilizando el sintetizador automático Liberty Blue (producido por CEM) de acuerdo con un método de síntesis en fase sólida común utilizando un grupo 9-fluorenilmetoxicarbonilo (grupo Fmoc) como grupo protector del grupo a-amino.
Se añadió el equivalente a 100 pmol de resina Rink Amide Resin AM (producida por Novaviochem) a un recipiente de reacción y los aminoácidos se acoplaron de manera escalonada añadiendo y haciendo reaccionar 5 equivalentes de cada uno de N,N-diisopropilcarbodiimida, ciano(hidroxiimino)acetato de etilo y un aminoácido protegido por grupo Fmoc en N,N-dimetilformamida.
La eliminación de los grupos Fmoc se llevó a cabo utilizando piperidina al 20 %/N,N-dimetilformamida.
Después de acoplar el aminoácido N-terminal y eliminar el grupo Fmoc de este aminoácido, se añadieron 5 equivalentes cada uno de N,N-diisopropilcarbodiimida, etil ciano(hidroxiimino)acetato y ácido cloroacético y se hicieron reaccionar juntos en N,N-dimetilformamida.
Una resina peptídica producida se lavó tres veces con N,N-dimetilformamida y tres veces con diclorometano, seguido de secado. Se añadieron 2 ml de ácido trifluoroacético/etanoditiol/triisopropilsilano/agua (92,5:2,5:2,5:2,5 en volumen) y la mezcla se agitó a temperatura ambiente durante 3 horas.
Se recuperó un péptido en bruto por precipitación con éter, se lavó dos veces con ferf-butil metil éter, se secó y a continuación se disolvió en dimetilsulfóxido (8 ml). Después de la adición de n-propilamina (80 jl), la mezcla se dejó reposar durante una noche. Además, después de la adición de ácido acético (8o jl), la solución de reacción se concentró utilizando V10 (producido por Biotage Japón) y se purificó mediante cromatografía líquida de alto rendimiento de fase inversa utilizando Kinetex 5u XB-C18 (150 x 21,2 mm, producido por Phenomenex) para obtener el producto de interés. La fase móvil utilizada fue agua/acetonitrilo con un contenido de ácido trifluoroacético al 0,1 %. Después de liofilizar una fracción del producto de interés, la fracción liofilizada se disolvió en ácido clorhídrico 0,1 N/acetonitrilo y se liofilizó de nuevo para producir el producto de interés como una sal de ácido clorhídrico.
Procedimiento de síntesis 4
La sal de ácido clorhídrico del polipéptido macrocíclico (40,0 mg, 24 jmol) obtenida mediante el Procedimiento de Síntesis 2 se disolvió en acetonitrilo (5 ml) y una solución acuosa de bicarbonato de amonio 50 mM (5 ml). Se añadieron 64 j l (24 jmol) de 100 mg/ml de ácido m-cloroperbenzoico en acetonitrilo, y la mezcla se agitó y se dejó reposar a temperatura ambiente. Después de 2 horas, se añadieron otros 15 j l (6 jmol) de la misma solución y la mezcla se dejó reposar durante 1 hora. La solución de reacción se purificó mediante cromatografía líquida de alto rendimiento de fase inversa utilizando Kinetex 5u XB-C18 (150 x 21,2 mm, producido por Phenomenex) para obtener el producto de interés. La fase móvil utilizada fue agua/acetonitrilo con un contenido de ácido trifluoroacético al 0,1 %. Se liofilizó una fracción del producto de interés para producir el producto de interés como una sal de ácido trifluoroacético.
Procedimiento de síntesis 5
La sal de ácido clorhídrico del polipéptido macrocíclico (40,0 mg, 24 jmol) obtenida mediante el Procedimiento de Síntesis 2 se disolvió en acetonitrilo (5 ml) y una solución acuosa de bicarbonato de amonio 50 mM (5 ml). Se añadieron 127 j l (48 jmol) de 100 mg/ml de ácido m-cloroperbenzoico en acetonitrilo, y la mezcla se agitó y se dejó reposar a temperatura ambiente. Después de 2 horas, se añadieron otros 64 j l (24 jmol) de la misma solución y la mezcla se dejó reposar durante 1 hora. La solución de reacción se purificó mediante cromatografía líquida de alto rendimiento de fase inversa utilizando Kinetex 5u XB-C18 (150 x 21,2 mm, producido por Phenomenex) para obtener el producto de interés. La fase móvil utilizada fue agua/acetonitrilo con un contenido de ácido trifluoroacético al 0,1 %. Se liofilizó una fracción del producto de interés para producir el producto de interés como una sal de ácido trifluoroacético.
Procedimiento de síntesis 6
La sal de ácido trifluoroacético del producto de interés obtenido mediante el Procedimiento de Síntesis 1, o la sal de ácido clorhídrico del producto de interés obtenido mediante el Procedimiento de Síntesis 2, se disolvió en una solución acuosa de acetonitrilo al 10 % (5 - 10 mM). Se añadieron 50 equivalentes de Dowex™ (1x8 malla de 100 -200, 1,2 meq./ml, producido por Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), que se habían sometido a sustitución por ion acetato de antemano, y la mezcla se agitó durante 2 horas. Después de la filtración, el filtrado se liofilizó para producir el producto de interés como una sal de ácido acético.
Las Tablas 8 y 9 muestran los reactivos de aminoácidos naturales que se utilizaron para sintetizar los polipéptidos macrocíclicos de los ejemplos 1 a 104. Las Tablas 10 a 12 muestran los reactivos de aminoácidos no naturales que se utilizaron, o que se pueden utilizar, para sintetizar los polipéptidos macrocíclicos de los Ejemplos 1 a 104, y sus proveedores.
[Tabla 8]
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continuación
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T l 1
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continuación
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T l 111
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continuación
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T l 121
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continuación
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Las Tablas 5 a 7 muestran las condiciones de HPLC y los tiempos de retención utilizados para purificar los distintos polipéptidos macrocíclicos. Las condiciones de HPLC 1 a 4 se detallan a continuación.
Condición de HPLC 1
Columna: Kinetex 1,7u XB-C18 (50 x 2,1 mm)
Fase móvil: A: TFA al 0,1 %/agua, B: TFA al 0,1 %/acetonitrilo
Temperatura: 40 °C
Caudal: 0,6 ml/min.
Gradiente: 0,01 min. (B al 10 %), 0,33 min. (B al 10 %), 0,34 min. (B al 20 %), 0,66 min. (B al 20 %), 0,67 min. (B al 30 %), 0,99 min. (B al 30 %), 1,00 min. (B al 40 %), 1,33 min. (B al 40 %), 1,34 min. (B al 50 %), 1,66 min. (B al 50 %), 1,67 min. (B al 80 %), 2,50 min. (B al 80 %)
Condición de HPLC 2
Columna: Inertsil ODS-3 (150 x 4,6 mm)
Fase móvil: A: TFA al 0,1 %/agua, B: t Fa al 0,1 %/acetonitrilo
Temperatura: 40 °C
Caudal: 1,0 ml/min
Gradiente: 0,01 min. (B al 10 %), 20,00 min. (B al 70 %)
Condición de HPLC 3
Columna: Inertsil ODS-3 (150 x 4,6 mm)
Fase móvil: A: TFA al 0,1 %/agua, B: t Fa al 0,1 %/acetonitrilo
Temperatura: 40 °C
Caudal: 1,5 ml/min
Gradiente: 0,01 min. (B al 25 %), 8,00 min. (B al 70 %)
Condición de HPLC 4
Columna: Inertsil ODS-3 (150 x 4,6 mm)
Fase móvil: A: TFA al 0,1 %/agua, B: t Fa al 0,1 %/acetonitrilo
Temperatura: 40 °C
Caudal: 1,5 ml/min
Gradiente: 0,01 min. (B al 5 %), 8,00 min. (B al 70 %)
Además, los objetos de interés resultantes se sometieron a espectroscopia de masas mediante LC-MS o MALDI-TOF-MS en las condiciones descritas a continuación. Los valores medidos de MS para los distintos polipéptidos macrocíclicos se muestran en las Tablas 5 a 7.
Condiciones de LC-MS
El análisis por LC-MS se realizó utilizando Q-TOF LC/MS Agilent 6530 Accurate-Mass (producido por Agilent Technology).
Columna: Kinetex 1,7u XB-C18 (50 x 2,1 mm)
Fase móvil: A: TFA al 0,1 %/agua, B: TFA al 0,1 %/acetonitrilo
Temperatura: 40 °C
Caudal: 0,6 ml/min.
Gradiente: 0,01 min. (B al 10 %), 0,33 min. (B al 10 %), 0,34 min. (B al 20 %), 0,66 min. (B al 20 %), 0,67 min. (B al 30 %), 0,99 min. (B al 30 %), 1,00 min. (B al 40 %), 1,33 min. (B al 40 %), 1,34 min. (B al 50 %), 1,66 min. (B al 50 %), 1,67 min. (B al 80 %), 2,50 min. (B al 80 %)
Condiciones de la MALDI-TOF-MS
El análisis por MALDI-TOF-MS se realizó utilizando 4800 MALDI TOF/TOF (producido por AB Sciex). La matriz utilizada fue ácido a-ciano-4-hidroxicinámico (CHCA).
(Ejemplo de prueba 1) Ensayo de inhibición de la adhesión celular
I. Materiales y reactivos
- 96 pocillos blanca sin tratar con fondo transparente (Coster, 3632)
- Películas de sellado adhesivas BrightMax (EXCEL Scientific, WT50)
- Proteosave®SS de 15 ml (Baquelita Sumitomo, MS-52150)
- T rombospondina trombocitaria humana (Calbiochem, 605225)
- HUVEC (KURABO, KE-4109P10)
- EGM-2 Mv (Lonza, CC-3202): para el pasaje de las HUVEC
- Placa recubierta de colágeno (IWAKI, 4020-010): para el pasaje de las HUVEC
- Lipidure®-BL802 (NOF corporation), solución al 5 %
- DMEM con bajo contenido de glucosa (GIBCO, 11054-020)
- Solución de albúmina (al 35 %) fracción V de bovino (Sigma, A7979)
- CellTiter-Glo (Promega, G7572)
II. Ensayo
<Recubrimiento de placas>
Se disolvió un vial de trombospondina (25 |jg) en TBS (+CaCl2 2 mM; lo mismo se aplicará a continuación) para preparar una solución de 200 jg/ml, la cual se diluyó con TBS hasta una concentración de 10 jg/ml en un tubo Proteosave® de 15 ml. La solución de 10 jg/ml se distribuyó en una placa de 96 pocillos a un volumen de 50 jl/pocillo (no se utilizó un depósito ya que la proteína se adsorbe fácilmente a él) y la placa se dejó reposar a 4 °C durante una noche.
<Bloqueo de placas>
Lipidure® se diluyó 10 veces con TBS para preparar una solución al 0,5 %. Después de descartar el tampón con el que se había recubierto la placa en la etapa de <Recubrimiento de placas> como se describe anteriormente, la solución al 0,5 % se distribuyó en todos los pocillos a utilizar a un volumen de 100 jl/pocillo, y la placa se dejó reposar a temperatura ambiente durante 1 hora.
<Dilución de muestras>
Se preparó una solución 0,2 jM de cada muestra utilizando un tampón de dilución (DMEM BSA al 0,5 %). Se diluyeron 2 j l de la solución 0,2 jM con 500 j l de tampón de dilución para preparar una muestra diluida. Como control de vehículo, se diluyó DMSO de la misma manera que las muestras.
<Distribución de las muestras>
Se descartó la solución de bloqueo de la placa que se había tratado en la etapa de <Bloqueo de placas> como se describe anteriormente, y la placa se lavó tres veces con 150 jl/pocillo de TBS. La solución de lavado utilizada para el tercer lavado se aspiró por completo con un aspirador y la muestra diluida se distribuyó en la placa a un volumen de 50 jl/pocillo. A continuación, la placa se dejó reposar a temperatura ambiente durante 15 a 30 minutos.
<Siembra de HUVEC>
Para mantener las HUVEC, se utilizó una placa recubierta de EGM2-MV y colágeno (las células dejaron de utilizarse después del 10° o 11° pase ya que la tasa de proliferación celular disminuía en esta fase). Las células se dispersaron con tripsina al 0,05 %/EDTA, se recogieron en DMEM/BSA al 0,5 % y se centrifugaron a 1000 rpm durante 3 minutos. Después de eliminar el sobrenadante, las células se lavaron una vez con tampón DMEM. Las células se resuspendieron en tampón DMEM, se recontó el número de células y se diluyó a 10000 células/50 jl. La suspensión de células se distribuyó a un volumen de 50 jl/pocillo en la placa en la que se había distribuido la muestra, se mezcló suavemente y se incubó a 37 °C durante 2,5 horas.
<Lavado y detección>
Una vez confirmada la adhesión celular, el medio de cultivo se eliminó por completo con un aspirador y se distribuyeron suavemente 100 jl/pocillo de DMEM/BSA al 0,5 %. A continuación, el DMEM/BSA al 0,5 % se eliminó por completo con un aspirador y se distribuyeron 50 jl/pocillo de DMEM/BSA al 0,5 %. Después de aplicar un sello blanco en la parte inferior de la placa, se distribuyeron 50 jl/pocillo de CellTiter-Glo® y la solución se agitó durante 2 minutos y se dejó reposar a temperatura ambiente durante 8 minutos. La emisión de fluorescencia se detectó utilizando un lector EnVision Xcite Multilabel Reader (producido por Perkin Elmer).
III. Resultados
Sobre la base de los valores de fluorescencia medidos, se calcularon los valores de CI50 (nM) de los distintos polipéptidos macrocíclicos en cuanto a la inhibición de la adhesión celular. Los resultados obtenidos se muestran en las Tablas 1 a 4. Los resultados proporcionados anteriormente demostraron que los compuestos de los Ejemplos 1 a 104 tienen la capacidad de bloquear la adhesión de la TSP1 a las células endoteliales vasculares y son útiles para el tratamiento o la profilaxis de la isquemia crítica de extremidades o de la enfermedad arterial periférica.
(Ejemplo de prueba 2) Análisis de interacción por SPR
El análisis de interacción por SPR (del inglés surface plasmon resonance, resonancia de plasmón superficial) se realizó utilizando Biacore T200 (producido por GE Healthcare).
I. Inmovilización de hTSP 1 recombinante
En primer lugar, se inyectó NiCl2500 pM sobre un NTA-Chip (producido por GE Healthcare, BR100532) a un caudal de 5 pl/min durante 1 minuto para activar así los grupos NTA. A continuación, se inyectó una mezcla de EDC/NHS a un caudal de 10 pl/min durante 7 minutos para activar así los grupos carboxilo del dextrano. Se inyectó la hTSP1 (del inglés human TSP1, TSP1 humana) recombinante a un caudal de 10 pl/min. durante 7 minutos para inmovilizar la TSP1 en las superficies de sustrato con NTA activado y grupos carboxilo. Se inyectó etanolamina a un caudal de 10 pl/min durante 7 minutos para desactivar así los grupos carboxilo activados que no han reaccionado.
El tampón de inmovilización utilizado se preparó diluyendo HBS-P+ 10x (producido por GE Healthcare, BR100671) 1 vez y añadiendo CaCl25 mM.
Los reactivos EDC/NHS/etanolamina utilizados estaban incluidos en el kit de acoplamiento de amina (BR100050) disponible en el mercado de GE Healthcare.
II. Medición de muestras
El tampón de medición se preparó basándose en el siguiente perfil de composición:
Tris-HCl 50 mM pH 7,5 / NaCl 150 mM / CaCl25 mM / Tween 20 al 0,05 % / DMSO al 5 %.
La medición se realizó en las siguientes etapas.
1) Puesta en marcha
Para equilibrar las superficies del sustrato, el tampón de medición se inyectó en las siguientes condiciones: tiempo de contacto: 60 seg., tiempo de disociación: 120 seg., caudal: 50 pl/min., temperatura: 25 °C.
Se repitió cinco veces la inyección en las mismas condiciones para asegurar el equilibrio.
2) Corrección del disolvente
Dado que Biacore T200 es muy sensible a los cambios en las concentraciones de DMSO, las soluciones de DMSO se inyectaron secuencialmente a concentraciones del 4 %, 4,4 %, 4,8 %, 5,2 %, 5,6 % y 6 % para corregir los efectos del DMSO.
3) Medición de muestras
El método adoptado para la medición de muestras fue un método cinético de ciclo único que es eficaz para muestras que presentan un comportamiento disociativo bajo. La ventaja de este método es que, dado que las soluciones de muestras en distintas regiones de concentración se inyectan en el mismo ciclo, la influencia entre distintos ciclos en asociación con una baja disociación puede ignorarse en el análisis.
Se preparó una serie de soluciones de muestra diluidas al triple en cinco concentraciones (100, 33, 11, 3,7 y 1,2 nM) y se inyectaron secuencialmente a un caudal de 50 pl/min durante 3 minutos en orden de menor a mayor concentración. Después de inyectar la concentración más alta de solución diluida, transcurrieron de 20 a 30 minutos de tiempo de disociación.
Antes de medir las muestras, el tampón de medición se inyectó solo en las mismas condiciones para establecer un valor inicial.
III. Análisis
El análisis se realizó utilizando el programa informático de evaluación proporcionado con Biacore T100 y T200. Se aplicó para el análisis una curva de corrección de DMSO obtenida mediante mediciones de corrección de disolvente. El ajuste cinético se realizó sobre los datos de diferencias obtenidos restando los datos iniciales de los datos de medición de las muestras.
Los valores de KD se calcularon basándose en la constante de asociación (ka) y la constante de disociación (kd). Los resultados obtenidos se muestran en las Tablas 1 a 4. Los resultados proporcionados anteriormente demostraron que los compuestos de los Ejemplos 1 a 7, 9 a 13, 24, 28, 40 a 45, 58 y 75 se unen directamente a la TSP1 presentando así la actividad de bloqueo de la adhesión de la TSP1 a las células endoteliales vasculares. Por lo tanto, se demostró que los polipéptidos macrocíclicos o sales farmacológicamente aceptables de los mismos de la presente invención son útiles para el tratamiento o la profilaxis de la isquemia crítica de las extremidades o la enfermedad arterial periférica.
(Ejemplo de prueba 3) Pruebas de mejora de la circulación sanguínea
Se compraron ratones C57BL/6 macho de siete a nueve semanas de Charles River Laboratories Japón Inc. y se aclimataron durante una semana alimentándolos con una dieta sólida FR-2 (producida por Funabashi Farm Co., Ltd.). La instalación de cría cambió entre los modos de luz y oscuridad en un ciclo de 12 horas con la luz encendiéndose a las 7 a.m. y apagándose a las 7 p.m. Bajo anestesia por inhalación de isofluorano, se disecaron los muslos izquierdos de los ratones, y se ligaron y extirparon las arterias y venas femorales superficiales (desde justo debajo de las arterias femorales profundas hasta la arteria y vena poplíteas). Después de que se prepararon los modelos animales, las sustancias de prueba (Compuestos 24, 28, 40 a 45 y 58) se disolvieron cada una en una solución de ácido láctico 20 mM y Lutrol al 5 % (p/v), y se inyectaron por vía intraperitoneal en los ratones una vez al día.
(Prueba de mejora de la circulación sanguínea 1)
Grupo tratado con vehículo
Grupo tratado con el Compuesto 24 (10 mg/kg)
(Prueba de mejora de la circulación sanguínea 2)
Grupo tratado con vehículo
Grupo tratado con el Compuesto 28 (10 mg/kg)
(Prueba de mejora de la circulación sanguínea 3)
Grupo tratado con vehículo
Grupo tratado con el Compuesto 40 (10 mg/kg)
Grupo tratado con el Compuesto 41 (10 mg/kg)
(Prueba de mejora de la circulación sanguínea 4)
Grupo tratado con vehículo
Grupo tratado con el Compuesto 42 (10 mg/kg)
Grupo tratado con el Compuesto 43 (10 mg/kg)
Grupo tratado con el Compuesto 44 (10 mg/kg)
Grupo tratado con el Compuesto 45 (10 mg/kg)
(Prueba de mejora de la circulación sanguínea 5)
Grupo tratado con vehículo
Grupo tratado con el Compuesto 58 (10 mg/kg)
Las circulaciones sanguíneas se midieron en las extremidades isquémica (izquierda) y no isquémica (derecha) utilizando un generador de imágenes de perfusión Doppler láser (LDPI. forma siglada de laser Doppler perfusión imager; PIM III, Perimed, Inc.). Los valores de la circulación sanguínea se evaluaron mediante la relación del flujo de la extremidad isquémica con respecto al flujo del miembro no isquémico.
Los valores de la circulación sanguínea de los ratones fueron los más bajos inmediatamente después de la cirugía y luego se recuperaron gradualmente. Todas las sustancias de prueba investigadas en los modelos animales de este estudio mejoraron la recuperación de la circulación sanguínea después de la cirugía en comparación con el tratamiento con vehículo. Después de 7 días de la cirugía, las circulaciones sanguíneas de los grupos tratados con la sustancia de prueba fueron mayores que en los ratones tratados con vehículo. Los resultados se muestran en la tabla 13.

Claims (6)

REIVINDICACIONES
1. Un polipéptido macrocíclico representado por la fórmula (I)
Figure imgf000150_0001
o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo,
en donde Xaa1 es un resto de Arg, Lys, His, Gly, Ala, Asn, Thr, Ser, Met, Leu, Ile, Val, Gln, Phe, Tyr, Trp o Cys, o está ausente;
Xaa2 es un resto de Phe, Tyr, Trp, 2Nal, 4CF o DCF;
Xaa3 es un resto de Ile, Leu, Nle, Tle, Trp, 2Nal, 4CF o Arg;
Xaa4 es un resto de Ser;
Xaa5 es un resto de Gly;
Xaa6 es un resto de Arg, Lys, His, Ser, Cit o MO2;
Xaa7 es un resto de Asn o Asp;
Xaa8 es un resto de Trp, 2Nal o 6CW;
Xaa9 es un resto de Val, Nle, Ahp o Met;
Xaa10 es un resto de Arg, Lys, His, AMF, Phg o Val;
Xaaii es un resto de Trp o 2Nal;
Xaa12 es un resto de Val, Tle o Phe;
en donde
Figure imgf000150_0002
2Nal representa
4CF representa
Figure imgf000150_0003
DCF representa
Figure imgf000150_0004
Nle representa
Figure imgf000151_0001
Tle representa
Figure imgf000151_0002
Cit representa
Figure imgf000151_0003
MO2 representa
Figure imgf000151_0004
6CW representa
Figure imgf000151_0005
Ahp representa
Figure imgf000152_0001
AMF representa
Figure imgf000152_0002
Phg representa
Figure imgf000152_0003
A es un grupo de unión de fórmula:
Figure imgf000152_0004
en donde
Figure imgf000152_0005
representa un punto de unión al grupo amino N-terminal de Xaai, o en ausencia de Xaai, representa un punto de unión al grupo amino N-terminal de Xaa2,
representa un punto de unión al grupo carbonilo C-terminal de Xaai2.
2. El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de acuerdo con la reivindicación 1, en donde Xaa1 es un resto de Arg, Lys o Gly, o está ausente;
Xaa2 es un resto de 2Nal;
Xaa3 es un resto de Ile o Arg;
Xaa4 es un resto de Ser;
Xaa5 es un resto de Gly;
Xaa6 es un resto de Arg, Lys, His o Ser;
Xaa7 es un resto de Asn o Asp;
Xaa8 es un resto de Trp;
Xaa9 es un resto de Val, Nle o Ahp;
Xaa10 es un resto de Arg, Lys, His, Phg o Val;
Xaa11 es un resto de Trp;
Xaa12 es un resto de Val;
A es
Figure imgf000153_0001
3. El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de acuerdo con la reivindicación 2, en donde el polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo se selecciona del grupo que consiste en los compuestos representados por las fórmulas:
Figure imgf000154_0001
Figure imgf000155_0001
Figure imgf000156_0001
Figure imgf000157_0001
Figure imgf000158_0001
Figure imgf000159_0001
Figure imgf000160_0001
Figure imgf000161_0001
4. El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, para su uso en el tratamiento o la profilaxis de una enfermedad o síntoma.
5. El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo para su uso de acuerdo con la reivindicación 4, en donde la enfermedad o síntoma es isquemia crítica de las extremidades o enfermedad arterial periférica.
6. El polipéptido macrocíclico o sal farmacológicamente aceptable del mismo de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, para su uso en el estímulo de la angiogénesis.
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