ES2792298B2 - Procedimiento para la obtencion de heparinas de bajo peso molecular y heparinas de bajo peso molecular obtenidas por el mismo - Google Patents

Procedimiento para la obtencion de heparinas de bajo peso molecular y heparinas de bajo peso molecular obtenidas por el mismo Download PDF

Info

Publication number
ES2792298B2
ES2792298B2 ES202090024A ES202090024A ES2792298B2 ES 2792298 B2 ES2792298 B2 ES 2792298B2 ES 202090024 A ES202090024 A ES 202090024A ES 202090024 A ES202090024 A ES 202090024A ES 2792298 B2 ES2792298 B2 ES 2792298B2
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
molecular weight
heparin
low molecular
residues
process according
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
ES202090024A
Other languages
English (en)
Other versions
ES2792298A2 (es
ES2792298R2 (es
Inventor
Rodriguez Guillermo Franco
Aduriz Ibon Gutierro
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Laboratorios Farmaceuticos Rovi SA
Original Assignee
Laboratorios Farmaceuticos Rovi SA
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Laboratorios Farmaceuticos Rovi SA filed Critical Laboratorios Farmaceuticos Rovi SA
Publication of ES2792298A2 publication Critical patent/ES2792298A2/es
Publication of ES2792298R2 publication Critical patent/ES2792298R2/es
Application granted granted Critical
Publication of ES2792298B2 publication Critical patent/ES2792298B2/es
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08LCOMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L5/00Compositions of polysaccharides or of their derivatives not provided for in groups C08L1/00 or C08L3/00
    • C08L5/10Heparin; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • C08B37/006Heteroglycans, i.e. polysaccharides having more than one sugar residue in the main chain in either alternating or less regular sequence; Gellans; Succinoglycans; Arabinogalactans; Tragacanth or gum tragacanth or traganth from Astragalus; Gum Karaya from Sterculia urens; Gum Ghatti from Anogeissus latifolia; Derivatives thereof
    • C08B37/0063Glycosaminoglycans or mucopolysaccharides, e.g. keratan sulfate; Derivatives thereof, e.g. fucoidan
    • C08B37/0075Heparin; Heparan sulfate; Derivatives thereof, e.g. heparosan; Purification or extraction methods thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/715Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • A61K31/726Glycosaminoglycans, i.e. mucopolysaccharides
    • A61K31/727Heparin; Heparan

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

DESCRIPCIÓN
PROCEDIMIENTO PARA LA OBTENCIÓN DE HEPARINAS DE BAJO PESO
MOLECULAR Y HEPARINAS DE BAJO PESO MOLECULAR OBTENIDAS POR EL
MISMO
CAMPO DE LA INVENCIÓN
La presente invención se refiere a un proceso para la preparación de heparinas de bajo peso molecular (HBPM) y a las heparinas de bajo peso molecular obtenidas por ese procedimiento.
ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN
La heparina es un polisacárido de la familia de los glicosaminoglicanos, formado por ácido urónico (ácido L-idurónico o D-glucurónico) y D- glucosamina, unidos de forma alternada. El ácido L-idurónico puede estar 2-O-sulfatado y la D-glucosamina, puede estar N-sulfatada y/o 6-O-sulfatada, y en menor extensión N-acetilada o 3-O-sulfatada. La heparina se usa preferentemente como sal sódica, pero también puede usarse como sal de otros metales alcalinos o alcalinotérreos y se utiliza principalmente como medicamento antitrombótico y anticoagulante.
Las heparinas se pueden clasificar en función de su peso molecular en, heparina no fraccionada (HNF), HBPM y heparina de muy bajo peso molecular (HMBPM). Las HBPM y HMBPM provienen de la despolimerización de la molécula original de HNF. En el estado de la técnica se han descrito varios métodos para la preparación de HBPM. Uno de ellos corresponde a la despolimerización alcalina por un mecanismo de peliminación.
EP0040144 describe un proceso de obtención de HBPM mediante un procedimiento que comprende las etapas de transalificación de una sal de heparina en heparinato de bencetonio, esterificación del heparinato de bencetonio con cloruro de bencilo, purificación y obtención de la sal sódica del éster bencílico de la heparina, despolimerización con hidróxido de sodio con saponificación del éster y purificación del producto.
EP1070503 describe un proceso de obtención de HBPM mediante un procedimiento que comprende las etapas de transalificación de una sal de heparina en heparinato de benzalconio, despolimerización en medio no acuoso con Triton B y purificación del producto.
EP2881404 describe un proceso de obtención de HBPM que comprende una primera etapa de transalificación, una despolimerización con una base fosfaceno o una base derivada de la guanidina y una última transalificación.
Existe la necesidad de procesos más reproducibles y estables que permitan la obtención de HBPM, especialmente de HBPM con una mayor estabilidad.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
Los inventores de la presente invención han encontrado un método de preparación de heparinas de bajo peso molecular (HBPM) que presentan una estabilidad superior, mientras que mantienen una buena actividad anti-FXa y anti-FIIa. Este método de preparación de HBPM comprende el tratamiento de la heparina despolimerizada cruda con H2O2 en una proporción de entre 0,04 y 1,0 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada.
Por lo tanto, en un primer aspecto la invención se refiere a un procedimiento de obtención de heparinas de bajo peso molecular con un peso molecular medio de entre 3 y 3,8 KDa, que comprende las siguientes etapas:
a) preparar una solución acuosa de heparina sódica;
b) añadir cloruro de benzalconio a la solución de la etapa (a) para obtener heparinato de benzalconio;
c) disolver el heparinato de benzalconio obtenido en la etapa (b) en ChCH2 , añadir Triton B y mantener una temperatura de entre 20 y 40°C durante entre 24 y 48 horas; y
d) realizar al menos dos tratamientos con H2O2 de la heparina despolimerizada obtenida en la etapa c) en una razón de entre 0,04 y 1,0 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada, en cada tratamiento.
Un segundo aspecto de la invención se refiere a una heparina de bajo peso molecular obtenible mediante el procedimiento de la invención.
Se ha encontrado que las HBPM obtenidas presentan un contenido de residuos 1,6-anhidro de entre 1 y 15%. Por lo tanto, un tercer aspecto de la invención se refiere a una heparina de bajo peso molecular con un peso molecular medio de entre 3 y 3,8 KDa que presenta un contenido de residuos 1,6-anhidro de entre 1 y 15 % en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas.
Las definiciones y realizaciones descritas para un aspecto, aplican igualmente al resto de aspectos de la invención.
En la presente invención se entiende como "heparina de bajo peso molecular" o "HBPM" a la definición recogida en el documento Heparins, Low-Molecular-Mass monograph, 0828, European Pharmacopeia 9th Ed., como la mezcla de polisacáridos obtenida de la heparina y que tiene un peso molecular medio menor de 8.000 Dalton y donde al menos el 60% de su masa total tiene un peso molecular menor de 8.000 Da. El peso molecular medio de las HBPM de la invención se ha determinado por el procedimiento de la Farmacopea Europea (Ph. Eur. 9a Edición).
En la presente invención se entiende como "residuos 1,6-anhidro” a diversos grupos químicos que se generan en las posiciones terminales de las HPBM durante el proceso de despolimerización. Ejemplos no limitantes de estos grupos son 2-sulfoamino-1,6-anhidro-2-desoxi-p-D-glucopiranosa (1,6-anhidroglucosamina) y 2-sulfoamino-1,6-anhidro-2-desoxi-p-D-manopiranosa (1,6-anhidromanosamina). La cantidad de estos residuos en la HPBM se expresa como el porcentaje de cadenas de oligosacárido que en su terminal reductor presentan estos tipos de residuos.
El contenido en terminales 1,6-anhidro de la HBPM puede obtenerse mediante el método analítico descrito en el documento Enoxaparin Sodium monograph, 1097, European Pharmacopeia 9th Ed, descrito en el apartado Identificación B. En este método se despolimeriza exhaustivamente la molécula con una mezcla de heparinasas I, II y III, separándose y cuantificándose los residuos generados por cromatografía de intercambio aniónico fuerte (SAX-HPLC). El contenido en 1,6-anhidro, por ejemplo, se determina de acuerdo con la siguiente fórmula:
% 1,6-anhidro = Mw • (Ai A2 + A3) *100 / IMwx • Ax
donde:
- Mw, peso molecular medio
- Mwx, peso molecular del derivado x (ver tabla 1097-1 del documento Enoxaparin Sodium monograph, 1097, European Pharmacopeia 9th Ed)
- Ax, área del pico del derivado x
- A 1, área del pico del derivado 1,6-anhidro AIS
- A2 , área del pico del derivado 1,6-anhidro AIIS
- A3 , área del pico del derivado 1,6-anhidro AIS-IS
La proporción de residuos 1,6-anhidroglucosamina y de residuos 1,6 anhidromanosamina en la HBPM se puede determinar mediante Resonancia Magnética Nuclear (RMN), por ejemplo mediante 1H 13C HSQC. La proporción entre ambos residuos se puede determinar integrando las señales correspondientes a cada uno de estos residuos en el espectro de 1H 13C HSQC.
La actividad anti-FXa y anti-FIIa de las HBPM de la invención se ha determinado por el procedimiento cromogénico de la Farmacopea Europea (Ph. Eur. 9a Edición, Monografía 0828) y se ha expresado en unidades internacionales por mg.
El grado de color de la HBPM se puede determinar según el método II de la Farmacopea Europea capítulo 2.2.2.
El término “temperatura ambiente” se refiere a una temperatura de entre 20 y 25°C.
Como se usa en el presente documento, el término "aproximadamente" significa ± 10% del valor dado.
Las HBPM de la invención tienen un peso molecular medio (Mw) de entre 3 y 3,8 KDa, preferiblemente de entre 3 y 3,6 KDa.
En una realización, la HBPM de la invención presenta un contenido de residuos 1,6-anhidro de entre 1 y 15% en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas; preferiblemente de entre 2 y 13%, más preferiblemente de entre 4 y 11%.
Preferiblemente, la proporción molar de los residuos 1,6-anhidroglucosamina en la HBPM de la invención es mayor o igual a la de los residuos 1,6 anhidromanosamina. En una realización particular, la proporción molar de residuos 1,6-anhidroglucosamina:residuos 1,6 anhidromanosamina en la HBPM es de entre 1:1 y 3:1, preferiblemente entre 1:1 y 2,5:1 o entre 1,05:1 y 2,5:1.
En una realización particular de la invención, la HBPM tienen un peso molecular medio de entre 3 y 3,8 KDa, un contenido de residuos 1,6-anhidro de entre 1 y 15% en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas, y una proporción de residuos 1,6-anhidroglucosamina mayor o igual a la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, preferiblemente entre 1:1 y 3:1.
Preferiblemente, la HBPM de la invención presenta una actividad anti-FXa de entre 80-120 UI/mg y una actividad anti-FIIa de entre 5-20 UI/mg. En una realización particular, presenta una actividad anti-FXa de entre 95-120 UI/mg y una actividad anti-FIIa de entre 10-20 UI/mg.
En una realización particular de la invención, la HBPM tienen un peso molecular medio de entre 3 y 3,8 KDa, un contenido de residuos 1,6-anhidro de entre 1 y 15% en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas, y una proporción de residuos 1,6-anhidroglucosamina mayor o igual a la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, preferiblemente entre 1:1 y 3:1, una actividad anti-FXa de entre 80-120 UI/mg y una actividad anti-FIIa de entre 5-20 UI/mg.
Preferiblemente, la HBPM de la invención presenta un grado de color mayor o igual a 6 en la gama de soluciones de referencia del color establecidas en Farmacopea Europea capítulo 2.2.2. (método II), durante al menos 24 meses, preferiblemente durante al menos 36 meses, a temperatura ambiente y 60% de humedad relativa. Esta determinación se puede hacer siguiendo el método descrito en la Farmacopea Europea (capítulo 2.2.2; método II), o de forma automática utilizando un colorímetro.
Se ha observado que las HBPM de la invención presentan una elevada estabilidad. En concreto, se ha observado que son estables durante al menos 24 meses, o incluso durante al menos 36 meses a temperatura ambiente y 60% de humedad relativa.
En un aspecto, la invención se refiere a un procedimiento de obtención de heparinas de bajo peso molecular con un peso molecular medio de entre 3 y 3,8 KDa que comprende las siguientes etapas:
a) preparar una solución acuosa de heparina sódica;
b) añadir cloruro de benzalconio a la solución de la etapa (a) para obtener heparinato de benzalconio;
c) disolver el heparinato de benzalconio obtenido en la etapa (b) en CH2Ch, añadir Triton B y mantener una temperatura de entre 20 y 40°C durante entre 24 y 48 horas; y
d) realizar al menos dos tratamientos con H2O2 de la heparina despolimerizada obtenida tras la etapa c) en una razón de entre 0,04 y 1,0 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada, en cada tratamiento.
Realizaciones particulares y preferidas para la heparina de bajo peso molecular son tal y como se han definido previamente en este documento.
En una realización particular, la solución acuosa de heparina sódica de la etapa a) se prepara a partir de heparina obtenida de la mucosa intestinal del cerdo.
La adición de Tritón B en la etapa c) puede hacer mediante una o varias adiciones secuenciales, por ejemplo mediante 1, 2, 3 o 4 adiciones secuenciales de Trotón B.
En una realización particular, la adición de Tritón B en la etapa c) se realiza en un máximo de tres adiciones secuenciales, i.e. 1, 2 o 3, cada una de ellas con la adición de Triton B en una razón en peso de 0,2:1 a 0,3:1 de Triton B:heparinato de benzalconio. Preferiblemente, la adición de Tritón B en la etapa c) se realiza mediante tres adiciones secuenciales de Tritón B, y preferiblemente cada una de ellas con la adición de Triton B en una razón en peso de 0,2:1 a 0,3:1 de Triton B:heparinato de benzalconio.
En una realización de la invención, la adición de Tritón B en la etapa c) se realiza mediante tres adiciones secuenciales de Triton B, de forma que tras la primera adición se mantiene la reacción durante 6-10 horas hasta la segunda adición, tras la segunda adición se mantiene la reacción durante 12-20 horas hasta la tercera adición, y tras la tercera adición se mantiene la reacción durante 6-10 horas. En una realización adicional, tras la primera adición se mantiene la reacción durante 7-9 horas hasta la segunda adición, tras la segunda adición se mantiene la reacción durante 14-18 horas hasta la tercera adición, y tras la tercera adición se mantiene la reacción durante 7-9 horas. En otra realización adicional, el tiempo de reacción tras la primera, segunda y tercera adición es de aproximadamente 8, aproximadamente 16 y aproximadamente 8 horas, respectivamente.
En una realización, la temperatura en la etapa c) es de entre 25 y 35 °C, preferiblemente entre 27 y 32 °C.
En una realización preferida, el tratamiento con H2O2 en la etapa d) se lleva acabo sobre una disolución acuosa de la heparina despolimerizada.
Preferiblemente, cada tratamiento con H2O2 en la etapa d) se realiza con una razón de entre 0,04 y 0,5 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada, preferiblemente entre 0,04 y 0,3 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada. En una realización particular, cada tratamiento con H2O2 en la etapa d) se realiza con una razón de entre 0,04 y 0,2 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada. En una realización preferida, la etapa d) comprende un primer tratamiento con H2O2 de la heparina despolimerizada obtenida tras la etapa c) en una razón de entre 0,05 y 0,25 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada, y un segundo tratamiento con H2O2 en una razón de entre 0,04 y 0,25 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada.
En otra realización, la etapa d) incluye tres tratamientos con H2O2.
Preferiblemente, la etapa d) se lleva a cabo a una temperatura de entre 20 y 50 °C, preferiblemente entre 25 y 45 °C.
Preferiblemente, cada tratamiento con H2O2 se realiza durante al menos 3 horas. Por ejemplo, durante entre 3 y 20 horas. En una realización particular, el primer tratamiento con H2O2 se realiza durante un tiempo de entre 12 y 20 h, preferiblemente entre 14 y 18 h. Preferiblemente, el segundo y posteriores tratamientos con H2O2 se realizan durante un tiempo de entre 3 y 7 h, preferiblemente entre 4 y 6 h.
En una realización preferida, la etapa d) se lleva a cabo a un pH entre 10,5 y 11,5.Adicionalmente, el procedimiento de la invención puede incluir una etapa adicional de precipitación en metanol de la heparina despolimerizada después de cada tratamiento con H2O2 en la etapa d). En una realización particular, se llevan a cabo dos tratamientos con H2O2 y se realiza una etapa de precipitación en metanol de la heparina despolimerizada entre los dos tratamientos con H2O2. En otra realización, se llevan a cabo tres tratamientos con H2O2 y se realiza una etapa de precipitación en metanol de la heparina despolimerizada entre el primer y segundo tratamiento con H2O2 y entre el segundo y tercer tratamiento con H2O2.
Preferiblemente, tras el primer tratamiento con H2O2 en la etapa d) le heparina despolimerizada se precipita en una solución de acetato sódico en metanol.
En una realización preferida, la HBPM obtenida en el procedimiento de la invención se purifica mediante precipitación con metanol.
La HBPM obtenida se puede someter a liofilización.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1. Espectro de 1H RMN de HBPM obtenida mediante el procedimiento de la invención con ampliación de zona anomérica.
Figura 2. Espectro de 1H 13C HSQC de HBPM obtenida mediante el procedimiento de la invención con ampliación de zona anomérica.
EJEMPLOS
Los siguientes ejemplos específicos que se proporcionan a continuación sirven para ilustrar la naturaleza de la presente invención. Estos ejemplos se incluyen solamente con fines ilustrativos y no han de ser interpretados como limitaciones a la invención que aquí se reivindica.
Ejemplo 1
Se disuelven 10 g de heparina sódica en agua purificada y bajo agitación se añade una disolución de cloruro de benzalconio al 50 % (p/v), formándose el heparinato de benzalconio. El producto formado se lava varias veces con agua para eliminar el exceso de cloruros y finalmente el producto se seca por liofilización.
El heparinato de benzalconio se disuelve en cloruro de metileno y se ajusta la temperatura a 30 ± 5 °C. Se añade hidróxido de benciltrimetilamonio (Triton B) al 40 % y se deja reaccionar a la temperatura anteriormente indicada. La adición se repite dos veces más.
A la disolución acuosa del producto despolimerizado, se añade H2O2 al 33 % p/v, particularmente, a una concentración 0,1 ± 10% litros de H2O2 por kg de heparinato de benzalconio y se deja reaccionar a 30 ± 5°C. Trascurrido el tiempo de reacción se precipita sobre una disolución de acetato sódico en metanol, aislándose por centrifugación la heparina de bajo peso molecular cruda.
Esta heparina de bajo peso molecular cruda se disuelve en agua y se precipita nuevamente con metanol. El precipitado se disuelve en agua purificada y se trata con H2O233 % p/v, concretamente, a una concentración 0,08 ± 10% litros de H2O2/ kg de heparinato de benzalconio a una temperatura de 40 ± 2 °C. Tras el periodo de reacción, la solución se neutraliza y se precipita con metanol.
El precipitado se redisuelve en agua purificada y se trata de nuevo con H2O233% p/v a una temperatura de 40°C ± 2°C. Tras el periodo de reacción, la solución se neutraliza y se precipita con metanol.
El producto purificado se disuelve en agua y se liofiliza, obteniéndose 6,00 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3241 Da, una actividad anti-FXa de 118 Ul/mg y una actividad anti-FIIa de 13,7 Ul/mg y presenta en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas un contenido de residuos 1,6-anhidro entre 1 y 15 % donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o igual que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur.(2.2.2, Método II)).
El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable a temperatura ambiente en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo 2
Partiendo de 10 g de heparina sódica y repitiendo los pasos indicados en el ejemplo 1, se obtienen 6,01 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3259 Da, una actividad anti-FXa de 103 UI/mg y una actividad anti-FIIa de 15,2 UI/mg. Esta heparina de bajo peso molecular presenta la característica de tener en el extremo terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas un contenido de residuos 1,6-anhidro entre 1 y 15 % donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur.(2.2.2, Método II)).
El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable a temperatura ambiente en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo 3
Se disuelven 10 g de heparina sódica en agua purificada y bajo agitación se añade una disolución de cloruro de benzalconio al 50% (p/v), formándose el heparinato de benzalconio. El producto formado se lava varias veces con agua para eliminar el exceso de cloruros y finalmente el producto se seca por liofilización.
El heparinato de benzalconio se disuelve en cloruro de metileno y se ajusta la temperatura a 30°C ± 5°C. Se añade hidróxido de benciltrimetilamonio al 40% (Triton B) y se deja reaccionar a la temperatura anteriormente indicada. La adición se repite dos veces más.
A la disolución acuosa del producto despolimerizado, se añade H2O2 al 33 % p/v, particularmente, a una concentración 0,1 ± 10% litros de H2O2/ kg de heparinato de benzalconio y se deja reaccionar a 30 ± 5 °C. Trascurrido el tiempo de reacción se precipita sobre una disolución de acetato sódico en metanol, aislándose por centrifugación la heparina de bajo peso molecular cruda.
Esta heparina de bajo peso molecular cruda se disuelve en agua y se precipita nuevamente con metanol. El precipitado se disuelve en agua purificada y se trata con H2O233 % p/v, concretamente, a una concentración 0,08 ± 10% litros de H2O2/ kg de heparinato de benzalconio a una temperatura de 40 ± 2 °C. Tras el periodo de reacción, la solución se neutraliza y se precipita con metanol.
El producto purificado se disuelve en agua y se liofiliza, obteniéndose 5,21 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3269 Da, una actividad anti-FXa de 119 Ul/mg y una actividad anti-FIIa de 13,70 Ul/mg y presenta en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas un contenido de residuos 1,6-anhidro entre 1 y 15% donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o equivalente que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur.(2.2.2, Método II)).
El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable a temperatura ambiente en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo 4
Partiendo de 10 g de heparina sódica y repitiendo los pasos indicados en el ejemplo 1, se obtienen 6,25 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3172 Da, una actividad anti-FXa de 108 UI/mg y una actividad anti-FIIa de 13,1 UI/mg y un perfil de residuos 1,6-anhidro en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas entre 1 y 15 % donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o equivalente que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular, como la enoxaparina.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur. (2.2.2, Método II)).
El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable a temperatura ambiente en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo 5
Partiendo de 10 g de heparina sódica y repitiendo los pasos indicados en el ejemplo 1, se obtienen 6,34 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3347 Da, una actividad anti-FXa de 110 UI/mg y una actividad anti-FIIa de 14,7 UI/mg y un perfil de residuos 1,6-anhidro en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas entre 1 y 15 % donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o equivalente que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular, como la enoxaparina.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur. (2.2.2, Método II)). El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable a temperatura ambiente en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo 6
Partiendo de 10 g de heparina sódica y repitiendo los pasos indicados en el ejemplo 1, se obtienen 7,11 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3400 Da, una actividad anti-FXa de 119 UI/mg y una actividad anti-FIIa de 15,0 UI/mg y y un perfil de residuos 1,6-anhidro en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas entre 1 y 15 % donde la proporción de los residuos 1,6­ anhidroglucosamina es mayor que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular, como la enoxaparina.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur. (2.2.2, Método II)). El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable a temperatura ambiente en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo 7
Partiendo de 10 g de heparina sódica y repitiendo los pasos indicados en el ejemplo 1, se obtienen 6,92 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3328 Da, una actividad anti-FXa de 117 Ul/mg y una actividad anti-FIIa de 14,9 Ul/mg y y un perfil de residuos 1,6-anhidro en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas entre 1 y 15 % donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o equivalente que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular, como la enoxaparina.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur. (2.2.2, Método II)). El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo 8
Partiendo de 10 g de heparina sódica y repitiendo los pasos indicados en el ejemplo 3, se obtienen 7,04 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3331 Da, una actividad anti-FXa de 113 UI/mg y una actividad anti-FIIa de 15,3 UI/mg y un perfil de residuos 1,6-anhidro en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas entre 1 y 15 % donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o equivalente que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular, como la enoxaparina.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur.(2.2.2, Método II)). El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable a temperatura ambiente en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo 9
Partiendo de 10 g de heparina sódica y repitiendo los pasos indicados en el ejemplo 3, se obtienen 7,09 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3366 Da, una actividad anti-FXa de 115 UI/mg y una actividad anti-FIIa de 16,0 UI/mg y un perfil de residuos 1,6-anhidro en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas entre 1 y 15 % donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o equivalente que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de otras heparinas de bajo peso molecular, como la enoxaparina.
Esta heparina de bajo peso molecular además presenta la ventaja de ser estable a temperatura ambiente durante 24-36 meses presentando un grado de color > 6 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur.(2.2.2, Método II)). El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado era estable a temperatura ambiente en un intervalo entre 24 y 36 meses.
Ejemplo comparativo 10 (sin tratamiento con H 2 O 2 )
Se disuelven 10 g de heparina sódica en agua purificada y bajo agitación se añade una disolución de cloruro de benzalconio al 50 % (p/v), formándose el heparinato de benzalconio. El producto formado se lava varias veces con agua para eliminar el exceso de cloruros y finalmente el producto se seca por liofilización.
El heparinato de benzalconio se disuelve en cloruro de metileno y se ajusta la temperatura a 30 ± 5 °C. Se añade hidróxido de benciltrimetilamonio al 40 % (Triton B) y se deja reaccionar a la temperatura anteriormente indicada. La adición se repite dos veces más.
La solución del producto despolimerizado se precipita sobre una disolución de acetato sódico en metanol, aislándose por centrifugación la heparina de bajo peso molecular cruda.
Esta heparina de bajo peso molecular cruda se disuelve en agua y se precipita nuevamente con metanol. El precipitado se disuelve en agua purificada a una temperatura de 40 ± 2 °C a pH 11. Trascurridas 5 horas, la solución se neutraliza y se precipita con metanol.
El producto purificado se disuelve en agua y se liofiliza, obteniéndose 5,28 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 3280 Da, una actividad anti-FXa de 112 Ul/mg y una actividad anti-FIIa de 13,70 Ul/mg y presenta en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas un contenido de residuos 1,6-anhidro de 18,5 %. Además, se analiza la proporción de residuos 1,6-anhidroglucosamina respecto de la de los residuos 1,6 anhidromanosamina, a diferencia de los ejemplos anteriores, los restos 1,6 anhidromanosamina son mayores que los de 1,6-anhidroglucosamina.
Se analiza además el grado de estabilidad correlacionado con el color de la muestra, observando que a partir del décimo mes a temperatura ambiente presenta un grado de color de 4 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur. (2.2.2, Método II)).
El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado no era estable durante más de 9 meses a temperatura ambiente, por lo que las adiciones de H2O2 , parecen ser las responsables de este comportamiento.
Ejemplo comparativo 11 (despolimerización a 60°C)
Se disuelven 10 g de heparina sódica en agua purificada y bajo agitación se añade una disolución de cloruro de benzalconio al 50 % (p/v), formándose el heparinato de benzalconio. El producto formado se lava varias veces con agua para eliminar el exceso de cloruros y finalmente el producto se seca por liofilización.
El heparinato de benzalconio se disuelve en cloruro de metileno y se ajusta la temperatura a 60 ± 5 °C. Se añade hidróxido de benciltrimetilamonio al 40 % (Triton B) y se deja reaccionar a la temperatura anteriormente indicada. La adición se repite dos veces más.
A la disolución acuosa del producto despolimerizado, se añade peróxido de hidrógeno al 33 % p/v, particularmente, a una concentración 0,1 ± 10% litros de H2O2/kg de heparinato de benzalconio y se deja reaccionar a 30 ± 5 °C. Trascurrido el tiempo de reacción se precipita sobre una disolución de acetato sódico en metanol, aislándose por centrifugación la heparina de bajo peso molecular cruda.
Esta heparina de bajo peso molecular cruda se disuelve en agua y se precipita nuevamente con metanol. El precipitado se disuelve en agua purificada y se trata con peróxido de hidrógeno 33 % p/v, concretamente, a una concentración 0,08 ± 10% litros de H2O2 por kg de heparinato de benzalconio a una temperatura de 40 ± 2 °C. Tras el periodo de reacción, la solución se neutraliza y se precipita con metanol.
El precipitado se redisuelve en agua purificada y se trata de nuevo con peróxido de hidrógeno 33 % p/v a una temperatura de 40 ± 2 °C. Tras el periodo de reacción, la solución se neutraliza y se precipita con metanol.
El producto purificado se disuelve en agua y se liofiliza, obteniéndose 5,10 g de heparina de bajo peso molecular y un peso molecular medio de 2341 Da, una actividad anti-FXa de 109 UI/mg y una actividad anti-FIIa de 2,8 UI/mg y presenta en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas un contenido de residuos 1,6-anhidro de 21 % donde la proporción de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mucho menor que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina.
Se analiza además el grado de estabilidad correlacionado con el color de la muestra, observando que a partir del décimo mes a temperatura ambiente presenta un grado de color de 4 medido con un colorímetro de la marca LICO® que relaciona el color según la gama cromática de referencia establecida en Farmacopea (Ph. Eur. (2.2.2, Método II)).
El grado de color, parámetro directamente relacionado con la estabilidad del producto, permitió determinar que el producto final envasado no era estable durante más de 10­ 11 meses a temperatura ambiente, requiriendo cadena de frío para que la estabilidad del producto supere los 12 meses.
Ejemplo 12
Los productos obtenidos en los ejemplos 1 a 11 se analizan para determinar porcentualmente el contenido en residuos 1,6-anhidro de manera concreta, de acuerdo con el método descrito en el documento Enoxaparin Sodium monograph, 1097, European Pharmacopeia 9th Ed, descrito en el apartado Identificación B, obteniéndose los siguientes resultados.
Figure imgf000015_0001
Ejemplo 13
El producto obtenido en el ejemplo 1, se analiza por resonancia magnética nuclear, en concreto por los experimentos de 1H-RMN y 1H-13C HSQC.
La espectroscopía de 1H-RMN ha sido la técnica más ampliamente usada para el estudio de estos compuestos dado que se trata de un núcleo abundante y con una alta relación giromagnética. La región entre 1,8 - 2,1 ppm comprende las señales correspondientes a los grupos N-acetilo o los grupos metilos de los terminales reductores que pueden ser incluidos sintéticamente. La región entre 2,8 - 4,6 ppm, comprende la mayoría de las señales del anillo sacarídico y presentan un alto grado de solapamiento entre ellas, lo que hace que sea dificultosos extraer información estructural directamente de esta zona. Entre 4,6 - 6,0 ppm se encuentran las señales correspondientes a los protones anoméricos. Dada que es una zona mucho menos poblada de señales, es posible extraer una gran información de ella. Además, en el caso de HBPMs obtenidas por mecanismo de p-eliminación, también contienen las señales correspondientes a los H4 de los terminales no reductores de la molécula.
En concreto las señales correspondientes a los residuos 1,6-anhdro aparecen a 5,57 y 5,62 ppm, que corresponden al protón anomérico de las estructuras de 1,6-anhidromanosamina y 1,6-anhidroglucosamina, respectivamente, y tal como describe la literatura.
Otro experimento bidimensional de particular importancia para la caracterización estructural de este tipo de compuestos, es el 1H-13C HSQC (Heteronuclear Single-Quantum Correlation), que correlaciona desplazamientos químicos de protón con desplazamientos químicos de carbono 13, y permite asignar las estructuras primarias de oligosacáridos derivados de GAGs y la composición monosacarídica.
El incremento de dispersión espectral conseguida con esta técnica bidimensional permite la cuantificación de las integrales de las señales que se superponen en los correspondientes espectros monodimensionales.
Las señales correspondientes a los residuos 1,6-anhdro aparecen a 5,57-103,9 y 5,61­ 104,3 ppm, que corresponden al protón anomérico de las estructuras de 1,6-anhidromanosamina y 1,6-anhidroglucosamina, respectivamente, y tal como describe la literatura y así se observa en las figuras 1 y 2 para la muestra del producto obtenido en el ejemplo 1.
Ejemplo 14
Los productos obtenidos en los ejemplos 1 a 10, se analizaron para determinar el contenido en residuos de 2-sulfo-amino-1,6-anhidro-2-desoxi-p-D-glucopiranosa (1,6-anhidroglucosamina ó 1,6-an.A) y 2-sulfo-amino-1,6-anhidro-2-desoxi-p-D-manopiranosa (1,6-anhidromanosamina ó 1,6-an.M), de acuerdo al procedimiento conocido en el estado de la técnica para los experimentos de 1H-13C HSQC, obteniéndose los siguientes resultados.
Figure imgf000017_0001

Claims (19)

REIVINDICACIONES
1. Procedimiento de obtención de heparinas de bajo peso molecular con un peso molecular medio de entre 3 y 3,8 KDa que comprende las siguientes etapas:
a) preparar una solución acuosa de heparina sódica;
b) añadir cloruro de benzalconio a la solución de la etapa (a) para obtener heparinato de benzalconio;
c) disolver el heparinato de benzalconio obtenido en la etapa (b) en ChCH2 , añadir Triton B y mantener una temperatura de entre 20 y 40°C durante entre 24 y 48 horas; y d) realizar al menos dos tratamientos con H2O2 de la heparina despolimerizada obtenida tras la etapa c) en una razón de entre 0,04 y 0.3 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada, en cada tratamiento.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, donde la adición de Triton B de la etapa (c) se hace en un máximo de tres adiciones secuenciales, cada una de ellas con la adición de Triton B en una razón en peso de 0,2:1 a 0,3:1 de Triton B:heparinato de benzalconio.
3. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 o 2, donde la temperatura de la etapa (c) es de entre 25 y 35 °C, preferiblemente entre 27 y 32 °C.
4. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, donde la etapa (c) comprende tres adiciones secuenciales de Triton B, de forma que tras la primera adición se mantiene la reacción durante 6-10 horas hasta la segunda adición, tras la segunda adición se mantiene la reacción durante 12-20 horas hasta la tercera adición, y tras la tercera adición se mantiene la reacción durante 6-10 horas.
5. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, donde la etapa (d) se lleva a cabo a una temperatura de entre 20 y 50 °C, preferiblemente entre 25 y 45 °C.
6. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, donde la etapa (d) se lleva a cabo a un pH entre 10,5 y 11,5 y preferiblemente durante al menos 3 horas cada tratamiento con H2O2.
7. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, donde la etapa d) comprende un primer tratamiento con H2O2 de la heparina despolimerizada obtenida tras la etapa c) en una razón de entre 0,05 y 0,25 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada, y un segundo tratamiento con H2O2 en una razón de entre 0,04 y 0,25 litros de H2O2 al 33 % p/v por cada kg de heparina despolimerizada.
8. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, donde la heparina despolimerizada se precipita en metanol entre cada etapa de tratamiento con H2O2.
9. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8, donde la heparina de bajo peso molecular obtenida se purifica por precipitación con metanol.
10. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9, donde la heparina de bajo peso molecular obtenida se somete a liofilización.
11. Heparina de bajo peso molecular con un peso molecular medio de entre 3 y 3,8 KDa, obtenida mediante el procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10.
12. Heparina de bajo peso molecular según la reivindicación 11 caracterizada porque presenta en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas un contenido de residuos 1,6-anhidro de entre 1 y 15 %, preferiblemente entre 4 y 11 %.
13. Heparina de bajo peso molecular según una cualquiera de las reivindicaciones 11o 12, donde la proporción molar de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o igual que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina.
14. Heparina de bajo peso molecular según una cualquiera de las reivindicaciones 11 a 13, caracterizada porque presenta una actividad anti-FXa de entre 80-120 UI/mg y una actividad anti-FIIa de entre 5-20 UI/mg.
15. Heparina de bajo peso molecular según una cualquiera de las reivindicaciones a 11 a 14, donde dicha heparina presenta un grado de color mayor o igual a 6 en la gama de soluciones de referencia del color establecidas en Farmacopea Europea 2.2.2. método II, durante al menos 24 meses, preferiblemente durante al menos 36 meses, a temperatura ambiente.
16. Heparina de bajo peso molecular con un peso molecular medio de entre 3 y 3,8 KDa, caracterizada porque presenta en el terminal reductor de sus cadenas oligosacarídicas un contenido de residuos 1,6-anhidro de entre 1 y 15 %, preferiblemente entre 4 y 11 %.
17. Heparina de bajo peso molecular según la reivindicación 16, donde la proporción molar de los residuos 1,6-anhidroglucosamina es mayor o igual que la de los residuos 1,6 anhidromanosamina.
18. Heparina de bajo peso molecular según una cualquiera de las reivindicaciones 16 a 17, caracterizada porque presenta una actividad anti-FXa de entre 80-120 UI/mg y una actividad anti-FIIa de entre 5-20 UI/mg.
19. Heparina de bajo peso molecular según una cualquiera de las reivindicaciones 16 a 18, donde dicha heparina presenta un grado de color mayor o igual a 6 en la gama de soluciones de referencia del color establecidas en Farmacopea Europea 2.2.2. método II, durante al menos 24 meses, preferiblemente durante al menos 36 meses, a temperatura ambiente.
ES202090024A 2020-04-27 2020-04-27 Procedimiento para la obtencion de heparinas de bajo peso molecular y heparinas de bajo peso molecular obtenidas por el mismo Active ES2792298B2 (es)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/ES2020/070271 WO2021219902A1 (es) 2020-04-27 2020-04-27 Procedimiento para la obtención de heparinas de bajo peso molecular y heparinas de bajo peso molecular obtenidas por el mismo

Publications (3)

Publication Number Publication Date
ES2792298A2 ES2792298A2 (es) 2020-11-10
ES2792298R2 ES2792298R2 (es) 2021-11-16
ES2792298B2 true ES2792298B2 (es) 2022-04-20

Family

ID=73042960

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES202090024A Active ES2792298B2 (es) 2020-04-27 2020-04-27 Procedimiento para la obtencion de heparinas de bajo peso molecular y heparinas de bajo peso molecular obtenidas por el mismo

Country Status (12)

Country Link
US (1) US20230139786A1 (es)
EP (1) EP4144766A4 (es)
CN (2) CN114072430B (es)
AU (1) AU2020444652A1 (es)
BR (1) BR112022021243A2 (es)
CA (1) CA3175180A1 (es)
CL (1) CL2022002730A1 (es)
CO (1) CO2022016188A2 (es)
ES (1) ES2792298B2 (es)
PE (1) PE20230257A1 (es)
WO (2) WO2021219902A1 (es)
ZA (1) ZA202211958B (es)

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2482611B1 (fr) * 1980-05-14 1986-03-07 Pharmindustrie Nouveaux polysaccharides sulfates, procedes pour leur preparation et leur utilisation comme medicaments
ES2003197A6 (es) * 1987-01-05 1988-10-16 Rovi Lab Farmaceut Sa Procedimiento de despolimerizacion de la heparina para la obtencion de una heparina de bajo peso molecular dotada de actividad antitrombotica
ES2161615B1 (es) * 1999-07-23 2003-03-16 Rovi Lab Farmaceut Sa Composiciones de heparinas de muy bajo peso molecular.
ES2340902B1 (es) * 2008-07-01 2011-05-03 Laboratorios Farmaceuticos Rovi, S.A. Composicion farmaceutica con glicosaminoglicanos y su uso en tratamiento de ulceras cronicas.
CN102399379B (zh) * 2010-09-09 2016-08-31 上海喜恩医药科技发展有限公司 一种肝素衍生的多糖混合物及其制备方法和药物组合物
CN102399306B (zh) * 2010-09-09 2015-11-25 上海喜恩医药科技发展有限公司 一种肝素衍生的多糖混合物的制备方法
CN102558392A (zh) * 2010-12-14 2012-07-11 王芃 一种高抗FXa、低抗FIIa低分子肝素钠的制备方法
CN102816255B (zh) * 2011-06-10 2015-11-25 王芃 一种超低分子肝素钠的制备方法
CN102952202A (zh) * 2011-08-25 2013-03-06 苏州鸿洋医药科技有限公司 一种超低分子肝素钠的制备方法及其应用
CN102633908A (zh) * 2012-05-02 2012-08-15 雷晓刚 一种高品质超低分子量肝素的制备方法
ES2445494B1 (es) * 2012-08-02 2015-03-06 Rovi Lab Farmaceut Sa Procedimiento de obtención de heparinas de bajo y muy bajo peso molecular
CN107759712B (zh) * 2016-08-19 2020-03-24 苏州融析生物科技有限公司 羊来源的低分子肝素及其制备方法与应用

Also Published As

Publication number Publication date
AU2020444652A1 (en) 2023-01-05
CL2022002730A1 (es) 2023-04-10
WO2021219907A1 (es) 2021-11-04
US20230139786A1 (en) 2023-05-04
CA3175180A1 (en) 2021-11-04
ZA202211958B (en) 2024-02-28
EP4144766A1 (en) 2023-03-08
ES2792298A2 (es) 2020-11-10
CN114072430A (zh) 2022-02-18
BR112022021243A2 (pt) 2022-12-27
EP4144766A4 (en) 2024-05-22
WO2021219902A1 (es) 2021-11-04
CN114072430B (zh) 2023-07-28
PE20230257A1 (es) 2023-02-07
CN115485308A (zh) 2022-12-16
CN115485308B (zh) 2024-06-18
ES2792298R2 (es) 2021-11-16
CO2022016188A2 (es) 2023-02-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Chaidedgumjorn et al. Effect of (1→ 3)-and (1→ 4)-linkages of fully sulfated polysaccharides on their anticoagulant activity
DK173818B1 (da) Heparinderivat
Zhao et al. Structure and anticoagulant activity of fucosylated glycosaminoglycan degraded by deaminative cleavage
Marais et al. A fucoidan fraction from Ascophyllum nodosum
ES2817779T3 (es) Evaluación de preparaciones de heparina
Zhang et al. Analysis of pharmaceutical heparins and potential contaminants using 1H-NMR and PAGE
CA2285383C (en) Glycosaminoglycans having high antithrombotic activity
US10689463B2 (en) Fuc3S4S substituted oligoglycosaminoglycan and preparation method thereof
Guan et al. Comparison of low-molecular-weight heparins prepared from bovine lung heparin and porcine intestine heparin
SI2794667T1 (en) Low anticoagulant heparins
EP2985298B1 (en) Low-molecular-weight fucosylated glycosaminoglycan derivative containing terminal 2,5-anhydrated talose or derivative thereof
WO1997043317A1 (en) Derivatives of k5 polysaccharide having high anticoagulant activity
US6388060B1 (en) Process for the sulfation of uronic acid-containing polysaccharides
Schiller et al. Synthesis and characterization of chemically modified hyaluronan and chondroitin sulfate
JP6063103B1 (ja) グリコサミノグリカンの硫酸化方法
ES2792298B2 (es) Procedimiento para la obtencion de heparinas de bajo peso molecular y heparinas de bajo peso molecular obtenidas por el mismo
Naggi et al. Generation of anti-factor Xa active, 3-O-sulfated glucosamine-rich sequences by controlled desulfation of oversulfated heparins
ES2669727T3 (es) Procedimiento de obtención de heparinas de bajo y muy bajo peso molecular
BR112020011554B1 (pt) Processo de preparação de enoxaparina sódica
JPH03185001A (ja) ヘパリンのn―アセチル化物及びその製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
BA2A Patent application published

Ref document number: 2792298

Country of ref document: ES

Kind code of ref document: A2

Effective date: 20201110

EC2A Search report published

Ref document number: 2792298

Country of ref document: ES

Kind code of ref document: R2

Effective date: 20211108

FG2A Definitive protection

Ref document number: 2792298

Country of ref document: ES

Kind code of ref document: B2

Effective date: 20220420