ES2333259T3 - Composiciones destinadas a mejorar la salud intestinal y el rendimiento en animales que comprenden beta-glucanos y alfa-fucanos. - Google Patents
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Abstract
Composición que comprende por lo menos un 8% en peso de ß-glucanos y por lo menos un 8% en peso de Beta-glucanos o una mezcla de los mismos.
Description
Composiciones destinadas a mejorar la salud
intestinal y el rendimiento en animales que comprenden
\beta-glucanos y
\alpha-fucanos.
La presente invención se refiere a formulaciones
nutracéuticas y a los procedimientos de extracción utilizados para
obtener las mismas. En otro aspecto, la presente invención se
refiere al efecto prebiótico de los \beta-glucanos
y/o los \alpha-fucanos y al potencial de los
mismos para actuar como sustitutos de los antibióticos ingeridos.
La presente invención puede tener como resultado asimismo un aumento
de los niveles de microbios beneficiosos y una reducción
correspondiente del nivel de microbios nocivos en los intestinos.
Otros aspectos de la presente invención se refieren al aumento de
la digestibilidad de los nutrientes y una mayor absorción de
minerales y de micronutrientes en el hospedador, y una mejora del
rendimiento de los animales desde el punto de vista de un
incremento en el aumento de peso, unas mejores proporciones de
conversión de los alimentos y una mayor ingestión diaria.
En otro aspecto, la presente invención se
refiere a productos prebióticos para seres humanos y al desarrollo
de una nueva composición para administrar a seres humanos a fin de
aumentar los niveles de bacterias beneficiosas en los intestinos
del ser humano. La presente invención proporciona asimismo una
composición simbiótica (que consiste en un producto prebiótico
junto con uno probiótico) que cuando se administra a los seres
humanos contribuya a restablecer las bacterias beneficiosas y
estimular su crecimiento en el intestino humano.
Desde la década de los años 40 se conocen los
efectos de provocar un crecimiento beneficioso de antibióticos en
el pienso para animales a fin de minimizar sus enfermedades. Sin
embargo, el informe Swann (1969) solicitó un control gubernamental
más estricto de la utilización de antibióticos en el pienso. A
partir del informe Swann, se ha producido un interés creciente
sobre la transmisión de bacterias resistentes y ello ha tenido como
resultado la prohibición en la UE de los activadores del crecimiento
de antibióticos siendo efectiva a partir del 1 de enero de 2006.
Dicha prohibición de los activadores del crecimiento de antibióticos
afectará sin duda alguna al control de las enfermedades en las
granjas así como al rendimiento animal y necesita alternativas
efectivas. La eliminación de los antibióticos del pienso animal
tendrá asimismo como resultado un aumento de la proporción de
microbios nocivos tales como E. coli y Salmonella en
la microflora intestinal de los animales de granja.
Incluso en la situación actual, el número de
casos de intoxicación alimentaria en los países desarrollados tales
como Irlanda ha aumentado durante la última década, siendo las
infecciones por Campylobacter spp. la causa más común de
enfermedades y las infecciones por Salmonella spp. la segunda
causa más común de enfermedades. En Irlanda, se están incorporando
nuevas medidas de control de la salmonela y dichas medidas de
control provocarán grandes dificultades a los productores de reses,
ganado bovino, aves de corral y cerdos.
Las técnicas ganaderas intensivas actuales han
provocado asimismo un aumento de trastornos relacionados con el
estrés en los animales de granja, entre ellos una salud intestinal
deficiente y una incidencia elevada de enfermedades tales como el
síndrome de desmedro multisistémico postdestete (PMWS). El destete
constituye una de las situaciones más estresantes de la vida de un
cerdo (Melin et al., 2004). El lechón se ve sometido a una
multitud de factores estresantes (Pluske et al., 1997) que
provocan un deterioro función inmunitaria y un aumento de la
susceptibilidad con respecto a las infecciones (Hiss et al.,
2003). La utilización de antibióticos ha reducido dichos problemas
debido a la disminución de la población microbiana en el tracto
gastrointestinal, así como a un cambio de bacterias patógenas a
bacterias beneficiosas. Ello tiene como resultado una mejor
absorción de los nutrientes, una menor cantidad de sustrato para la
proliferación de organismos patógenos y una mejora del estado de
salud y la integridad del tracto gastrointestinal (Close, 2000). Sin
embargo, como consecuencia de varias alarmas sanitarias
relacionadas con el consumo de productos animales está aumentando
la presión de los consumidores con respecto a la reducción de la
utilización de antibióticos (Williams et al., 2001). Por lo
tanto, existe una necesidad urgente de encontrar alternativas a los
antibióticos alimentarios que puedan proporcionar las ventajas
mencionadas anteriormente sin que afecten negativamente a la salud
humana.
Considerando las presiones económicas en el
campo de la ganadería intensiva, el rendimiento de los animales, en
particular en las primeras etapas del crecimiento, resulta de una
importancia crucial para el ganadero. En este sentido, los
parámetros clave a considerar comprenden las ganancias medias
diarias (aumento de peso por lechón por día), el índice de
conversión alimentaria (una medida de la eficiencia del rendimiento
del lechón), la ingesta media diaria (gramos de ingesta
alimentaria/día) y una reducción del estregamiento (una medida de
la consistencia de las heces y un indicador de diarrea en los
lechones). Cualquier composición que pretenda mejorar el
rendimiento ha de tener un efecto en el aumento de las ganancias
medias diarias (ADG), una mejora del índice de conversión
alimentaria (FCR) (que se indica mediante la reducción de su valor)
y una reducción del estregamiento (que se indica mediante unas
heces más sólidas).
De un modo similar, unos hábitos alimentarios
poco saludables en los seres humanos tienen un gran impacto en la
salud intestinal. En un estudio reciente por parte de productores
europeos (Leatherhead R. A. Survey), el 21% afirmó que la salud
intestina tendría una gran influencia en el mercado de los alimentos
funcionales. Por lo tanto, existe la necesidad de una composición
que mejore la salud intestinal de los seres humanos y actúe como
probiótico para las bacterias beneficiosas.
Sustitución de antibióticos: Existen
diversas estrategias alternativas que se encuentran disponibles como
productos sustitutivos de antibióticos alimentarios y para el
control de la salmonela, que comprenden la acidificación de la
dieta, la incorporación de diversos productos probióticos en la
dieta, fructooligosacáridos, enzimas y plantas.
La acidificación de la dieta utilizando ácidos
orgánicos constituye la estrategia más habitual que se utiliza
actualmente. Se considera que éstos desempeñan una función
importante mejorando la digestión y contribuyendo al equilibrio
microbiano del tracto intestinal. Los efectos beneficiosos de los
mismos varían en función del tipo, siendo el más fuerte el ácido
fórmico. Se requiere un pH bajo para activar enzimas digestivos
críticos del estómago por porcino. Asimismo, una de las mayores
barreras ante la invasión del tracto intestinal por parte de
bacterias patógenas es un pH ácido. Sin embargo, los ácidos tienen
un uso limitado excepto si se protegen en el estómago ya que de
otro modo probablemente quedarán neutralizados por los enzimas del
tracto digestivo superior. Además, a medida que crece el cerdo,
aumenta su capacidad para producir de un modo natural una cantidad
de ácido suficiente para la digestión, reduciendo de este modo las
ventajas de un producto acidificante. De este modo, se pueden
considerar los ácidos como unos aditivos útiles únicamente en las
dietas de los lechones y en el caso de cerdos alimentados con
dietas con poca cantidad de pienso.
Asimismo, cuando se han utilizado con una
densidad elevada en ingredientes obtenidos a partir de la leche, la
respuesta a la adición de ácido ha resultado muy inferior. Ello se
debe a que la lactosa de la leche se convierta en ácido láctico
provocando unos cambios ventajosos en el ambiente gástrico,
reduciendo de este modo la necesidad de una acidificación
adicional. Sin embargo, la lactosa es un componente dietético
costoso, y existe la necesidad de descubrir componentes que puedan
limitar la cantidad de lactosa requerida en la dieta, al mismo
tiempo que potencia sus efectos beneficiosos. Además, unos niveles
elevados de lactosa hacen que las dietas resulten más difíciles de
preparar, ya que la lactosa es higroscópica y difícil de manipular,
especialmente en niveles elevados.
Otra estrategia habitual que se ha utilizado es
la introducción de probióticos (o microbios alimentados
directamente) en la dieta de los animales. Sin embargo, el
desarrollo de probióticos se encuentra limitado por determinados
factores inhibidores que comprenden la estricta legislación europea
sobre la utilización de probióticos y una amplia gama de
ingredientes alternativos. Además, los productos alimentarios
animales se tratan habitualmente a temperaturas elevadas y los
probióticos (que son microbios en la naturaleza) no pueden
sobrevivir dichas tempera-
turas.
turas.
Los oligosacáridos de fructosa (FOS),
prebióticos que se comercializan actualmente en el mercado porcino,
presentan varias ventajas. Sin embargo, algunos investigadores
(Jaskari et al, 1998) han puesto en cuestión la selectividad
de los FOS como sustrato para las bacterias beneficiosas
fermentadoras de los hidratos de carbono. En los ensayos in
vivo se ha descubierto un aumento del crecimiento de todas las
bacterias (entre ellas las bactericidas naturales intestinales así
como la E. coli), surgiendo dudas acerca de su selectividad.
Por lo tanto, los FOS por sí mismos pueden no constituir una
solución ideal.
Ninguna de dichas estrategias equivale a los
antibióticos desde el punto de vista del rendimiento y todos ellos
proporcionan unos resultados muy variables. Existe, por lo tanto, la
necesidad de proporcionar un complemento alimentario que pueda
actuar como alternativa a los antibióticos y mejorar el rendimiento
animal.
Impacto de las dietas poco saludables en los
seres humanos: en los últimos años ha existido una tendencia
cada vez mayor de aumentar los niveles proteicos de las dietas para
seres humanos. Dicha tendencia se agrava por la existencia de
dietas ricas en proteínas, tal como la dieta Atkins, que aumenta los
niveles de proteínas en la dieta al mismo tiempo que disminuye los
niveles de hidratos de carbono. Dichas dietas tienen una gran
influencia en la microflora intestinal y aumentan los niveles de
bacterias fermentadoras de las proteínas tales como E. coli
y Salmonella, al mismo tiempo que se reducen los niveles de
bacterias beneficiosas fermentadoras de los hidratos de carbono
tales como los lactobacilos y las bifidobacterias (Lynch et
al., sin publicar). Por lo tanto, existe la necesidad de
composiciones que restablezcan el equilibrio de la microflora
intestinal puedan estimular la incidencia de las bacterias
beneficiosas. La estrategia clave que se ha venido utilizando
actualmente es la utilización de probióticos, que consisten en cepas
particulares microbios que se administran directamente al
individuo. Sin embargo, la flora intestinal humana consiste en más
de 400 especies de bacterias y los probióticos pueden pretender
únicamente reintroducir algunas de dichas especies. Los prebióticos
actuales, tales como la inulina, no son específicos y pueden, de
hecho, estimular los niveles de bacterias perjudiciales tales como
E. coli (Jaskari et al., 1998, Pierce et al.,
2005), al mismo tiempo que aumentan los niveles de bacterias
beneficiosas tales como las bifidobacterias. Por lo tanto, existe la
necesidad de una composición prebiótica que puede estimular
selectivamente los niveles de bacterias fermentadoras de los
hidratos de carbono tales como las bifidobacterias al mismo tiempo
que reducen los niveles de E. coli y Salmonella.
Se define un prebiótico como un ingrediente
alimentario no digerible que afecta beneficiosamente al hospedador
estimulando selectivamente el crecimiento y/o la actividad de una o
más bacterias. La no digestibilidad de los prebióticos garantizan
que pueden alcanzar el colon y actuar como fuente de energía para
bacterias, a diferencia de los glúcidos habituales, que son
digeridas directamente por el hospedador (Gibson et al,
1995).
Los \beta-glucanos son
homopolisacáridos lineares o ramificados constituidos por residuos
de glucosa. Los \beta-(1,3) glucanos son una clase de
polisacáridos naturales que se encuentran en muchas especies de
levaduras (entre ellas la levadura de Baker o S.
cerevisiae), hongos, vegetales (comprendiendo los cereales) y
algunas bacterias, líquenes y especies de algas (en particular
algas pardas o las familias Ascophyllum y Laminaria).
Sin embargo, la estructura y las propiedades fisiológicas de los
glucanos que se encuentran en dichas fuentes es bastante distinta
de la de los \beta-glucanos aislados a partir de
fuentes vegetales (tales como el trigo, la cebada y la avena) que
son homopolisacáridos lineales (de glucosa) con aproximadamente un
70% de enlaces (1,4) y un 30% de enlaces (1,3) (Cui et al,
2000 y MacGregor & Rattan, 1993), mientras que los glucanos
aislados a partir de las levaduras consisten sobre todo en cadenas
de \beta-(1,3) glucanos con ramificaciones \beta-(1,6) así como
unas pocas cadenas unidas con un enlace \beta-(1,6) (Magnelli
et al., 2002).
Los \beta-glucanos de las
algas, denominados laminarina, consisten en \beta-(1,3) glucanos
con algunas ramificaciones unidas con un enlace \beta-(1,6). La
laminarina de la Laminaria digitata se presenta como dos
series homólogas de moléculas, una serie G menor que contiene entre
22 y 28 residuos glucosilo y una serie M más abundante que contiene
entre 20 y 30 residuos glucosilo enlazados con un residuo de
manitol. La laminarina de muchas especias de Laminaria (entre ellas
la Laminaria hyperborea) es insoluble y consiste sobre todo
en cadenas \beta-(1,3) mientras que la laminarina de la
Laminaria digitata es soluble y consiste en unos niveles
reducidos pero significativos de ramas unidas mediante enlaces
\beta-(1,6). (Read et al., 1996).
Los \beta-glucanos que se
encuentran en las levaduras son cadenas lineares largas de hasta
1300 a 1500 residuos de moléculas de glucano unidas mediante un
enlace \beta-(1,3) con algunas cadenas unidas mediante un enlace
\beta-(1,6) (que tienen un tamaño mucho menor y que presentan
únicamente aproximadamente 140 residuos). Por otro lado, los
\beta-glucanos de las algas (denominados también
laminarina) presentan unas longitudes de cadena muy inferiores (un
número medio de residuos de únicamente 24 residuos) con algunas
ramificaciones \beta-(1,6) en función de la especie. La
Laminaria digitata presenta la ramificación 1,6 que convierte
a los glucanos obtenidos a partir de la misma en hidrosolubles.
Otras especies de laminaria como la hyperborea no presentan dicha
ramificación lo que provoca que las cadenas lineales se agrupen y
como consecuencia de ello los glucanos extraídos de la misma son
sustancialmente insolubles.
Los polisacáridos naturales constituidos
sustancialmente por residuos de
\alpha-L-fucosa sulfatada se
conocen como fucoidanos (o \alpha-fucanos). Se
encuentran presentes en las algas pardas, en algunos equinodermos y
constituyen los polisacáridos predominantes en las algas marinas
pardas, tales como Ascophyllum nodosum y Laminaria
spp. Los fucoidanos (\alpha-fucanos) se han
estudiado exhaustivamente debido a sus propiedades biológicas, ya
que constituyen unos potentes agentes anticoagulantes,
antineoplásicos y antivíricos.
El documento US n.º 4.891.220 da a conocer unos
procedimientos y composiciones para disminuir los niveles séricos
de lípidos utilizando glucanos de levaduras que actúan como agente
reductor de los niveles de colesterol. De un modo similar, el
documento US n.º 6.143.731 describe la capacidad de los glucanos de
levaduras para actuar como fuente de fibra, reducir los niveles
séricos de colesterol aumentar los niveles de colesterol HDL y
actuar como materia no digerible en seres humanos y en animales. De
un modo similar, Hogberg et al. (2005) describen la
alteración de las proporciones molares de diversos ácidos grasos de
cadena corta y del ácido láctico en cerdos alimentados con
\beta-glucanos de cereales y otros polisacáridos
distintos al almidón. Sin embargo, no existe descripción alguna
sobre la influencia de dichos polisacáridos distintos al almidón
(NSP) en la absorción de minerales o en cualquiera de los parámetros
sobre el rendimiento y los productos prebióticos mencionados
anteriormente. Asimismo, se analizó en dicho estudio una mezcla de
diversos polisacáridos distintos almidón, a diferencia de la
investigación que se da a conocer en el presente documento, en el
que se analizan dos NSP específicos.
Muchos investigadores han indicado asimismo el
efecto prebiótico de los \beta-glucanos de
cereales (por ejemplo \beta-glucanos
1,3-1,4 enlazados mezclados) como sustratos
selectivos para las bacterias beneficiosas, en particular
Lactobacillus spp. Jaskari et al. (1998) indican cómo
las dietas basadas en distintos cereales aportan distintos
sustratos para la fermentación microbiana in vitro.
Charalampopoulos et al. (2002) describen la aplicación de
los cereales y de los componentes cereales (entre ellos los
\beta-glucanos de cereales) en los alimentos
medicinales. Martensson et al. (2005) describen la capacidad
de los productos basados en la avena fermentada que contienen
\beta-glucanos naturales y glucanos obtenidos a
partir de Pediococcus damnosus para reducir los niveles de
colesterol en los seres humanos y asimismo estimular la flora de
bifidobacterias. El Pediococcus sp. produce un
exopolisacárido de glucanos que contiene una unidad repetida de
trisacárido \beta-(1,3) (1,2) (Llauberes et al., 1990).
Sin embargo, ninguno de dichos investigadores ha indicado un efecto
prebiótico por parte de los \beta-(1,3) (1,6) glucanos o la
capacidad de dichos glucanos para actuar como sustrato selectivo de
las bacterias beneficiosas, sustancialmente de las bifidobacteria
spp.
Diversos investigadores han observado asimismo
el efecto de los \beta-glucanos administrados a
los animales en el rendimiento de dichos animales. El documento US
n.º 20050020490 describe la capacidad de los glucanos de levaduras
para mejorar el índice de crecimiento durante una prueba de
provocación del sistema inmunitario. El documento US n.º
20030219468 describe los efectos beneficiosos de los
\beta-glucanos, combinados con ácido sórbico, en
el estado higiénico del pienso así como en el rendimiento del
crecimiento de los animales por parte de la combinación para
pienso. El documento US n.º 6.939.864 describe los efectos
sinérgicos de los \beta-glucanos de levadura y el
ácido ascórbico en el crecimiento y la salud de los animales. El
documento US n.º 6.214.337 se refiere a los efectos beneficiosos de
los glucanos de levadura en el rendimiento de los cerdos, cuando se
administran junto con un antibiótico. Ninguno de los investigadores
anteriores ha observado los efectos de los polisacáridos de las
algas, laminarina y fucoidano en el rendimiento de los animales o
el efecto de una combinación de dichos glucanos en el rendimiento de
los animales (ya que la combinación puede tener unos efectos
bastante distintos de los que presentan los componentes
administrados por separado).
La mayoría de investigadores indica una
correlación negativa entre los niveles elevados de NSP en la dieta
y el rendimiento de los animales. Hogberg et al. (2005)
describen un índice de crecimiento superior ara los cerdos
alimentados con cantidades inferiores de NSP. Bergh et
al. (1999) describen asimismo un efecto antinutritivo de los
\beta-glucanos en la nutrición de las aves de
corral. Por lo tanto, no quedan claros los efectos beneficiosos de
los \beta-glucanos de los cereales en el
rendimiento de los animales. Los efectos de los
\beta-glucanos y de los NSP pueden depender de la
solubilidad y la biodisponibilidad de los polisacáridos distintos
del almidón. Los presentes inventores han descubierto que los
polisacáridos de las algas, cuando se administran en combinación,
sorprendentemente, estimulan el rendimiento de los animales en vez
de reducirlo, lo que constituye una mejora con respecto a las
técnicas anteriores.
Otros investigadores (Petersson & Lindberg,
1997) han observado también la digestibilidad de los cereales, en
particular de la cebada y de los \beta-glucanos
que contienen los mismos. Hogberg et al. (2005) describen un
coeficiente inferior de la digestibilidad de la materia orgánica en
el tracto cecal y total en las dietas que contienen unas cantidades
elevadas de polisacáridos distintos al almidón que en las dietas que
contienen unas cantidades inferiores de los mismos. Bergh et
al. (1999) describen asimismo una mayor digestibilidad en el
íleo de los nutrientes de dietas basadas en la avena cuando se
hidrolizan los \beta-glucanos con un enzima
glucanasa. Por lo tanto, las investigaciones parecen indicar una
correlación negativa entre la cantidad de polisacáridos distintos
del almidón (comprendiendo los \beta-glucanos) en
la digestibilidad de las dietas y de los nutrientes. Sin embargo,
nunca se ha esclarecido el impacto directo de los
\beta-glucanos (1,3) (1,6) y otros polisacáridos
de las algas tales como el fucoidano en la digestibilidad. De nuevo,
la composición de la presente patente mejora la digestibilidad y
significa una mejora con respecto a las técnicas anteriores en este
sentido.
Hayen et al. en el documento US n.º
6.214.337 se refieren a la adición de glucanos de levadura al pienso
para animales a fin de mejorar el crecimiento animal, los glucanos
utilizados son \beta-(1,3)- y
\beta-(1,6)-glucanos obtenidos a partir de
levaduras tales como, por ejemplo, Saccharomyces cerevisiae.
Determinan los efectos de dichos glucanos, cuando se utilizan
sinérgicamente con los antibióticos, y no proponen los glucanos
como sustitutos de los antibióticos.
Un punto importante de la diferencia entre las
técnicas anteriores y el presente trabajo es que muchos de los
ensayos de las técnicas anteriores se realizaron en presencia de
antibióticos y harina de plasma/sangre administrados en las dietas.
Los resultados obtenidos con dichas dietas serán probablemente
sustancialmente distintos a los resultados obtenidos sin las
mismas. De hecho, la presente invención está motivada por la
necesidad de encontrar sustitutos para los antibióticos y no se
refiere a los efectos fisiológicos observados en presencia de otros
compuestos.
Otras patentes y solicitudes de patente que en
líneas generales se refieren a este campo son US n.º 5.591.428, US
n.º 6.841.181, US n.º 5.622.939, US n.º 20040253253, US n.º
20010016220, US n.º 20030124170, US n.º 20040138172, US n.º
20040058889, US n.º 20050058671, US n.º 20050118326, US n.º
20050020490 y US n.º 200201 46484.
Existe un interés considerable en la sociedad
occidental sobre los posibles efectos beneficiosos para la salud de
la alimentación con algas marinas y extractos de algas marinas
(véase por ejemplo http://www.whfoods.com). Se ha publicado que un
cierto número de compuestos obtenidos a partir de las algas marinas,
tales como la carragenina, la quitina y el agar, que mejoran la
salud intestinal en los seres humanos y que actúan sinérgicamente
con un prebiótico. Por ejemplo, la patente US n.º 20040086491 se
refiere a un prebiótico humano y a una mezcla probiótica que
consiste asimismo en los oligosacáridos carragenina, quitina y agar
así como en un polisacárido distinto del almidón, la inulina, un
compuesto prebiótico muy conocido. Se ha descrito que el alginato,
otro polisacárido procedente de las algas, presenta diversas
ventajas, entre ellas unos efectos positivos en la salud
gastrointestinal y cardiovascular, y puede actuar como fibra
dietética (Brownlee et al., 2005). Sin embargo, los niveles
de alginato analizados son muy superiores a los contenidos en la
composición actual. Además, los estudios realizados sobre un efecto
prebiótico potencial han resultado poco concluyentes.
Sin embargo, nunca se han investigado los
efectos prebióticos de los polisacáridos obtenidos a partir de las
algas pardas, en particular la laminarina y el fucoidano, en
sistemas in vivo. C. Michel et al., 1996, se refieren
a la degradación de las fibras de las algas por parte de las
bacterias fecales humanas. Sin embargo, dicha respuesta in
vitro no se puede extrapolar para indicar un efecto prebiótico
en los mamíferos por diversos motivos. En primer lugar, el
experimento realizado por el grupo no simuló los enzimas ni las
condiciones del aparato digestivo, que pueden alterar las fibras de
tal modo que se conviertan en más o menos susceptibles a la
fermentación bacteriana. En segundo lugar, las bacterias fecales no
representan la composición total de las bacterias festivas humanas.
Además, las fibras se pueden degradar en el tracto digestivo
superior y puede ser que nunca alcancen la población microbiana
objetivo en el tracto digestivo inferior. Asimismo, el papel
mencionado anteriormente no hace frente a las bacterias intestinales
porcinas, a diferencia de la presente investigación.
Las algas marinas constituyen una fuente
apropiada de principios activos de la presente solicitud, en
particular las algas pardas. Las patentes US n.º 2003119780, US n.º
200500651 14 y US n.º 20050095250 describen unos procedimientos de
producción de laminarina con aplicaciones antineoplásicas, tanto
extrayendo la laminarina de las algas marinas como sintetizando
pequeñas moléculas análogas a la laminarina. El procedimiento
utilizado para extraer la laminarina consiste habitualmente en una
etapa de hidrólisis ácida, seguida por centrifugación y a
continuación ultrafiltración para obtener la laminarina con el
tamaño molecular pretendido. La laminarina procedente en
determinadas algas marinas tales como la Laminaria digitata
presenta la ventaja de que es hidrosoluble, reduciendo la necesidad
de una etapa adicional de solubilización en el proceso.
Para los propósitos de la presente invención, no
se requiere una conformación específica de la laminarina/glucano ya
que la acción periódica o antibiótica no viene determinada por su
conformación tridimensional sino por la naturaleza del enlace y la
longitud de la cadena. No resulta necesario que la laminarina se
encuentre separada de glúcidos adicionales procedentes de las algas
tales como el fucoidano o alcoholes glucídicos tales como el
manitol, ya que reducen a la mitad las acciones biológicas
beneficiosas de los mismos y que actúan sinérgicamente con la
laminarina para mejorar la salud intestinal.
La singularidad nutritiva de las algas marinas
implica asimismo a una categoría de nutrientes denominada
polisacáridos sulfatados. Dichos nutrientes relacionados con los
hidratos de carbono, denominados asimismo fucanos, se han estudiado
con respecto a sus propiedades antinflamatorias, y se ha descubierto
que los extractos de fucano procedentes algas marinas pardas
comestibles inhiben la activación del complemento humano in
vitro (Blonden et al,
1995).
1995).
Las laminarinas, tanto las extraídas de un modo
natural como las obtenidas sintéticamente, se han investigado
también con respecto a sus propiedades inmunitarias y la patente US
n.º 20050208079 describe dichos efectos así como unos
procedimientos de preparación de dichos extractos biológicamente
activos. La patente US n.º 2005095250 describe el efecto
antineoplásico de la laminarina, cuando se aplica junto con un
anticuerpo monoclonal mientras que la patente US n.º 20030119780
describe dichos efectos para la laminarina sola. La patente US n.º
20050065114 describe los efectos antineoplásicos de análogos de la
laminarina de cadena y unos procedimientos de preparación de los
mismos. La patente US 20040127457 describe la acción antinflamatoria
de la laminarina. Todas estas aplicaciones se basan en las
propiedades inmunoestimulantes de la laminarina para su acción.
Turner et al., 2002, descubrieron una
pequeña mejora en el rendimiento del crecimiento y la ausencia de
respuesta inmunitaria en los cerdos alimentados con extracto de
Ascophyllum nodosum. Sin embargo no mencionan la naturaleza
del extracto (ácido o alcalino) o la composición del extracto. De
este modo, resulta difícil especular qué componentes del extracto
eran los responsables de los resultados. Tal como se indica en otros
sitios del presente documento, el procedimiento de extracción
resulta muy importante en la composición del extracto
resultante.
Ninguna de las composiciones de las técnicas
anteriores describen la utilización de
\beta-glucanos o de
\alpha-fucanos, por separado o combinados, para
mejorar la absorción de minerales y micronutrientes. Además,
ninguno de los anteriores hacen referencia a la utilización de los
\beta (1,3) (1,6) glucanos o \alpha-fucanos,
por separado o juntos como prebióticos en los mamíferos, como medios
para reducir el riesgo de infección E. coli y
Salmonella (en particular en cerdos que han terminado la
lactancia) y como medios para mejorar la digestibilidad de los
nutrientes ileal y aparente. Tampoco hacen referencia alguna a las
ventajas de los \beta-glucanos y los
\alpha-fucanos, en particular aquellos obtenidos a
partir de las algas marinas, como medios para mejorar el
rendimiento de los cerdos y actuar como sustitutos de los
antibióticos ingeridos en los cerdos.
Existen diversos informes publicados de
procedimientos para obtener extractos de algas marinas. Por ejemplo,
el documento GB 727013 da a conocer un procedimiento para extraer
laminarina, manitol, y ácido algínico a partir de diversos tipos de
algas marinas. Mabeau et al., 1987, hacen referencia a un
procedimiento de extracción de polisacáridos a partir de las algas
marinas, especialmente fucanos tales como el fucoidano. S. Colliec
et al., 1994, proporcionan asimismo un procedimiento para
extraer fucoidano en bruto a partir de las algas marinas mediante
un tratamiento ácido. Zvyagintseva et al., 1999, describen un
procedimiento para obtener polisacáridos hidrosolubles a partir de
algas marinas utilizando cromatografía hidrófoba. Sin embargo, la
mayor parte de dichos procedimientos resultan demasiado costosos
para realizarlos a escala comercial (por ejemplo, los
procedimientos que implican la cromatografía) o presentan unos
rendimientos que son poco rentables a gran escala.
Por lo tanto, existe también la necesidad de una
composición prebiótica que se pueda extraer de un modo económico y
que resulte biológicamente activa como prebiótico en los seres
humanos o en los animales. Existe asimismo la necesidad de una
composición periódica con unos niveles elevados de \beta-(1,3)
(1,6)-glucano y/o \alpha-fucanos,
y de un procedimiento para obtener la misma.
Constituye un objetivo de la presente invención
proporcionar una nueva composición que pueda actuar como complemento
alimentario prebiótico y mejorar la salud intestinal de los seres
humanos y de los animales. Un objetivo adicional consiste en la
extracción de nuevas composiciones que se puedan utilizar como
complementos alimentarios a partir el grupo que consiste en las
algas marinas, la cebada, las levaduras, la avena, las setas, y
otros hongos/microbios.
Constituye un objetivo adicional de la presente
invención el hecho de que el complemento alimentario proporcione
unos medios de regulación de la microflora intestinal para ayudar al
crecimiento de los microbios beneficiosos; y/o unos medios de
acidificación del intestino que provocan una mejora de la salud
intestinal y/o una reducción del crecimiento de las bacterias
patógenas (en particular en los cerdos pequeños). Otros aspectos de
la presente invención se refieren a una mejora de la absorción de
minerales del intestino posterior así como una mejora del
rendimiento de los animales. Los aspectos de la presente invención
resultan particularmente útiles para mejorar la cría del ganado
porcino, del ganado bovino y de las aves de corral.
Otros objetivos de la presente invención se
refieren al efecto beneficioso de los
\beta-glucanos y/o de los
\alpha-fucanos obtenidos a partir de materiales
naturales y a su potencial como sustitutos de los antibióticos
ingeridos.
Constituye asimismo un objetivo de la presente
intención proporcionar prebióticos humanos y nuevas composiciones
para seres humanos destinadas a aumentar los niveles de bacterias
beneficiosas en el intestino humano. La presente invención
proporciona asimismo un simbiótico (que consiste en un prebiótico
junto con un probiótico) que se administra a los seres humanos para
restablecer las bacterias beneficiosas y estimular su crecimiento
en el intestino.
Constituye asimismo un objetivo de la presente
invención proporcionar un nuevo procedimiento de extracción para
obtener un complemento alimentario prebiótico obtenido a partir de
algas marinas de un modo económico que se pueda realizar fácilmente
a gran escala. Constituye asimismo un objetivo proporcionar un
método de obtención de dicha composición que consiste en una nueva
etapa de nanofiltración.
Los presentes inventores han descubierto que una
composición particular, que consiste en una proporción elevada de
\beta-glucanos y de
\alpha-fucanos, puede actuar como antibiótico, en
particular en mamíferos jóvenes (reduciendo el riesgo de
infecciones por E. coli y Salmonella) y mejorar el
rendimiento de los animales. Dicha composición actúa asimismo como
prebiótico en los seres humanos y en otros mamíferos grandes y
estimula selectivamente el crecimiento de los microbios
beneficiosos. Asimismo, mejorar la absorción de los minerales en el
intestino posterior y aumenta la digestibilidad de los nutrientes.
Ello significa una gran mejora con respecto a las técnicas
anteriores, ya que actualmente no existe una composición simple que
permita alcanzar simultáneamente todos estos objetivos.
En un aspecto, la presente invención se refiere
a una composición que comprende por lo menos aproximadamente un 8%
en peso de \beta-glucanos o por lo menos
aproximadamente un 8% de \alpha-fucanos o una
mezcla de los mismos. Preferentemente, los
\beta-glucanos se encuentran presentes en una
cantidad comprendida entre aproximadamente el 8% y aproximadamente
el 30% en peso. De un modo ideal, para algunas aplicaciones, los
\beta-glucanos comprenden \beta-(1,3)
(1,6)-glucanos. Ventajosamente, éstos se obtienen a
partir de algas marinas y/o de levaduras. En las formas de
realización preferidas de la presente invención el
\beta-glucano presente es la laminarina, aunque
la presente intención prevé \beta-glucanos
alternativos tales como el escleorglucano y el PSAT. La laminarina
es el polisacárido de reserva de la Laminaria y otras algas
pardas; está constituido principalmente de
\beta-(1-3)-glucano con algunos
enlaces \beta-(1-6). Otras fuentes de
\beta-glucanos comprenden extracto de levaduras,
setas, cebada y avena.
Preferentemente, los
\alpha-fucanos se encuentran presentes en una
cantidad comprendida entre aproximadamente el 8% y aproximadamente
el 30% en peso. La presente inversión prevé la utilización de
diversos \alpha-fucanos y, en particular, los
fucanos presentes en muchas plantas marinas (tales como las algas
marinas) y vegetales marinos, tales como en las paredes del cuerpo
de las holoturias; en particular, el \alpha-fucano
presente en las paredes celulares de las algas marinas pardas, y en
el revestimiento gelatinoso de las huevas de los erizos de mar. De
un modo ideal, la presente invención utiliza el fucoidano, el
\alpha-fucano presente en las algas marinas
pardas.
Preferentemente, la composición contiene una
proporción elevada de \beta-glucanos y/o
\alpha-fucanos y minerales naturales, y una
proporción correspondientemente reducida de alginato y polifenoles.
En algunos aspectos preferidos de la presente invención, la
composición prebiótica comprende una mezcla de por lo menos
aproximadamente el 8% en eso de \beta-glucanos y
por lo menos aproximadamente el 8% de
\alpha-fucanos. Preferentemente, la composición
comprende entre aproximadamente el 8% y el 30% de
\beta-glucanos y entre aproximadamente el 8% y el
30% de \alpha-fucanos. La cantidad combinada de
\beta-glucanos y \alpha-fucanos
puede llegar hasta aproximadamente el 60% (p/p) de dicha
composición; preferentemente los \beta-glucanos
y/o los \alpha-fucanos se encuentran en una
cantidad combinada comprendida entre aproximadamente el 20% y
aproximadamente el 30% de la composición. Algunas formas de
realización de la presente invención pueden proporcionar unas
proporciones distintas en función de la utilización pretendida, por
ejemplo, algunas formas de realización puede proporcionar una mayor
proporción de \alpha-fucano para proporcionar un
mayor éxito como sustituto antibiótico. Otras aplicaciones de
proporciones no equivalentes resultan fácilmente evidentes para los
expertos en la materia, tomando en consideración las calidades
relativas distintas de los \beta-glucanos y los
\alpha-fucanos y la utilización pretendida de los
mismos.
Las composiciones de la presente invención
pueden comprender además manitol. Aunque no se pretenda
circunscribirse a la teoría, se considera que el manitol, cuando se
utiliza junto con uno o más de entre los
\beta-glucanos y los
\alpha-fucanos, proporciona un efecto cooperativo
aumentando la eficacia global; debido en parte a que el manitol
aumenta la dulzura del complemento alimentario o a que el manitol
interviene en la translocación de minerales y/u oligoelementos en
el tracto digestivo debido a su tamaño molecular más reducido.
Preferentemente, el manitol se encuentra presente en una cantidad
comprendida entre aproximadamente el 5% y aproximadamente el 25%
(p/p) de la composición. Además, se puede proporcionar asimismo
lactosa (pura o en forma sérica) con las composiciones de la
presente invención. Preferentemente, la lactosa se encuentra
presente en una cantidad comprendida entre aproximadamente el 5% y
aproximadamente el 30% (p/p) de la composición. La composición puede
comprender asimismo minerales y oligoelementos. Los niveles de
minerales pueden estar comprendidos entre el 5 y el 40% en función
de la aplicación. Ventajosamente, las composiciones de la presente
intención se pueden utilizar junto con el pienso animal. De un modo
ideal, las composiciones de la presente invención se pueden
utilizar con el pienso animal en una cantidad comprendida entre
aproximadamente el 0,1 y aproximadamente el 10% en peso. En unas
formas de realización alternativas, el pienso animal puede
comprender asimismo hasta un 30% de lactosa. La lactosa puede
actuar sinérgicamente con los otros componentes de la
composición.
En unas formas de realización preferidas, los
\beta-glucanos y/o
\alpha-fucanos se obtienen a partir de materiales
naturales tales como las algas marinas, la cebada, las setas, la
avena, las levaduras y otras fuentes microbianas. Las algas marinas
pueden ser una o más seleccionadas de entre el grupo que consiste en
las Laminariaceae, Fucacea, Gigartinaceae,
Ascophyllum, Laminaria, Durvillea,
Macrocystis, Chondrus y Ecklonia. Resulta
particularmente referida la Laminaria y/o el
Ascophyllum. Los \beta-glucanos y/o los
\alpha-fucanos se pueden obtener a partir de más
de una fuente. Otros componentes de la presente invención se pueden
obtener a partir de las mismas fuentes o de alternativas.
\vskip1.000000\baselineskip
La composición se puede proporcionar en forma
pulverulenta. El contenido sólido total puede ser superior a
aproximadamente el 90% del peso total. A continuación se muestran
unos ejemplos de intervalos ideales en peso de algunos de los
constituyentes habituales de la composición:
el contenido total en cenizas puede ser inferior
a aproximadamente el 40%;
el contenido total en proteínas se puede
encontrar comprendido entre aproximadamente el 3 y aproximadamente
7%;
el contenido total en líquidos puede ser
aproximadamente del 4%;
el contenido total en hidratos de carbono puede
ser aproximadamente del 50%;
el contenido de glúcidos reductores se puede
encontrar comprendido entre aproximadamente el 1 y aproximadamente
5%;
la concentración total de
\beta-glucanos y/o
\alpha-fucanos se puede encontrar comprendida
entre aproximadamente el 20% y aproximadamente el 25%;
el contenido en fibra insoluble (no dietética)
se puede encontrar comprendida entre aproximadamente el 2 y
aproximadamente el 6%;
el contenido en metilpentosano se puede
encontrar comprendido entre aproximadamente el 2 y aproximadamente
el 6%;
el contenido total en fenoles puede ser inferior
a aproximadamente el 5%, y de un modo ideal inferior al 2%;
el contenido total de antioxidantes
(comprendiendo BHA, BHT, etoxiquina, vitamina C, tocoferoles) puede
alcanzar aproximadamente el 5%,
el contenido total de alginato puede ser
inferior a aproximadamente del 5% y de un modo ideal inferior a
aproximadamente el 2%.
\vskip1.000000\baselineskip
La composición puede comprender asimismo
pequeñas cantidades (inferiores a aproximadamente 500 ppm) de
hormonas vegetales tales como fitocininas, auxinas, giberelina y
betaínas. La composición prebiótica puede comprender asimismo una
cantidad apropiada de un conservante de calidad alimentaria con un
pH reducido, tal como el benzoato sódico, aunque resulta apta una
gran variedad de conservantes alimentarios.
En unas formas de realización alternativas de la
presente invención, la composición prebiótica se puede proporcionar
en forma líquida de tal modo que contenga entre aproximadamente el
10 y aproximadamente el 50% (p/p) del polvo tal como se ha descrito
anteriormente. A continuación el extracto líquido se puede
deshidratar por aspersión para obtener un extracto en forma
pulverulenta, que puede presentar, por ejemplo, un color crema.
La presente invención se puede proporcionar
asimismo en forma de una composición de pienso animal que comprenda
el pienso para animales y la composición prebiótica de la presente
invención, encontrándose dicha composición presente entre
aproximadamente el 0,001 y el 10% en peso, siendo dicha cantidad
suficiente para efectuar la acción prebiótica y la acción reductora
del pH en un animal, y que se administra por vía oral como parte de
dicha composición de pienso para animales. Las composiciones de
pienso para animales y/o las composiciones prebióticas de la
presente invención se pueden administrar por separado a los animales
o junto con un excipiente seleccionado de entre un grupo que
consiste en, pero sin limitarse a los mismos, agua, aceite, leche y
mezclas de los mismos.
La composición prebiótica se puede mezclar junto
con uno o más cultivos probióticos, ventajosamente en forma de
comprimido o de cápsula. Algunas formas de realización pueden
contener un 10% o más de cultivo probiótico, mientras que en otras
formas de realización, la proporción entre el prebiótico y el
cultivo probiótico es de 1:3. Una amplia gama de cultivos
probióticos resulta apta para utilizar en las diversas formas de
realización de la presente invención, tales como Bifidobacteria
Lactobacilli, leichmannii, L. plantarum, L.
cellobiosius, B. adolescentis y/o L. acidophilus.
En las formas de realización preferidas el cultivo probiótico es de
Lactobacilli o de Bifidobacteria.
La presente invención proporciona asimismo una
preparación farmacéutica que comprende un excipiente farmacéutico
apropiado y una o más composiciones de la presente invención.
La presente invención se refiere asimismo a un
procedimiento para obtener dicha composición a partir de algas
marinas que consiste en una nueva etapa de extracción ácida
combinada con una etapa de nanofiltración. Los presentes inventores
han descubierto que sometiendo el extracto ácido de una alga marina
tal como la laminaria spp a una etapa de nanofiltración
tiene como resultado una separación clara de las sales,
produciéndose un líquido de color verde claro que se puede secar
para formar un polvo de color crema que resulta ideal para los
propósitos de la presente invención. El líquido se puede utilizar
asimismo por separado. Dicha etapa adicional en la que se combina
una etapa de extracción ácida con una etapa de nanofiltración es
nueva. Un aspecto adicional de la presente invención es un
procedimiento para la extracción de
\beta-glucanos, \alpha-fucanos y
manitol a partir de las algas marinas. Las algas marinas pueden ser
de especies distintas, por ejemplo: Ascophyllum nodosum,
Fucus, Laminarin digitata, Laminaria
saccharina, Laminaria hyperborea.
La presente invención proporciona un
procedimiento para obtener una composición a partir de algas marinas
que comprende;
(i) Mantener la temperatura de una disolución de
algas marinas a una temperatura comprendida entre aproximadamente
50ºC y aproximadamente 80ºC;
(ii) Mantener el pH de la disolución a un pH
ácido;
(iii) Decantar la disolución;
(iv) Depurar la disolución;
para obtener un extracto de algas marinas
claro.
En lo que se refiere al procedimiento, muchos
investigadores de la especialidad se han centrado en la extracción
de \beta-(1,3) (1,6) glucanos en su estado conformacional natural
como si ello resultara necesario para que los mismos presentaran su
actividad inmunitaria. Se ha demostrado que los
\beta-glucanos de las levaduras ejercen efectos
inmunitarios en los seres humanos y en los animales y la mayor parte
de patentes sobre el tema se han centrado en la extracción de
dichos glucanos, habitualmente en forma de micropartículas,
solubilizándose a continuación los mismos para convertirlos en
seguros para una administración intravenosa. Se alcanza la
hidrosolubilidad tanto mediante la escisión de la forma de glucanos
con micropartículas grandes en moléculas más pequeñas utilizando
procedimientos tales como una digestión enzimática o unos ajustes
potentes del pH, o mediante la formación de complejos con sales
tales como aminas (US n.º 4.761.042), sulfatos y fosfatos (US n.º
4.739.046). La principal ventaja de una forma hidrosoluble más
pequeña con respecto a la forma en micropartículas más grandes es
que resulta más segura cuando se administra por vías parenterales,
tales como la intravenosa. Asimismo, resulta más probable que las
moléculas con un tamaño inferior se encuentren más biodisponibles
desde un punto de vista molar.
En diversas publicaciones se describe un
procedimiento de extracción de glucanos activos desde un punto de
vista inmunológico que comprenden Freimund et al., (2003) que
utilizan un procedimiento enzimático para la extracción de
\beta-glucanos solubles puros y Muller et
al., (1997), que han estudiado la influencia de diversos ácidos
próticos utilizados en la extracción sobre la integridad y la
actividad biológica de los glucanos extraídos. De un modo similar,
los documentos US n.º 5.633.369 y US n.º 5.705.184, US n.º
2004008253, US n.º 20020143174 (glucanos con un peso molecular muy
elevado) y US n.º 20020032170 describen un procedimiento para
producir glucanos solubles con una actividad biológica directa
obtenidos a partir de levaduras. Un subconjunto de cualquiera de
dichos procedimientos se puede utilizar para realizar, por ejemplo,
los \beta-(1,3) (1,6) glucanos a partir de levaduras para algunos
aspectos ventajosos de la presente invención. En la presente
invención, no resulta esencial separar las manoproteínas y los
lípidos de la pared celular, ya que realizan unos efectos
biológicos beneficiosos propios cuando se aplican a los
animales.
La presente invención supone una mejora
significativa con respecto a los desarrollos dados a conocer en las
técnicas anteriores. Se sabe que los procedimientos de extracción
ácida conocidos, por ejemplo el documento GB 727.013, resultan de
algún modo costosos y obtienen un rendimiento en nutrientes
relativamente bajo. Principalmente por dicho motivo, la tendencia
ha sido utilizar un procedimiento de extracción alcalino ya que con
el mismo se obtienen unos rendimientos superiores en nutrientes que
con los procedimientos de extracción ácida conocidos anteriormente.
Sin embargo, las investigaciones han demostrado que, de un modo
sorprendente, la utilización de extractos de algas marinas
extraídos de un modo alcalino tienen como resultado una tendencia a
reducir el incremento de peso en los animales analizados (Pierce,
A, 2002).
Por lo tanto, existe la necesidad de un
procedimiento de extracción ácida que se pueda realizar de un modo
económico a gran escala y que proporcione unos rendimientos que lo
conviertan en viable comercialmente. El procedimiento anterior es
un procedimiento de extracción de este tipo y se puede utilizar para
producir la composición a gran escala.
Gore Vivian et al. en los documentos US
n.º 6.342.242, US n.º 6.432.443, US n.º 6.338.856, US n.º 6.312.709,
US n.º 6.270.812, US n.º 6.383.538, US n.º 6.391.331 y US n.º
20030003134 y US n.º 20020022049 se refieren a la utilización de
extracto de algas marinas procedente de Ascophyllum nodosum y
harina en la dieta animal. Se descubrió que las algas marinas
potencian la respuesta inmunitaria en los mamíferos y las aves de
corral, reducen el contenido de E. coli en el ganado vacuno
y aumentan el tiempo de conservación de los cuerpos de los animales
muertos. Dichos documentos describen un extracto de algas marinas
obtenido mediante hidrólisis alcalina. El procedimiento alcalino de
extracción proporciona una proporción superior de nutrientes
totales, aunque una proporción inferior de
\beta-glucanos, no superior al 8% y habitualmente
comprendida entre el 6% y el 7,5%, y de
\alpha-fucanos, habitualmente comprendida entre 6%
y el 8%, aunque los rendimientos de hasta el 9% son potencialmente
posibles. Los extractos alcalinos comprenderán habitualmente un 25%
de alginato y un 7% de polifenoles. Los procedimientos de
extracción ácida de la presente invención producen una cantidad de
alginatos y polifenoles un 80% inferior que en el caso de las
extracciones alcalinas normales, por ejemplo, produciendo hasta
aproximadamente el 5% de alginatos y hasta aproximadamente entre un
1 y un 2% de polifenoles. En cambio, la presente invención
proporciona unos componentes particulares del extracto de algas
marinas (\alpha-fucanos y/o
\beta-glucanos), obtenidos a partir de unos nuevos
procedimientos de extracción que resultan beneficiosos para la
salud de los animales y de los seres humanos. Además, el modo de
acción que se formula en dichos documentos, es decir, mediante la
estimulación del sistema inmunitario es bastante distinto del modo
de acción de nuestra composición, que actúa como prebiótico en los
mamíferos mayores y como antibiótico en los mamíferos jóvenes.
Los presentes inventores han descubierto
sorprendentemente que la presente invención proporciona unas
composiciones y procedimientos con varios usos. Las composiciones
de la presente invención pueden actuar como prebiótico, es decir,
actuar selectivamente como sustrato para, y estimular el crecimiento
de microbios beneficiosos tales como las bifidobacteria en
los mamíferos mayores. En particular, las composiciones que
comprenden \beta-(1,3)(1,6) glucanos, (por ejemplo, las obtenidas
a partir de levaduras o de algas marinas) son adecuadas con
composiciones que comprenden \beta-(1,3)(1,6) glucanos obtenidos
a partir de algas marinas, siendo particularmente ventajosas. Dicho
efecto se ve aumentado cuando los glucanos se administran junto con
fucoidano y manitol.
Las bacterias beneficiosas, mediante la
exclusión competitiva y mediante la secreción de metabolitos
específicos (bacteriocinas), disminuyen el crecimiento de bacterias
perjudiciales tales como E. coli y Salmonella. Por lo
tanto, la presente invención proporciona unos procedimientos para
reducir el crecimiento de las bacterias perjudiciales en los
intestinos de los mamíferos. La composición ejerce asimismo una
acción antibiótica directa en los mamíferos jóvenes, cuyos aparatos
digestivos pueden no estar desarrollados para descomponer los
constituyentes en una forma prebiótica. De este modo, la
composición actúa como sustituto excelente de los antibióticos
ingeridos y aumenta el rendimiento de los animales para alcanzar e
incluso superar los efectos de dichos antibióticos.
Las composiciones de la presente invención
proporcionan asimismo unos medios de acidificación del intestino
grueso que resultan beneficiosos para los animales y para la
eficiencia de la ganadería en ausencia de activadores del
crecimiento de antibióticos ingeridos. Esta disminución del pH
reduce el crecimiento de microbios perjudiciales tales como la
E. coli y aumenta la acción prebiótica de dichos hidratos de
carbono. Las composiciones de la presente invención se pueden
utilizar como sustitutos de los antibióticos ingeridos.
Otro aspecto de la presente invención
proporciona un simbiótico para humanos o animales destinado a
restablecer las bacterias beneficiosas y a potenciar su crecimiento
en los intestinos.
Además, se ha descrito que uno de los
componentes de dicha composición, el fucoidano
(\alpha-fucano), tiene efectos antineoplásicos,
antitrombóticos y antivíricos en los seres humanos, además de
estimular la utilización de la composición.
La presente invención proporciona un
procedimiento para mejorar la salud intestinal de los seres humanos
o de animales que comprende el tratamiento del ser humano o animal
con una o más composiciones de la presente invención, y en
particular, los \beta-(1,3) (1,6) glucanos obtenidos a partir de
levaduras y de fuentes vegetales, fúngicas y algales.
Habitualmente, los NSP, en particular los NSP insolubles, se han
relacionado con una reducción del rendimiento y de la
digestibilidad. Ello se debe a que los elevados niveles de NSP en
la dieta aumentan el tamaño del intestino (en particular la longitud
del intestino delgado), lo que significa una demanda superior de
energía por parte del animal. Sin embargo, si las composiciones de
la presente invención se administran por separado con las dosis
recomendadas, mejoran realmente el rendimiento. En conjunto, una
composición específica de polisacáridos algales, en particular la
laminarina y el fucoidano tiene unos efectos beneficiosos en los
rendimientos porcinos tal como se puede determinar mediante las
ingestas alimentarias, el aumento diario y las proporciones de
conversión de alimentos. La presente invención proporciona la
utilización de polisacáridos algales, en particular la laminarina y
el fucoidano, en los complementos alimentarios, ya que tendrán
efectos beneficiosos en el rendimiento de los cerdos tal como se
puede determinar mediante los índices de crecimiento, el aumento
diario y las proporciones de conversión de alimentos. Dichos efectos
variarán en función de la fuente algal y de las solubilidades de
los polisacáridos resultantes.
La presente invención proporciona asimismo unos
procedimientos para mejorar la digestibilidad de los nutrientes en
animales grandes o en seres humanos que comprende administrar a los
animales o a los seres humanos las composiciones de la presente
invención. En particular, los \beta-(1,3) (1,6) glucanos obtenidos
a partir de levaduras y de fuentes vegetales, fúngicas y algales
aumentarán la digestibilidad de los nutrientes en los mamíferos.
Éstos aumentarán asimismo la absorción de minerales y de
micronutrientes por parte de los mamíferos. Ello se debe a una
estructura mejorada del intestino (una mayor área de absorción de
nutrientes), y al aumento de las bacterias productoras de ácido
láctico, en particular en los mamíferos grandes.
En conjunto, los usos de la presente invención
favorecen en líneas generales la utilización de los
\beta-glucanos obtenidos a partir de las algas
marinas, ya que éstos son más pequeños y más solubles que incluso
los \beta-glucanos obtenidos en las
levaduras.
Naturalmente, cuando las utilizaciones y los
procedimientos descritos en la presente memoria se refieren a las
composiciones de la presente invención, dichas composiciones se
refieren asimismo a preparaciones farmacéuticas y a alimentos para
el ganado.
Los aspectos de la presente invención
proporcionan asimismo la utilización de una composición que
comprende una o más composiciones de la presente invención
destinadas a unos o más de entre el grupo que consiste en: mejorar
la salud intestinal en los seres humanos o en animales, estimular el
crecimiento de bacterias beneficiosas en los intestinos de seres
humanos o de animales o, reducir los niveles de microbios
perjudiciales tales como E. coli y Salmonella en los
intestinos de animales o de seres humanos, mejorar el rendimiento de
los animales y actuar como sustitutos de antibióticos ingeridos y
mejorar la absorción de minerales y la digestibilidad de
nutrientes.
Los aspectos adicionales proporcionan la
utilización de una composición que comprende
\beta-glucanos) y/o
\alpha-fucanos en la preparación de un medicamento
destinado al tratamiento de uno o más de entre el grupo de
trastornos que consiste en las inflamaciones intestinales y las
infecciones intestinales.
La preparación farmacéutica comprende una o más
de las composiciones descritas anteriormente y un excipiente
farmacéuticamente apto. Los excipientes aptos resultan muy conocidos
en la técnica y comprenden liposomas, emulsiones, agentes
tensioactivos, aceites vegetales, aceites vegetales total o
parcialmente hidrogenados, lecitinas, fosfátidos vegetales y ceras
naturales, aceite de soja, aceite de soja total o parcialmente
hidrogenado, aceite de colza, aceite de cacahuete, lecitina de
soja, fosfátidos de soja, lecitina de berenjena y cera de abejas.
La preparación farmacéutica puede asimismo comprender además uno o
más productos seleccionados de entre el grupo que consiste en un
revestimiento entérico, L- y D-aminoácidos,
vitaminas, oligoelementos, aceites naturales, antioxidantes, sales
y disolventes.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
5000 kg de materia prima (Ascophyllum
nodosum, aunque la materia prima podría ser cualquier alga
marina seleccionada de entre el grupo mencionado anteriormente)
húmeda se lavó, se trituró hasta aproximadamente 10 mm y se volvió
a lavar. 5000 l de agua se añadieron a un recipiente de 15.000 l y
se calentaron hasta los 80ºC. se añadieron 10 l de ácido
clorhídrico al 36% y a continuación se añadió el forraje triturado.
Se ajustó la temperatura entre 75 y 80ºC mediante la adición de
vapor directo y se ajustó el pH a un pH de 4 con HCl adicional. A
continuación se agitó el recipiente durante tres horas seguido por
un enfriamiento hasta 50 grados. Tras ello se bombeó la mezcla del
recipiente hacia una prensa. Los sólidos retenidos en la prensa se
reciclaron y se repitió el procedimiento descrito anteriormente. A
continuación se depuró el líquido de la prensa, se evaporó y se
deshidrató. Se obtuvo un producto de color crema con la siguiente
composición.
1. Sólidos totales. 96,335% en peso.
2. Contenido cenizas. 33,210% en peso.
3. Contenido total en proteínas. 5,775% en
peso.
4. Contenido total en lípidos. 2,876% en
peso.
5. Fenoles totales. 37,500 mg/kg.
6. Contenido total en alginatos. < 5%
7. Contenido en laminarina. 9,850% en peso.
8. Manitol total. 4,175% en peso.
9. Contenido fucoidina. 12,936% en peso.
10. Contenido total en hidratos de carbono.
59,335% en peso.
11. Contenido total en glúcidos reductores.
3,500% en peso.
12. Contenido en fibra. 4,580% en peso.
13. Metilpentosanos. 4,775% en peso.
14. Análisis de antioxidantes
\hskip0.5cmBHA 3,558 mg/kg
\hskip0.5cmBHT 5,195 mg/kg
\hskip0.5cmEtoxiquina 1,886 mg/kg
\hskip0.5cmVitamina C 14,505 mg/kg
\hskip0.5cmTocoferoles Vitamina E 2 mg/mg/kg
15. Hormonas el crecimiento
\hskip0.5cmContenido en fitocinina. 16,500 ppm.
\hskip0.5cmContenido en auxina. 10,176 ppm.
\hskip0.5cmContenido en giberelina. 5,800 ppm.
\hskip0.5cmContenido en betaína. 26,555 ppm.
Se añadió asimismo una pequeña cantidad de
conservante, el benzoato sódico, a la composición anterior para
mantener la integridad de la composición, a la que de ahora en
adelante se denominará GutCare. GutCare es una marca
registrada.
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Ejemplo
2
Se diseñó el experimento como un factorial del 3
x 2 (3 niveles de lactosa x 2 niveles de GutCare) que consistían en
6 tratamientos dietéticos. Los tratamientos fueron tal como se
indica a continuación (T1) 65 g/kg de lactosa sin complemento, (T2)
170 g/kg de lactosa sin complemento, (T3) 275 g/kg de lactosa sin
complemento, (T4) 65 g/kg de lactosa + 5 g/kg de GutCare, (T5) 170
g/kg de lactosa + 5 g/kg de GutCare y (T6) 275 g/kg de lactosa + 5
g/kg de GutCare. Se administraron las dietas iniciales en forma de
harina durante 27 días. Las composiciones y los análisis químicos
de las dietas experimentales se representan en la Tabla 1. Se
formularon las dietas para que presentasen una energía digerible
idéntica (16 MJ/kg) y los contenidos totales en lisina (16 g/kg)
ajustando el aceite de soja y los aminoácidos sintéticos. Los
requisitos de aminoácidos se satisficieron con respecto a la lisina
(Close, 1994). Se trituraron todas las dietas in situ. Se
añadió óxido crómico (Cr_{2}O_{3}) durante la trituración de la
dieta a una concentración de 150 ppm para determinar la
digestibilidad de los nutrientes.
Se destetaron 165 lechones (descendencia de la
línea Large White X (línea materna Large White X Landrace)) a los
24 días de edad y presentaron un peso en vivo inicial de 5,90
kg. Se agruparon los lechones basándose en el peso en vivo y
dentro de cada grupo se asignaron al azar a uno de los seis
tratamientos dietéticos. Se alojaron los cerdos en rediles con
vallas completamente entablilladas (1,68 m x 1,22 m). Se realizaron
seis repeticiones/tratamiento. Las temperaturas de los alojamientos
se mantuvieron a 30ºC, durante la primera semana y posteriormente
se redujeron a una razón de 2ºC por semana. Se pesó cada cerdo al
inicio y en el día 8, el día 15, el día 21, el día 27. Se
alimentaron los cerdos a discreción y se prestó atención para evitar
posibles pérdidas. El pienso se encontraba disponible hasta el
momento del pesaje pero, tras el pesaje, todo el pienso restante en
las artesas se volvió a pesar. Durante todo el experimento se fueron
tomando muestras del pienso para su análisis químico. Se recogieron
diariamente muestras fecales recientes de cada redil desde los días
10 a 14 para determinar las digestibilidades. Se recogieron asimismo
muestras de heces de cada redil cada segunda semana para determinar
el pH fecal.
Se realizo un seguimiento detallado de los
cerdos con respecto a cualquier signo de diarrea y se utilizó un
sistema de clasificación para indicar la presencia y la intensidad
de la misma. La clasificación de las heces o se realizó en el día 0
y se continuó hasta el día 27. La clasificación de las heces
aplicada fue la siguiente: 1 = heces líquidas, 2 = heces
semilíquidas, 3 = heces blandas pero parcialmente sólidas, 4 = heces
ligeramente blandas, 5 = heces sólidas.
Se analizaron tanto los concentrados como las
heces con respecto a las concentraciones de nitrógeno, de materia
seca, de cenizas, de energía bruta, de fibra detergente neutra y de
cromo. Tras la recogida, se secaron las heces a 100ºC durante 72
horas. A continuación se trituraron los concentrados y las heces
secas mediante hasta un tamaño de tamiz de 1 mm (con una
trituradora de martillos Christy and Norris). Se realizó la
determinación de la materia seca tras proceder al secado durante la
noche (mínimo 16 horas) a 103ºC. Se realizó la determinación de las
cenizas tras la ignición de un peso conocido en un horno de mufla
(Nabertherm, Bremen, Alemania) a 550º durante 4 horas. Se determinó
la proteína bruta por él método de medición de N Kjeldahl x 6,25
utilizando tanto una unidad de destilación Buchi 323 como una
unidad de digestión Buchi 435 5 (Buchi, Flawil/Schweiz, Suiza)
según la AOAC (Asociación de Químicos Analíticos Oficiales) (1980).
Se determinaron la fibra detergente neutra y la fibra bruta
utilizando una unidad de extracción Fibertec (Tecator, Hoganans,
Suecia). Se determinó la fibra detergente neutra según Van Soest
(1976).
Se determinó la energía bruta de tanto el pienso
como de las muestras fecales utilizando un calorímetro con bomba de
oxígeno Parr 1201 (Parr, Moline, Illinois, EE.UU.). La concentración
de cromo se determinó según Williams et al. (1962).
Se analizaron los datos experimentales como un
factorial 3 x 2 utilizando el procedimiento del modelo lineal
general del Instituto de Sistema de Análisis Estadísticos (1985).
Los modelos para el análisis del rendimiento y la digestibilidad
comprendían los efectos principales del nivel de lactosa, la
composición de la presente invención o GutCare y la interacción
entre el nivel de lactosa y la composición de la presente invención
o GutCare. El peso en vivo inicial en el momento del destete
se incorporó al modelo como covariable.
Los efectos del tratamiento dietético en la MD
fecal, el pH fecal, la clasificación fecal y la digestibilidad
aparente de los nutrientes de las dietas se representan en la Tabla
2. Los cerdos a los que se administraron dietas que contenían
GutCare presentaron unas heces más duras entre los días 15 a 21 que
los cerdos a los que se administraron dietas sin GutCare. Se
produjo una interacción significativa entre el nivel de lactosa y
de GutCare por lo que respecta a las heces durante los días 15 a 21.
Los cerdos a los que se administraron dietas que contenían 275 g/kg
de lactosa con GutCare presentaron unas heces más blandas en
comparación con los cerdos a los que se administraron dietas que
contenían 275 g/kg sin GutCare. Ello se debe probablemente al
efecto de sobrecarga de un exceso de hidratos de carbono en el
intestino posterior. Los cerdos a los que se administraron dietas
que contenían GutCare presentaron unas heces más sólidas entre los
días 21 a 27 que los cerdos a los que se administraron dietas sin
GutCare. Los cerdos a los que se administraron dietas que contenían
GutCare presentaron un pH en las heces significativamente inferior
en comparación con los cerdos a los que se administraron dietas sin
GutCare. Se produjo una interacción significativa entre el nivel de
lactosa y de GutCare en las digestibilidades de la materia seca
(DMD) (P<0,01), la materia orgánica (OMD) (P<0,01), la fibra
detergente neutra (NDF) (P<0,05), el nitrógeno (P<0.001) y la
energía bruta (GE) (P<0,001). La inclusión de extracto de
GutCare a los 275 g/kg de lactosa redujo significativamente las
digestibilidades aparentes de los nutrientes de la DMD, la OMD, la
NDF, el nitrógeno y la energía bruta en comparación con los cerdos
a los que se administraron 275 g/kg de lactosa sin GutCare. Sin
embargo, la incorporación de GutCare a 65 g/kg de lactosa aumentó
significativamente las digestibilidades aparentes de la DMD, la
OMD, la NDF, el nitrógeno y la energía bruta en comparación con los
cerdos a los que se administraron 65 g/kg de lactosa sin
GutCare.
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Análisis del Ejemplo
2
Los resultados demuestran que la incorporación
de GutCare reduce los requisitos de un nivel elevado de lactosa en
las dietas sin antibióticos para lechones, y aumenta la
digestibilidad de las dietas con un bajo contenido en lactosa. Se
producen una interacción significativa entre la lactosa y el GutCare
por lo que se refiere a la digestibilidad de la DMD, la NDF, la
OMD, el nitrógeno y la GE. Los cerdos a los que se administraron
unos niveles bajos de lactosa con el GutCare presentaron unas
mejoras significativas en la digestibilidad de la DMD, la NDF, la
OMD, el nitrógeno y los digestibles del 0,02, 0,06, 0,02, 0,03 y
0,03 respectivamente en comparación con los cerdos a los que se
administraron unas dietas que contenían un nivel bajo de lactosa
sin GutCare.
Sin embargo, la incorporación de GutCare a las
dietas con un contenido elevado en lactosa tuvo como resultado un
descenso en la digestibilidad de la DMD, la NDF, la OMD, el
nitrógeno y la GE de 0,02, 0,12, 0,02, 0,05 y 0,03 respectivamente
en comparación con los cerdos a los que se administraron unas dietas
que contenían un nivel elevado lactosa sin enriquecer con GutCare.
La combinación de un nivel elevado de lactosa y el GutCare tuvo
como resultado una cantidad excesiva de hidratos de carbono que
entraban en el colon y que superaban la capacidad fermentativa del
lechón. Mul & Perry (1994) demostraron que una ingesta excesiva
de oligosacáridos podría tener como resultado una fermentación
excesiva lo que podría provocar trastornos no deseables en el
intestino grueso.
La interacción significativa entre el nivel de
lactosa y el GutCare en la consistencia fecal cuando a los cerdos
se les administraron unas dietas que contenían un nivel elevado de
lactosa enriquecida con GutCare tuvo como resultado una heces más
blandas que en los cerdos a los que se administraron unas dietas que
contenían un nivel elevado de lactosa sin enriquecer con GutCare lo
que indica dicha sobrecarga.
La incorporación del GutCare a las dietas con un
contenido bajo, medio y elevado en lactosa tuvo como resultado una
reducción significativa del pH fecal. Dicha disminución del pH se
debe al aumento en la producción de VFA en el intestino posterior
indica un efecto prebiótico del GutCare.
En definitiva, la incorporación del GutCare a
las dietas con un contenido bajo en lactosa mejoró la digestibilidad
de los nutrientes, sin embargo, la incorporación del GutCare a las
dietas con un contenido elevado en lactosa redujo la digestibilidad
de los nutrientes debido a una sobrecarga intestinal tal como se ha
descrito anteriormente. No obstante, la incorporación del GutCare
en la dieta disminuyó el pH de las heces, lo que indica un efecto
prebiótico.
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Ejemplo
3
Un procedimiento para producir la composición a
partir de algas comprende las siguientes etapas:
1) Lavar la arena y gravas del forraje húmedo,
trocear el forraje húmedo, entre aproximadamente 3 y aproximadamente
10 mm y a continuación separar la arena.
2) Extraer el forraje troceado en agua a una
temperatura que de un modo ideal se encuentra comprendida entre 70
y 80ºC durante un período comprendido entre aproximadamente 2 y 3
horas, a un pH comprendido entre aproximadamente 3,5 y
aproximadamente 4,5, preferentemente un pH de aproximadamente 4. Las
algas marinas se combinan preferentemente con agua. La temperatura
del agua se puede desplazar a, o encontrar a, una temperatura
comprendida entre aproximadamente 0ºC y aproximadamente 100ºC,
preferentemente entre aproximadamente 37ºC y 95ºC, más
preferentemente entre aproximadamente 50ºC y aproximadamente 80ºC,
prefiriéndose aproximadamente 75ºC.
El procedimiento de la presente invención se
realiza de un modo ideal a un pH comprendido entre 1 y 7, más
preferentemente a un pH comprendido entre 1 y 6, más preferentemente
a un pH comprendido entre aproximadamente 4 y aproximadamente 5 y
más preferentemente a un pH de aproximadamente 4,5. En una forma de
realización el pH de la disolución se puede ajustar a
aproximadamente un pH de 4,5 antes de la etapa de agitación. Aunque
no se pretenda limitarse a la teoría, se considera que un pH
comprendido entre aproximadamente 4 y aproximadamente 5 optimiza el
rendimiento, al mismo tiempo que disminuye los requisitos de adición
de ácidos, minimizando los efectos hidrolíticos y los perjuicios de
los mismos. De un modo ideal, el ácido utilizado se selecciona de
entre un grupo que consiste en ácidos inorgánicos tales como el
ácido clorhídrico, el ácido fosfórico y el ácido sulfúrico y ácidos
orgánicos tales como el ácido láctico, el ácido fórmico y el ácido
propiónico, o cualquier ácido inorgánico un orgánico
soluble.
soluble.
3) Se contribuye al procedimiento de extracción
mediante agitación continua. De un modo ideal, la mezcla se agita
durante un período de tiempo comprendido preferentemente entre
aproximadamente 1 y 10 horas, y más preferentemente de
aproximadamente tres horas. La agitación crea una suspensión acuosa
espesa.
4) A continuación se puede enfriar el material
procesado hasta una temperatura comprendida entre 10 y 50ºC
protegiendo de este modo los compuestos sensibles y/o haciendo que
el material sea seguro para la prensa.
5) De un modo ideal, a continuación se puede
decantar o prensar la mezcla.
6) El material insoluble se puede recoger y
volver a procesar utilizando el mismo procedimiento indicado
anteriormente.
7) El líquido junto con el residuo insoluble
pequeño se bombea hacia un equipo de depuración en el que se
retiran las fracciones insolubles restantes. Se puede depurar el
producto para proporcionar una composición líquida.
8) Se puede bombear el líquido depurado hasta un
depósito de almacenamiento (dirigido a una unidad de nanofiltración
o un evaporador) desde donde se puede bombear hacia un evaporador
para su concentración o hacia una planta de nanofiltración (NF) en
la que se retira hasta un 70% de las sales de cloro y se retira
hasta un 30% de las sales de sodio y de potasio. Dicha
desalinización contribuye a eliminar el sabor salado del producto.
La presión de funcionamiento la etapa NF se encuentra comprendida
entre 20 y 40 bar, preferentemente es de 25 bar y el tamaño de poro
de la membrana se encuentra comprendido entre 10^{-3} y 10^{-2}
\mum.
9) Si la aplicación requiere un grado elevado de
desalinización, el producto se puede procesar tanto mediante
electrodiálisis o intercambio de iones.
10) El producto concentrado, nanofiltrado o
desmineralizado se puede evaporar y se le puede añadir, si se
requiere, un conservante tal como el benzoato sódico, en forma
líquida.
11) Como forma de realización adicional para
realizar un producto evaporado de \beta-glucano y
\alpha-fucano purificados, el producto se puede
cristalizar en unos depósitos de cristalización en los que el
manitol se convierte en cristales y se retira por centrifugación.
Ello implica obtener un líquido muy concentrado, seguido por la
transferencia a los depósitos de cristalización, a continuación la
germinación, seguido por un enfriamiento durante un período y a una
temperatura predeterminados. Cuando se forman los cristales, el
producto se centrifuga en un procedimiento de separación de dos
etapas separándose los cristales para secar en un equipo de secado
de lecho fluido, obteniéndose un equilibrio del producto que
presenta un nivel elevado en \beta-glucanos y
\alpha-fucanos disponibles para deshidratar por
aspersión.
12) El producto evaporado se puede deshidratar
por aspersión. El polvo resultante presenta un color crema.
13) La solubilización de la laminarina puede
resultar necesaria si la materia prima inicial es la Laminaria
hyperborea. En este caso, el producto, tras su depuración, se
somete a una modificación del pH mediante el procedimiento descrito
para los glucanos de las levaduras en la patente US n.º
20040082539.
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Ejemplo
4
El experimento se dispuso como un factorial de 4
x 3 (4 niveles de GutCare y 3 niveles de lactosa), durante cuatro
recorridos consecutivos. Se seleccionaron 384 lechones (descendencia
de la línea Large White X (línea materna Large White X Landrace))
tras del destete a los 21 días con un peso en vivo inicial de
7,43 kg. Los cerdos de los recorridos 1, 2, 3 y 4 presentaron un
peso en vivo inicial de 7,88 kg, 7,57 kg, 6,56 kg y 7,72 kg,
respectivamente. Se agruparon los cerdos basándose en el peso en
vivo y en cada grupo se asignaron a uno de doce tratamientos
dietéticos. Los tratamientos dietéticos consistían en (T1) 24,3 g/kg
de lactosa con 0 g/kg de GutCare, (T2) 24,3 g/kg de lactosa con 3
g/kg de GutCare, (T3) 24,3 g/kg de lactosa con 6 g/kg de GutCare,
(T4) 24,3 g/kg de lactosa con 12 g/kg de GutCare, (T5) 15,3 g/kg de
lactosa con 0 g/kg de GutCare, (T6) 15,3 g/kg de lactosa con 3 g/kg
de GutCare, (T7) 15,3 g/kg de lactosa con 6 g/kg de GutCare, (T8)
15,3 g/kg de lactosa con 12 g/kg de GutCare, (T9) 6,3 g/kg de
lactosa con 0 g/kg de GutCare, (T10) 6,3 g/kg de lactosa con 3 g/kg
de GutCare, (T11) 6,3 g/kg de lactosa con 6 g/kg de GutCare, (T12)
6,3 g/kg de lactosa con 12 g/kg de GutCare. Se trituraron las
dietas iniciales in situ y se administraron en forma de
harina durante 21 días tras el destete. Se formularon las dietas
tal como se describe en el Ejemplo 2 excepto en lo que se refiere
al óxido de cromo cuya concentración era de 200 ppm. La composición
del ingrediente y el análisis químico de los tratamientos
dietéticos se presentan en la Tabla 3. La composición de la presente
invención utilizada en este ejemplo se trataba de una muestra
líquida con un 33% de sólidos.
Se alojaron los cerdos en grupos de cuatro (ocho
repeticiones por tratamientos) Tal como se describe en el Ejemplo
2. Se pesaron los cerdos en el inicio y en los días 7, 14 y 21. Se
recogieron muestras fecales recientes una vez cada día de todos los
rediles en los días 10 a 15.
Los datos experimentales se analizaron como un
factorial de 4 x 3 tal como se describe en el Ejemplo 2.
Los efectos del nivel de lactosa y la
concentración de GutCare en el aumento diario medio (ADG), la
ingesta alimentaria y la proporción de conversión alimentaria (FCR)
se representan en la Tabla 4. Se produjo una interacción
significativa entre la lactosa y el GutCare (P<0,05) en el
aumento diario medio (ADG) entre los días 0 y 7. Se administraron a
los cerdos unas dietas que no contenían un complemento de GutCare y
unos niveles bajos de lactosa provocaron unos ADG inferiores a los
de los cerdos a los que se administraron unas dietas que contenían
GutCare y un nivel elevado de lactosa. Se produjo una interacción
significativa entre la lactosa y el GutCare en el ADG del período
global de crecimiento (días 0 a 21). Los cerdos a los que se
administraron unas dietas que contenían GutCare y unos niveles
bajos de lactosa presentaron unos ADG inferiores a los cerdos a los
que se administraron unas dietas que contenían GutCare y un nivel
elevado de lactosa. El GutCare presentó asimismo un efecto lineal
independiente significativo sobre el aumento diario (P<0,01) y
supuso una mejora en el aumento diario, con todos los niveles de
lactosa.
Se produjo una interacción significativa entre
la lactosa y el GutCare (P<0,05) durante el período inicial
(días 0 a 7) sobre la ingesta alimentaria diaria media (ADFI). Los
cerdos a los que se administraron unas dietas con un nivel elevado
de lactosa y 3 g/kg de GutCare presentaron una ADFI global superior.
La incorporación de 6 g/kg y de 12 g/kg de GutCare a los niveles
elevados de lactosa disminuyó la ADFI. Sin embargo, los cerdos a
los que administraron unos niveles medios de lactosa y 12 g/kg de
GutCare y los cerdos a los que se administraron unas dietas con un
nivel bajo de lactosa y 6 g/kg de GutCare presentaron unas ADFl
superiores a los cerdos a los que se administraron los mismos
niveles de lactosa pero sin GutCare.
Se produjo asimismo un incremento lineal de la
ADFI, (P<0,05) ya que el nivel de GutCare aumentó entre los días
7 y 14 y de nuevo entre los días 14 a 21. Se produjo un incremento
lineal tanto del nivel de lactosa (P<0,05) como del complemento
de GutCare (P<0,05) en la ADFI durante el período inicial global
(0 a 21) ya que aumento del nivel de ambos.
Se produjo una interacción significativa entre
la lactosa y el GutCare (P<0,05) en la proporción de conversión
alimentaria (FCR) durante los días 0 a 7. Se produjo una mejora de
la FCR ya que el nivel de GutCare aumentó tanto con un nivel medio
como con un nivel bajo de lactosa. Sin embargo, con unos niveles
medios de lactosa se produjo una mejora de la FCR de hasta 6 g/kg
de GutCare aunque a continuación se produjo un deterioro. Se
produjo un descenso lineal (P<0,05) de la FCR, representativo de
una mayor eficiencia alimentaria, durante el período inicial global
(días 0 a 21) y a que aumentó del nivel de GutCare. Probablemente se
trató de una tendencia de una interacción significativa de la
lactosa por parte del GutCare (P<0,09) durante los días 0 a 21.
El GutCare total mejoró la proporción de conversión alimentaria en
la mayor parte de las dietas. Además, el GutCare tuvo como
resultado asimismo unas heces más sólidas, en particular durante los
días 0 a 7, tal como se representa en la Tabla 9.
Se produjo asimismo una tendencia numérica (p =
0,13) de un descenso del pH fecal con la adición de GutCare a unos
niveles bajos de lactosa, lo que indica un efecto prebiótico.
Los experimentos anteriores demuestran las
ventajas del GutCare en el rendimiento animal en ausencia de
antibióticos ingeridos. El efecto es tan potente como el efecto de
los antibióticos que la formulación pretende sustituir. Se produce
una mejora en el aumento diario, la ingesta así como en la
proporción de conversión alimentaria, que constituyen los
parámetros clave del rendimiento. La composición interactúa con la
lactosa, algo que era de esperar, ya que ambos consisten
principalmente en hidratos de carbono, y al considerar que un exceso
de los dos podría tener como resultado un efecto de sobrecarga en
el aparato digestivo. Esto se analiza con un mayor detalle en el
Ejemplo 2. GutCare funciona mejor con unos niveles bajos y medios de
lactosa, proporcionando unos medios efectivos para reducir el nivel
de lactosa (un componente caro) necesario en las dietas de los
animales. Las heces más duras que se observaron en los días 0 a 7
son representativas de una reducción del estregamiento, lo que
constituye un parámetro clave para la salud de los lechones, que
resultan especialmente susceptibles de padecer
diarrea.
diarrea.
\vskip1.000000\baselineskip
Experimento
5
Se diseñó el experimento como un factorial de 2
x 1. Se seleccionaron diez lechones de 24 días de edad (descendencia
de la línea Large White X (línea materna Large White X Landrace))
que procedían de cuatro cerdas muy emparentadas. Los lechones
presentaron un peso en el destete de 7,8 (d.t. 0,83) kg. Se
agruparon basándose en la camada, el peso y el sexo, y en cada
grupo se asignaron al azar a uno de dos tratamientos dietéticos. Los
tratamientos dietéticos fueron los siguientes: T1) dieta estándar;
T2) dieta estándar + 1.8 g/kg de GutCare. Se formularon las dietas
tal como se describe en el Experimento 2.
Se alojaron los cerdos por separado tal como se
describe en el Experimento 2.
El efecto del GutCare en las poblaciones
microbianas seleccionadas del ciego y del colon se representa en la
Tabla 5. El GutCare tuvo un efecto significativo sobre las
poblaciones microbianas del ciego con una disminución de las
poblaciones de E. coli (P<0,01), Bifidobacteria
(P<0.05) y Lactobacilli (P< 0,05). El GutCare tuvo un
efecto significativo en la población de E. coli (P<0,01) y
la población de Lactobacilli (P<0,001) del colon, provocando un
descenso.
La composición desempeñó una marcada acción
antimicrobiana, similar a la de los antibióticos ingeridos en los
lechones. Ello resulta ventajoso desde el punto de vista del
rendimiento, ya que una carga microbiana inferior tendrá como
resultado un menor coste energético para el cerdo. Asimismo, la
eliminación de bacterias nocivas tales como E. coli
contribuye al control del índice de enfermedades entre los
lechones.
Tal como se ha mencionado anteriormente, la
composición desempeña un papel similar al de los antibióticos en
los lechones, actuando como sustituto de los mismos. Este
comportamiento es distinto al comportamiento que se produce en los
cerdos adultos en los que la formulación desempeña más de un papel
prebiótico. El motivo de dicha diferencia podría ser la incapacidad
de los lechones para descomponer algunos de los componentes de la
composición en una forma en la que actúen como prebióticos. Ello
concuerda con los objetivos de la formulación de actuar como
sustituto de los antibióticos en los lechones.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
6
Se diseñó el experimento como un estudio
totalmente aleatorizado que comprendía cinco tratamientos
dietéticos. Se formularon todas las dietas para que presentasen
unas concentraciones idénticas de energía neta (9,8 MJ/kg) y de
lisina total (10,0 g/kg). Los requisitos de aminoácidos se
alcanzaron con respecto a la lisina (Close, 1994). Se administraron
todas las dietas en forma de harina. El GutCare fue suministrado por
BioAtlantis Ltd. (Kerry Technology Park, Tralee, Irlanda). La
composición dietética y los análisis se presentan en la Tabla 6.
Los tratamientos experimentales fueron los
siguientes:
(1) 0 g/kg de GutCare (control)
(2) 0,7 g/kg de GutCare
(3) 1,4 g/kg de GutCare
(4) 2,8 g/kg de GutCare,
(5) 5,6 g/kg de GutCare
Se utilizaron en este experimento dieciséis
verracos (descendencia de la línea de verracos Meat x (línea materna
Large White X Landrace)) con un peso inicial en vivo de 51
kg (d.t. = 3,4 kg). Se agruparon los cerdos basándose en el peso
en vivo y se alojaron al azar con uno de los cinco
tratamientos dietéticos. Se dejaron los cerdos en un período de
adaptación dietética de 14 días. A continuación se pesaron y se
trasladaron a jaulas metabólicas individuales. Se dejaron a los
cerdos 5 días adicionales de adaptación a las jaulas metabólicas
antes de iniciar las recogidas. Se subdividió el período de
recogida en dos partes a fin de facilitar el análisis de la
digestibilidad aparente (días 3 a 7). La ración alimentaria diaria
(ingesta DE = 3,44 x (peso en vivo) 0,54 (Close, 1994) se
dividió en dos sesiones de alimentación. Se proporcionó agua con las
comidas en una proporción de 1:1 ratio. Entre las comidas, se
proporcionó agua potable a discreción. Las jaulas metabólicas se
dispusieron en recintos con un ambiente controlado, que se
mantenían a una temperatura constante de 22ºC (\pm 1.5ºC).
Durante las recogidas, se recogió la orina en un
recipiente de plástico, mediante un embudo dispuesto debajo de la
jaula, que contenía 20 ml de ácido sulfúrico (H_{2}SO_{4} al
25%). Se registró diariamente el volumen de orina y se recogió una
muestra de 50 ml y se congeló para su análisis en el laboratorio. Se
registró diariamente el peso total de las heces y se secaron al
horno ha 100ºC. Al final del período de recogida, se agruparon las
muestras fecales y se conservó una submuestra para su análisis en el
laboratorio. Se recogieron muestras de pienso cada día y se
conservaron para su análisis químico.
Todos los animales permanecieron con sus
tratamientos dietéticos respectivos hasta que se sacrificaron. Se
retiraron asépticamente muestras digeridas (aproximadamente 10 g
\pm 1 g) del colon de cada animal inmediatamente después de
sacrificarlo, se almacenaron en recipientes estériles (Sarstedt,
Wexford, Irlanda) con hielo y se transportaron al laboratorio antes
de 7 h. Se aislaron Bifidobacteria spp. y E. coli, y
se procedió al recuento según el procedimiento descrito por
O'Connell et al., (2005). Se eligió la Bifidobacteria
spp. debido a su efecto positivo en la salud intestinal mientras
que la especie E. coli se erigió debido a su efecto negativo
en la salud intestinal (De Lange, 2000).
Los análisis inmediatos de las dietas en
relación con la materia seca (DM) y con las cenizas se realizó según
la Asociación de Químicos Analíticos, (1980). La materia seca de
pienso se determinó tras secar durante la noche a 103ºC. Se
determinaron las cenizas tras la ignición de un peso conocido de
concentrados o heces o en un horno de mufla (Nabertherm, Bremen,
Alemania) a 500ºC durante cuatro horas. La energía bruta (GE) de
las muestras de pienso de heces se determinó utilizando un
calorímetro de bomba adiabática (Parr Instruments, II, EE.UU.).
El efecto del tratamiento dietético sobre las
poblaciones microbianas y el pH del colon se representa en la Tabla
7.
Se produjo una respuesta significativa al
GutCare en las poblaciones de E. coli del colon y de
bifidobacterias (P cuadrática<0,05). Se produjo un descenso
significativo (cuadrático) en la población de E. coli al
mismo tiempo que se produjo un aumento en las poblaciones de
bifidobacterias, hasta un nivel determinado. Con unas
concentraciones elevadas, dichas poblaciones disminuyeron, lo que
indicaba una sobrecarga intestinal.
El efecto del tratamiento dietético en la
digestibilidad total de las cenizas en el tracto se representa en
la Tabla 8. Se produjo un aumento lineal significativo (P<0,01)
en la digestibilidad total de las cenizas en el tracto al aumentar
la concentración del extracto.
Este experimento demuestra el efecto del GutCare
en la microflora intestinal y en la absorción de minerales de las
crías (que se representa como digestibilidad de las cenizas). Tal
como se puede observar a partir de los resultados, la composición
provocó un aumento en los niveles de bacterias beneficiosas de una
disminución de los niveles de microbios nocivos. Esta respuesta es
habitual en las formulaciones prebióticas. Con unas dosis más
elevadas, cambiaron los niveles de todos los microbios, lo que
indica una sobrecarga intestinal, de nuevo una respuesta habitual
de las formulaciones prebióticas. Además, el aumento de la
digestibilidad de las cenizas (que consiste en micronutrientes y
macronutrientes) indica una mayor absorción de dichos nutrientes en
el intestino.
Association of Analytical Chemists 1995.
Official methods of Analysis, 16th edition, Association of
Official Analytical Chemists, Washington DC, USA.
Autio, K., Mannonen, I.,
Pierila, K., Kosinken, M.,
Siika-aho, M., Linko, M. 1996 Journal of the Institute of Brewing 102,
427-432.
Adams, C.A., 2001. In: Total
Nutrition: Feeding animals for health and growth (ed. C.A. Adams),
Nottingham University Press, Nottingham, United Kingom, pp
157-161.
Bach Knudsen, K.E. 1991. In:
Digestive Physiology in Pigs, Proceedings of the Vth international
symposium on digestive physiology in pigs. (ed. M. W.A. Verstegen,
J. Huisman and L.A. den Hartog) pp 428-434.
Purdoc Wageningen, Wageningen, The Netherlands.
Bach Knudsen, K.E. and Hansen, I.
1991. British Journal of Nutrition 65:
217-232.
Bedford, M.R. 2000. Animal Feed
Science and Technology 86: 1-13.
Bergh M.O., Razdan A. and
Aman P Animal Feed Science and Technology 201 (1999)
215-226.
Brownlee I.A, Allen A,
Pearson J.P., Dettmar P.W, Havler M.R,
Atherton M.E, and Onsoyen E, 2005, Critical
Reviews in Food Science and Nutrition, 45:
497-510.
Burtin, P., 2003. Electronic
Journal of Environmental Agriculture and Food Chemistry. Volume 2,
Issue 4.
Campbell, G.L. and Bedford, M.R
1992. Canadian Journal of Animal Science 72:
449-466.
Canh, T.T., Sutton, A.L.,
Aarnink, A.J.A., Verstegen, M.W.A., Schrama,
J.W. and Bakker, G.C.M. 1998. Journal of Animal
Science 76: 1887-1895
Blonden C, Chaubet F,
Nardella, A, Sinquin C, Jozefonvizc, J,
Biomaterials, 17 (1996), 597-603.
Charalampopulous, D., Wang, R,
Pandiella, S.S. and Webb, C. 2002.
International Journal of Food Microbiology 79:
131-141.
Close, W.H., 2000. Advances in
pork production 11: 47-56.
Cole, D.J.A., Beal, RM. and
Luscombe, J.R, 1968. Veterinary Record 83:
459-464.
Cueno, RP., Morillo, T.B.,
Carter, S.D., Lachmann, M.S., Park, J.S. and
Schneider, J.D., 2004.
www.ansi.os-tate.edu/research/2004rr/32/32.htm.
Choct, M. 1997. Feed Milling
International June 1997: 13-26.
Close, W.H. 1994. In: Principals
of Pig Science pp 123-140. (ed. D.J.A. Cole, J.
Wiseman and M.A. Varley), Nottingham University Press,
UK.
Conway, E.J. 1957. Microdiffusion
Analysis and Volumetric Error. Crosby Lockwood and Son,
London, 465 pps.
Cui, W., Wood, P. J.,
Blackwell, B., & Nikiforuk, J. (2000).
Carbohydrate Polymers, 41 (3), 249-258.
De Lange, C.F.M. 2000. In: feed
evaluation-principals and practice (ed. P.J.
Moughan, M.W.A. Verstegen and M.I.
Visser-Reyneveld) pp 77-92.
Wageningen Pers, Wageningen, The Netherlands.
Derikx, P.J.L. and Aarnink, A.J.A.
1993. In: Nitrogen Flow in Pig Production and Environmental
Consequences (ed. M.W.A. Verstegen, L.A. den Hartog, G.J.M. van
Kempen and J.H.M. Metz) pp 344-349. EAAP Publication
No. 69, Purdoc, Wageningen, The Netherlands.
Dierick, N. and Decuypere; J.
1996. Pig News Information 17,
41N-48N.
Drew, M.D., A.G. van Kessel, A.E.
Estrada, E.D. Ekpe and R.T. Zijlstra.
2003. Canadian Journal of Animal Science 82:
607-609.
Etheridge, R. D.; Seerley, R. W.;
Wyatt, R. D., JOURNAL OF ANIMAL SCIENCE, Vol. 58, No.
6, 1984, 1396-1402
European Council, 2001. Commission
regulation (EC) no. 418/2001 of 1 March 2001 concerning the
authorisation of new additives and uses of additives in
feedingstuffs. Official Journal of the European Communities L
62,2.1.2001 Gao, Y., Lackeyram, D., Rideout,
T., Archbold, T., Duns, G., Fan, M.Z.,
Squires, E.J., De Lange, C.F.M. and Smith,
T.K. 2001. In: Digestive Physiology in Pigs, Proceedings of
the 8th symposium on digestive physiology in pigs, (ed. J.E.
Lindberg and B. Ogle) pp 338-340. CAB
International, Wallingford, UK.
Darcy-Vrillon, B.,
Vaugelade, P., Bernard, F., Hoebler, C.,
Guillon, F., Mabeau, S. and Duee,
P-H., 1996 Reproduction Nutrition
Development 36: 425.
De Mitchell, I., and R. Kenworthy.
1976. Journal of Applied Bacteriology 41:
163-174
Drochner, W., Kerler, A. and
Zacharias, B., 2004 Journal of Animal Physiology
and Animal Nutrition 88: 367-380.
Estrada, A, Drew, M.D. and Van
Kessel., 2001. Canadian Journal of Animal
Science 81: 141-148.
Freimund S, Sauter M,
Kappeli O, Dutler H, Carbohydrate Polymers 54
(2003) 159-171
Gibson, G.R. and Roberfroid, M.B.,
1995. Journal of Nutrition 125:
1401-1412.
Glisto, L.V., Brunsgaard, G.,
Hojsgaard, S., Sandstrom, B. and Bach Knudsen, K.E., 1998 British Journal of
Nutrition 80: 457-468.
Gray, J., 2003. Carbohydrates:
Nutritional and health aspects. International Life Science
Institute. ¿Necesitamos una referencia completa para éste?
Graham, H. and Pettersson, D.
1992. Swedish Journal of Agricultural Research, 22:
39-42.
Havenaar R, Huis In't Veld MJH.
Probiotics: a general view. In: Lactic acid bacteria in health and
disease. Vol 1. Amsterdam: Elsevier Applied Science
Publishers, 1992.
Hayes, E.T., Leek, A.B.G.,
Curren, T.P., Dodd, V.A., Carton, O.T.,
Beattie, V.E. and O'Doherty, J.V., 2004.
Bioresource Technology 91: 309-315.
Hobbs, P.J., Misslebrook, T.H. and
Pain, B.F. 1995. Journal of Agricultural
Engineering Research 60: 137-144.
Heo, S-J., Park,
E-J., Lee, K-W. and
Jeon, Y-J., 2005. Bioresource
Technology 96: 1613-1623.
Hiss, S., Sauerwein, H.,
2003. Journal of Animal Physiology and Animal
Nutrition 87: 2-11.
Hogberg A and Lindberg JE,
Animal Feed Science and Technology, 2005
Houdijk, J.G.M., Bosch, M.W.,
Verstegen, M.W.A., Berenpas, H.J., 1998.
Animal Feed Science and Technology 71:
35-48.
Ito, K. and Hori, K. 1989.
Food Reviews International, 5, 101-144.
Itoh, Hiroko, et al.,
Anticancer Research, vol. 13, pp. 2045-2052
(1993).
Jamroz, D., Wiliczkiewicz, A.,
Skorupinska, J., 1992. J. Anim. Feed Sci. 1,
37-50.
Jamroz, D., Wiliczkiewicz, A.,
Orda, J., Skorupinska, J., 1996. Wien.
Tierarztl. Mschr. 83, 165-177.
Jaskari, J., Salovaara, H.,
Mattilla-Sandholm, T. and Putanen, K.
1993. In: Proceedings of the 25th Nordic cereal congress,
(ed T. Aalto-Kaarlehto and H. Salovaara)
University of Helsinki, Helsinki, pp
242-244.
Jaskari, J., P. Kontula, A.
Siitonen, H. Jousimeies-Somer, T.
Mattila-Sandholm and K. Poutanen.
1998. Applied Microbiology Biotechnology 49:
175-181.
Jensen, B.B. and H. JØrgensen.
1994. Applied Environ. Microbiol. 60:
1897-1904
Kenworthy, R., and W. E. Crabb.
1963. Journal of Comparative Pathology 73:
215-228.
Kim, II., Jewell, D.E.,
Benevenga, N.J. and Grummer, R.H. 1978.
Journal of Animal Science 46: 1658-1665.
Llaube'res, R.M., Richard, B.,
Lonvaud, A., Dubourdieu, D. and Fournet, B.
(1990) Carbohydrate Research 203,
103-107.
Leek, A.B.G. 2003 Ph.D. Thesis,
National University of Ireland, University College Dublin,
Ireland.
Leek, A.B.G., Beattie, V.E.,
O'Doherty, J.V. 2004. Animal Science 79:
155-164.
Mabeau, S.; Kloareg, B. J. Exp.
Bot. 1987, 38, 1573-1580.
Pereira, Mariana S., et
al., J. Biol. Chem., vol. 274, No. 12, pp.
7656-7667 (1999).
MacGregor, A. W. a. B., &
Rattan, S. (1993). Barley chemistry and technology.
St. Paul, USA: American Association of Cereal Chemists Inc.
Mackie, R.I., Stroot, P.G. and
Varel, V.H. 1998. Journal of Animal Science 76:
1331-1342.
Magnelli P, Cipollo J.F. and
Abeijon C., Analytical Biochemistry, 301
(2002), 136-150.
Mahan, D.C., 1992. Journal of
Animal Science 70: 2182-2187.
Mahan, D.C., 1993. Journal of
Animal Science 71: 2860-2866.
Mahan, D.C and Newton, E.A.,
1993. Journal of Animal Science 71:
3376-3382
Mathers, J.C and Annisonn E.F.,
1993. Stoichiometry of polysaccharide fementation in the
large intestine. In Dietary Fibre and
Beyond-Australian Perspectives, volume 1, pp
123-135.
Martensson O, Biorklund M,
Lambo M A, Duenas-Chasco M,
Irastorza Am Holst O, Norin E, Welling
G, Oste R, Onning G, Nutrition Research 25
(2005), 429-442.
Mathers, J.C. and Annison, E.F.
1993. Stoichiometry of polysaccharide fermentation in the
large intestine. In: Dietary fibre and
beyond-Australian perspectives, (ed. S, Samman and
G. Annison) pp 123-125, Nutrition society of
Australia occasional publications, Perth, Australia.
Mc Cracken, B.A, Spurlock, M.E.,
Roos, M.A., Zuckermann, F.A. and Gaskins, H.R.,
1999. Journal of Nutrition 129:
613-619.
Melin, L., Mattisson, S.,
Katouli, M and Wallgren, P., 2004. Journal
of Veterinary Medicine B51: 12-22.
Catherine Michel, Marc Lahaye,
Christian Bonnett, Serge Mabeau And Jean-Luc
Berry, 1996, British Journal of Nutrition, 75,
263-280.
Mikkesen, L.L., Jensen, B.B.,
1997. Effect of fructo-oligosaccharide (FO)
on the intestinal microbiota of rats and determination of
thefermentativetransformation and energytransmission of FO. In:
Hartemink, R. (Ed.), Proceedings of the International Symposium
Non-digestible Oligosaccharides: Healthy food for
the colon? 4-5 December, Wageningen, The
Netherlands, p 158 (abstract).
Ministry of Agriculture, Fisheries and Food
1991. The Feedingstuffs Regulations 1991. Statutory
instrument no. 2840, 9.76. Her Majesty's Stationary Office,
London.
Mroz, Z., Moeser, A.J.,
Vreman, K., van Diepen, J.T.M., van Kempen, T.,
Canh, T.T., Jongbloed, A.W. 2000. Journal
of Animal Science 78: 3096-3106.
Muller A, Ensley H, Pretus
H, McNamee R, Jones E, McLaughlin E,
Chandley W, Browder W, Lowman D and
Williams D, Carbohydrate Research 299 (1997)
203-208.
Montagne, L., Pluske, J.R. and
Hampson, D.J. 2003. Animal Feed Science and Technology
108: 95-117.
Mortensen, P.B., Hove, H.,
Clausen, M.R., Holtug, K., 1991 Scandanavian
Journal of Gastroenterology Dec; 26 (12):
1285-1294.
Mul, A.J and Perry, F.G.,
1994. In: Garnsworthy, P.C and Cole, D.J.A (eds). Recent
Advances in Animal Nutrition 1994. Nottingham University Press,
Nottingham, 57-79.
Muralidhara, K. S., G. G.
Sheggeby, P. R. Elliker, D. C. England, and W.
E. Sandine. 1977. Journal of Food Protection
40: 288-295.
Nahm, K.H. 2003 Critical
Reviews in Environmental Science and Technology 30(2):
165-186.
Nessmith Jr, W.B., Nelssen, J.L.,
Tokach, M.D., Goodband, R.D and Bergstrom, J.R.
199713. Journal of Animal Science 75:
3222-3228.
O'Doherty, J.V., Nolan, C.S,
Callan, J.J and McCarthy, P., 2004. Animal
Science 78: 419-428.
Onning, G., and Asp, N.G.,
1995. British Journal of Nutrition 74:
229-237.
Owsley, W.F., Orr, D.E. and
Tribble, L.F., 1986. Journal of Animal Science
63: 492-496.
Pacheco-Delayaye, E.,
1995. Food Chemistry 65: 433-437.
Partridge, G.G and Gill, B.P.,
1993. In: Wiseman, J and Garnsworthy, P.C. (eds) Recent
Developments in Pig Nutrition 3. Nottingham University Press,
Nottingham, UK, pp 205-237.
Pettersson A and Lindberg JE,
Animal Feed Science Technology 66 (1997)
97-109 Pettersson, D., and P. Aman.
1989. British journal of Nutrition. 62:
139-149.
Pierce, Aileen, MsC Thesis
(2002), "The use of seaweed extract in animal nutrition"
National University of Ireland, Dublin, University College
Dublin, Ireland.
Pierce, K.M., Callan, J.J.,
Brophy, P.O., McCarthy, P., Sweeney, T.,
Fitzpatrick, E., Byrne, C., Ni Cheallaigh, S.
and O'Doherty, J.V. 2004a. Journal of Animal
Science 82, Supplement 1: 138-139.
Pitcairn, C.E.R., Skiba, U.M.,
Sutton, M.A., Fowler, D., Munro, R. and
Kennedy, V. 2002. Environmental Pollution 119:
9-21.
Pluske, J.R., Williams, I.H. and
Aherne, F.A., 1995. Nutrition of the neonatal pig. In:
M.A. Varley (ed.) The neonatal pigs: development and survival.
CAB International, Wallinford, UK.
Pluske, J.R., Hampson, D.J and
Williams I.H, 1997 Livestock Production Science
51: 215-236.
Pluske, J.R., Kim, J.C.,
McDonald, D.E., Pethick, D.W. and Hampson, D.J.
2001. In: The weaner pig: Nutrition and Management. (ed.
M.A. Varley and J. Wiseman) pp 81-111. CAB
International, Wallingford, Oxon, UK.
Porter, M.G. and Murray, R.S.,
2001. Grass and Forage Science 56:
405-411.
Read S, Currie G and Bacic
A., Carbohydrate Research, 281 (1996)
187-210.
Riou, D., et al., Anticancer
Research, vol. 16, pp. 1213-1218
(1996).
SAS. 1985. Statistical Analysis
Systems. SAS Institute Inc., North Carolina, USA.
Sauer, W.C., Just, A.,
Jorgensen, H.H., Fekadu, M. and Eggum, B.O.
1980. Journal of Animal Science 69:
4070-4079.
Schmitz, W. 1995. In: Proceedings
of the second European symposium on feed enzymes. (ed. W. van
Hartingsveld, M. Hessing, J.P. van der Lugt and W.A.C. Somers) pp
95-101. TNO Nutrition and Food Research Institute,
Zeist, The Netherlands.
S. Colliec et al
Phytochemistry, 35, pp. 697-700,
(1994).
Shibata, Hideyuki, et al J. Nutr. Sci. Vitaminol., vol. 45, pp.
325-336 (1999).
Smith, E.A. and MacFarlane, G.T.
1997. Anaerobe 3: 327-337.
Soergel, K.H., 1994. Clinical
Investigations 72: 742-748.
Spreeuwenberg, M.A.M., Verdonk,
J.M.A.J., Gaskins, J.H. and Verstegen, M.W.A.
2001. Journal of Nutrition 131:
1520-1527.
Stanogias, G., and Pearce G.R.
1985. British Journal of Nutrition 53,
537-548 537.
Statistics Analysis Systems Institute
1985. Stastical Analysis Systems version 6.12, SAS Institute
Inc., Cary, NC, USA.
Somogyi, M. 1960. Clinical
Chemistry 6: 23-35.
Theander O, Westerlund E,
\ring{\mathbf{A}}man P & Graham H (1989)
Animal Feed Science and Technology 23, 205.225.
Thomlinson, J.R. 1981. The
Veterinary record 109: 120-122.
Tokach, M.D., Nelssen, J.L. and
Allee, G.L., 1989. Journal of Animal Science
67: 1307-1312.
Turner, J.L., Dritz, J.J.,
Higgins and Minton, J.E., 2002. Journal of
Animal Science 80: 1947-1953.
van Soest, P.J. 1976. Journal
of the Association of Agricultural Chemists 46:
829-834.
Van Soest, P.J., Robertson, J.B.
and Lewis, B.A. 1991. Journal of Dairy Science
74: 3583-3597.
Varel, V.H. 1987. Journal of
Animal Science 65: 488-496.
Verstegen, M.W. and B.A. Williams,
2002. Journal of Animal Biotechnology 13:
113-127.
Wiliczkiewicz, A., Jamroz, D.,
Skorupinska, J., Orda, J., 1995. Wien.
Tierarztl. Mschr. 82, 239-244.
Williams, C.H., David, D.J. and
lismaa, O., 1962. Journal of Animal Science 59:
381-385.
Williams, B.A., Martin, W.A.,
Verstegen and Tamminga S. 2001 Nutrition Research
Reviews 14: 207-227.
Zijlstra, R.T., Whang,
K-Y., Easter, R.A. and Odle, J.,
1996. Journal of Animal Science 74:
2948-2959.
Zvyagintseva et al Carbohydrate
research, 322, 32 – 29, 1999.
\vskip1.000000\baselineskip
La presente lista de referencias citadas por el
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No forma parte del documento de patente europea. Aunque se ha tenido
mucho cuidado al compilar las referencias, no se pueden excluir
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- US 4891220 A [0019]
- US 6143731 A [0019]
- US 20050020490 A [0021] [0026]
- US 20030219468 A [0021]
- US 6939864 B [0021]
- US 6214337 B [0021] [0024]
- US 5591428 A [0026]
- US 6841181 B [0026]
- US 5622939 A [0026]
- US 20040253253 A [0026]
- US 20010016220 A [0026]
- US 20030124170 A [0026]
- US 20040138172 A [0026]
- US 20040058889 A [0026]
- US 20050058671 A [0026]
- US 20050118326 A [0026]
- US 20020146484 A [0026]
- US 20040086491 A [0027]
- US 2003119780 A [0029]
- US 20050065114 A [0029] [0032]
- US 20050095250 A [0029]
- US 20050208079 A [0032]
- US 2005095250 A [0032]
- US 20030119780 A [0032]
- US 20040127457 A [0032]
- GB 727013 A [0035] [0058]
- US 4761042 A [0056]
- US 4739046 A [0056]
- US 5633369 A [0057]
- US 5705184 A [0057]
- US 2004008253 A [0057]
- US 20020143174 A [0057]
- US 20020032170 A [0057]
- US 6342242 B, Gore Vivian [0060]
- US 6432443 B [0060]
- US 6338856 B [0060]
- US 6312709 B [0060]
- US 6270812 B [0060]
- US 6383538 B [0060]
- US 6391331 B [0060]
- US 20030003134 A [0060]
- US 20020022049 A [0060]
- US 20040082539 A [0087]
- Association of Analytical Chemists
1995. Official methods of Analysis, 16th edition, Association
of Official Analytical Chemists, 1995 [0112]
- Autio, K., Mannonen, I.,
Pierila, K., Kosinken, M.,
Siika-aho, M., Linko, M. Journal of
the Institute of Brewing 1996 vol. 102,
427-432. [0112]
- Adams, C.A., Total Nutrition: Feeding
animals for health and growth. Nottingham University Press,
Nottingham, United Kingom, 2001. 157-161.
[0112]
- Bach Knudsen, K. E. Digestive
Physiology in Pigs, Proceedings of the Vth international symposium
on digestive physiology in pigs. 428-434. [0112]
- Bach Knudsen, K.E.; Hansen, I.
British Journal of Nutrition, 1991, vol. 65:
217-232. [0112]
- Bedford, M.R. Animal Feed Science
and Technology, 2000 vol. 86: 1-13.
[0112]
- Bergh M.O.; Razdan A.;
Aman P. Animal Feed Science and Technology,
1999 vol. 201 215-226. [0112]
- Brownlee I.A; Allen A;
Pearson J.P.; Dettmar P.W; Havler M.R;
Atherton M.E; Onsoyen E. Critical Reviews in Food
Science and Nutrition, 2005, Vol. 45,
497-510 [0112]
- Burtin, P. Electronic Journal of
Environmental Agriculture and Food Chemistry, 2003, vol.
2 (4 [0112]
- Campbell, G.L.; Bedford, M.R.
Canadian Journal of Animal Science, 1992, vol. 72,
449-466 [0112]
- Canh, T.T.; Sutton, A.L.;
Aarnink, A.J.A.; Verstegen, M.W.A.; Schrama,
J.W.; Bakker, G.C.M. Journal of Animal Science,
1998, vol. 76, 1887-1895 [0112]
- Blonden C; Chaubet F;
Nardella, A; Sinquin C; Jozefonvizc, J.
Biomaterials, 1996, vol. 17, 597-603
[0112]
- Charalampopulous, D.; Wang, R;
Pandiella, S.S.; Webb, C. International Journal of
Food Microbiology, 2002, vol. 79,
131-141 [0112]
- Close, W.H. Advances in pork
production, 2000, vol. 11, 47-56
[0112]
- Cole, D.J.A.; Beal, RM;
Luscombe, J.R. Veterinary Record, 1968, vol.
83, 459-464 [0112]
- Choct, M. Feed Milling
International, June 1997, 13-26 [0112]
- Close, W.H. Principals of Pig
Science. Nottingham University Press, 1994,
123-140 [0112]
- Conway, E.J. Microdiffusion Analysis
and Volumetric Error. Crosby Lockwood and Son, 1957,
465 [0112]
- Cui, W.; Wood, P. J.;
Blackwell, B.; Nikiforuk, J. Carbohydrate
Polymers, 2000, vol. 41 (3), 249 - 258 [0112]
- De Lange, C.F.M. feed
evaluation-principals and practice. 2000,
77-92 [0112]
- Derikx, P.J.L.; Aarnink, A.J.A.
Nitrogen Flow in Pig Production and Environmental Consequences. EAAP
Publication No. 69, 1993, 344-349 [0112]
- Dierick, N.; Decuypere; J.
Pig News Information, 1996, Vol. 17,
41N-48N [0112]
- Drew, M.D.; A.G. van Kessel;
A.E. Estrada; E.D. Ekpe; R.T. Zijlstra.
Canadian JournalofAnimalScience, 2003, vol. 82,
607-609 [0112]
- Etheridge, R. D.; Seerley, R.
W.; Wyatt, R. D. JOURNAL OF ANIMAL SCIENCE,
1984, vol. 58 (6), 1396-1402 [0112]
- European Council, 2001. Commission
regulation (EC) no. 418/2001 of 1 March 2001 concerning the
authorisation of new additives and uses of additives in
feedingstuffs. Official Journal of the European Communities,
2001, vol. 62 [0112]
- Gao, Y.; Lackeyram, D.;
Rideout, T.; Archbold, T.; Duns, G.;
Fan, M.Z.; Squires, E.J.; De Lange, C.F.M.;
Smith, T.K. Digestive Physiology in Pigs, Proceedings of the
8th symposium on digestive physiology in pigs. 2001,
338-340 [0112]
- Darcy-Vrillon, B.;
Vaugelade, P.; Bernard, F.; Hoebler, C.;
Guillon, F.; Mabeau, S.; Duee,
P-H. Reproduction Nutrition Development,
1996, vol. 36, 425 [0112]
- De Mitchell, I.; R. Kenworthy.
Journal of Applied Bacteriology, 1976, vol. 41,
163-174 [0112]
- Drochner, W.; Kerler, A.;
Zacharias, B. Journal of Animal Physiology and Animal
Nutrition, 2004, vol. 88, 367-380
[0112]
- Estrada, A.; Drew, M.D.; Van
Kessel. Canadian Journal of Animal Science,
2001, vol. 81, 141-148 [0112]
- Freimund S; Sauter M;
Kappeli O; Dutler H. Carbohydrate Polymers,
2003, vol. 54, 159-171 [0112]
- Gibson, G.R.; Roberfroid, M.B.
Journal of Nutrition, 1995, vol. 125,
1401-1412 [0112]
- Glisto, L.V.; Brunsgaard, G.;
Hojsgaard, S.; Sandstrom, B.; Bach Knudsen,
K.E. British Journal of Nutrition, 1998, vol. 80,
457-468 [0112]
- Gray, J. Carbohydrates: Nutritional and
health aspects. International Life Science Institute,
2003 [0112]
- Graham, H.; Pettersson, D.
Swedish Journal of Agricultural Research, 1992, vol.
22, 39-42 [0112]
- Probiotics: a general view. Havenaar R;
Huis In't Veld MJH. Lactic acid bacteria in health and
disease. Elsevier Applied Science Publishers, 1992, vol. 1
[0112]
- Hayes, E.T.; Leek, A.B.G.;
Curren, T.P.; Dodd, V.A.; Carton, O.T.;
Beattie, V.E.; O'Doherty, J.V. Bioresource
Technology, 2004, vol. 91, 309-315
[0112]
- Hobbs, P.J.; Misslebrook, T.H.;
Pain, B.F. Journal of Agricultural Engineering
Research, 1995, vol. 60, 137-144
[0112]
- Heo, S-J.;
Park, E-J.; Lee,
K-W.; Jeon, Y-J.
Bioresource Technology, 2005, vol. 96,
1613-1623 [0112]
- Hiss, S.; Sauerwein, H.
Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition,
2003, vol. 87, 2-11 [0112]
- Hogberg A; Lindberg JE.
Animal Feed Science and Technology, 2005 [0112]
- Houdijk, J.G.M.; Bosch, M.W.;
Verstegen, M.W.A.; Berenpas, H.J. Animal Feed
Science and Technology, 1998, vol. 71,
35-48 [0112]
- Ito, K.; Hori, K. Food
Reviews International, 1989, Vol. 5,
101-144 [0112]
- Itoh, Hiroko et al.
Anticancer Research, 1993, vol. 13,
2045-2052 [0112]
- Jamroz, D.; Wiliczkiewicz, A.;
Skorupinska, J. J. Anim. Feed Sci., 1992, vol.
1, 37-50 [0112]
- Jamroz, D.; Wiliczkiewicz, A.;
Orda, J.; Skorupinska, J. Wien. Tierarztl.
Mschr., 1996, vol. 83, 165-177
[0112]
- Jaskari, J.; Salovaara, H.;
Mattilla-Sandholm, T.; Putanen, K.
Proceedings of the 25th Nordic cereal congress. 1993,
242-244 [0112]
- Jaskari, J.; P. Kontula; A.
Siitonen; H. Jousimeies-Somer; T.
Mattila-Sandholm; K. Poutanen.
Applied Microbiology Biotechnology, 1998, Vol. 49,
175-181 [0112]
- Jensen, B.B.; H. JØrgensen.
Applied Environ. Microbiol., 1994, vol. 60,
1897-1904 [0112]
- Kenworthy, R.; W. E. Crabb.
Journal of Comparative Pathology, 1963, vol. 73,
215-228 [0112]
- Kim, II.; Jewell, D.E.;
Benevenga, N.J.; Grummer, R.H. Journal of Animal
Science, 1978, vol. 46, 1658-1665
[0112]
- Llaube'res, R.M.; Richard, B.;
Lonvaud, A.; Dubourdieu, D.; Fournet, B.
Carbohydrate Research, 1990, Vol. 203,
103-107 [0112]
- Leek, A.B.G. 2003 Ph. D.
Thesis, National University of Ireland, 2003 [0112]
- Leek, A.B.G.; Beattie, V.E.;
O'Doherty, J.V. Animal Science, 2004, vol. 79,
155-164 [0112]
- Mabeau, S.; Kloareg, B. J.
Exp. Bot., 1987, vol. 38, 1573-1580
[0112]
- Pereira, Mariana S. et
al. J. Biol. Chem., 1999, vol. 274 (12),
7656-667 [0112]
- MacGregor, A. W. a. B.; Rattan,
S. Barley chemistry and technology. American Association of Cereal
Chemists Inc, 1993 [0112]
- Mackie, R.I.; Stroot, P.G.;
Varel, V.H. Journal of Animal Science, 1998,
vol. 76, 1331-1342 [0112]
- Magnelli P; Cipollo J.F.;
Abeijon C. Analytical Biochemistry, 2002, vol.
301, 136-150 [0112]
- Mahan, D.C. Journal of Animal
Science, 1992, vol. 70, 2182-2187
[0112]
- Mahan, D.C. Journal of Animal
Science, 1993, vol. 71, 2860-2866
[0112]
- Mahan, D.C; Newton, E.A.
Journal of Animal Science, 1993, vol. 71,
3376-3382 [0112]
- Mathers, J.C; Annisonn E.F.
Stoichiometry of polysaccharide fementation in the large intestine.
Dietary Fibre and Beyond-Australian
Perspectives, 1993, Vol. 1, 123-135
[0112]
- Martensson O; Biorklund M;
Lambo M A; Duenas-Chasco M;
Irastorza Am Holst O; Norin E; Welling
G; Oste R; Onning G. Nutrition Research,
2005, Vol. 25, 429-442 [0112]
- Stoichiometry of polysaccharide fermentation
in the large intestine. Mathers, J.C.; Annison, E.F.
Dietary fibre and beyond-Australian perspectives.
1993, 123-125 [0112]
- Mc Cracken, B.A; Spurlock,
M.E.; Roos, M.A.; Zuckermann, F.A.; Gaskins,
H.R. Journal of Nutrition, 1999, vol. 129,
613-619 [0112]
- Melin, L.; Mattisson, S.;
Katouli, M; Wallgren, P. Journal of Veterinary
Medicine, 2004, vol. B51, 12-22
[0112]
- Catherine Michel; Marc Lahaye;
Christian Bonnett; Serge Mabeau;
Jean-Luc Berry. British Journal of
Nutrition, 1996, vol. 75, 263-280
[0112]
- Effect of
fructo-oligosaccharide (FO) on the intestinal
microbiota of rats and determination of the fermentative
transformation and energy transmission of FO. Mikkesen, L.L.;
Jensen, B.B. Proceedings of the International Sympo sium
Non-digestible Oligosaccharides:Healthy food for the
colon?. 04 December 1997 [0112]
- Ministry of Agriculture, Fisheries and Food
1991. The Feedingstuffs Regulations 1991, 1991
[0112]
- Mroz, 2.; Moeser, A.J.;
Vreman, K.; van Diepen, J.T.M.; van Kempen,
T.; Canh, T.T.; Jongbloed, A.W. Journal of
Animal Science, 2000, vol. 78, 3096-3106
[0112]
\newpage
- Muller A; Ensley H;
Pretus H; McNamee R; Jones E;
McLaughlin E; Chandley W; Browder W;
Lowman D; Williams D. Carbohydrate Research,
1997, vol. 299, 203-208 [0112]
- Montagne, L.; Pluske, J.R.;
Hampson, D.J. Animal Feed Science and Technology,
2003, vol. 108, 95- 117 [0112]
- Mortensen, P.B.; Hove, H.;
Clausen, M.R.; Holtug, K. Scandanavian Journal of
Gastroenterology, December 1991, vol. 26 (1 2),
1285-1294 [0112]
- Mul, A.J; Perry, F.G. Recent
Advances in Animal Nutrition. Nottingham University Press,
1994, 57-79 [0112]
- Muralidhara, K. S.; G. G.
Sheggeby; P. R. Elliker; D. C. England; W.
E. Sandine. Journal of Food Protection, 1977,
vol. 40, 288-295 [0112]
- Na hm, K. H. Critical Reviews in
Environmental Science and Technology, 2003, vol. 30 (2),
165-186 [0112]
- Nessmith Jr, W.B.; Nelssen,
J.L.; Tokach, M.D.; Goodband, R.D; Bergstrom,
J.R. Journal of Animal Science, 1997, vol. 75,
3222-3228 [0112]
- O' Doherty, J.V.; Nolan, C.S;
Callan, J.J; McCarthy, P. Animal Science,
2004, vol. 78, 419-428 [0112]
- Onning, G.; Asp, N.G.
British Journal of Nutrition, 1995, Vol. 74,
229-237 [0112]
- Owsley, W.F.; Orr, D.E.;
Tribble, L.F. Journal of Animal Science, 1986,
vol. 63, 492-496 [0112]
- Pacheco-Delayaye, E.
Food Chemistry, 1995, vol. 65, 433-437
[0112]
- Partridge, G.G; Gill, B.P.
Recent Developments in Pig Nutrition 3. Nottingham University
Press, 1993, 205 - 237 [0112]
- Pettersson A; Lindberg JE.
Animal Feed Science Technology, 1997, vol. 66,
97-109 [0112]
- Pettersson, D.; P. Aman.
British journal of Nutrition, 1989, vol. 62,
139-149 [0112]
- Pierce; Aileen; MsC
Thesis. The use of seaweed extract in animal
nutrition, 2002 [0112]
- Pierce, K.M.; Callan, J.J.;
Brophy, P.O.; McCarthy, P.; Sweeney, T.;
Fitzpatrick, E.; Byrne, C.; Ni Cheallaigh,
S.; O' Doherty, J.V. Journal of Animal Science,
2004, vol. 82 (I), 138-139 [0112]
- Pitcairn, C.E.R.; Skiba, U.M.;
Sutton, M.A.; Fowler, D.; Munro, R.;
Kennedy, V. Environmental Pollution, 2002,
vol. 119, 9-21 [0112]
- Nutrition ofthe neonatal pig. Pluske,
J.R.; Williams, I.H.; Aherne, F.A. The neonatal pigs:
development and survival. CAB International. 1995
[0112]
- Pluske, J.R.; Hampson, D.J;
Williams I.H. Livestock Production Science,
1997, vol. 51, 215-236 [0112]
- Pluske, J.R.; Kim, J.C.;
McDonald, D.E.; Pethick, D.W.; Hampson, D.J.
The weanerpig: Nutrition and Management. 2001,
81-111 [0112]
- Porter, M.G.; Murray, R.S.
Grass and Forage Science, 2001, vol. 56,
405-411 [0112]
- Read S; Currie G; Bacic
A. Carbohydrate Research, 1996, vol. 281,
187-210 [0112]
- Riou, D. et al. Anticancer
Research, 1996, vol. 16, 1213-1218
[0112]
- SAS. 1985. Statistical Analysis Systems.
SAS Institute Inc, 1985 [0112]
- Sauer, W.C.; Just, A.;
Jorgensen, H.H.; Fekadu, M.; Eggum, B.O.
Journal of Animal Science, 1980, Vol. 69,
4070-4079 [0112]
- Schmitz, W. Proceedings of the second
European symposium on feed enzymes. 1995,
95-101 [0112]
- S. Colliec et al.
Phytochemistry, 1994, vol. 35, 697-700
[0112]
- Shibata, Hideyuki et al.
J. Nutr. Sci. Vitaminol., 1999, Vol. 45,
325-336 [0112]
- Smith, E.A.; MacFarlane, G.T.
Anaerobe, 1997, Vol. 3, 327-337
[0112]
- Soergel, K.H. Clinical
Investigations, 1994, vol. 72, 742-748
[0112]
- Spreeuwenberg, M.A.M.; Verdonk,
J.M.A.J.; Gaskins, J.H.; Verstegen, M.W.A. Journal
of Nutrition, 2001, vol. 131, 1520-1527
[0112]
- Stanogias, G.; Pearce G.R.
British Journal of Nutrition, 1985, vol. 53
(537-548), 537 [0112]
- Statistics Analysis Systems Institute.
Stastical Analysis Systems version 6.12. SAS Institute Inc,
1985 [0112]
- Somogyi, M. Clinical Chemistry,
1960, vol. 6, 23-35 [0112]
- Theander O; Westerlund E;
man P; Graham H. Animal Feed Science and
Technology, 1989, vol. 23, 205 - 225 [0112]
- Thomlinson, J.R. The Veterinary
record, 1981, vol. 109, 120-122
[0112]
- Tokach, M.D.; Nelssen, J.L.;
Allee, G.L. Journal of Animal Science, 1989,
vol. 67, 1307-1312 [0112]
- Turner, J.L.; Dritz, J.J.;
Higgins and Minton, J.E. Journal of Animal
Science, 2002, vol. 80, 1947 - 1953 [0112]
- van Soest, P.J. Journal of the
Association of Agricultural Chemists, 1976, vol. 46,
829-834 [0112]
- Van Soest, P.J.; Robertson,
J.B.; Lewis, B.A. Journal of Dairy Science,
1991, vol. 74, 3583-3597 [0112]
- Varel, V.H. Journal ofAnimal
Science, 1987, vol. 65, 488-496
[0112]
- Verstegen, M.W.; B.A. Williams.
Journal of Animal Biotechnology, 2002, vol. 13,
113-127 [0112]
- Wiliczkiewicz, A.; Jamroz, D.;
Skorupinska, J.; Orda, J.,. Wien. Tierarztl.
Mschr., 1995, vol. 82, 239-244
[0112]
- Williams, C.H.; David, D.J.;
lismaa, O. Journal of Animal Science, 1962,
vol. 59, 381-385 [0112]
- Williams, B.A.; Martin, W.A.;
Verstegen and Tamminga S. Nutrition Research Reviews,
2001, Vol. 14, 207-227 [0112]
- Zijlstra, R.T.; Whang,
K-Y.; Easter, R.A.; Odle, J.
Journal of Animal Science, 1996, vol. 74, 2948 - 2959
[0112]
- Zvyagintseva et al.
Carbohydrate research, 1999, Vol. 322,
32-29 [0112]
Claims (15)
1. Composición que comprende por lo menos un 8%
en peso de \beta-glucanos y por lo menos un 8% en
peso de \alpha-fucanos o una mezcla de los
mismos.
2. Composición según la reivindicación 1, en la
que los \beta-glucanos se encuentran presentes en
una cantidad comprendida entre el 8% y el 30% en peso.
3. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 ó 2, en la que los
\alpha-fucanos se encuentran presentes en una
cantidad comprendida entre el 8% y el 30% en peso.
4. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que los
\beta-glucanos comprenden laminarina y/o los
\alpha-fucanos comprenden fucoidano.
5. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, que comprende además uno o ambos
elementos de entre el manitol y la lactosa.
6. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, que comprende uno o más cultivos
probióticos.
7. Procedimiento para obtener una composición
según la reivindicación 1, a partir de algas marinas, que
comprende:
(i) Mantener la temperatura de una disolución de
algas marinas a una temperatura comprendida entre 50ºC y 80ºC,
preferentemente a 75ºC.
(ii) Mantener el pH de la disolución a un pH
comprendido entre 4 y 5, preferentemente a un pH de aproximadamente
4,5.
(iii) Decantar la disolución por
centrifugación.
(iv) Depurar la disolución por
centrifugación,
para proporcionar un extracto depurado de algas
marinas.
8. Procedimiento según la reivindicación 7, en
la que la disolución de algas marinas se agita para crear una
suspensión acuosa espesa, durante un máximo de aproximadamente diez
horas, preferentemente 3 horas.
9. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 7 ó 8, en la que la disolución se comprime
mecánicamente.
10. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 7 a 9, en la que la mezcla se filtra a continuación
a través de un nanofiltro que presenta un tamaño de poro de
membrana comprendido entre 10^{-3} y 10^{-2} \mum.
11. Pienso que comprende ingredientes
alimentarios y una composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6, preferentemente presente en una cantidad
comprendida entre el 0,001 y el 10% en peso del pienso.
12. Preparación farmacéutica que comprende la
composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, y un
excipiente farmacéuticamente apto.
13. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6, pienso según la reivindicación 11 o
preparación farmacéutica según la reivindicación 12, para utilizar
en una o más de las aplicaciones siguientes: mejorar la salud
intestinal en los seres humanos o animales, estimular el crecimiento
de bacterias beneficiosas en los intestinos de los seres humanos o
de los animales, reducir los niveles de microbios nocivos tales como
la E. coli y la Salmonella, mejorar el rendimiento de
los animales, comprendiendo un incremento en el aumento medio
diario, una reducción del estregamiento y aumentar la proporción de
conversión alimentaria y la ingesta diaria, para reducir la
cantidad de lactosa requerida en las dietas de los mamíferos
jóvenes, aumentar la absorción de los minerales y de los
micronutrientes y aumentar la digestibilidad de los nutrientes de
los animales o los seres humanos.
14. Utilización de una composición según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en la preparación de un
medicamento para utilizar en el tratamiento o la prevención en
animales y/o seres humanos.
15. Utilización de una composición que comprende
\beta-glucanos y \alpha-fucanos
en la preparación de un medicamento para el tratamiento de una
inflamación intestinal o de una infección intestinal.
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PE20030283A1 (es) * | 2001-07-26 | 2003-05-01 | Alimentary Health Ltd | Cepas de lactobacillus casei |
KR100436355B1 (ko) * | 2001-08-14 | 2004-06-18 | 박정호 | 항산화물질, 옥타코사놀 및 베타글루칸을 함유한 발효음료및 그의 제조방법 |
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US20050058671A1 (en) * | 2003-05-09 | 2005-03-17 | Bedding Peter M.J. | Dietary supplement and method for treating digestive system-related disorders |
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