ES2221038T3 - Metodo de control de microorganismos. - Google Patents
Metodo de control de microorganismos.Info
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Abstract
Un método para controlar las bacterias en el agua potable, caracterizado porque una composición que consiste esencialmente en percarbonato sódico se añade al agua, estando la cantidad de percarbonato sódico añadido al agua en el intervalo de 0, 01 a 2, 0% en peso y careciendo el agua resultante de residuos tóxicos.
Description
Método de control de microorganismos.
Todos los organismos vivos han desarrollado
numerosos mecanismos de protección frente a factores letales. En el
grupo de los microorganismos esta resistencia desarrollada es
especialmente significativa. Los microorganismos pueden, por
ejemplo, formar esporas que son más resistentes a la sequedad,
calor, productos químicos y ultrasonidos en comparación a las
células vegetativas maternas. Las esporas pueden, bajo
circunstancias favorables, crecer para convertirse en una célula
vegetativa nuevamente.
Se entiende por esterilización el tratamiento
para retirar todas las formas vivas y virus de un objeto. Un método
fiable de esterilización química sería deseable en numerosas
conexiones. Hasta la fecha, sólo existen unas pocas sustancias
posibles. Las sustancias deben ser fácilmente eliminadas del objeto
después de la esterilización y no deben dejar ningún subproducto
tóxico y, simultáneamente, deben presentar un efecto biocida
fuerte. Preparaciones de halógenos, tales como cloro gaseoso,
hipoclorito de calcio (para la desinfección de establos y retretes
químicos) y disoluciones de yodo, disolventes orgánicos, metales
pesados, tales como sulfato de cobre (como fungicida frente a hongos
y también frente a algas) y detergentes pueden mencionarse como
ejemplos de agentes químicos esterilizadores.
Las esporas constituyen un gran problema en
numerosos campos y en la actualidad no existe un método eficaz para
matar esporas. Algunas esporas son extremadamente resistentes a la
sequedad, radiación, productos químicos y ultrasonidos y pueden
sobrevivir a la ebullición (a 100ºC) durante varias horas. Para
matar las esporas se precisa esterilizar en autoclave a 121ºC o de
una esterilización fraccionada, lo que, sin embargo, no proporciona
seguridad completa. Para esterilizar con calor seco se precisa de
una temperatura de 160ºC durante dos horas para matar las esporas
(Mikrobiologi, Mikrobiologiska institutet, Lund. 1982). Estos
métodos de esterilización, sin embargo, no siempre se pueden llevar
a cabo en la práctica. También se emplean numerosos medios químicos
para matar esporas. El formaldehído en una disolución de
agua/alcohol se emplea en gran medida para "esterilizar"
instrumentos quirúrgicos. Incluso si se dice que esta disolución
tiene un efecto destructivo de las esporas cuando se emplea con
este propósito, su efecto destructivo de esporas parece
cuestionable de alguna manera (Kirk Othmer, segunda edición,
volumen 2, página 640 <1967>). Se ha encontrado recientemente
que los dialdehídos saturados y, especialmente el glutaraldehído
CHO(CH_{2})_{3}CHO, tienen un efecto
esterilizador, que incluye incluso un efecto destructivo de
esporas, cuando se emplea en una disolución de agua/alcohol en
presencia de un agente alcalinizador, tal como el bicarbonato
sódico. Se dice que el efecto destructivo bacteriano para los
patógenos vegetativos ocurre en diez minutos, pero se requiere una
incubación de tres horas para matar cualquier espora resistente de
bacterias (Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 641
<1967>). Friedl et al. han expuesto esporas de cinco
microorganismos anaeróbicos (Clostridium botulinum,
lentoputrescerts, perfringens, sporogenes y
tetuni) y cinco aeróbicos (Bacillus anthracis,
coagulans, globigii, stearothermophilus y
subtilis) a óxido de etileno, el cual tiene un efecto
microbicida intensivo. Cuando se expusieron a temperatura ambiente
las esporas secas de Bacillus subtilis y Clostridium
sporogenes sobrevivieron durante varias horas, mientras que
otros organismos analizados murieron después de un período corto de
tiempo. Ninguna sobrevivió a una exposición de dieciocho horas
(Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 641 <1967>).
Estos ejemplos demuestran la enorme resistencia de las esporas
frente a varios medios químicos de control.
Ejemplos adicionales de la dificultad de
controlar microorganismos son las bacterias de los fangos y las
algas. En la industria de pasta papelera, por ejemplo, estos
organismos causan problemas graves. Los microorganismos se pueden
controlar en parte mediante cloro. En la actualidad, como la
industria de la pasta de papel se ha visto forzada a no seguir
usando cloro y a utilizar, en su lugar, peróxido de hidrógeno, se
han incrementado los problemas con las algas y con las bacterias de
los fangos. Hoy en día no existe ningún agente eficaz frente a
estos organismos, que esté adaptado al medio ambiente.
En la industria cervecera un problema importante
se debe a las levaduras. Se dice que las levaduras representan el
90% de la destrucción de las bebidas carbonatadas (Kirk Othmer,
segunda edición, volumen 2, página 647 <1967>).
El agua contaminada con bacterias también causa
problemas importantes. Muchas enfermedades se propagan, por ejemplo,
mediante el agua potable. El permanganato de potasio, empleado
anteriormente en la desinfección del agua potable, ya no se usa en
la actualidad debido a la toxicidad de los residuos de manganeso
(Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 623 <1967>).
En la actualidad, numerosos productos químicos se emplean para
matar bacterias en el agua potable, especialmente cloro, que
constituye, obviamente, una alternativa inaceptable para el medio
ambiente. Un agente que sea aceptable para el medio ambiente y
proporcione agua sin bacterias sería muy deseable.
A partir del documento
CA-A1-2129489 se sabe cómo controlar
el crecimiento de los microorganismos mediante una combinación de
un biocida no oxidante y de ácido peracético en una disolución
ácida. De este modo, el contenido de biocida podría reducirse. El
ácido peracético en sí mismo no proporciona ningún efecto especial
en el control del crecimiento y, en consecuencia, los biocidas no
pueden excluirse en su totalidad.
Se sabe ya que el percarbonato sódico, debido a
su efecto oxidante y a su gran alcalinidad es corrosivo y tóxico
para los organismos vivos. Debido a la presencia de peróxido de
hidrógeno, una disolución acuosa de percarbonato sódico es muy
oxidante. Una disolución de percarbonato sódico que genera un
contenido de peróxido de hidrógeno de 0,1 a 0,25% es, por ejemplo,
suficiente para matar Salmonella typhosa, E. coli y
Staphylococcus aureus en una hora (Kirk Othmer, segunda
edición, volumen 2, página 623 <1967>). Este contenido de
peróxido de hidrógeno se corresponde a una concentración de
percarbonato sódico de aproximadamente 0,4 a 1,0% en peso. El polvo
seco de percarbonato sódico es corrosivo y se emplea, por ejemplo,
para controlar insectos parásitos de las fajinas de maíz. Un 3,5%
de esta sustancia entre los granos mata a los insectos en quince
días (Emberi L.C., Nwufo M.I <1990>, Agric Ecosyst Environ 32
<1-2>, 69-76).
El documento WO 94/24869 describe una composición
germicida que contiene (A) un peróxido inorgánico, (B) un éster
incompleto de un alcohol polihidroxilado con un ácido orgánico y
(C) una sal de metal alcalinotérreo. La descripción menciona la
desinfección de aguas urbanas. Cuando contiene percarbonato sódico
éste alcanza hasta un 5% en peso en el producto y la concentración
después de hidratación es de 100 ppm en todos los ejemplos dados.
La descripción menciona como deseable una concentración de
25-100 ppm en agua. Mientras que se reivindican
buenas propiedades de almacenamiento y unos efectos esterilizadores
excelentes, el documento WO 94/24869 no menciona nada respecto al
sabor y al olor del agua que siguen al tratamiento.
El documento WO 96/03046 describe composiciones
microbicidas que se adaptan para proporcionar la liberación dirigida
y/o sostenida de microbicidas peroxigenados, procedimientos para su
preparación, así como procedimientos para la desinfección de
líquidos, incluida el agua. El percarbonato sódico se menciona como
la fuente sólida más preferida de compuesto peroxigenado a causa de
sus propiedades medioambientales favorables. Esta u otras fuentes
de compuestos peroxigenados se inmovilizan entonces en una matriz
que contiene poli(caprolactona), lo que da como resultado
una composición en capas de lenta liberación. La composición flota
en agua y se emplea para tratar extensiones de agua dulce tales como
lagos, depósitos, estanques, canales de drenaje, acequias,
piscinas, peceras, estanques de peces, particularmente estanques de
barbos y truchas, manantiales y balnearios naturales,
particularmente manantiales sulfurosos. El procedimiento y el
producto, de acuerdo con el documento WO 96/03046, pueden emplearse
también para tratar extensiones de agua salada, incluyendo áreas
del mar y estuarios.
El documento EP 47 015 describe una formulación
de saneamiento mejorada que contiene un compuesto de peroxidrato, un
ablandador del agua no fosfatado, una fuente de ion magnesio como
estabilizador parcial del peróxido de hidrógeno, un agente quelante
para metales de transición y un tensioactivo no iónico. Aunque se
menciona que la formulación puede ser de utilidad para diversidad de
saneamientos, blanqueos, limpiezas, desodorizaciones, eliminación
de manchas y otros propósitos en lavanderías domésticas o
institucionales, la descripción se centra en el tratamiento de
pañales de bebé.
El documento de EE.UU. 4,926.795 enseña un método
de restablecer un sabor aceptable a barbos que presentan un sabor
terroso y mohoso inaceptable que comprende tratar un acuífero con
un peróxido inorgánico que libera peróxido de hidrógeno en el medio
acuático y mantener a los peces en el medio tratado durante un
tiempo suficiente para restablecer el sabor aceptable. El peróxido
de hidrógeno en sí mismo o un peróxido inorgánico, que libera
peróxido de hidrógeno, tal como el peroxihidrato de percarbonato
sódico, pueden usarse. El restablecimiento del sabor se lleva a
cabo en tan sólo 72 horas.
El presente inventor ha encontrado que incluso
concentraciones muy bajas de percarbonato sódico actúan como agentes
preventivos del crecimiento de bacterias; este descubrimiento
proporciona posibilidades de purificar el agua potable con
percarbonato sódico. El presente invento proporciona un método para
el control de las bacterias en el agua potable, de acuerdo con la
reivindicación 1, y el empleo de percarbonato sódico con este
objetivo, de acuerdo con la reivindicación 3.
El presente inventor ha descubierto mediante
estudios extensivos que el percarbonato sódico, conocido
previamente por sus propiedades oxidativas y destructoras de
bacterias, también tiene un efecto destructor activo frente a
microorganismos de difícil control tales como esporas, algas,
levaduras y bacterias de los fangos. El peróxido sódico proporciona
un efecto similar al percarbonato sódico, pero requiere condiciones
controladas con precisión debido a los riesgos en el manejo.
Los tipos de microorganismos mencionados
anteriormente difieren esencialmente de las bacterias por su
resistencia a medios de control químicos. Los agentes activos para
matar esporas, algas, levaduras y bacterias de los fangos no se
encuentran disponibles hasta la fecha. Debido a los numerosos
problemas causados por estos microorganismos, entre otros, en la
industria el presente invento introduce, por medio de sus
propiedades únicas, un producto muy deseable.
El percarbonato sódico disuelto en agua se
descompone en peróxido de hidrógeno y carbonato sódico. Es la
cooperación entre el peróxido de hidrógeno y el carbonato sódico la
que proporciona el efecto biocida activo. Cada componente por
separado no tiene el mismo efecto. La disolución activa de
percarbonato sódico tiene un valor de pH entre 8 y 11, en
particular de aproximadamente 10. Una de las ventajas del
percarbonato sódico como medio para matar esporas, algas, levaduras
y bacterias de los fangos es que sólo genera agua y carbonato
sódico como residuos, es decir, dos compuestos que no son en
absoluto tóxicos. Esto significa que el percarbonato sódico, a
pesar de su potente efecto biocida, no libera ningún residuo
peligroso que pueda afectar al medio ambiente de una manera
negativa. Al usar percarbonato sódico los biocidas empleados
previamente pueden excluirse completamente, se puede obtener un
resultado mejor y, simultáneamente, se puede cuidar el medio
ambiente.
Además, el presente inventor ha encontrado que el
percarbonato sódico actúa como agente que evita el crecimiento de
bacterias incluso a concentraciones muy bajas y que el peróxido de
hidrógeno formado por el percarbonato sódico se degrada rápidamente
a temperaturas elevadas. De este modo, el presente inventor ha
descubierto que el percarbonato sódico proporciona un producto muy
útil para purificar el agua potable. La velocidad de degradación
del peróxido de hidrógeno en una disolución de agua se muestra más
adelante, en el ejemplo 7. El percarbonato sódico, según se esboza
en las reivindicaciones, no se ha empleado previamente para depurar
agua potable. Estos hechos sobre el efecto del percarbonato sódico
a bajas concentraciones son nuevos y sorprendentes y abren nuevas
posibilidades de purificación del agua potable. Véanse también los
ejemplos 2 y 6.
El efecto del percarbonato sódico se ve afectado
por la temperatura y la concentración. Un intervalo de
concentración activa para matar:
- -
- esporas es de 5 a 10% en peso, preferiblemente de 6 a 7% en peso, durante una incubación de una hora a temperatura ambiente,
- -
- algas, levaduras y bacterias de los fangos es de 0,3 a 1,0% en peso, preferiblemente de 0,4-0,6% en peso, en una incubación de 1 hora a temperatura ambiente,
- -
- bacterias es de 0,01 a 2,0% en peso, concentraciones de aproximadamente 0,01 a 0,02 usadas posiblemente a temperaturas elevadas y concentraciones de aproximadamente 0,8 a 2,0% en peso son efectivas a temperatura ambiente. A una concentración de 0,01 a 0,02% en peso el percarbonato sódico controla el crecimiento a temperatura ambiente.
Concentraciones más elevadas de percarbonato
sódico son eficaces, pero no proporcionan ventajas adicionales. En
todos los casos pueden usarse concentraciones más bajas a
temperaturas más elevadas. La expresión temperaturas
elevadas no se refiere a ninguna temperatura en particular,
sino a una temperatura superior a 45ºC, particularmente entre 45 y
60ºC.
El presente invento se ilustra más en detalle por
medio de los siguientes ejemplos, en los que:
El ejemplo 1 es un ensayo para determinar la
concentración más baja de percarbonato sódico para matar esporas a
temperatura ambiente,
El ejemplo 2 describe el control del crecimiento
y el efecto destructor del percarbonato sódico a temperatura
ambiente,
Los ejemplos 3 a 4 describen ejemplos sobre
posibles campos de aplicación para el percarbonato sódico como
agente destructor de esporas,
El ejemplo 5 describe el empleo de percarbonato
sódico como agente destructor de algas, levaduras y bacterias de los
fangos, entre otros, en la limpieza de un depósito,
El ejemplo 6 describe el empleo de percarbonato
sódico como un medio destructor de bacterias para purificar agua
potable,
El ejemplo 7 muestra la velocidad de degradación
del peróxido de hidrógeno en una disolución de agua a varias
temperaturas.
Las colonias de bacterias se aislaron de
depósitos de la maquinaria de productos lácteos en Nomnejerier,
Ume\ring{a}. Entre otras, una bacteria gram positiva formadora de
esporas se aisló y se asignó al género Bacillus.
Investigaciones bioquímicas adicionales identificaron la especie
como B. cereus alt. B. mycoides. B. mycoides
es en la mayoría de sus características idéntica a B. cereus
y muchos especialistas de toxinas la contemplan como inseparable de
B. cereus.
Se esporuló B. mycoides y la disolución
con esporas se calentó a 100ºC durante diez minutos. Los organismos
que sobrevivieron a este tratamiento se definieron subsecuentemente
como esporas. Inicialmente 2,5 g de percarbonato sódico se
disolvieron en 9,8 ml de agua desionizada esterilizada a 50ºC,
después de lo cual la disolución se dejó enfriar a temperatura
ambiente. Se llevó a cabo una serie de diluciones a partir de la
disolución original hasta concentraciones finales de 25%, 12,5%,
6,3%, 3,13% y 0%. 100 microlitros de la disolución de esporas
(correspondientes a aproximadamente 100 esporas) se añadieron a
todas las disoluciones, a partir de lo cual se incubaron durante
una hora a temperatura ambiente. Después de la incubación, las
disoluciones se centrifugaron a 12.000 x g. A partir de ahí, los
sedimentos se suspendieron en agua y la disolución se centrifugó de
nuevo de la misma forma que anteriormente. Esto se repitió una vez
más. Después de la última centrifugación, los sedimentos se
disolvieron y se distribuyeron en cantidades iguales sobre tres
placas de agar para cada concentración. Se emplearon placas TGEA
(triptón-glucosa-extracto-agar,
mezclado según las instrucciones del productor Unipata Ltd,
Basingstoke, Hampshire, Reino Unido), sin excepción. Las placas se
incubaron durante 48 horas a 30ºC. Después, las colonias crecidas se
contabilizaron a mano.
La concentración original de esporas añadida a
cada concentración de percarbonato sódico se estableció mediante
determinación del contenido vivo (contaje viable) en ensayos
separados. El valor medio demostró que la concentración original
era de 10^{5} esporas por 100 microlitros. La diferencia con
respecto a la concentración cero en la tabla se debe a las pérdidas
durante las tres centrifugaciones que se llevaron a cabo en cada
ensayo. A partir de este ejemplo puede observarse que el
percarbonato sódico a una concentración de 6,25% en peso a
temperatura ambiente destruye las esporas eficazmente.
Dos compuestos diferentes que destruyen bacterias
se aislaron a partir de depósitos de la maquinaria de productos
lácteos en Nomnejerier, Ume\ring{a}. Uno de los aislamientos fue
una bacteria gram positiva formadora de esporas, B.
mycoides, véase el ejemplo 1. El otro aislamiento se identificó
como Pseudomonas spp. Ambas cepas se identificaron mediante
api 20E (Api 20 E bioMérieux, 69280 Marcy L'Etorel, RCS Lyon,
Francia). Además, Salmonella typhimcerium LT2A se empleó
como organismo control (Ames B, Zinder N D, Lederberg, J
<1962> Genetic exchange in Salmonella, J Bacteriol
64:679-699).
Inicialmente se llevó a cabo un ensayo control
donde se seleccionó el intervalo de concentración que proporcionaba
inhibición. Se emplearon placas de agar TGEA como medio de cultivo,
tanto para el ensayo inicial como para el ensayo principal. Durante
el sembrado de las placas se añadió percarbonato sódico a varias
concentraciones. La adición se efectuó después de la esterilización
en autoclave. Como control se emplearon placas TGEA sin adición de
percarbonato sódico. Una cantidad fija de bacterias se extendió
sobre las placas de cultivo que contenían las diversas
concentraciones de percarbonato sódico. Después de la incubación
durante 24 horas a 30ºC, la concentración de bacterias se determinó
determinando el contenido vivo, las bacterias se resuspendieron en
PBS (disolución salina de tampón fosfato) hasta una absorbancia
correspondiente a 1,0 a 650 nm. Subsecuentemente se llevó a cabo
una serie de diluciones desde 10^{-1} a 10^{-7} y 100 \mul de
las diversas diluciones se extendieron en placas de TGEA sin
adiciones y se incubaron a 30ºC durante 24 horas. Después las
colonias de bacterias se contabilizaron manualmente y la
concentración de bacterias se calculó de una manera ya conocida
per se.
El resultado del ensayo inicial muestra que no
pudo tener lugar ningún crecimiento para ninguna de las tres
bacterias sometidas a ensayo desde una concentración de 0,10% a
5,0%.
La tabla muestra que una concentración de sólo el
0,01% en peso de percarbonato sódico controla el crecimiento de
todas las bacterias analizadas.
Se disolvió percarbonato sódico en PBS a
50-60ºC y entonces se le permitió enfriarse a
temperatura ambiente. Una cantidad constante de las tres bacterias
anteriormente mencionadas se mezcló en PBC que contenía varias
concentraciones de percarbonato sódico y se incubó durante una hora
a temperatura ambiente. Después de la incubación las disoluciones
se centrifugaron a 12.000 x g. Tras esto, el sedimento se
resuspendió en PBS y la disolución se centrifugó de nuevo de la
misma forma a la descrita. El procedimiento se repitió una vez más.
Después de la última centrifugación los sedimentos se disolvieron y
se distribuyeron en cantidades iguales en tres placas de agar TGEA
para cada concentración. Las placas se incubaron durante 24 horas a
30ºC. A continuación se contabilizaron a mano las colonias
crecidas.
Inicialmente se llevó a cabo un ensayo preliminar
para seleccionar el intervalo de concentración en el que las tres
cepas diferentes de bacterias morían. Los resultados del análisis
principal se muestran en la tabla 2.
La tabla muestra que una concentración superior
al 0,8% en peso mata a las bacterias a temperatura ambiente.
Se coloca el paño de ubres usado en un cubo. A
continuación se añaden unos 5 litros de agua templada (> 45ºC) y
0,3 kg (aproximadamente 3,5 dl) de percarbonato sódico en polvo (6%
en peso).
Después de al menos una hora todas las esporas y
bacterias se han muerto. Los paños deben preferentemente mantenerse
en la disolución durante 30 minutos antes del próximo ordeño. Los
paños se aclaran en agua tibia antes de usarse.
Se añaden 0,3 kg (aproximadamente 3,5 dl) de
percarbonato sódico a 5 litros de agua templada (> 45ºC) (6% en
peso), se agita y la disolución se vierte en un pistola de baja
pulverización y los establos, los guantes de estiércol, las paredes
y si es posible el techo y los espacios de almacenamiento de forraje
se pulverizan. Se deja actuar durante un par de minutos. No se
precisa aclarado y no queda ningún residuo químico peligroso.
Incluso el mal olor de, entre otros, el estiércol desaparece
eficazmente por medio de la disolución.
Se llena el depósito con agua y, después, se
añade percarbonato sódico en polvo de acuerdo a las instrucciones
de dosificación indicadas a continuación. El depósito se llena
hasta el borde con agua, no necesariamente templada, y se deja sin
tapa durante al menos 12 horas. A continuación, el depósito se vacía
y se aclara con agua. De este modo, se consigue un depósito limpio
y cualquier alga, levadura y bacteria de los fangos presente se
muere y se elimina de manera eficaz. Para eliminar cualquier
bacteria de los fangos que esté pegada a la pared del depósito se
recomienda emplear una concentración mayor, entre un 0,6 y un 6% en
peso, dependiendo de la cantidad de bacterias de los fangos.
La disolución de aclarado tiene tan baja
toxicidad después de 24 horas que la disolución no debiera provocar
ninguna enfermedad dañina si fuese consumida.
- -
- Depósitos de agua dulce: 250 ml de polvo por 40 litros de volumen de depósito (aproximadamente un 0,5% en peso).
- -
- Depósitos de aguas residuales: 250 ml de polvo por 25 litros de volumen de depósito (aproximadamente un 0,8% en peso).
- -
- Pozos negros: deben añadirse 50 ml de polvo.
- -
- Pozo de las bombas: debe añadirse 1 litro a 100 litros de volumen de depósito.
Se añadieron 0,1 kg de percarbonato sódico a
1.000 litros de agua (> 45ºC) (0,01% en peso). Se deja actuar
durante una hora. Después de una hora, las bacterias se han muerto
y después de 24 horas el agua es potable (véase el ejemplo 7a).
El percarbonato sódico podría, por ejemplo,
añadirse al agua en forma de un comprimido efervescente; estando el
comprimido adaptado, por ejemplo, de manera que un comprimido
proporcione la concentración deseada en 5 litros de agua.
El contenido de oxígeno activo en la disolución
de percarbonato sódico se determina por medio de titración
yodométrica (A I Vogel, Quantitative inorganic analysis,
página 363), 20,0 mg de percarbonato sódico se disolvieron en 200
ml de agua (100 mg/l, 0,01% en peso) a 50ºC mientras se agita
lentamente. Cuando se ha disuelto todo, comienzan las mediciones.
Cada vez se toma una muestra de 10 ml y se determina la
concentración de oxígeno activo y de peróxido de hidrógeno.
| Tiempo en minutos | H_{2}O_{2}, ppm | Porcentaje de oxígeno activo |
| 2 | 11,2 | 73 |
| 10 | 7,6 | 50 |
| 20 | 3,7 | 24 |
| 30 | 1,1 | 7 |
| 40 | 1,2 | 8 |
| 60 | 0,5 | 3 |
Se disuelven 50 mg de percarbonato sódico en 500
ml de agua (100 mg/l, 0,01% en peso) a 60ºC. Se permitió que la
disolución se enfriase hasta 30ºC y se mantuvo a esa temperatura.
La concentración de oxígeno activo y de peróxido de hidrógeno se
determinó después de 30 y después de 60 minutos. El volumen del
ensayo fue de 5 ml.
| Tiempo en minutos | H_{2}O_{2}, ppm | Porcentaje de oxígeno activo |
| 0 | 11,0 | 72 |
| 30 | 10,4 | 68 |
| 60 | 8,6 | 56 |
Los resultados muestran que el peróxido de
hidrógeno se degrada hasta niveles no perjudiciales en una hora a
50ºC. A temperaturas inferiores la degradación es más lenta.
Para concluir, la presente descripción muestra
que las esporas y otros microorganismos de difícil control mueren
eficazmente con percarbonato sódico a 6,25% en peso. Además se
muestra que algas, levaduras y bacterias de los fangos pueden
destruirse eficazmente y eliminarse con percarbonato sódico a una
concentración de 0,5% en peso. Además, se muestra que puede
obtenerse agua potable sin bacterias mediante la adición de
percarbonato sódico a 0,01% en peso a una temperatura elevada. En
ningún caso se forman residuos tóxicos.
El percarbonato sódico proporciona, de este modo,
un agente eficaz adaptado al medio ambiente para matar tanto
esporas y algas como bacterias y hongos.
Claims (4)
1. Un método para controlar las bacterias en el
agua potable, caracterizado porque una composición que
consiste esencialmente en percarbonato sódico se añade al agua,
estando la cantidad de percarbonato sódico añadido al agua en el
intervalo de 0,01 a 2,0% en peso y careciendo el agua resultante de
residuos tóxicos.
2. El método, de acuerdo con la reivindicación 1,
en el que la cantidad de percarbonato sódico está en el intervalo de
0,01 a 0,02% en peso.
3. El método, de acuerdo con las reivindicaciones
1 ó 2, en el que el agua tras la adición de percarbonato sódico se
mantiene a una temperatura de al menos 45ºC durante al menos una
hora.
4. El empleo de percarbonato sódico para la
fabricación de una composición para el control de las esporas,
levaduras y bacterias de los fangos en el agua potable,
caracterizado porque dicha composición consiste esencialmente
en percarbonato sódico y que el percarbonato sódico se incluye en
un comprimido efervescente en una cantidad tal que un comprimido
proporciona una concentración de 0,01 a 0,5% en peso en 5 l de
agua.
Applications Claiming Priority (2)
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